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der Kopfkapsel liege, ist unhaltbar, weil bei verschiedenen Familien

mit typisch eucephalen Larven (Simulium, Chironomus, Sciara) das

Öberschlundganglion hinter der Kopfkapsel liegt. Es läßt sich daher

auch nicht mehr in diesem Sinne zwischen eucephalen u. acephalen

Larven prinzipiell unterscheiden. Die Mundteile der Larven von Chiro-

nomus, Simulium, Pedecia rivosa, Tipula gigantea, Limnobia, Limno-

phila spec., Stratiomys, Atherix, Musca, Anthomyia, Gastrophilus

werden beschrieben und unter Hinzuziehung einiger weiterer Formen

sowie der Literatur vergleichend besprochen. Zum Schluß folgen Aus-

führungen über die Reduktion des Kopfes bei den Dipterenlarven.

Im Anschluss an Holmgren stellt Verf. eine etwas erweiterte

Formenreihe auf, um den mutmaßlichen Weg der Reduktion von den

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bestimmt festgestellt zu haben glaubt, daß der Kernfaden der Speichel-

drüsenkerne spiralig gewunden sei, ist Verf. der ebenfalls bestimmten

Ansicht, daß der Faden aus einzelnen hinter einander gereihten Scheiben

besteht. Bei jungen Larven besitzt der Speicheldrüsenkern nur einen

Nucleolus, von dem die beiden Enden des Fadens ihren Anfang nehmen,

während bei verpuppungsreifen Larven zwei Nucleolen vorhanden sind,

die Fadenenden also frei sind. Bezüglich des Baues des Nucleolus

wird die Ansicht Balbianis bestätigt: die Fadenenden tragen zahl-

reiche feine Verästelungen, an denen kleine Kügelchen sitzen. Die

beiden dicht hinter dem Nucleolus den Kernfaden umgebenden Ringe

(bei jungen Larven nur einer) bestehen wie der Nucleolus aus zahl-

reichen reihenweise dicht gelagerten Kügelchen. Der Faden ist bei

Chironomus stets vollkommen einheitlich, nie gespalten. Seiner Natur

nach ist der Faden als Träger der Nucleolarsubstanz aufzufassen;

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tretende Keimbahnplasma tritt auf dem Vierzellenstadium mit der

einen Zelle in dauernde Verbindung und findet sich während der ganzen

Embryonalperiode in den aus dieser Zelle hervorgehenden Geschlechts-

zellen (Polzellen) wieder. Die Polzellen teilen sich bis zur Zahl 8, worauf

nach einer weiteren bloßen Kernteilung die Teilung vorläufig sistiert

wird, sodaß bis zum Ende der Embryonalperiode acht zweikernige

Geschlechtszellen vorhanden sind. Ihr Verhalten ist wesentlich wie

bei anderen Dipteren und Insekten. Sie scheiden bald aus dem Verband

des Blastoderins aus und liegen vor dem Ausschlüpfen der jungen Larve

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lebenden Objekt, die Speicheldrüsenkerne und ihre Formveränderungen;

er hält die letzteren nicht für amöboid, sondern glaubt, dass sie mög-

licherweise durch Kontraktionen des an der Kernmembran fest-

gehefteten Kernfadens bedingt seien. Im Gegensatz zu Erhard (s. d.)

glaubt Verf. bestimmt festgestellt zu haben, dass der Kernfaden spiralig

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tigrina, viridula und Stratiomys chamaeleon. Die Bildung der Thorakal-

scheiben wird als von dem für andere Dipt. festgestellten Modus

wesentlich abweichend geschildert. Bei Odontomyia sind 7 Paar

thorakale Imaginalscheiben vorhanden, im Mesc- und Metathorax

ausser einem ventralen und lateralen auch je 1 dorsales Paar, aus

welehen die dorsale Hypodermis hervorgeht. Die Thorakalscheiben

bilden sich schon sehr früh als mehrschichtige Zellenanhäufungen

oder Wucherungen im Hypoderm, die rasch an Ausdehnung gewinnen.

Der Peripodalraum entsteht nicht durch Einstülpung, sondern erst

sekundär durch Umfaltung und Überwachsung der Ränder. Bei den

imaginalen Hypodermisanlagen wird der zuerst angelegte Peripodal-

raum bei der Metamorphose wieder ausgeglichen. — Bezüglich der

Mesodermzellen in den Extremitätenhöhlen, welche später die Musku-

latur liefern, neigt Verf. zu der Ansicht, dass sie von freien Mesoderm-

zellen der Leibeshöhle, welche in die Extremitätenhöhlen einwandern,

herrühren könnten. — Die auf allen Segmenten vorkommenden Tast-

borsten werden gebildet von grossen kolbenförmigen 2—3 kernigen

Matrixzellen, sie sind mit dem Chitin gelenkig verbunden und werden

bei jeder Häutung neu gebildet. Die Matrixzellen stehen mit einer

Gruppe von Sinneszellen in Verbindung. — Kopfscheiben. Aus der

sogen. Kopffalte entstehen bei Stratiomyiden nur die Augen und die

sie begrenzenden Teile der Hypodermis. Die Imaginalscheiben des

Rüssels und der Antennen gehen aus besonderen ausserhalb der Kopf-

Publikationen und Referate. 13

falte liegenden Anlagen hervor. Die Kopffalte entsteht bei Stratiomys

aus der ventralen Wand der die Kopfplatte umschliessenden Hypo-

dermistasche und wird schon embryonal angelegt. — Metamorphose

der Thorakalmuskeln. Muskelveränderungen, die als imaginale Anlagen

zu deuten sind, beginnen schon bei der Larve (Transformationsmuskeln).

Bei dem Umwandlungsprozess tritt ein verschiedenes Verhalten der

Muskelkerne in Erscheinung: ein Teil der Kerne bleibt bis in die

späteren Stadien erhalten und spielt die Hauptrolle bei der Neubildung

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Platychirus peltatus Meig. III. A propos de quelques Tabanus types

de Brauer. — Bei @ymnochoristomma bosnica Strobl handelt es sich

um abnorme 3 Exemplare mit teilweise weiblichen Charakteren von

Homalomyia scalaris F. Verf. erwägt die Möglichkeit einer parasitören

Kastration. Ebenfalls um ein $ mit weiblichen Charakteren handelt

es sich im 2. Fall (Platychirus peltatus).

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28 Insecta. Diptera für 1910.

Übersicht nach dem Stoff.

Nomenklatur.

Paläarkt. Acalyptraten-Gattungen. Hendel (2).

Sammelwerke, Faunen, Monographien, Revisionen.

Allgem. Katalog der Dipteren, Vol. 7 (Syrphidae, Dorylaiidae, Phoridae,

Clythiidae). Kerteez (4). ER.

Sammelwerke, Faunen: Diptera Danica, Part 3, Empididae. Lundbeck. —

Süßwasserfauna Deutschlands, Dipteren.. Grünberg (1). — Blutsaugende Musciden

von Indien. Brunetti (2). — Indische Anophelinen (Gattungen). James.

Familien: Paläarkt. Chloropiden, monogr., Becker (3, 4). — Afrikan. Chloro-

piden, monogr., Becker (5). — Ulidiinae Hendel (3). — Amerik. u. afrik.

Nemestriniden. Lichtwardt. — Culiciden (Ergänzungsband). Theobald (4).

Einzelne Gattungen und Arten: Helophilus Becker (2). — Trichophthalma

Lichtwardt. — Pachyrhina, paläarkt. Arten, Riedel (1). — Rymosia Winn., Dzied-

zicki. — Pelecorhynchus, Rieardo. — Phlebotomus, indische Arten, Annandale (1).

— Stichopogon, Bezzi (5). — Musca domestica L., Monogr., Bau, Entwicklung,

Lebensweise usw., Hewitt (4).

Technik. Sammelmethoden.

Sammeln und Präparieren von Minutien. Cresson.

Entwieklung. Metamorphose.

Vererbung: Drosophila, bestimmtes Geschlechtsverhältnis, Morgan (1). —

Geschlechtsbestimmende Faktoren und eingeschlechtliche Bruten bei Drosophila,

Quackenbush,

Paedogenese: Tanytarsus dissimilis, Johannsen (3).

Kopulation: Bombylius venosus, Streich. — Tabanus, WVilleneuve (11).

Eiablage: Nemoraea puparum F., Torka. — Stomoxys caleilrans, Eiablage

und Zucht, Langeron. — Baccha, Morley.

Lebendiggebären: Helicobosca muscaria, Schmitz (2).

Entwicklungsgeschiehte: C'hironomus, Embryologie, Craven. — Chirono-

mus, Entwicklung und Verhalten der Geschlechtszellen bis zum Ablauf der

Embryonalperiode, Hasper. — Psychoda alternata Say, postembryonale Entwick-

lung des Darmkanals, Haseman. — Odontomyia und Stratiomys, postembryonale

Entwicklung (Imaginalscheiben des Kopfes u. Thorax, Tastborsten, Metam. d.

Thoraxmuskeln, Bau und Mechanismus des Schlundkopfes), Jusbaschjanz. —

Verhalten der Chromosome in den Keimzellen von Culex, Stevens.

Metamorphose: ZLucilia spec., Allen. — Mycetophila spec. indet., Eng-

land, Bloomfield. — Gastrophilus equi F., Eier, Collinge. — Anastrepha (Trypeta)

ludens Lw., Crawford. — Culex cantans Meig., Eier, Eysell (1). — Culicada

morsitans Theob., Goetghebuer (3). — Thereva egressa Coqu., Hyslop (2). — Tabanus

par, Metam., Lebensw., King. — Stomoxys calcitrans, Zucht, Langeron. — Si-

mulium ornatum Meig., Larve, Liebe. — Brasilianische Simulium -Arten, Lutz (3).

— Haematobia serrata Pc-D., Marlatt. — Ceratitis capitata, Martelli (%?). — Droso-

phila ampelophila, Martelli (3). — Myopites limbardae Schin., Martelli (4). — Phyto-

myza praecox Meig., Martelli (4). — Plecia fulvicollis F., forcipata O. S., de Meijere

. Übersicht nach dem Stoff, 29

(1). — Puliciphora beckeri, de Meijere (3). — „Green bottle Fly“ (Zuecilia) in

Sierra Leone, Orpen. — Sarcophaga lineata Fall., Paoli. — Roubaudia rufescens

Villen., Roubaud. — Chironomiden (Allg.), Sack. — Helicobosca muscaria, Schmitz

(2). — Helea (Forcipomyia) regulus Winn., H. lucorum Meig. und bereits be-

kannte Metamorphosen, Speiser (5). — Afrikanische Oestriden, Spathicera (Gyro-

stigma) meruensis n.sp., rhinocerontis bicornis, conjungens, Oestrus ovis, Gastro-

philus, Sjöstedt. — Hypoderma bovis Geer., Ströse. — Syritta oceanica Macq.,

Terry. — Billaea pectinata F., Tölg. — Entwicklungsstadien westafrikan. Culi-

eiden, Wesch& (1). — Chironomus, Larve, Wittig. — Psychoda sexpunctata Curt.,

Zuelzer.

Morphologie und Anatomie. Monstrositäten.

Aeussere Morphologie: Larven: Morphologie der Mundteile u. des Kopfes

verschiedener Dipterenlarven: Simulium, Chironomus, Sciara, Pedicia, Tipula,

Limnobia, Limnophia, Stratiomys, Atherix, Musca, Anthomyia, Gastrophilus,

Becker, R. — Simulium ornatum, Larve, Morph., Liebe. — Culiciden-Larven,

allgem. Morph., Wesch& (1). — Billaea pectinata F., äußere Morph. der Larve,

Tölg. — Psychoda sexpunctata Curt., Morphol. von Larve und Puppe, Zuelzer.

Imagines: Kopulationsorgane: Rymosia, BDziedzleki. — Pegomyyia,

Sehnabl. — Prothorakalloben (,,Patagia‘“) der Anophelinen, James (4). — Ptilinum

der schizophoren Dipt., Michl (2). — Bau der Fühler und Taster bei Helea,

Speiser (5). — Leptis vitripennis, Variieren des Geäders, Kleine (1); Tabanus

luridus, Variieren des Geäders, Kleine (2); Geäder-Variationen (allgem.),

Kleine (4).

Anatomie: Cecidomyia resinicoloides Will., Anatornie der Larve, Williams.

— Tipula maxima, Larve, Anatomie der Zirkulations- und Respirationsorgane,

Brown. — Chironomus, Bau der Speicheldrüsenkerne der Larve, Erhard, Her-

werden (1.3). — Mycetophila, Sarcophaga, Muskelinsertionen an dem Chitin

des Körpers bei der Larve, Holmgren, Stamm. — Histologische Untersuchungen

an Tachinidenlarven, Pantel. — Histologische Untersuchungen über die Meta-

morphose von Musciden (Calliphora erythrocephala), Perez (I—3); Metamorphose

der malpighischen Gefäße (1); Metamorphose des Enddarms (2). — Termitoxenia

assmuthi Wasm., Anatomie und Histologie, Assmuth. — Bau der Retina bei Mus-

ciden, Cajal. — Musca domesticaa, Bildung von Chromidien und ihre weitere

Umwandlung, Popoff.

Monstrositäten: Kopf- und Geädermißbildungen, Kröber (1). — Monströse

Kopfbildung bei Zchinomyia fera, Michl (1). — Gymnochoristomma bosnica &

(= Homalomyia scalaris), Platychirus peltatus $, Villeneuve (1). — Syphus per-

plexus mit abnormem Kopf (3 Fühler, 2 Ocellenfelder, linkes Auge fehlt),

Osborn (3).

Physiologie.

Physiologische und energetische Untersuchungen über die Metamorphose,

Tangl. — Zuckerbildung in den Puppen von Calliphora, Krummacher u. Wein-

land. — Calliphora, Untersuchungen über das Verhalten und die Zersetzung

des Fettes bei zerquetschten Larven und Puppen, Weinland (1—3); Verhalten

von Blut und Gewebe, Weinland (4). — Antifermentbildung bei in den

Kannen von Nepenthes lebenden Dipterenlarven, Jensen.

30 Insecta. Diptera für 1910.

Experimentelle Physiologie.

Zucht von Drosophila auf künstlichem Nährboden von Hefepilzen und

Bakterien auf Kartoffeln, Deleourt u. Guy¬. — Einfluß fortgesetzten Hungerns

auf das Geschlechtsverhältnis bei Drosophıla (bis zu fünf Generationen keine

Wirkung), Holmes.

Lebensweise, Zucht, Hybridation ete.

Lebensweise: Dipterenlarven in den Kannen von Nepenthes. de Meijere (3,5),

Jensen (Antifermentbildung). — Süßwasserdipteren, Brocher. — Süß-

wasserfauna Deutschlands, Dipteren (exkl, Chironomidae), Grünberg (1).

Blütenbesuch: nordamerikan. Bombyliiden, Graenicher (3). — Geranomyia,

Nahrungsaufnahme, saugt an Blüten, Knab (1).

Myrmecophile Dipteren : Bengalia latro, Idia luteigaster, discolor, bei Pheidolo-

geton diversus, Java, Jacobson, de Meijere (2).

Lebensweise, einzelne Arten: Xanthandrus comtus, Lebensweise der Larven

Chapman. — Limosina equitans n. Sp., Ceylon, auf Scarabaeus indicus, Collin (2).

— Anatalanta aptera und Amalopteryx maritima auf den Kerguelen, Loranchet.

— Brasilianische Simulium-Arten, Lutz (1, 3). — Haematobia serrata, Marlatt. —

Myopites limbardae Schin., Martelli (4). — Stomoxys calcitrans und coprophage

Musciden, Portschinsky (2). — Chironomiden (Allgem.), Sack. — Helicobosca

muscaria Meij., Lebensweise, Zucht usw., Schmitz (2). — Cricotopus limnanthemi

n.sp., Willem.

Massenhaftes Auftreten: Aedes sollicitans in Louisiana, Hunter. — C'hlorops

taeniopus Meig. (Chloropisca circumdata Meig.?), in Bielefeld, Junkermann.

Zucht: Stomoxys calcitrans, Langeron. — Calliphora erythrocephala, Tofohr.

— Drosophila, Zucht auf künstlichem Nährboden, Delcourt u. Guyenot.

Melanismus bei Sarcophaga und Stomorys, Lutz (1).

Deberwinterung: Tachiniden, Thompson. — Culiciden in China, Cazeneuve.

Hybridation: Drosophila, Morgan (2).

Krankheitsüberträger und durch sie übertragene Krankheiten.

Schmarotzer.

Krankheitsüberträger: Allgem., Doane. — Culiciden, Sajo. — Angaben aus

der alten medizinischen Literatur über Übertragung der Erdbeerpocken durch

Fliegen, Gudger (1—3). — Allgemein., Stand der augenblicklichen Kenntnisse,

Galli-Valerio. — Dipteren als Krankheitsüberträger, Marchal; Mühll; Slevogt.

— Fliegen als Verbreiter von Infektionskrankheiten, Bertarelli (1); Beyer; Gra-

ham-Smith. — Verbreitung von Typhus durch Fliegen, Fliegen als Trägerinnen

der Typhus-Bazillen, Bertarelli (3). — Verbreitung von Krankheiten durch die

Stubenfliege, Froggatt (1); Hewitt (1). — Verbreitung von Vaceina (Kuhpocken)

durch Fliegen (Musca), Merk. — Simulium, mutmaßlicher Überträger von Pellagra,

Hewitt (2); Lavinder; Sambon; Sheitord. — Tabanus u. Haematopota als Über-

träger von Trypanosomen bei Rindern, Knuth u. Rauchbaar. — @lossina, Bouet

u. Roubaud (1,2); Bruce (1,2); Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie (I—4);

Hearsay; Me Fadyean (Lebensweise und Verbreitung von @lossina).

Malaria: Bentley (in Bombay). — Eysel (2) (Anopheles rossi, Überträger).

— Hehir (Prophylaxe in Indien). — No& (prozentuales Verhältnis der in-

Übersicht nach dem Stoff, 31

fizierten Anopheles in der römischen Campagna 1909). — Rodrigues do Ameral Leal

(Malaria in Lourenco Marques). — Sergent u. Sergent (1,2) (Algier); Thomas

(Manäos). — Treutlein. — de Vogel (1,2) (Myzomıyia rossi Giles als Überträger).

Gelbfieber: in Manäos, Thomas.

Maltafieber: Wakeling (Phlebotomus papatasii).

Schlafkrankheit: Bagshawe; Bertarelli (2); Bruce (1,2); Bruce, Hamerton,

Bateman u. Mackie (I—4); Dryepondt (Prophylaxe); Hearsay; Lichtenheld;

Lortet; Low (Übertragung von Trypanosoma gambiense durch %Yerschiedene

Glossina-Arten); Meyer (geographische Verbreitung der Schlafkrankheit); Uffard

(Trypanosoma cazalboui, Entwicklungskreislauf).

Blutsaugende Dipteren: In Frankreich heimische Stechfliegen, Acloque (1).

— Blutsaugende Dipteren von Abessinien, Drake-Brockman; von Ostafrika,

Hearsay.

Culieiden: Culiciden, Verbr., Lebensweise, Fortpflanzung, Bekämpfung,

Hecker. — Culiciden, Lebensweise und Bekämpfung, Knab (3). — Bekämpfung,

Legendre; Smith (2). — Einfluß von Culicidenlarven (Stegomyia) auf Trink-

wasser (verschlechternd); Boyee u. Lewis. — Biologische Beobachtungen an Culi-

eiden, Galli-Valerio (1,2). — Brutplätze von Culiciden (in Manäos), Thomas.

— Vernichtung der Culicidenlarven durch Fische (Sudan), Balfour. — Einfluß

der Temperatur auf die Stechlustigkeit bei Culiciden, Howlett. — Culiciden als

Träger von Milben, Beziehung zu Fischen, Verschleppung, Thibault. — Ungarische

Culiciden, Kerteez (3). — Culiciden von Rumänien, Leon (1, 2%, 4). — Chinesische

Culiciden, Überwinterung, Cazeneuve. — Culiciden von Cairo, Willeox. — Indische

Culieiden, Theobald (3). — Indische Anophelinen. James (1—4); Hehir. —

Culieiden von den Philippinen, Ludlow; von den Fiji - Inseln, Theobald (1);

von Cochinchina, Carter (?); von Chicago, Gerhard; von Lagos, Graham (2);

von Aschanti, Theobald (2. — Westafrikanische Culiciden, Entwicklungs-

stadien, Wesche; Graham (4). — Culiciden von Madagaskar und den Comoren,

Grünberg (2). — Anophelinen von Panama, biolog. Beob. u. Verzeichnis, Darling.

— Culieiden des Amazonas-Gebietes, Newstead u. Thomas.

Simuliiden : Brasilianische Simulium-Arten, Lutz (1,3). — Simulium, Be-

kämpfungsmittel (in Michigan), Reeves; Sanderson (White Mountains).

Psychodiden : Phlebotomus, Leon (3). — Indische Phlebotomus-Arten, Annan-

dale (1). — Phlebotomus-Arten von Ceylon, Annandale (3). — Phl. papatasii

u. Papataci-Fieber in Südamerika, Tiraboschi.

Tabaniden: Tabaniden des Niederelbgebietes, Körber (3). — Tabaniden

der Schweiz (Neuchätel), Jacob. — Afrik. Tabaniden, Austen (3). — Tabanus

u. Haematopota als Überträger von Trypanosomen bei Rindern, Knuth u. Rauch-

baar. — Chrysops, paläarkt. Arten, Pleske (1—3).

Museiden: Blutsaugende Musciden von Indien (Revis.), Brunnetti (2). —

Glossina, neue Arten, Newstead. — Glossina, Lebensweise und Verbreitung,

Me Fadyean. — Glossina, Lebensweise und Metamorphose, Allgem., Roubaud (2).

— Glossina fusca, Notizen über Vorkommen und Lebensweise, Davey. — @l. mor-

sitans, Angaben über Lebensweise, Sharpe (1). — @l. morsitans, Vorkommen und

Standorte in Luangwa, Hall. — Vorkommen von Glossinen und Viehseuchen

(Trypanosomiasis) im Nyassa-Protektorat, Sharpe u. Keeble. — Stomorys caleitrans,

Eiablage u. Zucht, Langeron; Lebensweise, Portschinsky (2). — Haematobia

serrata R.-D., Lebensw., Metam., Schaden, Bekämpfung, Marlatt.

32 Insecta. Diptera für 1910.

Pupiparen: Trichobius corynorhini n.sp., auf Corynorhinus maecrotis,

Cockerell. — Melophagus ovinus, Davison.

Parasitische Musciden- usw.-Larven und durch sie verursachte Krankheits-

erscheinungen; Hautparasiten: Erzeuger von Myiasis beim Menschen, Austen (6).

— Cordylobia praegrandis n.sp., Austen (2). — C. rodhaini n.sp. aus cuticoler

Larve, Kongo, Gedoelst. — Myiasis am Kongo (Cordylobia), Broden u. Rodhain.

— Myiasis, durch Sarcophaga carnaria verursacht, Mibelli..— Intestinale Myiasis,

Garrood. — Intestinale Infektion durch Larven von Homalomyia canicularis,

Soltau. — Ophthalmomviasis, Guzmann. — Fliegenlarve (Muscarie ?), in Harn-

leiter und Harnblase von Menschen auf den Philippinen, verursacht heftige

Entzündungen, Trible. — Calliphora oceanicae Walk., Schmarotzer bei Schafen

in Australien, Froggatt (?). — Larven von Protocalliphora chrysorrhoea Meig.

parasitisch in Vegelnestern, Miller, Ch. W. — Larven von Plecia fulvicollis F.,

Java, verursachen Hautausschlag, de Meijere (3).

Vestriden: Parasit:e Dipt., Hautschmarotzer, Oestriden, Strobiloestrus

oreotragi n. sp. und Dermaltoestrus oreotragi von Öreotragus saltatrix (Klippbock),

aus Deutsch-Südwestafrika, Scheben (1I—3). — Afrikanische Oestriden, Spathicera,

Oestrus, Gastrophilus, Sjöstedt. — Gastrophilus-Larven in der Haut von Pferden

und Menschen, Cholodkovsky; Portehinsky. — Vernichtung der Gastrophilus-

Larven auf Grund des Baues ihrer Respirationsorgane, Portier. — Gastrophilus

equi F., Beob. über die Eier, Collinge. — Hypoderma bovis, Larve im Hirn eines

Pferdes, Grinsted. — Hypoderma bovis Geer, Entwicklung, Schaden, Bekämpfung,

Ströäse. — Hypoderma bovis, Einwanderung der Larven, S$tub. — Oedemagena

tarandı L., Carpenter.

Tachiniden und andere Schmaretzer bei Insekten: Ganglien bei Insekt:n durch

andere Insektenlarven parasitisch angegriffen, Pantei (2). — Tachinidenlarven,

biologisch-histologische Untersuchungen, Pantel. — Tachiniden, Verpuppung und

Überwinterung, Thompson (3). — Schlüpfen von Tachiniden aus entwickelten

Schmetterlingen, Schulze. — Tachinide in Cocons von Anaphe, Westafrika,

Dudgeon. — Tachiniden aus Lepidopteren, Kleine (3). — Hyophania aenea

Wiedem., Parasit von Chalcodermus aeneus Boh., Ainslie. — Microphthalma

disjuneta, Paras. von Polyphylla fullo, Verbreitungsmittel, Rossikow. —

Roubaudia rufescens Villen., Parasit bei sozialen Wespen in Afrika, Metamorphose

und Lebensweise, Roubaud. — Sarcophaga albiceps, Schmarotzer in Saperda

populnea, Kleine (6). — Sarcophaga lineata Fall., Paras. von Stauronotus maroccanus,

Entwicklung, Paoli. — Billaea pectinata Meij., bei Cetoniiden- und Cerambyeciden-

larven, Tölz. — Cecidomyiiden aus Diaspis an Morus, Kieffer (2).

Kulturschädlinge.

Westafrikanische Trypetiden, Bekämpfungsmaßregeln, Graham (3). — Phyto-

myza? praecor Meig., schädl. an Inula viscosa, Entwicklung, Lebensweise, Mar-

telli (5). — Drosophila ampelophila Lw., Entwicklung, Lebensweise, Schaden,

Feinde, Martelli (3). — Cecidomyiiden auf Aster, Carya, Quercus u. Salix, Felt (5).

Baumschädlinge: Dasyneura fraxinea Kieff., Bekämpfung, Baer.

Vbstbaumschädlinge: Perrisia piri, Diplosis marsupialis Korif. —

Apfelmade: 0’Kane. — Orangen (Mango- u. Guaven-) Schädling in Mexico:

Anastrepha (T'rypeta) ludens Lw., Metam., Lebersw., Schaden, Bekämpfung, Craw-

Faunistik. 33

ford. — Obstschädlinge (an kultivierten und wilden Früchten) in N. S. Wales,

Gurney.

Olivenschädlinge (Lasioptera, Dasyneura), Guereio; Trypetide, Ent-

wicklung, Biologie, Martelli (1).

Pomeranzenschädlinge: Caratitis capitata Wiedem., Entwicklung, Lebens-

weise, Schaden, Martelli (2); Metam., Lebensweise, Schmarotzer, Silvestri.

— Myopites limbardae Schin., Lebensweise, Metam., Schmarotzer, Martelli (4).

Möhrenschädling: Chapais.

Sorghumschädling: Contarinia sorghicola Coqu. Dean (1, ?).

. &etreideschädlinge: Oscinella frit, Auftreten im Herbst, Hiltner. — Itonida

(Cecidomyia) kraussei n. sp., Larve an Sommerweizen, Wolff.

Maisschädling: Oscinella /rit, Oberstein. — Mayetiola destructor Say, Meta-

morphose usw., Wolff (2).

Faunistik.

Arktisches Gebiet.

Dipterenfauna der arktischen Inseln, de Meijere (6).

Palaearktisches Gebiet.

Paläarkt. Chloropiden, Becker (3, 4).

Deutschland: Pommern: Schroeder. — Sam land: Speiser (8). —

Hamburg und Niederelbegebiet: Körber (2,3). — Hannover:

(Tabaniden, Conopiden), Peetz (1,2). — Sachsen (Syrphiden), Winkler.

Böhmen: Vimmer (1,%). — Mähren: Czizek; Landrock. — Steiermark:

Strobl. — Ungarns Kerteez (I—3). — Trencsen: Brancsik.

Schweiz: Neuchätel: (Tabanus Arten), Jacob.

Belgien: Culiciden, Goetghebuer (3).

England: acalypt. Muscarien, Collin (1). — Phora., engl. Arten monogr.,

Wood (2). — Devon: (Mortehoe), Longstaff. — Lokalf.: Bradford: Ashworth.

— Perthshire, Carter.

Dänemark: Empididen (monogr.), Lundbeck. — Schweden: Wahlgren (1,

3). — Bulgarien: Nedeikow. — Rumänien: Culiciden, Phlebotomus, Leon

(1-4). — Corsica: Becker, Kuntze, Schnabl, Villeneuve. — Sardinien:

Krausse. — Nordafrika: Culieiden (haupts. Algier), Sergent. — Tunis: Djerba

(Asiliden), Bezzi (3). — Kairo: Culiciden, Willcox.

Aethiopisches Gebiet.

Afrik. Chloropiden (monogr.), Becker (5). — Tabaniden, Austen (3); Sur-

eouf (1). — Dipt. v. Kilimandscharo, Meru und Massaisteppe, Speiser (1,2). —

Dipt. von Aethiopien und Brit. Ost-Afrika: Becker (7).

Lagos: Culiciden, Graham (2). — Westafrik. Culiciden, Graham (4);

Wesche (1). — Aschanti: Culieiden, Theobald (2). — Südarabien u. Sokotra:

Becker (6) (Stein, Villeneuve). — Transvaal: Anophelinen, Gough. — Sey-

chellen: Anthomyiiden, Stein (3); — Mycetophiliden, Enderlein (4). —

Madagaskar: Culiciden, Grünberg (2).

Archiv für Naturgeschichte

JO1 1. V.7a: 3

34 Insecta. Diptera für 1910,

Orientalisches und indo-australisches Gebiet.

Indische Dipt., Allgem., Brunnetti (4). — Blutsaugende Musciden von Indien,

Brunetti (2). — Indische Sepsinen, Brunetti (5). — Indische Chironomiden, Kieffer

(5). — Indische Culiciden, Theobald (3); James (1—4). — Indo - oaustral,

Anthomyiiden, Stein (4). — Ceylon: Brunetti (3); Annandale (3). — Cochin-

china: Culiciden, Carter (2). — Krakatau: (Fauna), de Meijere (I). — Java:

de Meijere (2, 5). — Hawaii-Inseln: Perkins. — Fiji-Inseln: Culiciden,

Theobald (1).

Nearktisches Gebiet.

Dipt. verschied. Herkunft, Coequillett (1, 2, 5). — N.-Amer. Mycetophiliden,

Johannsen. — Pipunculiden, Cresson (2).

New York (Fulton County): Tipuliden, Alexander. — Chicago: Culiciden,

Gerhard. — Wisconsin: Graenicher (1—3). — Neu-England: Johannsen (3). —

Arkansas: Culiciden, Thibault. — Kansas: (Suppl.), Tucker.

Neotropisches Gebiet.

Südamerikanische Empididen, Bezzi (7).

Panama: Anophelinen, Darling. — Amazonas-Gebiet: Culiciden, Newstead

u. Thomas. — Brasilien: Sarcophaga-Arten, Lutz (2); Simulium-Arten, Lutz

(1,3); Mycetophiliden, Enderlein (3).

Systematik.

Orthorrapha.

Cecidomyiidae.

Acroectasis maura, n.g. n.sp., Deutschland, Rübsaamen, Zeitschr. f. wissensch.

Insektenbiol., vol. 6, p. 131, Fig. 4, p. 199, Fig.5 u. 6.

Arthrocnodax moricola, Kapstadt, diaspidis, Neapel, silvestriüi, Kapstadt,

n.n.sp. sp., Kieffer, Boll. Laborat. Zool. gen. Agrar. Portici, vol. 4, p. 129

—133, Fig. 1—3.

Camptoneuromyia meridionalis, n. sp., St. Vincent, Felt, Ent. News, vol. 21, p. 269.

Catocha kiefferi, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 231.

Cecidomyia opuntiae, n. sp., New York, Felt, Ent. News, vol. 31, p. 10, —

©. manihot, n.sp., St. Vincent, Felt, 1. c., p. 268. — C. resinicoloides Will.,

Anatomie d. Larve, Williams, Ann. ent. Soc. Amer., vol. 3, p. 45—57, 3 Taf.

Coccomorpha circumspinosa Rübs., beschr., Morph., Rübsaamen, Zeitschr. f.

wissensch. Insektenbiol., vol. 6, p. 200—204, Fig. 7—10.

Contarinia sorghicola Coqu., Lebensw., Schaden, Dean, Journ. econ. Ent., vol. 3,

p- 205—207; Bull. U. S. Dept. Agric., No. 85, p. 39—58, 12 Figg., 2 Taf.

— (., Gattg. u. Biol. bespr., scutati, Fig. 19, thlaspeos, Fig. 20, isatidis,

Fig. 21, hypochoeridis, umbellatarum, Fig. 22, ruhicola, Fig. 23, n.n. sp. Sp.,

Deutschland, Rübsaamen, Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiol., vol. 6,

p- 417—424.

Dasyneura ( Perrisia ?) lethieri, n. sp., schädlich an Oliven, Guereio, Redia, vol. 6,

p- 289—297, Fig. 4—8; — D. fraxinea Kieff., Bekämpfung, Baer, Naturw.

Zeitschr. f. Land- u. Forstwirtsch., vol. 8, p. 229.

Systematik. 35

Diplosis acetosellae Rübs. u. rumicis H. Lw., beschr., Rübsaamen, Zeitschr. f.

wissensch. Insektenbiol., vol. 6, p. 337—342, Fig. 11—14, p. 415, Fig. 15.

Itonida (Cecidomyia) kraussei, n. sp., Bromberg, Larve an Sommerweizen, Wolff,

Zool. Anz., vol. 36. p. 410—414, Fig. 1—.

Lasioptera tripsaci, n.sp., Texas, Felt, Ent. News, vol. 21, p. 10. — L. kiefferiana,

n. sp., schädlich an Oliven, Guereio, Redia, vol. 6, p. 2832—289, Fig. 3.

Mayetiola destructor Say, Larve, Puppe, Imago, beschr. Wolff, Centralbl. £.

Bakt. u. Parasit., Abt. 2, vol. 23, 1909, p. 109—119.

Schizomyia vpomoeae, n.Sp., St. Vincent, Felt, Ent. News, vol. 21, p. 160, 270.

Syndiplosis, n. g., Rübsaamen, Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiol., vol. 6, p. 425.

Tricontarinia ciliatipennis, n.g. n.sp., Japan, auf Morus, Kiefter, Boll. Laborat.

Zool. gen. Agrar. Portici, vol. 4, p. 71.

Mycetophilidae.

Acnemia bicolor, vittidorsum, n.n. sp. sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent.

Zeitg., vol. 72, p. 180 u. 182.

Allodia brevicornis, n. sp., S. Brasilien, Enderlein, 1. c., p. 204. — A. latelamellata,

n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1,

p: 250.

Anarete stettinensis, n. sp., Stettin, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol: 72, p. 130,

Fig. 1.

Aphanizophleps coxata, n.g. n.sp., S. Brasilien, Enderlein, 1. c., p. 201 u. 203,

Fig. 21. — A. flavipes, n.sp., Seychellen, Enderlein, Transact. Linn. Soc.

London, Ser. 2, vol. 14, p. 68.

Brachycampta foliifera, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steier-

mark, vol.46, H.1, p. 252.

Ceroplatus militaris, n.sp., N. York, Johannsen, Bull. 172 Maine Agric. Exper.

Stat. Orono, p. 237.

Cerotelion vespiformis, n. sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 73,

p- 147. '

Cratyna brevifurcata, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 237.

Diomonus magnificus, N. York, Johannsen, Bull. 180 Maine Agrie. Exper. Stat.

Orono, p. 155.

Ectrepesthoneura, n.g. f. Tetragoneura hirta, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg.,

vol. 72, p. 155.

Exechia pseudocincta, macroura, n.n. sp. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw.

Ver. Steiermark, vol. 46, H.1, p. 255.

Lasiosoma nigrolavatum, n. sp., Steiermark, Strobl, 1. c., H. 1, p. 244.

Leia determinaticollis, innotata, n..n. sp. sp., Transvaal, p. 185 u. 186, Best.-Tab.

der südamer. Arten, p. 187—190, albicoxa, cincticauda, collariger, tricincti-

ventris, azıllipuntcum, truncatovenosa, D.n. sp. sp., S. Brasilien, p. 190—199,

Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72. — L. maculicoxa, seychellensis,

n.n.sp. sp., Seychellen, Enderlein, Transact. Linn. Soc. London, N. Ser.,

vol. 14, p. 69 u. 70.

Leiella ochreocalcar, n. 8. n. Sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72,

p- 200, Fig. 3.

3%*

36 Insecta, Diptera für 1910.

Leptomorphus walkeri Aut., bespr., neuer Fundort, Röder, Ent. Rundschau,

vol. 27, p. 30; Schulze, Ent. Zeitschr., vol. 23, p. 241, Ent. Rundschau,

vol. 27, p. 35.

Macrobrachius brevifurcatus, n.sp., Seychellen, Enderlein, Transact. Linn. Soc.

London, Ser. 3, vol. 14, p. 76.

Megalopelma planiceps, n.g. n.sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg.,

vol. 72, p. 165 u. 166, Fig. 2.

Mesochria scottiana, n.g. n.sp., Seychellen, Enderlein, Transact. Linn. Soc.

London, Ser. 2, vol. 14, p. 65.

Monoclona elegantula, N. York, p. 128, furcata, Maine, p. 187, n.n. sp. sp., Jo-

hannsen, Bull. 180, Maine Agric. Exper. Stat. Orono, p. 128. — M. forcipata,

n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H.1,

p. 243.

Mycetophila fulvithorax, n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steier-

mark, vol. 46, H. 1, p. 259. — M. spec. indet., Larve, England, Bloomfield,

Ent. Monthly Mag., vol. 46, p. 119 u. 120. — M. lüderwaldti, brasiliensis,

macula, ornatidorsum, n. n. sp. Sp., S. Brasilien, blanchardi, n. nom. f. puncti-

pennis Blanch. nec Stann., Chile, marshalli, n. nom. f. maculata Marsh. nec

Macq., N. Seeland, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72, p. 170—175. —

M. seychellensis, collaris, luridiceps, n.n.sp.sp., Seychellen, Enderlein,

Transact. Linn. Soc. London, Ser. 2, vol. 14, p. 80 u. 81.

Mycomyia lutea mit var. dorsimacula, n. var., brevifurcata, n.n. sp. sp., S. Bra-

silien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72, p. 161 u. 162.

Mycomya, f. Sciophila Winn., p. 167, sequax, p. 172, marginalis, imitans, p. 177,

mazxima, p. 179, sigma, p. 180, mendax, p. 182, nugatoria, p. 183, recurva, in-

compta, p. 185 u. 186, n.n. sp. sp., N. Amer., meridionalis, n. nom. f. diluta

Will., Johannsen, Bull. 180 Maine Agric. Exper. Stat. Orono.

Neoempheria macularis, impatiens, indulgens, illustris, n.n. Sp. sp., N. Amer.,

Johannsen, 1. c., p. 159—163. — N. (Empheria) griseipennis, n. sp., Steier-

mark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H.1, p. 241.

Neoglaphyroptera trimaculata, tricuspidata, n.n. sp. sp., Steiermark, Strobl, 1. c.,

p. 247 u. 248.

Neurocompsa ornatipennis, n. g. n. Sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg.,

vol. 72, p. 158 u. 159, Fig. 1.

Novakia simillima, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. Naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 232.

Palaeoplatyura johnsoni, n.sp., N. Amer., Johannsen, Bull. 172 Maine Agric.

Exper. Stat. Orono, p. 226.

Paraplatyura, n.g. f. Platyura marginata Meig., Enderlein, Stettin. ent. Zeitg.,

vol. 72, p. 163.

Parastemma beckeri, n. sp., S. Brasilien, Enderlein, 1. c., p. 168.

Paratinia recurva, n.sp., N. York, Johannsen, Bull. 180 Maine Agric. Exper.

Stat. Orono, p. 144.

Phorodonta, n. nom, f. Odontonyx Rübs., Coquillett, Proc. U. S. Nat. Mus., vol. 37,

p- 589.

Phronia flabellipennis, silhouettensis, areolata, subvenosa, n.n. Sp. sp., Seychellen,

Enderlein, Transact. Linn. Soc. London, Ser. 2, vol. 14, p. 71—74.

Systematik. 37

Placoceratias n. g., bimaculipennis, fuscithorazx. n. n. sp. sp., S. Brasilien, Enderlein,

Stettin. ent. Zeitg., vol. 72, p. 149 u. 152.

Plastacephala, n. g., planiventris mit var. flavipes, n. var., maculipennis, longt-

calcar, nigrohalterata, capitata, n.n.sp.sp., S. Brasilien, Enderlein, 1.c.,

p. 175—180.

Platurocypta, n.g., bei Epicypta, limbatifemur, n.sp., Seychellen, Enderlein,

Transact. Linn. Soc. London, Ser. 2, vol. 14, p. 76.

Platyprosthiogyna, n.g., bei Sceptonia, metamesomelina, n. sp., Seychellen,

Enderlein, 1. c., p. 78.

Platyroptilon ramicornis, n. Sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg.,

vol. 72, p. 145.

Platyura axillariger, laevis, n.n.sp.sp., Seychellen, Enderlein, Transact. Linn.

Soc. London, Ser. 2, vol. 14, p. 66 u. 67. — Pl. setiger, p. 252, mimula, nigrita,

p. 255 u. 256, moesta, p. 257, moerens, genualis, scapularıs, p. 262 u. 263,

n.n.5p. sp., N. Amer., Johannsen, Bull. 172 Maine Agric. Exper. Stat.

Orono. — Pl. nigerrima, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver.

Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 239.

Plesiastina annulata Meig. var. nigrithorax, n. var., Steiermark, Strobl, Mitteil.

naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, p. 238.

Pleonazoneura johannseni, n.g. N. Sp., mit var. evanescens, n. var., S. Brasilien,

Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72, p. 156 u. 158.

Polylepta obediens, nigellus, n.n. sp. sp., U. S. A., Johannsen, Bull. 180 Maine

Agric. Exper. Stat. Orono, p. 147 u. 148.

Rymosia Winn., Gattg. monogr., setiger (Winn. i.1.), Gräfenberg, gracilipes,

Corsica, lundstroemi, virens, Österreich, fovea, acta, Russland, fraudatriz,

Österreich, venosa, exclusa, Weißrußland, frenata, excogitata, optiva, ducta,

tarnanüi, praeformida, Österreich, dulcia, Weißrußland, n.n. sp. sp., Dzied-

zicki, Hor. Soc. ent. Ross., vol. 38, p. 89—104, Fig. 1—3, Taf. 1—6.

Sceptonia longicornis, n.sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72,

p- 183.

Sciara zealandica, N. Seeland, silvestrii, New York, n.n.sp. sp., Kiefier, Boll.

Laborat. Zool. gen. Agrar. Portiei, vol. 4, p. 327. — Sec. elegans Winn. var.

defecta, n. var., nigrovittata, incana, n.n. sp. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil.

naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 233—236.

Sciophila, f. Lasiosoma Winn., p. 133, glabana, nugax, habilis, incallida, hebes,

novata, impar, severd, similis, p. 136—142, n. n. sp. sp., N. Amer., Johannsen,

Bull. 180 Maine Agric. Exper. Stat.

Scottella, n. g. (Mycetobiinae), argentosguamosa, Seychellen, formosana, For-

mOosa, n.n. sp. sp., Enderlein, Transact. Linn. Soc. London, Ser. 2, vol. 14,

p- 60—64.

Symmerus lenis, n. nom. f. zonata, Gigl.-Tos, Johannsen, Bull. 172 Maine Agric.

Exper. Stat. Orono p. 229.

Syntemna laticornis, n. sp., S. Brasilien, Enderlein, Stettin. ent. Zeitg., vol. 72,

p- 163.

Tetragoneura calopus Big., beschr., var. minor, n. var., S. Brasilien, Enderlein,

l.c., p. 154 u. 155.

Zygoneura sciarina Meig., beschr., Sehmitz, Zool. Anz., vol. 35, p. 307—309,

Fig. 1 u. 2.

38 Insecta, Diptera für 1910.

Tipulidae.

Ceratocheilinae, n. subfam. f. Ceratocheilus u. Neoceratocheilus n.n. g. g., Wesch6,

Journ. Linn. Soc. London, vol. 30, p. 356.

. Ceratocheilus, n.g., winn-sampsoni, longirostris, n.n.Sp.sp., Nigeria, Wesche,

l. c., p. 358 u. 359, Taf. 49.

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vol. 53, p. 109 u. 110.

Ctenophora, deutsche Arten bespr., Kleine, Internat. ent. Zeitschr., vol. 4, p. 159.

Dicranomyyia spec., Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 64, Taf. 4,

Fig. 3.

Dicranota (Rhaphidolabis) aepigena, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw.

Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 282.

Limnophila longeantennata, n. sp., Steiermark, Strobl, 1. c., p. 278.

Neoceratocheilus grahami, n. g. n. sp., Aschanti, Wesch&, Journ. Linn. Soc. London,

vol. 30, p. 356, Taf. 49, Fig. 5.

Pachyrhina, Gattg. bespr., paläarkt. Arten monogr., Besttab., p. 409—437,

rossica, Rußland, p. 419, nox, Kappadocien, p. 420, /uscescens, Sibirien

p. 422, schummelii, Steiermark, p. 424, lamellata, Böhmen, p. 426, Fig. 4,

crinicauda, Italien etc., p. 428, tenuipes, Stilfserjoch, p. 431, n.n. sp. Sp.,

Riedel, Deutsche ent. Zeitschr. 1910.

Tricyphona alticola, n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 281.

Culicidae.

Culiciden, monogr., Suppl., Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

Culiciden, Wertung d. Charaktere f. d. Syst., Brunetti, Rec. Ind. Mus., vol. 4,

p: 93—58.

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Anophelimen von Indien, Gattungen beschr., James, Rec. Ind. Mus., vol. 4,

p- 95—109, Taf. 9—12.

Aedeomyia, Best.-Tab.d. Arten, p. 252, neobiannulata, bipunctata, Fig.120, Aschanti,

lowisii, Andamanen, Fig. 121—124, p. 255—257, n.n.sp.sp., Theobald,

Monogr. Culic., vol. 5. — Ae. sguamipenna Arrblz., bespr., Paiva, Rec. Ind.

Mus., vol. 5, p. 202.

Aedes pallidohirta Grossb., bespr., Dyar u. Knab, Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p.81 u. 82. — A. sollicitans, ungewöhnlich starkes Auftreten in Loui-

siana, Hunter, Journ. econ. Ent., vol. 3, p. 504.

Aedimorphus, Best.-Tab. d. Arten, p. 203, albotaeniatus, Fig. 77, punctithorax,

Fig. 78 u. 79, p. 204 u. 205, n.n.sp.sp., Accra, Theobald, Monogr. Culic.,

vol. 5. — 4Ae. punctithoracis, n.sp., Aschanti, Theobald, Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 5 p. 374. — Ae. domesticus Theob., punctiothoracis Theob.,

Larve u. Puppe, Wesche, Bull. ent. Research. vol. 1, p. 31, Taf. 1 u. 2.

Anopheles, Best.-Tab. u. Bespr. d. Arten, lindesayi Giles var. maculata, n. var.,

Himalaya, p. 14, Theobald, Monogr. Culie., vol. 5, p. 3—16. — 4. stephensi,

willmori, rossi, syst. Stellung, James, Paludism, vol. 1, p.36 u. 37. —

A. lindesayi Giles var. maculata, n. var., Himalaya, Theobald, Rec. Ind. Mus.,

vol. 4, p.1.

Systematik. 39

Banksinella, Best.-Tab. d. Arten, p. 402, chrysothorax, Fig. 175, taeniarostris

(statt taeniorostris?), Fig. 176, puntocostalis (statt punctocostalis?), n.n.

sp. sp., Aschanti, p. 404—407, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

Bathosomyia abnormalis, n.g.n.sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 267 u. 268, Fig. 131.

Bolbodeomyia complex, n. g. n. sp., Birma, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 31.

Brevirhynchus annulipalpis, Travancore, apicalis, Assam, n.n. sp. sp., Theobald,

L 0,9269. 7.

Cellia, Best.-Tab. d. Arten, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5, p. 67. — C. cincta

n. sp., West-Afrika, Newstead u. Carier, Ann. trop. Med. Parasit., vol. 4,

p. 381, Taf. 24, Fig. 6 u. 7. — CO. pharoensis Theob., Larve u. Puppe, Wesche,

Bull. ent. Research, vol. 1, p. 22, Taf. 6.— ©. 2n.n. sp. sp. (nicht eingesehen!),

Transvaal, Gough. Transvaal Dept. Agric. Rep. Governm. Veter. Bacterio-

logist, 1908/1909 (1910), p. 115—121.

Chaetocruiomyia sylvestris, n.g. n.sp., Queensland, Theobald, Monogr. Culic.,

vol. 5, p. 195 u. 196, Fig. 72—74.

Christophersia hallii, n.g. n.sp., James, Paludism, vol. 1, p. 33. — Chr., n.g.

f. hallii James, Indien, James, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 103, Taf. 12.

Chrysoconops, Best.-Tab. d. Arten, p. 433, nigra, Angola, p. 434, nigrithoraz,

Angola, p. 439, Fig. 196—200, pseudoconopas, Uganda, p. 443, Fig. 201

u. 202, n. n. sp. sp., Theobald, Monogr. Culic., vol. 5. — Chr. pygmaeus Theob.

&, beschr., Indien, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 25, Taf. 1 u. 3.

Culex, Best.-Tab. d. Arten, p. 323—329, pseudoannulioris, Aschanti, p. 333,

Fig. 148, pseudostenoetrus, Ceylon, p. 343, Fig. 154, quasirubithorax, Queens-

land, p. 348, Fig. 157, nigrocostalis, Accra, p. 367, Fig. 160—163, pallido-

thoracis, Aschanti, p. 370, Fig. 164—165, chloroventer, Aschanti, p. 373,

Fig. 166—168, quasigquiarti, Uganda, p. 374, Fig. 169, ornatothoracis,

Aschanti, p. 376, Fig. 170 u. 171, Zuteola, Ceylon, p. 378, Fig. 172, n. n. sp. sp.,

©. (?) japonicus Theob. var. ceylonica, n. var., p. 391, tigripes Grandpre

var. bimaculata, n. var., Sudan, p. 393, pseudolongifurcatus, n. nom. f. longi-

furcatus Theob. (1910) nec Becker (1903), Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

— (. jepsoni, n. sp., Fiji-Ins., Theobald, Entomologist, vol. 43, p. 158, Fig.

— (. vagans Wiedem.Q, beschr., Madras, p. 14, pettigrewii, Manipur, p. 15,

parascelos, Madras, longifurcatus, Nepal etc., p. 18 u. 19, n.n. sp. sp., Tbeo-

bald, Rec. Ind. Mus., vol. 4. — C. nigrocostalis, pallidothoracis, n.n. SP. SP.,

Aschanti, Theobald, Ann. Mag. Nat. Hist., ser. 8, vol. 5, p. 376 u. 377. —

C. arelicus, n.sp., Sokotra, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-naturw.

Kl., vol. 71, p. 140. — C. cantans Meig., Eier, Eysell, Centralbl. f. Bakt.,

Abt. 1, vol. 54, p. 27—29. — C. morsitans Theob., Larve, Goetghebuer, Rev.

mens. Soc. ent. Namur., vol. 10, p.53 u. 54. — C. albovirgatus, pullatus,

aquilus, caliginosus, lividocostalis, n.n. sp. sp., West-Afrika, Graham, Ann.

Mag. Nat. Hist., ser. 8, vol. 5, p. 264—269. — C. theobaldi, n. sp., Holland,

de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. LXIV. — C. mimeticus Noe var.

pseudomimeticus, n. var., Algier, Sergent, Ann. Soc. ent. France, vol. 78,

p. 445. — (. duttoni Theob., tigripes Grandpre var. fusca 'Theob., pallido-

thoracis Theob., guiarti Blanch., quasigelidus Theob., nigrocostalis Theob.,

dissimilis Theob., albovirgatus Grah., caliginosus Grah., lividocostalis Grah.,

pullatus Grah., Larve u. Puppe, Wesehe, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 34

40 Insecta. Diptera für 1910.

—46, Taf. 1—7. — ©. (?) aureopunctis, n. sp., Philippinen, Ludlow, Canad.

Ent., vol. 42, p. 195.

Culicada, Best.-Tab. d. Arten, p. 294, eruthrosops, Ceylon, p. 299, Fig. 140, medio-

punctata, Aschanti, p. 304, fuscopalpalis, Aschanti, p. 307, Fig. 141—143,

n. n. sp. sp., Theobald, Monogr. Culic., vol.5. — C. suknaensis, n. SPp.,

Himalaya, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 21. — C. morsitans Theob.,

Larve u. Puppe, Goetghebuer, Ann. Soc. ent. Belg., vol. 54, p. 410.

Culicelsa, Best.-Tab. d. Arten, p. 315, accraensis, Accra, mit var. fusca, n. var.,

p- 317 u. 319, Fig. 144 u. 145, neotaeniorhynchus, Delagoa-Bai, p. 320, n. n. sp.

sp., Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

O'uliciomyia, Best.-Tab. d. Arten, p. 229, uniformis, Obuasi, p. 230, Fig. 95—99,

nigerrima, Ceylon, p. 233, Fig. 100, daleieli, Nigeria, p. 234, Fig. 101, annulo-

abdominalis, Ceylon, p. 236, Fig. 102 u. 103, n. n. sp. sp., Theboald, Monogr.

Culie., vol. 5. — 0. freetownensis Theob., cinerea Theob., Larve u. Puppe,

Wesche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 32 u. 33, Taf. 1 u. 5.

O'yathomyia jenseni, n.g. n.sp., Java, de Meijere, Ann. Jard. bot. Buitenzorg,

Suppl. 3, p. 922.

Dactylomyia ceylonica, n.g. n.sp., Ceylon, Newstead u. Carter, Ann. trop. Med.

Parasit., vol. 4, p. 37, Taf. 23, Fig. 1—3.

Dendromyia, Best.-Tab. d. Arten, p. 587, argenteoventralis, affinis, p. 256, Aschanti,

n.n. sp. Sp., p. 288 u. 289, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

Desdoidea apicalis, n. sp., Indien, Theobald Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 5.

Eretmapodites austenii, n. sp., Sierra Leone, Theobald, Monogr. Culiec., vol. 5, p. 572.

Eumelanomyia inconspicuosa, D.g. n.sp., Aschanti, Theobald, 1.c., p. 240,

Fig. 106—109.

Ficalbia tenax, n. Ssp., Java, de Meijere, Ann. Jard. bot. Buitenzorg, Spupl. 3, p. 928.

Grabhamia nigeriensis, Westafrika, p. 281, Fig. 132 u. 133, ocellata, Lourenco

Marques, p. 284, Fig. 134—137, nn. spp., Theobald, Monogr., Culie., vol. 5.

Harpagomyia trichorostris, n. sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 548, Fig. 2383—241.

Hispidimyia hispida, n.g. n.sp., Sudan, Theobald, 1. c., p. 245, Fig. 111—113.

Hodgesia cuptopous, n. sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 545, Fig. 326 u. 327.

Kingia n.g. f. Stegomyia luteocephala Newst., Theobald, 1. c., p. 135.

Leucomyia australiensis, n.sp., Queensland, Theobald, 1. c., p. 313.

Lophoceratomyia bicornuta, n. sp., Biima, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 25.

Maillotia pilifera Serg. u. Theob., Algier, beschr., Sergent, Ann. Soc. ent. France,

vol. 78, p. 443.

Mansonia, Best.-Tab. d. Arten, p. 446, nigerrima, Uganda, p. 450, n. sp., Theobald,

Monogr. Culic., vol. 5. — M. Blanch., Gattg. bespr., Pyar u. Knab, Ent. News,

vol. 21, p. 259—264. — M. longipalpis, n. sp., Manäos, Newstead u. Thomas,

Ann. trop. Med. Parasit., vol. 4, p. 145, Taf. 11, Fig. 5, 5a.

Megaculex pincerna, n.sp., Westafrika, Graham, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8,

vol. 5, p. 267. — M. pincerna Grah., Larve u. Puppe, Wesche, Bull. ent.

Research, vol. 1, p. 47, Taf. 2.

Megarhinus, Best.-Tab. der Arten, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5, p. 89.

Melanoconion, Best.-Tab. der Arten, p. 455, juzxtapallidiceps, Ceylon, n.sp.,

p. 456, Theobald, 1. c.

Mimeteomyia apicotriangulata, Queensland, Theobald, 1. c., p. 210 u. 211, Fig. 83

—85.

Systematik. 41

Mimomyia minuta Theob., 9, beschr., Theobald, Rec., Ind. Mus., vol. 4, p. 30,

Taf. 1 u..2:

Molpemyia purpurea, n.g. n.sp., Queensland, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5,

p- 479.

Mucidus grahamii, n. sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 127.

Myxosquamus confusus, n. g. n. sp., Accra, Theobald, 1. c., p. 225, Fig. 92 u. 93.

— M. paludosus, n. sp., Westafrika, @raham, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8

vol. 5, p. 270. — M. paludosus Grah., Larve u. Puppe, Wesche, Bull. ent.

Research., vol. 1, p. 49, Taf. 5.

Myzomyia, Best.-Tab. u. Bespr. der Arten, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5,

p. 16—29. — M. rossii Giles, gefährl. Überträger der Malaria, Eysell, Arch.

f. Schiffs- u. Tropenhyg., vol. 14 p. 416—419. — M. aurirostris n. sp., Malay.

Archipel, Watson, Ann. trop. Med. Parasit., vol. 4, p. 251, 1 Fig.

Myzorhynchella, Best.-Tab. der Arten, Theobald, Monogr. Culic., vol 5, p. 44.

Myzorhynchus, Best.-Tab. der Arten, Theobald, 1. c., p. 49. — M. mauritianus

Grandpre, Larve und Puppe, Wesche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 24, Taf. 6.

Neomelanoconion chrysothorax, n. sp., Peru, Newstead u. Thomas, Ann. trop. Med,

Parasit., vol. 4, p. 147. — N. palpale, Kongostaat, Fig. 203 u. 204, chaeto-

ventralis, Queensland, Fig. 205, nn. spp., Theobald, Monogr. Culic., vol. 5.

Neomyzomyia, n. g. f. Anopheles elegans James, Theobald, 1. c., p. 29.

Neopecomyia uniannulata, n. g. n.sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 261, Fig. 125.

Neostethopheles, n. gen. f. Anopheles aitkeni James, Indien, James, Rec. Ind.

Mus., Vol. 4, p. 98, Taf. 9, Fig. 1.

Nyssomyzomyia, n. g. für indica Theob., Indien, James, l.c., p. 101, Taf. 10,

Fig. 7—11.

Nyssorhynchus, Best.-Tab. der Arten, p. 55, brunnipes, Angola, Fig. 26, pseudo-

willmori, Indien, Fig. 27 u. 28, p. 64 u. 65, nn. spp., Theobald, Monogr. Culic.,

vol. 5.

Orthopodomyia maculipes, n.sp., Andamanen, Theobald, 1. c., p. 470, Fig. 208

—210. — O. maculata, n. sp., Travancore, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4,

p- 29.

Pardomyia guadripunctis, n.sp., Mindanao, Theobald, Monogr., Culic., vol. 5.

p- 608.

Patagiamyia, n. g., f. Anopheles gigas Giles, Indien, James, Rec. Ind. Mus., vol. 4,

p- 98, Taf. 9, Fig. 3.

Pectinopalpus fuscus n.g. n.sp., Aschanti, Theobald, Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8 vol. 5, p. 375; Monogr. Culic., vol. 5, p. 416 Fig. 183—186. — P. fuscus

Theob.?, Larve, Wasche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 48, Taf. 2.

Phoniomyia caeruleocephala, n.sp., Ceylon, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5,

p. 577, Fig. 252.

Popea lutea Ludl. 9, beschr., Ludlow, Canad. Ent., vol. 42, p. 193.

Protomacleaya alboventralis, n.sp., Angola, Theobald, Monogr., Culic., vol. 5,

p. 251, Fig. 114.

Protomelanoconion fusca, n.g. n.sp., Aschanti, Theobald, 1. c., p. 462 u. 463,

Fig. 206 u. 207.

Pseudocarollia lophoventralis, n.g. n.sp., Bengalen, Theobald, Rec. Ind. Mus.,

vol. 4, p. 12 u. 13.

Pseudograhamia aureoventer, n. g., n. sp., Travancore, Theobald, 1. c., p. 26 u. 27.

4 Insecta. Diptera für 1910.

Pseudoskusea similis, n.sp., Queensland, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5, p. 189,

Fig. 69.

Pyretophorus, Best.-Tab. der Arten, p. 36, pseudocostalis, Angola, p. 41, Fig. 15,

Theobald, 1. c. — P. transvaalensis, n. sp., Transvaal, Carter, Entomologist,

vol. 43, p. 237, Fig. 1 u. 2. — P. cardamiitisi, n. sp., Athen, Newstead u. Carter,

Ann. trop. Med. Parasit., vol. 4, p. 379, Taf. 24, Fig. 4 u. 5. — P. costalis Lw.,

Larve und Puppe, Wesche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 20, Taf. 5.

Quasistegomyia dubia, n.sp., Sudan, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5, p. 133.

Rachisoura sylvestris, n. g., n.sp., Queensland, Theobald, 1.c., p. 207 u. 208,

Fig. 80—82.

Scutomyia, Best.-Tab. der Arten, Theobald, 1. c., p. 199. — S. sugens Wiedem.,

Larve, Grünberg in Voeltzkow, Reise in Ostafrika in den Jahren 1903

—1905, vol. 3, p. 70 u. 71, Fig. 1—6. — S$. treubi, n.sp., Java, de Meijere,

Ann. Jard. bot. Buitenzorg, Suppl. 3, p. 918. — $. marshalli Theob., Larve,

Wesche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 30, Taf. 4, Fig. 18.

Skusea pseudomediofasciata, n.sp., Ceylon, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5,

p- 489, Fig. 211 u. 212. — $. pseudodiurna, Himalaya, uniformis, Travan-

core, nn, spp., Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 32 u. 33.

Squamomyia inornata, n. 2. n. sp., Birma, Theobald. 1. c., p. 28.

Stegomyia, Best.-Tab. d. Arten, p. 151, gebeleinensis, Sudan, p. 157, Fig. 53,

lilii, Bor, p. 160, Fig. 54 u. 55, wellmanii, Angola, p. 163, Fig. 56—59,

pseudonigeria, Angola, p. 166, Fig. 60, dubia, Angola, p. 170, Fig. 62, apico-

argentea, Kumasi, p. 172, Fig. 63, nn. spp., Theobald, Monogr., Culie., vol. 5.

— St. hatiensis, n.sp., Cochinchina, Cartier, Entomologist, vol. 43, p. 275,

Fig. — St. pollicinctor, n. sp., West-Afrika, Graham, Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol.5, p. 271. — St. apicoargentea, n.sp., Aschanti, Theobald, ]. c.,

p- 373. — St. nigrita n. sp., Philippinen, Ludlow, Canad. Ent., vol. 42, p. 194.

— St. minutissima, annandalei, albipes, nn. spp., Indien, Theobald, Rec. Ind.

Mus., vol. 4, p. 9—11. — St. pseudoscutellaris, n.sp., Fiji-Ins., Theobald,

Entomologist, vol. 43, p. 156, Fig. — St. fasciata F., africana Theob., api-

coargentea Theob., pollicinctor Grah., marshalli Theob., Larve u. Puppe,

Wesche, Bull. ent Research., vol. 1, p. 25—29, Fig, 1, Taf. 3—5.

Stenoscutus africanus, n. g. n. sp., Ashanti, Theobald, Monogr. Culic., vol. 5, p. 263

p: 126 u. 127.

Taeniorhynchus, Best.-Tab. d. Arten, p. 419, Theobald, l.c. — T. pagei, n. sp.,

Mindanao, Theobald, 1. c., p. 618. — T. epidesmus, luteoabdominalis, nn. SPP.,

Bengalen, Theobald, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 22 u. 23.

Toxorhynchites, Best.-Tab. der Arten, p. 96, phytophygus, Aschanti, p. 102,

Theobald, Monogr. Culic., vol.5. — T. immisericors Walk., Larve, Paiva,

Rec. Ind. Mus., vol. 5, p. 187—190.

Uranotaenia, Best.-Tab. der Arten, p. 498—501, ceylonica, Ceylon, p. 503, Fig. 213

u. 214, alboabdominalis, Sudan, p. 508, Fig. 215—217, abnormalis, Sudan,

p. 512, Fig. 220—223, bilineata, Aschanti, p. 517, apicotaeniata, ornatus (!)

U. (?) bimaculata, Fig. 224, Aschanti, p. 520—522, nn. spp., Theobald,

Monogr., Culie., vol. 5. — U. ascidüicola, n. sp., Java, de Meijere, Ann. Jard.

bot. Buitenzorg, Suppl. 3, p. 925. — U. balfouri 'Theob., Larve u. Puppe,

Wesche, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 50, Taf. 1 u. 2.

Systematik. 43

Chironomidae.

Bezzia flaviventris, gracilipes mit var. lineola, n. var,, facialis, lacteipennis, nigricans,

armatipes, rufiventris, nn. spp., Indien, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol. 2,

p- 204—208.

Calyptopogon albitarsis, n. g. n. sp., Calcutta, Kieffer, 1. c., p. 209.

Ceratopogon decipiens, auronitens, macrorhynchus, albonotatus, ©. (Atrichopogon)

indianus, nn. spp., Indien, Kieffer, 1.c., p. 182—185. — C. oculatus mit

var. quadristriatus, decoratissimus, nn. Spp., Steiermark, Strobl, Mitteil.

naturwissensch. Verein Steiermark, vol. 46, H.1, p. 262—264.

Chironomus camptogaster, longivalvis, bipunctatus, Ch. (Prochironomus) prussicus,

pictiventris, annandalei, albiforceps, atripes, Indien, tripartitus, Suez, clavatipes,

dolens, punctatipennis, annulatipes, graciliforceps, curtimanus, striatipennis,

helli, tenuitarsis, fasciatipennis, fimbriatus nn.spp., Indien, Kieffer, Mem.

Ind. Mus., vol. 2, p. 227—238. — Ch. formosus n.sp., Virton, Goetghebuer,

Rev. mens. Soc. ent. Namur, vol. 10, p. 96. — Ch. canus, n. sp., Steiermark,

Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 266.

ki flavus, n. g. n. sp., Calcutta, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol. 2, p. 242.

Cricotopus limnanthemi, n. sp., Belgien, Kieifer, Bull. Ac. Sci. Belg. 1910, p. (37)

—(39); Entwicklung und Lebensweise, Willem, ]. c., p. (33)—(36), 1 Taf.

Culicoides kiefferi, flaviventris, nn. spp., Gent, Goetghebuer, Rev. mens. Soc.

ent. Namur, Vol. 10, p. 96. — ©. brevimanus, macrosioma, montivagus, opacus,

scapularis, nitidulus, quadrilobatus, setiger, peregrinus, molestus, odiosus,

paivai, oxystoma, nn. spp., Indien, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol. 2, p. 187

—193.

Diamesa minima, alboannulata, nn.spp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw.

Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 268.

Diplocladius jörgenseni, n.sp., Argentinien, Kieffer, Boll. Labarot. Zool. gen.

Agr. Portiei, vol. 4, p. 328.

Helea (Forcipomyia) regulus Winn., p. 736, H. lucorum Meij., p. 738, Metam.,

characopoda, Usambara, melinoessa, Kilimandjaro, nn. spp., p. 749 u. 751,

Speiser, Zool. Jahrb., Suppl., vol. 12, Taf. 27.

Isoplastus annandalei, indicus, macrocerus, setosiconis, paivai, ornatipes, pulchripes,

variipes, mn.spp., Indien, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol. 2, p. 211—215.

Palpomyia burmae, filicornis, cinerea, pulchripes, pictipes, interrupta, inaequalis,

P. (Sphaeromyia) bisignata, bimacula, filitarsis, albiditarsis, viridiventris

nn. spp., Indien, Kieffer, 1. c., p. 196—203.

Procladius ornatissimus, fumipennis, paivai, fuscosignatus mit var. aterrimus,

flavidus, nn. varr., novempunctatus, atratus, nn.spp., Indien, Kieffer, 1. c.,

p- 216—219.

Tanypus bilobatus, Indien, noctivagus, Suez, violaceipennis, photophilus, albo-

lineatus, microcerus, Indien, nn. spp., Kieffer, 1. c., p. 221—224.

Tanytarsus dissimilis, Paedogenese, Johannsen, Science, vol. 32, p. 768. —

T. clavatitarsis, setosipennis, breviventris, pilosipennis, T. (Micropsectra)

indicus, nn. spp., Indien, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol. 2, p. 240—242.

Maecropezidae.

Macropeza javanensis, n.sp., Indien, Kieffer, Mem. Ind. Mus., vol.2, p. 210.

44 Insecta. Diptera für 1910.

Psychodidae.

Brunettia swperstes, n.g. n.sp., Himalaya, Annandale, Rec. Ind. Mus., vol. 5,

p. 141—144, 1 Fig., Taf. 12.

Pericoma andrenipes n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, p. 270.

Phlebotomus, Literatur, Morphol., Best.-Tab. u. Beschr. indischer Arten, major,

malabaricus, babu, himalayensis, nn. spp., Indien. Annandale, Rec. Ind. Mus,.,

vol. 4, p. 35—52, Taf. 4—6. — Ph., Arten von Ceylon, Best.-Tab. u. Beschr.,

ceylanicus, Fig. 4—6, marginatus, Fig. 7, nn. spp., Annandale, Spolia Ceylan.,

vol. 7, p. 57—62, Fig. 1—7.

Psychoda sexpunctata Curt., Metam., Morph. der Larve u. Puppe, Zuelzer. Mitteil.

Prüfungsanst. f. Wasserversorgung Berlin, H. 12, 1909, p. 213—224, 2 Taf.

Simuliidae,

Simulium, brasil. Arten, Allg. über Lebensw., Best.-Tab. d. Arten, ruhrithoraz,

scutistriatum, hirticosta, exiguum, varians, amazonicum, n.n.Sp.5p., mon-

tanum Phil. (?), venustum Say (= pertinax Kollar) mit var. in/uscata, n. var.,

nigrimanum Macg., perflavum Roubaud, inexorabile Schrottky {= ? venustum

Say), paranense Schrottky, paraguayense Schrottky, beschr., Brasilien,

Latz, Mem. Inst. Oswalds Cıuz, voi. 1, p. 124—146. — 8. brasil. Arten,

Biologie u. Morphologie, p. 215—222, ruhrithorax Lutz, p. 222, scutistriatum

Lutz, p. 225, pernigrum Lutz, hirticosta Lutz, p. 226, pertinax Koll., p. 228,

perflavum Roub., p. 230, bespr., orbitale, n. nom. f. nigrimanum Maegq., p. 231,

exiguum Lutz, varians Lutz, paraguayense Schrottky (?), p. 234 u. 235,

bespr., infuscatum, p. 236, subnigrum, p. 239, distinctum, p. 241, incrustatum,

p- 243, auristriatum, p. 245, subpallidum, p. 247, flavopubescens, p. 248,

pruinosum, simplicicolor, p. 250 u. 251, minusculum (= ? amazonicum

Goeldi), p. 253, botulibranchium, clavibranchium, p. 256 u. 257, diversifur-

catum, aequifuscatum, brevifurcatum, incertum (= paraguayense Schrottky?),

p- 258 u. 259, hirtipupa, subelavibranchium, p. 260, n.n. Sp. SP., Brasilien,

Lutz, ]. c., vol. 2, Taf. 13—21. — 8. ornatum, Larve, Liebe, Zeitschr. f. Naturw.

Leipzig, vol. 82, p. 345—372, Fig. 1—16. — S$., Gattg. bespr., Lundström.

Meddel. Soc. Faun. Flor. Fenn., vol. 36, p. 103 und 104. — 8. Gattg. u. Arten

bespr., Ussing, Flora og Fauna Kjobenhavn, 1910, p. 422 —44.

Rhyphidae.

Olbiogaster quinquefasciata, n. sp., Brasilien, Enderlein, Stett. ent. Zeitg., vol. 71,

p- 65.

Bibionidae.

Plecia fulvicollis F., Larve u. Puppe, p. 59, Taf. 4, Fig. 1 u. 2, forcipata O.-S.,

Larve, p. 63, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53.

Pseudanarete pilipennis, n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steier-

mark, vol. 46, H.1, p. 225.

Scatopse hamifera, n. sp., Steiermark, Strobl, 1. c., p. 224.

Systematik, 45

Stratiomyidae,

Chloromyia (Chrysomyia) melampogon Zell. var. subalpina, n. var., Steiermark,

Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H.1, p. 46.

Eulalia (Odontomyia) guerini Macq., beschr., polycedes, n.sp., Kilimandjaro,

Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 65 u. 67.

Microchrysa flavomarginata, n.sp., Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent.,

vol. 53, p. 65.

Odontomyia azurea, n. sp., S. Aethiopien, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p 22.

Rhagionidae.

Leptis vitripennis, Variieren des Geäders, Kleine, Berl. ent. Zeitschr., vo!. 55,

p. 193—202, Taf. 2.

Rhagio corsicanus, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 640.

Tabanidae.

Bolbodimyia, Gattg. bespr., Hine, Ohio Natural. vol. 10, p. 149.

Cadicera nigricolor, n. sp., Rhodesia, Austen, Ann. Mag. Nat. Hist., ser. 8, vol. 6,

p- 342.

Chrysops laticeps, Zululand, p. 343, pusillula, Nigeria, p. 345, inflaticornis, Cap-

land, p. 347, n.n.sp.sp., Austen, Ann. Mag. Nat. Hist., ser. 8, vol. 6. —

Chr. divarıcatus Lw., & beschr., Pleske, Ann. Mus. zool. Petersburg, vol. 15,

p. 430—435, Fig. 1 u. 2. — Chr. sepuleralis F., maurus Siebke, melicharii

Mik, rufipes aut. nec Meig., parallelogrammus Zell., concavus Lw., beschr.,

Pleske, 1. c., p. 436—456, Taf. 5. — Chr. oxianus, Amu-Darja, p. 458, Taf. 4,

Fig. 1, amurensis, Ost-Sibirien, p. 459, Taf. 4, Fig. 2, ricardoae, Turkestan,

p. 461, Taf. 4, Fig. 3 u. 4, przewalskii, China, p. 464, Taf. 4, Fig. 5, wagneri,

Ost-Sibirien, p. 466, Taf. 4, Fig. 6, potadini, China, p. 468, Taf. 4, Fig. 7,

makerowi, Transbaikalien, p. 469, Taf. 4, Fig. 8, sakhalinensis, Sachalin,

p- 472, Taf. 4, Fig. 9, n.n.sp. sp., Pleske, 1. c.

Chrysozona (Haematopota) avida, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 71, Fig. 16 u. 17.

Diatomineura longipennis Ric., Vorkommen und Flugzeit, Lutz, Mem. Inst.

Oswald, Cruz vol. 2, p. 58—60.

Dorcaloemus bicolor, n.g. n.sp., Nyassagebiet, Austen, Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol.6, p. 337 u. 338.

Lepidoselaga, Gattg. bespr., Hine, Ohio Natural., vo). 10, p. 149.

Pangonia (Corizoneura) sagittaria, n. sp., Brit. Ost-Afrika, elongata Ric., beschr.,

Surcouf, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910, p. 386 u. 387. — P. bubsequa,

Zentral-Afrika, concitans, Nigeria, n.n.sp.sp., Austen, Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 339 u. 341.

Pelecorhynchus Macq., Best.-Tab. u. Beschr. d. Arten, nigripennis, N. S. Wales,

fulvus, Victoria n.n.sp.sp., Ricardo, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5,

p. 402—409.

Rhinomyza perpulcra, Uganda, p. 349, concinna, Nyassa-Gebiet, pi 352, stimulans,

Nigeria, p. 354, n.n.sp.sp., Austen, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6.

Selasoma, Gattg. bespr., Hine, Ohio Natural, vol. 10, p. 149—151.

Snowinellus, Gattg. bespr., Hine, ]. c., p. 149.

46 Insecta. - Diptera für 1910.

Tabanus, versch. Brauersche Arten bespr. Villeneuve, Wien. ent. Zeitg. vol. 29,

p- 82—85. — T.luridus Fall., Variabilität d. Geäders, Kleine, Internat.

ent. Zeitschr., vol. 4, p. 109 u. 110, Fig. 14. — T.ypar Walk., taeniola

Palis., Metam. u. Lebensw., King, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 99—104,

Taf. 9. — T. amblychromus, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 73. — T. paradoxus Jaenn., bespr.,

Villeneuve, Feuille jeun. Natural., vo!. 40, p. 165.

Nemestrinidae.

Eurygastromyia, n. &., p. 601, Arten beschr., p. 602—611, murina, n. sp., Pata-

gonien, p. 607, Lichtwardt, Deutsche ent. Zeitschr. 1910.

Hirmoneura Meig. monogr.. Lichtwardt, 1. c., p. 589—592, 595—601.

Megistorhynchus Macq., Arten bespr., Lichtwardt, ]. c., p. 612 u. 613.

Neorhynchocephalus. n. g., Lichtwardt, 1. c., p. 592.

Prosoeca Schin., monogr., ganglbaueri, Kapland, willowmorensis, Willowmore,

flavipennis, S. Afrika (?), lata, Natal, cafjraria, umbrosa, circumdata, hand.

lirschi, ornata, S. Afrika, n.n.sp. sp., Lichtwardt, 1. c., p. 615—624.

Stenobasipteran, wiedmonni, n. 8. n. sp., S. Afrika, Liehtwardt, 1. c., p. 614 u. 615,

Fig.7 u. 8.

Trichophthalma Westw., Gattg. u. Artenbespr., p. 371—388, ricardoae, variolosa,

n.n.sp. sp., Australien, p. 385 u. 386, Lichtwardt, 1. c.

Bombyliidae.

Anthrax scutellata Meig., Synonymie, Bezri, Soc. ent., vol. 25, p. 65. — A. namaka-

gonensis, n. Sp., Wisconsin, Graenicher, Canad. Ent., vol. 42, p.26. —

A. hemimelas, n.sp., Meru, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped.

Kilim. etc., No. 10, p. 78.

Argyramoeba crosi, algira, Fig., n. n. sp. sp., Algier, Villeneuve, Wien. ent. Zeitg.,

vol. 29, p. 301 u. 302.

Bombylius argentatus F., beschr., Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-Naturw.

Kl., vol. 71, p. 134. — B.rufo-antennatus, terminatus, n.n.sp.sp., Brit.

O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 23 u. 24. — B. kili-

mandjaricus, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 75.

Empidideicus perfectus, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr. 1910, p. 637.

Exoprosopa speetrum, atrinasis, n.n.Sp.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch.

ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 79 u. 80. |

Glabellula unicolor, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. nat rw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H.1, p. 55.

Hemipenthes ( Anthrax) argentifrons, alatus, n. n. sp. sp., Sokotra, Becker, Denkschr.

Ak. Wien, Math.-Naturw. Kl., vol. 71, p. 133 u. 134.

Metacosmus mancipennis, n. sp., Pennsylvanien, Coquillett, Canad. Ent., vol. 42,

p- 41.

Phthiria borealis, n. sp., New England, Johnson, Psyche, vol. 17, p. 229.

Systoechus vulpinus, n.sp., Aden, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-Naturw.

Kl., vol. 71, p. 135.

Toxophora javana Wiedm., bespr., Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53,

p- 66. — T. diploptera, n. sp., Usambara, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 77.

Systematik. 47

Acroceridae.

Oncodes clavatus, n. sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p. 22. — 0O.cepisetis, n.sp., Meru, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 74.

Therevidae.,

Thereva egressa Coqu., Larve u. Puppe, Hyslop, Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p. 98. — Th. segmentata, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 81. — Th. poeciloptera Lw.

= spiloptera Wiedem.. Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 304. —

Th., Arten d. Meigen’schen Sammlung bespr., Villeneuve, Ann. Soc. ent.

France, vol. 78, p. 468—470. — Th. seminitida, n. sp., Brit. ©. Afrika, Becker,

Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 24.

Asilidae.

Ancylorhynchus hylaeiformis, nyukinus, n.n.sp.sp., Meru, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 88 u. 89.

Apoclea autumnalis, arabica, n.n.sp.sp., Aden, Becker, Denkschr. Ak. Wien,

Math.-Naturw. Kl., vol. 71, p. 136.

Asilus, Arten d. Meigenschen Sammlung bespr., Villeneuve, Ann. Soc. ent. France,

vol. 78, p. 465—468.

Cerdistus unicus, n. sp., Aden, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-Naturw.

Kl., vol. 71, p. 137.

Clinopogon, n.g., sauteri, n.sp. (sine descr.!), Bezzi, Boll. Laborat. Zool. gen.

Agrar. Portieci, vol. 4, p. 177; Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 153—155.

Dasyllis semitecta, n. sp., Canada, Coquillett, Proc. ent. Soe. Washington, vol. 12,

p-. 124. — D. champlainii, n. sp., Pennsylvanien, Walton, Ent. News, vol. 21,

p. 243, Taf. 9.

Dichropogon, n. g. f. Stichopogon schineri Koch, Bezzi, Boll. Laborat. Zool. gen.

Agrar. Portici, vol. 4, p. 177; Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 133, caucasicus

n. sp., Kaukasus, p. 134,

Dieranus schrotikyi, n. nom. f. Dasypogon longiungulatus Macq. 1849 nec 1838,

Bezzi, Soc. ent., vol. 25, p. 67.

Dioctria concinna Costa, beschr., Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p- 639.

Dysmachus porcellus, n. sp., Kilimandjaro. Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 102. — D. kervillei, n. sp., Tunis, Villeneuve,

Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 303.

Echinopogon, n. g. f. Dasypogon albofasciatus Meig., var. albiseta, n. var., Deutsch:

land, Bezzi, Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 131 u. 132: Boll. Labor.

Zool. gen. Agrar. Portiei, vol. 4, p. 176.

Gonioscelis submaculatus, xzanthopogon, n.n.sp.sp., Meru, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. exped. Kilim. ete., No. 10, p. 90 u. 91.

Heligmoneura monobia, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c. p. 104.

Holcocephala caligata, n. sp., Meru, Speiser, 1. c., p. 112.

Hoplistomera zelimina, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p- 92.

Laxenecera dasypoda, Kilimandjaro, scopifera, Meru, n.n.sp. sp. (n. subg.?),

Speiser, 1. c., p. 94 u. 95.

48 Insecta. Diptera für 1910.

Leptogaster artaphernes, nenemusha, agrionina, Fig. 19, nn.spp., Kilimandjaro

u. Meru, Speiser, ]. c., p. 83—85.

Lissoteles hermanni n.g. n.sp., Zentral-Amer., Bezzi, Boll. Laborat. Zool. gen.

Agrar. Portiei, vol. 4, p. 177 u. 178, Fig. 4 u. 5.

Machimus caudiculatus, Kilimandjaro, penicillatus, Meru, nn.spp., Speiser,

Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilimandjaro etc. No. 10, p. 99 u. 100.

Neoitamus armatus, n. sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p- 22.

Neolaparus (Laparus) lugubris, n.sp., Brit. Ost-Afrika, Becker, Ann. Soc. ent.

France, vol. 79, p.23. — N. ophion, holotaenia, nn. spp., Kilimandjaro,

Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exp. Kilim. etc. No. 10, p. 86 u. 87.

Neopogon, n. g. f. Dasypogon trifasciatus Say, Best.-Tab. u. Beschr. der Arten,

snowii, Kansas, coquillettüi, Californien, schnusei, Peru, nn. spp., Bezzi,

Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 149—152; Boll. Labor. Zool. gen. Agrar.

Portici, vol. 4, p. 176, Fig. 1 u. 3.

Ommatius chiastoneurus, Kilimandjaro, venator, Meru, nn. spp., Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 105 u. 106.

Promachus Lw., Best.-Tab. afrik. Arten, gossypiatus, Kilimandjaro, chalcops,

Meru, nn.spp., Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etec.,

No. 10, p. 96—98.

Protophanes nigrotinctus, n.sp., Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p- 23.

Saropogon weissü, n. sp., Djerba, Bezzi, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910, p. 316.

Stichopogon, Gattung beschrieb., Best.-Tab. abgezweigter Gattungen, Bezzi,

Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 129—131: Best.-Tab. der bekannten Arten,

p. 157—159. — St. Lw. s. str., Gattung beschrieben, Best.-Tab. u. Beschr.

der Arten, scaliger Lw. var. krueperi, Griechenland, conjungens, Kreta,

nn. varr., barbiellini, China, kerteczii, Venetien, infuscatus, Formosa, muticus,

China, hermanni, Süd-Afrika, nn. spp., beckeri, n. nom. f. candidum Becker

nec Macq., Aegypten, Bezzi, 1. c., p. 134—145. — St. s. str., Gattg. definiert,

sp. typ. elegantulus Meig., Bezzi, Boll. Laborat. Zool. Gen. Agrar. Portici,

vol. 4, p. 177. — St. aeque-tinctus, n. sp., Aden, Becker, Denkschr. Ak. Wien,

Math.-Naturw. Kl., vol. 71, p. 138. — St. griseomaeulatum, n.sp., Tunis,

Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 303.

Tolmerus pammelas, n.sp., Meru, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped.

Kilim. ete. No. 10, p. 101.

Empididae,

Empididen von Dänemark, monogr., Lundbeck.

Schwedische Empididen, Best.-Tabellen der Gattungen u. Arten, Wahlgren,

Ent. Tidskr., vol. 31, p. 41—95, Fig. 1—19.

Südamerikanische Empididen, Best.-Tab. der Gattungen. Bezzi, Nov. Act.

Leop.-Carol. Ak. Naturf., vol. 91, No. 3, p. 299—203.

Amictoides, n. g. f. Hilara? breviventris Phil., Bezzi, Nov. Act. Leop. Carol.Ak.

Naturf., vol. 91, No. 3, p. 380.

Apalocnemis cingulata, n. sp., Peru, Bezzi, ]. c., p. 383, Taf. 12, Fig. 9.

Atrichopleura, n. g., nitida, Peru, crassa, Chile, hirtipes, schnuset, Peru, nn. spp.,

Bezzi, 1. c., p. 357—362.

Systematik, 49

Brachystoma (Clinocera) aucta Zett., bespr., Wahlgren, Ent. Tidskr., vol. 31,

p- 28, Fig. 1.

Ceratybos schnusei, n. g. n. sp., Peru, Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf.,

vol. 91, No. 3, p. 303, Taf. 12, Fig. 1.

Clinosera (Heleodromia) ditaeniata, n.sp., Bolivia, Bezzi. l.c., p. 387, Taf. 12,

Fig. 13. — Cl. genualis, n. sp., Canada, Coquillett, Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p. 124.

Dipsomyia spinifera, n. 2. n. sp., Chile, Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf.,

vol. 91, No. 3, p. 389, Taf. 12, Fig. 14.

Drapetis Meig., Best.-Tab. südamer. Arten, armipes, Taf. 12, Fig. 18, Chile,

fortis, monochaeta, Peru, nn. spp., Bezzi, ]. c., p. 397—401. — D. jlavicollis,

n.sp., Südäthiopien, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 24.

Elaphropeza antennata n.sp., Südäthiopien, Becker, ]. c., p. 24.

Empis L., Best.-Tab. südamerik. Arten, p. 342—348, induta, Peru, p. 348,

liodes, angustipennis, penniventris, chiragra, spinifera, Peru, p. 350—354,

leucostigma, Peru, p. 356, nn. spp., lucidilahris Bezzi 9, p. 349, gracilipes,

Phil., p. 356, beschr., Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf., vol. 91,

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ent. Zeitschr., 1910, p. 641 u. 642. — E. otaksuensis, n.sp., N. Seeland,

Miller, Transact. N. Zeal. Inst., vol. 42, p. 235, 1 Taf. — E. platyptera, n. sp.,

Steiermark, 8:irohl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H.1, p. 64.

Haplomera Macq., Best.-Tab. südamerik. Arten, shilensis, n.sp., Chile, Bezzi.

Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf., vol. 91, No. 3, p. 373 u. 374.

Hemerodromia Meig., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, mesomelaena, Taf. 12,

Fig. 15, femoralis, fuscimana, plurivittata, Taf. 12, Fig. 16, Peru, boliriana,

Titicacasee, nn. spp., Bezzi. 1. c., p. 390—396.

Hilara paludosa, bovina, nn. spp. Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910,

p- 643 u. 644. — H. lucidifrons n. sp., Südäthiopien, Beeker, Ann. Soc. ent.

France, vol. 79, p. 25. — H. aberrans, Bolivia, abnormis, Peru, irritans, Chile,

perple.ca, pertubans, Peru, nn. spp., Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf.

vol. 91, No. 3, p. 376—380. — H. chiragrica, philina n.n. sp. sp., Kilima-

ndiaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 107

—108. — H. longesetosa, czernyi, n.n. Sp. Sp. Steiermark, Strobl, Mitteil.

naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 67 u. 69.

Hilarempis Bezzi, Best.-Tab. südamerikanischer Arten, spinosa, bicingulata, Chile,

elegans, Peru, carinata, Bolivia, gymnaspis, barbatula, Peru, argentifera,

Chile, n. n. sp. sp., Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf., vol. 91, No. 3,

p- 363—371.

Hoplopeza chloropa, n.g. n.sp., Peru, Bezzi l.c., p. 385. Taf. 12, Fig. 10—12.

Hybos Meig., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, eurypterus, Peru, ete., lati-

pennis, Bolivia, pilosiformis, Peru, halteralis, luridus, Bolivia, n.n. sp. SP.,

Bezzi, 1. c., p. 304—310.

Kowarzia schnabli, n.sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitg., 1910, p. 646.

Lactistomyia hyalina, serrata, n.n. sp. sp., Peru. Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol.

Ak. Naturf., vol. 91, No..3, p. 312.

Lamprempis Wheel. u. Mel., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, gemmea Bezzi,

suavis Lw., bespr., Bezzi, 1. c., p. 340—342. — L. funebris Duf. = Empis

elongata Meig., Villeneuve, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 312.

Archiv für Naturgeschichte

ıw11. V. 1. 4

50 V. Insecta. Diptera für 1910.

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mark, vo!. 46, H.1, p. 73.

Microphorus albopilesus, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr. 1910,

p- 644. — M. beckeri, n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver, Steier-

mark, vol. 46, H.1, p. 72.

Oedalea inermis, n.sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr. 1910, p. 645.

Paramesia (Clinocera) tenella Wahlb., bespr., Wahlgren, Ent. Tidskr., vol. 31,

p- 28.

Phleboctena lutea, n.g. n.sp., Chile, Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf.,

vol. 91, No. 3, p. 381 u. 382, Taf. 12, Fig. 7 u. 8.

Rhamphomyia Meig., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, argyrotarsis, Taf. 12,

Fig. 2, grallatrix, macerrima, dolichoptera, Bolivia, limbipennis, apicalis,

Peru, pictipennis, arcucincta, galactodes, Bolivia, micragyra, Peru, argyrina,

perpulchra, penicillata, tympanica, Bolivia, carenifera, Chile, monstrosa,

Taf. 12, Fig. 3, Peru, n.n. sp. sp., Bezzi, !. c., p. 321—329. — Rh. empidi-

formis, n. sp., Südäthiopien, Becker, Ann. Soc. ent. Fiarce, vol. 79, p. 25. —

Rh. dentata, n. sp., Berlin, u. dentipes Zett., bespr., chironoptera Bezzi, beschr.,

armimana, n. sp., Gastein, Fig. 1, Oldenberg, Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8,

p- 344—349. — Rh. squamigera Lw. var. ?sguamosissima, n. var., villosipes,

vseudogibba, n.n. Sp. sp., Steiermark, Strobi, Mitteil. naturw. Ver. Steier-

mark, vol. 46, H. 1, p. 59 u. 60, 62.

Sciodromia curtipes, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 645.

Syndyas elongata, brevior, n.n. Sp. :p., Krakatau, de Meiiers, Tidjschr. v. Ent.,

vol. 53, p. 67 u. 68, Taf. 4, Fig. 4 u. 5.

Syneches Walk., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, obeliscus, annulipes, stig-

maticalis, 'Bolivia, repletus, Peru, dichrous, fuscescens, Bolivia. n.n. Sp. SP.,

Bezzi, Nov. Act. Leop.-Carol. Ak. Naturf., vol. 91, No. 3, p. 313—319.

Tachista arrogans Meig. var. productipes, interrupta Lw. var. obsoleta (n. sp.?),

n.n. var. var., calcarata, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver.

Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 85.

Tachydremyia Meig., Best.-Tab. südamerikanischer Arten, pictipennis, Taf. 12.

Fig. 19, eumera, annularis, proserpina, n.n. sp. sp., Peru, Bezzi. Nov. Act.

Leop.-Carol. Ak. Naturf., vo). 91, No. 3, p. 402—405. — T., Gattung bespr.,

Literatur, Best.-Tab. nordamerik. Arten, p. 41—62, Taf. 3, schwarzii Coqu.

var. diversipes, n. var., ciliata, n. Sp., p. 55, calva, insularis, agens. universalis

n.n. sp. sp., U.S.A., p. 58—60, Melander, Psyche, vol. 17. — T. villeneum,

n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 647. — T. exilis Meij.

var. nigroterminata, n. var., dilatovittata, longimana, pseudociliaris, leucothrix,

pseudobicolor, diversipes, n. n. Sp. 5p.. Steiermark, Strobl. Mitteil. naturw. Ver.

Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 77—84.

Wiedemannia (Atalanta Meig. = Clinocera Meig.) bilobata, n.sp., St. Moritz,

O!denberg, Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 149—152, Fig. 2 u. 3.

Dolichopodidae.

Agonosoma Gu£r., Gattung bespr., Best.-Tab. malayischer Arten, p. 74—80,

pallidium n. sp., p. 80, Taf. 4, Fig.7, rectum Wieden:., p. 81, Taf. 4, Fig. 8 u. 9,

terminiferum Walk., p. 82 Taf. 4 Fig. 10 u. 11, Zucigena Walk., p. 82 Taf. 4

Systematik. öl

Fig. 12 u. 13, anthracoides v.d. Wulp, p. 83, vittatum Wiedem., benedietum

Walk. p. 84, jacobsoni, p. 85, Taf. 4, Fig. 14, Taf. 5, Fig. 15, ornatipenne,

p. 86, Taf. 5, Fig. 16, u. 17, n.n. sp. sp.. fenestratum Wulp, p. 87, bifilum

Wulp, patelliferum Thoms. var. patellatum Wulp, p. 88, crinicorne Wiedem.

p. 91, Taf. 5, Fig. 21, leucopogon Wiedem., muticum Thoms., Taf. 5, Fig. 22

u. 23, p. 92, alkopilosum Wulp, p. 93, flaviappendiculatum, n.sp., Taf. 5,

Fig. 24 u. 25, flaricorne Wiedem., p. 94, pectinatum, n.Ssp., p: 95, Taf. 5,

Fig. 26—28, n.sp. {unbenannt), Taf. 5, Fig. 29, nudifrons, n.sp., Taf. 5,

Fig. 30—33, p. 96, spiniferum Wulp, p. 98, Taf. 6, Fig. 34—36, simplex,

p. 99, Taf. 6, Fig. 37 u. 38, gracile, p. 100, Taf. 6, Fig. 39 u. 40, flavipes,

p. 102, Taf. 6, Fig. 41 u. 42, n.n. sp. sp., Malay. Arch., de Meijere, Tijdschr.

v. Ert., vol. 53. — A. micantifrons, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. cte., No. 10, p. 108.

Chrysotus malachiticus, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p. 110.

Diaphorus aeneus Do!., beschr., apicalis, pollinosus, cinctellus, n. n. Sp. 2p., Java

u. Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 70—73.

Dolichopus virga, dasypodus, laciniatus, n.n. sp. sp., U.S. A., Cogwillett, Canad.

Ent., vol. 42, p.41u.42. — D. zeiterstedti Stenh., bespr., Wahlgren, Ent.

Tidskr., vol. 31, p. 29.

Epithalassinus corsicanus, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910,

p- 648.

Gymnopternus flawipes Böd., bespr., Becker, 1. c., p. 652.

Hercostomus griseifrons, gallicanus, n.n. sp. sp., Corsica, Beeker, 1. c., p. 649. —

H. muscarius, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wisensch. Ergekn. schwed. Exp.

Kilim. ete., No. 10, p. 109.

Hydrophorus incisicornis, n. sp., Kilimandjaro, - Speiser, 1. c., p. 111.

Medeterus resplendens, n. sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 92.

Porphyrops nigrıbarbatus Becker, bespr., Wahlgren, Ent. Tidskr., vol. 31, p. 29.

Sympyenus setosipes, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 111. — $. simplicipes, n.sp., Steiermark,

Sirobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, Vol. 46, H.1, p. 94.

Tachytrechus junctus, n. sp., New Yersey, Cognillett, Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p. 125.

Thinophilus promotus, ochripalpis, Aden, argyropalpis, Port Said, n.n. sp. <sp.,

Becker, Denkschr. Ak. Wien, Mathem.-Naturw. Kl., vol. 71, p. 138 u. 139.

Xiphandrium spinicoxa, n.sp., Corsica, Beeker, Deutsche ent. Zeitschr. 1910.

p- 650.

Cyclorrhapha.

Aschiza.

Phoridae.

Schwedische Phoriden, Best.-Tab. der Gattungen und Arten, Wahlgren,

Ent. Tidskr., vol. 31, p. 217—229, Fig. 5—12.

Englische Phoriden, Best.-Tabellen, Malloch, Ann. Scott. Nat. Hist., 1910,

p. 15—21, 87—92.

Phoriden, Best.-Tab. afrikanischer Gattungen, Brues, Psyche, vol. 17, p. 33

u. 34.

52 V. Insecta. Diptera für 1910,

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vol. 7, p. 106. — A. gregalis, decipiens, n.n. sp. Sp., Java, de Meijere, Ann.

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Beckerina, n. g. f. Phora umbrimargo Becker, Malloch, Ann. Scott. Nat. Hist.,

1910, p. 90.

Conoprosopa scutellata, n. g. n. sp., Südäthiopien, Becker, Ann. Soc. ent. France,

vol. 79, p. 30.

Coryptilomyia armigera, n. g. n. sp., Natal, Brues, Psyche, vol. 21, p. 34 u. 35, Fig.

Parastenophora, n. nom. f. Woodia Mall. nec Desh., Malloch. Ann. Scott. Nat. Hist.,

1910, p. 90.

Phora, Best.-Tab. britischer Arten, pallens, spinata, serrata, verralli, latifrons,

lata, angelicae, longipalpis, gregaria, rufifrons, pectoralis, involuta, simplex,

p. 149—154, clavipes, maura, erecta, halterata, minutissima, exigua, p. 195

— 202, tarsalis, brevicostalis, lutescens, nigrescens, superciliata, albicaudata,

spinicincta, sylvatica, hirticaudata, manicata, hirsuta, p. 243—249, n.n. Sp. SP.,

England, Wood, Ent. monthly Mag., vol. 46. — Ph. sinensis Schin., beschr.,

Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 106, Taf. 7, Fig. 45. —

Ph. crassinervis, bicornuta, forcipata, p. 116—118, grandicornis mit var.

?pseudociliata, n. var., cinereifrons, p. 123 u. 124, n.n. sp. sp., Steiermark,

Stobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H.1.

Puliciphora sylvatica, n. sp., Washington, Brues, Bull. Wisconsin Soc. Nat. Hist.,

vol. 7, p. 107. — P. beckeri, Metam., de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53,

p. XXVII.

Spiniphora bergenstammi = domestica W., Malloch, Ann. Scott. Nat. Hist., 1910,

p- 20.

Termitoxenia assmuthi Wasm., Anat. und Histologie, Assmuth, Inaugural-Dissertat.

Berlin, 1910, p. 1—53, 1 Fig.

Pipunculidae.

Schwedische Pipunculiden, Best.-Tabellen d. Gattungen u. Arten, Wahl-

gren, Ent. Tidskr., vol. 31, p. 209—217, Fig. 1—4.

Pipunculus hirticollis, n.sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910,

p. 657. — P. flavomaculatus, cilitarsis, n.n. Sp. &p., Steiermark, Strobl,

Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 113. — P. vulcanus, avrothrix,

pyrophilus, holomelas, n. n. sp. sp., Hawaii-Ins., Perkins, Faun. Hawaii, vol. 2,

Part 6, p. 697 u. 698. — P. borealis, n. sp., Lappland, Wahtgren Ent. Tidskr.,

vol. 3], p. 33.

Platypezidae.

Schwedische Platypeziden, Best.-Tabellen d. Gattungen u. Arten, Wahlgren,

Ent. Tidskr., vol. 31, p. 229—235, Fig. 13—16.

Agathomyia, Best.-Tab. u. Bespr. nordamer. Arten, Johnson, Psyche, vol. 17,

p.7 u. 8. — A. elegantula Fall., bespr., zetterstedti Zett., England, Wood,

Ent. monthly Mag., vol. 46, p. 45 u. 46. — A. Verr., bespr., Best.-Tab. schwe

discher Arten, Wahlgren, Ent. Tidskr., vol. 31, p. 31—33.

Platypezina, n. g. f. Platypeza connexa Boh., Wahlgren, 1. c., p. 30, Fig. 2.

Systematik. 93

Syrphidae.

Asarcina angustata, n. sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p. 25. — A. ericetorum F., eremophila Lw., bespr., Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 117 u. 118.

Baccha tenera, Taf. 6, Fig. 43, bicincta, Taf. 7, Fig. 44, chalybea, n.n. sp. sPp.,

Java u. Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 103—105.

Catabomba O. S., s. Scaeva.

Cerioides ammophilina, n.sp., Kilimandscharo, caffra Lw., bespr., Speiser,

Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 130 u. 131.

Chilosia chrysocomoides, beckeri, claviventris, n.n.Sp.Sp., Steiermark, Strobl,

Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 101—104.

Copestylum Macq., Gattg. bespr., Aldrich, Ent. News, vol. 21, p. 222.

Eristalis (Stenaspis) ellioti var. claricella, n. var., gypseisquama, n.sp., p-. 123,

E. (Lathyrophthalmus) myiatropinus, n.sp., p. 125, Kilimandjaro, Speiser,

Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim., No. 10.

Eumerus axinicerus, n. sp., Meru, Speiser, ]. c., p. 129.

Helophilus, Revis. d. Gattg., krit. Bespr. u. Synon. d. Arten, Untergattungen,

Best.-Tab. u. Beschr. d. Arten, Becker, Berl. ent. Zeitschr., vol. 55, p. 213

— 232. — H. bruesi, n. sp., Wisconsin, Graenicher, Bull. Wisconsin nat. hist.

Soc., vol. 8, p. 40.

Lycastris Walk., Gattg. bespr., cornutus, n.sp., Formosa, Enderlein, Stettin.

ent. Zeitg., vol. 72, p. 135 u. 136.

Masarygus Brethes, syst. Stellg. bespr., Bezzi, Soc. ent., vol. 25, p. 67.

Melanostoma infuscatum, n.sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France,

vol. 79, p.26. — M. pyrophaenoides, alticola, floripeta, n.n.sp.sp., Kili-

mandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc., No. 10,

p. 114—116.

Merodon mucronatus Rond. = ruficornis Meig., Villeneuve, Wien. ent. Zeitg.,

vol. 29, p. 305.

Microdon bertonii, Paraguay, iheringi, Sao Paulo, n.n. sp. sp., Bezzi, Wien. ent.

Zeitg., vol. 29, p. 319 u. 320. — M. eggeri Mik, neu f. England, Sharp, Ent.

monthly Mag., vol. 46, p. 274. — M. brevicorne Lw., Larven, Speiser, Wissen-

schaftl. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 130.

Platystyla hoffmannseggi, bespr., Steck, Mitteil. schweiz. ent. Ges., vol. 12, p. 13.

Rhingia, Best.-Tab. afrik. Arten, mecyana, cyanoprora, Kilimandjaro, ortho-

neurina, Meru, n.n.sp.sp., Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Fxped.

Kilim. ete., No. 10, p. 121 u. 122.

Scaeva (Catabomba), als Gattg. von Syrphus nicht zu trennen, Osburn, Journ.

N. York ent. Soc. Washington, vol. 18, p. 58—62, Taf. 2.

Simoides descendens, n. sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

p- 26.

Sphaerophoria pictipes Boh, bespr., Wahlgren, Ent. Tidskr., vol. 31, p. 34.

Sphegina petiolata, n. sp., New Hampshire, Coquillett. Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p. 125. — 8. zetterstedtii Schin. var. rufiventris, n. var., Steiermark,

Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark, vol. 46, H. 1, p. 96.

Syritta pleuritica, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 127. — S. oceanica Macq., Metam., Terry,

Proc. Hawaiian ent. Soc., vol. 2, p. 96 u. 97.

54 V, Insecta. Diptera für 1910.

Syrphus arcuatus Fall., bespr., perplexus, n. sp. f. arcuatus var. arcuatus Willist.

Osburn, Journ. N. York ent. Soc., vol. 18, p. 54 u. 55, Taf. 1. — 8. perplexus;

abnorm, mit 3 Fühlern u. 2 Ocellenfeldern, Osburn, 1. c., p. 62—66, Taf. 3.

— 8. cinctifacies, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 119.

Xylota nigerrima, n.sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr. 1910, p. 653.

— X. facialis, n.sp., Michigan, Coquillett, Proc. ent. Soc. Washington,

vol. 12, p. 126.

Schizophora.

Musearia schizometopa.

Tachinidae.

Admontia continua, n.sp., Steiermark, Strobl, Mitteil. naturw. Ver. Steiermark,

vol. 46, H. 1, p. 137. — A. podomyia B. B., bespr., amica, n. nom. f. podomyia

part., Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 254.

Allophora (Phorantha) bathymyza, n.sp., Meru, Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 158.

Arrhinomyia cloacellae, n. sp., Kramer, Ber. Tätigkeit naturf. Ges. Isis Bautzen,

1906/09, p. 30—33.

Baumhaueria tibialis, n.sp., Paris, Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 92.

Bengalia latro, n. sp., Java, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 336.

Beria inflata R.-D., Gattg. u. Art beschr., Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 151 u. 152.

Billaea sjöstedti, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p. 146.

Bothria subalpina, n.sp., Neuchätel, Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 88.

Brephometra, n. nom. f. Pero Mein. nec H.-Sch., Strand, Ent. Rundschau, vol. 27,

p- 155. .

Calliphora parasacra, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 155.

Carcelia hectica, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p. 141.

Catanemorilla pilosa, n. g. n. sp., Frankreich, Villeneuve, Wien. ent. Zeitg., vol. 29,

p: 87.

Ceratochaeta setifacies, n. sp., Hautes Alpes, Villeneuve, 1. c., p. 89.

Conogaster petiolata, n. sp., Sokotra, Villeneuve bei Becker, Denkschr. Ak. Wien.

Math.-Naturw. Kl., vol. 71, p. 144.

Conopisoma miraculum, n.g. n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., p. 144 u. 146.

Cordylobia praegrandis, n.sp., S. Afrika, Austen. Bull. ent. Research, vol. 1,

p. 79, Fig. 1. — CO. rodhaini, n.sp., mit cuticoler Larve, Congo, Gedoelst,

Arch. Parasitol., vol. 13, p. 538—547, Fig. 1—4.

Crocuta creberrima, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 142.

Dejeania hecate K., bespr., Speiser, 1. c., p. 133.

Dermatoestrus Br., Gattg. bespr., oreotragi, n. sp., D. S. W. Afrika, strepsicerontis

Br., bespr., Scheben, Sitzungsber. Ges. naturf. Fr. Berlin 1910, p. 459—468,

Fig. 1—6.

Systematik. 55

Disjunctio (Wohlfahrtia) guyoti Villen. = D. trina Wiedem., Villeneuve, Deutsche

ent. Zeitschr. 1910, p. 312.

Exorista selinervis, n.sp., Tennessee, Coquillett, Proc. ent. Soc. Washington,

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de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 109. — E. oculata, n. sp., Congo,

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p- 145.

Coenosia gigas, n. Sp., Brit. O. Afrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 27.

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Soc. London, vol. 14, p. 160 u. 161. — C. longipila, Neu-Guinea, capitulata,

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Hydrophoria scopulicauda, n. sp., Steiermark, Strobt, 1. c., p. 168.

Limmophora multipunctata, n. sp. (sine deser.!), Sokotra, Stein bei Becker, Denk-

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Seychellen, Stein, Transact. Linn. Soc. London, vol. 14, p. 155. — L. dasyops,

Botany-Bai, tinetipennis, Ceylon, abnormis, Singapore, n.n. sp. sp., Stein,

Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 556—559.

Lispa ochracea, simonyi n. n. Sp. Sp., Sokotra, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-

Naturw. Kl., vol. 71, p. 150 u. 151. — L. hydromyzina Fall., neu für Ost-

preußen, Speiser, Schriften physik.-oekon. Ges. Königsberg, vol. 51, p. 306.

— L. miochaeta, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete. No. 10, p. 164. — L. albimaculata, ignobilis, n. D. SP. SP-,

Brisbane, Stein, Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 561 u. 562.

Lyperosia, Gattung u. indische Arten beschr., Best.-Tab., flavohirta, n. sp., Birma,

p- 89, Bruneiti, Rec. Ind. Mus., vol. 4, p. 88—89. — L. rufipalpis, n. sp.

Sokotra, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-Naturw. Kl., Vol. 71, p. 148.

Megaylossa nervosa, n. sp., Brit. Ostafrika, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79,

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Musca pattoni, n. sp., Indien, Austen, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 115.

— M. spectanda Wiedem., beschr., Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 169. — M. fasciata, n. sp., Seychellen, Stein,

Transact. Linr. Soc. London, vol. 14, p. 149. — M. agilis Meig. = M. pusilla

Meij., Villeneuve, Deutsch. ent. Zeitschr. 1910, p. 311.

Mydaea, Best.-Tab. indo-australischer Arten, appendiculata, Ceylon, coerulescens,

Sidney, nigrescens, N.S. Wales, simulans, sordida, Ostindien, carinata,

N.S.Wales, fuscisguama, Ceylon, versicolor, N. S. Wales, n.n. sp. sp., Stein,

Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 549—554. — M. pallidicornis, n. Sp.

Sokotra, Stein bei Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-Naturw. Kl., Vol. 71,

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Stein, Transact. Linn. Soc. London, vol. 14, p. 151—153.

Systematik. 59

Onesia subapennina Bond, retrocurva Pand. = Musca sepuleralis Meig., Villeneuve,

Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 311.

Ophyra nigrisguama, n.sp., Seychellen, Stein, Transact. Linn. Soc. London,

vol. 14, p. 154. — O. spinigera, n.sp., Singapore, Stein, Ann. Mus. Nat.

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Pegomyia R.-D., Gattung bespr., Kopulationsorgane der Arten, schineri Schnb.

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Taf. 7—9.

Phaonia caeruleicolor, Ceylon, umbrinervis, Sidney, n.n. sp. sp., Stein, Ann. Mus.

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p- 311.

Spathicera (Gyrostigma) meruensis, n.sp., D. O. Afrika, Imago u. Larve, rhino-

cerontis bicornis Br., conjugens Enderl., Larven bespr., Sjöstedt, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 11—20, Taf. 1 u. 2.

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St. ochrosoma, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 162.

Trichopticus appendiculatus, n. sp., Steiermark, Strobl, Stettin. ent. Zeitg., vol. 46,

H. 1, p. 163.

Musearia holometopa.

Acalyptrata.

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Beschr., Metam., Lebensw., Schaden, Bekämpfung, Crawford, Pomona,

Coll. Journ. Ent., vol. 2, p. 321—332, Fig. 120—123.

Anatrichus erinaceus Lw., Gattung u. Art beschr., Becker, Arch. zool. Budapest,

vol. 1, No. 10, p. 118 u. 119, Taf. 3, Fig. 64 —66.

Anthracophaga Lw., Gattung bespr., paläarkt. Arten beschr., infumata, n.sp.,

Ungarn, Becker, 1. c., p. 74—77, Taf. 2, Fig. 24—26. — A. quadrilineata,

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u. 152.

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p- 47, Taf. 3, Fig. 56 u. 57.

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Bezzi, beschr., Becker, Ann. Mus. nat. Hungar., vol. 8, p. 415 u. 416.

Ariologina (Ulidiinae) n. g.f. ferrum-equinum Hendel, Hendel, Gen. Ins., Fasc. 106,

p- 42, Taf. 3, Fig. 76—79.

Balioptera fusca, n. sp., Thüringen, Oldenberg, Deutsche ent. Zeitschr., 1910,

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Borborus fuscanus n. sp., Harrar, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 30. —

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p- 34.

Capnotera Lw., Gattung bespr., paläarkt. Arten monogr., breviantennata, n. SP.

Syrien, Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p.51—54, Taf. 2.

Carpophthoromyia Trypetidae) n. g., pulchella, formosula, n.n. sp. sp., Uganda,

Best.-Tab., der bek. Arten, Austen, Bull. ent. Research, vol. 1, p. 71—77,

Fig. 1 u. 2.

Cetema Hendel, Gattung beschr., paläarkt. Arten monogr., monticula, n. SP.

Pyreneen, Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 56—58, Taf. 2.

Celyphus qutta, n.sp., Meru, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete.,

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p. 54, Taf. 2, Fig. 70—72.

Oentrioncus prodiopsis (Sepsidae), n. g. n. sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilimandj. ete., No. 10, p. 190 u. 191.

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Systematik. 61

ent. Research, vol. 1, p. 162 u. 164. — C. capitata, Entwicklung, Lebensw.,

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—127, 1 Fig.

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Hendel, Wien. ent. Zeitg. vol. 29, p. 117—120, Taf. 1, Fig. 9 u. 10. — (©. flavo-

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Fig. 62.

Ckaleidomyia (Drosophilidae), n. g., Taf. 8, Fig. 72, apicalis, aeneiventris, polita,

n.n. sp.sp., Java, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 156—159.

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limbata Bezzi, beschr., Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 410.

Chlorops Meig., Gattg.- bespr., paläarkt. Arten, monogr., laevicollis, Irkutsk,

adjuncta, Ungarn, lunifer, St. Petersburg, berlinensis, Berlin, varsoviensis,

Warschau, syriaca, Beirut, horrida, Ungarn, alpicola, Monte Rosa, finitima,

Berlin, magnicornis, Alai-Geb., triangularis, Schlesien, lucens, Griechen-

land, tectifrons, angustifrons, eutrophaeformis, Ungarn, n.n. sp. sp., Becker,

Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 783—104. — C'h. afrik. Arten monogr.,

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p. 44 u. 45. — Chl. incisa, rubra, Taf. 8, Fig. 67, paludosa, n.n. SP. SP.,

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Dactylothyrea (Chloropidae) n. g., infumata, Taf. 8, Fig. 70 u. 71, hyalipennis,

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Diopsis praeapicalis, coniortodes, atromicans, n.n. sp. sp., Kilimandjaro, Speiser,

Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 187—189.

62 V. Insecta. Diptera für 1910.

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Elachiptera Macq., Gttg. bespr., paläarkt. Arten monogr., graeca, Patras, hungarica,

Kalosca, n.n. sp. sp., Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 119

—125. — E., afrik. Arten monogr., oceipitalis, Taf. 13, Fig. 14, yrossiseta,

Taf. 13, Fig. 15, simplicipes, maculinervis, n.n. sp. sp., Ost-Afrika, Becker,

Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 421—427.

Elachiptereiceus bistriatus (Chloropidae) n. g. n. sp., Südäthiopien, Becker, Ann. Soc.

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Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 404 u. 405, Taf. 13, Fig. 4.

Ephygrobia nervimaculata, n.sp., Aden, Becker, Denkschr., Ak. Wien, Math.-

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Eribolus (Chloropidae) n. g., sudeticus, hungaricus, Ungarn, sleswicensis, Sylt,

n.n. sp. Sp., Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 127 u. 128.

Ernoneura argus Zett., neu für England, Sharp, Ent. monthly Mag., vol. 46, p. 274.

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Eurina Meig., Gttg. beschr., paläarkt. Arten monogr., nigrifrontata, n. sp., Griechen-

land, Becker, Arch. zool. Budapest, Vol. 1, No. 10, p. 44—48, Taf. 2.

Eurosta elsa, n. sp., Lebensw., U. S. A., Daecke, Ent. News, vol. 21, p. 341 u. 342,

Taf. 10.

Eurychoromyia, n. g. n. sublam,, mallea, n. sp., Bolivia, Hendel, Wien. ent. Ztg.,

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Eutropha Lw., Gattung bespr., fulvifrons Halid. var. mediterranea, n. var., Beirut,

Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, p. 58 u. 59.

Euxesta tenuissima, n.sp., Georgia, Hendel, Gen. Ins., Fasc. 106, p. 29, Taf. 2,

Fig. 43.

Gampsocera Schin., Gattg. u. paläarkt. Arten beschr., Becker, Arch. zool. Buda-

pest, vol. 1, No. 10, p. 117 u. 118. — @. notala, n.sp., Java, de Meijere,

Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 152, Taf. 8, Fig. 68 u. 69.

Gaurax Lw., Gattung bespr., paläarkt. Arten monogr., fascipes, n. sp., Ungarn,

Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 114—117. — @. secundus,

n. sp., Ostafrika, Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 430.

Haplegis Lw., Gattung beschr., paläarkt. Arten monogr., Becker, Arch. Zool.

Budapest, vol. 1, No. 10, p. 60 u. 61, Taf. 2. — H. scutellaris Ad., Kapland,

beschr., Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 398.

Systematik. 63

Helomyza acroleuca, Kilimandjaro, laciniata, Meru, n. n. sp. sp., Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 166 u. 167.

Heteromyiella, n. nom., f. Heteromyza-Arten Aut. nec Fall., Hendel, Wien. ent.

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Heteroneura, Gattung bespr., pietipes, Zett., albimana Meig., bespr., Kleine,

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Homalura Meig., Gattg. u. paläarkt. Arten beschr., sarudnyi, n.sp., Persien

Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 62.

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p. 29. — H. atroglauca, cruralis, n. n. Sp. Sp., N.-Amer., Coquillett, Proc. ent.

Soc. Washington, vol. 12, p. 131.

Idiomyia heteroneura, silvestris, n.n. Sp.sp., Hawaii, Perkins, Faun. Hawaii.,

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Lagaroceras Becker, Gattung u. paläarkt. Arten beschr., granulosum, n.sp.,

Ungarn, Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 107 u. 108. — L. opa-

culum, equens, n.n. Sp. sp., Ostafrika, Becker, Ann. Mus. Nat, Hungar.,

vol. 8, p. 417 u. 418, Taf. 13, Fig. 12 u. 13.

Lasiopleura, n.g. f. Oscinis longepilosa Strobl., Beeker, Arch. zool. Budapest,

vol. 1, No. 10, p. 130.

Lasiosina, n.&., f. Chlorops cinctipes Meig., paläarkt. Arten beschr., littoralis,

n.sp., Ungarn, Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 73 u. 74,

Taf. 3. — L. aethiopica, n. sp., Ostafrika, Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar.,

vol. 8, p. 411.

Lauzxaina, Best.-Tab. malayischer Arten, basiguttata Walk., bespr., immaculate,

viatrix, cinclipes, lugubris, atrata, sigillata, crassiuscula, javanensis, parvi-

punctata, trifasciata, hirsutiseta, simplieissima, lucida, Taf. 7, Fig. 53, trypeti-

formis, Taf. 7, Fig. 54, lunifera, Taf. 7, Fig 55, lunata, Taf. 7, Fig. 56,

quinquevittata, Taf. 7, Fig. 59, strigata, Taf. 7, Fig. 57, morio, Taf. 7,

Fig. 58, bicincta, Taf. 8, Fig. 60, fenestrata, Taf. 8, Fig. 61, ungaranensis,

ornatipennis, D.D. SP. Sp., Java ete., de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53,

p. 120—141. — L. (Sapromyza) thetis, bilineata, lyrica, n.n. sp. sp., Kili-

mandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc. No. 10,

p. 173 u. 174.

Leria nebulosa, pleuralis, nuda, genalis, n.n. sp. sp., N.-Amer., Coquillett, Proc.

ent. Soc. Washington, vol. 12, p. 129 u. 130.

Leucopis, Best.-Tab., u. Bespr. der Arten, maculata, n. sp., Nebraska, Thompson

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Limnia nubila Lw. var. corsicana, n. var., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr.

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Limosina equitans, n.sp., Lebensw., Ceylon, Collin, Ent. monthly Mag., vol. 46,

p- 275—279 Taf. 6. — L. punctipennis Wiedem., beschr., Formosa, Enderlein,

Stettin. ent. Zeitg., vol. 72, p. 138—141.

Lipara Meig., Gattung u. paläarkt. Arten beschr., oscinella, n. sp., Berlin, Becker,

Arch. Zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 143—145,

Lonchaea pugionata, minuta, obscuripennis, cupraria, lucens, setifera, gibbosa,

n.n. Sp. sp., Java u. Krakatau, de Meijere, Tijdschr. v. Ent., vol. 53, p. 115

—119.

64 V. Inseeta. Diptera für 1910.

Lozxocera, Best.-Tab. afrik. Arten, macrogramma, n.sp., Kilimandjaro, Speiser,

Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 193.

Lule (Ortalididae) corioptera, n. g. n. sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p. 179 u. 180.

Melanochaeta Bezzi, Gatt. u. paläarkt. Arten beschr., Becker, Arch. zool. Buda-

pest., vol. 1, No. 10, p. 125—127. — M. pilosula, n. sp., Madagaskar, Beeker,

Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 420.

Melanum, n.g. f. Chlorops lateralis Halid., Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1,

No. 10, p. 50, Taf. 3, Fig. 31—33.

Meoneura glaberrima, n. sp., Corsica, Becker, Deutsche ent. Zeitschr., 1910, p. 664.

Mepachymerus baculus (Chloropidae), n.g. n.sp., Speiser, Wissensch. Ergebn.

schwed. Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 197.

Macracanthomyia gamma (Trypetidae) n.g. n.sp., Ceylon, Hendel, Wien. ent.

Zeitg., vol. 29, p. 107, Taf. 1, Fig. 13.

Meromyza Meig., Gattung beschr., paläarkt. Arten monogr., p. 40—44, Taf. 2,

Fig. 1—3, inornata, n.sp., Irkutsk, p. 44, Becker, Arch. zool. Budapest,

voi. 1, No. 10. — M., afrik. Arten, monogr., guttiventris, n. sp., Ostafrika,

Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 394—396. — M. mesaetata, n. Sp.,

Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed. Exped. Kilim. ete.,

No. 10, p. 194.

Meroscinis Meig., Gttg. beschr., bicolor, annulata, n. sp., n. sp., Ostafrika, Becker,

Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 430—432.

Metopostigma Beck., Gattg. u. paläarkt. Arten beschr., pleskei, Beludschistan,

sabulona, Port Said, n. n. sp. sp., Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10,

p. 63 u. 64. — M. sabulona, n. sp., Port Said, Becker, Denkschr., Ak. Wien,

Math.-Naturw., Kl., vol. 71, p. 155.

Mezona (Ortalididae) proxenus, n.g. n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 177 u. 178.

Microneurum Becker, Gattg. u. paläarkt. Arten beschr., Beeker, Arch. zool.

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Myopites limbardae Schin., Beschr., Lebenew., Metam., Schmarotzer, Martelli,

Boll. Laborat. Zool. gen. Agrar. Portici, vol. 4, p. 303—306, Fig.5 u. 6.

Myrmecothea, n. nom. f. Myrmecomyia R.-D., Hendel, Wien. ent. Zeitg., vol. 29,

p- 310.

Naupoda inscripta, n.sp., Kilimandjaro, Speiser, Wissensch. Ergebn. schwed.

Exped. Kilim. ete., No. 10, p. 176.

Nerius (Paranerius) perstriatus, n. sp., Kilimandjaro, Speiser, 1. c., p. 192.

Norellisoma, n. nom. f. Norellia Aut. nec R.-D., Hendel, Wien. ent. Zeitg., vol. 29,

p- 308.

Notonaulax, Gattg. u. paläarkt. Arten beschr., Beeker, Arch. zool. Budapest,

vol. 1, No. 10, p. 146—149.

Oedalea flavipes Zett., bespr., Kleine, Internat. ent. Zeitschr., vol. 4, p. 159.

Oedesiella (Chloropidae) discolor, n.g. n.sp., Sarepta, Becker, Arch. zool. Budapest,

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Opomyza decora, n.sp., Monte Rosa, Oldenberg, Deutsche ent. Zeitschr., 1910,

p- 286.

Ops, n.g. f. Chlorops callichroma Lw., Afrika, Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar.,

vol. 8, p. 402 u. 403, Taf. 13, Fig. 8.

Systematik. 65

Oscinella, n. nom. f. Oscinis Macg. Aut. nec Latr., Gattg. beschr., paläarkt. Arten

monogr., pectoralis, rubidipes, Ungarn, nitidigenis, Kanar. Inseln, kerteczi,

Ungarn, elegans, Schlesien, fycoperda, Korsica, kuntzei, Dresden, n. n, sp. <p.,

Becker, Arch. zool. Budapest, vol. 1, No. 10, p. 150—167. — O., afrik. Arten

monogr., elongata, nigritibiella, brunnipennis, Ostafrika, solida, Victoria,

nD.n.sp. sp., Becker, Ann. Mus. Nat. Hungar., vol. 8, p. 433—437. —

O. deficiens, n. sp., S. Aethiopien, Becker, Ann. Soc. ent. France, vol. 79, p. 29.

Oscinis Latr., Gatt. bespr., curvirervis Latr., beschr., Becker, Arch. zool. Budapest,

vol. 1, No. 10, p. 49 u. 50. — O. angustifrons Bezzi, beschr., Becker, Ann.

Mus. Nat. Nungar., vol. 8, p. 410.

Oxyphora fenestrella, n. sp., China, Coquillet, Ent. News, vol. 31, p. 308.

Pachylophus Lw., Gattg. u. Arten beschr., punctifrons, Madagaskar, pellucidus,

contractus, halteratus, Ost-Afrika, n.n. sp. sp., Becker, Ann. Mus. Nat.

Hungar., vol. 8, p. 386—394, Taf.13. — P., Best. - Tab. afrik. Arten,

septembris, frontellinus, n.n.sp. sp., Kilimandjaro etc., Speiser, Wissensch.

Ergebn. schwed. Exped. Kilim. etc., No. 10, p. 195 u. 196.

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Paralimna arabica, n.sp., Südarabien, Becker, Denkschr. Ak. Wien, Math.-

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Parallelomma setipes, flavovaria, n.n.sp.sp., Pennsylvanien, Coquillett, Canad.

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Parectecephala, n. g. f: C'hlorops longicornis Zett., Becker, Arch. zool. Budapest,

vol. 1, No. 10, p. 105. — P. princeps, n. sp., Ostafrika, Beeker, Ann. Mus.

Nat. Hungar., vol. 8, p. 414, Taf. 13, Fig. 11.

Percnomatia, Besttab. d. Arten, subasiatica, Kleinasien, Iimpidipennis, Syrien,

n.n. sp. sp., Becker, Wien. ent. Zeitg., vol. 29, p. 324—326.

Philygria moscäryi, D. Sp., Ungarn, Kerteez, Rovart. Lapok., vol. 17, p. 194 u. 195.

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Physocephala celebensis, Celebes, limbipennis, Java, n.n.sp.sp., de Meijere,

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Pleihochaeta atrifrons, n. sp., New Hampshire, Coquillett, Canad. Ent., vol. 42, p. 44.

Archiv er en aa Ex

911. V. 1. 5

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Parasiten, Bekampfung, ete.

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Wilson, H. F. (1). A List of the Genera described as new from

1758 to 1909 in the Family Aphididae. — Entom. News, XXI, pp. 147

—156. Philadelphia. — Katalog der Aphidengattungen, mit Original-

Citaten u. Genotypen.

— (2). Notes on the two papers on Aphididae by Rafinesque. —

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versuch der von Rafinesque 1817—1818 beschriebenen Aphiden.

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Tribe Callipterini, family Aphididae. — Canad. Entom., XLH, pp. 253

—259, 384—388, London, Ontario.

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Wolff, M. Ein Beitrag zur Kenntnis von Aleurochiton aceris

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Wuorentaus, Y. Muutamia Hemiptera löytöjä alueelta Ostro-

bothnia borealis [= Einige Hemipteren-Funde aus Ostrobothnia

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— 13 Heteropteren.

* Xambeu, V. (1). Anomalies. Varietes. Aberrations. Cas parti-

euliers. — L’Echange, 1909, Moulins 1909. [Nach Jeannell.

— Soll Eier auf den Tegumenten von Eurydema, Graphosoma, Strachia

gesehen haben (wie Phyllomorpha). — Nach Jeannel = Tachiniden-

eier?

— (2). Moeurs et m&tamorphoses des Insectes, — Melanges

entomologiques, II, 16. — Ann. Soc. Linn. Lyon, (2) LVI, pp. 1—49.

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Übersicht nach dem Stoff. 99

*** Ta Psylla pyrisuga. — Le Natur., XXXII, No. 551, pp. 47

—48. Paris. — Biologie, Metamorphosen, Zyklus, Schaden, Be-

kämpfung. i

Übersicht nach dem Stoff.

Literaturübersiehten und Bibliographie.

Banks (2) Katalog der nearktischen Heteropteren. — Bayer (I) p. 63—68

Böhmische Zooceeid’ien. — Distant (15) Fauna von Brit. Indien. — Erieson (1)

Psychische Eigenschaften der Hemipteren. — Faber (1) Kakao-Schädlinge. —

Hagemann (I) p. 376 Stigmen. — Hodgkiss (1) pp. 97—100 Ceresa bubalus F.;

pp. 104—105 ©. taurina Fitch; p. 108 ©. borealis Fairm.; pp. 111—112 Sticto-

cephala inermis :F. — Hueber (1) Katalog der Heteropteren Deutschlands. —

— Hollrung (1) Pflanzenschädlinge. — Kellogg et Paine (1) p. 401 Polycte-

niden. — Kirkaldy (%) Zuckerrohr-Schädlinge; — (11) p. 123 Bibliographie

der Nabiden. — Klein (I) Reblaus. — Lindinger (4) Cocciden-Literatur

1908. — Lefroy (1) Indische Hemipteren. — Magalhaes (I) p. 1 Phloea.

— Montandon (5) p. 67 Holoptiliden. — Morrill (1) p. 11 Baumwoll-Hemipteren.

— 0estlund (1) Erscheinungsdatum der Hefte von Koch’s Pflanzenläuse. —

Oshanin (1) Katalog der paläarktischen Hemipteren, Supplement; — (2) Referat

über Kirkaldy’s Katalog 1909. — Patch (4) p. 288 C'hermes pinifoliae Fitch.;

— (5) p. 205 Colopha ulmicola Fitch.; p. 215 Tetraneura graminis; p. 219 T. ulmi

L.; p. 220 Pemphigus ulmifusus Walsh; p. 233 Schizoneura americana Ril.; p. 238

Sch. Rileyi Mon.; — (6) p. 244 Mindarus abietinus Koch; p. 246 Symydobius

oblongus Heyd. — Reuter (5) pp. 1-22 Übersicht der bisher veröffentlichten

Heteropteren-Systeme; pp. 103—106 Miriden-Systeme. — Royer (2) Ergänzungen

zu Kirkaldy’s Katalog 1909. — Sasaki (2) Schlechtendalia sinensis Bell. —

Sehumacher (2) Biologie der Asopinen. — Sule (1) pp. 1—4 sogenannte „Pseudo-

vitellus“ der Homopteren. — Vickery (1) p. 98 Aphis maidi-radieis Forbes. —

Whittaker (3) Katalog der Heteropteren von Lancashire u. Cheshire. — Wilson, H.

(1) Katalog der Aphiden-Gattungen ; — (2) Von Rafinesque beschriebene Aphiden.

— Wolff (1) p. 643 Aleurochiton aceris Geoffr.

Technik.

Sammeln: Mordwilko, Steinheil et Sule (1) Aphiden, Cocciden, Chermiden

u. Aleyrodiden. — Konservieren und Fixieren: Boring (1) Homopteren. —

Hagemann (I) p. 379 u. 399 Corixa. — Mordwilko, Steinheil et Sule (1) Aphiden,

Coceiden, Chermiden u. Aleyrodiden. — Pateh (4) p. 305 Chermes-Arten. —

Stough (1) p. 163 Pachypsylla celtidis-mannae Ril. — Sule (1) p.9 ‚‚Pseudo-

vitellus‘‘ der Homopteren. — Präparieren: Bueno (24) p. 181 Microvelia

americana Uhl. — Patch (4) p. 305 Chermes-Arten. — Stough (1) p. 162 Pachy-

psylla celtidis-mannae Ril. — Sule (1) p.9 „Pseudovitellus‘‘ der Homopteren.

— Farben: Boring (1) Homopteren. — Hagemann (I) p. 379 u. 394 Corixa.

— Stough (1) p. 163 Pachypsylla celtidis-mannae Ril. — Sule (1) p. 9 „„Pseudo-

vitellus“ der Homopteren. — Mikroskopische Untersuchung: Boring (1)

Homopteren. — Faure-Fremiet (1) Speicheldrüsen der Hydrocoren. — Gadd (1)

p- 207 Cicaden u. Tetigonia viridis L. — Grove (1) Myzus rosarum Walk. —

Hagemann (I) Corixa. — Stevens (1, 2) Ovogenese der Aphiden. — Wilson, E. B.

7*+

100 Insecta. Rhynchota für 1910.

(1, 2, 3, 4) Chromosomen der Heteropteren. — Züchtung: Girault (1) p. 89

Clinocoris lectularius L. — Hodgkiss (1) p. 85 Membraciden. — Morrill (1) p. 29

Pentatoma ligata Say. — Olsen (1) p. 39 Cosmopepla carnifex F. — Sperber (1)

Coccus cacti.

Bekämpfung von Pflanzenschädlingen.

Back (1) p. 71 Aleyrodes Howardi Quaint. — Ballou (2) Kakao-Schädling.

— Berlese (1) p. 324 Diaspis pentagona Targ. — Bethune (I) p. 64 Aphiden;

p. 64 Gossyparia spuria u. Pulvinaria innumerabilis. — Britton (1) p. 351

Aphis sorbi Kalt. — Dudgeon (1) p. 61 Sahlbergella theobromae Dist.; — (%)

p. 177 8. singularis Hagl.; — (3) Baumwollschädlinge. — Essig (4) p. 211 Aula-

caspis rosae Bouche, p. 216 Saissetia haemisphaerica Targ.; — (6) Pseudococcus

citri Risso; — (8) p. 314 id.; — (10) p. 344 Pseudococcus Bakeri n. sp. — Faber

(1) Kakao-Schädlinge. — Ferrant (1, 2). — Gibson (I) p. 12 Myzus ribis L.;

p. 14 Lygus pratensis L. — Gillette (1) Aphiden. — Guenaux (I). — Hartzell (1)

p. 572 Typhlocyba comes Say. — Hodgkiss (1) p. 90 Membraciden. — Hollrung

(1) Literaturübersicht. — Iches (2). — Johannsen (2) p. 28 San Jose-Laus; p. 29

Typhlocyba comes Say. — Kirillov (1) Gastrodes abietis. — Klein (1) p. 107 Reb-

laus. — Kefroy (1) Indische Hemipteren. — Meorrill (1) p. 67 Pentatoma

ligata Say. — Neiva (1) p. 211 Conorhinus megistus Burm. — Newstead (4)

p. 60 Dysdercus Andreae; p. 63 Cocciden. — Patch (4) p. 287 Chermes pini-

foliae Fitch. — Patch et Johannsen (1) p. 10 Lepidosaphes ulmi L.; p. 11

San Joselaus; p. 13 Blutlaus; p. 54 Lygus pratensis. — Quaintance (1) p. 11

San Joselaus. — Quaintance et Sasscer (1) pp. 9—15 Lepidosaphes ulmi L.

u. Chionaspis furfura Fitch. — Sanderson (1) p. 210 Aphiden, Tetigoniiden,

Cercopiden. — Sasaki (I) p. 285 Trioza camphorae n. sp. — Shiraki (I). —

Stebbing (1) p. 122 Chermes himalayensis Stebb. — Vasiljev (1) Adelpho-

coris lineolatus Goeze. — WViekery (1) p. 106 Aphis maidi-radicis Forbes. —

Washburn (1) p. 164 Empoasca mali Le B. — Webster (2) Empoasca mali Le B.

— Willeoeks (1) p. 132 Dactylopius perniciosus n. sp. — Wolif (1) p. 664 Aleuro-

chiton aceris Geoffr. — *** (1) p. 48 Psylla pyrisuga.

Morphologie.

Nüsslin (2) p. 74 Adelginen. — Lefroy (1) Allgemeines. — Reuter (5)

Heteropteren.

Chromosomen: Morrill, Ch. V. (1). — Stevens (1) Aphiden; — (2) id.

— Wilson, E. B. (1, 2) Syromastes u. Pyrrhocoris; — (3) Metapodius; —

(4) Nezara. — Integument : Berlese (1) p. 399 Diaspis pentagona Targ. —

Nüsslin (2) p. 74 Adelginen. — Drüsen: Bugnion et Popoff (1) Speicheldrüsen.

— Faure-Fremiet (1) ‚„‚Speicheldrüsen‘‘ der Hydrocorisen; — (2) Labiale Drüsen.

— Fullaway (2) p. 237 Speicheldrüsen von Ceroputo ambigua n. sp. — Gadd (1)

p- 207 Nebendrüsen der Cicadiden u. Tetigonia viridis L. — Hagemann (1) p. 414

Abdominale Drüsen der Corixa-Larven. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 115

Speicheldrüsen von Pyrops candelaria; p. 119 Wachsdrüsen. — Kuhlgatz (1)

p. 190 Dorsaldrüsen der Cryptoceraten-Larven; p. 210 id. Corixa-Larven; p. 197

id. Naucoris-Larven. — Reuter (5) 29 Heteropteren. — Kopf: Kershaw et

Kirkaldy (1) p. 112 Pyrops candelaria. — Nüsslin (2) Adelginen. — Stough (1)

p. 125 Pachypsylla celtidis-mannae Ril. — Reuter (5) p. 23 Heteropteren. —

Übersicht nach dem Stoff. 101

Mundwerkzeuge: Fullaway (2) p. 234 Ceroputo ambigua n. sp. — Muskulatur:

Kershaw et Kirkaldy (1) p. 118 Pyrops candelaria. — Grove (1) p.4 Myzus

rosarum Walk. — Fühler: Grove (1) p. 11 Myzus rosarum Walk. — Nüsslin (2)

p- 77 Adelginen. — Reuter (5) p. 25 Heteropteren. — Stough (1) p. 127 Pachy-

psylla celtidis-mannae Ri. — Thorax: Hagemann (I) p. 382 Corixa. —

Stough (1) p. 134 Pachypsylla celtidismannae Ril. — Reuter (5) p. 27

Heteropteren. — Beine: Bueno (4) p. 179 Microvelia americana Uhl. —

Kuhlgatz (1) p. 195 Ranatra linearis L. — Stough (1) p. 149 Pachypsylla

celtidis-mannae Ril. — Reuter (5) p. 29 Heteropteren. — Flügel: Börner (2)

Aphiden, Chermiden, Tibicen sp. — Stough (1) p. 139 Pachypsylla_ celtidis-

mannae Ri. — Reuter (5) p. 27 Heteropteren. — Zirkulation: Kershaw

et Kirkaldy (1) Pyrops candelaria. — Bespirationsorgane: Fullaway (2)

p. 238 Ceroputo ambigua n. sp. — Grove (1) p. 12 Myzus rosarum Walk.

— Hagemann (Il) p. 382 Coriza.. — Kershaw et Kirkaldy (I) p. 118

Pyrops candelaria. — Nüsslin (2) p. 78 Adelginen. — Malpigische Gefäße:

Pantel et Licent (1) Homopteren. — Darm: Fullaway (2) p. 236 Ceroputo

ambigua n. sp. — Gadd (1) p. 205 Cicadiden; p. 210 Tetigonia viridis L. — Grassi (1)

Phylloxerinen. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 114 Pyrops candelaria. — Pantel

et Licent (1) Homopteren. — Nüsslin (4) p. 443 Mindarus. — Abdomen:

Berlese (1) p. 307 Diaspis pentagona Targ. — Grove (1) p. 6 Myzus rosarum Walk.

— Hagemann (1) p. 416 Corixa. — Mae Gillavry (2) p. XLI Aneurus laevis F.

(Kopulation). — Nüsslin (2) p. 78 Adelginen. — Pierantoni (1, 2, 3, 4). — Reuter

(5) p- 31 Heteropteren. — Stough (1) p. 151 Pachypsylla celtidis-mannae Ril. —

Sule (1) Mycetom (Pseudovitellus) der Homopteren. — @eschlechtsorgane:

Grassi (2) Ovarien der Phylloxerinen. — Fullaway (2) p. 238 Ceroputo ambigua

n. sp. — Godd (1) p. 210 Tetigonia viridis L. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. &16

Pyrops condelaria. — Mac Gillavry (2) p. XLI Aneurus laevis F. — Magalhaes (I)

p. 15 Phloea. — Nüsslin (2) p. 78 Adelginen; — (4) p. 445 Mindarus. —

Sasaki (1) p. 279 Trioza camphorae n. sp. — Stough (1) p. 152 Pachypsylla

celtidis-mannae Bil. — Beuter (5) p. 31 Heteropteren. — Nervenystem:

Fullaway (2) p. 237 Ceroputo ambigua n.sp. — Grove (I) p.9 Myzus rosarum

Walk. — Hagemann (I) p. 405 Corixa. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 118 Pyrops

candelaria. — Sinnesorgane: Baunacke (1) Nepa cinerea L.: Statische Organe.

— Grove (1) p. 11 Myzus rosarum Walk. — Hagemann (1) p. 394 Coriza. —

Reuter (5) p. 24 Heteropteren-Auge. — Teratologie: Matausch (1) Telia bima-

culata F. u. Telamona ampelopsidis Harr., ohne äußere Genitalien; — (2) p. 168

Telia bimaculata F. — Nüsslin (4) p. 413 Mindarus obliquus Chol. —

Rückbildung: Bergevin (3) p. 28 Flügelmuskeln bei Prionotylus brevicornis Muls.

et R. — Kuhlgatz (1) p. 192 Dorsaldrüsen der Cryptoceraten-Larven; — (2)

p- 83 Beine der Lecanium. — Nüsslin (4) p. 404 u. 441 Wachsdrüsen beim Über-

gang von Nymphe zu Imago, bei Mindarus; p. 413 rückgebildete Nymphen. —

Reduktion: Grassi (1) Flügel u. Darm bei den Phylloxerinen. — Ei und Larven:

[E. = Ei, L. = Larven]: Back (I) p. 68—69 Aleyrodes Howardi Quaint.

[E., L.]. — Bergevin (4) p. 95 Pediopsis nana H.-S. [L.]. — Börner (I) p. 556

Coceiden [L.]. — Brocher (2) p. 180 Limnobates [E.]. — Bueno (4) p. 182 Micro-

velia americana Uhl. [E.]; p. 182—185 id. [L.]. — Chittenden (1) p. 478 Lygus

pratensis [L.]. — Dudgeon (1) p. 59 Helopeltis Schoutedeni Reut. [L.]; p. 61 Sahl-

bergella theobromae Dist. [L.]. — Enderlein (I) p. 144 Gonanoplicus guttulatus

102 Inseeta. Rhynchota für 1910.

n. sp. [L.]. — Essig (1) p. 220 Ripersia Smithi n. sp. [E.]; — (5) p. 224 Aphis

gossypii Glov. [L.]; — (8) p. 300 Pseudococeus citri Risso [E.]; — (9) p. 336 Aphis

hederae Kalt. [L.]; p. 338 Macrosiphum pisi Kalt. [L.]; — (10) p. 342 Pseudo-

coccus Bakeri n. sp. [E.]. — Faber (1) p. 292 Helopeltis Antonit Sign. u. theivora

Waterh. [E., L.]; p. 301 Disphynctus sp. [E.]; p- 302 Phytocoride [E.]; p. 310

Bathycoelia thalassina H.-S. [L.]., — Green (I) p. 201 Stictococcus dimorphus

Newst. [L.]. — Hagemann (I) p. 380 Corixa [L.]. — Hambleton (1) p. 273

Corizus lateralis Say [E., L.]. — Hartzell (1) p. 571 Typhlocyba comes Say [E., L.]

— Heidemann (1) p. 46 Eurychilopterella luridula Reut. [L.]; — (2) p. 193—194

Leptoglossus magnoliae n. sp. [L.]; p- 194 id. [E.]. — Herrick (2) p. 23 Aspidiotus

mori n. sp. [E.]. — Hodgkiss (1) p. 84 Membraciden [E., L.]; p. 93 Ceresa bubalus

F. [E.]; pp: 93—96 id. [L.]; p. 101 ©. taurina Fitch [E.]; p-. 101—103 id. [L.];

p. 106 C©. borealis Fairm. [E.]; pp. 106—107 id. [L.]; p. 108 Stictocephala inermis

F. [E.]; pp- 109—110 id. [L.]. — Horvath (3) p. 62 Copium floricola n. sp. [L.]. —

Jeannel (1) p. 284 Phyllomorpha laciniata Vill. [E.]; p. 285 id. [L.]. — Karasek (I)

p. 52 Dysdercus [E.]. — Kershaw (1) p. 71 Brachyplatys subaeneus Westw. [E.,

L.]; p. 71 Coptosoma cribraria F. [E., L.]. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 107—108

Pyrops candelaria [E., L.]. — Kirkaldy (2) p. 104 Cazıra vegata Kirk. [L.]; —

(8) p. 568 Nysius myrsines n.sp. [L.]; p. 573 N. oceanides n.sp. [L.]; p. 583

Nesodynes koae Kirk. [L.]; p. 584 N. pipturi Kirk. [L.]; p. 589 N. cyathodis n. sp.;

p. 590 N. argyroxiphüi Kirk. [L.]. — Kuhlgatz (1) p. 181 Mesovelia furcata Muls.

et R. [L.]; p. 187 Gerris [L.]; p. 194 Nepa cinerea L., p. 195 Ranatra linearis L.,

p. 199 Naucoris cimicoides L., p. 210 Corixa [L.]. Kuhns (I) p. 93 Siphanta

acuta [E.]. — Leiroy (1) Indische Hemipteren. — Lindinger (1) p. 438 @ymnaspis

aberemoae n. sp. [L.]. — Lyle (1) p. 3 Cicadetta montana [L.]. — Magalhaes (1)

p. 16 Phloea paradoxa Burm. [E.]; p. 20 id. [L.]. — Matausch (1) p. 166 Sticto-

cephala lutea Wk. [L.]; p- 167 id. [E.]; — (4) p- 262 Entylia sinuata [L.]. —

Morrill (1) p. 35—39 Pentatoma ligata Say [E., L.]; p. 72 P. Sayı St. [L.]; p. 74

Euschistus servus Say [L.]; p- 78 Nezara hilaris Say [L.]; p. 83 N. viridula L.

[L.]; p. 88 Leptoglossus phyllopus L.; p. 94 Largus succinctus H.-Sch. — Nasonov

(1) p. 48 Kermes quercus L. [L.]. — Neiva (1) p. 208 Conorhinus megistus Burm.

[E.]; p. 209 id. [L.]. — Newstead et Willcocks (1) pp. 139—140 Dactylopius perni-

ciosus n. sp. [E., L.]. — Olsen (1) p. 39 Cosmopepla carnifex F. [L.]; p. 40 id. [L.].

— Patch (4) p. 285 C'hermes pinifoliae Fitch, p. 291 Ch. abietis Chol., p. 294

Ch. lariciatus Patch, p. 298 C'h. consolidatus Patch, p. 299 Ch. floccus Patch

[L.]. — Reuter (5) p. 35 Heteropteren. — Rübsaamen (1) p.9 u. 18 Chermiden

[L.]. — Sasaki (1) p. 280 Trioza camphorae n. sp. [E., L.]. — Schumacher (3)

p. 379 Asopinen [E., L.]; p. 434 Picromerus bidens L. [E., L.]; p. 437 Arma custos F.

[L.]. — Sule (1) p. 4, Fußnote, Philaenus lineatus L. [L.]. — Stebbing (1) p. 100

Chermes himalayensis Stebb. [E., L.]. — Webster (1) p. 265 Empoasca obtusa

Walsh, p. 267, E. mali Le B., p. 267 Typhlocyba rosae L. [L.]. — Wolff (1) p. 651

Aleurochiton aceris L. — Xambeu (1) p. 34 Coptosoma globus F., p. 35 Grapho-

soma lineatum L., p. 36 Centrocoris variegatus Kol., p. 37 Cixius nervosus L. [E.].

— *+* (1) p.47 Psylla pyrisuga [E., L.]. — Dimorphismus: Bergevin (3)

Prionotylus brevicornis Muls. et K. — Davis (1) Chaitophorus negundinis 'Thos.

u. aceris L. — Distant (15). — Essig (3) p. 147 Pseudococcus agrifoliae Ess. —

Kirkaldy (5) p. 62 Sagrina vittata Spin.; — (8). — Kuhlgatz (1) p. 182 u. folg.

Gerriden. — Mac 6illavry (2) p. XXXVI Philaenus spumarius L. — Nüsslin (4)

Übersicht nach dem Stoff. 105

p. 412 Zwischenformen zwischen Fundatrix u. Fliege bei Mindarus obliquus

Chol. — Poppius (4) p. 59 Reduviolus hottentota Reut.; — (2) p. 235 Ceratocombus

corticalis Reut. — Sexueller Dimorphismus: Börner (I) p.560 Diaspinen

— Butler (1) p. 14 C'hloriona dorsata Edw. — Kulilgatz (2) p. 86 Lecanium sp.

— Mac Gillavry (2) p. XL Systellonotus triguttatus L.; p. XLI Aneurus laevis F. —

Variieren: Bergevin (1) Graphosoma lineatum L. u. semipunctatum F.; Mu-

tation; — (2) p. 308 T’herapha nigridorsum Put. — Essig (7) Trifidaphis radicicola

Ess. — Kuhlgatz (1) p. 202 Corixza Sahlbergi Fieb. — Muir (1) p. 9 Perkinsiella

vastatrix Bredd. — Nüsslin (2) Adelginen; — (4) p. 410 Mindarus abietinus Koch

u. obliquus Chol.

Physiologie.

Brocher (1). — Ericson (1) Psychische Eigenschaften.

Symbiose: Pierantoni (1, %, 3,5) Homopteren u. Pilze. — Sule (1) Homopteren

u. Pilze. — Stoffwechsel und Sekretion: Back (1) p. 68 Aleyrodes Howardi

Quaint., Honigtau. — Bergevin (4) p. 96 Pediopsis nana H.-Sch., Honigtau. —

Berlese (1) p. 300 Diaspis pentagona Targ. — Dimroth (1) Farbstoff des Kermes.

— Fiebrig (1) p. 360 Fulgoride: Eiablage. — Faur&-Fremiet (1) p. 174 Hydro-

eorisen, „Speicheldrüsen“. — Gadd (1) p. 207 Tetigonia viridis L., Magen. —

Hughes (1) Dactylopius perniciosus Newst. et Wille, Wachs u. Honigtau. —

Kershaw et Kirkaldy (1) p. 110 Pyrops candelaria, Wachs. — Magalhaes (1)

p. 8 Phloea, Analsekretion. — Pantel et Licent (1) Homopteren. — Patch (6)

p. 243 Mindarus abietinus Koch, Honigtau. — Willcocks (1) p. 126 Dactylopius

‘perniciosus Newst. et Wille. — Wolff (1) p. 654 Aleurochiton aceris Geoffr.,

Wachssekretion. — @ewicht: Gadeau de Kerville (1). — Atmung: Fullaway (1)

p. 238 Ceroputo ambigua n.sp. — Hagemann (I) p. 380 Corixa-Larven; p. 385

Imago. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 118 Pyrops candelaria. — Zirkulation:

Kershaw et Kirkaldy (1) p. 116 Pyrops candelaria. — Tonerzeugung: D Davis, W.

(2) p- 457 Cicada pruinosa Say. — Hagemann (1) p. 420 Coriza. — Lüderwaldt (1)

p: 180 Queseda gigas Ol. — Riede (1) p. 401 Tropicoris rufipes &. — Bewegungen:

Bueno (4) p. 178 Microvelia americana Uhl. — Grove (1) p.5 Myzus rosarum

Walk. — Lüderwaldt (1) p. 180 Queseda gigas Ol. — Reuter (4) p. 81 Aspidacanthus

myrmecoides Reut. — Riede (I) p. 401 Tropicoris rufipes $. — Schumacher (3)

p- 377 Asopinen. — Sinnesorgane: Hagemann (1) p. 394 Coriza. — Baunacke (1)

Nepa cinerea L. — VomLicht angelockt: Bueno et Engelhardt (1) p. 151

Corixa sp. — Distant (15) p. 195 Acanthaspis maculata Dist.; p. 278 T’haumasto-

miris piceatus n. Sp.; p. 329 Belostoma Deyrollei Vuill.; p. 346 Micronecta lucina

n.sp.; p. 348 M. minthe n.sp.; dione n. sp. — Poppius (2) p. 234 Ceratocombus

Enderleini n. sp. — Reuter (4) p. 84 Atomophora. — Nachttiere: Neiva (1) p. 207

Conorhinus megistus Burm. — Wickham (1) p. 28 Emesa long longipes. — Giftigkeit:

Bugnion et Popoff (1) p. 447 Rhinocoris iracundus; p. 448 Reduvius personatus.

— Schumacher (3) p. 381 Picromerus bidens L. — Einfluß der Temperatur:

Bergevin (1) p. 44 Graphosoma; — (2) p. 310 T’herapha nigridorsum Put. — Essig (8)

p- 310 Pseudococeus citri Risso, Eklosion. — Faber (1) p. 295 Helopeltis. — Lüder-

waldt (1) Queseda gigas Ol. — Neiva (1) p. 208 Conorhinus megistus Burm., Aus-

schlüpfen. — Meorrill (1) p. 38 Pentatoma ligata Say, Ei, Imago. — Nüsslin (5)

p- 67 Dreyfusia. — Webster (1) p. 76 Toxoptera graminum Rond. — Einfluß

äußerer Lebensbedingungen: Bergevin (1) Graphosoma; — (2%) p- 310 Therapha

104 Insecta. Rhynchota für 1910.

nigridorsum Put.; — (3) p. 26 Priomotylus brevicornis Muls. et R., brachypter.

— Berlese (1) p. 317 Diaspis pentagona Targ. — Cholodkovsky (3) Adelginen.

— Essig (8) p. 313 Pseudococeus citri Risso. — Faber (1) Kakao-Schädlinge. —

Girault (1) Olinocoris betularius L., Nahrungsmenge. — Grassi (1) Phylloxerinen:

Nahrung. — Morrill (1) p. 48 Pentatoma ligata Say. — Neiva (1) p. 208 Cono-

rhinus megistus Burm., Temperatur u. Ausschlüpfen. — Reuter (4) p. 77

Myrmus calcaratus Reut. — Semichon (1) Aphiden. — Severin, H. H.P. (1) San

Jose-Laus. — Wechselwirkung zwischen Tieren und Pflanzen (Cecidien):

Bayer (1, 2). — Cholodkovsky (2) Adelginen. — Cockerell (6) p. 180 Pachypsylla

Rohweri n. sp. auf Celtis reticulata. — Cook (1). — Davis (5) Aphiden. — Doecters

(1,2) Javan. Cecidien. — Faber (1) p. 311 Aphiden; p. 312 Chermiden, auf Kakao.

— Ferrant (1, 2) Luxemburg. — Gillette (2) p. 403 Aphis sorbi Kalt. auf Pyrus.

— 6revillius et Niessen (1, 2). — Henrich (1) Aphiden. — Horvath (3) p. 61

Copium floricola n. sp.; — (6) p. 13 Nysius euphorbiae n. sp. auf Euphorbia.

— Houard (I) Asterolecanium. — Kieffer et Jorgensen (1). — Keller (1) Schweiz.

— Klein (1) Reblaus. — Lefroy (1) Indische Hemipteren. — Lindinger (3) p. 438

Aspidiotus hederae Vall. auf Loranthus venetus. — Nüsslin (1) p. 671 Adelginen;

— (2) p- 73 Adelginen. — Patch (4) pp. 281 u. 284 Chermes pinifoliae Fitch;

p- 290 Ch. abietis Chol.; p.294 Ch. lariciatus Patch; p. 297 Ch. consolidatus Patch;

p- 299 Ch. floccus Patch; p. 301 Ch. similis Gill.; — (5) p. 198 Colopha ulmicola

Fitch; p. 210 Tetraneura graminis; p. 217 T. ulmisacculi n. sp.; p. 221 Pemphigus

ulmifusus Walsh; p. 223 Schizoneura americana Ril.; — (6) p. 242 Mindarus

abietimus Koch auf Abies balsamea u. Picea canadensis. — Rübsaamen (I) p. 9

Chermide auf Beilschmidia gabunensis; p. 11 Coceide auf Berlinia bracteosa; p. 18

Chermide auf Ficus sp.; p.23 Psylla Winkleri n.sp. auf Loranthus verrucosus

v. Winkleri. — Sasaki (I) p. 283 Trioza camphorae n. sp. auf Camphora; — (2)

p- 243 Schlechtendalia sinensis Bell auf Rhus semialata var. Osbecki. —

Schmidt, H. (1) p.200 Aphide auf Phragmites communis; — (%) Aphis brassicaeL.

auf Brassica oleracea u. Raphanus raphanistrum. — Stebbing (1) C'hermes hima-

layensis Stebb. auf Picea morinda. — Stebbins (1) Massachusetts. — Willeocks (1)

p- 128 Dactylopius perniciosus Newst. et Wille. auf Albizzia lebbek. —

Temperament: Bergevin (4) p.97 Pediopsis nana H.-Sch., Larve u. Imago.

— Davis, J. (1) p. 195 Drepanaphis minutus n. sp. — Essig (8) p. 313 Pseudo-

coccus citri Risso. — Fullaway (1) p. 224 C’eroputo ambigua n. sp. — Hagemann (I)

Corixa. — Hartzell (1) p. 571 Typhlocyba comes Say. — Heidemann (2) p. 193

Leptoglossus magnoliae n. sp. — Jeannel (1) p. 286 Phyllomorpha laciniata Vill.

— Kershaw (1) p. 69 Brachyplatys subaeneus Westw. — Lüderwaldt (1) Queseda

gigas Ol. — Neiva (1) p. 208 Conorhinus megistus Burm. — Olsen (1) p. 41 Podisus

maculiventris Say. — Schumacher (2) p. 264 u. 380 Asopinen. — Wickham (1)

p- 28 Emesa longipes.

Fortpflanzung und Entwicklung.

Ovo- und Spermatogenese: Böring (1) Membraciden, Tetigoniiden, Cerco-

piden u. Fulgoriden. — Morrill, Ch. (1). — Steven (1, 2) Aphiden. — Wilson, E. B.

(1, 2) Syromastes u. Pyrrhocoris; — (3) Metapodius; — (4) Nezara. — Partheno-

genese: Nüsslin (1) p. 665 Adelginen; — (5) p. 28 Adelginen. — Paarung:

Bueno (4) p. 180 Microvelia americana Uhl. — Girault (2) Clinocoris lectu-

larius L. — Jeannel (1) p. 283 Phyllomorpha laciniata Vill. — Mac Gillavry (2)

Übersicht nach dem Stoft. 105

p. XLI Aneurus laevis F. — Magalhaes (1) p. 16 Phloea. — Martelli (2)

Icerya Purchasi Mask. — Meorrill (1) p. 43 Pentatoma ligata Say. —

Neiva (1) p. 210 Conorhinus megistus Burm. — Olsen (1) p. 42 Podisus

maculiventris Say. — Riede (1) Tropicoris rufipes. — Schumacher (3) p. 434

Picromerus bidens L. — Sule (1) p. 4, Fussnote, Philaenus lineatus L.. —

Whittaker (1) p. 17 Notonecta glauca L. — Wickham (1) p. 29 Emesa longipes.

— KXambeu (1) p. 34 Coptosoma globus F.; p. 35 @raphosoma lineatum L.; p. 36

Oentrocoris variegatus Kol.; p. 37 Cizxius nervosus L. — Eiablage: Back (I)

p: 67 Aleyrodes Howardi Quaint. — Bueno (4) p. 180 Microvelia americana Uhl.

— Chittenden et Marsh (1) p. 478 Lygus pratensis L. — Faber (1) p. 292 Helopelt:s.

— Hambleton (1) p. 273 Corizus lateralis Say. — Hodgkiss (1) p. 96 Ceresa bubalus

F.; p. 104 ©. taurina Fitch; p. 107 ©. borealis Fairm.; p. 110 Stictocephala inermis

F. — Matausch (2) p. 167 Stictocephala lutea Walk. — Morrill (1) p. 43 Pentatoma

ligata Say. — Neiva (I) p. 208 Conorhinus megistus Burm. — Sasaki (I) p. 280

Trioza camphora n. sp. — Schumacher (3) p. 434 Picromerus bidens L. — Sule (1)

p. 4, Fussnote, Philaenus lineatus L. — Wickham (1) p.29 Emesa longipes. —

Xambeu (2) p. 34 Coptosoma globus F.; p. 36 Centrocoris variegatus Kol.; p. 57

Cixius nervosus L. — Fertilität: Hodgkiss (1) p. 86 Stictocephala inermis (212

— 252). — Kershaw et Kirkaldy ldy (1) p- 107 Pyrops candelaria (80). — Matausch (2)

p- 164 Ceresa diceros (32). — Merrill (1) p. 30 Pentatoma ligata Say (122—332);

p. 76 Euschistus servus Say (162); p. 85 T’hyanta custator F. (125); p. 96 Dysdercus

suturellus H.-S. (116). — Nüsslin (4) p. 412 Mindarus abietinus Koch (30) u.

M. obliquus Chol. (4). — Olsen (1) p. 40 Podisus maculiventris Say (168). —

Patch (5) p. 283 C'hermes pinifoliae Fitch (100); p. 295 Ch. lariciatus Patch (50

— 75); p. 297 Ch. consolidatus Patch (9—12). — Quaintance et Sasscer (1) p. 7

Chionaspis furfura Fitch (575). — Schumacher (3) p. 379 Picromerus bidens L.

(300); Apateticus maculiventris Say (491). — Wickham (I) p. 29 Emesa longipes

(29). — Willcocks (1) p. 123 Dactylopius perniciosus Newst. et Wille. (2000). —

Xambeu (1) p. 36 C’entrocoris varigatus Kol. (40). — Ausschlüpfen: Hodgkiss (1)

p- 88 Membraciden. — Jeannel (1) p. 285 Phyllomorpha laciniata Vill. — Karasek

(1) p. 52 Dysdercus. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 108 Pyrops candelaria. —

Magalhaes (1) p. Phloea. — Morrill (1) p. 38 Pentatoma ligata Say. — Washburn (1)

p- 163 Empoasca mali Le B. — Häutung: Bueno (4) p. 185 Microvelia americana

Uhl. — Fullaway (2) p. 225 Ceroputo ambigua n. sp. — Girault (2) p. 91 Clino-

coris lectularius L. — Heidemann (2) p. 193 Leptoglossus magnoliae n.sp. —

Kershaw et Kirkaldy (1) p. 110 Pyrops candelaria. — Lambertie (5). — Ma-

galhaes (1) p. 23 Phloea. — Olsen (1) p. 40 Cosmopepla carnifex F. — Meorrill (1)

p- 41 Pentatoma ligata Say. — Phylogenie: Bergevin (3) p. 28 Prionotylus

brevicornis Muls. et R. (Brachypterisme). — Börner (1) p. 560 Aulacaspis rosae

Bouche; — (2) p. 16 Aphiden u. Chermiden. — Cockerell (1) p. 75 Ceroplastes.

— Distant (15). — Hambleton (1) p. 275 Corizus lateralis Say; — (2) p- 145

Corizus. — Kirkaldy (2) p. 103 Auchenorhyncha; — (6) p. 83 Homopteren; —

(9). — Nüsslin (5) p. 22 Adelginen. — Reuter (5) pp. 37—55; pp. 98—102, 135

—140 Miriden. — Metamorphose, Lobenszyklus u, Migration: Back (1)

pp. 67—69 Aleyrodes Howardi Quaint. — Britton (1) Aphis, sorbi Kalt. —

Ballon (2) Kakao-Schädlinge. — Börner (1) Aulacaspis rosae Bouche. — Bueno (4)

p- 182 Microvelia americana Uhl. — Chittenden et Marsh (1) p. 478 Lygus pra-

tensis L. — Davis, W. T. (1) Cicada septemdecim. — Dudgeon (1) p. 59 Helopeltis

106 Insecta. Rbynchota für 1910.

Schoutedeni Reut.; p. 61 Sahlbergella theobroma Hist. — Faber (1) p. 292 Helo-

peltis; p. 301 Disphynctus sp.; p. 302 Phytocoride; p. 308 Sahlbergella singularis

Hagl. — Fullaway (2) p. 224 Ceroputo ambigua n.sp. — Hagemann (I) p. 419

Corixa. — Hartzell (1) p. 571 Typhlocyba comes Say. — Hambleton (1) Corizus

lateralis Say. — Heidemann (2) p. 193 Leptoglossus magnoliae n. sp. — Henrich (1)

p. 8—12 Aphiden. — Hodgkiss (1) p. 86 Membraciden. — Jeannel (1) Phyllo-

morpha laciniata Vill. — Kershaw (1) p. 71 Brachyplatys subaeneus Westw.;

p: 71 Coptosoma cribrarium F. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 107 Pyrops candelaria.

— Lefroy (1) Indische Insekten. — Mac Mahon (1) Sena quaerula. — Magalhaes (1)

p- 12 Phloea. — Morgan et Suhull (1) Hormophis hamamilidis. — Mortill (1)

p- 29 Pentatoma ligata Say; p. 76 Euschistus servus Say; p. 86 Thyanta custator F.

— Nasonoy (1) Kermes quercus. — Neiva (I) p. 208 Conorhinus megistus Burm.

— Nüsslin (1) p. 258 Adelginen; — (2) p. 88 Adelginen ; — (3) Prociphilus bumeliae

u. nidificus; — (4) Mindarus. — Olsen (1) p. 40 Cosmopepla carnifex F.; p. 41

Podisus maculiventris Say. — Patch (4) p. 283 Ohermes pinifoliae Fitch; p. 294

Ch. lariciatus Patch; p. 298 Ch. consolidatus Patch; p. 300 Ch. floccosus Patch;

— (5) p. 198 Colopha ulmicola Fitch; p. 210 Tetraneura praminis; p. 217 T. ulmi-

sacculi n.sp.; p. 228 Schizoneura americana Ril.; p. 237 Sch. Rileyi Thom. —

Quaintance (I) p.3 San Jose-Laus. — Quaintance et Sasscer (1) p.2 Lepido-

saphes ulmi L.; p. 7 Ohionaspis furfura Fitch. — Sasaki (1) p. 280 T'rioza camphorae

n. sp. — Schumacher (3) p. 264 Asopinen; p. 434—435 Picromerus bidens L. —

Stebbing (1) p. 100 Chermes himalayensis Stebb. — Sule (1) p. 4, Fußnote, Philaenus

lineatus L. — Washburn (1) p. 162 EZmpoasca mali Le B. — Webster, R. L. (1)

p- 265 Empoasca obtusa Walsh; p.266 T. mali Le B. — Willcocks (1) p. 123

Dactylopius perniciosus Newst. et Wille. — Wolff (1) Aleurochiton aceris Geoffr.

— *** (1) p.47 Psylla pyrisuga.

Biologie.

Back (1) p. 66 Aleyrodes Howardi Quaint. — Baer (Il) Pineus pini. —

Ballou (2?) Kakao-Schädlinge. — Baunacke (I) Nepa cinerea L. — Bergevin (1)

Graphosoma; — (%) Therapha nigridorsum Put.; — (6) Pediopsis nana H.-Sch.

— Berlese (1) p. 300 Diaspis pentagona 'Targ. — Börner (1) Aulacaspıs rosae

Bouche. — Brick (1, 2). — Britton (1) p. 345 Aphis sorbi Kalt. — Bugnion et

Popoff (1) p. 447 Rhinocoris iracundus. — Chittenden et Marsh (1) Lygus pra-

tensis L. — Cholodkovsky (3) Adelginen. — Davis, W. (1) Cicada septemdecim;

— (2) Cicada pruinosa Say. — Dudgeon (1) p. 59 Helopeltis Schoutedeni Reut.;

p- 60 Sahlbergella theobromae Dist. — Eckstein (1). — Essig (4) p. 221 Ripersia

Smithi n. sp.; — (8) p. 303 Pseudococeus cittri Risso. — Faber (I) p. 272 Helopel:s;

p- 301 Disphynctus sp.; p. 302 Phytocoride; p. 308 Sahlbergella singularıs Hagl.

— Ferrant (1,2) Schädlinge. — Fiebrig (1) p. 360 Fulgoride. — Fullaway (2) p. 223

Ceroputo ambigua n. sp. — Grassi (1, 2) Phylloxerinen. — Girault (2) Clinocoris

lectularius L. — Hagemann (I) Corixa. — Hambleton (1) Corizus lateralis Say.

— Hartzell (1) p. 571 Typhlocyba comes Say. — Heidemann (1) p. 46 Eurychi-

lopterella luridula Beut.; — (2) p. 193 Leptoglossus magnoliae n. sp. — Henrich (1)

p- 8 Aphiden; — (2) Phyllaphis fagi L. — Hodgkiss (1) Membraciden. — Jacobi (2)

p. 101 Coelodietya Sjöstedti n.sp. — Jeannel (1) Phyllomorpha laciniata Vill.

— Kershaw (1) p. 69 Brachyplatys subaeneus Westw.; p. 71 Coptosoma cribraria F.

— Kershaw et Kirkaldy (1) p. 106 Pyrops candelaria. — Kinnear (1) Reduviolus

Übersicht nach dem Stoff. 107

capsiformis. — Klein (1) p. 105 Reblaus. — Kuhlgatz (I) p. 208 Coriza; —

(2) p- 84 Gerriden; p. 85 Lecanium sp.; p. 86 Pulvinaria sp.; p. 87 Mytilaspis sp.

— Lefroy (1) Indische Insekten. — Lindinger (3) p. 371 Cocciden. — Lüderwaldt (1)

p. 180 Quesada gigas Ol. — Lüstner (1) Diaspis piri Boisd. — Mac Mahon (I)

Sena quaerula.. — Magalhaes (1) Phloea. — Matausch (2) p. 164 Ceresa

diceros; p. 166 Stictocephala lutea Walk. ; — (4) p. 261 Entylia sinuata. — Meissner

(1) Pyrrhocoris apterus L. — Marchal (3) Adelginen. — Morgan et Shull (1) Hor-

maphis hamamelidis Shim. — Nasonov (1) Kermes quercus. — Neiva (1) p. 207

Conorhinus megistus Burm. — Nüsslin (1) p. 658 Adelginen; — (2) p. 88 Adelginen;

— (3) Mindarus bumeliae; — (4) Mindarus abietinus Koch u. obliquus Chol.;

— (5) Adelginen. — Olsen (I) p. 40 Cosmopepla carnifex F.; p. 41 Podisus maculi-

ventris Say. — Patch (4) p. 281 Chermes pinifoliae Fitch; p. 294 Ch. lariciatus

Patch; p. 297 Ch. consolidatus Patch; p. 300 Ch. floccus Patch; — (5) p. 198

Colopha ulmicola Fitch; p. 210 Tetraneura graminis; p. 217 T. ulmisacculi n. sp.;

p. 223 Schizoneura americana Ril.; p. 237 Sch. Rileyi Thom. — Patch et Jo-

hannsen (1) p. 9 Lepidosaphes ulmi; p. 10 Aspidiotus perniciosus; p. 12 Schizo-

neura lanigera; p. 16 Aphis pomi Geer; p. 17 A. pyri Boyer; p. 53 Lygus pa-

tensis L. — Pierantoni (1, 2, 3, 4, 5) Symbiose mit Pize. — Quaintance (1) p. 3

San Jose-Laus. — Quaintance et Sasscer (1) p.2 Lepidosaphes ulmi L.; p.7

Chionaspis furfura Fitch. — Schumacher (3) p. 264, Fußnote, Thryeocoriden;

p- 265, Fußnote Solenostethium liligerum Th.; p. 264 Cimiciden; p. 377 Asopinen;

p- 380 Pinthaeus sanguinipes F.; p. 434 Picromerus bidens L.; p. 436 Arma custos

F. — Sasaki (2) Schlechtendalia sinensis Bell; — (I) p. 280 Trioza camphorae

n. sp. — Stebbing (1) Chermes himalayensis Stebb.; — (2) Tachardia lacca.

— Sule (1) Symbiose mit Pilze; — p. 4, Fußnote, Philaenus lineatus L.

— Ussing (2) Aphelocheirus Montandoni Horv. — Vickery (1) p. 97 Aphis maidı-

radicis Forbes; p. 113 A. Middletoni Thom. — Washburn (1) p. 162 Empoasca

mali Le B. — Webster ‚R. (1) p. 265 Empoasca obtusa Walsh. ; p. 266 E. mali Le B.;

— (2) Empoasca mali Le B. — Webster, F. (I) p. 73 Toxoptera graminum Bond.

— Wickham (1) Emesa longipes. — Willcocks (1) p. 123 Dactylopius perniciosus

Newst. et Wille. — Wolff (1) Aleurochiton aceris Geoffr. — Xambeu (2) p. 34

Coptosoma globus F.; p. 35 Graphosoma lineatum L.; p. 36 Centrocoris variegatus

Kol.; p. 37 Cixius nervosus L. — *** (1) p. 47 Psylla pyrisuga.

Mutterpflege: Jeannel (I) Phyllomorpha laciniata Vill. — Magalhaes (1)

Phloea.

Vorkommen dem Ort nach.

Auf Pflanzen: [B. = an Blättern, Knospen und Stengeln; Bl. = an Blüten;

Fr. = an Früchten; Zw. = an Zweigen; R. = an und unter Rinde; W. = an

Wurzeln]: Back (1) p. 70 Aleyrodes Howardi Quaint. auf Citrus, Guava, Mango.

— Ballou (2) Kakao-Schädlinge. — Banks (1) p. 326 Zelus audazx n. sp., in Zedern.

— Barber (1) p. 37 Stenomacra marginella H.-Sch. auf Asparagus; — (2) Coceiden.

— Bayer (1, 2) Cecidien. — Bergevin (1) p. 45 Graphosoma lineatum L. auf Foeni-

culum, Thapsia, Ridolphia, Ferula (Bl.); p. 45 Gr. semipunctatum F. f. pallidum n.

auf Ridolphia segetum; f. melanicum u. auf Ferula communis. — (2) p. 310 Therapha

nigridorsum Put. auf Andryola floccosa u. Artemisia campestris; — (4) p- 97

Pediopsis nana H.-Sch. auf Carlina involucrata (B.). — Bergevin et Thery (1)

Solenostethium lynceum Fieb. auf Orataegus u. Quercus; Ancyrosoma albolineatum

108 Insecta. Rhynchota für 1910,

F. auf Umbellaceen; Sciocoris Leprieuri Muls. et R. (R.); Palomena angulata Put.

auf Quercus. — Berlese (1) p. 314 Diaspis pentagona Targ. — Borcea (1) Aphiden.

— Bourgeois (1) p: 155 Psacasta exanthematica Scop. auf Echium vulgare (Fr.).

— Brick (1, 2). — Britton (1). — Bueno (2) p. 25 Brochymena quadripustulata F.

(R.); p. 26 Aradus similis Say (R.); p. 28 Kleidocerys geminatus Say auf Betula.

— Bueno et Engelhardt (1) p. 148 Dendrocoris fruticicola Bergr. auf Quercus;

Banasa Packardi St. auf (Zw.); p. 149 Orsilochus guttatus auf Quercus;

Chariesterus antennator F. (R.); Acanthocerus galeator F. auf Pinus (R.); p. 150

Neuroctenus elongatus Osb. auf Pinus (R.). — Butler (4) Cicadula cyanae Boh.

auf Potamogeton natans (B.). — Chittenden (1) p. 478 Lygus pratensis L. auf

Brassica campestris. — Cholodkovsky (1) Aphiden; — (2) Adelginen. — Cockerell

(2) p. 171 Aleyrodes ursorum n.sp. auf Arctostaphylos uva-ursi; — (3) p-. 370

Aleyrodes ambrosiae n. sp. auf Ambrosia artemisaefolia; — (5) p. 481 Aulacaspis

rosae Bouche auf Rubus; Pulvinaria innumerabilis Rathv. auf Acer; — (6) p. 180

Pachypsylla Rohweri n.sp. auf Celtis reticulata. — Cockerell et Falk (I) p. 47

Targionia helianthi Parr. auf Artemisia dracunculoides; Diaspis zamiae Morg.

auf C’ycas. — Cockerell et Robbins (1) p. 104 Aspidiotus arctostaphyli n. sp. auf

Arctostaphylos viscida; p. 105 Chionaspis Sasceri n. sp. auf Citrus. — Connold (1)

Cecidien. — Cook (1) Cecidien. — Davidson (1) Aphiden. — Davis, J. (2) p. 195

Drepanaphis minutus n. sp. auf Acer saccharum et nigra (B.); p. 198 Callipterus

caryoefoliae n. sp. auf Carya (B.); — (3) Rhopalosiphum nymphaeae L. auf Sa-

gittaria, Lemna, Philotria canadense, Calla, ete.; — (5) Aphiden. — Davis, W. (1)

p. 259 Cicada septendecim auf Betula, Quercus, Populus grandidentata (B.); —

(2) p-. 457 Cicada pruinosa Say auf... .. — Dean (I) Coceiden. — Distant (3)

p. 519 Thaumaturgus typicus n.sp. auf Ohrysanthemum; — (4) p. 18 Sampsi-

geramus pilosulus n. sp. auf Anaphalis oblonga; Ragmus importunitas n. sp. auf

Crotalaria verrucosa u. incarna; — (8) p. 90 Caura durbanensis n. sp., auf Suffa

sphaerica; — (14) p. 250 Ulundia decisa n.sp. auf Orchideen; — (15) p. 108

Cadmilos retiarius Dist. auf Chrysanthemen; p. 110 Dulinius conchatus Dist.

auf Morinda (B.); p. 124 Monanthia globulifera Walk. auf Coleus; p. 131 Mezira

tenuicornis Dist. (R.); p. 287 Sampzigeramus pilosulus Dist. auf Anaphalis oblonga;

Ragmus importunitas n. sp. auf Crotalaria; — (14) p. 243 Dagama novata n. sp.

auf Leguminösen; p. 250 Ulundia decisa n. sp. auf Orchideen. — Docters van

Lecuwen (1, 2%) Cecidien. — Dudgeon (1) p.59 Helopeltis Schoutedeni Reut. auf

Kakao (Fr.); p. 60 Sahlbergella theobromae Dist. (B., R.). — Eckstein (1). — Ender-

lein (1) p. 144 Gonanophilus guttulatus n. sp. (Zw.). — Essig (4) p. 210 Fiorinia

fioriniae var. japonica Kuw. auf Pinus u. Podocarpus chinensis; p. 211 Hemi-

chionaspis aspidistrae Sign. auf Platycerium; Aulacaspis rosae Bouch& auf Ribes;

p. 212 Diaspis bromeliae Kern. auf Ananas; p. 216 Saissetia hemisphaerica Targ.

auf Bignonia, Oitrus; p. 217 Pseudococcus nipae Mask. auf Psidium guava; p. 220

Ripersia Smithi n. sp. auf Elymus condensatus; — (5) p. 224 Aphis gossypii Glov.;

— (8) p. 312 Pseudococeus citri Risso; — (9) p. 336 Aphis hederae Kalt. auf Hedera

u. „Wirewine‘; p. 338 Macrosiphum pisi Kalt. auf Pisum u. Vieia; — (10) p. 343

Pseudococcus Bakeri n. sp. auf Sambucus glauca, Juglans regia, Pyrus malus u.

communis. — Faber (1) Kakao-Schädlinge. — Ferrant (1, 2) Schädlinge. —

Fullaway (1) Baumwollschädlinge; — (2) p. 223 Ceroputo ambigua n.sp. auf

Salicornia ambigua. — Faes (1) Reblaus. — Fulmek (I) Gossyparia ulmi L. auf

Viscum album. — Fiebrig (1) p. 360 Fulgoride auf Ficus subtriplinervius. —

Übersicht nach dem Stoff. 109

Gahan (1) p. 183 Chaitophorus aceris L. auf Acer platanoides; p. 184 Aphis gossypii

Glov. auf Althaea; p. 185 A. rudbeckiae Fitch auf Solidago. — Gillette (2) Aphiden;

— (3) Aphiden. — Gowdey (1) Aleyrodiden. — Green (3) p. 1 Aspidiotus oceanica

Lind. auf Cocos nucifera (B.); p. 3 Asterolecanium pustulans var. seychellarum

p. var. auf Hevea brasiliensis (R.); p. 5 Eriococcus paradoxus var. indicus n. var.

auf Helicteres isora; p. 7 Lecanium imbricans Green auf Ficus glomerata, F. in-

fectoria u. Cedrela toona. — Hambleton (1) p. 272 Corizus lateralis Say auf

Polygonum pennsylvanicum u. persicaria. — Hartzell (1) p. 570 Typhlocyba

comes Say auf Vitis u. Psedera quinquefolia. — Heidemann (1) p. 46 Eurychilo-

pterella luridula Reut. auf Oladastris tinctoria (R.) u. Prunus Picardi; — (2) p. 193

Leptoglossus magnoliae n. sp. auf Magnolia (B., Fr.) u. Tilia; — (3) p. 200 Capsus

solani n. sp. auf Lupinus u. Solanum. — Henrich (1) Aphiden; pp. 90—101 Liste

der Pflanzen. — Herrick (I) p. 374 Targionia celtis n. sp. auf Celtis occidentalis;

— (2) p. 22 Aspidiotus mori n. sp. auf Morus rubra (Zw.). — Hodgkiss (1) p. 83

Membraeiden. — Horvath (2) p. 176 Erythroneura Mocsaryi n.sp. auf Dactylis

glomerata (B.); — (3) p. 61 Copium floricola n. sp. (Bl.); — (7) p. 180 Bursinia

seminitens n.sp. auf Artemisia herba-alba; B.asphodeli n.sp. auf Asphodelus

microcarpus; p. 183 B.@enei Duf. auf Thymus longicaulis; — (6) p. 13 Nysius

euphorbiae n. sp. auf Euphorbia var. sp. — Houard (1) Asterolecanium auf Quercus.

— Iches (1) p. 182 Diaspis pentagona Targ. — Jacobi (2) p. 101 Coelodictya

Sijöstedti n. sp. (Zw., R.). — Jeannel (1) p. 283 Phyllomorpha laciniata Vill. auf

Paronychia argentea. — Johannsen (2) p. 29 Typhlocyba comes Say auf Vitis;

Psylla floccosa Patch auf Alnus incana. — Karasek (1) Dysdercus u. Oxycarenus

auf Baumwolle. — Kershaw (I) p. 69 Brachyplatys suboeneus Westw. auf

Pueraria thunbergiana u. anderen Leguminösen; p. 71 Coptosoma cribraria F.

id. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 106 Pyrops candelaria auf Nephelium longana

u. Mangifera indica; p. 109 auf Citrus decumana, Xanthium strumarium u. Urena

lobata. — Kieffer et Jörgensen (1) p. 372 Cecidotrioza mendocina n. sp. auf

Baccharis salicifolia; p. 386 Trioza ? gallifex n. sp. auf Duvaua dependens; p. 417

Opisthoscelis prosopidis n. sp. auf Prosopis adesmioides. — Kotinsky (1) Pseudo-

coccus calceolariae Mask. u. sacchari Ckll. auf Saccharum; — (2) Aspidiotus cyano-

phyllus Sign. auf Saccharum; — (3) Coceiden. — Kirillov (1) Gastrodes abietis L.

Tannenzapfen. — Kirk et Cockayne (1) Coceiden. — Kirkaldy (%) Zuckerrohr-

Schädlinge; — (8) Hawaiische Hemipteren. — Klein (1) Reblaus auf Vitis. —

Kuhlgatz (2) p. 85 Lecanium sp. auf Betula (Zw.); p. 86 Pulvinaria sp., id.; p. 87

Mytilaspis sp., id.; p. 89 Eremocoris plebejus auf Eriophorum. — Kuwana (1, 2)

Coceiden. — Lambertie (1, 3, 5). — Lefroy (1) Indische Insekten. —

Leonardi (1) Aleurodicus. — Lindinger (1) p.437 Gymnaspis aberemoae

n.. sp. auf Aberemoa rhizantha; — (2) Coceiden; — (3) Coceiden; —

(5) Cocciden. — Küstner (I) Diaspis piri Boisd.. — Magalhaes (1) p. 23

Phloea paradoxa Burm. auf Terminalia catappa (R.). — Marchal (1) p. 198

Rhizococcus gnidii Sign. auf Daphne gnidium; Targionia nigra Sign. auf Heli-

chrysum angustifolium u. Senecio; Aclerda subterranea Sign. auf Agropyrum;

— (2) p.245 Phenococcus oleae n.sp. u. C'hionaspis bupleuri March. auf Olea

(B.); — (3) Adelginen. — Matausch (2) Membraciden ; — (4) p. 260 Entylia sinuata

Germ. auf Eupatorium purpureum. — Matsumura (2, 4) Zuckerrohr-Schädlinge;

p- 22 Lygus oryzae n.sp. auf Oriza; p.24 C’ymus tabaci n. sp. auf Nicotiana; p. 25

Leptocorisa varicornis F., p.26 Menida histrio F., auf Reis.; — (3) p. 102 Anagnia

110 Insecta. Rhynchota für 1910.

splendens Germ. auf Reis u. Zuckerrohr. — Muir (1) Perkinsiella var. sp. auf

Saccharum officinarum. — Morgan et Shull (1) Hormaphis hamamelidis auf

Hamamelis. — Morrill (1) Baumwoll-Hemipteren u. deren Nährpflanzen. —

Nasonov (I) Kermes quercus auf Quercus. — Newstead (I) p. 18 Hemilecanium

recurvatum n.sp. auf Plectronia Laurenti (Zw.); p. 19 Stictococcus formicarius

n. sp. auf Barteria fistulosa (Zw.) u. C'uviera angolensis (Zw.); — (2) p. 66 Cero-

plastes ceriferus And. auf Coffea, Theobroma, Agax, Canna, Croton, Hibiscus;

p: 67 Pulvinaria psidii Mask. auf Frentumia elastica; Aspidiotus lataniae Sign.

u. cydoniae Comst. auf Palmen; p. 68 Chermide-Larve auf Oitrus; — (3) Coceiden;

— (4) p. 60 Dysdercus ? Andreae auf Gossypium; p. 62 Aspidiotus ficus auf Hevea

brasiliensis; Diaspis amygdali auf Castilloa elastica u. Erythrina umbrosa. —

Nüsslin (1) Adelginen; — (2) Adelginen ; — (3) Prociphilus bumeliae auf Edeltanne;

— (4) p. 408 Mindarus abietinus Koch auf Abies var. sp.; M. obliquus Chol. auf

Picea alba; — (5) Adelginen. — Olivier (1) p. 350 Phyllomorpha laciniata Vill.

— Olsen (1) p. 39 Cosmopepla carnifex F., Larve auf Verbascum blattaria; p. 42

Podisus maculiventris Say, Larve auf Onagra biennis. — Petri (1) Aphiden des

Efeus, der Fuchsie u. des Salats. — Patch (2) Adelginen; — (3) Adelginen;

— (4) p. 281 Chermes pinifoliae Fitch auf Pinus strobus u. Picea mariana; p. 295

Ch. lariciatus Patch auf Larix laricina; p. 297 Ch. consolidatus Patch auf Picea

mariana u. Larix; p. 299 Ch. floccus Patch auf Pinus strobus u. Spruce; p. 301

Ch. similis Gill. auf Picea abies, rubra, mariana, canadensis; p. 303 C'h. pinicorticis

Fitch auf Pinus strobus (R.); — (5) auf Ulmus, p. 196 Colopha ulmicola Fitch;

p. 212 Tetraneura graminis (U. americana); p. 216 — Reh (1) Aspidiotus destructor

auf Cocos. — Rehwer (1) p. 68 Forda flavula n. sp. auf Gras (W.); F. olivacea n. sp.,

id. — Royer (1) p. 85 Psacasta conspersa Fieb. auf Echium vulgare; p. 86 Emblethis

denticollis Horv. auf Ulmus (R.); — (4) Palomena viridissima L. auf Helianthus

annuus; p. (5) Elasmostethus minor Horv. auf Lonicera xylosteum; p. (6) Aneurus

laevis F. auf Quercus (R.); p. (7) Ploiaria vagabunda var. pilosa Fieb. auf Biota

orientalis. — Rübsaamen (1) Cecidien. — Sasaki (I) p. 277 Trioza camphorae

n. sp. auf Camphora; — (2%) p. 243 Schlechtendlalia sinensis Bell auf Rhus

semialata v. Osbecki. — Schmidt, H. (1, 2) Cecidien. — Severin (I) p. 103

Chionaspis salicis-nigrae Walsh auf Cornus stolonifera u. panaliculata u.

Populus tremuloides. — Stebbing (1) Chermes himalayensis Stebb. auf Picea

morinda u. Abies Webbiana; — (2) Tachardia lacca. — Stebbins (1) Cecidien.

Trägärdh (1) Aleyrodes phillyreae Hal. auf Phillyrea. — Vasiljev (1) Adel-

phocoris lineolatus Goeze auf Runkelrübe. — Vickery (1) p. 97 Aphis maidi-

radicis Forbes; p. 113 A. Middletoni Thom. — Washburn (1) p. 162 Empoasca

mali Le B. auf Apfelbaum. — Webster, F. (1) p. 71 Toxoptera graminum Rond.

— Webster, R. (1) p. 265 Empoasca obtusa Walsh auf Populus u. Salix; p. 266

E. mali Le B. auf Populus; p. 267 Typhlocyba rosae L. auf Ulmus; — (2) Empoasca

mali Le B. — Willeoeks (1) p. 123 Dactylopius perniciosus Newst. et Wille. auf

Albizzia lebbek, Gossypium, Zizyphus spina-christi, Acacia arabica (Zw., B., Fr.). —

Williams (1) Aphiden. — Wolff (1) p. 657 Aleurochiton aceris Geoff. auf Acer

platanoides. — Xambeu (2) p. 34 Coptosoma globus F. auf Ononis spinosa u.

Genista spinosa; p. 35 Graphosoma lineatum L. auf Foeniculum; p. 35 Centrocoris

variegatus Kol. auf Beta vulgaris; p.37 Cixius nervosus L. auf Quercus. — *** (1)

Psylla pyrisuga auf Pyrus communis u. malus. — Auf Tieren: Girault (2) Clino-

coris lectularius L. — Horvath (4) p. 12 Clinocoris pilosellus n. sp. auf Myotis

Übersicht nach dem Stoff. 111

longicrus; — (9) p. 572 Otenoplax nycteridis n. sp. auf N ycteris hispida. — Kellogg

et Paine (I) p. 402 Eoctenes eknomius n. sp. auf einem „Bat‘‘. — Neiva (I) p. 208

Conorhinus megistus Burm. am Mensch. — Auf Exkrementen, faulenden

Tieren usw.: Schumacher (3) p. 264, Fußnote, Thyreocoriden; p. 265, Fußnote,

Solenostethium liligerum Th. — Unter Erde (E.), zwischen Pflänzchen (P.),

unter faulenden Pflanzen oder trockenen Blättern (F.), Moos (M.),

Steinen (S.), in Ueberschwemmungsgemengsel (U.), auf Mauern (R.):

Bergevin et Thery(1) p. 141 Cephalocteus scarabeoides F. (E.). — Bueno (2) Hetero-

pteren (8.). — Bueno et Engelhardt (1) p. 151 Melanolestes abdominalis H.-Sch. (8.);

Conorhinus sanguisuga Lec. (8.). — Bugnion et Popoff (1) p. 447 Rhinocoris ira-

cundus (8.). — Butler (3) p. 142 Poeciloscytus palustris Reut. (P.).— Distant (15) p. 28.

Geocoris jucundus (P.). — Gibson (2) p. 125 Sehirus cinctus Pal. (F.). — Horvath (1)

p-. 271 Bagauda tenebricola n. sp., in Höhlen. — Lambertie (5) (R., P., F.). — Mae

Gillavry (2) p. XXXVIII Myrmecoris gracilis Sahlb. — Mae Mahon (I) p. 147

Sena quaerula (E.). — Rohwer (1) p. 68 Forda flavula n. sp. u. olivacea n. sp. (E.).

— Royer (4) p. (4) Eurygaster nigrocucullatus var. nigra F. (M.); p. (6) Peritrechus

nubilus Fall. (M.); p. (7) Pirates hybridus Scop. (8.); Protemma guttula F. (8.). —

An sonnigen (A.), an _kalt.n (K.), an schattigen (H.), an salzigen (S.),

an sandigen (O.), an trocken (T.), an feuchten Orten (F.): Ball(1) p. 42 Osbornia

cornuta n. sp. (T.). — Bergevin (1) p. 45 Graphosoma semipunctatum f. pallidum

n. (A.); p. 46 f. melanicum n. (K.); — (2) Therapha nigridorsum Put. n. var,

palbescens n. — Bugnion et Popoff (1) p. 447 Rhinocoris iracundus (T.). — Fulla-

way (1) p. 223 Ceroputo ambigua n. sp. (8.). — Horvath (7) p. 177 Almana longipes

Duf. (T.).. — Jacobi (2) p. 101 Coelodictya Sjöstedti n. sp. (H.). — Jeannel (1)

p- 283 Phyllomorpha laciniata Vill. (A.). — In Häusern (inkl. Gewächshäusern):

Essig (4) p. 212 Diaspis bromeliae Kern. — Gahan (I) p. 184 Aphis gossypü Glov.

— Neiva (I) p. 207 Conorhinus megistus Burm.

Vorkommen der Zeit nach.

Jahreszeit: Angaben in Back (I). — Baker (1). — Banks (I). — Bergevin

(1, 3). — Bergevin et Thery (1). — Bierman (1). — Brick (1, 2). — Britton (1).

— Brocher (2). — Bueno (2, 4). — Bueno et Engehardt (1). — Butler (2). —

Chittenden et Marsh (1). — Cholodkovsky (1, 2). — Cockerell (2, 3, 6). —

Davidson (1). — Davis, J. (2, 5). — Davis, W. (1, 2). — Distant (14). — Enderlein

(1, 2). — Essig (4, %, 8). — Faber (I). — Ferrant (1, 2). — Fulmek (1). — Gibson

(1, %). — Gillette (3). — Hagemann (1). — Hartzell (1). — Heidemann (2, 3). — Hen-

rich (1). — Hodgkiss (1). — Horvathı (3, 4, 6, 7, 9). — Iches (I). — Jacobi (2). —

Jeannel (1). — Johannsen (2). — Karasek (1). — Kershaw (1). — Kershaw et Kir-

kaldy (1). — Kieffer et Jörgensen (1). — Kiritschenko (1,2, 3, 4). — Kirkaldy (8).

— Kuhlgatz (1, 2). — Kuwana (1, 2). — Lambertie (1, 3, 5). — Lefroy (1). — Lindinger

(1,2%, 3). — Lueas (1). — Lüderwaldt (1). — Lyle (1, 2). — Mae 6illavry (2, 4, 5).

— Manee (I). — Marchal (2). — Martelli (2). — Matausch (1, 2, 3, 4). —

Matsumura (1). — Meissner (1). — Morley (2, 3). — Nasonow (1). — Newstead (3).

— Nüsslin (1, 2, 4). — Olsen (1). — Osborn (1). — Patch (4, 5, 6). — Poppius

(4, 5, 6). — Quaintance et Sasseer (1). — Reiehensperger (1). — Reuter (1, 2, 3, 4).

— Royer (1, 3, 4). — Rübsaamen (1). — Ruggero (1). — Sasaki (1). — Scherdlin (1).

— Sehmidt, E. (1, 3). — Schouteden (1, 2). — Schumacher (3). — Strand (2, 3).

— 8ule (1). — Stebbing (1). — Trägärdh (1). — Van Duzee (1, 2, 3). — Viekery

112 Insecta. Rhynchota für 1910.

(1). — Washburn (1). — Webster (1, 2). — West (3). — Whittaker (1). — Will-

cocks (1). — Wuorenhaus (I). — Xambeu (2). — Zimmer (I). — *** (I). —

Überwinterung: Bueno (2). — Horvath (6) p. 12 N ysius. — Jeannel (1) p. 283

Phyllomorpha laciniata Ville. — Kuhlgatz (1) p. 181 Hebrus ruficeps 'Thoms.;

— (2) p. 84 Gerriden. — Meorrill (1) p. 53 Pentatoma ligata Say. — Ruggero (I)

p. 244 Dicranotropis flavipes Sign. — Schumacher (3) p. 380 Pinthaeus sangui-

nipes F.; p. 435 Picromerus bidens L. — Webster, F. (1) p. 74 Toxoptera grami-

num Bond.

Sehutzmittel und Mimetismus.

Schutzmittel: Berlese (1) p.299 Diaspis pentagona Targ.: Schild. —

Fiebrig (1) p. 361 Fulgoride-Eiern: Schaumschicht (Kautschuk); Cerkopiden-

larven-Schaum. — Hartzell (1) p. 571 Typhlocyba comes Say: Flug. — Magal-

haes (1) p. 8 Phloea: Analsekretion, Geruch. — Sehumacher (3) p. 380 Asopinen:

Fallen lassen. — Mimetismus: Bourgeois (1) p. 155 Psacasta ezxanthematica

Scop. u. Echium vulgare. — Bueno et Engelhardt (1) p. 148 Banasa Packardi Sl.

u. Cedern-Zweige. — Distant (15) p. 209 C’ydnocoris crocatus u. Braconide. —

Green (4) Gaeana Atkinsoni u. Pangora (Lep.). — Iches (1) p. 183 Diaspis penta-

gona Targ. u. Larven von Baccha nigriventris. — Jeannel (1) p. 286 Phyllomorpha

laciniata Vill. — Kuhlgatz (2) p. 87 Cimiciden-Larven u. Pilzbefall, an Blättern.

— Kershaw et Kirkaldy (1) p. 111 Pyrops candelaria u. Baumrinde. — Magal-

haes (1) p. 8 Phloea, Baumrinde u. Flechten. — Mae Gillavry (2) p. XL Systello-

notus triguttatus L. u. Ameisen.

Beziehung zu anderen Tieren (inkl. Feinde).

Beziehung zu Ameisen (u. Myrmekophilie: Bergevin (4) Larve von

Pediopsis nana H.-Sch., von Ameisen gepflegt. — Crawley (1) Aphiden u. Zasius

niger. — Henrich (1) Aphiden. — Mae Gillavry (2) p. XXXVII Myrmecoris

gracilis Sahlb. u. Ameisen; p. XL Systellonotus triguttatus L. u. Lasius niger.

— Marechal (2) p. 245 Phenacoccus oleae n. sp. u. Philippia oleae von Üremato-

gaster besucht. — Matausch (4) p. 261 Entylia sinuata Germ. von Ameisen be-

sucht. — Newstead (1) p. 18 Hemilecanium recurvatum n. sp. u. Crematogaster ;

p. 19 Stictococcus formicarius n.sp. u. Sima quadrinoda; id. u. Crematogaster

africana Laurenti. — Rohwer (I) p. 68 Forda flavula n. sp. u. Lasius niger var.

americanus. — Royer (1) p. 87 Dictyonota Marqueti Put. in Atta-Nestern. —

Viekery (1) p. 105 Aphis maidi-radicis Forbes, Beziehungen zu Lasius niger var.

americanus. — Beziehungen zu anderen Insekten: Bueno (4) p. 177 Microvelia

americana Uhl.: Karnivor. — Bugnion et Popoff (1) p. 447 Rhinocoris iracundus:

Raupen u. Thompsus albus ausgesaugt. — Kirkaldy (2) p. 105 Zicrona coerulea L.

u. Altica coerulea. — (8) p. 534 Zelus Renardi an den Rhynchoten saugend. —

Mae Gillavry (3) p. LXI Globiceps flavomaculatus F. u. Miris-Larve, von Crabro

albilabris paralysiert. — Meissner (1) Pyrrhocoris apterus L.: Kannibalismus.

— Morley (2) Gerris gibbifera u. Tenthredo balteatus. — Olsen (1) p. 41 Podisus

maculiventris Say: karnivor (Raupen, Coleoptera, Ameisen, ete.). — Schumacher

(3) p. 264 Asopinen: karnivor. — Severin, H. P. et H.cC. (1) p. 340 Notonecta

undulata Say ‚Eiern von Belostoma flumineum saugend. — Wiekham (1) p. 28

Emesa longipes. — Beziehungen zu anderen Tieren: Distant (15) p. 101

Physorhynchus Linnaei eine Myriopode saugend. — Horvath (4) p. 12 Olinocoris

Übersicht nach dem Stoff. 113

pilosellus n. sp. auf Myotis longierus; — (9) p. 572 Otenoplax nycteridis n. sp. auf

N ycteris hispida. — Kellogg et Paine (1) p.402 Eoctenes eknomius n.sp. auf Fleder-

maus. — Feinde:[S. Parasiten]: Akerman (1) der Aphiden. — Alderson (I).

— Back (I) von Aleyrodes Howardi Quaint.: Pilze. — Berlese (1) p. 319 von

Diaspis pentagona Targ.: Coceinelliden, etc. — Davidson (1) p. 372 von C'hermes

Cowani, Lachnus occidentalis, Macrosiphum rosae: Podabrus tomentosus (Col.

Lampyr.); p. 374 von L. occidentalis: Syrphus arcuatus u. opinator; p. 376 von

Aphis albipes Oestl.: Syrphus. — Davis, J. (2) p. 200 von Callipterus caryaefoliae

n.sp.: Erythroeus (Acar.). — Essig (1) von Pseudococeus eitri Risso: Symphe-

robius angustus (Hemer.); — (2) id.: Coceinelliden; — (4) p. 221 von Ripersia

Smithi n. sp.: Coccinelliden. — Faber (1) p. 299 von Helopeltis: Ameisen u. Redu-

viiden. — Ferrant (1, 2). — Fullaway (I) p. 227 von Ceroputo ambigua n. sp.:

Scymnus guttulatus (Coccin.). — Green (3) p.3 von Asterolecanium pustulans

var. seychellarum n.: Pilze. — Heidemann (I) p. 46 von Eurychilopterella luri-

dula Reut.: Chrysopa-Larven. — Iches (1) p. 182 von Diaspis pentagona Targ.:

Coccidiophilus citricola (Col.) u. Baccha nigriventris, Larve; — (3) der Baumwoll-

insekten. — Kershaw et Kirkaldy (1) p. 111 von Pyrops candelaria: Larven von

Epipyrops anomala (Lepid.). — Kirkaldy (8) p. 534 von /thamar hawaiiensis

Kirk., Rhopalus hyalinus F., etc.: Zelus Renardi. — Mae Gillavry (3) p. LXI

von Globiceps flavomaculatus F. u. Miris-Larven: Crabro albilabris. — Martelli (1)

Diaspis pentagona Targ.: Coccinelliden. — Morrill (1) der Baumwollhemipteren.

— Morley (3, 4) von Aphis pruni: Baccha (Dipt.). — Newstead (3) p. 187 von

Inglisia conchiformis n. sp.: Raupen von Eublemma scitula (Lepid. Noct.); p. 195

von Ceroplastes quadrilineatus: Raupe; — (4) p. 60 von Dysdercus Andreae:

Coceinelliden, Vögeln (Crotophaga ani); p.61 von Loxa flavicollis: Crotophaga

ani. — Quaintance (1) p.8 von San-Jose-Laus: Coceinelliden, p. 10 Pilze. —

Quaintance et Sasscer (1) p. 6 von Lepidosaphes ulmi L.: Coccinelliden, Acariden,

Vögeln; p. 9 von Chionaspis purpura Fitch: Coccinelliden, Acariden. — Stebbing

(2) p- 21 von Tachardia lacca: Tessaratoma nigripes Dall. — Vimmer (1) p. 7 von

Aphis papaveris F.: Larve von Syrphus corollae. — ‚Willeocks (1) p. 132 von

Dactylopius perniciosus Newst. et Wille: Cecidomyiden-Larven, Hemerobius-

Larven, Coccinelliden. — Webster, F. (1) p. 77 von Tozxoptera graminum Rond.

— Beherbergung von Parasiten: Akerman (1) Aphiden. — Berlese (1) p. 333

Diaspis pentagona Targ.: Prospaltella Berlesei. — Bierman (1) p. 67 Ossoides

lineatus Beirm.: Halictophagus Jacobsoni. — Brocher (2) p. 180 Limnobates (Ei):

Litus cynipseus. — Britton (1) p. 351 Aphis sorbi Kalt.: Megorismus Fletcheri.

— dCockerell (5) p. 481 Pulvinaria bigeloviae: Coccophagus immaculatus. —

Davidson (1) p. 374 Lachnus viminalis: Ephedrus; p. 375 Cladobius saliceti Har.:

Aphidius; p. 376 Aphis brassicae L.: Diaeretus californicus. — Essig (4) p. 216

Saissetia hemisphaerica Targ.: Scutellista cyanea; — (9) p. 336 Aphis hederae

Kalt.: Chaleididen. — Ferrant (I, 2). — Fullaway (1) p. 227 Ceroputo ambigua

n. sp.: Hymenopteren. — Gahan (1) Aphiden: Aphidiinae — Gibson (1) p. 14

Macrosiphum pisi: Megorismus Fletcheri. — Girault (1) Schizoneura crataegi

Oestl.: Aphelinus. — Green (2) Icerya aegyptiaca: Chalcididen. — Hodgkiss (1)

p- 90 Ceresa bubalus F.: Polynema striaticorne. — Kieffer (1) Aphiden: Cynipiden.

— Kershaw (1) p. 71 Brachyplatys subaeneus Westw. (Ei): Hymenopteren. —

Morley (1) p. 27—31, 94—96, 110—112 Coceiden, p. 112—113 Aleyrodiden:

Hymenopteren. — Martelli (1) Diaspis pentagona Targ.: Hymenopteren. —

Archiv für Burns 8

1911. V. 1.

114 Insecta. Rhynchota für 1910.

Morrill (1) Baumwoll-Hemipteren. — Newstead (2) p. 68 Chermiden-Larve:

Chaleididen. — Quaintance (1) p. 8 San Jose-Laus: Chaleididen. — Quaintance

et Sasscer (1) p. 6 Lepidosaphes ulmi L., p. 9 Chionaspis furfura Fitch: Chalei-

diden. — Timberlake (1) Aphiden.: Aphidiinen — Ussing (I) Aphelocheirus

Montandoni Horv.: Prestwichia aquatica. — Viekery (1) p. 118 Aphis Middletoni

Thom.: Lysiphlebus. — Webster, F. (1) Toxoptera graminum Rond.: Lysiphlebus

tritici, ete. — Willeocks (1) p. 132 Doctylopius perniciosus Newst. et Wille.:

Chaleididen. — Wolff (1) p. 656 Aleurochiton aceris Geoffr.: Urolepis Schultzei

n. sp. (Chaleidide).

Beziehung zum Menschen.

Nutzen: Kirkaldy (8) p. 550 Zelus Renardi: vertilgt Aphiden, ete. — Mat-

sumura (4) p. 45 Reduviolus ferus L. u. Asopus malabaricus F. — Olsen (1) p. 40

Cosmopepla carnifex F., p. 41 Podisus maculiventris Say: saugt Raupen, ete. —

Schumacher (3) p. 377 Asopinen: karnivor. — Sperber (1) Farbschildlaus. —

Sasaki (2) p. 239 Schlechtendalia sinensis Bell. — Stebbing (2) Tachardia lacca.

— Schaden: Back (1) p. 65 Aleyrodes Howardi Quaint. auf Citrus. — Ballou (2)

Kakao-Schädlinge. — Berlese (1) Diaspis pentagona Targ. — Bethune (I) p. 63

Aphiden; p. 64 Gossyparia ulmi u. Pulvinaria innumerabilis. — Brick (1, 2).

— Britton (1) p. 344 Aphis sorbi Kalt. — Carpenter (1). — Davis, J. (4). —

Distant (5) p. 196 Empoasca theae n. sp. u. E. flavescens auf T’hea. — Dudgeon (I)

p. 59 Helopeltis Schoutedeni Reut., p. 60 Sahlbergella theobromae Dist.: auf Kakao;

— (2) Sahlbergella singularis Hagl. auf Kakao; — (3) Baumwoll-Schädlinge.

— Essig (4) p. 211 Aulacaspis rosae Bouche auf Ribes; p. 216 Saissetia hemi-

sphaerica Targ. auf Bignonia, Citrus; — (8) p. 291 Pseudococcus citri Risso auf

Citrus, etc. — Faber (1) Kakao-Schädlinge: p. 293 Helopeltis Antonii Sign. u.

theivora Waterh.; p. 301 Disphynctus sp.; p. 303 Phytocoride; p. 305 Sahlbergella

singularis Hagl.; p. 310 Zikaden; p. 311 Aphiden; p. 314 Chermiden. — Ferrant

(1, 2). — Fullaway (1) Baumwollschädlinge. — Guenaux (1). — Gibson (1) Aphiden

u. Lygus pratensis. — Green (3) p. 3 Aspidiotus oceanica Lind; auf Cocos; p. 6

Eriococcus par var. indicus n. var. auf Helicteres indica; p. 7 Lecanium imbricans

Green auf Ficus u. Cedrela toona. — Hartzell (1) p. 369 T’yphlocyba comes Say

auf Vitis. — Henrich (1) Aphiden. — Hodgkiss (1) p. 87 u. 90 Membraciden;

p: 97 Ceresa bubalus F.; p. 104 C. taurina Fitch; p. 111 Stictocephala inermis F.

— Hollrung (1). — Iches (2) Baumwoll-Insekten. — Johannsen (2?) p. 28 San

Jose-Laus; p.29 Typhlocyba comes Say aufVitis. — Kirillov (1) Gastrodes abietis auf

Tannen. — Kirk et Cockayne (1) Coceiden. — Klein (1) p. 105 Reblaus. —

Kotinsky (1) Pseudococcus calceolariae Mask. und sacchari Ckll. auf Sac--

charum; — (2) Aspidiotus cyanophyllus Sign. auf Saccharum. — Le-

froy (1) Indische Hemipteren. — Lindinger (3) pp. 371 — 375 Cocciden.

— Lüstner (1) Diaspis piri Boisd.. — Matsumura (3) p. 102 Anagnia

splendens Germ. auf Reis u. Zuckerrohr; — (2, 4) Zuckerrohr - Schäd-

linge. — Mae Dougall (1) Adelginen. — Morrill (1) Baumwoll-Hemipteren. —

Neiva (1) p. 206 Conorhinus megistus Burm.: Überträger einer menschlichen

Trypanosomiasis. — Newstead (2) p. 66 Ceroplastes ceriferus And. auf Coffea; —

(4) p. 60 Dysdercus ? Andreae auf Baumwolle. — Nüsslin (1) p. 673 Adelginen.

— Ormezzano (1) Aphiden auf Tilia. — Patch (4) p. 283 C'hermes pinifoliae Fitch

auf Pipus strobus. — Patch et Johannsen (1) p. 9 Lepidosaphes ulmi; ete. —

Faunistik. 115

Quaintance (1) p. 1 San Jose-Laus. — Reh (1) Aspidiotus destructor Sign. auf

Kokospalmen. — Rosenfeld (1). — Sanderson (I). — Sasaki (1) p. 284 Trioza

camphorae n.sp. auf Camphora. — Severin (1) p. 102 San Jose-Laus.; p 103

Chionaspis salicis-nigrae Walsh auf Cornus u. Populus. — Shiraki (1). — Stebbing

(1) p. 121 Chermes himalaxensis Stebb. — Theobald (2). — Vasiljev (1) Adelpho-

coris lineolatus Goeze auf Runkelrübe. — Vickery (1) p. 104 Aphis maidi-radicis

Osb. auf Korn; p.108 auf Baumwolle; p. 109 auf Aster; p. 110 anderen Pflanzen.

— Washburn (2?) Empoasca mali Le B. — Webster (2) Empoasca mali Le B. —

Willeocks (1) p. 126 Dactylopius perniciosus Newst. et Wille. auf Albizzia lebbek,

Gossypium, Zizyphus spina-christi, Acacia arabica. — Wolff (1) p. 659 Aleuro-

chiton aceris Geoffr. — *** (I) p.48 Psylla pyrisuga an Apfel u. Birnbäumen,

Faunistik.

Geographische Verbreitung: Bergevin (1) p. 45—46 Graphosoma semi-

punctatum F. form. pallidum n. und melanicum n.; — (2) p. 310 Therapha nigri-

dorsum Put. und var. pallescens n. — Berlese (1) p. 313 Diaspis pentagona Targ.

— Bueno (4) p. 176 Microvelia americana Uhl. — Distant (14) Transvaal. Cerco-

piden, Tetigoniiden und Fulgoriden; — (15) Indische Heteropteren. — Essig (8)

p. 289 Pseudococeus citri Risso in Californien. — Kirkaldy (8). — Klein (I) p. 38

Reblaus. — Nüsslin (1) p. 656 Adelginen. — Poppius (4). — Reuter (1) p. 52

Euryeyrtus Reut. und Paracalocoris Dist. — Webster, F. (1) p. 68 Tozoptera

graminum Rond. — Verschleppt: Berlese (1) Diaspis pentagona Targ. — Essig

(8) p. 316 Pseudococeus citri Risso.— Klein (1) p. 37 Reblaus.— Höhenverbreitung:

Angaben in Barber (I). — Bergevin (1, 2, 3, 4). — Distant (3, 4, 6, 8, 15). —

Gillette (3). — Horvath (3). — Jacobi (2). — Kieffer et Jörgensen (1). — Kir-

kaldy (8). — Lambertie (5). — Poppius (4, 5). — Reuter (2, 3, 4). — Royer (3). —

Schmidt, E. (1, 2, 4). — Schouteden (1, 2). — Heimat: Essig (4) p. 210 Fiorinia

fioriniae var. japonica Kuw.: Japan. — Kirkaldy (8) Hawaii-Hemipteren. —

Klein (1) p. 37 Reblaus.

Europa.

Horvath (7) Dietyopharinen. — Oshanin (1) Katalog der palaearkt. He-

mipteren. — Royer (2) Ergänzung zu Kirkaldy’s Katalog.

Deutschland : Bervoets (3). —Brick (1, 2). — Cockerell (7). — Eckstein (1).

— Hueber (1). — Kuhlgatz (1, 2). — Lindinger (6). — Lüstner (1). — Matsumura

(1). — Meissner (1). — Meess (1). — Nüsslin (3, 4). — Puhlmann (1). — Reichen-

sperger (1). — Scherdlin (1). — Schmidt, H. (1,2). — Schumacher (2, 3). —

Wolff (1). — Luxemburg: Ferrant (1,2). — Klein (1). — Belgien: Lindinger

(5, 6). — Schouteden (3). — Niederlande: Mac Gillavry (1,2,3,4). — Groß-

britannien : Bedwell (1). — Butler (1, 2, 3, 4). — Carpenter (1). — Connold (1). —

Edwards (1). — Lindinger (5, 6). — Lucas (1). — Lyle (1, 2). — Theobald (2-. —

West (1, 2, 3, 4). — Whittaker (1,2). — Portugal: Lindinger (5, 6). — Spanien

Horvath (7). — Matsumura (1). — Frankreich: Horvath (7). — Jeannel (1). —

Lambertie (1,2, 3,4, 5). — Lindinger (6). — Marchal (1, 3). — Olivier (1).

— Peneau (1). — Pic (1, 3, 4). — Royer (1, 3, 4). — Xambeu (1,2). — Corsica:

Marchal (1). — Italien : Berlese (1). — Grassi (1, 2). — Horväth (7). — Leonardi

5*+

116 Insecta. Rhynchota für 1910.

(3). — Lindinger (5, 6). — Mae Gillavry (5). — Martelli (2). — Matsumura (l).

— Schweiz: Cholodkovsky (2). — Faes (1,2). — Keller (1). — Oesterreich-

Ungarn: Bayer (1,2). — Fulmek (1). — Henrich (1). — Horväth (1, 7,8). —

Lindinger (6). — Matsumura (1). — Ruggers (1). — Stadler (2). — Rumänien:

Borcea (1). — Reuter (4). — Griechenland: Matsumura (1). — Rußland:

Cholodkovsky (1). — Kirillov (1). — Kiritschenko (1, 3,4). — Oshanin (1). —

Poppius (2). — Reuter (4). — Wuorentaus (1), — Schweden: Ussing (2). —

Island: Horväth (6).

Asien.

Oshanin (1) Katalog der palaearkt. Hemipteren. 24

Kleinasien: Lesne (1). — Transkaukasien : Grigoriev (1). — Reuter (4). —

Transkaspien: Reuter (1,4). — Turkestan: Poppius (5). — Reuter (4), —

Afghanistan: Reuter (4). — Sibirien: Kiritschenko (2, 3). — Reuter (4). —

Webster, F. (1). — Amur: Reuter (4). — China: Distant (7). — Kershaw (1). —

Kirkaldy (2, 5). — Lindinger (6). — Montandon (2, 6). — Reuter (4). — Sasaki (1).

— Schmidt, E. (4). — Japan: Kuwana (1, 2). — Matsumura (3, 5). — Lindinger

(5, 6). — Poppius (5). — Sasaki (1, 2). — Takahashi (1). — Formosa : Kuwana (1).

— Matsumura (2,4). — Montandon (2). — Sasaki (1,2). — Schmidt (4). —

Shiraki (1). — Vorderindien: D’Abren (4). — Distant (1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 15). —

Edwards (1). — Faber (1). — Green (2, 3, 4). — Kirkaldy (5). — Lefroy (1). —

Lindinger (5, 6). — Montandon (2,7). — Reuter (1,2). — Schmidt (1,4). —

Stebbing (1,2). — Ceylon: Distant (3, 4, 5, 6, 15). — Faber (1). — Poppius (1).

— Schmidt (4). — Andamanen: Distant (6). — Nicobaren: Distant (7, 15). —

Montandon (7). — Tonking: Kirkaldy (2). — Schmidt (1,4). — Cambodien:

Schmidt (4). — Malay. Halbinsel: Distant (10). — Malakka: Schmidt (4, 4).

— Pulo-Pinang: Poppius (6). — Schmidt (4). — Sumatra: Bergroth (4). —

Bierman (1). — Horvath (5). — Poppius (5). — Schmidt, E. (1,2,4). — Nias:

Schmidt (1). — Java: Bierman (1). — Docters van Leeuwen (1, 2). — Faber (1).

— Lindinger (6). — Muir (1). — Schmidt (1,2,4). — Sumbawa: Schmidt (4).

— Lombok : Distant (10). — Schmidt (4). — Mentawei: Schmidt (4). — Borneo:

Bergroth (3, 9). — Distant (10). — Muir (1). — Schmidt (1,4). — Philippinen:

Banks (1). — Distant (10, 12, 15). — Faber (1). — Schmidt (4). — Soela: Schmidt

(4). — Palawan: Schmidt (4). — Celeben: Distant (10). — Schmidt (1, 4). —

Poppius (1). — Ternate: Schmidt (4). — Batjan: Schmidt (4). — Amboina:

Muir (1). — Ceram: Muir (1. — Mysol: Distant (10). — Schmidt (4). —

Roon: Schmidt (4). — Obi: Schmidt (4). — Dorey: Distant (10).

Afrika.

Distant (14) Südafrikan. Tetigoniiden usw. — Horväth (7) Palaearkt. Dietyo-

pharinen. — Oshanin (1) Katalog der palaearkt. Hemipteren. — Royer (2) Er-

gänzungen zu Kirkaldy’s Katalog.

Kanarische Inseln: Lindinger (6). — Madeira: Distant (7). — Lindinger

(3,5). — Kapverdische Inseln : Distant (7). — Marokko: Lindinger (3). — Mat-

sumura (1). — Algerien: Bergevin (1,2, 3, 4). — Bergevin et Thery (1). —

Horväth (7). — Lindinger (3, 6). — Mae Gillavry (5). — Matsumura (1). — Pie (1).

— Reuter (1). — Tunisien: Bergevin et Thery (1). — Mae Gillavry (5). — Mar-

ehal (2). — Matsumura (1). — Aegypten: Lindinger (3, 6, 15). — Matsumura (1).

Faunistik. 723

— Newstead et Willcocks (1). — Reuter (1). — Willcocks (1). — Sudan: Distant

(8). — Kellogg et Paine (1). — Kirkaldy (5). — Abessinien und Nord-Ostafrika:

Distant (8). — Lallemand (1). — Lindinger (2, 5). — Reuter (2). — Uganda:

Distant (8). — Green (1). — Jacobi (1, 2). — Lallemand (1). — Newstead (2, 3).

— Albert Eduard: Strand (3). — Ruwenzori: Distant (8). — Tanganyika:

Distant (14). — Lallemand (1). — Strand (2). — Rhodesien: Distant (8, 14). —

Lallemand (1). — Katanga (Belg. Kongo): Distant (7, 8,14). — Brit. Ost-

afrika: Distant (7, 8, 14). — Lindinger (6). — Reuter (2). — Schouteden (1, 2).

— Strand (2). — Deutsch- Ostafrika : Faber (1). — Horväth (1, 3). — Jacobi (1, 2).

— Karasek (1). — Lindinger (2, 5, 6). — Newstead (3). — Poppius (2, 4). — Schou-

teden (1,2). — Strand (2,3). — Kilimandjaro: Enderlein (1). — Horväth (3).

— Jacobi (2). — Poppius (4). — Schouteden (1,2). — Sansibar: Bervoets (2).

— Distant (8). — Lindinger (2). — Strand (2). — Mossambik : Distant (8, 14).

Jacobi (1). — Lallemand (1). — Lindinger (2, 5). — Schouteden (1). — Zambezi:

Strand (2). — Bechuanaland: Distant (8). — Transvaal: Distant (8, 14). —

Schouteden (2). — Strand (2). — Orange River Colony: Webster, F. (1). —

Natal: Distant (7, 8, 14). — Lindinger (2, 5, 6). — Reuter (1). — Kapland:

Distant (8, 14). — Lindinger (3,5). — Zululand: Distant (14). — Südafrika:

Distant (8, 14). — Reuter (l). — Deutsch - Südwestafrika: Lindinger (3).

— Angola: Distant (7). — Lallemand (1). — Kongo: (Distant (7, 8, 14).

— Lallemand (1). — Montandon (5). — Newstead (1). — Reuter (1). —

Schmidt (2). — Schouteden (4). — Strand (2, 3). — Westafrika: Lin-

dinger (5, 6). — Kamerun: Distant (7). — Faber (1). — Lallemand (1). —

Lindinger (5, 6). — Rübsaamen (1). — Schmidt (2). — Strand (2). — San Thome:

Horväth (5). — Reuter (2). — Fernando Po: Schouteden (2). — Nigeria:

Distant (7). — Lallemand (1). — Reuter (2). — Lagos: Distant (14). — Togo:

Poppius (5). — Goldküste: Distant (7). — Dudgeon (1). — Lindinger (5). —

Sierra-Leone : Distant (7, 14). — Liberia : Lindinger (6). — Guinea : Bergroth (8).

— Distant (7). — Dudgeon (2). — Gambia: Distant (7, 8, 14). — Old Calabar:

Distant (14). — Madagaskar: Bergroth (1, 5). — Bervoets (1). — Distant (7).

— Horväth (1, 5, 6). — Lhllemand (1). — Lindinger (2, 5). — Schmidt (3). —

Seyschellen : Green (3). — Bourbon: Horväth (5). — Mauritius: Horväth (6).

Amerika.

Canada : Bethune (1). — Gibson (1, 2). — Hambleton (2). — Montandon (3).

— Van Duzee (2,3). — British Columbia: Distant (13). — Hambleton (2). —

Horväth (4). — Van Duzee (3). — Vancouver: Crawford (2). — Heidemann (2).

— Van Duzee (2). — Vereinigte Staaten: Banks (2). — Bueno (1, 4). — Craw-

ford (1,2). — Gillette (1,2). — Hambleton (1,2). — Johannsen (1). — Lindinger

(6). — Quaintance et Sasscer (1). — Sanders (1). — Vickery (1). — Webster (1). —

Vermont: Lindinger (5). — Maine: Johannsen (2). — Patch (1,2, 3,4,

5,6). — Patch et Johannsen (1. — New Hampshire: Bueno (3). —

Hambleton (2). — Sanderson (1). — Van Duzee (2). — Massachusetts:

Gillette (3). — Heidemann (2). — Lindinger (6). — Montandon (3, 4). — Stebbins

(1). — Van Duzee (2). — Connecticut: Britton (1). — Matausch (4). —

Washburn (1). — RhodelIsland: Van Duzee (2). — NewYork: Banks

(1, 3). — Barber (1). — Bueno (1). — Davis, W. T. (1). — Gillette (3). — Ham-

bleton (2). — Hartzell (1), — Hodgkiss (1). — Johannsen (1). — Lindinger (5).

118 Insecta. Rhynchota für 1910.

— Matausch (1, 3, 4). — Montandon (3, 4). — Olsen (1). — Van Duzee (2, 3). —

New Jersey: Bueno (1). — Davis, w. T. (1). — Matausch (1, 2, 3, 4). — Van

Duzee (2). — Pennsylvania: Montandon (4). — Hambleton (2). — Van-

Duzee (3). — Maryland: Gahan (1). — Hambleton (2). — Montandon (3).

— Columbia-District: Bueno (1). — Hambleton (2). — Heidemann (1,

2, 3). — Lindinger (3). — Var Duzee (3). — Michigan: Cook (1). — Gillette

(3). — Montandon (3). — Ohio: Davis, J. J. (3). — Hambleton (2). — Van

Duzee (3). — Washburn (2). — Wisconsin: Severin (l). — Mirnesota:

Patch (6). — Jo wa: Hambleton (2). — Van Duzee (3). — Webster (1,2). —

Wickham (1). — Illinois: Bueno (1). — Crawford (2). — Davis, J. J. (2, 3,

4, 15). — Montandon (3). — Patch (6). — Virginia: Banks (1). — Bueno

et Engelhardt (1). — Hambleton (2). — NorthCarolina: Bueno et Engel-

hardt (1). — Heidemann (2). — Manee (1). — Van Duzee (2). — South-

Carolina: Lindinger (3). — Georgia: Hambleton (2). — Heidemann (2).

— Montandon (1). — Florida: Back (1). — Hambleton (2). — Heidemann (2).

— Lindinger (3). — Montandon (4). — Van Duzee (2,3). — Mississipi:

Hambleton (2). — Louisiana: Barber (2). — Crawford (2). — Rosenfeld (2).

— Missouri: Davis, J. J. (2, 3). — Gillette (3). — Johannsen (1). — Ham-

bleton (2). — S. Dakota: Hambleton (2). — Nebraska: Hambleton (2).

— Zimmer (1). — Williams (1. — Kansas: Dean (1). — Patch (6). —

Stough (1). — Van Duzee (3). — Wyoming: Hambleton (2). — Colo-

rad.o: Ball (1, 2). — Bueno (2). — Cockerell (2, 3, 5, 6). — Cockerell et Falk (1).

— Cockerell et Robbins (1). — Crawford (2). — Gillette (3). — Hambleton (2). —

Heidemann (2). — Kirkaldy (3). — Rohwer (1). — Van Duzee (2, 3). — Utah:

Ball (1, 2). — Heidemann (2, 3). — Van Duzee (3). — Hambleton (2). — Yellow-

stone-Park: Montandon (3. — Washington: Hambleton (2). —

Van Duzee (2). — Oregon: Ball (2). — Gillette (3). — Heidemann (2). —

Van Duzee (3). — Nevada: Ball (2). — Crawford (2. — California:

Baker (1). — Ball (1, 2). — Cockerell et Robbins (1). — Crawrofd (1, 2). — David-

son (1). — Essig (3, 4, 5, 7, 8, 9, 10). — Hambleton (2). — Heidemann (2, 3). —

Johannsen (1). — Kirkaldy (11). — Lindinger (3). — Montandon (1, 3). — Van

Duzee (1,2,3). — Arizona: Ball (1). — Banks (1). — Barber (1). — Craw-

ford (2). — Hambleton (2). — Lindinger (6). — Van Duzee (3). — New-

Mexico: Barber (1). — Heidemann (2). — Montandon (3). — Van Duzee (2).

— Texas: Hambleton (2). — Herrick (1, 2). — Lindinger (5). — Montandon

(1,3,4,6). — Central-Amerika: Mexico: Ball(1,2). — Distant (7). — Essig (4).

— Hambleton (2). — Kirkaldy (5). — Leonardi (1). — Lindinger (3, 5,6). — Mon-

tandon (1, 3, 8). — Van Duzee (3). — British Horduras: Distant (13). —

Guatemala: Lindinger (3,5). — Montandon (1,4). — Osborn (1). — Van

Duzee (3). — Nicaragua: Crawford (2. — CostaRica: Montandon

(1,2,8). — Reuter (3). — Bahamas: Lindinger (3). — Bermuda:

Hambleton (2). — Cu ba: Cockerell et Robbins (1). — Ragues (1). — Hambleton

(2. — Jamaica: Distant (7). — Lindinger (3,5). — Van Duzee (3). —

Haiti: Hambleton (2). — Lindinger (3), — San Domingo: Distant (7).

— Lindinger (3,6). — PortoRico: Lindinger (3). — 8. Thomas: Hor-

väth (5). — Lindinger (5). — Guadelupe: Poppius (5). — Barbados:

Gowdey (2). — 8. Vincent: Hambleton (2). — Grenada: Horväth (5).

— Trinidad: Hambleton (2). — Lindinger (3,6). — West-Indien:

Systematik. 119

Ballou (1,2). — Newstead (4). — Lindinger (6), — Columbien: Lindinger

(6). — Montandon (1,8). — Reuter (3). — Schmidt (2,3). — Venezuela:

Lindinger (3, 5, 6). — Montandon (8). — Poppius (5). — Ecuador: Faber (]).

— Reuter (3). — Schmidt (3). — British Guiana: Distant (7), —

Holländisch-Guiana: Montandon (2). — Schumacher (1). — Fran-

zösisch-Guiana: Bergroth (6, 7, 9). — Magalhaes (1). — Montandon (2).

— Reuter (3). — Schumacher (1). — Peru: Matausch (4). — Montandon (1, 8).

— Reuter (3). — Schmidt (2). — Schumacher (1). — Strand (2) Platypleura

leopardina Dist. — Bolivien: Lindinger (5,6). — Montandon (1,8). —

Reuter (3, 5). — Schmidt (3). — Schumacher (1. — Brasilien: Distant (7).

— Horväth (9). — Lindinger (1, 3, 5, 6). — Lüderwaldt (1). — M agalhaes (1). —

Matausch (4). — Montandon (1,2, 6, 8). — Neiva (1). — Reuter (2, 3). — Schu-

macher (l., — Paraguay: Reuter (3). — Argentinien: Cockerell

(1,4). — Enderlein (2). — Iches (1,2). — Leonardi (1). — Lindinger (3, 5, 6).

— Montandon (1). — Reuter (3). — Chile: Lindinger (3, 5, 6).

Australien.

Hawaii-Inseln : Fullaway (1, 2, 3). — Kirkaldy (8, 10). — Kotinsky (1, 2, 3).

— Fidschi-Inseln : Muir (1). — Neu-Caledonien : Horväth (5). — Poppius (5). —

Neu-Guinea: Distant (10). — Horväth (5). — Kirkaldy (5). — Lindinger (6). —

Muir (1). — Poppius (5). — Schmidt (1,4). — Carolinen: Green (3). — Neu-

Seeland: Kirk et Cockayne (1). — Kontinent: Horväth (5). — Lindinger (5, 6).

— Montandon (5). — Schmidt (1. — N. Australien: Distant (9). —

Queensland:Distant (7, 9, 11). — Horväth (5). — West-Australien:

Distant (9). — N. S. Wales: Distant (9). — Horväth (6). — C.Australien:

Distant (9). — S.C. Australien: Distant (9, — Vietoria: Montandon

(5). —N.W. Australien: Distant (7). — Tasmanien : Distant (7). — Waigiu:

Schmidt (4). — Key: Schmidt (4). — Aru: Distant (10). — Poppius (1). —

Schmidt (4).

Systematik.

Heteropteren.

Banks (2) Katalog der nearktischen Heteropteren. — Hüber (1) Deutschlands

Heteropteren. — Oshanin (1) p.2—150 Katalog der paläarkt. Heteropteren:

Supplement. — Whittaker (3) Katalog für Lancashire u. Cheshire. — Reuter (5)

Phylogenie; Neues System; Charakteristik der Familien und Superfamilien usw.

Cimicidae (s. lat.)

Oshanin (2) pp. 2—70 Katalog der paläarkt. Arten; — (2) Referat über Kir-

kaldys Katalog. — Reuter (5) p. 79 Charakteristik. — Royer (2) Ergänzung zu

Kirkaldys Katalog. — Schumacher (3) Asopinen.

Acanthodiscocera n. subgen. Schumacher (I) p. 472, neue Untergattung zu

Discocera. .

Accarana Distant (9) p. 382 australica n. sp. Queensland.

Adelaidena n. gen, Distant (9) p. 468; p. 469 regina n. sp., N.W. Australien.

120 Insecta. Rhynchota für 1910,

Aeliomorpha Distant (8) p. 94 gazana n. sp., Rhodesien. — Schouteden (1) p. 84

simulans var. pectoralis n. var., Kilimandjaro und Meru.

Aeptus Schouteden (1) p. 79 singularis Dall.

Aethemenes Distant (8) p. 96 chloris Westw., syn. unicolor St., mentiens Walk.,

aethiops Dist., stalianus Kirk.

Agabotus Distant (8) p. 85 ventralis n. sp., Katanga.

Agonoscelis Distant (8) p. 95 Odendaali n.sp., Rhodesien; p. 96 Neavei n.sp.,

Katanga. — Schouteden (I) p. 82.

Amatembuna n. gen. Distant (8) p. 97; p. 98 Neavei n. sp., Katanga.

Amazxosana n. gen. Distant (8) p. 92; p. 93 punctata n.sp., Portug. Ostafrika,

Transvaal.

Amphaces Distant (9) p. 599 tibialis n. sp., Tasmanien; elongata n. sp., Tasmanien.

Anasida Distant (5) p. 195 orientalis n. sp., Bombay Prov.; — (8) p. 99 funebris

Dist.; Schoutedeni n. nom. für tenebrio Schout.

Anazxandra Kirkaldy (2) p. 108 taurina n.sp., Yunnan-Tali.

Annectus Zimmer (1) p. 166 pallidus n. sp., Nebraska.

Antestia Distant (8) p. 214 rufovittata n. sp., S. Afrika.

Arma Schumacher (3) p. 435 custos F.

Aspongopus Distant (8) p. 221 circumeinctus n. sp., Katanga. — Schouteden (4)

p. 404 mayumbensis n. sp., Kongo.

Atelides Kirkaldy (5) p. 62 centrolineatus Dall. ist = Sagrina vittata Spin. |

Atelocera Distant (8) p. 79 attenuata n.sp., Abessinien, Uganda; p. 80 castanea

n. sp., S.O.Rhodesien.

Austromalaya Distant (9) p. 376 Souefi n. sp., N. Queensland.

Bathrus Dallas Distant (9) p. 381; p. 382 dissimilis n. sp., Queensland.

Borrichias n. gen. Distant (9) p. 595; p. 596 taurus n. sp., ©. Australien.

Brachycerocoris Kirkaldy (2) p. 108 camelus Costa.

Brachyplatys Kershaw (1) p. 69 subaeneus Westw.

Brachymena Barber (1) p. 34 haedula St.

Caenomorpha Schouteden (1) p. 78 variegata var. usambarica n. var., Usambara.

Callidea Strand (3) p. 151 apicalis Schout.

Cantao Distant (12) p. 57 intermedius n. sp., Philippinen.

Cantheconidea Kirkaldy (2) p. 104 concinna Walk.

Carbula Kirkaldy (2) p. 105 crassiventris Dall. — Schouteden (1) p. 85 usambarica

n.sp., Usambara; p. 86 Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro, Brit. Ostafrika; Stali

n. Sp., Usambara.

Caura Distant (8) p. 90 Singeri n. sp., Abessinien; durbanensis n. sp., Natal.

Caystrus Distant (8) p. 84 nigriventris Germ., syn. marginiventris St.

Cazira Kirkaldy (2) p. 104 vegeta Kirk.

Censorinus n. gen. Distant (9) p. 598; iasmanicus n. sp., Tasmanien, Bruni Isl.

Cephaloplatys Distant (9) p. 473 Darwini n.sp., N. Australien; Clementi n. sp.,

W. Australien; p. 474 minor n.sp., Queensland.

Chilocoris Bergroth (2) p. 229 madagascariensis n.sp., Madagaskar.

Chlorocoris Stäl Barber (1) p. 35; p. 36 atrispinus St., hebetatus Dist., rufopictus

Walk., subrugosus St.

Chrysocoris Kirkaldy (2) p. 110 fascialis var. venustria n. var., Macao.

Cinxia Stäl Strand (1) p. 17 ist = Madates n. nom. (Datames Horv. präocc.).

Cnemobia n, gen. Bergroth (2) p. 229; p. 230 viridivaria n. sp., Madagaskar.

Systematik. 121

Coptosoma Kershaw (I) p. 71 cribraria F. — Sehouteden (I) p. 73 atriceps var.

aberrans n. var., Kilimandjaro u. Meru; catagrapha Mont. var.; p. 74 miria

n. sp., Usambara ; nebulosa Mont.; Raffrayi var. ventralis n. var., Kilimandjaro,

Meru; orientalis n. sp., Kilimandjaro; p. 75 pallens n. sp., Kilimandjaro u.

Meru. — Matsumura (4) p. 26 cribraria Fab., Taf. XII, Fig. 8.

Cosmopepla Olsen (1) p. 39 carnifex F.

Crollius Distant (8) p. 85 sudanus n. sp., Sudan.

Cuspicona Distant (9) p. 589 splendidula n. sp., Queensland.

Cyclopelta Distant (8) p. 220 abyssinica n.sp., Abessinien. — Strand (3) p. 151

tristis St.

Dalsira Distant (8) p. 215 atricostata n. sp., Uganda, Ruwenzori; p. 216 $. Tantia.

Dandinus Distant Distant (9) p. 371 syn. Testricoides Schout.; p. 372 crassus

Dist., syn. pulcherrimus Schout.

Datames Horväth Strand (1) p. 17 ist = Madates n. nom.

Dendrites Kirkaldy Kirkaldy (2) p. 107; Kershawi Kirk.

Diploxys Distant (8) p. 91 Floweri n. sp., Blue Nile; nilotica n. sp., Blue Nile;

p- 92 rhodesiana n. sp., Mashonaland. — Schouteden (1) p. 84 bicolor n. sp.,

Kilimandjaro.

Dippilana n. gen. Distant (8) p. 372; p. 373 membranacea n. sp., S. C. Australien.

Discocera Laporte Sehumacher (I) p. 472; p.472 Unterg. Acanthodiscocera

n. subgen.; (A.)cayennensis Lap., syn. gibbus Burm.; p. 473 (A.) Müllen-

hoffi n. sp., Bahia; (A.)n. sp., Surinam; p. 473 Unterg. Paradiscocera n. sub-

gen.; (P.)ochrocyanea Lep. et Serv.; p. 474 (P.)contempta n.sp., Peru;

(P.) coccinea F.; p. 475 (P.) laticornis Blanch.

Disderia n. gen. Bergroth (6) p. 20; p. 21 decorata Dist. (Phalaecus).

Dorpius Kirkaldy (2) p. 106 Kershawi n. sp., Macao, Hongkong.

Dregea n. gen. Distant (8) p. 81; p. 82 capensis n. sp., Capetown.

Dryadocoris Distant (8) p. 89 taurus n. sp., Katanga.

Durmia Schouteden (1) p. 87 tomentiventris Germ.; dubia n.sp., Kilimandjaro

u. Meru.

Ectenus Distant (9) p. 383 elongatus n. sp., Queensland.

Erachteus Distant (8) p. 83 rubromarginatus n.sp., Katanga; .spinosus Sign.,

syn. ? ventralis Bredd.

Eribotes Distant (9) p. 470 leana n.sp., N. S. Wales; p. 471 hobartensis n. sp.,

Tasmanien; Challengeri n. sp., N. Queensland.

Eumecopus Distant (9) p. 377 armatus F., syn. ruficornis Walk. u. calidus Walk.;

alexandrianus n. sp., N. Australien; p. 378 Eyrei n.sp., S.C. Australien;

p- 379 confusus n.sp., Queensland; p.380 Moseleyi n.sp., Queensland.

Eumenotes Distant (11) p. 418.

Eupolemus n. gen. Distant (9) p. 596; p. 597 picturatus n. sp., Tasmanien; p. 597

insularis n. sp., Tasmanien, King Isl.

Eurostus Kirkaldy (5) p. 62 validus Dall.

Euryaspis Distant (8) p. 98 congolensis n. sp., Kongo.

Eurydema Reuter (4) p. 74 Gebleri var. T'sherskii n. var., Ober-Lenafluß; dominulus

var. confluens n. var., zwischen Lena und Aldan. — Royer (3) p. 198 rotundi-

collis var. Berthae n. var., Frankreich.

Euschistus Morrill (1) p. 74 servus Say. — Zimmer (1) p. 167 latimarginatus

n. 8p., Nebraska.

122 Insecta. Rhynchota für 1910.

Eusthenes Kirkaldy (2) p: 111 robustus Lep. et Serv.

Farnya n. subgen. Schouteden (1) p. 81, Fußnote, neue Untergattung zu Halyo-

morpha; p. 81 (F.) kilimana n. sp., Kilimandjaro; (F.) versicolor var. colorata

n. var., Usambara; (F.) rikatlensis n. sp., Mossambik. i

Garceus Distant Distant (9) p. 594; p. 595 fidelis Dist.

Gastroxys Horväth Schouteden (1) p. 85 ist = @ynenica Dall.

Gellia Distant (8) p. 217 bicolorata n. sp., Katanga; p. 218 incognita n. sp., Afrika.

— Schouteden (1) p. 93 tristis var. latiuscula n. var., Kilimandjaro.

Gnathoconus Schouteden (1) p. 94 expansus Sign., syn. elongatus Dist.; p. 94

majusculus n. sp. (Tacolus n. gen. ?), Kilimandjaro. — [S. Legnotus.]

Gonopsis Distant (8) p. 219 bovilla n. sp., Natal; humeralis n. sp., Ovampoland.

— Schouteden (1) p. 93 trilineatus n. sp., Meru.

Graphosoma Bergevin (1) p. 45 lineatum L.; semipunctatum F., p. 45 f. pallidum

n. f., Algerien; p. 46 f.. melanicum n. f., Algerien. — Royer (5) p. 209 semv-

punctatum L., var. subaequale Horv. u. anceps Horv.; p. 210 var. furciferum

n. var., Frankreich; p. 210 lineatum L.; italicum Müll.

Gynenica Dallas Schouteden (1) p. 85, syn. Gastroxys Horv.; funerea Horv.

Hahnia Ellenrieder Kirkaldy (4) p. 8 = Philapodemus n. nom.

Halyomorpha Distant (8) p. 86 scoruba Dall., capitata Dist. u. pretoriae Dist.

gehören zu Tropicorypha. — Schouteden (1) p. 81, Fußnote, Unterg. Farnya

n. subgen.; p. 81 (F.) kilimana n.sp., Kilimandjaro; (F.) versicolor var.

colorata n. var., Usambara; (F.) rikatlensis n. sp., Mossambik.

Hermolaus Distant (8) p. 94 purpurissatus Reut. (Eysarcoris); sudanensis n. SP.,

Sudan.

Hiarchas n. gen. Distant (9) p. 601, für crassicornis Walk. (Stauralia) ; terminalis

Walk. (Stauralia).

Hillieria n. gen. Distant (9) p- 477; p. 478 acuminata n. sp., C. Australien.

Ibaka n. gen. Distant (8) p. 213; für Ilipla natalicola Dist. u. depressa H.-Sch.

Ilipla Distant (8) p. 213 natalicola Dist. u. depressa H.-Sch. = Ibaka n. gen.

Ippatha n. gen. Distan (9) p. 370; australiensis n. sp., N.- u. C. Australien; p. 371

ornata n.sp., Queensland.

Kalkadoona n. gen. Distant (9) p. 476; p. 477 centromaculata n. sp., C. Australien.

Kayesia Distant (8) p. 78 nigrolineata n. sp., Natal.

Koogobatha n. gen. Distant (9) p. 590; p. 591 mirabilis n. sp., Queensland.

Kumbutha n. gen. Distant (9) p. 369; quadrinotata n. sp., Queensland.

Legnotus Distant (8) p. 78 expansus Sign., syn. elongatus Dist. — [S. Gnathoconus.]

Madates n. nom. Strand (1) p. 17 für Datames Horv. (Cinxia St.).

Magwamba n.gen. Distant (8) p. 216; p.217 purpurascens n.sp., Rhodesien,

Katanga.

Menaccarus Distant (8) p. 80 atratus n. sp., Katanga.

Menestheus Stäl Distant (9) p. 469; Doddi n. sp., Queensland.

Menida Distant (9) p. 586 spectabilis n. sp., Queensland; p. 587 inconstans n. Sp.,

Queensland. — Kirkaldy (2) p. 106 ornata n.sp., Yunnan-Tali. — Schou-

teden (1) p. 90 Distanti Horv.; guttata n.sp., Kilimandjaro; dubia n. sp.

(an Iythrodes Germ.?), Kilimandjaro, Usambara, Natal. — Matsumura (4)

p- 26 histrio Fabr., Taf. XII, Fig. 2.

Meionymia Schouteden (1) p: 93 longiceps n. sp., Meru.

Mochus n. gen. Distant (9) p. 600; p. 601 fortis n. sp., Queensland.

Systematik. 123

Morna Distant (9) p. 589 leucospila Walk.

'"Munduala n. gen. Distant (9) p. 384; p. 385 iypica n. sp., Queensland.

Muritha n. gen. Distant (9) p. 373; Hermannsburgi n.sp., C. Australien.

Myappena n. gen. Distant (9) p. 585; p. 586 capito n. sp., Queensland.

Mycoolona n. gen. Distant (9) p. 475; atricornis Walk. (Aelia).

Mygoodano n. gen. Distant (9) p. 592; virescens n. sp., Queensland.

M yrochea Distant (8) p. 84 distincta Schout., syn. angulata Dist. u. affinis Schout.

Neoerollius n. gen. Distant (8) p. 212; p. 213 natalensis n. sp., Natal.

Neomazium n. gen. Distant (9) p. 465; p. 466 typicum n. sp., Queensland.

Neopharnus n. gen. Van Duzee (2) p. 73; fimbriatus n. sp., Florida.

Neostollia n. gen. Distant (9) p. 480 für Stollia fasciolata St.; bellula n. sp., Queens-

5 land; p. 481 formosa Dist. (Sepontia).

Nezara Matsumura (4) p.26 viridula L., Taf. XII, Fig. 1. — Morrill (1) p. 78

hilaris Say; p. 82 viridula L. — Schouteden (1) p. 89 naspirus Dall.; var.

scutellaris n. var., Kilimandjaro u. Meru; var. vittata n. var., Kilimandjaro;

var. sublorquata n. var., Kilimandjaro; var. personata n. var., Kilimandjaro

u. Brit. Ostafrika; var. subviridula n. var., Usambarae.

Odontotarsus Distant (8) p. 77 Druryi n. sp., N. Rhodesien.

Paradiscocera n. subgen. Schumacher (H) p. 473, neue Untergattung zu Discocera.

Pegala Distant (9) p. 590 figulina n. sp., N. Queensland; — (12) p. 58 Clemensae

n. sp., Taf. I, Fig. 2, Philippinen.

Pentatoma Meorrill (1) p. 25 ligata Say; p. 73 Sayi St.

Phalaecus Stäl Bergroth (6) p. 19; p. 20 pustulatus Geer; p. 21 decoratus Dist.

= Disderia n. gen.

Philapodemus n. nom. Kirkaldy (4) p. 8, für Hahnia Ellenr.

Phimodera Kiritschenko (2) p. 21 Reuteri n. sp., Altai.

Phloea Lep. et Serv. Magalhaes (I); paradoxa Burm. (Taf. I—-IV); corticata

Dr., syn. cassidoides Lep. et Serv., paradoxus Hahn, corticalis Brulle; para-

doxa Burm., syn. longirostris Spin.; subquadrata Spin.

Phyllocephala Distant (8) p. 218 dilatata gehört zu Gellia.

Picromerus Schumacher (3) p. 381 bidens L.

Piezosternum Strand (3) p. 151 calidum Breddini Schout., Fig. 3.

Platynopus Schouteden (4) p. 403 Delevali n. sp., Kongo.

Podisus Olsen (1) p. 40 maculiventris Say. S

Pododus Distant (8) p. 81 ovulus Dall., syn. striatus Dist.

Poeeilocoris Kirkaldy (2) p. 110 Druraei L.

Poecilometis Distant (9) p. 380 borealis n. sp., N. Australien.

Poliocoris n. gen., Kirkaldy (3) p. 130; amnesis n. sp., Miocän-Lagen, Colorado.

Ponsila Schouteden (1) p. 75 usambarica n. sp., Usambaria; p. 76 var. colorata

n. var., Usambara.

Pseudaelia n. gen. Distant (9) p. 478; p. 479 Clementi n. sp, W. Australien.

Roebournea Distant (9) p. 595 diversa Dist., syn. tumidifrons Van Duz.

Sagrina Kirkaldy (5) p. 62 vittata Sign., syn. Atelides centrolineatus Dall.

Sastragala Distant (9) p. 602 versicolor n. sp., Queensland.

Sciocoris Distant (9) p. 466 Throughtoni n. sp., Throughton Isl. (N. W. Australien).

— Schouteden (1) p. 79 uniformis n. sp., Kilimandjaro u. Meru.

Scotinophära Matsumura (4) p. 26 tarsalis Voll., Taf. XII, Fig. 13.

124 Insecta. Rhynchota für 1910.

Sceribonia Strand (3) p. 151 bipustulata Walk., Fig. 2.

Sepontia Distant (9) p. 481 formosa Dist. ist = Neostollia n. gen.

Serbana Distant (10) p. 313 borneensis n. sp., Taf. XXI, Fig. 10, Borneo.

Solenostethium Kirkaldy (2) p. 110 chinense St.

Spudaeus Distant (9) p. 374 Iyricus Dist. ist eine T’heseus.

Stauralia Distant (9) p. 601 Zittleri n. sp., Tasmanien.

Stollia Distant (9) p. 481 fasciolata St. ist = Neostollia n. gen.

Tacolus n. gen. Schouteden (1) p. 94 für Gnathoconus majusculus n. sp., Kilimand-

jaro.

Tamolia Kirkaldy (5) p. 62 ramifera Walk.

Tantia n. gen. Distant (8) p. 216 für Dalsira Gelei Dist., vicina Sign., striata Sign.,

albopunctulata Bergr.

Teleocorisn. gen. Kirkaldy (3) p. 129; p. 130 pothetias n. sp., Mioeän- Lagen, Colorado.

Testricoides Schouteden Distant (I) p. 371 ist = Dandinus Dist.; T. pulcherrimus

Schout. ist = crassus Dist.

Theseus Distant (9) p. 374 lyricus Dist. (Spudaeus); Turneri n. sp., Queensland;

p. 375 scutellatus n. sp., Queensland.

Tholosanus Distant (9) p. 476 piceatus n. sp., Tasmanien.

Thoria Schouteden (1) p. 78 Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro.

Tropicorypha Distant (8) p. 86, Halyomorpha scoruba Dall., capitata Dist., pretoria

Dist., gehören hierzu; p. 87 rubrocincta n.sp., Natal u. Brit. Ostafrika;

maculata n. sp., Basutoland u. Mashonaland; p. 88 fumigata n. sp., Rhodesien

u. Katanga.

Turrubulana n. gen. Distant (9) p. 385; p. 386 plana n.sp., S.C. Australien.

Vandiemenia n. gen. Distant (1) p. 587; p. 588 Tasmani n. sp., Tasmanien.

Veterna Schouteden (1) p. 83 sanguineirostris Thunb.

Vitellus Distant (9) p. 593 bovillus n. sp., Queensland; taurus n. sp., N. S. Wales.

Aradidae.

Distant (15) Supplement zu Distant 1903 (9). — Oshanin (1) p. 129—130

Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 75 Charakteristik.

Aneurus Distant (15) p. 131 Greeni Dist. — Mac Gillavry (2) p. XLI laevis F.

Aradus Bervoets (1) p. 280 madagascariensis n.sp., in Kopal, Madagaskar. —

Bergroth (5) p. 17 madagascariensis Berv. ist = flavicornis Dalm. — Distant

(15) p. 128 dignatus Dist., p. 129 antemissus Dist.

Mezira Distant (15) p. 130 tenuicornis Dist.

Neuroctenus Horväth (3) p. 72 socialis n. sp., Kilimandjaro.

Joppeicidae.

Reuter (5) p. 75 Charakteristik.

Coreidae.

Kirkaldy (5) p. 63 Name muß stehen. — Oshanin (1) p. 70—85 Katalog der

paläarkt. Arten. — Schouteden (2?) Kilimandjaro u. Meru. — Reuter (5) p. 78

Charakteristik.

Acanthocoris Schouteden (4) p. 406 Delevali n. sp., Kongo.

Alydus Royer (1) p. 86 calcaratus var. hirsutus Kol.

Systematik. 125

Anoplocnemis Bergroth (2) p. 231 brevicornis n. sp., Madagaskar; brevicrus n. 8p.,

Madagaskar; p. 232 Whytei Dist. u. moesta Dall. = unsichere Arten..

Boisea n. gen. Kirkaldy (10) p. 123 für Leptocoris vittata.

Burtinus Barber (1) p. 37 notatipennis St., syn. ? femoralis Dist.

Corizus Hambleton (1) lateralis Say; — (2%) Monographie der N:- u. C.-Amerikan.

Arten; p. 134 Diagnose der Gattung; p. 135 Tabelle; p. 136 hyalınus F.,

Taf. VIII, Taf. IX, Fig. 1, Taf. X, Fig. 1; p. 137 crassicornis L., syn. punct-

ventris Dall., novaeboracensis Sign., borealis Uhl., Taf. VIII, Taf. IX, Fig. 2,

Taf. X, Fig. 2; p. 138 viridicatus Uhl., syn. hyalinus Uhl., Taf. IX, Fig. 3,

Taf. X, Fig. 3; p. 139 scutatus St., syn. jactatus Sign., Taf. IX, Fig. 4, Taf. X,

Fig. 4; p. 139 indentatus n.sp., British Columbia, Washington, Oregon,

California, Wyoming, Colorado, Taf. IX, Fig. 5, Taf. X, Fig. 5; p. 140 tuber-

culatus n. sp., Washington, Taf. VIII, Taf. IX, Fig. 6, Taf. X, Fig. 6; p. 140

lateralis Say, syn. punctipennis Dall., Taf. IX, Fig. 8, Taf. X, Fig. 8; p. 141

validus Uhl., Taf. IX, Fig. 9, Taf. X, Fig. 9; p. 142 sidae F., syn. pictipes

St., mexicanus Sign., proximus Sign., nebulosus Sign., anticus Sign., ventralis

Sign., Taf. VIII, Taf. IX, Fig. 10, Taf. X, Fig. 10; p. 143 parvicornis Sign.,

Taf. IX, Fig. 7, X, Fig. 7; p. 143 nigristernum Sign., syn. Bohemani Sign.,

Taf. IX, Fig. 12, Taf. X, Fig. 12; p. 144 punctatus Sign., Taf. IX, Fig. 11,

Taf. X, Fig. 11.

Carlisis Strand (3) p. 151 Stuhlmanni Karsch, Fig. 5.

Cletus Matsumura (4) p. 25 trigonus Thunb., Taf. XII, Fig. 6; bipunctatus H.-Sch.,

Taf. XII, Fig. 4.

Harmostes Barber (1) p. 37 subrufus Dist.

Latimbus Schouteden (4) p. 405 diversus n. sp., Kongo.

Leptocorisa Matsumura (4) p. 25 varicornis F., Taf.

Leptoglossus Heidemann (2) p. 191 magnoliae n.sp., Verein. Staaten; p. 195

clypealis n. sp., id.; p. 196 occidentalis n. sp., id. — Morrill (1) p. 88 phyllopus L.

Leptocoris Kirkaldy (10) p. 123 vittata Kirb. = Boisea n. gen.

Myrmus Reuter (4) p. 75 formosus Jak.; p. 76 calcaratus Rt.

Ozxycranum n. gen. Bergroth (2?) p. 232; p. 234 paradozum n.sp., Madagaskar.

Petalocnemis Sehouteden (4) p. 406 antennatus n. sp., Kongo.

Petascelis Strand (3) p. 151 remipes var. auriventris n. var., Fig. 6, S. Albert-

Nyanza.

Phyllomorpha Jeannel (2) laciniata Vill.

Prionotylus Bergevin (3) brevicornis Muls. et R.

Riptorpus Matsumura (4) p. 25 fuscus Fabr., Taf. XII, Fig. 7.

Therapha Bergevin (2) p. 308 nigridorsum Put., gute Art; p. 309 var. pallescens

n. var., Algerien. — Bervoets (2) p. 331 inclusa n. sp., in Kopal, Sansibar.

Xenogenus Barber (1) p. 37 extensum Dist.

Neididae.

Bergroth (9) p. 297 selbständige Familie. — Reuter (5) p. 77 Charakteristik.

— 0Oshanin (1) p. 85—89 Katalog der paläarkt. Arten.

Colobathristidae.

Bergroth (9) p: 297 selbständige Familie. — Distant (15) p. 30 = Myodo-

chidae.

126 Insecta. Rhynchota für 1910.

Centromus n. gen. Bergroth (9) p. 301; p. 302 trispinosus n. sp., Sarawak.

Colobathristes Bergroth (9) p. 303 facetus Horv.

Malcus Stäl Distant (15) p. 32 scutellatus Dist., syn. flavidipes Bredd. nec St.

Molybditis n. gen. Bergroth (9) p. 299; p. 300 Horvathi n. sp., Sarawak.

Nerthus Distant Distant (15) p. 33; Dudgeoni Dist.

Phaenacantha Horväth Distant (15) p. 30; p. 31 sedula Horv.; p. 32 viridipennis

Horv.

Symphylax Bergroth (9) p. 303 sp., Sarawak.

Myodochidae.

Bergroth (9) Colobathristidae = selbständige Familie. TDistant (15) p. 30

Colobathristinae: S. unter Colobathristidae] — Distant (15) Supplement zu

Distant 1903 (9). — Reuter (5) p. 76 Charakteristik. — Oshanin (1) p. 89—126

Katalog der paläarkt. Arten.

Abanus Distant Distant (15) p. 81; p. 82 coloratus Dist.

Abgarus n. gen. Distant (15) p. 313; p. 314 typicus n. sp., Taf. XXI, Fig. 4, Borneo.

Adauctus Distant Distant (15) p. 65; cupreus Dist.

4ethalotus Stäl Distant (15) p. 2, syn. Astacops St., Horni Bredd.; p. 3 indicatus

Dist.; — (10) p. 314 borneensis n. sp., Taf. XXI, Fig. 5, Borneo.

Agunga Distant Distant (15) p. 58; crassa Dist.; p. 59 fulgida Dist.

Aoploscelis Kiritschenko (4) p. 315 Koeppeni n. sp., Krim.

Aphanus Distant (15) p. 67 kangricus Kirk.; p. 68 Dudgeoni Dist.; p. 69 ornatulus

Dist.; bengalensis Dist.; p. 70 suratensis Dist.

Arocatus Distant (15) p. 10 continctus Dist.

Artheneis Spinola Horvath (6) p. 11, syn. Tyrrheneis Kirk., Genotype foveolata

(nec = N ysius).

Artemidorus Distant (11) p. 418 u. Malcus (gegen Bergroth).

Aspilocoryphus Distant (15) p. 10 modestus Dist.

Atkinsonianus Distant Distant (15) p. 90; p. 91 reticulatus Dist.

Caenocoris Distant (15) p. 12 dimidiatus Bredd.

Chauliops Distant (15) p. 34 lobatula Bredd., syn. fallax Bredd. (nec Scott);

p: 35 nigrescens Dist.

Clerada Signoret Horväth (5) p. 622 Tabelle; p. 623 bipunctata n. sp., Neu Guinea;

apicicornis Sign., syn. terminalis Walk.; p. 624 ferruginea n. sp., Australien;

laticollis n. sp., Queensland, Australien; setulosa n. sp., Neu Guinea; p. 625

noctua Dist.; rufangula Bergr.

Cligenes Distant (15) p. 62, ayn. Botocudo Kirk., Microcoris Bergr.; sexnotatus

Bergr.

Consivius Distant (15) p. 11; collinus Dist.

Oymnus. — S. Cymus.

Cymoninus Breddin Distant (15) p. 15 ist = Ninus.

Cymus Distant (15) p. 16 nanulus Bredd. — Matsumura (4) p. 24 tabaci n. sp.

Taf. XII, Fig. 17, Formosa [Cymnus].

Dieuches Distant (15) p. 71 nudipes Bredd.; p. 72 Horni Bredd.; p. 73 villosulus

Bredd.

Diwiella Distant (15) p. 63 bengalensis Dist.

Dinomachus Distant (15) p. 39 rhacinus Dist.; p. 40 nitidiusculus Dist., indicus

Dist.

Systematik. 127

Drymus Van Duzee (2) p.76 crassus n. sp., N. Carolina, New Jersey, New Hamp-

shire.

Entisberus Distant (15) p- 59 ?subsericea Bredd.; Fußnote, nicht = Pamera.

Epelytes n. gen. Kirkaldy (10) p. 119; drapetes n. sp., Hawaii.

Epibomius Distant Distant (15) p. 35; p. 36 pusa Dist.

Eremocoris Fieber Distant (15) p. 41; fypicus Dist.

Eucosmetus Distant (15) p. 54 mimicus Dist.

Euhemerus Distant Distant (15) p. 42; latus Dist. |

Geocoris Distant (15) p. 23 superbus Mont.; p. 24 pulvisculatus Dist,;. Duhreusli -

Mont.; p. 25 annulicornis Sign., syn. fenestellus Bredd. u. splendidus Dist.;

Maindroni Mont.; p.26 kalighatus n.sp., Calcutta; p. 27 hirsutus Mont.;

puri n. sp., Bengal; p. 28 jucundus.

Germalus Stäl Distant (15) p. 29; Greeni n. sp., Ceylon.

Gonsalvus Distant (15) p. 91 spinosus Dist.

Graptostethus Distant (15) p. 7 maculatus var. sinhalana Kirk.; collaris Bredd.,

verticalis Dall.

Hemidiptera Leon Horvath (6) p. 14 ist = N ysius.

Ischnodemus Distant (15) p. 22 erebus Dist.; atromaculatus Dist.

Kanigara Distant Distant (15) p. 66; flavomarginata Dist.

Lemnius Distant (15) p. 60 ovatus Dist., syn. inornatus Bredd.

Lethaeus Distant (15) p. 77 taprobanes Kirk.; crassiceps Dohrn; p. 78 carinulatus

Bredd.

Lispochroa Breddin Distant (15) p. 89; p. 90 blandula Bredd.

Lua Distant Distant (15) p. 87; p. 88 tartarea Dist.

Lygaeosoma Distant (15) p. 9 pusillum var.

Lygaeus Distant (15) p. 4 pandurus Scop., syn. militaris F.; p. 5 saratilis Bao >

syn. tesselatus Goeze; simla Dist.; p. 6 eous Dist.

Macropes Distant (15) p. 17 dilutus var. nesiota Bredd.; p. 18 leucoderma Bredd.;

sinhalanus Kirk.; p. 19 raja Dist.; p. 20 uniformis Dist.; p. 21 privus Dist:;

thoracicus Dist.

Macroplax Pie (3) p. 39 Preyssleri var. Jaqueti n. var., Frankreich.

Macropterna Pie (3) p. 39 convexa var. cannensis n. var., Frankreich: Cannes.

Mahisa Distant Distant (15) p. 46; ceromatica Dist.

Mana’'amus Distant Distant (15) p. 86; montanus Dist.

Maramaldus Distant Distant (15) p. 55; admistus Dist.

Maruthas n. gen. Distant (15) p. 44; p. 45 saniosus n. sp., Ceylon.

Meschia n. gen. Distant (15) p. 36; p. 37 pugnax n.sp., Calcutta; p. 38 quadri-

maculata n. sp., OÖ. Bengal.

Microcoris Bergroth Distant (15 S. 62 ist = Cligenes.

Naudarensia Distant (15) p. 76 manipurensis Dist.

Navarrus Distant Distant (15) p. 47; p. 48 phaeophilus Walk.

Neolethaeus Distant Distant (15) p. 79; p. 80 typicus Dist.

Neseis n. subgen. Kirkaldy (8) p. 537, neue Untergattung zu Nysius, Zyhe monti-

cola Wh.

Ninus Distant (15) p. 15, syn. Cymoninus Bredd.; singalensis Bredd., syn.

insignis St.; subunicolor Bredd.

Notochilaster Breddin Distant (15) p. 48; p. 49 teres Bredd.

128 Insecta. Rhynchota für 1910.

Nysius Dallas Kirkaldy (8) p. 536; p. 536—537 Tabelle der hawaiischen Arten;

p- 537 Unterg. Neseis n. subgen. für monticola Wh.; p. 536 Unterg. Oceanides

n. subgen. für nimbato Kirk.; p. 537 saundersianus Kirk.; p: 538 mauiensis

Blackb.; p. 539 hylaeus n. sp.; kamehamela Kirk.; p. 540 lichenicola n. sp.,

p. 541 var. brunnealis n. var., var. atralis n. var.; p. 541 insulicola n. sp.;

silvestris n. sp.; p. 542 oresitrophus n. sp.; nubicola n. sp.; p. 543 nimbatus

n. sp.; p. 544 oribasus n. sp.; insulivagus n. 8p.; montivagus n. Sp.; monticola

n. sp., alle: Hawaiische Inseln. — Distant (15) p. 13 minor Dist.; lacustrinus

Dist.; p. 14 inconspicuus Dist.; melanicus Dist. — Horvath (6) p. 11, Geno-

type cymoides; nicht = Artheneis Spin.; p. 13 euphorbiae n. sp., Mauritius;

p. 14 vinitor Bergr., gute Art; groenlandicus Zett.; p. 14 Hemidiptera Haeckeli

Leon ist ein N ysius.

Oceanides n. subgen. Kirkaldy (8) p. 536, neue Untergattung zu Nysius, Type

nimbato Kirk.

Oncopeltus Distant (15) p. 4 rubricatus St.

Ozxycarenus Distant (15) p. 44 musculus Bredd.; Fußnote, latus Kirb, ist nicht

= hyalinipennis Costa.

Pachygrontha Distant (1%) p. 59 nigrilineata n.sp., Taf. I, Fig. 3, Philippinen.

Pamera Distant (15) p. 50 vincta, syn. periplanios Kirk., pacifica Kirk. (nec St.);

Nietneri; p. 50 Emersoni Dist.; p. 5l mimula Bredd.; p. 52 sinhalana Kirk.

— Kirkaldy (10) p. 122, Type = Pachymerus pedester.

Pamerana Distant Distant (15) p. 53; cuneata Dist.

Paromius Distant (15) p- 49 seychellesus; p. 50 exiguus, syn. robustior Bredd.

Pirkimerus Distant (15) p. 17 nicobarensis Dist.

Platyplax Pie (1) p. 180 salviae var. meridionalis n. var., Cannes.

Plinthisus Van Duzee (2) p. 75 americanus n. sp., New Hampshire, Ontario.

Poeantius Distant (15) p. 75 lineatus St., syn. brevicollis Bredd.

Potamiaena n. gen. Distant (15) p. 61; aurifera n. sp., W. Bengal.

Rhyparochromus Van Duzee (2) p. 74 angustatus n. sp., Vancouver Isl., Washington.

Sadoletus Distant (15) p. 38 pallescens Dist.

Stenophthalmicus Montandon (8) p. 1, Fußnote, fajoumensis Costa, syn. miztus

Mont. (nec pictus!).

Teutates Distant Distant (15) p. 63; p. 64 sculpturatus Dist.

Tropistethus Distant (15) p. 62 simulans Dist.

Usilanus Distant Distant (15) p.82; p. 83 burmanicus Dist.; p. 84 denotatus Dist.

Uzza Distant Distant (15) p. 74; p. 75 karenia Dist.

Pyrrhoecoridae.

Distant (15) Supplement zu Distant 1903 (9). — Oshanin (1) p. 127

—128 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 76 Charakteristik.

Abulfeda Distant Distant (15) p. 95; p-. 96 punctatus Dist.

Antilochus Distant (15) p. 94 Coqueberti, syn. amorosus Bredd.; lineatipes, syn.

lineaticeps Bredd.

Arhaphe Barber (1) p. 28 cicindeloides Walk. u. carolina.

Armatillus Distant (15) p. 97 verrucosus Dist ist ein Pyrrhocoride (nicht Cimicide).

Cenaeus Sehouteden (2) p. 152 kilimanus n. sp., Kiillmandjaro; usambarae n. sp.,

Usambara; Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro.

Systematik. 129

Dermatinus Distant (15) p. 97 erebus Dist. — Schouteden (2) p. 153 Schulzei n. sp.,

Usambara; distinctus n. sp., Kilimandjaro.

Dindymus Distant (15) p. 97 sita Bredd. (Physopelta).

Dysdercus Distant (15) p. 100 cingulatus, syn. micropygus Bredd. u. luteolus Bredd.

— Schouteden (2) p. 154 pretiosus var. fallax n. var., Kilimandjaro; orientalis

n. sp., Brit. Ostafrika; var. pulchra n. var., Kilimandjaro u. Meru; p. 154

nigrofasciatus var. intermedius n. sp., Kilimandjaro u. Meru; var. nigriceps

n. var., Kilimandjaro u. Meru. — Karasek (1) Ei.

Ectatops Distant (15) p. 94 Signoreti n. sp., Silhet.

Euscopus Distant (15) p. 94 albatus Dist.; p. 95 indecorus syn. var. stigmaticus

Bredd.

Indra Kirkaldy et Edwards Distant (15) p. 99; glebula Kirk.

Odontopus Distant (15) p. 96 nigricornis var.

Physopelta Distant (15) p. 97 sita Bredd. ist eine Dindymus.

Pyrrhopeplus Distant (15) p. 97 posthumus Horv. für pietus.

Rhodoclia [n. gen. Distant (1) p.58; p.59 convictionis n. sp., Nilgiri Hills]

[als Miride!]; — (15) p. 92; p. 93 comvictionis Dist. [ist eine Pyrrhocoride !]

Scantius Distant (15) p. 98 Forsteri Fabr., syn. clavimanus Fabr., deustus Thunb.,

centralis Sign.; obscurus Dist.; p. 99 coriaceus n. sp., Indien.

Sericocoris Strand (3) p. 151 cosmohymen n.sp., Fig. 7, N. Albert Eduardsee.

Stenomacra Barber (1) p. 37 marginella H.-Sch.

Tingidae.

Distant (15) p. 100—126 Supplemant zu Distant 1903 (9). — Reuter (5)

p. 77 Charakteristik (Tingididae u. Piesmidae). — Oshanin (1) pp. 129—129

Katalog der paläarkt. Arten.

Abdastartus n. gen. Distant (15) p. 103; tyrianus n. sp., Bengal.

Acalypta Reuter (4) p. 77 macrophthalma Fieb.

Aidoneus Distant Distant (15) p. 125; p. 126 dissimilis Dist.

Ammianus Distant Distant (15) p. 115 ist nicht = Phyllontochila Fieb. — Horvath

(3) p. 63, ist = Phyliontochila s. str.

Axiokersos Distant Distant (15) p. 124; ovalis Dist.

Ayrerus Distant Distant (15) p. 112, Fußnote ist nicht = Urentius Dist. [gegen

Horväth].

Belenus Distant Distant (15) p. 115, syn. Phyllontochila aa St., Sakuntala Horv.

(nec Kirk.); p. 116 dentatus Fieb.; angulatus Dist.; p. 117 bengalensis Dist.

— Horvath (3) p. 62, ist = Sakuntala Kirk.

- Bredenbachius Distant (15) p. 119 consanguineus Dist.; delineatus Dist.; p. 120

Annandalei Dist.; p. 121 humeralis Dist.

Cadmilos Distant Distant (15) p. 107; retiarius Dist.

Cadamustus Distant Distant (15) p. 108 ist = Stephanitis St.

Cochlochila Stäl Horvath (3) p. 67 — gute Gattung; kilimensis n. sp., Kilimandjaro.

— [S. Monanthia.]

Compseuta Stäl Distant (15) p. 105; p. 106 Lefroyi Dist. — Horväth (3) p- 70;

natalensis St. u. femoralis St. gehören zu Monanthia; p. 70 latipennis n. Sp-,

Kilimandjaro; p. 71 Montandoni Dist. u. var. simulans n. var., Kilimandjaro.

Copium Horväth (3) p. 61 floricola n. sp., Usambara.

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 1.

130 Insecta. Rhynchota für 1910.

C'ysteochila Horväth (3) p. 66 impressa n. sp., Kilimandjaro. — Distant (15) p. 126

taprobanes Kirk.

Elasmognathus Distant (15) p. 122 nepalensis Dist.

Hormisdas n. gen. Distant (12) p. 59; p. 60 pictus n. sp., Taf. I, Fig. 1, Philippinen.

Ildefonsus n. gen. Distant (15) p. 110; provorsus n. sp., O.-Himalaya.

Jannaeus Distant Distant (15) p. 117; p. 118 cuneatus Dist.

Leptobyrsa Felt (1) p. 72—75 explanata.

Malala n. gen. Distant (15) p. 101; bulliens n. sp., Ceylon.

Mokanna n. gen. Distant (15) p. 111; p. 112 princeps n. sp., Trichinopoly.

Monanthia Distant (15) p. 123 globulifera Walk., syn. bullita St. (Cochlochila).

— Horväth (3) p. 68 nodipennis n. sp., Kilimandjaro; p. 69 Sjöstedti n. sp.,

Kilimandjaro, p. 69 nigristernum n.sp., Kilimandjaro; p. 70 natalensis St.

u. femoralis St. gehören zu Monanthia (nicht Compseuta).

Mummius n. gen. Horväth (3) p. 65; bicorniger n. sp., Kilimandjaro.

Phatnoma Distant (15) p. 102 costalis Dist.

Phyllontochila Fieber Horväth (3) p. 62; p. 63 Unterg. Phyllontochila s. str. (syn.

Ammianus Dist.) u. Sinuessa n. subgen.; p. 63 ($.) alaticollis St.; p. 64 ($.)

Junodi Dist.; ($.) subinermis n.sp., Kilimandjaro; p. 65 ($.) Waelbroecki

Schout.

Physatochila Horväth (3) p. 66 sordidula n. sp., Meru.

Recaredus Distant Distant (15) p. 104; p. 105 rex Dist.

Serenthia Matsumura (4) p. 24 formosana n.sp., Taf. XII, Fig. 10, Formosa.

Sakuntala Kirkaldy Distant (15) p. 115 ist nicht = Belenus Dist. — Horväth (3)

p- 62, hat zu syn. Belenus Dist.

Sinuessa n. subgen. Horväth (3) p. 63, neue Untergattung zu Phyliontochila Fieb.

Stephanitis Stäl Distant (15) p. 108, syn. Cadamustus Dist., Moecenas Kirk.;

gallarum Horv.; p. 109 sordidus Dist.

Teleonemia Distant (15) p. 123 marginata Dist.

Urentius Distant (15) p. 112 olivaceus Dist; p. 113 sentis Dist.; p. 114 euonymus

Dist.; p. 112, Fußnote, ist nicht = Ayrerus [gegen Horväth)].

Enicocephalidae.

Distant (15) pp. 167—168 Supplement zu Distan t 1903 (9). — Reuter (2)

p. 74 Charakteristik.

Enicocephalus. — S. Henicocephalus.

Henicocephalus Distant (15) p. 167 barbatus Bergr.; p. 168 bellicus n. sp., Ceylon;

mellinus n. sp., Calcutta. — Johannsen (1) p. 2 Tabelle der Nord- u. Central-

amerikanischen Arten; p.3 culicis Uhl., syn. Schwarzi Ashm., Taf. I; p. 4

formicina Uhl.

Macrocephalidae.

Distant (15) pp. 127—128 Supplement zu Distant 1903 (9). — Reuter (5)

p- 73 Charakteristik.

Glossopelta Distant (15) p. 127 Dudgeont Dist.; lineolata Dist.

Reduviidae.

Distant (15) pp. 169—217 Supplement zu Distant 1903 (9) u. 1904 (1).

— Baker (1) Tabelle der Californ. Emesiden-Gattungen. — Oshanin (1) pp. 132

—136 u. 196 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 73 Charakteristik.

Systematik. 131

Acanthaspis Distant (1%) p. 60 Distanti Banks, Taf. I, Fig. 12; — (15) p. 193

bistillata var. picina St.; lineatipes; p. 194 bombayensis Dist.; maculata

Dist. (Velitra); p. 195 coprologus Ann. (Physorhynchus) = ?megaspila Walk.

Aga n. gen. Distant (12) p. 61; p. 62 albomarginalis n. sp., Taf. I, Fig. 5,

Philippinen.

Antiopula Distant (15) p. 196 typicalıs Dist.

Apocaucus Distant Distant (15) p. 184; p. 185 laneus Dist.

Aradellus Montandon (5) p. 71 distinctus Mont.; nigerrimus n.sp., Australien.

Aulacogenia Stäl Distant (15) p. 186, syn. Diaditus Dist. Allomastix Bergr.;

corniculata St., syn. errabundus Dist. (Diaditus).

Bagauda Distant (15) p. 176 splendens Dist., syn. decorus Bredd. — Horväth (1)

p. 271 tenebricola n. sp., Tanga.

Barce Baker (1) p. 227 Banksii n. sp., Californien.

Bardesanes Distant Distant (15) p. 187; p. 188 signatus Dist.

Callilestes Sehouteden (2) p. 150 kilimanus n. sp., Kilimandjaro.

Calphurnia Distant Distant (15) p. 173; p. 174 reticulata Dist.; p. 175 ? aberrans

Dist.

Centrocnemis Distant (15) p. 189 Deyrollei Sign.

Cleontes Horväth (1) p. 272 laminatus n.sp., Madagaskar.

Conorhinus Neiva (I) megistus Burm. (Lamus).

Coranus Kirkaldy (10) p. 123 sivae n. nom. für obscurus Kirb. — Schouteden (2)

p- 151 Reuteri n. sp., Kilimandjaro u. Meru.

Ectrychotes Distant (15) p. 200 haematogaster Burm.

Edocla Distant (15) p. 196 sindica Bergr.

Elymas Distant Distant (15) p. 178; p. 179 praesentans Dist.

Epirodera Distant (15) p. 190 bengalensis Dist.

Euagoras Distant (15) p. 209 plagiatus.

Gallobelgicus Distant Distant (15) p. 216; iypicus Dist.

Gardena Distant (15) p. 181 fasciata Dist.

Gutonius Distant Distant (15) p. 199, indicetus Dist.

Guithera Distant Distant (15) p. 176 syn. ? Lutevula Bredd.; p. 177 hortensia Dist.,

syn. ? lutea Bredd. (Lutevula); nubifera Dist.

Harpactor Distant (15) p. 203 erythropus L., syn. haemorrhoidalis Fabr., tessellatus

Fabr.; costalis; p. 204 moeandrus Dist.

Harpagocoris Sehouteden (2) p. 150 Sjöstedti n. sp., Usambara.

Hediocoris Sehouteden (2) p. 149 fasciatus var. discalis n. var.

Henricohahnia Distant (15) p. 217 Badgleyi Dist.

Holoptilus Distant (15) p. 170 flavus Mont.

Hoplopium n. gen. Bergroth (8) p. 204; p. 205 spinosum n.sp., Abessinien.

Irantha Distant (15) p. 217 armipes, syn. germana Bredd.

Isdegardes Distant Distant (15) p. 192; melanocephalus Dist.

Lanca Distant Distant (15) p. 212; p. 213 kandyensis Dist.

Libavius Distant (15) p. 198 tricolor Dist.

Lophocephala Distant (15) p. 202 Guerini, syn. incerta Am. et Serv.

Lateva Distant (15) p. 177 malayana Dist.

Lutevula Breddin Distant (15) p. 176 ist ? = Quithera Dist; p. 177 lutea Bredd.

ist ? = Guithera hortensia Dist.

Macracanthopsis Distant (15) p. 208 nigripes Pist.; p. 209 Hampsoni Dist.

132 Inseceta. Rhynchota für 1910.

Macrospongus n. gen. Horväth (1) p. 271; p. 272 Alluaudi n. sp., Tanga.

Munia Varela Kirkaldy (4) p. 8 ist = Varelia n. nom.

Nagusta Stäl Distant (15) p. 213, syn. Zelus Kol., Phanerocoris Jak.; p. 214

macroloba Bergr.; p. 215 singalensis Dist.

Occamus Distant Distant (15) p. 211; p. 212 typicus Dist.

Odontogonus Sehouteden (2) p. 151 Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro.

Oncocephalus Distant (15) p. 186 aterrimus Dist. — Kirkaldy (10) p. 122 semi-

ramide n. nom. für lineatus Walk.

Opisthoplatys Distant (15) p. 183; majusculus; cornutus Dist.

Orthocnemis Montandon (5) p. 70 basalıs Westw.

Phemius Distant (12) p. 61 minor n. sp., Taf. I, Fig. 9, Philippinen.

Phonergates Schouteden (2) p. 146 Stäli n. sp., Kilimandjaro u. Merw

Phonolibes Schouteden (2) p. 147 unicolor n. sp., Usambara.

Physorhynchus Distant (15) p. 195 coprologus Ann. ist eine Acanthaspis? = mega-

spila Walk.

Ploearia Distant (15) p. 180 anak Dist.

Ploeariodes B. Wh. u. Ploeariola Reut. Bergroth (1) p. 324 sind nicht identisch

[gegen Kiritschenko].

Ploiaria Baker (1) p. 226 californiensis n. sp., Californien.

Ploiariopsis Baker (1) p. 225 reticulata n. sp., Californien.

Pnirontis Banks (1) p. 324 modesta n. sp., Vancouver.

Poliosphageus n. gen. Kirkaldy (3) p. 130; p. 131 psychrus n. sp., Miocän-Lage,

Colorado.

Polytoxus Distant (15) p. 182 formidabilis n. sp., Madras Province.

Ptilocerus Distant (10) p. 315 venosus Walk., syn. guttifer Walk., ochraceus Mont.;

— (15) p. 169 umbrosüus Mont.; Montandoni n. sp., Ceylon. — Montandon (5)

p. 72 fuscovenosus Mont.

Ptilocoris Montandon (5) p. 73 Westwoodi n. sp., Kongo.

Quercetanus Distant (15) p. 198 relatus var.

Reduvius Distant (15) p. 191 delicatula Dist.

Rhaphidosoma Distant (15) p. 202 Greeni Dist.

Rhinocoris Schouteden (2) p. 148 Stäli n. sp., Kilimandjaro, Transvaal; suspectus

n. sp., Kilimandjaro u. Meru; var.? vieinus n. var., Kilimandjaro u. Meru;

p. 149 venustus var. concolor D. var.

Sastrapada Distant (15) p. 185 Baerensprungi, syn. bipunctata Bredd.

Scadra Distant (12) p. 61 illuminata n. sp., Philippinen; — (15) p. 197 militaris

Dist.; atricapilla Dist.

Schottus Distant (15) Distant p. 201; kandyensis Dist.

Scipinia Distant (15) p. 217 horrida, syn. javanica Bredd.

Serendiba Distant Distant (15) p. 210; p. 211 pundaluoyae Dist.

Smiliopus Montandon (5) p. 69 compressipes Bergr.

Sminthocoris Distant (15) p. 196 Reuteri Bergr.

Sminthus Kirkaldy (10) p. 123 anniversarius n.nom. für unifasciatus Walk.

Sphedanocoris Sehouteden (2) p. 145 Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro.

Sphedanolestes Distant (15) p. 204 fraterculus Bergr.; p. 205 minusculus Bergr.;

Badgleyi Dist.; Bowringi Dist.; p. 206 himalayensis Dist.; rubecula Dist.

— Schouteden (2) p. 149 bicolor n. sp., Kilimandjaro; meruensis n. ap., Meru.

Spiniger Banks (1) p. 324 arizonica n. sp., Arizona.

-ä

Systematik. 133

Staccia Distant (15) p. 185 diluta, syn. javanica Bredd.

Stesichorus Distant Distant (15) p. 190; p. 191 pilosus Dist.

Sycanus Distant (15) p. 207 galbanus Dist.; leucomesus Walk., syn. collaris Dist.

(nec Fabr.); p. 208 collaris Fabr.; albofasciatus Bergr.

Tribelocephala Distant (15) p. 182 orientalis n. sp., Bombay, Ceylon.

Varelia n. nom. Kirkaldy (4) p. 8, für Munia Var.

Varus Kirkaldy (10) p. 122 legionicus n. nom. für varıus Walk.

Velitra Distant (15) p. 194 maculata Dist. ist ein Acanthaspis.

Zelus Banks (1) p. 325 ferox n. sp., Arizona; audax n. sp., New York, Vancouver.

Joppeicidae.

Reuter (5) p. 75 Charakteristik.

Naeogeidae.

Distant (15) pp. 132—136 Supplement zu Distant 1903 (9). — Reuter (5)

p- 78 Charakteristik. — Oshanin (1) p. 130 Katalog der paläarkt. Arten.

Hebrus Distant (15) p. 132 bengalensis Dist. — Kuhlgatz (1) p. 180 ruficeps Thoms.,

Taf. II, Fig. 3.

Hyrcanus n. gen. Distant (15) p. 134; capitatus n. sp., Sikkim.

Merragata Buch. White Distant (15) p. 133, syn. Lipogomphus Berg; pallescens

Dist.; — (12) p. 60 cruciata n. sp., Taf. I, Fig. 1.

Timasius Distant Distant (15) p. 135; splendens Dist.; p. 136 atratus Dist.

Nabidae.

Distant (15) pp. 218—220 Supplement zu Distant 1904 (1). — Kirkaldy (8)

p. 546 Tabelle der Hawaiischen Gattungen und Untergattungen. — Reuter (5)

p- 73 Charakteristik. — Oshanin (I) p. 136 Katalog der paläarkt. Arten.

Acanthobrachys Fieber Distant (15) p. 219, syn. Arbela St., Lorichius Dist.; p. 220

nitidula St., syn. umbonatus Dist.

Allaeorhynchus Bergroth (8) p. 205 magnus n. sp., Abessinien; p. 206 niger Walk.

fehlt n Reuter und Poppius Monographie (1909).

Nabis Distant (15) p. 218 (Aeptus) mussooriensis Dist.; — (12) p. 62 Latreillei

n. sp., Philippinen. — [= Reduviolus.]

Phorticus Distant (12) p. 62 cardui n.sp., Taf. I, Fig. 4, Philippinen.

Reduviolus Poppius (4) p.58 (Aptus) pantherinus n.sp., Kilimandjaro; p. 59

(A.) hottentota Reut. — Reuter (2) p. 134 Unterg. Stenonabis n. subgen.;

(St.) centrovittatus n.sp., Brit. Ostafrika; p. 136 (St.) conspurcatus n. sP.,

Abessinien, Ins. Thome&; (St.) variegatus n.sp., Nigerien u. Ins. S. Thome;

p- 137 (St.) difficilis n. sp., St. Thome; p. 138 (St.) orientalis n. sp., Birmanien.

— [S. also Nabis.]

Stenonabis n. subgen. Reuter (2) p. 134, neue Untergattung zu Reduviolus.

Clinocoridae.

Oshanin (1) p. 139 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 71 Cha-

rakteristik.

Cimex Distant (15) p. 127 rotundatus Sign., syn. horrifer Kirk., macrocephalus

Fieb. — 6irault (2) lectularius L. — [= Olinocoris].

134 Insecta. Rhynchota für 1910.

Clinocoris Horväth (4) p. 12 pilosellus n. sp., Brit. Columbia; — (8) p. 361 dissi-

milis n. sp., Central Ungarn; p. 362 Tabelle der europ. Arten. — [$. Cimezx.]

Polyetenidae.

Horväth (9) pp. 573—574 Tabelle der Gattungen. — Kellogg et Payne (1)

p. 401 Literaturübersicht, p. 402 Tabelle der Gattungen nach Kirkaldy.

Ctenoplax n. gen. Horväth (9) p. 572; nycteridis n.sp., Taf. XIV, Fig. 2—5,

Victoria Nyanza.

Eoctenes Kellogg et Paine (1) p. 402 eknomius n.sp., Khartum. — Horväth (9)

p. 574 eknomius Kell. et Paine ist eine Syncrotus.

Ewuroctenes Kirkaldy Horväth (9) p. 573 ist = Polyctenes Gigl.

Hesperoctenes Horväth (9) p. 571 impressus n. sp., Taf. XIV, Fig. 1, S. Brasilien.

Polyctenes Gigl. Horväth (9) p. 573, syn. Euroctenes Kirk.; talpa Speis. u. inter-

medius Speis. gehören zu Syncrotus n. gen.

Syncrotus n. gen. Horväth (9) p. 573, für Polyctenes talpa Speis. u. intermedius Speis.

Acanthocoridae.

Distant (15) pp. 295—309 Supplement zu Distant 1906 (9). — Reuter (5)

p- 70 Charakteristik. — Oshanin (1) pp. 139—141 Katalog der paläarkt. Arten.

Almeida n. gen. Distant (15) p. 300; pilosus Popp. (Cardiastethus).

Ampkiareus Distant (15) p. 300 fulvescens.

Anthocoris Fallen Distant (15) p. 298, syn. Rhynarius Hahn, Leptomeris Lap.,

Phyllocoris Costa, ?Zopherocoris Reut.; p. 299 annulipes Popp. ; indicus Popp.

— Poppius (1) p. 139 aterrimus Dist.; syn. Arnulphus Dist.

Arnulphus Distant (15) p. 296 aterrimus Dist. — Poppius (1) p. 139 ist = Antho-

coris.

Blaptostethes Fieber Distant (15) p. 308; ceylanicus Popp.

Cardiastethus Distant (15) p. 300 pilosus Popp. = Almeida n. gen.

Galchana n. gen. Distant (15) p. 297; p. 298 humeralis n.sp., Simla.

Horniella n. gen. Poppius (1) p. 139; p. 140 polita n. sp., Ceylon. — Distant (15)

p- 304; p. 305 polita Popp.

Lasiochilus Reuter Distant (15) p. 302; corticalis Reut.; p. 303 perminutus Popp.

Montandoniola Poppius (4) p. 54 longiceps n. sp., Kilimandjaro.

Ostorodias Distant Distant (15) p. 304.

Scoloposcelis Fieber Distant (15) p. 304. — Poppius (1) p. 140 picicornis Popp.

ist = parallelus Motsch.

Septieius n. gen. Distant (15) p. 295; p. 296 clarus n. sp., Calcutta.

Sesellius Distant Distant (15) p. 304; parallelus Motsch., syn. picicornis Popp.

(Scoloposcelis).

Tripkleps Distant (15) p. 305 ianthe n. sp., Calcutta; p. 306 sublaevis Popp.; p. 307

puncticollis Popp.; pluto n. sp., Caleutta. — Poppius (4) p. 55 Sjöstedti n. SP.,

Kilimandjaro.

Termatophylidae.

Reuter (5) p. 70 Charakteristik.

Termatophylum Poppius (4) p. 56 nigrum n. sp., Kilimandjaro. .

Systematik. 135

Microphysidae.

Reuter (5) p. 70 Charakteristik.

Nabidomorpha n. gen. Poppius (4) p. 57; bimaculata n.sp., Kilimandjaro.

Miridae.

Distant (15) pp. 228—294 Supplement zu Distant 1904 (1). — Reuter (5)

p. 60 u. p. 84 Charaktere; p. 98—102, 135—140 Phylogenie; pp. 107—134 System;

pp. 141—167 Liste der Gattungen. — Oshanin (1) pp. 141—149 u. 196, Katalog

der paläarkt. Arten.

Abibalus Distant Distant (15) p. 269; regulus Dist.

Acratheus Distant Distant (15) p. 284; p. 285 nocturnus Dist.

Acrotelus Reuter (4) p. 84 pülosicornis Reut.

Adelphocoris Bergroth (%) p. 64 umbratus n. sp., Französ. Guiana. — Reuter (4)

p. 78 ticinensis var. suturalis Jak.

Alloeomimus n. gen. Reuter (4) p. 81; unifasciatus Fieb. et Reut. (Systellonotus).

Antiphilus n. gen. Distant (3) p. 521; p. 522 amicus n. sp., Darjeeling, Kurseong;

— (15) p. 272; p. 273 amicus Dist.

Apollodotus n. gen. Distant (3) p. 454; praefectus n. sp., Ceylon; — (15) p. 247;

praefectus Dist.

Aristobulus n. gen. Distant (4) p. 16; p. 17 filius n. sp., Darjeeling; — (15) p- 285;

p- 286 filius Dist.

Armachanus Distant (1) p. 60 nilgiriensis n. sp., Nilgiri Hills; — (15) p. 281 nıl-

giriensis Dist.

Aserymus n. gen. Distant (15) p. 245, syn. Zanessa Dist. nec Kirk.; Type sanguino-

lentus Dist.

Aspidacanthus Reuter (4) p. 81 myrmecoides Reut.

Azizus n. gen. Distant (4) p. 10; p. 11 basilicus n. sp., Bengal; — (15) p. 273;

p- 274 basilicus Dist.

Bazedorus n. gen. Distant (4) v. 15; tyrianus n. sp., Punjab; — (15) p. 283; tyrianus

Dist.

Bothriomiris Kirkaldy Bergroth (3) p. 235; ist eine Cylapine; p. 236 ornatus n. sp.,

Sarawak; p. 237 marmoratus Kirk. u. dissimulans Walk. = simulans Walk.

Bothrophorella Reuter Bergroth (7) p. 66.

Brachynotocoris Reuter (4) p. 82 puncticornis Beut.

Callichila Bergroth (7) p. 68 grandis Blanch., syn. majuscula Dist. (Resthenia).

Calocoris Bergroth (%) p. 68 Schmidti Fieb. ist = bimaculatus H.-Sch. — Distant

(3) p- 511 rana n. g., Darjeeling; — (15) p. 253 rama Dist. — Poppius (4)

p-: 36 phytocoroides n. sp., Meru. — Reuter (1) p. 51 stoliczkanus Dist. ist ? eine

Eurycyrtus; — (4) p. 79 samojedorum J. Sahlb.

Camptobrochis Distant (3) p. 516 exornatus n. sp., Mussooree; p. 517 qualis n. sp.,

Simla Hills; — (15) p. 260 exornatus Dist.; p. 261 signatus Dist.; qualis Dist.

— Poppius (4) p. 50 ostentans var. obscuricollis n. var., Kilimandjaro u. Meru;

var. nigricollis n. var., Kilimandjaro; var. saturnides Kirk.

Campylomma Reuter (4) p. 87 Oertzeni Reut. ist ? = diversicornis var.

Capsus Heidemann (3) p. 200 solani n.sp., California, Washington, Utah.

Ceratocapsus Bergroth (%) p. 68 cubanus n, nom, für punctulatus Reut. 1875 (Cerato-

capsus nec Trichia).

136 Insecta. Rhynchota für 1910.

Cinnamus n. gen. Distant (3) p. 441; p. 442 rhinoceros n. sp., Ceylon; — (15) p. 230;

rhinoceros Dist.

Collaria Poppius (4) p. 30 obscuricornis n. sp., Kilimandjaro u. Meru.

Cyphopelta n. gen. Van Duzee (2) p. 831; montana n. sp., California.

Öyrtopeltis Kirkaldy (8) p. 553 hawaiiensis Kirk.

Cyrtorrhinus Butler (2) p. 29 geminus Flor.

Dashymenia n. gen. Poppius (6) p. 170; p. 171 convezxicollis n. sp, Pulo Penang.

Dichrooscytus Van Duzee (2) p. 78 marmoratus n. sp., New Mexico.

Dicyphus Poppius (4) p. 52 persimilis n. sp., Kilimandjaro. d

Dimorphocoris Poppius (4) p. 51 alpinus n. sp., Kilimandjaro.

Dioclerus n. gen. Distant (4) p. 12; p. 13 praefectus n. sp., Ceylon; — (15) p. 278;

p. 279 praefectus Dist.

Diophantus n. gen. Distant (3) p. 510; Iiteratus n. sp., Ceylon; — (15) p. 252; p. 253

literatus Dist.

Disphynetus Distant (12) p. 63 Stälin. sp., Taf. I, Fig. 6, Philippinen ; philippinensis

n. sp., Philippinen.

Dortus n. gen. Distant (4) p. 13; primarius n.sp., Tenasserim; — (15) p. 279;

p- 280 primarius Dist.

Druthmarus n. gen. Distant (3) p. 452; p. 453 magnicornis n. sp., Ceylon; — (15)

p- 245, p. 264 magnicornis Dist.

Ebutius n. gen. Distant (13) p. 440; p. 441 bellus n. sp., Sikkim; — (15) p. 228;

p- 229 bellus Dist.

Eceritotarsus Bergroth (%) p. 65 fulvicollis Fabr. = Sysinas.

Ellenia n. gen. Reuter (5) p. 169; p. 170 Gretae n. sp., Brasilien.

Elthemus n. gen. Distant (3) p. 451; p. 452 conspicatus n. sp., Ceylon; domitus

n. sp., Ceylon; — (15) p. 243; conspicatus Dist.; p. 244 domitus Dist.

Euryeyrtus Reuter Distant (15) p. 251, syn. Paracalocoris Dist. 1904 (Fr. Ind.);

lanarıus Dist. — Poppius (4) p. 33 annulipes n.sp., Kilimandjaro; p. 34

Barretti Dist. ist = capensis Dist. — Reuter (1) p. 50; p. 52 syn. Paracalo-

coris Dist. 1904, Calocoris Dist. 1904 p., Olympiocapsus Kirk.; p. 51 bur-

manicus Dist., ? stoliczkanus Dist., caelestialium Kirk., = Eurycyrtus; p. 53

capensıs Dist., syn. Barretti Dist.; p. 54 Schoutedeni n. sp., Kongo; — (4) p. 79

Bellevoyei Reut.

Fulndius Poppius Distant (15) p. 276; punctatus Popp.

Fulvius Kirkaldy (10) p. 120 peregrinator n. sp., Hawaii. — Reuter (4) p. 80 oxy-

carenoides Reut., syn. punctum-album Rossi, ornatulus Jak.

Gismunda Distant (3) p. 518 modesta n.sp., Darjeeling; — (15) p. 263 = Lio-

coridea Reut.

Hadronema Van Duzee (2) p. 80 festiva n. sp., New Mexico.

Harpedona Distant (3) p. 441 sanguinipes n. sp., Darjeeling; — (15) p. 229 sangui-

nipes Dist.

Helopeltis Distant (15) p. 248 cinchonae Mann; p. 249 theivora Waterh. — Dudgeon

(1) p- 59 Schoutedeni Reut., Taf. VIII, Fig. 1—2. — Faber (I) p. 290 Antonii

Sign. u. theivora Waterh. — Poppius (4) p. 28 Bergrothi var. disciger n. var.

Kilimandjaro, Usambara; p. 29 rubrinervis n. sp., Kilimandjaro.

H yalopeplus Distant (3) p. 509 clavatus n. sp., Bengal; — (15) p. 250 clavatus Dist.

Idatius n. gen. Distant (4) p. 20; priscillianus n. sp., Bengal, Simla Hills; — (15)

p. 290; priscillianus Dist.

Systematik. 137

Indoelum Kirkaldy Distant (15) p. 240 ist = Tancredus Dist.

Iridopeplus n.gen. Bergroth (7) p-61; p. 62 pellucidipennis n. sp., Französ. Guiana.

Jehania n. gen. Distant (15) p. 293; p. 294 mahal n.sp., O. Himalaya.

Kangra Bergroth (3) p. 237, Fußnote, Dudgeoni Kirk. ist = pallidifer Walk.

Lamprolygus n. gen., Poppius (4) p. 46; p. 47 signatus n. sp., Kilimandjaro.

Laodamina n. nom. Banks (2) p. 29 u. 203, für Zaodamia Kirk.

Lasiomiris Reuter Distant (15) p. 234, syn. Matenesius Dist.; albopilosus Leth.,

syn. lineaticollis Reut., marginatus Dist.

Liocoridea Reuter Distant (15) p. 263, syn. Gismunda Dist.; mutabilis Reut.,

syn. chelonia Dist., modesta Dist. [S. Gismunda.)]

Litoxenus Reuter Reuter (4) p. 84.

Lopidea Van Duzee p. 79 cuneata n. sp., New York.

Lygdus Reuter (3) p. 16 dilutipennis n. sp., Brasilien ; albidofasciatus n. sp., Ecuador;

dissimilis n. sp., Peru; p. 17 maculatus n. sp., Peru; Zycoideus n. sp., Peru;

nigroapiculatus n. sp., Peru; subdimidiatus n. sp., Peru; p. 18 scutellaris n. sp.,

Peru.

Lygus Bergroth (3) p. 237 aethiops Dist. ist = limbifer Walk.; — (7) p. 68 aeru-

ginatus n. nom. für aeruginosus Reut.; antillarum n. nom. für obtusus Uhl.

— Chittenden et Marsh (1) pratensis L. — Distant (3) p. 511 ostensus n. sp.,

Caleutta; p. 512 patrius n.sp., O. Himalaya; Annandalei n.sp., Bengal;

costatus n. sp., Nepal; p. 513 gemellus n. sp., Kumaon, Darjeeling; p. 514

valerius n. sp., Kumaon; devinctus n. sp., Nepal; — (15) p. 254 ostensus Dist.;

patrius Dist.; Annandalei Dist.; p. 255 costatus Dist.; gemellus Dist.; p. 256

bengalicus Reut.; valerius Dist.; p. 257 devinctus Dist.; p. 238 biseratensis

Dist. = Megacoelum. — Poppius (4) p. 38 vicarius n.sp., Kilimandjaro;

p. 39 osiris Kirk. ist = apicalis Fieb.; p. 40 flaviventris n. sp., Kilimandjaro;

p. 41 fasciaticollis n. sp., Kilimandjaro; afratus n.sp., Kilimandjaro; p. 42

var. nigerrimus n. var., Kilimandjaro; obscuratus n. sp., Kilimandjaro; p. 43

incertus n.sp., Meru; p. 44 Sjöstedti n. sp., Kilimandjaro; p. 45 suturellus

n.sp., Kilimandjaro u. Meru; alpicola n.sp., Meru; p. 46 var. denigratus

n. var., Meru; — Matsumura (4) p. 22 oryzae n. sp., Taf. XII, Fig. 12, For-

mosa; p. 23 sacchari n. sp., Taf. XII, Fig. 1, Formosa.

Malthacosoma Reuter (4) p. 85 punctipenne Reut.

Matenesius Distant Distant (15) p. 234 ist = Lasiomiris Reut.

Megacoelum Distant (3) p. 444 insignis n. sp., Mussooree; p. 445 tibialis n. sP.,

Simla Hills; p. 445 pervalidum n. sp., Nepal, Darjeeling; p. 446 straminipes

n.sp., Kangra Valley; mussooriensis n. sp., Mussooree; p. 447 Brunettii

n. sp., Meerut; marginandum n.sp., Ceylon; p. 448 patruum n. sp., Ceylon;

— (15) p. 235 insignis Dist.; tibialis Dist.; pervalidum Dist.; marginandum

Dist.; p. 238 patruum Dist.; biseratensis Dist. (Lygus). — Poppius (4) p. 34

apicale Reut.; saturale n. sp., Kilimandjaro.

Megaloceraea Distant (15) p. 234 antennata Dist.; Dohertyi Dist.

Mevius Distant (15) p. 253.

Miccus n. gen. Bergroth (?%) p. 65; p. 66 elutipes n. sp., Französ. Guiana.

Modigliania Poppius Bergroth (3) p. 236 ist = Proamblia n. nom.

Monalonion Bergroth (7) p. 67 Reuteri n. sp., Französ. Guiana.

Myrmecophyes Reuter (4) p. 82 alboornatus St.

138 Insecta. Rhynchota für 1910.

Mystilus Distant (3) p. 443 Antrami n. sp., Cochar; p. 444 Manni n. sp., Cachar;

— (15) p. 233 Antrami Dist.; Manni Dist.

Nasocoris Reuter (4) v. 83 argyrotrichus Reut.

Nicostratus n. gen. Distant (1) p. 60; princeps n. sp., Nilgiri Hills, — (3) p. 520

diversus nn. SP., Vorderindien; — (15) p. 268 princeps Dist.; p. 269 diversus

Dist.

Notostira Reuter (4) p. 78 caucasica Kol.

Nyctidea Reuter (4) p. 86 nigra Jak., syn. moesta Reut.

Olympiocapsus Kirkaldy Reuter (1) p. 52 ist = Euryeyrtus BReut.

Ommatomiris n. gen. Poppius (4) p. 29; p. 30 S7östedti n. sp., Kilimandjaro u. Meru.

Oncotylus Reuter (4) p. 84 Reuteri Osh.

Orthotylus Poppius (4) p. 51 ericinella n. sp., Kilimandjaro.

Pacorus n. gen. Distant (3) p. 517; politus n.sp., O. Himalya; — (15) p. 262

politus Dist.

_ Paracalocoris Bergroth (7) p. 63 lativentris n. sp., Französ. Guiana. — Distant (15)

p. 251 indische Arten = Eurycyrtus. — Reuter (1) p. 50; Unterschiede von

Eurycyrtus Reut. (Paracalocoris Dist. 1904.)

Philostephanus n. gen. Distant (3) p. 449; vitaliter n. sp., Simla; — (15) p. 239;

vitaliter Dist.

Physophoroptera n. gen. Poppius (4) p. 26; p. 27 mirabilis n.sp., Kilimandjaro.

Phytocoris Distant (15) p. 251 crinitus. — Poppius (4) p. 31 Sjöstedti n. sp., Kili-

mandjaro; p. 32 plwvialis n. sp., Kilimandjaro. — Reuter (4) p. 78 incanans

Fieb. — Van Duzee (2) p. 77 bipunctatus n. sp., Florida.

Bintyiyleiits Bergroth (7) p. 60 Poppii n.sp., Französ. Guiana. — Reuter (3)

p. 20 areatus n.sp., Columbien; nobilis n.sp., Peru; p. 21 angularıs n. SP.,

Brasilien; marginalis n. sp., Peru; p. 22 tristicolor n. sp., Bolivien; Howardi

n. sp., Costa Rica; notaticollis n. sp., Paraguay; p. 23 albomarginatus n. SP.

Peru; signifer n. sp., Peru, Bolivien; S. 24 crassicornis n. sp., Bolivien; validi-

cornis n. Sp., Peru; p. 25 guttaticeps n. sp., Peru; gracilis n. sp., Peru; Koschev-

nikovi n. sp., Peru; p. 26 peruvianus n. sp., Peru; nitidipennis n. sp., Paraguay;

p. 27 minutulus n. sp., Santa Cruz; plumipes n.sp.,; p- 28 sefosipes N. SP.,

Bahia; stricturalis n. sp., Columbien; Zconnicoffi n.sp., Peru; p. 29 omphalo-

phorus n. sp., Peru; Rollei n. sp., Cayenne; p. 30 vitticollis n. sp., Peru; Hor-

vathi n. sp., Peru; limbicollis n. sp., Peru; p. 31 patricius n. sp., Peru; crux-

nigrum n. sp., Ecuador; p. 32 flavovarius n. sp., Peru; decoratus n. sp., Peru;

p. 33 alienus n. sp., Peru; commissuralis n. sp., Costa Rica.

Platytylus Reuter (3) p. 18 fasciatus n.sp., Paraguay; p. 19 Kuhlgatzi n. sp.,

Brasilien; parvulus u. sp., Peru; Bobischi n. sp., Columbien; p. 20 straminifer

n. sp., Brasilien.

Poeciloscytus Butler (3) p. 142 palustris Reut. — Distant (15) p. 260 longicornis

— Poppius (4) p. 48 bimaculatus n. sp., Kilimandjaro.

Proamblia n. nom. Bergroth (3) p. 236 für Modigliania Popp.

Proboscidocoris Poppius (4) p. 49 seti Kirk. ist = fuliginosus Reut.

Prodromus Distant (3) p. 453 cuneatus n.sp., Ceylon; — (15) p. 246 cuneatus

Dist. — Poppius (4) p. 27; p. 28 aethiopicus n. sp., Kilimandjaro.

Psallus Distant (4) p. 19 kurseongensis n. sp., O. Himalaya; — (15) p. 289 kurse-

ongensis Dist. — Kirkaldy (10) p. 120 Swezeyi n. sp., Hawaii. — Poppius (4)

Systematik. 139

p. 53 nigropunctatus n. sp., Kilimandjaro. — Reuter (4) p. 86 roseus var.

alni Fabr., syn. fasciatus Jak.; atomosus var. obscurior n. var., Taurien.

Ragmus n. gen. Distant (4) p. 18; importunitas n. sp., Ceylon; p. 19 pellucidus

n. sp., Vorderindien; — (15) p. 288; p. 289 importunitas Dist.; pellucidus Dist.

Resthenia Bergroth (7) p. 68 majuscula Dist. = Callichila grandis Blanch. ; simplex

Kuhlg. ist keine Restheniaria. — Reuter (3) p. 15 suwperba n. sp., Peru.

Rhinomiris Kirkaldy Poppius (3) Tabelle; p. 236 albomaculatus St.; p. 237 con-

spersus St., vicarius Walk.; consputus St.; intermedius Popp.; camelus Popp.

Rhodoclia n. gen. Distant (1) p. 58; p. 59 convictionis n. sp., Nilgiri Hills; — (15)

p- 92 ist eine Pyrrhocoride.

Sabaetus n. gen. Distant (4) p. 21; institutus n. sp., Ceylon; — (15) p. 292; p. 293

institutus Dist.

Sahlbergella Dudgeon (1) p. 60 theobromae Dist., Taf. VIII, Fig. 5—6. — Faber (1)

p. 304 singularis Hagl.

Sampsigeramus n. gen. Distant (4) p. 17; p. 18 pilosulus n. sp., Ceylon ; — (15) p. 286;

p- 287 pilosulus Dist.

Sapinnius n. gen. Distant (3) p. 515; p. 516 fidelis n. sp., Ceylon; — (15) p. 259;

fidelis Dist.

Sejanus n. gen. Distant (4) p. 20; p. 21 funereus n. sp., Ceylon; — (15) p. 291;

p: 292 funereus Dist.

Serebaeus n. gen. Distant (4) p. 11; p. 12 discriminatus n. sp., Ceylon; — (15) p. 274;

p- 275 discriminatus Dist.

Silanus Distant Distant (15) p. 266; p. 267 praefectus Dist.

Skapana n. gen. Distant (10) p. 315; p. 316 iypica n. sp., Taf. XXI, Fig. 8, Borneo.

Sohenus n. gen. Distant (4) p. 14; proditus n. sp., Ceylon; — (15) p. 281; p. 282

proditus Dist.

Stechus n. gen. Distant (3) p. 449; p. 450 libertus n. sp., Ceylon; — (15) p. 240;

p- 241 libertus Dist.

Stenotus Poppius (3) p. 35 brevior n. sp., Meru; p.36 rufescens n. SP. Kili-

mandjaro.

Sysinas Bergroth (7) p. 65 fulvicollis Fabr., syn. audens Dist.

Systellonotus Lambertie (5) p. 56 Motelayi Lamb. — Reuter (4) p. 81 unifasciatus

Fieb. et Reut. = Allaeomimus n. gen.

Tancredus Distant Distant (15) p. 240, syn. Indoelum Kirk.; sandaracatus; rubri-

catum Kirk. [Megacoelum in Fn. Ind. 1904).

Thaumastomiris Distant (15) p. 277 piceatus n. sp., Vorderindien.

Thaumaturgus n. gen. Distant (3) p. 518; p. 519 typicus n. sp., Caleutta, Ceylon;

— (15) p. 265; p. 266 iypicus Dist.

Thermus n. gen. Distant (3) p. 514; p. 515 adumbratus n. sp., Ceylon; — (15)

p- 257; p. 258 adumbratus Dist.

Tricholygus n. gen. Poppius (4) p. 47; p. 48 hirsutus n. sp., Kilimandjaro.

Tuponia Reuter (4) p. 87 pallida Reut.; elegans Jak.

Zalmunna n. gen. Distant (3) p. 442; p. 443 dux n. sp., Ceylon; — (15) p: 231;

p. 232 dux Dist.

Zaratus n. gen. Distant (I) p. 59; repandis n. sp.; — (15) p. 264 repandus Dist.

Zonodorus n. gen. Distant (3) p. 522; p. 523 gubernator n.sp., Ceylon; — (15)

p. 270; p. 271 gubernator Dist.

140 Insecta. Rhynchota für 1910.

Isometopidae.

Reuter (5) p. 69 Charakteristik.

Dipsoeoridae.

Oshanin (1) p. 139 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 68 Charak-

teristik.

Ceratocombus Signoret Distant (15) p. 262, syn. Lichenobia Baer.; setulosus Reut.

— Poppius (2?) p. 234 (Xylonannus) Enderleini n.sp., Deutsch Ostafrika;

p. 235 corticalis Reut. — (5) p. 1 (Ceratocombus) bifenestratus n. sp., Guadelupe;

p. 2 (©.) sumatranus n.sp., Sumatra; p. 3 (C.) plebejus n.sp., Japan; p. 4

(C.) japonicus n. sp., Japan; p. 6 (C.) brevipennis n. sp., Turkestan.

Hypselosoma Poppius (5) p. 13 oculata Reut.

Issidomimus n. gen. Poppius (5) p. 9; p. 10 signatus n. sp., Neu Guinea.

Schizoptera Poppius (5) p. 10 flavipes Reut.; p. 11 affinis n. sp., Venezuela; p. 12

elegans n. sp., Guadelupe.

Teratoneura n: gen. Poppius (5) p. 7; p- 8 marginicollis n. sp., Togo.

Schizopteridae.

Reuter (5) p. 68 Charakteristik.

Atpophilidae.

Reuter (5) p. 65 Charakteristik.

Gerridae (inkl. Veliidae, Hydrometridae u. Mesoveliidae).

Distant (15) pp. 137—166 Supplemant zuDistant 1903 (9). — Oshanin (1)

pp. 130—132 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 66 Charakteristik

(Gerridae, Veliidae, Hydrometridae u. Mesoveliidae).

Euodus n. gen. Distant (6) p. 150; p. 151 communis n.sp., Kumaon; — (AB)

p- 162; p. 163 communis Dist.

Euratas n. gen. Distant (6) p. 146; p. 147 formidabilis n. sp.,, Andamanen; — (15)

p. 154; formidabilis Dist.

Fabatus n. gen. Distant (6) p. 147; servus n. sp., Andamanen; — (15) p. 155;

servus Dist.

Gerris Distant (6) p. 140 lepcha n. sp., Sikkim;; p. 141 monticola n. sp., Vorderindien;

p- 142 nepalensis n. sp., Vorderindien; raja n. sp., Travancore; — (15) p. 142

lepcha Dist.; monticola Dist.; p. 143 nepalensis Dist.; p. 144 tristan Dist.;

raja Dist. — Kuhlgatz (1) p. 183 paludum F.; najas Geer; p. 184 odonto-

gaster Zett., p. 185 lacustris L., p. 187 argentatus Schumm.

Gerastratus n. gen. Distant (6) p. 148; p. 149 foveatus n.sp., Kumaon; — (15)

p- 160; p. 161 foveatus Dist.

Halobates Distant (15) p. 152 germanus B. Wh.; p. 153 Herdmani Carp.

Janias n. gen. Distant (6) p. 145; p. 146 elegantulus n. sp., Travancore; — (15)

p- 148; p. 149 elegantulus Dist.

Jucundus n. gen. Distant (6) p. 143; custodiendus n. sp., Travancore; burmanus

n. sp., Birmanien; — (15) p. 145; custodiendus Dist.; p. 146 burmanus Dist.

Kirkaldya n. subgen. Bueno (4) p. 186, neue Untergattung zu Microvelia, Type

americana Uhl.

Systematik. 141

Mesovelia Kuhlgatz (1).p. 181 furcata Muls. et R.

Metrocoris Distant (6) p. 148 nepalensis n. sp., Nepal; — (15) p. 158 Stäli Dohrn;

nepalensis Dist.; p. 159 nigrofasciatus Dist.

Microvelia Bueno (4) americana Uhl.; p. 186 Unterg. Kon kaldanı n. subgen. — Di-

stant (15) p. 138 albomaculata Dist.; kumaonensis Dist.; p. 139 diluta Dist.;

p. 140 Annandalei Dist. — Kuhlgatz (1) p. 182 pygmaea Duf.

Naboandelus n. gen. Distant (6) p. 151; p. 152 signatus n. sp., Caleutta; — (15)

p. 163; p. 164 signatus Dist.

Nacebus n. gen. Distant (6) p. 152; p. 153 dux n. sp., Vorderindien; — (15) p. 165;

p. 166 dux Dist.

Onychotrechus Distant (6) p. 144 vadda n. sp., Ceylon; p. 145 kumari n. sp., Tra»

vancore; — (15) p. 146 vadda Dist.; p. 147 kumari Dist.

Rhagovelia Distant (15) p. 137 nigricans Burm., syn. infernalis Butl., maculata

Dist., ?Reitteri Reut.

Rheumatotrechus Distant (15) p. 151 himalayanus Kirk.

Ures n. gen. Distant (15) p. 149; p. 150 custos n. sp., Kumaon.

Velia Kuhlgatz (1) p. 181 currens Fabr., Taf. II, Fig. 1.

Ventidius n. gen. Distant (6) p. 149; p. 150 aquarius n. sp., Travancore; — (15)

p: 156; p. 157 aquarius Dist. Ri

Leptopodidae.

Reuter (5) p. 68 Charakteristik.

BR,

Aeanthiidae.

Distant (15) pp. 221—225 Supplement zu Distant 1906 (9). — Reuter (5)

p. 64 Charakteristik. — Oshanin (1) p. 137 Katalog der paläarkt. Arten.

Acanthia. — S. Salda.

Leptopus Latreille Distant (15) p. 223, syn. Valleriola Dist.; p. 224 assuanensis

Costa, syn. niloticus Reut., strigipes Bergr., Greeni Dist.; p. 224 cicindeloides

Dist.; p. 225 travancorensis n. 8p., Travancore.

Salda Distant (15) p. 221 Dixoni Dist.; inconstans Dist.; p. 222 Fletcheri Dist.;

p- 223 pusana Dist. — [= Acanthia.]

Valleriola Distant (2) p. 40 cicindeloides n. sp., Bengal; — (15) p. 223 ist = Leptopus.

Veloeipedidae.

Distant (15) p. 220 (Unterfamilie der Reduvwiidae). — Reuter (5) p. 64 Cha-

rakteristik.

Velocipeda Bergroth Distant (15) p. 220, syn. Undekricus Dist., aliena Dist., syn.

prisca Kirk. (nec Bergr.).

Notoneetidae.

Distant (15) pp. 329—338 Supplement zu Distant 1906 (9). — Reuter (5)

p- 62 Charakteristik. — Oshanin (1) p. 149 Katalog der paläarkt. Arten.

Anisops Distant (15) p. 332 varius Fieb., syn. perpulcher St.; p. 333 Breddini Kirk.

Buenoa Kirkaldy Bueno (I) p. 77 Tabelle der nordamerikan. Arten: margaritacea

Bueno, syn. platycnemis Uhl. (nee Fieb.); platyenemis Fieb. (nec Uhl.);

elegans Fieb.

143 Insecta. Rhynchota für 1910.

Enithares Distant (15) p. 329 paivana n. sp., Bengal; p. 330 Rogersi n. sp., Nico-

baren; p. 331 mandalayensis n. sp., Birmanien.

Helotrephes Stäl Distant (15) p. 338; indicus n. sp., Calcutta, Birmanien.

Nychia Stäl Distant (15) p. 344, syn. Antipalocoris Scott; Marshalli Scott, syn.

? limpida St., var. sappho Kirk.

Plea Distant (15) p. 336 pallescens; pelopea n.sp., Bengal; p. 337 metiadusa

n. sp., Caleutta. — Kuhlgatz (1) p. 200 minutissima L., Taf. II, Fig. 4.

Naucoridae.

Distant (15) pp. 318—327 Supplement zuDistan t 1906 (9). — Oshanin (1)

p. 149 Katalog der paläarkt. Arten. — Reuter (5) p. 62 Charakteristik.

Ambrysus Montandon (1) p. 317—329 Tabelle; p. 317 acutangulus Mont.; crenu-

latus Mont.; fraternus Mont.; p. 318 Geayi-Mont.; oblongulus Mont.; p. 318

u. 323 Horvathi n.sp., Peru; p. 328 u. 324 colombicus n. sp., Columbien;

p. 319 obscuratus Mont., attenuatus Mont.; pulchellus Mont.; p. 319 u. 326

nitidulus n.sp., Mexiko; p. 320 pudicus St.; parviceps St., californicus Mont. ;

melanopterus St.; p. 321 Bergi St.; p. 321 u. 327 ochraceus n. sp., Bolivien;

p. 322 puncticollis Mont., mexricanus Mont.; hybrida Mont. ; guttatipennis St.;

p. 323 Signoreti St.; p. 329 peruvianus n. sp., Peru; — (3) p. 188 mormon Mont. ;

Heidemanni n.sp., Yellowstone-Park; p. 189 pulchellus var. ypallidulus

n. var., Texas; p. 190 dilatus n.sp., Mexiko; — (6) p. 442 circumeinctus

n. sp., Texas.

Aphelocheirus Kuhlgatz (1) p. 196 aestivalis Fabr., Taf. II, Fig. 2. — Montandon (6)

p. 438 _denticeps n. sp., China: Fou-Tchean. — Ussing (2?) Montandoni Horv.

Diaphorocoris Distant (15) p. 319 Dubreuili Mont.

Gestroiella Distant (15) p. 318 insignis n. sp., Assam.

Heleocoris Distant (15) p. 320 breviceps Mont. ; majusculus Mont.; p. 321 rotundatus

Mont.;. p. 322 ? obliquatus Spin.; vicinus Mont.; p. 323 bengalensis Mont.;

p. 324 elongatus. — Montandon (?) p. 653 bengalensis n. sp., Bengal; p. 655

vicinus n. sp., Travancore; p. 656 breviceps Mont.; ?obliquatus Spin.

Limnocoris Montandon (6) p. 440 Uhleri n. sp., Brasilien.

Naucoris Fabricius Distant (15) p. 334, syn. Ilyocoris St.; p. 325 scutellaris St.;

sordidus n. sp., Calcutta, Travancore; p. 326 »wvidus n. sp., Calcutta. — Kul-

gatz (1) p. 197 cimicoides L.

Peleocoris Montandon (8) p. 4 femoratus Pal., syn. Poeyi Gu£r.

Thurselinus Distant (15) p. 327 clathratus n. sp., Calcutta.

Nepidae.

Baunacke (1) Sinnesorgane bei Nepa cinerea. — Distant (15) pp. 313—318

Supplement zu Distant 1906 (9). — Oshanin (1) p. 149 Katalog Her paläarkt.

Arten. — Reuter (5) p. 62 Charakteristik.

Borborophyes Stäl Distant (15) p. 314; p. 315 erutus Mont. — Montandon (2)

p. 163—164 erutus n. sp., Khasia Hills.

Curicta Montanden (3) p. 181 Howardi n. sp., Texas.

Laccotrephes Distant (15) p. 313 elongatus Mont.; p. 314 griseus Guer., syn. ma-

culatus St. p. — Montandon (8) p. 3 griseus Guer.

Systematik. 143

Nepa Baunacke (1) cinerea L. — Kuhlgatz (1) p. 194 cinerea L., Taf. II, Fig. 6;

— Montandon (3) p. 180 apiculata Harr.

Ranatra Distant (15) p. 315 longipes St.; p. 316 varipes St., syn. atropha Mont.;

p. 317 Distanti Mont. — Montandon (2) p. 166 Stäli var. spinifrons n. var.,

Borneo, Ternate; unicolor Scott, syn. brachyura Horv.; p. 167 Fallowi Mont.,

syn. annulipes Fallou; p. 168 Horväthi un. sp., Brasilien; p. 169 mediana n. sp.,

Französ. u. Holl. Guiana; p. 170 Pittieri n. sp., Costa Rica; — (3) p. 183

Kirkaldyi Bueno; p. 184 brevicollis n. sp., Califorinen; p. 185 protensa n. sp.

Long Island, N. York; — (4) p. 63 fusca Pal., syn. Kirkaldyi Bueno; p. 64

quadridentata St. (nec Bueno); p. 65 var. Championi n. var., Guatemala;

p. 65 americana n.sp., syn. quadridentata Bueno (nec St.), Mass., Penns.,

New York, Florida; p. 66 var. edentula n. var., Penns., Texas; — (7) p. 652

Distanti n. sp., Nicobaren ; — (8) p. 3 Fabricii Guer. 1856, syn. annulipes St.

1854 [handschriftl. Verbesserung: annulipes, syn. Fabriecii).

Telmatotrephes Stäl Montandon (2) p- 163.

Belostomatidae.

Reuter (5) p. 62 Charakteristik.

Amorgius Montandon (8) p. 4 colonicus St., syn. grande St.

Belostoma Distant (15) p. 328 Deyrollei Vuill. u. var. aberrans Mayr. — Montandon

(3) p. 187 lutarium St., syn. aurantiacum Bueno.

Benacus Montandon (8) p. 3 griseus Say, syn. angustata Guer.

Hydrocyrius Montandon (8) p. 4 colombiae Spin., syn. capitata Guer.

Lethocerus Montandon (8) p. 3 annulipes H. Sch., syn. curtum Guer., medium Guer.,

caudata-Perch.

Peloridiidae.

Reuter (5) p. 61 Charakteristik.

Nerthridae.

Distant (15) pp. 310—313 Supplement zu Distant 1906 (9). — Reuter (5)

p: 61 Charakteristik.

Gelastocoris Montandon (8) p. 2 variegatus Gu£r.; nebulosus Gu£r., syn. Mae Guer.

(nec Mont.); major n. sp., syn. flavus Mont. (nec Gu£r.), Brasilien, Bolivien,

Columbien, Colon, Peru, Costa Rica; quadrimaculatus Guer., syn. vicinus

Champ.

Mononyz Distant (15) p. 310 projectus n. sp., Assam; p. 311 turgidulus n. sp.,

Nepal; p. 312 spissus n. sp., Assam. — Montandon (8) p. 2 fuscipes Guer:;,

laticollis Guer.

Peltopterus Guerin Montandon (8) p. 3.

Ochteridae.

Reuter (5) p. 61 Charakteristik.

Pelogonus Montandon (8) p. 1 Perbosci Guer.; marginatus Latr., syn. indicus

Guer.

Corixidae.

Distant (15) pp. 339—359 Supplement zu Distant 1906 (9). — Hagemann (I)

Atmung, Sinnesorgane, Drüsen, Asymetrie, bei Corixa. — Reuter (5) p- 63

Charakteristik. — Oshanin (1) p. 149 Katalog der paläarkt. Arten.

144 Insecta. Rhynchota ftir 1910,

Coriza Distant (15) p. 340 substriata Uhl.; p. 341 promontoria n. sp., Vorderindien ;

affinis n.sp., Vorderindien; p. 342 lima n.sp., Bombay; p. 343 apparens

n. sp., Calcutta; distorta n. sp., Nepal; p. 344 verecunda n. sp., Nepal. — Kuhl-

gatz (1) p. 202 Sahlbergi Fieb.; p. 204 castanea Thoms., p. 205 verwandte

Arten; p. 206 var. uliginosa End.; striata L., Taf. II, Fig. 8; p. 207 fossarum

Leach.

Macrocorisa Thomson Distant (15) p. 339, syn. Macrocorixa B. Wh., Corixa Kirk.;

p. 339 @eoffroyi Leach, syn. striata Fall., punctata Burm.

Micronecta Distant (15) p. 345 lucina n. sp., Vorderindien, Ceylon; p. 346 thelxinae

Kirk.; lineata Fieb., syn. notata Kirk., M-notata Kirk.; p. 347 malabarica

Kirk., minthe n.sp., Vorderindien; p. 348 dione n.sp., Bengal, Calcutta;

proba n.sp., Bengal, Birmanien; p. 349 thyesta n. sp., Bengal; p. 350 issa

n. sp., Calcutta, Travancore; grisea Fieb.; p. 351 memonides Kirk.; punctata

Fieb.; merope n. sp., Bengal; p. 352 daedala n. sp., N. O. Himalaya. — Kuhl-

gatz (1) p. 214 minutissima L., Taf. II, Fig. 5.

Homopteren.

Kirkaldy (2) Phylogenie. — Oshanin (1) pp. 151—196 Katalog der paläarkt.

Homopteren, Supplement.

Cieadidae.

Oshanin (1) pp. 151—152 Katalog der paläarkt. Arten.

Cicada Davis, W. (2) p. 458 Engelhardti n. sp., N. Carolina, Georgia, New York.

Cicadetta Lyle (1) p. 3 montana L.

Frogattoides n. gen. Distant (11) p. 417; p. 418 typicus n.sp., N. Queensland.

Henicopsaltria Distant (11) p. 416 Kelsalli n. sp., N. Queensland.

Inyamana Jacobi (2) p. 100 oreas n.sp., Taf. I, Fig. 5, Kilimandjaro.

Joba. — S. Platypleura.

Lembeja Distant (11) p. 418 brunneosa n. sp., N. Queensland.

Lemuriana Distant (10) p. 317 connexa n. sp., Taf. XXI, Fig. 12, Borneo, Sarawak.

Leptopsaltria Bierman (1) p. 1 guttularis Walk., Taf. I, Fig. 1.

Mogannia Distant (10) p. 317 Moultoni n. sp., Taf. XXI, Fig. 6, Borneo, Sarawak.

Munza Jacobi (1) p. 300 oculata n. sp., Taf. I, Fig. 2, Deutsch-Ostafrika; p. 301

pygmaea n. sp., Taf. I, Fig. 3, Delagoabai.

Neopsaltoda n. gen. Distant (11) p. 415; p. 416 crassa n.sp., N. Queensland.

Orapa Jacobi (1) p: 302 lateritia n. sp., Taf. I, Fig. 4, Deutsch-Ostafrika.

Platypleura Jaeobi (1) p. 299 circumscripta n. sp., Taf. I, Fig. 1, Deutsch-Ostafrika.

— Strand (2) p. 158 (Joba) leopardina Dist., Fig.; deusta Thunb.; (Ugada)

inquinata Dist.; (Pycna) tangana n. sp., Tanga.

Purana Distant (10) p. 316 conspicua n. sp., Taf. XX1, Fig. 7, Borneo, Sarawak.

Pyena. — S. Platypleura.

Rihana Distant (13) p. 246 belizensis n. sp., Brit. Honduras.

Thopha Distant (11) p. 415 nigricans n. sp., N. Queensland.

Ugada. — S. Platypleura.

Fulgoridae.

Bergroth (4) pp. 240—241 Verbesserungen zu Melichars Monographie der

Issinen. — Distant (7) Verbesserungen zu Melichars Monographie der Acana-

Systematik. 145

laniinen u. Flatinen; — (10) pp. 321—327 Synonymie der Flatinen. —

— Horväth (%) pp- 175—176 Tabelle der paläarkt. Dietyopharinengattungen.

— Kirkaldy (8) pp. 577—597 Hawaiische Fulgoriden; p. 577 Asiracinen-

gattungen.

Achaemenes Distant (14) p. 245 costalis St., Taf. XXIII, Fig, 21. — Jacobi (?)

p- 107 kilimanus n. sp., Taf. I, Fig. 9, Kilimandjaro.

Afakia Distant (10) p. 318 decisa Dist., Taf. XXI, Fig. 9.

Afronaso n. gen. Jacobi (2) p. 108; p. 109 rhinarius n. sp., Taf. I, Fig. 11 u. 18,

Meru.

Aloha Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 579, Tabelle; p. 580 naniicola n. sp., oceanides

n. sp., p. 581 pacifica n. sp.; lehuae n. sp.; ohioe n. Sp.; ipomoeae n. Sp.; ? myo-

poricola n.sp.: alle = Hawaiische Inseln.

Almana Stäl Horväth (%) p. 177; p. 178 longipes Duf.; p. 178 ussuriensis Leth.

ist eine Dictyophara (syn. annulipes Mel.).

Amantia Stäl Schmidt (2) p. 312; p. 313—314 Tabelle; p. 314 peruana n.sp.,

Peru; p. 316 var. infasciata n. var., Peru; magnifica n. sp., Columbien.

Amychodes Strand (2) p. 160 coerulus Karsch, Fig.

Amyele Manee (1) p. 117 vernalis n. sp., N. Carolina.

Anagnia Stäl Matsumura (3) p. 102; splendens Germ., syn. indiana Walk., lunulifer

Uhl.

Anaya Distant (%) p. 316 nicobarensis n. sp., Nicobaren.

Anecphora Schmidt (2) p. 305 sanguinisparsa n. sp., Kamerun; p. 307 sanguini-

plaga n. sp., Kamerun. — Strand (2) p. 159 basisanguinea n. sp., Kamerun.

Aspidonitys Sehmidt (2) p. 321 incerta n. sp., Kamerun.

Assamia Buckton Bierman (1) p. 35, verschieden von Phenice Westw.; p. 35

jenestrata n. sp., Taf. II, Fig. 15, Java.

Atracis Distant (10) p. 336 intercepta Walk., Taf. XXII, Fig. 15; surrecta Walk.,

Taf. XXII, Fig. 13; rivularis n. sp., Taf. XXII, Fig. 14, Birmanien.

Avephora n. gen. Bierman (1) p. 12; pasteuriana n.sp., Taf. I, Fig. 5, Sumatra.

Bruchomorpha Bergroth (4) p. 241 globosa Mel. = Schmidtella n. gen.

Bursinia Costa Horväth (7) p. 178; p. 179—180 Tabelle; p. 180 seminitens n. Sp.,

Tunesien, Algerien; asphodeli n. sp., Algerien; var. socialis n. var., Algerien;

var. vidua n. var., Algerien; flava n.sp., Algerien; p. 181 hemiptera Costa;

p. 183 socors n. sp., Algerien; Genei Duf.; p. 184 var. dispar n. var., Spanien,

Frankreich, Ungarn, Dalmatien; var. parvula n. var., Spanien. — Matsu-

mura (1) p. 12 seminitens n. sp., Tunesien; p. 13 algira n. sp., Algerien; p. 14

hemiptera Costa; asphodeli n. sp., Oran.

Catonia Van Duzee (1) pp. 261—262 Tabelle; pp. 263—264 Liste; p. 264 rubella

n. sp., Californien; p. 265 nervata n. sp., Californien; — (2) p. 85 dimidiata

n. sp., New York, Rhode Island; p. 86 costata n. sp., Californien; cara n. Sp»,

Californien.

Catullioides n. gen. Bierman (1) p.21; p.22 rubrolineata n.sp., Taf. I, Fig. 9,

Java, Sumatra; p. 24 var. coriacea n. var.

Centromeria Bierman (1) p. 14 bicolorata n. sp., Java.

Chloriona Butler (1) p. 13 dorsata Edw. — Matsumura (1) p. 29 oranensis n. Sp.,

Oran; p. 30 sicula n. sp., Sizilien.

Chondroptera n. gen. Bergroth (4) p. 238; p. 239 musiva n. sp., Sumatra.

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. ı. 10

146 Inseceta. Rhynchota für 1910.

Circumdaksha n. gen. Distant (10) p. 328; rufosparsa n.sp., Taf. XXII, Fig. 7,

Celebes.

Cixiopsis Matsumura Matsumura (3) p. 101; punctatus Mats.

Cixius Van Duzee (2) p. 87 lepidus n. sp., Colorado.

Coelodictya n. gen. Jacobi (2) p. 101; Sjöstedti n. sp., Taf. I, Fig. 37, Kilimandjaro.

Colgar Distant (7) p. 307 roseipennis n. sp., Queensland; p. 308 peracuta Walk. ;

rufostigmata n. sp., Queensland, Moreton Bay; p. 309 Zricolor n. sp., Queens-

land.

Colgaroides n. gen. Distant (10) p. 324; p. 325 acuminata Walk.; Everetti n. sp.,

Taf. XXII, Fig. 8, Philippinen.

Colpoptera Burmeister Distant (%) p. 314.

Cryptoflata Distant (%) p. 302 guttularis var. punctipennis n. var., China; p. 303

hova n.sp., C. Madagaskar; — (14) p. 249 unipunctata Ol. var. areolifera

Walk., Taf. XXIII, Fig. 4.

Daeda n. gen. Banks, €. (1) p. 46; puncticlava n. sp., Taf. III, Fig. 6, Philippinen.

Daksha Distant (10) p. 327 Pryeri Dist., syn. Phyma divisa Mel.

Decora n. gen. Dammerman in Bierman (1) p.16; p.20.pavo Bierm. n.sp.,

Taf. I, Fig. 8, Sumatra.

Delphax Matsumura (1) p. 30 tangira n.sp., Marokko; p. 31 nigrifrons n. SP.,

Sizilien; p. 32 nigricans n. sp., Sizilien, Marokko; p. 23 strigosa n. sp., Sizilien ;

p. 34 furcata n.sp., Sizilien; p. 35 cataniae n.sp., Sizilien; p. 35 suezensis

n. sp., Port Said.

Dicranotropis Matsumura (1) p. 37 dimorpha n. sp., Sizilien.

Dictyobia Ball (1) p. 43 combinata n. sp., Californen.

Dictyophara Bierman (1) p. 7 percarinata Kirb., Taf. I, Fig. 2; p. 9 fuscovittata St.,

Taf. I, Fig. 3. — Horväth (7) p. 176 Krüperi Fieb. ist eine Dorysarthrus;

p. 178 ussuriensis Leth. gehört hierzu, syn. annulipes Mel. — Matsumura (I)

p. 15 nemourensis n. sp., Algerien; p. 16 curvata n. sp., Tunis; p. 17 oranensis

n. sp., Oran; — (3) p. 105; p. 106 Tabelle der japan. Arten; p. 106 sinica

Walk., syn. inscripta Walk.; p. 107 Tengi n. sp., syn. inscripta Uhl., sinica

Mats.; p.108 maculala u.sp., p. 109 okinawensis Mats.; nakanonis n. SP.;

p. 110 fuscovittata n. sp.

Dictyssa Ball (1) p. 44 ovata n. sp., Mexico, Californien; fenestrata n. sp., Californien;

p- 45 oliqua n. sp., Californien, Mexico.

Dorysarthrus Puton Horväth (7) p. 176; Krüperi Fieb. (Dictyophara) gehört hierzu.

Duroides Bergroth (4) p. 240 planifrons Mel. ist = planifrons Spin.

Eddara Strand (2) p. 160 euchroma Walk., syn. bella St.

Elasmoscelis Bistant (14) p. 246 trimaculata Walk. var., Taf. XXIII, Fig. 19;

Stäli Dist. var., Taf. XXIII, Fig. 20; p. 247 rhodesiana n. sp., Taf. XXIII,

Fig. 17, S. O. Rhodesien. — Jacobi (2) p. 104 cimicoides Spin., syn. Stälı Dist.

Elidiptera Van Duzee (1) pp. 262—263 Liste; — (2) p. 82 fusiformis n. sp., Cali-

fornien; p. 83 Henshauwi n.sp., Washington; floridae Walk.; opaca Say,

syn. Helicodiptera pinorum Manee (1910).

Epoliarus n. gen. Matsumura (1) p. 11; p. 12 politus n. sp., Port Said.

Epora Walker Bierman (1) p. 24; p. 25 subtilis Walk., Taf. II, Fig. 10.

Eriphyle Jacobi (2) p. 111 Zongifrons Walk., syn. bipunctata Mel. (Trienopa);

major n. sp., Taf. II, Fig. 23, Kilimandjaro u. Meru.

Systematik. 147

Euphanta Distant (10) p. 324 pokiana n. sp., Brit. Neuguinea; chlorospila Walk.,

Taf. XXII, Fig. 10.

Flatina Distant (%) p. 301 ornatula n. sp., W. Afrika.

Flatosoma Distant (10) p. 321 Melichari n. nom. für comma Mel. (nec Walk.).

Franciscus n. gen. Distant 10) p. 337; fasciatus Walk., Taf. XXII, Fig. 17.

Geralditonia n. gen. Distant (4) p. 311; p. 312 protea n.sp., Queensland; p. 313

uniformis n. sp., Queensland.

Grynia Jacobi (2) p. 104 africana n.sp., Taf. I, Fig. 10, Kilimandjaro.

Gyaria Distant (14) p. 249 aethiops n. sp., Nyassaland.

Helicoptera Manee (1) p. 117 pinorum n. sp., N. Carolina. — Van Duzee (2) p. 83

pinorum Manee ist = 9 von Elidiptera opaca Say.

Hemiphaerius Banks, €. (1) p. 41 parenthesis n. sp., Taf. III, Fig. 3; p. 42 trans-

jasciatus n. sp., Taf. III, Fig. 4; p. 43 trimaculatus n.sp., Taf. III, Fig. 1;

Stäli n. sp., Taf. III, Fig. 2; alle = Philippinen.

Hilda Distant (2) p. 41 bengalensis n. sp., Bengal.

Homalocephala Jacobi (2) p. 102 intermedia Bol., Taf. I, Fig. 35—36.

Hyalesthes Matsumura (1) p. 1 grandis n. sp., Marokko.

Hyphancylus Fowler Distant (%) p. 317.

Hysteropterum Ball (1) p. 43 unum n. sp., Colorado. — Bergroth (4) p. 240 Katonae

Mel. muß Moschii Mel. heißen. — Jacobi (2) p. 110 Katonae Mel. muß Moschit

Mel. heißen. — Matsumura (1) p. 20 tangirum n.sp., Marokko; Oertzeni n. Sp.,

Griechenland; p. 21 nigridorsale n. sp., Marokko; p. 22 oranense n. sp., Oran,

Tangiers; p. 23 malagense n.sp., Spanien; dubiosum n.sp., Spanien; p. 24

tunetanum n. sp., Tunis; p. 25 costale n. sp., Spanien; p. 26 fallaciosum n. Sp.,

Griechenland; p. 27 inconspicuum n.sp., Griechenland; p. 27 pallidellum

n. sp., Spanien.

Issomimus n. gen. Jacobi (2) p. 108; meruanus n.sp., Fig. A, Meru.

Issus Bergroth (4) p. 240 tendinosus Spin. ist = analis Brulle. — Bervoets (3)

p- 125 retieulatus n. sp., Taf. I, Fig. 12—13, Baltischer Bernstein.

Ityraea Distant (7) p. 299 Gregoryi n. sp., Brit. Ostafrika; — (14) p. 248 speciosa

Mel., Taf. XXIII, Fig. 3. — Jacobi (1) p. 302 viridis n. sp., Uganda.

Jada Banks, €. (1) p.39 maculipennis n. sp., Philippinen.

Jivatma Banks, €. (1) p. 41 triangulata n. sp., Taf. III, Fig. 8, Philippinen.

Juba n. gen. Jacobi (2) p. 103; brunneus n. sp., Taf. I, Fig. 22, Meru.

Kayania n. gen. Distant (10) p. 334; volens Walk., Taf. XXII, Fig. 18.

Kelisia Kirkaldy (8) p. 578 sporobolicola n.sp.; Swezeyi n.sp.; p. 579 paludum

n.sp., alle: Hawaiische Inseln. — Matsumura (1) p. 29 pannonica n. Sp-,

Ungarn, Deutschland.

Kolla Banks, €. (1) p. 51 tripunctifrons n. sp., Philippinen.

Lawana Distant (10) p. 326 modesta n. sp., Taf. XXII, Fig. 1, Malayische Halb-

insel.

Liburnia Bierman (I) p.40 typhlocyba n.sp., Java; javana n.sp., Java. —

Jacobi (1) p. 112 antennata n. sp., Taf. I, Fig. 37, Kilimandjaro.

Lollius Distant (10) p. 318 Pryeri n. sp., Taf. XXI, Fig. 11, N. Borneo.

Lombokia n. gen. Distant (10) p. 323; Everetti n. sp., Taf. XXII, Fig. 16, Lombok.

Lugardia Distant (14) p. 247 mimica Dist., Taf. XXIII, Fig. 24.

Magama n. gen. Distant (14) p. 246; insignis n. sp., Taf. XXIII, Fig. 16, Natal.

Mamatola Distant (14) p. 245 renatus n. sp., Taf. XXIII, Fig. 8, Zululand.

10*

148 Insecta. Rhynchota für 1910,

Marleyia Distant (14) p. 247 brunnescens Dist., Taf. XXII, Fig. 23; albomaculata

Dist., Taf. XXII, Fig. 24.

Melicharia Distant (%) p. 303 Doddi n. sp., Queensland.

Mesoliarus n. gen. Matsumura (1) p. 9; p. 10 malagensis n. sp., Spanien.

Mesophylla Jacobi (2?) p. 103 marginata n.sp., Taf. I, Fig. 19, Kilimandjaro.

Metaphaena Strand (2) p. 159 militaris Gerst., Fig.

Metropis Matsumura (1) p. 36 rubripes n. sp., Sizilien.

Mindura Distant (10) p. 319 confusa n.sp., Taf. XXI, Fig.2, Borneo; p. 320

simiana n.sp., Taf. XXI, Fig. 3, Borneo; — (12) p. 66 subfasciata St. ist

= allijata Walk.

Mulvia Distant (14) p. 247 zonata St., Taf. XXII, Fig. 22.

M ycterodus Bergroth (4) p. 240 nasutus H.-Sch. ist = ümmaculatus F.

Naso Ball (1) p. 42 Melichari n. sp., Arizona.

Necho n. gen. Jacobi (2) p. 105; naevius n. sp., Taf. I, Fig. 14, Usambara.

Neocatara n. nom. Distant (10) p. 338 für Catara Walk.

Neocromma n. gen. Distant (10) p. 329; p. 330 bistriguttata St., Taf. XXII, Fig. 4.

Neodaksha n. gen. Distant (10) p. 328; quadriguttata Walk., Taf. XXII, Fig. 9.

Neodictyophara n. gen. Distant (12) p. 64; nasuta n. sp., Taf. I, Fig. 11, Philippinen.

Neosalurnis n. gen. Distant (7) p. 311; reticulatus n. sp., Bhutan, Birmanien.

Nephesa Distant (10) p. 333 sandakonensis n.sp., Taf. XXIl, Fig. 11, Borneo.

Nesodryas Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 596 Tabelle; freycinetiae Kirk.; elaeocarpi

Kirk.; p. 597 Giffardi Kirk.; eugeniae Kirk.; dryope n. sp., Hawaii.

Nesophleias n. gen. Kirkaldy (8) p. 582; nimbata n. sp.; p.583 ?dubautiae n. SP.,

Hawaiische Inseln; — (10) p. 118 artemisiae n. sp., Hawaii.

Nesosydne Kirkaldy (8) p. 583 koae Kirk.; p. 584 var. rubescens Kirk.; pipturi

Kirk.; halia Kirk.; p. 585 pele n. sp.; umbratica n. sp., p. 586 gouldiae n. sp.;

ipomoeicola n. sp.; p. 589 hamadryas n. sp.; haleakala n. sp.; p. 588 nephalias

n.sp.; procellaris n.sp.; p. 589 palustris n.sp.; nubigena n.sp.; cyathodis

n. sp.; p. 590 Chambersi n.sp.; argyroxiphiü Kirk.; imbricola n. sp., p- 591

monticola n. sp., alle: Hawaiische Inseln.

Nesothoe Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 591; Tabelle; p. 592 fletus Kirk.; hula Kirk.;

p. 593 frigidula Kirk.; bobeae Kirk.; Perkinsi Kirk.; p. 594 püilanı Kirk.;

Terryi Kirk.; p. 599 laka Kirk.; p. 595 plwvialis Kirk.; silvestris Kirk.

Nisia Bierman (1) p. 32 psylla n.sp., Taf. I, Fig. 13, Java; p. 33 nitida n. Sp.,

Taf. II, Fig. 14 Java.

Obedas n. gen. Jacobi (2) p. 110; p. 111 proboscideus n. sp., Taf. I, Fig. 12, Meru

und Kilimandjaro.

Oliarus Bierman (1) p. 16 Walkeri St.; p. 17 spinosus n. sp., Java. — Jacobi (2)

p. 106 massaicus n. sp., Taf. 1, Fig. 13, Kilimandjaro; frenatus n. sp., Taf. I,

Fig. 15, Kilimandjaro. — Matsumura (1) p. 2 brevilinea n. sp., Fiume; p. 3

tangira n.sp., Tangiers; p. 4 hispanicus n.sp., Spanien; siculus n.sp., Si-

zilien; S. 5 elongatus n. sp., Griechenland; p. 6 fluvidus [sic!! n. sp., Tangiers;

pallidiolus n. sp., Tunis; p. 7 mezensis n. sp., Port Said; p. 8 minutus n. sp.,

Tunis.

Orgerius Horväth (7) p. 177 megacephalus Osh. u. longiceps Osh. = Sphenocratus

n. gen.

Ormenis Distant (10) p. 322 ?baramia n.sp., Taf. XXII, Fig. 12, N.W. Borneo.

— Jacobi (2) p. 103 suturalis Mel., Taf. I, Fig. 20.

Systematik. 149

Oryxana n. gen. Distant (10) p. 320; subacuta Walk., Taf. XXII, Fig. 6.

Osbornia n. gen. Ball (1) p. 41; p. 42 cornuta n.sp., Utah, Californien.

Ossoides n. gen. Bierman (I) v.26; p. 27 lineatus n.sp., Taf. II, Fig. 11, Java.

Paradaksha n. gen. Distant (10) p. 327; Meeki n. sp., Taf. XXII, Fig. 3, Queens-

land. = Na!

Paraflata Distant (%) p. 302 Kingdomi n.sp., Madagaskar. |

Paranipeus Melichar Bergroth (4) p. 240 ist = Parenipeus.

Paranotus Distant (14) p. 250 rufilineus Walk., syn. trivirgatus Karsch, Taf. XXIII,

Fig. 23. — Jacobi (2) p. 103 rufilinea Walk., Taf. I, Fig. 21.

Parasalurnis n. gen. Distant (%) p. 309; roseitincta Walk.; p. 310 insularis n. sp.,

N. W. Australien; infumata n. sp., Queensland.

Parathiscia Distant (14) p. 248 truncatella Walk., Taf. XXIII, Fig. 2.

Paricana Bierman (1) p. 37; p. 38 dilatipennis Walk.

Paropioxys Jacobi (2) p. 102 gloriosa Karsh, var., Meru. — Schmidt (2) p. 318

nigripennis n. sp., Kongo.

Peregrinus Kirkaldy (8) p. 577 maidis Ashm., syn. psylloides Leth., simplicia Dist.

Perkinsiella Kirkaldy Muir (1) p. 4; p. 4—5 Tabelle; p. 6 sinensis Kirk.; pallv-

dula n. sp., Borneo; Rattlei n. sp., Brit. Neuguinea; p. 7 bicoloris n. sp., Brit.

Neuguinea; p. 8 variegata n. sp.,id.;p 9 papuensis n. Sp., id. ; vastatrix Bredd.;

lalokensis n. sp., Brit. Neuguinea; p. 10 amboinensis n. sp., Amboina; p. 11

fuseifrons n. sp., Amboina; pseudomaidis Kirk. ist eine Phacalastor.

Phacalastor Muir (1) p. 11 pseudomaidis Kirk. (nicht = Perkinsiella).

Phenice Westwood Bierman (1) p. 35 ist nicht = Assamia Buckt. — Kirkaldy (1)

verschieden von Proutista Kirk.; Genotype = fritillaris Boh.

Phromnia Distant (%) p. 300 superba var.;-Neavei n.sp., Katanga; angolensis

n. sp., Angola.

Phyliyphanta Distant (10) p. 329 albidosparsa n. sp., Taf. XXII, Fig. 5, Borneo.

Phyma Distant (10) p. 327 divisa Mel. ist = Daksha Pryeri Dist.

Phymoides n. gen. Distant (10) p. 326; rubromaculatus n. sp., Taf. XXII, Fig. 2,Aru.

Phypia Jacobi (2) p. 105 ornatifrons n.sp., Taf. T, Fig. 6, Kilimandjaro, Meru.

Platybrachys n. gen. Bierman (I) p.41; p. 42 platypoda Damm. n.sp., Java.

Polydictya Sehmidt (2) p. 308 rufifrons n.sp., Java; p. 310 sumatrana n.sp.,

Sumatra; p. 311 iavanensis n. sp., Java.

Populonia n. gen. Jacobi (2) p. 109; difformis n. sp., Taf. I, Fig. 16—17, Kili-

mandjaro, Meru.

Privesa Jacobi (2) p. 102; disturbata Mel.

Proutista Kirkaldy Kirkaldy (1) ist nicht = Phenice Westw.; moesta.

Putalomorpha n. gen. Bierman (I) p.9; p.10 producta Leth., Taf. I, Fig. 4.

Pyrops Bierman (1) p. 3 conspersata Bierm.; p.4 farinosa n. sp., Sumatra. —

Kershaw et Kirkaldy (1) candelaria.

Ricania Distant (10) p. 319 Hewitti n. sp., Taf. XXI, Fig. 1, Borneo.

Saigona n. gen. Matsumura (3) p. 110; p. 111 /shidae Mats. (Dityophara); p. 112

gibbosa n. Sp., Japan.

Sanurus. Bierman (1) p. 39 flavovenosus n.sp., Taf. II, Fig. 16, Java.

Scamandra Bierman (I) p. 5 costalis n. sp., Sumatra. — Distant (12) p. 64 Banksi

n. sp., Taf. I, Fig. 8, Philippinen.

Schmidtella n. gen. Bergroth (4) p. 241, für Bruchomorpha globosa Mel.

Sephena Distant (10) p. 335 subjecta Walk.

150 Insecta. Rhynchota für 1910.

Siphanta Distant (%) p. 304 stigma n. sp., Australien; p. 305 galeata Kirk. — Kuhns

(1) p- 93 acuta, Ei.

Siphantoides n. gen. Distant (%) p. 305; p. 306 conspicua [sic!] n. sp., Queensland;

trimaculatus [sic!] n. sp., Queensland; p. 307 alboconspersus n. sp., Queens-

land.

Sphenocratus n. gen. Horväth (%) p. 176; p. 177 Genotype megacephalus Osh.

(Orgerius); longiceps Osh. (Orgerius); ? productus Fieb.

Stenocranus Van Duzee (2) p. 88 Felti n. sp., New Hampshire, New York.

Stiroma Matsumura (1) p. 38 germanica n. sp., Deutschland.

Syrgis Distant (12) p. 65 acutus Walk. u. simplex Walk.; fasciatus n. sp., Taf. I,

Fig. 10, Philippinen.

Temesa Bierman (I) p. 18 nitida n. sp., Taf. I, Fig. 7, Sumatra.

Tenguella n. gen. Matsumura (3) p. 103; p. 104 Mitsuhashii n. sp., Japan.

Tenguna n. gen. Matsumura (3) p. 104; p. 105 Watanabei n.sp., Japan.

Tetrica Stäl Bergroth (4) p. 241.

Tettigometra Matsumura (1) p. 28 diminuta n. sp., Ungarn.

Thionia Bergroth (4) p. 240 coriacea Mel. (nec. F.) ist = parana n. nom.

Trichoduchus n. gen. Bierman (I) p.28; p.29 Biermani Damm. n. sp., Taf. II,

Fig. 12, Java; p. 30 var. media Bierm. n. var., Java; p. 31 var. hyalına Bierm.

n. var., Java.

Trienopa Jacobi (2) p. 111 bipunctata Mel. ist = Eriphyle longifrons Walk.

Tropidophara n. gen. Bierman (I) p.15; p.16 dubiata n.sp., Taf. I, Fig. 6,

Sumatra, Java.

Tylana Bergroth (4) p. 240 cristata Mel. (nec Fabr.) ist = indecora St.

Ulundia n. gen. Distant (14) p. 250; decisa n.sp., Taf. XXIII, Fig. 1, Natal.

Uxantis Distant (7) p. 317 notata n. sp., Queensland.

Uysanus Distant (14) p. 250 fluctuans Dist., var., Taf. XXIII, Fig. 25; p. 251

Cameroni n.sp., Taf. XXIII, Fig. 22, Brit. Nyassaland.

Xosias Bergroth (4) p. 240 faecarius St. ist = globularis Walk.

Zanna Jacobi (?) p. 101 Zurrita Gerst. ist = clavaticeps Karsch. — Strand (?)

p. 159 clavaticeps Karsch, Fig.

Membracidae.

Acutalis Matausch (?) p. 167 semicrema Say.

Bocchar n. gen. Jacobi (2) p. 120; montanus n. sp., Taf. II, Fig. 2, syn. Lepiocentrus

leucaspis Mel., Kilimandjaro, Meru, Usambara.

Ceresa Hodgkiss (1) p. 92 bubalus Fabr., Taf. II, Fig. 1—3, Taf. III, Fig. 6—7,

Taf. V, Fig. 1—9; p. 100 taurina Fitch., Taf. III, Fig. 1—4, Taf. IV, Fig. 14,

Taf. VI, Fig. 1—9; p. 105 borealis Fairm., Taf. VII, Fig. 1—9. — Matausch

(2) p- 165 albescens Van Duz.

Centrotus Jacobi (2) p. 122 albicornis n.sp., Meru, Usambara; infractus n. sp.,

Taf. II, Fig. 5, Kilimandjaro.

Enchenopa Osborn (1) p. 459 lanceolatum Fabr.

Entylia Matausch (4) sinuata Germ.; p. 262 Übergang zwischen E. concisa Walk.

u. Publilia.

Gargara Bierman (I) p. 45 rubrogranulata n. sp., Java; p. 45 indica n. sp., Java;

p. 46 nigriceps Java; p. 47 soeroelangoena n. Sp., Java.

Systematik. 151

Gongroneura n. nom. Jacobi (2) p. 199 für Pedalion Buckt.; Delalandei Buckt.,

Taf. II, Fig. 1,10; p. 120 brevicornis n.sp., Taf. II, Fig. 3, Kilimandjaro.

Leptocentrus Jacobi (2) p. 120 leucaspis Mel. ist = Bocchar montanus n. gen.

n. Sp.

Monocentrus Jacobi (2) p. 122 deletus Mel.

Negus n. gen. Jacobi (2) p. 121; asper Jac., Taf. II, Fig. 9.

Ozyrrhachis Jacobi (2) p. 119 gibbulus Mel.

Platybelus Jacobi (2%) p. 122 dschagga n. sp., Taf. II, Fig. 4, Usambara, Kilimand-

jaro; p. 123 aries n. sp., Taf. II, Fig. 6, Kilimandjaro, Meru.

Publilia Matausch (4) p. 262 Übergänge zu Entylia concisa Walk.

Smilia Matausch (3) p. 171 camelus Fabr.; p. 172 var. Silvestrii n. var., New York,

New Jersey, Long Island.

Stictocephala Hodgkiss (1) p. 108 inermis Fabr., Taf. VIII, Fig. 1—8. — Matausch

(2) p. 166 Zutea Walk.

Thelia Matausch (1) p. 165 bimaculata Fabr.; — (2) p. 168 bimaculata Fabr.,

Teratologie.

Telamona Matausch (1) p. 165 ampelopsidis Harr.

Tricentrus Bierman (I) p. 44 divergens n. sp., Java.

Xiphistes Jacobi (2) p. 119 inermis n.sp., Taf. II, Fig. 7, Kilimandjaro.

Xiphopaeus Jacobi (%) p. 121 hirculus n. sp., Taf. II, Fig. 8, Kilimandjaro.

Tetigoniidae.

Oshanin (1) pp. 154—187 Katalog der paläarkt. Arten.

Acocephalus Bervoets (3) p. 128 resinosus n.sp., Taf. I, Fig. 7—8, Baltischer

Bernstein. j

Acropona Jacobi (2) p. 126 Zucida Schaum., Taf. II, Fig. 21.

Agallia Lambertie (5) p. 83 Antoniae Mel. (nach Melichar).

Baramapulana n. gen. Distant (14) p. 235; princeps n.sp., Taf. XXII, Fig. 25,

Transvaal.

Bolinlila n. gen. Distant (14) p. 234; p. 235 rhodesianus n. sp., S. O. Rhodesien.

Bythoscopus Jacobi (2) p. 129 subolivaceus St., Taf. II, Fig. 27. — Bervoets (3)

p- 126 punctatus n.sp., Taf. I, Fig. 2—3, Baltischer Bernstein.

Cephalelus Distant (14) p. 251 infumatus Perch., syn. paradorum Burm., Fig. 47.

Chlorotettix Osborn (1) p. 465 vittata n. sp., Guatemala.

Coloborrhis Jacobi (2) p. 123 corticina Germ., Taf. II, Fig. 12.

Confueius Distant (14) p.231 Cameroni n. sp., Taf. XXI, Fig. 27, Nyassa.

Dagama n. gen. Distant (14) p. 243; novata n.sp., Taf. XXIII, Fig. 18, Natal.

Deltocephalus Jacobi (2) p. 132 eques n. sp., Taf. II, Fig. 30, Kilimandjaro, Meru;

p. 132 kilimanus n. sp., Kilimandjaro, Meru.

Distantia Jacobi (2) p. 126 maculithorax n.sp., Taf. II, Fig. 32, Meru.

Dorydium ®sborn (1) p. 464 maculatum n. sp., Guatemala.

Drabescus Distant (14) p. 242 natalensis n. sp., Taf. XXIII, Fig. 11, Natal.

Empoasca Distant (5) p. 196 theae n.sp., Cachar. — Washburn (1) p. 162 mali

Le B.; — (2) mali Le B. — Webster (1) p. 265 obtusa Walsh.; p. 266 mali

Le B.; — (2) mali Le B.

Equeefa n. gen. Distant (14) p. 242; p. 243 Castelnaui n. sp., S. Afrika.

Erythroneura Horväth (2) p. 176 Mocsäryi n. sp., S. Ungarn.

Eupteryx Bervoets (3) p. 127 minuta n. sp., Taf. I, Fig. 5—6, Baltischer Bernstein.

152 Insecta. Rbynchota für 1910.

Goniagnathus Jacobi (2) p. 133 ocellatus n.sp., Taf. II, Fig. 33, Meru; obesus

n. sp., Taf. II, Fig. 34, Kilimandjaro.

Gubela n. gen. Distant (14) p. 232; bellicosa n. sp., Taf. XXII, Fig. 17, Transvaal,

Natal.

Gunghuyana n. gen. Distant (14) p. 244; gazana n. sp., Taf. XXIII, Fig. 15, S.O.-

Rhodesien.

Hecalus Bierman (1) p. 65 dilatatus n. sp., Sumatra. — Distant (14) p. 238 scu-

tellatus n. sp., Taf. XXIII, Fig. 10, Delagoabay; durbanensis n. sp., Natal;

p. 239 Afzelüi St., syn. foliaticeps St.; grandis n.sp., Taf. XXIII, Fig. 13,

Transvaal.

Hodoedocus n. gen. Jacobi (2) p. 126; p. 127 acuminifrons n. sp., Taf. II, Fig. 18,

Kilimandjaro.

Igerma Jacobi (2) p. 129 bimaculicollis St., Taf. II, Fig. 28.

Jassus Kirkaldy (5) p. 63 sinhalanus n. nom. für pulchella Kirb.; rama n. nom.

für elegans Dist.

Kolla Distant (14) p. 234 albida Walk., Fig. 42.

Korana n. gen. Distant (14) p. 241; maculosa n.sp., Taf. XXIII, Fig. 14, Zulu-

land, S. O. Rhodesien.

Kosasia n. gen. Distant (14) p. 240; typica n. sp., Taf. XXIII, Fig. 9, Natal.

Krisna Distant (14) p. 241 uniformis n. sp., Taf. XXIII, Fig. 12, Natal.

Ledroides n. gen. Dammermann in Bierman (I) p.59; p. 60 reticulata Bierm.

n. sp., Sumatra.

Ledropsis Bierman (1) p.50 quinquepunctata n.sp., Sumatra. — Distant (14)

p. 231 zombana n.sp., Taf. XXI, Fig. 26, Nyassaland.

Macropsis Jacobi (2?) p. 129 simplex n.sp., Taf. II, Fig. 29. Kilimandjaro. —

Lambertie (2, 4) scutellaris var. purpurata Horv. (nach Horväth).

Macrosteles Kirkaldy (8) p. 575 kilaueae n. sp., Hawaiische Inseln.

Mapochia n. gen. Distant (14) p. 231; p. 232 collaris n.sp., Taf. XXII, Fig. 16,

Caffraria.

Molopopterus n. gen. Jacobi (2) p. 133; p. 134 nigriplaga n.sp., Fig. N, Kili-

mandjaro.

Mysolis Kirkaldy Kirkaldy (5) p- 63, syn. Norsia Walk., Norsiana Dist.

Narecho n. gen. Jacobi (2) p. 127; p. 128 pallioviridis n.sp., Taf. II, Fig. 19,

Kilimandjaro, Meru.

Nesophrosyne Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 558, mit Unterg. Nesoreias n. subgen.;

p. 558 umbratilis n.sp.; p. 559 halemanu n.sp.; silvigena n.sp.; Perkinsi

Kirk.; p. 560 maritima n. sp.; gouldiae n. sp.; pipturi n. sp.; p. 561 ponapona

n.sp.; opalescens n.sp.; p. 562 sp.; monticola n.sp.; koleae n.sp., pP. 563

Giffardi n.sp.; ulaula n.sp., var. nigrolineata n. var.; p. 564 bobeae n. sp.;

paludicola n. sp.; p. 565 procellaris n. sp.; nimbicola n. sp.; wmbricola n. Sp.;

milu n.sp.; p. 566 imbricola n.sp.; oncanea n.sp.; caelicola n.sp.; p. 567

nubigena n.sp.; holeakala n. sp.,; nimbigena n.sp.; p. 568 myrsines n. Sp.;

pluwvialis n. sp., p. 569 ehu n. sp.; oreadis n. sp.; montivaga n. Sp.; montium

n. sp.; p. 570 silvicola n. sp.; ignigena n.sp.; pele n.sp.; p. 571 umbrigena

n.sp.; craterigena n.sp.; arcadiicola n.sp.; p. 572 nuenue n.sp.; pP. 573

(Nesoreias) insularis n.sp.; (N.) oceanides n. sp.; alle: Hawaiische Inseln.

Nesophryne Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 556, Tabelle; filicicola Kirk.; p. 557 micro-

lepiae n. sp., Hawaiische Inseln.

Systematik. 153

Nesoreias n. subgen. Kirkaldy (8) p. 558, neue Untergattung zu Nesophrosyne Kirk.

Nesosteles Kirkaldy Kirkaldy (8) p. 573; p. 574, Tabelle; hebe Kirk.; volcanicola

n. Sp.; plutonis n.sp.; p- 575 peregrina n.sp.; alle: Hawaiische Inseln.

Norsia Walker Kirkaldy (5) p- 63 ist = Mysolis Kirk.

Norsiana Distant Kirkaldy (5) p- 63 ist = Mysolis Kirk.

Oncometopia Osborn (1) p. 460 obtusa F., syn. interjecta Fowl.

Palicus Jacobi (2) p. 130 constrictus n. sp., Taf. II, Fig. 20, Kilimandjaro.

Parabolocrates Bierman (I) p. 63 minutus n.sp., Java; p. 64 dubiatus n.sp.,

Taf. II, Fig. 20, Java. — Distant (14) p. 239 virescens n.sp., Taf. XXIII,

Fig. 7, Transvaal. — Jacobi (2) p. 124 unicolor n. sp., Taf. II, Fig. 17, Kili-

mandjaro.

Pediopsis Bervoets (3) p. 127 minuta n. sp., Taf. I, Fig. 4, Baltischer Bernstein.

Penthimia Bierman (1) p.56 apicata n.sp., Sumatra; p. 57 iris n.sp., Java;

p. 58 rawasi n. sp., Sumatra. — Distant (14) p. 236 vinula St., Taf. XXII,

Fig. 20; zampae n. sp., Taf. XXII, Fig. 19, Natal; tenebrosa n. sp., Taf. XXII,

Fig. 18, Natal, Calabar; p. 237 Escalerae n. sp., Kamerun; aethiopica n. Sp.,

Kamerun, Alt Calabar. — Jacobi (2) p. 129 bella St., Taf. II, Fig. 16.

Petalocephala Distant (5) p. 196 granulosa n. sp., Bengal. — Jacobi (2) p. 123

platyops n. sp., Taf. II, Fig. 12, Kilimandjaro.

Phlepsius Osborn (1) p. 466 costomaculatus Van Duz. (Allygus).

Phrynomorphus Jacobi (2) p. 130 capicola St., Fig. L; p. 131 kilimanus n. sp.,

Taf. II, Fig. 31, Kilimandjaro, Meru.

Platymetopius.Burmeister Van Duzee (3) p. 214; p. 216—218 Tabelle der amerik.

Arten; p. 218 hyalinus Osb.; nigriviridis Ball u. var. dixianus Ball; p. 219

majestus Ball; elegans Van Duz.; acutus Say, syn. magdalensis Prov.; p. 220

var. dubius n. var.; oregonensis Baker; p. 221 latus Baker; cuprescens Osb.;

p- 222 Slossoni n. sp., Florida; p. 223 cinereus Osb. et Ball; angustatus Osb.;

p- 224 fulvus Osb.; dorsalis Ball; p. 225 frontalis Van Duz.; nasutus Van Duz.;

p- 226 loricatus Van Duz.; nanus Van Duz.; p. 227 irroratus n. sp., California,

Arizona, Mexiko; p. 227 verecundus n.sp., Florida; p. 228 scriptus Ball;

p- 229 obscurus Osb.; Osborni n.sp., Guatemala; p. 230 brevis Van Duz.;

fuscifrons Van Duz., syn. abruptus Ball. ; modestus St.; p. 231 tenuifrons Baker.

Platyretus Distant (24) p. 240 tricolor Walk., syn. amaenus St., aperiens Walk.,

vitreicosta Walk., cinctus Mel., Taf. XXIII, Fig. 6. — Jacobi (2) p. 127 cinctus

Mel., Taf. II, Fig. 24.

Scaphoideus Osborn (1) p. 464 scalaris Van Duz.; p. 465 tesselatus n. sp., Guate-

mala.

Siva Bierman (1) p. 61 rosea n. sp., Taf. II, Fig. 19, Java.

Selenocephalus Jacobi (2) p. 124 robustus n.sp., Taf. II, Fig. 13, Kilimandjaro,

Usambara; p. 125 monticola n.sp., Taf. II, Fig. 15, Kilimandjaro; lactei-

sparsus n.Sp., Taf. II, Fig. 14, Usambara, Kilimandjaro.

Stymphalus Jacobi (2) p. 126 rubrolineatus St., Taf. II, Fig. 23.

Tetigonia Geoffroy Kirkaldy (5) p. 63 vor Tettigoniella Jac. — S. Tettigonia

u. Tettigoniella.

Tettigonia Bierman (1) p.51l batavia n.sp., Java; p. 52 gemina Walk.; p. 54

sumatrana n.sp., Taf. II, Fig. 18, Sumatra; p.55 dentata n. sp., Sumatra.

— [= Tetigonia.]

154 Insecta. Rhynchota für 1910,

Tettigoniella Distant (14) p. 233 cosmopolita Sign., Taf. XXI, Fig. 25; Schonlandi

n. sp., Taf. XXII, Fig. 21, Natal; p. 234 spectra Dist., syn. albida Sign. —

Jacobi (2) p. 128 nigrinervis St.; typhlocyboides Spin., Taf. II, Fig. 25; collina

n. sp., Taf. II, Fig. 26, Kilimandjaro. — Osborn (1) p. 461 bifida var. fusco-

lineella Fowl.; geometrica Sign., syn. psitacella Fowl.; p. 462 similis Walk.,

syn. prolixa Fowl. — [= Tetigonia. ]

Thamnotettix Ball (2) p. 266 venditaria n. sp., Utah, Nevada; viriosa n. sp., Cali-

fornien; p. 267 Titusi n. sp., Californien, Oregon; p. 268 vastula n. sp., Cali

fornien; p. 301 vespertinae n.sp., Californien; visalia n.sp., Californien;

p. 302 atridorsum var. vetula n. var., Californien, Utah; var. vesea n. var.,

Californien; p. 302 Titusi var. vivata n. var., Californien, Nevada; p. 303

gloriosa n. sp., Californien; gemella n. sp., Californien; p. 304 generosa n. Sp»,

Californien; gerula n. sp., Californien, Oregon; p. 305 vapida n. sp., Mexiko,

Californien; p. 306 dissimilata n.sp., Californien; p. 307 gutturosa n. Sp.,

Californien; wursina n. sp., Oregon; p. 308 glomerosa n. sp., Colorado; p. 309

gladiola n. sp., Colorado; umbratica n. sp., Californien.

Tituria Distant (14) p. 230 antica Walk., Taf. XXI, Fig. 22.

Typhlocyba Hartzell (1) p. 568 comes Say, Taf. XIII, Fig. 4. — Webster (1) p. 267

rosae L.

Ulopa Jacobi (2) p. 123 aequatorialis n. sp., Taf. I, Fig. 11, Meru.

Zygina Jacobi (2) p. 133 nuchalis n. sp., Taf. II, Fig. 35, Kilimandjaro.

Cercopidae.

Oshanin (1) p. 152—154 Katalog der paläarkt. Arten.

Aphrophorias n. nom. Kirkaldy (5) p. 63 für Lora Dist. 1908.

Avernus Schmidt (3) p. 338 ocelliger var. fuscus Schm. ist = interruptus Walk.;

p. 338 sphenorhinomimus n. sp., Columbien.

Cercopis Fabricius Schmidt (1) p. 103; p. 104 carnifex Fabr.

Clovia Jacobi (2) p. 113 prolixa St., Taf. I, Fig. 31; p. 114 calligera St., Taf. 1

Fig. 24; declivis n. sp., Taf. I, Fig. 25, Kilimandjaro. — Lallemand (I) p. 47

Schoutedeni n. sp., Nigerien.

Colsa Walker Bierman (I) p. 48, syn. Sialoscarta Jac.; sanguinea n. sp., Taf. II,

Fig. 17, Sumatra. — PDistant (10) p. 328 matanga Dist. ist = Staloscarta

Krügeri Schm. — Schmidt (3) p. 328.

Considia Stäl Schmidt (1) p. 100 meridionalis n. sp., Sumatra; p. 101 borealis n. Sp.,

Birmanien; — (3) p. 324, syn. Tettigoscarta Bredd.; pp. 325—326 Tabelle;

p. 327 nitidula Bredd.

Cosmoscarta Schmidt’(1) p. 70 egens Walk. = Mischart; confinis n. sp., Tonking;

p. 72 prompta n.sp., Birmanien; innota n.sp., Sikkim; p. 73 innominata

n. sp., Birmanien; p. 74 dimota n. sp., Birmanien; p. 75 discessa n. sp., Bir-

manien; p. 76 ochraceicollis n. sp., Birmanien; p. 77 gracilis n. sp., Birmanien;

p. 78 trifasciata n. sp., Birmanien; p. 79 nigriventris n. sp., Birmanien; p. 80

pegquensis n. Sp., Birmanien; p. 81 brevis n. sp., Birmanien; — (4) p. 52 S. Ho-

malostethus; p.55 S. Opistarsostethus; p. 113; p. 115 egeria n.sp., Syn.

egens Jac., Tonking; p. 116 nigriceps n.sp., Perak; p. 117 nitidula n. sp-,

Sumatra; p. 118 thalia St., syn. intermedia Walk.; p. 119 var. minor n. var.

Batchian; trigona Walk., syn. amplicollis Walk.; p. 120 callizona Butl.;

Systematik. 155

p- 121 dimidiata Dall.; bipunctata n. sp., Sumatra; p. 123 discrepans Walk.;

bispecularis White, syn. sumtuosa St., bimacula Walk.

Ectemnonotops n. gen. Schmidt (4) p. 79; p. 80 luridifulva n.sp., W. Sumatra;

— (1) p. 62 marginalis n. sp., Nias; p. 63 nitida n. sp., Indische Inseln oder

Malakka.

Ectemnonotum Schmidt (1) p. 56 univittatum n.sp., Nias; p. 57 mentaweiense

n. sp., Mentawei; javanense n. sp., Java.

Eoscarta Schmidt (1) p. 102 Modiglianii n. sp., Sumatra; — (3) p. 328 eos Bredd.

Gute Art; semirosea Dist. (nec Walk.) ist = liternoides Bredd.

Gynopygoplax Schmidt (1) p. 53 nigriscutellata n. sp., Birmanien.

Homalostethus n. gen. Schmidt (4) p. 52; Genotype terpsichore St. (Cosmoscarta) ;

7 Arten (früher Cosmoscarta); p. 53 terpsichore St., syn. semilurida Walk.;

p. 55 fervescens var., Celebes; — (1) p. 58 ochraceicollis n. sp., Celebes.

Leptataspis n. gen. Schmidt (4) p. 81; 43 Arten; Genotype siamensis Butl.; p. 82

nigriscutellata n. sp., Cambodien; p. 84 leoninella n. sp., Bengal; p. 85 suma-

trana n. sp., Sumatra; p. 87 similis n. sp., Sumatra; p. 88 Zestaceicollis n. Sp.,

Sumatra; p. 89 var. femoralis n. var., Sumatra; fulvicollis Walk.; p. 90

borneensis n.sp., N. Borneo; p. 91 costalis n.sp., Sumatra; proserpinopsis

n.sp., Philippinen; p. 93 angulosa St., syn. flaccida Butl.; p. 95 discolor

var. quadripunctata n. var., Key, Aru, Neu Guinea; p. 96 var. bipunctata

n. var., Celebes; fornax n. sp., Neu Guinea; p. 97 fortunata n. sp., N. Borneo;

p. 98 formosula n.sp., Sumatra; p. 100 longirostris n. sp., Sumatra; p. 101

cambodjana n.sp., Cambodien; p. 102 palawana n.sp., Palawan; p. 104

guttatiformis n. sp., Java; guttata Lep. et Serv.; p. 107 beatifica n. sp., Java;

p. 108 Zutea n.sp., Java; p. 110 barda n.sp., Java; p. 112 polyxena var.

major n. sp., Sumatra; — (1) p. 63 murina n. sp., Sumatra; p. 64 acuta n. Sp.,

Sumatra; p.65 plagiventris n.sp., Birmanien; p. 66 nigrolimbata n.Sp.,

Sarawak; S. 67 scabrida n.sp., Sumatra; p. 69 polyzxenia n.sp., Sumatra.

Liorhinella Schmidt (1) p. 110 elephas n. sp., Fernando Po.

Locris Bergroth (2) p. 234 bicoloripes n. sp., Madagaskar. — Distant (14) p. 229

sanguinipes Walk., syn. funebris St., Taf. XX, Fig. 16; aenea Dist., Taf. XXII,

Fig. 15; rhodesiana Dist., Fig. 40; Junodi Dist. (Junoti), Taf. XXII, Fig. 14.

— Jacobi (1) p. 303 Schmidti n. sp., Deutsch Ostafrika; latior n. sp., Usambara;

p- 304 unicolor n. sp., Deutsch Ostafrika; — (2) p. 112 livida n. sp., Taf. I,

Fig. 33; p. 113 cardinalis Gerst., Taf. I, Fig. 29—30; vulcani n.sp., Taf. I,

Fig. 34, Meru. — Lallemand (1) p. 46 rubra var. pulchra n. var., Delagoabay;

var. Zutea n. var., Uganda; aethiopica var. tripunctata n. var., Rhodesien;

undata n. sp., Erythraea; Johannae n. sp., Tanganyika; p. 47 var. nigrolimbata

n. var., Madagaskar; Godingi n. sp., Kamerun; Vanduzeei n. sp., Kongo.

Lora Distant Kirkaldy (5) p. 63 ist = Aphrophorias n. nom.

Megastethodon n. gen. Schmidt (4) p. 68; p. 69 Tabelle; p. 70 rubrifer Walk.; p. 71

xanthorrhinus Boisd.; horrificus Butl.; pp. 72 u. 77 bipunctatus n. sp., Neu-

Guinea; p. 72 Urvillei Lep. et Serv., syn. nasalis Walk.; p. 72 u. 75 Water-

stradti n. sp., Waigiu; p. 73 hyphenoe Bredd.; pp. 72 u. 76 mysolensis n. SP.,

Mysol; — (1) p. 59 septemplagiatus n. sp., Fiume, Purari; p. 60 quadriplagiatus

n. sp., Fiume, Purari; p. 61 rufinervis n. sp., Neu-Guinea.

Notoscarta Schmidt (1) p. 105 trifasciata n.sp., Neu Guinea; p. 106 variabılis

n. sp., Neu Guinea usw.; nox n. sp., Fiume, Purari; p. 107 latifasciata n. 5p.,

156 Insecta. Rhynchota für 1910.

Fiume, Purari; p. 108 hyalinipennis n. sp., Fiume, Purari; p. 109 nigrinervis

n. sp., Neu Guinea.

Opistarsostethus n. gen. Schmidt (4) p. 55, Genotype octopunctata Lep. et Serv.

(Cosmoscarta); p. 56 javanensis n. sp., Java; p. 58 simulans n. sp., C. Borneo;

p- 59 divergens n. sp., C.Borneo; p. 60 globosicollis n. sp., Sumatra, N. Borneo;

Malakka; p.61 rotundatus n.sp., C. Borneo; p. 36 dorsalis Walk.; p. 64

demonstratus Dist.; p.65 unipunctatus n. sp., C.Borneo; p. 66 menaca Dist.;

sanguineus N. SP., Java; p. 67 quadripunctatus n. Sp.

Orthorhinella n. gen. Schmidt (1) p. 110; p. 111 anthracina n. sp., Fernando Po.

Oxymegaspis n. gen. Schmidt (4) p. 77; p. 78 maculipennis n. sp., Java.

Pachacanthocnemis n. gen. Schmidt (3) p. 332; p. 333 simillima n. sp., Ecuador.

Philaenus Grigoriev (1) p. 397 Petrovi n. sp., Transkaukasien. — Jacobi (2) p. 114

basiclarus n. sp., Taf. I, Fig. 28, Kilimandjaro, Meru; p. 115 basiniger n. Sp.,

Taf. I, Fig. 27, Kilimandjaro, Meru; caffer St.

Phlebarcys n. gen. Schmidt (1) p. 82; p. 83 uniplagiata n.sp., Sumatra; p. 84

basiplagiata n. sp., Sumatra; rubripennis n. sp., Sumatra.

Phymatostetha Schmidt (1) p. 95 rufolimbata n.sp., Birmanien; p. 96 similis

n. sp., Birmanien; p. 96 Zaeniata n.sp., Birmanien; p. 98 subcostalis n. Sp.,

Birmanien; Fruhstorferi n.sp., W. Java; p. 99 borealis n.sp., N. Borneo.

Plagiophleboptena n. gen. Schmidt (3) p. 329; p. 331 tigrina n.sp., Ecuador.

Pogonorhinella n. gen. Schmidt (3) p. 334; p. 335 madagascariensis n. sp., Mada-

gaskar.

Poophilus Stäl Jacobi (2) p. 115, Tabelle; p. 116 grisescens Schaum, Fig. E;

latiusculus St., Fig. F; montium n.sp., Fig. G; — p. 117 conspersus St.,

Fig. H; terrenus Walk., Fig. I; costalis Walk., Fig. K.

Porpacella Schmidt (1) p. 92 quadrimaculata n.sp., Ternate; p. 94 conspurcatae

n. sp., Neu Guinea.

Sepullia Jacobi (2) p. 118 curtula n. sp., Taf. I, Fig. 26, Usambara.

Staloscarta Jacobi Bierman (1) p. 48 ist = Colsa Walk. — Distant (10) p. 338,

gute Gattung; Krügeri Schm.. syn. matanga Dist. (Colsa). — Schmidt (3)

p- 327, p. 328 Krügeri Schm., syn. matanga Dist.

Sphodroscarta Schmidt (3) p. 337 ebeninus Jac., syn. balteatus Dist.

Suracarta Schmidt (1) p. 54 taeniata n. sp., Sumatra.

Tettigoscarta Breddin Schmidt (3) p. 324 ist = Considia St.

Tomaspis Lallemand (1) p. 45 notata n.sp., Französ. Kongo; Schoutedeni n. sp.,

Madagaskar; Wellmani n. sp., Benguela; tricolor n. sp., Kongo.

Tremapterus Jacobi (%?) p. 118 major n.sp., Taf. I, Fig. 32, Kilimandjaro.

Trichoscarta Schmidt (1) p. 85 Breddini n. sp., Sumatra; p. 87 similis n. sp., Java;

divergens n.sp., Mentawei; p. 88 dissoluta n.sp., Sumatra; p. 89 vittata

n. sp., Sumatra; p. 90 excisa n. sp., N. Borneo; p. 91 reducta n. sp., Sumatra.

Tropidorhinella n. gen. Schmidt (3) p. 336; p. 337 inflata Jac.

Chermidae.

Börner (2) Flügeläderung. — Crawford (1,2) N.- u. C. Amerik. Chermiden.

— Enderlein (1) p. 137 Ciriacreminae n. subfam. (Prionoenemidae Scott); pp. 138

—139 Tabelle der Gattungen. — Oshanin (1) pp. 187—196 Katalog der paläarkt.

Arten. — Stough (1) Morphologie.

Systematik. 157

Cecidotrioza Kiefter et Jörgensen (1) p. 372 mendocina n.sp., Argentinien.

Ceropsylla Riley Crawford (1) p. 229.

Ciriacremum n. gen. Enderlein (1) p. 139; filiverpatum n. sp., Taf. III, Fig. 1,

Kilimandjaro; p. 140 africanum n.sp., Taf. III, Fig. 2, Kilimandjaro.

Gonanoplicus n. gen. Enderlein (1) p. 143; guttulatus n. sp., Taf. III, Fig. 3, 5—8.

Pachypsylla Cockerell (6) p. 180 Rohweri n. sp., Colorado. — Stough (I) celtidis-

mannae Ril.

Panisopelma n. gen. Enderlein (1) p. 138, quadrigibbiceps n. sp., Argentinien; —

(2) p- 280 n. gen.; quadrigibbiceps n. sp., Argentienien.

Paratrioza n. gen. Crawiord (1) p. 228; p. 229 Tabelle; ocellata n. sp., pulchella

n. sp., pulchella flava n. subsp., arbolensis n. sp., antennata n. sp., medicaginis

n. sp., alle: Verein. Staaten.

Petalolyma Scott Crawford (1) p. 228 ist = Trioza Först.

Psylla Enderlein (1) p. 142 kilimandjaroensis n. sp., Taf. III, Fig. 4, Kilimandjaro.

— Rübsaamen (1) p. 23 Winkleri n. sp., Kamerun.

Rhinopsylla Riley Crawford (1) p. 228.

Trioza Förster Crawford (1) p. 228, syn. Petalolyma Scott; pp. 229—233 Tabelle

der nordamerikan. Arten; p. 229 collaris n. sp.; p. 230 maculata n. sp., acuti-

pennis n. sp., Bakeri n. Sp., maculipennis n. Sp., latipennis n. SP., viridis D. SP.,

frontalis n. sp., nigrifrons n.sp.; p. 231 iripunctata Fitch; albifrons n. Sp.,

rotundipennis n. Sp., similis n. Sp., fulvida n. Sp., varians n. Sp., fulvida similis

n., longicornis n. Sp., aurantiaca n. sp:, p. 232 var. frontalis n. var., marginata

n. sp., californica n. sp., salicis Mall., nigra n. sp., minuta n. sp., tripunctata

Fitch; p. 233 quadripunctata n.sp., longistylus n.Sp., nicaraguensis D. SP.,

sulcata n. Sp., var. similis n. var., fovealis n. Sp., assimilis n. Sp., immaculata

n. Sp., laticeps n.Sp.,; p. 234 californica n.sp., Californien; p. 235 Bakeri

n. sp., Californien; p. 236 rotundipennnis n. sp., Californien; p. 237 maculi-

pennis n.sp., Californien; — (2) p. 347 collaris n.sp., Californien; p. 249

maculata n. sp., Arizona; p. 350 acutipennis n. sp., Nicaragua; viridis n. SP.,

Californien; p. 351 nigrifrons n. sp., Colorado; p. 352 similis n. sp., Colorado;

diospyri n. sp., syn. latipennis Crawf. 1910; p. 353 frontalis n. sp., Colorado;

p- 355 albifrons n. sp., Californien; p. 356 marginata n.sp., Arizona; p. 358

nigra n.sp., Colorado, Louisiana, Illinois; fulvida n.sp., Colorado; p. 359

var. similis n. var., Colorado; longicornis n. sp., Vancouver; p. 360 aurantiaca

n.sp., Californien, Nevada; p. 361 varians n.sp., Colorado. — Kieffer et

Jörgensen (1) p. 386 ?gallifex n.sp., Argentinien. — Sasaki (1) p. 278 cam-

phorae n.sp., Japan, Formosa, $. China.

Chermiden-Larven Rübsaamen (1) p. 9 u. 18, in Blattgallen, Kamerun.

Aleyrodidae.

Börner (2) Flügeladerung. — Gowdey (1) Charakteren usw.

Aleurochiton Tullgren Wolff (1) p. 647; p. 648 aceris Geoffr.

Aleyrodes Latreille Bock (k) Howardi Quaint. — Cockerell (2) p. 171 ursorum

n. sp., Colorado, auf Arctostaphylos uva-ursi; — (3) p. 370 ambrosiae n. SP.,

Colorado, auf Ambrosia artemisiaefolia. — Gowdey (1) p. 350; p. 350—352

Tabelle; p. 352 citri Ril. et How.; Taf. II, Fig. 3—5; p. 354 floccosa Mask.;

p: 355 floridensis Quaint., Taf. I, Fig. 1—2; goyabae Göldi; p. 356 horridus

158 Insecta. Rhynchota für 1910,

Hemp.; Howardi Quaint., Taf. I, Fig. 3—4; p. 357 vaporariorum Westw.,

Taf. II, Fig. 1—2; p. 358 variabilis Quaint., Taf. I, Fig. 5—6.

Aleurodicus Leonardi (1) p. 316 ZLahillei n.sp., Argentinien; p. 320 sSilvestrii

n. sp., Mexiko. — S. Aleyrodieus.

Aleyrodicus Douglas Gowdey (1) p. 347; Tabelle; p. 347 anonae Morg.; p. 348

cocois Curt., Taf. I, Fig. 7—10; p. 350 Dugesi Cock. — S. Aleurodicus.

Phylloxeridae.

Cholodkovsky (2) Chermes-Arten; — (3) id. — Grassi (1, 2). — Mae Dougall

(1). — Marchal (3). — Nüsslin (1,2) Neue Ergebnisse der Chermes-Forschung.

Chermes (sens. lat.!] Cholodkovsky (2) viridanus, viridis, occidentalis, strobilobius.

— Henrich (1) p. 85; laricis Hart.; abietis L.; p. 86 strobilobius Kalt.; p. 87

corticalis Kalt. — Nüsslin (1, 2). — Patch (2); — (3) floccus n. SP,

consolidatus n.sp., lariciatus n.sp., Maine; — (4) p. 277 pinifoliae Fitch,

syn. abieticolens Thom., Fig. 108—109, 127—132; p. 290 abietis Chol., Fig. 115

— 117, 137—140; p.294 lariciatus Patch, Fig. 118—122, 141; p.297 consoli-

datus Patch, Fig. 123—126, 145; p. 299 floccus Patch, Fig. 110—112, 133

— 135; p. 301 similis Gill., Fig. 113, 142—144; p. 303 pinicortieis Fitch,

Fig. 146; pp. 306—307 Tabelle der Chermes im Maine-Staat. — Stebbing (1)

p. 100 himalayensis n. sp. (n. nom. für abietis-piceae Stebb. 1903!).

Phylloxera Boyer Henrich (1) p. 88 vastatrix Planch.

Pineus Baer (I) pini Koch.

Aphidae.

Borcea (1). — Börner (2) Flügeladerung. — Nüsslin (4) Einteilung in Familien

und Unterfamilien. — Oestlund (1) Erscheinungszeiten der Kochschen Aphiden-

Hefte. — Petri (1). — Wilson (1) Liste der Aphiden-Gattungen ; — (3) Bestimmungs-

tabelle der Callipterini-Gattungen; — (4) Bestimmungstabelle der Aphidinae-

Gattungen u. Diagnosen. — Williams (1) Aphiden von Nebraska.

Aphis Britton (1) p. 345 ? sorbi Kalt. (? pyri Boyer, ? malifoliae Fitch). — Davis (3)

p. 245 aquaticus Jacks. ist = Rhopalosiphum nymphaeae L.; — (5) p. 485

houghtonensis Troop, Taf. XXXI, Fig.5; p. 483 coreopsidis Thom., syn.

frondosae Oestl., Taf. XXXIL, Fig. 11—13; p. 486 illinoisensis Shim., syn.

viticola Thom.; p. 487 lonicerae Mon., Taf. XXXI, Fig. 6—9, Taf. XXXH,

Fig. 10; p.488 neilliae Oestl.; p. 489 populifoliae Fitch.; p. 490 spiraeella

Schout., Taf. XXXIL, Fig. 14—18. — Essig (5) p. 223 gosspyü Glov.; — (9)

p. 335 hederae Kalt. — 6illette (3) p. 403 salicicola Thom., Fig. 1—2; p. 404

sorbi Kalt., Fig. 3—5; ripariae Oestl., Fig. 6—7; asclepiadis Fitch, Fig. 8—9;

pomi Geer, Fig. 10—11; gossypii Glov., Fig. 12—13; spiraeella Schout.,

Fig. 14—15; cardui L., Fig. 16—17; p. 405 cephalanthi 'Thom., Fig. 18—19;

sambuci L., Fig. 20—21; cerasifolii Fitch, Fig. 22—23; Bakeri Cow., Fig. 24

— 25; brassicae L., Fig. 26— 27; maidi-radicis Forbes, Fig. 28—29; rumicis L.,

Fig. 30—31; atriplicis L., Fig. 33—34; cornifoliae, syn. @üllettei Cow., Fig. 35

—38; helianthi Mon. — Henrich (3) p. 35; p. 37 padi L.; crataegifKalt.;

p. 38 brassicae L.; p. 39 angelicae Koch; heraclei Koch; p. 40 grossulariae

Kalt.; saliceti Kalt.; p. 41 urticae F.; plantaginis Schrk.; p. 42 mali F.; p. 43

cardui F.; sedi Kalt.; p. 44 euonymi F.; p. 45 intybi Koch; sambuci L.; p. 46

Systematik. 159

viburni F.; papaveris F.; p. 47 rumicis L.; p. 48 craccae F.; galii F.; euphorbiae

Kalt.; p. 49 atriplicis L.; carotae Koch; p. 50 persicae Boger; tragopogonis

Kalt.; — Vickery (1) p. 97 maidi-radicis Forbes; p. 112 menthae-radieis Corv.

ist = maidi-radicis; armoracea Cow. = ?id.; p. 113 Middletoni Thom. —

Williams (1) p. 121 artemisicola n. sp.; p. 123 canae n. sp.; chrysanthemicola

n.sp.; p. 124 cnici n.sp.; p-. 127 Lilicola n.sp., p. 129 lonicericola n. sp.;

p. 130 Zugentis n.sp.; p. 137 parthenocissi n. sp.; p. 138 pentstemonis n. Sp-;

p. 140 saniculae n. sp.; sativae n. Sp.; p. 157 [?] senecionis n. sp.; p. 142 soli-

daginifoliae n.sp.; p. 145 yuccicola n.sp., alle: Nebraska. — Wilson (?)

p. 29 viburni Scop., syn. viburnum-opulus Rafin., viburnumacerifolium

Rafin., viburnicola Gill.; crataegus-coccinea Rafin., syn. crataegifoliae Fitch;

cornustricta Rafin., syn. cornifolia Fitch; brassicae L., syn. brassicae-

napus Rafin; — (4) p. 322; p. 315 Genotype ist ? ulmi L. [Tetraneura];

p- 323 rufomaculata Wils. = Coloradoa n. gen.

Amphorophora Buckton Wilson (4) p. 320.

Arctaphis Walker Wilson (3) p. 385 populi L.

Brachycolus Buckton Wilson (4) p. 324.

Calaphis Walsh Wilson (3) p. 255; betulella Walsh. — Gillette (2) p. 368 castaneae

Fitch, Taf. XXIV, Fig. 13; p. 369 betulaecolens Fitch, Fig. 19.

Callipterus Koch Wilson (3) p. 258, syn. Callaphis Walk., Ptychodes Buckt.,

Panaphis Kirk. ; juglandis Kalt. — Davis (2) p. 198 caryaefoliae n. sp., Illinois

u. Missori, auf Carya. — Henrich (1) p. 67; juglandis Frisch.

Cerosipha Del Guercio Wilson (4) p. 323.

Chaitophorus Koch Wilson (3) p. 386, syn. Phyllophorus Thoms., Phyllophora

Fern., C'helymorpha Lane Clark, Periphyllus Van der Hoeven; aceris L. —

Davidson (1) p. 375 populifoliae Fitch. — Davis (1) p. 14 negundinis Thom.

u. aceris L.: Unterschiede. — (5) p. 489 populifoliae Fitch. — Essig (5)

p- 224 populicola Thom. — Gillette (2) p. 367 ? betulae Buckt., Fig. 3. —

Henrich (1) p. 56; p. 57 leucomelas Koch; p. 58 salicivora Walk.; aceris F.

p- 59 versicolor Koch; populi Koch; p. 60 salicti Schrk. — Wilson (2) p. 29

populus-grandidentata Rafin., syn. populifoliae Fitch; populus-trepidae Rafin.,

syn. populicola Thom. — Williams (1) p. 109 Bruneri n. sp., Nebraska; p. 110

cordatae n. sp., Nebraska.

Chromaphis Walker Wilson (3) p. 257; yuglandicola Kalt. — Gillette (2) p. 367

yuglandicola Kalt., Fig. 4.

Cladobius Davidson (1) p. 375 saliceti Harr. — Henrich (1) p. 54; lantanae Koch;

p: 55 populae Koch; p. 56 salicis n. sp., auf Salix, Österreich. — Wilson (3)

p- 384 = Pterocomma Buckt.

Colopha Pateh (6) p. 196 ulmicola Fitch, syn. compressa Licht., eragrostidis Middl.

Coloradoa n. gen. Wilson (4) p. 323, für Aphis rufomaculata Wils.

Cryptosiphum Buckton Williams (1) p. 173 canadense [-is] n. sp., Nebraska. —

Wilson (4) p. 325.

Drepanaphis Del Guercio Wilson (3) p. 255, syn. Phymatosiphum Davis; aceri-

foliae Thom. — Davis (2) p. 195 ? minutus n. sp., Illinois, auf Acer sachcarum

u. nigrum; p. 196 Phymatosiphum Dav. ist = Drepanaphis Del G. — G6illette

(%2) p- 371 Monelli Davis, Fig. 22—23.

Drepanosiphum Koch Wilson (3) p. 254; platanoides Schrk.

160 Insecta. Rhynchota für 1910.

Eucallipterus Schouteden Wilson (3) p. 257; tiliae L. — Gillette (2) p. 367 tiliae L.,

Fig. 5.

Euceraphis Walker Wilson (3) p. 255; betulae L. — Gillette (2) p. 371 betulae

Koch, Fig. 20; sp., auf Alnus oregonia, Fig. 21.

Forda Rohwer (1) pp. 67—68; p. 68 flavula n.sp., Colorado, an Graswurzeln;

olivacea n. sp., Colorado, an Graswurzeln.

Glyphina Koch Wilson (3) p. 387, syn. Thelaxes p. Buckt.; alni Schrk.

Greenidea Schouteden Wilson (4) p. 317.

Hormaphis Morgan et Shull (I) hamamelidis.

Hyadaphıs Kirkaldy Wilson (4) p. 322. — Davis (5) p. 493, pastinacae L., syn.

salicis Mon., Taf. XXXII, Fig. 20—21.

H yalopterus Koch Henrich (1) p. 33; p. 34 pruni F.; arundinis Koch. — Wilson (2)

p- 28 rosa-suaveolens Rafin., syn. aquilegiae-flava Kitt., trichoda Walk..

aquilegiae Koch; — (4) p. 324.

Idiopterus Davis Wilson (4) p. 319.

Illinoia n. gen. Wilson (4) p. 318 für Macrosiphum liriondri Mon. [liriodendri].

Lachnus Dliger Henrich (1) p. 64; viminalis Boyer; p. 65 pinicola Kalt.; p. 66

pini L. — Williams (1) p-. 106 flocculosa n. sp., ponderosa n. sp., p. 108 Rileyi

n. Sp.; smilacis n.sp.; alle: Nebraska.

Liosomaphis Walker Wilson (4) p. 322.

Macrosiphum Passerini Wilson (2) p. 29 annulipes Rafin., syn. ?hieracium-venosum

Rafin., ?campanula-riparia Rafin., ?verticolor Rafin., erigeron-strigosum

Rafin., gibbosa Rafin., hieracium-paniculatum Rafin., rudbeckiae Fitch; p. 29

rosae L., syn. dipleptra Rafin.; neaster Rafin., syn. jacobea-bakamita Rafin.,

xanthelis Rafin., ambrosia Rafin.; — (4) p. 318; liriondri Mon. [liriodendri?]

= Illinoia n. gen. — [S. Nectarophora, Siphonophora.]

Mastopoda Oestlund Patch (6) p. 246 pteridis Oestl., Fig. 213—214. — Wilson (?)

p- 28 pteris-aquilinoides Rafin., syn. pteridis Oestl.; — (4),p. 323.

Melanoxantherium Schouteden Wilson (3) p. 384, syn. Melanoxanthus Buckt.;

salicis L.

Microparsus Patch Wilson (4) p. 319.

Microsiphum Cholodkovsky Wilson (4) p. 324.

Mindarus Koch Nüsslin (4); p. 409—411 abietinus Koch u. obliquus Chol. —

Patch (6) p. 242 abietinus Koch, syn. ? pinicola Thom.

Monaphis Walker Wilson (3) p. 258, syn. Bradyaphis Mordw.; antennata Kalt.

Monellia Oestlund Wilson (3) p. 259; caryae Fitch. — Gillette (2) p. 367 caryae

Mon., Fig. 6; p. 368 marginella Fitch, Fig. 7; ? maculella Fitch, Fig. 8.

Myzocallis Passerini Gillette (2) p. 368 bella Walsh, Fig. 9—10; Walshi Mon.,

Fig. 11; asclepiadis Mon., Fig. 12; p. 369 trifolii Mon., Fig. 14—15; ulmifolii

Mon., Fig. 16; ?caryaefoliae Dav., Fig. 17—18; sp., Fig. 24, auf Quercus alba.

— Henrich (1) p. 52; p. 53 quercus Kalt.; coryli Goeze. — Wilson (3) p. 256,

syn. Pterocallis Pass., Callipteroides Mordw., Tuberculatus Mordw., Subcalli-

pterus Mordw., ? Therioaphis Walk.; coryli Goeze.

Myzus Passerini Davis (5) p. 495 plantagineus Pass., Taf. XXXIL, Fig. 22—27.

— 6rove (1) p. 2 rosarum Walk. — Henrich (1) p. 29; p. 30 cerasi F.; lychnidis

Koch; p. 31 tanaceti Kalt.; tetrarhoda Walk.; p. 32 ribis L.; chelidonvi Kalt.;

p- 33 Zythri Schrk. — Williams (1) p. 148 oenotherae n. sp.; p. 149 potentillae

n. sp.; p. 152 thalictri n. sp.; alle: Nebraska. — Wilson (4) p. 321.

Systematik. 161

Nectarophora Essig (9) p. 336 pisi Kalt. — [= Macrosiphum.]

Nectarosiphon Schouteden Wilson (4) p. 318.

Pemphigus Hartig Davidson (1) p. 372 ranunculi n. sp., California, auf Ranunculus

californicus; p. 373 populiconduplifolius Cow. — Davis (5) p. 482 corrugatans

Sirr., Taf. XXXI, Fig. 1—2. — Henrich (1) p. 75; p. 76 Boyeri Pass.; p. 77

affinis Kalt.; bumeliae Schrk.; p. 78 spirothecae Pass. ; p. 79 pyriformis Licht.;

p. 80 ovatooblongus Kessl. — Kirkaldy (6). — Nüsslin (3) bumeliae, nidificus

u. Poschingeri. — Patch (1) venafuscus (nec fuscovenatus, wie im Bericht

für 1909 steht); — (5) p. 220 ulmifuscus Walsh., Fig. 146—150. — Williams

(1) p. 91 alnifoliae n. sp.; p. 92 balsamiferae n. sp.; p. 99 Walshi n. sp.; alle:

Nebraska.

Pentalonia Coquerel Wilson (4) p. 319.

Pergandeida Schouteden Wilson (4) p. 323.

Phyllaphis Koch Henrich (1) p. 68; fag: L.

Phorodon Passerini Henrich (1) p. 27; humuli Schrk. — Williams (1) p. 172 cyno-

glossi n. sp.; p- 173 monardae n. sp.; beide: Nebraska. — Wilson (4) p. 320.

Phymatosiphum Davis Davis (%2) p. 196 ist = Drepanaphis Del G.

Pterocallis Passerini Henrich (1) p. 61; tiliae L.; p. 62 alni F.; salicis L.

Pterochlorus Rondani Henrich (1) p. 67; longipes Duf.

Pterocomma Buckton Wilson (3) p. 384, syn. Cladobius Koch, Aphioides Pass.,

Aristaphis Kirk.; pilosa Buckt.

Rhopalosiphum Koch Davidson (1) p. 378 arbuti n,sp., California, auf Arbutus

menziesi. — Davis (3) nymphaeae L., syn. aquaticus Jacks. (Aphis). — Henrich

(1) p- 28; persicae Pass.; p.29 nymphaeae Koch. — Williams (1) p. 154

dianthi poae n. subspec., Nebraska. — Wilson (4) p. 320.

Schizoneura Hartig Henrich (1) p. 70; corni Kalt.; p. 72 pineti F.; lanigera Hausm.;

p. 73 lanuginosa Hart.; p. 74 ulmi Geer; p. 75 impressa Koch. — Koch (6)

p. 223 americana Ril., syn. ?Rileyi Thom.; p. 235 Rileyi "Thom.

Sipha Passerini Henrich (1) p. 66; mayidis Pass. — Patch (6) p. 241 glyceriae

Koch, Fig. 198—205. — Wilson (3) p. 386 glyceriae Kalt.

Siphocoryne Passerini Henrich (1) p. 51; capreae F.; p. 52 lonicerae Sieb.

Siphonophora Koch Henrich (1) p.22 rosae L.; p.23 cerealis Kalt.; millefolii

Koch; p.24 ulmariae Schrk.; p.25 pelargonii Koch; jaceae Koch; p. 26

picridis Pass.; callae n. sp., Oesterreich, auf (alla.

Symydobius Mordwilko Wilson (3) p. 386; oblongus Heyd. — Patch (6) p. 245

oblongus Heyd., Fig. 215—219.

Tetraneura Hartig Henrich (1) p. 81; ulmi Geoffr. — Patch (5) p. 208 graminis

syn. colophoidea Mon., ulmi Osb., ulmicola Gill., Fig. 126, 133—134, 137—145,

169—175, 181—197; p. 216 ulmisacculi n.sp., Maine, auf Ulmus montana,

Fig. 127, 164—168; p. 219 ulmi L.

Thomasia n.’gen. Wilson (3) p. 386; populicola Thom.

Toxoptera Koch Webster, F. (1) graminum Rond. — Wilson (4) p. 320.

Trama Heyden Henrich (1) p. 63; troglodytes Heyd.

Trichosiphum Pergande Wilson (4) p. 316.

Triphidaphis Essig (7) radicicola Ess.

Vacuna Heyden Henrich (1) p. 83; p. 84 dryophila Schrk.; alni Schrk. — Wilson

(3) p. 388, syn. Thelaxes Buckt., Cinara Mosl.; dryophila Schrk.

Archiv ren 11

1911. v. 1.

162 Insecta. Rhynchota für 1910.

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Aspidiotus Cockerell et Robbins (1) p. 104 arctostaphyli n.sp., Californien, auf

Arctostaphylos viscida. — Green (1) p. 201 lataniae in Newstead 1910 (2)

ist = transparens Green; — (3) p. 1 oceanicus Lind. (Furcaspis), Taf. I,

: Fig. 1—9. — Herrick (2) p. 22 mori n. sp., Texas, auf Morus rubra. — Ko-

" tinsky (2) cyanophyllus Sign. — Lindinger (2) p. 35 cyanophylli Sign., Taf. I,

! Fig. 1; fissus n. sp., Taf. I, Fig. 8, Taf. IV, Abessinien, auf Euphorbia; p. 36

furcraeicola n.sp., Taf. III, Fig. 19, Tanga, auf Furcraea gigantea; p. 39

;. mammillaris n. sp., Taf. II, Fig. 10, Abessinien, auf Aloe eru; p. 38 destructor

Sign., Taf. I, Fig. 2; iransparens Green, Taf. I, Fig. 9; p. 39 varians n. Sp.,

p- 41 Rossi Mosk. = Melanaspis; — (3) p. 438 hederae Vall.; p. 441 scuti-

formis Cock. (Chrysomphalus) ist = perseae Comst.; — (5) corticispini n. SP.,

Japan, auf Pinus densiflora. — Newstead (2) p. 68 lataniae Sign.; cydoniae

Comst. — Quaintance (I) p. 3 perniciosus Comst. — Sanders (I) p. 60 cir-

cularis Fitch, syn. ancylus Putn. oder Forbesi Johns. ?

Asterolecanium Green (3) p.3 pustulans var. seychellarum n.var., Taf.I, Fig. 10

—22, Taf. II, Fig. 13—14, Seychellen, auf Hevea brasiliensis. — Kuwana (I)

p. 152 pasaniae Kuwana et Cockerell n. sp., Taf. VII, Fig. 1—6, Japan, auf

Pasania cuspidata.. — Lindinger (5) lineare n. sp., Brasilien, auf Cocos

nucifera.

Aulacaspis Börner (1) rosae Bouche. — Essig (4) p. 211 rosae Bouche. — Sanders (1)

p- 60 rosae Bouch£..

Cerococcus Green (3) p. 5 paradoxus Mask. (Eriococeus); indicus n. Sp., Syn. par

var. indicus Mask., Vorderindien, auf Helicteres isora.

Ceroplastes Cockerell (1) p. 75; p. 76 neue Untergattungen: Ceroplastina n. sub-

gen. u. Ceroplastidia n. subgen.; p. 74 Lahillei n. sp., Argentinien. — New-

stead (2) p. 66 ceriferus And.; p. 67 sp., Uganda. — (3) p. 188 singularis

n.sp., Uganda, auf Psidium quava; p. 190 ficus n. sp., Deutsch Ostafrika,

auf Ficus sp.; p. 192 sp., Deutsch Ostafrika; p. 193 quadrilineatus; p. 195

8p., Uganda; ? ceriferus And.

Ceroplastina n. subgen. Cockerell (1) p. 76, neue Untergattung zu Ceroplastes,

für Zahillei n. sp., Bergi Ckll., africanus Green, egbarum CKkll.

Ceroplatidia n. subgen. Cockerell (1) p. 76, neue Untergattung zu Ceroplastes,

für Bruneri Ckll., candela Ckll. et King.

Ceroputo Fullaway (2) p. 223 ambigua n. sp., Californien, auf Salicornia ambigua.

Chionaspis Cockerell et Robbins (1) p. 105 Sassceri n. sp., Californien, auf Citrus.

— Kuwana (Il) p. 155 kinshinensis n. sp., Taf. IX, Fig. 34—37, Japan, auf

Quercus. — Lindinger (2) p. 42 amaniensis n.sp., Taf. II, Fig. 13, Deutsch-

Ostafrika; p. 43 unita n. sp., Taf. III, Fig. 14, Deutsch-Ostafrika, auf T’urraea:

p. 49 unita Lind. [p. 43] ist = Hemichionaspis chionaspitiformis Newst.

(Diaspis). — Marchal (2) p. 246 bupleuri n. sp., Tunesien, auf Olea. — New-

Systematik. 163

stead (3) p. 195 dentilobis n. sp., Uganda; p. 197 substriata n. sp., Uganda, an

Palmen. — Quaintance et Sasscer (1) p. 6 furfurus Fitch. — Sanders (I)

p- 60 furfurus Fitch, syn. cerasi Fitch; pinifoliae Fitch.

COhrysomphalus Ashmead Lindinger (2) p- 39; p. 40 aurantii Mask., var.; — (3)

p. 441 scutiformis Ckll. ist = perseae Comst.; p. 441 (Melanaspis) portoricensis

n. sp., Porto Rico.

Coccus Kirkaldy (10) p. 122 clematidis Goeze; p.122 rufus Schrk. = ?.Acaride;

aquaticus Goeze = ? Hirudinide.

Coccus. — 8. Lecanium.

Cryptaspidiotus Lindinger Lindinger (2?) p. 41; austroafricanus n.sp., Taf. II,

Fig. 11—12, Natal, auf Euphorbia; — (3) p. 437 mediterraneus n. sp., Algerien;

auf Juniperus phoenicea u. Callitris quadrivalvis; — (6) p. 7 austroafricanus

n. sp., Natal, auf Euphorbia.

Cryptaspidus n. gen. Lindinger (2) p. 43; nucum n. sp., Taf. III, Fig. 15, Mada-

gaskar, auf Cocos nucifera.

Dactylopius Kuwana (2) p. 161 (Pseudococcus) boninsis n. sp., Taf. X Fig. 4—5,

Bonin Island, auf Saccharum; p. 162 (Ps.) ananassae n. sp., Taf. X, Fig. 6—9,

Bonin Island, auf Ananas. — Newstead et Willcocks (1) p. 138 perniciosus

n. sp., Aegypten, auf Albizzia lebbek usw. — Willcocks (1) perniciosus Newst.

et Wille. auf Albizzia lebbek, Gossypium, Zizyphus spina-christi, Acacia

arabica. — S. Pseudococcus.]

Diaspis Berlese (1) pentagona Targ. — Essig (4) p. 212 bromeliae Kern.; p. 214

echinocacti cacti Comst. — Lindinger (2) p.44 parva n.sp., Taf. III, Fig. 16

—18, Deutsch-Ostafrika, auf Loranthus undulatus. — Newstead (3) p. 198

? chionaspiformis n.sp., Uganda. [S. Hemichionaspis.]

Eriococcus Green (3) p.5 paradoxus Mask. = Cerococeus; p.d par var. indicus

Mosk. = Cerococcus indicus n. SP.

Eulecanium Kirkaldy (10) p. 122 liriodendri Gmel. = liriodendron Goeze.

Fiorinia Essig (4) p. 209 fioriniae var. japonica Kuw.

Furcaspis Green (3) p. 1 oceanica Lind. = Aspidiotus.

Geococcus Fullaway (3) radicum Green.

Gossyparia Fulmek (1) ulmi L. — Kirkaldy (10) p. 122 spuria Med., syn. ulmi-

lanatus Goeze.

Gymnaspis Lindinger (1) p. 437 aberemoae n. sp., Brasilien, auf Aberemoa rhizantha.

Hemichionaspis Essig (4) p. 210 aspidistrae Sign. — Lindinger (2) p. 49 chionaspi-

formis Newst. 1910 (Diaspis?), syn. unita Lind. 1910.

Hemilecanium Green (3) p.6 theobromae Newst. ist = imbricans Green (Lecanium).

— Newstead (1) p. 18 recurvatum n.sp., Kongo, in Zweigen von Plectronia

Laurenti.

Icery« Martelli (2) Purchasi Mask.

Inglisia Newstead (3) p. 185 conchiformis n. sp., Uganda u. Konakry, auf Averrhoa

carambola u. Harogana madagarcariensis.

Kermes Nasonov (1) quercus L.

Lecanium Green (3) p. 6 imbricans Green, syn. Hemilecanium theobromae Newst.

(Gattung gut?). — Kuwana (I) p. 154 (Coccus) Fukaysi n.sp., Taf. VII,

Fig. 7—10, Japan, auf Vitis; p. 154 (C.) ochnaceae n.sp., Taf. VII, Fig. 11

11*

164 Insecta. Rhynchota für 1910.

—15, Japan, auf Eurya ochracea: — (%) p. 162 (Saissetia) sideroxylium

n.sp., Taf. XI, Fig. 10—17, Bonin Island, auf Sideroxylon ferrugineum ;

(8.) pseudonigrum n. sp., Taf. XI, Fig. 18—22; p. 162 (Coccus) celtium n. sp.,

Taf. XII, Fig. 23—26, Bonin Island, auf Celtis sinensis. — Newstead (3)

p- 187 mori var. Somereni n. var., Uganda, auf Morus; viride Green. —

Sanders (1) p. 60 caryae Fitch; corni Bouche, syn. tiliae Fitch, pyri Fitch

p,, cerasifex Fitch, ribis Fitch, cynolasti Fitch, juglandifex Fitch, corylifex

Fitch; nigrofasciatum Perg., syn. persicae Fitch; quercifex Fitch, syn. querci-

tronis Fitch. — [S. Saissetia.]

Lepidosaphes Quaintance et Sasscer (1) p. 2 ulmi L. — Kirkaldy (10) p. 122 ulmi L.,

syn. conchiformis Goeze. — Sanders (1) p. 60 ulmi L., syn. conchiformis

Fitch, juglandis Fitch. — [S. Mytilaspis.]

Lichtensia Essig (4) p. 221 parvula Ckll. — Kuwana (I) p. 152 japonica n. sp.,

Taf. VIII, Fig. 16—27, Japan, auf Thea japonica.

Melanaspis Cockerell Lindinger (1) p. 438 = gute Gattung, für Ohrysomphalus

perseae usw.; — (2) p. 41 Rossi Mask. (Aspidiotus). — [S. Chrysomphalus.]

Opisthoscelis Kieffer et Jörgensen (1) p.417 ?prosopidis n. sp., Argentinien, auf

Prosopis adesmioides.

Mytilaspis Kuwana (1) p. 155 (Lepidosaphes) buzenensis n. sp., Taf. IX, Fig. 38

—40, Japan, auf Vitis; — (2) p-. 163 (L.) arii n. sp., Taf. VII, Fig. 27—31,

Bonin Isl., auf Miscanthus. — [S. Lepidosaphes.]

Phenacaspis Lindinger (2) p. 45 tangana n.sp., Taf. III, Fig. 20, Tanga, auf

Dracaena.

Phenacoccus Marchal (2) p. 245 oleae n. sp., Tunesien, auf Olea.

Pseudococcus Cockerell (4) p. 113 missionum n.sp., Argentinien. — Essig (3)

p. 147 agrifoliae Ess.; p. 148 ryani Cog.; — (4) p. 117 nipae Mask.; — (8)

p-295 citri Risso; — (10) p.339 Bakeri n.sp., Californien, auf Sambucus

glauca, Juglans regia, Pyrus malus u. communis. — I[S. Dactylopius].

Kotinsky (1) calceolariae Mask. u. sacchari Ckll.

Pseudoparlatorea Lindinger (5) chilina n.sp., Chile, auf Saxegothoea conspicua.

Pulvinaria Newstead (2) p. 67 psidii Mask. — Kirkaldy (10) p. 122 carpini, syn.

mespili Goeze.

Rhizococcus Marchal (1) p. 198 gnidii Sign.

Ripersia Essig (4) p. 218 Smithi n. sp., Californien. auf Elymus condensatus. —

Kuwana (2) p. 161 ogasawarensis n.sp., Taf. X, Fig. 1—3, Bonin Isl., auf

Miscanthus.

Saissetia Essig (4) p. 216 hemisphaerica Targ. — [S. Lecanium.]

Stictococcus Green (1) p. 201 dimorphus Newst. — Newstead (1) p. 19 formicarius

n.sp., Kongo, in Zweigen von Barteria fistulosa u. ? C'uwviera angolensis;

(2) p- 63 dimorphus n.sp., Deutsch-Ostafrika u. Uganda, auf T’heobroma

cacao.

Tachardia Stebbing (2) lacca Kerr. — Kirkaldy (10) p. 122 lacea Kerr. = gum-

milaccao Goeze.

Takahashia Kuwana (1) p. 153 citricola n. sp., Taf. VIII, Fig. 23—33, auf Citrus.

Targionia Herrick (1) p. 373 celtis n. sp., Texas, auf Celtis occidentalis. — Marchal

(1) p. 198 nigra Sign.

Systematik. 165

Fossile Rhynchoten

Aradidae.

Aradus Bervoets (1) p. 280 madagascariensis n.sp., Madagaskar, im Kopal. —

Bergroth (5) p. 17 madagascariensis Berv. ist = flavicornis Dalm. (lebendeArt).

Coreidae.

Therapha Bervoets (2) p. 331 inclusa n. sp., Sansibar, im Kopal.

Fulgoridae.

Issus Bervoets (3) p. 125 reticulatus n.sp., Taf. I, Fig. 1, Baltischer Bernstein.

Oliarus Cockerell (7) p. 153 oligocenus n. sp., Baltischer Bernstein.

Tetigoniidae.

Acocephalus Bervoets (3) p. 128 resinosus n.sp., Taf. I, Fig. 7—8, Baltischer

Bernstein.

Bythoscopus Bervoets (3) p. 126 punctatus n.sp., Taf. I, Fig. 2—3, Baltischer

Bernstein.

Eupteryx Bervoets (3) p. 127 minuta n. sp., Taf. I, Fig. 5—6, Baltischer Bernstein.

Pediopsis Bervoets (3) p. 127 minuta n.sp., Taf. I, Fig. 4, Baltischer Bernstein.

Orthoptera für 1910.

Von

Dr. W. La Baume.

Publikationen und Referate.

Abot, G. Excursion entomologique du 16. Juin 1910. — Bull. Soc.

Etud. scient. Angers, N. S. Ann. 39, 1910, p. 113—117. — (Orthoptera.)

Adelung, Nicolai von. Über einige bemerkenswerte Orthopteren

aus dem palaearktischen Asien. — Hor. Soc. Entom. Ross. T. 39,

1910, p. 328—358, 1 Taf. — Verf. beschreibt eine Anzahl besondere

Beachtung verdienender Orthopteren aus dem asiatischen Rußland,

Persien, Chinesisch-Turkestan und der Mandschurei. (Neue Gattungen:

Shelfordella, Bufonacridella, Staurotylus, Conoblemmus; neue Arten

bezw. Varietäten aus diesen Gattungen sowie Stylopyga, Paradryma-

dusa und Gampsocleis; Beschreibung von Tropidauchen cultricollis

Sauss.) Die meisten der behandelten Formen sind auf einer hervor-

ragend schön ausgeführten und ebenso reproduzierten kolorierten

Tafel abgebildet. ;

Allard, H. A. (1). Musical Crickets and Locusts in North Georgia.

(Orthoptera; Gryllidae and Locustidae). — Proc. Ent. Soc. Washington

Vol. XII, 1910, p. 33—43, pl. IV. — Verf. verbrachte während der

Jahre 1908 und 1909 den größten Teil des Sommers auf einer einsamen

Besitzung in Nord-Georgia und benutzte diese Zeit, um eingehende

Studien über die „Musik“ der dort vorkommenden Grillen und Laub-

heuschrecken zu machen. Er schildert das Stridulieren von sechs

Orchelimum- und vier Oecanthus-Arten, ferner von Neoxabea bipunctata

de Geer, Orcharis saltator Uhler, Oyrtoxipha columbiana Caudell, @ryllus

pensylvanicus Burmeister, Nemobius canus Scudder, Anazipha exigua

Say, Phylloscirtus pulchellus Uhler und Gryllotalpa borealis Burmeister,

von denen einige auf Tafel IV in gut gelungenen photographischen

Bildern vorgeführt werden. In der anschaulichen Schilderung, aus der

man überall die Freude an der Naturbeobachtung herausliest, finden

sich auch vielfach Angaben über örtliches und zeitliches

Vorkommen sowie über die Lebensweise der beobachteten

Arten.

— (2). Some New England Orthoptera Observed in Late October.

— Entom. News 21, 1910, p. 352—357. — Verf. giebt eine Liste der

beobachteten Arten mit Bemerkungen über ihr Vorkommen und ihre

Lebensweise (insbesondere Stridulation). .

— (3). The stridulations of some „Katydids“. — Proc. biol. Soc.

Washington Vol. 23 1910 p. 35—40. — Verf. beschreibt die Art ler

Stridulation bei einer Anzahl Locustiden der östlichen Vereinigten

Staaten (Gattungen Scudderia, Amblycorypha, Miecrocentrum wnd

Öyrtophyllus), deren ‚Gesang‘ er eingehend studiert hat.

Publikationen und Referate. 167

— (4). The stridulations of some Coneheaded Grasshoppers (Cono-

cephalus). — Proc. entom. Soc. Washington Vol. 12, 1910, p. 121—124,

pl. VI. — Verf. beschreibt die Stridulationstöne einiger Conocephalus-

arten aus Nord-Georgia, der Umgebung von Washington, Maryland

und Massachusetts. Drei dieser Arten werden auf Tafel VI in guten

photographischen Habitusbildern vorgeführt.

— (5). Conocephalus fusco-striatus in North Georgia. — Entom.

News, Vol.21, 1910, p. 231—292. — Beobachtungen über örtliches

und zeitliches Vorkommen, sowie Lebensweise, insbesondere Stridulation

der genannten Locustide.

d’Arenberg, Pierre. Capture. — Bull. Soc. Entom. France 1910,

. 262.

5 Berenguier, Paul (1). La lutte pour l’existence chez les insectes

Orthopteres. — Bull. Soc. Etud. Sc. Nat. Nimes T. 37, 1909, p. XLVII

—XLVII.

— (2). Notes orthopterologiques. — Ibid. p. 44—79, 2 pls., 4 figg.

— (3). [Elevage du Bacillus gallicus.] — Ibid. p. LVIH—LIX.

Bolivar, Ignacio (1). Nuevo Locustido de la India, perjudicial

a la Agrieultura (Colemanıa sphenarioides Bol.) — Bol. Soc. espaii.

Hist. nat. T. W, 1910, p. 318—321. — Beschreibung einer neuen

Pyrgomorphide (n. gen. n. sp.), welche in Indien besonders den Sorghum-

Kulturen schädlich wird.

— (2). Aquetides de la Guinea espanola. — Mem. Real Soc. Espaii.

Hist. Nat. Tomo 1 Mem. 30 (Madrid 1910) p. 525—544. — Aufzählung

bekannter und Beschreibung neuer Grylliden-Arten aus Spanisch

Guinea und Kamerun.

TBolton, Herbert. On a new species of fossil cockroach, Archimy-

lacrıs (Etoblattina) Woodwardi, from the South Wales Coal-field. —

Geol. Mag. N. S. (5) Vol. 7, p. 147’—151, 1 pl., 1 fig.

Boy, Casildo. Instrucgöes Praticas para Destruigäo dos Gafan-

hotos. — Secretaria da Agricoltura, Commercio e Obras Publicas do

Estado de S. Paulo, S. Paulo 1910, 36 pp. u. 50 Tafelabbildungen. —

Die genannte Schrift enthält eingangs eine kurze Instruktion über

dieNaturgeschichteundBekämpfung der argentinischen

Wanderheuschrecken; dieselbe wurde in handlicherem For-

mat vom Secretaria da Agricultura gesondert herausgegeben (vergl.

unten). Dann wird eine Übersicht über die in Argentinien üblichen

Bekämpfungsmethoden gegeben. Hauptsächlich verwendet man dort

die Methode des Eintreibens der Hupfer in Gräben oder gegen Lein-

wand- oder Blechwände in den verschiedensten Kombinationen, welche

Verf. beschreibt und durch Zeichnungen erläutert. Einen vorzüglichen

Überblick über die verschiedenen Bekämpfungsarbeiten erhält man

durch die der Schrift des Verf. beigegebenen Tafelabbildungen, welche

die Aufstellung der Wände, Anordnung der Gräben, das Zusammen-

treiben der Hupfer, die Vernichtung der geflügelten Heuschrecken

durch Verbrennen und die sonstigen Bekämpfungsarbeiten in photo-

graphischen Bildern, die unmittelbar der Praxis entnommen wurden,

vorführen.

168 Insecta. Orthoptera für 1910.

Brunelli, Gustavo (1). Sulla ricostituzione del nucleo. Nota

preliminare. — Atti Reale Accad. Lincei, Ser. 5, Rendiconti, Vol. XIX,

1910, 1. Sem., p. 2399—300. — Betrifft Spermatogenese von

Truxalis.

— (2). Sur le monosome (chromosome accessoire) de Gryllus

desertus. (Asscc. Cult. Sc. med. nat. Roma). — Arch. ital. Biol. 1910,

p. 317—318.

— (3). La spermatogenesi delle Truxalis (Parte prima: divisioni

spermatogoniali. — Mem. Soc. ital. d. Sci. Ser. 3a, Tom. 16, 1910.

Bruner, Lawrence (1). Acridoidea from Madagascar, Comoro

Islands and Eastern Africa, in: Voeltzkow, Reise in Ostafrika ın den

Jahren 1903—1905, Wissenschaftl. Ergebnisse Bd. II (Systematische

Arbeiten), Stuttgart 1910, p. 623—644, Taf. 27. — Liste der in der

Voeltzkow’schen Ausbeute enthaltenen Acrididenarten und Beschreibung

neuer Gattungen und Arten.

— (2). South American Tetrigidae. — Ann. Carnegie Mus. Vol. 7,

No.I, 1910, p. 89—143. (Publ. Carnegie Mus. Serial No. 63). — Eine

grundlegende Arbeit über die Tetrigiden Süd- und Mittelamerikas, |

welche eine Tabelle zur Bestimmung der Subfamilien und Genera,

Aufzählung der bekannten Arten, z. T. mit Bestimmungstabellen,

und Beschreibungen neuer Arten enthält.

— (3). On some Acridioidea from Puerto Bertoni, Paraguay. —

Ent. News 21, 1910, p. 301—307. — Fundortsliste mit Beschreibung

dreier neuer Arten aus den Gattungen Orphula, Diponthus und Para-

scopas.

— (4). The Genus Trybliophorus Serville, and its Species. — Ibid.

p. 163—164.

— (5). Report on an Interesting Collection of Locusts from Peru.

— Hor. Soe. Ent. Ross. T.39, 1910, p. 464—488. — Ref. von N. v. Ade-

lung in: Zool. Zentralbl. 17, 1910, p. 404—405. — Liste einer Ausbeute

von Acridiern, die Ikonnikow in Peru sammelte. 2 Gattungen und 12

Arten werden als neu beschrieben.

Burr, Malcolm. A Synopsis of the Orthoptera of Western Europe.

London 1910, Oliver Janson, 160 pp. — Durch das Fehlen jeglicher

zusammenfassender Arbeit in englischer Sprache über die englischen

Orthopteren wurde Verf. veranlaßt, diese Synopsis zu schreiben; gleich-

zeitig wurde ein größeres Gebiet als England, nämlich der ganze Westen

des europäischen Kontinents, berücksichtigt, weil dieser Teil Europas

naturgemäß am meisten von England aus besucht wird. Als Ostgrenze

ist die Lage von Wien angenommen worden; die Abgrenzung des be-

handelten Gebietes ist, wie Verf. in der Einleitung betont, lediglich

willkürlich geschehen, um überhaupt eine Grenze festzusetzen. In erster

Linie ist die Synopsis gedacht als Taschenhandbuch für Sammler, sie

soll aber gleichzeitig für die Orthopteren in weiteren Kreisen Interesse

erregen. In diesem Sinne ist sie ausschließlich systematischen und

faunistischen Inhaltes; es werden Bestimmungstabellen der Genera

und Species gegeben, jede Art wird kurz beschrieben und ihre Ver-

breitung im westlichen Europa wird angeführt. Da die einzelnen Teile

Publikationen und Referate. 169

der Synopsis seit 1903 im „Entomologist’s Record and Journal of

Variation‘ erschienen sind, waren bis 1910 schon wieder Zusätze not-

wendig geworden, die p. 151—153 angefügt sind.

Caudell, A. N. (I). [Zur Nomenklatur des Gattungsnamens Cono-

cephalus und Beschreibung einer neuen Conocephaline.] — Proc.Entom.

Soc. Washington XII, 1910, p. 95—97. — Verf. ist der Ansicht, daß der

Name Conocephalus (Thunberg 1815) durch den jüngeren Copiphora

Serville ersetzt werden müsse; somit müßte auch die Unterfamilie

Conocephalinae jetzt Copiphorinae heißen. Ferner müsse andererseits

der Name Conocephalus bestehen bleiben, aber in ganz anderem Sinne,

als er ein Jahrhundert lang gebraucht worden ist, nämlich für das, was

bis jetzt Xiphidium hieß. Ein neuer Beitrag zu der durch die neue

Nomenklaturbewegung angerichteten Verwirrung! — Verf. beschreibt

an gleicher Stelle eine neue Gattung Dectinomima, die zu den „Copi-

phorinae‘“ gehört, aber sehr einer Decticide ähnelt.

— (2). A new Xiphidion from Northern Georgia. — Entom.

News Vol. 21, 1910, p. 58—59. — Beschreibung von Xiphidion allardi

n.sp. nebst Bemerkungen über Vorkommen und Lautäußerung.

— (3). A new Mantis from British Guiana. — Zoologica I, 1910,

No. 4, p. 123—124, 1 fig.

Cholodkowsky, N. [Über Spermatophoren, besonders bei den

Insekten.] — Trav. Soc. Nat. St.-Petersbourg T.41, 1910, Livr. 1,

C. R. p. 1283—129. — Verf. beschreibt den männlichen und weiblichen

Geschlechtsapparat von /sophya, Decticus und Locusta

und weist nach, daß /sophya keine Spermatophoren besitzt,

indem die schaumige Masse, die bei der Begattung an der Basis der

Legescheide angeklebt wird, physiologisch dem Vaginalpfropf der

Säugetiere entspricht, in der Samentasche aber nur feine Samenfäden

enthalten sind. Dann folgt eine Beschreibung der in der Samentasche

entstehenden ‚„Spermatophoren“ von Decticus und Locusta und ein

Vergleich derselben mit der in der Spermatophorentasche des & ent-

stehenden echten Spermatophore von @Gryllu. Ganz ähnliche

Spermatophoren wie bei Decticus und Locusta hat Verf. auch bei Platy-

cleis gefunden. Nach einer kurzen Übersicht der „Spermatophoren“-

Formen im Tierreich kommt Verf. zu dem Schlusse, daß unter dem

Namen Spermatophoren äußerst verschiedene Bildungen beschrieben

werden; er teilt dieselben in vier Kategorien, für welche er die folgenden

Benennungen vorschlägt:

l. Echte Spermatophoren-Bildungen, die im Ge-

schlechtsapparat des $ entstehen, eigene Wandungen besitzen und zur

Übertragung des Samens aus den männlichen in die weiblichen Ge-

schlechtsorgane dienen (Mehrzahl der im Tierreich vorkommenden

„Spermatophoren“, unter den Orthopteren durch Gryllus vertreten).

2. Spermatodesmen — Spermatozoenbündel, die ent-

weder durch einen Klebstoff oder durch eine gemeinsame zellige Hülle

zusammengehalten werden (federförmige Spermätozoenbündel der

Locustiden, Samenbündel der Lepidopteren u. a. m.).

170 Insecta. Orthoptera für 1910.

3. Spermatodosen — flaschenförmige Bildungen, die in

der Samentasche oder in der Begattungstasche des @ entstehen und

nicht zur Übertragung, sondern zur Dosierung des Samens

für die Eiergruppen dienen (die Siebold’schen ‚„Spermatophoren“

der Locustiden, vielleicht auch die „Spermatophoren“ der Lepidopteren

u. 2.).

4. Spermatophragmen — Massen des Drüsensekretes,

die nur als ein Übertragungsmedium als Unterhalt der Samenmasse

während der Begattung oder zur Verstopfung der weiblichen Genital-

öffnung dienen (die schaumige Masse an der Legeröhre der befruchteten

Locustiden-Weibchen, das ‚„Säckchen‘ der Parnassius-?? u. dergl.)

Chopard, L. (1). Description de deux especes nouvelles de Thespis

Serv. dela Guayane frangaise. — Bull. Soc. entom. France 1910, p. 272

—274.

— (2%). Description d’un Mantide nouveau de la Guayane frangaise.

— Ibid. p. 182—184, 2 figg. — Zoolea multilobata n. sp.

Convergne. Sauterelles dans le Gard. — Bull. Soc. Etud. Se. nat.

Nimes 37, 1909, p. XXXV—XXXVIL — Betr. Caloptenus italicus L.

Crampton, G. €. A contribution to the Comparative Morphology

of the Thoracie Selerites of Inseets. — Proc. Acad. nat. Sci. Philadelphia

Vol. 61, 1909, p. 3—54, 21 figg. — Eine vergleichend-morphologische

Studie über das Thorax-Skelett der Insekten, bei welcher Verf. auch

einige Vertreter der Orthopteren berücksichtigte.

Dohrn, H. Beitrag zur Kenntnis der Phasmiden. — Stett. Entom.

Ztg. 71, 1910, p. 397—414. — Beschreibungen neuer Arten, kritische

Bemerkungen über Veränderlichkeit, Gruppierung von Arten und

Ergänzung der Beschreibungen.

Duesberg, 3. Note sur le disque accessoire de la fibre musculaire

stri6e des insectes. — Bull. scient. France Belgique (7) T.44, 1910,

p. 23—26.

Dufour, G. Les insectes attir&s en ville par la lumi£re electrique.

— Ann. Stat. limnol. Besse T.2, 1910, p. 133—135. — (Gryllidae.)

Ebner, Richard (1). Orthopterologische Notizen. (Neusiedlersee,

Niederösterreich und Tirol.) — Mitt. Naturwiss. Ver. Universit. Wien

VIII, 1910, No. 3, p. 74—81. — Verf. behandelt zunächst die Or-

thopterenfauna an der W es t seite des Neusiedlersees (die Ost- und Süd-

seite ist 1908 untersucht worden; ci. Karny (5) im Bericht f. 1908),

zählt die erbeuteten Arten auf und bespricht anläßlich eines Fundes

von Üeles variabiılıs var. subcoeruleipennis Charp. Vorkommen und

Verbreitung dieser Varietät. Im zweiten Abschnitt werden eine Reihe

von Fundorten von Arten genannt, die Verf. meist selbst in Nieder-

österreich sammelte; besonders berücksichtigt wurden dabei pontische

und mediterrane Formen. Als dritter Teil folgt ein Beitrag zur

Orthopterenfauna von Tirol, dem ein dankenswertes Verzeichnis über

die wichtigste orthopterologische Literatur für Tirol angegliedert ist.

— (2). Ein Beitrag zur Orthopterenfauna der europäischen Türkei

mit besonderer Berücksichtigung von Albanien. (Ergebnisse einer Reise

nach Nord-Albanien, A. Klaptoez, 1909.) — Zool. Jahrb. Abt. System.

Publikationen und Referate. 171

Bd. 29, Heft 3/4, 1910, p. 401—414. — Die vorliegende Arbeit bedeutet

eine wertvolle Bereicherung unserer Kenntnis der Orthopterenfauna

der Türkei, über welche bisher nur recht dürftige Angaben vorlagen.

Zunächst werden die von Klaptocz gesammelten Arten aus Albanien

aufgeführt, die meist aus der Umgebung von Skutari und Shkodra

stammen; im ganzen 32 Arten, darunter eine neue Gryllomorpha.

Verf. vergleicht am Schluß dieses Abschnittes die albanische

Orthopterenfauna mit der von Montenegro. Im zweiten Teil der Arbeit

werden Orthopteren von Macedonien und Konstantinopel behandelt.

— (3). Die Orthopterenfauna der Umgebung von Guntramsdorf

in Niederösterreich. — Mitt. Nat. Ver. a. d. Universität Wien VIII,

1910, No. 7 u. 8, p. 129—153, u. No. 9 u. 10, p. 162—167, 4 Fig. i. Text.

Vorliegende Arbeit ist das Ergebnis einer mehrjährigen, sorg-

fältigen orthopterologischen Aufnahme der Umgebung von Guntrams-

dorf in Niederösterreich. Nachdem Verf. in der Einleitung die Grenzen

des Gebietes angegeben und die bisher über die Orthopterenfauna

Niederösterreichs, speziell der Wiener Gegend, veröffentlichte Literatur

besprochen hat, behandelt er in einem: „Verbreitung“ überschriebenen

Abschnitt das Vorkommen der einzelnen Arten innerhalb des in

Rede stehenden Gebietes, wonach sich wiederum drei oder vier kleinere

Gebiete, sowohl nach ihren Vegetationsverhältnissen wie auch nach

dem Vorkommen bestimmter, charakteristischer Orthopterenformen,

unterscheiden lassen. In einer tabellarischen Übersicht werden diese

Tatsachen anschaulich zur Darstellung gebracht. Ferner gibt Verf.

eine Gruppierung der Arten nach der ÖrtlichkeitihresVor-

kommens (auf Bäumen, Wiesen usw.) und bespricht am Schluß

dieses Abschnittes noch kurz Herkunft und Verbreitung einiger

interessanter Arten. In einem zweiten Kapitel werden Schutz-

einrichtungen behandelt: Schutzfärbung, Verhalten bei Gefahr,

Verteidigungs- und Schreckmittel; bei dieser Gelegenheit geht Verf.

näher ein auf die Erklärung eines eigentümlichen Geräusches, welches

Mantis religiosa von sich geben kann; nach seiner Ansicht kommt das-

selbe wahrscheinlich durch die Bewegung der Flugorgane zustande.

Im speziellen Teil werden die vom Verf. beobachteten Arten aufgeführt,

z. T. mit Bemerkungen über Vorkommen, Häufigkeit und Entwicklung.

Als neu beschrieben wird Xiphidion dorsale var. burri, eine macroptere

Form der genannten Art. p. 149 u. 150 tritt Verf. dafür ein, Chortippus

(Stenobothrus) bicolor Charp. und biguttulus L. wieder unter dem Namen

varvabılıs Fieb. zu vereinigen und die alten Arten nur als Formen

zu, unterscheiden, soweit das möglich ist.

— (4). Eine für Oesterreich neue Orthopterenform. — Wien.

Entom. Ztg. 29, 1910, p. 314—315. — Verf. beschreibt eine neue Form

von Acrydium (Tettix) bipunctatum, die sich von der Hauptform

durch die Länge des Pronotums und der Flügel unterscheidet.

French, €. jun. Household Insect Pests. — Journ. Dep. Agr.

Victoria, Vol. 8, 1910, p. 480—482, 588—592. — (Blattid.)

Froggatt, Walter W. (1). Locusts in Australia and Other Countries.

— Department of Agrieulture, New South Wales, Farmers’ Bull.,

172 Insecta. Orthoptera für 1910.

No. 29, Febr. 1910. — Nach einigen einleitenden Bemerkungen über

die Natur der Heuschreckenplagen und die Notwendigkeit umfaßender

Abwehrmaßregeln gibt Veri. zunächst eine Definition des Begriffes

„Wanderheuschrecke“ ; er unterscheidet sehr treffend eigentliche

Wanderheuschrecken,y,d.h. solche Arten, welche sowohl als

Larven wie als geflügelte Insekten Schwärme bilden und überdies meist

an bestimmten Plätzen gemeinsam ihre Eier ablegen, undgelegent-

liche Wanderheuschrecken, d. h. solehe Arten, die

normalerweise einzeln vorkommen, unter besonderen Umständen aber

in Massen auftreten und als solche auch wandern können. Sodann

werden die in Australien vorkommenden Arten aufgeführt: The Wan-

dering Plague Locust (Chortoicetes terminifera Walk.); The Eastern

Plague Locust (Oedaleus senegalensis Krauss); the Large Coast Locust

(Acridium maculicollis); the Yellow-winged Locust (Zocusta [| Pachy-

tilus] danica L.})); the Smaller Plain Locust (Chortoicetes pusilla Walk.)

und the Large Mottled Locust (Locusta australis Brunner). Jede

dieser Arten wird kurz beschrieben, ferner wird ihr Verbreitungs-

gebiet angegeben und Literatur namhaft gemacht. Sodann werden

verschiedene Mittel zur Bekämpfung angegeben (Arsenlösungen,

Seifenlösungen und Seifen-Öl-Emulsionen, Treiben in Gräben und gegen

Schirmwände, Verbrennen) und ihre Anwendungsmöglichkeit in

Australien erörtert. Im zweiten Teil der Arbeit gibt Verf. eine Über-

sicht über die Bekämpfung von Wanderheuschrecken inanderen

Ländern, wobei die wichtigste Literatur genannt und kurz referiert

wird. Schließlich werden die Parasiten der Heuschrecken und ihrer

Eier behandelt, unter besonderer Berücksichtigung der in Australien

vorkommenden Arten (Beschreibung zweier neuer parasitischer

H ymenopteren-Arten).

— (2). The Entomological Fauna of Nauru Island, of the Ocean

Island Group. — Proc. Linn. Soc. N. S. Wales Vol. 35, 1910, p. 407

—410. — (Blattidae.)

Fuller, Claude. Seventh Report of the Government Entomologist

1909—1910. Natal, Department of Agrieulture, Pietermaritzburg

1910. — Die angeführte Schrift enthält p. 22 u. 23 einen kurzen Bericht

über den Stand der Heuschreckenplage in Natal für die angegebene

Zeit. Danach sind die Beschädigungen durch Wanderheuschrecken

fast belanglos gewesen, und Verf. führt diese erfreuliche Tatsache in

erster Linie auf die systematischen Bekämpfungsmaßnahmen zurück,

welche man neuerdings gegen die Wanderheuschrecken in Südafrika

ergriffen hat.

REN 6. H. €. Plagues of Locusts in South Africa. — Nature

(London) Vol. 82, 1910, p. 314. — Referat über den dritten Jahres-

bericht des South African Central Locust Bureau 1909. (cf. Lounsbury

1909.)

1) Die Zweifel des Verf.’s an der richtigen Bestimmung dieser Art möchte

Ref. nach der Beschreibung für sehr berechtigt halten; ef. Gurney 1907.

Publikationen und Referate. 173

[

Gadeau de Kerville, Henri. Indication du poids d’Insectes apparte-

nant & soixante-dix especes de diiferents ordres. — Bull. Soc. entom.

France 1910, p. 130—134. — Verf. ermittelte das mittlere Gewicht von

70 Insektenarten; von Orthopteren ist nur Mantis religiosa in die Liste

aufgenommen.

Gelin, Henri. Captures d’Orthopteres. — Bull. Soc. entom. France

1910, p. 92—93. — Fundortsliste für einige Orthopteren-Arten aus

Westfrankreich.

Giglio-Tos, Ermanno (1). Fasmidi esoticı del R. Museo zoologico

di Torino e del Museo civico di Storia naturale di Genova. — Boll.

Mus. Zool. Anat. comp. Torino Vol. 25, No. 625, 57 pg. — Enthält

Beschreibungen zahlreicher neuer Phasmiden-Arten.

— (2). Mantidi esotici. I. Genus Calidomantis Rehn. — Bull.

Soe. Ent. Ital. Vol. 41, Firenze 1909 (publiciert Febr. 1911), p. 153

—20.

— (3). Mantidi esotici. II. Le Polispilote. — Ibid. Vol. 42, 1910

(1911), p. 1—38.

— (4). Mantidi esotiei. III. Gen. Tarachodes Burm. — Ibid. p. 94

—130.

— (5). Mantidi esotici. IV. Gen. Galepsus Stal. — Ibid. p. 142—169.

Revision der vier genannten Mantodeengruppen auf Grund des

Materiales der Museen in Turin, Genua, Florenz, Bologna, Berlin, Paris,

Budapest und Stockholm sowie der Sammlung Branczik. Teil I be-

handeit die Gattung Calidomantis Rehn (= Miomantis Sauss.), deren

Vorkommen auf Afrika beschränkt ist. Hierher gehört auch Tenodora

limbalicollis Karsch 1892. Von 38 Arten, welehe genannt werden,

sind 22 neu. In Teil II wird die Polyspilota-Gruppe einer Revision

unterzogen; sie umfaßt 4 Gattungen: 1. Plistospelota n. gen. (Typus

Polyspilota validissima Gerst.), Vorkommen ausschließlich im tropischen

Westafrika; 2. Prohrerodula Bolivar, Vorkommen wie bei voriger Art;

3. Polyspilota Burm. (in ganz Afrika); 4. Sphodropoda Stal, welche

Gattung nur in Australien vorkommt. — Die artenreichen, eng ver-

wandten Gattungen Tarachodes und @Galepsus, welche in den Teilen III

und IV behandelt werden, sind ausschließlich afrıkanisch. — Fast in

allen genannten Gattungen werden mehrere neue Arten aufgestellt.

Granata, Leopolde. Le cinesi spermatogenetiche di Pamphagus

marmoratus (Burm.). — Arch. Zellforschg. Bd. 5, p. 182—214, 3 tav.,

1 fig.

Green, E. Ernest (1). Reproduction of Leaf-insects by Partheno-

genesis. — Spolia Zeylanica Vol. VII, Pt. XXV, Colombo 1910, p. 54

—55. — Verf. dieser Notiz hatte längst vermutet, daß Pulchriphyliium

crurıfolium sich parthenogenetisch fortpflanzen könne. Dies wurde in

einem Falle, den Verf. anführt, bestätigt; es wurde von einer Generation,

die nur aus ? bestand, eine zweite Generation erzielt; diese schien aber

nicht mehr fruchtbar zu sein. (Die erste Feststellung von Partheno-

genesis bei Phyllium rührt von Geitel her, cf. La Baume (1) in:

Bericht über Orth. 1908.)

174 Insecta. Orthoptera für 1910.

— (2). The call of the Green Grasshopper. — Ibid. p. 56. — Notiz

über die Stridulationstöne einer „commun green Locustariid“ in

Ceylon (die Art wurde nicht festgestellt).

— (3). Life of the Leaf Insect. — Ibid. Pt. XXVI, December

1910, p. 106. — Notiz über die Postembryonalentwicklung von Pulchri-

phyllium erurifolvum (Dauer beim Q etwa 8 Monate, beim $ kürzer).

Griffini, Achille (1). Prospetto delle Gryllacris hyalino-fasciatae.

— Atti Soc. ital. Sc. nat. Mus. Civ. Milano Vol. 49, 1910, p. 1—12. —

Verf. unterscheidet innerhalb der Gattung Gryllaerıs zwei „Sektionen“:

Die Species hyalino-fasciatae und die fusco-fasciatae. Für die Arten

der erstgenannten Sektion stellt er eine umfassende Dispos:tio specierum

auf und gibt für jede Art Literatur und Verbreitung an. In einem

Anhang werden in gleicher We'se drei Arten behandelt, die er als Species

fumigatae bezeichnet; diese stehen in der Mitte zwischen den beiden

großen Gruppen.

— (2). Revision des types de certaines Gryllacris decrites par

F. Walker, existant au Musee d’Oxford. — Deutsche Ent. Ztschr.

1910, p. 82—94, 1 Fig. — Eine sehr dankenswerte Neubeschreibung

einer Anzahl Walker’scher Typen aus der Gattung @ryllaeris.

— (3). Prospetto delle Gryllacris dı Madagascar e delle isole

vicine. — Zool. Anz. Bd. 35, 1910, p. 509—511. — Bestimmungstabelle

der madagassischen @ryllaeris-Arten mit Literaturangaben für jede

Species.

R — (4). Intorno ad alcune Gryllacris di Sumatra e di isole vicine.

— Ann. Mus. Stor. nat. Genova (3) Vol. 4, p. 8—22. — Eine Species,

4 Subspecies und 1 Varietät werden als neu beschrieben.

Hammerschmidt, Johann. Beiträge zur Entwicklung der Phas-

matiden. — Ztschr. wissensch. Zool. 95, p. 221—242, 2 Tai. — Ref.

von Heymons in: Zool. Zentralbl. 17, 1911, p. 771—772. — Die Arbeit

des Verf. behandelt die Embryonalentwicklung von

Dixzippus morosus Br. mit besonderer Berücksichtigung der viel um-

strittenen Frage des Ursprungs des Mitteldarmepithels bei den Insekten.

Bezüglich des Inhaltes der Arbeit muß auf das Original oder das oben

genannte Referat verwiesen werden.

Hancock, Joseph Lane (1). Notes on Ceylonese Tetriginae (Or-

thoptera), with descriptions of some New Species. — Spolia Zeylanica

Vol.6, 1910, p. 140—149, 2 figg. — Bemerkungen über Vorkommen

und Lebensweise einer Anzahl Tettigiden von Ceylon, von denen

einige an das Wasserleben angepaßt sind und mit ihren ver-

breiterten Tarsen nicht nur zu schwimmen, sondern auch zu tauchen

vermögen. Als neu beschrieben werden Systolederus anomalus und

Spadotettix (n. gen.) fletcheri.

— (2). Third Paper on the Tetriginae (Orthoptera) in the Oxford

University Museum. — Transact. entom. Soc. London 1910, p. 346

—365, pl. XLIX. — Vorliegende Studie umfaßt 47 Tetriginen-Arten,

welche neuerdings vom Oxford University Museum erworben wurden.

Verf. stellt eine Bestimmungstabelle der afrikanischen Gattungen der

Publikationen und Referate, 175

Sektion Cladonotae auf, beschreibt mehrere neue Arten und zwei neue

Gattungen (Medinophyllum und Rhopalotettix).

Handlirsch, A. (1). Einige interessante Kapitel der Palaeoento-

mologie. — Verh. Zool. Bot. Ges. Wien 60, 1910, p. (160)—(185). —

Verf. berührt in seinen Ausführungen über die Lebensweise der

fossilen Insekten und das Vorkommen von Riesenformen

auch die fossilen Orthopteren.

T— (2). Die Bedeutung der fossilen Insekten für die Geologie.

— Mitt. Geol. Ges. Wien. III, 1910, p. 503—522.

T— (3). Contributions to Canadıan Palaeontologie. Vol. II, Pt. 3.

Canadian Fossil Insects. 5. Insects irom the Tertiary Lake Deposits

of the Southern Interior of British Columbia, collected by Mr. Lawrence

M. Lambe, in 1906. — Canada Dept. Mines Geol. Surv. Branch Mem.

12-P. Ottawa 1910, p. 93—129, 36 figg. — Von Orthopteren wird p. 97

eine den Mastaciden nahestehende Form, Promastax archaicus n. gen.

n.sp. auf Grund eines Flügelrestes beschrieben.

Hebard, Morgan. A few Notes on Orthoptera found during the

Early Spring and Late Fall about New Haven, Connecticut. — Ent.

News 21, 1910, p. 183—184. — Aufzählung einiger Arten, welche im

Jahre 1908 als früheste (Mitte Juni) und späteste (Ende Oktober)

beobachtet wurden.

Howard, €. W. Locust Destruction in South Africa. — Journ.

econ. Entom. Vol. 3, 1910, p. 262—272, 1 pl., 2 maps.

Die vorliegende Arbeit bildet die erste zusammenfassende Dar-

stellung des südafrikanischen Wanderheuschreckenproblems und ist

als solche um so mehr zu begrüßen, als sie aus der Feder eines an Ort

und Stelle tätigen Entomologen stammt, welcher in Transvaal zwei

umfangreiche Heuschrecken-Kampagnen geleitet hat. Verf. gibt

eine kurze Charakteristik der beiden in Südafrika vorkommenden

Wanderheuschreckenarten Pachytilus suleicollis und Acridium septem-

fasciatum und stellt die hauptsächlichsten Daten ihrer Naturgeschichte

zusammen, wobei diejenigen Punkte, welche noch nicht hinreichend

geklärt sind, unberücksichtigt blieben. Zwei Karten veranschaulichen

das Vorkommen der geflügelten Schwärme beider Arten und ihre

Haupt-Zugrichtungen. Sodann wird die in Südafrika übliche Be-

kämpfungsmethode mit Arsenlösungen und die Organisation der

Heuschreckenbekämnpfung unter Berücksichtigung ihrer historischen

Entwicklung geschildert.

Hudson, &. V. General Notes on the Entomologie of the Southern

Islands of New Zealand. — Subantarct. Isl. N. Zealand Vol. I, 1909,

p. 58—66. — (Grylld.)

Janicki, €. Untersuchungen an parasitischen Flagellaten. I. Teil.

Lophomonas blattarum Stein, L. striata Bütschli. — Ztschr. wissensch.

Zool. Pd. 95, 1910, p. 243—315, 16 Fig. u. Taf. VI—IX. — Die beiden

genan.ten Lophomonas-Arten leben als Parasiten im Darm der Küchen-

schabe (Blatta orientalis), und zwar kommen meist beide Arten zu-

sammen im Enddarm vor, in selteneren Fällen nur eine von beiden.

Das Vorkommen der Lophomonas im Darm der Schabe ist eine nicht

176 Insecta. Orthoptera für 1910.

sehr häufige Erscheinung; wenn aber überhaupt vorhanden, finden sich

die Parasiten meistens in ungeheuren Scharen, und zwar sind es fast

immer die weiblichen Schaben, welche die Parasiten in großen Mengen

in ihrem Enddarm beherbergen. Die Untersuchungen des Verf. er-

streckten sich auf den Bau, die allgemeinen Lebenserscheinungen,

Kernteilung und Encystierung bei diesen Paras:ten.

Karny, Heinrich (1). Die gelbe Schnarrschrecke (Psophus stridulus

var. Ebneri m.), eine neue Orthopterenvarietät der Wiener Gegend.

— Mitt. Naturwiss. Ver. Universität Wien VIII, 1910, No. 2, p. 57—58.

— Zwei in der Nähe von Wien getangene Psophus besaßen gelb gefärbte

Hinterflügel, waren aber sonst normal gefärbt. Verf. führt dies darauf

zurück, daß die Flügelfärbung normalerweise durch zwei nebeneinander

vorhandene Pigmente, ein rotes und ein gelbes, gebildet wird, von

denen das rote den beiden erwähnten Tieren fehlte. Ähnliche Fälle sind

von anderen Oedipodiden (Celes variabilis und Oedipoda miniata) be-

kannt geworden.

— (2). Orthoptera (s. str.) in: L. Schultze, Zoologische und anthro-

pologische Ergebnisse einer Forschungsreise im westlichen und centralen

Südafrika, Bd. IV, Lieferung 1, p. 35—90, Taf. II. (Denkschriften

der med.-naturwiss. Gesellsch. Bd. 16, Jena 1910). — Diese Arbeit

bildet die Fortsetzung der ‚Blattaeformia Oothecaria“ (cf. Karny

1908) und behandelt die südwestafrikanischen Saltatoria und Phas-

moidea des Berliner Museums. Im wesentlichen systematischen und

zoogeographischen Inhaltes, enthält sie auch Bemerkungen über Mor-

phologie des Flügelgeäders der Gryllacrididen, die systematische

Stellung dieser Gruppe u.a.m. Als Gryllacrididen faßt Verf. zu-

sammen die Unterfamilien Stenopelmatinae, Raphidophorinae, Grylla-

crinae, Schizodaetylinae und (mit?) die Prophalangopsinae, welch letztere

auch zu den Achetiden gehören können. Nach Auffassung des Verf.

stehen die Gryllacriden als selbständige Gruppe den Achetiden, Tetti-

goniden und Acrididen gegenüber.

Kershaw, 3. ©. The Formation of the O,theca of a Chinese Mantıs,

Hierodula saussurei. — Psyche Vol. 17, 1910, p. 136—141, Pl. VIIL IX.

— Verf. gibt zunächst eine kurze Schilderung der Kopulation, der An-

fertigung des Eipaketes durch das Weibchen und des Drüsenapparates,

welcher das Sekret zur Herstellung der Ootheca liefert; auch werden

einige Parasiten erwähnt, die in der Eikapsel schmarotzen (eine Der-

mestes- und eine Podagrion-Art). Dann wird der Bau der Eikapsel selbst

mit allen Einzelheiten genau beschrieben; das Verständnis dieser Aus-

führungen wird durch gute Tafelabbildungen sehr unterstützt.

Kheil, Napoleon M. Supplement zu: „Biologisches über Bacillus

rossii . — Intern. Ent. Ztschr. Guben 4, 1910, p. 64—65.

Kirby, W. F. (1). Synonymic Catalogue of Orthoptera. Vol. III,

Orthoptera saltatoria Pt. 2 (Locustidae vel Acridiidae). London 1910,

674 pp. [Also additions and corrections to the Blattidae, Mantidae,

Phasmidae, Achetidae]. — Mit diesem dritten Bande ist der Orthopteren-

katalog abgeschlossen worden; Vol. I, enthaltend Forficulidae, Hemi-

meridae, Blattidae, Mantidae und Phasmidae, wurde 1904 veröfientlicht;

Publikationen und Referate, 177

Vol. II, enthaltend Achetidae (Gryllidae) und Phasgonuridae (Locustidae)

erschien 1906. Im Anhang zum 3. Bande werden einige Ergänzungen

zu den ersten beiden Bänden gegeben; die Absicht, dieselben bis zum

Jahre 1910 vollständig zu ergänzen, war nicht durchführbar, da die

Kenntnis einzelner Gruppen von Orthopteren seitdem soweit fortge-

schritten ist, daß die auf diese Gruppen bezüglichen Teile des Kataloges

eine vollständige Umarbeitung hätten erfahren müssen. Verf. weist in

der Vorrede zum Bd. III auf einige Autoren hin, welchen wir um-

fassendere Arbeiten über Orthopteren aus den letzten Jahren verdanken.

— (2). An undetermined species of Stick-Insect found in Devon-

shire. — Zoologist (4) Vol. 14, p. 197—198, 1 fig. — Notiz über eine

Phasmide, welche in einem Garten in Devonshire gefunden wurde

und wahrscheinlich aus Neuseeland stammt.

Krausse, A. H. Über braune und grüne Individuen der Mantis

religiosa L. — Ztschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6, 1910, p. 179—180.

— Nach M. P. Cesnola soll sich die grün e Form der Mantis religiosa

auf grünendem Gras, diebraun e auf sonnverbranntem Gras finden.

Nach den Beobachtungen des Verf. in Asuni (Sardinien) liegen die

Verhältnisse keineswegs so schablonenhaft. Er notierte in der Zeit

vom 10. Sept. bis 23. Okt. 1909 16 Fälle — es gab damals nur wenige

Mantis; darunter wurden dreimal grüne Exemplare auf brauner

und einmal ein braunes Exemplar auf grüner Unterlage beobachtet.

Andererseits kommt ein weit höherer Prozentsatz grüner Tiere auf

grüner Unterlage und brauner auf brauner vor. Verf. regt an, recht

zahlreiche Beobachtungen und Experimente über diesen Punkt anzu-

stellen, durch welche allein eine Klärung dieses Themas herbeigeführt

werden könne.

Kuthy, Desid. (1). Orthoptera nonnulla nova in Nova-Guinea

a Lud. Birö collecta. — Ann. Mus. Nation. Hungar. Vol. 8, 1910, p. 213

— 216. — Salomona vittata und bicolor n. spp., Tamolana fulvida n. gen.

n.sp., Huona variegata n. gen. n. sp.

— (2%). Uj szöcskefa] a Kaukäzus böl. — Rovart. Lapok K. 17,

p. 178, 1 Fig.

— (3). Eine neue Locustide aus dem Kaukasus. — Ibid. p. 194.

La Baume, Wolf (1). Über Vorkommen und Lebensweise von

Barbitistes constrietus Br. (Orth. Locust.) — Ztschr. f. wissenschaft].

Insektenbiol. Bd. 6, 1910, p. 104—107. — Ref. von N. v. Adelung in:

Zool. Zentralbl. 18, 1911, p. 437. — Verf. gibt auf Grund neueren

Materiales eine Ergänzung der Originalbeschreibung und stellt eine

Anzahl neuer deutscher Fundorte für die genannte Art fest; es lagen

ihm Exemplare aus der Provinz Posen, aus dem Riesengebirge, aus

Weida (Thüringen) und aus Eisenach vor. Es wird dann auf das eigen-

artige Vorkommen des Tieres in Nonnenfraßgebieten (in Posen wie in

Weida) erwähnt, worauf schon W. Baer 1904 hingewiesen hatte. Die

naheliegende Vermutung, daß die Heuschrecke sich von den Nonnen-

faltern nährt, also von wirtschaftlicher Bedeutung als Nonnenfeind

wäre, wird erörtert; positive Beobachtungen darüber lagen seinerzeit

noch nicht vor.

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 1. 12

178 Insecta. Orthoptera für 1910.

— (2). Die afrikanischen Wanderheuschrecken. — Beihefte’zum

Tropenpflanzer, Bd. XI, No. 2, Berlin 1910, 66 pp. mit 10 Abb. i. Text

u. 4 Taf. Ref. von N. v. Adelung in: Zool. Zentralbl. 18, 1911, p. 437.

— Autoreferat in: Deutsche Ent. Zeitschr. 1910, p. 459—460.

Verf. hat sich in der vorliegenden Arbeit die Aufgabe gestellt,

auf wissenschaftlicher Grundlage eine Übersicht über die Natur-

geschichte und den heutigen Stand der Bekämpfung der afrikanischen

Wanderheuschrecken zu geben. Nachdem in der Einleitung besonders

darauf hingewiesen wurde, daß eine scharfe Unterscheidung der einzelnen

Arten für das Studium der Biologie der Wanderheuschrecken und

somit indirekt für eine rationelle Bekämpfung unerläßlich sei, nament-

lich in Gebieten, in denen mehrere Arten gleichzeitig vor-

kommen, werden zunächst einige allgemeine Tatsachen der

Systematik, geographischen Verbreitung, Biologie und Bekämpfung

erörtert. Im speziellen Teil wird sodann jede Art für sich behandelt,

wobei als einzelne Abschnitte jedesmal unterschieden wurden: Be-

schreibung, Verbreitung, Auftreten als Wanderheuschrecke, Biologie

(im weiteren Sinne, mit Einschluß der Entwicklung), natürliche Feinde

und Bekämpfung. Die Ausführungen über Stauronotus maroccanus

Thunb. sind relativ kurz gehalten, weil diese Art in Afrika ausschließlich

im Norden vorkommt und somit für die deutsch-afrikanischen Kolonien,

welche naturgemäß in der Arbeit des Verf. in erster Linie berücksichtigt

wurden, nicht in Betracht kommt; ebenso diejenigen über Pachytilus

cinerascens Fabr., welche in Afrıka bisher noch nicht als

Wanderheuschrecke beobachtet wurde. Pachytilus migrato-

rioides Reiche, eine über das ganze tropische Afrika verbreitete Art,

tritt zwar häufig als Wanderheuschrecke auf, gleichwohl ist aber

unsere Kenntnis ihrer Entwicklung und ihrer Biologie noch gleich Null.

Besser orientiert sind wir über die beiden südafrikanischen Arten:

Pachytilus suleicollis Stäl, die „Brown Locust“, welche im west-

lichenundzentralenSüdafrika heimisch ist, und Acrıdium

septemfasciatum Serv., die „Red Locust‘‘ oder „Red winged Locust“,

die das östliche Südafrika und das aequatoriale Ostafrika heimsucht;

sowie auch über die weit verbreitete Schistocerca peregrina Ol., welche

besonders für Deutsch-Ostafrika von Bedeutung ist. Diese drei letzt-

genannten Arten werden daher eingehender behandelt. In den Ab-

schnitten über die Biologie wird ausführlicher namentlich die Frage

nach dem Lebenszyklus dieser Arten erörtert, welche bisher

noch wenig geklärt ist; anscheinend ist der „Lebensgang“ des Pachy-

tilus suleicollis wesentlich verschieden von dem der Red winged Locust

(Acridium septemfasciatum), deren Lebenszyklus wahrscheinlich dem-

jenigen der südamerikanischen Schistocerca paranensis Burm. voll-

kommen parallel ist. Letzteres gilt vielleicht auch für Schisto-

cerca peregrina, doch fehlt es auch hier noch an eingehenderen Unter-

suchungen. — Zum Schluß fordert Verf. zum Sammeln und Beobachten

von Wanderheuschrecken auf. Die Tafelabbildungen zeigen ‚Imagines

und Larven der behandelten Arten in gut reproduzierten photo-

graphischen Aufnahmen.

Publikationen und Referate. 179

Lambertie, Maurice (1). Decouverte de la Mantis religiosa L. var.

brune dans le departement de la Gironde. — Miscellanea Entomol.

Vol. XVIII, No. 3—4. (Sep.)

— (2). Sur la ‚„Mantis religiosa L. var. brune‘ dans le departement

de la Gironde. — Proc. Verb. Soc. Linn. Bordeaux Vol. 64, 1910, p. 42.

Beide Notizen betreffen das Vorkommen der Mantis religiosa bezw.

ihrer braunen Varietät im Department Gironde; letztere ist viel seltener

als die grüne Form. In No. (1) gibt Verf. eine Zusammenstellung aller

bisher aus Frankreich bekannt gewordener Fundorte für Mantis

religiosa L.

Letocq, A. L. Note sur le Gryllus burdigalensis Latr., observe aux

environs d’Alencon. — Bull. Soc. Amis Se. nat. Rouen (5) Ann. 45,

1910, p. 37—39.

Löffler, Chr. Dixippus morosus — fast verlustlose Zucht. — Entom.

Ztschr. Stuttgart, Jahrg. 24, 1910, p. 48—49.

Lounsbury, Chas. P. (1). Fourth Annual Report of the Committee

of Control of the South African Central Locust Bureau. Cape Town

1910, 59 pp., 2 pls. and 15 maps.

Der vorliegende vierte Jahresbericht enthält wie die früheren die

Einzelberichte der südafrikanischen Kolonien über den Stand der

Heuschreckenplage in der Saison von März 1909 bis März 1910, sowie

einen solchen über die jährliche Zusammenkunft der Comittee - Mit-

glieder und die bei dieser gefaßten Beschlüsse; voran geht eine zu-

sammenfassende Übersicht, die vom Herausgeber verfaßt wurde.

Wenngleich der Bericht naturgemäß in erster Linie die praktische

Seite der Heuschreckenfrage berücksichtigt, also hauptsächlich die

Bekämpfungsarbeiten und -Erfolge behandelt, so enthält er doch

wiederum eine Menge Einzelheiten, welche das Vorkommen der

beiden Wanderheuschreckenarten und ihre gesamte Biologie

betreffen, wie z. B. Auftreten von Hupfern und geflügelten Schwärmen,

Wanderungen derselben, Eiablage, natürliche Feinde (namentlich

„Heuschrecken-Vögel“) u.a.m. Von besonderem Interesse sind

15 Karten, welche dem Bericht beigegeben wurden; sie zeigen auf Grund

der vom Bureau gesammelten Nachrichten die Verbreitung der Wander-

heuschrecken in Südafrkia in der Zeit von Dezember 1906 bis Februar

1910, und zwar für je ein halbes Jahr. Dabei werden nicht nur die

beiden Arten (Pachytilus suleicollis und Acridium septemfasciatum)

gesondert behandelt, sondern bei jeder auch zwischen geflügelten

Heuschrecken und Hupfern unterschieden. Auf diese Weise erhält

man ein anschauliches Bild sowohl über die geographische Verbreitung

beider Arten, welche eine ganz verschiedene ist, wie auch über die

jeweilige Ausdehnung der Plage und das Vorkommen von Larven

bezw. geflügelten Heuschrecken nach Zeit und Örtlichkeit, woraus

sich weitere Schlüsse auf deren Lebenszyklus und das ganze Problem

der Wanderheuschrecken überhaupt ergeben.

— (2). [Usefull and Injourious Insects.] — Rep. Governem. Entom.

Cape Good Hope 1909 (1910) p. 81—100.

12*

180 Insecta. Orthoptera für 1910.

Lucas, W. J. British Orthoptera in 1909. — The Entomologist

Vol. 43, 1910, p. 257—259, 1 fig. — Bemerkungen über örtliches und

zeitliches Vorkommen einiger Blattiden-, Locustiden- und Acrididen-

Arten in England im Jahre 1909.

Lüderwaldt, H. Sphex striatus Sm. bei seinem Brutgeschäft. —

Ztschr. f. wissenschr. Insektenbiol. VI, 1910, p. 177—179. — Verf.

beobachtete in der Nähe von Sao Paulo (Brasilien), wie die genannte

Raubwespe eine große Wanderheuschrecke, die sie durch ihren Stich

gelähmt hatte, in ihren Bau eintrug.

Ludwig, F. Sind Barbitistes constrietus und Diestrammena uni-

color schädliche oder nützliche Insekten? — Centralbl. Bakt. Parasiten-

kunde, Abt. 2, Bd. 26, p. 442—443.

Die Frage, ob Barbitistes constrictus für gewöhnlich von pflanz-

licher oder tierischer Kost lebt, konnte Verf. nicht entscheiden (cf. Torka

1909, La Baume 1910). Bezüglich Diestrammena unicolor beobachtete

Verf. im Gegensatz zu Wünn (1909), daß diese aus Ostasien importierte

Heuschrecke gelegentlich in einer Gärtnerei einer Pyrethrum-Kultur

derart zusetzte, daß deren Existenz gefährdet schien. Auch andere

Pflanzen wurden von Diestramma angegriffen. Anscheinend haben

wir es hier mit einer polyphagen Laubheuschrecke zu tun, nicht,

wie Wünn annimmt, mit einer carnivoren. Ihre Schädlichkeit für

gärtnerische Kulturen wäre damit festgestellt.

Matsumura, $. (1). Die schädlichen und nützlichen Insekten

vom Zuckerrohr Formosas. — Ztschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6,

1910, p. 101—104, 136—139. — Verf. führt p. 102—103 23 Acrididen

und 8 @ryliiden auf, die als Schädlinge des Zuckerrohrs (und anderer

Kulturpflanzen) in Formosa in Betracht kommen. Sechs davon werden

als n.spp. bezeichnet und in der folgenden Arbeit beschrieben.

— (2). Beschreibungen von am Zuckerrohr Formosas schädlichen

oder nützlichen Insekten. — Mem. Soc. Entom. Belgique XVIII,

1911, p. 129—133. — Neue Arten der Gattungen: Oxya, Racilia,

Stenobothrus, Liogryllus, Tridactylus, Anaziphus.

Megusar, Franz (1). Regeneration der Fang-, Schreit- und Sprung-

beine bei der Aufzucht von Orthopteren. — Arch. f. Entwicklungs-

Mech. Bd. 29, 1910, p. 499—586, 3 Taf.

Verf. zog Vertreter aus allen drei Hauptgruppen der Orthopteren

in den Kreis seiner Untersuchungen, und zwar kamen als Versuchs-

objekte von den laufenden Geradflüglern Stylopyga orientalis,

von den schreitenden Mantis religiosa und Dixippus morosus,

von springenden Stenobothrus biguttulus (Aridid.), Troglophilus

neglectus (Locustid.) und Gryllus campestris (Grylhid.) zur Verwendung.

Die Resultate der Untersuchungen des Verf.s können hier nur im An-

schluß an die am Schluß der Arbeit gegebene Zusammenfassung kurz

skizziert werden. Danach können Orthopteren mit 3 Schreitbeinen

(Blattidae, Phasmidae) alle Beine autotomieren und sowohl von der

Autotomiestelle, der Femur-Trochanter-Naht, als auch von weiter

proximal gelegten Verluststellen aus regenerieren. Mantis religiosa,

welche nur an den zweihinteren Beinpaaren autotomierende

Publikationen und Referate. 181

Schreitbeine besitzt, hingegen das vordere Beinpaar zu Fangbeinen

ausgebildet hat, die der Autotomie entbehren, vermochte trotzdem

dieses Fangbein selbst auf älterem Stadium noch von der Mitte des

Femurs aus zu ergänzen. Die Orthoptera saltatoria verhielten sich ver-

schieden. sStenobothrus und Gryllus, welche die beiden vorderen Bein-

paare nicht autotomieren können, regenerierten alle Beine proximal

der Femur-Trochanternaht, jedoch nicht die Hinterbeine von der

Autotomiestelle aus. Die Höhlenheuschrecke Troglophilus neglectus

Krauss besitzt dagegen auch an den beiden vorderen Beinpaaren

typische Autotomie und begann sowohl die Schreit- als auch die Sprung-

beine von der Autotomiestelle aus zu regenerieren. Die bisherigen

negativen Versuchsergebnisse bezüglich der Regeneration der Hinter-

beine der Orthoptera saltatoria erklären sich zum Teil aus der Ver-

wendung von Arten, welche stark in die Coxa eingeschachtelte

Trochanteren besitzen, zum Teil aus der Benutzung der Autotomie

als Versuchstechnik. Die bisherigen Ergebnisse bezüglich der Rege-

neration der Schreitbeine, welche proximal der Autotomiestelle ab-

geschnitten werden, erklären sich teils aus der Verwendung zu alter

Versuchstiere, teils aus dem Übersehen des oft erfolgenden Abwurfs

der ‚„Miniaturbeinchen“. Bei den Blattiden werden die Flügel, nach

Abschneiden der entsprechenden Thoracalränder oder der bereits

angelegten Flügelstummel, zuweilen en miniature regeneriert (nur bei

den 99). — Die Arbeit des Verf. enthält neben den auf die Versuche

bezüglichen Ausführungen auch Bemerkungen über Vorkommen

undbiologischesVerhalten der zu den Versuchen benutzten

Arten (namentlich Troglophilus neglectus und @ryllus campestris) im

Freien und in der Gefangenschaft.

— (2). Künstliche Form- und Farbeveränderung bei Gryllus.

— Zentralbl. Physiol. Bd. 24, 1910, p. 803. — Beobachtungen über

den Einfluß von Temperatur, Beleuchtung und Feuchtigkeit bezw.

Trockenheit auf Form und Farbe von Gryllus campestris bei künst-

licher Aufzucht.

Meissner, Otto (1). Einige Bemerkungen, namentlich über die

Eiablage bei Dixippus morosus Br. und bei Baecillus rossii F. —

Internat. Entom. Ztschr. Guben IV, 1910, p. 9—11.

— (2). Ex-ovo-Zucht von Baeillus Rossii F. — Ibid. p. 43—46.

— Bemerkungen über den Entwicklungsgang, Zahl der Häutungen,

Wachstum sowie über Färbung und Nahrung.

— (3). Noch einige Bemerkungen über die Zucht von Dixippus

morosus Br. — Ibid. p. 164—166. — Betr. Entwicklungsdauer, Lebens-

dauer, Todesursache, Futter, Färbung, Größe, Zahl der Häutungen.

— (4). Kleinere Bemerkungen über die Zucht von Dixippus

morosus Br. — Societas entom. 25, 1910, p. 55—56. — Bemerkungen

über Futter, Kannibalismus, Entwicklungsdauer.

Meyrick, E. (I). Entomological Seetion. — Rep. Marlborough

College nat. Hist. Soc. 1902—1910, No. 50-58.

— (?2). Notes on Wiltshire Insects outside the Marlborough

District. — Ibid. No. 50—54.

182 Insecta. Orthoptera für 1910.

— (3). List of Hymenoptera, Hemiptera ect. of the District.

— Ibid. 1905/06, No. 53.

Miram, E. [Capture d’un Orthoptere nouveau pour la faune

du gouvernement de St. Petersbourg.] (Russisch.) — Rev. Russe

d’Entom. T. 10, 1910, p. 408. — Platyclevs roeselii Hagenb. var. diluta

Charp. (macroptera Br. v. W.).

Morstatt, H. Die Wanderheuschrecken und ihre Bekämpfung.

— Beilage zum „Pflanzer“, Jahrg. 6, 1910 (Flugblatt Nr. 7). —

Kennzeichnung der eigentlichen Wanderheuschrecken im Gegensatz

zu gelegentlich in Massen auftretenden Arten (Zonocerus elegans);

kurze Beschreibung der in Ostafrika häufigsten Art Schistocerca pere-

grina; Bemerkungen über Vorkommen und Lebensweise; kurze An-

leitung zur Bekämpfung mit Arsensalzen, Seifenlösungen und

mechanischen Mitteln; Anregung zu einer Organisation der Heu-

schreckenbekämpfung in Deutsch-Ostafrika nach dem Muster des

südafrikanischen Central Locust Bureau.

Navas, Longines (1). Notas entomologicas (2. serie). I. Algunos

insectos de Melilla y Zeluan (Africa espagnola). — Bol. Soc. Aragon.

Cienc. Nat. IX, 1910, p. 168—169. — Enthält Fundortsangaben für

einige Acrididen aus Melilla (Marokko).

— (2). Notas entomologicas (2. serie) Il. Excursiones por Cata-

luia y Mallorca. — Ibid p. 240—248. — Enthält Fundortsnotizen

über einige Orthopteren-Species aus Nordspanien (Catalonien) und

von Mallorca. Von Ephippigerida cunii Bol. wird eine neue Varietät

monticola beschrieben.

Noel, Paul (1). Les Blattes. — Naturaliste, Paris, Ann. 31, 1909,

p- 205—206.

— (2). La courtiliere (Gryllotalpa vulgaris). — Naturaliste

(Paris) Ann. 31, 1910, p. 263—264.

Perkins, R. €. L. Orthoptera, Supplement; in: Fauna Hawaiiensis

or the Zoology of the Sandwich (Hawaiian) Isles. Vol. II, Pt. 6, Cam-

bridge 1910, p. 687—690. — Als neu beschrieben werden drei Lepto-

gryllus-Arten.

Pieron, Henri. Le rythme des attitudes mimetiques chez un

Phasmide (Orthopteres), le Dixippus morosus. — Bull. Mus. Nation.

Hist. Nat. Paris 1910, p. 193—196. — Verf. behandelt die schon

mehrfach von anderer Seite beschriebene Schutz- und Ruhestellung

des Dizippus morosus sowie den periodischen Wechsel von Aktivität

und Ruhe, welchen diese Phasmide zeigt. Er untersuchte ferner

die physiologischen Ursachen dieser Periodicität und kommt zu

dem Resultat, daß dieselbe durch den Wechsel von Tag und Nacht

bedingt sei, das Licht also der Faktor sei, welcher den Reflex des

unbeweglichen Verharrens in der mimetischen Stellung auslöse;

gleichwohl bleibt die Periodizität aber eine Zeit lang erhalten, wenn

die Tiere dauernd im Dunkeln gehalten werden, sie haftet also gleichsam

noch einige Zeit im Gedächtnis des Tieres (‚il y a une persistance

mnemonique‘). -

Publikationen und Referate. 183

Pocock, R. J. Ant-mimiery by the larvae of a species of Mantis. —

Proc. Zool. Soc. London 1910, p. 837—839, 1 fig. — Additional note

on the mimiery of the larvae of the Ceylonese leaf-insect Phyllium.

— Ibid. p. 839—840.

Verf. beschreibt zunächst die Larven einer (nicht näher be-

stimmten) Mantidenart von der Goldküste, welche in London im

Insektenhaus des zoologischen Gartens beobachtet wurden. In der

Ruhestellung hatten sie ganz das Aussehen und Benehmen der

erwachsenen Tiere, dagegen glichen sie, in Bewegung befindlich,

fast vollkommen schwarzen Ameisen. Die Täuschung wird besonders

dadurch hervorgerufen, daß sie während des Laufens die Vorderbeine

ausstrecken (in der Ruhe sind sie zusammengeklappt) und das Hinter-

ende des Abdomens nach oben umklappen, wodurch der Hinterleib,

von oben gesehen, wie der einer Ameise erscheint. Die Larven sind

in beiden Stellungen abgebildet. Mit der ersten Larvenhäutung ver-

schwand das ameisenähnliche Aussehen.

In der zweiten Notiz beschreibt Verf. junge Larven von Phyllium

spec., welche in ihrem ganzen Aussehen sehr an gewisse Wanzenarten

erinnern sollen; da letztere wiederum einen Käfer nachahmen sollen,

so besteht nach Ansicht des Autors kein Zweifel darüber, daß gewisse

Lyceidenarten (Käfer) und Hemipteren in Ceylon von den Phyllium-

larven nachgeahmt werden. (Ob die verschiedenen Insektenarten

überhaupt am gleichen Orte nebeneinander vorkommen, wodurch die

nachgeahmten Käfer geschützt sind ect., wird nicht gesagt und ist

anscheinend nicht untersucht worden. Typischer Fall einer kon-

struierten, nicht in der Natur beobachteten Mi-

mikry! D. Ref.)

Police, Gesualdo. Sulla discussa natura di alcune parte del sistema

nervoso viscerale degl’Insetti. — Arch. zool. Napoli Vol. 4, 1909, p. 287

—314, 1 pl.

Pospjelow, W. Die postembryonale Entwicklung und die imaginale

Diapause bei den Lepidopteren. — Mem. Soc. Nat. Kieff XXI, 1910,

Livr. 4, p. 163—418, 8 Tafeln. (Russisch, mit deutschem Resume).

— Verf. zog bei seinen Untersuchungen an Lepidopteren auch andere

Insektenordnungen, u. a. auch die Orthopteren, zum Vergleich heran.

Als imaginale Diapause beze.chnet man dıe Tatsache, daß e:n Insekt

im Imaginalstadium anfangs noch nicht geschlechtsreif ist. Unter den

Orthopteren konnte Verf. eine solche imaginale Diapause bei Pachy-

tılus migratorius, Oedipoda coerulescens u. Acridium aegyptium nach-

weisen.

Prochnow, Oskar. Die Haupttypen der Lautapparate der In-

sekten. — Entom. Ztschr. (Stuttgart), Jahrg. 24, 1910, p. 84-85,

89—91, 3 Figg. — Im vierten Kapitel dieser Arbeit, welches von: den

Stridulationsapparaten der Insekten handelt, führt Verf. den ‘Schrill-

apparat der Grylliden als einen Typus der Stridulationsorgane an;

etwas modifiziert findet sich derselbe bei den Zocustiden wie überhaupt

allen Orthopteren.

184 Insecta. Orthoptera für 1910.

Puschnig, R. Beiträge zur Kenntnis der Orthopterenfauna von

Kärnten. — Verh. Zool. Bot. Ges. Wien 60, 1910, p. 1—60, 1 Fig.

Eine sehr eingehende faunistische Studie, welche sich auf ein ın

14 Jahren gesammelte; Beobachtungsmaterial stützt, und in welcher

Verf., wie er in der Einleitung betont, das Hauptgewicht darauf

legt, daß damit ein möglichst getreues Bild, wie es die einzelnen

Komponenten der Orthopterenfauna in Kärnten bieten, wiedergegeben

wird. „Bei der relativ geringen Artenzahl und der starken Verbreitung

der meisten Arten ist es dem aufmerksamen Beobachter möglich,

über den morphologischen und biologischen Wert der einzelnen

Formen, über Größen-, Form-, Farbenverhältnisse, Konstanz und

Variabilität derselben, über Häufigkeit oder Seltenheit, Gesondertheit

oder Ubiquität des Vorkommens u.s. w. ein viel reicheres, klareres

und abgerundeteres Bild zu bekommen als bei anderen, ungleich

formenreicheren Insektengruppen.“ Nach einer Übersicht über die

vorhandene Literatur gibt Verf. zunächst ein systematisches Ver-

zeichnis der für Kärnten festgestellten 66 Arten, mit Bemerkungen

über Vorkommen, Verbreitung und Variation derselben. Als neue

Art wird Podisma Prossenii beschrieben; auch werden zahleiche

neue Varietäten benannt und beschrieben. Im zweiten Teil der Arbeit

behandelt Verf. die Orthopterenfauna Kärntens von verschiedenen

allgemeinen Gesichtspunkten aus. Die Frage, in wie weit

zwischen der geographisch-geologischen Gliederung

des Gebietes eine Parallele in der Gliederung der Fauna besteht,

insbesondere, ob dem verschiedenen Charakter der Kärntener Gebirge,

namentlich des Urgebirges und des Kalkgebirges, eine Verschiedenheit

der Orthopterenfauna entspricht, konnte bisher nicht entschieden

werden. Im großen und ganzen festgestellt ist bisher nur das Gebiet

von Klagenfurth und das Klagenfurther Becken, und in diesem

wiederum ist namentlich die Talfauna gut bekannt, während aus dem

Gebirge bisher nur Stichproben vorliegen. Verf. macht weiter nähere

Mitteilungen über die ökologischen Verhältnisse —

er unterscheidet Sumpfwiesen-, Tal-, Wald- und Bergformen und

ubiquitäre Formen — sowie über phänologische Beob-

achtungen. Zum Schlusse wird die Kärntner Orthopterenfauna

tiergeographisch gewürdigt, und zwar sowohl im ganzen

mit der Fauna der Nachbarländer verglichen wie auch in sich nach

ihren faunistischen Elementen gegliedert.

Ramme, Willy. Über das Vorkommen von Chrysochraon dispar

Heyer (Orth.) bei Berlin. — Internat. Entom. Ztschr. (Guben) Jahrg. 4,

1910, p. 140.

Regen, Johann. Kastration und ihre Folgeerscheinungen bei

Gryllus campestris L. 2. Mitteilung. — Zool. Anz. Bd. 35, 1910, p. 427

—432. — In Verfolg seiner im Jahre 1908 begonnenen Kastrations-

versuche (vergl. Bericht für 1909) unterwarf Verf. im ganzen 40

männliche und 10 weibliche Larven von Gryllus campestris ım letzten

und vorletzten Larvenstadium der Kastration, und zwar wurden nur

die Testikel bezw. Ovarien entfernt. Die kastrierten Tiere machten

Publikationen und Referate. .. A85

ihre weitere Entwicklung am Orte ihres Vorkommens in freier Natur

durch; die von ihnen bewohnten Löcher wurden bezeichnet, überdies

wurde jedes operierte Tier durch Abschneiden der hinteren Flügel-

anlagen, welche in den letzten beiden Stadien gar nicht oder nur unvoll-

kommen regeneriert werden, kenntlich gemacht. Es gelang Verf.,

ll kastrierte Tiere (darunter nur 1 Q) wieder einzufangen, nachdem

sie sich zur Imago entwickelt hatten; diese wurden nun bis zu ihrem

Tode im Terrarium weiter beobachtet. Es ergab sich dabei folgendes:

Neundd zirpten als Imagines so lebhaft und schrill, wie normale SS;

1 $ zirpte nur selten und schwach. Das Benehmen kastrierter $&

den 22 gegenüber war dasselbe wie bei normalen. Sie produzierten

überdies fast bis zu ihrem Tode Spermatophorenhüllen ; letztere glichen

äußerlich den Spermatophorenhüllen normaler Männchen meist voll-

kommen (hier und da waren sie nur etwas kleiner). Ihr Inhalt war

an Masse allerdings geringer als bei normalen Spermatophoren und

ließ bei mikroskopischer Untersuchung niemals Spermatozoen er-

kennen. Die Zeichnung der Vorderflügel und die Ausbildung des

Tonapparates blieb unverändert. Normale Weibchen waren ferner

nicht imstande, kastrierte Männchen von nicht kastrierten zu unter-

scheiden; sie ließen sich von ihnen die Spermatophorenhüllen an-

kleben wie von normalen Männchen. Das kastrierte ® verhielt sich

wie ein normales. Im ganzen ergab sich aus den bisherigen Unter-

suchungen, daß die im letzten und vorletzten Larvenstadium kastrierten

Männchen, denen nur die Testikel entfernt wurden, das gleiche Be-

nehmen zeigten, wie nicht kastriert... Das Verhalten des einen

Mönnchens, welches mit dem der übrigen nicht übereinstimmte —

auch im Vorjahre beobachtete Verf. ein solches — betrachtet Verf.

als Ausnahme. Von den im gleichen Larvenstadium kastrierten

Weibchen gilt wahrscheinlich dasselbe wie für Männchen. Verf. be-

absichtigt seine Versuche fortzusetzen und auch auf jüngere

Larvenstadien auszudehnen, womit zur Zeit der Abfassung seines

Berichtes schon ein Anfang gemacht worden war.

Rehn, James A. 6. (1). On some Orthoptera from Porto Rico,

Culebra and Vieques Islands. — Bull. Ameriec. Mus. Nat. Hist. 28,

1910, p. 73—77. — Eine kleine Liste von Orthopteren von den ge-

nannten Fundorten. Als neu beschrieben wird eine Blattide, Epi-

lampra wheeleri.

— (2). On the Orthoptera of Bermuda. — Proc. Acad. Nat.

Sci. Philadelphia, Vol. 62, 1910, p. 3—11. — Verf. gibt eine zu-

sammenfassende Übersicht über die bisher von den Bermuda-Inseln

bekannt gewordenen Orthopteren-Arten. Eine Übersicht über die

Verbreitung derselben ergibt, daß die Orthopteren-Fauna der Inseln

derjenigen des Festlandes näher steht als derjenigen der Antillen.

Ein größeres Material von Gryllus bermudensis Caudell gab Verf.

Anlaß zu Untersuchungen über den Umfang der Variabilität in Größe,

Proportionen der einzelnen Körperteile und Färbung.

— (3). Some Notes on Idaho Orthoptera, with the description

of an new species of Trimerotropis. — Ibid. p. 12—17, 2 Fig.

186 Insecta. Orthoptera für 1910.

— (4). Records of Orthoptera from Western Canada. — Ent.

News 21, 1910, p. 233—27. — Fundortsliste. |

— (5). A new Species of the Genus Trybliophorus (Orthoptera)

from Surinam. — Ibid. p. 126—128, 2 Fig.

— (6). [Five species of Orthoptera from Alberta, Saskatschewan

and Idaho.] — Ibid. p. 333—334. — Fundortsangaben.

Rehn, 3. A. G. and Hebard, Morgan (I). Three new records of

Blattidae (Orthoptera) for the United States. — Entom. News Vol. 21,

1910, p. 103.

— (2%). A revision of the North American Species of the Genus

Ischnoptera. — Proc. Acad. Nat. Sci. Philadelphia, Vol. 62, 1910,

p- 407—453, 30 figg. — Eine eingehende systematisch-faunistische

Arbeit über die nordamerikanischen Arten der genannten Blaitiden-

Gattung. Für jede Art wird Synonymie, Beschreibung und Ver-

breitung gegeben. Zwei Arten werden als neu beschrieben.

— (3). Records of Georgia and Florida Orthoptera, with De-

scriptions of one New Species and one New Subspecies. — Ibid. p. 585

—598. — Liste der Arten mit Fundortsangaben.

— (4). Preliminary Studies of North Carolina Orthoptera. —

Ibid. p. 615—650. — Eine faunistische Studie über die Orthopteren

des genannten Gebietes. In der Einleitung wird eine kurze Cha-

rakteristik der Fundorte gegeben, an denen gesammelt wurde; dann

folgt die Aufzählung und Besprechung der erbeuteten Arten, wobei

namentlich der Variabilität einzelner Arten besondere Aufmerksamkeit

zugewandt wurde.

Rimpsky-Korsakow, M. N. [Notice sur les insectes des environs

de Villefranche.] — Rev. Russe d’Entom. Tom. 10, 1910, p. 296—300.

— p.299 werden von Orthopteren genannt: Mantis religiosa L., Lo-

boptera decipiens Germ., Arachnocephalus yersini Sauss.

Rosenfeld, Arthur H. (1). Blattid Notes. — Journ. econ. Entom.

Vol. 3, 1910, p. 100—101.

— (2). Insects notably injourious in Luisiana during 1908 and

1909. — Journ. econ. Entom. Vol. 3, 1910, p. 212—217. — (Blattidae.)

Rudow, A. Zur Zucht von Dixippus morosus Br. — Intern. entom.

Ztschr. Guben, Jahrg. 4, 1910, p. 83.

Van Rynefeld, Altred. Locust Destruction. 1909-1910. Invasion

by Brown Locusts (Pachytilus sulcicollis). — Agrie. Journ. Cape

Good Hope Vol. 36, 1910, p. 158-166. — Ein Bericht über Maß-

nahmen zur Bekämpfung einer sehr ausgedehnten Invasion der Brown

Loeust in die Kapkolonie, welcher jedoch lediglich von prakti -

schem Interesse ist.

Schleip, Waldemar. Der Farbenwechsel von Dixippus morosus

(Phasmidae). — Zool. Jahrb. Bd. 30, Allgem. Zool. Physiol. p. 45

—132, 3 Taf.

Nach einleitenden Bemerkungen über die wenigen in der Literatur

vorhandenen Mitteilungen, welche einen raschen Farbenwechsel bei

Insekten betreffen, teilt Verf. zunächst seine Beobachtungen und

Versuche über die durch Lichtreize ausgelösten Reflexbewegungen

Publikationen und Referate. 187

bei Dizippus morosus mit. Bei den typischen Stellungen dieser Phas-

mide unterscheidet er zwischen Ruhe- und Schutzstellung

(nicht Schreckstellung, wie Meissner u.a. Autoren annehmen) und

erörtert deren biologische Bedeutung (die Arbeit von La Baume 1908,

in welcher die gleiche Auffassung vertreten wird, hat Verf. übersehen).

Weiter wird das Verhalten von Dixippus bei dem Wechsel zwischen

Tag und Nacht geschildert und die Wirkung der Lichtreize

auf die Bewegungen der Tiere eingehend erörtert. (Versuche mit

weissem und farbigem Licht, mit normalen und am Nervensystem

verletzten Tieren). In Kapitel 3 gibt Verf. Beschreibungen der

Färbungsvarietäten von Dizippus morosus und ihres

Farbwechsels; in Kapitel 4 wird die Ursache der Färbung

und des Farbwechsels, das Pigment, und zwar speziell das Pig-

ment der Hypodermis und dessen Wanderung, behandelt, bei welcher

Gelegenheit auch dr Baudes Hypodermis untersucht wurde.

Die eigentliche PhysiologiedesFarbwechsels ist Gegen-

stand des 6. Kapitels der Arbeit; es umfaßt die Beobachtungen über

den zeitlichen Verlauf des Farbwechsels unter natürlichen Be-

dingungen, den Einfluß der Temperatur, der Feuchtigkeit u. einiger

anderer Faktoren und den Einfluß des Lichtes. Im letzten Abschnitt

wird die Periodizitätder Farbwechsels behandelt und

die biologische Bedeutung desselben gewürdigt. Als wichtig tes Er-

gebnis der Untersuchungen des Verf. ergibt sich folgendes: Dizıppus

morosus zeigt in seinen Bewegungen eine ausgesprochene Periodizität,

indem er in der Nacht sich bewegt, frißt oder in ‚„‚Ruhestellung‘“ ver-

harrt, am Tage aber die „Schutzstellung‘‘ annimmt; diese Perio-

dizität beruht darauf, daß der Übergang von Beleuchtung zur Dunkel-

heit die Tiere zur Bewegung veranlaßt, der umgekehrte Vorgang aber

zur Annahme der Schutzstellung. Sie beruht also auf der periodischen

Wiederkehr der die Bewegungen reflektorisch hervorrufenden Reize,

ist mithin keine autonome Periodizität. Dizippus morosus kommt,

wenigstens in der Gefangenschaft, in einer großen Zahl von Färbungs-

varietäten vor, welche, mit Ausnahme der unveränderlichen grünen

Varietät, einen charakteristischen Farbenwechsel durchmachen. Die

Färbung von Dixippus beruht hauptsächlich auf Pigmentkörnchen,

die in der Hypodermis liegen, und zwar auf grünen, grauen, gelbroten

und sepiabraunen; der Farbenwechsel beruht auf Wanderungen des

gelbroten und des braunen Pigmentes innerhalb der Hypodermiszellen,

wobei das letztere zu gewissen Zeiten von der Lage grauer Körner

wie durch einen Lichtschirm verdeckt wird, zu anderen nicht. Unter

natürlichen Bedingungen sind alle farbenveränderlichen Varietäten

von Dixıppus nachts dunkel, tags hell gefärbt (mit seltenen Aus-

nahmen); der Farbwechsel verläuft also periodisch. Da er ferner,

abgesehen von anderen Faktoren, besonders von dem Wechsel zwischen

Beleuchtung und Dunkelheit beeinflußt wird, so folgt daraus, daß

die Periodizität des Farbenwechsels in erster Linie auf der direkten

Wirkung des periodischen Wechsels zwischen Tag und Nacht beruht;

aber nicht auf dieser allein, sondern ausserdem auch auf

188 Insecta. Orthoptera für 1910.

eine Nachwirkung der periodisch wiederkehrenden Reize,

wie schon daraus hervorgeht, daß der periodische Farbenwechsel in

dauernder Dunkelheit einige Wochen lang erhalten bleibt

und sich trotz dauwernder Beleuchtung Spuren des perio-

dischen Farbenwechsels noch eine Zeit lang erhalten.

v. Schulthess-Rechberg, A. Neue Orthoptera aus Transvaal. —

Mitt. Schweiz. Entom. Ges. 12, 1910, p.8—13, 6 Figg. — Be-

schreibung von Parabacillus femoratus n. gen. n.sp. (Phasm.), Peni-

chrotes carinicrus, Parathericles minutus n.spp. (Eumastacid.), Ere-

mobiella Helenae n. gen. n.sp.

Secretaria da Agricoltura, Commercio e Obras Publicas do Estado

de S. Paulo. Instrucgöes para destruigäo de Gafanhotes. S. Paulo

1910, 15 pp. — Eine kurze, in Frage und Antwort gehaltene und daher

sehr instruktive Anleitung zur Bekämpfung der Wanderheuschrecken.

Die ersten beiden Abschnitte behandeln in kurzen Zügen die Natur-

geschichte der Heuschrecken (Vorkommen, Art des Auftretens, Schaden,

Wanderungen, Entwicklung vom Ei bis zum geflügelten Insekt),

die übrigen zwölf beschäftigen sich mit den verschiedenen Methoden

der Bekämpfung.

TSellards, E. H. Cockroaches of the Kansas Coal Measures and of

the Kansas Permian. — Univ. Geol. Surv. Kansas Vol. 9, 1908, p. 501

—541, 14 pls. — (Blattidae).

Severin, Henri H. P. A study on the structure of the egg of the

Walking-stick, Diapheromera femorata Say; and the biological signi-

ficance of the resemblance of Phasmid eggs to seeds. — Ann. entom.

Soc. Amer. Vol. 3, 1910, p. 83—92, 1 pl.

Severin, Henry H. P. and Severin, Harry €. The Effect of Moisture

and Dryness on the Emergence from the Egg of the Walkingstick,

Diapheromera femorata Say. — Journ. econ. Entom. Vol. 3, p. 179

—481.

TShelford, R. (1). On a collection of Blattidae preserved in Amber,

from Prussia. — Journ. Linn. Soc. London, Zool. Vol. 30, 1910,

p- 336—3555, 2 pls.

Die Untersuchung einer größeren Anzahl von Bernstein-Blattiden

aus der Sammlung von Prof. Dr. Klebs in Königsberg bestätigte

von neuem die Tatsache, daß die Insektenfauna der Bernstein-

Formation in ihren wesentlichen Merkmalen einer charakteristischen

tropischen oder subtropischen Fauna der Jetztzeit sehr ähnlich ist.

Die untersuchten Blattiden, welche 9 Gattungen mit 24 Arten reprä-

sentieren, zeigen in ihren morphologischen Charakteren keine

Einzelheiten, die als besonders primitiv und altertümlich ange-

sehen werden könnten; das geht schon daraus hervor, daß nicht eine

einzige neue Gattung aufgestellt zu werden brauchte, sondern alle

bsobachteten Formen sich in die noch heutigen Tages in tropischen

Zonen lebenden Gattungen einordnen ließen. Verf. zieht in der Ein-

leitung seiner Studie einen interessanten Vergleich zwischen dem

Vorkomnen gewisser Gattungen von Bernstein-Blattiden und der

heutigen geographischen Verbreitung dieser selben Gattungen; er

Publikationen und Referate. 189

erörtert ferner die Tatsache, daß die heutige. Blattiden-Fauna von

Nord-Europa so erheblich ärmer an Formen ist als die Fauna des

Oligocäns, sowie die klimatischen Ursachen dieser Erscheinung,

welche wiederum durch geologische Tatsachen bedingt waren. Sieht

man von der kosmopolitischen Spezies Phyllodromia germanica ab,

deren Verbreitungszentrum nicht mehr zu ermitteln ist, so ergibt

sich, daß von den bisher bekannten neun Gattungen der Bernstein-

zeit nur noch eine heute in Nordeuropa vorkommt, nämlich die

Gattung Ectobius, welche durch 3 nordeuropäische Formen reprä-

sentiert wird. Verf. war daher früher geneigt, die oligocänen Formen der

Gattung Ectobius als paläarktische Elemente innerhalb einer

tropischen Fauna anzusehen; da er aber neuerdings festgestellt hat,

daß das Genus Zctobius auch im tropischen Afrika durch

mehrere Arten vertreten ist, so bildet das Vorkommen von Ectobius

Arten im Bernstein keine Überraschung dar. — Unter den 24 Arten,

welche Verf. im speziellen Teil beschreibt, sind 20 neu für die Wissen-

schaft (in den Gattungen Ectobius, Ischnoptera, Phyllodromia,

Ceratinoptera, Temnopteryx, Nyctibora, Periplaneta, Polyphaga und

Holocompsa).

— (2). Blattidae, in: Ergebnisse einer zoologischen Forschungs-

reise nach Westindien von Prof. Kükenthal und Dr. Hartmeyer im

Jahre 1907. Zweiter Teil. — Zool. Jahrb. Suppl. 11, Heft 2, Jena 1910.

Als neu beschrieben wird eine Nauphoeta-Spezies; im Anschluß daran

werden die Unterschiede der Gattungen Nauphoeta und Panchlora

erörtert.

— (3). A new cavernicolous cockroach. — Ann. a. Mag. Nat.

Hist. ser. 8., Vol. VI., 1910, p. 114—116, 4 figg. — Beschreibung von

Alluaudella cavernicola n.gen. n.spec., einer höhlenbewohnenden

Blattide (Subfam. Corydiinae) aus den Kulumusi-Höhlen bei Tanga,

Deutsch-Ostafrika, welche durch fein behaarte Deckflügel und Flügel,

radiale Anordnung der Flügeladern und die Reduktion des Anal-

feldes der Flügel ausgezeichnet ist.

— (4). Orthoptera, Fam. Blattidae, Subfam. Epilamprinae in:

Wytsman, Genera Insectorum, 101. Fascicule. 1910, 21 pgs. 2 pls.

— (5). Orthoptera, Fam. Blattidae, Subfam. Blattinae (= Peri-

planetinae). — Ibid. 109. Fascicule. 1910. 27 pgs., 2 pls.

Die Gattungen werden kurz charakterisiert, die zugehörigen

Arten mit Angabe des Ortes der Originalbeschreibung und der geo-

graphischen Verbreitung aufgeführt. Neu aufgestellt werden die

Gattungen Morphna und Audreia; neue Arten werden beschrieben

in den Gattungen Molytria, Homalopteryz, Ataxigamia, Audreia,

Pseudophoraspis, Pelmatosilpha, Dorylaea, Stylopyga, Blatta und

Homalosilpha. (Cf. Referat von N. v. Adelung in: Zool. Zentralt].

17, 1910, p. 405—407.)

Sjöstedt, Wngve. Beiträge zur Kenntnis der Insektenfauna von

Kamerun. No. 31. Acridiodea.. — Entom. Tidskr. 31, 1910, p. 1—9.

— ‚Betr. ein schon 1890/92 im nordwestlichen Kamerun gesammeltes,

sehr umfangreiches (1400 Exemplare) Acrididenmaterial, welches

190 Insecta. : Ortboptera für 1910

32 Arten repräsentiert. Neu beschrieben wird Coptacra anguliflava

Karsch 1895.

Speiser, P. Der Jahrgang 1907 der ‚Zeitschrift für wissenschaft-

liche Insektenbiologie“‘ und der Name Myrmegryllius dipterus Fiebrig.

— Zool. Annalen Bd. 3, 1910, p. 336—338. — Von den Heften 1—7

des Jahrganges 1907 der „Zeitschrift für wissenschaftliche Insekten-

biologie“ ist ein Neudruck hergestellt worden; in diesem erschien eine

Arbeit von Fiebrig, welche zuerst unter dem Titel: „Eine ameisen-

ähnliche Grille aus Paraguay, Myrmegryllus dipterus n. gen. n. sp.“

gedruckt worden war, plötzlich und ohne Motivierung mit der Ab-

änderung, daß der Name der Grille in Phylloscirtus macilentus Sauss.

umgeändert war. Offenbar ist dies entweder auf Veranlassung des

Verf. oder des Herausgebers geschehen, nachdem man erkannt hatte,

daß die betr. Gryllide schon bekannt war. (Im Bericht für 1907 ist

vom Ref. auf diese merkwürdige Tatsache bereits aufmerksam ge-

' macht worden). Speiser hat nun bei der Abfassung des Index zu dem

Jahrgang 1907 versehentlich einmal die ursprüngliche Ausgabe, ein

anderes Mal den Neudruck zitiert; er korrigiert in der oben genannten

Mitteilung dieses Versehen und legt noch einmal den Sachverhalt

dieser Angelegenheit dar.

Stschelkanovtzeff, J. (1). Zur Kenntnis der Orthopterenfauna

(Orthoptera saltatoria) des Kaukasus. — Arb. a. d. Zool. Kab. d.

Universität Warschau 1909, p. 1—70. (Russisch.) —Ref. v. N. v. Ade-

lung in: Zool. Zentralbl. 18, 1911, p. 440—42.

Die vorliegende Arbeit ist die erste, welche kaukasische Orthopteren

s. str. (Acridiodea, Locustodes« und Gryllodea) zusammenfassend

behandelt, und zwar sowohl auf Grund des im Moskauer Museum

befindlichen Materiales wie auch der in der Literatur vorhandenen

Angaben. Dem Verf. lagen 52 Acridier, 26 Laubheuschrecken- und

5 Grylliden-Arten vor, was mit den schon früher bekannten Arten

83 Acridiodea, 55 Locustodea und 14 Gryllodea ergibt. Die hohe

Zahl der Locustiden erklärt sich daraus, daß die kurzilügeligen

Phaneropteriden (Poecilimon, Isophya etc.) wie auch die Decticiden

besonders reich entwickelt sind. DBeschrieben werden 6 neue Ären

aus den Gattungen Heloscirtus, Orphania, Poecilimon, Isophya sowie

einige neue Subspecies; zahlreiche bekannte Arten sind neu für das

behandelte Gebiet.

Die allgemeinen Ausführungen des Verfs. betreifen Ver-

teilung und Verbreitung der kaukasischen Orthoptera saltatoria. 27%

der kaukasischen Fauna sind im Palaearktikum und darüber hinaus

weit verbreitet. Für die Verbreitung der übrigen Formen nimmt

Verf. drei Zonen an: die boreal-alpine, die alpin-mediterrane und die

mediterrane; zu ersterer gehören 8%, zu letzterer nur 3% der be-

kannten Arten. Innerhalb der alpin-mediterranen Zone wird wiederum

zwischen rein alpinen und solchen Formen, die über das ganze Medi-

terrangebiet verbreitet sind, sowie auch zwischen nordpontischen

und südpontischen Formen unterschieden. Letztere beiden pontischen

Gruppen enthalten 20 %, des Gesamtbestandes und 30 % der eigent-

Publikationen und Referate. 191

lichen Kaukasusfauna, sind also wichtig für die Charakteristik der

Fauna. Eine weitere Gruppe bilden die circumkaspischen Formen

(7 %), ferner sind 2 Formen dem Gebiet von Kaukasus und Krim

und 25 Formen (17%, also ein hoher Prozentsatz), dem Kaukasus

allein eigentümlich (endemisch). Auffallend ist die Zahl der

ungeflügelten Formen in der nordpontischen Gruppe (8 von 12 Arten)

und unter den endemischen kaukasischen Arten (15 von 25); diese

flugunfähigen Formen bilden den Kern der autochthonen Fauna des

Kaukasus und der cireumpontischen Länder überhaupt. Nach An-

sicht des Verf. muß die ihrem Bestande nach zu Europa gehörende

autochthone kaukasische Fauna der Orthoptera saltatoria mit der

nördlichen Hälfte Kleinasiens, dem mittleren und nördlichen Teil

der Balkanhalbinsel sowie dem südlichsten Teil des europäischen

Rußlands zu einer eircumpontischen Provinz vereinigt werden.

— (2). Zur Kenntnis der Gattung Bergiola n. nom. (Bergiella

Schtschelk. 1907) (Orthoptera, Decticidae.) — Rev. Russe d’Entom.

T. 10, 1910, p. 50—52. 1 Textfig.

In Rücksicht darauf, daß der Name Bergiella schon vergeben

ist, hat Verf. denselben in Bergiola umgeändert. Gattung und Art

(balchashica Stschelk.) werden nochmals in deutscher Sprache be-

schrieben, wobei die Diagnose der Gattung etwas abgeändert wurde.

Swinton, A. H. The Vocal and Instrumental Musie of Insects.

— Zoologist, London, Vol. XIII, 1909, p. 17—25, 145—153; vol. IV

1910, p. 299—306 (to be continued). — Die angeführten Teile der

Arbeit behandeln die Lautäußerungen der Orthopteren, von denen

zahlreiche Beispiele aus allen Weltteilen citiert werden. Das ganze

ist mehr eine im populären Plauderton gehaltene Übersicht, der ein

wissenschaftlicher Wert kaum zukommt.

Terry, F. W. Notes on some Insects observed in South China

which are also common in Hawaii. — Proc. Hawaiian Entom. Soc.

Vol.2, 1910, p. 90—92. — (Acridid., Grylld.).

d’Utra, Gustavo. O problema da extingäo dos gafanhotos. — Bol.

de Agricoltura, 11a. Serie, Säo Paulo 1910, p. 3—15, 81—90, 161—170,

320—322. — Verf. gibt zunächst einen Überblick über die bisher in

Argentinien getroffenen Maßnahmen zur Bekämpfung der Wander-

heuschrecken und referiert dann eingehend die Untersuchungen über

künstliche Infektion der Heuschrecken mit parasitischen Pilzen, die

man fast in allen Ländern, in welchen Wanderheuschrecken vor-

kommen, angestellt hat. Sodann werden p. 163 ff. die in Südamerika

vorkommenden sSchistocerca - Arten aufgeführt (mit Verbreitungs-

angaben) und im Anschluß daran die hauptsächlichsten Wander-

heuschreckenarten Nordamerikas und der alten Welt kurz charakteri-

siert. Schließlich wird noch das Thema: tierische Parasiten behandelt

und zum Schluß das Eintreiben in Gräben zur Bekämpfung empfohlen.

Im ganzen also ein Referat über Wanderheuschrecken im Allgemeinen.

Uvarov, B. P. [Contribution & la faune des Orthopteres de la

province de l’Oural.] — Hor. Soc. Ent. Ross. 39, 1910, p. 359—390,

192 Inseeta. Orthoptera für 1910.

7 Textfig. (Russisch, Diagnosen lateinisch.) — Ref. von N. v. Adelung

in: Zool. Zentralbl. 18, 1911, p. 407—408.

„Das Uralgebiet bietet in physiko-geographischer Hinsicht große

Mannigfaltigkeit und zeigt zugleich ein Zusammentreifen europäischer

und asiatischer faunistischer Elemente; das Gebiet ist faunistisch

noch wenig erforscht, und der Plan des Verfs., dessen Orthopteren-

fauna gründlich kennen zu lernen, verspricht, nach dem vorliegenden

Bericht zu urteilen, interessante Resultate. Die früheren Listen von

Eversmann und Kittary werden beträchtlich vervollständigt, so daß

im ganzen 104 Arten für das Gebiet bekannt geworden sind. Am

meisten hat das Ural-Gebiet mit der mittelasiatischen und der medi-

terranen (spec. der turanischen) Fauna gemein (nur die Locustodeen

zeigen mehr Beziehungen zur südrussischen Fauna); dazu kommen

Elemente aus Mittel- und Südrußland. Interessante Daten teilt der

Verf. über die topographische Verbreitung (,‚Stationen‘‘) der einzelnen

Arten mit.“ (Adelung).

Im systematischen Teil der Arbeit werden neue Arten beschrieben

aus den Gattungen Stenobothrus, Acryptera, Epacromia, Xiphidium,

Ceraeocercus (n. gen.) und Platycleis; von Sphingonotus suschkini

wird das @ beschrieben, Derocorys gibbosa wird genauer beschrieben.

Von besonderem Interesse ist das Vorkommen des Acridiers Platy-

pterna tibialis und der Phasmodee Gratidia tuberculata, weil damit

die Verbreitung der Phasmiden bis zu 481/, ® nördl. Br. nachgewiesen ist.

Walker, E. M. The Orthoptera of Western Canada. — Canad.

Entom. 42, 1910, p. 269—276, 293—300, 333—340, 351—356, 3 Fig.

— Verf. gibt in dieser Arbeit eine zusammenfassende Übersicht der

bisher aus West-Canada bekannten Arten, wobei er sich teils auf die

in den letzten Jahren erschienene Literatur, teils auf ein umfassendes,

von ihm selbst bearbeitetes Material von zahlreichen Fundorten stützt.

Im ganzen werden 117 Arten namhaft gemacht. Als neu beschrieben

wird Orchelimum manitobense (Conocephalid.).

Wanach, B. Einige Notizen über Orthopteren und Phasmiden.

— Berl. Ent. Ztschr. Bd. 55, 1910, p. 127—132. — Verf. macht zunächst

einige faunistische Mitteilungen über verschiedene Orthopteren, die

in der Nähe von Potsdam vorkommen, wobei auch biologische Tat-

sachen gestreift werden. Im zweiten Teil seiner Mitteilung werden

Beobachtungen über das Verhalten von Dixippus morosus und Ba-

cillus rossii in Gefangenschait mitgeteilt, welche zum Teil den von

Meissner (vergl. oben!) veröffentlichten widersprechen.

Washburn, F. L. Injurious Insects of 1909 and 1910. — 13. ann.

Rep. State Entom. Minnesota, 1910, 184 pp., 1 pl., 85 Figg. — (Aeridid.)

Webster, R. L. Insects of the Year 1910 in Jowa. — Journ. econ,

Entom. Vol. 3, 1910, p. 502—504. — (Aerididae).

Wendelen, Ch. Destruction des courtilieres, — Terre vaudoise

Ann. 2, 1910, p. 201—202. — (Gryllotalpa).

Werner, Franz (1). Zur Kenntnis der Orthopterenfauna des

Waldviertels. — 20. Jahresber. Ent. Ver. Wien pro 1909 (1910) 8 pp.

— Liste der vom Verf. und anderen Sammlern in dem genannten

Übersicht nach dem Stoft. 193

Gebiet Niederösterreichs (westlich von Manhartsberg und nördlich

von der Donau) erbeuteten Orthopteren, über welche bisher nur wenige

Angaben vorlagen. Eingefügt sind biologische Beobachtungen über

Mantis religiosa (Nahrung, Kannibalismus). Zum Schluß teilt Verf.

einige phaenologische Beobachtungen mit über das erste Auftreten

der Imagines verschiedener Orthopteren bei Plank im Jahre 1909.

— (2). Einige Beobachtungen an Orthopteren und Neuropteren.

— Ztschr. f. wissensch. Insektenbiol. Bd. 6, 1910, p. 267—271. — Verf.

macht zunächst einige Mitteilungen, welche die Zucht von Carausius

(Dixippus) morosus Br. in der Gefangenschaft betreffen (Unempfind-

lichkeit gegen Kälte, Tradescantia als Winterfutter) und erwähnt

dabei auch die Schutz- und Schreckstellung dieser Phasmide. Die

zweite Mitteilung betrifft Beobachtungen über Nahrung, Kopulation,

Eiablage und Kannibalismus von Diestrammena unicolor Br., welche

Verf. eine Zeit lang in Gefangenschaft hielt.

— (3). Une nouvelle espece d’Eremiaphile d’Egypte (Orthopt.)

— Bull. Soc. entom. Egypte Ann. 1909 (1910) p. 200—201.

Wheeler, W. M. The Eifects of Parasitic and other kinds of

Castration in Insects. — Journ. experim. Zool. Vol. 8, 1910, p. 377

—438, 8 Figg. — Behandelt u. a. Grylliden.

Zimmermann, A. Anleitung für die Baumwollkultur in den

Deutschen Kolonien. 2. Auflage, Berlin 1910, Kolonial-Wirtschaft-

liches Komitee. — In dem Schlußkapitel dieser Schrift, welches die

Schädlinge und Krankheiten der Baumwolle behandelt, werden

p. 130—131 auch einige ÖOrthopteren - Arten genannt, welche in

Ägypten, im tropischen Afrika, in Indien und Amerika an Baum-

wolle als Schädlinge auftreten können. Es kommen Aeridier, Locus-

tiden und Gryliiden in Betracht. Für die deutsch - afrikanischen

Kolonien sind besonders von Bedeutung die Wanderheuschrecke

Schvstocerca peregrina Ol. und die „bunte Stinkschrecke‘, Zonocerus

elegans Thunb.

Übersicht nach dem Stoff.

1. Allgemeines.

Katalog der Acrididen: Kirby (1).

Nomenklatur: Caudell (1) (Conocephalus, Xiphidium); Kirby (1) (Acridiodea);

Speiser (‚„Myrmegryllus dipterus‘‘ Fiebrig).

2. Morphologie und Anatomie.

Skelettsystem: Crampton (Thorax der Orth.); Karny (2) (Flügelgeäder der @Grylla-

criden); Prochnow (Stridulationsapparat); Puschnig (Morphologie der

Flügel); Schleip (Bau der Hypodermis bei Dixippus morosus).

Muskulatur: Duesberg (Blattid.).

Nervensystem: Police.

Genitalapparat: Cholodkowsky (Locustodea).

Archiv für Neturgeschichte

1911. V. 1. 13

194 Insecta. Orthoptera für 1910.

Genitalprodukte: Kershaw (Bau der Eikapsel von Hierodula saussurei); Cholod-

kowsky (Spermatophoren der Orth.); Severin, H. H. P. (Struktur des Eies

von Diapheromera femorata.)

3. Physiologie.

Allgemeines: Gadeau de Kerville (Körpergewicht von Mantis religiosa);

La Baume (2) (Geschlechtsreife bei afrikanischen Wanderheuschrecken);

Pospjelow (Geschlechtsreife bei Orth.); Regen (Wirkung der Kastration

auf andere Körperteile und das biologische Verhalten von @ryllus cam-

pestris); Schleip (Physiologie des Farbenwechsels, Einwirkung von Licht-

reizen auf die Bewegungen von Dixzippus morosus); Wanach (Gewicht und

Rauminhalt der Eier von Bacillusund Dixippus); Werner (2) (Unempfindlich-

keit gegen Kälte bei Dixippus morosus); Wheeler (Kastration und Wirkung

derselben bei G@rylliden).

Autotomie, Regeneration: Megusar (1) (Fang-, Schreit- und Sprungbeine der

Orthopt.).

Parthenogenesis: Green (1) (bei Pulchriphyllium).

Pigment, Färbung: Karny (1) (Psophus stridulus); Meissner (2) (Bacillus rossit);

(3, 4) (Dixippus morosus); Schleip (Färbung und Farbenwechsel bei Dixippus

morosus).

Funktion: (Cholodkowsky (Spermatophoren der Orihopteren); La Baume (2),

Pospjelow (der Geschlechtsdrüsen imaginaler Orthopteren); Schleip (des

Pigmentes bei Dixippus morosus).

Einwirkung von Außenfaktoren: Howard (Einfluß der Feuchtigkeit auf das

Ausschlüpfen der Eier von Pachytilus sulcicollis); Howard, La Baume (2)

(Einfluß der Witterung auf Entwicklung und Lebensweise der Wander-

heuschrecken); Megusar (2) (Einfluß von Licht, Temperatur, Feuchtigkeit,

Trockenheit auf @ryllus campestris bei Aufzucht in Gefangenschaft); Se-

verin, H. H. P. und H. €. (Einfluß von Feuchtigkeit und Trockenheit auf

das Ausschlüpfen der Eier von Diapheromera femorata).

4. Entwicklung.

Allgemeines: Hammerschmidt (Embryonalentwicklung, insbesondere Entwicklung

des Mitteldarmes von Dixippus morosus).

Chromosomen: Brunelli (2) (Gryllus desertus).

Spermatogenesis: Brunelli (1, 3) (Truxalis); Granata (Pamphagus marmoratus

Burm.).

Postembryonal-Entwicklung: Boy (Wanderheuschrecken Argentiniens); Green (3)

(Pulchriphyllium); Howard (Pachytilus suleicollis und Acridium septem-

jasciatum); La Baume (2) (afrikan. Wanderheuschrecken); Meissner (2)

(Bacillus rossü), (3, 4) (Dixippus morosus); Pospjelow (imaginale Diapause

bei Pachytilus, Oedipoda, Acridium); Seeretaria da Agricoltura (Wander-

heuschrecken Argentiniens).

5. Biologie, Ethologie.

Örtliehes Vorkommen: Allard (1) (Locustid. und Gryllid. in Nord-Georgia);

(2) (Orth. in New England); (4) (Conocephalus); (5) Conocephalus fuscostriatus);

Caudell (2) (Xiphidion allardi); Ebner (1) (Celes variabilis var. subcoerulei-

Übersicht nach dem Stoff. 195

pennis); (3) (Orth. bei Guntramsdorf, Niederösterreich); Froggatt (Wander-

heuschrecken in Australien); Hancock (1) (Tettigiden auf Ceylon); Howard

(Pachytilus suleicollis und Acridium septemfasciatum in Südafrika); Krausse

(Mantis religiosa in Sardinien); La Baume (I) (Barbitistes constrictus Br.);

(2) (afrikanische Wanderheuschrecken); Lounsbury (Wanderheuschrecken

in Südafrika); Ludwig (Barbitistes constrictus in Nonnenrevieren, Die-

strammena in Gartenkulturen); Megusar (1) (Troglophilus neglectus Kr. in

Krain, @ryllus campestris in Niederösterreich); Meorstatt (Schistocerca pere-

grina in Deutsch-Ostafrika); Puschnig (Orthopteren Kärntens); Shelford (3)

(höhlenbewohnende Blattide aus Deutsch-Ostafrika); Wanach (Orth. bei

Potsdam); Werner (1) (Orthopteren des ‚„Waldviertels‘‘ in Niederösterreich).

Zeitliches Vorkommen: Allard (1) (Locustid. und Gryllid. in Nord Georgia);

(5) (Conocephalus fusco-striatus); Hebard (Orth. in Connecticut); Howard

(Pachytilus suleicollis und Acridium septemfasciatum in geflügeltenSchwärmen

und als Larven); Puschnig (Orth. Kärntens); Werner (1) (erstes Auftreten

von Imagines im ‚Waldviertel‘, Niederösterreich).

Lebensgewohnheiten: Allard (1) (Locustid. und Gryllid. in Nord-Georgia);

(2) (Orth. in New-England); (5) (Conocephalus fusco-striatus); Boy (Wander-

heuschrecken Argentiniens); Dufour (Gryllid. vom Licht angelockt); Froggatt

(Wanderheuschrecken Australiens und anderer Länder); Hancock (1) (wasser-

bewohnende und andere Tettigiden-Arten Ceylons); Handlirsch (1) (Lebens-

weise fossiler Orthopteren); Howard (Pachytilus suleicollis und Acridium

septemfasciatum in Südafrika); Kheil (Bacillus rossii); La Baume (1) (Barbi-

tistes constrictus); (2%) (afrikanische Wanderheuschrecken); Lounsbury (1)

(Wanderheuschrecken Südafrikas); Megusar (1) (Troglophilus neglectus

in Krain, Gryllus campestris in Nieder-Österreich); Morstatt (Schistocerca

peregrina); Noel (1) (Blattid.); (2) (Gryllotalpa); Seeretaria da Agricoltura

(Wanderheuschrecken in Argentinien); Wanaech (Orth. bei Potsdam); Werner

(2) (Diestrammena unicolor).

Nahrung: La Baume (1) (Barbitistes constrictus); Ludwig (Barbitistes constrictus

und Diestrammena); Meissner (2) (Bacillus rossit); (3, 4) (Dixippus morosus);

Werner (1) (Mantis religiosa); (2) (Dizippus morosus, Diestrammena unicolor).

Stridulation, Lautäußerung: Allard (1) (Zocustid. und Gryllid. in Nord-Georgia);

(2) (Orth. in New-England); (3) (bei Arten der Gattungen Scudderia, Ambly-

corypha, Microcentrum, Cyrtophyllus); (4) (bei Conocephalus); (5) (Cono-

cephalus fusco-striatus); Caudell (2) (Xiphidion allardi); Ebner (3) (bei Mant'is

religiosa); &reen (2) (indische Locustide); Swinten (bei Orthopteren).

Flug, Wanderung: Froggatt (Wanderheuschrecken Australiens); Howard

(Wanderheuschrecken in Südafrika); La Baume (2) (afrikanische Wander-

heuschrecken); Lounsbury (1) (Wanderheuschrecken in Südafrika); Seeretaria

da Agricoltura (Wanderheuschrecken in Argentinien).

Überwinterung: La Baume (2) (bei Pachytilus suleicollis, Acridium septemfasciatum,

Schistocerca peregrina).

Schutzfärbung: Berenguier (1) (Orth.); Ebner (3) (Orth. von Guntramsdorf);

Krausse (Mantis religiosa).

Verteidigungsmittel: Berenguier (1) (bei Orth.); Ebner (3) (bei Orth.); Werner (2)

(Schreckstellung bei Dixippus morosus).

13*

196 Insecta. Orthoptera für 1910.

Mimikry: Pieron ( Dixippus morosus); Pocock (Ameisenähnlichkeit von Mantiden-

Larven; Phyllium-Larven als Nachahmer von Hemipteren und Käfern in

Ceylon); Schleip (Dixippus morosus); Severin, H. H. P. (Ähnlichkeit von

Phasmiden-Eiern mit Pflanzensamen).

Körperhaltung: Pieron, Schleip (Schutz- und Ruhestellung bei Dixippus morosus);

Werner (2) (Schutz- und Schreckstellung bei Dixippus morosus).

Instinkt, Psychologie: Ebner (3) (Verhalten bei Gefahr); Kershaw (Anfertigung

des Eipaketes bei Hierodula saussurei); Pieron (psycholog. Verhalten von

Dixippus morosus); Regen (Verhalten kastrierter @ryllus campestris);

Schleip (Dixippus morosus).

Geschlechtsleben: Kershaw (Kopulation bei Hierodula saussurei); Regen (Ge-

schlechtsleben kastrierter Gryllus campestris); Werner (2) (Kopulation von

Diestrammena unicolor).

Eiablage: Daecke, Ent. News 21, 1910, p. 49 (abnorme Eiablage bei Melanoplus

punctulatus Scudd.); Howard (Pachytilus suleicollis, Acridium septem-

fasciatum); La Baume (2) (afrikan. Wanderheuschrecken); Lounsbury (1)

(Wanderheuschrecken in Südafrika); Meissner (1) (Dixippus morosus,

Bacillus rossi); Secretaria da Agricoltura (Wanderheuschrecken in Ar-

gentinien); Werner (2) (Diestrammena unicolor).

Natürliche Feinde: Froggatt (Parasiten bei Wanderheuschrecken); Janicki

(Darmparasiten bei Blatta orientalis); Kershaw (Parasiten der Eikapsel

von Hierodula saussurei); La Baume (2) (von afrikanischen Wander-

heuschrecken); Lounsbury (Wanderheuschrecken Südafrikas); Lüderwaldt

(Wanderheuschrecke von einer Sphegide in ihren Bau eingetragen); d’Utra

(Parasiten von Wanderheuschrecken).

Aufzucht in Gefangenschaft: Be£renguier (3) (Bacillus gallicus); Löffler (Dixippus

morosus); Megusar (1) (Blatta, Dixippus, Mantis, Stenobothrus, Troglo-

philus, Gryllus); (%) (Gryllus campestris), Meissner (2) (Bacillus rossii);

(3, 4) (Dixippus morosus); Rudow (Dixippus morosus); Schleip (Dizippus

morosus); Wanach (Bacillus, Dixippus); Werner (2) (Dixippus morosus,

Diestrammena unicolor).

Nutzen: La Baume (1), Ludwig (?.Barbitestes constrietus Br.).

Schaden: Bolivar (1) (Colemania sphenarioides in Indien); Boy (Wanderheu-

schrecken in Argentinien); Convergue (Caloptenus italicus als Gartenschädling);

French (Blaitiden in Häusern); Froggatt (Wanderheuschrecken Australiens

und anderer Länder); @. H. €. (Wanderheuschrecken in Südafrika); Ho-

ward (Pachytilus suleicollis und Acridium septemfasciatum in Südafrika);

La Baume (2) (afrikanische Wanderheuschrecken); Lounsbury (1, 2)

Heuschrecken in Südafrika); Ludwig (Diestrammena in Gartenkulturen);

Matsumura (1,2) (Orthopteren an Zuckerrohr und anderen Kulturpflanzen

in Formosa); Morstatt (Schistocerca peregrina in Deutsch-Ostafrika); Rosen-

feld (1) (Blattid.), (2) (Blattiden in Luisiana); Seeretaria da Agricoltura

(Wanderheuschrecken in Argentinen); Washburn (Acrididen in Minnesota);

Webster (Acridid. in Jowa); Zimmermann (Orth. als Baumwollschädlinge).

Bekämpfung: Boy; Froggatt; G. H. €.; Howard; La Baume (2); Lounsbury

(1,2); Morstatt; Seeretaria da Agricoltura (vergl. unter Schaden); außer-

dem: Fuller (Wanderheuschrecken in Natal); van Rynefeld (Pachytilus

suleicollis in der Kapkolonie); Wendelen (Gryllotalpa).

wa rc |

Faunistik. 197

6. Variabilität, Ätiologie.

Variabilität: Dohrn (Phasmiden); Ebner (4) (Acrydium); Puschnig (Orth.

Kärntens); Rehn (2) (Gryllus bermudensis Caudell); Rehn-Hebard (4) (Orth.

von Nord-Carolina); Schleip (Dixippus morosus).

Aetiologie: Pieron, Schleip (Ursachen des periodischen Wechsels zwischen

Aktivität und Unbeweglichkeit bei Dixippus morosus); Schleip (Ursache

des Farbenwechsels bei Dixippus morosus). |

7. Paläontologie.

Bolton (fossil. Blattid. Archimylacris); Handlirsch (1, 2) (Lebensweise fossiler

Orthopteren, Vorkommen von Riesenformen, Bedeutung für die Geologie); (3) (Pro-

mastax); Sellards (Blattid. aus dem Karbon und Perm von Kansas, U. S. A.);

Shelferd (1) (Blattid. aus dem Oligocän von ÖOstpreussen).

Faunistik.

Palaearktische Region.

Burr (Synopsis der westeuropäischen Orth.); Kirby (1) (Katalog der Acri-

diden).

Westeuropa: Burr (Synopsis der Orth.).

England: Kirby (2) (Phasmide, eingeschleppt in Devonshire); Lucas (Orth.);

Meyrick (1,2, 3) (Orth. von Marlborough und Wiltshire).

Frankreich: Abot (Orth. der Umgebung von Angers); d’Arenberg (Bacillus

gallicus im Departement Cher); @elin (Zocustid. von Westfrankreich); Lam-

bertie (1, 2) (Mantis religiosa); Letocq (Gryllus burdigalensis Latr.); Rimpsky-

Korsakow (Orth. von Villefranche).

Spanien: Naväs (2) (Orth. aus Catalonien und von Mallorca).

Österreich: Ebner (1) (Orth. aus Niederösterreich, vom Neusiedlersee und

aus Tirol); Puschnig (Orth. Kärntens); Werner (1) (Orth. aus Niederösterreich).

Deutschland: La Baume (I) (Barbitistes constrictus Br.); Ramme (Chryso-

chraon dispar bei Berlin); Wanach (Orth. aus der Umgebung von Potsdam).

Rußland: Miram (Platycleis roeselii macroptera im Gouv. Petersburg); Uvarov

(Orth. des Uralgebietes); Kuthy (2,3) (Locustid. des Kaukasus); Stschel-

kanovzeff (1) (Orth. saltatoria des Kaukasus); (2) (Bergiola vom Balkasch-

see); Adelung (Orth. aus Transkaspien und aus der Buchara).

Persien: Adelung (Orih).; Hancock (2) (Tettigid.).

Chinesisch-Turkestan, Mandschurei: Adelung (Orth.).

Europäische Türkei: Ebner (2) (Orthopt. aus Albanien, Macedonien,

aus der Umgebung von Konstantinopel).

Aegypten: Werner (3) (EZremiaphila).

Marokko: La Baume (2) (Wanderheuschrecken); Naväs (1) (Acridid.).

Äthiopische Region.

Kirby (1) (Katalog der Acridid.); Giglio-Tos (1) (Phasmid.); (2) (Calido-

mantis); (3) (Plistospilota, Polyspilota, Prohierodula); (4) (Tarachodes); (5)

(Galepsus); Hancock (2) (Tettigid.); La Baume (2) (Wanderheuschrecken).

198 Insecta. Orthoptera für 1910.

Niger-Gebiet: Hancock (2) (Teitigid.). — Kamerun: Bolivar (2) (Gryllid.);

Sjöstedt (Acridid.); Hancock (2) (Tettigid.. — Spanisch-Guinea:

Bolivar (2) (Gryllid.). — Britisch-Ostafrika: Bruner (1) (Acridid.).

— Deutsch-Ostafrika: Meorstatt (Schistocerca peregrina); Shelford

(3) (Blattid... — Rhodesia: Hancock (2) (Tettigid.),. — Deutsch-

Südwestafrika: Karny (2) (Orth. s. str). — Kapkolonie:

Karny (2) (Orth. s. str... — Britisch-Betschuanaland: Karny

(2) (Orth. s. str.).. — Südafrika: Lounsbury (Pachytilus suleicollis und

Acridium septemfasciatum). — Comoren: Bruner (I) (Acridid.).

Madagaskar: Bruner (1) (Acridid.); Griffini (3) (Gryllacris).

Indo-malayische Region.

Kirby (Katalog der Acridid.); Giglio-Tos (1) (Phasmid.).

Indien: Bolivar (1) (Colemania n. gen.); Shelford (4, 5) (Blattid.); Hancock (1)

(Tettigid. von Ceylon. — Süd-China: Terry (Acrid., Gryllid.). —

Formosa: Matsumura (1, 2) (Acridid., Gryllid.). — Tonkin: Shelford (4)

(Pseudophoraspis); (5) (Homalosilpha). — Malacca: Hancock (2) (Tetti-

gid.). — Borneo: Dohrn (Phasmid.). — Amboina, Java, Nias,

Sipora: Griffini (4) (Gryllacris). — Sangir: Pohrn (Phasmid.).

Australische Region.

Kirby (1) (Katalog der Acrididen); Giglio-Tos (1) (Phasmid.).

Talaut Islands: Shelford (5) (Dorylaea).. — Neu-Guinea: Kuthy (I)

(LZocustid.). — Australien: Giglio-Tos (3) (Sphodropoda); Shelford (4)

(Molytria, Ataxigamia). — Salomons-Inseln: Shelford (5) (Stylo-

pyga). — Hawaii: Kirkaldy, Ent. News 21, 1910, p. 48 (T’enodera sinensis);

Perkins (Orth. Suppl.).; Terry (Acridid., Gryllid..,. — Neuseeland:

Hudson (Gryllid.). — Nauru Island: Froggatt (2) (Blattid.).

Nearktische Region.

Kirby (1) (Katalog der Acridid.).

Kanada: Rehn (4) (Orth.); (6) (Orth. aus Alberta und Saskatschewan); Walker

(Orth. aus West Kanada).

Vereinigte Staaten: Rehn, Ent. News 21, 1910, p. 337 (Verbreitung

von Eotettix); Rehn-Hebard (2) (/schnoptera); Allard (1) (Locustid. und

Gryllid. in Nord-Georgia); (%) (Orth. von New-England); (4) (Conocephalus-

Arten von Georgia, Washington, Maryland und Massachusetts); (5) (Cono-

cephalus fusco-striatus in Nord-Georgia); Rehn (3, 6) (Orth. aus Idaho);

Rehn and Hebard (1) ( Blattid. aus Florida); (3) (Orth. aus Georgia und Florida);

(4) (Orth. aus Nord-Carolina); Hebard (Orth. aus Connecticut).

Bermuda-Inseln: Rehn (2) (Orth.).

Neotropische Region.

Kirby (1) (Katalog der Acridid.); Bruner (2) (Tettigid.); Giglio-Tos (1)

(Phasmid.).

Westindien: Shelford (2) (Blattid.). — Porto Rico, CulebraIls-

land, Vieques-Island: Rehn (I) (Orth... — Ecuador: Dohrn

Systematik. 199

(Phasmid.). — Peru: Bruner (5) (Acidid.). — Surinam: Rehn (5) (Try-

bliophorus). — Britisch Guyana: Caudell (3) (Mantid.). — Fran-

zösisch Guyana: Chopard (1) (Thespis); (2) (Zoolea). — Bra-

silien: Dohrn (Phasmid.); Shelford (5) (Pelmatosilpha). — Paraguay:

Bruner (3) (Acridid.).

Systematik.

1. Blattodea.

Alluaudella n. gen. Corydiinarum; A. cavernicola n.sp. (Tanga, D. O. Afrika)

Shelford (3).

+Archimylacris (Etoblattina) Woodwardi n. sp. aus dem Karbon von Süd-Wales:

Bolton.

Ataxigamia bicolor n. sp. (Süd-Australien) Shelford (4).

Aüdreia n. gen. nahe Calolampra; A. pulchra (Nilghiris), catharina (Brasilien)

n. spp. Shelford (4).

Blatta speciosa n. sp. (Indien). Shelford (5).

Blattinae (= Periplanetinae), Bestimmungstabelle, Systematik, Charakteristik

der Gattungen: Shelford (5).

tCeratinoptera soror, cruenta, klebsi n.spp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Dorylaea unicolor n. sp. (Talaut Island) Shelford (5).

+Ectobius inclusus n. sp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Epilampra wheeleri n. sp. (Porto Rico). Rehn (1).

Epilamprinae, Bestimmungstabelle und Charakteristik der Gattungen: Shel-

ford (4).

Eroblatta n. gen. Blattinarum; Type E. borneensis Shelford 1908: Shelferd (5).

tBEtoblattinae vergl. Archimylacris.

7Holocompsa fossilis n. sp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Homalopteryx maindroni n. sp. (Malabar). Shelford (4).

Homalosilpha gaudens n. sp. (Tonkin). Shelford (5).

Ischnoptera, Bestimmungstabelle und Revision der nordamerikanischen Arten;

— I. notha, insolita n. spp. (Nordamerika). Rehn und Hebard (2).

t/schnoptera klebsi, perplexa n.spp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Molytria perplexa n. sp. (Victoria). Shelford (4).

Morphna gen. nov. Epilamprinarum. Shelford (4).

Nauphoeta und Panchlora, Unterschied der beiden Gattungen: Shelford (2).

Nauphoeta kükenthali n. sp. (Loanga bei St. Thomas). Shelford (2).

1Nyetibora (?) succinica n. sp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Panchlora smaragdina Br. (= vitellina Gerst.) und P. adusta Gerst. aus West-

afrika gehören zu Nauphoeta: Shelford (2).

Pelmatosilphae convexa n. sp. (Brasilien) Shelford (5).

Periplanetinae cf. Blattinae.

1Phyllodromia Lorenz-Meyeri, Germari, yolanda, antiqua, latissima, tentacula,

Klebsi, furcifera, baltica, pristina n. spp. (Oligocän von Ostpreußen); Bestim-

stimmungstabelle für diese Arten: Shelford (1).

1Polyphaga fossilis n. sp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

Pseudophoraspis fruhstorferi n. sp. (Tonkin). Shelford (4).

200 Insecta. Orthoptera für 1910.

Shelfordella n. gen. für Periplaneta tartara Sauss.; Beschreibung von $ und 9

(Transkaspien, Buchara, Persien); Sh. tartara var. zarudnyi n. var. (Persien);

Shelfordella (?) ahngeri n. sp. (Transkaspien) Adelung.

Stylopyga orientalis var. gracilis n. var. (Buchara). Adelung.

Stylopyga salomonis n.sp. (Salomons-Inseln). Shelford (5).

tTemnopteryx klebsi n. sp. (Oligocän von Ostpreußen). Shelford (1).

2. Mantodea.

Mantodea: Giglio-Tos (2, 3, 4), Revision der Gruppen Calidomantis Rehn (= Mio-

mantis Sauss.), Polyspilota, Tarachodes, Galepsus.

Calidomantis Rehn (= Miomantis Sauss.), Charakteristik der Gattung, Be-

stimmungstabelle der Arten; ©. Griffinii (Fernando Po), misana (West-

afrika), exilis (D. S.W. Afrika), minuta (Kapland), mombassica, Brunni,

ornata (Ostafrika), sigiana, tangana, umsambarica, montana, cinnabarina,

aurantiaca, sangarana, lacualis, amanica, irrorata (Deutsch-Ostafrika),

kibweziana (Britisch-Ostafrika), abyssinica (Abessinien), Büttneri, binotata

(trop. Afrika) n. spp. Giglio-Tos (2).

Eremiaphila andresi n. sp. (Ägypten). Werner (3).

Galepsus Stäl, Revision der Gattung, Bestimmungstabelle der Arten; @. nyassensis,

toganus, dubius, femoratus, gracilis, Feae, konakrynus, affinis, zambesicus,

diversus, erythraeus, Pentheri, damaranus, minutus, Büttneri, Gestri n. spp.

(trop. Afrika) Giglio-Tos (5).

Miomantis Sauss. ef. Calidomantis. — M. armicollis Karsch = Plistospilota;

Beschreibung des $ (Spanisch Guinea) Giglio-Tos (3).

Plistospilota n. gen.; species typica Polyspilota validissima Gerst.; Bestimmungs-

tabelle der Arten; P. lolodorfana, tristis, Westwoodi (Kamerun), misana

(Togo) n. spp. Giglio-Tos (3).

Polyspilota cf. Plistospilota. — Pol. Burm., Charakteristik der Gattung, Be-

stimmungstabelle der Arten; P. magna (Kap der guten Hoffnung), P. comorana

(Comoren), Griffinii (S. Thome) n. spp. Giglio-Tos (3). — P. aeruginosa Goeze

var. seychelliana, P. caffra Westw. var. transvaaliana n. varr. Giglio-Tos (3).

— P. picta Gerst., flavipennis Karsch, laticollis Karsch gehören zu Pro-

hierodula Bol. Giglio-Tos (3). — P. truncatipennis Karsch = Plistospilota.

Giglio-Tos (3).

Prohierodula Bol. (Typus Polyspilota picta Gerst.), Bestimmungstabelle der

Arten; P. mundamensis n.sp. (Kamerun). 6iglio-Tos (3).

Sphodropoda moesta n. sp. (Australien). Giglio-Tos (3).

Tarachodes Burm., Revision der Gattung, Bestimmungstabelle der Arten; 7. bi-

cornis, taboranus, Griffinii, griseus, Werneri, inermis, tananus, Karnyi,

Saussurei, orienlalis, Feae, okahandjanus, kilwezianus, nyassanus, kilwanus

n. spp. (tropisches Afrika). Giglio-Tos (4).

Tenodera limbalicollis Karsch ist eine Calidomantis Rehn (Miomantis Sauss.).

Giglio-Tos (2).

Thespis Lemoulti, maxima n. spp. (Französisch Guayana). Chopard (1).

Zoolea multilobata n. sp. (Franz. Guayana). Chopard (2).

3. Phasmodea.

Abrachia Borellii n. sp. (Brasilien). Giglio-Tos (1).

Abrosoma bispinosum n. sp. (Sumatra). Dohrn.

Systematik. 201

Acanthoclonia punana, papallacta n. spp. (Ecuador). Giglio-Tos (1).

Anisomorpha urucumana n. sp. (Brasilien). Giglio-Tos (1).

Apora laetior Brunner, Variabilität. Dohrn.

Aruanoidea seriata Redt. Beschreibung des 9; A. balighena n. sp. (Sumatra).

Giglio-Tos (1).

Bacteria aborigena (patria ignota), pichisina (Peru) n. spp. Gigli-Tos (1).

Bostra ibaguena n. sp. (Columbia). Giglio-Tos (1).

Carausius baumei n. sp. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Clitumnus dentatus Br. = Bacillus rossii Fabr. Giglio-Tos (1).

Damasippus Hahneli n.sp. (Alto Amazonas, Chanchamayo). Dohrn.

Eurymnecroscia n. gen.; E. festiva n. sp. (Borneo). Dohrn.

Graeffea integra n. sp. (Amboina). Giglio-Tos (1).

Gratidia congensis (Congo), massauensis (Abessinien, Erythraea), minuta (Uganda),

propinqua (patria ignota) n. spp. Giglio-Tos (1); — @. tuberculata, Vorkommen

im Ural. Uvarov.

Heteropteryx Gray, Revision der zugehörigen Arten: Dohrn.

Leprocaulus lobulatus n. sp. (Java). Giglio-Tos (1).

Lopaphus Westw., kritische Bemerkungen über diesen Genusnamen; L. (Necroscia)

zeuxis Westw. gehört zu Orzines. Dohrn.

Marmessoidea unicolor Redt., Beschreibung des 9. Giglio-Tos (1).

Menexenus polyacanthus n. sp. (Insel Sangir). Dohrn.

Nearchus Redtenbacheri n. sp. (Borneo). Dohrn.

Necroscia mentaweiana n. sp. (Mentawei). Giglio-Tos (1).

Obrimus cavernosus Stäl und O. lacerta Redt., Variabilität, Artberechtigung.

Dohrn.

Ocnophila Festae, zamorana (Ecuador), Mainerii (Peru) n.spp. Giglio-Tos (1).

Oxyartes lamellatus Kirby identisch mit O. spinulosus Redt. $ und O. honestus

Redt. 9; Ergänzung der Beschreibung des 3: Dohrn.

Parabacillus n. gen. Bacillinorum; P. femoratus n. sp. (Transvaal). v. Schulthess-

Rechberg.

Parabrosoma n. gen. nahe Abrosoma; P. bigibbum n. sp. (Sumatra). Giglio-Tos (1).

Paramenexenus teres n. sp. (Sumatra). Giglio-Tos (1).

Paramyronides fictus Redt. gehört zu Parasipyloidea. Giglio-Tos (1).

Periphetes sangirensis n. sp. (Insel Sangir). Dohrn.

Phryganistria Plateni n. sp. (Insel Sangir). ' Dohrn.

Presbitus asymmetricus n. sp. (Sumatra). Giglio-Tos (1).

Prisopus occipitalis n. sp. (Ecuador). Dohrn.

Pseudophasma Bolivari n. sp. (Peru). &iglio-Tos (1).

Sipyloidea fontanesina (Caleutta), sibogana (Siboga), enganensis (Engano) n. spp.

Giglio-Tos (1).

Syringodes Bonarellii n. sp (Borneo). Giglio-Tos (1).

4. Acridiodea.

Acmophyllum Karsch, Bestimmungstabelle der Arten; excavatum n. sp. (Kamerun).

Hancock (2).

Acrotylus diana n. sp. (Südafrika). Karny (2); — A. aberrans n. sp. (Madagascar).

Bruner (1).

Acrydium bipunctatum L. var. explicatum n. var. (Österreich). Ebner (3).

202 Insecta. Orthoptera für 1910.

Acryptera elegans n.sp. (Ural). Uvarov.

Adelotettix obscurus n. sp. (Peru). Bruner (5).

Agkistropleuron n. gen. Tetrigidarum; A. simplex n. sp. (Madagaskar). Bruner (1).

Allotettix Hancock, Synopsis der Arten; A. fuscipennis, chapadensis n. SPP.

(Brasilien). Bruner (2).

Amorphopus Serv., Synopsis der Arten: Bruner (2).

Apteropedon gen. nov. nahe Batrachidea u. Tettigidea; A. apicale n.sp. (Rio

de Janeiro). Bruner (2).

Atractomorpha madacassis n. sp. (Madagascar). Bruner (I).

Batrachidea Serv., Synopsis der Species: Bruner (2).

Bibracte (?) malagassa n. sp. (Madagascar). Bruner (Il).

Bufonacridella n. gen. Oedipodidarum; B. sumakovi n.sp. (Transkaspien).

Adelung.

Caloptenus > plagiatus n. sp. (Britisch Ost-Afrika). Bruner (1).

Caprorhinus squamipennis n. sp. (Comoren). Bruner (1).

Catantops baumei n. sp. (Südwestafrika). Karny (2).

Celes variabiles var. subcoeruleipennis Charp., Vorkommen, Verbreitung. Ebner (1).

Charilaus curvicollis n. sp. (Südafrika). Karny (2).

Choriphyllum Serv., Synopsis der Arten: Bruner (2).

Chortophaga australior n. sp. (Georgia). Rehn and Hebard (3).

Cladonotae, Sectio Tetriginarum, Bestimmungstabelle der afrikanischen Genera.

Hancock (2).

Colemania n. gen. nahe Orthacris und Siphenarium (Pyrgomorphid.); C. sphe-

narioides n. sp. (Indien). Bolivar (1).

Coptacra anguliflava Karsch, Neubeschreibung. Sjöstedt.

Coptotettix Bol., Bestimmungstabelle der Arten; C. convexzus n. sp. (N. O. Rho-

desia). Hancock (2).

Cota Bolivar, Synopsis der Arten. Bruner (2).

Derocorys gibbosa (= D. fumeipennis), Beschreibung. Uvarov.

Diponthus, Bestimmungstabelle der Arten; — D. crassus n. sp. (Paraguay).

Bruner (3).

Epacromia viridis n. sp. (Ural). Uvarov.

Eremobiella n. gen. Eremobidarum; E. Helenae n. sp. (Transvaal). v. Schulthess-

Rechberg.

Euparatettix pulvillus n. sp. (Malacca). Hancock (2).

Euprepocnemis brachypterus, smaragdipes n. spp. (Madagascar, Comoren).

Bruner (1).

Euryphymus curvipes var. marginellus, vylderi var. tibialis n. varr. (Deutsch-

Südwestafrika). Karny (2).

Gladiotettic Hancock, Bestimmungstabelle der Arten; GI. unicrista Hancock,

Beschreibung; @l. kancocki n. sp. (Brasilien). Bruner (2).

Gymnobothrus, Bestimmungstabelle der Arten; @. madacassus, variabilis n. Spp.

(Madagascar, Comoren, Ostafrika). Bruner (1).

Gymnohippus n. gen. nahe Gymnidium Karsch; Bestimmungstabelle der Arten;

G. marmoratus, conspersipes, granulosus n. spp. (Madagascar). Bruner (1).

Helioscirtus tichomirovi n. sp. (Kaukasus). Stschelkanovizeff.

Hybotettix hancocki n. sp. (Madagascar). Bruner (1).

Hypsaeus angulatus n. sp. (Kamerun). Hancock (2).

Systematik. 203

Lentula minor n.sp. (Britisch Ostafrika). Bruner (1).

Leptocirtus herero n. sp. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Lophoscirtus n. gen. nahe Tettigidea und Batrachidea; Type Tettigidea gracilis

Bruner 1900 (Paraguay). Bruner (2).

Lophotettix n. gen. verwandt mit Tefrix und Teitigidea; L. lineatus n. sp.

(Brasilien). Bruner (2).

Medinophyllum n. gen. Tettiginarum; Typus Acmophyllum xzerophylloides Bol.

Hancock (2).

Micronotus Hancock, Synopsis der Arten; M. hancocki n. sp. (Trinidad).

Bruner (2).

Microtmethis n. gen. Oedopodidarum; M. kuthyi (Deutsch - Südwestafrika).

Karny (2).

Ommatolampis, Bestimmungstabelle der Arten; O. corruganota, lignicola, eburni-

frons, peruviana n.spp. (Peru). Bruner (5).

Orphula gracilicornis n. sp. (Paraguay). Bruner (3).

Otumba Morse, Synopsis der Arten; O. peruviana (Peru), basalis (Brasilien) n. spp.;

O. lobata Hancock (Britisch Guiana) Beschreibung. Bruner (2).

Otumba, Bestimmungstabelle der Arten; O. peruviana n. sp. (Peru). Bruner (5).

Oxya annulicornis n. sp. (Formosa). Matsumura (2).

Pamphagella n. gen. Pamphagidarum; P. comoroensis n. sp. (Comoren). Bruner (1).

Paraduronia n. gen. Truxalidarum nahe duronia; P. platypternoides n. sp. (Kala-

hari). Karny (2).

Paragymnobothrus n. gen. Truxalidarum; P. rectus, angulatus n. spp. (Südafrika).

Karny (2).

Parascopas, Bestimmungstabelle der Arten; P. sanguineus n. sp. (Paraguay).

Bruner (3).

Paratettix pictus n.sp. (N. O. Rhodesia). Hancock (2).

Parathericles minutus n. sp. (Transvaal). v. Schulthess-Rechberg.

Penichrotes alatus n. sp. (Madagascar). Bruner (1).

Penichrotes carinicrus n. sp. (Transvaal). v. Schulthess- Rechberg.

Phyliotettix Hancock, Synopsis der Arten: Bruner (2).

Platypterna tibialis, Vorkommen im Ural-Gebiet: Uvarov.

Platytettic Hancock, Tabelle der Arten; Pl. gibbinotus, uniformis n. spp. (Bra-

silien). Bruner (2).

Pnorisa angulata n. sp. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Podisma Prossenii n. spec. (Kärnten). Puschnig.

Poecilocloeus n. gen. nahe Annicerris und Zosperamerus; P. ornatus n. sp. (Peru).

Bruner (5).

1Promastax archaicus n. gen. n. sp. (Britisch Columbia). Handlirsch (3).

Prototettix bucculentus n. sp. (N. O. Rhodesia). Hancock (2).

Psophus stridulus var. Ebneri n. var. (Wien). Karny (1).

Pseudobufonacris n. gen. nahe Eremopachys und Bufonacris; Ps. mendax n. sp.

(Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Pseudogmothela n. gen. Truxalidarum nahe Ogmothela Karsch; Ps. rehni n. sp.

(Südafrika). Karny (2).

Pyenodictya herero n.sp. (Südafrika). Karny (2).

Racilia okinawensis n. sp. (Formosa). Matsumura (2).

204 Insecta.- Orthoptera für 1910.

Rhopalotettix n. gen. ähnlich Rhynchotettix Hancock; Rh. clavipes n. sp. (Sumatra).

Hancock (2).

Rhynchotettix hancocki n. sp. (Madagascar). Bruner (1).

Rhytidichrota peruviana n. sp. (Peru). Bruner (5).

Scabrotettix Hancock, Synopsis der Arten. Bruner (2).

Scaria Bolivar, Synopsis der Species. Bruner (2).

Sclerotettix n. gen. nahe Crimisus und Metrodora; Bestimmungstabelle der Arten;

S. abbreviatus, tibialis, variegatus, infuscatus, minor n. spp. (Brasilien).

Bruner (2).

Shelfordites n. gen. Oedipodidarum; Sh. aberrans n. sp. (Südafrika). Karny (2).

Sitalces albipennis n. sp. (Peru). Bruner (5).

Spadotettix n. gen. verwandt mit Tetrix; Sp. fletcheri n. sp. (Ceylon). Hancock (I).

Sphingonotus suschkini, Beschreibung des 9 (Ural). Uvarov.

Stauronotus tartarus Saus. (nom. nud.) Beschreibung. Stschelkanovizeff (1).

Staurotylus n. gen. Pamphagidarum nahe Ocnerodes; St. mandshuricus n. SP.

(Mandschurei). Adelung.

Stenobothrus formosanus n.sp. (Formosa). Matsumura (2); — karelini n. sp.

(Ural). Uvarov.

Symbellia nigromaculata, pallidafrons n. spp. (Comoren). Bruner (I); — cürea,

stigmatica, conspersa, pumila, stigmatica (Deutsch-Südwestafrika), punctu-

lata, fusca (Südafrika) n. spp. Karny (2).

Systolederus anomalus n. sp. (Ceylon). Hancock (1).

Tetrigidae, Bestimmungstabelle der südamerikanischen Unterfamilien und

Gattungen: Bruner (2).

Tetrix nanus n.sp. (Madagascar). Bruner (1).

Tettigidea Scudder, Synopsis der Species; T. annulipes, gracilicornis, chapa-

densis, hancocki, australis, intermedia, costalis, subaptera, arcuata, corrugata

n. spp. (Brasilien). Bruner (2)..

Thisoicetrus sjöstedti n. sp. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Trilophidia minor n. sp. (Insel Pemba). Bruner (1).

Trimerotropis arenaceus n. sp. (Idaho, U. S. A.). Rehn (3).

Tropidauchen cultricollis Sauss., Beschreibung. Adelung.

Trybliophorus Serville, Charakteristik der Gattung, Bestimmungstabelle der

Arten; T. peruvianus n. sp. (Peru). Bruner (4, 5); — T. elegans n. sp. (Suri-

nam). Rehn (5).

Xerophyllum Fairm., Bestimmungstabelle der Arten; X. extensum (N. O. Rho-

desia), crisiifrons (Niger), neavei (N. O. Rhodesia) n. spp. Hancock (?).

Xiphidiopteron n. gen. nahe Alenas und Annicerris, X. inaequalis n. sp. (Peru).

Bruner (5).

Zosperamerus albopictus n. sp. (Peru). Bruner (5).

5. Locustodea.

Acanthoplus longipes var. pallescens n. var. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Acanthoproctus coronatus n. sp. (Deutsch-Südwestafrika). Karny (2).

Barbitistes constrictus Br., Neubeschreibung, Vorkommen in Deutschland, Lebens-

weise. La Baume (Il).

Bergiola n. nom. für Bergiella Stschelk. 1907; B. balchashica Stschelk. 1907,

Neubeschreibung. Stschelkanowzew (2). .

Systematik. 205

Brachymetopa discolor Redt. ist eine Varietät von Br. blackburni de B. Perkins.

Bradyporus mocsaryi n. sp. (Kaukasus). Kuthy (3).

Ceraeocercus n. gen. zwischen Drymadusa und Paradrymadusa; C. fuscipennis

n. sp. (Ural). Uvarov.

Dectinomima n. gen. Conocephalidarum; D. jenningsi n. sp. (Panama). Caudell (1).

Ephippigerida cunii Bol. var. monticola n. var. Naväs (2).

Eremus namaqua n. sp. (Britisch Südwestafrika). Karny (2).

Gampsocleis ussuriensis .n. sp. (Ussurien). Adelung.

Griffiniana n. gen. Mecopodinarum; G. pedestris n. sp. (Deutsch-Südwestafrika).

Karny (2).

Gryllacris Serv., Bestimmungstabelle, Literatur, geographische Verbreitung

der Species hyalino-fasciatae und fumigatae. Griffini (1); — atrata Walk.

(Sarawak), venosa Walk. (Sarawak), gracilis Walk. (Indien), macrocera

Walk. (Neu-Hebriden), punctipennis Walk. (Batchian), marginata Walk.

(Sarawak), Neubeschreibung: Griffini (2); @r. scita Walk. = frontalis Burm.,

vittata Brunner = gracilis Walk.; lugubris Brunner = nobilis Walk., fumosa

Walk. = nigrilabris Gerst., piceifrons Walk. = heros Gerst. (= fuscifrons

Walk. nec Gerst.), aurantiaca Brunner = punctipennis subsp. Dempwolffi

Griffini = punctipennis Walk. Griffini (2); — @ryllacris Serv., Bestimmungs-

tabelle der Arten von Madagaskar und den benachbarten Inseln: Griffini (3);

— modiglianii n.sp.; brachyptera subsp. montana, aethiops Br. subsp. si-

rambeica, sexpunctata subsp. laterimarginalis, subsp. Elii n. subspp.; ın-

conspicua var. Fleischeri n. var.; Gr. inconspicua Br. Beschreibung des 2

(Sumatra und benachbarte Inseln). Griffini (4).

Huona n. gen. nahe Diaphlebus Karsch; H. variegata n. sp. (Neu Guinea).

Kuthy (1).

Isophya adelungi n.sp. (Kaukasus). Stschelkanovtzefi (1).

Maxentius Stäl, dispositio specierum; M. Kuhlgatzi n. sp. (Deutsch-Südwest-

afrika). Karny (2).

Orchelimum manitobense n. sp. (West-Kanada). Walker.

Orphania zacharovi n.sp. (Kaukasus). Stschelkanovtzeff (1).

Pantolepta Karsch, dispositio specierum; P. stylifera, vosseleri, calaharica, morsei

n. spp. (Deutsch-Südwestafrika und Kalahari). Karny (2).

Paradrymadusa werneri n.sp. (Persien). Adelung.

Platycleis dubia n.sp. (Ural). Uvarov.

Poecilimon distinctus, geoktschaicus, zavadskii n.spp.; P. schmidti zoloarewi,

flavescens tereckensis n. subspp. (Kaukasus). Stschelkanovizefi (1).

Redtenbacheriella n. gen. Mecopodinarum; R. maculata n. sp. (Deutsch-Südwest-

afrika). Karny (2).

Salomona vittata, bicolor n. sp. (Neu-Guinea). Kuthy (1).

Tamolana n. gen. nahe Coptaspis Redtenbacher; T. fulvida n. sp. (Neu-Guinea).

Kuthy (1).

Xiphidion allardi n. sp. (Georgia). Caudell (2); — X. dorsale var. burri n. var.

(makroptere Form). Ebner (3); — X. brevicaudatum n. sp. (Ural). Uvarov.

6. Gryllodea.

Acheta schultzei (Betschuanaland), braueri (Deutsch-Südwestafrika) n. spp.

Karny (2).

206 Insecta. Orthoptera für 1910.

Acrophonus n. gen. Gryllodeorum; A. humeralis n. sp. (Spanisch - Guinea).

Bolivar (2).

Alluaudiella Bolivar 1893 = Ganoblemmus Karsch 1893; A. flavopicta Bol. =

@G. rasilis Karsch. Bolivar (2).

Anaxiphus pallidulus n. sp. (Formosa). Matsumura (2).

Aphonomorphus diadematus n. sp. (Spanisch Guinea). Bolivar (2).

Conoblemmus n. gen. Gryllodeorum; ©. saussurei n. sp. (Chinesisch-Turkestan).

Adelung.

Cophogryllus delalandi Sauss. var. brevicauda n. var. (Britisch-Südwestafrika).

Karny (2).

Cyrtoxipha valida, dimidiatipes n. spp. (Spanisch-Guinea). Bolivar (2).

Dolichogryllus n. gen. nahe Calyptotryphus Sauss., D. camerunensis n. sp. (Ka-

merun). Bolivar (2).

Gryllodes cicindeloides, cylindricollis n. spp. (Spanisch-Guinea). Bolivar (2).

Gryllodes kuhlgatzi n. sp. (Südafrika). Karny (2).

Gryliomorpha, Bestimmungstabelle der Arten; @r. albanica n. sp. (Albanien).

Ebner (2).

Gymnogryllus castaneus n. sp.; @. caviceps Karsch Beschreibung des $ (Spanisch-

Guinea). Bolivar (2).

Gymnogryllus calaharicus, testaceus n. spp. (Betschuanaland). Karny (2).

Heterotrypus succineus n. sp. (Spanisch-Guinea). Bolivar (2).

Leptogryllus cylindricus, apicalis, deceptor n. spp. (Hawaii). Perkins.

Liogryllus formosanus n. sp. (Formosa). Matsumura (2).

Loxoblemmus Escalerai n. sp. (Spanisch-Guinea, Kamerun). Bolivar (2).

Nemobius minutus n. sp. (Spanisch-Guinea). Bolivar (2). — palustris aurantius

n. subsp. (Georgia). Rehn u. Hebard (3).

Ornebius meridionalis n. sp. (Britisch-Südwestafrika). Karny (2).

Orthanaudis n. gen. Eneopteridarum; O. nudus n. sp. (Walfisch-Bai). Karny (2).

Pentacentrodes n. gen. nahe Pentacentrus Sauss.; Typus Pentacentrus tenellus

Karsch 1893 (Kamerun, Spanisch-Guinea). Bolivar (2).

Phaeophyllacris velutina, macropus n. spp. (Spanisch-Guinea). Bolivar (2).

Scapsipedus Conradtii (Kamerun), luctuosus (Spanisch-Guinea) n. spp. Bolivar (2).

Tridactylus flavomaculatus n. sp. (Formosa). Matsumura (2).

Trigonidium elegans n.sp. (Kamerun). Bolivar (2).

Xenogryllus eneopteroides Bol. 1889, Beschreibung des 9: Bolivar (2).

Trichoptera für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Banks, Nathan. New South American Neuropteroid insects. Proc.

Entom. Soc. Washington vol. 12 1910 p. 146—160. — Macronema

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n. Sp.

TCockerell, T. D. A. Fossil insects and a Crustacean from Florissant

Colorado. Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. New York N.Y. vol. 28, 25

p. 275—288. — Trichoptera: Derobrochus (1 n. sp.), Indusia (1 n.sp.).

Brauer, A. Die Süßwasserfauna Deutschlands. Heft 5 u. 6.

Trichoptera bearbeitet von Ulmer. (Cf. 286 sub No.8 des Berichts

f. 1909). Ref. von N. v. Adelung, Zool. Zentralblatt, Bd. 17,

p. 415—416.

Eaton, Alfred E. Note on the geographical distribution of certain

Trichoptera. Entom. Monthly Mag. (2) vol. 21 (46) p. 19. — Ein Ver-

treter der C'alomaceratidae von Nicolaijefsk, Amur 16, VII, Helicopsyche

sp. von Neu-Seeland, Chimarrha marginata aus einem kalten Gewässer

bei Hamman Meskroutine, Algier.

Hare, E. J. Some additions to the Perlidae, Neuroptera- Plani-

pennia and Trichoptera of New Zealand. Trans. N. Zealand Inst. vol. 42

1910 p. 29—33. — Hydrobiosis occulta n. sp., H. ingenua n. sp., Hydro-

psyche auricoma n. sp.

Lucas, Robert (1). Trichoptera usw. für 1904. [Jahresbericht]. Arch.

f. Naturg. Berlin Jg.71 Bd.2 Hft.2 1905 [1910] p. 827 sq. = Ber.

Leist. Entom. Berlin 1904 Lfg. 3 [1910] p. 827 sq. = Deutsche Entom.

Zeitschr. Berlin 1905 Hit. 3 Lfg. 3 (1910) p. 827.

— (2). Trichoptera usw. für 1905. [Jahresbericht] op. eit. Jg. 72

Bd. 2 Hit. 2 1910 p. 686 sq. = Ber. Leist. Entom. Berlin 1905 Lief. 3

[1910) p. 686. = Deutsche Entom. Zeitschr. 1906 Lief. 3 p. 686 sq.

— (3). Trichoptera usw. für 1906. [Jahresbericht] op. eit. Jg. 73

Bd. 2 Hft. 2 [1910] p. 40 sq. = Ber. Leist. Entom. Berlin 1906 Lfg. 3

= Deutsche Entom. Zeitschr. 1907 Beihft. Lfg. 3 [1910].

Martynov, A[ndreas] (1). Trichoptera Cn6upa m IpaTbRamaXB

Mm&erHocrei. Yacız Il.) [Les Trichopteres de la Siberie et des regions ad-

jacentes. Ile partie. La sousf. des Brachycentrinae, les fam. des Molanni-

dae, Leptoceridae, Hydropsychidae, Philopotamidae, Polycentropidae,

Psychomyidae, Rhacophilidae et des Hydroptilidae]. Ann. Mus. zool.

Acad. sci. St. Petersbg. T. 15 1910 p. 351—429. — Beschreibt eine Reihe

neuer Arten, die sich folgendermaßen auf die Gatt. verteilen: Oligo-

plectrodes (1), Setodes (1), Aethaloptera (1), Hydropsyche (1), Hyalo-

208 Insecta. Trichoptera für 1910.

psyche (1), Nyctiophilax (1), Psychomyiella (2), Rhyacophila (3),

Padunia (1).

— (2). Kb dayn$ Trichoptera TIerepöyprekof ryoepHiu. [Con-

tributions & la faune des Trichopteres du Gouvernement de St. Peters-

bourg]). Horae Soc. Entom. Ross. T. 39. 1910 p. 256—275.

— (3). Trichoptera Tubera. [Die Trichopteren von Tibet.]

Prot. Obs£. jest. Varsava T.21 1909 p. 33—835. [Auszug aus Martynov,

Les Trichopteres du Thibet oriental. Ann. Mus. zool. Acad. Sci. St.

Petersbg. T. 14. 1909.]

— (4). Die Trichopteren des Kaukasus. Titel siehe p. 282 des

Berichts £. 1904. — Ref. von N. v. Adelung, Zool. Zentralbl.

Bd. 17. p. 246—247.

Morton, J. A new species of Polycentropus (Trichoptera). The

Entomologist vol. 43 p. 3—4, pl. II. — Verf. fand in einer Collektion

von Neuroptera, die Eaton 1905 in den Pyrenaen gefunden hat, einen

noch unbeschriebenen Polycentropus, den er P. intricatus n. sp. nennt.

Die Tafel stellt Details (Abdominalenden der Gatt. P. dar.)

[Reis, O0.] &ayna pbi6HbIixB CIAHIeBB BAa0aHkKalbcKof OÖJACTM.

[Die Binnenfauna der Fischschiefer in Transbaikalien.] Explor. geol.

chemin de fer Siberie. St. Petersbg. T. 29 1910 p. 1—68, deutsch

p. 1—68 Taf. I—V. — Auch Trichoptera.

Russ, E.L. Beiträge zur Kenntnis der Kopfdrüsen der Trichopteren-

larven (Mandibular- und Maxillardrüsen). Arch. zool. exper. Paris

ser.d T.5 1910 (Notes et Revues) p. LXI—LXVII. — Cf. Bericht

F /AUEL.

Ulmer, Georg (1). Über einige von Herrn E. Jacobson auf Java

gesammelte Trichopteren. Notes Leyden Mus. (Jentink) vol. XXXIH

p. 47—66, 14 Abb. im Texte. — Angaben über die einzelnen Lokalitäten:

Wonosobo, Batavia, Pangerango, Semarang und Telaga-Mendjer.

I. das von Herrn Jacobson gesammelte Material: Rhyacophilidae:

Agapetus (1). — Philopotamidae: Chimarrha (1). — Polycentropidae:

Dipseudopsis (1), Ecnomus (1 n. sp.). — Psychomyidae: Psychomiella(1),

Psychomyia (1 n.sp.), Tinodes (1 n. sp.). — Hydropsychidae: Amphi-

psyche (2), Macronema (1), Hydropsyche (1 + 1n.sp.), Hydropsychodes

(1), Hydromanicus (1). — Leptoceridae: Setodes (2). — Sericostomatidae:

@oera (1), Neolepidostoma n.g. (1). — II. Verzeichnis aller bisher

auf Java gefundenen Trichopterenarten (p. 64—66): Rhyac.: Aga-

petus (1). — Hydropt.: Oxyethira (1). — Philopotam.: Chimarrha (1).

— Polycentr.: Polyplectropus (1), Dipseudopsis (1), Ecnomus (1). —

Psychomyidae: Psychomiella (1), Psychomyia (1), Tinodes (1). —

Hydropsych.: Polymorphaniscus (1), Amphipsyche (2), Oestropsyche (1),

Macronema (2), Hydropsyche (3), Hydromanicus (4), Hydropsychodes (3),

Diplectrona (1). — Leptocer.: Notanatolica (1), Adicella (1), Setodes (2).

— Üalamocerat.: Asotocerus (2), Ganonema (2), Anisocentropus (1). —

Sericostom.: Goera (1), Neolepidostoma (1).

— (2). Trichoptera [of the Seychelles]. Trans. Linn. Soc. London

Zool. vol. 14 1910 p. 41—54 pls. III u. IV.

Publikationen und Referate, 209

— (3). Über Bernsteintrichopteren. Zool. Anz. Leipzig Bd. 36

1910 p. 449—453. — Hagens Trichopteren des Bernsteins (in Bernedt,

Organische Reste im Bernstein Berlin II p. 93—121, t. VII u. VIII)

ist bisher die erste und letzte Originalarbeit über die Bernstein-

trichopteren überhaupt; die anderen: Hagen Phryg. Synopsis syno-

nymica und Handlirschs Fossile Insekten usw. sind nur Zusammen-

stellungen. Hagen beschrieb damals 27 Spp., die von Ulmer jetzt

unternommene Durcharbeitung ergab mehr als 120 neue Arten, so

daß die Bernsteinfauna jetzt 152 Spp. enthält, die sich auf 56 Gattungen

verteilen. Die detaillierte Beschreibung der Formen soll in den Beitr.

zur Naturk. Preußens der Physik. Ökon. Gesellsch. zu Königsberg i. Pr.

erfolgen. Hier nur eine kurze Zusammenstellung der Endresultate:

1. Von den Gatt. der Bernsteintrichopteren sind 26 nur im Bernstein

gefunden worden, also neu, 30 sind auch in rezenten Faunen vorhanden.

Keine einzige Trichopterenform des Bernsteins hat sich bis auf die

Gegenwart erhalten. — 2. Die höchste Zahl der Gatt. (17) weisen die

Sericostomatidae auf, die größte Artenzahl (67) die Polycentropidae,

die auch an Stückzahl am reichlichsten bekannt sind, etwa 1400 von

2066 überhaupt beschriebenen Stücken. Am artenreichsten ist N ycto-

phylax (22 Spp.), Plectrocnemia (18), Holocentropus (16), Archaeotinodes

n.g. (13), Phryganea (7); die übrigen Gatt. enthalten nur wenige

Arten, viele nur eine. — 3. Die häufigsten im Bernstein vertretenen

Gatt. sind: Plectrocnemia (676 Stück), Holocentropus (585), Lype (287),

Dolophilus (79), N yctiophylax (75), Phryganea (60), Archaeotinodes (53),

Phylocentropus (38); alle anderen Gattungen sind höchst selten.

Plectrocnemia und Holocentropus umfassen mit ihren 1261 schon drei

Fünftel der ganzen Fauna, so daß für die übrigen Gatt. nur zwei Fünftel

bleiben. — 4. Die häufigsten Spp. sind: Plectroenemia lata Piet. (316 St.),

Holocentropus incertus Pict. (300), Lype sericea Piet. (281), Plectroenemia

barbata Pict. (251); alle anderen Arten bleiben unter 100, die Mehrzahl

sogar unter 10. Die genannten vier Arten können als Charaktertiere

der Bernsteintrichopteren betrachtet werden. — 5. Im Bernstein

finden sich sämtliche Familien, mit Ausnahme der Limnophilidae;

von Unterfamilien fehlen nur die Hydrobiosinae, Macronematinae

und Sericostomatinae. — 6. Auffallend ist das Fehlen der Limnophrlidae

(in der rezenten Fauna mit 25,61 pCt. vertreten). Es sind Kaltwasser-

tiere und daher dem wärmeren Klima des Bernsteinlandes abgeneigt!

— 7. Der Untergang des Bernsteinwaldes war auch den Polycentropidae

verderblich (im Bernstein 44,08 pCt., jetzt 6,09 pCt... — 8. Die

Triehopterenfauna des Bernsteins war nicht rein mitteleuropäisch,

europäisch oder eurasiatisch ; sie setzte sich zusammen aus eurasiatischen

und nearktischen Elementen, durchsetzt von südamerikanischen und

südasiatischen Formen mit subtropischem Charakter. Von den 30 Gatt.

des Bernsteins, die.bis auf die Jetztzeit erhalten sind, sind 17 dem

eurasiatischen und nearktischen Gebiete gemeinsam, 6 rein eurasiatisch,

2 rein nearktisch, 1 nearktisch auch in Südamerika und Indien, 2 bis

in das tropische und subtropische Gebiet hinein verbreitet; 8 Arten sind

nicht europäisch.h Von den 56 Bernsteingattungen sind: 1. rein

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 1. 14

210 Inseeta. Trichoptera für 1910.

eurasiatisch 10 Gatt., 15 Spp.; 2. rein nearktisch: 4 Gatt., 8 Spp.;

3. eurasiatisch und (oder) nearktisch, meist noch in anderen Gebieten

vertreten: 33 Gatt., 115 Spp.; 4. weder eurasiatisch, noch nearktisch,

sondern südamerikanisch und südasiatisch: 9 Gatt., 14 Spp. — Merk-

male einer gemäßigten Zone der Bernsteinfauna: 1. Macronematinae

fehlen, 2. Phryganeidae vorhanden, 3. mehrere Gatt. sind auch in der

Jetztzeit auf gemäßigte Gebiete beschränkt. — Merkmale einer

tropischen Fauna: 1. u. 2. Limnophilidae und Sericostomatidae fehlen,

3. u. 4. Zahl der Rhyacophila-Spp. und Philopotamus-Spp. gering,

5. mehrere Gatt. sind in der Jetztzeit nur oder fast ausschließlich

tropisch. — 9. Die Trichopterenfauna des Bernsteins war schon ebenso

hochentwickelt wie die rezente. Die Bernstein-Trichopteren sind also

nicht die Ahnen der jetzt lebenden Formen. — 10. Die Entwickelung

aller Arten des Bernsteins muß im Wasser vor sich gegangen sein

(Larven und Gehäuse sind nicht gefunden worden.). Der Bernsteinwald

enthielt nicht nur stehende, sondern auch stärker bewegte Gewässer,

worauf eine Anzahl von Gattungen deutet. — 10. Die jetzt geltende

Anschauung über das System der Bernsteintrichopteren wird durch die

Bernsteinfunde im allgemeinen bestätigt.

Wesenberg-Lund, €. (1). Notizen aus dem biologischen Süßwasser-

laboratorium Frederiksdal bei Lyngby (Dänemark). IV. Über tropfende

Laichmassen. Intern. Rev. ges. Hydrobiol. u. Hydrographie. Leipzig,

Bd. II No. 3 1909 p. 869—871. — Trichopterenlaiche (wahrscheinlich

von Glyphotaelius), die massenhaft an über dem Wasserspiegel

hängenden Zweigen festgeklebt waren. Die erste Entwicklung geht

in der Luft vonstatten. Haben die Larven eine hinreichende Entwicklung

hinter sich, verlieren die Gallertmassen allmählich ihre Konsistenz.

Beim nächsten Regen fällt der Laich mit den Larven tropfenweise

ins Wasser. — Ähnliches wird von Atherix [Dipt.| und einigen Laub-

fröschen berichtet.

— (2). Über die Biologie von @lyphotaelius punctatolineatus Retz.

nebst Bemerkungen über das freilebende Puppenstadium der Wasser-

insekten. op. eit. Bd. III p. 93—114, 1 Taf.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberichte: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Morphologie, Anatomie.

Kopfdrüsen: (Mandibular- u. Maxillardrüsen) der Trichopterenlarven: Ruß.

Biologie.

Tropfende Laichmassen : Wesenberg-Lund. — Biologie von Glyphotaelius punc-

tatolineatus: Wesenberg-Lund. ;

Verwandtsehaft usw.

Verwandtschaft und System : Ulmer (Zool. Anz. Bd. 36 p. 452: Im allgemeinen

deckt sich die jetzige Anschauung über das System der T’richoptera mit den Bern-

Faunistik. 211

steinfunden. Beachtenswert ist: die Ecnominae (mit Ecnomus u. Archaeotinodes

n. g.) gehören nicht zu den Polycentropidae, sondern eher zu den Psychomyidae,

mit denen die Hydropsychidae sehr nahe verwandt sind. — Die Beraeinae sind von

den Molanninae zu trennen u. den Sericostomatidae näher zu stellen. Die Molan-

ninae sind älter als die Leptoceridae, sie sind gleichsam Odontoceridae mit costal-

wärts verschobener Flügelnervatur. Die Limnophilidae stehen den Phryganeidae

nahe. Die Apatanvinae leiten zu den Goerinae u. Lepidostomatidae über. Die Serico-

stomatinae, Brachycentrinae, Helicopsychinae u. einige Gattungen incertae sedis

gehören nicht in die gleiche Reihe mit den Goerinae u. Lepidostomatinae; eine

einheitliche Familie Sericostomatidae gibt es nicht. Die Unterfamilien dieser

vermeintlichen Familie leiten sich von anderen Familien ab — die Goerinae u.

Lepidostomatinae von den Limnophilidae, die Sericostomatidae wahrscheinlich

von den Calamoceratidae, die Brachycentrinae von den Phryganeidae und die

Helicopsychinae von den Leptoceridae.).

Faunistik.

Geographische Verbreitung einiger Arten: Eaton.

Inselwelt.

Neu-Seeland; Hare (Zusätze). — Seychellen: Ulmer (6 neue Spp., 1 neue

Gatt.).

Palaearktisches Gebiet.

Sibirien und Mongolei: Martynov (1) (Oligoplectrodes 1 n. sp., Setodes 1 n. sp.,

Aethaloptera 1 n.sp., Hydropsyche 1 n.sp., Hyalopsyche 1 n.sp., Nictiophylax

In.sp., Psychomyiella 2 n.spp., Rhyacophila 3 n.spp., Padunia 1 n.sp.).

Europa.

Deutschland : Brauer.

Großbritannien: Cumberland: Porritt (Naturalist 1910 p.29). —

Malham, Yorksh.: Porritt (Tinodes Entom. Monthly Mag. (2) vol. 21 (46)

p- 192). — Stalham: Porritt, G. T. (Entom. Monthly Mae. ser. 2 v. 21 (46)

p- 162: Phryganea striata, Glyphotaelius pellucidus, Agrypnia pagetana u. Limno-

philus xanthodes; Limnophilus marmoratus u. Molanna angustata).

Frankreich: Laruns (Polycentropus n. sp.).

Pyrenäen: Morton (Polycentropus n. sp.).

Rußland: Gouvernement St. Petersburg: Martynov (Horae

Soc. Entom. Ross. T. 39 p. 256—275).

Asien.

Asien: Martynov (Prot. Obsc. jest. vol. 21 1909 p. 33—35). — Sibirien

und angrenzende Gebiete: Martynov (Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 351-429

mit 67 Textfig. II. Teil [russisch u. engl.). — Tibet: Martynov (Prot. Ob$£. jest.

vol. 21 1909 p. 33—35). — Malayischer Archipel: Java: Ulmer (Trichoptera,

diverse neue Spp). — Batavia, Pangerano, Semarang,

Telaga-Mendjer u Semarang, Samarang: Ulmer (Lage dieser

Orte. Notes Leyden Mus. vol. 32 p. 48).

14*

912 Insecta. Trichoptera für 1910.

Afrika.

Algier: Eaton (Chimarrha marginata. Entom. Monthly Mag. (2) vol. 46

p. 19). — Madagaskar: Seychellen siehe unter Inselwelt.

Amerika.

Südamerika: Banks (neue Spp.).

Palaeontologie.

Trichoptera der Fischschiefer von Transbaikalien: Reis, Explor. g&ol. chem.

de fer Siberie St. Petersbg. T. 29 1910 p. 39—40, pl. II fig. 23. — Trichoptera

von Florissant, Colorado : Cockerell.

Systematik.

Rezente Formen.

Aethaloptera rossica n. sp. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 385 fig. 27

—30 [russisch u. englisch] (Ussuri-Gebiet u. Südsibirien).

Agapetus sp. aus Java, die Gatt. war bisher aus Java nicht bekannt, nächster

Fundort: Ceylon (A. rudis Hag.) Ulmer, Notes Leyden Mus. Vol. XXXII

p- 48.

Amphipsyche meridiana Ulmer auf Java, Batavia. Ulmer, Notes Leyden Mus.

vol. XXXII p. 55. — proluta MeLachl. von Wonosobo, Java. Im Vflgl.

auch die zweite Endgabel gestielt p. 56.

Brachycentrus subnubilus. Übergänge zu albescens. [Russisch.] Martynov, Horae

Soc. Entom. Rcss. T. 39 p. 256sq.

Calamoceratide ($) von Nicolaijefsk, Amur, 16. VII. Eaton, Alfr. E., Entom.

Monthly Mag. (2) v. 21 (46) p. 19.

Chimarrha concolor Ulm. auf Java. Wonosobo, Telaga Mendjer. Ulmer, Notes

Leyden Mus. vol. XXXII p. 49. — Ch. marginata in einem kalten Gewässer

bei Hamman Meskroutine, Algier. Eaton, Alfr. E., Entom. Monthly Mag.

(2) vol. 21 (46) p. 19.

Cyrnodes n. g. Polycentropid. Ulmer, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 46 (Seychellen).

Dipseudopsis infuscata McL. von Batavia, bisher aus Borneo u. Celebes bek.

Unterschiede von stellata. Eingehende Beschreibung des Spornes u. seiner

Endklauen (Fig. 1a u. b) beider Spp. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXII

p- 50.

Ecnomus insularis n.sp. Ulmer, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 46 (Seychellen). —

obtusus n. sp. (Färbung wie E. tenellus Ramb.) Ulmer, Notes Leyden Mus.

vol. XXXII p. 50—51 $ (Java: Semarang) Details Fig. 2, 3.

Goera conclusa Ulm. von Pangerango, Java. Ergänzende Beschr., da bei der

Type 1 2 mit anormalerweise geschlossener Discoidalzelle vorlag. Details

Fig. 10 u. 11. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. 32 p. 58.

Glossoma nylanderi Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 427 (Fluß In-

aguska). [Russisch.]

Glyphotaelius punctolineatus. Biologie. Wesenberg-Lund, Intern. Rev. Hydrobiol.

Bd. 3 p. 93—114, 1 Taf.

Helicopsyche sp. von Neu-Seeland. Eaton, Alfr. E., Entom. Monthly Mag. (2)

vol. 21 (46) p. 19.

Systematik. 213

Holocentropus pieicornis Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 403 (Mongolei)

[[Russisch.]

Hydrobiosis occulta n. sp. Hare, Trans. New Zealand Inst. vol. 42 p. 32. — ingenua

n. sp. p. 33 (beide aus Neu-Seeland).

Hughscottiella n.g. Odontocerid. Ulmer, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 5l. —

auricapilla n. sp. p. 52 (Seychellen).

Hyalopsyche sachalinica n. sp. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 397

fig. 35—38 (Sachalin). [Russisch u. englische Diagnose. ]

Hydromanicus fasciatus Ulm. auf Java: Wonosobo; Philippinen. Ulmer, Notes

Leyden Mus. vol. XXXII p.58. — H. seychellensis von Mahe. Ulmer,

Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 47.

Hydropsyche annulata Ulm. auf Java: Telaga Mendjer, Pangerango, Wonosobo,

Semarang. Ergänzende morpholog. Bemerk. Ulmer, Notes Leyden Mus.

vol. XXXII p. 56. — globosa n. sp. p. 56—58 3? Details (Wonosobo). —

H. nevae Beschreib. [russ., engl... Martynov, Ann. Mus. St. Pötersbg. T. 15

p- 391. — ornatula p. 392 (Ost-Sibirien). — ecekanovskii n. sp. p. 393 fig. 31

—34 (Süd- u. Ost-Sibirien) [russische u. englische Diagnose]. — H. auri-

coma n.sp. Hare, Trans. New Zealand Inst. vol. 23 p. 32 (Neu-Seeland).

Hydropsychodes sp. von Semarang, Java; dunkel, wahrscheinl. nicht H. Kraepelini

Ulm. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXIl p. 58.

Leptocella pulchella n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 160

(Columbia).

Leptocerus. Martynov charakterisiert [russisch] in Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15

folg. Spp.: fulvus p. 370. — perplexus p. 371 fig. 19—20. (Ost-Sibirien). —

— annulicornis var. parvulus n. p. 372. — sibiricus excisus p. 373 (Ost-

Sibirien).

Leptodermatopteryx n. g. Odontocerid. Ulmer, Trans. Linn. Soc. London vol. 14

p- 49. — tenuis n. sp. p. 49 (Seychellen).

Macronema fastosum Walk. auf Java, Wonosobo. Dunkle Mittellinie im Vflgl.

sehr deutlich. Apex nur schwach oder kaum gedunkelt (var. fasciatum Albarda)

Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 56. — M. fraterna n.sp. Banks,

Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 159 (Guiana).

Molanneria subgen. nov. von Molanna. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15

p- 366 (russische u. englische Diagnose).

Neolepidostoma n.g. Lepidostom. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXII

p. 60—62. — Jacobsoni n. sp. p. 62—64 $ Details Fig. 12—14 (Tangerango,

Java).

' Nyetiophilax angarensis n.sp. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 404

fig. 39—43 (Tunguska) [russische u. englische Diagnose].

Oligoplectrodes potanini n. sp. Martynov, t. c. p. 356 fig. 3—8 [russ. u. engl. Diagn.].

Padunia n.g. Hydroptilid. Martynov, t.c. p. 425 fig. 66—67. — adelungi

n. sp. p. 426 (Fluß Tunguska) [russische u. engl. Diagnose].

Petrotrichia n.g. H ydroptilid. Ulmer, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 43. —

palpis n. sp. p. 44 (Seychellen).

Philorheithous n. g. (Type: agilis Huds.) Hare, Trans. New Zealand Inst. vol. 42

p-. 32.

Polycentropus intricatus n. sp. (gleicht in Gestalt, Form u. Größe den übrigen

Formen; abweichend sind die Genitalanhänge). Morton, The Entomologist,

214 Insecta. Mecoptera (= Panorpatae) für 1910.

vol. 43 p. 3—4 Abb. der Abd. - Spitze pl. II fig. 1-3. Abb. der Abdom.-

Spitzen von P. kingi MeLachl. Fig. 4, P. excisus Klap. Fig. 5, P. multiguttatus

Curt. Fig. 6 u. flavomaculatus Piet. Fig. 7. — P. colombiensis n. sp. Banks,

Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 160 (Colombia).

Psychomia capillata n.sp. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 52—54

Details Fig. 4—6 (Java, Wonosobo; die Gatt. war bisher aus Java nicht bek.).

Psychomiella composita n. sp. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 480

fig. 44—50. — minima n. sp. p. 411 fig. 51—54 (beide vom Fluß Tunguska)

[russische u. engl. Diagnosen]. — sp. von Wonosobo auf Java, bisher von

d. Insel nicht bek. Nächster Fundort Japan. Ulmer, Notes Leyden Mus.

vol. XXXII p. 52.

Rhyacophila angulata n.sp. Martynov, Ann. Mus. St. Petersbg. T. 15 p. 414

fig. 55—56 (Altai). — lenae n. sp. p. 417 fig. 57—59 (Lenafluß). — depressa

n.sp. p. 420 fig. 60—64 (Transbaikalien) [russ. u. engl. Diagnosen].

Setodes brunnea Ulm. von Wonosobo, Java. Ulmer, Not. Leyden Mus. vol. XXXII

p. 58. — sp. von Tangerango, Java, hellgefärbtes Stück p. 58. — pulcher

n.sp. Martynow, Ann. Mus. St. Petersbg. 9. 15 p. 379 fig. 23—26 (Ost-

sibirien) [russ. u. engl. Diagnose].

Stenopsyche griseipennis Martynov, t.c. p. 397 (Süd-Ussuri).

Tinodes flavopunctata n.sp. Ulmer, Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 54—55

&® Details Fig. 7 (Semarang, Java; bisher aus Java nicht bekannt).

Triaenodes reuteri Beschreib. Martynov, Ann. Mus. St. Pötersbg. T. 15 p. 376

fig. 21 (Ostsibirien). — conspersa subsp. jakuiana n. p. 377 fig. 22 [russische

u. englische Diagnosen).

Fossile Formen.

1.Derobrochus typharum n. sp. Cockerell, Bull. Amer. Mus. vol. 28 p. 275 (Miozän

von Colorado).

tIndusa cypridis n. sp. Cockerell, t. c. p. 276 fig. 1 (Miozän von Colorado).

Mecoptera (= Panorpatae) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Enderlein, Günther. Über die Phylogerie und Klassifikation

der Mecopteren, unter Berücksichtigung der fossilen Formen. Zool.

Anz. Bd. 35 p. 385—399. Mit 3 Fig. — Die fossilen Formen lassen

sich durchaus in das System der rezenten Formen einfügen und stellen

keine besonders altertümlichen Formen dar. Wir finden vielmehr unter

Publikationen und Referate. 215

unseren heutigen lebenden Gattungen viel ursprünglicher und alter-

tümlicher organisierte Formen. Dies gilt nicht bloß für die Conioptery-

giden und Copeognathen, sondern auch für die Mecopteren. Daß

Handlirsch die fossilen Gattungen als besondere Familie auffaßt, sei

dadurch verständlich, daß er bei den fossilen und rezenten Formen die

gleichen Adern verschieden benannte. Durch solche Ader-

verschiebungen und verkehrte Betrachtung der Flügel seien Irrtümer

ganz erklärlich. Beachtenswert ist der Stammbaum. Die gemeinsame

Wurzel aller Gatt. endigt in Merope, die jedoch auf tiefer Stufe stehen

geblieben, nachdem sich zuvor die Gattungen Chorista und Notho-

thauma abgezweigt haben. Viel früher haben sich jedoch die mächtigen

Zweige abgesondert, deren einer in Leptopanorpa, deren anderer in

Bittacus endigt. Der Leptopanorpa-Zweig entsandte schon frühzeitig

die fossilen Gattungen Orthophlebia und Mesopanorpa, dann nach-

einander die Gattungen Panorpa, Aulops, Campodoteenum u. Himan-

turella einerseits und Panorpodes und Boreus andererseits. Aus dem

Bittacus-Zweige trennt sich schon zeitig die fossile Gatt. Pseudo-

polycentropus ab, später nach der anderen Richtung hin die Gatt.

Neorthophlebia (ebenfalls fossil), Harpobittacus und Apterobittacus. —

Sollten die Figg. Handlirschs auf Taf. 42 Fig. 28 u. 29 von Ortho-

phlebioides reticulata (Handl.) u. O. latipennis (Handl.) richtig sein,

und ist der vordere Cubitalstamm cu, wirklich bis zur Basis von der

Media bei beiden getrennt, so müssen beide Vorderflügel sein, und dann

sind beide abgebildete Arten liasische Vertreter unserer rezenten Gatt.

Panorpa (P. retic. und P. latip.). Für diesen letzteren Fall müßte die

letztere Sp. umbenannt werden und schlägt E. den Namen P?. hasina

nom. nov. vor. Hierauf gibt der Verf. (p. 337—389) eine Bestimmungs-

tabelle der rezenten Gattungen der Mecoptera: Panorpidae (Bittacidae

Enderl.) (Meropinae Enderl.), (Panorpinae Enderl.), Chorista Klug,

Merope Newm., Nothiothauma Me L., Panorpa L., Aulopsn. g., Campodo-

tecnum n.g., Leptopanorpa Me Lachl., Himanturella n. g., Panorpodes

McL., Boreus Latr., Harpobittacus Gerst., Bittacus Latr. und Aptero-

bittacus Mac Lachl. Charakt. der einzelnen Unterfam., Gattungen und

neuen Spp. (p. 389—399).

Handlirsch, Ant. Über die Phylogenie und Klassifikation der

Mecopteren. [Betr. G. Enderlein.] Zool. Anz. Bd. 35 1910 p. 671—672.

— Die in der zuvor benannten Publikation Enderleins gemachten

Angriffe sind nach Handlirsch unbegründet und widerspruchsvoll. H.

legt gegen falsche und leichtfertige Deutungen der von ihm für fossile

Insekten errichteten Gattungen, Familien usw. Verwahrung ein.

Enderleins Art der Polemik sei nicht die rechte.

Lucas, Robert. Mecoptera für 1904, 1905 und 1906. Titel siehe unter

Trichoptera.

Lucas, W. 3. British Scorpion-flies. The Entomologist vol. 43

p. 185—189, 1 pl. (IV.). — Systematische und biologische Bemerkungen.

Fundorte und -zeiten in Britannien für P. communis, P. germanica,

P. cognata und Boreus hiemalis. Unterscheidungstabelle der drei

916 Insecta. Mecoptera (= Panorpatae) für 1910.

P.-Arten (p. 188), Abbildungen der genannten Spp. nebst Details auf

pl. IV.

Miyake, Tsunekata (1). A further contribution towards the know-

ledge of the Panorpidae of Japan. Journ. Coll. Agric. Tokyo vol. 2

1910 p. 183—205, pl.

— (2). Nihon shiriage mushimoku ni tsuite. [On the Mecoptera

of Japan.] Dobuts Z. Tokyo vol. 22 1910 p. 563—566.

Morley, Claude. British Scorpionflies. The Entomologist vol. 43

p. 226. — Ergänzende Fundortsangaben zu den vier von Lucas be-

handelten Spp.

Naväs, Longinos (1). Description d’une nouvelle espece de Panor-

pide. Deutsche Entom. Zeitschr. 1910 p. 288. — Panorpa nipalica

n. Sp.

— (2). Catalogue des Panorpides des Collections du Museum.

Bull. Mus. Hist. nat. Paris 1910 p. 526—529.

Porritt, 6. T. Nemoura Meyeri Pict., abundant in March. Entom.

Monthly Mag. s.2 v.21 (46) p.119. — In West- Yorkshire ganz

gemein.

van der Weele, H. W. On Panorpata and Planipennia collected

in Western Java. Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 199—202. — Diese

Ordnungen sind auf Java nur spärlich vertreten. Ihre ökonomische

Bedeutung ist noch geringer als sonst; ihr Auftreten nimmt proportional

ab, je mehr wir im tropischen Gebiete fortschreiten. Panorpata (p. 199

—200): P. Mülleri v.d. Weele 1909, P. nematogaster Mac L. 1909,

Leptopanorpa longicauda v.d. W. 1909.

Übersicht nach dem Stoff.

Katalog der Panorpidae des Mus. Paris: Naväs (Bull. Mus. Hist. Nat. Paris

1910 p. 526—529). — Phylogenie und Einteilung: Enderlein, Handlirsch (weist

Einwände seitens Enderlein ab). — Jahresberichte: Lucas, Robert (für 1904

—1906).

Faunistik.

Europa.

Großbrittanien: Lucas (britische Panorpina).

Asien.

Japan: Miyake (Mecoptera, 6 Gatt., Liste von 40 Arten) [Japanisch], Miyake

(9 neue Arten). — Ostindien: Naväs (Panorpa n.sp.). — Korea: Pjöng-

Young: Enderlein (Bittacus n.sp.). — Malayischer Archipel: Enderlein

(Panorpatae, Campodotecnum n. g., Himanturella n. g.). — West-Java: Enderlein

(Himantura n. sp.), van der Weele (Panorpatae).

Systematik. 217

Systematik.

Rezente Formen.

Panorpidae (Orthophlebiidae Handlirsch p. p.) Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 389.

Hierher die altertümliche Gatt. Meropinae n. mit den Unterfam. Merope

Newm., Notiothauma Mac _L. u. Chorista Kl. (= Euphania Westw.) u. die

zweifellos auch sehr alten Panorpinae mit den Gatt. Panorpa L., Aulops

Enderl., Campodotecnum Enderl., Himanturella Enderl., Leptopanorpa Mac

Lachl., Panorpodes MacL. u. Boreus Latr. sowie die fossilen Gatt. Ortho-

phlebia Westw. u. Mesopanorpa Handl., wahrscheinl. auch Holcorpa Scudd.

1878 des Bernsteins. Orthophlebia u. Mesopanorpa sind interessante Zwischen-

formen zwischen Panorpa u. Merope. Vermutlich ist Mesopanorpa = Ortho-

phlebia, da erstere sich nur durch den 3-ästig. vorderen Ast des Radialramus

von letzterer mit 4—5 gliedr. Ast unterscheidet, eine Erscheinung, die bei

Panorpa sehr variabel ist u. auf beiden Seiten eines Stückes vorkommen kann.

Apterobittacus Mac L. 1893 (Type: A. apterus Mac L. 1871 Kaliforn.) (von Bittacus

verschieden durch das vollständige Fehlen der Flgl. bei beiden Geschlechtern).

Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 398.

Aulops n. g. (Typus: A. alpina Ramb. 1842. Untersch. von Panorpa: Die Sub-

costa mündet wie im Hinterflgl. etwa in der Mitte des Flügelvorderrandes

in die Costa und erreicht so das Pterostigma nicht, das ebenfalls wie im

Hflgl. durch eine Gabelader von S, geschlossen wird. Klauen nur in der

Basis gezähnt. Vorderer Radialgabelast meist 3-ästig [selten 4-ästig]).

Enderlein, t. c. p. 390. — Hierher gehören noch Panorpa caucasica Mac Lachl.

1869 (Kaukasien), P. lugubris Swed. 1787 (Nordamerika). Beim & sind die

Pleuralteile des 2.-5. Abd.-Sgmts. in ziemlich lange dünne, nach hinten

gerichtete Spitzen ausgezogen. Es findet sich hier eine kleine plattenartige

Erweiterung am Hinterrand des 3. Tergiten, die auf einem Höcker des

4. Tergiten ruht. Die Sp. neigt sich also Campodotecuum zu u. steht isoliert

in der Gatt. Aulops. — Es gehört ferner hierher eine Reihe japanischer

Arten: P. japonica Thunb. 1845, P.leucoptera Uhl. 1858, P. klug Mac L.

1867, P. macrogaster Me L. 1867, P. wormaldi Mac L. 1895, P. preyeri McL.

1875, P. lewisi Me L. 1887, P. cornigera Me L. 1887, P. bicornuta Mc L. 1887,

P. ochracea Miyake 1908, P. sinanoensis Miyake 1908, P. rectifasciata Miyake

1908, P. striata Miyake 1908, P. nihonensis Miyake 1908, pulchra Miyake

1908, P. trizonata Miyake 1908, P. brachypennis Miyake 1908, P. takenouchii

Miyake 1908 u. P. nikkoensis Miyake 1908.

Bittacidae nov. fam. (typische Verschmelzung von m. u. cu, Handlirschs ‚Anal-

gabel ist die ganz ähnlicher Weise scheinbar erscheinende Gabelung cu, u.

an, die an der Basis eine lange Strecke dicht nebeneinander laufen u. am

fossilen Abdruck nicht zu analysieren sind). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35

p- 396. Hierher die Gatt. Bittacus Latr., Apterobittacus Mac L. u. Harpo-

bittacus Gerst., sowie die fossilen Pseudopolycentropus Handl. u. Neortho-

phlebia Handl., die beiden letzteren neigen etwas nach Merope hin und

sind wohl ältere, aber Bittacus sehr nahe verw. Gatt.

Bittacus Latr. Ausführliche Charakteristik. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 396

—397 Figl. nebst Nomenklatur Fig.3 (S. u. M. Europa, S. u. Mittel-

Asien (Indien, China, Japan), Südafrika, N. u. S. Amer. Fossil im

218 Insecta. Mecoptera (= Panorpatae) für 1910,

Oligocän (Bernstein) u. Miocän). — quaternipunctatus n. sp. p. 397—8398 2

(Korea: Pjöng- Young). — B.sinensis Walk. 1853 aus China: Shanghai

unterscheidet sich davon, daß die Queradern braun gesäumt sind; bei

B.quat. finden sich die braunen Flecken an den Ursprungsstellen einiger

Adern. — testaceus Klug 1838 von Transvaal: Zoutpansberg p. 398.

Boreus Latr. 1825 (Typus: B. hiemalis L. Europa. — Kopfverlängerung lang

röhrenförmig. Augen normal, groß, halbkuglig. Ocellen fehlen, Fühler

lang u. dünn. Beine lang. 2 ungezähnte Klauen an jed. Tarsus. Beim $

das 7. u. 8. Sgm. wie die übrigen Segmente sehr kurz u. dick, 9. Sgm. ähnlich

wie bei Panorpa. Vorletztes Sgm. des @ lang röhrenförmig. Flgl. beim 2

winzig schuppenförmig, beim $ schmal sichelf., halb so lang wie der Körper.

Vflgl. an der Spitze mit langen kräft. Dorn). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35

p- 394—395. — Hierher noch B. westwoodi Hag. 1866 (Deutschl.), B. gigas

Br. (Harz), B.lokayi Klap. 1903 (Persien: Sehmirad), ferner folg. Spp.

aus Nordamerika: B.nivoiundus Fitch 1847, B.brumalis Fitsch 1847,

B. californicus Pack. 1870 u. B. unicolor Hine 1901. — B. hyemalis in Bri-

tanien. Fundorte. Morphologische u. biologische Bemerkungen. Lucas,

The Entomologist vol. 43 p. 188 u. 189 Abb. d. 2 pl. IV fig. 4.

Callopanorpa Handl. scheint Mesopanorpa nahezustehen. MHandlirsch, Zool.

Anz. Bd. 35 p. 396.

Campodotecnum n. g. (Typus: ©. javanicum (Westw.) 1846. Unterschiede von

Panorpa: 3. Abd.-Tergit des $ in d. Mitte des Hrandes m. lang. zapfen-

förmig. Anhang, deren Ende auf einem Höcker des Vorderrandes des

4. Tergiten ruht. Clavus klein u. kurz. Zwischen an u. ax, im Vflgl. u. Hflgl.

nur 1 Querader. Zwischen x, u. x, im Vflgl. eine, im Hflgl. keine Quer-

ader. ax, im Hflg. winzig. Geäder sonst wie bei Panorpa. Klauen wie bei

P.gezähnt). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 391. — angustipenne Flgl. nebst

Bezeichn. des Geäders Fig.2. Hierher noch P. angustipennis Westw. aus

Indien u. Java, sowie vielleicht P. charpentieri Burm. 1835 aus Indien. —

©. javanicum (Westw. 1846) bisher nur aus Java bek. auch auf Sumatra:

Soekaranda, Liangagas $9. — CO. angustipenne nur aus Java bekannt.

Chorista Klug. 1838 (= Euphania Westw. 1846. Type: Ch. australis Klug. 1838

Austral. — Kopfverlängerung kurz. Augen normal; 3 Ocellen. Fühler

lang. Jeder Fuß mit 2 an der Basis gekämmten Klauen. Subcosta beider

Flgl. in der Mitte des Flgl.-Vorderrandes mündend. Costalzelle des Vflgls.

(mit Ausnahme der Basis bis an die Querader) stark verbreitert. Pterostigma

in beiden FlgIn. durch eine kurze Gabelader von r, geschlossen. Vorderer

Ast des Radialramus in beiden FlgIn. 2-ästig. Flgl. sonst wie bei Panorpa).

Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 394. — Hierher ©. luteola (Westw. 1846) u.

C. rufipes (Newm. 1850 beide aus Austral. — C. luteola Westw. wohl =

Ch. australis Kl.

Harpobittacus Gerst. 1855 (Typus: H. australis Klug. 1838. Von Bittacus nur da-

durch verschieden, daß das 4. Tarsengl. beträchtlich länger als das 1. u.

stark angeschwollen ist. Hschenkel stark u. dick). Enderlein, Zool. Anz.

Bd. 35 p. 398. — Außer der Type noch H.nigriceps Sel. Longch. — H.

australis in Südwest-Australien. van der Weele, Fauna Südwest-austral.

Bd. 1. Lief. 3—5. 1906.

Systematik. 219

Himantura tubifera n. sp. (unterschieden von der ebenfalls javanischen H. nemato-

gaster Mc Lachl. 1869, abgesehen von den Färbungsunterschieden, vor allem

durch das langgestielte 9. Sgm. des 5, das bei H. nem. gestielt ist). Enderlein,

Zool. Anz. Bd. 35 p. 392—393 (West-Java, Sukabumi, 2000’).

Himanturella n. g. (Campodeenum nahest. untersch. durch die schmalen Flügel

u. durch das im $-Geschlecht außerordentlich stark verlängerte u. dünne

7.u.8.Abd.-Sgm., v. denen jedes etwa so lang ist wie d. 2.—5. Sgm. zusammen.

Körperverlängerung sehr lang u. schlank. 9. Segmt. beim 5 gestielt wie beim

Typus, oder ungestielt wie bei der 2. hierher gehör. Sp. H. nematogaster

(MeL. 1869) aus Java. Enderlein, t. c. p. 329.

Leptopanorpa Mac Lachl. 1875 (Typus L. ritsemae Me L. 1875 [Japan]) (unter-

schieden von Himanturella Enderl. durch das langgestreckte (nicht quer-

gestellt u. kurz) 1. Abd.-Tergit, wodurch es sich zugleich von allen übrigen

Panorpinae auszeichnet. 6., 7. u. 8. Sgm. sehr lang, fadenförmig, 9. Sgm.

des $ gestielt). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 393. — Hierher L. sieboldi

Me Lachl. aus Japan, P. nematogaster Mac L. aus Java dagegen nicht. —

L. longicauda van der Weele vom Berge Malabar. Ähnelt L. nematogaster.

Unterschiede u. Größenverhältnisse. van der Weele, Notes Leyden Mus.

vol. XXXII p. 200.

Merope Newm. 1838 (Typus M. tuber Newm. 1838 [N. Amer.] Augen nierenförmig

die Antennenbasis umfassend. Ocellen fehlen. Abdom. (2) konisch. Im

V.- u. Hflgl. ist die Costalzelle mit Ausnahme der Basis stark verbreitert

u. mit zahlr. Queradern ausgefüllt. Subcostalzelle im Vflgl. ohne, im Hflgl.

mit Queradern. Subcosta in beiden FlgIn. nicht ganz bis zum Pterostigma

reichend. Letzteres durch kurze Ader von r, ausgeschlossen. Sonst Panorpa

ähnlich. [Vorderer Ast der Radialgabel 3—4-ästig, der hintere 2-ästig,

vord. Mediangabelast 2-ästig], nur der hintere Mediangabelast 3—4-ästig.

Beine wenig schlank. 2 ungezähnte Klauen an jedem Fuß). Enderlein,

Zool. Anz. Bd. 35 p. 394—395.

Notiothauma Mac L. 1877 (Mesonotum an der Seite mit kräftig. aufrechtstehenden

Dornen. Im Vflgl. ist die Costalzelle mit Ausnahme der Basis stark verbreitert,

sie u. die Subcostalzelle sind zusammen mit 4—6 Zellreihen angefüllt, die

vor der wenig deutlichen Subeosta hoch, dahinter flach sind. Radialramus

in beiden FlgIn. m. 8S—10 Ästen. Medianäste noch zahlreicher. V. u. Hflgl.

dicht mit zahlr. Längsadern u. sehr zahlreichen Queradern. Vflgl.-Basis

beborstet). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 395. — Typus: N. reedi Mac L.

1877 (Chile).

‘ Panorpa L. 1758. Charakt. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 339—390 (Europa,

ganz Asien, N.-Amer.; die Gatt. fehlt im ganzen notocratischen Gebiet

[südl. Halbkugel], in der ganz. äthiop. Region u. in ganz Südamerika). Sie

ist fossil aus dem Oligocän (Bernstein) u. Miozän bekannt u. wahrscheinlich

auch im Lias vorkommend). — P.nipalica n.sp. Naväs, Deutsche Entom.

Zeitschr. 1910 p. 288 (Ostindien).. — Miyake beschreibt im Journ. Coll.

Agric. Tokyo vol.2 folg. neue Spp. aus Japan: ochraceopennis n. SP,

magnicauda n. Sp., gakaensis n. sp., obscura n. sp., multifasciaria n. sp., irre-

gularis n.sp. u. chuzenjiensis n. sp. — P. mülleri Weele auf dem Berge

Malabar, Pengalengan, W. Java, 5100’ Höhe. Biolog. Notiz. van der Weele,

Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 199—200. — nematogaster Mac L. eben-

220 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910,

falls vom Berge Malabar p. 200. — communis. Aufzählung der Fundorte

in Britanien. Fangdaten. Lucas, The Entomologist vol. 43 p. 186—187

Abb. des & pl. IV fig. la, des 2 1b, aberr. 1c, Details 1e—1 f. — germanica

Fundorte u. -Zeiten p. 187 Abb. d. $ pl. IV fig. 2a, 2 2b, Details 2c, d. —

cognata Fundorte u. Daten p. 187. & pl. IV fig. 3a, 2 fig. 3b, 3d Q-var.,

fig. 3e, f. — Unterschiede der 3 Spp. p. 188.

Panorpodes Me Lachl. 1875 Typus: P. paradoxa MeL. 1875 (Japan). (Kopf-

verlängerung sehr kurz, dreieckig. Klauen ungezähnt, stark gebogen. Beim $

das sonst verlängerte 7. u. 8. Sgm. kurz u. quer, das 8. stark verkürzt, 9. wie

bei Panorpa. Geäder wie Panorpa. 3. u. 4. Glied des 5-gliedr. Max.-Palp.

stark verbreitert). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 393. — Hierher noch

P. oregonensis Mac L. 1881 u. P. carolinensis Banks 1905 (beide aus Nord-

amerika). — Miyake beschreibt im Journ. Coll. Agric. Tokyo vol. 2 p. 183 sq.

folgende neue Arten: apicalis n. sp. u. singularis n. SP.

Stenopanorpa Handl. scheint Mesopanorpa nahezustehen. Enderlein, Zool. Anz.

Bd. 35 p. 396.

Fossile Formen.

iMesopanorpa Handl. (von M. hartungi Handl. verschieden durch einen

3-ästigen vorderen Ast des Radialramus). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 395.

— Typ.: M. hartungi Brauer aus dem Jura: Dobber, England.

tNeorthophlebia Handl. 1908 (von Bittacus verschieden durch den 3-ästig. hinteren

Ast der Media, der sich aber dem 1. Cubitalast angefügt hat u. so scheinbar

der Gabelast des 1. Cubitus ist). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 399. —

4 Spp. im oberen Lias.

tOrthophlebia Westw. 1845 (Typus: O. communis Westw. 1845. — Von Panorpa L.

verschieden durch den 3-ästigen, hinteren Ast der Media. Letzterer Ast

ebenfalls durch Querader mit dem Cubitus verbunden. Vorderer Ast des

Radialramus 4 -ästig. Orthophlebiodes scheint damit identisch zu sein.)

Enderlein, t. c. p. 395. — cf. Panorpa.

tPseudopolycentropus Handl. 1908 (eine eigenartige Form, durch die sehr kurze

Subcosta u. den 3-ästigen vorderen Medianast von Bittacus Latr. ver-

schieden). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35 p. 399. — 1 Sp. im oberen Lias.

Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

v. Adelung, N. Notiz über die Psectra diptera Burm. (Neuroptera,

Hemerobiidae). Ann. Mus. Zool. Acad. Sci. St. Petersbg. T. XIV

p- XLIII—XLVI. — Kurze Darstellung der Ergebnisse Mjöbergs

und Resultat der Untersuchung des betreffenden Materials in St.Peters-

Publikationen mit Referate. 221

burg. Bericht über ein zweiflügeliges Exemplar aus dem Gouvern.

St. Petersburg; bisher war aus dem europäischen Rußland nur ein

vierflügeliges Stück bekannt. Desgleichen finden sich im dortigen

Museum zwei Exemplare aus Irkutsk (aus ganz Asien bisher nur ein

Stück bekannt), die in Färbung und Struktur des Hinterleibes ab-

weichen und wohl einer neuen Art angehören. Analanhänge besitzen

alle drei Exemplare nicht.

Banks, Nathan (1). Myrmeleonidae from Australia. Ann. Entom.

Soe. Amer. Columbus Ohio vol. 3. 1910 p. 40—44.

— (2). Synonymical notes on Neuroptera. Entom. News Phila-

delphia vol. 21 1910 p. 389— 3%.

— (3). Some Neuroptera from Australia. Psyche, Boston Mass.

vol. 17 1910 p. 99—105.

— (4). New South American Neuropteroid Insects. Proc. Entom.

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Brauer, A, Die Süßwasserfauna Deutschlands. Hft. 5 u. 6. (Cf. Be-

richt f. 1909 p. 286 sub No. 8). — Ref. von N. v. Adelung, Zool.

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Codina, A. Un neuröptero emigrante. Bol. Soc. Arag. Zaragoza

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Enderlein, Günther (1). Zmbridina und Neuroptera (Coniopterygidae

und Hemerobüidae [der Seychellen]. Trans. Linn. Soc. Zool. 2nd. ser.

vol. 14 1910 p. 55—58.

— (2). Klassifikation der Mantispiden nach dem Material des

Stettiner Zoologischen Museums. Mit 4 Fig. im Text. Stettin. Entom.

Zeitg. Ihg. 71 p. 341—379. — Über die Zweiteilung der verlängerten

Vordercoxen bei der Subfamilie Mantispinae, die wohl nur eine sekundäre

zu sein scheint. Bestimmungstabelle der Subfamilien, Tribus und

Gattungen der Mantispiden. Beschreibung der Gattungen zumeist

nebst Angabe der Spp., darunter diverser neuer. Mantispa, Manti-

spiüla subg.n. (5 n.spp. + #spp.), Mantispa subg. (3 n. spp. + 1),

Enntanoneura n.g. (5 spp.), Climaciella n.g. (1 + 1n.sp.), Euchimacia

n. 8. (2 + 2 n.spp.), Theristria (4 Spp. aufgezählt), @erstaeckerella n. g.

(1 n.sp. + 2spp.), Symphrasis Hag., Anisoptera Schneid., Tricho-

sceha Westw. (1 n. sp.), Drepanicus Blanch. und Ditaxis MeLachl.

— (3). Eine neue Sialis aus Columbien. t.c. p. 380—381. —

Siahs flavicollis n.sp. Da bei der vorliegenden neuen Art der vordere

Radialgabelast zweiästig ist, welches Verhalten auch bei der sehr

kleinen S8. chilensis Me Lachl. 1870 aus Chile vorgefunden wird, so

schafft E. für beide den neuen Gattungsnamen Ilyobrus.

— (4). Über die Beziehungen der fossilen Coniopterygiden zu den

rezenten und über Archiconiocompsa prisca nov. gen. nov. spec. Zool.

Anz. Bd.35 p. 673—677. Mit 4 Figg. — Von Herrn Prof. Dr. R. Klebs

in Königsberg erhielt der Verf. eine phylogenetisch sehr interessante, in

Bernstein eingeschlossene Coniopterygide, die zugleich der erste im

222 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Bernstein gefundene Vertreter dieser altertümlichen Megalopteren-

gruppe ist und neben der frühjurassischen Archiconiopteryx Enderl. 1909

die zweite fossile Form darstellt. Sie ist der Vertreter einer neuen

Gatt. Archiconiocompsa, die für das Verständnis von Archiconiopteryx

außerordentlich wertvoll ist. Während Archiconiopteryc in den

hinteren Apicalzellen (besonders Zelle M, und M,) ungewöhnlich ver-

kürzt und der Abstand der Zelle R von dem äußeren Hinterrande

gering ist, steht das übrige Geäder mitten in dem Tribus Aleuropteryginı

der Subfam. Aleuropteryginae. Archiconiocompsa neigt dagegen durch

ihr Geäder stark nach Coniocompsa Enderl. 1906, ohne zu dem Tribus

Coniocompsini zu gehören und zeigt gleichfalls die Verkürzung der

Apiealzellen M, und M, und die Annäherung der Zelle Ran den äußeren

Hinterrand. Interessant ist ferner die Tatsache, daß das Hinterflügel-

geäder dem der Gatt. Aleuropteryx Löw 1885 außerordentlich ähnelt,

ferner das Vorhandensein der für die Subfamilie Aleuropteryginae

charakteristischen Ventralsäckchen, die den Coniopteryginae völlig

fehlen. Die Archiconiocompsa des Oligocän ist demnach die ursprüng-

lichste aller bekannten Aleuropteryginen, während die viel ältere, dem

älteren Mesozoicum angehörige Archiconiopterys sich durchaus in

unsere lebenden Formen einfügt. Er hebt dann noch hervor, daß er

die Bearbeitung von Archiconiopteryc mit den besten Zeißlupen,

sowie mit einem Zeißmikroskop ausgeführt, auch einige Aquarell-

zeichnungen nach dem Original mit genauer Widergabe der braunen

Spuren auf dem Stein angefertigt habe. In Archiconiopteryz den

Hinterflügel eines Homopteron zu erblicken, liege auch nicht die

geringste Veranlassung vor. — Beschreibung von Archiconiocompsa

n. g. mit prisca n.sp. nebst 4 Figg., die Flügel, Fühler und Umriß

des Abdomens nebst Ventralsäckchen darstellen.

Essig, E. ©. The natural enemies of the citrus mealy bug.

1. (Sympherobius angustus Banks). Pomona Coll. J. Entom. Claremont

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Hammar, A. 6. On the nervous system of the Larva of Corydalıs

cornuta L. Ann. Entom. Soc. America vol. 1 No. 2 p. 105—127, 2 pls.

(VI u. VII). — Die Larve dieser nordamerikanischen Sialide ist sehr

groß (bis 9 cm l.). Trotzdem sie als Studiumobjekt für das Nerven-

system sehr geeignet ist, liegt doch keine Untersuchung darüber vor.

Die Larve trägt jederseits 6—7 Ocellen. Die Ränder der 8 ersten

Abdominalsegmente sind in Seitenfilamente ausgezogen. Die ersten

sieben Abdominalsegmente tragen ventral je ein Paar großer Tracheen-

kiemen. Das Nervensystem zeigt ein ursprüngliches Verhalten. Jedes

Körpersegment besitzt je ein Ganglion; das letzte derselben ist aus zwei

bis drei einzelnen verschmolzen. Zwei Nervenstämme verbinden die

Ganglien miteinander. Die drei thorakalen, sowie das erste abdo-

minale Ganglion liegen unterhalb, die übrigen oberhalb der

starken Ventralmuskulatur. Das Zentralnervensystem. Das Supra-

oesophagealganglion besteht aus zwei Ganglien mit kurzer dicker

Querecommissur, beide sind von einer dünnen Bindegewebsschicht

umgeben, Neuromeren wenig deutlich differenziert (bei der Imago

Publikationen und Referate. 223

deutlicher). Die seitlich am Gefäß entspringenden optischen Nerven

teilen sich in 7 feine Äste, die zu den Ocellen und dem event. rudimentären

7. Ocellus ziehen. Die Antennennerven entspringen unterhalb und vor

den optischen Nerven. Der erste Ast versorgt die Antenne, der zweite die

basale Muskulatur, der 3. Ast zieht dorsoventral. Der sich in 6 Äste

teilende Clypeo-labralnerv entspringt oberhalb des Crus cerebri, dessen

beide Schenkel zum Suboesophagealganglion ziehen. An dem unteren

Verlauf der Crura cerebri inseriert jederseits die Grenzecommissur, von

welcher gleichzeitig die Labialmuskeln innerviert werden. Von den Sub-

oesophagealganglien ziehen nach hinten zwei Nerven in den Prothorax,

nach vorn der Mandibularnerv (der sich in drei Aste teilt), der Maxillar-

nerv (mit 4 Ästen), der Labialnerv (der das Labium, den Labialpalpus,

das Mentum, Submentum versorgt), der Speicheldrüsennerv (nach

hinten in den Prothorax ziehend; Speicheldrüsen bisher noch nicht

nachgewiesen) und der zum sympathischen System gehörende mediane

Nerv. Die runden, abgeflachten, großen Thoracalganglien entsenden

jederseits drei Nervenstämme, deren Verlauf die instruktiven Ab-

bildungen besser klar legen, als es Worte vermögen. Die Abdominal-

ganglien liegen in der vorderen Hälfte jedes Segments, durch das ventrale

Diaphragma abgegrenzt. Die verbindenden Nervenstränge zwischen dem

1.u. 2. und dem 7. und 8. Ganglion sind sehr kurz. Nervenstränge gehen

nicht von allen Abdommalkonnektiven ab, im Gegensatz zu denen des

Thorax. Jedes der 7 Ganglien entsendet jederseits einen lateralen,

in fünf Aste sich auflösenden Nerv, dessen vierter Ast die Tracheen-

kiemen innerviert. Das erste Ganglion liegt unter der Ventralmuskulatur,

die übrigen über derselben. Das achte (letzte) Ganglion liegt vorn im

7. Segment, wobei das 7. nach vorn gedrängt wird, und weist die doppelte

Anzahl von Nerven auf. Beachtenswert sind ferner zwei vom Nerven

des 8. Ganglions nach vorn verlaufende Äste, welche im 2. Abdominal-

segment hinter den Malpighischen Gefäßen am Darm befestigt sind;

an ihrer Basis geben sie fünf nach hinten gerichtete Zweige ab, von

denen vier zum Darm ziehen. Das sympathische Nervensystem setzt

sich zusammen aus zwei Teilen, einem über dem Darm und einem unter

dem Darm gelegenen. Ersterer steht mit der vorderen dorsalen Partie

des Darmes (Pharynx und Oesophagus) in Verbindung und zerfällt

in ein unpaares medianes und ein paarig laterales System. Zum un-

paaren System sind zu rechnen die bogenförmigen Nerven, die das Supra-

oesophagalganglion mit dem kleinen Ganglion frontale verbinden,

Frontalnerv, Pharyngealnerv und Nervus recurrens und das kleine

hinter dem Gehirn gelegene Vagus-Ganglion. Das paarige System

wird gebildet von zwei kleinen, seitlich vom Oesophagus liegenden

Ganglien, die mit dem Supraoesophagalganglion durch zwei Nerven-

paare verbunden sind. Unter sich sind sie isoliert, auch stehen sie nicht

mit dem unpaaren System in Verbindung. Schließlich ist noch das

ventrale oder supplementäre sympathische Nervensystem zu beachten,

welches aus feinen Nerven besteht, von denen je einer von jedem Ventral-

ganglion nach hinten verläuft und jederseits einen Ast (Quernerv

oder respiratorischen Nerv entsendet). In den Abdominalsegmenten

224 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

verlaufen die medianen Nerven bis zum nächsten Abdominalganglion,

woselbst sie ein kleines Ganglion bilden.

Hare, E. 3. Some additions to the Perlidae, Neuroptera- Planipenniu

and Trichoptera of New Zealand. Trans. N. Zealand Inst. vol.42.

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King, 3. J. F. X. and Halbert, J.N. A List of the Neuroptera of

Ireland. Proc. Royal Irish Academy, Dublin 1910, p. 29—112, Price

1 s. 6 d. — Gesamtzahl der Arten 240 gegen 384 in Großbritannien.

Odonata sind nur in 23 Spp. vertreten, wogegen Großbritannien 42 Spp.

aufweist. Panorpidae in England so häufig, sind in Irland spärlich ver-

treten und zwar wird nur Panorpa germanica aus dem Cork-Distrikt

erwähnt. Raphidia und Nothochrysa, sowie die in England sehr häufige

Chrysopa perla fehlen, wenigstens sind sie bis jetzt noch nicht erwähnt.

Beachtenswert in der Liste sind dagegen die in Großbritannien fehlenden

Limmophilus fuscinervis, Tinodes maculicornis, Apatania fimbriata und

Lype fragilis. Die sehr seltene Psectra diptera wurde zu Wexford,

Co. Wicklow, und Chrysopa abbreviata auf den Sandhügeln von Port-

marnock erbeutet.

Lozinski, P. Zur Histologie der borstenartigen Bildungen am Hinter-

leibe der Myrmeleoniden. Zool. Anz. Bd. 35 p. 526—530, 2 Fig. — Die

Myrmeleonidenlarven, besonders diejenigen, die in der Erde Trichter

bauen, sind an ihrem ganzen Körper mit abstehenden Borsten und

Haaren von verschiedener Länge bedeckt. Sie spielen in der Biologie

der Tiere sowohl als mechanische Hilfsmittel wie auch als Tasthaare

eine große Rolle. Am hinteren Körperende der M.-Larven, am 8. und

9. Hinterleibssegm., kommen bei den meisten Arten besonders starke

und dicke Chitinborsten zur Ausbildung. Sie zeigen eine recht eigen-

tümliche histologische Struktur. Verf. beschreibt ihre Lage und ihren

histologischen Bau. Hervorzuheben ist kurz folgendes. Der Dorn ist

hohl. Der Hohlraum an der Spitze und am Grunde verjüngt. In dem

hypodermalen Epithel unter diesen Borsten liegt stets eine sehr große

Zelle, deren äußere dem Dorne zugekehrte Oberfläche von der Chitin-

schicht abgespalten und nach innen zu eingestülpt ist, wodurch hier

ein freier Raum zwischen der Gelenkhöhle des Dornes und der äußeren

Oberfläche der Epithelzelle entsteht. Das Plasma der großen Zelle

ist grobkörnig und färbt sich mit Alaunhämatoxylin recht dunkel.

Kern groß, bläschenförmig mit großem Kernkörperchen. Verf. hielt

diese große Zelle anfangs für eine Sinneszelle, zumal da sie einen Fortsatz

in das Lumen entsendet. Er gab diese Ansicht bald auf, da alle Sinnes-

zellen, Ganglien und Nervenzellen bei diesen Larven kleine bläschen-

förmige Kerne aufwiesen, der Fortsatz, der sich überdies in 2—4 Zweige

spalten kann, niemals mit der Basis des Dornes in Verbindung tritt

und überdies unter jeden Dorn ein spindelförmiges Ganglion liegt,

das mit der Basis des Dornes oder der Borste in Verbindung tritt. Das

über der Drüse gelegene Lumen ist im Präparat mit einer körnig

geronnenen Masse erfüllt. Die große Zelle ist somit eine Drüsenzelle,

deren Fortsätze den Zweck der Oberflächenvergrößerung erfüllen. Der-

artige Oberflächenvergrößerungen fand der Verf. auch bei anderen

Publikationen und Referate. 225

Insekten. Beschaffenheit und Bedeutung des Sekretes sind noch un-

bekannt. — Eine Verbindung der Drüsen mit Tasthaaren, wie sie hier

geschildert wurde, ist bei den Insekten noch nicht beschrieben worden.

Nur bei den Crustacea, Coryceidae [Copepoda] erwähnt Lang in seinem

Jahrbuch d. vergl. Anatomie Chitinhaare, die zugleich als Tast- und

Drüsenorgane gedeutet worden.

Lucas, Robert. Neuroptera (Planipennia) für 1904, 1905, und 1906.

Titel siehe unter Trichoptera.

Martin, R. Contributions ä l’&tude des Neuropteres de l’Afrique.

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Maxwell-Lefroy and F. M. Howlett. Indian Insect-Life; a Manual

ete. Titel siehe unter Hymenoptera für 1910 p. 61. — Über Neuroptera

handeln p. 108—160, Textfig. 43—83, plates, 1 plain.

Meunier, F. (1). Un Coniopterygidae du copal recent de Togo.

Ann. Soc. seient. Bruxelles T. 34 1910 p. 198—19.

— (2). Un Coniopterygidae du copal recent de Togo (Afrique)

[Nevr.] Bull. Soc. Entom. France 1910 p. 119—120, 2 figs. — Echte

Neuropteren sind bisher noch nicht im Kopal beobachtet worden.

Beschreibung einer zarten Comiopteryx-Sp. (C. Enderleini) aus dem

Kopal von Togo.

— (3). Un Coniopterygidae de Madagascar. [Nevr.] t.c. p. 164

—166. — Semidalis copalina.

— (4). Un Coniopterygidae du copal recent de Madagascar. t. c.

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Matsumura, S. Die schädlichen und nützlichen Insekten vom

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—104, 136—139. — Neuroptera (p. 138): Chrysopa vittata Nesm.

var. formosana n. von Tainan, Ako.

Mijöberg, Eric. Über Psectra diptera Burm. Arkiv f. Zool. Svensk.

Vetensk. ac. Stockholm Bd. 6 No. 5 p. 1—15. —M. gibt eine historische

und kritische Übersicht über die wenigen Literaturangaben, die sich

auf Psectra diptera beziehen und bringt die Ergebnisse seiner eigenen

Untersuchungen (an 15 Expl.; etwa 50 sind überhaupt nur bekannt).

Er beschreibt Analanhänge, welchenach Analogie mit den nahestehenden

Gatt. Hemerobius und Micromus darauf hinweisen, daß die betreffenden

Individuen Männchen sind. Während man bis dahin nur die mit wohl-

entwickelten Hinterflügeln versehenen Stücke als SS betrachtete,

fand Verf. solche Anhänge auch bei zweiflügeligen Formen und zieht

folgenden Schluß: Die Zahl der Flügel ist unabhängig von dem Ge-

schlecht; die dipteren und vollkommen getlügelten Individuen gehören

derselben Sp. an; Psectra diptera tritt allem Anschein nach dimorph

auf, und zwar in beiden Geschlechtern. Solches Verhalten ist bei den

Planipennia bis jetzt noch nicht beobachtet worden. Zum Schlusse

folgt eine Übersicht über die bekannten Psectra-Stücke.

Miyake, Tsunekata. The Mantispidae of Japan. Journ. Coll. Agrie.

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Montandon, A. L. Notes supplementaires pour la faune neuroptero-

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— (8). Hemerobides nouveaux du Japon (Neuroptera). Rev. russ.

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— (11). Sur deux Hemerobides (Insectes nevropteres) nouveaux.

Ann. Soe. Sei. Bruxelles 1909 p. 1—6, 2 textfig. — Beschreibung einer

neuen Art Psectra buenoi aus Nordamerika. Die Art soll in beiden Ge-

schlechtern vierflügelig sein, die Männchen sich durch ein schlankeres

Abdomen, sowie durch das Vorhandensein einer Querader am Gipfel

des Radius der Elytren unterscheiden. Die wichtigsten Artunterschiede

von der bekannten Sp. Psectra dipterasollen auf dem Vorhandensein zweier

Flügelpaare beim S, einer ununterbrochenen Reihe von Queräderchen

sowie auf der geringeren Größe beruhen. Da nun aber die Zahl der

Flügelpaare bei den dS variabel und die Zahl der Queradern unbeständig

ist, so bleiben nur einige morphologische Charaktere sowie die geringere

Größe als Unterscheidungsmerkmal übrig, — Hemerodromia n. 8.

(Hemerobius und Boriomyia nahestehend) für eine neue Art H. buyssoni

n. sp. aus dem Departement Puy de Döme.

Needham, James. Neuropteroid insects from Isle Royale, Michigan.

Rep. Geol. Surv. Lansing Michigan 1908, 1909 p. 305—307.

Okamoto, Hantaro (1). Homposan chokakuseireikwa ni tsuite.

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— (2). Hompo san Gitorokwa. [Mantispidae of Japan.] op. eit.

vol. 22 1910 p. 533—544.

— (3). Die Ascalaphiden Japans. Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29

1910 p. 57—65. — Bisher sind aus Japan nur einige Ase.-Arten bekannt.

Publikationen und Referate. 297

Durch das dem Verf. zugängliche Material erhöht sich die Zahl auf

6 Spp., nämlich: Idricerus japonicus Me L., Ascalaphus Ramburi Me L.,

Hybris subjacens (WIk.), Ogcogaster okinawensis n. sp., Acheron

longus (WIk.), Suphalasca formosana n. sp. — Bestimmungstabelle

der Gatt. (p. 57—58). Aus der Div. I Holophthalmi kommt in Japan

nur die Gatt. /dricerus vor. Besprechung der oben angeführten Arten

. 58—65).

wi — (4). Die Sialiden Japans. t. ce. p. 255—263. — Durch die Unter-

suchung des Materials der Sammlung an der Kais. Tohoku-Universität

zu Sapporo erhöht sich die Zahl der japanischen Sialidae auf 10, die

sich verteilen auf: Siakis (3 + 1 n.sp.), Hermes (2) und Chauliodes

(1+3n.sp.). An eine kurze Bestimmungstabelle der Gatt. reiht sich

die Beschreibung der Gatt. und Arten.

— (5). Die Myrmeleoniden Japans. t.c. p. 275—300. — Bisher

sind die Myrmeleoniden Japans noch nicht eingehend studiert worden

und nur 5 Spp. aus diesem Gebiete bekannt geworden. Verf. fügt 10

neue Spp. hinzu. Angaben Hagens, Mac Lachlans, Gerstäckers und

Matsumuras. Liste der Spp.: Dendroleen (1 + 1 n.sp.), Oreagris

(1 n.sp.), Acanthachsis (1), Epacanthachsis n.g. (1 n.sp.), Formi-

caleoe (1 +3 n. sp.), Myrmecaelurus (1 n. sp.), @lenuroides n. g.

(2. n.sp.), Myrmeleon (1 n.sp. + 2). — Übersicht über die 8 Gatt.

und Beschreibung der einzelnen Arten.

Pöringuey, L. Titel siehe 1911.

Pongracz, Sändor jr. Egy magyarorszägi uj hangyalesörol. [Über

einen neuen Ameisenlöwen aus Ungarn.] Rovart. Lapok, Budapest

vol. 17 1910 p. 187—189.

van der Weele, H. W. (1). On Panorpata and Planipennia collected

in Western Java. Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 199—202. —

Planipennia: Mwyrmeleon sagax subsp. javanensis n., M. frontalis

Burm., Micromus angustior n.sp., Chrysopa ochracea Albarda u.

Mantispa amabilıs Gerst.

— (2). Panorpata und Planipennia. In: Die Fauna Südaustraliens.

Ergebn. der Hamburger usw. Forschungsreise 1905 Bd. 1 Lief. 3—5

1906 p. 255—258, 1 Textfig. Separ. M. 1,50. — Panorpata:

Harpobittacus australis. — Planipennia: (5 Spp.) Ascalaph.:

Acmonotus incusifer, Chrysop.: Chrysopa sp. (Chr. ramburi nahest.).

Werner, F. Einige Beobachtungen an Orthopteren und Neu-

ropteren. Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiol. Bd.6 p. 267—271,

1 Abb. — Uns interessiert hier daraus III. Die Verbreitung von Asca-

laphus macaronius Scop. und IV. Palpares spec. (p. 269—71). Ascal.

macaronius findet sich an verschiedenen Orten Niederösterreichs und

zwar nicht nur in den echt xerothermischen Lokalitäten (Baden, Vöslau,

unteres Kamptal), sondern auch im Piesting- und Pittental. Flugzeit:

Juli, Anfang August. Flugorte: sonnig, baumfrei und von größerer

Ausdehnung, auch ebene Sumpfwiesen. Benutzt den Wind zu Flug-

experimenten. Die Verteilung der hellen und dunkeln Färbung schwankt.

Beschreibung und Abbildung von vier verschiedenen Färbungsarten. —

Hieran schließen sich Fundortsangaben zu Osmylus (1), Mantispa (1),

15*

228 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Drepanopteryx (1), M yrmecoleon (1), Formicaleo (1) an.—IV. Palpares sp.

Redtenbacher: gibt an, daß die Larve dieser Form keine Trichter baue.

W. hat in der lybischen Wüste nahe den Pyramiden Trichter einer

Palpares-Art gefunden. P. libelluloides Dalm., die gewöhnliche süd-

europäische Art fand W. in Istrien bei Rovigno u. Rabae, in Dalmatien

bei Ragusa, in der Herzegowina bei Zavala; sehr häufig ist sie im

„Tal der süßen Wasser“ bei Konstantinopel, wo sie an den steilen

Berglehnen sich aufhält, während die eigentlichen Ameisenlöwen

(Myrmecaelurus trigrammus Pall., Creagris plumbeus Oliv., Maecro-

nemurus bilineatus Brauer) gleichfalls in den Seitentälern des Kiathane-

Su, aber nur in der Talsohle, anzutreffen sind.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas. — Monographien: Naväas (1) (Nemopteridae). —

Bestimmungsschlüssel für die Gatt. u. Arten der Hemerobiidae: Naväs (3). —

Bildung von Artnamen zur Gatt. Chrysopa durch 6 Permutationen der Buch-

staben von olatatis: Banks, Psyche vol. 17 p. 101.. — Histologie der borsten-

artigen Bildungen am Hinterleibe der Myrmeleonideniarven : Lozinski. — Nerven-

system von Corydalis cornuta: Hammar.

Auswandernde Art: Codina. — Schädlinge des Zuckerrohrs: Matsumura

(in Formosa). — Biologie von Drepanepteryx phalaenoides: Morton u. Standfuss.

— Nützlinge: Essig (Sympherobius angustus ein Feind des ‚„mealy bug‘).

Phylogenie ete.

Phylogenie und Systematik: Handlirsch (Zool. Anz. Bd. 35 p. 671. —

Phylogenie und Systematik unter Berücksichtigung der fossilen Formen: Ender-

lein (Zool. Anz. Bd. 35 p. 385—399).

Physiologie.

Stereotropismus, Geotropismus und Thermotropismus der Larven von Myr-

meleon formicarius: Comes.

Fäunistik.

Arktisches und Antärktisches Gebiet.

Arktisches Norwegen: Petersen (Verzeichnis der Neuropterenfauna.

Tromso Mus. Aarsh. vol. 31—32 p. 75—89).

Inselwelt.

Hawaische Inseln : Perkins (neue Arten). — Mariannen: Naväs (Ohrysopa

n. sp.). — Neu-Kaledonien : Naväs (C'hrysopidae, 2 neue Arten). — Neu-Seeland:

Hare (Zusätze zu den Neuroptera). — Philippinen: Naväs (Hemerobiidae n. sp.).

— Seychellen: Enderlein (Coniopterygidae u. Hemerobiidae).

Paläarktisches Gebiet.

Tunis und Baikal-See: Naväs (Chrysopa, 2 neue Arten).

Faunistik. 229

Europa.

Belgien: Philippeville: Navas (Micromus n.sp.).. — Dänemark:

Petersen (neue Arten) [Dänisch. — Deutschland: Brauer. — Frankreich:

Naväs (Sympherobius n. sp.). — Oesterreich: Werner (Bemerk. zu verschiedenen

Neuropt.). — Griechenland: Naväs (Chrysopa, 3 neue Spp.). — Großbritanien:

Lucas (Entomologist, vol. 43 p. 185—189, pl. IV). — Ireland: King u. Halbert

(Liste). — Katalonien u. Mallorka: Naväs (Chrysopa n. sp.). — Polen: Dziedzie-

lewiez (Neuroptera genuwina). — Rumänien: Montandon (ergänzende Bemerkungen).

— Ungarn: Pongracz (Myrmeleon n.sp.).

Asien.

Baikal-See: Naväs (Chrysopa n. sp.). — Indien: Maxwell-Lefroy u. Howlett

(Nemopteridae, neue Spp.), Naväs (Chrysopidae neue Spp.), Naväs (Osmylidae

n. g.). — Formosa : Matsumura (Schädlinge). — Indien u. Tibet: Naväs (Hemero-

biidae, 4 neue Spp.). — Japan: Miyake (Mantispidae, 3 neue Arten), Naväs

(Osmylus n.sp.), Naväs (Hemerobüidae, 5 neue Spp.), Naväs (Chrysopidae neue

Spp.), Okamoto (1 u. 3) (Ascalaphidae, 2 neue Spp. [Japanisch]), Okamoto (2)

(Mantispidae, neue Spp.) [Japanisch], Okamoto (4) (Sialidae), Okamoto (5)

(Myrmeleonidae). — Orient: Naväs (9), — Japan u. China: Naväs (Osmylus

neue Spp.),. — Japan u. Formosa: Okamoto (2) (Mantispidae, neue Arten)

[Japanisch], Okamoto (1) (Ascalaphidae, 2 neue Spp.). — Korea: Enderlein

(Bittacus 1 n.sp.). — Ostasien einschl. Tibet u. Japan: Navas (Ohrysopidae,

neue Spp.). — Malayischer Archipel: Enderlein (Mantispidae, neue Arten). —

Japan: van der Weele (1) (Micromus n. sp.).

Afrika.

Afrika: Enderlein (Mantispidae, neue Spp.). Martin (Beitrag zur Neurop-

pteren-Fauna), Naväs (Nemopteridae, neue Arten), Naväs (Ohrysopidae, 7 neue

Arten, 1 neue Gatt.), Naväs (Hemerobiidae, 4 neue Arten), Peringuey (25 neue

Spp-). — Westafrika: Naväs (Osmylus 1 n. sp.). — Nordafrika: Tunis: Navas

(Chrysopa n. sp.). — Madagaskar: Naväs (Sisyra u. Micromus, je 1 neue Sp.).

Amerika.

Chile: Navas (Chrysopa, n.sp.), (Mantispidae n. g., Sympherobius n. sp.).

— Cuba: Enderlein (Mantispidae n.g.). — Ecuador: Naväs (Chrysopa, 2 neue

Spp.). — Guyana: Navas (Ohrysop. n. g.). — Isle Royale, Michigan: Needham.

— Kolumbien: Enderlein (Sialis n.sp.). — Mexico: Enderlein (Trichoscelia

n.sp.). — Südamerika: Banks (neue Spp.), Enderlein (Mantispidae n. spp.),

Naväs (Hemerobiidae, 3 neue Spp.).

Australien.

Australien: Banks (Myrmeleonidae, neue Spp.), Banks (neue Arten), Naväs

(Croce n.sp.), Naväs (Hemerobiidae n.g.), Naväs (Myrmeleonidae 1 n.sp.),

Naväs (Chrysopa n. sp.). — Südwest: van der Weele (2). — Tasmanien: Naväs

(Ohrysopa n. sp.).

Formen im Bernstein und im Kopal.

Europa: Preußen: Bernsteinformen: Enderlein (Coniopterygidae). —

Afrika: Madagaskar (Kopalformen): Meunier (3) (Semidalis n.sp.) (4).

— Togo: (Kopalformen): Meunier (1, 2) (Coniopteryx).

230 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Systematik.

Raphidiidae vacant.

Sialidae.

Sialidae. Übersicht über die in Japan vorkommenden Gatt. @kamoto, Wien.

Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 255: 1. Ocellen fehlen: Sialis Latr., Ocellen vor-

handen. 2. Fühler fadenförmig oder schwach gesägt: Hermes. — Fühler

gesägt oder gekämmt: C'hauliodes.

Chauliodes Latr. (= Semblis Fabr. etc.) Okamoto, t. c. p. 260. — Übersicht über

die 4 japan. Spp.: 1. Längsadern dunkelbraun. Filgl. fast hyalin: japonicus,

Flgl. hellbraun: nebulosus n. sp. — 2. Längsadern hellgelb bis gelblich,

Kopf schwarz: Kawarayamanus n.sp. — Kopf orangegelb: formosanus

n. sp. — japonicus M. L. Beschr. d. $ u. 2 (Gifu, Tokyo). — nebulosus n. sp.

(©. japonicus M. L. ähnlich, doch Zeichn. des Kopfes u. Flgls. verschieden)

p- 261—262 2 (Formosa). — Kawarayamanus n. sp. (Oh. sinensis WIk. aus

China sehr ähnlich, doch Zeichnung der Hflgl. anders), p. 262—263 9

(Formosa). — formosanus n.sp. (steht Ch. sinensis WIk. aus China und

Ch. kawar. sehr nahe, von ersterer verschieden durch die Flgl.-Zeichnung,

von letzt. durch die Färbung des Kopfes) p. 263 (Formosa).

Corydalus für Cordyalus zu setzen. Druckfehler im Bericht f. 1909 Insect. Neur.

p- 318.

Hermes Gray (= Neuromus Ramb.) Charakt. Okamoto, t. c. p. 258—259. —

2 jap. Sp.: costalis WIk. (Kostalraum d. Vflgl. mit graulichem Längsfleck)

p- 259 $ (Formosa; Nord-China). — grandis Thbg. (der in Frage kommende

Fleck fehlt) Beschr. p. 259—260 52 (Sapporo, Haejima, Hirosaki, Hako-

date u. Echigo).

Corydalis cornuta. Nervensystem. Hammar.

Ilyobius n. g. (der vordere Radialgabelast trägt nur 2 Äste. Bei Sialis kommt

ein solcher weder im Vflgl. noch im Hflgl. vor). Enderlein, Stettin. Entom.

Zeitg. Jhg. 71 p. 381. — Hierher flavicollis n. sp. (von Sialis hierherzuziehen.

Fühler dick, Klauen eigenartig. Ob auch bei der 2. Sp. so?) p. 380—381 9

(Columbien: Natagaima). — In diese Gatt. gehört noch 8. chilensis Me Lachl.

(1870 aus Chile) p. 381.

Sialis Latr. Kurze Literatur. Charakt. Okamoto, t. c. p. 255—256. — frequens

Mats. Beschr. p. 256—257 $2 (Hokkaido, sehr häufig). — Kumejimae Mats.

Mse. n. sp. p. 257 2 (Okinawa). — Mitsuhashii Mats. Msc. n. sp. (in der Form

der $. frequens Mats.) p. 257—258 $2 (Aomori, sehr häufig). — jezoensis

n. sp. (der Form nach der frequens sehr ähnlich) p. 258 2 (Ziozankei bei

Sapporo). — $. flavicollis n. sp. (durch die dicken Fühler, durch den zwei-

ästigen vorderen Radialgabelast u. durch die eigenartigen Klauen gut aus-

gezeichnet). Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71 p. 380—381 2

(Columbien, Natagaima).

Mantispidae.

Übersicht über die Subfamilien Mantispinae Enderlein u. Aniso-

pterinae Enderlein. Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71 p. 341

— 342. — Übersicht über die Tribus Anisopterininov.trib., Therv-

Systematik. 231

striini nov.trib. u. Drepanicini nov. trib. Enderlein, t.c. p. 343.

— Übersicht über die Gattungen Buclimacia n.g., Mantispa Ill., Subg.

Mantispilla n. subg.;, Mantispa subg., Entanoneura n.g., Climaciella n. g.,

Theristria Gerst., Gerstaeckeriella n.g., Drepanicus Blanch., Ditaxis Me

Lachl., Trichoscelia Westwood, Anisoptera Schneid. u. Symphrasis Hag.

Enderlein, t. c. p. 342—344.

Anisopterini trib. nov. Charakt. Enderlein, t.c. p. 343.

Anisoptera Schneid. 1843. Charakt. Enderlein, t. c. p. 375—376. In Südamerika

heimisch. — Hierher zahlreiche Spp., dar. noch A. jocosa Gerst. — Type

ist A. notha Erichs. 1839.

Anisopterinae subf. nov. Charakt. Enderlein, t. c.p. 342.

Climaciella n.g. (von Eutatoneura verschieden in folg. Punkten: Fühler dick;

Pronotum gedrungen, etwas verkürzt, vorn stark verdickt. Der Cubitus

nähert sich im Hflgl. nicht im Bogen der Analis, sondern läuft gerade u.

ist mit dieser durch lange Queradern verbunden. Klauen der Mittel- und

Hinterbeine in 4—7 Zähne gespalten. Vordercoxer in 2 gelenkig verbundene

Teilstücke geteilt. Enderlein, t. c. p. 360—361. — Type: M. brunnea Say

1824 N. Amer.; Synonyme. Fundort der Stücke d. Mus. Stettin. Mexico.

— cubana n. sp. p. 362 2 (Cuba). — In diese Gate. gehört auch wohl noch

M. quadrituberculata Westw. 1852 aus Indien.

Climaciella miyakei n. sp. (= Mantispa 4-tuberculata Miyake) Okamoto, Dobuts.

Z. Tokyo vol. 22 p. 533 sq. — habutsuella n. sp. p: 533 sq. (beide aus Japan).

Ditaxis Me Lachl. 1867. Stimmt durch die 2 Stufenqueraderreihen mit Drepanicus

überein, ist jedoch ungenügend charakterisiert, um sie von dieser Gatt.

zu unterscheiden. Das Pterostigma scheint Queradern zu besitzen. Ender-

lein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71 p. 379. — 1 aüstral. Sp.: D. biseriata

Westw. 1852.

Drepanicus Blanchard Charakt. ete. 1851. Charakt. der Gatt. Enderlein, t. c.

p- 378—379. Bekannt sind 2 Spp. aus Chile: D.@eayi Blanch. 1851 u.

Dr. chrysopinus Brauer 1887, letztere vielleicht das $ zu ersterer.

Entanoneura n.g. (Type: Mantispa limbata Gerst. 1884 von Chiriqui. — Der

Cubitus nähert sich im Hflgl. im großen Bogen der Analis, mit dieser eine

kurze Strecke oder in einem Punkte verschmolzen, oder durch eine sehr

kurze Querader verbunden. Fühler dünn, Pronot. lang u. schlank,) Ender-

lein, t. c. p. 343 u. 358—359 Flgl.-Geäder Fig.2. Hierher M. limbata Gerst.

1884 aus Mittelamerika, M.areolaris Westw. aus Brasilien, M. Batesella

Westw. 1867 aus Brasil., M. Hamiltonella Westw. 1867 (Indien), M. Mariae

Naväs aus Madagaskar, M.strenua Gerst. 1893 aus Java, M. Bouchardi

Nav. 1909 aus Java. — limbata (Gerst.) 1884 Geäder p. 359 (Chiriqui). —

areolaris Westw. 1852 Geäder p. 359 (S. Bras. Espiritu-Santo). — Batesella

Westw. 1867 Geäder p. 359—360 (Fundorte in Brasilien). — Mariae Naväs

(1909) Geäder p. 360 (Madagaskar, Amber Gebirge). — Hamiltonella (Westw.

1867) Geäder p. 360 (Indien: Assam).

Euclimacia n. g. (unterscheidet sich von Entatoneura durch die mit großer End-

gabel versehene ax, im Vflgl. u. den gedrungenen kurzen u. vorn stark

verdickten Prothorax. Fühler sehr dick). Enderlein, t. c. p. 362—363. —

Hierher M. Guerini Westw. 1852 aus Amboina u. Celebes, auch wohl M. austra-

lasiae aus Australien (mit nur 3 Radialästen von der inneren Zelle R, im

2332 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Vflgl. aus), sowie die M.nuchalis Gerst. 1884 aus Australien, M. burmanella

Westw. aus Burma, M. morosa Gerst. 1893 aus Palawan, vielleicht auch

M. grandis Erichs. 1839 aus S. Afrika. Ferner gehört hierher M. semihyalina

(Serv. 1831) aus S.-Amer., sie steht aber sehr isoliert u. stellt vielleicht ein

neues Subg. dar. p. 363—364. — Gwuerini Westw. Beschreib. p. 364—865 9

(Nord-Celebes: Toli-Toli). — ruficauda n. sp. (diese Sp. hat Beziehungen zu

E. burmanella (Westw.) aus Burma) p. 365—366 2 (Nord-Celebes: Toli-

Toli),. — partita n. sp. p. 366—367 2 Geäder Fig. 3 (Nord-Celebes, Toli-

Toli). — semihyalina (Serv. 1831) (= Mantispa chalybea Erichs. 1839

= grandis Guer.) Bemerk. zum Geäder p. 367—368 52 (Peru, Brasilien,

Amazonas, Cumbasi). — E. vespiformis n. sp. Okamoto, Dobuts. Z. Tokyo

vol. 22 p. 533 sq. — badia n.sp. p. 533 sq. (Japan).

Eumantispa n.g. Okamoto, Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 533 nebst Abb. —

suzuki n. sp. p. 533 SQ.

Gerstaeckerella n. g. (Geäder dem von Anisoptera nahest. Am Rande schwarz

gefleckte Flgl. u. gefleckte Adern. Costalzelle schmal, Vorderschenkel nicht

oder nur schwach verbreitert). Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71

p. 368—369 Flgl. nebst Geäder Fig. 4. — gigantea n. sp. ausführl. Beschr.

p- 370—373 $ (24 mm 1. Columbien). — G@‘ irrorata. (Erichs.) untersch. sich

nach der kurzen Orig.-Beschr. in d. Beinringelung, in d. Flügelfärbung u.

in der Körpergröße 18 mm. — @. (Theristria) irrorata (Erichs. 1839). Die

Fundortsangabe Erichsons, die Gerstäcker anzweifelte, ist richtig p. 373.

— chilensis (Hag. 1853) p. 373—374.

Mantispa Ill. 1798 Typus: M. pagana F. 1775, Europa. Literatur. Charakt. der

Gatt. Enderlein, t. c. p. 344—346 Flgl. Fig. 1. Die Gatt. ist in den Tropen,

Subtropen u. in der gemäßigten Zone Kosmopolit. — Subg. Manti-

spillan. (hat wahrscheinlich Gattungswert.) Hierher gehören M. indica

Westw. 1852 aus Indien, M. lineola Westw. 1852 aus Nepal, M. mozambica

Westw. 1852 aus Mozambique, M. apicipennis Kolbe 1897 aus Deutsch-

Ostafrika, M.debilis Gerst. 1888 aus Brasilien (Amazonas), M. flaveola

Erichs. 1839 aus Brasilien, M. minuta (F. 1775) aus Nordamerika, Peru,

M. strigipes Westw. 1852 aus Australien, M. amabilis Gerst. 1893 aus Java,

M. luzonica Nav. 1909 von den Philippinen und Sumatra, M. Vassei Nav.

1909 aus Mozambique. — lineatifrons n. sp. (steht Vassei Nav. nahe) p. 346

—348 2 (Nordost-Afrika, Eritrea, Ghinda). — celebensis n.sp. p. 348 Q

(Nord-Celebes: Toli-Toli), — Lineaticollis n. sp. p. 348—350 3 (Brasilien,

Amazonas, Faro). — indica Westw. 1852 (Indien: Caleutta, Nepal; Tonkin,

Mauson-Gebirge 2—3000') Bemerk. zum Geäder. — luzonensis (Nav. 1900)

p. 350—351 (Philippinen. &-Stücke von Sumatra: Soekaranda; Ab-

weichungen dess. von der Stammform. — Pehlkei n. sp. p. 351—352

(Columbien). Ähnelt Mantispa phthisica Gerst. minuta (F. 1775) Be-

schreib. p. 352—353 9 (Peru). — Lüderwaldti n. sp. (erinnert etwas an

M. phthisica Gerst.) p. 353—354 5 (Süd-Brasilien: Santa Catharina). —

debilis (Gerst. 1888). Geäder p. 354 2 (Brasilien, Amazonas). — Subg.

Mantispa Ill. (Von der inneren Radialzelle R, entspringen im Vilgl.

immer 2 Radialäste). Hierher gehören: M. payana F. 1775 aus Europa,

M. perla Pallas 1775 aus S. Eur., 'ropica Westw. 1852 aus Gambia,

M. annulicornis Gerst. 1893 aus Java, Flgl. Fig. 1 p. 345, M. vittata Guerin

Systematik. 233

aus Australien, M. scutellaris Westw. 1852, M. imbecilla 1886 u. M. tenuistriga

Gerst. 1884, sämtlich aus Australien, M.decorata Erichs. aus Brasilien,

M. phthisica Gerst. 1884 aus Brasilien u. eine Reihe anderer Formen. —

latifrons n.sp. p. 355—356 d (Amazonas: Faro). — annulicornis Gerst.

Bemerk. zum Geäder hierzu Fig. 1 p. 356 $2 (Java, Sumatra: Soekaranda,

N. Celebes: Toli-Toli; ann. var. nigricornis n. (Fühler völlig schwarz) p. 356 2?

(N.-Celebes: Toli-Toli). — decorata Erichs. Bemerk. zum Geäder p. 356

—357 $2 (Brasilien und Argentinien). — phthisica Gerst. 1884 Ergänzung

zur Diagnose p. 357 (Brasilien, Amazonas, Cumbasi, Mittelamerika:

Chiriqui). — pullula n. sp. Banks, Psyche vol. 17 p. 104 (Port Darwin). —

M. (Mantispilla) formosana n. sp. Okamoto, Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 533sq.

(Japan). — Miyake beschr. im Journ Coll. Agric. Tokyo vol. 2 p. 213—221

nebst Abb. auf pl.: magna n.sp., nawae n.sp. u. sasaküi n. sp. — M.amabilis

Gerst. bei Buitenzorg, Java. van der Weele, Notes Leyden Mus. vol. XXXII

p. 202.

Mantispilla n.subg. Von der inneren Radialzelle R, entspringt im Vorderflgl.

nur 1 Radialast. Vereinzelt finden sich abnorme Stücke, bei denen auf dem

einen Vflgl. 2 solcher Radialäste vorhanden sind. — Siehe unter Mantispa.

Mantispinae subf. nov. Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71 p. 341.

Molinella n. g. Mantispid. Naväs, Rev. Chilena vol. 14 p. 239. — moulti n. sp.

p- 240 (Chile).

Symphrasis Hag. 1877. Unterscheidet sich von Anisoptera Schneid. 1843 nur

durch die nicht verbreiterten oder verdickten Hinterschienen. Vordercoxen

ungeteilt. Typus: S. varia Walk. Vielleicht gehört auch $. signata Hag.

aus Californ. hierher. Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg. Jhg. 71 p. 368.

Theristria Gerst. 1884 Geäder; Flügel hyalin und ungefleckt. Charakt. der Gatt.

Enderlein, t. c. p. 368. Die Gattung ist nur aus Australien bekannt. Typus:

Th. felina Gerst. Bis jetzt 4 Spp. bek., außer der Type noch Th. discolor

(Westw. 1852) Th. delicatula (Westw. 1852) und Ph. eurysticta (Gerst. 1885).

Theristriininov. trib. Charakt. u. Bestimmung ders. Enderlein, t. c. p. 343.

Trichoscelia Westw. (von Anisoptera nur dadurch verschieden, daß von der inneren

Zelle R, im Vflgl. nur 2 Radialäste abgehen und daß die Hinterschienen

mehr oder weniger verdickt sind). Enderlein, t.c. p. 376. Die Anzahl der

Radialäste im Hflgl. als Gattungscharakteristikum aufzufassen, wie Navas

will, hält E. nicht für ratsam. Hierher Tr. fenella Westw. 1852 (Brasilien,

Para), nobilis Naväs 1909 aus Brasilien, sowie Banksi n. sp. p. 377—378 2

(Mexico: Chiapas).

Coniopterygidae.

Coniopterygidae des rezenten Kopals von Togo, Afrika. Meunier, Bull.

Soc. Entom. Paris 1910 p. 119—120 avec fig.

Coniopteryx enderleini n. sp. Meunier, Ann. Soc. Scient. T. 34 p. 119 (im rezenten

Kopal von Togo). — enderleini n. sp. (nähert sich (©. tineiformis Curtis u.

CO. maculithorax Enderl. von Australien. Die Morphologie des Flügelgeäders

trennt sie unmittelbar von Semidalis Enderl., die in Afrika gut vertreten ist,

sowie von den anderen Gatt. der Coniopt.) Meunier, Bull. Soc. Entom. France

1910 p. 119—120 Fig.1 Fühler (länger als der Körper), Fig. 2 Flügel. Größe:

1!/, mm L, ®/,mm br. (Kopal von Togo).

234 Inseeta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Semidalis copalina n. sp. (steht von den beiden afrikan. Spp. 8. africana [33 An-

tennengl.] u. $. fülleborni Enderl. (28 Ant.-Gl.) ziemlich entfernt) Meunier,

Bull. Soc. Entom. France 1910 p. 164—166 Fig. 1 Fühler, 2 Flügel, 3 Tarsus

(Madagascar).

Archiconiocompsa n. g. Aleuropterin. (Im Vflgl. u. Hflgl. ist die Radialgabel sehr

kurz u. breit, sodaß die Querader zwischen S, u. Radialramus u. die zwischen

M, u. dem Radialramus den Radialgabelstiel trifft u. nicht die Gabel. Media

vor der Gabelung mit den zwei verdickten Aderstellen, jede mit einem langen

dünnen Haar. Die Zelle M, u. M, relativ kurz. m u. cu, im Hflgl. mäßig

stark genähert. Fühler sehr kurz, 16-gliedr. 1.(?)—5. Abd.-Sgm. mit einem

zapfenartigen Ventralsäckchen jederseits (0,04 mm 1.). Jedes V.-Säckchen

trägt an der Spitze einige winzige Chitinkölbchen, u. scheint ebenso die

mikroskopisch winzige u. dichte Pubescenz zu tragen. Der Hflgl. stimmt

annähernd mit Aleuropteryc Loew 1885 überein, während der Vflgl. sich

stark dem der Coniocompsa Enderl. nähert) Enderlein, Zool. Anz. Bd. 35

p- 675—676. — prisca n.sp. p. 676677 2 (im ostpreußischen Bernstein,

Coll. Klebs).

Nemopteridae.

Nemopteridae. Monographie. Naväs (Mem. Acad. Barcelona vol. 8 No. 18

70 pp-,l pl.).

Croce filicornis. Lebensgeschichte. Ghosh, Journ. Bombay Soc. vol. 20 p. 530;

Nahrung. Lefroy, op. eit. vol. 19 p. 1005. — Neue Spp.: Zightfooti n. sp.

Peringuey, Ann. S. African Mus. vol.5 p.453 (8. Afrika). — C. braueri

n. sp. Naväs, M&em. Acad. Barcelona vol. 8, 18 p. 63 (Australien).

Eretmoptera n. g. (Type: africana Leach) Naväs, Mem. Acad. Barcelona vol. 8, 18

p- 21. — Ieptocera n. sp. p.26 (Damaraland). — neglecta n. sp. p. 27

(Indien ?).

Halter libratus n. sp. Naväs, Mem. Acad. Barcelona vol. 8, 18 p. 34 (Khartoum).

— nutans n.sp. p. 36 (‚„Quetta en el Africa austral.‘).

Kirbynia n.g. (Type Chasmat. sheppardi Kirb.) Naväs, Mem. Acad. Barcelona

vol. 8, 15 p. 47. — Subg. Olivierina subg. n. (Type: extensa) p. 5l. — Subg.

Sicyoptera n. (Type: dilatata Kl.) p. 51.

Klugina n. g. (Type: Nemopt. aristaia Kl.) Naväs, t. c. p. 56.

Lertha n. g. (Type: Nemopt. barbara Kl.) Naväs, t. c. p. 56.

Nemipistha n. g. (Type: Nemopt. imperatrix Westw.) Naväs, Mem. Acad. Barce-

lona vol. 8, 18 p. 41. — lancearia n. sp. p. 46 (Centralafrika).

Nemoptera dumbrodiana n. sp. Peringuey, Ann. S. African Mus. vol. 5 p. 452. —

pulchella n. sp. p. 451 pl. IX fig. 14. — purcelli n. sp. p. 451 pl. IX fig. 13

(alle drei aus Südafrika).

Nemopterella nom. nov. für Eretmoptera Naväs. Banks, Entom. News vol. 21

p: 390.

Nina n.g. (Type: Nemopt. baudii Griff.) Naväs, Mem. Acad. Barcelona vol. 8,

18 p. 67.

Olivierina subg. n. siehe Kirbynia.

Sicyoptera subg. n. siehe Kirbynia.

Stenorrhacus rubellus n. sp. Naväs, Mem. Acad. Barcelona vol.8, 19 p.3l

(Benguela).

Systematik. 235

Chrysopidae.

Chrysopidae. Übersicht über die Gatt. u. Arten. Naväs, Broteria vol. 9

p- 57—59.

Allochrysa colombia n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 150.

— pretiosa n. sp. p. 150. — maculipennis n. sp. p. 150. — cordillera n. sp.

p. 151. — inornata n.sp. p. 15l. — pulchella n.sp. p. 152 (sämtlich aus

Südamerika).

Ancylopteryx polysticta n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 48. — decormei n. sp. p. 49.

— tristicta n.sp. p. 50 (Tropisches Afrika). — alluaudi n. sp. p. 50 (Sey-

chellen). — A. pallida n.sp. Banks, Psyche vol. 17 p. 104 (Queensland).

Anomalochrysa reticulata u. A. biseriata. Perkins, Fauna Hawai. vol.2 p. 691.

Cacarulla n. g. (Type: Allochrysa maculipennis Banks). Naväs, Rev. Acad. Madrid

vol. 9 p. 479.

Chrysopa ochracea Albarda am elektr. Lichte in der Nähe eines jungen Waldes

bei Tji njiroewan, 5100’ Höhe, Berg Malabar). van der Weele, Notes Leyden

Mus. vol. XXII p. 202. — Chr. vittata var. formosana n. Matsumura, Zeitschr.

f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 138 (Tainan, Ako). — Chr. sp. (Chr. ramburi

nahest.) van der Weele, Fauna Südwestaustral. Bd. 1 Lief. 3—5. 1906.

Gut konserviert. — narcissina n.sp. Naväs, Bol. Soc. Arag. 1910 p. 243

(Gerona). — Naväs beschreibt in d. Rev. russe entom. T. 10: ignita n. sp.

p- 192 (Bombay). — dolichoptera n. sp. p. 132 (Moupin). — ricciana n. Sp.

p- 193 (Nord Peking). — marcheana n.sp. p. 193 (Mariannen). — joliana

n. sp. p. 194 (Port Sandwich, Nov. Hebrides a. 1. Mallicolo). — noumeana

n. sp. p. 194 (Noumea). — Naväs charakterisiert in d. Rev. Acad. Madrid

vol.9 folgende neue Arten: peferseni n. sp. p. 473 (Griechenland). —

nympha n. sp. p. 474 (Griechenland). — nymphala n. sp. p. 474 (Griechenland).

— laeva n.sp. p. 477 (Ecuador). — poujadei n.sp. p. 478 (Ecuador). —

Naväs beschreibt ferner in Broteria vol. 9 folgende neue Arten: lucasi n. sp.

p. 139 (Tunis). — babbei n. sp. p. 39 (Baikal). — notata n. sp. p. 40 (Darjee-

ling). — joannisi n. sp. p. 41 (China). — lezeyi n. sp. p. 42 (Japan). — con-

radina n. sp. p. 42 (Fernando Po). — eurydera n. sp. p. 43 (Madagaskar). —

ceratina n. sp. p. 44 (Ostafrika). — nubilata n. sp. p. 45 (Ostafrika). —

stenoptera n.sp. p. 46 (Ostafrika). — neutra n.sp. p. 47 (Australien). —

porterina n. sp. p. 47 (Chile). — nierembergi var. andrewi n. p. 38. — 7-punctata

var. montandoni n. p. 38. — Spp. aus Südamerika beschreibt Banks

in Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12: gloriosa n. sp. p. 152. — albopalpis

n. sp. p. 153. — caucana n. sp. p. 153. — nigripalpis n. sp. p- 153. — lanata

n. sp. p. 154. — Spp. aus Australien: charakterisiert Banks in Psyche

vol. 17: signatipennis n. sp. p. 100. — regularis n. sp. p. 100. — irregularis

n. sp. p. 100. — olatalis n. sp. p. 101. — italotis n. sp. p. 101. — latotalis n. Sp.

p- 101. — atalotis n. sp. p. 102. — satilota n. sp. p. 102. — otalatis n. sp. p- 102.

Chrysopidia n. g. (Chrysopa nahest.) Naväs, Broteria vol. 9 p. 54. — nigrata

n. sp. p. 55 (Darjeeling).

Chrysoplectra n.g. (Chrysopa nahest.) Naväs, t.c. p.55. — immaculata n. Sp.

p. 56 (China).

Eremochrysa argentina n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12

p- 154 (Argentinien).

Leucochrysa n. sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 155. — neu-

ralis n. sp. p. 155. — montanola n. sp. p. 155 (alle drei aus Colombia).

236 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Nesochrysa n. g. (Nothochrysa nahest.) Naväs, Broteria vol. 9 p. 53. — grandidieri

n. sp. p. 53 (Madagaskar). — geayi n. sp. p. 54 (Guyana).

Nothancyla n. g. (Ancylopteryx nahest.) Naväs, Broteria vol. 9 p. 5l. —

verreauxi n. sp. p. 52 (Tasmanien).

Nothochrysa facialis n.sp. Banks, Psyche vol. 17 p. 103. — lata n.sp. p. 103

(beide aus Australien).

Hemerobiidae.

Hemerobüidae. Übersicht über die Gatt. u. Arten. Naväs, Broteria vol. 9 p. 86—90.

Annandalia = Notobiella. Banks, Entom. News vol. 21 p. 389.

Balmes n.g. (Zygophlebius nahest.) Naväs, Broteria vol. 9 p. 85. — terissinus

n. sp. p. 85 (Tibet).

Boriomyia davidica n. sp. Naväs, Rev. russe entom. T. 10 p. 395 (Philippinen).

— B.colombiensis n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12

p- 157 (Colombia).

Hemerobius pallidus Bl. Naväs, Rev. chilena vol. 14 p. 225. — setulosus gehört

zu Megalomus. Banks, Entom. News vol. 21 p. 389. — H. nairobicus n. Sp.

Naväs, Broteria vol. 9 p. 78 (Ostafrika). — harmandinus n. sp. Naväs, Rev.

russe entom. T. 9 p. 395 (Japan). — H. tolimensis n. sp. Banks, Proc. Entom.

Soc. Washington vol. 12 p. 158. — bolivari n. sp. p. 158—159. — albipennis

n.sp. p. 159 (alle drei aus Colombien).

Megalomus deltoides n. sp. Naväs, Rev. russe entom. T.9 p. 396 (Japan). —

M. linguatus n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 76 (Argentinien). — nouhalieri

n. sp. p- 77 (Indien). — M. marginatus n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc.

Washington vol. 12 p. 157 (Colombia).

Micromus theryanus n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 72 (Philippeville). — lanceo-

latus n. sp. p: 73 (Madagaskar). — nilghiricus n. sp. p. 74 (Indien). — reti-

culatus n. sp. p. 75 (Brasilien). — Spp. aus Japan beschreibt Naväs in Rev.

russe entom. T. 9: numerosus n. sp. p- 397. — novitius n. sp. p. 397. — M. fal-

catus n. sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vo). 12 p. 156. — dispar

n. sp. p. 156 (beide aus Colombia). — angustior n. sp. (Größe etwa wie bei

M. pusillus Gerst.) van der Weele, Notes Leyden Mus. vol. XXXII p. 201

—202 (am elektr. Lichte in der Nähe eines jungen Waldes bei Tji njiroewan,

5100' Höhe, Berg Malabar).

Nephoneura mashunense n.sp. Peringuey, Ann. S. African Mus. vol.5 p. 449

(Südafrika).

Nesomicromus angularıs n.sp. Perkins, Fauna Hawaiiensis vol.2 p. 691. —

phaeostictus n. sp. p. 692. — ombrias n. sp. p. 692 (alle drei von den

Hawaiischen Inseln).

Nopia n. g. Hemerobiid. Naväs, Rev. russe entom. T. 9 p. 397. — nikkoana n. sp.

p- 398 (Japan).

Nosybus n. g. (Micromus nahest.) Naväs, Broteria vol. 9 p. 79. — nobilis n. sp.

p- 79 (Ostafrika).

Notobiella maindronina n.sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 70. — nitidula n. sp.

p- 71 (Ostafrika).

Psectra buenoi = Ps. delicatulus Banks, Entom. News vol. 21 p. 390. — diptera.

Bemerk. von Adelung, Mijöberg, Naväs (11).

Sympherobius augustatus. Lebensgeschichte. Essig, Pomona Coll. Journ. Entom.

vol. 2 p. 143—146 fig. 57—59. — lambereti n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 69

Systematik. 237

(Frankreich). — marmoratus n. sp. p. 70 (Rio Salado). — S. modestus n. sp.

Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12 p. 158 (Argentinien). —

S.gayi n.sp. Naväs, Rev. Chilena vol. 14 p. 237 (Argentinien).

Zygophlebius n. g. Hemerob. Naväs, Broteria vol. 9 p. 82. — leoninus n. sp. p. 83

(Ostafrika). — verreauxinus n. sp. p. 84 (Australien). Ist gleichzeitig

Vertreter einer der trib. nov. Hemerobüd. Naväs, Broteria vol. 9 p. 83. —

Zygophlebius und Balmes sind synonym zu Psychopsis n.sp. Banks, En-

tom. News vol. 21 p. 390.

Dilaridae.

Dilar parthenopaeus Naväs, Ann. Mus. zool. Napoli T.3 No. 11, 1 fig.

Osmylidae.

Berotha vasseana n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 81 (Ost-Afrika).

Dietyosmylus n. g. Naväs, Ann. Soc. scient. T. 34 p. 189. — lunatus n. sp. p. 189

(Darjeeling).

Osmylus nubeculosus n. sp. Naväs, Rev. russe entom. T. 10 p. 191 (Kohistan). —

O. hauginus n. sp. Naväs, Ann. Soc. Scient. T. 34 p. 188 (West-Afrika). —

O. harmandinus n. sp. Naväs, t. c. p. 190. — faurinus n. sp. p. 191 (beide aus

China). — oberthurinus n. sp. p. 194 (China).

Sisyra radialis n. sp. Naväs, Broteria vol. 9 p. 80 (Madagaskar).

Nymphidae.,

Myiodactylus pubescens n. sp. Banks, Psyche vol. 17 p. 104 (Port Darwin).

Eobanksiidae, Meropidae

vacant.

Myrmeleonidae.

Myrmeleonidae von Japan. Übersicht über die Gatt. Dendroleon Br.,

Creagris Hg., Acanthaclisis Rbr., Epacanthaclisis n. g., Formicaleo Leach,

Myrmecaelurus Costa, Glenuroides n.g. u. Myrmeleon L. Okamoto, Wien.

Entom. Zeitg. Jhg. 29. p. 277—278.

Acanthaclisis Rbr. Literatur. Charakt. Okamoto, t. c. p. 283. — japonica

Hagen Beschr. p. 2834—285 $2 (Aomori, Hakodate, Sapporo). — lineati-

pennis n. sp. Peringuey, Ann. S. African Mus. vol.5 p. 443 pl. VIII fig. 8.

— mashunensis n. sp. p. 443 (beide aus Süd-Afrika).

Austroleon frontalis n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington, vol. 12 p. 148.

— dorsalis n. sp. p. 149. — verticalis n. sp. p. 149 (alle drei aus Argentinien).

Brachynemurus argentinus n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12

p- 145 (Argentinien).

Callistoleon n. g. (Type: Myrmeleon erythrocephalum) Banks, Ann. Entom. Soc.

Amer. vol. 3 p. 42.

Chrysoleon n. g. Banks, t. c. p. 43. — punctiatum n. sp. p. 43 (Port Darwin).

Creagris Hg. Charakt. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 282. — Mat-

suokae n. sp. p. 282—283 @ (Bingo). — Peringuey beschreibt in d. Ann. 8.

African Mus. vol. 5 eine Reihe neuer Arten aus Süd-Afrika: angusti-

pennis n. sp. p. 448. — bechuanus n. sp. p. 447. — damarinus n. sp. p. 448.

— inchtus n. sp. p. 445. — mashunus n. sp. p. 449. — proximus n. sp. p- 446.

— pseudoplumbeus n. sp. p. 446.

238 Insecta. Neuroptera (Planipennia) für 1910.

Dendroleon Br. Beschreib. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 278. —

Übersicht über die beiden Spp. japonicus (Mc L.) u. jezoensis n. sp. —

japonicus Me L. (= Glenurus pupillaris Gerst.) p. 279—280 (Tokyo. — In

Form u. Färbung der europ. D. pantherinus (F.) nahest., unterschieden

durch die dunklen Flecke der Flgl.). — jezoensis (Mats.) n. sp. (voriger nahest.,

verschieden durch die ungleichen Flecken u. Binden beider Flgl. u. kleinere

Form) p. 280—81 52 (Fig. 5 in toto, 5a Hinterleibsende) p. 280—281 5?

(Ziozankei, Nikko u. Atago in Kyoto).

Distoleon n.g. Banks, Ann. Entom. Soc. Amer. vol. 3 p. 42. — verticalis n. Sp.

p. 42 (Queensland). — N.nefarius n.sp. Naväs, Rev. russ. entom. T. 10

p- 190 (Australien).

Drepanepteryx phalaenoides. Lebensgeschichte. Morton u. Standfuss, Entom.

Monthly Mag. (2) vol. 46 p. 54 pl. II. — Neue Spp.: maori n. sp. Hare, Trans.

New Zealand Instit. vol. 42 p. 31. — humilior n. sp. p. 31 (beide aus Neu-

Seeland).

Epacanthaclisis n. g. (auch p. 277 so geschrieben. Epacanthcälisis n. g. auf p. 278

ist nur ein Druckfehler. Steht Acanthaclisis Rbr. u. Formicaleo Leach sehr

nahe, untersch. sich jedoch von Ac. durch den Bau des Endgliedes der Labial-

taster u. die Schienensporne u. von Form. durch den Bau der Flgl. und den

hinteren Kubitus des Hflgls.) Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 285

—286. — moiwasana n. sp. p. 286—287 Fig. 1 Tier in toto (Moiwa bei

Sapporo, Ziozankei u. Kyoto).

Formicaleo Leach. Literatur. Charakt. Okamoto, t. c. p. 287. — Übersicht über

die folg. 4 Spp. aus Japan: nigricans n. sp. p. 283—289 2 Fig. 3 Abb. in toto

(Japan). — contubernalis M.’L. p. 239—290 $ (Kyoto). — acuminatus (Mats.)

n. sp. p. 290—291 2 Tier in toto Fig. 6 ( Yayeyama; Ins. Ogasavara). —

formosanus n. sp. (F. contub. nahe, doch andere Körperzeichn.) p. 291

—292 2 (Formosa). — F.dispersus n.sp. Banks, Ann. Entom. Soc. Amer.

vol. 3 p. 43. — marginalis n.sp. p. 44 (beide aus Australien).

Glenuroides n.g. (ähnelt durch die dünnen, verlängerten Beine u. Antennen

dem 67. Hg., sie unterscheidet sich durch den Bau des viereckigen Prothorax

u. durch die Längenverhältnisse der Schienensporne u. Tarsenglieder)

Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 294—295. — communis n. Sp.

p- 295—296 Fig. 4a Abdom.-Ende, 4 Tier in toto (Hokkaida [Sapporo,

Iwanai, Geb. Makkarinupril, Honshu [Nakano nahe Tokyo], Takasago,

Daisenyi, Kyoto u. Geb. Atago bei Kyoto). — okinawensis n. sp. (vor. sehr

ähnlich) p. 296—297 $ (Okinawa).

Glenurus stigmatus n. sp. Banks, Ann. Entom. Soc. Amer. vol. 3 p. 40 (Queens-

land).

Myrmecaelurus Costa Liter. Charakt. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29

p. 292—293. — parvulus (Mats.) n. sp. p. 2933—294 9 in toto Fig. 7 (Okinawa).

Myrmeleon L. Literatur. Charakt. Okamote, t. c. — Übersicht über die 3 jap.

Spp. 1. Pterostigma groß, nicht eiförmig: M. Asakurae (Mats. MS.) n. sp.

p. 297—298 $& 2 (Formosa, Horisha). — 2. Pterostigma klein, eiförmig:

formicarius L. (Adern schwarz) p. 298—299 $ 2 (Sapporo, Mororan, Ura-

kawa, Homori, Maiko u. Takasago). — micans Me L. (Adern blaßgelb bis

dunkelbräunlich) p. 299—300 $ 2 (Gifu, Nakano bei Tokyo, Takasago, Akita,

Okinawa). — sagaz subsp. javanensis n. van der Weele, Notes Leyden Mus.

Systematik. 239

vol. XXXII p. 201 (Kota Batoe, dem bek. Badeorte in Tji Omas am Berge

Salak bei Buitenzorg). — M. frontalis Burm. im August bei Buitenzorg p.201.

— mocsaryi n.sp. Pongräcz, Rovart. Lapok. vol. 17 p. 187 fig. (Ungarn).

— Spp. aus Südafrika: boschimanus n. sp. p. 443 pl. X fig. 10. — opta-

bilis n. sp. p. 444. — M. argentina n. sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington

vol. 12 p. 147 (Argentinien). — M. formicarius. Bewegung. Comes, Biol.

Centralbl. Bd. 30 p. 81—84.

Palpares. Peringuey beschreibt in d. Ann. South African Mus. vol. 5 folg. neue

Spp. aus Südafrika: cataractae n. sp. p. 433 pl. VII fig.3. — dubiosus n. sp.

p. 440. — elegantulus n. sp. p. 436 pl. VII fig. 4. — genialis n. sp. p. 438 fig. 2.

— karrooanus n.sp. p. 435 pl. VIII fig. 6. — mosambicus n. sp. p. 434. —

ovampoanus n. sp. p. 439 pl. VII fig. 1.

Palparidius n.g. (Palpares nahest.) Peringuey, t.c. p. 440. — capicola n. sp.

p. 441 pl. VII fig. 5. — concinnus n. sp. p. 441 (beide aus Südafrika).

Protoplectron costatus n.sp. Banks, Ann. Entom. Soc. Amer. vol.3 p.4l. —

pallidum n.sp. p. 41 (beide aus Australien).

Psammoleon punctipennis n.sp. Banks, Proc. Entom. Soc. Washington vol. 12

p. 147 (Colombia).

Ascalaphidae.

Ascalaphidae. Bestimmungstabelle der in Japan vorkommenden 6 Gatt. Idri-

cerus, Ascalaphus L., Hybris Lefebure, Ogcogaster Westw., Acheron Lefebure

u. Suphalasca Lefebure. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 57.

Acheron Lefebure. Charakt. Okamoto, t. c. p. 62—63. — longus Walk. (= Ascal.

trux Walk. = Asc. logquax Walk.) Beschr. p. 63—64 $2 (Formosa: Koshun,

Kanshirei, Shinska, Hoppo u. Taiman). Flügelfärbung sehr variabel, je

nach dem Grade der Reife.

Acmonotus incusifer Me L. Beschr. des 9, bisher nur das $ bek. van der Weele,

Fauna Südwest-Australiens 1905 Bd. 1 Lief. 3—5, 1906.

Ascalaphus F. Charakt. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 59. — Ram-

buri Me L. Beschr. p. 59—60 $? (Honshu: Kyoto, Akita).

Hybris Lefebure. Charakt. Okamoto, t. c. p. 60. — subjacens Wk. (= remotus

Wk.) Beschr. p. 60—61 $? (Honshu: Koyto, Bingo, Maikv, Togasago. Kin-

shu: Buzen. Formosa: Koshun). Flgl. gewöhnlich glashell, aber zuweilen

im ganzen dunkelgelbbraun oder nur an der Spitze gleich gefärbt.

Idricerus Me L. Charakt. Okamboto, t.c. p. 58. — japonicus M.’L. Beschr. p. 58

—59 82 (Honshu: Akita, Haejima, Gifu, Bingo u. Aomori). Flgl. gewöhnl.

hyalin, doch zuweilen im ganzen dunkelbraun, besonders beim 4.

Ogcogaster Westw. Charakt. @kamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 62. —

okinawensis n.Sp. p. 622 (Okinawa), auch Okamoto, Dobuts. Z. Tokyo

vol. 21 1909 p. 499 sg.

Suphalasca Lefebure. Charakt. Okamoto, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 63.

— formosana n.sp. p-655 (Formosa: Taichu), auch Okamoto, Dobuts.

Z. Tokyo vol. 21. 1909 p. 499 sq.

Mallophaga (= Lipoptera) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Carriker, M. A. jun. and Shull, Charles A. Some new species of

Mallophaga from Michigan. Entom. News Philad. vol. 21 1910 p. 51

—57, pl. V.

Kellogg, Vernon L. Mallophaga from the Hoatzin (Opisthocosmus

hoazin). Zoologica New York N. Y. vol. 1 1910 p. 117—121.

Kellogg, V. L. and Paine, John H. (1). Mallophaga from the

birds of Laysan Island. Entom. News Philad. vol. 21 p. 124—125.

— (2). Mallophaga from birds and mammals. t. c.p. 459—463 fig. 1.

Lucas, Robert (1). Mallophaga für 1904. [Jahresbericht.] Archiv

f. Naturg. Berlin Jhg. 71 Bd. 2 Heft 2 p. 40 sq. = Ber. Leist. Entom.

Berlin 1904 Lfg. 3 [1910]. — Deutsche Entom. Zeitschr. Berlin 1905

Beihit. Lfg. 3 [1910].

— (2). Desgl. für 1905 und 1906. Vergleiche Jhg. 72 und 73

der zitierten Zeitschrift.

Mijöberg, Erie (1). Studien über Mallophagen und Anopluren.

Arkiv Zool. Stockholm, vol.6 No.13 1910. 297 pp., 156 Textfig.,

5 Taf. — Einleitung (p. 1—3): Sammeln der Tiere und Material.

I. Systematisch - biologische Untersuchungen. A. Mallophaga

Die drei wichtigsten Werke nach Nitzschs Publik. in Germars Mag.

1818: Dennys Monographie 1842, Giebels Inseeta Epizoa 1874 und

Taschenbergs Mallophagen. Kurze Besprechung nebst Angabe der

neuen Spp. Aufzählung der weiteren einschlägigen Arbeiten, unter

denen Le Soeuf u. Bullen (Deser. of malloph. paras. from the Kangaroo

ete. 1902) von besonderem Interesse sind. Es sind etwa 100 interessante

Marsupialenformen beschrieben worden und neue harren der Ent-

deckung. Sie vermögen vielleicht Licht in die Phylogenie der Mallo-

phaga zu bringen. Bis jetzt sind etwa 1500 Spp. beschrieben worden,

die Zahl der noch zu erwartenden Formen ist allem Anschein nach

noch eine sehr große. Bemerkungen über Vorkommen, Verhältnis zu

den Wirtstieren, Biologie (viele können längere Zeit frei leben, doch

sinkt die Herztätigkeit herab; kommen mehrere zugleich vor, so be-

schränken sie sich auf bestimmte Körperteile), Verbreitung, Über-

wanderung, eigenartige Lebensweise, Nahrung (von Epidermisderivaten,

eventuelle Blutnahrung). — Besprechung der Formen: I. Unterordnung.

1. Fam. @yropidae (Kell.) (p. 16sq.): @liricola n.g. (1), G@yropus (1).

— 2. Fam. Boopidae nov. fam. (p. 21): Boopia (1). — 3. Fam.: Meno-

ponidae nov.fam. (p. 26): Menopon (17 + 2n.spp.), Colpocephalum

(3-+ 7 n.spp.), Pseudomenopon n.g. (1). Niützschia (1), Trinoton (3),

Tetrophthalmus (1). — 4. Fam.: Laemobothrüdae nov.iam. (p. 53):

Publikationen und Referate. 241

Laemobothrium (3). — 5. Fam.: Physostomidae nov.fam. (p. 55):

Physostomum (2 n. sp. + Sp.). — 2. Unterordnung /schnocera. 1. Fam.:

Trichodectidae (Kell.) (p. 62): Trichodectes (9 + 2 n. spp.), Damalinia

n. g. (1), Eutrichophilus n. g. (4 n. sp.). — 2. Fam.: Lipeuridae nov. fam.:

Lipeurus (17 +2 n.sp.), Oxylipeurus n.g. (1 n.sp.), Pectinopygus

n.g. (1), Ornithobius (L+ In. sp.). — 3. Fam.: Eurymetopidae nov.

fam. (p. 99): Eurymetopus (1). — 4. Fam.: Goniodidae nov. fam.

(p.3100): Goniodes (6 + In. sp.), Goniocotes (£ + 1 n. sp.). — 5. Fam.:

Docophoridae: Docophorus (31 +9 n.sp.), Subg. Strigliphilus n. (1),

Nirmus (29 + 7 n.sp.), Pseudonirmus n. g. (1). Hierzu 77 Detailfigg.

im Text. — B. Anoplura (p. 150—153) siehe unter Anoplur.a.

— II. Morphologisch-anatomische Untersuchungen (p. 183—262).

Verf. bespricht darin das Integument, Kopf (Kopfform im Allgemeinen,

Fühler, Augen, Occipitalapodem, Mundteile), Thorax, Extremitäten,

Hinterleib, Tracheensystem, Exkretionsorgane, Ernährungsorgane,

Zirkulationsorgane und Geschlechtsorgane (3; bei den Anoplur.a:

Haematopinus suis L., H. phtiriopsis Gerv., Linognathus gazella Mjöb.,

Acanthospinus sciurinus Mjöb., Pediculus affinis Mjöb., Echinophtirius

trichechi Boh. Abb. zu diesen Spp. geben Figg. 117—127. — 11. beiden

Mallophaga:@liricola gracilis N., G@yropus ovalıs N., Boopia peregrina

Mjöb., Menopon pici Den., Pseudomenopon tridens N., Trinoton con-

spurcatum N., Laemobothrium titan Piag.; Eutrichophilus mexicanus

Mjöb., Lipeurus perspicillatus N., Pectinopygus pullatus N., Ornithobrus

bucephalus Gieb., Eurymetopus sp., Goniodes faleicornıs N., Rhopalo-

ceras sp., Docophorus melanocephalus N., Nirmus pileus N. und Pseudo-

nirmus charcoti Neum. Hierzu Figg. 128—146. — Als Resultat der

Untersuchung ergibt sich Folgendes: 1. Der ganze männliche Geschlechts-

apparat ist bei den Mallophaga und Anoplura nach demselben Typus

gebaut. 2. Die Anoplura besitzen zwei Paar Testes. Dasselbe gilt auch

für die Ischnocera. Auf ontogenetisch jüngeren Stufen ist noch ein

drittes Paar nachweisbar, das jedoch bald reduziert wird. Die Amblycera

weisen auch heut noch 3 Paare auf. Die Testes sind mit Ausnahme der-

jenigen der Amblycera mehr oder weniger birnförmig, dicht aneinander

befestigt. Meistens ist ein Endfaden von verschiedener Länge aus-

gebildet. 3. Die Vesicula seminalis wird bei den Anoplura und Mallo-

phaga paarig angelegt. Bei einigen Anoplura kommen noch heute zwei

freie, oder nur apicalwärts miteinander verwachsene Samenblasen vor,

bei den meisten Mallophaga sind die beiden Anlagen mehr oder weniger

mit einander verwachsen, doch deuten zuweılen Längsfurchen, Aus-

schweifungen usw. die frühere Zweiteilung an. 4. Der Ductus eja-

culatorius ist meistens lang und oft ohne scharfe Grenze von der Samen-

blase getrennt. 5. Eine Basalplatte ist sowohl bei den Anoplura wie

bei den /schnocera sehr deutlich ausgebildet. Bei mehreren Amblycera

tritt dies Gebilde in der Form von zwei freien lateralen Chitinstäbchen

auf. 6. Parameren frei oder mehr oder weniger verwachsen, kommen

bei beiden Gruppen vor. Sie dienen wahrscheinlich zur Erweiterung

der weiblichen Geschlechtsöffnung, um den Eintritt des Kopulations-

apparates zu erleichtern. 7. Ein Präputialsack ist fast bei allen Ano-

Archiv für Naturgeschichte 16

1911. v. 1.

9242 Insecta. Mallophaga (= Lipoptera) für 1910.

plura und Mallophaga unter ganz derselben Form und mit identisch

ähnlicher Armatur von feinen Chitinhöckerchen versehen, vorhanden,

und scheint auf ganz dieselbe Weise zu funktionieren. Während der

Kopulation (das $ trägt dabei das Q auf seinem Rücken) wird zunächst

mit Hilfe der Parameren die Q-Geschlechtsöffnung erweitert, dann

wird der Präputialsack ausgestülpt, wodurch dieser, nun stark ver-

längert, mit dem apicalwärts befestigten Penis tief in den Geschlechts-

apparat des Weibchens dringt. Es wirken dabei die vorher erwähnten

scharfen Chitinhöckerchen auf die Vaginawand em. Die Kopulation

scheint sehr anhaltend zu sein. — B. Die weiblichen Geschlechtsorgane

(p. 253sq.). A. beiden Anoplura: Linogn. angul., Acanth. sciur. Ped. aff.,

Pedic. hamadır., Ech. phocae u. Arct. trich.,; B. Mallophaga: Gyr. ovalis N.,

Menopon sp., Trich. scalaris N., Eutrichophilus sp., Docoporus sp.

und Nirmus sp. Hierzu Figg. 147—156. Spermatheken, Eier. Das

wichtigste bezüglich der Eier beider Gruppen ist: 1. Der Bau der Ei-

schale und des Micropylapparates der beiden Gruppen ist sehr groß

und auffallend. 2. Wichtig ist das Vorkommen eines „Eistigmas“

von ganz demselben Bau. Es ist bisher nur bei diesen beiden Gruppen

gefunden worden. Der Schluß (p. 262—267) bringt phylogenetische

Betrachtungen. Die Mallophagen stammen von den Urformen der

Psocidae ab. Aus blattoidenähnlichen Stammformen gelangen wir

durch die Urpsociden zu den Urmallophagen einerseits und den Psociden

andererseits. Aus den ersteren entwickelten sich die Mallophaga mit

ihren weiteren Gruppen und die Anoplura. Zusammenstellung der

Eigenschaften der Anoplura, Amblycera und Ischnocera. Die Stammes-

geschichte der Mallophaga ist noch sehr ungewiß. Verzeichnis der Wirts-

tiere nebst den auf ihnen vorkommenden Mallophagen und Anopluren

(p. 268—277). — Alphabetisches Verzeichnis der behandelten Mallophaga

p. 278—280. Alphabetisches Verzeichnis der behandelten Anoplura

p. 280. — Umfangreiches und wertvolles Verzeichnis der bisherigen

Mallophagen- und Anoplurenliteratur (p. 2831—294). — Inhaltsver-

zeichnis (p. 295—296).

— (2). Studien über Pediculiaen und Mallophagen. Zool. Anz.

Leipzig Bd. 35 1910 p. 287—293. — Siehe unter Anoplura.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberichte: Lucas, Rob. (für 1904, 1905 u. 1906).

Morphologie usw.

Morphologie, Anatomie (Haut, Kopf, Thorax, Extremitäten) und die verschiedenen

Organsysteme, speziell Geschlechtsorgane: Mjöberg (1).

Praeputialsack (ein blasenförmiges Gebilde, das ringsum den Penis u. teilweise

auch den distalen Teil des Ductus ejaculatorius sich streckt und an dem

distalen Teil der Basalplatte zwischen dieser u. den Parameren meistens

befestigt zu sein scheint): Mjöberg (1) p. 227.

Faunistik. Systematik. 243

Faunistik.

Inselwelt.

Laysan-Insel: Kellog u. Paine (Mallophaga der Aves). — Clavigerinsel : Mjöberg (1)

(Docophorus n. sp., Orniühobius n. sp.). — Penduluminsel: Mjöberg (1)

(Docophorus n. sp.). — Jinrentlen : Mjöberg (1) (Nirmus n. sp. auf Scolopax).

Asien.

Indien : Mjöberg (1) (Colpocephalum n. sp.).

Afrika.

Khartum: Mjöberg (1) (Colpocephalum n. sp., Docophorus n. sp., Nirmus n. sp.).

— Kairo: Mjöberg (1) (Colpocephalum n. sp.). — Madagaskar: Mjöberg (1)

(Gliricola n. g., In. sp. auf Numida mitrata; Lipeurus n. sp.; Menopon n. sp.

auf Scopus umbreita, Oxylipleurus n. g. auf Margaroperdix striata).

Amerika.

Michigan : Carriker u. Shull (Mallophaga). — Panama: Kellogg u. Paine (Mallo-

phaga der Aves u. Mammalia). — Südamerika: Venezuela: Kellogg

(Parasit von Opisthocomus hoasin, Colpocephalum n. sp. u. Lipeurus n. sp.).

Systematik.

Mallophaga der Aves und Mammalia von Panama. Kellogg u. Paine, Entom. News

vol. 21 p. 457—463, fig. 1.

Boopia peregrina n. sp. Mjöberg (1) p. 21—26 $Q. Eine sehr charakt. Sp. Details

Textfig. 10—18 u. Taf. 4 Fig. 9 in toto (auf Zuira pruneri aus Indien), $-Ge-

schlechtsapparat Fig. 131.

Boopiidae nov. fam. Charakt. Mijöberg (1) p. 21. — Gatt. Boopia.

Colpocephalum. Kurze Charakt. Sehr formenreiche Gatt. Fast auf allen Vögeln

exkl. der Oscines. Mijöberg (1) p. 36. Eigenartig sind: ©. pediculoides n. sp.

u. ©. heterosoma Piag. — Laufen lebhaft, mit Hilfe der Onychien saugen sie

sich mit größter Leichtigkeit an Gegenständen fest. — abruptofasciatum n. Sp.

(vom Typus des (©. setosum, Piag. auch an C'. dissimile Piag. erinnernd) p. 36

— 38 Fig. 23 2 in toto (auf Milvus aegyptius bei Kairo). — bicolor Piag. auf

einer Strepsilas interpres p. 38. — flavescens N. auf Pernis apivorus p. 38. —

pustulosum Piaget auf Limosa lapponica, Machetes pugnax u. Falco tinnunculus

(Überwanderer!). — inaequale N. sehr charakt. Sp. p. 38 (auf Picus martius).

— (. subaequale N. Beschreib. p. 39—41 Abd. Fig. 24 in toto Taf. 5 Fig. 3 (auf

Hoplopterus spinosus Karthum) cf. auch Jägerskiöld, Results of Swed. Zool.

Exp. to Egypt and W. Nile: Mallophaga. — grandiceps Piag. auf Haematopus

ostralegus p. 41. — laticeps n. sp. p. 42—43 3 in toto Taf. 2 Fig. 4 (auf Hae-

matopus ostralegus). — ephippiorrhynchus n. sp. (in Färbung an zebra erinnernd)

p. 43—44 Tf. 3 Fig. 9 (auf einem Ephippiorhynchus senegalensis bei Kharthum)

cf. auch Jägerskiöld, Results of Zool. Exp. to Egypt a. W. Nile: Mallophaga.

— ochraceum N. auf Vanellus cristatus. — pediculoides n. sp. (kleine, sehr

eigentümliche Sp.) p. 44—46 52 in toto Taf. 2 Fig. 6 (auf Strepsilas interpres,

als Überwanderer auf Falco tinunculus). — pygidiale n. sp. (weicht durch

16*

244

Insecta. Mallophaga (= Lipoptera) für 1910.

die Form des letzten Hinterleibssegmentes beim 2 von allen bek. Spp. ab)

p- 46—47 39, Abb. Taf. 3 Fig. 8 in toto (auf Ibrs religiosa). — scopinum n. Sp.

p. 47—49 Details F g. 25 u. 26 (auf Scopus umbretta auf Madagaskar. Von der

Vogelgattung ‚‚Scopus‘‘ was bisher nur eine Nirmus-Art bekannt). — im-

portunum N. von Ardea cinerea p. 49. — Ü©. spinulosum subsp. obscurum n.

Carriker u. Shull, Entom. News vol. 21 p. 52. — ocularis n. sp. p. 52 fig. 1

(auf Arenaria interpres).. — subpustulatum n.sp. p. 54 fig.2 (auf Ceryle

aleyon). — C. armiferum n. sp. Kellogg, Zoologica New York vol. 1 p. 119

fig. 38 (auf Opisthocomus hoazin in Venezuela).

Damalinia n. g. Mjöberg (1) p. 69— 71. — Type: D. (Trichodectes) crenulatus Piag.

p- 71 (auf Damalis albifrons) Deteils Fig. 41—43.

Docophoridae nov.fam. Charakt. Mjöberg, p. 108. — Hierher die Gatt.

Docophorus N., Nirmus N. u. Pseudonirmus n. g.

Docophorus N. (hochspezialisierte Gatt. u. sehr zahlreich u. reich verzweigt)

' Charakt. Mijöberg (1) p. 109. — platyrhynchus N. auf Aquila chrysaetos,

Milvus regalis, Pernis apivorus, Buteo vulgaris u. B. lagopus p. 109. — milvi

n. sp. p. 109—111 Taf. 3 Fig. 1 in toto, Fig. 63 Abdom. (auf Milvus aegyptius)

cf. auch Jägerskiöld, Results ete. Egypt. a. W. Nile: Mallophaga. — asturinus

n. sp. p. 112—113 Taf. 1, Fig. 6, 7 in toto (auf Astur palumbarius). — cursor N.

auf Strix brachyotus u. Strix bubo). — clypeatus n. sp. (gehört zur Gruppe

Strigicolae Piagets, bei welcher der Kopf vorn gerundet ist u. steht celebrachys

N. nahe) p. 113—115 $2 Kopf Fig. 64 $ (auf Strix tengmalmi). — athene

n. sp. (durch den längl. Körper D. rostratus am nächsten) p. 115—117 Taf. 3

Fig. 2 in toto (auf Carine meridionalis) cf. auch Jägerskiöld, Results of Swed.

Exp. to Egypt. a. the W.Nile: Mallophaga. — latifrons N. auf Cuculus ca-

norus). — superciliosus N. Beschr. u. Abb. von Piaget nicht richtig. Die

Querbinden der Segmente sind schärfer begrenzt u. die Genitalflecke beim

d durchaus nicht ‚„‚mal limitee‘“. — D. sp. Mijöberg, Zool. Anz. Bd. 35 p. 289

Fig. 6 Antennenspitze, desgl. Fig. 8 Hleibsspitze. — ocellatus N., guttatus N.,

atratus N., suberassipes N., communis N. nebst var. fuscicollis N., compar Piag.,

excisus N. Literatur u. Wirtstiere p. 118. — bifrons N. Bemerk. zur Beschr.

p. 118—119 Fig. 66 Hinterleib (auf Merops madagascariensis). — leontodon N.

auf Sturnus vulgaris p. 119. — cerylinus n. sp. (erinnert an D. cephaloxys N.

auf Alcedo ispida) p.119—121 32 Hinterleib vom $ Fig. 67, vom 2 Fig. 68

(auf Ceryle rudis von Khartum) cf. auch Jägerskiöld, Results of Swed. Exp.

to Egypt. a. W. Nile: Mallophaga. — auratus N. von Scolopaz rusticola

Die zahlr. Stücke stimmen besser mit der Nitzschen als mit der Piagetschen

Beschr. p. 121—122. — pertusus N., testudinarius Den., acanthus Gieb.,

limosae Den., fusciformis Den. p. 122 Wirtstiere. — arcticus n. sp. p. 122—124

Ss? Hinterleib des $ Fig. 69 (auf Tringa sp. von der Penduluminsel). —

cordiceps Gieb., temporalis Gieb. u. integer N. Wirtstiere p. 124. — bimaculatus

n. sp. (gehört zur Gruppe „bisignati‘‘) p. 125—127 Kopf Fig. 70, Hinterleib

d. & Fig. 71, des 9 Fig. 72 (auf Ibis sp. aus Südamerika). — phoenicopterus

n. sp. p. 127—129 Taf. 3 Fig. 3 (auf Phoenicopterus roseus). — cygni Den.

auf O’ygnus color p. 129. — icteroides N. Auf zahlreichen Schwimmvögeln

p: 129—130. — brunneopygus n. sp. p. 130—131 $2 Hinterleib Fig. 73 (auf

Anser leucopsis bei der Clavigerinsel). — pustulosus N., ları Den., melano-

cephalus N., bassanae Den., colymbinus Den. u. celedoxus N. p. 131—132

Systematik. 245

(Wirtstiere).. — melanocephalus N. &-Geschlechtsorgane p. 250 Fig. 144.

sp. Ei p. 261. — D. snyderi n.sp. Kellog u. Paine, Entom. News vol. 21

p. 124 fig. 1 u. 2 (Laysaninsel, auf Sterna lunata).

Eurymetopidae nov. fam. (vereinigt in sich viele Charaktere d. Lipeuridae

u. Docophoridae. Der Bau des $-Geschlechtsapparates ist sehr charakter.)

Mjöberg (1) p. 99—100. — Gatt. Eurymetopus Tasch.

Eurymetopus Tasch. Charakt. Mjöberg (1) p. 100. — taurus N. auf Diomedea sp.

— latus Piag. u. Oncophorus Schillingi Bud. gehören auch hierher. — sp. $-Ge-

schlechtsapaarat p. 248 Fig. 141.

Eutrichophilus n. g. Trichodectid. Charakt. Mijöberg (1) p. 71—72. — cercolabes

n. sp. (gut unterschieden durch di> Gestalt des Prothorax) p. 72—75. Spitze

des Mittelbeins Fig. 44, Eier, mit sehr großen Schleimmassen umgeben Fig. 45,

in toto Taf. 4 Fig. 7,8 (auf Oercolabes prehensilis). — cordiceps n. sp. p. 75

—77 82 Taf. 4 Fig.5,6 (gut charakt. Sp.) Kopf Fig. 46 (auf Cercolabes

prehensilis ‚„Quendu-Stachelschwein‘‘, „Auris-Caschero“; Colon, Sta. Cruz,

Prov. Rio Grande de Sul). — minor n. sp. p. 77—79 Fühler Fig. 47 u. 48

letzte Segmente Fig. 48 in toto Taf. 4 Fig. 3 (auf Cercol. prehensilis, wie zu-

vor). — mexicanus n. sp. p. 79—82, Taf. 4 Fig. 1,2 Details Fig. 49 Kopf,

Hinterbeine Fig. 50 (auf Cervus [,,mazama‘‘] mexicana). — mexicanus Mjöb.

&-Geschlechtsapp. p. 244 Fig. 137. — sp. p. 261 Fig. 45.

Gliricola n. g. Gyrop. Mjöberg (1) p. 18—20. — Integument mit charakteristischer

Skulptur. Tergite u. Sternite mit kleinen kurzen bogenförmigen Strichen,

was an die Pediculiden erinnert. Gelenkhaut der Hinterleibssegmente mit

einigen Querreihen von feinen Höckerchen. Mundteile zwischen Ober- u.

Unterlippe zurückziehbar, fast gänzlich endotroph. Maxillartaster 2-gliedrig,

Labialtaster 1-gliedrig. Als integrierender Bestandteil treten in den Mund-

teilen ein paar stäbchenförmiger, den sogen. „Gabeln der Psociden‘“ ähnliche

Gebilde auf, die durch Kontraktion eines langen Muskels seitwärts verschoben

werden können. Prothorax mit einem großen Stigma, demjenigen der Pedi-

culidae äußerst ähnlich. Klauen fehlen. Parasiten auf Mamm.). — gracilis

N. p. 20 Details Fig. 4—8 (auf Cavia cobaya), $-Geschlechtsapparat Fig. 129

auch Mijöberg, t.c. p. 292—293, Details Fig. 11—14.

Goniocotes Burm. (3. Glied des $ ohne Processe oder Dorne, sondırn einfach)

Mjöberg (1) p. 106. — compar N., microthorax N., hologaster N. Literatur u.

Wirtstiere p. 106. — nigromaculatus n. sp. (kleine, habituell wenig abweichend

von dem bisher bek. Formen) p. 106—107 2 (auf Numida mitrata (?) von

Madagaskar. — bifasciatus Piag. sehr charakt. Sp. auf Sphaeniscus

magellanicus vor.

Goniodes N. Enthält morphologisch interessante u. abweichende Formen, die

noch nicht hinreichend bekannt sind. Taschenberg sonderte ab Strongylocotes

(abgerundete Schläfen u. Hinterhauptecken), Goniodes Subg. Rhopaloceras

(sehr stark flügelartig ausgebreitete Hinterhauptsecken), ist wohl als selb-

ständige Gatt. anzusehen, Gon. subg. Caloceras (mit stark hervortretenden

Hinterhauptsecken u. mit den beiden letzten Fühlergliedern verkümmert)

Gon. subg. oder gen. Lepidophorus mit Str. agonus N. u. Str. corniceps Taschb.

Mijöberg (1) p. 102. — damicornis N., heteroceras N. u. N. chelicornis N. Liter.-

angaben u. Wirtstiere p. 102. — numidae n.sp. p. 102—105. Hinterleib

d. & Fig. 60, des 2 Fig. 61 (auf Numida ptilorhyncha im Sudan), cf. auch

246 Insecta. Mallophaga (= Lipoptera) für 1910.

Jägerskiöld, Results of Zool. Exped. to Egypt. a. White Nile, Mallophaga. —

— stylifer N., falcicornis N. u. colchicus Den. Literatur u. Wirtstiere

p. 105—6; Nile. — faleicornis N. $- Geschlechtsorgane Mjöberg (1) p. 249

Fig. 142. — @. bicuspidatus N. Kopf d. $. Mijöberg, Zool. Anz. Bd. 35 p. 289

Fig. 4.

Goniodidae nov.fam. Charakt. Mijöberg (1) p. 100—102. — Scharf be-

grenzte Familie u. ihre Repräsentanten habituell durch die kurze u. breite

Körperform u. die immer gut entwickelten Randschienen der Hinterleibs-

segmente charakterisiert. Fast ausschließlich auf Gallinaceae. — Gatt.

Goniodes N. u. Goniocotes Burm.

Gyropidae (Kell.) Charakt. Mijöberg (1) Arkiv f. Zool. Bd.6 Nr. 13 p. 16—17

(ausschließl. auf Mammal., speziell südamerik.)., — Gatt. Gliricola n.g.

u. @yropus.

Gyropus N. Charakt. Mjöberg (1) p. 20. Die Gatt. zählt heute 6 Repräsentanten,

von denen 5 ausschließlich auf südamerik. Wirtstieren vorkommen. Eine

gigantische Form ist @. dicotylis Macal. — ovalis N. auf Cavia cobaya. —

Details zu Gonalis Textfig. 1—3 u. 9, $-Geschlechtsapparat Fig. 130, Ei p. 259.

Laemobothriidae. Charakt. Mijöberg (1) p. 53—54. 1 Gatt. Laemo-

bothrium N.

Laemobothrium N. Hierher die größten bekannten Spp. Mijöberg (1) p. 54. —

giganteum N. eine eigene Sp., Abb. des Kopfes Textfig. 33. — titan Piag.

p. 55 Kopf Fig. 34. Fühler Fig. 31, Bein Fig. 32 (auf Melvus aegyptius u.

Falco tinnunculus). — atrum N. auf Fulica atra. — titan Piag. p. 244 Fig. 135,

136.

Lipewridae nov fam. Charakt. Mjöberg, Arkiv f. Zool. Bd. 6 No. 13. Meist

auf Raub- u. Schwimmvögeln, wenige auf Passeres. — Gatt. Lipeurus.

Lipeurus. Bei einer Anzahl von Formen ist beim 3 immer das Basalglied sehr

kräftig entwickelt; hierher der große L. ferox Gieb. 8,5 mm 1. Mjöberg (1)

p. 83. — perspieillatus N. p. 883—85. Beschr., Körperproportionen. Unter-

schiede von der folg. Sp. quadr. (auf Vultur fulvus). — quadripustulatus N.

auf Aquila chrysaetos) Hinterbein Fig. 51 auf p. 82. — ochraceus N. auf

Tetrao urogallus u. Pernis apivorus (als Überwanderer). — baculus N. Lite-

ratur (auf Columba oenas, CO. livia domestica u. O. turtur). — sudanicus

n. sp. p. 85—87 Hinterleib Fig. 52 (auf Turtur semitorquatus, auch als Über-

wanderer auf Milvus aegypticus) ef. auch Jägerskiöld, Results of Zool. Exp.

to Egypt. a. White Nile: Mallophaga. — variabilis N. Literatur (p. 87) (auf

Gallus domesticus). — numidianus n. sp. (Färb. wie bei noch anderen auf

Numida lebenden Anoplura schwarz auf weiß) p. 87—89 Taf. 3 Fig. 4, 6

(sehr ausgezeichnete Sp.) p. 87—89 (auf Numida mitrata auf Madagaskar

u. N. ptilorhyncha aus dem Sudan). — L. platyclypeatus Piag. p. 89—90

(auf Turnix nigricollis). Bemerk. zu dieser Form, die von den auf Perdix,

Ortyx u. Megapodium lebend. Formen sehr abweicht. — Literatur u. Wirts-

tiere folg. Spp. jejunus N., luridus N., hebraeus N., leucopygus N., raphidius

N., squalidus N., temporalis N., lacteus N., temporalis N., (andere Sp. als

die vorige temp.), tricolor Piag., longicornis Piag. p. 89—91. — L. absıtus

n.sp. Kellogg, Zoologica New York vol. 1 p. 119 fig. 39 (auf Opisthocomus

hoazin in Venezuela). — perspieillatus N. $-Geschlechtsapparat p. 245 Fig. 138

— L. bifasciatus Kopf. Mijöberg, Zool. Anz. Bd. 36 p. 289 Fig. 2.

Systematik. 247

Menopon N. Mit einer großen Zahl von Formen, die auf fast allen Vogelgruppen

gefunden werden. M.longitarsus Piag. dürfte Vertreter einer neuen Gatt. sein.

Revision sehr nötig. — mesoleucum N. Angabe der Wirtstiere p. 28. —

phanerostigma N. Giebels Beschr. ist unvollständig. Neubeschr. Mjöberg (1)

p. 23—30 (Wirt: C'uculus canorus). — pici Den. p. 30. — coracopsis n. SP.

(habituell ein wenig an die von Trichoglossus ornatus von Piaget beschr.

M. parumpilosum P. erinnernd) p. 30—32 2 Fig. 20,21 (auf Coracopsis

obscura aus Madagaskar). — gonaphaeum N. von Corvus corax, auch als Über-

wanderer auf Buteo vulgaris. — anathorax N. auf Corvus monedula. — picae

Den. auf Pica caudata p. 32. — indivisum N. auf Garrulus glandarius. —

cucullare N. (erstes Hinterleibssegm. in der Mitte nach hinten ausgezogen

oder verlängert, so daß die Spitze fast an den 3. Tergiten stößt) p. 33. -——

rusticum N. auf Hirundo rustica p. 33. — lagopi Grube von Lagopus-Arten

p- 33. — Meyeri G. (?) von Limosa lapponica. — crocatum L. auf Haematopus

ostralegus. — pici Den. &-Geschlechtsapparat p. 241 Fig. 132. — sp. Ei

p- 260 Fig. 155. — lutescens N. (weit verbreitete Art) p. 33 (Wirtstiere:

Vanellus, Anas, Uria, Mergulus u. Mormon) p. 33. — albofasciatum Plag. (!)

auf Vulpanser adorma p. 34. — fuscofasciatum Plag. auf Lestris parasitica

p- 34. — phaeopus N. auf Larus canus u. Alca torda p. 34. — pustulosum N.

auf Sula bassana p. 34. — madagascariense n. sp. (erinnert an M. icterum N.)

p- 34—36 2 Detail Textfig. 22 Kopi (Wirt: Scopus umbretta von Madagaskar).

— pici Den. Fig. 132.

Menoponidae nov. fam. Charakt. Mjöberg, p. 26—28. Hierher die Gatt.

Menopon N., Colpocephalum N., Pseudomenopon n. g. Nitzschia Den., Trinoton

N. u. Tetrophthalmus Groß. Die letzten beiden nehmen eine Sonderstellung

ein. Zahl der Spp. sehr beträchtlich, bei den letztgenannten zwei gering

u. an bestimmte Vogelgruppen gebunden.

Nirmus N. Von Piaget ist diese Gatt. in mehrere Gruppen aufgeteilt worden,

die wahrscheinlich als eigene Gatt. gelten können. (Ist vorläufig eine Kol-

lektivgatt.) Mjöberg (1) p.133 fuscus N., rufus N., fenestratus N., candidus N.,

varius N., uncinosus N., nebulosus Den., limbatus N., densilimbus N., delicatus

N., marginalis N., quadrulatus N., truncatus N. Literatur u. Wirtstiere

p- 134—135. — nigrolimbatus n.sp. (gehört zur Gruppe obscuris-suturati

Piagets u. habituell N. furvus N. ähnlich) p. 135 Taf. 5 Fig. 4 (bei Jinretlen

auf Scolopax sp.). — inaequalis Piag. auf Numenius arquatus, etwas dunkler

als gewöhnlich p. 136. — hoplopteri n. sp. p. 137—139 52 Hinterleib des 2

Fig. 74 (auf Hoplopterus spinosus, Khartum). (cf. auch Jägerskiöld, Results

of Swed. Zool. Exp. to Egypt. and W. Nile: Mallophaga). Von diesem Vogel

waren bisher keine Mallophaga bekannt. — furvus N., phaeopi Den., zonariusN.

u. cingulatus N. Literatur u. Wirtstiere p. 139. — fulvoguttatus n. sp. (habituell

etwas an N. nigrolimbatus erinnernd) p. 139—140 2 Taf. 1 Fig. 3 in toto

(an Wagas Winterstation auf einem Phalaropus fulicarius). — obscurus N.,

selliger N., ochropygus N., subeingulatus N., hiaticulae Den. Wirtstiere, Fund-

orte p. 141. — cursorius n.sp. p. 141—143 SQ Taf. 1 Fig. 4 in toto (auf

Cursorius gallicus in Schweden, gelegentlich erbeutet). — umbrinus N. (sehr

selten, auf Scopus umbressa Meig. aus Madagaskar). — dentatus n. sp. (gut

charakter. Sp.) p. 143—145 Kopf p. 75 (auf Platalea sp.). — trimaculatus

N.(?), triangulatus N., lineolatus N. eugrammicus N. Literatur u. Wirtstiere

248 Insecta. Mallophaga (= Lipoptera) für 1910.

p. 145. — pictus n. sp. (charakteristisch gefärbt) p. 145—147 Kopf Fig. 76,

Hinterleib Fig. 77 (auf Uria grylle von Jinretlen). — citrinus N. auf Alca

torda u. Uria troile p. 146. — obliquus n. sp. (voriger sich nähernd) p. 148

—149 $92 (Uria troile u. Mergulus alle). — pileus N. $-Geschlechtsapparat

p. 251 Fig. 145. — sp. Ei p. 261.

Nitzschia Den. Zwei nahe verw. Spp. mit sehr beschränkter Verbreitung, auf

Cypselus apus. Mjöberg (1) p. 51. —tibialis Piag. p. 51. — N. latifrons n. sp.

Carriker u. Shull, Entom. News vcl.21 p.56 fig. 4 (auf Riparia riparia

in Michigan).

Ornithobius Den. (Systemat. Stellung der Gatt. ist unsicher, ob zu den Lipeur.

gehörig, ist fraglich. Vielleicht wäre es besser, sie nebst der nahe verw. Gatt.

Akidoproctus Piag. in einer eigenen Familie abzuschließen) Mijöberg (1)

p. 96. — bucephalus Gieb. auf Cygnus olor p. 97. — Klinkowstroemi n. Sp.

(groß, gut charakterisiert, O. goniopleurus am nächsten stehend) p. 97—99

Taf. I Fig. 1,2: $-Geschlechtsapparat p. 247 Fig. 140 (auf Anser leucopsis

bei der Clavigerinsel).

Oxylipeurus n. g. (Typus der neuen Gatt. ist Lipeurus inaequalis Piag. Sie ent-

spricht etwa der Piagetschen Gruppe „circumfasciati‘“ oder Taschenbergs

„eircumfasciati fronte antico‘‘) Mjöberg (1) p. 91--92. — Hierher die Spp.

Lipeurus acuminatus Piag. auf Excalfactoria australis, L. cinereus N. auf

Perdix coturnix, L. dissimilis Piag. auf Ortyxz virginianus, L. docophoroides

auf Ortyx californicus, L. fulvus Piag. auf Imochorus rumicivorus, L. hetero-

grammicus N. auf Perdix cinerea, L. inaequalis Piag. auf Megapodium rubripes,

L. oxycephalus Tasch. u. Meg. Freycineti, M. Reinwardti, L. rubrofasciatus

Piag. auf Oreoperdix crudigularis, L. sinuatus Tasch. auf Megap. Freycineti

u. M. Reinwardti, L. unicolor Piag. auf Perdix javanica. — N eu: madagas-

cariensis n. sp. (charakter. schwarze Zeichn. auf ungefärbt. Grunde) p. 92

—94, Hinterleib Fig. 53, Hleibsspitze Fig. 54 (auf Margaroperdix striata

auf Madagaskar).

Pectinopygus n.g. (in der Körperform zwischen Lipeurus u. Nirmus stehend)

Mjöberg (1) p. 95—96. — Typus: P. pullatus N. auf Sula bassana. Details

Fig. 55, 56 Fühler, 57 Hinterleibsspitze, $-Geschlechtsapparat p. 246 Fig. 139.

Philopterus. Transport eines solehen durch Ornithomyia. Wanach, Entom. Rund-

schau Jhg. 27 p. 21.

Physostomum N. auf relativ sehr kleinen Tieren u. in sehr geringer Zahl; sie sind

sehr selten. Mijöberg (1) p. 58—60 Taf. 2 Fig. 3. — nigrolimbatum n. Sp.

(steht Ph. sulphureum von. Oriolus galbula am nächsten) p. 58—60 Taf. 2

Fig. 3 (auf einer Silvicola oder Calamoherpe). — clypeatum n. sp. (ähnelt

Ph. irascens N. u. Ph. intermedium Piag. u. Ph. maculatum Piag.) p. 60—61

Taf.2 Fig. 1 (auf Alauda alpestris). — sp. von Emberiza nivalis p. 61 Kopf

u. Prothorax p. 61.

Physostomidae. Charakt. Mjöberg p. 55—58. — Gatt. Physostomum.

Pseudometopon n. g. Mjöberg p. 50—51. — Ps. (Menopon) tridens N. p. 51 (auf

Fulica atra, Podiceps cristatus u. Gallinula chloropus), Details Textfig. 27

—30, & Cop.-Organ p. 242 Fig. 133.

Pseudonirmus Docophorid. n. g. Mijöberg (1) p. 149—150. Abb. in toto Taf. 3

Fig. 7. — charcoti Neum. auf Pagodroma nivea aus Süd-Georgien, d-Ge-

schlechtsapparat p. 251 Fig. 146.

Publikationen und Referate. 249

Rhopaloceros sp. weicht betreffs der $-Geschlechtsorgane in vielen Punkten

von G@oniodes ab. Mijöberg (1) p. 250 Fig. 143.

Strigiphilus subg. n. von Docophorus. Mijöberg (1) p. 132—133. — Typus:

D. heteroceros N..

Tetrophthalmus Groß mit titan Piag. Mijöberg (1) p. 52—53.

Trichodectes N. Wirtstiere usw. Mjöberg (1) p. 63. — latus N. auf Canis familiaris

p. 63. — crassus N. auf Meles taxus p. 63. — retusus N. auf Mustela erminea

p- 64. — madagascariensis n. sp. (sehr klein) p. 64—65 3 Fig. 38 u. 39 (auf

Eupleres goudoti). — longicornis N. auf Cervus dama p. 66. — tarandı n. sp.

(gehört in die Gruppe pilosus-scalaris-longicornis) p. 66—68 Taf. 1 Fig. 5

(auf Cervus tarandus). — T. tibialis N. auf Cerv. dama u. capreolus. — T. longi-

cornis N. auf Cerv. elaphus, dama u. ©. capreolus p. 66. — tibialis Piag. auf

©. capreolus u. ©. pygargus aus Sibirien. — climax N. auf Capra hircus,

scalaris N. auf Bos taurus, Ei Fig. 70, pilosus G. auf Equus asinus u. parum-

pilosus Piag. p. 69. — scalaris, Ei p. 260 Fig. 40, 156.

Trichodectidae (Kell.) Mjöberg. Mijöberg (1) p. 62—63. — Ausschließiich

auf Säugetieren; sehr weite Verbreitung. — Gatt. T’richodectes N.

Trinoton N. Myöberg (1) p. 52. — Nur wenige Formen. luridum auf Schwimm-

vögeln. — lituratum N. auf Fuliga Stelleri u. Fratercula cirrhata p. 52. — con-

spurcatum N. auf Cygnus musicus u. C. olor p. 52; S-Geschlechtsapparat

p. 134 Fig. 134.

Anoplura für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Anderson, J. F. On the infeetivity of Tabardillo or Mexican

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250 Insecta. Anoplura für 1910,

— (2). Diagnosen neuer Anopluren. Zool. Anz. Bd. 35 p. 714

—715, 1 Fig. — Pediculus (1 n.sp.), Haematomyzus (1), Hoplopleura

(1n.sp.), Polyplax (ln. sp.).

Fischer, W. Über die Phthiriasis der Cilien und des Kopfhaares.

Monatshefte f. prakt. Dermat. Hamburg Bd.50 1910 p. 115—118.

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Mjöberg, Eric (1). Studien über Mallophaga und Anoplura. Arkiv

Zool. Stockholm vol. 6 No. 13 1910 297 pp. 5 Taf. — I. Systematisch-

biologische Studien: Anoplura (p.150—183): Bemerk. zur Kenntn.

ders. Literatur, Geschichtliches. Es sind wohl nicht mehr als 60 Arten

bek., die sich auf 16 Gatt. verteilen. Sie finden sich nur auf Mammalıia

und sterben von denselben entfernt schnell ab. Systematik der Formen

(p. 1565q.). I. Fam. Haematopinidae Enderl.: Liognathus Enderl.

(£+1 n.sp.), Polyplax (3), Neohaematopinus n.g. Acanthopinus

(ln. sp.), Hoplopleura (1), Haemodipsus (2), Haematopinus (3). —

2. Pediculidae Leach: Pediculus (2 + In. sp.), Phthirius (1), Pedieinus

Gerv. (1 + 2n. sp.). — 3. Echinophthirvidae Enderl.: Echinophtirius (1).

— 4. Lepidophthirüidae: Arctophtirius n. g. (1). — 5. Haematomyzidae:

Haematomyzus (1). — II. Morphologisch-anatomische Untersuchungen

(p. 183— 262) cf. unter Mallophaga. Literatur (p. 2831—294).

— (2). Studien über Pediculiden und Mallophagen. Zool. Anz.

Leipzig Bd. 35 1910 p.287—293. — Während mehrere Forscher,

wie Börner, Cholodkovsky, Handlirsch Zweifel hegen über die Ryn-

chotennatur der Anoplura, hält Enderlein 1904 die Verwandtschaft

mit den Rhynchoten für wahrscheinlich. Die systematische Stellung

der Pedieulidae ist also noch nicht definitiv festgestellt. Der Grund

hierfür liegt in der Schwierigkeit, die stark differenzierten Mundteile

zu deuten. Enderlein glaubt konstatieren zu können, daß die Schweine-

laus, Haematopinus suis, unverlängerte Mandibeln von gewöhnlicher

Gestalt besitzt, kommt aber trotzdem zu dem Schlusse, daß die Pedi-

culidae als Unterordnung der Rhynchoten zu betrachten seien. Mjöberg

ist der Ansicht, daß gerade diese Tatsache geeignet sei, der Auffassung

von der Rhynchotennatur die letzte Stütze zu nehmen. Es ist ver-

werflich, Schlüsse über Verwandtschaft nur auf ein einziges Merkmal

wie hier auf die Mundteile zu begründen. Es müssen alle Organsysteme

in Betracht gezogen werden. Die Form der Antennen bietet mehrere

interessante Ähnlichkeiten. Es liegen bei beiden Gruppen latente

Möglichkeiten vor, sekundäre antennale Geschlechtscharaktere in

ganz derselben Richtung auszubilden. Von Konvergenz kann hier nicht

die Rede sein. Auch das Integument einiger Mallophaga bietet Ahnlich-

Übersicht nach dem Stoff. 351

keiten mit dem der Pediculidae. Die Stigmata von Ghricola gracilis

N. sind spezifisch denjenigen der Läuse sehr ähnlich, ebenso auch die

Bildung des Pharynx in beiden Gruppen. Den bei gewissen

Pediculidae vorkommenden Hinterhauptsfortsatz glaubt Verf. auch

bei einer später zu beschreibenden Docophorus-Art und noch deutlicher

bei Trichodectes tarandı (auf Cervus tarandus) gefunden zu haben.

Weitere Übereinstimmungen finden sich in den männlichen Geschlechts-

organen, deren Bauprinzip dasselbe ist. Sehr viele männliche Pedi-

culidae und Mallophaga nehmen das Weibchen während der Kopulation

auf den Rücken. Alle diese Tatsachen drängen den Verf. darauf hin,

schon jetzt die Behauptung aufzustellen, daß zwischen den Pedi-

culiden und den Mallophagen eine enge genetische Beziehung besteht.

— Wenn wir versuchen wollen, die schematische Stellung bezw. Ver-

wandtschaft zwischen beiden Gruppen festzustellen, so müssen wir

zunächst diese primitiven Formen kennen lernen. Unter den Pediculidae

sind wahrscheinlich diejenigen der Nager als die niedriger organisierten

zu betrachten. Unter den Mallophaga scheint es die Liotheide Menopon

und ferner G@yropus mit @yropus gracilis N. zu sein. @. gracilis ist be-

züglich seiner Organisation äußerst interessant u. gehört gamicht zu

Gyropus, sondern ist Vertreter einer neuen Gattung @hricola, deren

Mundteile zwischen der Öberlippe und der Unterlippe zurückziehbar

und fast, gänzlich endotroph sind. Es integriert in den Mundteilen

auch ein paar stäbchenförmiger, an der Spitze breiterer u. hier fein ge-

zähnelter, an die sogen. „Gabeln“ der Psocidae erinnernder Gebilde,

deren Natur und morphologischer Wert erst festgestellt werden soll.

Details zu @liricola Fig. 10—14.

Neumann, L. 6. Note sur les Pediculides. Arch. parasit. Paris

T. 13 1910 p. 497—537.

Neumann, R. 0. Über das Verhalten der Spirochäten des Rückfall-

fiebers im Tierkörper und die experimentelle Übertragung des Parasiten

durch Zecken und Läuse. (Nat. med. Ver. Heidelberg). München.

med. Wochenschr. Jahrg. 56 p. 477.

Pellier. Über den Farbstoff in den blauen Flecken (Maculae

coeruleae). (Vorhandensein eines Pigments in den Eiern des Pedi-

culus). — Übersetzt von J. Türekheim, Monatshefte f. Dermat. Ham-

burg Bd. 48 1909 p. 56—57.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1906).

Morphologie ete.

Morphologie, Anatomie (Integument, Kopf, Thorax, Abdomen, sowie die

verschiedenen Organsysteme spez. Geschlechtsorgane): Mjöberg.

Physiologie.

Farbstoff in den blauen Flecken (Maculae coeruleae): Pellier.

252 Insecta. Anoplura für 1910.

Parasiten und Krankheitsübertragung.

Insekten und Krankheiten: Doane. — Ektoparasiten der Ratte: Banks.

— Echinophthirius phocae (Luc.) als Parasit der Saima-Robbe: Luther. — Phthiriasis

der Cilien u. des Kopfhaares: Fischer. — Verhalten von Haematopinus macro-

cephalus (Pferd) u. Haematopinus piliferus: Jakob. — Uebertragung des Tarba-

dilo oder Mexikanischen Fiebers auf Affen: Anderson. — Läuse als Überträger

von Spirochäten des Rückfallfiebers: Neumann.

Faunistik.

Deutschland: Fahrenholz (neue Anopleura). Weitere Fundorte ergeben

sich aus den Wirtstieren.

Systematik.

Acanthopinus n. g. Mjöberg (1) p. 160—161. — sciurinus n. sp. (verw. mit der

ebenfalls hierhergehörigen Haematopinus antennatus Osb. p. 161 —164 De-

tailfig. 80—83 (auf Sciurus vulpinus). — sciurinus. Geschlechtsorgan p. 232

Fig. 122, Ei p. 257 Fig. 150.

Arctophtirius n.g. Lepidophtirin. Mijöberg (1) p. 177—178.—trichechi

Boh. Beschreib. p. 178—180 Details Fig. 90—92 (gerade an der Schnautze,

ausnahmsweise an den oberen Teilen des Halses von T'richechus rosmarus,

während die Arten der nahe verw. Gatt. Lepidophtirius u. Antarctophtirius

nicht am Kopfe oder gar an der Schnauze, sondern an verschiedenen Teilen

des Rumpfes sich aufhalten). — trichechi Boh. $ Geschlechtsapparat Fig. 126

—128, Ei p.259 Fig. 154.

Echinophtiriidae Enderl. arm an Gatt. u. Arten. Die Spp. finden sich meist

auf dem Kopfe u. an dem Schwanze ihrer Wirte. Mijöberg (1) p. 176. Gatt.

Echinophtirius Gieb. u. Arctophtirius n. g.

Echinophtirius phocae Luc. leicht erkenntlich durch sein Stachelkleid; auf Phoca-

Arten. Mjöberg (1) p. 176—177. — E. phocae Luc. $-Geschlechtsapparat p. 233

Fig. 124, 125, Ei p. 259 Fig. 121.

Haematomyzidae Enderl. mit nur einer, sehr isoliert stehender Art Haemato-

myzus. Mjöberg (1) p. 181. — Haematomyzus proboscideus Piag. eine buchstäbl.

Parallelerscheinungen zu ihrem Wirte. Mijöberg (1) p. 181—182. Thorax

u. Hleib mit Tracheensystem Fig. 93 auf dem Nacken des indischen Ele-

fanten, nicht bloß auf dem afrikanischen. Von großem Interesse wäre der

eventuelle Parasit des Nashorns.

Haematomyzus elephantis Piag. Die Var. weicht in den Größenverhältnissen ab,

weshalb Verf. eine vergleichende Zusammenstellung der Größen bringt.

Das $ der Var. ist länger mit schmälerem Thorax, das $ kürzer. Die

Krallen tragen an der Innenseite mehrere kleine Zähne. Fahrenholz, Zool.

Anz. Bd. 35 p. 714—715 $? (auf Elephas indicus), auch Fahrenholz, Jahresber.

Ges. Hannover Bd. 58/59 Abt. D. p. 67.

Haematopinidae Enderl. Hierher die Gatt. Haematopinus Leach, Liognathus

Enderl., Linognathus Enderl., Polyplax Enderl., Hoplopleura Enderl.,

Haemodipsus Enderl., Solenopotes Enderl,, Haematopinoides Enderl.,

Systematik. 253

Euhaematopinus Osborn u. Eremophtirius Glienk. Mijöberg (1) p. 156. —

Eine Sonderstellung nimmt wohl Euhaematopinus Osb. ein. Diese Gattung

bildet wohl am besten eine besondere Form.

Haematopinus Leach. Mijöberg (1) p. 165. — suis L. p. 165. — punctatus Rudow

p. 166 (auf Bos grunniens). — phtiriopsis auf Bubalus caffer, tuberculatus

Gieb. von Bos bubalii ist davon verschieden. p. 166—167 Hinterleibsspitze

Fig. 84. — asini L. auf Equus Burchelli p. 167. — Fleckenstellung auf dem

Kopfe von H. punctatus Rud., H. phtiriopsis Gerv., H. tuberculatus G. —

suis L. Geschlechtsorgane p. 228 Fig. 117, 118. — phtiriopsis Gerv. desgl.

p- 230 Fig. 119. — Neumann beschreibt in Arch. parasitol. vol. 13 folg. Spp.:

latus n. sp. p. 505 figs. 6—9. — H. (Linognathus) praelongiceps 1. sp. p. 508

figs. 10—12. — H. (Polyplax) quadridentatus n. sp. p. 511 fig. 13. — H. lon-

gulus n. sp. p. 413 fig. 14—17. — bidentatus n. sp. p. 415 fig. 18. — echinatus

n.sp. p. 517 figs. 19—20. — pectinifer nom. nov. p.20. — setosus Piaget

p: 528. — macrocephalus u. piliferus Jacob, Münchener tierärztl. Wochen-

schrift Bd. 53 p. 193—199, 213—220. — H. sciuropteri Osb. Mjöberg, Zool.

Anz. Bd. 35 p. 289 Fig. 15, Hinterleibsspitze Fig. 9$. — antennatus Osb.

Kopf 3 Fig. 2. — sp. Hinterleibsspitze Fig. 8.

Haemodipsus Enderl. Mjöberg (1) p. 165. — Typus: H.Iyriocephalus Burm. auf

Lepus timidus u. H. ventricosus Den. auf Lepus cuniculus.

Hoplopleura Enderl. Mjöberg (1) p. 164. — acanthopus Burm. Literatur. Wirts-

tiere: Mus musculus u. Arvicola agrestis, Lemnus torquatus. In diese Gatt.

gehört auch Eremophtirius Werneri Glienk. — H.lineata n. sp. (die Fort-

sätze an den Pleuriten erheblich kleiner als bei Hopl. acanth. Die meisten

Abdominalborsten zweiteilig. - An der Ecke des 2. Sgmts. (außer einem

kräftigen Dorn) 2 Borsten, an der des 3. nur eine, je 2 noch am 7. u. 8. Sgm.

An den übrigen Ecken weder Dornen noch Borsten) Fahrenholz, Zool. Anz.

Bd. 35 p. 715 2 Details auf Fig. (Wirt: Mus minutus), auch Fahrenholz,

Jahresber. Ges. Hannover Bd. 58/59. Abt. D. p. 7l.

Lepidophtiriidaenov.fam. (Sehr plump u. gedrungen. Thorax u. Ab-

domen mit farblosen oder gefärbten, dünnen, nierenförmigen bis herz-

förmigen Schuppen bedeckt, die mit einem Stiele an dem Integumente

befestigt sind u. wahrscheinlich aufgerichtet werden können). Mijöberg (1)

p. 176—177. — Gatt. Arctophthirius.

Linognathus Enderl. mit etwa 10 Formen, die an Huftieren vorkommen, einige

auch auf Raubtieren. Mijöberg (1) p. 156. — piliferus Burm. p. 157 Fig. 77

Mittelbein. — gazella n.sp. (tibialis Piag. u. L. angulatus Piag. ziemlich

nahest.) p. 157—159 $2 (von einer Gazelle). — breviceps Piag. (?) (auf einem

Cervus-Hirsch aus Guatemala). — stenopsis Burm. p. 159 (auf Capra

hircus) p. 159. — gazella Mjöb. Geschlechtsorgan p. 231 Fig. 121 Ei p. 257

Fig. 149. — piliferus Burm. Kopf Fig. 6. Mijöberg, Zool. Anz. Bd. 35 p. 289.

Neohaematopinus n. g. Mjöberg (1) p. 160. — Typus: Haematopinus sciuropteri

Osborn p. 160 Abb. des Tieres & Fig. 79.

Pedieinus Gervais (3 gliedr. Fühler). Mjöberg (1) p. 172. — breviceps Piag. auf

Cercopithecus sp. p. 172. — hamadryas n. sp. (in der Kopfform schließt sie

sich an Ped. longiceps Piag. u. Ped. graciliceps Piag. an) p. 172—174 Details

Fig. 86 u. 87 (auf Hamadryas sp.). — paralleliceps n. sp. (steht P. hamadryas

Mjöb. u. Ped. gracilipes Piag. nahe) p. 174—176 Kopf Fig. 88 Ei p. 158

254 Insecta. Anoplura für 1910.

Fig. 152 (auf Macacus silenus, auf demselben Wirtstier wurde auch Ped.

breviceps Piag. gefunden).

Pediculidae Leach. Kurze Charakteristik, eine ziemlich natürl. Familie.

Mjöberg (1) p. 167.

Pediculus L. mit 4 morphologisch sehr nahest. Formen. Mijöberg (1) p. 167—168

— capitis N. Eine Untersuchung der P.-Spp. bei verschiedenen Völkern

wäre interessant, um festzustellen, ob verschiedene Varietäten auf ver-

schiedenen Volksrassen vorkommen. Die von Panamaribo - Negern

stammenden Exempl. sind merklich dunkler. — vestimenti N. (vorig. äußerst

nahe, doch nach den Eiern verschieden) p. 168—169. — affinis n. sp. p. 169

—171& (von Ateles ape?). Sie unterscheidet sich von Piagets Art durch 1.

das etwas längere Fühlerglied, 2. die sehr stark hervorragenden Augen,

hinter denen 2 Börstchen dicht aneinander stehen, 3. die nicht so starken

in Teilstückchen aufgeteilten Chitinschienen der Beine, 4. die stärker lappen-

förmig abgesetzten Hinterleibssegm., deren Randschienen nur teilweise

dunkler gefärbt sind, 5 die Form der Genitalflecke u. der Gonopoden. Hinter-

leib Fig. 85. — affinis Mjöb. $-Geschlechtsorgane p. 232 Fig. 123. Ei p. 258

Fig. 151. — schäffi n. sp. (Größe wie P. capitis, aber erheblich breiter am

Abdomen. Kopf etwas länger u. schmäler. Fühler u. Beine ebenfalls länger,

ete. Am 1. Gliede des 2. Beinpaares ein abgerundeter, chitinisierter Fort-

satz. Diejenigen Segmente, die auch bei Ped. cap. am breitesten sind, treten

sägezähnartig hervor. Vulvaklappen abgerundet. Behaarung auf beiden

Seiten des Abdomens fast ganz fehlend). Fahrenholz, Zool. Anz. Bd. 35

p. 714 2 (auf Simia troglodytes) auch Fahrenholz, Jahresber. Ges. Hannover

Bd. 58/59 Abt. D. p.57. — P. vestimenti als Krankheitsüberträger.

Anderson, Publ. health Rep. 25 p. 177—186.

Phtirius inguinalis Leach auf Homo sapiens, auch von Cuba. Mijöberg (1) p. 171.

Phthirius pubis. Fischer, Monatshefte dermat. Hamburg 50 p. 115—118.

Polyplax Enderl. hauptsächlich auf kleine Nager beschränkt. Mijöberg (1) p. 159.

— sphaerocephala Burm. auf Sciurus vulgaris p. 159—160. — laeviuscula

Grube (auf Spermophilus Eversmanni) p. 160. — spinulosa Burm. auf Mus

decumans p. 160. — gracilis n. sp. (erinnert bezügl. mancher Merkmale an

Pol. spinulosa (Burm.), doch ist die neue Sp. schlanker. Beim & fehlen

am Fühlergliede die Fortsätze. Kopf vorn zugespitzt, wie bei Hopl. lineata.

Das 2 hat seine größte Breite im 3. u. 4. Abd.-Segm.) Fahrenholz, Zool.

Anz. Bd. 35 p. 571 (Wirt: Mus minutus). — P. spinulosa auf Mus rattus

p- 715.

Thysanoptera für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

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Cope Town vol.5 1910 p. 425—428. |

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(Reuter).

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Thysanoptera. Journ. Linn. Soc. London, vol.30 1910 p. 369—87,

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Trans. Nat. Hist. Soc. Newcastle vol. 3 pt. 3 1910 p. 1—4.

Börner, Carl. Die Flügeladerung der Aphidina und Psyllina

Zool. Anz. Bd. 36 1910 p. 16—24. — Auch über die Verhältnisse bei

den Thysanoptera werden einige Bemerkungen gebracht (p. 24). Die

Thysanoptera sind nur biologisch zu den Pflanzenläusen zu zählen und

werden vom Verf. hier wegen ihrer Zugehörigkeit zu den Condylo-

gnathen erwähnt. Unter Zugrundelegung einer Form mit wohlaus-

geprägtem Adernetz (Fig. 8a Vflel., b Hilgl. von Aeolothrips fascıata)

sehen wir am Vorderrande des Vilgls. die Costa, dahinter als stärkste

Ader den Radius (-ramus‘), dann den Cubitus, dessen Trachee durch

die Basis des Clavus austritt (ähnlich wie bei den Stridulantien und

anderen Formen) und im Clavus die Axillaris. Die Längsadern sind

sämtlich konvex. Es scheint demnach die Media zu fehlen. Die hintere

Querader könnte dem hinteren Cubitusast entsprechen, der seinerseits

bis zum Clavus (ähnlich wie bei den Psylliden) zurückläuft, während

eine der vorderen Queradern dem Radius I gleichgesetzt werden könnte.

Der Clavushinterrand ist übrigens etwas umgeschlagen, wenn auch

fast aderlos. Der Hinterflügel besitzt am Vorderrande nicht selten

ein Haltehäkchen (wie bei Aphidina), einen deutlichen Clavus, ver-

kürzte Axillaris und Radius (-ramus?) und vor diesem einen feinen

mutmaßlichen vorderen Radiusast.

256 Insecta. Thysanoptera für 1910,

Crawford, D.L. (1). Thysanoptera of southern California. 2. Po-

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— (2). An entomological expedition to Guadelajara. op. eit.

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Dammer, Udo siehe unter Thrips.

Hood, J. Douglas. New Generä and Species of Dlinois Thysanoptera.

Bull. Ilinois State Labor. Nat. Hist. vol. VIII Art. II 1908 p. 361

— 379 9 Textfig. — Beschreibt 15 neue Spp. aus Illinois u. schafft 5 neue

Gatt. Terebrantva: Heterothrip. Tubulifera: Lassothrips,

Plectothrips, Neothrips u. Allothrips. Die Diagnosen sind sehr aus-

führlich u. die Maße der einzelnen Teile (sogar die Länge der Antennen-

glieder) aufs genaueste angegeben.

Karny, Heinrich. Neue Thysanopteren der Wiener Gegend. Mitteil.

Naturw. Ver. Univ. Wien vol. 8 1910 p. 41—57, 1 Taf.

Korolikov, D. M. Tpumcei, kmuBymie Ha HAlIaTBb 3IAKaX.

[Die auf unseren Gramineae lebenden Thysanoptera.] Ann. Inst.

agron. Moskva T. 16 1910 p. 192—204 u. deutsch. Resume p. 204—05.

Lucas, Robert. Thysanoptera für 1904, 1905, 1906. [ Jahresbericht. ]

Titel siehe unter Trichoptera.

Matsumura, S. Dieschädlichen und nützlichen Insekten vom Zucker-

rohr Formosas. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 101—104,

136—139. — Schädlinge unter den Thysanoptera (p. 103): Phloeo-

thripidae: Phloeothrips pablicornis n.sp. p. 103 (Ako, Kyoshito, Dai-

mokko). — Sehr schädlich für die jungen Zuckerrohrpflanzen.

Maxwell-Leiroy, H. und F. M. Howlett. Indian Insect Life; a

Manual of the Insects of the Plains (Tropical India). 4%. I—XI,

786 pp., 84 pls. Calcutta and Simla. Thacker, Spink u. Co., London:

W. Thacker u. Co. 1909. — Über Thysanoptera handeln p. 542—544,

Textiig. 347. — cf. auch Hym. für 1910 p. 61.

Moulton, Dudley. The pear thrips (Zuthrips pyri Daniel) (Revised.)

Washington D. C. U. S. Dept. Agric. Bur. Ent. Bull. No. 68 Part 1

1909 (I—IV, 1—16), pls. I—I.

Russell, H. M. The greenhouse thrips.. Washington D. C. U. 8.

Dept. Agrie. Bur. Entom. Bull. No. 64 Part 6 1909 p. I—II, 43—60.

Schmutz, Karl. Zur Kenntnis einiger neuen Thysanopterengenera

(Tubuhfera). I. Teil. Ann. Nat. Hist. Hofmus. Wien Bd. 23 1909

p. 273—281 II. Teil p. 342—347. — cf. Bericht f. 1911.

Trybom, Filip (1). Physapoda. [In: L. Schultze, Zool. u. anthrop.

Ergebnisse einer Forschungsreise in Südafrika. Bd. 4 Lfg.1.] Denk-

schr. med. Ges. Jena Bd. 16 1910 p. 147—174, 2 Taf.

— (2). Zwei neue Physapoden aus Madagaskar. [In: Ostafrika von

A. Voeltzkow, Bd.2.] Stuttgart E. Schweizerbart) 1910 p. 521

—525.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. Systematik. 957

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Flügergeäder : Börner.

Biologie.

Biologie: Koroljkow (auf Gramineen lebende T’hysanoptera)., — Auf

Gramineen lebende T’hysanoptera: Korolikow (Ann. Inst. agron. Moskva T. 16.

1910 p. 192—205, 11 fig... — Eiablage: Koroljkow (auf Gramineen lebend

Thysanoptera).

Ökonomie.

Schädlinge: ,„Pear“-Thrips: Moulton. — Gewächshaus (,„greenhouse‘‘)

Thrips: Russell. — Schädlinge des Zuckerrohrs: Matsumura.

Faunistik.

Inselwelt.

Hawaische Inseln: Bagnall (Thysanoptera, 15 neue Spp.).

Europa.

Central- u. Ost-Europa: Schmutz (neue Gattungen). — Großbritanien:

Bagnall (5) (3 für die Fauna neue Arten). — Derwent Valley: Bagnall (7) (Trich-

thrips 2 neue Spp.). — Ungarn: Bagnall (1) (neue Spp.). — Wiener Gegend:

Karny (neue Spp.). — Rußland: Krulikov.

Asien.

Indien: Maxwell-Lefroy.

Afrika.

Afrika: Bagnall (3) (2 neue Spp.). — Südafrika: Trybom (1) (8 neue Spp.).

— Madagaskar : Trybom (2) (2 neue Spp.).

Amerika.

Nordamerika: Illinois: Hood. — Kalifornien: Crawford (Thysanoptera 1.

Pomona, J. Entom. vol. 1 1909 p. 120—121). — Süd-Kalifornien : Crawford (1)

(neue Spp.). — Mittelamerika: Bagnall (6) (neue Spp.), Crawford (2, 5) (neue

Spp.). — Mexico: Crawford (2, 5). — Guadalajara: Crawford (3). — Antillen:

Crawford (2). — Südamerika: Bagnall (6) (neue Spp.).

Systematik.

Acanthothrips nodicornis Reuter (= Phloeothrips ulmi (1836) u. P. coriacea (1839)

Burmeister, wahrsch. auch = Hoplothrips corticis Amyot u. Serville). Vor-

liegende Form unterscheidet sich von der jetzt 1910 beschr. Form aus Ungarn

A. bidens durch die 2 klein. Zähne an der Spitze der Vorderschenkel innerhalb

u. die ausnahmsweise langen Borsten am Vorderwinkel der Prothorax.

Wohl weit verbreitet, jüngst aus N. Amerika erwähnt. Bagnall, Entom.

Monthly Mag. (2) vol. 21 (46) p. 255. — Ac. bidens n. sp. Bagnall, Ann. Mus.

Hung. vol. 8 p. 374 pl. XII figs. 1—6 (Ungarn).

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 1. 17

258 Insecta. Thysanoptera für 1910.

Aeolothrips fasciata forma aptera n. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien Bd.8 p.4l.

— A.vespiformis n.sp. Crawford, Pomona Journ. Entom. vol. 1 p. 109

fig. 49 (Nicaragua). — A.longiceps n. sp. Crawford, t. c. p. 101 fig. 46

(Kalifornien).

Agerothrips n. g. (Thrips nahest.) Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena Bd. 16

p. 159. — badia n. sp. p. 159—160 (Südwestafrika).

Anaphothrips orchidaceus. Nährpflanzen. Bagnall, Entom. Record a. Journ.

of Var. vol. 22 p. 287. — A. obscurus (= striatus Osb.) Bagnall, Ann. Soc.

Entom. Belgique T.54 p. 461. — Neue Spp.: A.valida n.sp. Karny,

Mitt. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 41 sq. (Österreich). — A. longipennis n. sp.

Crawford, Coll. Pomona, Journ. Entom. vol. 2 p. 150 (Kalifornien).

Ankothrips n. g. Crawford, Pomona, Coll. Journ. Entom. vol. 1 1909 p. 100. —

robustus n.sp. p. 100 fig. 45 (Kalifornien).

Anthothrips acanthoscelis n. sp. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 41 sq.

— A. bagnalli n. sp. Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena Bd. 16 p. 165. (Süd-

afrika). — A. nigricornis n. sp. Bagnall, Ann. S. African Mus. vol. 5 p. 425

(Südafrika). — A. variabilis n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. Entom.

vol. 2 p. 166 (Cuba, Nicaragua, Mexico). — A. usitatus n. sp. Bagnall, Fauna

Hawai. vol. 3 p. 695 pl. XVII figs. 11—14 (Hawai).

Aptinothrips fasciatus Butl. gehört zu Anthothrips. Beschreib. Bagnall, Ann.

Soc. Entom. Belgique T. 54 p. 462. x

Bagnallia n. g. Karny, Mitt. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 41 sq. (Wien).

Chirothrips mezxicana n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. Entom. vol. 1 1909

p. 114 fig. 51 (Mexico).

Cryptothrips icarus forma macroptera u. Larve. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien

Bd.8 p.4lsq. — Cr.lata Uzel. Bagnall, Entom. Monthly Mag. ser. 2

vol. 21 (46) p. 255—256. Nahe verwandt mit CO. nigripes Reuter von Finn-

land. Verbr.: Böhmen, Finnland, Italien u. England.

Dermothrips n.g. Bagnall, Fauna Hawai. vol. 3 p. 677. — hawaiiensis n. Sp.

p. 678 pl. XVII figs. 1-5. (Hawaische Inseln).

Dicaiothrips. Bagnall beschreibt im Journ. Linn. Soc. vol. 30 folgende neue Spp.

aus Südamerika: nitidus n. sp. p. 372 (Brasilien). — grandis n. sp. p. 373

(Guatemala). — laevicollis n. sp. p. 375. — propinquus n. sp. p. 377 (beide

aus Venezuela). — distinctus n. sp. p. 378 (Chontales). — brevicornis n. SP.

p- 379 (Venezuela).

Diceratothrips brevicornis n. sp. Bagnall, Fauna Hawai. vol. 3 p. 697 pl. XVII

figs. 1-3 (Oahu). — D.armatus n.sp. Bagnall, Journ. Linn. Soc. vol. 30

p- 385 (Venezuela).

Dicranothrips n. g. (Melanothrips nahest.) Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena

Bd. 16 p. 148. — fissidens n. sp. p. 148 (Südafrika).

Dictyothrips reticulata n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. Entom. vol. 2 p. 155

fig. 64 (Mexico).

Dolerothrips n. g. Bagnall, Fauna Hawai. vol. 3 p. 682. Er beschreibt folgende

neue Arten: barbatus n. sp. p- 683 pl. XVIII figs. 11—14. — flavipes n. sp.

p- 685. — ovatus n. sp. p. 686 u. figs. 1—6. — perkinsi n. sp. p. 687 pl. XIX

figs. 17—20. — angusticeps n.sp. p. 688 pl. XVIII figs. 20—22. — bicolor

n. sp. p. 688 pl. XIX figs. 21 u. 22. — intermedius n. sp. p. 689 figs. 7—9.

Systematik. 959

— lanaiensis n. sp. p- 690 figs. 10—16 (sämtlich von den Hawaischen

Inseln).

Bacanthothrips (= Ormothrips Buffa) Bagnall, Am. Soc. Entom. Belgique T. 54

p- 464.

Eulophothrips n. g. Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23 p. 273 sq. — robustus

n. sp. p. 273 (Rio Grande do Sul).

Euthrips abnormis n. sp. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 41 etc. (Hain-

burg). — E.cephalicus n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. Entom. vol. 2

p.153 fig. 63 nebst var. reticulata n. p. 155 (Mexico). — E. minutus var.

setosus n. Crawford, Pomona Coll. Journ. Ent. vol. 1 1909 p. 105 fig. 47

(Californien). — E.insularis var. reticulata n. Crawford, t. c. p. 116

(Mexiko). — minutus. Verbesserte Beschreib. Crawford, Pomona Coll.

Journ. Entom. vol.2 p. 149 fig. 62. — pyri Multon, U. S. Dept. Agrie.

Entom. Bull. 68 Part 1 pp. I—IV u. 1—16 figg. 1—8 u. pls. I u. II.

Heliothrips haemorrhoidalis . Russell, U. S. Dept. Agric. Entom. Bull. 64 Part 6

Part 6 p. I-II u. 43—60 fig. 15—17 u. Taf. — H. haemorrhoidalis Bouche

an Zimmerpalmen schädlich. Schenkling, Deutsche Entom. Zeitschr. 1910

p- 109.

Heterothrips, Phyllothrips, Liothrips u. Leptothrips Synonymie ders. Bagnall,

Ann. Soc. Entom. Belgique T. 54 p. 461. — H. decacornis n. sp. Crawford,

Pomona Coll. Journ. Entom. vol. 1 1909 p. 110 fig. 50 (Mexico).

Hindsiana n.g. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 41sq. — flavieincta

n. sp. (Marchfeld).

Hoodia n. g. Karny, t.c. p. 41sq. — austriaca n. sp. (Bisamberg).

Idolothrips angusticeps n. sp. Crawford, Coll. Journ. Entom. vol. 2 p. 168 fig. 70

(Cuba, Nicaragua u. Mexiko). — angustatus n.sp. Bagnall, Journ. Linn.

Soc. vol. 30 p. 380 (Venezuela).

Leptothrips flavicornis und Anthothrips aculeatus. Bagnall, Ann. Soc. Entom.

Belgique T.54 p. 464.

Liothrips hradecensis Uzel im Juli an der Unterseite der Ulmenblätter [Durham

banks of the Tees near Piercebridge], ferner bei Gibside. In Böhmen von

Uzel ein einziges Stück gefunden. An der Unterseite des Blattes von Hera-

cleum spondylium im Sept. Bagnall, Entom. Monthly Mag. (2) vol. 21 (46)

p. 255. — Neue Spp.: Z. tarsidens n.sp. Trybom, Voeltzkow, Reise vol 2.

p. 522 (Madagaskar). — L. umbripennis var. mexicana n. Crawford, Pomona

Coll. Journ. Entom. vol. 2 p. 161. — bakeri n. sp. p. 161 fig. 67. — micconnelli

n. sp. p- 163 fig. 68 (Mexico). — Bagnall beschreibt im Journ. Linn. Soc. vol. 30

folgende neue Spp. aus Venezuela: elongatus n. sp. p. 382. — similis n. Sp.

p- 383. — intermedius n. sp. p. 384.

Megalothrips macropteryx n.sp. Trybom, Voeltzkow Reise vol. 2 p. 523 (Mada-

gaskar). — M.niger n.sp. Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23 p. 273 sq.

Mycterothrips n. g. (Trips nahest.) Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena vol. 16

p-. 158. — laticauda n. sp. p. 158 (Südafrika).

Neoheegeria n.g. (Anthothrips nahest.) Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23

p- 273sq. — dalmatica n. sp. (Dalmatien).

Oedemothrips n. g. Bagnall, Fauna Hawai. vol. 3 p. 680. — laticeps n. sp. p. 680

p, XVII figs. 6—10 (Oahu).

17%

360 Inseeta. Thysanoptera für 1910.

Ophidothrips n. g. Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23 p. 273 sq. — handlirschii

n. sp. (Rio Grande do Sul).

Panurothrips caudatus n. sp. Bagnall, Ann. S. African Mus. vol.5 p. 427 fig.

(Südafrika).

Pezothrips (?) pedestris n.sp. Karny, Mitteil. Ver. Univ. Wien Bd.8 p.4lsag.

(Wien).

Phloeothrips (?) ficorum ein ernster Schädling der Fieus-Bäume der Stadt Algier.

Charakt. Merkmal der Form: Fehlen von Anhängen u. Zähnen am 6. Ab-

dominalsgm. des $. Feind ders.: die Thrips-ähnliche kleine Wanze Mon-

tandoniella moraguesi Put. Marchal, Bull. Soc. Entom. France 1908 p. 851

—853. — P.longitubus gehört zu Leptothrips. Bagnall, Ann. Soc. Entom.

Belg. T. 54 p. 464. — Phl. raptor n. sp. Crawford Pomona Coll. Journ. Entom.

vol. 2 p. 159 fig. 66 (Mexico).

Phyllothrips fasciculata n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. Entom. vol. 1 1909

p- 105 fig. 4 nebst var. stenoceps n. p. 108 fig. 48 (Kalifornien). — L. fasci-

culata gehört zu Liothrips. Crawford, Poniona Coll. Journ. Entom. vol. 2

p- 152.

Physopus schultzei n. sp. Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena Bd. 16 p. 151 (Süd-

afrika).

Polyphemothrips n.g. Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23 p. 273 sq. — bra-

siliensis n. sp. (Rio Grande do Sul).

Rhaptothrips n. g. Crawford, Pomona Journ. Entom. vol. 1 1909 p. 116. — pecu-

liarıs n. sp. p. 116 fig. 52. (Mexico). — Rh. peculiaris eine larvale /dolothrips.

Bagnall, Ann. Soc. Entom. Belgique T. 54 p. 462.

Rhytidothrips n.g. Karny, Mitt. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p.4lsq. — bicornis

n. sp. (Wien).

Smerinthothrips n. g. Schmutz, Ann. Hofmus. Wien Bd. 23 p. 273 sq. — tropicus

n. sp. (Brasilien).

Synaptothrips n. g. (Thrips nahest.) Trybom, Denkschr. med. Ges. Jena Bd. 16

p- 155—156. — crassicornis n. sp. (Südafrika).

Thrips an Zimmerpalmen. Dammer, Udo, Palmenzucht und Palmenpflege. An-

weisung zur Anzucht und Pflege der Palmen. Frankfurt a. ©. (Trowitzsch

u. Sohn) p. 49—50. — Neue Spp.: Trybom beschreibt in d. Denkschr. med.

Ges. Jena Bd. 16 p. 161—164 aus Südafrika: acaciae n. sp. u. quadridentata

n. sp. — Thr. abdominalis n. sp. Crawford, Pomona Coll. Journ. vol. 2 p. 157

fig. 65 (Mexico). — Thr. multispinus n.sp. Bagnall, Fauna Hawai. p. 699

pls. XVII. figs. 15—20 (Hawaii).

Trichothrips propinguus n.sp. Bagnall, Trans. Northumberl. Soc. vol. 3 pt. 3

P- 2. — longiseiis n. sp. p. 3 (beide aus England). — Tr. dispar n. sp. Karny,

Mitt. Ver. Univ. Wien p. 41 sq. (Marchfeld). — T. laticornis n. sp. Bagnall,

Fauna Hawai. vol. 3 p. 692 pl. XVII fig. 6—10. — nigricans n. sp. p. 693

u. fig.23 (beide von den Hawaiischen Inseln).

Corrodentia für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

I. Termitidae (= Isoptera)-

Publikationen und Referate.

Branner, J. €. The luminosity of termites. Science New York

N.Y. N. Ser. vol. 31 1910 p. 24—25.

Bugnion, Ed. (1). Le Termite noir de Ceylon (Zutermes monoceros

Koen.). Ann. Soc. Entom. France T.78 p. 271—281, 3 pls. (8&—10).

— I. Biologie (p. 271—275). Die Biologie dieser Termite ist besonders

interessant: 1. wegen des eigentümlichen Instinktes, der die Tiere

dazu treibt, an gewissen Tagen und zu gewissen Stunden einen Zug

nach auswärts zu unternehmen, infolgedessen man sie in langer Reihe

wandern und stets denselben Weg verfolgen sieht; 2. durch die Tat-

sache, daß die geschlechtslosen Individuen (Arbeiter und Soldaten),

wie die der weißen, unter der Erde bleibenden Termiten vollständig

blind sind, obschon sie sich während der Züge offen u. im vollen Tages-

licht bewegen. Diese Tatsache ist umso merkwürdiger, als die Tiere

auf dem Streifzuge vielen Gefahren (Feinden wie Ameisen, Skolopendern

usw.) ausgesetzt sind. Versuche u. Beobachtungen ergaben, daß

die Tiere hauptsächlich durch ihr subtiles Geruchsvermögen ge-

leitet werden. Verf. schildert dann seine Beobachtungen in Ambalan-

goda, sowie einen Kampf zwischen den Bewohnern zweier Nester.

II. Anatomie (p. 275—280). a) Morphologie des Arbeiters. Der Darm-

kanal unterscheidet sich von dem der eigentlichen Termiten 1. durch

seine Länge, 2. durch seine starke Differenzierung, 3. durch seinen

schwärzlichen Inhalt. b) u. e) Morphologie des Soldaten u. der Königin.

— Die Gewohnheit, Züge zu unternehmen findet sich nicht nur bei

verschiedenen Zutermes-Arten, sondern auch bei mit Augen versehenen

Hodotermes u. bei einigen echten blinden Termes, unter anderen T. Lillje-

borgii. Sjöstedt. — Verf. gibt dann biologische Beobachtungen Havi-

lands u. Sjöstedts, sowie Knowers u. Nassonofs Angaben über die Kopf-

drüse in aller Kürze wieder. Die Tafeln bringen Abb. des Arbeiters,

des Soldaten u. der Königin (in toto), sowie zahlreiche morphologische

Details (Mundteile, Darmkanal).

— (2). Observations relatives & l’industrie des Termites. op. cit.

T. 79 1910 p. 129—144.

— (3). [Quelques observations sur les Termites de Ceylan.] Bull.

Soc. Zool. Paris T. 35 1910 p. 103—105.

Bugnion, E. u. Popoff, N. (1). Le termite & latex de Ceylan (Copto-

termes travians Haviland); avec un appendix comprenant la description

des Coptotermes gestroi Wasm. et flavus n.sp. Mem. Soc. Zool. Paris

262 Insecta. Corrodentia für 1910.

T. 23 [1910] p. 100—123, fig. — Diese sonderbare Termite hat Arbeiter

von 4,5 mm Länge, der lange säbelförmige Mandibeln und ein milch-

weißes Abdomen besitzt. Wird er gereizt, so sondert er aus dem Frontal-

porus (hinter dem Epistom gelegen) einen weißen, kautschukähnlichen

Tropfen aus, der unter dem Mikroskop aus lichtbrechenden Körperchen

besteht, die teils rund, oder eckig, teils auch dreieckig sind. Verf. hat

mehrere Bauten dieser Termite in hohlen Bäumen von Anacardium

occidentale beobachtet und bringt einige kurze Angaben darüber.

Die ‚„termite & latex“ ist nichts anderes als der Soldat von Arrkino-

termes Heimi Wasm. (1902) und dieser Name ist synonym zu

Coptotermes travians. Es folgt die Beschreibung des Soldaten,

des Arbeiter, der Imago und der Königin (letzterer nach

Haviland. Im Darmtraktus, der näher beschrieben wird,

wurden Insuforien gefunden (Trichonymphidae), die auf p. 114 ab-

gebildet sind. Verf. glaubt hier von einer Symbiose sprechen zu dürfen,

die Termiten ziehen aus dem Vorhandensein dieser Tiere Nutzen.

Nachdem sie die Holzpartikelehen mit verdauen geholfen haben,

werden sie selbst verdaut? — Trichonymphiden wurden bisher gefunaen

bei den Gattungen Leuco-, Calo- u. Coptotermes. — Der Darmkanal

der echten Termiten 7. Redemanni, obscuriceps u. Horni enthält

sie nicht. Weitere Einzelheiten folgen in der nächsten Arbeit. — Im

Appendix (p. 11l5sq.) folgt die Beschreibung von Coptotermes Gestrov

Wasm. (Soldat, Arbeiter, Nymphe) u. von (©. flavus von Ceylon, von

Malakka Soldat u. Arbeiter. Liste der bisher beschriebenen 11 Copto-

termes-Arten (p. 121). Literatur (p. 122) u. Tafelerklärung zu den

obigen auf pl. I u. II abgebildeten Formen (p. 123).

— (2). Les Calotermes de Ceylan. t.c. p. 124—144. — Die Calo-

termes unterscheiden sich von den anderen Termiten dadurch, daß sie

keine besondere Arbeiterkaste haben. Die Larven, die das Gros der

Kolonie bilden, erfüllen hier die Pflichten der Arbeiter und sind an-

scheinend imstande, sich in Nymphen umzubilden, von denen die einen

zu Männchen, die anderen zu Weibchen werden können. Ein Teil

scheint im neutralen Zustande zu verharren. Die Differenzierung des

Soldaten scheint auf gleicher embryonaler Stufe stattzufinden, auf der

die Differenzierung der Geschlechter erfolgt. Nach Ansicht Greens,

der die ©. in einem Teebaume beobachtete, scheint nur ein Teil der

Nymphen zu geflügelten Imagines zu werden und auszufliegen. Die

Neotenen (mit Flügelrudimenten versehenen) 2? bleiben im Nest

und sind imstande Eier zu legen, ohne jemals das vollendete Stadium

zu erreichen. Tatsächlich findet man in den Nestern statt einer großen

Königin mehrere kleinere, kaum größer als eine Nymphe. Jede legt

jedoch nur eine geringe Anzahl von Eiern. Verf. hatein solches Weibchen

von 8,5 mm Länge untersucht. Die beiden im Hinterleibsende gelegenen

beiden Ovarien waren verhältnismäßig klein, und bestand jedes aus 10 Ei-

röhren. Jede Röhre enthielt eine Reihe von Eiern von zunehmender

Größe. Das Ei der letzten Kammer war noch von Epithel umgeben

u. maß 430 u. Außerdem fanden sich noch 2 Eier in Vorbereitung zur

Ablage von je 1 mm Länge, ganz mit Dotterkörnchen erfüllt. Nach

Publikationen und Referate. 263

einigen weiteren biologischen Bemerkungen gibt der Verf. ausführliche

Beschreibungen (und Abbildungen) zu ©. Greeni Desneux, C.

dilatatus n.sp. und CO. militarıs Desneux. Den Infusorien (Trichono-

nymphidae) sind speziell p. 132—37 gewidmet. p. 143 benutzte Literatur

u. p. 144 Erkärung zu pl. II—V.

Chaine, 3. (1). Termites et plantes vivantes. I. Degats occasionnes

aux arbres. Compt. rend. Soc. Biol. Paris T. 68 1910 p. 328—330.

— (2). Termites et plantes vivantes. II]. Caractöres de l’invasion.

t. c. p. 849851.

— (3). Termites et plantes vivantes. IV. symptomes presentes

par les plantes atteintes. t. c. p. 1087—1088.

Escherich, K. (1). Termitenschaden. Ein Beitrag zur kolonialen

Forstentomologie. Tharander forstl. Jahrb. Bd. 61 1910 p. 168—185.

— (2). Termitenleben auf Ceylon. Neue Studien zur Soziologie

der Tiere, zugleich ein Kapitel kolonialer Forstentomologie. Mit einem

systematischen Anhang mit Beiträgen von A. Forel usw. Jena

(G. Fischer) 1911 [1910] (XXXII-+ 263) pp. 3 Taf. 24cm. — Ein

äußerst interessantes Werk, das uns viele neue Tatsachen bringt und

den Forscher viel zum Nachdenken anregt. Es ist auch schon in

fremde Sprache übersetzt worden (cf. No.3). Ich kann deshalb nicht

umhin, im folgenden die wichtigsten Punkte wiederzugeben. — Zunächst

schildert Escherich (p. I-XXXII) die anschaulich geschilderte Reise,

die hier übergangen werden muß. Kapitel I (p. 1—35) behandelt die

Hügelbauer und beschreibt die Termitenhügel nach Vorkommen,

äußerer Form und Lage. Als Erbauer kommen aufCeylon vorzugsweise

zwei Arten, Termes Redemanni Wasm. u. T. obscuriceps Wasm. in

Betracht. Beschreibung der Spitzhut- u. Schornsteinbildungen, die

einer Menge von Tieren, wie Schlangen, Eidechsen, Skorpionen,

Skolopendern, Wanzen, Ameisen usw. als Schlupfort dienen. Hieran

‘reiht sich eine Beschreibung der wunderbaren inneren Einrichtung,

der kunstvollen, sauberen Hallen, Kammern u. Kämmerchen mit den

großen und kleinen Kanälen (Mantel, Wohnregion, Pilzkammern,

Zwischenwände, Verbindungsgänge, Kamin oder Schachtsystem,

Königszelle [bei den Pilzzüchtern klein u. unscheinbar] u. Zentralkern).

Beschreibung der unterirdischen Fortsetzung des Nestes, das durch

ein weitreichendes Gangsystem mit der Außenwelt in Verbindung steht.

p. 20—22 geben dann ein kurzes übersichtliches Bild von der Gesamt-

nestanlage, sowie einen instruktiven schematischen Durchschnitt

(Fig. 12). Schilderung der Pilzgärten mit instrukt. Abbild. (p. 23—34).

Fig. 18 ‚„Armillaria“-Form des Termitenpilzes u. Fig. 19 die VoWwaria-

Form des Termitenpilzes (Volvaria eurhiza). Zu den obengenannten

beiden Pilzzüchtern kommen für Ceylon noch hinzu: T. ceylonicusW asm.

u. Microtermes globicola Wasm., zu denen sich möglicherweise noch

Termes Horni Wasm. gesellt. — DieHügelbewohner(p. 35—69):

Die Hauptbewohner. Große Harmlosigkeit resp. Machtlosigkeit der

Besitzer gegen den Menschen (gegenüber den furchtbaren blutigen

Angriffen der bellicosus- Soldaten in Erythräa). Wirkung der aus-

geschiedenen Sekrete (erst rote, dann braun werdende Flecke. Sekret

964 Insecta. Corrodentia für 1910.

je nach der Art verschieden). Förmlicher Soldatensegen in der Nähe

der Königinzelle; sicherste Zeichen für deren Nähe. Eine Lichtscheuheit

der Termiten existiert nicht, wie man irrtümlich allgemein glaubt.

Die Soldaten sind positiv heliotropisch. Anders verhält es sich bei

den Arbeitern. Relativ schwache Bevölkerung der großen Bauten

gegenüber den Nestern von Termes bellicosus. Beweglichkeit der

Larven. Riesenzahl der Eier in den Pilzkuchen. Größe und Zahl der

Königinnen. „König“. Keine eigentliche Schwärmzeit. Liebesspazier-

gang (paarig hintereinander herlaufend). Ausschwärmen [nach Petch].

Die Nebenbewohner (Gäste, Termitophilen p. 50—62): a) Termiten

[p. 590—59]: T. ceylonicus bei T. obscuripes; Capritermes [feindliches

Verhalten gegen die Hauptbewohner], ZLeucotermes ceylonicus n.sp.,

Eutermes Escherichi Holmgr. n.sp., Eurytermes Assmuthi Wasm.,

Hemitermes quadriceps Wasm. b) Ameisen [p. 59—62]: Camponotus,

Plagiolepis longipes, Odontomachus haematodes [Schutzgarde der

Termiten], Zobopelta ocellifera | Termitenräuberin], Oligomyrmex tapro-

banae n.sp. u. Paedalgus Escherichi n.g., n.sp. c) Andere, nicht-

soziale Nebenbewohner [p. 62—69]: Orthogonius, Helluodes taprobanae,

Staphilinen, Myrmecophilen, Lepismen u. Diplopoden u. Notoscolex

termiticola Michaels. — Hügelgenese, Baumethode usw.

(p. 69— 97). Entstehung der Hügel an Abbild. erläutert (Fig. 30—35).

Bauperioden (ruckweise). Absolute Bedingung für das Wachstum ist

Wasser. Die Hauptwachstumsperiode fällt daher mit der Regenzeit

zusammen. Höchstgrenze für die ceylonischen Hügelbauer 2—2,5 m.

(bei manchen austral. Termiten bis 7 m hoch). Baumethode. Aus-

treten von „Zementwürsten“ [Erde mit stomodealen Sekreten (Speichel)

gemischt] aus dem Munde. Bauplan: Zuerst ein „Gerüstwerk“, und -

zwar vom gesamten Umfang des „geplanten“ Gebäudes Fig. 38, dann

wird dasselbe durch Ausfüllung der Zwischenräume in einen Massiv-

bau übergeführt. Fig. 37 Einmauerung zweier Königinnen. Bedeutung

der Kamine als Luftschächte. Temperaturschwankungen im Inneren

im Gegensatz zu äußeren großen Temperaturunterschieden nur gering.

Öberirdische Galerien u. wurzelartig verzweigte Endgalerien. II. Kapitel.

Die Kartonfabrikanten (Gatt. Eutermes) (p. 98—134). I. Die „schwarze“

oder die ‚„Kot-Termite“ (Hut. monoceros Koenig). Expeditionen.

Soldaten als wirkliche Beschützer u. Pfadsucher. Länge der Züge ganz

erstaunlich. Enorme Zahl der Individuen, etwa 200 000. Es handelt

sich um Proviantierungszüge, deren Häufigkeit von der Ausbeute

abhängt. Die Termiten nähren sich von Flechten u. ziehen bei ihren

Zügen auf die Flechtenweide. Beobachtungen auf der Weide sehr

interessant. Das behäbige Kopinicken der Tiere erinnert an das Weiden

des Viehes. Die Leck- und Reinigungsscenen gehören mit zu den

drolligsten Momenten in der Lebensgeschichte der sozialen Insekten.

Unglaubliche Verrenkungen bei denselben. Das Verhalten erinnert an

das Lausen der Affen. Nestbau; Art des Bauens. Äußere Kennzeichen

eines Monocerus-Nestes im Baumstamme bilden die an der Außenseite

des Stammes befindlichen großen, schwarzen, verschieden geformten

Massen „Kotstalakiten“ oder ‚Abtritte“, die aus dem Kot der

Publikationen und Referate. 265

Termiten gebildet, nach starken Regengüssen abgeschwemmt,

aber bald von neuem gebildet werden. Die an den Öffnungen postierten

Soldaten dienen zum Schutze der austretenden Arbeiter und können

als Abtrittswächter bezeichnet werden. — Wie finden die schwarzen

Termiten ihren Weg? Der am Boden haftende Geruchsstoff ist an ein

sichtbares materielles Substrat gebunden [Fig. 48 Darmtraktus von

Eutermes monocerus|. Wir können in der dadurch bedingten Weg-

markierung des Monocerus Rudimente des bei den Verwandten be-

stehenden Tunnelbauinstinktes erblicken. Nicht nur der Kontakt-

geruch, auch der Ferngeruch spielt dabei eine Rolle. Die Übertragung

(Mitteilung) von Erregungszuständen erfolgt anscheinend ungeheuer

rasch. II. Die Galerietermite (Eutermes ceylonicus n. sp.) (p. 121—133)

Fig. 49 u. folg. Gestörte Breschen werden durch Postenketten ge-

schlossen u. repariert. Bedeutung der Galerien. Sie verbinden zwei

Kolonien oder führen zum Futterplatz. Untersuchung einiger Nester,

wobei die Hände von ungezählten Nasutisoldaten überflutet wurden,

die nicht bissen, aber die Hände mit einer klebrigen Flüssigkeit be-

deckten. Lebensgewohnheiten u. innerer Nestbau. Die Deckschicht

ist durchlöchert und jedes Loch durch den Retortenkopf eines Soldaten

verstopft (ähnlich den ‚‚lebenden Türen‘ unter den Ameisen). Licht-

festigkeit der Tiere (Fig.52). KarusselartigesHerumlaufen. Frappierende

Übereinstimmung einer gleichzeitig gefundenen Termitophilenlarve

(Coleop. Nitidul.?), die mit herumliefen (Fig. 53). Als Gäste wurden

hier noch gefunden: Technomyrmex albipes u. Cataulacus taprobana.

— III. Die übrigen Eutermes-Arten (p. 133—134). Es wurden noch

gefunden: Eutermes Escherichh Holmgr., hantanae Holmgr. n.sp.

u. rubidus Hag., über deren Lebensweise Verf. nur wenig berichten

kann. — III.Kap. Verschiedene Beobachtungen u. Versuche im

Laboratorium usw. (p. 135—161). I. Beobachtungen an Königinnen

(p-. 135—146). Sie sind so interessant geschildert, daß man sie im Original

lesen muß. II. Kämpfe (p. 146sq.) Die lebende Schleuder, Bade-

experimente usw. Allgemeine Schlüsse. Der Termes-Soldat benutzt

als Hauptwaife seine Kiefer, die er als Dolch oder Schere gebraucht,

der Capritermes-Soldat schleudert, der Eutermes-Soldat trommelt

mit der Nase u. der Coptotermes-Soldat verteidigt sich mit seinem

Milchsaft, mit dem er den Feind einseift u. verklebt. Eigentümlich

ist auch noch das „Köpfen“ der Termes obscuriceps 33. Gleichgroße

Gegner werden in erster Linie von den Arbeitern bekämpft, während

die Soldaten möglichst ausweichen, bei viel größeren Gegnern findet

ein umgekehrtes Verhalten statt. Der Termitensoldat ist sehr einseitig

spezialisiert. Fremde Larven lösen eine weit geringere feindliche

Reaktion aus, als fremde Imagines. Ill. Versuche über die Licht-

empfindlichkeit (p. 160—161). Die Termiten verhalten sich indifferent

gegen die verschiedenen Farben.

IV. Kapitel. Ökonomisches (p. 162-179). Behandelt

die Termitenschäden an Häusern, Geräten; zwei Drittel der Insel sind

unterminiert; Verwundung resp. Vernichtung lebender Pflanzen.

Schädlingam Kautschuck:: Coptotermes Gestroi. Bekämpfungsmethoden:

266 Insecta. Corrodentia für 1910.

1. Schwefelkohlenstoff, 2. Ausräucherung mit Arsenikschwefeldämpfen

mit dem ‚„Universal-Exterminator“ Fig. 59. — Der systematische An-

hang behandelt 1 Termiten u. Termitophilen von Ceylon. I. Ceylon-

Termiten, gesammelt von Prof. K. Escherich, nebst einer synoptischen

Übersicht über alle bis jetzt von Ceylon und dem angrenzenden Fest-

land bekannten Termitenarten von Nils Holmgren (hierzu Taf. II

u. III). Liste, Neubeschreibungen u. Bemerk. zu bereits bekannten

Arten (zumeist mit Abb.): Calotermes (2+ 1 n.sp.), Leucotermes

(1.n. sp.), Coptotermes (1 n. sp.), Termitogeton (1), Termes (+ 3 n. sp.),

Eutermes (5n.spp. + 2), Anoplotermes (1), Microcerotermes (ln. sp. + 1),

Capritermes (+ .1n.sp.), Eurytermes (1), Hamitermes (1). — Synopt.

Übersicht der Termiten von Ceylon u. dem angrenzenden Festlande

(p. 206—212). — II. Ameisen aus Ceylon, gesammelt von Prof.

K. Escherich (einige von Prof. E. Bugnion, von Prof. A. Forel) (p.215

— 228). — III. Termitophile Coleopteren aus Ceylon von E. Wasmann

S.7 (p. 231—232). — IV. Myrmecophila Escherichi, eine neue termito-

phile Ameisengrille. Beschrieben von Dr. F. Schimmer in Meerane i. 8.

(Mit 1 Abb. ım Text) (p. 235—236). — V. Beschreibung der von

K. Escherich auf Ceylon gesammelten termitophilen Thysanuren,

Myriapoden, sowie einer unbekannten mimetischen, termitophilen

Coleopterenlarve. Von Prof. F. Silvestri in Portici (Italien). Mit 1 Abb.

im Text (p. 239—247). — VI. Notoscolex termiticola Mich. (ein termito-

philer Regenwurm). Von Prof. W. Michaelsen in Hamburg (mit 1 Abb.

ın Text (p. 251—252). — Literaturverzeichnis (p. 253—255). Namen-

(p. 265). Taf. I—III nebst Erklärungen.

— (3). Tepmutsi mm Obısia Mypasbu. Biomorn yeckif ITWIPB.

[Die Termiten oder weißen Ameisen. Eine biologische Studie.] Aus

dem Deutschen übersetzt von J. A. Filip&enko mit Zusätzen d. Verf.

St. Petersburg (A. F. Devrient) 1910 (XV + 2 + 222) pp. Taf. 2,5 cm.

3,— Rub.

Feytaud, 3. Formation de colonies nouvelles par les sexu6s essaimant

du Termite lucifuge. Compt. rend. Soc. Biol. Paris T. 68 1910 p. 842

—844.

Holmgren, Nils (1). Das System der Termiten. Zool. Anz. Bd. 35

p. 284—286. — Eingehende Untersuchungen über den Bau der Ter-

miten führten den Verf. zu der Überzeugung, daß das System der

Termiten, wie es bis jetzt aufgefaßt worden ist, kaum den einfachsten

Anforderungen eines natürlichen, d.h. genealogischen Systems ent-

spricht. Verf. ist auf Grund seiner Untersuchungen reichlichen Materials

(mehr als 300 Termitenarten aller Welt) zu einem System gekommen,

das er in Kürze mitteilt; die ausführliche Behandlung soll folgen.

Unbekannt blieb ihm nur Stolotermes Hag. — Vergl. den systematischen

Teil.

— (2). Isoptera [of the Seychelles). Trans. Linn. Soc. London

ser. 2 vol. 14 1910 p. 135—148.

— (3). Ceylon-Termiten ..... nebst einer synoptischen Über-

sicht über alle bis jetzt von Ceylon und dem angrenzenden Festland

Publikationen und Referate. 267

bekannten Termitenarten. [In: K. Escherich, Termitenleben

auf Ceylon.] Jena (G. Fischer) 1911 [1910] p. 183—212 2Taf. —

Siehe Escherisch (2).

Jumelle et Perrier de la Bathie. Termites champignonnistes et

champignons de termitieres a Madagascar. Rev. gen. bot. Paris T. 22

1910 p. 30—64.

Karawajew, W. Soldaten und Arbeiter von Hodotermes (Ana-

canthotermes) ahngerianus Jacobs. nebst einigen Bemerkungen über

die Bauten zentralasiatischer Termiten. Rev. Russ. Entom. St. Pbg.

T. IX. Ne. 1/2 p. 157—162, 3 Textfig. — Beschreibung der Soldaten

und Arbeiter genannter Art. Sie waren bisher noch unbeschrieben.

An der Hand von Abbildungen werden ferner die sogenannten, ‚Futterale‘“

von H. turkestanicus geschildert. Bevor die Termiten Gegenstände

verzehren, umgeben sie sie mit einer Hülle, die aus ihren Exkrementen

gebildet wird. Verf. beobachtete abgestorbene Aste von Tamarizx,

die mit solchen Hüllen aus Exkrementen umgeben waren.

Lucas, Robert. Termitidae für 1904, 1905, 1906 [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera.

Lüderwaldt, H. Termitenhügel als Brennmaterial und Herd.

Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiol. Bd. 6 p. 452. — Es handelt sich

um die Nester zweier Hutermes-Arten, deren Nester bienenkorbartige

Form und eine Größe von 60 cm haben. Die Viehhirten höhlen in das

Nest ein etwa kopfigroßes Loch, durchstoßen von hier aus den Bau

in horizontaler Richtung nach hinten, um den nötigen Zug herzustellen,

füllen trockenes Gras hinein, wodurch der Bau in Brand kommt und

lange, ähnlich wie Torf fortglimmt. Der Kochherd ist fertig. Das

Kochgeschirr wird oben aufgesetzt und später aufgehängt.

Matsumura, S. Die schädlichen und nützlichen Insekten vom

Zuckerrohr Formosas. Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiol. Bd. 6

p. 101—104, 136—139. — A. Schädlinge: I/soptera, Termitidae: Termes

vulgarıs Hav. (p. 102).

Maxwell-Lefroy, H. and F. M. Howlett. Indian Insect Life; a

manual etc. Titel siehe unt. Hymenoptera p. 61 d. Ber. f. 1910. — Ref.

von K. Grünberg, Deutsche Entom. Zeitschr. 1910 p. 215. — Bei

den Termitidae ist ein Abschnitt über Staatenbildung eingeflochten.

Montandon, A. L. A propos des soi-disant neutres chez les insectes.

Bul. Soc. Sci. Bucharest vol. 19 1910 p. 444—452.

Oshima, Masamitsu (1). Taiwan san shiroari ni tsuite. [On the

Termitidae of Formosa.] Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 1910 p. 343—346,

376—382, 411—413.

— (2). Okayama oyobi Ehime niken ni hassei seru shiroari. [On

the termites that have appeared in the prefectures of Okayama and

Ehime]. Dobuts Z. Tokyo vol. 22 1910 p. 413—416.

— (3). Dai-ichi-kai shiroari chosa hokoku. [Report on termites.

I.] (Publ. by the engineering bureau, Gouvernment of Formosa.) Tai-

hoku 1909 p. 1—45, pl. 26 em.

Schimmer, F. Myrmecophila escherichi, eine neue termitophile

268 Insecta. Corrodentia für 1910.

Ameisengrille. [In: Escherich, K.: Termitenleben auf Ceylon.]

Jena (G. Fischer) 1911 [1910] p. 233—236.

Shelford, R. Blattodea. Uppsala. Sjöstedts Kilimandjaro-Meru-

Expedition 17, 2 1907. — Interessant ist die Entdeckung einer mit

Termiten symbiotisch lebenden Schabe, Sphecophila termitium aus

dem Kilimandjaro-Meru-Distrikt. Die bisher einzig bekannte Art

dieser Gattung wurde im Neste einer geselligen Wespe gefunden.

Silvestri, F. (1). Beschreibung der von K. Escherich auf Ceylon

gesammelten termitophilen Thysanuren, Myriapoden, sowie einer

unbekannten mimetischen, termitophilen Coleopterenlarve [in

K. Escherich, Termitenleben auf Ceylon]. — cf Escherich (2).

— (2). Due nuove ospiti del Termes malayanus Hav. di Giava.

Boll. Lab. Zool. Portiei T. 5 1910 p. 59—64. — 1 Coleopt. u.1 Thysan.

— (3). Descrizione di un nuovo genere di Stafilinide termitofilo

di Singapore. Boll. Lab. Zool. Portici vol. 5 1910 p. 37—39.

Wasmann, E. (1). Über das Wesen und den Ursprung der Sym-

philie. (173. Beitrag zur Kenntnis der Myrmekophilen und Termito-

philen.) Biol. Centralbl. Leipzig Bd. 30 1910 p. 97—102, 129—138,

161—181. — Siehe im Bericht über Hymenoptera f. 1910 p. 102 sub

No. 1. Wurde schon dort ausführlicher behandelt, um hier eine Wieder-

holung zu vermeiden.

— (2%). Nils Holmgrens neue Termitenstudien und seine Exsudat-

theorie. (175. Beitrag zur Kenntnis der Myrmekophilen und Termito-

philen.) t.c. p. 303—310. — Holmgren hat im XH. Kapitel seiner

Termitenstudien unter dem Titel „Exsudatgewebe und Kasten-

differenzierung‘“ eine neue Exsudattheorie aufgestellt. Es ist dies ein

durchaus originelles Kapitel, aber originell im guten Sinne des Wortes.

- H. hat an Schnittserien eine große Zahl von Termitenarten auf ihre

Gewebe untersucht und gefunden, daß sämtliche Formen des symphilen

Exsudatgewebes (wirkliches Fettgewebe, adipoides Drüsengewebe,

Blutgewebe) auch bei den Termiten sich vorfinden und zwar vielfach

mehrere derselben vereinigt. Die höchste Entwickelungsstufe erreicht

das Exsudatgewebe bei den Königinnen der Termiten. Auf Grund dieser

Befunde stellt nun H. eine neue Exsudattheorie auf. Nach derselben

ist der biologische Grund für die gegenseitige Beleckung der Termiten

und namentlich für die eifrige Pflege der Imagines und ihrer Ent-

wicklungsstadien in den Exsudaten der Termiten gelegen. Der Brut-

pfllegeinstinkt wird durch ein neues Komplement ergänzt, welches

dem „Symphilieinstinkt“ der Termiten entspringt, der auf den Genuß

angenehmer Exsudate gerichtet ist. Deshalb sind auch solche mit

Exsudaten versehenen Gäste der Pflege seitens der Termiten sicher.

H. wendet diese Exsudatheorie auf die Differenzierung der Kasten

ım Termitenstaate an u. führt letztere auf die von Wasmann für die

Erziehung der echten Ameisengäste u. Termitengäste schon 1897

aufgestellte Amikalselektion zurück. Wasmann geht nun auf einzelne

Punkte der Theorie näher ein. Das im Exsudatgewebe der Königin

von Eutermes chaquwimayensis vorgefundene Fettgewebe glaubt W.

mit Bestimmtheit als das von ihm 1903 als adipoides Drüsengewebe

Übersicht nach dem Stoff. 269

bezeichnete Exsudatgewebe betrachten zu dürfen. Die Bläschen und

Sammelkanälchen sind aber nur bei sehr starker Vergrößerung zu er-

kennen. Er bittet H., seine betreffenden Schnittbilder noch einmal

daraufhin untersuchen zu wollen. Was W. seinerzeit als Blutgewebe

bezeichnet hatte, hält H. für ein flüssiges Produkt der Fettzellen,

welchem Körnchen des Blutgewebes beigemenst sind. W. kann ihm

hierin nicht beistimmen, doch handelt es sich hier, wie er selbst hervor-

hebt, nicht um sachliche Verschiedenheiten, sondern nur um Ver-

schiedenheiten der Ausdrucksweise. Für recht sinnreich u. treffend

hält W. die Erklärung der außerordentlich eifrigen Beleckung der

Termitenkönigin u. die hochgradige Pflege derselben, die als eine

Funktion der reichlichen Entwicklung ihrer Exsudatgewebe aufzu-

fassen ist. Bei der Aufstellung der Beziehung zwischen dem ‚Exsudat-

verlangen“ der Termiten und ihrem „Reinigungsbedürfnis“ scheint

auch der Geselligkeitstrieb als einer der Grundinstinkte der sozialen

Insekten ebenfalls berücksichtigt werden zu müssen. Die gegenseitige

Fütterung ist vor allem auf den Geselligkeitstrieb und den Brutpflege-

instinkttrieb zurückzuführen, auf denen ja auch der Symphilieinstinkt

beruht, welcher die Fütterung u. Pflege der ‚‚echten Gäste‘ bei diesen

geselligen Insekten bewirkt. Interessant ist es für W., daß sich H. am

Schlusse seiner Arbeit für die von W. 1897 aufgestellte Amikalselektion

ausspricht und dieselbe als Hauptfaktor für die Entstehung der ver-

schiedenen Kasten im Termitenstaate verwendet, obgleich Escherich,

Dahl usw. sich bisher gegen jene Form der Selektion ablehnend verhalten

haben. Allerdings muß der Begriff der Amikalselektion nach den neuen

Termitenstudien Holmgrens etwas erweitert werden, indem wir nicht

bloß die Zucht und die Pflege fremder Tierarten, die als

„echte Gäste‘ bei den Ameisen und Termiten leben, unter diesen Be-

griff fassen, sondern auch die Zucht u. Pflege der eigenen Familien-

glieder, insofern dieselben durch das „Exsudatverlangen‘“ jener ge-

selligen Insekten bestimmt wırd. Bei seinen Betrachtungen über

„die Kastenbildung im Lichte der ‚Exsudattheorie““ bringt H. die

Verschiedenheiten der Brutpilege in Verbindung mit den verschiedenen

Exsudaten der einzelnen Entwickelungsstadien. W. hält diese Theorie

für zutreffend. Sie stellt einen wichtigen Fortschritt in der Termiten-

biologie dar. Manche Einzelheiten in Holmgrens Ansichten werden

jedoch noch verschiedene Änderungen erleiden.

— (3). Termitophile Coleopteren aus Ceylon. [In: K. Escherich,

Termitenleben auf Ceylon.] Jena (G. Fischer) 1911 [1910] p. 229—232.

— (4). Termiten von Madagaskar, den Comoren und Inseln Ost-

afrikas. [In: Reise in Ostafrika v. A. Voeltzkow, Bd. 3.] Stuttgart

E. Schweizerbart 1910 p. 115—127.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Systematik: Holmgren. — Bestimmungstabelle der Familien, Subfam.,

Gatt. u. Arten der Termitidae von Ceylon. Holmgren in Escherich, Termitenleben

p- 206— 212.

270 Insecta. Corrodentia für 1910.

Morphologie, Anatomie, Histologie.

Morphologie, Anatomie: Coptotermes travians: Bugnion und Popoff. —

Anatomisch - histologische Untersuchungen an Termitoxenia assmuthi: Assmuth.

Physiologie.

Leuchten der Termitidae: Branner. — Kastration von Jugendformen durch

männliche Termitidae: Montandon (Bul. Soc. Bucarest vol. 19 p. 444—-452).

— Lichtempfindlichkeit: Escherich (2, III. Ist gering).

Biologie.

Termitenleben auf Ceylon : Escherich (2). — Die schwarze Termite auf Ceylon

(Eutermes monoceros): Bugnion (1). — Termite ä latex auf Ceylon: Bugnion u.

Popoff (1). — Die Termiten oder weißen Ameisen: Escherich (3) (Russische

Übersetzung von No. 1). — Industrie der Termiten: Bugnion (2). — Termiten

auf lebenden Pflanzen: Chaine (1, 2, 3). — Bildung neuer Kolonien durch die

Geschlechtsformen der Termite: Feytaud. — Pilzzüchtende Termiten u. Ter-

mitenpilze auf Madagaskar: Jumelle u. Perrier de la Bathie. — Termiten von

Formosa : Oshima. — Nils Holmgreens neue Termitenstudien u. seine Exsudat-

theorie: Wasmann. — Hügelbauer: Escherich (2, I). — Hügelgenese, Bau-

methode : Escherich (2, I). — Kartonfabrikanten : Escherich (2, II). — Bautätigkeit

beruht auf Instinkten : Escherich (2, p. 80). — Termitenhügel als Brennmaterial:

Lüderwaldt. — Bauten centralasiatischer Termiten: Karawaiew. — Futterale

von H.turcestanicus: Karawaiew. — Biologie der Termitidae u. Beitrag zur

Soziologie der Tiere: Escherich. — Auswandernde Termite: Codina. — Milch-

termite: Bugnion u. Popoff (1). — Kottermite: Escherich (2, p. 98). — Lebende

Schleuder: Escherich (2, p. 146). — Bildung neuer Kolonien durch die aus-

schwärmenden Geschlechtsformen von Termes lucifugus: Feytaud. — Beob-

achtungen u. Versuche im Laboratorium: Escherich (2, III: an Königinnen;

Kämpfe; Lichtempfindlichkeit). — Staatenbildung : Maxwell-Lefroy u Howlett.

Symphilie und Kastenbildung.

Wesen und Ursprung der Symphilie: Wasmann (1). — Kastenbildung im

Lichte der Exsudattheorie: Wasmann (2).

Termitophilie.

Termitophilen auf Ceylon: diverse Autoren in Escherich (2). — Neue

termitophile Ameisengrille: Schimmer. — Sphecophila termitarium: Shelford.

— Termitophile Staphylinidae: Silvestri (3). — Termitophile Coleoptera u. Thy-

sanura: Silvestri (2). — Beschreibung der termitophilen T’hysanura von Ceylon

Silvestri (1). — Beschreibung einer mimetischen termitophilen Coleopterenlarve:

Silvestri (1). — Termitophile Coleoptera von Ceylon : Wasmann (3). — Nils Holm-

grens neue Termitenstudien: Wasmann (2). — Zwei neue Gäste von T’ermes

malayanus Haw.: Silvestri (2).

Parasiten.

Infusoria (Trichonymphidae) im Darme von Leucotermes, Calotermes u.

Coptotermes; im Darme der echten Termiten wie T. Redemanni, obscuripes u.

Horni fehlen sie; Bugnion u. Popoff (p. 113—115). Ausführliche Angaben hierüber

Faunistik. Systematik. 271

p. 132—137 u. pl. V, woselbst auch p. 135 in Anmerk. die Termitenarten auf-

gezählt sind, bei denen bis jetzt diese Parasiten gefunden wurden.

Ökonomie.

Ökonomie : Escherich (2, IV). — Schädlinge am Kautschuck- u. Wurzelbaum,

sowie am Zuekerrohr: Bugnion u. Popoff (p. 115—116: Coptotermes @estroi

Wasm.).— Sehädlinge am Zuckerrohr : Matsumura.— Termitensehaden : Escherich

(1). — Sehaden an Bäumen: Chaine (1). — Termiten und lebende Pflanzen:

Chaine (1, 2, 3).

Faunistik.

Inselwelt.

Seychellen : Holmgren (2) (/soptera, 3 neue Spp.).

Asien.

Asien: Bugnion. — Ceylon: Holmgren in Escherich (p. 185 u. folg. Über-

sicht über die bisher bek. Spp. (p. 186—187) u. über die nunmehr bek., (p. 187

—188), unter denen für Ceylon neu sind: an Gatt. Leucotermes (1 Sp.), Coptotermes

(1 Sp.), Eurytermes (1 Sp.), Hamitermes (1 Sp.), an Arten T’ermes (2 Spp.), Eutermes

(3 Spp.), Microcerotermes (1) u. Capritermes (1). — Insgesamt Protermitidae

(3 Spp.), Mesotermitidae (3), Metatermitidae: 1 Serie (9 + 1?), 2. Serie (10 + 1?),

3. Serie: (3 +2?), 4. Serie (2); Bugnion u. Popoff (2), (Calotermes), Bugnion

u. Popoff (1) (Coptotermes n. sp.), Escherich (Termitenleben), Holmgren (Ceylon-

Termiten). — Formosa : Oshima (1, 2) (Termitidae) [Japanisch].

Afrika.

Madagaskar, Comoren u. Inseln Ostafrikas: Wasmann (4) (6 neue Spp.).

Amerika.

Amerika: Camp-Termiten fehlen auf dem Campo Itatiaya; Lüderwaldt

(Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 239).

Systematik.

Ordo Isoptera [System nach Holmgren]:

I. Fam. Protermitidae Holmgr. nov. fam. (p. 285).

1. Subfam. Mastotermitinae Desn.

3. Gatt. Masiotermes Frogg. — Termes errabundus Frogg.

2. Subfam. Hodotermitinae Holmgr. nov. fam. (p. 285).

Gatt. Archotermopsis (Desn.), Termopsis Heer u. Hodotermes Hag. mit

der Untergatt. Anacanthotermes Jacobs.

3. Subfam. Stolotermitinae nov.fiam. (p. 285).

Gatt. Stolotermes Hag.

4. Subfam. Calotermitinae Holmgr.

Gatt. Porotermes Hag. u. Calotermes Hag. Untergatt. der letztgen. Gatt.

sind Calotermes s. str. (Typus: C. flavicollis Fabr.), Glyptotermes Frogg.

(Typus: CO. borneensis Hav.), Procryptotermes Holmgr. (Typus: ©. fryeri

Holmg.) u. Cryptotermes (Banks) (Typus: C. cavifrons Banks). Dazu

möglicherweise noch ein Subgenus m. (©, fulvescens Silv. als Typus.

972 Insecta. Corrodentia für 1910.

Il. Fam. Mesotermitidae Holmgr. nov. fam. (p. 285).

1. Subfam. Leucotermitinae Holmgr. nov. subfam.

Gatt. Leucotermes Silv., Psammotermes Desn. u. ? Heterotermes Frogg.

2. Subfam. Coptotermitinae Holmgr. nov. subfam. (p. 287).

Gatt. Coptotermes Wasm. u. Arrhinotermes Wasm.

3. Subfam. Rhinotermitinae Frogg.

Gatt. Rhinotermes Hag. u. Parrhinotermes Holmgr. n.g. für T. aequalis

Hav. (p. 285).

4. Subfam. Serritermitinae Holmgr. nov. fam.

Gatt. Serritermes Wasm.

5. Subfam. Termitogetominae Holmgr. nov. subfam.

Gatt. Termitogeton Desn.

III. Fam. Metatermitidae Holmgr. nov. fam. (p. 286).

1. Subfam. Termitinae Holmgr.

1. Serie: Gatt.: Acanthotermes Sjöst., Syntermes Holmgr. n.g. (Typus:

Termes dirus Klug), Synacanthotermes Holmgr. n. g. (Typus: Eutermes heterodon

Sjöst.), Protermes Holmgr. n. g. (Type: Eutermes prorepens Sjöst.) u. Termes (L.)

Holmgr. — Untergatt. von Termes s. str. Holmgr. (Typus T. bellicosus Smeth.),

Macrotermes Holmgr. n. subg. (Typus: T. carbonarius Hag.), Odontotermes Holmgr.

n. subg. (Typus: T. vulgaris Hav. u. C'yclotermes Holmgr. n. subg. (Typus: T. obesus

Ramb.) — Weitere Gatt. sind: Microtermes Wasm. u. Hamitermes Silv. (p. 286).

2. Serie: Cornitermes Silv.,. Armitermes Silv., Eutermes Fr. Müller, Anoplo-

termes Fr. Müller mit dem Subg. Speculitermes (Wasm.).

3. Serie: Microcerotermes Silv., Cylindrotermes Holmgr., Eurytermes

Wasm., Orthognathotermes Holmgr. n.g. (Typus: Mirotermes macrocephalus

Holmgr.), Capritermes Wasm., Mirotermes Wasm. Subg. C'ubitermes (Wasm.) u.

Spinitermes (Silv.) Letztere möglicherweise eine eigene Gatt. Mirotermes kann

übrigens in noch einige Untergattungen geteilt werden.

Termitidae v. Formosa: Oshina, Rep. publ. by the government of Formosa

Taihoku 1909 p. 1—45 pl. [Japanisch] — Termitidae von Formosa. Oshima,

Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 343—346, 376—382, 411—413.

Allotermes n. g. (Calotermes nahest.) Wasmann, Voeltzkow Reise vol. 3 p. 121. —

paradoxus n.sp. p. 121 (Madagaskar).

Anoplotermes (Speculitermes) cyclop, Wasm. = (Speculitermes cyclops Wasm.)

Bemerk. zur Bestimmung u. zur systematischen Stellung. Holmgren in

Escherich, Termitenleben p. 202—203.

Calotermes Greeni Desn. 1907. Ausführliche Beschreibung der Kasten. Bugnion

u. Popoff, M&m. Soc. Zool. France T.23 p. 125—132. Taf. III fig. 1—12,

fig. 13 bis. — Biologisches; Schaden, Kopf des Soldaten Textfig. 1 bis

Beschr. der zukünftigen Geschlechtsformen, die die Rolle von Arbeitern spielen

(auf einer Insel im Ambalangoda-See, in einem halbtrockenen Aste von

Anarcardium occidentale). — militaris Desneux, Beschreibung des Soldaten

nach Desneux p. 137. — dilatatus n. sp. Beschreib. des Soldaten, der Nymphe

u. Larven verschiedener Größe (11/,, 3, 4—71/, mm) p. 137—143 hierzu

Taf. IV Fig. 13—23 u. Textfig. 20 bis Soldat, Textfig. 21 bis Larve von

71/),mm (in einem Teebaume aus der Umgegend von Ambalangoda auf

Ceylon). — C. militaris Desn. Soldat; gynäkoide Form, Fundort. Holmgren

Systematik. 273

in Escherich p. 189 Taf. II Fig. A. — Greeni Desn. p. 189 Soldat Taf. II

Fig. B (Seenigoda Estate bei Ambalangoda. Ceylon). — C. (Glyphotermes)

ceylonicus n.sp. p. 189 Imago (Peradeniya). — C. greeni Escherich, Tha-

rander forstl. Jahrb. Bd. 61 p. 168—185. — C.laticollis n. sp. Holmgren,

Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 137. — C. (Procryptotermes subg. nov.) fryeri

n. sp. p- 139. — 0. (Glyptotermis) scotti n. sp. p. 140. — longus n. sp. p. 142

(sämtlich von den Seychellen u. Aldabra - Inseln). — C. europae n. sp.

Wasmann, Voeltzkow Reise Bd. 3 p. 118. (Europa; Ostafrika). — havilandi

subsp. parasita n. p. 119—120 (Mauritius u. Comoren).

Capritermes incola Wasm. Imago, Soldat, Arbeiter von Peradeniya bei Termes

obscuriceps. Ü. obincola u. longicornis getrennte Arten? Holmgren in

Escherich, Termitenleben etc. p. 204. — ceylonicus n. sp. p. 204—205 fig. Q.

Beschr. der Königin Taf. II, Soldat, Arbeiter von nemorosus Havil. nicht zu

unterscheiden (Peradeniya bei Termes obscuriceps).

Coptotermes travians Hav. Soldat (= Arrhinotermes Heimi Wasm. Biologisches.

Beschreibung der einzelnen Kastenformen. Bugnion u. Popoff, Mem. Soc.

Zool. France T.23. 1910 p. 107—112. Abb. pl.I fig. 1—8 u. pl. II fig. 9.

Darmtraktus u. seine Infusorien (p. 112—115). — Gestroi Wasm. von Malakka.

Beschreib. v. Soldat u. Nymphe p. 115—116. Verbreitung auf der Halbinsel

Malakka, Borneo, Birmanien u. Tonkin. Ist dem Kautschuk (Hevea-), der

Rhizophora mangle-Bäumen u. dem Zuckerrohr schädlich. Nähere Angaben

hierzu p. 116. — flavus n. sp. (Soldat leicht erkenntlich an seiner einförmig

gelben Färbung, gestreckten u. abgeflachter Form) p. 117—120 pl. II fig. 14

—20. Beschr. des Soldaten u. des Arbeiters; Imago unbekannt (am Rande

des Sees Ambalangoda auf Ceylon unter der Rinde eines abgestorbenen

Baumes, der sich ins Wasser gesenkt hatte). — Die bis jetzt bekannten

C.-Spp. sind (©. G@estroi Wasm. 1896 (Malakka etc.), C. travians Havil.

(Malakka ete.), CO. marabitanas Hag. (Brasil.), CO. testaceus Linn., Brasil.

Guyana ete.), CO. lacteus Froggatt (Austral.), C. australis Walk. (Austral.),

©. Raffrayi Wasm. (Austral.), u. C. truncatus Wasm. (Madagaskar), C. late-

ralis Walk. (Sierra Leone, Kamerun), ©. acinaciformis Froggatt (N. Ost-

Austral.) u. ©. flavus (Ceylon). — ceylonicus n. sp. (Imago d. (©. travians

Hav. sehr ähnlich, aber gröber gebaut. Vergleichende Maßangaben von

Havilandi, formosae, travians u. ceylonicus) Holmgren in Escherich p. 192

(Seenigoda Estate, in morschem Holze.) „Milchtermite“. Der Soldat gibt

gereizt einen großen Tropfen Milch von sich. — Auch von Peradeniya u.

Hene ratgoda) Biologie p. 156 u. 173. Bemerk. zu Coptotermes p. 191—192.

Coptotermitinae Holmgr. Charakt. Holmgren in Escherich, Termiten-

leben p. 206 sq.

O'yclotermes subg. nov. von Termes. Holmgren, Zool. Anz. Bd. 35 p. 286.

Eurytermes Assmuthi Wasm. von Peradeniya bei T’ermes obscuriceps + ceylonicus.

Im Djungel unter Steinen, in Erdgängen, keine Soldaten. Holmgren in

Escherich, Termitenleben p. 205.

Eutermes monoceros Biologie, Morphologie und Anatomie. Abb. des Arbeiters,

des Soldaten u. der Königin. Morphologische Details. Bugnion, Ann. Soc.

Entom. France T. 78 p. 271—281. 3 Taf. (8—10); Arbeiter Taf. 8 Fig. 1,

Soldat Taf. 9 Fig. 1, Königin Taf. 9 Fig. 3. — Eu. ceylonicus n. sp. Holm-

gren in Escherich, Termitenleben p. 197—198 Soldat, Arbeiter (Peradenyia).

Archiv er ee aehiehlt 18

11. v1.

274 Insecta. Corrodentia für 1910.

1. Kartonnest an einem Felsen verbunden durch eine Karton-Galerie mit

einem Nebennest am Boden 2. Unter morschem Holz. 3. Unter morschem

Kokosstamm. Seenidoga-Estate. Gallerie am Stamme einer Kokospalme.

Fig. 49 p. 122. — Distinkte Art, die Eu. ceylonicus nahest. u. möglicher-

weise = E. singaporiensis Wasm. aus Ceylon ist. — hantanae n.sp. (steht

E. inanis nahe, ist aber größer ete. Gehört zur regularis-Gruppe) p. 198

Taf. III Fig. P.1 u. P.2 Soldat, Arbeiter (Hantana, 3000° im morschen

Stamme neben Termitogeton). — Escherichi n.sp. (bildet den Uebergang

zwischen der ‚„regularis‘“‘-Gruppe Havil. u. den ‚‚lacessitus“‘- u. „„hospitalis““-

Gruppen) p. 199—200 Soldat, Arbeiter pl. III Fig. L, u. L, (Peradenyia,

in einem T'ermes obscuriceps Nest) Bemerk. zu den genannten Gruppen

p- 200. — oculatus n.sp. p. 200 Imago, die möglicherweise zu E. hantanae

oder zu E. Escherichi Holmg. gehört (Ceylon, Peradeniya). — perparvus

n.sp. Imago p. 201 (Ceylon, Heneratgoda, Peradeniya). — rubidus Hag.

Beschr. der Imago, die früher unbekannt war. Sie erinnert an Hut. Heimi

Wasm. u. Eut. biformis Wasm., ist aber kleiner u. dunkler. p. 201 Taf. III

Fig. O, u. O, (Galle, Nest unterirdisch. Seenigoda Estate; Madras). —

momoceros König p. 202, auch p. 99 Zig. 42 A. — Wasmann beschreibt in

Voeltzkow Reise Bd. 3 p. 125—127 folg. Spp.: mauritianus n. sp. (Mauritius),

comorensis D. sp. (Comoren). — nigrita subsp. rectirostris n. (Madagaskar) u.

var. pusilla n. (ebendaher). — E.nigrita subsp. maheensis n. Holmgreen,

Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 148.

Hamitermes quadriceps Wasm. von Peradeniya, bei T’ermes obscuriceps. Holmgren

in Escherich, Termitenleben p. 205.

Leucotermes ceylonicus n.sp. Holmgren in Escherich, p. 190. Imago, Soldat

(groß u. klein), Arbeiter Taf. II Fig. C,, C, (Peradenyia, in einem Baum-

stumpf). Bemerk. zur Aufstellung dieser neuen Art p. 191—192. — speratus.

Oshima, Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 413—416 [Japanisch].

Leucotermitinae Holmgr. Charakt. Holmgren in Escherich, Termiten-

leben p. 206 sq.

Macrotermes subg. nov. von Termes. Holmgren, Zool. Anz. Bd. 35 p. 286.

Mesotermitidae nov. fam. Holmgren, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 143. —

5 Subfam. — M. Holmgr. Charakt. Holmgren in Escherich, Termitenleben

p- 206 sq.

Metatermitidae nov.fam. Holmgren, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 145.

— 3 Subfam. — M. Holmgr. Charakt. Holmgren, in Escherich Termiten-

leben p. 206 sq.

Mierocerotermes Bugnioni n. sp. (scheint wie eine Tabelle über die 3 Spp. lehrt,

eine Zwischenstellung zwischen M. Heimi u. cylindriceps einzunehmen).

Holmgren in Escherich, Termitenleben p. 203—204 Taf. II Fig. S. (Seeni-

goda Estate bei Ambalangoda). — cylindriceps Wasm. Arbeiter von Galle,

Ceylon p. 204. — M. propinquus n. sp. Wasmann, Voeltzkow, Reise Bd. 3

p- 125 (Europa).

Odontotermes subg. nov. zu Termes. Holmgren, Zool. Anz. Bd. 35 p. 286.

Orthognathotermes n.g. (Type: Mirotermes macrocephalus Holmgr.) Holmgren,

t. c. p. 286.

Parrhinotermes n. g. (Type: T. aequalis Hav.) Holmgren, t. c. p. 285.

Proeryptotermes subg. nov. siehe Calotermes.

Publikationen und Referate. 275

Protermes n. g. (Type: Protermes prorepens Sjöst.). Holmgren, t. c. p. 286.

Protermitidae nov. fam. Holmgren, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 137. —

4 Subfam. — Pr. Holmgr. Charakt. Holmgren in Escherich, Termitenleben

p- 206 sq. Imagines etc.

Psammotermes voeltzkowi n. sp. Wasmann, Voeltzkow Reise Bd. 3 p. 122 (Mada-

gaskar).

Synacanthotermes n. g. (Type: Eutermes heterodon Sjöst.) Holmgren, Zool. Anz.

Bd. 35 p. 286.

Syntermes n. g. (Type: T. dirus Klug) Holmgren, t.c. p. 286.

Termes malayanus Nest mit 8 Königinnen. Ridley, Journ. Straits Asiat. Soc.

vol. 54 p. 157. — T.horni Wasm. Holmgren in Escherich, Termitenleben

p. 194 Taf. III Fig. E. — ceylonicus Wasm. p. 194 Taf. III Fig. F. — Rede-

manni Wasm. p. 194 Taf. III Fig. H. — obscuriceps Wasm. p. 194 Taf. III

Fig. G (sämtlich bei Peradeniya). — Escherichi n. sp. (steht 7. Redemanni

nahe, ist aber viel kleiner etc.) p. 195>—196 (Hantana bei Peradenia, 2700’.

Zusammen mit T. Horni), — T. preliminaris n. sp. p. 196 Imago (Pera-

deniya, Resthouse). — peradeniyae n. sp. p. 197 Imago (Peradenyia, Ceylon).

Termitogetoninae Holmgr. Charakt. Holmgren in Escherich, Ter-

mitenleben, p. 206 sq.

Termitogeton umbilicatus Hag. (steht T. planus Haviland sehr nahe) Holmgren

in Escherich, Termitenleben p. 193 Taf. II Fig. K. (Hantana, Berg bei

Peradeniya, 3000‘. In sehr feuchtem morschen Holzstück.) Bei Soldaten

u. Arbeitern kommen Fazettenaugen vor.

II. Embiidae (= Embioptera).

Publikationen und Referate.

Enderlein, Günther. Embridina und Neuroptera, (Coniopterygidae

und Hemerobiidae) [der Seychelles. Trans. Linn. Soc. Zool. 2. ser.

vol. 14 1910 p. 55—58.

Handlirsch, Anton. Über Relikte. Verhdlgn. zool.-bot. Ges.

Wien Bd.59 p. (183)—(207). — Die Embioidea gehören zu den

seltensten Insekten. Sie haben zu keiner heute lebenden Gruppe

nähere Beziehungen. Ihre Zahl ist sehr gering, so daß wir annehmen

können, es seien nie mehr Arten gewesen. Sie umfassen heute etwa

0,008 = aller Insekten, im Tertiär noch 0,051 =, also 6 mal mehr

wie heute (p. 201).

Lucas, Robert. Embiridae für 1904, 1905, 1906 [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera.

Petersen, Esben. Guldsmede, Dognfluer, Slervinger og

Copeognather, Danmarks Fauna, vol. 8 [Danish Odonata, Ephemerida,

Plecoptera and Copeognatha], Kobenhavn 1910 [G.E.C.Gad] p.1

—163, 133 figs. 18,5 cm.

Rimsky-Korsakow, M. N. (1). Über das Spinnen der Embiiden.

Zool. Anz. Bd. 36 p. 153—156, 2 Fig. — Bisherige Arbeiten über den

Spinnapparat der Eimbiidae. Beobachtungen an reichlichem Material

1er

276 Insecta. Corrodentia für 1910.

an lebenden Embien aus Villefranche sur Mer (E. ramburi u. E. solieri)

gibt dem Verf. Gelegenheit, die Beweisgründe, die Enderlein für die

Richtigkeit seiner Meinung, daß die Öffnung der Spinndrüsen bei

Embien an der Unterlippe sich befindet, kurz zu besprechen. An der

Unterlippe der Embien bemerkt man die kleinen Lobi interni, die

aber keinen äußeren Spinnapparat vorstellen, wie Enderlein annimmt.

Die Embien besitzen nur ein Paar von Speicheldrüsen, die mit ganz

kurzem, gemeinsamen Ausführgang in die Mundhöhle münden, an der

Basis des stark entwickelten Hypopharynx. Die Copeognatha besitzen

2 Paar Kopfdrüsen, deren eins als Speicheldrüsen, deren anderes als

Spinndrüsen anzusehen ist. Die Atropidae u. Tortricidae scheiden

keine Spinnfäden aus, erstere besitzen auch nur Speicheldrüsen.

Der Spinnapparat der Embüidae ist grundverschieden von dem der

Copeognatha. Direkte Beobachtungen an lebenden Embien zeigen,

daß die Spinnfäden bei den Tieren aus den Metatarsen der Vorder-

beine heraustreten. Der Spinnapparat ist ein Komplex von einzelligen

mehrkernigen Drüsen, deren Ausführungsgänge in Form von äußerst

feinen Kanälchen an der Spitze besonderer Haare ausmünden. Ender-

lein vermißt das Fehlen jeder Einrichtung zum Herauspressen des

Sekrets, was gegen den Sitz des Spinnapparates in den Tarsen spräche.

Es sind in der Tat keine derartigen Einrichtungen vorhanden, was aber

nicht verwunderlich sei, da ja auch bei den Araneina keine Preß-

vorriehtungen vorhanden seien. Nach Ansicht des Vrf. funktionieren

hier die Ausführungskanälchen wie Capillarröhren. Morphologisch

lassen sich die Spinndrüsen der Embrirdae mit einzelligen Drüsen

vergleichen, welche in den Beinen verschiedener Insekten vorkommen.

Der Umstand, daß die Spinndrüsen in den Beinen vorkommen, sei gar

nicht so anormal, denn manche Arthropoden besitzen gerade in den

Beinen oder überhaupt in den Gliedmaßen einen Spinnapparat, so

die Corophüidae [Amphipod.] in den Beinen, desgl. einige Pantopoda-

in den Beinen, desgl. einige Pantopoda-Larven, Tetranychus in den

Tastern, Scolopendrella [Myriop.] in den griffelförmigen Fortsätzen

des Hinterleibes, die Araneina in den abdominalen Endanhängen.

Enderleins Annahme, daß den Tarsendrüsen der Embien keine Spinn-

tätigkeit zukomme, sondern daß das Sekret der Drüsen den von der

Unterlippe herkommenden Spinnfaden erhärten läßt u. auch die Tarsen

vor der Verunreinigung seitens des Spinnsekretes schützen solle,

ist somit hinfällig, durch die Angaben Rimsky-Korsakovs, der seine

Studien an lebenden Embien, nicht, wie Enderlein, an Spiritus-

material anstellte.

— (2). Haönogenia mar 3mOismu 036 Buuıa - Dpanku. [Ob-

servations sur les Embies de Ville - Franche]. Rev. russe entom. St.

Petersburg T. 10 1910 p. 72—79.

— (3). 3ambrka 0 HAChKOMBIXBb OKPeCTHOCTeÄ BEIIA (PPAHEH.

[Notice sur les insectes des environs de Ville Franche]. t.c. 1910

[1911] p. 296—300.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. Systematik. Publikationen. 277

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht : Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Physiologie und Entwicklung.

Regeneration der Vorderbeine bei Embia: Rimsky-Korsakow (1) [Russisch].

— Regeneration u. Metamorphose bei Embiidae: Rimsky-Korsakow (3) [Russisch].

— Lage und Bau der Spinndrüsen bei Embia: Rimsky-Korsakov (2). — Spinnen

der Embiidae: Rimsky - Korsakov (1). — Wachstum und embryonale Ent-

wicklung von Embia ramburi: Rimsky-Korsakov (1, 3) [Russisch].

Symbiose.

Zusammenleben von Stenosis angustata mit Embia: Rimsky-Korsakov (2)

[Russisch].

Faunistik.

Inselwelt.

Seychellen : Enderlein (Oligoioma n. sp.).

Europa.

Ville-Franche: Rimsky-Korsakov. — Dänemark : Petersen.

Reliktenfauna : Handlirsch.

Systematik.

Embia ramburi. Systematische Stellung. Unterschiede von E. solieri. Spinn-

drüsen, Nahrung, Regeneration: Rimsky-Korsakov, Rev. russe entom.

T. 10 p. 72—79.

Oligotoma saundersi Lefroy, Journ. Bombay Soc. vol. 19 p. 1009. —N e u: scottiana

n. sp. Enderlein, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 55 (Seychellen).

II. Psocidae (= Psocoptera).

Publikationen und Referate.

Enderlein, Günther (1. Eine Dekade neuer Copeognathen-

gattungen. Sitzungsber. d. Gesellsch. naturf. Freunde (Berlin) 1910

p. 63— 77. — Gibt darin die Diagnose von zehn neuen Gattungen,

die zumeist aus Paraguay stammen. Am, interessantesten ist die

Gatt. Colposeopsis, die erste südamerikanische Amphientomide.

Hervorzuheben ist ferner die Gatt. Euplocania, durch die auch die

Stellung der Gatt. Pixloneura richtig gestellt werden konnte. Die neuen

Gatt. sind Pelmatocoria (1 n.sp.), Stelops (1 n.sp.), Lichenomima

(In. sp.), Phlotodes, Rhaptoneura (1 n. sp.), Euplocania n.g. (1 n. sp.),

Labocoria, Colposcopis (1 n. sp.), Notolepium (1 n. sp.), Trigonosceliscus

m. el n.ep.).

278 Insecta. Corrodentia für 1910.

— (2). Diplacanthoda bowvieri, nouveau genre de Copeognathes

(Psocinae) de Madagascar. Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 448

—450.

— (3). Die Copeognathen Norwegens [in Strand, Neue Bei-

träge etc... Nyt Mag. Naturvid. Kristiania vol. 48 1910 p. 318—

323. — 2 neue Vaırr.: Psocus major var. septentrionalis n. u. Me-

sopsocus umipunctatus var.n. boreals.

— (4). Neue außereuropäische Copeognathen. Zool. Anz. Bd. 36

1910 p. 161—169. — Psocus (2 n.spp.), Amphigerontia (1 n.sp.),

Clematostigma (1 n. sp.), Coryphaca n. g. (1 n. sp.), Caecilhus

(2 n.spp.), Echmeptery& (1 n.sp.), Archipsocus (1), Myopsocnema

(1.n.sp.).

En, Robert. Psocidae für 1904, 1905, 1906. [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera.

King, J. J. F. X. List of the Clyde Copeognatha or Psocidae.

Glasgow Natural. vol. 2. 1910 p. 34—36. — Liste von 21 Spp. (gegen

43 britische) nebst Angaben über Verbreitung.

Okamoto, Hantaro. Die Caeciliiden Japans. Ann. Hist.-Nat.

Mus. Hung. Budapest T.8 1910 p. 185—212, Taf. III—V.

Ribaga, Costantine. Anisopsocus lichenophilus, nuovo Copeognato

trovato in Italia. Redia Firenze vol. 6 1910 p. 272—281.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Faunistik.

Inselwelt.

Kanarische Inseln : Enderlein (4) (Myopsocnema n. sPp.).

Europa. A

Großbritanien u. Irland: Clyde: King. — Italien: Ribaga (Anisopsocus

lichenophilus). — Norwegen : Enderlein (3) (Copeognatha, 2 neue Varr.).

Asien.

Japan: Okamoto (Caeciliidae). — Formosa : Okamoto (Caeciliidae).

Afrika.

Madagaskar : Enderlein (2) (Diplacanthoda n. g.).

Amerika.

Südamerika : Enderlein (4) (neue Gatt., neue Spp.).— Paraguay : Enderlein (1)

(10 neue Spp.).

Systematik.

Amphigerontia denticulata n.sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd.36 p. 162—163

Details Fig. 1 letzter Sternit u. Penis, Fig. 2 linke Telsonklappe (Paraguay:

San Bernardino).

Systematik 279

Amphipsocus formosanus n.sp. Okamoto, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 194—195

Taf. IV Fig. 1 (Formosa). — rubrostigma n. sp. p. 195—196, hierzu Taf. IV

Fig. 2 (Takasago).

Anisopsocus n.g. Ribaga, Redia vol.5 p. 272 sq. lichenophilus n. sp. (Italien).

Archipsocus brasiliensis Enderl. 1906. Ergänzung zur Diagnose. Ist dichter u.

länger behaart als A. recens Enderl. 1903 aus Indien, besonders ist die Ab-

dominalbehaarung lang u. struppig. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 168

(Paraguay: San Bernardino). Beschreibung der Larven, die eine auffallende

Ähnlichkeit mit Mallophagen zeigen.

Caecilvus albomarginatus n. sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 166 2 (Süd-

brasilien, Theresopolis). — paraguayensis n. sp. p. 166—167 2 (Paraguay:

San Bernardino). — Okamoto beschreibt in d. Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 202

— 212, hierzu Taf. IV Fig. 4—6 u. Taf. V Fig. 1—6 folgende neue Arten:

annulicornis n.sp. (Formosa). — badiostigma n.sp., flavidorsalis n.sp.,

gracilis n.sp., kamakurensis n. sp., luteovenosus n. SP., nigricornis D. SP., U.

stigmatus n. sp. (sämtlich aus Japan).

Clematostigma paraguayense n.sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 164 2 (Para-

guay, San Bernardino).

Colposeopsis n. g. (Typus: CO. sipennis Enderl. Geäder, wie bei Paramphien-

tomum Ender]. 1906. Pterostigma fehlt, da das distale dasselbe abschließende

Stück der Subcosta fehlt. Der Außenrand des Vflgls. zwischen m, u. m,,

sowie auch zwischen m, u. cu, ziemlich stark ausgebuchtet. Areola postica

flach. Im Hflgl. fehlt r,, der Queraderteil des Radialramus deutlich erkennbar,

ax im Hflgl. vor dem Ende der Analis stark genähert, am Ende aber wieder

abbiegend. Charaktere der Palpenglieder in der Schuppen siehe im Original.

— Erster amerikanischer Vertreter der Amphientomidae). Enderlein, Sitzungs-

ber. etc. p. 72—73. — sinipennis n.sp. p. 72—74$Q2 Fig. 2—7 morphol.

Details, wie Taster, Schuppen etc. (Paraguay, San Bernardino).

Coryphaca n.g. (steht Dipsorus Hag. nahe, letztere unterscheidet sich durch

folgende Merkmale: 3. u. 4. Fühlerglied verdickt u. mit kräftigen Haaren

besetzt. Media stark an die Areola postica gedrückt, etwas verkümmert u.

weit vom Radius abgerückt). Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 164—165. —

inka n.sp. p. 165 (Hoch Peru).

Diplacanthoda n. g. Enderlein, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 448. — bouvieri

n. sp. p-. 448 fig. 1.

Dipsocus tappanensis n.sp. Okamoto, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 186 Taf. III

Fig. 1 (Formosa).

Echmepteryx armillata n.sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 167—168 9 (Para-

guay: San Bernardino; hinter Rinde).

Epipsocus fasciicornis n.sp. Okamoto, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 191 Taf. III

Fig. 4 (Kyoto).

Euplocania n.g. (steht Piiloneura Enderl. 1900 nahe. Sie unterscheidet sich

folgendermassen: Media nur 4-ästig (nicht 6—8-ästig), die Äste m,, m, u. m,

stark S-förmig gebogen. Die Areloa postica hat eine sehr breite Basis u. der

absteigende Ast cu, ist stark S-förmig gebogen. Im Hflgl. ist die Media

ungegabelt u. stark S-förmig gebogen. Ader u. Randbehaarung wie bei

Ptiloneura. Auch hier besitzt der Vflgl. eine 2. Axillarader). Enderlein,

280 Insecta. Corrodentia für 1910.

Sitzungsber. ete. p. 69. — amabilis n. sp. p. 70—71 Flgl. Fig. 1 (Paraguay,

San Bernardino).

Hemicaecilius suzukii n.sp. Okamotoe, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 193 Taf. III

Fig. 5 (Kyoto).

Kolbea kagoshimensis n. sp. Okamoto, t.c. p. 196—200 Taf. IV Fig. 3 (Japan).

Labocoria n. g. (Typus: Mesopsocus diopsis Enderl. 1902 aus Ostafrika. Augen

auf langen Stielen u. kuglig. Maxillarpalpen sehr lang u. schlank. 2 geflügelt

[nicht ungeflügelt wie bei Mesopsocus]. Das Geäder ist das des der Gatt.

Mesopsocus Kolbe). Enderlein, Sitzungsber. p. 71.

Lichenomima n. g. (Tarsen 3-gliedrig. Geäder wie bei Psocus, doch ist die Areola

postica kurz gestielt, (selten u. abnorm u. zwar bei L. sparsus, in einem

Punkte mit der Media verschmolzen) u. im Hflgl. der Radialramus mit der

Media durch eine meist lange Querader verbunden. Im Vflgl. ist die Ver-

einigung von Radialramus u. Media variabel. Vflgl. wie bei Myopsocus Hag.

mit dichter feiner Bespritzung u. häufig mit moos- oder flechtenartiger Zeichn.)

Enderlein, t.c. p. 66. — Hierher: Myopsocus lugens Hag. 1861 aus Nord-

amerika, M.sparsus Hag. 1961 aus N. u. S. Amer., M. sumatranus Enderl.

1906 aus Sumatra u. Java, sowie M. camerunus Enderl. 1903 aus Kamerun.

— conspersa n. sp. p. 66—67 SQ (S. Brasil. Espiritu-Santo; Paraguay: San

Bernardino).

Mesocaecilius n. g. (Dasypsocus nahest.) Okamoto, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 197.

— quadrimaculatus n. sp. p. 197 Taf. III Fig. 6 (Formosa).

Mesopsocus unipunctatus var. borealis n. Enderlein, Nyt Mag. Naturv. vol. 48

p- 320 (Norwegen).

Micropsocus flaviceps n. sp. Okamoto, Ann. Mus. Hungar. vol. 8 p. 190 (Sapporo).

Myopsocnema canariensis n.sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 169% Details

Fig. 3 recht. Maxillarpalpus, 4 rechte innere Maxillarenlade (Kanarische

Inseln, an Myrte).

Myopsocus Hag. 1866 (Typus: M. undurons Hag. (1859) aus Ceylon. Unterscheidet

sich von Rhaptoneura durch: Scheitel der Areola postica breit mit der

Media verschmolzen; im Hflgl. ist der Radialramus u. die Media durch eine

Querader mit einander verbunden). Enderlein, Sitzungsber. p. 68.

Notolepium n.g. Perientomid. (Vflgl. u. Hflgl. von der Mitte aus in eine lange

dünne Spitze ausgezogen. Im Vflgl. zwischen Pterostigma und Radialramus

eine kurze Querader. Axillaris völlig geschwunden. Im Hilgl. ist die typische

sehr schmale Kadialzelle R deutlich; r entspringt zwischen ihr u. m,. Klauen

mit 1 Zahn vor der Spitze). Enderlein, Sitzungsber. etc. p. 74. — para-

guayense n. sp. p. 75 Klaue Fig. 8 (Paraguay, San Bernardino).

Pelmatoria n.g. (Scheitel tief eingesenkt, nach den Seiten in je einen engen

stilartigen Fortsatz erweitert, auf dessen Gipfel das fast kugelförmige Auge

steht. Sonst wie bei Amphigerontia, auch das Geäder). Enderlein, Sitzungsber.

Ges. naturf. Freunde 1910 p. 63. — pedunculata n. sp. p. 63—64 SQ (Para-

guay: San Bernardino, an Stämmen auf felsigem Abhang).

Peripsocus ignis n.sp. Okamoto, Ann. Mus. Hung. vol. 8 p. 187 Taf. III Fig. 2

( Yezo).

Phlotodes n. g. (Tarsen 3-gliedr. Geäder wie bei Psocus; Areola postica am

Scheitel breit — bei Phl. griseipennis (Me Lehl.) schmal — mit der Media

verschmolzen, u. im Hflgl. ist der Radialramus mit der Media eine Strecke

Systematik. ' 281

mit einander verbunden. Vflgl. wie bei Myopsocus Hag. mit dichter feiner

Bespritzung u. mit flechten- oder moosartiger Zeichnung). Enderlein,

Sitzungsber. ete. p. 67. — Typus: M. Kolbei Enderl. 1903 aus Neu-Guinea,

ferner M. griseipennis Mc L. 1886 aus Brasilien, wahrscheinlich auch

M. Loriai Rib. 1908 aus Neu-Guinea.

Psocus punctaticeps n.sp. Enderlein, Zool. Anz. Bd. 36 p. 161—162 2 (Süd-

Brasilien: Theresopolis). — theresopolitanus n.sp. p. 1622 (Fundort wie

zuvor). — major var. septentrionalis n. Enderlein, Nyt Mag. Naturv. vol. 48

p. 318 (Norwegen).

Ptiloneurinae subfam. nov. der Mesopsocidae. (Tarsen 3-gliedrig u. zwar ist das

Gelenk des 3. Gliedes etwas in das kurze 2. eingelenkt, sodaß sie tatsächlich

auf dem ersten Blick nicht leicht zu trennen sind. Eine Querader zwischen

Radialramus u. Media; Besitz einer 2. Axillarader im Gegensatz zu den

Mesopsocinae). Enderlein, Sitzungsber. etc. p. 70. — Hierher Piiloneura

mit bidorsalis Enderl. 1900 aus Peru.

Rhaptoneura n. g. (Tarsen 3-gliedr.; Geäder wie bei Psocus doch Areola postica

kurz gestielt; im Hflgl. ist Radialramus u. Media eine mehr oder minder

lange Strecke weit mit einander verschmolzen. Im Vflgl. ist die Vereinigung

von Radialramus u. Media variabel, entweder durch Querader verbunden

oder in einem Punkt oder eine kurze Strecke mit einander verschmolzen.

Vflgl. wie bei M yopsocus mit dichter feiner Bespritzung u. Moos- oder flechten-

ähnlicher Zeichnung.) Enderlein, t. c. p. 68. — Hierher als Type die n. sp.,

es gehört ferner in diese Gattung Myopsocus Eatoni MeL. aus Spanien,

Italien u. N.-Afrika). — dispar n. sp. p. 68—69 5% (Paraguay, San Bernardino,

an der Frucht einer Moracee) nebst kurzer Beschreib. der Larve.

Steleops n. g. (Scheitel wie bei Pelmatocoria tief eingesenkt, die Augenstiele etwas

kürzer. Augen ebenfalls kugelig auf dem Stiel sitzend. Geäder und sonstige

Organisation wie bei Psocus). Enderlein, Sitzungsber. Ges. naturf. Freunde

1910 p. 64. — punctipennis n.sp. p. 64—65 (Paraguay: San Bernardino,

an Stämmen).

Trigonosceliscus n. g. Charakt.d.Gatt. Enderlein, t.c. p.75—76.— Stenotroctes Enderl.

unterscheidet sich durch folg.: Hinterschenkel wenig verbreitert u. schlank,

Maxillar Palpus von normaler Größe, Hinterleib lang, oval; Außenborsten

der Hinterbeine nicht länger als das 1. Tarsenglied). Enderlein, t. c. p. 75

— 76. — leucomelas n. sp. p. 76—77 2 Details Fig. 9 u. 10 (Paraguay, San

Bernardino).

Plecoptera (= Perlidae) für 1910,

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Enderlein, Günther. Tropidogynoplax, eine neue Plecopteren-

Gattung. Stettin. Entom. Zeitschr. Jhg.71 p. 141—143. — Be-

schreibung der genannten neuen Gattung, sowie Fundorte zu

Ochthopetina violaris Enderl., Neoperla longicauda (Piet.) u. N. hiero-

glyphica Enderl. 1909.

Hare, E. 3. Some additions to the Perlidae, Neuroptera- Planv-

pennia and Trichoptera of New Zealand. Trans. N. Zealand Inst.

vol. 42 1910 p. 29—33.

Klapälek, Fr. Über die Neoperla-Arten aus Java. Notes Leyden

Mus. (Jentink) vol. XXXII p. 33—46, 5 Abb. im Texte. — I. Flaveola-

Gruppe: N. flaveola n.sp. II. Zuteola-Gruppe. Bestimmungstab. u.

Beschreibung der Arten: N. pzlosella Klp., N. Jacobsoni n. sp., N. rubens

Klp., N. luteola Burm., N. mitis Klp. u. N. fallax n. sp.

Lucas, Robert. Plecoptera für 1904, 1905, 1906 [Jahresbericht]

Titel siehe unter Trichoptera.

Petersen, Esben. Guldsmede, Dognfluer, Slervinger og Copeo-

gnather. Danmarks Fauna, vol.8 [Danish Odonata, Ephemerida,

Plecoptera and Copeognatha]. Kobenhavn 1910 (G.E.C. Gad) p. 1—163,

133 figs. 18,5 cm.

Porritt siehe unter Großbritanien.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberieht: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Systematik u. Stammbaum der Plecoptera: Klapälek, Wien. entom. Zeitg.

Jhg. 28. p. 215 sq.

Faunistik.

Inselwelt.

Neu-Seeland: Hare (Perlidae).

Europa.

Dänemark: Petersen. — Großbritanien: Huddersfield: Porritt

(Entom. Monthly Mag. (2) vol. 21 (46) p. 119: Nemoura). — Yorkshire:

Porritt (Naturalist 1910 p. 117: Leuetra).

Asien.

Java und Sumatra: Klapälek.

Systematik. 283

Amerika.

Amerika: Enderlein (Neoperla).

Systematik.

Acroneuria. Erweiterung der Unterschiede von Perla. Dieselben waren bisher nur

auf das Vorhandensein einiger Queradern zwischen Radius und Media an

der Flügelspitze begründet. Jetzt zieht Klapälek, Bull. internat. Acad.

Sci. Boh&me vol. 15 p. 1sq. auch den Bau der Hinterleibsspitze in Betracht

u. gibt eine Übersicht über die ihm bekannten 10 Spp. aus N. Amerika.

Außerdem sind in d. Literatur noch weitere 10 ungenügend beschriebenen

Spp. angegeben.

Capmia sparreschneideri n.sp. Petersen, Tromsö Mus. Aarsh. 31—32 p. 83—84

(Arktisches Norwegen).

Heteroperla n.g. (Stenoperla nahest.) Hare, Trans. New Zealand Inst. vol. 42

p- 30. — Type: Stenoperla (?) cyrene Hutt.

Leptoperla fulvescens n. sp. Hare, t. c. p. 29. — maculata n. sp. p. 29. — confusa

n.sp. p. 29. — confusa n.sp. p. 29. — hudsoni n.sp. p. 30 (sämtlich aus

Neu-Seeland).

Nemura arctica n. sp. Petersen, Tromsö Mus. Aarsh. 31—32 p. 85 (Norwegen).

Neoperla longicauda (Piet.) aus Brasilien. Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg.

Jhg. 71 p. 143. — hieroglyphica Enderl. 1909 in Venezuela, bisher nur aus

Ecuador bekannt. — Neoperla aus Java. Klapälek, Notes Leyden

Mus. (Jentink) vol. XXXII p. 33sq. — Teilung der javanischen

Spp- in zwei Gruppen, von denen die flaveola- Gruppe nur 1 Sp.,

die Zuteola-Gruppe 6 Spp. enthält. 1. flaveola-Gruppe ($ ohne be-

sondere Auszeichnung des 7. Ringes, 9. Dorsalring in der Mitte der

Länge nach vertieft, 10. Ring geschlitzt u. in 2 Fortsätze nach vorn

auslaufend): flaveola n.sp. p. 34—35 &2 Hinterleibsende Fig. 1 (Java

orient.). — 2. luteola-Gruppe (7. dorsaler Ring in der Mitte in ein dreieckiges,

den Hinterrand mehr oder weniger überragendes Schildchen differenziert;

unter der Spitze dieses Schildchens ist der 8. Dorsalbogen polsterartig

gewölbt. Der 10. Ring ebenfalls geschlitzt u. 2 dornartige Fortsätze tragend).

Übersicht über die hier in Frage kommenden 6 Spp. der Gruppe: pilosella

Klp. Beschr. p. 36—38 $ Hinterleibsende Fig. 2 (Tjibojas, Java). —

Jacobsoni n.sp. p. 33—39 & Hinterleibsende Fig. 3 (Semarang; Ardjoeno,

Java; Soeroelangoeng, Sumatra). — rubens Klp. Beschr. p. 40—41 32

Hinterleibsende Fig. 4 (Java orient. u. occid.). — luteola Burm. Beschr.

p- 41—43 Hinterleibsende Fig. 5 2 (Java), $ (Buitenzorg, Java). — mitis

Klp. Beschr. p. 43—44 2 (Mont Gedeh). — fallax n. sp. (rubens sehr ähnl.)

p- 44—46 (Java).

Ochthopetina violaris Enderl. 1909 von Java. Enderlein, Stettin. Entom. Zeitg.

Jhg. 71 p. 143.

Sparrea norvegica. Petersen, Tromsö Mus. Aarsh. 31—32 p. 87 (Norwegen).

Tropidogynoplax n.g. (2 Ocellen. Zwischen den Längsadern der Flügelspitzen

keine Queradern. Cereci lang. Die beiden ersten Tarsenglieder sehr kurz,

das 3. schlank. Die Verschmelzung von Radialramus u. Media (Stiel der

Zelle R,) im Hflgl. viel kürzer als der hintere (kürzere) Gabelast [hier ca.

284 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

3—31/, dess.). Die Subgenitalplatte des 2 (das 8. Sternit ist stark ver-

längert u. verdeckt das 9. u. 10. Sternit völlig [bei der vorlieg. Sp. trägt sie

einen sehr kräftigen u. hohen Medialkiel]. — Ochthopetina Enderl. 1909 unter-

scheidet sich davon durch den langen Stiel der Zelle R, im Hflgl. u. durch

die Subgenitalplatte des 9, welche die Sternite 9 u. 10 sichtbar läßt). En-

derlein, t. c. p. 141. — fuscipes n. sp. (gleicht im Habitus sehr der gleich-

falls javanischen Ochthopetina violaris Enderl.) p. 141—143 9 (Java).

Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Atmore, A. E. Occurrence of Aeschna isosceles Müll., near King's

Lynn. The Entomologist vol. 43 p. 293.

Backhoff, Paul. Die Entwicklung des Kopulationsapparates

von ÄAgrion. Ein Beitrag zur postembryonalen Entwicklungs-

geschichte der Odonaten. Zeitschr. f. wiss. Zool. Leipzig Bd. 95 1910

p. 647—706, 1 Taf.

Bartenev, A.N. (1). Marepiaıpi no hayHnb CTpero36 CmOnpn.

[Beiträge zur Odonatenfauna Sibiriens). Varsava Izv. Univ. 1910

5. p. 1—24.

— (2). Marepianpi mo haynb crpero3% Cuömpm. 15. Crpeko3bi

3adalkaısa. [Beiträge zur Ödonaten-Fauna Sibiriens. 15. DieOdonaten

von Transbaikalien]. Varsava Izv. Univ. 1910 VI, VII p. 1-77 +1).

— (3). Data relating to Siberian Dragonflies. Zool. Anz. Bd. 35

p. 270—278. 10 Figg. — 1. Odonata gesammelt von S. Chugunof im

Gebiete des Oby-Enissei Kanal (Narymski Distrikt, Tomsk Gouver-

nement). 10 Spp.: (p. 270—273): Leptetrum (1), Leucorrhinia dubia

(1 n. var.), Sympetrum (1), Somatochlora (2 n.sp. + 2), Aeschna (2),

Lestes (1). — 2. Odonata gesammelt von A. Bartenef (p. 273—275)

in der Umgebung von Tomsk (1908): 28 Formen u. zwar Leptetrum

(1), Leucorrhinia (2), Sympetrum (4), Epitheca (1), Somatochlora (2),

Cordulia (1), Aeschna (4), Ophiogomphus cecilia (1 var.n.), Gomphus

flavipes (1 n. var.), Calopteryx (2), Lestes (3), Sympycna (1), Agrion (3),

Erythromma (1), Platycnemis (1). — 3. Odonata gesammelt von

S. Chugunof in der Barabinsk-Steppe (Kainsk - Distrikt, Tomsk

Gouvernement) (1907) (p. 275—276): Leptetrum (1), Leucorrhinia (1),

Sympetrum (3), Aeschna (4. Ergänzung zur Beschreib. von A. serrata

Hag.), @omphus (1), Lestes (1), Symphycena (1), Agrion (2). — 4. Odo-

Publikationen und Referate. 285

nata gesammelt von V.Kvorof in Kuznetsk Distrikt, Tomsk Gou-

vernement (1908) (p. 276): Sympetrum (1), Lestes (1), Agrion (1),

Erythromma (1). — 5. Odonata gesammelt von M. Mordohovich in

Balagansk, Distrikt Irkutsk Gouvernement (Belskoe) (1908) (p. 277):

8 Spp.: Leptetrum (1), Leucorhinia (2), Sympetrum (1), Ophiogomphus

(1), Aeschna (1), Enallagma (1), Agrion (1). 6. Odonata gesammelt

von N. A. Bartenef im Gebiete des Tuba-Flusses (Nebenfluß des

Jenisei, Minusinsk-Distrikt, Jenesei Gouvernement) (1908): Leptetrum

(1), Zeucorrhinia (2), Sympetrum (6), Orthetrum (1), Somatochlora (1),

Cordulia (1), Ophiogomphus (1), Aeschna (3), Lestes (2), Sympyena (1),

Enallagma (1), Agrion (6), Nehalennia (1) (1), Erythromma (1). —

Die Odonatenfauna der Umgegend von Tomsk ähnelt in ihrer Zusammen-

setzung derjenigen des Gouvernements des zentralen Gebietes des

europäischen Rußlands. So sind beispielsweise von den aufgeführten

28 Spp. 13 identisch mit denen, die im Gouvernement Moskau beob-

achtet wurden (821/, %). In der Umgegend von Tomsk jedoch sind

folgende Spp. sehr gemein, die im zentralen europäischen Rußland

selten sind oder ganz fehlen: 1. östliche Formen — Aeschna gigas,

Ae.juncea u. Ophiogomphus cecilia, 2. die südlichen Formen —

Gomphus flavipes, Lestes virens u. Sympycena braueri, 3. die nördlichen

Formen Agrion armatum u. 4. Agr. vernale. Die Kategorien 2 u. 3 zeigen

unter anderem, daß in der Umgebung von Tomsk dieselbe Zusammen-

setzung nördlicher u. südlicher Formen zu beobachten ist, wie sie bei

den Odonaten des zentralen Ural beobachtet wurde. Die folgenden

im zentralen Teile von Europäisch-Rußland häufigen Arten fehlen

anscheinend im Tomsk-Distrikt: Labellula depressa, Aeschna cyanea,

Gomphus vulgatissimus, Onychogomphus forcipatus, Agrion pulchellum

u. Agrion puella.

— (4). Cnmckn Konıermiii 6e3m03BOHOYHBIXB 30010T. Myzen.

Hnn. Tomeraro Yungepcutera. XI. Konserms crpero3s (Odonata)

Manyamsi (SInoHin), mOo:RepTBoBanHag oparzamn. M. m C. A.

Cano:xHnkoBbimm (MockBa). [Verzeichnisse der Evertebraten-Samm-

lungen des Zoolog. Museums der Kais. Universität Tomsk. XI. Col-

lection of Matsugama (Japan) Dragon flies] Tomsk 1909. (I—11 +

engl. Resum& 11—16) pl. II fig. 7—10). 26 cm.

— (5). Cmmerm Kornermii 6e31103BOHOYHBIXB 30onor. Myses.

Ymn. Tomerkaro Ynusepcntera. XII. Marepismi mo days

cTpek036 Cn6npnm (1—5). [Verzeichnisse der Evertebraten-Sammlungen

des Zool. Museums der Kais. Universität Tomsk. II. Beiträge zur

Odonatenfauna Sibiriens (1—5). Tomsk 1909 p. 17—56, pl.I u. II

fig. 1—6, 26 cm.

— (6). Ks hayub Odonata Kyoancroi oönacrmn. [Contribution

& la faune des Odonates de la province de Kuban]. Rev. russe

entom. St. Peterburg. T. 10. 1910. p. 27—38.

— (9. Kp Payus crpero3p llonmsmm. [Zur Odonatenfauna

Polens.] Rev. russ. entom. St. Peterburg. T. 10. 1910. p. 124—125.

Bartenev, A. N., Jatzenkovsky ete. [Revue critico-bibliograpkique]

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286 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910,

Bartenev, A. N., Oshanin etc. [Revue critico-bibliographique

No. 62—91] t. c. p. 227—246.

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— (2). Cattura della Lindenia tetraphylla a Lucca. Atti Soc.

tosc. sci. nat. Pisa Prov. Verb. vol. 19 1910 p. 59—60.

Calvert, Philip P. (1). A plant-dwelling Odonate larva. Entom.

News Philad. Pa. vol. 21. 1910 p. 264.

— (2). Plant dwelling Odonate larvae. t.c. p. 365—366.

— (3). The Composition and Ecological Relations of the Odonate-

Fauna of Mexico and Central America. Proc. Acad. Nat. Sci. Philad.

1908 [1909] p. 460—491 pl. XXVI. — Ist ein Auszug aus den Odonata

der Biol. Centr.-Amer. und behandelt darin besonders die Beziehungen

derselben zur Umgebung. Nach Fertigstellung des Bandes sind noch

einige mexikanische Arten bekannt geworden, die in einer Höhe von

9000 ‘ = ca. 2750 m Höhe erbeutet wurden. Über die Prinzipien der

Verbreitung der Larven und Imagines ist noch sehr wenig bekannt.

Charakteristisch für Mexico u. Centralamerika ist das Fehlen der

Cordulinae, sowie das Fehlen einer Reihe von Gattungen, die in den

übrigen Teilen Amerikas zu finden sind. Die Cordul. sind unter gleichen

Breitengraden in der Alten Welt vertreten. Beachtenswert ist ferner

die geringe Anzahl der endemischen Gattungen, 7 von 71. — Es sind

vertreten Calopteryginae 23 Spp. (davon 17 auf Hetaerina, Gatt. Cvlo-

pteryx nur in 1 Exempl. vertreten), Lestinae (Lestes 7Spp.), Agrioninae

(5 Gatt. endem., 3 altweltl.: insgesamt 112 Spp., davon 48 Spp. auf

Argia), Gomphinae (mehrere Gatt. darunter sind auch außerhalb

Amerikas vertreten), Cordulegasterinae (1 Gatt. Cordulegaster),

Aeschninae (6 Gatt., 1 endemisch, 3 altweltlich), Cordulinae (1 holarkt.

u. paläotrop. Gatt. Macromia), Libellulinae (1 Gatt. endem., 5 altweltl.;

Pantala flavescens beiden Gebieten gemeinsam). Verf. bespricht dann

die Beziehungen der Odonatenfauna von Mexiko u. Centralamerika

im Verhältnis zu den übrigen Gebieten Amerikas, die Verteilung

der Gattungen u. Arten etc. etc. und stellt Tabellen dafür auf. Eine

klimatische Karte stellt die Beziehungen der Odonatenfauna zur

Temperatur dar. Eswerden die einzelnen Zonen besprochen, Anomalien

in der Verbreitung u. ihre wahrscheinliche Ursachen. Beziehungen der

Odonatenfauna zur Regenmenge; die diesbezüglichen Vorbedingungen

sind jedoch noch wenig erforscht. Heißfeuchte Bezirke weisen die

srößte Anzahl von Odonaten auf. Blasses Flügelgeäder wird möglicher-

weise durch Trockenheit des Klimas bedingt. — Beziehungen der

ÖOdonatenfauna zur Vegetation. Vertikale Verbreitung der Odonaten.

Referat vonN.vonAdelung, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 242—244.

Campion, F. W. u. H. On the variations of Agrion puella, Linn.

(Odonata). The Entomologist, vol. 43 p. 329—333. — Vom & werden

9 (p. 330—331), vom 9 2 Varr. (p. 332—333) beschrieben.

Dalgleish, Gordon. The dragon-flies of South-west Surrey. Zoo-

logist London 1910 p. 192—19.

Publikationen mit Referate, 287

Demoll, Reinhard. Die Physiologie des Facettenauges. Ergebn.

Zool. Jena Bd.2 1910 p. 431—516.

Förster, F. (1). Beiträge zu den Gattungen und Arten der Libellen.

Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 1910 p. 51—56. — Behandelt Tramea

cophysa, Tr. brasiliana Brauer, Tr. paulina n.sp., zur Gatt. Uracis,

Megapodagrion Selys s. str., Allopodagrion n.g. Podagr., C'rocothemis

papuana n.sp. u. Diphlebia Reinholdı n. sp. Calopt.

— (2). Über paläarktische Libellen. Mitteil. Zool. Ver. Karls-

ruhe Nr. 15. 1902. p. 69—81.

Janda, Viktor. Experimentelle Untersuchungen über die Rege-

neration der Odonaten. Zool. Anz. Bd. 35 p. 602—608, 14 Figg. —

Die Beobachtungen erstrecken sich auf Aeschna cyanea, Libellula

depressa u. Agrionidae. Die Larven von Aeschna sind imstande ab-

geschnittene Fühler, Beine u. Flügel zu reproduzieren. Die Re-

generation der obengenannten Organe vollzieht sich in dem Zeit-

raum zwischen den einzelnen Häutungen langsam unter dem alten

Chitinüberzug, ohne daß während dieser Zeit äußerlich etwas be-

merkbar ist. Die Regeneration der Fühler u. Beine ist in jeder Höhe

möglich u. die Ausbildungshöhe des Regenerats ist, abgesehen von dem

Alter u. der Wachstumsintensität des Individuums, proportional

der Zeit zwischen Operation u. der nächst folgenden Häutung.

Totalexstirpation von Fühlern u. Beinen an der Larve führt gleichfalls

zur Wiederherstellung derselben an der Larve oder Imago, wie jene

der Flügelanlagen. Die ersten Flügelregenerate sind viel kürzer u.

besitzen in der Regel eine geringere Gliederzahl als die unverletzten

Fühler (sehr oft 3 Glieder, 2 Grundglieder, u. 1 sehr langes finger-

förmig. 3. Glied); im Laufe der Häutungen wird dann die Zahl der

Glieder auf die Normalzahl erhöht. Auch die jungen Beinregenerate

zeichnen sich durch ihre unbedeutende Größe aus u. lassen oft eine

deutliche Gliederung erkennen, die mit der der normalen Beine in

den Hauptzügen übereinstimmt, doch kann die Gliederung ‘auch

völlig ausbleiben u. das Regenerat erscheint dann als ungegliederter

Höcker. Bei Abnahme der Beine in verschiedener Höhe erstreckt

sich die Verkleinerung nur auf die neugebildeten Teile (am deut-

lichsten am Tarsus). Der regenerierte Tarsus besteht nur aus einem,

seltener zwei Gliedern. Das letzte Tarsenglied wird zuerst gebildet,

es trägt 2 Krallen, die auch fehlen können. Im Laufe der Häutungen

werden auch die 2 proximalwärts liegenden Tarsenglieder wieder-

ersetzt. Bei sehr jungen Larven ganz oder zum Teil abgeschnittene

Gliedmaßen wachsen bereits während der Larvenzeit des Tieres

wieder u. können noch mehrmals regeneriert werden. (Fig.1). Die

Regeneration der larvalen Flügelanlagen findet unter der alten Chitin-

decke statt. Das Regenerat kommt erst nach der Häutung zum Vor-

schein u. ändert seine Gestalt u. Größe bis zur nächsten Häutung

nicht. Werden die larvalen Flügelscheiden in verschiedener Höhe

quer durchschnitten, so tritt nach der Häutung an dem verletzten

Ende derselben nur eine mehr oder weniger deutliche Zurundung u.

Hervorwölbung des Schnittrandes zutage, die im Laufe der Häutungen

288 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

immer deutlicher wird. Auch wird die verletzte Flügelscheide immer

größer u. der Form nach dem intakten Organe immer ähnlicher, was

auch für Regenerate gilt, die sich nach der totalen Exstirpation der

larvalen Flügelanlagen u. Flügelscheiden entwickeln u. zuerst die Form

von kleinen schuppenförmigen Gebilden besitzen. In einigen Fällen

fehlte jede Spur von Regeneratior, in andern gab es nur kurze Flügel-

stummel oder es wurden die Flügel mehr oder weniger vollständig

regeneriert u. waren nur kleiner als die normalen Flügel. Die Re-

generationsfähigkeit der quer durchgeschnittenen Flügelscheiden ist

desto größer u. der förmliche Ausgleich derselben desto vollkommener,

je mehr distalwärts die Wundstelle liegt u. je jünger die operierte

Larve ist. Erfolgt die Durchschneidung der larvalen Flügelscheiden

in der Nähe der Ansatzstelle so wird bei älteren Exemplaren der Defekt

nur unvollkommen ausgeglichen. Die Richtung des Schnittes bleibt

auch an der Imago erkennbar, außer einer Verlötung, Vermehrung

und Verdickung des in der Nähe der Wunde verlaufenden Geäders

nimmt man keine besonderen Veränderungen wahr, wie die Fig. 8, 9, 12

ım Texte zeigen. — Die Regenerationsfähigkeit der Libellulidenlarven

ist viel geringer als bei den Aeschniden. Unter günstigen Umständen

können Fühler, Beine, auch nicht allzustark verletzte, regeneriert

werden. Die bei der Regeneration stattfindenden morphologischen

Veränderungen beschränken sich nur auf die nächste Umgebung der

Wunde. — Agrionidae. Die Beobachtungen von Child u. Young bezügl.

der hohen Regenerationsfähigkeit der Agrionidenlarven werden

bestätigt. Ebenso wurde Autotomie u. Regeneration der verletzten

kaudalen Kiemen beobachtet. Besonders die jüngeren Exemplare

werfen sehr leicht die Kiemenblättchen ab. Bei älteren Tieren ist die

Empfindlichkeit geringer, die Kiemen bleiben zuweilen nach der

Verletzung mit dem Körper in innigem organischen Zusammenhang.

In diesem Falle ist die Schnittiläche die Ausgangsstelle der Regeneration;

dagegen erfolgt nach der Autotomie die Regeneration stets von der

Bruchstelle aus. Erfolgt die Verletzung der Schwanzkiemen kurz

vor der Häutung (ohne nachfolg. Autotomie), so erscheint nach der

Häutung kein deutliches Regenerat, sondern es findet nur unvoll-

kommene Verwachsung der Schnittränder statt. Liegt zur Zeit der

Operation die Häutung jedoch noch fern, so erscheint nach derselben

ein deutliches Regenerat. — Man kann alle drei Schwanzkiemen

entfernen, ohne die Tiere zu töten. Sie können so mehrere Monate

leben u. sich häuten, was auf eine ausgiebige Darmatmung schließen

läßt. Regenerationsversuche an Flügelscheiden u. Augen lieferten

infolge ungünstigen Verlaufes keine positiven Resultate. — Einschlägige

Literatur: 7 Publ. — Imagines mit regenerierten FlgIn. Fig. 13 u. 14

Aeschna cyanea.

jHandlirsch, Anton. Über Relikte. Verhdlgn. zool.-bot. Ges.

Wien Bd. 59 p. (183)—(207). — Libelle mit Mischung der Charaktere

der Anisoptera u. Zygoptera: Neopalaeophlebia Handlirsch (für

Palaeophlebia Selys). Für die schon im Lias vorhandene Odonaten-

gruppe, welche als Stammgruppe für die beiden heute herrschenden

Publikationen und Referate. 289

Gruppen zu betrachten ist, schlug Handlirsch den Namen Aniso-

zygoptera vor. Diese Gruppe umfaßte im Lias 88 %, aller

Libellen, im oberen Jura 40, ım Tertiär nur mehr als 1% u. ist

heute nur in dem einzigen Relikte bekannt, welches etwa 0,04%

aller rezenten Libellen entspricht. Die Anisoptera (m. Gomphidae,

Aeschnidae u. Labellulidae) betragen im Lias erst 6 %, im oberen Jura

40 %,, im Tertiär 67 %, jetzt etwa 57 %, die Zygoptera (m. Agrionidae

u. Calopterygidae) im oberen Jura 20%, im Tertiär 32 %, jetzt durch

43 %, vertreten [6% der liasischen Odonata entfallen auf die aus-

gestorbene Gruppe der Archizygoptera. Neopalaeophlebia ist ein

glänzendes Beispiel des persistenten Typus, als einziger Vertreter der

Anisozygoptera. [p. (200)—(201)].

King, J. 3. F. X. and Halbert, J. N. A list of the Neuroptera

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Titel siehe unter Trichoptera.

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findet sich ein Abschnitt über Wasserinsekten etc.

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Odonata werden sonst noch erwähnt Zibellula quadrimaculata, Ery-

thromma naias, Pyrrhosoma nymphula, Ischnura elegans u. Agrion

pulchellum, Brachytron pratense u. Libellula julva.

Puschnig, R. Kärtnerische Libellenstudien. _ Dritte Folge.

Carinthia. II. (Mitt. naturhist. Landesmuseums f. Kärnten) 1908

p. 87”—101. — Fortsetzung der früheren Studien über die Odonaten

von Kärnten. Es werden weitere 10 Spp. aufgeführt, so daß aus dem

Gebiet nun 41 % der europäischen Spp. bekannt sind. Angabe neuer

Fundorte, biologische, phänologische Daten, Ergänzung der Faunen

der einzelnen Fundorte. Die Libellen treten in Kärnten sehr spät

auf. Maximum der Flugzeit Ende Juli, Anfang August. Interessant

ist das wechselnde Auftreten einzelner Spp., die in einzelnen Jahren

ganz fehlen, in anderen wieder massenhaft vorkommen. (Calopteryx

splendens im Sommer 1894).

Remkes, Eugen. Zur Odonatenfauna des Hülserbruchs. Mitteil. -

Ver. Naturk. Krefeld 1910 p. 52.

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— (3). Odonata. (Die Fauna Südwest-Australiens, hrsg. von

W. Michaelsen u. R. Hartmeyer. Bd.2. Lfg.24) Jena, G. Fischer,

1910, p. 415—450. — Aus den allgemeinen Betrachtungen über die Ver-

breitung sei hervorgehoben: Die Calopteryginae sind in Australien durch

die Gattung Diphlebia sehr spärlich vertreten. Sie stellen in gewissem

Sinne die primitivste aller Odonatenfamilien dar, aber nur so, daß

wir in ihr die sozusagen geradlinige Fortentwicklung eines primitiven

Stammes sehen, während wir dessen heute lebende Vertreter in der

überwiegenden Mehrzahl als hochspezialisierte, an cänogenetischen

Merkmalen reiche Formen zu betrachten haben. Ihre größte Fülle

fällt in die reichen Faunen des indomalaischen, neotropischen, weniger

des äthiopischen Gebietes. In Südafrika sind sie durch zwei Ausläufer

Publikationen mit Referate. 291

der äthiopischen Fauna vertreten, im australen Südamerika fehlen sie

ganz. Die Agrionidae sind in Westaustralien spärlich vertreten u. zwar

nur Angehörige der Agrioninae, Vertreter altweltlich tropischer

(Xanthagrion), mehr spezifisch indoaustralischer (Argvolestes) oder

kosmopolitischer Formenkreise (/schnura). Bemerkenswert ist der

verhältnismäßig große Reichtum an Lestes-Arten. Die Gattung ist

kosmopolitisch und sicher archaisch. Ihre Vertreter dürften für das

außertropische Australien den alten autochthonen, die der Agrioninae

den eingewanderten Anteil der Agrionidae bilden. — Über die äußere

Erscheinung der Odonaten verschiedenster Gruppen kurz folgendes:

In keiner Fauna der Welt fehlen Agrionidae mit einem Farbenmuster

aus Himmelblau und Bronzeschwarz. Dieser Typus wird! in der

paläarktischen Fauna hauptsächlich von Agrion gestellt, in der neark-

tischen von Enallagma, in der neotropischen von Acanthagrion und

Argva, in der äthiopischen von Pseudagrionu. Enallagma, in der indischen

und indoaustralischen von Pseudagrion und Caconeura, im gemäßigten

Australien von Lestes. Letztere Gatt. ist vorwiegend dunkelgrün

metallisch und scheint in der obigen abweichenden Färbung eine

fehlende Lücke auszufüllen. — Die Gomphinae sind im außertropischen

Australien durch die ziemlich artenreiche, wahrscheinlich archaische

u. autochthone Gatt. Austrogomphus vertreten. Die Petalurinae und

die Aeschninae-Gruppe Petalia sind für Westaustralien noch nicht nach-

gewiesen. Merkwürdig ist das Vorkommen von Petalura, ein im höchsten

Maße archaischer Typus, dessen Vertreter (wenigstens der chilenische

Phenes raptor und die australischen Petalura) gleichzeitig hoch speziali-

siert sind. Hieran schließen sich Betrachtungen über Tillyards aller-

merkwürdigsten Fund von Pealia aus den Blauen Bergen von Neu-

Süd-Wales. Eine zwingende Begründung für einen einstigen Zu-

sammenhang von Australien mit Amerika kann man darin nicht

erblicken. Die beiden Zufluchtsorte, das Waldland des südlichen

Chile u. die Blauen Berge sind als Refugien in der strengsten Bedeutung

des Wortes für diesen äußerst archaistischen Typus anzusehen. Die

Aeschninae Westaustraliens u. Australiens überhaupt (außer der eben

erwähnten Petalia) setzen sich zusammen aus der reich entfalteten

Gatt. Austroaeschna, die dem archaischen Zweige der Subfam. (mit

Brachytron, Epiaeschna, Aeschnophlebia, Caliaeschna etc.) angehört

u. den autochthenen Anteil der Fauna bildet u. aus einem kleinen

Anteile dem cäogenetischen Zweige angehöriger, wohl eingewanderter

Formen besteht. Die drei Hauptgattungen dieses letzteren Zweiges sind

im außertropischen Australien nur durch je eine Sp. von Anaz u. Aeschna

vertreten, @ynacantha fehlt dieser Fauna, wie in allen gemäßigten

Zonen überhaupt. — Die Libellulinae zeigen ein sehr merkwürdiges

Verhalten der beiden Subfamilien, die cänogenetischen, in der übrigen

Welt dominierenden Libellulinae sind hier spärlich vertreten u. stellen

wohl Einwanderer dar. Als Brücke käme in Betracht Neu-Guinea,

auch die kleinen Sundainseln. Es ist daher nicht verwunderlich, daß

die Libellulinae in Queensland noch gut vertreten sind. Die Cordu-

liinae herrschen jedoch in ganz auffallender Weise vor. Der phylo-

19*

292 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

genetische Zusammenhang zwischen beiden Gruppen ist noch sehr

dunkel. Eins scheint jedoch sicher, nämlich daß unter den Corduliinae

mehr ganz alte Stämme erhalten geblieben u. diese weniger unter der

homogenen Masse rezenter Formen begraben sind, als bei den

Libellulinae. Die heute lebenden Zibellulinae sind mehr breite Massen,

die Cordulinae mehr Spitzen, so daß es denn auch nicht befremdet,

wenn wir unter den Cordulinae Formen finden, die den reinsten

u. vollendetsten Ausdruck der Idee einer Libelle darstellen. Australien

ist ein Cordulinenasyl, speziell für Synthemis. Synthemis wie Ma-

cromia weisen auf Ursprünge der Libellulidae, auf einen Formenkreis,

von dem die in Australien nicht vertretenen Chlorogomphina u.

Cordulegasterinse als in anderen Richtungen entwickelte Relikte

erscheinen. Der Charakter der Odonatenfauna des außertropischen

Australien ist somit ein ziemlich eindeutiger, ein mäßig reicher, doch

ziemlich verarmter Grundstock von archaischen authochtenen Formen

(Lestes, Austrogomphus, Petalura, Petalia, Austroaeschna, Synthemis,

Hemicordulia, Procordulia) u. ein kleiner Anteil rezenter eingewanderter

Formen, meist indomalaischen Ursprungs (Agrioninae, Anax, Aeschna,

Libellulinae). — Die ım folgenden Teile näher behandelten Formen

verteilen sich folgendermaßen: Calopterygidae: 0. — Agrionidae:

Lestinae: Lestes. Übersicht über die austral. Lestes-SS: cingulatus,

leda, io, psyche, annulosus, analis u. Colensonis. Bemerk. resp. Detail-

abb. zu 10 Spp. (Abdominalenden). — Agrioninae: Argiolestes (1),

Ischnura (1), Xanthagrion (2). — Aeschnidae: Gomphina: Austro-

gomphus (2). Aeschninae: Austroaeschna (2), Aeschna (1), Anax (1).

— Libellulidae: Cordulinae: Synthemis (3), Hemicordulia (2), Pro-

cordulia (2). — Libellulinae: Orthetrum (1), Nannophya (1), Diplacodes

(2), Austrothemis (1), Pantala (1), Tramea (1). — Anhang. Beschreibung

u. Abbild. von Larven: Lestes (2), Aeschninae-Larven (2), Cordulinae-

Larven (2). — Literaturverzeichnis (p. 450) 25 Publ.

— (4). Libellulinen. Fasc. X—XII = pp. 120—528. pls. II—IV.

Coll. Selys Longehamps, Bruxelles 1910.

— (5). Farbenvarietäten der Agrionide Nehalennia speciosa

Charp. Mitteil. Schweiz. Entom. Gesellsch. vol. 11 Bern 1906 p. 154

—165. — Verf. beschreibt zunächst mehrere Farbenvarietäten von

Nehalennia speciosa und sucht dann nach einer Erklärung für die Ent-

stehung des Dimorphismus innerhalb des weiblichen Geschlechts bei

den /schnura-Arten. Unter den Agrionidae u. Aeschnidae ist der Farben-

gegensatz zwischen blauen $g u. grünen PQ allgemein. Das Auftreten

orangefarbiger 22 bildet eine Ausnahme, es ist eine sekundäre Er-

scheinung und nicht als Rückschlag zu deuten. In der Ischnura-

Gruppe treten grüne und orangefarbige 92 nebeneinander auf. Es

handelt sich dabei höchst wahrscheinlich um eine Schutzfärbung.

Leuchtende Farben wie Himmelblau u. Zinnoberrot gewinnen erst

in ihrer natürlichen Umgebung u. im grellen Sonnenlichte ihre Be-

deutung. Dunklere Farben wie schwarz-gelb deuten auf schattige

Wohnplätze.

Publikationen und Referate. 293

Rosenbaum, Walther. Libellen von Halle. Zeitschr. f. Naturw.

Leipzig. Bd. 81. 1910 p. 451—456.

Sabandjev, B. [Anax imperator Leach.] [Über das Vorkommen

des Anaz imperator Leach im Dorfe Kuzminki, Kreis Moskau]. Prir

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Schirmer, Carl. Märkische Libellen. Ein Beitrag zur geographischen

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Schulz, Ed. J. R. Biologische und faunistische Notizen über

schlesische Insekten. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd.6 p. 305

—307. — I. Odonata. (1. Nachtrag zu des Verfs. schles. Odonaten-

Verz. Bd. 4. Hft. 11 u. 12. 1908). 1. Agrion mercuriale Charp. form.

kükenthahi n. — 2. Zur Eiablage der Agrioniden: Agr. minium Harr.,

Agr. puella L., Cordulia metallica Lind., Libellula rubicunda L.,

Libellula rubicunda L. Ablaichen in Regenpfützen innerhalb der

Stadt Königshütte. — 3. Libellula dubia Lind. für Schlesien neu. —

4. Cordulia alpestris Selys. Ergänzung zur Beschreibung von Selys.

— 5. Libellula coerulescens F. mit goldbraunen Flügeln in Schlesien

weit verbreitet.

Speyer, E. R. Notes on Odonata observed in Great Britain during

the summer of 1908. The Entomologist vol. 43 p. 13—18. — Sym-

petrum striolatum Charp., S. fonscolombiü Selys, Libellula depressa

Linn., L. quadrimaculata Linn., Orthetrum caerulescens Fabr., OÖ. can-

cellatum Linn., Somatochlora metallica van der Linden, Cordulia aenea

Linn., Cordulegaster annulatus Latr., Anax imperator Leach, Brachytron

pratense Müll., Aeschna cyanea Müll., Ae. grandis Linn., Calopteryx

virgo Linn., CO. splendens Harris, Lesies sponsa Hans, Platycnemis

pennipes Pall., Erythromma naias Hans, Pyrrhosoma nymphula Sulz,

P.tenellum Linn., Ischnura elegans van der L., Agrion pulchellum

van der L., Agrion pulchellum van der L., A. puella Linn., Enallagma

cyathigerum Charp.

Tillyard, R. J. (1). Monograph of the genus Synthemis. |[Neuro-

ptera: Odonata]. Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vol. 35 1910 p. 312

—377, pl. IV—VIIH (reetius IX). — Diese Gattung enthält die

schönsten u. zierlicehsten Odonaten, deren prachtvolle gelbe u. crem-

farbige Flecken u. Streifen in den Papiertüten in dunkelbraun über-

gehen. Daher ist es um so besser, daß Verf. Gelegenheit hatte, die

Tiere im Freien zu studieren. Verfasser verfolgt in seiner Arbeit zwei

Ziele, erstens lag ihm daran die morphologischen und physiologischen

Charaktere der Gruppe zu studieren, um eine geeignete Unterlage

für weitere Unterabteilungen zu finden u. zweitens wollte er die Arten,

die Biologie, Larvenformen und Lebensweise etc. näher erforschen

u. charakterisieren. Verfasser besprieht die Flügel, ihr Geäder

(p- 316—322), den mit Chitinplatten versehenen Magen der Larven

(p. 325), die Geschlechtsorgane ete. (p. 331—334) u. schließt wit

einer Übersicht über die Gatt. (p. 335) C'horisthemis n. g., Metathemis

294 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

n.g. u. Synthemis s. str. nachdem schon vorher ein Stammbaum der

Libell. u. Aeschn. (p. 327) u. ein Überblick der Gruppen der $ub-

familie Corduliinae (p. 328) gegeben u. Försters Einteilung besprochen

worden ist. Aus dem Studium des Flügelgeäders geht folg. hervor:

Synthemis ist eine archaische Form, die sich parallel mit der Macromia-

Reihe entwickelt hat (wie das Geäder lehrt). Variation u. Laune des

Zufalls spielen eine große Rolle in dieser Gruppe; sie zeigen, daß die

endgültige u. vorteilhafteste Form noch nicht erreicht ist. Der fort-

geschrittenste Flügeltypus findet sich wahrscheinlich bei 8. clavi-

culata mit seinem gespreizten Pterostigma u. der geringen Anzahl

von Queradern. SS. cyanitincta zeigt eine starke Neigung das echte

Cordulinen - Verhalten des Triangels im Hinterflügel anzunehmen.

Die ältesten Formen sind wahrscheinlich diejenigen mit zahlreichen

Queradern, z.B. solche wie S. miranda, 8. regina u. S. macrostigma.

Bei diesen finden wir ein ursprünglicheres Verhalten des Anallappens,

der sich noch nicht zu dem einzigen kompakten Macromia-Lappen

konsolidiert hat. Sie sind auch die drei der größten Insekten dieser

Gattung, obschon nicht die besten Flieger. Das Streben ist gerichtet

auf Reduktion in der Größe wie auf Reduktion der Queradern.

S. olivei ist anscheinend ein fortgeschrittenes Glied der Gattung, mit

Spuren von Caenogenesis im Anallappen. Synthemis weicht darin

wesentlich von Macromia ab, obgleich sie ähnlichen Entwicklungs-

linien folgt, sie befindet sich in einem weniger vollständigen u.

spezialisierten Stadium. Besprechung der Gattungen u. Arten nebst

Übersichtsschlüsseln: Synthemis (8 + In.sp.+ In.subg.), Metathemis

n.g. (4), Choristhemis n.g. (2). Am Schlusse jeder Art reihen sich

biologische Angaben an. Der Appendix bringt Details zu dem unter-

suchten Material (p. 373—376), eine Tabelle der Flügeldifferentialen

(p. 373). Zum Schlusse folgt die Tafelerklärung zu Taf. IV—IX Taf. IV

u. V farbig stellt die $& Synthemis-Arten dar: 1. Reihe Kopf von vorn,

die 2. Thorax von der Seite, die 3. Tiere von oben gesehen (ohne Flügel).

Die übrigen Tafeln bringen Details VI Flügel, VII Appendices der

& u. 9, VIII Larven, IX der Labien derselben.

— (2). On some experiments with dragonfly larvae. t.c. p. 666

—676. — I. Beobachtungen an Larven einer unbekannten Libellu-

lidenform, die zusammen mit Austrogomphus ochraceus Selys bei

Heatheote Creek, Illawarra Distrikt, N. S. W. erbeutet worden waren,

lehren 1. bezügl. der Langlebigkeit: Larven einiger Odonatenarten

vermögen länger als ein Jahr zu leben, unter ungünstigen Be-

dingungen sogar mehr als zwei (21/,) Jahre. 2. bezügl. des Vermögens

Hunger zu ertragen stellte Verf. fest, daß die Larve der unbekannten

Form wenigstens 8 Monate’ (25. I. 1909—29. IX. 1909) ohne Nahrung

aushielt. 3. Bezügl. der Trockenheit. Die Larve hielt sich 9 Wochen

ohneWasser, abgesehen, von der allwöchentlich vorgenommenen leichten

Besprengung des Bodens, wodurch ein Austrocknen desselben verhütet

werden sollte u. der dem im Freien gelegentlich fallenden Tau gleich

zu setzen ist. — II. Larven von Synthemis eustalacta Burm. (p. 670

— 675). Diese Larven vermögen ebenfalls unter ungünstigen Ent-

Übersicht nach dem Stoff, 295

wicklungsbedingungen länger als ein Jahr zu leben. Da $. eust. nur von

Nov. bis Febr. fliegt, und die Eiablage meist vor Febr. stattfindet, so

waren die in Betracht kommenden Larven 15 Monate alt. Hunger ertrugen

sie ca. 3 Monate lang (wie das ja in der freien Natur infolge des

Einfrierens der Gewässer der Fall ist). Betreffs S. macrostigma, die

den dicken Schlamm am Rande der Sümpie bewohnt, ist es sehr wahr-

scheinlich, daß sie in dem Schlamme einfriert. Die meisten Odonaten-

larven können also lange Zeit ohne Nahrung leben u. vermögen mehrere

Jahre im Larvenstadium zu verharren. Trockenheit vermögen aber

wohl nur wenige zu ertragen, wozu auch Petalura u. Agriolestes gehören.

Das Postkript (sp. 675—676) bringt noch interessante Einzelheiten

zu der sub I erwähnten unbekannten Larve. Sie schritt schließlich

zur Umwandlung, ging aber zum großen Leidwesen des Ver-

fassers, nach 2 jähriger Pflege zu Grunde. Vorsichtiges Herauslösen

u. Untersuchen der fertigen Flügel erwiesen, daß es sich um eine Form

handelte, die einem neuen Subgenus angehört. Trotz Jahre langen

Beobachtens war die Imago derselben dem Verf. noch nie zu Gesicht

gekommen.

— (3). On some remarkable Australian Libellulinae Part III.

Further notes on Camacınia othello Tillyard. t.c. p. 859—861 pl. III

fig. 3. — Verbreitung der Art u. Beschreibung des typischen Weibchens.

Webb, E. ©. British dragonflies. Rep. Sch. Nat. Hist. Nat. Soc.

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Williamson, E. B. (1). The North American Dragonflies (Odonata

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vol. 37. Nr. 1710 p. 369—398. Taf. 36 u. 37. — Mitteilungen über

Lebensweise, Verbreitung, Verwandtschaft genannter Gatt., aus-

führliche Beschreibung der 8 nordamerikanischen Arten. Beschreib.

u. Photogramme der Flügel. Eingehende Charakterisierung des Ge-

äders in Form von Tabellen. Die Tafeln stellen Lieblingsaufenthalts-

orte von Macromia dar.

— (2). Dragonflies (Odonata) of Burma and Lower Siam. cf.

Bericht f. 1907 p. 170 sub No. 1. — Ref. von N.v. Adelung, Zool.

Zentralbl. Bd. 17 p. 245.

Übersicht nach dem Stoff.

Bibliographie: Bartenev u. Jatzenkowsky ete., Bartenev u. Oshanin etc.

— Jahresberichte: Lucas, Rob. (für 1904, 1905, 1906).

Übersicht: Leonhardt (über die Libellen Mitteleuropas). — Katalog: Mutt-

kowski (57 Odonata von Nordamerika). — Kollektion Selys: Ris (4) (Zibellulinae)

— Monographien: Tillyard (1) (Synthemis).

Morphologie, Anatomie.

Larvenmagen : Tillyard (1) p. 325. — Kopulationsmarken bei Libellen: Dis (1).

Weibliche Geschlechtsorgane : u. Variation ders.: Tillyard (!) (p. 331—333).

— Männliche Geschlechtsorgane: Tillyard (1) (p. 333).

296 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

Geäder: Williamson (1) (Macromia). — Flügel-Differentialen der Synthemis,

Metathemis u. C'horisthemis: Tillyard (Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vÜl. 35 p. 373).

— Pfterostigma: Tillyard (1) p. 321 (bei Synthemis). — Launen (‚„‚freaking‘“) in

dem Dreieck u. Arculus: Tillyard p. 321.

Physiologie.

Regeneration bei Odonata: Janda. — Dauer des Hungerns bei einer Li-

bellulidenlarve: Tillyard. — Experimente mit Larve: Tillyard (2). — Körper-

haltung der Odonata beim Fluge: Bartenev (1) [Russisch].

Entwicklung.

Postembryonale Entwicklung: Entwicklung des Kopulationsapparates :

Backhof..

Ethologie, Biologie.

Zusammensetzung u. ökologische Beziehungen der Odonaten-Fauna von

Mexico u. Centralamerika: Calvert. — Wandern : Codina (Sympetrum striolatum),

Schneider (Sympetrum scoticum in Riga). — Massenauftreten von Enallagma

cyathigerum im Bezirk Minussinsk: Bartenef. — Ablaichen von Libellula ribu--

cunda in Regenpfützen innerhalb der Stadt Königshütte: Schulz. — Frühzeitiges

Erscheinen : Meade-Waldo. — Nahrung : Mitchell. — Odonata, große Objekte

angreifend : Mitchell. — Pflanzenbewohnende Odonatenlarve: Calvert (1), (2).

— Biologie von Macromia: Williamson (1).

Ökonomie.

Nützlinge: Matsumura (unter den Odonata für das Zuckerrohr).

Variation, Verwandtschäft.

Variation: Campion, F. W. u. H. (Agrion puella). — Farbenvarietäten von

Nehallennia speciosa Charp.: Ris (5). — Verwandtschaft: Williamson (Macromia).

— Libellula coerulescens F. mit goldbraunen Flügeln: Schulz.

Faunistik.

Geographische Verbreitung : Schirmer (Beitrag zur Kenntnis der Libellen),

Williamson (1) (von Macromia).

Inselwelt.

Hawaiische Inseln: Perkins (neue Spp.). — Neu-Guinea: Förster (Croco-

themis Diphlebia n. sp.). — Salomon-Inseln : Ris (4) (Diplacodes n. sp.).

Paläarktisches Gebiet: Förster (2) (Libellen). — Sibirien siehe unter Asien.

Europa.

Mitteleuropa: Leonhardt (Libellen). — Deutschland: Halle: Rosenbaum

(Libellen). — Hülserbruch : Remkes. — Mark: Schirmer. — Schlesien: Schulz

diverse Odonata, Libellula coerulescens für die Fauna neu). — Großbritanien:

Lucas, W. J. (2) (Odonata im Jahre 1909), Speyer (dito im Jahre 1908. Liste),

Webb. — King’s Lynn: Atmore (Aeschna isocelis Müll.). — Surrey: Lucas,

W. J. (3), (4) Liste), Lucas, W. J. (Journ. Roy. H. S. Garden Cl. vol. 2 1909).

— Südwest-Surrey : Dalgleish. — Schottland : Lucas, W. J. (1). — Ireland: King

Systematik. 297

u. Halbert (Neuroptera auch Odonata). — Rußland: Moskau: Dorf Kuzminski:

Saban&jev (Vorkommen von Agrion imperator Leach). — Italien : Bentivoglio (1)

(Lindenia tetraphylla). — Lucca: Bentivoglio (Lindenia tetraphylla).

Asien.

Japan: Bartenev (4). — Provinz Kuban : Bartenev (6). — Russisch Polen:

Bartenev (7). — Sibirien: Bartenev (1,2, 3) (Somatochlora 2 neue Spp.), (5) (2neue

Spp., 3 neue Varr.) [Russisch]. — Jenisseisk, Kobdo und Tomsk : Bartenev (1)

[Russisch]. — Oby-Enissei Kanal: Bartenev (3, 1). — Tomsk : Bartenev (3, 2).

— Barabinsk-Steppe: Bartenev (3, 3). — Kuznetsk Distrikt: Bartenev (3, 4).

— Balagansk : Bartenev (3, 5). — Tuba-Fluß, Nebenfluß des Jenisei: Bartenev

(3, 6). — Transbaikalien : Bartenev (2), (4 neue Spp., [Russisch]. — Burma u.

Unter-Siam: Williamson (2). — Indien: Maxwell-Lefroy u. Howlett. —

Malayischer Archipel: Borneo: Ris (Brachygonia u. Raphismia n. spp.).

Afrika.

Afrika: Martin (Lestes n.spp.), Ris (Libellulinae n.spp.). — Erythraea:

Förster (Erythromma n. sp.). — Madagaskar: Ris (Orthetrum 1 n. sp. u. Apatelia

ln. sp.).

Amerika.

Nordamerika: Muttkowski (Katalog). — Nördliches Michigan: Hebard

(Fundorte), Williamson (1) (Macromia). — Wisconsin: Muttkowski (1) (neue

Angaben), (3) (Gomphus cornutus). — Mittelamerika: Panama: Ris (4) (Peri-

themis n. sp.). — Südamerika : Ris (Zibellulinae neue Spp.). — Sao Paolo : Förster

(Tramea n. sp.).

Australien.

Australien: Tillyard (Phyllopetalia cf. p. 429 des Berichts für 1909 sub

No. 4), (1) (Synthemis), (3) (Camacinia othello). — Südwest- Australien: Ris (3).

Palaeontologie.

Relikte Formen : Hanälirsch. — Identität zweier fossiler Odonata: Ris (2).

Systematik.

Anwendbarkeit einiger Gattungsnamen der Odonata. 1. Agrion contra Calo-

pteryx. 2. Die Genotype von Gomphoides Selys. Muttkowsky, Bull. Wisc.

Nat. Hist. Soc. vol. 8. p. 158.

Libellen von Mitteleuropa. Leonhardt, Entom. Jahrb. Jhg. 20. p. 149—167.

Übersicht nach Flugzeit, Angaben der Flugorte. — Odonata von Dänemark.

Petersen, Kobenbavn p.1sq. [Dänisch]. — Odonata in Britanien, 1908.

Speyer, The Entomologist, vol. 43 p. 13—18. — Libellen der Mark Branden-

burg. Schirmer, Berlin. Entom. Zeitschr. Bd. 55 p. 133—140, nebst Beitrag

zur geographischen Verbreitung der Tiere. — Libellen von Halle. Rosen-

baum, Zeitschr. f. Naturw. Bd. 81 p. 451—456. — Odonata der Gouvernements

Tomsk u. Jenisseisk. Bartenev, Varsava Isv. Univ. 1910. 5 pp. 1—24. Merk-

male der Sibirischen Exemplare [Russisch]. — Odonata des Kuban-Gebietes.

Bartenev, Rev. russe entom. T.10 p.27—38. Verbreitung. [Russisch].

298 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

Odonata in Indien. Lefroy, Journ. Bombay Soc. vol. 20 p. 236. Nahrungs-

gewohnheiten. Beutetiere. — Odonata von Südwest-Australien. Ris in

Michaelsen u. Hartmeyer, vol. 2 Lfg. 24 p. 415—450. — Odonata von Nord-

amerika. Katalog. Muttkowski, Bull. Mus. Milwaukee vol. 1 p. 1—207.

— Odonata von Wisconsin. Muttkowski, Bull. Wisconsin Soc. vol. 8 p. 53—59.

Fundorte. — Kopulationsmarken bei Libellen. Ris, Deutsche Entom.

Nationalbibl. Bd. 1 p. 70—71, 79—80. — Entwicklung des Kopulations-

apparates von Agrion. Backhoff, Zeitschr. f. wiss. Zool. Bd. 95 p. 647—706,

1 Taf. — Regeneration der Odonata. Janda, Zool. Anz. Bd. 35 p. 602—608.

Aeschna cyanea. Imagines mit regenerierten Flügeln. Janda, Zool. Anz. Bd. 35

p- 606—607 Fig. 13, Fig. 14. — Ae. isoscelis bei King's Lynn. Atmore, —

Ae. squamata. Verbreitung in Sibirien. Bartenev, Verzeichnisse der Everte-

braten-Sammlungen etc. XII. Tomsk 1909 p. 24. — gigas Neubeschreib.

p- 32 pl. I fig. 4 u. pl. IL fig. 4. — serrata. Beschreib. p. 43 pl. I fig. 3 (Narym-

Gebiet) [Russisch]. — Ae. Nordamerikanische Arten. Berichtigung zur

Publikation von 1908. Walker, Canad. Entom. vol. 42 p. 24. — Ae. serrata

Rene Martin. Zur Beschreibung, die 1908 gegeben wurde, ist zu ergänzen:

Länge des Pterostigma $ 3,5—3,75, 2 4—4,25; 2. (Anhänge ‚„auricles‘‘) des $

mit 5 Zähnen; 3. Abdom. des 2 im 3. Sgm. verjüngt, wie bei de. juncea;

4. Länge der weiblich. Analanhänge 7 mm, sie sind am Ende gerundet u.

tragen oberseits einen bogenförmigen Streifen. — Unterschiede der Spp.

von Ae. juncea (9 Punkte). Die Anslanhänge des ? ähneln in der Gestalt

denen von Ae. gigas, sind aber länger u. breiter u. am Ende abgerundet.

Bartenev, Zocl. Anz. Bd. 35 p. 275—276. — Ae. brevistyla Rambur. Ris,

Die Fauna Südwestaustraliens Bd. II p. 432—435. Flgl. Fig. 12 d, 132.

Vergl. mit Anaciaeschna. — Aeschninen-Larven C. u. D. p. 445—448. Larven-

Abb. Fig. 22 u. 24, Details Fig. 23 u. 25.

Agrion armatum Charp. at Stalham Broad, Norfolk. Porritt, Geo. T. Entom.

Monthly Mag. ser. 2 vol. 21 (46) p. 161—162. — Flugnotiz, Färbung etc.

— A.lanceolatum Selys. Hinterrand d. Prothorax gerundet, in welchem

Punkte Agr. lanceolatum von Agr. hastulatum Ch. sich unterscheidet. Selys

Fig. (1872) gibt die Verhältnisse gut wieder. Bartenev, Zool. Anz. Bd. 35

p- 278. — ecornutum Selys. Die oberen Analanhänge des 3 sind kürzer als

die unteren. Selys Fig. 1 ungenau. Die anderen Unterschiede von Agr.

mercuriale, die Selys angibt, sind sehr zutreffend p. 278. — A. imperator

bei Moskau. Saban&jev. — A. mercuriale Charp. forma kükenthali n. (die

schwarzen Zeichnungen der Abdominalsegmente sehr ausgedehnt, nur die

Segmentränder blau resp. grün, beim $ auch Sgm. 8 mit schwarzer Zeichnung)

Schulz, Ed. J. R., Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 305 (Schlesien:

Plesser Wälder). — minium Harr. legt die Eier in Moortümpeln (einzeln

oder dicht bei einander, auch unter modernden Espenblättern unter Wasser.

Dabei wurde vor seinen Augen ein @ von einer Aeschniden-Larve ergriffen

und ins Wasser gezogen. — puella L. legte in fließendem Gewässer die Eier

an Polygonum amphibium u. zwar an die Schwimmblätter ab p. 305. —

A. puella. Variation. Campion u. Campion, The Entomologist vc). 43 p. 329

—333. — A. hylas. Beschr. des 9. Bartenev, Varsava Irv. Univ. 1910, 6

p: 38. — armatum p. 40 (Ost-Sibirien) [Russisch]. — lanceolatum Unter-

schiede von A. hastulatum. Bartenev, op. cit. 1910, 5 p. 16. — ecornutum

Systematik. 299

(Unterschiede von A. mercuriale) p. 17 [Russisch]. — A. Die Spp. von

Hawaii beschreibt Perkins in Fauna Hawai. vol. 2 p. 694. — calverti n. sp.

p. 694. — williamsoni n. sp. p. 696. — adytum var. tillyardı n. p. 695 (alle

drei von den Hawaiischen Inseln).

Allopodagrion n. g. Podagr. für Megapodagrion contortum Hag. Förster, Wien.

Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 54.

Anatya januaria n.sp. Ris, Coll. Selys-Longehamps, Libell. p. 423 (Brasilien).

Anaciaeschna jaspidea Burm. Vergleich mit Aeschna brewistyla. Flgl. d. $ Fig. 14,

des @ Fig. 15. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens Bd. II p. 434.

Anax papuensis (Burm.) Synon. etc. Flgl.-Geäder. Stellung hier richtiger als bei

Hemianax mit ephippiger (mit Karsch). Ris, Die Fauna Südwestaustraliens

Bd. II. p. 435—436. — A.imperator im Gouv. Moskau. Phänologisches

[Russisch]. Sabandjev, Priroda i ochota Moskva T. 38, 7 p. 22—28.

Apatelia circe n.sp. Ris, Coll. Selys-Longchamps Libell. p. 160 (Mayumbe). —

modesta n.sp. p. 161 (Madagaskar).

Argiolestes minimus Tillyard. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens Bd. II p. 429.

Argyrothemis n. g. Ris, Coll. Selys-Longchamps Libell. p. 930. — argentea n. sp.

p- 390 (Cayenne).

Austroaeschna anacantha Tillyard u. A. inermis Martin. Ris, Die Fauna Süd-

westaustraliens Bd. II p. 432.

Austrogomphus collaris Selys u. occidentalis Tillyard. Literatur. Ris, t. c. p. 432.

Austrothemis nigrescens (Martin). Ris, t.c. p. 442—443.

Brachygonia ophelia n. sp. Ris, t. c. p. 354 (Borneo).

Calopteryx virgo var. feminalis n. Bartenev, Rev. russe entom. T. 10 p. 34—35.

— splendens n. sp. p. 35 (Kuban-Gebiet) [Russisch).

Camacinia othello Tillyard. Beschreibung des typischen Weibchens. Tillyard,

Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vol. 35 p. 859—861. pl. III fig. 3 Flügel. —

Verbreitung: Cooktown, N. Queensland, am Annan River. Cape York;

Prince of Wales’ Island, Torres Straits; Port Darwin, Solomon Islands).

Chlorogomphus auratus n.sp. (Flgl. prächtig safrangelb. Kopf u. Gestalt von

Chl. magnificus) Martin, Rene, Bull. Soc. Entom. France 1910 p. 65—66 2

(Tonkin).

Choristhemis n. g. (Type: Synthemis flavoterminata Martin) Tillyard, Proc. Linn.

S. N. S. Wales vol. 35 p. 368—369. Bestimmungsschlüssel für die beiden

Spp. p- 369. — flavoterminata Martin p. 369—370 32 pl. V fig. 12. Lebens-

geschichte p. 370—371 (N. S. Wales, Queensl.; Illawarra bis Cap York).

— olivei Tillyard p. 371—372 pl. V fig. 13 (Cooktown. N. Queensl. Sehr

selten). Details auf den Tafeln VI—IX. — cf. auch Synthemis.

Cordulia alpestris Selys. Größenverhältnisse. Ergänzende Bemerkungen zur

Beschreib. von Selys. Schulz, Ed. J. R. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6

p. 306. — metallica Lind. Die von Verf. geschilderte Eiablage ist die normale;

allerdings werden nur niedrige, gut durchfeuchtete Uferränder zur Ablage

benutzt. Schulz, Ed. J.R., t.c. p. 305—306.

Corduliinae (sens. lat.) Einteilung in die 3 Hauptgruppen Cordulina,

Macromina u. Synthemina. Tillyard, Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vol. 35

p- 328—329. — Cordulinen-Larven E. u. F. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens

Bd. II p. 448—450. Larven. Abb. Fig. 26 u. 27.

300 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910.

Crocothemis papuana n.sp. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 54—55 $2

(Stephansort. Birö; Deutsch-Neu-Guinea).

Dasythemis esmeralda n. sp. Ris, Coll. Selys Longcehamps Libell. p. 301 (Ecuador).

Diphlebia Reinholdi n. sp. Calopt. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 55—563

(Britisch Neu Guinea, Hinterland von Port Moresby).

Diplacodes bipunctata (Brauer) u. D. haematodes (Burm.). Ris, Die Fauna Süd-

westaustraliens Bd. II p. 442. — D. exilis nom. nov. für exul. Ris, Coll.

Selys Longchamps Libell. p. 464. — remota n. sp. p. 470 (Salomon Inseln).

Eleuthemis n.g. Ris, t.c. p. 382. — buettikofferi n. sp. p. 384 (Westafrika).

Elga n.g. Ris, t. c. p. 398. — leptostyla n. sp. p. 398 (Süd-Amerika).

Enallagma cyathigerum. Zahlreiches Auftreten ders. im Bezirk Minussinsk

[Russisch!. Bartenev, Varsava Izv. Univ. 1910, 5 p. 15.

Erythrodiplax ochracea subsp. aequatorialis n. Ris, Coll. Selys Longehamps

Libell. p. 489. — solimaea n.sp. p. 490. — latimaculata n.sp. p. 495 (alle

drei aus S. Amer.). — connata novae subspp. p. 501 u. 510. — nigricans

subsp. juliana n. p. 513. — Iygaea n. sp. p. 515 (S. Amer.).

Erythromma commoniae n.sp. Förster, Mitteil. naturw. Ver. Karlsruhe Bd. 15

p- 75 (Erythräa).

Eusynthemis. Bestimmung der Gatt. Tillyard, Proc. Linn. Soc. N. S. Wales

vol. 35 p. 329 [nach Förster).

Erythemis. Die E.-Spp. der Alten Welt, von Dr. Ris nun als Rhodothemis neu

benannt, sind den Crocothemis-Arten derselben Lokalitäten zum Verwechseln

ähnlich. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 54—55.

Gomphoides Selys. Genotype. Muttkowski (4).

Gomphus williamsoni nom. nov. Muttkowski, Bull. Mus. Milwaukee vol. 1 p. 98.

— @. flavipes var. sibirica n. Bartenev, Zool. Anz. Bd. 35 p. 274 52 (Um-

gebung von Tomsk). — @.cornutus in Milwaukee County. Muttkowski,

Bull. Wisc. Nat. Hist. Soc. Milwaukee vol. 8 p. 53.

Gynacantha japonica n.sp. Bartenef, Verzeichnisse der Evertebraten, Samm-

lungen etc. Tomsk 1909 p. 7—8, 14—16, pl. II fig. 7, 9, 10.

Hadrothemis scabrifrons n. sp. Ris, Coll. Selys Longehamps Libell. p. 172 (Afrika).

Hemicordulia australiae (Rambur) u. tau Selys. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens

Bd. II p. 436—437.

Ischnura aurora Brauer. Synon. Fundorte ete. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens

Bd. II p. 429—430.

Leptetrum quadrimaculatum var. praenubila Kuban [Russisch]. Bartenev, Rev.

russe entom. T. 10 p. 23—30.

Lestes. Kosmopolit, auf dem australischen Kontinent verhältnismäßig reich

vertreten. Ris, Fauna Südwest-Australiens Bd. II p. 421—422. — Über-

sicht über die australischen Lestes-$3 p. 422—424: tenuissimus Tillyard

scheint enger als mit den’ typischen Australformen verbunden mit einer

Lestes-Gruppe, welche Indien, Indonesien u. die Neu Guinea-Region bewohnt

p. 424—425. Hinterende des Abdomens Fig. 1. — cingulatus Burm. p. 425

Hinterende des Abdomens Fig. 2. — leda Selys. Fundnotizen nebst morphol.

Bemerk. Abdominalende Fig. 3. — paludosus blieb Ris unbekannt p. 426.

— 10. Selys Fundorte p. 426, Hinterleibsende Fig. 4. — aridus Tillyard

blieb Ris unbek. — »psyche Hagem. Hinterleibsende Fig. 5. — annulosus

Selys p. 427. Abd.-Ende Fig. 6. — analis Rambur p. 427—428 Fundorte.

Systematik. 301

Abdominalende Fig. 7 u. 8. — colensonis (White). Hinterende des Abd.

Fig. 9. — Martin beschreibt in d. Ann. Soc. Entom. France T. 79 folgende

neue Spp.: niger n. sp. p. 88. — simulans n. sp. p. 88. — pruinescens n. Sp.

p. 87. — regulatus n. sp. p. 90. — amicus n. sp. p. 91. — jacobi n. sp. p. 93.

— cineraceus n. Sp. p: 93. — radiatus n. sp. p. 94. — chromatus n. sp. p. 94

— Lestes-Larven A. u. B. Ris, l.c. p. 443—445. Details Fig. 21—22.

Leucorrhinia dubia var. tschugunovi n. Bartenev, Zool. Anz. Bd.35 p. 2702

(Gebiet des Oby-Enissei canal, Narymski Distrikt, Tomsk Gouvernement).

— L.rubicunda L. $2 aus der Barabinsk Steppe, Kainsk Distr., Gouv.

Tomsk. Basalteil der Flügel des 2 sehr stark safrangelb. p. 275. — L. dubia

Exemplare aus Sibirien. Bartenev, Varsava Izv. Univ. 1910. 5 p.8. — dubia

Bartenev, Varsava Izv. Univ. 1910, 7 p. 10 fig. 4, 8. (Russisch]. — inter-

media n. sp. p. 13 fig. 2, 6 Transbaikalien [Russisch]. — vulgatum var. grandis n,

p. 19 (See Delai-Nor). [Russischl. — tschungunovi var. n. Bartenev, Ver-

zeichnisse der Evertebraten-Sammlungen etc. XII. Tomsk 1909 p. 19 (Narym-

Gebiet) [Russisch].

Libellula rubicunda L. in Regenpfützen innerhalb der Stadt Königshütte ab-

laichend. Schulz, Ed. J. R. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 306. —

dubia Lind. für Schlesien neu. Fundorte: Emanuelssegen, Chorzower-Wäldchen

P- 306. — coerulescens F. 2 mit ganz goldbraunen Flügeln in Schlesien weit

verbreitet. Eine besondere Benennung ist unnötig p. 306. — L. saturata

aliasignata nom. nov. für L. uniformis Needham. Muttkowski, Bull. Mus.

Milwaukee vol.1 p. 140.

Lindenia tetraphylla in Italien. Bentivoglio (1), desgl. bei Lucca. Bentivoglio (2).

Lyriothemis n.sp. Bartenei, Verzeichnisse der Evertebraten-Sammlungen ete.

Tomsk 1909 p. 34, 11—12 pl. IL fig. 8 (Japan). — pachygasira Selys. Beschr.

p. 4—6, 12—14.

Megapodagrion Selys s. str. Merkmale. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29

p. 53—54. Beschreibung eines Stückes der langbeinigen Form, wahr-

scheinlich M. megalopus.

Metathemis n.g. (Type: Synthemis guttata Selys). Charakt. d. Gatt. Tillyard,

Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vol. 35 p. 361. — Übersicht über die 4 Spp.

(nach Z u. $) p. 361. — guttata Selys p. 362—363 39, pl. V. fig. 8. Lebens-

geschichte p. 363—364 (S. Queensl., N. S. Wales, Vietoris; Leura, Blue

Mts.); guit. var. pallida n. p. 363 (Illawarra Distrikt von N. S. W.). — nigra

Tillyard p. 364—366 $2 pl. V fig.9 (Kuranda N. Queensl.). — brewistyla

Selys p. 366—367 pl. V fig. 10 (Queensl., N. S. Wales, Victoria). — virgula

Selys p. 367—368 52 pl. V fig. 11 (Südl. N. S. Wales, Victoria). Zahlreiche

Details finden sich auf den Tafeln VI—IX. — cf. auch Synthemis.

Micrathyria dido n.sp. Ris, Coll. Selys Longchamps p. 432. — artemis n.sp.

p- 437. — hippolyte n. sp. p. 441. — hesperis n. sp. p. 447 (sämtlich aus Süd-

Amerika).

Nannophya Dalei occidentalis (Tillyard). Ris, die Fauna Südwestaustraliens

Bd. II p. 442.

Nehalennia speciosa Ch. vom Chernoe-See bei Minusinsk; bisher aus Sibirien nicht

bekannt. Das Stück unterscheidet sich nicht von den europäischen Stücken.

Bartenev, Zool. Anz. Bd. 35 p. 278; desgl. Bartenev, Varsava Izv. Univ.

1910, 5.

302 Insecta. Odonata (= Paraneuroptera) für 1910,

Oligoclada rhea n. sp. Ris, Coll. Selys Longchamps Libell. p. 402 (Para). — laetitia

n.sp. p. 404 (Brasilien).

Onychogomphus ruptus. Unterschiede von uncatus [Russischl. Bartenev, Varsava

Izv. Univ. 1910, 6 p. 31.

Ophiogomphus cecilia var. obscura n. Bartenev, Zool. Anz. Bd. 35 p. 273—274 $

(Umgegend von Tomsk), auch Bartenev, Verzeichnisse der Evertebraten-

Sammlungen etc. XII. Tomsk 1909. — carolinus Variation. Muttkowski,

Bull. Wiss. Soc. vol. 8 p. 55.

Orthemis regalis n. sp. Ris, Coll. Selys Longehamps p. 281 (Amazonas).

Orthetrum caledonicum (Brauer) Synon. Ris, Die Fauna Südwestaustral. Bd. II

p. 441—442. — cancellatum L. wurde im Minusinsk- Distrikt nur in der Um-

gebung des Sees von Kizil-Kul gefunden. Bartenef, Zool. Anz. Bd. 35 p. 277.

— Ris behandelt in Coll. Selys Longchamps: icteromelas n. sp. p. 197 (Afrika,

Madagaskar). — chrysostigma subsp. guineense n. p. 207. — stemmale subsp.

lemur n. p. 219.

Oxythemis n.g. Libellulin. Ris, t.c. p. 162. — phoenicosceles n. sp. p. 163

(West-Afrika).

Palaeosynthemis. Bestimmung der Gatt. Tillyard, Proc. Linn. Soc. N. S. Wales

vol. 35 p. 329 [nach Förster].

Pantala flavescens Fabr. Ris, t.c. p. 443.

Perithemis raias nom. nov. für lais K. Ris, Coll. Selys Longchamps p. 344. —

waltheri n. sp. p. 340 (S. Amer.). — cornelia n. sp. p. 343 (Panama).

Phyllopetalia patricia n. sp. Tillyard, Proc. Linn. Soc. N. S. Wales vol. 34 p. 699

pl. LV fig. 3 (N. S. Wales).

Planiplax nom. nov. für Platyplax Karsch. Muttkowski, Bull. Mus. Milwaukee

vol. 1 p. 169.

Platycnemis bilineata n. sp. Bartenev, Verzeichnisse der Evertebraten-Sammlungen

etc. XI. Tomsk p. 9—10, 15—16 (Insel Sikok).

Podothemis n.g. Ris, Coll. Selys Longchamps p. 406. — nemesis n.sp. p. 407

(Minas Geraes).

Procordulia. Bemerk. zur Gatt. Ris, t.c. p. 437. — packsoniensis (Rambur)

Beschreib. von $ u. 9, Flügel Fig. 16, Hinterleibsende Fig. 17 p. 438—439.

— affinis Selys Beschreib. p. 440—441 Flügel Fig. 18, Hinterleibsende

Fig. 19.

Raphismia inermis n.sp. Ris, t. c. p. 368 (Borneo).

Somatochlora gratiosa n. sp. Bartenev, Zool. Anz. Bd. 35 p. 270—271 2 Fig. 1 u. 2

Abdominalsgme. (Oby-Enissei canal, Narymski Distriet, Tomsk Gouv.).

— arctica Zett. Beschreib. d. 2? Abdominalsgm. Fig. 3. — sahlbergi Trybom ( ?)

Beschr. des 9, das dem 2 von S. alpestris Sel. ähnelt p. 271. — borealis n. sp.

p- 272—273 2 Abdominalsgm. 1—3 auf Fig. 5—7 (Fundgebiet, wie zuvor).

— S. graeseri Bartenev, Varsava Izv. Univ. 1910 p. 20 fig. 9 u. 10. — exuberata

n.sp. p. 22 fig. 11, 13, 14. — alpestris p. 29 (Transbaikalien) [Russisch]. —

Bartenev behandelt im Verzeichnisse [in russischer Spr.] der Evertebraten-

Sammlungen XII Tomsk 1909: gratiosa n. sp. p- 21 pl. I fig. 2 u. pl. II fig. 3.

— arctica. Beschreib. p. 22 pl. II fig. 2. — sahlbergi (?) Beschreib. p. 22

pl. II fig. 1. — borealis n.sp. p.23 pl.I fig. 1 u. pl. II fig. 5—6 (Narym-

Gebiet).

Systematik. 303

Sympetrum fonscolombüi Selys schönes 2? am 24. IX. 1908 bei Frensham Ponds

in Surrey erbeutet. Wohl ein Einwanderer. The Entomologist vol. 43 p. 39.

— 8. depressiusculum im Gouv. Jenisseisk. Bartenev, Varsava Izv. Univ.

1910, 5 p. 10. — scoticum im Gebiete von Minussinsk p. 10. — sanguineum

Exemplare aus Kobdo p. 23. — 8. scoticum Massenzug in Riga. Schneider,

Korr.-blt. Naturf. Ver. Bd. 53. 1910 p. 110.

Synthemis Selys. Übersicht über die 33 der australischen Spp. Tillyard, Proc.

Linn. Soc. N.S.Wales vol. 35 p. 337, desgl. über die 22 p. 338. — $. eustalacta

Burm. Liter., Beschr. $? p. 338—339 pl. IV fig. 1 (N. S. Wales, Victoria;

S. Austral.), Biologie d. Larven etc. p. 340—344 (Leura, Blue Mts.). —

tasmanica n. sp. p. 344—347 52 pl. IV fig. 2 (Nord Tasmanien: St. Patrick’s

River, Launceston u. Cressy; fehlt im Süden). — regina Selys p. 347—348 32

pl. IV fig. 3 (Queensland, N. S. Wales u. Ost-Viktoria). Biologie der Larven

etc. p. 348—350 (Duck Creek, Auburn, N. S. W.). — miranda Selys 2 p. 350

—351 2 (Neu-Caledonien). — Leachii Selys (nächster Verwandter ist die

folg. Sp.) p. 351—352 82 pl. IV fig. 4 (S. W.-Austral. von Perth bis Cap

Leeuwin.). — macrostigma Selys p. 352—354 pl. IV fig. 5 mit subsp. orientalis

n. p. 354. Lebensgeschichte der letzteren p. 355—358 (Bridgetown, West

Austral.) Sehr selten. — p.355 (Die Subsp. von N. S. Wales, Victoria,

S. Austral. u. Tasmanien). — primigenia Förster p. 358—359 d2 (Neu-

Guinea). — claviculata Tillyard p. 359—360 $2 pl. IV fig. 6 (Kuranda,

N. Queensland. — Sehr selten, offenbar nur auf eine Lokalität bei Kuranda

beschränkt). — ceyanitincta Tillyard p. 360—361 $2 pl. V fig. 7 (Margaret

River, W.A.). Details auf den Tafeln VI—IX. Bestimmungstabelle:

Nymphen klein, schlank, Stirn mit kleiner vorstehender rechtwinkliger

Platte, die mit kleinen Härchen befranst ist: C'horisthemis n. g. Größere,

kräftigere Nymphen: Stirn mit deutlicher halbkreisförmiger vorspringender

Platte: Metathemis n.g. — Stirn ohne Platte, aber mit einer Haarreihe:

Synthemis. — Und für die Imagines: Stirn klein, Abdomen schmal, zylindrisch,

Membranula fehlend: Choristhemis n. g. — Stirn breit, Abdomen von

wechselnder Breite, Membranula vorhanden. Obere Anhänge beim & kurz,

ohne Ovipositor: Metathemis n. g., Obere Anhänge des $ lang u. 9, wenigstens

mit rudimentärem Ovipositor: Synthemis (s. str... Tillyard, Proc. Linn.

Soc. N. S. Wales vol. 35 p. 336. — macrostigma Selys, cyanitincta Tillyard

u. S. Martini Tillyard. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens Bd. II p. 436.

Tramea calverti nom. nov. Muttkowski, Bull. Mus. Milwaukee vol. 1 p. 179. —

T.cophysa Hagen Beschr. eines $ ad. mit reinen Farben, von Rio la Garzas,

Argent. Es stimmt genau mit der Beschr. Hagens in Neuropt. d. Insel Cuba.

Der braune Analfleck der Hflgl. ist sehr schmal (1?/, mm), „der berühmte

dunkle Fleck“ auf den Flügeln. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29. p. 51.

— brasiliana Brauer (gleicht ophysa sehr, ist aber verschieden), $ von Santa

Leopoldina (Porto Cachoeiro). Espiritu Santo Beschr. p. 51—52. — paulina

n.sp. (Unterschiede von D.abdominalis, und den beiden erstgenannten

Spp.) p. 52 & (Sao Paulo). — Tr. limbata Desj. (forma). Ris, Die Fauna Süd-

westaustraliens Bd. II p. 443.

Tetragoneuria semiaquaea. Variation ders. Muttkowski, Bull. Wisc. Soc. vol. 8

p- 57.

Trichocnemis aliena Scudder. Ergänzende Bemerkungen. Mutikowski (2).

304 Insecta. Agnatha (= Ephemeridae = Ephemeroptera) für 1910.

Uracis. Bemerk. zur Gatt. Förster, Wien. Entom. Zeitg. Jhg. 29 p. 52—53.

Charakt. einer Anzahl von fastigiata-Formen (forma machadina n.):; ein kleines

d mit gleichem Geäder wie pura, aber die Flügelspitze in derselben Aus-

dehnung glänzend schwarzbraun, doch sind keine Unterschiede gegenüber

pura zu finden. Vermutlich ist Calverts ovata eine aberrative Form der

jfastigiata.. Bemerk. dazu über das Schwanken der in Frage kommenden

Charaktere.

Xanthagrion erythroneurum Selys.. Ris, Die Fauna Südwestaustraliens Bd. II.

p. 430. — coeruleum (Tillyard) muß aus Pseudagrion ausscheiden. Hinter-

leibsende Fig. 10. Unterschiede von cyane (Selys) p. 432.

Zenithoptera viola nom. nov. für Z. americana Selys. Ris, Coll. Selys Longehamps

Libell. p. 316.

Fossile Formen.

1Stenogomphus carletoni Scudder ist eine Corduline. Ris, Bull. Wise. Nat. Hist.

Soc. vol. 8 p. 102.

Agnatha (= Ephemeridae = Ephemeroptera)

für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Banks, Nathan. Notes on our eastern species of the may-fly genus

Heptagenia. Canad. Entom. vol. 42. 1910 p. 197—202.

Drenkelfort, Heinrich. Neue Beiträge zur Kenntnis der Biologie

und Anatomie von Siphlurus lacustris Eaton. Zool. Jahrb. Abt. f.

Anat. Bd. 29 1910 p. 527—617, 3 Taf. — Die Ephemeridae, die im

Volksmunde verschiedene Bezeichnungen führen (Verf. nennt solche),

bilden unstreitig eine der interessantesten Insektengruppen, die in

Bau und Lebensweise unsere Aufmerksamkeit auf sich ziehen. Gleich-

zeitig stehen sie wohl dem Typus des Urinsekts am, nächsten. Verf.

streift dann die Literatur u. stellt fest, daß über die Morphologie u.

Biologie von Siphlurus lacustris sehr wenig, über die Anatomie noch

garnichts bekannt ist. Er gibt dann die Fundorte an, schildert die

Biologie (p. 532—558) u. zwar das Embryonal- u. Larvulastadium, das

Larven-, Nymphen-, Subimago- und Imagostadium u. gibt am Schluß

dieses Abschnitts (p. 558—559) Anweisungen zum Fang und zur

Aufzucht dieser Tiere. — Kap. II behandelt die Anatomie (p. 560

Publikationen und Referate. 305

—608). Konservierungs- und Untersuchungsmethode (die besten

Resultate lieferten heißer Sublimat-Alkohol [zu gleichen Teilen] unter

Beimischung von 1—2 Tropfen Eisessig, außerdem Chrom-Osmium-

säure u. sogen. Flemmingsche Lösung). Hieran reiht sich die Be-

schreibung der äußeren Anatomie (p. 561—583): Kopf, Thorax, Ab-

domen u. ihre Anhänge, ferner der inneren Anatomie (p. 583—608):

Cireulations-, Respirations-, Verdauungs-, Exkretions- u. Nerven-

system nebst Sinnesorganen, sowie das Genitalsystem (männlich u.

weiblich). Die dgS besitzen 2 Begattungsglieder, die an ihrer Basis

etwas verwachsen sind. Sie sind beim geschlechtsreifen Tiere nicht

ohne weiteres sichtbar, da sie von den Tergiten des 10. Sgmts. u. der

mittleren Schwanzborste u. unten von der die Haltezange tragenden

Lamelle verdeckt werden. Dorsallateral trägt jeder Penis einen eigen-

artigen flachen spatelförmigen Anhang, der durch ein Muskelbündel

bewegt werden kann. Er dient allem Anschein nach zum Heben der

Eiklappe des @ u. zum Schutze des Penis. Die Q-Ausführungsgänge

tragen außerdem eine Erweiterung, die stark mit Chitin ausgekleidet

ist u. zur Auinahme des Penis dient. — Die beiden Ovarien bestehen

aus einer großen Anzahl ziemlich kurzer Ovarialröhren, die alle der

Dorsalseite des ersten Uterusabschnittes, dem sogen. Calyx, aufsitzen.

Jede Röhre trägt einen Endfaden, mit dem sie dorsal in der Nähe

des Herzens befestigt ist. Unmittelbar an den Endfaden schließt

sich die Endkammer an mit einer Menge noch undifferenzierter

Zellenelemente, von denen die einen zu eigentlichen Eizellen, die

anderen zu Follikelzellen der Eiröhren werden. Im Allgemeinen sind

die Verhältnisse bei allen Eintagsfliegen die gleichen, nur Heptagenia

macht eine Ausnahme. Während sonst die beiden Ovidukte völlig

getrennt u. ohne weitere Anhänge in der Intersegmentalfalte münden,

trägt bei Hept. venosa einerseits die untere Wand dieser Falte jederseits

ein taschenförmiges Gebilde, das allerdings kein offenes Lumen besitzt,

weil die beiden Hälften der sie auskleidenden Chitinhaut dicht an-

einander gerückt sind, andererseits ist die obere Wand der Falte in

bestimmter Weise modifiziert in Gestalt zweier beiderseits um eine

mittlere Hypodermiswucherung belegene Hypodermisfalten, die von

der oberen Wand der Intersegmentalfalte gebildet werden. Der Penis

von Hept. ven. ist mit Stacheln besetzt. — Die Genitalien von Siphlurus

lac. bilden ohne Zweifel ein Übergangsstadium von den primitiveren

Geschlechtsorganen der übrigen E’phemeridae zu den schon hoch-

entwickelten u. den Organen der übrigen Insekten sehr nahestehenden

Geschlechtsorganen dieser Ephemeride. Durch die Entwicklung eines

unpaarigen Rec. sem. bei Svphl. lacustris ist wieder ein weiteres Binde-

glied zwischen dem paarigen u. unpaarigen Genitalsystem gefunden.

Es wäre daher wünschenswert, daß sowohl die Organe von Hept. ven.

als auch die von Svphl. lac. unter die sechs charakteristischen von

Palmen aufgestellten Übergangsstadien vom paarigen zum unpaarigen

System aufgenommen würden. — Literaturverzeichnis p. 609—613

(von 1737—1909): Erklärung der Abb. u. Tafeln (p. 614—617).

Archiv für Naturgeschichte o

1911. V. 1. 20

306 Inseeta Agnatlha (= Ephemeridae = Ephemeroptera) für 1910.

Harvey, William. Ephemera producing living young. The Ento-

mologist, vol.43 p. 224—226. — Über die ersten Stadien von Cloeon,

Angaben der Autoren, diesbezügliche Beobachtungen. Ist Oloe bio-

culata mit Oloeon dipterum synonym?

Lucas, Robert. Agnatha für 1904, 1905 ‚1906. [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera.

Lucas, W. 3. Ephemera danica (Ephemeroptera). The Ento-

mologist vol. 43 p. 202. — Am 28. Mai bei Slyfield, Surrey ausgeschlüpft.

Bemerk. zum Schlüpfen, Art u. Weise desselben.

Maxwell-Lefroy u. F. M. Howlett. Indian Insect-Life; a Manual

etc. Titel siehe unter Hymenoptera für 1910 p. 61. — Behandelt darin

auch die Lebensdauer der Ephemeridae.

Morton, Kenneth 3. A new species of Baetis (E’phemeridae) from the

eastern Carpathians. The Entomologist vol. 1910 p. 321. — Baetis

carpatica n. Sp.

Needham, James 6. Studies of aquatic insects: A peculiar new

May fly from Sacandaga Park. Albany N.Y. St. Educ. Dept. Mus.

Bull. No. 134. 1909 p. 71—75, pl. IL.

Petersen, Esben. Guldsmede, Dognfluer, Slervinger og Copeo-

gnather. (Danish Odonata, Ephemerida, Plecoptera and Copeognatha).

Kobenhavn 1910. G. E. C. Gad p. 1—163, 133 figs. 18,5 em. — Rhithro-

gena n.sp.

Reis, ©. ©ayHa Pbi6HBIX’b CIAHNCBB 3AbahRAaIbC KoA O0NACTH.

[Die Binnenfauna der Fischschiefer in Transbaikalien]). Explor. ge-

olog. chem. de fer Siberie St. Peterbg. T.29 1910 p. 1—68, deutsch

p. 1—68. Taf. IV.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906).

Anatomie: Drenkelfort (Siphlurus lacustris).

Biologie : Drenkelfort (Siphlurus lacustris). — Lebensdauer der E’phemeridae:

Maxwell-Lefroy u. Howlett.

Eier und Jugendformen von Ckhlocon: Harvey (The Entomologist. vol. 43

p- 224).

Ausschlüpfen: Lucas (Ephemera danica).

Phylogenie: Reis (der Ephemeridae). — Ephemera, die lebende Junge zur

Welt bringt: Harvey.

Faunistik.

Dänemark : Petersen (E’phemerida n.sp.). — Östliche Karpathen : Morton

(Baetis n. sp.). — Nordamerika: Banks (Heptagenia neue Spp.). — Sacandaga-

Park, Albany : Needham (1.n. sp.).

Palaeontologie.

tEphemeridae der Fischschiefer von Transbaikalien. Reis, Explor. g&ol. chem.

de fer Siberie St. Petersbg. T. 29. 1910 p. 27—29. pl. III fig. 1—18.

Systematik. 307

Systematik.

Baetis carpatica n.sp. Morton, The Entomologist vol. 43 p. 321 52 hierzu Details

auf pl. VI (Gebiet von Chomiak, Ostkarpathen. Peak im Flußgebiet des

Prut, 1544 m).

Cloeon. Eier und Jugendformen. Harvey, The Entomologist vol. 43 p. 224.

Ecdyurus rhenanus n.sp. Neeracher, Revue Suisse Zool. T. 18 p. 566 Fig. 8

(Basel).

Ephemera danica. Lueas, The Entomologist vol. 43 p. 202. — Bei Slyfield, Surrey,

Beobachtung des Ausschlüpfens.

Heptagenia. Übersicht über die nordamerikanischen Spp. Banks, Canad. Entom.

vol. 42 p. 197. — marginalis n. sp. p. 198. — placida n. sp. p. 199. — tripunctata

n. sp. p. 199. — frontalis n. sp. p. 199. — H. (Epeorus) pleuralis n. sp. p. 201.

— modestus n. sp. p. 202. — californicus n. sp. p. 202.

Potamanthus inequalis n.sp. Needham, Albany Educ. Dept. Mus. Bull. No. 134

1909 p. 74 fig. 22 (New York).

Rhithrogena ussingi n.sp. Petersen, Entom. Medd. vol. 3 p. 313 (Dänemark).

Siphlonisca n. g. (Oniscigaster nahest.) Needham, Albany Educ. Dept. Mus. Bull.

No. 134, 1909 p. 72. — aerodromia n. sp. p. 72 pl. II (New York).

Palaeodietyoptera, Megasecoptera

(Protephemeridae, Protodonata etc.) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

THandlirsch, Anton. Das erste fossile Insekt aus dem Ober-

karbon Westfalens. Verhandlgn. zool.-bot. Ges. Wien Bd. 60 p. 249

— 251. — Beschreibt die sehr gut erhaltene Basalhälfte eines Insekten-

flügels, den Herr Markscheider B. Ferrari in den Wendelschen Berg-

werken bei Hamm in Westfalen fand. Das vorliegende Insekt wider-

spricht dieser Altersbestimmung nicht, denn es zeigt sehr ursprüngliche

Eigenschaften u. läßt sich unmittelbar den Urflüglern oder Palaeo-

dictyoptera anreihen, von denen es jedoch in einem wesentlichen

Punkte und zwar im Verlaufe der Analadern abweicht, ohne jedoch

einen so hohen Grad von Spezialisation erreicht zu haben, der uns

gestatten würde, sie irgend einer der bekannten paläozoischen Ord-

nungen anzugliedern. Verf. betrachtet das Insekt als Vertreter einer

neuen Familie Synarmogidae mit Synarmoge n.g., Ferrarii n.sp.

EN.

308 Insecta. Paleodictoptera, Megasecoptera für 1910.

hierzu Abb. auf p. 250. Auffallend sind die relativ derben zahlreichen,

aber im ganzen nicht sehr unregelmäßigen Queradern, von denen

einige verzweigt sind, so daß nur an einigen Stellen ein unregelmäßiges

Netzwerk zustande kommt. Dadurch erinnert der Flügel an Litho-

sialis, Hadroneuria, Eurytaenia etc., von denen er aber sonst wesent-

lich abweicht.

Lucas, Robert. Palaeodictyoptera für 1906. [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera etc.

Meunier, F. (1). Sur deux nouveaux Paleodietyopteres du

Stephanien de Commentry. Ann. Soc. Scient. Bruxelles T. 34. 1910

p. 145—146.

T— (2). Une nouvelle espece de Paleodictyoptere (Stenodictyo-

ptere Brongniart) du terrain houillier de Commentry. t.c. p. 19.

— Cockerelliella n.g. sepulta n. sp.

— (3). Nouveaux Paleodictyopteres du Houillier de Commentry.

Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 233—237. — Archaeoptilus n. sp.,

Borrea n.sp., Cockerelliella n. sp.

Übersicht. Faunistik.

Jahresbericht (Lucas für 1906).

Oberkarbon von Westfalen (Die Formation gehört sowie die belgischen

u. ein Teil der südenglischen Lager, dem mittleren Oberkarbon an u. ist etwa

gleich alt mit der Saarbrücker Stufe u. den insektenreichen Schichten von

Commentry): Handlirsch (Synarmogidae nov. fam., Synarmoge n. g., Ferrarii

n. Sp.).

Nordamerika: Commentry: Meunier (1, 3) (Cockerelliella n. sp.),

Meunier (1) (Microdictya n. sp.).

Systematik.

TArchaeoptilus gaullei n. sp. Meunier, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 233 fig. 1.

tBorrea boulei n.sp. Meunier, t.c. p. 236 fig. 4.

TCockerelliella sepulita n. sp. Meunier, t. c. p. 235 fig. 3, auch in Ann. Soc. scient.

T. 34 p. 19.

1Miecrodictya lacroixi n.sp. Meunier, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 235

fig. 2, desgl. in Ann. Soc. scient. T. 34 p. 146.

1Synarmoge n.g. Synarmogidarum. MHandlirsch, Verhdlgn. zool.-bot. Ges. Wien

Bd. 60 p. 250. — ferrarii n. sp. p. 250 (Oberkarbon von Westfalen).

1S ynarmogidae nov. fam. Palaeodictyopt. Handlirsch, t. c. p. 250.

Euplecoptera (= Dermaptera = Dermatoptera

— Forficulidae) für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Annandale, N. Note on the habits of the earwig Labidura lividipes

— an Addendum to Mr. Burr’s Paper entitled: A Further note on Earwigs

in the Indian Museum. Calcutta. Journ. Proc. Asiat. Soc. Bengal. 2

1906. — Labidura lividipes Duf. fliegt bei heißem Wetter und Regen

zum Licht. Nach dem ersten Monsuntage kam das Tier in großen

Mengen zum Lichte geflogen, dagegen waren an den Abenden vorher

oder nachher wenige zu sehen. Die Zangen werden zum Entfalten

der Flügel resp. zum Zurückbringen in ihre Ruhelage benutzt, bleiben

aber dabei geschlossen und dienen als Hebel.

Borelli, Alfredo (1). Forficole nuove o poco note di Costa Rica.

In: Boll. Mus. Zool. ed. Anat. comp. Torino vol. 24 Nr. 611 1909 p. 1

22. 10 Textfig.. — Behandelt ein reichhaltiges Dermatopteren-

material aus verschiedenen Teilen von Costa Rica. Die Fundorte

liegen zum Teil in beträchtlicher Höhe. Beschrieben werden: Echino-

psahs guttata $, Brachylabis fernandezi n.sp., Br. montana n.Ssp.,

Spongiphora dissimilis n.sp., Labia orae-divitis n.sp., L. cyanescens

n.sp., Sparatta biolleyi S, Sp. lobata n.sp., Mixocosmia n.g. (steht

Paracosmia Bor. nahe, doch geflügelt, Elytren u. Pronotum anders

gestaltet) iristani n. sp., Tristanella n. g. (durch rudimentäre Elytren

von Ancistrogaster verschieden) tuberculata n. sp. u. Tr. biaculeata n. sp.

— (2). Forficole raccolte dal Prof. F. Silvestri nell’ America

Settentrionale e nelle isole Havvaii. Boll. Labor. Zool. gener. e agr.

R. Sc. Sup. d’Agrie. Portici vol. III. 1909 p. 314—328. — Die von

Silvestri in den Vereinigten Staaten, Mexico u. den Hawaiischen Inseln

gesammelten Dermaptera enthalten 4 neue Spp.: Anisolabis eteronoma

n.sp., A. aporonoma n.sp., Paracosmia n.g. (steht zwischen Op:stho-

cosmia und den flügellosen Ancistrogaster) silwestriüü n. sp., P. du-

gesiin. sp. Neubeschreibungen von Sparatta incerta, Labra flavıscuta ete.

— (3). Mission geodesique de l’Equateur. Collections recueillis

par M. le Dr. Rivet. Orthopt£res forfieulides.. Bull. Mus. Hist. Nat.

Paris 1910 p. 156—158.

— (4). Di una Forficola poco nota della regione etiopica (Borellia

andreinit). Boll. Mus. zool. anat. Torino vol. 25 1910 No. 616 p. 1—3.

— (5). Deserizione d’una nuova specie di Forficola dı Costa

Rica (Sparatta calverti n.sp.). op. cit. vol.25 No. 623 p. 1—3.

Burr, Malcolm (1). The Fauna of British India, ineluding Ceylon

u. Burma. Dermaptera (Earwigs). London, Taylor and Francis, Red

310 Insecta. Euplecoptera für 1910.

Lion Court, Fleet Street. Caleutta: Thacker, Spink and Co. Bombay:

Thacker and Co., Ltd. Berlin: R. Friedländer und Sohn. 8°. pp. XVIII,

217, pls. I—X. 1910. — Eine vorzügliche Arbeit des Verfassers, die

eine Aufzählung und Beschreibung der Dermaptera der genannten

Gebiete bringt. Sie bilden eine in sich abgeschlossene Ordnung, die

auf Grundlage der Arbeiten von de Bormans u. Verhoeff eingeteilt

u. durch Modifikationen seitens des Verfassers eine weitere Gruppierung

erfahren hat. An eine Vorrede des Herausgebers (p.V—VII) über das Er-

scheinen etc. der Fauna of British India schließt sich eine solche

von Burr an über die Gruppe der Dermaptera u. bringt Bemerkungen

über Bezeichnung, Abgeschlossenheit der Gruppe; Typen, Syntypen;

Paratypen; Material: I. von Leonardo Fea aus Burma, II. Trichinopoli

bei Kodaikanal, Bolivar; III. aus diversen indischen Lokalitäten

von Gu£erin, Dohrn, de Bormans, Dubrony, Westwood etc., IV. Material

des Mus. Brüssel, Budapest, Paris, V. des Oxford Mus., VI. Burr,

Dermaptera von Ceylon, VII. des Ind. Mus. Caleutta, VIII eigens

für dieses Werk auf Ceylon gesammeltes Material von Fletcher, Sealark,

u. Willey, Colombo. IX. Material verschiedener Quellen, Burrs Coll.,

Gadeau de Kervilles Coll. aus Rouen (p. VIII—XII). — Systematische

Liste der Spp. (p. XIII—-XVII), insgesamt 14 Subfam., 51 Gatt.

u. 133 + 2 inc. Spp. Hierauf folgt die Morphologie (nebst Nomen-

klatur (Diagramm, dorsal Fig. 1, ventral Fig.2) (p.2—9), Bemerkungen

über die Bestimmung der Spp. (p. 10—11), Entwicklung (p. 11), Kopti-

lation (p. 12—13), Eiablage (p. 13—14), Eier (p. 14), Lebensweise

(p. 14—17), Nahrung (p. 17—18), Sorge für die Brut (p. 18—19) u.

Geographische Verbreitung (p. 19—25), einschließlich einer Liste

der Gatt. [p. 22: Angabe der Gatt.; dem Gebiete eigentümlich; Ver-

breitung u. Bemerk.] u. Spp.: p. 23—25: Name; Verbreitung, Auf-

bewahrungsort der Type; untersuchtes Material, Br. Mus., eigentüml.

Form]. — Literatur (p. 26—30]. — Der systematische Teil (p. 31

—206) gibt Bestimmungstabellen der Familien; Gattungen u. Arten,

sowie neue Beschreibungen derselben. Insgesamt werden 132 Spp.

besprochen. — Die Appendices geben A. Anleitung zum Sammeln u.

Präparieren der Tiere, die namentlich im trockenen Zustande sehr

zerbrechlich sind (p. 207—208). B. Autoren u. deren Abbreviation

(p. 208—209). C. Glossarium (p. 210—212). — Alphabetischer Index

(p. 213—217). Die zehn Tafeln (mit 104 Figg. nebst Details) mit

Zeichnungen von E. Wilson sind ausgezeichnet und geben ein vor-

treffliches Bild von diesen Tieren, die oftmals bizarr u. monströse

Formen aufweisen. Taf. 10 ist farbig. — Es werden Vertreter folg.

Gatt. behandelt: Fam. Apachyidae: Apachyus (2), Dendroiketes (1).

— Fam. Pygidicranidae: Diplatys (12), Pygidicrana (6), Dierana (1),

Cranopygia (2), Picrania (1), Pyge (2). — Fam. Labiduridae: Palex (1),

Echinosoma (2), Psalıs (4), Labidurodes (1), Gonolabis (1), Anisolabis (6),

Borellia (3), Forcipula (5), Labidura (4), Pseudisolabis (3), Nannisolabis

(2), Metisolabis (2), Ctenisolabis (1). — Fam. Labirdae: Spongiphora (3),

Erotesis (1), Labia (8), Platylabia (4), Sphingolabis (1). — Fam. Forfi-

culidae: Chelisochella (1), Exypnus (1), Chelisoches (1), Proreus (3),

Publikationen und Referate. 3ll

Solenosoma (1), Adiathetus (5), Hamazas (1), Allodahlia (4), Homotages

(1), Pterygida (1), Anechura (2), Elaunon (1), Forficula (11), Sondaz

(1), Eudohrnia (1), Emboros (1), Liparura (1), Obelura (2), Cordaz (2),

Hypurgus (2), Eparchus (3), Timomenus (4), Syntonus (1), Kosmetor

(3), Zipodes (1). — Spp. ungewisser Stellung Forficula (?) (2 Spp.).

— Insgesamt Apachyidae: Subf. 1, Gen. 2, Spp. 3. — Pygidieranidae:

Subfam. 2, Gen. 6, Spp. 24. — Labiduridae: Subf. 6, Gen. 13, Spp. 34.

— Labüidae: Subf. 1, Gen. 5, Spp. 17. — Forficulidae: Subf. 4, Gen. 25,

Spp. 55. Summa: Subf. 14, Gen. 51, Spp. 133 + 2 inc. sedis.

— (2). The Dermaptera (Earwigs) of the United States National

Museum. Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 443—467.

8 figs. im Text. — Es handelt sich hierbei um das Material des U. S. Nat.

Mus., wobei Verf. Gelegenheit hatte in mehreren Fällen die Typen

von Caudell u. Rehn mit denen der älteren europäischen Forscher

zu vergleichen. Die Dermaptera bilden keine leichte Gruppe u. die

Schwierigkeit liegt besonders darin, daß kein umfassendes Werk auf

Grund des Studiums der Originalstücke vorliegt, de Bormans Mono-

graphie ist unvollkommen u. nicht mehr zeitgemäß. Da nur wenige

Arten gut illustriert sind, so ist es von äußerster Wichtigkeit, daß

authentische Sammlungen verglichen werden. Die große Entfernung

der Museen Englands, des Museums in Paris, Wien, Berlin ist Schuld

an den Fehlern, die sich in den Arbeiten der amerikanischen Autoren

eingeschlichen haben. Trotzdem ist es überraschend, daß die Publi-

kationen der amerikanischen Autoren so gut geraten sind. Das be-

handelte Material verteilt sich folgendermaßen: Apach.: Apachyus

(1). — Pygid.: Diplatys (2), Karschiella (1), Pygidierana (1). —

Labid.: Allostethus (1), Pyragra (3), Arthroedetus (1), Echinopsalis (1),

Echinosoma (1), Psalis (5), Anisolabis (5), Borellia (3), Labidura (2),

Leptisolabis (1 n.sp... — Labiidae: Nesogaster (1), Labia (15),

Spongiphora (4), Sparatta (2). — Forfic.: Chelisoches (1), Proreus

(1), Neolobophora (1), Ancistrogaster (6), Vlax (1), Praos (1), Osteulcus

(1), Pilex n. g. (1), Sarcinathrix (1), Dinex (3), Skalistes (2), Anechura

(1), Oipex n. g. (1), Doru (2), Elaunon (1), Forficula (3). — Synonymie

(p. 465). — Literatur (p. 466—467): 42 Publ.

— (3). Synopsis of the Orihoptera of Western Europe. London

1910. — Ein Taschenbuch mit einer instruktiven Tafel der Termini.

Von den 398 Arten entfallen 25 auf die Dermaptera. Ein Appendix

bringt die Nomenklatur auf das Laufende.

— (4). Japanese work on Dermaptera. Entom. Record a. Journ.

of Var. vol. 22. 1910 p. 134—138.

— (5). A preliminary revision of the Labiduridae, a family of the

Dermaptera. Trans. Entom. Soc. London 1910 p. 161—203, pls. XLII

u. XLVI.

— (6). Dermaptera [of the Seychelles). Trans. Linn. Soe. Zool.

ser.2 vol. 14 1910 p. 124—133.

(7). Siehe Distant.

Chapman, T. A. Forficuline maternal care. The Entomologist

vol. 43 p.291—292. — Beobachtungen über die Brutfürsorge bei

Forf. auricularia.

312 Insecta. Euplecoptera für 1910.

Collinge, W.E. On the feeding habits of the common earwig,

Forficula auricularia Linn. Journ. Econ. Biol. London vol. 5 1910 p. 68.

Distant, W. L. Insecta transvaaliensia. Part X. London 1910.

p. 229—252 pls. XXII u. XXIII. — Darinnen auch die Be-

schreibung einer neuen Dermapteren-Sp.: Echinosoma distanti.

Ebner, Richard (1). Ein Beitrag zur Orthopterenfauna der euro-

päischen Türkei mit besonderer Berücksichtigung von Albanien.

(Ergebnisse einer Reise nach Nord-Albanien, A. Klaptocz, 1909).

Zool. Jahrb. Abt. f. System. Bd. 29 p. 401—414. — Nach Vor-

bemerkungen über das Material und die dürftige Literatur behandelt

Verf. 1. die Orthoptera aus Albanien. Über Dermaptera handeln p. 406

—407: Labidura riparia Pall., sehr auffallendes Stück, u. Forficula

auricularia L. 2. Orthopteren von Macedonien und Konstantinopel:

Dermaptera (p. 413): Labia (1), Labidura (1), Forficula (1). Montenegro

und Albanien haben gemeinsam Forficula aurieularia.

— (2). Beiträge zur Orthopterenfauna Bosniens u. der Herze-

gowina. Verhdlgn. zool.-bot. Ges. Wien Bd.58 1908 p. 329—339.

Taf. II. — Ref. von N.v. Adelung, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 170.

Gelin, Henri. Captures d’Orthopteres. Bull. Soc. Entom. France

1910 p. 92—93. — Von Dermaptera kommt in Betracht Forficula

Lesnei Finot.

Lesne, P. (1). Sur la distribution geographique du Forficula

lesnei Finot. Bull. Soe. Entom. France 1909 p. 333— 334.

— (2). L’Apterygida arachidis Yersin a Paris et dans la banlieue

parisienne. op.cit. 1910 p. 204.

Lucas, Robert. Dermaptera für 1904, 1905, 1906. [Jahresbericht].

Titel siehe unter Trichoptera.

Lucas, W. (1). Odontopsalis Lewisi Burr (Orthoptera). The Ento-

mologist vol. 43 p.129—130. 1 Fig. — 1 Stück dieser Art im Jan. 1904

in St. John’s Market, Liverpool. Burr’s Beschreib.

— (2). Forfieuline maternal care. t.c. p. 315. — Das von Chap-

man, t.c. p. 292 erwähnte 2 gehört zu Anechura bipunctata u. ist eine

Gebirgsspezies des paläarktischen Gebietes.

Matsumura, S. Die schädlichen und nützlichen Insekten vom

Zuckerrohr Formosas. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 101

—104, 136—139. — Euplexzoptera (p. 138): Forficulidae:

Labiduroides formosanus Shirak (p. 138) (Ako, Tainan, Taihok,

Taichu).

Maxwell-Lefroy, F. W. u. Howlett. Indian Insect-Life; a Manuel

ete. Titel siehe p. 61 des Berichts über Hym. £. 1910. — Orthoptera

(auch Dermaptera) p. 47—107, Textfig. 5—42, 6 col. plates, 1 plain.

Meissner, ®tto. Forficula auricularia L. in der Gefangenschaft.

Entom. Rundschau. Stuttgart. Jhg. 27. 1910, p. 74—75, 78—79.

Planet, Louis. Note au sujet de.l’Apterygida arachidis Yersin.

Naturaliste. Paris vol. 31. 1909 p. 282.

Puschnig, Roman. Beiträge zur Kenntnis der Orthopterenfauna

von Kärnten. Verhdlgn. zool.-bot. Ges. Wien Bd. 60. 1910 p. 1—60.

Auch Dermaptera.

Publikationen und Referate. 313

PylInov, E. Contributions a l’&tude de la faune des Orthopteres

de la province des Cosaques du Don. Rev. entom. Russe St. Pbg.

T. IX. No. 92. 1909 p. 14—23. [Russisch]. — Ref. vonN.vonAde-

lung, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 170.

Rehn, James A. 6. A Contribution to the knowledge of the

Orthoptera of Sumatra. Bull. Amer. Mus. Hist. Nat. vol. XXVI p. 177

—211, 31 figs. — Dermaptera (Forficulidae): Diplatys (1), Apachyus

(1), Pygidicrana (1), Chelisoches (3).

Sharp, D. Forticuline maternal care. The Entomologist vol. 43

p. 250. — Beobachtung an der Küste von Haylıng Island. Forficula

auricularia hütete unter einem Steine die in einer kleinen Höhle

versteckten Jungen.

Shiraki, Toknichi (1). Neue Forficuliden Japans. Sapporo. Trans.

Sapporo Nat. Hist. Soc. vol. 1 1906. — Verf. beschreibt neue japanische

Forfieuliden. Schon 1905 wurde eine Liste von 8 (dar. 3 neue) Spp.

gegeben. Hierzu kommen noch Labidurodes nigritus u. formosanus,

Anisolabis pallipes, fallax u. piceus.

— (2). Neue Forfieuliden und Blattiden Japans. op. cit. vol. 2

190%. — Von neuen Forfieuliden aus Japan werden beschrieben:

Labidurodes akinawaensis, L. singularis, Forficula ruficeps, Apterygida

aeris, A. flavocapitata, A. crinitata, Mesolabia n.g. mit ntitakaensis

n. Sp.

Shugorov, A. M. Marepiaıpi Kb TO3HaHIE OpTomTepodayHbi

Poccin. [Beiträge zur Kenntnis der Orthopterenfauna Rußlands].

Mem. Soc. nat. Odessa T. 34. 1910 p. 110—124.

Swezey, A. H. Observations on Insect during a recent trip on

Hawaıı. Honolulu. Proc. Hawaii. Entom. Soc. vol. 1, 2 1906. —

Die Ohrwürmer Anisolabis annulipes und Chelisoches morio fressen

auch Zikaden.

Terry, F. W. The increase of the antennal segments in the Forfi-

culids Chelisoches morio F. and Forficula auricularıa L. Honolulu, Proc,

Hawaii. Entom. Soc. vol. 1, 2 1906. — Bei den Forfieuliden wächst

die Zahl der Fühlerglieder bei jeder Häutung. Verf. hat diese Zunahme

an den 5 Entwicklungsstadien beobachtet und findet folgende Zahlen:

8, 12, 16, 19, 20 für C'helisoches u. 6, 8, 10, 12, 14 für Forficula.

Uvarov, B.P. [Contribution a la faune des Orthopteres de la

province de I’Oural]. Horae Soc. Entom. Ross. T. 39. 1910 p. 359 —390.

Walker, E. M. The Orthoptera of Western Canada. Canad. Entom.

London, vol. 42. 1910 p. 269—276, 293—300, 333—340, 351—356.

Werner, Franz (1). Zur Kenntnis der Orthopterenfauna des

ee Jahresber. Entom. Ver. Wien Bd. 20 1909 [1910] p. 33

—40.

— (2). Einige Beobachtungen an Orthopteren und Neuropteren

[Carausius, Diestrammena, Ascalaphus, Palpares]. Zeitschr. f. wiss.

Insektenbiol. Bd.6 1910 p. 267—271.

— (3). Orthopterologische Notizen. (Neusiedlersee, Nieder-

SEEN und Tirol). Wien. Mitteil. Naturw. Ver. Univ. Bd. 8 1910

p. 74—100.

314 Insecta. Euplecoptera für 1910.

— (4). Die Orthopterenfauna der Umgebung von Guntramsdorf

in Niederösterreich. t.c. p. 129—153, 162—167.

— (5). Die Dermapteren und Orthopteren Bosniens und der

Herzegowina. Wiss. Mitteil. Bosnien, Wien, Bd. 10, 190%. — Ist die

deutsche Übersetzung der Arbeit über die Dermapteren und Ortho-

pteren von Bosnien. Charakteristisch für dieses Gebiet sind 2 Derma-

pteren Chelidoura Apfelbecki u. C'h. Reiseri.

Zacher, Friedrich (1). Beitrag zur Kenntnis der Orthopteren

Schlesiens. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Bd. 3 190% p. 179—185,

211—217. — Entwirit ein einheitliches Bild von der schlesischen Ortho-

pterenfauna. Die Arten werden nach ihrer Herkunit in eine euro-

päisch-sibirische, eine mediterrane u. eine kosmopolitische Gruppe

geteilt. Am Schlusse gibt der Verf. die Gründe an für diese Zu-

sammensetzung der Fauna. Im speziellen Teile werden 76 Arten von

Örthopteren, dar. auch Dermaptera aufgeführt.

— (2). Zur Morphologie und Systematik der Dermapteren.

(Vorl. Mitt.) Entom. Rundschau. Stuttgart. Jhg.27. 1910 p. 24,

29—80.

— (3). Beitrag zur Kenntnis der Pygidieranen und Diplatyiden

(Dermaptera). t.c. p. 105.

— (4). Tiergeographische, phylogenetische una biologische

Bemerkungen zu Malcolm Burrs Dermapterenfauna von Britisch

Indien, Burma und Ceylon. t.c. p. 174—176.

— (5). Literaturbericht über Orthoptera 1907 und Nachtrag

für 1906. Zeitschr. f. wiss. Insektenbiol. Berlin Bd. 6. 1910 p. 256

—258, 320—323, 369—370, 411—414, 456—462. — Auch Dermaptera.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906). — Bemerkungen zu neueren

Werken über Forficulidae von Japan: Burr, Entom. Record etc. vol. 22 p. 134

—139. — Kollektion des U. St. Nat. Mus.: Burr (2). — Tiergeographische, phylo-

genetische u. biologische Bemerkungen zu Malcolm Burr’s Dermapterenfauna

von Britisch-Indien, Burma u. Ceylon. Zacher, Entom. Rundschau Jhg. 27

p. 174—176. — Synonymie: Burr (Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760).

— Revision der Labiduridae: Burr (5). — Präparation der Dermaptera: das Auf-

kleben auf Kartonpapier, wie es bei kleinen Coleoptera üblich ist, wird empfohlen

im Entom. Monthly Mag. ser. 2 vol. 21 (46) p. 220.

Biologie.

Mütterliche Fürsorge bei Anechura: Chapman, Lucas, W. J. (2), — bei Forfi-

cula: Sharp. — Forficula auricularia in der Gefangenschaft: Meissner. — Lebens-

weise von Labidura lividipes: Annandale. — Schädlinge: Matsumura.

Entwicklung.

Zunahme der antennalen Segmente bei C'helisoches morio u. Forficula auri-

cularia L.: Terry.

Faunistik. Systematik. 315

Faunistik.

Inselwelt.

Hawaische Inseln : Borelli (2) (Anisolabis). — Burr (2) (Anisolabis), Swezey.

— Seychellen: Burr (5) (Brachylabis n. sp.). — Burr (6) (Forficulidae 3 neue

Spp.).

Paläarktisches Gebiet: Lesne (Verbreitung von Forficula lesnei).

Europa.

Europa: Burr (Synopsis). — Westeuropa: Burr (3) (Synopsis). — Groß-

britanien: Liverpool: Lucas, W. J. (1) (Odontopsalis lewisi). — Frankreich :

Gelin (Forficula lesnei Finot). — Paris: Lesne (Apterygida arachidis), Planet.

— Oesterreich: Guntramsdorf: Wermer (4). — Kärnten: Puschnig. —

Waldviertel: Werner (1). — Neusiedler-See ete:. Werner (3). — Bosnien und

Herzegowina: Ebner (2). — Europäische Türkei: Ebner (1), — Rußland:

Shugorow. — Gebiet der donischen Kosaken : Pylnov. — Provinz Ural: Uvarov.

Asien.

Indien etc. : Burr (1) (Forficulidae, zahlr. neue Spp.). — Britisch-Indien : Max-

well-Lefroy u. Howlett, Zacher (Bemerkungen zu Burr’s Dermapterenfauna).

— Japan: Shiraki (1, 2). — Malayischer Archipel: Java: Burr (Gonolabis

n. sp... — Sumatra: Rehn (Diplatys, Apachyus, Pygidierana, Chelisoches),

Zacher (Forficulidae, 2 neue Gattungen).

Afrika.

Afrika: Burr (7) (Echinosoma n. sp.), Zacher (Nannopygia n. sp.). —

Aethiopisches Gebiet: Borelli (4).

Amerika.

West-Kanada: Walker. — Brasilien: Burr (Brachylabis u. Psalis). — Costa

Rica: Borelli (1) (Brachylabis 2 n.spp., Spongiphora n.sp., Labia 2 n.spp.,

Sparatta n.sp., Mixocosmia n. g., n. sp.), Borelli (5) (Sparatia n. sp... —

Ecuador : Borelli (3) (Forficulidae). — Guatemala : Burr (2) (Leptisolabis n. sp.).

Australien.

Australien: Burr (Nannisolabis n. sp.).

Systematik.

Übersicht über die Familien Apachyidae, Pygidicranidae, Labiidae, Labiduridae

u. Forficulidae. Burr (1) p. 31. — 1. Letztes Dorsalsgm. des Abd. zwischen

dem Forceps in einen flachen, erweiterten Lobus ausgezogen, der aus einer

Verschmelzung mit dem Pygidium gebildet wird. (Körper stark deprimiert,

Antennen m. üb. 40 Gliedern, Elytren am Axillarwinkel sehr schwach, d.

Skutellum tritt deutl. hervor): 1. Apachyidae. — 1. 1. Letzt. Dorsal-

sgm. nicht stark vorgezogen, ohne Fortsatz. — 2. 2. Tarsalsgm. einfach,

nicht gelappt, zylindrisch. — 3. Letztes Dorsalsgm. mit ungeteiltem Hinter-

rand, nicht mit dem Pygidium verschmolzen, letzteres ist frei. — 4. Femora

316 Insecta. Euplecoptera für 1910.

komprimiert u. gekielt: 2. Pygidicranidae. — 4. 4. Femora nicht

komprimiert oder gekielt: 3. Labiidae.

Adiathetus. Charakt. Burr (1) p. 141—142. — Übersicht über die folg. 5 Spp.

aus Indien p. 142. — shelfordi Burr (sehr schöne Sp. glänzend purpurne

Flgl., goldene Behaarung, beachtenswerte Gestalt des Forceps) p. 142—143 52

(Sikkim, Borneo). — dravidius n. sp. (nähert sich A. nigrocastaneus u.

A. glaucopterus Borm.) p. 143—144 $9 Fig. 46 (Madras: Travancore;

Tenmaleai, Westseite der West Ghats). — glaucopterus Borm. p. 144—145

Fig. 47 82 (Ober Assam, Burma, Kachin Hills VIII; Karen-ni Geku-Distr.

4300—4700 ‘; Tenasserim: Meetan, IV). Verhoeff zog diese Sp. zu Cheli-

sochella. — nigrocastaneus n.sp. p. 145—146 Fig. 48 (Bombay: Kanara).

— tenebrator Kirby p. 146—147 2 (Indien).

Ancistrogaster Stäl mit gulosa Stäl, spinax Dohrn, maculifera Dohrn. Burr, Proc.

U. States Nat. Mus. vol.38 No. 1760 p. 459. — faleifera Rehn (= A. mixta Bo-

relli 1906) von Peru: Piches and Perene Valleys, 2—3000‘ $, Mexiko Cordoba

&2, Profil des vorletzt. Ventralsgmts. Fig. 3 p. 459. — sp. von Mexiko,

Jalapa, sp. von Peru, Chanchamarja p. 459.

Anechura bipunctata. Lebensweise. Ebner, Mitt. Ver. Univ. Wien Bd. 8 p. 129 sq.

— A. Harmandi Burr von Japan. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1760 p. 462.

Anechurinae. Charakt. Kräftige Bergbewohner mit breiten Sternalplatten,

erweitertem Abdomen, Forceps an d. Basis auseinandergebogen u. seltsam

gekrümmt etc. Burr (1) p. 148. — 4 Gatt. 1. Elytren mit starkem Kiel längs

der Längsfalte: Allodahlia Verh. — 1. 1. Elytren nicht gekielt. — 2. Zweites

Tarsalsgm. lang, kaum verbreitert (Pronotum hinten erweitert): Homotages

Burr. — 2. 2. Zweites Tarsalsgm. kurz, stark erweitert. — 3. Elytren oval,

vorletzt. Ventralsgm. d. & leicht gerundet: Pierygida Verh. — 3. 3. Elytren

parallelseitig: vorletzt. Ventralsgm. d. & konvex: Anechura Scudd.

Allodahlia Verh. (Type: Forficula scabriuscula Serv.). Beschr. Burr (1) p. 149.

Burr hält die Aufstellung einer besonderen Subfam. nicht für nötig. —

Übersicht über die folg. 4 Spp. (p. 149—150): scabriuscula Serv. (= Forf.

brachynota Haan) p. 150—151 5% Fig. 49. (Bhutan etc. Malay. Archipel,

S. China, Tonkin). — macropyga Westw. Synon. (= Forf. hugeli Dohrn

= Forf. ancylura Dohrn etc.) p. 151—153 $2 Fig. 50 (zahlr. Fundorte in

Indien ete.). — coriacea Bormans = Forf. brachynota Dubr. p. 153—154 $?

Fig. 51 (Verein. Prov.: Bhim Tal, 4500, Kumaun; Bhutan, Burma,

Tenasserim). — ahrimanes Burr p. 154 — 155 Fig. 98 (Sikkim, Assam:

Kurseong).

Allosthetella n. g. (Allosthetus nahest.) Zacher, Entom. Rundschau Bd. 27 p. 30.

— malayana n.sp. p. 30 (Sumatra).

Allostethus indicum (Hagenbach) von Unter Siam: Khow Sai Dow, Trong, 1000‘.

Diese Form ist die Type zu Labidurodes magnificus Rehn 1900, letztere ein

Synonym. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 444.

Anisolabis Fieber (Type: Forficula maritima Bon.). Charakt. Burr (1) p. S0—81

Abb. der Sternalplatten. Fig.5. Ist Kosmopolit. — Übersicht über die

folg. 6 Spp.: colossea Dohrn p. 82 (wird sehr groß. In Australien gemein,

in N. S. Wales eine var. minor). Burma: Pegu, Palon; Karen-ni, Keba

Distrikt, 3000—3700'). Der Forceps der großen Arten kann energisch

Systematik. 317

kneifen u. selbst Blut dem menschlichen Finger entlocken. — maritima

Bon. p. 83—84 Synon. Abb. Fig. 22. (Burma: Kakhyen Hills VIII/IX;

Tenasserim: Mt. Mulayit, 3300—6300°). — kudagae Burr p.84 Fig. 23

(Ceylon: Kudage, Hutton. VII. Maskeliya b.i Licht, Hakgala u. Patipola

in IV u. XII). — annulipes Lucas (= Forcinella hottentota Dohrn = Anisolabis

bormansi Scudd. = Forcinella antoni Dohrn = F. azteca Dohrn) p. 84—85

Fig. 24 (zahlreiche Fundortsangaben in Bengal, Bombay, Madras, Burma

u. Ceylon). — dubronii Kirby (= 4. Iaeta Borm. nec Gerst. (ganz verschieden

von der ostafr. /aeta, mit der sie de Bormans verwechselt) p. 85—86 Fig. 97

farbig (Tenasserim: Mt. Mulaiyit, 3300—6300° IV). — gaudens Burr (der

ziegelrote Kopf erinnert an A. dubronii, aber die gebänderten Knieen bilden

einen Unterschied) p. 86—87 (Bhutan: Pedong). 1 Stück im Mus. Paris

von Bhutan (Maria Basti) ähnelt der Type von gaudens, doch ist der Kopf

schwarz. — 4A.annulipes Lucas in zahlreichen Gebieten von Amerika.

Burr. Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 447—448. — xenia Kirby

von Hawaii (ein $ als A. maritima bestimmt), der A. littorea nahest., aber

der ausgehöhlte Forceps unterscheiden sie deutlich. — »luto Rehn in Liberia

von Mount Coffee, ist vielleicht das 2 von A.rufescens Kirby p. 448. —

maritima Bonelli. Fundorte: Kanarische Inseln, Neu - Seeland, Santo

Domingo, Porto Rico u. Japan p. 448. — marginalis Dohrn u. Japan p. 448

minuta Caudell = Borellia stäli (Dohrn) p. 465.

Apachyidae. Charakt. Burr (I) p. 31. — 2 Gatt. Apachyus Serv. (Körper

stark abgeflacht; Pronotum elliptisch) u. Dendroiketes Burr (Körper weniger

stark abgeflacht, Pronotum fast quadratisch).

Apachyus Serv. Charakt. Burr (1) p. 32. — Übersicht über die beiden folg. Spp.

p. 32. — feae Borm. Beschreib. p. 33—34, Larve p. 34—85; Variation Fig. 15,

22 u. 938 farb.; Verbreitung. — pascoei Kirby Beschreib. p. 35 (Assam:

Sylhet). Ist bisher für ein Synonym von A. feae gehalten worden, Kirbys

Type zeigt aber Unterschiede. — depressus Pal de Beauv. von Liberia, Mount

Coffee. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1750 p. 444.

Apterygida arachidis. Pie, Naturaliste vol. 31 p. 282. — buscki Rehn = Psalis

gagatina Klug var. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 465.

Arlex nom. nov. für Verhoeffia Burr. Burr, Trans. Entom. Soc. London 1910

p. 190.

Arthroedetus Barberi Caudell von Guatemala, Polochie River. Die Stücke sind

unreif. Wozu sie gehören? Das Stück ist eine Pyragra-Larve u. ähnelt

sehr P. fuscata Serville oder einer verwandten Form. Burr, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 p. 445.

Borellia Burr (Type: Forficesila moesta Serv.) Charakt. Burr (1) p. 87. — Über-

sicht über die folg. 3 Spp.: greeni Burr p. 87—88 (Ceylon: Punduluoya etc,

Madulsima, Kala Wewa; Nilgiri Hills). Dimensionen der verschiedenen

Formen (typ., schwarze, flügellose). — stälö Dohrn p. 88—89 (Bombay:

Karachi, Madras: Pondicherry; Ceylon: Diyatalawa in VIII, Trincomali

in VII). — annandalei Burr p. 89—90 (Bengal: Comilla, Purneat Distrikt;

zweifelhaftes Stück von Halaoya Ceylon). — sp. von Nicaragua. Unvoll-

kommenes Stück, vielleicht verw. m. peruviana, jedoch nicht so intensiv

schwarz wie jene. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38. No. 1760 p. 448.

— janeirensis von Porto Rico, Utado u. Jamaica p. 448. — minuta Caudell

318 Insecta. Euplecoptera für 1910.

von Porto Rico, Mayaguez p. 448. — B. andreinii Borelli, Boll. Mus. Torino

vol. 25 No. 616.

Bormansia meridionalis Rehn (non Burr) = Karschiella cf. camerunensis Verhoeff.

Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38. No. 1760 p. 465.

Brachylabinae. Charakt. Burr (1) p. 105. — Die Mitglieder dieser Subfam.

tragen alle ein charakteristisches Aussehen und sind sich oberflächlich ähnlich.

Die alte Gatt. Brachylabis Dohrn, von de Bormans umgrenzt, ist revidiert

u. aufgeteilt worden u. zu Verhoeffs /solabidae gestellt worden. Brachylabis

selbst ist in der indischen Fauna nicht vertreten. Übersicht über die Gatt.

Nannisolabis n. g. Burr, Metisolabis Burr n. g. u. Otenisolabis Verh. (p. 105

—106).

Brachylabis nigra Caudell (non Scudder) = Leptisolabis howardi n.sp. Burr,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 465. — Br. scotti n. sp. Burr,

Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 126 (Seychellen). — B.coriacea n.sp. Burr,

Trans. Entom. Soc. London, 1910 p. 192 (Brasilien). — scotti n. sp. p. 193

(Seychellen).

Chelisochella Verh. (Type: Lobophora superba Dohrn) Beschr., Bezeichnung unge-

eignet, da hierher die größten Arten der Familie ja der Dermapt. überhaupt

gehören. Burr (1) p. 131. — superba Dohrn (= Chelisoches doriae) p. 131

—132 $9 Fig. 89, 89a [Forceps] u. b (Tarsus) (Sikkim; Johore Mentawei,

Sumatra, Borneo).

Chelisoches Scudd. (= Lobophora Serv.) (Type: Forficula morio Fabr.) Beschr.

u. genauere Umgrenzung; hierher 6 Spp. die nur aus Indien bek. sind.

Burr (1) p. 134. morio Fabr. p. 135—136 Synonymie. Beschr. (Bengal,

Madras; Ceylon, Burma). Biolog. Angaben. — Ch. morio Fabr. von Hawaii,

Philippinen u. Californien u. Lower Siam. Rehn’s Type zu Oh. stratioticus

gehört hierher u. ist nur eine wohl entwickelte Rasse von morio. Burr hat

1 Stück von Java, 1 Stück von Travancore ist im Mus. Madrid. Burr, Proc.

U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 457—458.

Chelisochinae. Charakt. Burr (1) p. 129—130. Übersicht über die 9 Gatt.

Chelisochella Verh., Exypnus Burr., C'helisoches Seudd., Proreus Burr, Soleno-

soma Burr, Adiathetus Burr u. Hamazas Burr p. 130.

Cipex n. g. Anechurin. (Type: Forficula schwarzi Rehn = Sphingolabis

schwarzi Caudell, eine schöne Sp. von Cuba). Burr, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1760 p. 463. Oberflächlich wohl der wenig bekannten

Anechura elongata Bormans ähnlich. Tarsus Textfig. 8.

Cordax n. g. (Type: Forficula armata Haan. Pronot. lang u. schmal wie bei

Opisthocosmia, aber letztes Dorsalsgm. schmal u. abschüssig). Burr p. 185.

— armatus Haan p. 185—186 5 Fig. 66 (Burma: Metanja VIII. Karen-ni

Distrikt, 3000—3700° auch auf Borneo, Sumatra, Celebes u. Macassar).

Bemerk. zur Angabe de Bormans im Tierreich „ganz gelb“ p. 186. —

ceylonicus Motsch (schlank, zart) p. 186—187 $? Fig. 67 (Ceylon: Pun-

duluoya, Peradenyia, Maskeliya).

Cranopygia Burr. Beschr. Burr p. 61. — Verbreitung auf Ceylon. Übersicht

über die beiden folg. Spp.: (p- 62). — cuminghi Dohrn nebst Var. p. 62—63 5?

Fig. 14 u. 94 [farbig] (Ceylon: Punduluoya; Watawella). — nietneri Dohrn

p. 63 Fig. 15 (Ceylon: Peradeniya, Diyatalawa; Watawella).

Systematik. 319

Otenisolabis Verh. Charakt. Burr p. 109. — 3 Spp. gehören hierher; die Type

C. togoensis Verh. ist afrikan., Ct. nigra Scudd. in südamerik. u. Otr. nigra

fletcheri Scudd. indisch. — fletcheri n. sp. p. 110 2 fig. 79 (Ceylon: Madulsima).

Cylindrogaster diplatyoides Caudell = Sparatia pelvimetra Scudder var. rufina

Stäl. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 465.

Dendroiketes Burr (begründet auf ein Stück von Ceylon) Beschr. Burr (1) p. 36.

— corticinus Burr p. 36—37 Fig. 3 (Ceylon: Peradeniya).

Dicrana Burr. Charakt. Burr (1) p. 60. — kallipyga Dohrn. Synonym. Beschr.

p. 60—61 99. Leicht erkenntlich an dem stark erweiterten, mit Crista

versehenen letzt. Dorsalsgm. u. an dem aufwärts gekrümmten, gedrungenen

verbreiterten Forceps (Sikkim: Darjiling; Kodaikanal, Guynol, Nilgiri

Hills, Utakamand).

Dinez n. g. Opisthocosmiin. (für die Spp. O. americana Bormans u.

Sarcinathrix rehni Burr, beide neotropisch, vergl. Sarcinathrix). Burr, Proc.

U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 461. — americana von Guatemala,

Cacao, Tres Aguas, Alta Vera Paz $Q. — sp. von d. Philippinen, Mindoro,

Malabang u.sp. von Mindanao Marabini p. 462.

Diplatyinae (Antennen m. 15—25 Sgm., 5. zylindrisch, länger als breit;

kleine oder mittelgroße Formen, leicht zerbrechlich. Burr (1) p. 38. —

Gatt. Diplatys Serv.

Diplatys Serv. (= Dyscritina Westw. = Nannopygia Dohrn) Charakt. Sexual-

dimorphismus ete. Burr (1) p. 33—40. Möglicherweise gibts 2 verschiedene

Farbentypen bei ein u. derselb. Sp. — gerstaeckeri var. calidasa möglicher-

weise eine gelbe Var. der großen braunen D. siva. — Übersicht über die im

folg. zitierten Spp. (p. 40—41): gladiator Burr. Beschr., Larve p. 41—42

(Caleutta). — falcatus n. sp. (nähert sich der afrik. D. macrocephala) (schöne

Sp.) p. 42—43 Fig. 45% (Simla Hills, Kasauli, 6300°; Lower Burma, Dawna

Hills, 2000—3000‘ III. 08). — Vielleicht hat de Bormans diese Sp. in seiner

D. macrocephala von Burma eingeschlossen. — lefroyi n.sp. (verw. mit

D. falcatus) p. 443 Fig.5 (S. Bombay, Belgaum, 2000‘, IV. 08; Travan-

core: Ostseite d. West - Ghats, Grenze von Madras, Shencottah). —

angustatus n. sp. (vorig. nahest.) p. 44—45 5 (N. Bengal: Purneah Distriet

Bhogaon). — bormansi n. sp. (= macrocephala Borm. [nec Beauv.] =

D.nigricepe Burr = D.bormansi Kirby nom. nud.) ähnelt oberflächlich

greeni) p. 45—46 Fig. 91, 91a [farbig] (Burma: Bhamo, April u. Aug., Karen-

ni, Keba Distriet, 3000—3700'). Wurde von de Bormans mit D. liberatus

Burr unter macrocephala (eine sehr gut unterscheidb. afrikan. Sp.) gestellt

u. von Burr mit D. nigriceps u. D. greeni verwechselt. — D. gerstaeckeri

Dohrn (= Discrytina longisetosa Westw. = Diplatys long. Burr.) Beschr.

p. 46—48 Fig.7 (Burma: Karen-ni, Keba Distriet, 3000—3700 '; Ceylon:

Punduluoya; Maskeliya). — gerstaeckeri var. calidasa Burr (ob eine gelbe

Var. von D.sina) p.48 (Darjiling, Assam: Kurseong). — ernesti n. sp.

(ähnelt D.greeni u. bormansi) p. 48—49 5% Fig. 9 (Ceylon: Peradenyia,

Madulsima). — siva Burr Beschr. p. 49—50 (Sikkim: Darjiling; Assam:

Kurseong (?Nymphe); Vereinigte Provinzen: Kumaun, Bhim-Tal, auf

Blüten einer Brennnessel). Ist eine der größten Spp. der Gatt. — greeni

Burr p.50—51 3 (Ceylon: Punduluoya, Peradeniya) wurde früher mit

D. bormansi verwechselt). — D. Greeni trägt in der Regel keine weiße

320 Insecta, Euplecoptera für 1910.

Zeichnung, die bei D. bormansi regelmäßig vorhanden ist. — rufescens Kirby

(ungerechterweise für synonym mit D. gerstaeckeri gehalten) p. 513 Fig. 75

(Sikkim: Darjiling). — fletcheri n. sp. (auf den ersten Blick ein. D. bormansi

oder D. greeni ähnlich) p. 52 Fig. 8 (Ceylon: Madulsima). — liberatus n. sp.

(ähnelt D. nigriceps. Von de Bormans mit gerst. von Ceylon verwechselt)

p- 52—53 Fig. 90, 90a [farbig] (Burma: Karen-ni, Keba Distriet, 3000

—3700°, V— VIII). — D. jansoni Kirby von Cacao, Trece Aguas, Alta Vera

Paz, Guatemala u. severa Bormans von ebendaher. Burr, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 444.

Doru lineare Eschscholtz Fundorte in Mexico, Guatemala, San Salvador, Para

guay, Brasil., Venezuela, Texas, Arizona u. Cuba. Nach Burr, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38. No. 1760. p. 464 sind Synonyme dazu taeniata, luteipes,

aculeata, californica [eine Var.], gracilis u. saturalis; exilis ist vielleicht eine

besondere Sp. Der Entwicklungsgrad der Flügel, das Vorhandensein oder

Fehlen eines Zahnes am Forceps, die Intensität der Färbung, die Breite der

Bänder auf den Elytren, sind Charaktere, die nach Burr nicht als spezifisch

ausschlaggebend anzusehen sind. p. 464. — albipes Fabr. von Santo Domingo

San Franeisco Mts. p. 464. — albipes Fabr. u. bimaculata Fabr. sind vielleicht

identisch.

Echinopsalis guttata von Paraiso, Canal-Zone u. Guatemala, Cacao Trece Agua,

Alta Vera Paz; von Caudell 1907 als Psalis aufgeführt. Burr, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 445—446. — E. brevibractea Rehn = ? Pyragra

fuscata Serv., Larve. Burr, t. c. p. 465.

Echinosoma Serv. Charakt. Verbreit. (Asien, Afrika, Papua). Burr (1) p. 70.

— 14 Spp. aus den Tropen der alten Welt. In Indien finden sich 2 Spp-

Unterschiede ders. p. 70: sumatranum Haan (= E. westermanni Dohrn)

p. 70—71 Fig. 17 (Bhutan, Sikkim, Assam, Burma, Ceylon). — Varr. in

der Coll. Burr: I. Allgemein lichtbraun (Java) bis ganz schwarz (Annam).

II. Labrum schwarz (Tonkin, Java, etc.) oder gelb (Annam, Tonkin, Java).

III. Pronotum gleichmäßig blaßgelb (Java) oder mehr schwarz mit gelber

Zeichnung seitlich u. am Hinterrande. IV. Elytren lichtbraun oder tief-

schwarz (gewöhnlich) oder mit einem kleinen nicht vollkommen deutlichen

roten Fleck auf dem Diskus nahe der Naht. V. Flgl. abgestutzt, schwach

entwickelt oder vorstehend. VI. Der braune Ring an den Femoren schwach

oder fehlend, besonders am vorderen Beinpaar: Es finden sich fast alle

möglichen Übergänge zwischen diesen Varr. Daher ist auch E. westermanni

Dohrn (Labr. gelb, Flgl. kurz, Femora nicht geringelt) nur ein Synon. —

parvulum Dohrn p. 72—73 (Ceylon, Peradeniya). — E. wahlbergi Dohrn

v. Liberia, Mount Coffee 9. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760

p. 446. — E. bolivari var. Burr, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 124. —

E. distanti n.sp. Burr, Insect. transvaal. vol. 1 p. 252 (Transvaal).

Echinosomatidae (charakt. durch die dichte steife Behaarung u. Be-

borstung). Burr (1) p. 69. — Gatt.: Echinosoma Serv.

Elaunon Burr (Type: Sphingolabis bipartita Kirby) Burr (1) p- 163. — bipartitus

Kirby p. 163—164 $2 Fig. 53 u. 102 farb. (Vereinigte Provinzen: Mussoorie

Madras, Bangalore, Ceylon: Punduluoya u. Ambegammoa; auch Annam.

macrolabia Form mit sehr langem Forceps zahlr. als die cyclolabia-Form.

Systematik. 321

— erythrocephala Olivier von Liberia, Mt. Coffee u. Congo, Bu Burr,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 464.

Emboros Burr. Charakt. Burr (1) p. 180. — dubius Borm. p. 180—181 $ (Burma:

Karen-ni, Geku Distr., 4300—4700°). Vergleich des $ von Diego-Suarez.

Eparchus Burr (Type: Forficula insignis Haan). Charakt. Burr (1) p. 190—191.

— Übersicht über die folg. 3 Spp.: (p. 191): dux Borm. p. 191—192 3

(Burma: Karen-Distrikt, 3000—3700,; Karen-ni, Geku Distrikt, 4000

—4900°). — insignis Haan p. 192—193 $P Fig. 99 farbig. insignis Haan

var. (Madras: Trichinopoli; Burma: Kachin Hills, VIII/XI; Karen-ni, Keba

Distrikt 3000-4300’, Geku Distrikt 4300—5000°; auch auf Java, Borneo,

Sumatra u. Celebes). — tenellus Haan p. 193—194 32 Fig. 100 farbig

(Burma: Bhamo VI; auch Java, Sumatra, Borneo u. Celebes).

Erotesis n. g. (Type: Spongiphora sphinz Burr von Sarawak). Burr (1) p. 114.

— decipiens Kirby p. 1145 (Assam).

Euborellia Burr nom. nov. für Borellia Burr praeoccupiert. Burr, Trans. Entom.

Soc. London 1910 p. 179, desgl. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1760 p. 448. Scheint von der oriental. B. stäli Dohrn kaum verschieden

zu sein p. 449.

Eudohrnia Burr (Type: Forficula metallica Dohrn) Burr (1) p. 178. Basalsgm.

d. Antenne Fig. 14. — metallica Dohrn p. 178—179 (Zahlr. Fundorte in

Bombay, in d. Vereinigten Provinz., in Nepal, Sikkim, Assam, Burma,

Tenasserim). — Syntypen in Berlin u. in der Coll. Dohrn.

Exypmus Burr (Type: C'helisoches pulchripennis Borm.) Charakt. Burr (I) p. 132

—133 [Monotyp]. — pulchripennis Borm. p. 133—134 $9 Fig. 84 (Burma:

Senmyinggyan, Il; Karen-ni, Keba Distriet, 3000-—-4300°; Tenasserim:

Thagata, IV, Sarawak, Neu Guinea).

Forcipula Bol. Charakt. Burr (1) p.91. In tropischen Teilen Afrikas u. Amerikas,

doch erreicht sie ihre höchste Entwicklung in der orientalischen Region.

Übersicht über die im folg. behandelten 5 Spp. (p. 91): decolyi Borm. p. 91

—92 Fig. 25 (Assam: Sibsagar, Kurseong, 5000’; Nepal: Soondrijal; Neu-

Guinea). — trispinosa Dohrn p. 92—93 Fig. 26 (Sikkim; Nepal; Vereinigte

Provinzen; Bengal). — trispinosa var. minor n. p. 93 Nepal: Soondrijal;

Vereinigte Provinzen: Kumaun; Bhim Tal). — pugnax Kirby (nahe verw.

mit trispinosa) p. 93 3 Fig. 27 (Punjah: Kangra Valley; Bhutan: Maria Basti;

Assam: Kurseong; Burma: Rangoon, V—VII). — quadrispinosa Dohrn

p-. 94 Fig. 28 (Sikkim, Bhutan, Bengal, Madras, Ceylon, Burma). — lurida

(Bol.) (ähnelt typ. quadrispinosa) p. 94—95 Fig. 29 u. 92 (letzt. farbig). (Ma-

dras: Trichinopoli). Kirby erhebt diese Sp. wohl mit Recht zur Art.

Forficula Linn. (Type: F. auricularia Linn.). Charakt. Burr (1) p. 164. Große

homogene Gruppe mit ca. 40 Arten in Eur., Afr. u. Asien. Übersicht über

die folg. 11 indische Spp. ($$): schlagintweiti Burr p. 166—167 52 Fig. 54

(gleichmäßig intensive dunkle Färbung. Sikkim: Darjiling; Tibet: Lahol).

— mogul Burr (ähnelt ruficollis) p. 167 $2 Fig. 55 (Sikkim: Darjiling). —

beelzebub Burr p. 167—168 $2 Fig. 56 (Nepal: Chitlong u. Katmandu, Na-

gorkote; Sikkim: Darjiling; Assam: Kurseong) (gleichmäßig rötl. schwarz).

— aceris Burr. p. 168—169 $ Fig. 57 (Sikkim: Mungphu, Darjiling; Ver-

einigte Provinzen: Mussourie). — ornata Bormans p. 169—170 $2 (Madras:

Trichinopoli; Burmah: Kachin Hills, VIII/XI. Tenasserim: Mt. Mulaiyit

Archiv u ann 91

Dyaak 2

322 Inseeta. Euplecoptera für 1910.

6000—-6300'; auch Sumatra, Tonkin). — greeni Burr p. 170 — 171382

(Ceylon: Punduluoya u. Ambegammoa, Talawakelle). — ambigua Burr

p. 171392 Fig.58 (Sikkim, Darjiling). — lucasi Dohrn p. 17232 Fig. 59

Tarsus, Textfig. 13 (Burma: Teinzo, V; Persien; Syrien, Arabien; Egypten

u. Sahara). — celeris Burr p. 172—173 32 Fig. 60 (Assam: Khasia Hills).

— interrogans Burr p. 173-174 Fig. 61 (Sikkim: Darjiling. — Ähnelt F. auri-

cularia in d. Färb., doch unterscheid. sie sich durch ihre Struktur u. geringere

Größe). — planicollis Kirby p. 174 39 (Bhutan: Maria Basti; Sikkim: San-

dakhu 11900’, Darjiling 6000‘, Vereinigt. Provinzen: Bhim Tal; Kumaun

4500 °). — F.auricularia L. Nahrung. Collinge, Journ. econ. Biol. vol. 5

p- 68. — L.aurie. in der Gefangenschaft. Meissner, Entom. Rundschau

Jhg. 27 p. 74—78. — F.aur. hütete unter einem Steine verborgen die in

einer kleinen Höhlung liegenden Jungen. Sharp, The Entomologist vol. 43

p. 250; Brutfürsorge. Chapman, t. c. p. 291—292. — F.aur. L. von Kia-

thane, europ. Türkei. Ebner, Richard, Zool. Jahrb. Abt. f. System. Bd. 29

p. 413. — F.aur. Kosmopolit. Fundorte im Mus. Nat. U. States: Tas-

manien; Deutschl., Norwegen, Azoren etc. Burt, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1760 p. 465. — decipiens Gene. Burr, t. c. p. 465 (Ital.; Europ.)

„aus dem Neste einer brown tail moth.‘“ p. 465. — sp. von Peru, Piches u.

Perenetal, 2—3000'. — F. Lesnei zahlreich an Eichen etc. im Sept. u. Okt.

Diverse Fundorte in Frankreich, die die Angaben von Lesne ergänzen u.

somit den Nachweis liefern, daß die Art in der ganzen litoralen Zone des

Ozeans verbreitet ist. Lesne, Bull. Soc. Entom. France 1909 p. 333. —

T. mikado (= Apterygida longipyga M. u. S.). Burr, Entom. Record vol. 22.

‚p: 136. — F.tomis bei Nijni-Novgorod. [Russisch]. Shugorov, M&m. Soc.

nat. Odessa vol. 34 p. 117 (Odessa). — F.? pulchripes Borm. Stellung

ungewiß. Burr (1) p. 204—205 2 (Burma: Karen-ni, Keba Distrikt, 3000

—3700%, V—XIH). — F. (?) eingalensis Dohrn. Beschr. p. 205—206 ?

(Ceylon, Mus. Berol.).

Forficwlidae. Übersicht über die Chelisochinae, Anechurinae, Forficulinae

u. Opisthocosmiinae. Burr (1) p. 129.

Forficulinae. Charakt. Burr (1) p. 162. — 2 Gatt. Zlaunon Burr (Abdom.

d. & fast parallelseitig; Forceps beim & nicht erweitert oder an d. Basis

deprimiert) u. Forficula (Gegensätze zur Charakt. d. 1. Gatt.).

Gonolabidura n. g. (Labidura nahest.) Zacher, Entom. Rundschau Jhg. 27 p. 30.

— volzi n.sp. p. 70 (Sumatra).

Gonolabis Burr. Charakt. Verbr. Burr (1) p. 79. — electa n. sp. (verw. mit @. ja-

vana Borm. u. @. sumatrana Borm. Abdomen jedoch apikal stark erweitert)

p: 79—80 Fig. 21 (Ceylon: Peradeniya; Java). — @. oblita n. sp. Burr, Trans.

Entom. Soc. London, 1910 p. 172 pl. XLVI fig. 12 (Java).

Hamaxas Burr (Type: Chelisoches feae Borm.) Charakt. Verbr. Burr (1) p. 147

— 148. — 1 indische Sp. feae Borm. p. 148 592 Fig. 88 (Burma: Karen-ni,

Keba Distr., 3000—3700'; Neu Guinea, Neu Seeland, Mentawei-Insel).

Homotages Burr (Type: Anechura feae Borm.) Burr (1) p. 155—156. — feae Bor-

mans p. 156—157 $2 Fig. 101 farbig (Sikkim; Nepal; Vereinigte Provinzen:

Kumaun, Naini-Tal, 6400°; Tenasserim). Variation dieser Form p. 157.

Hypurgus Burr (Type: Opisthocosmia humeralis Kirby) Burr (1) p. 187—188. —

Übersicht über die folg. beiden Spp.: (p. 188): kumeralis Kirby p. 188—189

Systematik. 323

Fig. 68 (Ceylon: Kandy, X; Burma: Palon, VIII—IX). — simplex Borm.

p. 189—190 $? (Burma, Madras, Ceylon; Mentawei).

Idolopsalis n. g. Borelli, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 156. — riveti n. sp.

p- 157.

Kalocrania n. g. (Type: M. marmoricrura Sv.) Zacher, Entom. Rundschau Jhg. 27.

p. 105.

Karschiella camerunensis Verhoeff. Das Stück wird von Rehn 1905 als Bor-

mansia meridionalis Burr zitiert. Das fragliche Stück ist immatur u. mög-

licherweise auch zu K. neavei Burr zu ziehen. Burr, Proc. U. States Nat.

vol. 38 No. 1760 p. 444.

Kosmetor Burr. Charakt. (Type: N. annandalei Burr.) Burr (1) p. 200—201

(Orient-Region). Übersicht über die folg. 3 Spp. (p. 201): teimora Burr

p. 201—202 Fig. 73 $ (Sikkim: Darjiling. — dbrahma Burr p. 202 5

(Sikkim: Darjiling; Bhutan: Maria Basti). — vishnu Burr p. 202—203 $?

Fig. 74 (Sikkim: Darjiling).

Labia Leach (= Copiscelis Fieb. — Type: Forficula minor Linn.) Beschr. Burr (1)

p. 115. Ungefähr 50 Spp. aus allen Teilen der Welt. Viele sind ungenügend

beschrieben, daher nicht zu erkennen. Übersicht über die folg. im indischen

Gebiete vorkommenden 8 Spp. (Schlüssel u. Ergänzungsschlüssel p. 116):

nigrella Dubr. (klein) p. 11732 Fig. 81 (Burma, diverse Fundorte, Java).

— luzonica Dohrn p. 117—118 $P (Burma, Bhamo; Borneo, Philippinen).

— curvicauda Motschulsky Synon. Beschr. p. 118—119 92 Fig. 38 Antenne

Textfig. 9 (Ceylon ete.). — mucronata Stäl p. 119—120 32 Fig. 39 (Ceylon,

Burma, Tenasserim). — pilicornis Motsch p. 120—121 52 Fig. 40 (Ceylon,

Peradenyia). — ridens Borm. p. 121—122 $? Fig. 42. — ridens var. macro-

labia n. p. 121. — var. cyclolabia Borm. (Burma: Rangoon, Karen-ni, Keba

Distriet, 3000—3700'). — pygidiata Dubr. p. 122—123 Tarsus Textfig. 8

Fig. 41 (Burma, Karen-ni, Keba District, 3000—3700 ‘; Java: Oahu, Hawaii;

— arachidis Yersin. Synon., Beschr. p. 123—124 Fig. 82 (Bengal etc.)

ist Kosmopolit. Lebt in Scharen). — Burr bespricht in d. Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 451 Labia Silvestrii. Verh. von Paraguay,

Bertoni 2 Syntype von Borelli. Vergleich mit L. paramayensis Caudell.

— unidentata Pal. de Beauv. ursprünglich von Santo Domingo beschr.,

durch Bolivar auch von Cuba bekannt. Z. burgessi Scudder von Texas

scheint damit identisch zu sein. Verf. gibt noch eine Reihe von Fundorten

an u. findet, daß alle braunen nearktischen Labia als eine einzige variable

Species zu betrachten sind. Die älteste Bezeichnung ist L. unidentata Pal.

de Beauv. u. Synonyme dazu sind: pulchella Serv., L. guttata Scud., burgessi

Scudd. u. melancholica Scudd. Fundorte u. eventuelle Bezeichnungen der

Stücke p. 451—453. — bilineata Scudder, arachidis Yersin Fundorte p. 453.

— annulata Fabr. Synon. (= ? Forficula dorsalis Burm. — Labia chalybea

Dohrn 1864 = Labia arcuata Scudder 1876 = L. flaviscuta Rehn 1903).

Bemerk. dazu p. 453—455. Aus den Betrachtungen ergibt sich, daß wir

eine sehr unsichere Linie annehmen müssen, die die typische arcuata Form

von d. typisch. chalybaea-Form trennt. Beide gehen unmerklich in einander

über, gerade so wie die verschiedenen Rassen von L.riparia. Fundorte in

Mexiko u. Guatemala p. 455. — paraguayensis Caudell, gute Sp., die in die-

selbe Gruppe gehört wie L. arachidis Yersin, u. L. silvestrii Borelli u. die

21*

324 Insecta. Euplecoptera für 1910.

durch die birn- oder keulenförmigen Glieder der Antennen charakterisiert

ist. Fig. 1 Antenne u. Forceps. — maekelini Dohrn (von Santo Domingo,

S. Franc. Mts.) p. 455—456. — mexicana Bormans von Dominica,

breviforceps (luzonica sehr nahest.), trinitatis Bruner scheint mit

L. chalybaea verwandt zu sein, rotundata Scudder von Orizaba,

schwarzi Caudell, von Guatemala, vorletztes Ventralsgm. quadratisch p. 456.

— minor Linnaeus von Bacor, Philippinen, auricoma Rehn von Costa Rica

(wahrscheinlich verwandt mit rotundata, nigroflavida Rehn von Queens-

land, Cairns, sehr gut charakterisierte Sp.) p. 456. — L. minor L. bei Pera,

europäische Türkei. Ebner, Zool. Jahrb. Abt. f. System. Bd.29 p. 413.

— L. fryeri n. sp. Burr, Trans. Linn. Soc. vol. 14 p. 129 (Seychellen).

Labidura Leach (Type: Forficula riparia Pall.) Charakt. Burr (1) p. 95. Kosmo-

polit. Die Gatt. enthält mehrere Spp., aber infolge der großen Variations-

fähigkeit, hat sich die Zahl der Artnamen stark vermehrt. Die Gattung

zerfällt in2 Gruppen, die eine mit d. größeren Spp. riparia Pall. u. bengalensis

Dohrn, die andere mit den kleineren Spp. lividipes Duf., tenuicornis Borm.

u. nepalensis Burr. — Zu beachten ist, daß das Vorhandensein u. Fehlen

von Flügeln oder der Grad ihrer Entwicklung oder ihre Verkürzung als

systematischer Charakter keinen Wert haben. — Übers. über die folg. 4 Spp.

(p- 96): Z. nepalensis Burr p. 96—97 $? (gehört zur Gruppe L. lividipes u.

L. tenuicornis. Forceps flach, verbreitert. Zwei ihr sehr ähnliche Spp.

kommen im Bernstein vor) (Nepal, Soondrijal; Pharping). — lividipes Dufour

(= Labia dufourii Scudd. = Forficesila meridionalis Serv. = Forficula

pallipes Dufour (nec Fabr.) = Labidura pallipes Dohrn = Forficesila vicina

Lucas) p. 97 Fig. 31 (zahlr. Fundorte in Bengal, Bombay, Madras, Ceylon

u. Burma). — bengalensis Dohrn p. 98 Fig. 32 (Bengal: Caleutta, Berhampur,

Chandpur, District of Tipperah, Ceylon: Galle, Watawella u. Butiwa). —

riparia L. Symonymie sehr umfangr. Burr gibt p. 99 die wichtigste, die

besonders die indische Fauna betrifft. Beschreib. p. 99—100 3%, Fig. 33,

34 (Sind, Vereinigte Provinzen; Sikkim; Bengal, Mysore, Madras, Ceylon,

Burma. Zahlr. Fundorte daselbst). — riparia var. inermis Bruner p. 100

(Bengal: Calcutta, Berhampur, Purneah Distrikt, Pusa; Ceylon: Ham-

hantota [sehr dunkle Form]). — Diese kosmopolische Art ist außerordentlich

plastisch, wie die zahlreiche Synonyme andeuten. Die Hauptpunkte der

Variation beruhen (p. 100—101): I. auf der Größe [Santarem, Amazonas,

5l mm]; II. auf Intensität der Färbung. Die typische Form ist die blasse

paläarktische von Pallas, lebend ist sie fast weiß, nach dem Tode schmutzig

gelbbraun. Exemplare aus Japan, Rußland u. Philippinen fast schwarz,

australische einfarbig blaß gelbbraun; III. auf der Kopffärbung (blaßgelb

bis schwarz; IV. auf der Färbung des Pronotums (gelbbraun bis schwarz,

oft mit blassem Rande oder rötlichen Medianstreifen); V. auf der Struktur

der Elytren (ganz glatt bis lederartig granuliert); VI. auf dem Verlauf des

Kieles (kaum über die Schultern hinaus oder bis zum Hinterrande der

Elytren); VII. auf der Färbung der Elytren (blaßgelb bis schwarz, in

letzterem Falle mit rötl. oder braunem Bande); VIII. auf der Flügelent-

wicklung (vorragend, abgestutzt ete.); IX. auf der Flügelfärbung (rotbraun,

blaßgelb oder gelbbraun mit schwarz. Fleck); X. auf der Abdom.-Färbung

(gelbbraun mit undeutlich dorsalen Streifen, oder dunkel kastanienbraun

Systematik. 325

mit oder ohne Dorsalstreifen, oder einfarbig dunkel, schwarz); XI. auf der

Bewaffnung des letzten Abd.-Sgmts. Im allgemein. 2 kurze scharfe Dornen,

zuweilen einer, often fehlen sie; XII. auf der Bewaffnung des Forceps.

&: Starker Zahn in der Mitte oder an der Spitze, der fehlen kann; 9, die basale

Bezahnung varieert in der Stärke u. fehlt oft fast gänzlich. Bemerk. zu den

Formen truncata, icterica, inermis p. 101—102. — L.riparia Pall. Sehr

auffallend gezeichnetes Stück von Shkodra. Es entspricht der subsp. riparia

(Pall.); Ebner, Richard, Zool. Jahrb. Abt. f. System. Bd.29 p. 406. —

Exemplare (Larven) von Kilia am Schwarzen Meer, Sanddüne p. 407. —

L. riparia var. jordana n. Naväs, Bol. Soc. Arag. 1910 p. 248 (Jordan). —

L.riparia Pal. de Beauv. Fundgebiete in Asien, Europa, Afrika, Amerika.

Burr, Proc. U. St. Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 449. — L. mongolica Rehn

ist synonym dazu, oberflächlich nicht verschieden von der typischen Z. ri-

paria; die Art dunkelt nach dem Absterben schnell nach. — lividipes Dufour

von der Bay Lagune, Bacor u. Balinag, Philippinen p. 449.

Labiduridae. Revision der Fam. Burr, Trans. Entom. Soc. London 1910

p. 161—203 pls. XLVI u. XLVII. — L. Charakt. (speziell durch die Gestalt

des Pygidiums). Burr (1) p. 67. — Übersicht über die 6 Subfam. 1. Körper

stark deprimiert u. abgeflacht. 1. Palicinae. —1. 1. Körper nicht stark

abgeflacht. — 2. Metasternum mit ausgebuchtetem Hinterrande (Körper

mit Borsten bedeckt. 2. Echinosomatinae. — 2. 2. Metasternum

mit abgestutztem Hinterrande. — 3. Mesosternum hinten abgerundet.

3. Psalinae. — 3. 3. Mesosternum hinten abgestutzt. — 4. Antennen

mit wenigstens 25 Sgm. ZElytren wohl entwickelt: 4. Labiduridae.

— 4. 4. Antennen mit nicht mehr als 15 Sgm.; flügellose Formen. —

5. Letztes Dorsalsgm. abgestutzt: 5. Parisolabinae. — 5. 5. Letzt.

Dorsalsgm. hinten ausgerandet, zweilappig: 6. Brachylabinae.

Labidurinae (typische Gruppe der Labiduridae; Kosmopoliten). Charakt.

Burr (1) p. 90. Sternalplatten Fig. 6 v. Z. riparia, L. Fühler Fig.7. —

2 Gatt.: Seiten des Abdomen mit Dornen, Haken etc., die an Zahl variieren

können: Forcipula Bol. — Seiten des Abdomen glatt: Zabidura Leach.

Labidurodes Dubr. mit robustus Dubr. Burr (1) p. 78—79 (? Lower Burma:

Tavoy). — magnificus Rehn = Allostethus indicum (Hagenbach). Burr,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1768 p. 465.

Labiidae. Charakt. Burr (1) p. 110. Sehr revisionsbedürftige Familie. Nur

eine Subfam. Zabiinae kommt in Indien vor; es werden sich auch wohl

noch Vertreter der Nesogastrinae finden.

Labiinae. Übers. über die fünf Gatt.: Spongiphora Serv., Erotesis n. g., Labia

Leach, Platylabia Dohrn u. Sphingolabis Borm. Burr (1) p. 111.

Leptisolabis Howardi n. sp. (ist das von Caudell als B. nigra bezeichnete Original-

stück. Die echte B. nigra ist eine Otenisolabis mit gestieltem Mesonotum)

Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 449—4514 (Guatemala:

Provincia de Alta Vera Paz, Trece Aguas, Cacao).

Liparura Burr (Type: L. punctata Burr). Beschr. Burr (1) p. 181—182. —

punctata n. sp. p. 182—183 Fig. 64 (Sikkim: Darjiling).

Lipodes Burr. Charakt. Burr (1) p. 203 (monotyp. Gatt. — Verwandtschaft

noch unklar. — vivax Burr p. 204 Geschlecht? (Indien: Dikrang Valley,

Nanangs).

326 Insecta. Euplecoptera für 1910.

Metisolabis n. g. Charakt. Burr (I) p. 106 aus Indien und Madagaskar

p. 108. — Übersicht über die folg. beiden Spp.: bifoveolata Bol. p. 108—109

—110 (S. Indien: Trichinopoli). — caudelli Burr p. 10932 (Burma: Teinzo,

V, Prome, XII; Meetan, IV. Karen-ni, Keba-Distr., 3000—3700 ', V.—XIL;

Pegu, Palon, VIIL.—IX.). — Anscheinend in Indien sehr häufig.

Nala n.g. (Type: Labidura lividipes Luc.) Zacher, Entom. Rundschau Jhg. 27

p- 30.

Nannisolabis n.g. (= Brachylabis u. Leptisolabis [partim], Burr, olim) (Type:

N. willeyi Burr) Ceylon. Burr p. 106. — philetas Burr (1) p. 106—107 $2

in cop. (Ceylon, Punduluoya). — willeyi n. sp. p. 107 52 (Ceylon: Patipola,

Hakgala). — N. holdhausi n.sp. Burr, Trans. Entom. Soc. London 1910

p- 195 pl. XLVII fig. 17 (Queensland).

Nannopygia picta n.sp. Zacher, Entom. Rundschau Jhg. 27 p. 105 (Ostafrika).

Neolobophora Scudder ruficeps Bormans von Mexiko, Guatemala u. Costa Rica.

Fundorte daselbst. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 458

—459.

Obelura Burr (Type: Neolobophora tamul Burr) Burr (1) p. 183. — Übersicht

über die folg. beiden Spp. (p. 183): asiatica Borm. p. 183—184 (S. Madras:

Kodaikanal). — tamul Burr p. 184 Fig. 65 3 (Nuwara Eliya).

Odontopsalis lewisi Burr in den „Sweepings“ von St. John’s Market, Liverpool.

Lucas, The Entomologist, vol. 43 p. 129—130. Beschreib. nach Burr. Die

Sp. steht harmandi sehr nahe.

Opisthocosmiinae von Verhoeff aufgestellt für Opisthocosmia u. Cosmiella,

wurde 1907 von ihm umgestaltet, doch nicht genügend klargestellt. Es

empfiehlt sich, in diese Subfam. die Gatt. aufzunehmen, deren Abd. kaum

oder überhaupt nicht degeneriert, also im Querschnitt kreisförmig ist. Es

gehören also hierher die Subfam. Eparchinae, Neolobophorinae, Skendylinae

u. Eudohrninae. Sie sondern sich in zwei Gruppen: 5 Gattungen tragen

einen deutlichen Kiel auf der Costalfalte der Elytren, 11 Gattungen weisen

keinen derartigen Kiel auf. Letztere sondern sich in solche Formen mit

breitem Pronotum [a) mit langem, b) mit kurzem 1. Tarsalglied] u. schmalem

Pronotum. Cordax ceylonicus, Obelura (2 Spp.), Syntonus (1 Sp.) u. Sondaz

(1 Sp.) bilden eine Sondergruppe. Burr (1) p. 175. — Übersicht über die

Gatt. Sondax, Eudohrnia, Emboros, Liparura, Obelura, Cordax, Hypurgus,

Eparchus, Timomenus, Syntonus u. Kosmetor p. 176.

Osteuleus Kervillei Burr von Venezuela, Merida. Burr, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1760 p. 460.

Palex n.g. (im allgemeinen Habitus u. in der starken Abplattung Sparattinen-

ähnlich, daher früher als Platylabia beschrieben. In der Gestalt der An-

tennen u. in der Gestalt der Tarsen der Gatt. Mecomera nahest., aber die

Gestalt des Pygid., welches angepreßt u. mit dem letzt. Dorsalsegm. ver-

schmolzen ist, zeigt ihre Zugehörigkeit zu den Labidurida) Burr (1) p. 68.

— sparattoides Bormans p. 68—69 32 Fig. 77 (Burma: Karen-ni, Kebadistrikt,

3000—3700 ‘, V.—VII.; Pulo-Penang; Sumatra; Java; Annam).

Palicinae nov.subfam. Charakt. Burr (1) p. 67—68. — 1'Gatt. Palex n.g.

Paradiplatys subg. nov. (Type: Diplatys conradti Burr) Zacher, Entom. Rund-

schau Jhg. 27 p. 105.

Systematik. 3237

Paralabidura n.g. (Type: L. lividipes Duf.) Burr, Trans. Entom. Soc. London

1910 p. 184.

Parisolabinae. Charakt. Burr (1) p. 102. — 2 Gatt.: Parisolabis Verh.

(1 neuseeländ. Spp.) u. Pseudisolabis (2 indische, 1 neuseeländ. Form).

Picrania Burr (Type: Forficesila liturata Stäl) Beschr. Burr (1) p. 63—64. —

angustata Dohrn Beschr. p. 64 $ 2 (Ceylon).

Pilex n.g. Opisthocosmiin. (Elytren nicht gekielt, Pronotum breit.

Das kurze dritte Tarsensegment verbindet diese Gatt. mit Zparchus, Hypurgus

u. Skalistes, doch der komprimierte Körper u. das quere letzte Dorsalsgm.

unterscheidet sie davon) Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760

p. 460. — Type: bogotensis Rehn p. 460 Hinterbeine Textfig. 4 (Colombia:

Bogota).

Platylabia Dohrn (= Labidophora Scudd. Verw. mit Zabia) Beschr. Burr (1)

p. 124—125. Revisionsbedürftig; Übersicht über die vier folg. Spp.: major

Dohrn. Syn. Beschr. p. 125 (Burma: Karen-ni, Kebadistrikt, 3000—3700 ‘;

Ceylon). — gestroi Dubr. p. 125 $ 2 (Burma; Bhamo; Tenasserim: Thagatä).

— thoracica Dohrn p. 126—127 3 2 Fig. 83 (Ceylon: Punduluoya u. Pera-

deniya; Burma: Teinzö, Tenasserim: Kokarit, Penang, Sumatra, Aru-Ins.,

Celebes). — nigriceps Kirby p. 127 $ 2 Fig. 43 (Burma: Karen-ni, Keba-

distrikt, 3000—3700 ‘).

Praos perditus Borelli von Costa Rica, Volcano Irazu. Burr, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 459.

Propyragra n.g. (Type: Pyragra paraguayensis Bor.) Burr, Trans. Entom. Soc.

London 1910 p. 166.

Proreus Burr (nahe verw. mit Chelisoches. Type: Forficvla simulans Stäl) Burr (1)

— p. 136. Übersicht über die folg. drei Spp.: simulans Stäl p. 137—138

Fig.85 $ 2 (Bombay: Pusa; Bengal; Burma). — melanocephalus Dohrn

nebst var. p. 138—139 3 2 (Tranquebar, Bombay, Bengal, Sikkim, Obor,

Assam, Burma). — ritsemae Bormans p. 139—140 $ 2 (Burma: Karen-ni,

Keba Distrikt, 3000—3700 ‘). — fuscipennis Haan von Borneo u. Sumatra

ist nahe verw. u. vielleicht nur eine Rasse oder Var., jedoch der Forceps ist

schwächer, der Kopf rot u. die Antennen haben einen blassen Ring.

— P. minor Caudell von d. Philippinen. In der Form d. Kopfes ähnelt die

Art d. P. sobrius Bormans, unterscheidet sich aber durch die geringere

Grösse, sie ist auch schlanker u. das Pronotum nicht quer. In der Struktur

des Kopfes P. ludekingi ähnlich, doch Pronot. kürzer u. die Elytren nicht

gebändert. Die Färbung unterscheidet sie von laetior u. P. variopictus Borm.

Burr, Proc. U. St. Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 458 Fig. 2 Kopf u. Antennen.

Psalinae. Charakt. Vorherrschende Gatt. Anisolabis; Psalis ist jedoch älter

u. daher Type der Subfam. Burr (1) p. 73—74. — Übersicht über die 5 Gatt.

(p- 74): 1. Elytren wohl entwickelt (Abd. parallelseitig). — 2. Antennen mit

22 Segm., Abd.-Seiten ohne Drüsenfalten: Psalis Serv. — 2. 2. Antennen mit

20—30 Sgm. ; Abd.-Seiten m. Drüsenfalten : Zabidurodes Dbr. — 1. 1. Flügellose

Formen; Elytren fehlend oder rudimentär. — 2. Abdomen von der Basis

bis zur Spitze verbreitert (Elytren fehlend): Gonolabis Burr. — 2. 2. Ab-

domen fast parallelseitig, oder in der Mitte leicht verbreitert: 3. Elytren

fehlend: Anisolabis Fieb. — 3. 3. Elytren rudimentär; Borellia Burr.

328 Insecta. Euplecoptera für 1910.

Psalis Serv. (=Carcinophora Scudd.) (Type: Forficula americana Pal.-Beauv.)

Burr (1) p. 74—75. — Übersicht über die folg. 4 Spp.: femoralis 'Dohrn

p. 75—76 Fig. 18 (Fundorte in Burma, Tenasserim, Tonkin, Ceylon). —

dohrni Kirby Fig. 9 (Fundorte auf Ceylon u. in Travancore). — castetsi Borm.

(nach de Borm. von der vorig. Sp. verschieden durch die axillare Aushöhlung

der Elytren, die so ein kleines Skutellum hervorheben). — lefroyi n. sp.

p- 77—78 Fig. 20 (Bombay: Mahim; Bengal: Pusa). — P. pulchra Rehn 1873

von Nicaragua u. Trinidad. Nach Caudell 1907 ist Labia pictipennis Bruner

1906 ein Synonym dazu. Sie ist nahe verw. mit P. rosenbergi Guerin. Burr,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 446. Die Färbung, besonders

der letzteren, ist so variabel, dass als einzige Unterscheidungsmerkmale

nur die Behaarung des Körpers u. die stumpferen Winkel in den Seiten des

6. u. 9. Sgmts. des $ gelten können. P. pulchra ist wahrscheinlich identisch

mit P. percheron Guerin. — americana Pal. de Beauv. von Columbia, Bogota,

Santo Domingo u. Cuba. Unreife Stücke fast aller Arten dieser Gattung

werden oft mit Anisolabis verwechselt, wie schon Rehn mit Recht vermutet.

p. 446. — gagatina Klug von Porto Rico, Utuado u. El Yunque u. Santo

Domingo, San Francisco Mts. Diese Stücke werden von Rehn 1903 als

Apterygida buscki u. von Caudell 1907 als Sphingolabis buscki zitiert. Sie

sind nur kleiner u. schlanker, als die Psalis colombiana Bormans [von Peru

u. Ecuador], die = Carcinophora robusta Scudder = Psalis gagatina Burm. ist.

p. 446. — Carcinophora wohl = Psalis, der einzige Unterschied das Fehlen

der Flügel ist wertlos. — buscki wäre dann eine Inselrasse. Das von Borman

1903 abgebildete Stück hat gefleckte Flügel u. ist wahrscheinlich zu P. amer:-

cana oder P. pulchra zu ziehen. — cincticollis Gerst. von Liberia, Mount Coffee

ist die Nymphe von Psalis picina Kirby; cinct. ist daher der richtige Name.

— nigra Caudell von Montserrat scheint verwandt zu sein mit P. gagatina

Borm. u. der afrikan. P. cincticollis Gerst. p. 447. — pulchra Rehn

=? Ps. percheron Guerin p. 465.

Pseudisolabis Burr. (Type: Ps. walkeri Burr.) Burr (1) Beschr., Unterschiede

von Parisolabis p. 102. — 2 Spp. burri Borelli (glatt glänzend; Forceps

stark gebogen, nahe verw. mit P. walkeri) p. 103—104 $Q Fig. 35 (NO.-

Kaschmir, auf dem Wege von Srinagar nach Hilget, etwa 6700‘ Höhe).

— tenera n. sp. p. 104—105 $ Fig. 36 (Punjab, Murree).

Pyge Burr. (Type: Pygidicrana modesta Borm.) Burr (1) Beschr. p. 65. —

Übersicht über die beid. Spp. modesta Bormans Beschr. p. 65—66 {2

Fig. 76 (Burma: Karen-ni, Kebadistrikt, 3000—3700’, V.—XII?l. —

ophthalmica Dohm p.66 3 Fig. 16 (Burma: Senmyingyan; Tenasserim;

Madras: Madura, Moretonbai, Austral. ? Type).

Pygidicrana Serv. (= Dicranopygia Burm.) Burr (1) p. 53. Beschr. u. Verbr.

Die Gatt. ist jetzt auf die Spp. beschränkt, die ein mehr oder weniger ovales

Pronotum, breite Elytren u. deshalb ein kleines Skutellum aufweisen. Über-

sicht über die folg. 6 Spp. (p. 54—55), deren Beschr. usw. folgt. — pieta Guer.

p. 55—56 32 Fig. 10 (Verbreitung in S. Indien, Bengal, Assam, Bhutan

u. Ceylon). — valida Dohrn (in der Gestalt des Forceps Oranopygia eumingi

ähnl.) p. 56 $Q (Madras: Madura; Burma: Karen-ni, Kebadistrikt, 3000

—3700 ’; Tonkin). — pallidipennis Haan (schöne Sp., erkenntlich an der

dunklen Tüpfelung an der Außenseite der blassen Beine) p. 57 $ Fig. 11

Systematik. 329

(Burma: Kakhyen (Kachin) Hills; Karen-ni, Kebadistrikt, 3000—3700 ’,

4700—5000 ’. — Auch auf Borneo, Sumatra u. Java.) — eximia Dohrn

(leicht erkenntlich an ‚the build and pattern of coloration‘‘) p. 57—8 SQ

(Sikkim: Darjiling; Madras: Berhampur; Assam; Khasi Hills, Nangkok

Sharp) p. 58—59 $2 Fig. 12 nebst Var. (Ceylon; Bhutan: Maria Basti),

— siamensis Dohrn p. 59—60 Fig. 13 $ (Burma: Pegu, Palon. VIIL.—IX.;

Karen-ni, Kebadistrikt, 3400—7000 ’; Penang: Siam). — P. v-nigrum von

Brasil.: Bonito Province, Pernambuco. Burr, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1760 p. 444. — peruviana Rehn = P. dohrni Scudder p. 465.

Pygidicranidae. Charakt. Burr (1) p. 37—38 Fig. 2 Bein. — Übersicht

über die 2 Unterfam. I. Diplatyinae u. II. Pygidieraninae (p. 38).

Pygidicraninae. Charakt. Burr (1) p. 53. — Übersichtstabelle über die

Spp.: 1. Elytren breit, Scutellum schmal u. unscheinbar. — 2. Pronotum

oval (vorletzt. Ventralsgm. d. $ breit): Pygidierana Serv. — 2. 2. Pron.

rechtwinkl. — 3. Vorletzt. Ventralsgm. des $ groß u. breit: Dierana Burr. —

3. 3. Vorletztes Ventralsgm. des $ schmal: 4. Kopf so breit wie das Pronotum:

Cranopygia Burr. — 4. 4. Kopf schmäler als das Pronot: Picrania Burr. —

1. 1. Elytren kurz, Skutell. breit, fast oder ebenso breit wie das Pronotum:

Pyge Burr.

Pyragra fusca Serv. von Costa Rica, San Carlos u. British Honduras: BengueViejo

u. Mexico. Burr stimmt mit Rehn in der Wiederherstellung dieses Namens

für diese Sp. überein. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760

p. 445. — Dohrni Scudder von Peru: Piches u. Perene valleys, 2—3000 ’. —

Ein Synonym dazu ist P. peruviana Rehn. — Buscki Caudell von Cuba

u. Jamaica ist eine gute Sp. u. verwandt mit P. paraguayensis Borelli u.

P. brunnea Burr. Diese Gruppe unterscheidet sich von ?. fuscata durch das

„transverse pronotum““ p. 445.

Sarcinathrix Rehn. Die Gattung ist im wesentlichen aneistrogastrin, da sie nicht

nur einen schwachen, aber deutlichen Seitenkiel hat auf den Elytren, sondern

die Höcker (,‚horns‘‘) des vorletzten Ventralsegments sind nur eine hoch-

entwickelte Form der Punkte oder Lappen der Platte, welche die Subfam.

Aneistrogastr. charakterisiert. S. bleibt deshalb monotyp. $. americana Borm.

u. S. rehni Burr gehören einer neuen Gatt. an. Die Gatt. ist also rein orien-

talisch. Burr, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1760 p. 461. — anomalia

Rehn von Turrialba u. San Carlos p. 461. Abb. des vorletzt. Ventralsegmts.

Fig. 5.

Skalistes lugubris Dohrn = Rehns Type von Forficula metrica 1903. Ist nur eine

Macrolabia-Var. von S. lugubris. Burt, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1760 p. 462 Fig. 6 Abb. des Forceps-Profils. — cacaoensis Caudell von

Guatemala, Cacao Trece Aguas, Alta Vera Paz, 900 ‘. Unterschiede von der

vorig. Sp. p. 462 Forceps Fig. 7.

Solenosoma Burr. Beschr. Burr (1) p. 140. — birmanum Borm. p. 140—141 &

(Assam: Silicuri in Cachar; Burma: Bhamd. Selten.)

Sondax n.g. (flügellos; ähnelt Obelura, Syntonus u. Cordax ceylonicus) Burr (1)

p- 177. — repens n. sp. p. 177—178 Fig. 63 5 (Madras).

Sparatta calverti n.sp. Borelli, Boll. Mus. Torino vol. 25 No. 623 nebst Fig. (Costa

Rica). — S8p. gardineri n. sp. Burr, Trans. Linn. Soc. London vol. 14 p. 131

(Seychellen).

330 Insecta Euplecoptera für 1910.

Sphingolabis Bormans (= Chaetospania Karsch) (Type: Sph. fureifer Borm.)

Burr (1) p. 127—128 (Tropisch. Asien u. Afrika). — feae Borm. p. 128 5 2

Fig. 44 (Burma: Karen-ni, Kebadistrikt, 3000—3700 ', 4000—4300 '; Karen-ni,

Gekudistrikt, 4300—4700 ').

Spongiphora levisi (= Labia yezoensis M. u. S.) Burr, Entom. Record Journ.

of Var. vol. 22 p. 138. — Sp. Serv. (Type: Sp. croceipennis Serv. aus Brasil.)

Burr (1) p. 111—112. — Übersicht über die folg. drei Spp. (p. 112): Zutea Borm.

p. 112 $ 2 (Burma, diverse Fundorte in 3000—4700 '). — nitidipennis Borm.

p. 112—113 & 2 Fig. 80 (Burma usw.). — semiflava Borm. p. 113 Fig. 36

(Burma: Kebadistrikt, 3000—3700 ', Gekudistrikt, 4300—4700 '; Sarawak).

— Sp. insignis Stäl von Colombien. Diese Form ist die Type zu Rehns

Sparatta flavipennula 1903. Zwei von Caudell 1907 zu Spar. flav. gezogene

Larven aus Guatemala gehören nicht hierher. Burr, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 p. 457. — brunneipennis Serv. aus Georgien u. Texas, apicedentata

Caudell aus Californien u. Arizona, ghilianii Dohrn von Guatemala. Diese

Exemplare wurden von Caudell 1907 für 8p. pygmaea gehalten p. 457, also

Sp. pygmaea Caudell (non Dohrn) = Sp. ghilianii Dohrn p. 465.

Sparatta pelvimetra var. rufina Stäl von Guatemala, Cacao, Tres Aguas, Alta Vera

Paz, ist die Type zu Caudells O'ylindrogaster diplatyoides Caudell 1907. Dieser

Name sinkt zum Synonym herab. Burr, Proc. U. St. Nat. Mus. vol. 38

No. 1670 p. 457. — armata Stäl p. 457. — Sp. minuta Caudell ist nur ein

kleines @ derselben. — Sp. flavipennula Rehn = Spongiphora insignis

(Stäl) p. 465.

Syntonus n.g. (Type: Opisthocosmia neolobophoroides Burr) Burr (1) p. 199

— 200. — neolobophoroides Burr p. 200 Fig. 62 $ 2. Oberflächlich Obelura

tamul u. Sondax repens ähnlich, leicht erkenntlich an den kurzen, aber voll-

ständigen u. freien Elytren u. durch die Gattungscharaktere. (Ceylon:

Oudaga, Hatton, VII., Hakgala).

Timomenus Burr (Type: Opisthocosmia oannes Burr) Burr (1) p. 194—195 (Oriental

region). — Übersicht über die folg. vier Spp. (p. 195): oannes Burr p. 195

—196 & Fig. 69 u. 104 farb. (Assam: Khasia Hills; Tonkin). — aesculapius

Burr p. 196—197 $ Fig. 70 (Bhutan: Maria Basti). — nevilli Burr p. 197—198

Fig. 71 (Spp. grünglänzend, gestreckter Forceps. — Bhutan: Maria Basti;

Sikkim). — lugens Burr p. 198—199 $ 2 Fig. 72 (Burma: Karen-ni, Keba-

distrikt, 3000—4300 ’; Assam: Nongpoh in Khasia Hills).

Titanolabis n.g. (Type: Anisolabis colossea Dohrn) Burr, Trans. Entom. Soc.

London 1910.

Tomopygia abnormis Burt, Trans. Entom. Soc. London 1910 p. 187 Abb. pl. XLVII

fig. 15.

Verhoeffiella subg. nov. (Type: Diplatys aethiops Burr) Zacher, Entom. Rund-

schau Jhg. 27 p. 105.

Vlax toltecus Bormans von Mexiko, Orizaba. Burr, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1760 p. 459.

Apterygogenea für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas:

Publikationen und Referate.

Becker, E. Zum Bau des Postantennalorgans der Collembolen.

Zeitschr. f. wiss. Zool. Bd. XCIV Hft. 2 p. 327—399, Taf. XI u. X.

— Über den Bau dieses Organs liegen nur wenige Angaben vor. Verf.

faßt diese in der historischen Übersicht zusammen. Es besteht be-

kanntlich aus einer in einer Einsenkung sitzenden Gruppe von mehreren

Höckern (bei den Poduridae) oder nur einem Höcker (bei den niedrigen

Entomobryidae). Bei den höheren Entomobryidae u. den Sminthuridae

fehlt das Organ gänzlich. Verf. hat nun das Postantennalorgan an

22 Vertretern genannter Gruppen studiert, schildert den speziellen

Bau bei den einzelnen Vertretern u. stellt dann im 3. allgemeinen Teil

interessante Betrachtungen über verschiedene hier in Betracht

kommende Fragen auf. Die bei den verschiedenen Gruppen als Post-

antennalorgane beschriebenen Gebilde sind nach Lage, Struktur u.

Innervierung einander homolog. Für die Erkenntnis der phylo-

genetischen Verwandtschaft der Gruppen ist es sehr wertvoll, besonders

da der nervöse Teil sich sehr konstant verhält. Das Sinnesorgan der

Urform läßt sich etwa folgendermaßen charakterisieren. Es bestand

aus einem Höcker auf einem Postantennalfeld vor den Seitenaugen

gelegen u. aus wenigen (gegen 5) subhypodermalen großen Sinnes-

zellen von eigentümlichem inneren Bau. Es wurde versorgt von kurzen

isoliert verlaufenden elementaren Nervenfasern, die am protocerebralen

Teile des Gehirns seitwärts von dem Seitenlappen des letzteren ent-

sprangen. Die Sinneszellen lagen nicht unter den Außenbildungen,

sondern nebenan. Das Postantennalfeld tritt als Dreieck oder als

Rinne auf, wobei Schoettella sensibilis den Übergang bildet. — Die

phylogenetische Entwicklung des Höckers u. das darauf begründete

Schema der phylogenetischen Beziehungen der einzelnen Formen

untereinander sind im Original zu studieren. Physiologische Bedeutung

der Postantennalorgane. Verf. hält sie für Gehörorgane in Gestalt

von Chordotonalorganen. — Im Nachtrag hält B. das von Berlese

als „‚pseudoculo‘“ bezeichnete Organ für ein dem Postantennalorgan

homologes Gebilde. Das zuerst für Acerentomon von Silvestri als

Ocellenpaar beschriebene Organ besitzt Vorrichtungen, welche darauf

hindeuten, daß der dem Postantennalorgan entsprechende ‚‚opercolo“

vibrierende Bewegungen ausführen kann. Viel Ähnlichkeit weist der

„pseudocolo‘ mit dem höchst primitiven Postantennalorgan von

Schoetella auf.

Börner, Carl. Die phylogenetische Bedeutung der Protura. Biol.

Centralbl. Leipzig. Bd. 30 1910 p. 633—641.

332 Insecta. Apterygogenea für 1910.

Böttger, Otto. Das Gehirn eines niederen Insekts (Lepisma saccha-

rina L.). Jenaische Zeitschr. Naturw. Bd. 46 1910 p. 501—844, 2 Taf.

— cf. Bericht f. 1911.

Bruntz, L. Les reins labiaux et les glandes cephaliques des Thysa-

noures. Archives de zool. exper. IV. Serie T.9 p. 195—238, 2 pls.

(11, III). — Einleitung: (p. 195—198). Die Exkretionsorgane der

Insekten. 1. Malpighische Gefäße, 2. Uratzellen, 3. Nephrocyten.

Unabhängig davon besitzen die Thysanura noch Nieren, die sich voll-

ständig mit denen anderer Arthropoda vergleichen lassen. Unter-

sucht wurden Machilis marıtima Leach, M.polypoda L. u. Lepisma

saccharina L. Die erwähnten Nieren bestehen aus 2 Teilen, dem Sac-

culus u. dem Labyrinth. Sie münden an der Basis der Unterlippe u.

werden daher Labialdrüsen genannt. Da sie Beziehungen zeigen zu

anderen Drüsen im Kopfe, so studierte Verf. auch diese. Darnach

finden wir nun im Kopfe der Thysanura 3 Arten von Drüsen: 1. die

vorderen Kopfdrüsen, 2. die Labialdrüsen, 3. die hinteren Kopfdrüsen

oder Anhangsdrüsen der Nierenorgane. Verf. beschreibt dann die

Technik der Behandlung (p. 198—199), gibt geschichtliche Daten

(p. 199—205) u. geht dann auf die Beschreibung der einzelnen Drüsen

über (p. 205 sq.). Vordere Kopfdrüsen (p. 205—209), 3 Textfig. —

Lippendrüsen (p. 209) Saceulus, Labyrinth. Verf. unterscheidet

2 Tätigkeitsperioden der Drüsen. 1. Eine Sekretionsperiode (Vor-

handensein eines Borstensaumes, der das Epithel überragt) u. 2. eine

Exkretionsperiode (Fehlen der vorbenannten Saumes). Eingehende

Schilderung der Drüsen, ihrer Kerne etc. Daran schließen sich Be-

merkungen, die 1. das zufällige Auftreten des Borstensaumes,

2. die Rolle der Stäbchen der Nierenzelle, 3. die Funktionsbeziehungen,

beider Drüsen bei demselben Insekt betreffen. (Fig. 5). — Beschreibung

der Exkretionskanäle (p. 220—222). Die hinteren Kopfdrüsen (p. 222

— 225). Verf. bringt dann allgemeine Betrachtungen über die Nieren

u. Kopfdrüsen bei den Arthropoda (p. 225—229). Aus den Schluß-

folgerungen (p. 229—231) ergibt sich: Entgegen der herrschenden

Meinung besitzen die Thysanura Nieren, 2 an der Zahl. Sie sind vom

anatomischen u. physiologischen Standpunkte aus den Nieren der

Arthropoda analog. Die Collembola zeigen höchstwahrscheinlich

ähnliche Organe. Anatomisch weisen sie die beiden oben erwähnten

Abschnitte auf, deren Zusammensetzung je nach den Gruppen mehr

oder weniger groß ist. Das Labyrinth mündet durch ein Zwischen-

stück, den Hals, in den Exkretionskanal. Beide Exkretionskanäle

verschmelzen zu einem gemeinsamen Ausführungsgang der an der

Basis u. oberseits der Unterlippe mündet. Histologisch bestehen

die Saceuli aus einem Plattenepithel, dessen sternförmige Zellen

ähnlich wie die der merocrinen Drüsen funktionieren. Die Zellen des

Labyrinthepithels sind nach dem. Typus der Nierenzellen gebaut.

Sie sind mit einem gelegentlichen (,‚contingente‘‘) Borstensaum ver-

sehen. Die Tätigkeit der Drüse äußert sich in 2 Phasen, über die schon

oben gesprochen wurde. Die Stäbchen der Labyrinthzellen scheinen

eine passive mechanische. Rolle als Stützbildung zu spielen. Physio-

Publikationen und Referate. 333

logisch hat Verf. nachgewiesen, daß die Sacculi ammoniakalisches

Carmin u. die Labyrinthe Indigo-Carmin ausstoßen. Die Sacculi

befördern die Exkretionsprodukte nach außen, die im Blute abgelagert

u. zuerst von den Nephrocyten ausgeschieden sind. Bei den Insekten

sind die Malpighischen Gefäße um so mehr entwickelt, je weniger es

die Nieren sind. Die Malpighischen Gefäße scheinen also erworbene

Organe zu sein, die dazu bestimmt sind auf dem Wege der Regression

die Nieren zu ergänzen oder zu ersetzen, indem sie entweder ver-

schwunden oder an andere Funktionen angepaßt sind. — Die Machv-

lidae u. Lepismidae besitzen 2 Paar Kopfdrüsen: 1. Die vorderen,

welche seitlich an der Basis der Mundhöhle an der Mandibelartikulation

münden. 2. Die hinteren oder Anhangsdrüsen der Nieren, welche

in die Exkretionskanäle der Nieren münden. Beide zeigen den histo-

logischen Bau der Schleimdrüsen; erstere sind Kaudrüsen, die letzteren

dazu bestimmt eine Flüssigkeit abzusondern, die die Exkretionsprodukte

nach außen befördert. — Es ist unmöglich festzustellen, ob die Drüsen

des Labialsegments der Insekten sich von den Nieren oder den hinteren

Drüsen der Thysanura ableiten. Es hat den Anschein, als ob die an

der Mandibelbasis mündenden Drüsen der Collembola, Thysanura

u. höheren Insekten demselben Segmente angehören und einander

homolog sind. — Angabe der Literatur (p. 231—236). Tafelerklärung

(p. 236— 238).

Caroli, E. Su aleuni Collemboli della trıbüu Neanurini. Monitore

zool. ital. Firenze vol. 21 1910 p. 321—322.

Collinge, Walter E. Collembola as injurious inseets. Journ. Econ.

Entom. Concord N.H. vol. 3 1910 p. 204—205.

Collinge, W. E. u. Shoebotham, 3. W. The Apterygota ot Hert-

fordshire. Journ. Econ. biol. London vol. 5, 3 1910 p. 95—132.

Escherich, K. Lepismatiden von Madagaskar, den Comoren und

Ostafrika. [In: Reise in Ostafrika v. A. Voeltzkow, Bd. 2] Stuttgart

E. Schweizerbart) 1910 p. 535—538.

Foster, H. M. List of Collembola and Thysanura occurring in the

Hull distriet. Trans. Sei. F. Nat. Club Hull vol. 4 1908 p. 23.

Lucas, Robert. Apterygogenea für 1904, 1905, 1906. [Jahres-

bericht]. Titel siehe unter Trichoptera.

Maxwell-Lefroy, H. u. F. M. Howlett. Indian Insect-Life: a Manual

ete. Titel siehe unter Hymenopt. für 1910 p. 61. — Über Aptera handeln

p. 43—46, Textfig. 1—4.

Schepotieff, Alexander. Neue Arbeiten über niedere Insekten.

Zusammenfassende Übersicht. Zool. Zentralbl. Bd. 17. No. 5/6. p. 129

—142. — Die in Frage kommende Literatur umfaßt 6 Publik.: Sil-

vestri (Descrizione di un nuovo genere etc. 1907), Berlese (1 Nuov.

Acerent. 1908; 2. Össerv. intorno ete. 1908), Silvestri (Descriz. prelim.

ete. 1909), Berlese (Monogr. 1909), Schepotieff (Studien ete. 1909).

— Allgemeines u. äußere Körperform (p. 129—131). — Arten u. geo-

graphische Verbreitung (p. 132—134). — Spezielle Betrachtung der

Organisation (p. 134—139). — Verwandtschaftsbeziehungen (p. 139

— 142). Schepotieff unterscheidet folg. Unterordnungen der T’hysa-

334 Insecta. Apterygogenea für 1910.

nura: Prothysanura, Dicellura u. Euthysanura. Handlirsch teilt die

Apterygota in 3 unabhängige Klassen ein: Collembola, Archinseeta

(Campodeidae, Dicellura u. Rhabdura) u. Thysanura (Machiloidea,

Lepismoidea u. ? Gastrotheoidea.) Börner unterscheidet 2 Gruppen:

Entotropha (Diplura, Collembola) u. Ectotropha (Archaeognatha, Thysa-

nura). Wir haben es darnach mit 3 möglichen Hypothesen zu tun,

a) die Apterygoten sind die Ahnen der Pierygota. Dann bilden die

Myrientomata u. Protapteridae die noch fehlenden Zwischenglieder

zwischen den Campodeidae u. Symphyla, zwischen den Insecta u.

Myriopoda. Die Trilobitenhypothese Handlirschs fällt bei dieser

Annahme von selbst weg. — b) die Apterygota sind unabhängig von

den Pierygota, aber aus einer gemeinsamen Wurzel mit diesen, ent-

standen — aus dem ‚‚Archentomon‘“‘ im Sinne Paul Mayers. In diesem

Falle können wir die Myrientomata u. Protapteridae als Zwischenglied

zwischen den Apterygota u. Symphyla betrachten: die Ahnen der

Pterygota bleiben dabei unbekannt u. die Trilobitenhypothese bleibt

wieder unwahrscheinlich. — c) die Apterygota sind ganz unabhängig

von den Pterygota entstanden. Die Pierygota können dann als Nach-

kommen der Palaeodictyoptera (und Trilobita) betrachtet werden.

Faßt man die Apterygota als eine künstliche Sammelgruppe auf, so

kann man sie teilweise aus den Myriopoda (Myrientomata, Campo-

deidae, Dicellura), teilweise aus niederen Orthoptera (Lepismatidae)

ableiten. Faßt man die Apterygota als eine homogene Gruppe auf,

so können die Myrientomata u. Protapteridae als mögliche Ahnen der

niedrigen Myriopoda gelten. Als Seitenzweig der Insecta wurden die

Myriopoda schon von Ray Lankester, Graber, Emery etc. an-

gesprochen. Nur die Entwicklungsgeschichte der Symphyla u. Myrien-

tomata kann hier Klärung bringen.

Silvestri, F. (1). Della Trigona cupira Smith e di due ospiti del

suo nido nel Messico. Boll. Lab. Zool. Portiei. T.5. 1910 p. 65—71.

— Darunter Oyphoderus dimorphus n. sp.

— (2). Materiali per la studio dei Tysanuri. XII—XV. t.c.

p. 72—99. — Allopsontus n. g. (1 n.sp.), BZvalljapyz (8 neue Spp.),

Heterojapy& (1 n. sp.), Japyz (2 n. sp.), Lepidospora (1 n. sp.), Machi-

lellus n.g. (1 n.sp.), Machihs (1 n.sp.), Macropsontus (1 n. sp.),

Meinertellus (1 n. sp.), Parajapyz (1 n.sp.).

— (3). Beschreibung der von K. Escherich auf Ceylon gesammelten

termitophilen Thysanuren, Myriopoden, sowie einer unbekannten

mimetischen, termitophilen Coleopterenlarve [In: K. Escherich,

Termitenleben auf Ceylon.] Jena, G. Fischer 1911 [1910] p. 237—247.

Verhoeff, Karl W. (1). Über Felsenspringer (Machiloidea): 3. Auf-

satz: Die Entwicklungsstufen. 4. Aufsatz: Systematik und. Ortho-

morphose. Zool. Anz. Leipzig Bd. 36 1910 p. 385—399, 425—438.

— 3. Aufsatz. Die Entwicklungsstufen. Die Systematik der Thysa-

nura liegt noch sehr im argen. Für die Lepismatidae hat allerdings

Escherich 1905 mit seiner guten Arbeit Wandel geschaffen und neue

Gesichtspunkte eröffnet, aber die größten und schönsten T’hysanura

sind noch sehr vernachlässigt worden. Bis vor wenigen Jahren kannte

Publikationen und Referate. 335

man nur die Gatt. Machihs, der erst kürzlich Silvestri eine Reihe

neuer Gattungen zugestellt hat. R. Heymons veröffentlichte 1906

seine Untersuchungen über die Jugendformen von Machilis alternata

Silv. u. zeigte, daß die erste Jugendform völlig schuppenlos ist. Gleich-

zeitig wendet er sich aber gegen die von Silvestri zur Begründung

seiner neuen Gattungen benutzte verschiedene Zahl der abdominalen

Coxalsäcke. Heymons war zwar auf dem richtigen Wege, wenn er die

Machihis-Larven in Zusammenhang mit der Systematik brachte,

aber ob die von ihm gezogenen Konsequenzen haltbar sind, ist eine

andere Frage. V. diskutiert diesen Punkt näher und kommt zu dem

Ergebnis, daß ihn weder Silvestris, noch Heymons Mitteilungen be-

friedigt haben. Die von Heymons erhobenen Einwände gegen die

systematische Bewertung der Coxalsäcke von seiten Silvestris sind

sachlich, d.h. hier rein entwicklungsgeschichtlich, unhaltbar. Hey-

mons hatte neben dem von ihm untersuchten Vertreter der Machiliden

mit zum Teil 2 Paar Coxalsäcken auch einen solchen mit einem Paare

Coxalsäcken an den Abdominalringen zum Vergleiche heranziehen

müssen. V. gibt dann eine Übersicht über die Coxalsäcke bei Machrlıs

Teutonia u. Praemachilis und kommt zum Schlusse, daß die aus-

gebildeten Coxalsäcke der Machrlis-Larven nur teilweise, nämlich

am 1., 6. u. 7. Sgm., denen von Teutonia u. Praemachrlis homolog

sind, am 2. bis 5. Segment dagegen nicht homolog u. nicht isostich

sind, denn an ihnen besitzen die Machilis-Junglarven nur innere

Coxalsäcke, die Teutonia und Praemachzlis dagegen nur äußere. Hey-

mons Einwände gegen den systematischen Wert des Vorkommens

verschiedener Coxalsackpaare sind systematisch, wie auch entwieklungs-

geschichtlich unberechtigt, im Gegenteil sind sie systematisch als

besonders wertvoll zu schätzen. V. beschäftigt sich dann mit der Frage,

woran erkennt man entwickelte Machiliden, worunter hier nicht die

Formen zu verstehen sind, welche physiologisch durch den Besitz

reifer Sexualzellen sind, sondern Individuen des morphologischen

Definitivums, welche deshalb noch nicht physiologisch definitiv zu

sein brauchen. Verf. ist nach Untersuchung zahlreicher reifer u. unreifer

Formen zu der Überzeugung gekommen, daß wir recht gute Umschrei-

bungen des entwickelten Zustandes erhalten können, und zwar mit

Rücksicht auf die stets wohl entwickelten Gonopoden, insbesondere

die Telepodite derselben, also 2 Parameren u. 2 Paar Ovipositoren,

welche bei allen entwiekelten Machzloides wohl ausgebildet sind. —

Die hinteren Parameren sind ebenso wie die vorderen stets durch eine

unechte Gliederung ausgezeichnet (längeres Grundglied mit 5 bis 8

weiteren kürzeren Gliedern). Ihre Gliederformel ist demnach 1 + 5

oder 1 + 7 (8). Zugleich kommen 5—8 Gruppen ziemlich kräftiger

Sinnesstifte vor. — Die Ovipositoren sind viel mannigfaltiger gestaltet

u. lassen 3 verschiedene Typen erkennen. Allen gemeinsam ist aber

1. die Zerschnürung in zahlreiche unechte Glieder, 2. die Bewehrung

mit zahlreichen, zum Teil langen Tastborsten, namentlich im mittleren

und letzten Drittel, 3. das Auftreten von kurzen Sinnesstiften an einigen

der letzten Glieder, namentlich der vorderen Ovipositoren. — Ovi-

336 Insecta. Apterygogenea für 1910.

positorentypus I: die Ovipos. reichen mehr oder weniger weit über

die Enden der großen Coxite des 9.Abd.-Sgmts. hinaus, bestehen aus

mehr als 30 Gliedern; sind kräftig, am Ende nicht schmäler, an den

3—4 letzten oder vorletzten Gliedern mit Grabklauen [verdickte u.

umgebogene, verkürzte Stachelborsten] versehen. Vorkommen von

Sinnesstiften u. Stachelborsten. Vertreter: Machilis im Verhoeffschen

Sinne. — Typus II: Länge u. Gliederzahl wie bei dem vorigen Typus,

doch sind die Ovipos. dünn u. zierlich, niemals am Ende verbreitert,

oft verschmälert. Keine Grabklauen, also kein Grabapparat, sondern

ein Legestabapparat; Sinnesstäbchen vorhanden, aber mehr ver-

einzelt. Stachelborsten fehlen. Dieser Typus ist unter den Machiloidea

am reichlichsten vertreten: Praemachihs Silv., Teutonia, Lepis-

machilis, Coryphophthalmus u. Holomachihis n.g. — Typus III: Die

Övipositoren reichen über die Enden der Coxite des 9. Abdominal-

sgmts. überhaupt nicht hinaus u. liegen in normaler Lage unter den

inneren Rändern der 9. Coxite ganz versteckt. Sie sind 18—22 gliedrig

u. beide gleich lang u. gleich schmal ete. Grabklauen fehlen;

charakteristisch sind die langen Wimperborsten: Trigoniophthalmus

n.g. — Als entwickelte Machiliden sind diejenigen Individuen

zu betrachten, welche im männlichen Geschlecht an den hinteren

Parameren 1 + 5 bis 1 + 7 oder 8 gliedrig sind u. im weiblichen

Geschlecht gegliederte Ovipositoren besitzen, welche nach einem

der 3 genannten Typen gebaut sind. — Es vermögen sich auch noch

Individuen zu häuten, welche das morphologische Definitivum erreicht

haben. Die angegebene Definition für die morphologisch entwickelten

Formen ist damit noch nicht abgeschlossen, weil die Entwicklung so

allmählich verläuft, daß Verhoeff sich gezwungen sieht Unter-

abteilungen zu bilden. — Im Reichtum an Entwicklungsstufen wett-

eifern die Machilidae mit den Lithobiidae; bei beiden finden wir zwei

Gruppen von Entwicklungsstufen. Während aber bei den mit

Hemianamorphose sich entwickelnden Lithobüidae die Grenze scharf

zu ziehen ist, ist sie bei den Machvloidea weniger scharf. — Larven

der Machrloidea sind diejenigen Entwicklungsstufen, welche noch

keine Genitalanhänge besitzen, zugleich bei Formen mit 2 Coxalsack-

paaren des äußeren Paares derselben noch ermangeln u. ferner am

2. u. 3. Beinpaar entweder überhaupt noch keine Styli besitzen oder

wenigstens solche, die bei mangelnden Schuppen u. Tastborsten als

unentwickelt gelten. Die Larven zerfallen weiter in a) unbeschuppte

jüngste u. b) beschuppte ältere mehrere Stufen. Das Wort Larven ist

ım Sinne von Formen gemeint, welehe noch nicht die endgültige

Segment- u. Beinpaarzahl haben. Beschränkt man aber das Wort

Larven auf Formen mit provisorischen Organen, so wäre für die

Larven der Myriopoda u. Thysanura ein neuer Ausdruck wie ‚„‚Infantes“

oder ‚Kinderstufen“ einzuführen. Zwischen diese Larvenstufen u.

den Entwickelten schieben sich noch ein: a) die Immaturi (an

den Hüften des 2. u. 3. Beinpaares finden sich Styli in einem Über-

gangszustande, die Genitalanhänge sind noch embryonal [ungegliedert

ete.], die Borstengruppen u. Wimperbogen, welche die Lippen der

Publikationen und Referate, 337

Coxalsäcke auszeichnen, fehlen ete.) u. Praematuri (Individuen,

welche am 2. u. 3. Beinpaare lang beborstete u. zugleich auch schon

beschuppte Styli aufweisen, während die Zahl der Sinneskegel am End-

glied der Labiopoden verdoppelt ist [16]; Zahl der Glieder wie bei

den Erwachsenen: Paramerenpaare noch ungegliedert u. nackt etec.).

Pseudomaturiendlich sind Formen, welche das morphologische

Definitivum fast erreicht haben (bei den 22 sind nur die Ovipositoren

noch nicht gelblich gefärbt, sondern grauweißlich u. die Grabklauen noch

halb durchsichtig [nicht schwarz u. undurchsichtig]; bei den Jg ge-

ringere Zahl der Antennenglieder [wie auch bei den PP], die Telopodite

der Maxillopoden zeigen noch dieselbe Beschaffenheit wie die der

Weibchen, es fehlen noch Beborstung, Verdickung u. Wimperborsten

ete.). Bei dd u. 29 fehlen noch die reifen Sexualzellen. — Die Phrase

„natura von faeit saltum“ erhält hier vergleichsweise eine Berechtigung.

Andere Unterschiede zwischen den Entwicklungsstufen z. B. an An-

tennen u. Trochanter der Maxillopoden etc. sollen später besprochen

werden. — Zum Schluß Berichtigung eines Irrtums in den Nova Acta

Halle 1904 betreffs der Fazettenaugen u. Ocellen.

4. Aufsatz. Systematik und Örthomorphose. Die von

Silvestri aufgestellten Gattungen kennt Verf. mit Ausnahme von

Praemachilis nicht u. beschränkt sich auf dessen angegebene Charaktere.

Alle seine Gattungen haben ein Merkmal, das von großer systematischer

Bedeutung zu sein scheint, nämlich die äußerst kurzen abdominalen

Sternite. Möglicherweise handelt es sich hier um eine scharf getrennte,

tropisch-subtropischen Familie, die sich von Verhoeffs Machiliden

auch durch die Verteilung der Coxalsäcke unterscheidet. Verf. gibt

dann (p. 426—431) einen Schlüssel für die Gruppen u. Gattungen der

Machiloidea. Das System, das er aufgestellt, ist folgendes:

I. Fam. Meinertellidae n. mit 1. Subf. Allomachilinae n. (Gatt.

Allomachikis: Silv.) u. 2. Subf. Meinertellinae (Gatt. Machiloides,

Meinertellus u. Machilinus).

Il. Fam. Teutoniidae n. (Gatt. Teutonia n.g. u. Praemachtlis

Silv. [Unterg. Parateutonia n. u. Praemachilis n.)).

III. Machilidae mit 1. Unterf. Halomachilinae n. (Gatt. Halo-

machilis n.), 2. Unterf. Machilinae n. (Gatt. Berlesilis, Coryphoph-

thalmus n.g., Trigoniophthalmus n.g., Lepismachilis n.g., Machilis

s. str. mihi. — Hieran schließt sich ein Schlüssel für die Machilis

(1+5n.spp. + In.subsp.) u. Teufonia-Arten (3 n. spp.).. —

p. 435—438 beschäftigen sich mit der Orthomorphose der Machiloidea.

Verf. diskutiert darin mehrere von Heymons aufgestellte Sätze, die er

zum großen Teile für unhaltbar erklärt. Für die Dermaptera sind die

Zangen so wichtig, wie etwa für viele andere Insekten die Flügel.

Auch bei Dicellura-Formen kommt eine Zangenmetamorphose wie

bei den Dermaptera vor. Heymons, Name Epimorpha für die Macht-

loidea ist bereits bei den Myriopoda vergeben. Bei aller Ähnlichkeit

in der Entwicklung der Epimorpha und der Machiloidea (und anderer

Insekten, namentlich der Lepismiden) bestehen so wichtige Unter-

Archiv für Naturgeschichte o

1911. V. 1. 22

338 Inseeta. Apterygogenea für 1910.

schiede, daß V. sich veranlaßt fühlt schon um der möglichen Namens-

verwirrung vorzubeugen die Namen Orthomorpha (für Hey-

mons Epimorpha) u. Orthomorphose einzuführen. Die Ortho-

morphose unterscheidet sich von der Paurometabolie durch den Mangel

der provisorischen Organe u. von der Ametabolie (Collembola) durch

die bereits geschilderten Umwandlungen, namentlich also auch dadurch,

daß verschiedene Organe bis weit in die nachembryonale Ent-

wicklung hinein in embryonalen Zustand verharren. Als Verbindung

zwischen Anamorphose u. Epimorphose hat Verh. bereits die Hemiana-

morphose bei O’hilopoda u. Diplopoda eingeführt u. ferner unterschieden

zwischen Segment- u. Organanamorphose. Letztere ist eine Vermitt-

lung zwischen Ana- u. Epimorphose, indem sich an einem einzelnen

Segment oder Organ eine Elementvermehrung abspielt, wie

bei der Anamorphose am ganzen Körper eine Segment-

vermehrung. Die Organanamorphose ist bei den Machiloidea von

großer Bedeutung u. erstreckt sich auf die Antenne, die Sinneskegel

der Labiopoden, Endfaden u. Cerci, Fazettenaugen u. häufig auch

auf die Coxalsäcke. — A. die Epimorphose der Epimorpha wird nach

Verlassen der Eischale eingeleitet durch ein Fötusstadium, welchem

nicht selten noch ein Peripatoidstadium vorangeht. Sie beginnt mit

Tieren von annähernd homonom segmentiertem Rumpfe u. bleibt

auch dabei. Die langen, die Körperpole beherrschenden Extremitäten,

Antennen u. Endbeine sind (abgesehen von geringen Einschränkungen)

keiner Organanamorphose unterworfen etc. — B. Die Orthomorphose

der Machrloidea beginnt ohne Peripatoid- u. ohne Fötusstadium mit

Tieren von sofort sehr heteronom segmentiertem Rumpfe. Die langen,

die Körperpole beherrschenden Extremitäten, Antennen, Endfaden

u. Cerei unterliegen einer ausgiebigen Organanamorphose, ebenso

die Fazettenaugen, während die Öcellen bisweilen eine Gestalts-

veränderung erleiden ete.— Das erste schuppenlose Larvenstadium

entspricht dem 1. Adolescenzstadium der Epimorpha, durch dieses

werden die Entwicklungsstufen der Epimorpha in 2 Gruppen zerlegt,

welche den oben besprochenen beiden Gruppen der Entwicklungs-

stufen der Machiloidea nicht vergleichbar sind.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Lucas (für 1904, 1905, 1906). — Neuere Arbeiten über niedere

Insekten : Schepotieff.

Felsenspringer : Verhoeff führt im Zool. Anz. Bd. 36 p. 385 diesen Namen

neu ein mit Rücksicht auf die hervorstechende biologische Eigentümlichkeit

der meisten Machiloidea, sich am Felsen oder im Felsengeröll aufzuhalten.

Größte mitteleuropäische Thysanure: Verhoeff, (Zool. Anz. Bd. 36 p. 434:

Machilis helleri n. sp.).

Systematik : Verhoeff (1, 4).

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 339

Morphologie, Anatomie.

Kopforgane: fragliche: Schepotieff (p. 134). — Kopfdrüsen : Schepotieff

(p- 134—135). — Lippen- u. Kopfdrüsen der Thysanura: Bruntz. — Post-

antennalorgane der Collembola: Becker. — Abdominalfüße: Schepotieff

(p. 134). — Coxalsäcke: Verhoeff (1,4). — Abdominaldrüsen : Schepotieff

(p- 137). — Muskulatur : Schepotieff (p. 135). — Darmkanal : Schepotieff (p. 135).

— Malpighische Gefäße: Schepotieff (p. 135). — Nervensystem: Schepotieff

(p- 136). — Gehirn von Lepisma saccharina: Böttger. — Tracheensystem : Sche-

potieff (p. 136). — Körperwandung: Schepotieff (p. 137). —. Gefäßsystem:

Schepotieff (p. 137). — Fettkörper : Schepotieff (p. 137). — Geschlechtsorgane :

Schepotieff (p. 137—138). — Ovipositoren : Verhoeff (1).

Physiologie.

Physiologie des Fazettenauges: Demoll.

Orthomorphose : Verhoeff (1, 4).

Entwickelung.

Entwicklungsstufen von Machiloidea: Larven, Immaturi, Praematuri, Pseudo-

maturi, entwickelte Formen: Verhoeff (1,3).

Verwandtschaft. Phylogenie.

Phylogenetische Bedeutung der Protura: Börner, Biol. Centralbl. Bd. 30

p: 633—641. — Verwandtschaftsbeziehungen der Thysanura: Schepotieff, Zool.

Zentralbl. Bd. 17 p. 139—141. Sie sind bei den Pauropoda, Symphyla, M yriento-

mata, Protapteridae u. Campodeidae einzureihen u. über ihre gemeinsame Her-

kunft kann daher kein Zweifel herrschen.

Symbiose usw.

Termitophile Thysanura: Silvestri, siehe unter T’ermitidae. — Zwei Gäste

im Neste von Trigona cupira: Silvestri (1).

Ökonomie.

Collembola als Schädlinge: Collinge.

Faunistik.

Europa: Verhoeff (Machiloidea n. sp.). — Großbritannien: Hertford-

shire: Collinge a. Shoebotham (für die Fauna neue Formen). — Hull

Distrikt: Foster (Liste der Collembola und Thysanura,. — Donegal:

Carpenter (Irish Naturalist vol. 19 p. 185). i

Asien: Ceylon: Silvestri (3) (termitophile Thysanura). — Java u. Kra-

katau: Silvestri(2) (Thysanura, neue Gatt., 2 neue Spp.). — Britisch-Indien :

Maxwell-Lefroy a. Howlett.

Afrika: Madagaskar, Comoren u. Ostafrika: Escherich (Lepismatidae,

3 neue Spp.).

Amerika: Nordamerika: Silvestri (neue Japygidae).,. — Mexiko:

Silvestri (1) (Cyphoderus n. sp.), .(2) (Japygidae n.spp.). — Agulhas Negras:

Lüderwaldt (Zeitschrift f. wiss. Insektenbiol. Bd. 6 p. 231 Gletscherflöhe).

Australien: Silvestri (Heterojapyx n. sp.).

22°

340 Insecta. Apterygogenea für 1910.

Systematik.

Protura.

Protura Ordo mit Acerentomon, ein Äquivalent der Thysanura u.

Collembola. Silvestri 1908. cf. Schepotieff, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 139.

Myrientoma Ordo mit den Eosentomidaeu. Acerentomidae

zu den Myriopoda gestellt. Über die genauen Verwandtschafts-

beziehungen wird nichts geäußert. Berlese, Redia vol. VI 1909.

Acerentomon Silvestri 1907 Charakt. der Gatt. u. der Spp. Schepotieff, Zool.

Zentralbl. Bd. 17 p. 132. — 2 Spp.: 1. A. doderoi Silv. (groß, bis 1900 u 1.,

mit langem (bis 40 u) Rostrum; gelb (Nord- u. Mittelitalien: Trentino). —

2. A. microrhinus Berlese (klein, bis 1600 u 1., mit kurzem (bis 15 u) Rostrum;

gelb (wie zuvor). Literatur zu Gatt. u. Spp.

Acerentomidae (ohne Antennen; Copul.-Organe vorhanden, Genitalporen

zwischen dem 11. u. 12. Abd.-Sgm., keine Tracheen, nur das 1. Abdominal-

fußpaar gegliedert, im Gegensatz zu den Eosentomidae) Berlese,

Redia VI. 1909.

Acerentulus Berlese. Charakt. der Gatt. u. der Spp. Schepotieff, Zool. Zentralbl.

Bd. 17 p. 132. — 5 Spp., die sich durch Körpergröße u. eine Reihe sekundärer

Merkmale (Form u. Vorderrand der Abdominaltergiten usw.) unterscheiden.

1. A. confinis Berlese (bis 1500 zu 1.; orangegelb, Nord- u. Mittelitalien). —

2. A. tiarneus Berlese (bis 1240 u 1., gelblich; nur 9 sicher bekannt. Trentino,

bis 1500 m). — 3. A. cephalotes Berlese (bis 950 u 1., hellgelbl., nur 3 22 bek.;

Florenz). — 4. A. gracilis Berlese (bis 850 u 1., hellgelbl., Mittelitalien). —

5. A. minimus Berlese (Florenz, bis 620 u 1.).

Eosentomidae (ohne Antennen. Copul.-Organe vorhanden, Genitalporen

zw. dem 11. u. 12. Abd.-Sgm. Tracheen vorhanden. Alle drei Abdominal-

fußpaare gegliedert). Berlese, Redia VI. 1909.

Eosentomon Berlese. Charakt. der Gatt. u. d. Spp. Sehepotieff, Zool. Zentralbl.

Bd. 17 p. 133. — 3 Spp.: 1. E. transitorium Berlese (weißl., bis 1300 u 1,

Mittelitalien). — 2. E. ribagai Berlese (gelbl., 1400 u 1., Trentino). — 3.

3. E. wheeleri Silv. (bis 1180 u 1., New York) nebst var. mexicana (länger

behaart, Mexiko)

Thysanura.

Einteilung der Thysanura nach Schepotieif, Zool. Jahrb. Abt. f. System. Bd. 28

p. 121sq.: Thysanura mit 1. Prothysanura (hierher Protapteron:

Acerentomidae Tu. Eosentomidael u. Campodea). —2. Dicellura (hierher

Japygidae u. Projapygidae). — 3. Euthysanura (hierher Machtloidea,

Gastrotheoidea (?) u. Lepismatidae).

Acrotelsa voeltzkowi n.sp. Escherich, Voeltzkow Reise Bd. 2 p. 537 (Madagaskar).

Allomachilinae nov. subfam. Meinertell. (das 7. u. 5.—7. Abdominalsgm.

besitzen überhaupt keine Coxalsäcke, das 2.—4. je ein Paar) Verhoeff,

p. 426. — Hierher die Gattung Allomachilis Silv.

Allopsontus n.g. Machilid. Silvestri, Boll. Lab. Portici vol. 5 1910 p. 89. —

annandalei n. sp. p. 90 (Indien).

Systematik. 341

Assmuthia escherichi n.sp. SilvestriinEscherich, Termitenleben auf Ceylon

p. 243 (Ceylon).

Atelura jacobsoni n.sp. Silvestri, Boll. Lab. Portici vol. 5 p. 62 (Java).

Berlesilis n.g. Machilin. (2.—6. Abdominalsgm. mit 2 Paar Coxalsäcken.

Hintere Ocellen stark quer, Antennenketten ?, Ovipositoren ?, Parameren ?)

Verhoeff p. 429. — Type: ‚‚Machilis‘“ targionii Grassi.

Coryphophthalmus n.g. Machilin. (1., 6. u. 5.—7. Abdominalsgm. mit 1, 2—4..

mit 2 Paar Coxalsäcken; Ovipositor 40—41 gliedr. usw. usw.) Verhoeff,

p. 429. — Type: CO. banaticus von Banat u. Bulgarien.

Orypturella n.g. Lepismatid. Silvestri in Escherich, Termitenleben

auf Ceylon p. 243. — termitaria n.sp. p. 243—244 (Ceylon).

Otenolepisma madagascariensis n.sp. Escherieh, Voeltzkow Reise Bd. 2 p. 535

—536. — howa n. sp. p. 536 (beide aus Madagaskar).

Evalljapyx n.g. Silvestri, Boll. Lab. Portici vol.5 p. 75. — sonoranus n. Sp.

p. 77 (Arizona). — propinguus n.sp. p. 78 (Kalifornien). — diversipleura

n.sp. p. 78 (Kalifornien). — brevipalpus n.sp. p. 79. — furciger p. 79. —

euryhebdomus n.sp. p. 82. — heterurus n.sp. p. 83. — dolichodeus n. sp.

p- 85 (wo nicht anders bemerkt aus Mexiko).

Halomachilinae subfam.nov. Machilid. (Antennengeißel nur am

Flagellobase beschuppt, sonst lediglich beborstet. Labiopoden-Endglied

mit ungewöhnlich dicken Sinneskegeln, am Ende jedes ders. eine Gruppe

von Sinnesstiften. Mandibel am Ende glatt, ungezähnt. Hintere Ocellen

stark quer. Labrum oben in der Vorderhälfte mit zahlreichen Sinnesstiften).

Verhoeff, Zool. Anz. Bd. 36 p. 428. — Hierher Halomachilis n.g.

Halomachilis n.g. (Machilis nahest.) Verhoeff, Zool. Anz. Bd. 36 p. 429. —

adriatica n. sp. p. 429 (Abbazia).

Heterojapyz victoriae n. sp. Silvestri, Boll. Lab. Portieci vol. 5 p. 97 (Neu-Holland).

Japyz diversiunguis n.sp. Silvestri, t. c. p. 72. (Kalifornien). — allodontus n. sp.

p- 73 (Mexiko).

Lepidospora ceylonica n.sp. Silvestri, t. c. p. 95 (Ceylon).

Lepisma saccharina Stück, das 2 Monate ohne Nahrung lebte. Entom. Monthly

Mag. s.2 v. 21 (46) p. 97, desgl. The Entomologist v. 43 p. 123. — Lippen-

drüsen. Bruntz p. 211 Fig. 4 u. Taf. III Fig. 9, 10, 16. — saccharina Gehirn.

Böttger, Jenaische Zeitschr. f. Naturw. Bd. 46 p. 801—844, 2 Taf.

Lepismachilis n.g. Machilin. (cf. Trigoniophthalmus. Unterschiede: Ovi-

positoren 40—72-gliedr., über das Ende der Coxite des 9. Abd.-Sgmts. hinaus-

ragend. Hintere Ocellen stark quer. Seitenlappen des Kopfes außen von

den Augen u. hinteren Ocellen mit zerstreuter Beborstung. Auf eine Antennen-

zahl von 47—77 Gliedern folgen schärfer abgesetzte Ketten mit 6—13 Gliedern)

Verhoeff p. 430. — Type: ericarum n.sp. (männliche Maxillopoden am 3.

bis 8. Glied unten reichlich mit Wimperborsten besetzt) p. 430 (Mittel-

u. Süddeutschl.. Nord- u. Südtirol).

Machilellu n.g. Machilid. Silvestri, Boll. Lab. Portiei vol.5 p. 91. —

orientalis n,. sp. p. 91 (Java)

Machilidae sensu Verh. (Ein Teil der Abdominalsegmente besitzt zwei

Paar Coxalsäcke u. zwar am 2.—4., oder 2.—5., oder 2.—6. Sgm.; Antennen-

342 Insecta. Apterygogenea für 1910.

geißel im Grunddrittel nicht auffallend verdickt, sondern gleich hinter

der Flagellobase anfangend allmählich verdünnt usw., Legeapparat mit

höchstens 22 Gliedern.) Verhoeff p. 428.

Machilinae Verh., subf. dr Machilin. (Antennengeißel an zahlreichen

Gliedern beschuppt. Labiopodenendglied von typischer Bildung [nicht be

sonders dick; am Ende keine Sinnesstifte], Mandibel am Ende 3—4 zähnig, .

Labrum oben in der Vorderhälfte ohne Sinnesstifte) Verhoeff p. 429. — Gatt-

Berlesilis n.g., Coryphophthalmus n.g., Trigoniophthalmus n.g., Lepis-

machilis n. g. u. Machilis s. str. Verh.

Machilinus Silv. Die Diagnose dieser Gatt. ist fraglos auf Larven begründet.

Verhoeif p. 426.

Machilis s. str. Verhoeff (2.—5. Abd.-Sgm. mit je zwei Paar Coxalsäcken. Ovi-

positoren lang u. kräftig, 33—56 gliedrig, am Ende mit starken Grabklauen.

Hintere Ocellen stets vor den Augen stark in die Quere gestreckt. Antennen

sehr lang, auf eine Geißel von 80—112 Gliedern folg. Ketten mit 12—24

Gliedern. Antennen insgesamt 200—300 gliedrig usw. usw.) Verhoeff p. 430

—431. — Schlüssel für die folg. M.-Arten. Verhoeff p. 431—434: nivicomes

n. sp. p. 432 (am Pilatus, 2000 m). — glacialis n. sp. p. 432 (in der Bernina-

gruppe, oberhalb des Morteratschgletschers). — rhaetica n. sp. p. 432 (im

Gebiet der Albulastrasse, 1300—1800 m). — tirolensis n. sp. p. 433 (Nord-

u. Südtirol). — saltatrix subsp. rhenana n. p. 433 (Rheinpreussen u. fränk.

Jura). — saltatrix (Fourcroy |genuwina m.] (= Machilis annulicornis Latr.

u. Burm.) p. 434 (Südwestdeutschland). — helleri n. sp. p. 434 (am Schrecken-

stein bei Aussig. 17 mm |., ist wohl die größte mitteleuropäische Thysanure).

Machilis maritima Kopfdrüsen, Lippendrüsen usw. Bruntz p. 205 mit Figuren

im Text Taf. II Fig. 1—4, Taf. III Fig. 8-5, 11—15, 17—20. — M. lefroyi

n.sp. Silvestri, Boll. Lab. Portiei, vol. 5 p. 88 (Mussooree).

Machiloides anceps Silv. von Madagaskar u. Chile ist nach der Fig. zu urteilen

auf einen Praematurus gegründet. Verhoeff p. 426.

Macropsontus n. g Machilid. Silvestri (2) p. 92. — greeni n. sp. p- 93

(Ceylon).

Meinertellidae nov.fam. (Sternite des 2.—7. Abdominalsegm. sehr kurz.

mit dem kleinen Mittelteil entweder überhaupt nicht oder nur schwach

zwischen die Coxite eindringend.. An den Abdominalsegmenten kommen

niemals doppelte Coxalsackpaare vor). Verhoeff, Zool. Anz. Bd. 36 p. 426.

Meinertellinae nov.subfam. Meinertell. (Das 1.—7. Abdominalsgm.

besitzen je ein Paar von Coxalsäcken) Verhoeif, p. 427. — Hierher die Gatt.

Machiloides, Meinertellus u. Machilinus.

Meinertellus jacobsoni n. sp. Silvestri, Boll. Lab. zool. Portici vol. 5 1910 p. 94

(Krakatau).

Parajapyz grassianus n.sp. Silvestri, t. c. p. 87 (Cordoba).

Parateutonia n. subg. mit illyrica n. sp. Verhoeff p. 428. — Siehe unter Teutonia.

Platystylea greeni n.sp. Silvestri, n Escherich, Termitenleben auf Ceylon

p. 242 (Ceylon).

Praemachilis Silv. g. Teutoniid. (hintere Ocellen einander, viel näher stehend

als dem unpaaren vorderen Ocellus) Verhoeff, Zool. Anz. Bd. 36 p. 427. —

Systematik. 343

Hintere Ocellen rundlich, einander viel näher als dem unpaaren Ocellus.

Seiten des Kopfes außerhalb der hinteren Ocellen mit einer kräftigen Borsten-

querreihe u. noch 2—3 größeren Borsten neben der Reihe. Antennenketten

8—14 gliedr. usw.: subg. Parateutonia n. mit illyrica n. sp. — Hintere Ocellen

wie bei Parateutonia genähert, aber nicht rundlich, sondern annähernd drei-

eckig, weil sie nach außen ausgezogen sind. Seitenlappen des Kopfes mit

mit schwachen Borsten usw. Antennenketten 7 gliedrig: subg. Praemachilis n.

mit aetnensis n. SP.

Praemachilis n. subg. mit aetnensis n. sp. (vom Ätna) Verhoeff p. 428. — Siehe

unter Teutonia.

Protapteridae (Antennen, Tracheen, 3 Paar gegliederte Abdominalfüße

vorhanden. Cop.-Org. fehlen. Genitalporen anders gelagert als bei den

Acerentom. u. Eosentom.) Berlese, Redia VI. 1909.

Protapteron Schepotieff. Charakt. Schepotieff, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 133.

— P. indieum (weißl., Länge d. ? bis 1000 u, 3 bis 750 u ; Indien, Malabar-

küste).

Proturentomon minimum Silv. = Acerentulus minimus Berlese, ersterer Name

also synonym. Schepotiefi, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 133.

Teutonia n.g. Teutoniid. (hintere Ocellen rundlich, soweit von einander

abgerückt, daß sie dem unpaaren Ocellus näher stehen, als einander. Seiten

des Kopfes vorn neben den hinteren Ocellen, ohne eine Querreihe kräftiger

Borsten usw.) Verhoeff p. 427.

Teutonia. Bestimmungsschlüssel für die im folgenden angeführten Spp.: Verhoefi,

Zool. Anz. Bd. 36 p. 434—435. — sicula n. sp. p. 434 (bei Bocca di Falco).

— germanica n. sp. (? = Machilis brevicornis Latr.) p. 435 (Mittel- u. Süd-

deutschland). — oudemansi n.sp. p. 435 (bei Gerolstein u. am Fuße des

Pilatus).

Teutoniidae nov.fam. (Sternite des 2.—7. Abdominalsgm. stark entwickelt,

indem sie als große Dreiecke sich weit zwisch. d. Coxite schieben, gewöhnl.

bis zur halben Länge derselben oder noch darüber hinaus. 1. bis 7. Abd.-Sgm.

mit je 1 Paar Coxalsäcken. Antennengeißel im Grunddrittel auffallend

dick usw.) Verhoeff p. 427. — Hierher die Gatt. Teutonia u. Praemachklis.

Trigoniophthalmus n.g. Machilin. (2. bis 5. Abdominalsgm. mit je 2 Paar Coxal-

säcken. Ovipositor dünn u. schwach, am Ende weder mit Grabklauen noch

mit Gruppen quer zusammengedrängter Sinnesstifte. Antennen weniger lang,

in den Ketten höchstens 14-gliedrig. [Höchste beobachtete Gliedzahl 173].

Diese Charaktere sind gemeinsam mit Lepismachilis. Sie unterscheidet sich

von letzterer durch folg. Merkmale: Ovipositoren 18—22 gliedrig, von den

Coxiten des 9. Abd.-Sgmts. bedeckt. Parameren gedrungen. Hintere Ocellen

annähernd dreieckig. Seitenlappen des Kopfes außen von den Augen u.

hinteren Ocellen mit einer Querreihe kräftiger Tastborsten. Aufeine Antennen:

geißel mit 39—85 Gliedern folgen schärfer abgesetzte Ketten mit 7 bis 14

Gliedern. Verhoeff p. 429—430. — Type: „Mogchilis‘‘ alternata Silv.

Collembola.

Apterygota von Hertfordshire. Collinge and Shoebotham, Journ. econ. Biol.

vol. 5 p. 95—132. — Collembola als Schädlinge. Collinge, Journ. econ. Entom.

544 Insecta. Apterygogenea für 1910.

vol. 3 p. 204—205. — Collembola der Tribus Neanurini. Caroli, Monit.

zool. ital. vol. 21 p. 321—322. — Bau des Postantennalorgars der Collembola.

Becker, Zeitschr. f. wissensch. Zool. Bd. 94 p. 327—399, 2 Taf.

C'yphoderodes n. g. (C’yphoderus nahesteh.) Silvestri,nEscherich, Termiten-

leben p. 244. — ceylonicus n. sp. p. 244—245 (Ceylon).

Cyphoderus dimorphus n.sp. Silvestri, Boll. Lab. Portiei vol. 5 p. 68 (Mexiko).

Isotoma nivalis (Carl) n.sp. Bäbler, Rev. Suisse Zool. T. 18 p. 905 (Alpen).

Kroll’s Buchdruckerei, Berlin S 14.

ARCHIV

NATURGESCHICHTE,

GEGRÜNDET VON A. F. A. WIEGMANN,

FORTGESETZT VON

W.F. ERICHSON, F.H.TROSCHEL,

E. VON MARTENS, F. HILGENDORF,

W. WELTNER UND E STRAND.

SIEBENUNDSIEBZIGSTER JAHRGANG.

1911.

V. Band. 2. Heft.

HERAUSGEGEBEN

VON

EMBRIK STRAND

KÖNIGL. ZOOLOG. MUSEUM ZU BERLIN.

NICOLAISCHE

VERLAGS-BUCHHANDLUNG R.STRICKER

Berlin.

Inhaltsverzeichnis,

Jahresberichte für 1910.

Seite

Myriopoda . . 2.3.2 2.0 00 ware...» San

Arachnidal! 2a WW... 0. FRE il. Strand

Prototracheats. ....: 2... 20000 SR... Berand. ande

Crustacea.

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Pahtopoda (— Pychogonla). . „2. 70 ee mn Kukicner EB

Myriopoda für 1910.

Von

Embrik Strand.

Publikationen und Referate.

(Anon.). Catälogo sistemätico de la Fauna de las posesiones

espanolas del golfo de Guinea. Segun los datos que se mencionan

en este tomo. In: Mem. Soc. espaü. Hist. nat. I. p. 545—596. 1 läm.

— Chilopoda.

Attems, €. (1). Myriopoden von Madagaskar, den Comoren und

den Inseln Ostafrikas. In: Reise in Ostafrika von A. Voeltzkow,

Bd.3. Stuttgart: E. Schweizerbart 1910. p. 73—115. Mit 3 Tafeln.

1 Karte. 40 fig. — 19 nn. spp. in: Rhysida, Scolopendra, Sphaerotherium,

Agastrophus, Spirobolellus 2, Mystalides n.g. 2, Spirostreptus (2 nn.

subspp.), Scaphiotreptus 6, Prionopetalum, Syndesmogenus, X ystopyge,

Orsilochus. Euspirobolidae, Trigonulidae nn. famm.

— (2). Ergebnisse der mit Subvention aus der Erbschaft Treitl

unternommenen zoologischen Forschungsreise Dr. Franz Werner’s nach

dem aegyptischen Sudan und Nord-Uganda. XVI. Myriopoda. In:

Sitz. Ber. Akad. Wiss. Wien 119. Abt. 1. p. 355—360. 5 Figg. — Führt

5 Arten an, darunter neu: Spinotarsus Werneri n.sp.; kurz beschrieben

wird Bothriogaster egyptiaca Att.

— (3). Myriopoda. In: Wiss. Ergebn. Schwed. Zool. Expd.

Kilimandjaro Bd. 3 Abt. 19. 64 pp. 6 Taf. — 19 nn. spp. in: Orphnaeus,

Ctenorya, Schitzotaenia, Strongylosoma, Sphaeroparia n.g., Elapho-

gonus n.&, Nodorodesmus n.g., Diopsiulus, Spirostreptus, Lopho-

streptus, Odontopyge, Plethokrossus n. g. 2, Haplothysanus n. 2. 2,

Prionopetalum n.8., Harmomastix n. g., Xystopyge n. 8., Syndesmo-

genus n.g. — 1 n. subsp. in Oryptops. Meticne n. g. pro Trigoniulus

bravensis, Spinotarsus n. g. pro Odontopyge (?) anthonotus, Helikochetus

n. g. pro Odontopyge aitemst.

Bäbler, Emil. Die wirbellose terrestrische Fauna der nivalen

Region. Ein Beitrag zur Zoogeographie der Wirbellosen. [Myriopoden

von J. Rothenbühler]. In: Rev. Suisse Zool. 18. p. 761—916. 1 Taf.

Der Abschnitt „Historisches“ (p. 775sq.) enthält einige historisch-

bibliographisch interessante Notizen über Myriopoden. — Im V.Kapitel:

Die Exkursionsgebiete, ihre Biosynoecien, Biocönosen und ihre Fauna

(p. 807sq.) werden Verzeichnisse der an jeder Lokalität zusammen-

gebrachten Arten der verschiedenen Gruppen gegeben, im VI. Kapitel:

Systematik und Verbreitung der für die Physiognomie der nivalen Fauna

charakteristischen Species, wird Zusammenfassendes über die Ver-

breitung der einzelnen Gruppen bezw. Arten geboten. — Die Myrio-

poden sind mit 3 Familien, 7 Gattungen und 8 Arten vertreten. Am

Südabhang des Monte Rosa wurden Diplopoden bis in etwa 3200 m

Höhe, Lithobius in etwa 3537 m gefunden. Die 8 Arten sind: Julus

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 2. 1

2 Myriopoda für 1910.

alemannicus simplex Verh., J. alpivagus Verh., Orthochordeuma pallidum

Rothenb., Atractosoma sp., Ceratosoma Caroli Rothb.,. Trimerophoron

grypischium Rothb., Trimerophorella nivicomes Verh., Lithobius

lucifugus L. K. var. nivalis Rothb. Die Beschreibung letzterer Form

findet sich p. 907. — Literaturverzeichnis p. 912—915.

Benham, W. B. Myriopoda. In: Subantarctie Islands New Zea-

land. I. p. 376.

Blackman, M. W. Spermatogenesis of the Myriopods. VI. An

Analysis of the chromosome group of Scolopendra heros. In: Biol.

Bull. 19. p. 138—160. 2 pls. 4 figg. — Über das Verhalten der Chromo-

somen während der Spermatogenese: ‚it is evident, that during this

very important period of their history the chromosomes show completa

individuality“.

Blanchard, R. Un myriopode dans le conduit anditif externe.

In: Arch. Parasit. 14. p. 350—352. — Geophilus carpophagus.

Brölemann, H. W. (1). Quelques Geophilides des collections du

Museum d’histoire naturelle. In: Bull. Museum 1909. p. 415—432.

— (2). A propos d’un Systeme des Geophilomorphes. In: Arch.

Zool. experim. (Paris) (5) 3. 1909. p. 303—340.

— (3). Biospeologica. XVII. Symphyles, Pselaphognathes,

Polydesmoides und Lysiopetaloides (Myriopodes). (1re serie). Ebenda

(5) 5. p. 339—378. 4 pls. 1 fig. — 3 nn. subspp. in: Polydesmus (3 un.

varr. 1 n.form.). Haploleptodesmus n.g. pro Polydesmus mauritanicus.

— (4). Polydesmiens pyren&ens. In: Bull. Soc. hist. nat. Toulouse.

43. p. 61—84. 5 pls. — 1 n.subsp. 5 nn. varr.

— (5). La haute vallee de la Neste (Myriopodes). In: Bull. Soc.

hist. nat. Toulouse. 41. p. 57—67. (1908). — 2 nu. varr. in: C’ryptops,

Lithobius.

Carl, 3. Notice zoogeographique sur l!’Afrique centrale. In: Arch.

Sci. Phys. (Geneve) 29. p. 94—96.

Carpenter, G. H. Injurious inseets and other animals observed

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Chamberlin, Ralph V. (1). Diplopoda from the Western States.

In: Ann. Ent. Soc. Amer. (Columbus, Ohio) 3. p. 233—262. pls. 30—43.

— 17 nn. spp. in: Lysiopetalum, Conotyla 2, Tingupa n. g. 2, Caseya,

Striaria, Fontaria, Scytonotus, Polydesmus 5, Paraiulus 2 (1 n. var.),

Paiteya n.g. Kepolydesmus n. subg.

— (2). The Chilopoda of California. I. In: Journ. Ent. Pomona

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Ceceoni, Giacomo. Contributo alla Fauna dell’ isola dı Pianosa

nell’ Adriatico. In: Boll. Mus. Zool. Anat. comp. Torino 25. No. 627.

9 pp. — Chilopoda.

Comes, Salvatore. Sui movimento di maneggio e sul loro significato

nella teoria segmentale. In: Biol. Centralblatt 30. p. 81—84. 3 figg.

— Julus.

Publikationen und Referate. 3

Dahl, Svend. Bibliotheca Zoologica Danica 1876—1906. Köben-

havn: J.L. Lybecker. 1910.262pp. 8 °.— Vergl. denArachnidenbericht!

— Die Myriopodenliteratur ist nach dem Register p. 246 am besten auf-

zufinden. Cfr. auch Sachregister p. 230.

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— (2). Pseudoscorpione und Myriopoden des Naturhistorischen

Museums der Stadt Wiesbaden. In: Jahrb. Nass. Ver. f. Naturk.

63. p. 62—65. — An Myriopoden werden 9 Arten aus Deutschland und

7 aus Rußland aufgeführt, darunter eine neue Varietät von Lithobius

curtipes C.L.K.

Evans, T. 3. Bionomical observations on some British Millipedes.

In: Ann. Mag. Nat. Hist. (8) 6. p. 284—291. — Insbesondere über

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Julus und Blaniulus.

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Leach.

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Coleopteren). Mit 1 Karte. Als H.1d. VI. Bandes der: Abh. d. k.-k.

z00l.-bot. Ges. Wien. 202 pp. — Über Myriopoden nur die Mitteilung,

(p. 104), daß: „Über die karpathische Myriopodenfauna liegen nur un-

zureichende Feststellungen vor.‘

Imms, A. D. The habits and distribution of Scutigera in India.

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1*#

4 Myriopoda für 1910.

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Lfg. 3 (1910) p. 902—924.

Merton, Hugo. Forschungsreise in den südöstlichen Molukken

(Aru- und Kei-Inseln) im Auftrage der Senckenbergischen Naturf.

Gesellsch. In: Abhandlg. Senckenb. Nat. Ges. 33. H.1—2. Mit

10 Taf., 2 Karten, 60 Textfig. XI + 208 pp. — Gelegentliche Be-

merkungen über Myriopoden, z. B. p. 193, wo über das Vorkommen

von ,„Unzahl von Juliden, die jeder Beschreibung spottet‘“ zwischen

Warka und Elat berichtet wird.

[Muralevic, V. S.] [Übersicht über die Myriopodenfauna des Kau-

kasus. Teil I.] In: Mitt. Kaukas. Mus. (Tiflis) 5. 1. p. 1—80. 4 Taf. —

Russisch! — Geschichtliche Literaturübersicht. Chilopoda.

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—95 (1908). — Diplopoden, Milben.

Oettinger, R. Über abweichend geformte (atypische) Spermato-

zoen und ihre Bildungsweise bei Myriopoden. In: Sitz. Ber. Ges. Naturw.

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Philiptschenko, Jur. Über die Abstammung des Fettkörpers und

der Nephrozyten bei den Arthropoden. In: Trav. Soc. nat. St.-Pöters-

bourg 0. R. T. 37. Livr. 1. p. 242—255 (Russisch!) und p. 270—272

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Pocock, R. 3. Diplopoda [in: Biologia Centrali - Americana].

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Puhlmann, E. Einführung fremder Tiere in die Fauna Krefelds.

In: Mitt. Ver. f. Naturk. Krefeld 1910. p. 60. — Mit Farbhölzern aus

Südamerika wurden 6 Arten Chilopoden eingeführt.

Radl, Em. Über spezifisch differenzierte Leitungsbahnen. In:

Anat. Anz. 36. p. 385—401. 2 figg. — Leitungsbahnen zwischen den

optischen Zentren; bipolare Zellen. Julus.

Reinecke, Georg. Beiträge zur Kenntnis von Polyxenus. In:

Jenaische Zeitschr. f. Naturw. 46. p. 845—896. 5 Taf. — Zur Mor-

phologie, Anatomie und Biologie genannter Art. Das Nervensystem

wird kurz, die Tracheen, der Darmkanal und die weiblichen Geschlechts-

organe werden ausführlicher besprochen. Die beiden Malpishischen

Gefäße enden blind. Im Kopfe sind außer den tubulösen Speichel-

drüsen zwei Drüsenpaare vorhanden, die den Speicheldrüsen von Julus

homolog sein dürften. Die Sigmen sind sehr klein und führen in Tra-

cheentaschen, deren 1. und 2. Paar blind enden, während die übrigen

sich in eine feine Trachee fortsetzen. — In den Receptacula seminis

der 22 wurde nie Sperma gefunden. In den Eiern sind Dotterkerne

enthalten.

Ribaut, H. (1). Nouveau genre de Glomeroidea. In: Bull. Soe.

hist. nat. Toulouse. 42. p. 29—32. 2 figg. (1909). — Adenomeris hispida

n. 8. n. Sp.

Publikationen und Referate. 5

— (2). Notes myriopodologiques. Ebenda. 41. p. 99—108. 12 figg.

(1908). — 2 nn. spp. in: Heterozonium.

— (3). Myriopodes de la Montagne-Noire. In: Bull. Soc. hist.

nat. Toulouse. 42. p. 142—151. 3 figs. (1909). — 2 nn. spp. in: Zepto-

phyllum, Trichoblaniulus.

— (4). Races de Stigmatogaster gracilis (Mein.). In: Arch. zool.

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Schil, L. et Funck, Ch. Sur la formation de l’appareil nucleolaire

de l’ovocyte de ‚„‚Glomeris“‘ marginata“. In: C. R. Ass. Anat. Reun.

12. p. 89—94. 6 figg.

Schultze, Arnold. Das Sultanat Bornu, mit besonderer Berück-

sichtigung Deutsch-Bornus. In.-Dissert. Bonn. Langensalza 1910.

128 pp. 1 Karte. — Fauna p. 61—92; p. 89 wird das Vorkommen von

giftigen „Hundertfüssern, Scolopendra‘“ und „riesigen, fingerdicken

Julusarten‘‘ angegeben.

Silvestri, F. (1). Materiali per una revisione dei Diplopoda Onisco-

morpha. I. Specie del genere Sphaerotherium dell’ Afrika meridionale

a me note. In: Boll. Laborat. di Zoologia gener. e agraria. Portici. IV.

p. 180—220. 22. — Bestimmungstabelle, Beschreibungen und Ab-

bildungen von 21 südafrikanischen Sphaerotherium-Arten, von denen

14 neu ı sind, die anderen werden z. T. nach Typen beschrieben.

— (2). Contribuzione alla Conoscenza dei Miriapodi dell’ Uganda.

I. (als V. Teil von: Collezioni zoologiche fatte nell’ Uganda dal Dott.

E. Bayon). In: Annali Mus. Civ. Storia Nat. di Genova (3) IV (XLIV).

p- 457—478. Mit 9 Figg. — Behandelt 5 Chilopoden und 11 Diplo-

poden; einige werden nur kurz erwähnt, beschrieben und abgebildet

werden: Üryptops bayoni n.SP., Habrodesmus vagans (Carl), "Eviul-

soma (n. 8.) cavallii Silv., Rhapidostreptus (m. g.) virgator Silv., Analo-

costreptus (D. &.), Metriostreptus (n. 8.) bayoni n.sp., Lophostreptus

kandtı Carl, Odontopyge bayoni n.sp. — Die neue Gattung Zwul-

soma ist mit Scolodesmus Ck. am nächsten verwandt, aber insbesondere

durch die kurzen Antennen und Beine abweichend, ARhapidostreptus

n.g. weicht von Archispirostreptus Silv. insbesondere durch die Ko-

pulationsorgane ab, Analocostreptus n.g. zeichnet sich aus durch

„colli forma et praesertim segmentorum sulco transversali obsoleto,

subnullo, nec non organi copulativi forma.“

— (3). Descrizioni preliminari dinuovi generi di Diplopodi. 1. Poly-

desmoidea. In: Zoolog. Anz. 35. p. 357—364. 10 figg. — 9 nn. spp.

n: Taphrodesmus n. g., Peridysodesmus n. g. 2, Lathurodesmus n. 8.

Myrmecodesmus n.%, Prosopodesmus n.g., Asphalidesmus n.&,

Agathodesmus n.8., Eutrichodesmus n.g., Agnurodesmus n.g. pro

Trignostylus verrucosus, Nearctodesmus pro Polydesmus cerasinus.

— (4). Beschreibung der von K. Escherich auf Ceylon gesammelten

termitophilen Thysanuren, Myriapoden sowie einer unbekannten,

mimetischen, termitophilen Coleopterenlarve. In: K. Escherich,

Termitenleben auf Ceylon. Jena: Gustav Fischer 1911 [1910] p. 237

—24

6 Myriopoda für 1910.

— (5). Contribuzioni allo conoscenza dei Chilopodi. IIL.—IV.

In: Boll. Lab. zool. Portiei 4. p. 38—65. 16 Figg. — III. Descrizione

di aleuni generi e specie di Henicopidae. IV. Descrizione di Geophilo-

morpha. — 3 nn. spp. in: Esastigmatobius n.g., Apogeophilus, La-

myctinus.

— (6). Descrizione di una nuova famiglia di Diplopoda Cambaloidea

del Tönkino. In: Boll. Lab. Zool. Portiei 4. p. 66—70. 5 figg. — Perr-

cambala n. g., orientalis n.sp. Pericambalidae n. fam.

Snodgrass, R. E. The Thorax of Insects and the articulation of

the wings. In: Proc. U. $. Nat. Mus. 36. p. 511-595. 6 Figg. Taf. 40

—69. — Auch über den Thorax der Chilopoden.

Strand, Embrik (1). Myriopoda für 1905 [Jahresbericht]. In:

Arch. f. Naturg. 72. 1906. Bd. 2. H.2 (1910) p. 741—749 = Deutsche

Ent. Zeits. 1906. H. 3 (1910) p. 741—749 = Ber. Leist. Entom. 1905.

Lfg. 3 (1910) p. 741—749.

— (2). Myriopoda für 1906 [Jahresbericht]. Ebenda. 73. Bd.

2.H.2 (1910) p. 112—119 = Ber. Leist. Ent. 1906. Lfg.3 (1910)

p. 112—119 = Deutsche Entom. Zeits. 1907. Beih. Lfg. 3. (1910)

p. 112—119.

— (3) siehe Ellingsen (1).

[Timotheew, T. E.] [Deux &speces nouvelles des Diplopodes.]

(Russisch!). In: Trav. Soc. Nat. Kharkov T. 3]. p. 273—292. 1 pl.

(189%). — 2 nn. spp. in: Trachynotus n. ., Julus.

Verhoeff, K. W. (1). Über Diplopoden. 11.—15. Aufsatz (31.—55.):

Beiträge zur Kenntnis der Glomeriden, Juliden, Ascospermorpha

[reete: Ascospermophora] und Lysiopetaliden, sowie zur Fauna Si-

ziliens. Untersuchungen über Art- und Gruppensystematik, Mor-

phologie, nachembryonale Entwicklung, Biologie und Geographie.

In: Nova Acta. Abh. der Kaiserl. Leop.-Carol. Deutschen Akademie

der Naturforscher. XCII. No. 2. p. 139—448. Mit 9 Taf. u. 51 Text-

abbildungen.

11. Diplopoden-Aufsatz: Glomeridae. I. Geoglomeris n. 8.

Glomerellina Silv. und die italienischen @ervaisia-Arten. Zur mor-

phologisch-biologischen Bedeutung des Brustschildes. Die verwandt-

schaftliche Stellung von Glomerellina. Schlüssel für die neuen

Gattungen der Glomeriden (p. 147—163). — Glomerellina Silv. ist

myrmecophil. @eoglomeris n.g. erinnert etwas an kleine jugendliche

Glomeris-Arten, ist aber sofort durch Augenmangel zu unterscheiden.

Beschreibung der Glomerellina und zweier Arten. Bedeutung des

Brustschildes insbesondere bei @lomerellina und @ervaisia. Glomerellina

steht unter den typischen Glomerinae der Gattung Glomeridella am

nächsten, wird aber als Typus einer neuen Subfamilie aufgefasst.

12. Diplopoden-Aufsatz: Julidae. II. Zur Kenntnis der

Gattung Pachyiulus. Schlüssel der Pachyiulus - Untergattungen

(p. 164—178). Darin auch Schlüssel für die 20 bekannten Formen

der Untergattung Pachyiulus. — Ill. Juliden-Gruppierung, Schrzo-

phyllini n.trib. und Stellung von Schizophyllum (p.179—185). — IV.

Schizophyllum Verh. (p. 186—207). Vergleichende Morphologie der

Publikationen und Referate. Q

Schizophylium-Gonopoden. An den hinteren Gonopoden von Schizo-

phyllum hat man zu unterscheiden: 1. Mesomerite (mit Innen- und

Hinterast); 2. Solänomerite und zwar: a) eigentliches Rinnenblatt,

b) Fovea mit Randwulst, c) die Coxaldrüse, d) Nebenlappen des

Rinnenblattes und e) den mehr oder weniger ausgeprägten Rinnen-

blattfortsatz; 3. Gonocoxite und zwar: a) eigentliche Coxite, b) Para-

coxite. Schlüssel der 5 (2 nn.] Schizophyllum-Untergattungen. Be-

schreibung von 7 nn. Schizophyllum-Arten. — V. Superfamilien der

Proterandria (p. 207—213). Stellt folgendes System auf:

Klasse Diplopoda

A. Unterklasse Pselaphognatha Latzel 1884.

B. hr Chilognatha Latreille 1802.

I. Ordnung: Proterandria Verh. 1894.

1. Unterordnung: Proterospermophora Verh. 1900.

a) Superfamilie Polydesmoidea Verh.

b 2 Lysiopetaloidea Verh.

2. Unterordnung: Ascospermophora Verh. 1900.

a) Superfamilie Striarioidea Cook 189.

b) a Chordeumoidea Verh.

3. Unterordnung Opisthospermophora Verh. 1900.

a) Superfamilie Symphyognatha Verh.

«) Fam. Julidae Verh.

ß) Fam. Paraiulidae Bolmann 1893 u. Brölemann 1892.

b) Superfamilie C’horizognatha Verh.

4. Unterordnung: Colobognatha Br. 1834.

Il. Ordnung: Opisthandria Verh. 1894.

VI. Die älteren Entwicklungsstufen der männlichen Juliden,

namentlich die Schaltstadien (p. 213—223). Für die Beurteilung der

Schaltstadien möge als Anhalt u. a. folgendes dienen: 1. Ein Schalt-

stadium ist an und für sich immer morphologisch zu charakterisieren ;

2. aus dem Vorhandensein eines Schaltstadiums folgt noch nicht die

Existenz von Doppelmännchen. 3. Wenn Schaltstadien vorhanden

sind und dieselben durch Größe und Segmentzahl einen Teil der zu-

gehörigen Reifemännchen übertreffen und zwar in einer gewissen

Variationsbreite, so ist die betreffende Art durch Doppelmännchen

ausgezeichnet. — VII. Meicrobrachyiulus und Brachyiulus (p. 224

— 256). 2 nn. Microbrachyiulus-Arten. Die hinteren Gonopoden von

Mierobrachyiulus. Schlüssel der 9 Microbrachyiulus-Arten; sie bevor-

zugen die Küstengebiete und sind nie im Hochgebirge und in Gebirgs-

wäldern gefunden. Gattung Brachyiulus Berl. Verh. nebst Unter-

gattungen und einer neuen Art. — VIII. Oylindroiulus und Ophriulus

(p. 236—244) mit vier Einzelbeschreibungen.

13. Diplopoden-Aufsatz: Ascospermophora. IX. Hetero-

poratia, Thaumaporatia und Mastigophorophylion (p. 245—269). Vor-

stufen der Thaumaporatia-Männchen. Vergleich zwischen Hetero-

poratia und Thaumaporatia. Untergattungen von Heteroporatia. Die

3 Arten und die Larven von T’haumaporatia. Mastigoporatia. Haplo-

8 Myriopoda für 1910.

poratia nebst Gonopoden-Morphologie und Funktion. Xrphochaete-

poratia. Mastigophorophyllon. — X. Prodiaes und Anthroleucosoma

(p. 269— 270). — XI. Verhoeffia (p. 271—274). — XII. Orobainosoma

(p. 274—280), eine n. sp. nebst zur Morphologie des Gonopoden-Ringes.

— XIII Über die Vulven von Orobainosoma, Chordeumiden und

Atractosoma und über Begattungszeichen bei den Ascospermophora

(Cyphopodite) (p. 280—300), darin auch ein historisıher Rückblick

(p. 296— 300). — XIV. Die Doppelsegmentnatur der vorderen Rumpf-

ringe der Diplopoden und die Abteilungen des Rumpfes derselben

(Cyphopodensegment). (p. 301—308). Eine klare und für alle Gruppen

gleichlautende Rumpfeinteilung erblickt Verf. nur darin, daß man

a) als Thorax das Collum und die beiden folgenden Ringe mit je emem

Beinpaar bezeichnet, als b) Abdomen aber den übrigen Rumpf. —

Zusammenfassung über die Vulven der Ascospermophora. — XV.

Attemsia (p. 309—314). Beschreibung zweier Novitäten und Be-

merkungen über verwandte Formen. — XVI. Ceratosoma (p. 314—5)

n.sp. — XVI. Ozydactylon (p. 316—8). 2 Novitäten. Als Pseudo-

heirite bezeichnet Verf. Verwachsungen von Telopodit, Tra heen-

taschen und Sternitseitenlappen. — XVIII. Craspedosoma (p. 318

— 327); wird in zwei Untergattungen geteilt: Oraspedosoma u. Prino-

soma, erstere in 2 Sektionen: Inflatı und Processigeri. — Synischio-

soma n.g. Neue Craspedosoma. Bestimmungstabelle. — XIX. Tri-

merophoron (p.327—331). 1 n.sp. Über Trimerophorella. — XX.

System der Ascospermophora (p. 331—345). Geschichtliches. Be-

stimmungstabelle der 14 Familien nebst zugehörigen Unterfamilien

der Subfamilie Chordeumoidea. — XXI. Rückblick auf die Verbreitung

der Familien der Ascospermophora (p. 345—351).

14. Diplopoden-Aufsatz: XXII. Fauna von Sizilien und

Südwest-Kalabrien (p. 351—366). Kritik einiger Angaben von Sil-

vestriund Berlese. Besprechung der vom Verf. auf Sizilien festgestellten

Diplopoden, darunter auch Novitäten.

15. Diplopoden-Aufsatz: Lysiopetalidae. XXIII. Callipus

(p. 366— 384). Callipus-Gonopoden. Callipus-Arten, mit Schlüssel.

Über die vorderen Beinpaare von Callipus bei d und 9. Bemerkungen

zu den Callipus-Arten. — XXIV. Prolysiopetalum n. 8. (p. 384—3%).

— XXV. Neues System der Lysiopetaloidea (p. 390—402). mit Schlüssel

für die Gruppen und Gattungen. — XXVI. Neue Untersuchungen

über mitteleuropäische COraspedosoma-Formen der Untergattung Cras-

pedosoma Verh. (p. 403—437). Systematische Bedeutung des Podosternit

und der Cheirite. Vergleichend-morphologische Auffassung des Podo-

sternit. Schlüssel für die Arten, Rassen und Varietäten der Unter-

gattung Craspedosoma Verh. Geographische Verbreitung der Gruppe

des Craspedosoma rawlinsi. Verwandtschaftliche Beziehungen. Be-

merkungen zu einzelnen Arten. Vorkommen der Oraspedosoma-Arten.

— (2). Über Diplopoden. 17. (37.) Aufsatz: Deutsche Craspedo-

somiden. In: Sitz. Ber. Ges. nat. Freunde Berlin 1910. p. 19—62.

2 Taf. — 9 nn. spp. in: Craspedosoma 6 (4 nn. subspp.), Machevrio-

phoron 3 (1 n.subsp.). Helvetiosoma, Pyrgocyphosoma nn. subgg.

Tatrasoma n. g. pro Atractosoma carpathicum.

Publikationen und Reterate. 9

(3). Über Diplopoden: 18. (38.) Aufsatz. Die nordböhmisch-

sächsische Fauna und ihre Bedeutung für die Zoogeographie Mittel-

europas. In: Sitz. Ber. Ges. Iris (Dresden) 1910. Abh. p. 20—66. —

2 nn. spp. in: Geoglomeris n. g., Mastigophorophylion, 5 nn. subspp.

in: Craspedosoma, Heteroporatia 2. 3 nn. varr. in: Glomeris, Noporulus,

Oylindrovulus.

— (4). Über Diplopoden: 19. (39.) Aufsatz. Juliden und Asco-

spermophora. In: Jahresh. Ver. Nat. Württemberg 66. p. 377—398.

2 Taf. — 1 n.sp. in: Micropodoiulus. 4 nn. subspp. in: Cylindrovulus

(2 nn. varr.), Julus (2 nn. varr.), Craspedosoma 2. 3 nn. varr. in:

Leptoiulus, Leptophyllum 2. Auch Angaben zur Morphologie und

Physiologie der Gonopoden von Cylindrovulus nitidus, über die Hüft-

fortsätze, Hüftdrüsen und Begattungszeichen von Julus liqulifer,

die Gonopoden und Pseudocheirite von Orthochordeuma germanıcum,

ferner über Einrichtungen zur Sicherung der Befruchtung auf Um-

wegen bei den Chordeumiden.

— (5). Über Diplopoden. 41. Aufsatz: Indomalayische Glomeriden.

In: Sitz. Ber. Ges. naturf. Fr. Berlin 1910. p. 240—249. 1 Taf. —

3 an. spp. in: Malayomeris n. g., Hiyleoglomeris n. g. 2.

— (6). Deutsche Namen für die Myriopoden-Hauptgruppen. In:

Zoolog. Anz. 55. p. 630—633.

— (7). Gymandromorphismus bei einem Juliden. Ebenda p. 733

— 135. — Tachypodoiulus.

— (8). Über Diplopoden. 42. Aufsatz: Neue Polydesmiden aus

Mitteleuropa und ihre Verwandten. In: Zool. Anz. 36. p. 132—145.

— 2 nn. spp. in: Scytolosoma n. g., Titanosoma n. g., Hispanoidesmus

n. g. pro Polydesmus part.

— (9). Über Diplopoden. 43. Aufsatz: Mitteilung betreffend

Oekologie, Einrollungsarten und Metamorphosecharakter bei Glomeris.

In: Zool. Anz. 36. p. 298—304, 305—315. 10 figg.

Wernitzsch, W. Beiträge zur Kenntnis von Craspedosoma simile

und des Tracheensystems der Diplopoden. In: Jenaische Zeits. f.

Naturw. 46. p. 225—284. 2 Taf. — Morphologisches, Biologisches,

Anatomisches (Darmkanal, Hautdrüsen, Tracheensystem). Die vier

vordersten Segmente werden als doppelte betrachtet. Die vorderen

Gonopoden lassen sich als solche erkennen im Stadium von 26, die

hinteren in solehem von 28 Segmenten. Die beiden Drüsen, die in die

Vulva münden, sind umgebildete Coxalsäckchen. Der Darmkanal

ist gebaut etwa wie bei Julus. Im Mitteldarm lassen sich vom Lı men

nach aussen aus unterscheiden: eine Schleimschicht, eine Cuticula,

ein Zylinderepithel, Basalmembran, Muscularis, Peritonealepithel.

Das dritte Paar der Speicheldrüsen ist den Speicheldrüsen von Per:-

patus homolog und liefert wahrscheinlich ein Sekret zum Lösen des

Sshmutzes beim Putzen des Körpers. Die Malpighischen Gefässe sind

sehr lang. An der Basis der 6 Rückenborsten auf der hinteren Hälfte

jedes Segments münden Hautdrüsen aus. Alle Tracheen sind unter-

einander gleich. Die Stigmen tragen keine Reusen. — Cr. und Hetero-

poratia werden höchstens ein Jahr alt.

10 Myriopoda für 1910.

Übersicht nach dem Stoff.

Morphologie: Verhoeff, (1 2, 4), Brölemann (2), Wernitzsch, Reinecke, Mu-

raleviö, Oettinger, Blackman, Comes, Philiptschenko, Snodgrass. — Physiologie:

“ Verhoeff (4), Comes. — Entwieklung: Lignau, Oettinger, Schil u. Funck, Ver-

hoeff (1, 4, 9), Evans, Reinecke, Imms, Brölemann (3), Blanchard, Silvestri (4),

Blackman. — Pseudoparasitismus: Galli-Valerio. — Variation: Verhoeff (4).

— Biologie: Evans, Wernitzsch, Reinecke, Verhoeff (9). — Gynandromerphismus:

Verhoeff (7). — Jahresberichte: Strand (1, 2), Lucas. — Bibliographie: Sv. Dahl.

— Schädlichkeit (Blaniulus): Carpenter, Florentin, Noel. — Führer British

Museum: Hirst. — Deutsche Myriopoden-Namen: Verhoeff (6). — Vorkommen

in der nivalen Region: Bäbler, in Höhlen: Bröleman (3).

Faunistik.

Europa.

Ellingsen (2), Verhoeff (1—3).

Deutschland: Ellingsen, Wernitzsch, Verhoeff (4, 8), Puhlmann. — Nor-

wegen: Ellingsen (1), Strand (3). — Rußland: Muralevit, P. T. Lignau, Verhoeff

(4), Ellingsen (2). — England: Jackson, Evans (in: Ann. Scott. Nat. Hist. 1910.

p. 251), Denny. — Frankreich: Ribaut, Brölemann (3, 5). — Alpen: Rothen-

bühler in Bäbler. — Italien: Cecconi. — Montenegro: Ribaut (3).

Asien.

Kaukasus: Lignau, Muralevic. — Japan: Silvestri (1). — Tonkin: Silvestri

(2, 3). — 0Orientalische Scolopendriden: Gravely (2). — Indomalayische Glo-

meriden: Verhoeff (5). — Indien: Imms, Gravely (1). — Ceylon: Gravely (3),

Silvestri (4). — Batavia: Silvestri (3). — Molukken: Merton.

Afrika.

Central- Afrika: Carl, Schultze. — Sudan: Attems (2). — Uganda: Attems

(2), Silvestri (2). — 8. Afrika: Silvestri (1). — Kilimandjaro: Attems (3). —

Madagaskar: Attems (1). — Comoren: Attems (1). — Ostafrikanische Inseln:

Attems (1).

Amerika.

Vereinigte Staaten: Chamberlin (1, 2). — Zentralamerika: Pocock. — Mexico:

Silvestri (3). — Guyana: Brölemann (1). — Guayaquil: Silvestri (3). — Argen-

tinien: Silvestri (5). — Chile: Brölemann (1).

Australien u. Polynesien.

N. S. Wales: Silvestri (3). — Tasmanien: Silvestri (3). — Mariannen: Bröle-

mann (1).

Systematik.

Chilopoda.

Ch. aus England: Jackson, Evans (in: Ann. Scott. Nat. Hist. 1910. p. 251).

Alipes crotolus, Gerst. Silvestri (2).

Alloschizotaenia n. g., Type minuta Silvestri Brölemann (2).

Apogeophilus bonariensis n.sp. Argentinien Silvestri (5).

Systematik. 11

Brachygeophilus n.g. Geophilidarum, Type: truncorum Berg. et Mein., Brölemann (?).

Chalandea n. g. Geophilidarum, Type: pinguis Bröl. Brölemann (2).

Cryptops Bayoni n. sp. Uganda Silvestri (2). — 1 n. subsp. Kilimandjaro

Attems (3).

Esastigmatobius n. g. Henicopidarum, japonicus n.sp. Japan Silvestri (5).

Geophilomorpha, gen. u. spp. Silvestri (5).

Geophilus carpophagus Blanchard.

Gnathoribautia n. g. Geophilidarum, Type: agricola Att. Brölemann (2).

Henicopidae spp. et gen. Silvestri (5).

Lamyctes pinampus n.sp. Nevada u. Kalifornien Chamberlin (2).

Lamyctinus n. g. Henicopidarum bei Lamyctes, Type: coeculus Bröl. Silvestri (5).

Lithobius, Bestimmungstabelle, wutahensis var.n. tiganus Kalifornien, manni

n.sp. Kalifornien, manni var.n. pia ebenda Chamberlin (2). — curtipes

var. n. faurica Krim Ellingsen (2). — lucifugus subsp. n. nivalis Alpen Rothen-

bühler in Bäbler. — mutabilis L. K. v. taurica Att., forficatus L. Ellingsen (2).

Mecistocephalus punctifrons Newp. Silvestri (2).

Metalithobius subg. n. von Lithobius Chamberlin (2).

Prionothalthybius subg. n. von Thalthybius, Type: perrieri n. sp. [nicht beschrieben!

Brölemann (2). — P. subg.n. von Thalthybius Brölemann (1).

Rhysida intermedia n.sp. Insel Pemba Attems (1).

Ribautia n. g. @eophilidarum, Type: R. bouvieri n. sp. [nicht beschrieben !]

Haut Carsevene Brölemann (1).

Scolopendra madagascariensis n.sp. Madagaskar Attems (I). — morsitans L.

Attems (2).

Scolopendridae, orientalische spp. Gravely (2).

Scutigera aus Indien Imms. — coleoptrata Muralevic. — oxypyga n.sp. Taurien

l.c. — aethiops Silv. Silvestri (2).

Stigmatogaster gracilis occitanica subsp. n. S. Frankreich Ribaut (4).

Thalthybius (Prionothalthybius) Perrieri, Haut Carsevene, T. microcephalus

Mariannen nn. spp. Brölemann (1).

Trachycormocephalus afer Mein. Attems (2), Silvestri (2).

Trematorya n.g. Himantariidarum, Type: sternalis n.sp. [nicht beschrieben !]

Brölemann (2). — sternalis n. sp. Chile Brölemann (1).

Zugetobinae subfam. n. Henicopidarum Chamberlin (2).

Symphyla.

Englische $S. Jackson.

Scutigerella unguiculata subsp. n. indica Gravely (1). — unguiculata, orientalis,

Ceylon Gravely (3).

Pauropoda.

(vacant.)

Diplopoda.

Englische D. Jackson, Evans (in: Ann. Scott. Nat. Hist. 1910. p. 251). —

Centralafrikanische Carl, centralamerikanische Pocock. — Embryologie

N. G. Lignau.

Acanthopetalum Verh. Verhoeff (1).

Adenomeris hispida n.g. n. sp. Ribaut (1).

Agastrophus Voeltzkowi n.sp. Comoren Attems (1).

12 Myriopoda für 1910.

Agathodesmus n.g. Polydesmoidearum, steeli n.sp. N. S. Wales Silvestri (3).

Agnurodesmus n.g. für Trigonostylus verrucosus Bröl. Silvestri (3).

Analocostreptus n.g. bei Archispirostreptus, Type: Archip. ibanda Silvestri (2).

Anocheta Ck. p. 208 Verhoeff (1).

Anthroleucosoma banaticum Verh. Q 1. c.

Apfelbeckia Verh. 1.c.

Apfelbeckiellini Verh. 1.c.

Ascospermophora, Unterordn. Verhoeff (1).

Ascospermophora Chordeumoidea, System nach Verhoeff (1):

1. Fam. Trachysomidae Att. (hierhin Trachysoma, Acrochordum Att., Chamae-

soma Rib.).

2. Fam. C'hordeumidae Verh.

1. Unterfam. Chordeuminae (Chordeuma C.K., Microchordeuma Verh.).

2. Unterfam. Orthochordeuminae Verh. (Orthochordeuma Verh.).

. Fam. Metopidiotrichidae Att. (Metopidiothrix Att.).

4. Fam. Conotylidae Verh. (Eudigona u. Apodigona Silv., Conotyla, Zygonopus

u. Trichopetalum Ck.).

5. Fam. Caseyidae Verh. (Caseya Ck.).

6. Fam. Mastigophorophyllidae Verh. (Mastigophorophyllon, Heterobraueria,

Heteroporatia, Thaumaporatia Verh.).

7. Fam. Underwoodiidae Verh. (Underwoodia Ck.).

8. Fam. Diplomaragnidae Att. (Diplomaragna Att.).

9. Fam. Orobainosoma u. Hylebainosoma Verh.).

. Fam. Verhoeffidae Verh. (Verhoeffia Bröl.).

. Fam. Neoatractosomidae Verh. (Neoatractosoma Silv., Trimerophoron

Roth., T’rimerophorella Verh. und (?) Microbrachysoma Verh.).

12. Fam. [Anthroleucosomidae Verh. (Anthroleucosoma Verh., Prodicus Att.).

13. Fam. Heterolatzeliidae Verh. (Heterolatzelia Verh.).

14. Fam. Craspedosomidae Verh.

1. Unterfam. Entomobielziinae Verh. (4 genera).

2. Unterfam. Rothenbühleriinae Verh. (Rothenbühleria Verh.).

3. Unterfam. Attemsiinae Verh. (2 Tribus, 3—4 genera).

4. Unterfam. Craspedosominae Verh. (3 Tribus, viele genera).

Aspholidesmus n. g. Polydesmoidearum, leae n.sp. Tasınania Silvestri (3).

Attemsia dolinense n. sp., A. stygium subsp. n. carniolense Krain Verhoeff (1).

— falciferum Verh. 1. c.

Atractosoma, Vulven I. c.

Blaniulus sp. Carpenter.

Bothriogaster egyptiaca Att. Attems (2).

Bothroiulus Verh., Subg. von Schizophyllum Verhoeff (1). — sabulosum Latz.,

mediterraneum Latz., hispanicum n.sp., porathi Verh., punicum Bröl. I. c.

Brachydesmus proximus alnorum Verhoeff (1). — brunneus 1. c.

Brachyiulus, mit Pachyiulus vergl. Verhoeff (1). — Br., Schlüssel zu den 5 Unter-

gattungen Verhoeff (1). — B. (Chromatoiulus) aetnensis n. sp., Aetna I.c. —

margaritatus Fanz., pusillus Latz. 1. c.

Brachyiulini Verh. Verhoeff (1).

Broelemannia Verh. Verhoeft (1).

Systematik, 13

Callipodella Verh. Verheoeft (1).

Callipus, Gonopoden Verhoeff (1). — Schlüssel der Arten, die vorderen Beinpaare

l. ec. — longobardius n. sp. Como, spezianus Verh., sorrentinus n. sp. sorrent.

cum v. olevanensis Verhoeff (1). — siculorum n. sp. Sicilien 1. c.

Caseya irritans n. sp. Oregon Chamberlin (1).

Ceratobrachyiulus Verhoeff (1).

Ceratosoma verbani n.sp. Laveno am Langensee Verhoeff (1). — caroli Bäbler.

Chordeumidae, Vulven Verhoeff (1).

Chordeumoidea als Unterordnung I. e.

Colobognatha als Unterordnung Verhoeff (1). — Verwandtschaft zu den Opistho-

spermophora 1. €.

Conotyla deseretae Utah, coloradensis Colorado nn. spp. Chamberlin (1).

Craspedosoma, in 2 Subgenera geteilt Verhoeff (1). — nn. spp. u. subspp.

aus Deutschland u. Österreich Verhoeff (1) u. (2), je eine subsp.! in

(3) u. (4). — simile Wernitzsch. — savonense n. sp., Savona, Ferrania

l. ©. — brunatense n. sp. Como, taurinorum serratum Roth. I. ec. --

simile, rawlinsi I. ce. — 6 nn. spp. und 4 nn. subspp. Deutschland Verhoeff (2).

— suevicum Verh., wehranum Verh., vomrathi Verh., simile, bosniense,

transsilvanicum, simile mit flg. subsp.: s. fischeri, s. germanicum, s. rhenanum,

s. balticum (diese mit 2 vaır.: dormeyeri u. balticum [f. pr. der subsp.]); irans-

silvanicum mit flg. subsp.: t. madidum n. subsp. (Gmunden), t. traunianum

n. (Traunkirchen), 2. constrictum n. (Gmunden), £. plwviale n. (Traunkirchen),

t. banaticum n. (Herculesbad), i. frondicolum Verh. Verhoeff (1). — Cr.,

Schlüssel für die Formen der Untergattung C. p. 410 sq. Verhoeff (I). —

laurinorum, rawlinsi Latz. cum v. dolinense Verh., alemannıcum Verh. cum

subsp. n. alsaticum (Elsaß) u. var. rufachense, subsp. nn. brevilobatum

und bavaricum (beide aus Süddeutschland, letztere mit 5 varr.) I. e.

Craspedosomatidae, Cooks System kritisch bsprochen, p. 208 sq. Verhoeff (1).

Cylindroiulus (Anoploiulus) aetnensis n.sp. Aetna Verhoeff (1). — latzeli 1. e.

— nitidus subsp. n. rhenanus, varr. n. medius, fayi Deutschland Verhoeff (4).

— silvarum, londinensis, nitidus Ellingsen (2).

Cyphobrachiulus, Untergattung von Brachyiulus Verhoeff (1).

C'yphocallipus n.g. bei Lysiopetalum, excavatus n. sp. Süd-Spanien Verhoeff (1).

Deuteroiulinae Verhoefi (1).

Diplocheta Ck. p. 208 Verhoeftf (1).

Diplopoda cambaloidea Silvestri (6).

Diplopoda Proterandria, System p. 210 sq. Verhoeff (1).

Dischiopetalum Verh. Verhoeff (1). — illyricum Latz. 1. e.

Dolichoiulus subg. von Pachyiulus Verhoeff (1).

Bleutheroiulus Verh., subg. von Schizophyllum Verhoeff (1). — E., Bestimmungs-

tabelle flg. spp.: oliveirae Verh., lusitanum Verh., armatum n.sp., dorso-

vittatum nebst n. subsp. Verhoeff (1).

Diopsiulus 1 n.sp. Attems (3).

Dorycallipus n.g. bei Lysiopetalum, arcuum n.sp. Südspanien Verhoeff (1).

Eutrichodesmus n.g. Polydesmoidearum, demangei n.sp. Tonkin Silvestri (3).

Eviuliosoma n.g. bei Scolodesmus, Type Julidesmus cavallii Silv. Silvestri (2).

Fontaria tuobita n.sp. Neu Mexico Chamberlin (1).

Geoglomeris n.g. bei Glomeris, Type: subterranea n. sp. Deutschland Verhoeff (3)u.(1).

14 Myriopoda für 1910.

Gervaisia, mit Glomerellina vergl. Verhoeff (1). — @., italienische spp. Verhoeff

(1). — albanensis n. sp. Albanergebirge 1. c. — cultrifera, apenninorum Verh.,

pyrenaica, multiclavigera, declivis, 1. e.

Glomerellinae n. subf.. hierzu nur Glomerellina Silv. Verhoeff (1).

Glomerinae Verh. mit Übersicht der 4 Gattungen Verhoeff (1).

Glomerellina Silv. (= Myrmecomeris Verh.) Verhoeff (1). — convolvens n. sp. Süd-

italien l. ec. — laurae Silv. lc.

Glomeridella, mit Glomerellina vergl. Verhoeff (1).

Glomeris marginata Vill., hezxasticta Br. v. intermedia Latz. Ellingsen (2).

Glomeris Latr. Verhoeff (1). — Oekologie, Einrollungsarten, Metamorphose

Verhoeff (9). — G.limbata Evans. — distichella varr. nn. randazzensis u.

normannorum Italia Verhoeff (1). — Biol. u. Larven Verhoeff (9).

Habrodesmus Cagnii Silv., vagans Carl, Silvestri (2).

Haploleptodesmus n. g. bei Leptodesmus, Type: Polydesmus mauritanicus

Lucas, mauritanicus var. n. geniculatus Brölemann (3).

Haploporatia, Gonopoden, Schlüssel der Rassen: simile subspp. tirolense Tirol,

eremita Sachsen Verhoeff (1).

Haplothysanus n.g. cum 2 nn. spp. Kilimandjaro Attems (3).

Harmomastix n.g. cum 1 n.sp. Kilimandjaro I. e.

Helikochetus n. g. pro Odontopyge altemsi Attems (3).

Helvetiosoma n.g. für Craspedosoma blanci u. montemorensis Fa@s Verhoeft (2).

Hemipodoiulus subg. von Schizophyllum Verhoeff (1). — moreleti Luc., cervinum

n. sp. Sierra Estrella, bipartitum n. sp. Nordspanien I. e.

Heterocraspedum subg.n. von Prolysiopetalum Verhoeif (1).

Heteroporatia mit Thaumatoporatia verglichen, in 3 Subgenera geteilt: vihor-

laticum subsp. n. albiae, simile subsp. n. eremita Deutschland Verhoeff (3).

— vihorlaticum subsp. n. albiae Dresden Verhoeff (1). — macrodon n. sp.

Jena Wernitzsch.

Heterozonium, 2 nn. spp. Ribaut (2).

Himatiopetalum Verh. Verhoeff (1). — Type ist ictericum L. KR. 1. e.

Hispaniodesmus n.g. für Polydesmus panteli u. bedeli Verhoeff (8).

Hyleoglomeris n. g. multilineata minuta nn. spp. Borneo Verhoefi (5).

Iobatini, Tribus der Julidae Verhoeff (1).

Julidae, Biologie Evans. — Schaltstadien, Doppelmännchen Verhoeff (1).

Julus alemannicus simplex Verh. Bäbler. — alpivagus 1. ce. — ligulifer varr. nn.

barbatus, claviger, subsp. borussorum Deutschland Verhoeff (4). — piceus

Risso Verhoeff (1). — 1 n.sp. Timotheew.

Kepolydesmus subg. n. von Polydesmus Chamberlin (1).

Lacnodesmus iturii Ck. Silvestri (2).

Lamnonyz punctifrons Newp. Attems (2).

Lathrurodesmus n. g. Polydesmoidearum, ortonedae n.sp. Guayaquil Silvestri (3).

Leptoiulus simplex var. n. rhenanus Deutschland Verhoeff (4).

Leptomastigoiulus Verhoeff (1).

Leptophyllum Verh. Verhoeff (1). — nanum Ellingsen (2). — L. nanum varr. nn.

elongatum, pusillum Verhoeff (4).

Lophostreptus Kandti Silvestri (2). — 1 n. sp. Kilimandjaro Attems (3).

Lysiopetaloidea als Superfamilie der Proterandria, p. 210 Verhoeft (1).

Systematik. 15

Lysiopetaloidea, System nach Verhoeff (1):

1. Fam. Callipodidae Verh. (Callipus).

2. Fam. Dorypetalidae n. fam.

1. Unterf. Dorypetalinae Verh. (Dorypetalum Verh.).

2. Unterf. O'yphocallipodinae n.subf. (Uyphocallipus n. g., Dorycallipus

n. £., Silvestria Verh.).

3. Fam. Lysiopetalidae Verh.

1. Unterf. Schizopetalinae n.subf. (2 Tribus, 3 Genera).

2. Unterf. Lysiopetalinae Verh. (3 Tribus, 5 Genera).

Lysiopetalum mutans n. sp. Kalifornien Chamberlain (1). — sicanum Berl.

Verhoeff (1).

Macheiriophoron alemannicum, cervinum, wehranum mit subsp.n. calcivagum,

spp. an. Deutschland, Schweiz Verhoeff (2).

Malayomeris n.g., martensi n.sp. Sumatra Verhoeff (5).

Mastigophorophylion saxonicum n.sp. Deutschland Verhoeff (1). — sazonicum

sp. n. Verhoeff (3).

Mastigoporatia Verhoeff (1).

Megaschizophyllum subg. n. von Schizophyllum Verhoeff (1). — hoplites n. sp.,

diplurum Att. 1. c.

Merocheta Ck., p. 208 Verhoeff (1).

Mesoiulus Berl. Verhoeff (1).

Meticne n.g. pro Trigoniulus bravensis Attems (3).

Metriostreptus n. g., Type Bayoni n.sp. Uganda Silvestri (2).

Microbrachyiulus Schlüssel der Arten Verhoeff (1). — olearum, caleivagus nn. Spp.

Italien I.e. — stuxbergi Fanz. .c. — littoralis, apfelbecki, pusillus, lusi-

tanus, corcyraeus, corcyraeus arcadicus, stuxbergi 1. €.

Microchordeuminae n.subf. der Chordeumidae Verhoeff (4).

Micropodoiulus lignaui n.sp. Kaukasus Verhoeff (4).

Monocheta Ck., p. 208 Verhoeff (1).

Myrmecodesmus n. g. Polydesmoidearum, formicarius n. sp. Mexico Silvestri (3).

Mystalides n. g. bei Trigonojulus, quadridentatus Madagaskar, pumilus Comoren

nn. spp. Attems (1).

Nearctodesmus n. g. pro Polydesmus cerasinus Wood Silvestri (3).

Odontopyge Bayoni n.sp. Uganda Silvestri (2). — aloysii sabaudiae Silv. 1. e.

— 1n.sp. Kilimandjaro Attems (3).

Oncoiulini Verh. Verhoeif (1).

Ophiiulus targionii subsp. n. verruculifer, glandulosus sp. n. Italien Verhoeff (1).

Orobainosoma fontievlorum n. sp. Tirol Verhoeff (1). — Vulven I. e.

Orsilochus acuticonus n.sp. Madagaskar Attems (1).

Orthochordeuma pallidum Bäbler.

Ozxydactylon tirolense subsp. n. vallombrosae, ligurinum n. sp. Italien Verhoeft (1).

Pachybrachyiulus Verhoeff (1).

Pachyiulus, subg. mit Schlüssel der spp. Verhoeff (1). — cassinensis n. sp. Süd-

italien I. e. — fuscipes mit flg. 8 Formen: plasensis n. subsp. (Herzegowina),

altivagus Verh., simplex n.subsp. (Nordalbanien), fuscipes C. K., v. leuco-

notus Latz., v. krohni Verh., idriensis ©. K., bosniensis Verh. Verhoeff (1).

16 Myriopoda für 1910.

— marmoratus Verh., hungaricus Ka., speciosus Verh., asiaeminoris Verh.,

apfelbecki Verh., humicolus n.sp. (Süditalien), unicolor C. K., un. oenologus

Berl., flavipes Latz., cattarensis Latz., cattarensis pluto n. sp. (Ostsizilien) 1. ce.

— cattarensis pluto, humicolus, flavipes, alle 3 von Sizilien Verhoeff (1).

Paectophyllinae Verhoeft (1).

Paectophyllini 1. c.

Paectophyllum I. c.

Paiteya n.g. Type: errans n. sp. Kalifornien Chamberlin (1).

Pericambala n.g. Pericambalidarum, orientalis n.sp. Tonkin Silvestri (6).

Pericambalidae fam.n. I. e.

Peridysodesmus n. g. Polydesmoidearum, trifidus, bifidus nn. spp. Mexico

Silvestri (3).

Phaeodesmus aloysi sabaudiae Silv. Silvestri (2).

Piraiulus sakiwanus New Mexico, tiganus Utah nn. spp., furcifer var. n. sinampus

Oregon Chamberlin (1).

Plethokrossus n.g. cum 2 nn. spp. Kilimandjaro Attems (3).

Polydesmoidea (= Merocheta Ck.) p. 208 Verhoeff (1).

Polydesmus amandus Utah, sastianus Kalifornien, socarnius Utah, anderisus

Idaho, sontus Kalifornien Chamberlin (1). — progressus subsp. n. typica, cum

f. n. nana, subsp. n. beneharnensis, complanatus subsp. typica, var. n.

pseudinteger, gallicus subsp. n. reflexus, racovitzai sp.n. Frankreich Bröle-

mann (3). — complanatus Evans.

Polyxenus lucidus var. n. jeanneli Brölemann (3). — lagurus Reinecke.

Prionopetalum n. g. cum 1 n. sp. Kilimandjaro Attems (3). — lericeps n. sp. Pemba

Attems (1).

Prodicus aitemsi Verh. 2 Verhoeff (1).

Prolysiopetalum n.g. mit Himatiopetalum verglichen und mit Heterocraspedum

ab n. subg., sorrentinum n.sp. Italien Verhoeff (1).

Prosopodesmus n.g. Polydesmoidearum, jacobsoni n.sp. Batavia Silvestri (3).

Proterandria, Übersicht der zugehörigen Superfamilien Verhoeff (1).

Protoiulinae n. subf. 1. e.

Protospermophora als Unterordnung I. e.

Pyrgocyphosoma subg. n. von Craspedosoma Verhoefi (2).

Rhapidostreptus n. g. bei Archispirostreptus, Type Arch. virgator Silv. Silvestri (2).

Scaphiostreptus punctulatus, speculorbis, marianus, praepolitus; gonospinosus

nn.spp. Madagaskar Attems (1).

Schizopetalum Verh. Verhoeff (1). — koelbeli Verh. 1. e.

Schizophyllini n.trib. der Julidae Verhoeff (1).

Schizophyllum Verh. Verhoeff (1). — oxypygum Br. l.e. — $. (Bothroiulus)

hispanicum n. sp. Spanien, S. (Megaschizophyllum) hoplites n. sp. Algeciras,

S. (Solanophyllum) corunense n. sp. Nordspanien Verhoeff (1). — S. (Hemi-

podoiulus) cervinum n. sp. Sierra Estrella, $. (F7.) bipartitum n. sp. Nordspanien

Verhoeff (4). — 8. (Eleutheroiulus) dorsovittatum estrellanum n. subsp. Sierra

Estrella, $8. (Z.) armatum n. sp. Spanien I. e.

Scytalosoma n. g. Polydesmidarum, triassicum n.sp. Deutschland Verhoeff (8).

Scytonotus piger n.sp. Utah Chamberlin (1).

Silvestria Verh. Verhoeff (1). — alternans Verh. 1. e.

Systematik. 17

Solaenophyllum subg.n. von Schizophyllum Verhoeff (1). — corunnense n. SP.

Nordspanien I. c.

Sphaerotherium sakananum n.sp. Madagaskar Attems (1). — S. Revision der

südafrikanischen Arten, nebst 14 nn. spp. Silvestri (1):

S. rotundatum Br., tenuitarse n. sp, spinatum n. sp., dorsaloide

n.sp., cinctellum n.sp., plagiarivm n. sp., weberii n.sp., granulatum Poc.,

convexitarsum n.Sp., compressum Br., compressum Br. v. klugi Br., inter-

medium Por., submite n.sp., dorsale Gerv., subdorsale n.sp., dinogonum

n.sp., giganteum Por., coniferum n.sp., permodestum n. sp. punctulatum

Br., apicale n. sp., boerium n.sp., sämtlich aus Südafrika, beschrieben, ab-

gebildet und mit Bestimmungstabelle Silvestri (1).

Spinotarsus n. g. pro Odontopyge (?) zanthonotus Attems (3). — werneri n.8P.

Uganda Attems (2).

Spirobolellus comoranus, globiclunis nn. spp. Comoren Attems (1).

Spirostreptus Voeltzkowi n.sp. Pemba, Comoren Attems (1). — 1n.sp. Kilimandjaro

Attems (3).

Striaria nazinta n.sp. Oregon Chamberlin (1).

Striaridae Ck. Verhoeff (1).

Striarioidea Ck. als Superfamilie der Ascospermophora |. e.

Strongylosoma italicum Latz. Verhoeff (1).

Symphoiulini Verh. 1. ce.

Symphyognatha, als Superfam. I.c.

Syndesmogenus xanthonotus n. sp. Pemba Attems (1). — In. sp. Attems (3).

Synischiosoma n.g. für Prionosoma murorum Silv. Verhoeff (1).

Tachypodoiulus Verh. Verhoeff (1), 7. albipes C. L. K. Ellingsen (2), Verhoeff (1),

Gynandromorphismus Verhoeff (%).

Taphrodesmus n. g. Polydesmoidearum, vestitus n. sp. Mexico Silvestri (3).

Tatrasoma n.g. für Atractosoma carpathicum Latz. Verhoeff (2).

Termitodesmus n.g. bei Glomeridesmus, ceylonicus, Escherichi nn. spp. Ceylon,

Silvestri (4) in Escherich.

Thaumaporatia, mit Heteroporatia verglichen, Schlüssel der spp.: plumigerum

Verh., apuanum n. sp. Apuanien, apenninorum n. sp. Apenninen Verhoeff (1).

— Larven von T’haumaporatia 1. ce.

Tingupa n. 8. bei Pseudotremia, Type utahensis Utah, monterea Kalifornien n. spp.

Chamberlin (1).

Titanosoma n.g. Polydesmidarum, jurassicum n.sp. Deutschland Verhoeff (8).

Trachynotus n.g. cum 1 n.sp. Timotheew.

Trichopachyiulus subg.n. für Pachyiulus vosseleri Verhoeff (1).

Trimerophorella nivicomes Verh. Bäbler.

Trimerophoron peniculorum n.sp. Italien Verhoeff (1). — grypischium Rothb.

Bäbler.

Typhoglomeris Verh. 1. e.

Verhoeffia gestri subsp. n. portofinense Italien Verhoeft (1).

Xiphochaeteporatia, subg. von Heteroporatia Verhoeff (1). — Schlüssel der spp. I. e.

Xystopyge n.g. cum 1 n.sp. Kilimandjaro Attems (3). — robusta n. sp. Pemba,

O. Afrika. Attems (1).

Archiv für Naturgeschichte

9 2

Arachnida für 191° ),

Von

Embrik Strand.

Publikationen und Referate.

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— (4). La lepre, le cancer et les vers du nez. In: Cosmos (Paris)

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von de Lessert und Trägärdh]. In: Revue Suisse Zool. (Gen&ve)

18. p. 761—916. 1 Taf. — Der Abschnitt „Historisches“ (p. 775 sq.)

enthält manche historisch-bibliographisch interessante Notizen über

Arachniden; bei den Autoren: de Saussure (1779—1796), v. Salıs

(1807), v. Welden (1824), C. Vogt (1841), Heer (1845), Heller u.

Dalla Torre (1882), Callonı (1889) usw. — Im V. Kapitel: Die Ex-

kursionsgebiete, ihre Biosynöcien, Biocönosen und ihre Fauna (p. 807sq.)

werden Verzeichnisse der an jeder Lokalität zusammengebrachten

Arten der verschiedenen Gruppen gegeben, im VI. Kapitel: Systematik

und Verbreitung der für die Physiognomie der nivalen Fauna

charakteristischen Species, wird Zusammenfassendes über die Ver-

breitung der einzelnen Gruppen bezw. Arten geboten. Die Araneae

sind in der nivalen Region mit 5 Familien, 14 Genera und 19 Arten

vertreten. Eine obere Grenze für die Spinnen gibt es nicht; Verf.

hat sie bis etwa 4500 m Höhe gefunden. Die 19 Arten sind folgende:

Drassodes Heeri Pav., D. troglodytes C. L. K., Prosthesima clivicola

L. K., @naphosa petrobia L. K., Diplocephalus eborodunensis ©. Cbr.,

Styloctetor brocchus L. K., Cornicularia Karpinskii O.Cbr., Hilaira

montigena L. K., Macrargus adipatus L. K., Microneta glacialis L. K.,

Micryphantes qulosus L. K., M.nigripes Sim., Lephthyphantes Baebleri

Less. n.sp., Aysticus glacialis L.K., Pardosa Giebeli Pav., nigra

ÜL.K., pyrenaea Sim., pedestris Sim., Euophrys petrensis C.L.K.

Publikationen und Referate. 19

— Die Opiliones sind durch 2 Familien mit 3 Arten vertreten: Pro-

salpia bibrachiata L.K., Mitopus glacialis C.L.K., Nemastoma

chrysomelas Herm. Mitopus glacialis wurde bis in etwa 3000 m Höhe

gefunden. — Von Acarina wurden Vertreter der Familien Trombidiidae,

Oribatidae, Gamasidae und Bdellidae in zusammen 34 Formen fest-

gestellt, die folgenden Gattungen angehören: Caeculus, Trombidium,

Ateuchus, Erythraeus, Erythracarus, Rhyncholophus, Rhagidia, Pen-

thatodes, Tetranychopsis, Bryobia, Tarsotomus, Damasus, Ceratoppia,

Cepheus, Oribatella, Neoliodes, Oribata, Oribatula, Hypoaspis, C'yrto-

laelaps (Gamasidennymphe), Pergamasus, Eugamasus, Bdella, Cyta.

— Milben wurden bis in über 4600 m Höhe gefunden; sie erreichen

überall die Kulminationspunkte und bilden mit den Collembola und

den kleinen Spinnenarten die charakteristische Fauna der isolierten

höchsten Gipfel und Kämme. — Als Anhang: Zoogeographische

Untersuchungen in Grönland; nichts Spezielles. — Literaturver-

zeichnis p.912—915. — Die neue Lephthyphantes-Art ist von de Lessert

beschrieben und abgebildet.

Banks, Nathan (1). Catalogue of Nearctie spiders. In: Bull. U. S.

Nation. Mus. 72. p. I—III + 1—80. — Verzeichnis von über 1300 Arten

nebst Literatur- und Verbreitungsangaben. Die Familie der Theri-

diidae zählt 298 Arten, die Attidae 213, die Lycosidae und Epeiridae

haben je mehr als 100 Arten. Die tatsächlich vorhandene Anzahl Arten

schätzt Verf. auf 2000, aber das Gebiet ist noch unvollständig erforscht.

Einige neue Namen werden vorgeschlagen.

— (2). The ectoparasites of the rat [Flöhe (Siphonaptera), Läuse

(Anoplura) und Milben (Acari)]. In: The rat and its relation to the

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— (3). New American mites. In: Proc. Entom. Soc. Washington

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Halarachne, Gamasus 4, Macrocheles, Laelaps, Pteroptus 2, Ornithodorus,

Ixodes, Pelops, Galumna 2, Oribatella 2, Eremaeus, Liacarus 2, Oribata,

Nothrus 2, Hypochthonius, Histiostoma.

— (4). A handsome species of Phalangidae. In: Entom. News. 21.

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caligus (n.g. pro Caligonus partim) 2, Stigmaeus 6, Linotelranus

n. 8, Eupalopsis, Stigmocheylus n. g., Pseudocheylus, Lasiotydaeus 9

(1 n. var.), Scolotydaeus n. g., Coleotydaeus n.g., Protophlophora

n. 8., Parypochthonius 2, Brachychthonius (n. g. pro Hypochthomius

brevis) 2 (3 nn. varr.), Cosmochthonius (n. g. pro H. lanatus) 3, Loh-

mannia, Malaconothrus, Angelia, Amerobelba, Cymbaeremaeus 2, Te-

geocranus 2, Licheremaeus. — 3 nn. varr. in: Raphignathus, Hermann-

iella 2. — Eustigmaeus, Macrostigmaeus, Anoplocheylus, Tydae-

olus, Cosmochthonius, Heterochthonius, Eulohmannia, Scapheremaeus,

Carabocephus nn. subgg. Caleremaeus n. g. pro Notaspis monnlipes,

Sphaerochthonius pro Hypochthonius splendidus.

— (2). Lista di nuove specie e nuovi generi dı Acarı. Ebenda

p. 242—271. — 109 nn. spp. in: Tetranychus, Tetranychopsis, Ereynetes

2, Rhagidia, Alicorhagia n. g., Discopoma 3, Trachyuropoda, Trachytes,

Dinychus, Zercon 2 (2 nn. varr.), Celaenopsis 3, Euzercon, Heterozercon,

Iphiopsis, Holostaspella 3, Holocelaeno n. g. 7, Holostaspis T, Gamasus,

Gamasolaelaps, Gamasiphis, Epicroseius, Ameroseius 5, Asternoseius

n. 8., Paradoxiphis n. g., Pachyseius n. g., Pachylaelaps 5 (2 nn. varr.),

Megalolaelaps 4, Laelaps 9, Berlesia, Leiognathus, Copriphis (n. 2.

pro Iphis pterophilus) 7, Greenia 2, Pteroptus, Oribatella, Sphaerozetes 3,

Euzetes, Üeratozetes, Punctoribates, Peloribates, Protoribates, Oribella,

Tectocepheus, Scutovertex, Hydrozetes, Neoliodes, Nothrus, Sphaeroch-

thonius, Arthrhoplophora n. g., Carpoplyghus, Tyroglyphus 2, Coleo-

glyphus n. g., Canestrinia 4, Caestriniella n.g. 3, Histiostoma, Poda-

polipus. 2 nn. varr. in: Ceratozercon, Achipteria. — Anoplocelaeno,

Greeniella, Olopachys, Elaphrolaelaps, Hoplolaelaps, Haemolaelaps nn.

subgg.

— (3). Brevi diagnosi di generi e specie nuovi di Acarı. Ebenda

p. 346— 388. — 123 nn. spp. in: Lasiotydaeus, Bdella, Tetranychopsis,

Raphignathus, Gekobia, Smaridia, Achorolophus 4, Sphaerolophus n. 8.

5 (2 nn. varr.), Platylophus n.g., Erythrobium n.g., Abrolophus 3

(1 n. var.), Eothrombium 3 (1 n. var.), Tanaupodus, Podothrombium

n.g.7 (4 nn. varr.), Diplothrombium n. g., Mierothrombium 15 (5 nn. vart.),

Eutrombidium 2, Trombidium 3 (1 n. var.), Sericothrombidium (n.g. pro

Trombidium holosericeum) 5, Allothrombium 9 (2nn. varr.), Trombicula,

Caeculus (1 n. var.), Ameroseius 2, Berlesia, Laelaps 2, Megalolaelaps,

Pachylaelaps, C'yrtolaelaps, Gamasephis, Gamasus, Zercon, Jacobsonia

(n.g. pro Iphiopsis submollis), Discozercon n. g., C’elaenopsis 6, Fedrizzia,

Hoplomegistus, Megistanus, Uroserius, Trachytes, Dinychus, Trachy-

uropoda 2, Uropoda, Poliaspidella n.g., Poliaspis, Brachychthonius,

Hypochthonius, Hermannia 2, Angelia (2 nn. varr.), Nothrus, C'ymbere-

maeus, Amerobelba 2, Gymnodamaeus 2 (1 n. var.), Oribella, Oribatula,

Protoribates 2, Oribatella 2 (1 n. var.), Achipteria, Oribates, Peloribates,

Sphaerozetes 2 (2 nn. varr.), Lepidozetes n. g., Canestrinia, Coleoptero+

phagus, Monieziella, Coleoglyphus, Glycyphagus. — Discozerconidae n.fam.

Cavannea, Rhynothrombium, Enemothrombium, Brachylaelaps, _Neo-

Publikationen und Referate. 21

celaeno, Discourella nn. subgg. Typhlothrombium n.g. pro Micro-

trombidium. histricinum.

Bernard, Ch. (1). Encore quelques mots sur les Acariens du the.

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Bielitzer, A. W. siehe Belitzer, A. V., siehe ferner Marci-

nowski, E.J.

Birula, A. Über Scorpio maurus und seine Unterarten. In: Horae

Soc. entom. Ross. 39. 1909 (1910) p. 115—192. Taf. 10—13. 8 Textfig.

— Im Allgemeinen Teil behandelt Verf. den taxonomischen Wert

der Formen von Scorpio maurus L. und kommt zu dem Ergebnis, daß

alle oder doch die meisten der in Nordafrika und Vorderasien ver-

breiteten Formen der Gattung Scorpio als geographische Rassen resp.

Unterarten von Scorpio maurus L. aufgefaßt werden müssen; sie weisen

das allerursprünglichste Stadium in der Zergliederung einer mono-

typischen Art auf. — Entwicklung der äußeren Körperform. — Haupt-

und sekundäre Geschlechtsunterschiede. — Verf. unterscheidet 6 ver-

schiedene sekundäre Geschlechtsunterschiede. — Über die metrischen

Verhältnisse der einzelnen Körperteile zu einander; behandelt werden:

Allgemeine Körperform, Cephalothorax, Palpenhände, Cauda, Sternum

und Genitalschildchen, Kämme, Bedornung der Tarsalglieder der Beine;

hierzu schließt sich eine 6 Seiten lange Maßtabelleam Ende der Arbeitan.

— Fundorte der typischen Exemplare. — Allgemeine Übersicht der

geographischen Verbreitung von Scorpio maurus L.

Im Speziellen Teil (p. 141 sq.) werden die Rassen des Scorpio

maurus L. beschrieben. Zuerst werden eine Sectio-Maurus und eine

Sectio-Propinguus unterschieden, dann werden die marokkanischen

Lokalrassen behandelt: Scorpio maurus mogadorensis subsp. NoV.,

Sc. m. hesperus n. subsp.. Sc. m. subtypicus n. subsp. Pag. 153 sq.:

Nordafrikanischen Rassen von Scorpio maurus L. und zwar: Scorpio

maurus maurus L., Sc. m. tunetanus subsp. n., Sc. m. palmatus (H. et

Ehr.). Pag.169sq.: Über die vorderasiatischen Rassen und zwar

Sc. m: fuscus (H. et Ehr.), Sc. m. propinguus (Sim.), Se. m. arabicus

(Poc.), Sc. m. kruglovi n. subsp., Sc. m. townsendi (Poc.) Pag. 186 sq.

Bestimmungstabelle der dem Verf. bekannten Rassen von Scorpio

maurus.

Die Scorpionen-Bevölkerung der Sandwüsten weist einige mor-

phologische Eigentümlichkeiten auf; es sind kleine Formen, die eine

wenig entwickelte Skulptur der Körperoberfläche haben und deren

Metatarsen und Tibien flach erweitert und am Vorderrande dicht

und lang beborstet sind.

Blanc, 6. Sur la terminaison du tube digestif des Ixodidae. In:

Bull. Soc. zool. France. 35. p. 219—225. 7 figg.

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sammten, von Dänen publizierten zoologischen Literatur während der

genannten Zeit; ganz populäre Aufsätze sind nicht mitgenommen.

Durch ein systematisches Sachregister (p. 243) und ein alphabetisches

24 Arachnida für 1910.

« “

Verzeichnis der 1876—1906 von Dänen aufgestellten neuen Gattungen

und Arten (p. 187) kann man die Arachniden behandelnde Literatur

leicht auffinden. — Cf. auch Sachregister p. 230.

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de Tiques. In: Archiv. zool. exp. gen. (Paris) (5) 5. p. 379—419. —

Untersuchte Argas, Margaropus und Hyalomma, die sämtlich je ein

Paar acinöser und tubulöser Speicheldrüsen besitzen. Bei Margaropus

sind die tubulösen, bei Hyalomma die acinösen die größeren. Das

Sekret soll Schleim und vielleicht ein Gift sein.

Engelhardt, Victor v. Beiträge zur Kenntnis der weiblichen Kopu-

lationsorgane einiger Spinnen. In: Zeits. wiss. Zool. 96. p. 33—117.

1 Taf. — Viele Arten aus 8 Familien wurden untersucht. Die Kopu-

lationsorgane münden teils in die Vagina (bei Segestria, Pachygnatha,

Tetragnatha), teils unabhängig von dieser. Die Receptacula seminis

sind sowohl in Anzahl als Bau sehr verschieden, jedoch nicht innerhalb

der Gattung. Jedenfalls bei vielen Spinnen kommen die Eier in Be-

rührung mit dem Sperma schon vor der Ablage. Nur bei Zinyphia

wurde genaue Korrelation zwischen den männlichen und weiblichen

Kopulationsorganen festgestellt.

Engelhardt, H. und Kinkelin, F. Oberpliocäne Flora und Fauna

des Untermaintales insbesondere des Frankfurter Klärbeckens. In:

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26 Arachnida für 1910.

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—178. — P.159: Pompilus cingulatus Rossi (= luctuosus Mocs.),

et sur les Araignees gueries de la piqüre d’un Pompilide; enthält

Beobachtungen über Lycosa biimpressa Luc. und Lyc. radiata Latr.,

erwähnt sind ferner Zvarcha jucunda Luc., Aelurillus affinis Luc.

sowie die Gattungen Nemesia, Pardosa, Saitis, Philaeus, Textrix und

Meta. — Pag.164: Pompilus rytiphorus Kohl et sur la faible diversite

des proies capturees par les Pompilides; darin Bemerkungen über die

Giftigkeit von Latrodeetus 13-guttatus Rossi: Verf. kennt kein einziges

Beispiel davon, daß der Biß des Latrodectus tötlich gewesen. — Pag. 168:

Pompilus wesmaeli Thoms. (var.) et remarques sur les procedes employes

par les Pompilides pour paralyser les Araignees; der Pompilus hatte

Ozyptila albimana Sim., Nemesia fertoni Sim. und Textrix sp. einge-

fangen. — Pag. 172 wird eine Liste der von Pompiliden eingefangenen

Arachniden gegeben und zwar von Pompilus-Arten: Latrodeetus 13-

guttatus, Epeira adianta Walck., Oxyptila albimana Sim., Drassodes

lapidosus Walck., Phlegra bresnieri Luc., Tegenaria agrestis Walck.,

Textrix coarctata Duf.; von Aporus dubius Sp.: Gnaphosa alaeris Sim.,

von Pseudagenia carbonaria Se.: Aphantaulax seminigra Sim., von

Pseudagenia albifrons Dalm.: Pisaura mirabihs Cl.

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Mino. In: Broteria (Lisboa) 9. p. 5—22. — Eine höchst unwissenschaft-

liche Arbeit. Es werden 85 Formen, Arten oder Varietäten oder ‚spec.

nova?“ aufgeführt, von denen 22 neu sein sollen. Die Beschreibungen

dieser „Novitäten‘ zeigen, daß der Verf. auch über die einfachsten

Regeln der Nomenklatur und Systematik nicht orientiert ist, und daß

er von der Literatur nichts kennt. Schon die zahlreichen Fehler, die

in den Namen der bekannten Arten vorkommen, zeigen zur Genüge,

daß diese Publikation zu denjenigen gehört, die viel besser ungeschrieben

geblieben wären. — Die Novitäten verteilen sich auf folgende Gattungen:

Tetragnatha, Cyclosa, Epeira (!), Zilla, Attus, Ballus, Calliethera,

Icius, Philaeus, Uloburus (!).

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parasitisme de Geophilus longicornis Leach. 5. Biologie des Tabanides.

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Argyroneta aquatica. (Vorl. Mitt.) In: Verh. naturh. Ver. Heidelberg

(2) 10. p. 351—355. 5 figg. — Der hintere Mitteldarm und die Cloacal-

blase gehen aus auf dem Dotter gelegenen Entodermzellen am Schwanz-

lappen des Embryos hervor. Die Malpighischen Gefäße nehmen aus

der noch völlig undifferenzierten entodermalen Mitteldarmanlage

zu einer Zeit ihren Ursprung, wenn dieselbe noch ohne jede Verbindung

mit dem ektodermalen Enddarm ist. Die Differenzierung der hinteren

Mitteldarmanlage in Cloakalblase und hinteren Mitteldarm s. str.

findet am 13. Tage der Entwicklung, sieben Tage vor dem Ver-

lassen des Eies, statt.

— (2). Zur Anatomie und Entwicklungsgeschichte der Argyroneta

aquatica Cl. In: Zeits. wiss. Zoolog. 96. p. 1—31. 1 Taf. 12 Textfigg.

Publikationen und Referate, 29

— Verf. behandelt die Anatomie und Entwicklungsgeschichte des Darm-

apparates und seiner Anhangsgebilde der Argyroneta aquatica U.

Zur Biologie der Wasserspinne; „das Männchen scheint das Weibchen

mit Futter zu versorgen“. Konserviert wurde am besten in Carnoy’scher

Flüssigkeit; beim Schneiden wurde Mastix-Collodium angewandt.

— Zuerst werden die Verhältnisse bei der erwachsenen Spinne behandelt.

Die drei Paar Coeca des Mitteldarmes gehen von dem vorderen Ende

aus und zwar das erste nach vorn, die beiden anderen in die Basal-

glieder des 3. u. 4. Beinpaares hinein; die Enden des ersten Paares

sind keulenförmig verdiekt und verwachsen dorsal vom Oesophagus

mit einander. Vorn im Abdomen geht der ventrale Lebersack nach

hinten ab, die Hauptmasse der Leber dorsal; dazwischen ist das Darm-

epithel drüsig und dem der Leber gleich. Vom Darm entspringen kurz vor

dem After dorsal die Cloakblase, lateral die beiden Malpighischen

Gefäße, die sich in je zwei sich etwas verzweigende Aste teilen. —

Die Hauptzüge der Ontogenese. Die Entwicklung des Darmkanals

füngt damit am 8. Tage an, daß hinter dem letzten Somitpaare eine

kleine Gruppe von Entodermzellen sich lebhaft vermehrt, in den

Caudallappen eindringt und hier ein geschlossenes Säckchen bildet.

Am 10. Tag zeigt sich die erste Andeutung des ektodermalen End-

darmes und die Anlage des Mitteldarmes rückt aus dem Caudallappen

hervor. Die Malpighischen Gefäße und die als dorsaler Auswuchs

entstehende, erst am 18. Tage sich mit dem Enddarme verbindende

Cloakblase sind entodermal. Der im Cephalothorax gelegene Abschnitt

des Mitteldarmes fängt erst am 17. Tag an sich zu entwickeln. — Die

Leber entsteht aus dem Entodermzellen an der Peripherie des ‚Dotters,

die etwa am 15. Tag eine geschlossene Schicht bilden, in den Dotter-

sack einwachsen und die Leberlappen bilden. — Die Malpighischen

Gefäße sind homolog den Blindschläuchen am Mitteldarme der Amphi-

poden. Die sehr großen Zellen, die am 10. Tage in der primären Leibes-

höhle liegen, sind durch Abschnürung vom Blastoderm entstanden

und treten später als Blutzellen auf. — Die Fertigstellung des Darm-

apparates und seine völlige Funktionsfähiskeit tritt erst zu einer Zeit

ein, wenn die Spinne ihre Eihülle schon längere Zeit, ja nahezu 2Wochen

verlassen hat und ist ermöglicht durch den immer noch vorhandenen

Dotter. Die Cloakalblase ist schon in dieser Zeit mit kleinen Exkret-

stoffen (Guanin) erfüllt und daß diese Blase sowohl den durch den

Darın als den durch die Malpishischen Gefäße nach außen zu beförden-

den Stoffen als Reservoir dient, unterliegt wohl kaum einem Zweifel.

Hansen, H. 3. Tactarides. In: Wiss. Erg. Schwed. Zool. Expd.

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mit Berücksichtigung der übrigen Schweiz. In: Archiv Hydrobiol.

5. p. 89—166, 217—256. — Verf. unterscheidet bryophile Formen,

30 Arachnida für 1910.

die während des ganzen Lebens im Moos wohnen, und bryoxene Tiere,

die zufällig oder temporär sich in Moosrasen finden. — Außer Fundort-

listen werden biologische und systematische Mitteilungen gegeben,

unvollständig bekannte und unbekannte Tardigradenmetamorphosen

beschrieben. — Macrobiotus coronifer wurde in Cystenbildung an-

getroffen. Beobachtungen und Versuche über die Wiederbelebungs-

fähigkeit. Tardigraden können erhöhte Temperaturen (45°—100°)

ohne Schwierigkeit längere Zeit vertragen. Auch wiederholtes Ein-

frieren und rascher Temperaturwechsel schadet nicht. Über die

bisher im Süßwasser gefundenen Tardigraden.

Hewitt, John. Description of two Trapdoor spiders from Pretoria

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Table of the Classification of the Arachnida.

Class Arachnida.

Subelass I. Euarachnida.

Division A. Delobranchia.

Order I. Xiphosura.

II. Gigantostraca.

Division B. Embolobranchia.

Order I. Scorpiones.

„ II. Pedipalpi.

III. Palpigradi.

». IV. Araneae.

» V. Solifugae.

VI. Pseudoscorpiones.

VII. Podogona (= Cryptostemmatidae).

„ VIII. Opiliones.

IX... "Acan.

Subelass II. Pyenogonida.

Die Araneae werden geteilt in 2 Unterordnungen: Mesothelae

(= Liphistiidae) und Opisthothelae, letztere in 2 Tribes“: Megalo-

morphae und Arachnomorphae.

— (2). On a new genus and species of the order Solifugae from

Algeria. In: Ann. Mag. Nat. Hist. (8) 6. p. 367—368. 2 Figg. — Barrella

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— (2). Über die Entwicklung von Agelena labyrinthica Clerck.

Teil 2. In: Zool. Jahrb. Abt. Anat. 30. p. 535—602. 5 Taf. — Darm,

abdominale Muskulatur, Keimdrüsen, Umbildung der 4 Abdominal-

extremitäten, Spinndrüsen, Lungen, Tracheen. — Der Darmkanal

entwickelt sich wie von Hamburger angegeben, abgesehen davon, dab

die Bezeichnung ‚entedermal‘“ nicht berechtigt sein soll; die Rectal-

blase entsteht vor und unabhängig von dem Proctodaeum. Der Mittel-

darm enthält nie Dotter. Der Zusammenhang der ventralen Längs-

muskeln des Abdomen mit dem somatischen Mesoderm soll als sicher

32 Arachnida für 1910.

festgestellt anzusehen sein. Die Keimdrüsen sind noch während der

Umrollung nachweisbar. Zur Phylogenese der Respirationsorgane.

— (3). Über die Entwicklung von Spinnenembryonen unter dem

Einfluß des Experimentes. In: Archiv Entw.-Mech. 30. p. 369—388.

— Entwicklung nach Verletzung und Entfernung von Teilen des Keimes.

Im ganzen wurden 1750 Eier und Embryonen von Agelena operiert,

von denen nur zwei sich zu jungen Spinnen entwickelten. Es wurden

Dotter und einzelne Zellen vor dem Auftreten des Mesoderms entfernt

oder die Mesodermanlage wurde mehr oder weniger verletzt oder Teile

des Embryos vor dem Auftreten des segmentierten Keimstreiis oder

dieser selbst wurde teilweise entfernt. Ein bestimmter Defekt im Keim-

streif als Folge der Zerstörung der Mesodermanlage ließ sich nicht

nachweisen. Die Umrollung wird nicht mechanisch durch Druck

und Zug bedingt. Irgend welche Doppelgebilde entstanden nicht.

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eine „Eriophyidengalle“ in 3 Zeilen beschrieben ; an Baccharis salicifolia

Pers. — p.401: Eriophyes heterothalami n.sp., an Heterothalamus

spartioides Hook; nur die Galle beschrieben. — p. 435: Eriophyiden-

galle, unbestimmt, an Solanum elaeagnıfolium Cav.

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Milbe ist ein pseudosymphiler Ektoparasit von Lasius niger, die Imago

ein Synoeke. Zwischen dem Anus und dem 4. Beinpaare der Nymphe

finden sich zwei halbkreisförmige Chitinplättehen, die wahrscheinlich

zur Stütze der Milbe auf der Ameise dienen. Übersicht der als Ameisen-

gäste bekannten Acari.

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Überträger von Krankheiten p. 712—720; besonders erwähnt werden

Rhipicephalus-, Haemaphysalis-, Argas- und Ornithodorus-Arten, ab-

gebildet sind: Rhipicephalus annulatus, Ixodes hexagonus und Derma-

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lebt nur in totalem Dunkel, wo die Luft feucht ist. Das erste Beinpaar

dient zum Tasten. Die Häutungen sind selten und enden oft mit dem

Tode. 26%, von den Jungen werden ganz ohne Augen geboren, bei

den anderen sind sie rudimentär. — Auch über Meta Menardı.

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Zahlenverhältnisse der beiden Geschlechter. Wiederholte Begattung.

— II. Senses employed in sexual recognition and stimulation (p. 154

3%+

36 Arachnida für 1910.

—156). Der Gesichtssinn spielt dabei eine geringe Rolle und dies

auch nur bei einigen Familien; die Berührung ist umso wichtiger.

III. Details of the courtship phenomena (p. 156—164); Netzspinnen

und Laufspinnen besonders behandelt, bei ersteren ist ‚‚sex-recognition

always by touch, by tapping or pulling of the web“, bei den Lauf-

spinnen kommt auch der Gesichtssinn in Betracht. Das Vorspiel

hängt wsentlich davon ab, was für eins der beiden Geschlechter das

stärkste ist. — IV. Interpretation of the courtship phenomena (p. 164

—170). „Ihe male in visual courtship is not actuated by a conscious

effort to exhibit his peculiar beauties and the female does not select

males by an esthetic sense. Courtship by the male results simply

because fear is mingled with his desire; and probably the female will

accept the first male who courts her, and makes himself recognised

as a male, at the time when she is physiologically desirous. Sexual

selection in the meaning of Darwin, accordingly, and in opposition

to the views of the Peckhams, has probably played no part in the evo-

lution of the secondary sexual differences of spiders.“‘ — V. The nature

and use of the secondary sexual differences (p. 170—176). Verf. be-

spricht hier sechs Kategorien und kommt zu dem Resultat, daß ‚‚in

all six categories of secondary sexual characters in so far as spiders

are concerned, accordingly, natural selection alone is sufiicient to

explain the regulation of the phenomena. At the same time these phe-

nomena would seem to have a manifold origin, as they certainly fulfill

very different uses.‘

Monti, Rina (1). Contributo alla biologia degli Idracnidi alpını in

relazione all’ ambiente. In: Atti Soc. Ital. Sci. Nat. Mus. Civ. Milano.

49. p. 167—243. 60 Textfigg. — 1. Introduzione. — 2. L’ambiente e

l’idracarofauna delle Alpı. — 3. Classificazione delle acque esplorate.

Distribuzione degli idracnidi in acque di composizione diversa, &

seconda della costituzione geologica del terreno. — 4. La temperatura

delle acque, e la fisonomia della idracarofauna. Specie termostatiche,

ereniadi; specie euritermiche piu o meno diffuse o cosmopolite. — 5. Le

specie degli idracnidi alpini e la loro variabilitä. — 6. Sintesi delle

varıazioni osservate in relazione coll’ ambiente. — 7. Ricerche speri-

mentali. — 8. Conclusioni. — 9. Bibliografia citata.

Im 5. Kapitel werden folgende Arten als alpin aufgeführt und auf

ihre Variabilität geprüft: Hydrovolzia placophora Monti, Protzia

invalvaris Piers., P. rotunda Walt., Sperchon glandulosus Koen., 8. mu-

tilus Koen., 8. squamosus Kr., S. clupeifer Piers., S. denticulatus Koen.,

S. Koenikei Walt., S. montanus Thon, 8. Thienemanni Koen., S. montis-

rosae Koen. et Monti cum v. plumipalpis Monti, Pseudosperchon verru-

cosus Pr., Partnunia angusta Koen., P. steinmanni Walt., Thyas

iridentina Maglio, Panisus michaeli Koen., P. bazettae Monti, Diplo-

dontus torrenticolus Walt., Limnesia sp., Torrenticola anomala C.L.K.,

Hygrobates norvegicus S.T., H. retieulatus Kr., Atractides nodipalpis

S. T., A. spinipes Koch, A. tener S.T., Lebertia sparsicapillata 8. T.,

rufipes Koen., maglioi S.T., salebrosa rubra Magl., giardinai Magl.,

zschokkei Koen., maculosa Koen., lineata 8. T., Feltria armata Koen.,

Publikationen und Referate. 37

minuta Koen., georgei Piers., setigera Koen., Priona rula Koch, Aturus

scaber Kr., cerinitus 8. T., Brachypoda versicolor Müll.

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wurde eine Spinne beobachtet, die auf der Wasserfläche zwischen

Pflanzen herumwandert und dabei einige ihrer Beine emporhebt

und sie als Segel benutzt, wodurch die Spinne mit Hilfe des Windes

rascher vorwärts kommt. — Was für eine Spinne, wird leider nicht

angegeben. |

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Bochartia n. g., Hypopus, Anoetus. Dinothrombium n. g. pro Throm-

bidium tinctorum, Hauptmannia pro Achorolophus longicollis (XXXI). —

3 nn. spp. in: Laelaps, Achorolophus, Glycyphagus, C'harletonia n. g. pro

Erythracus singularıs. Spinturnix kolenatiw n.nom. pro Diplostaspis

carnifex Koch, Sp. noctulae pro Sp. carnıfex Oudms. non Koch nes

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9, Schöngastia n. g., Doloisia n. g., Heterothrombidium 2. (XXXIM).

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thrombium n. g., Erythraeus 3, Acharolophus 2, Hauptmannia.

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mit Abbildungen von Pterolichus pavonis Oudems., Larve, 9; Megninia

pavonis Oudms., Larve, Protonympha, Deutonympha, 9.

— (5). Notes on Acari. XXth Series. (Acaridae). Ebenda p. 389

—407. 29 Figg. — Beschreibt und bildet ab: Eustathria cultrifera Rob.,

Chauliacia securigera Rob., Varchia gambettae Oudms., Trouessartia

trouessarti Oudms., T. rosterii Berl., Alloptes gambettae Oudms. und

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Orchestina, Melanophora, Spermophora, Latrodectus, Theridionexus

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Otenus, Dolomedes, Ancylometes, Lycosa, Schizocosa, Moenkhau-

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hebt die Wichtigkeit von Anatomie und Systematik hervor und te-

dauert, daß manche ältere erprobte und wertvolle Methoden jetzt

fast vollständig vergessen sind. Im allgemeinen bestätigt Verf. die

Ergebnisse von Causard (1896). Die Injektionsmethode lieterte gute

Resultate und wird beschrieben. — Das Herz hat drei Paar Ostien,

bei Mygalomorphae vier. Die Lage der Extremitätenarterien ist anders

als sie in den meisten Lehrbüchern beschrieben wird. Berichtigungen

zu Claparede. Der Cephalothorax und die Extremitäten erhalten

ihr oxydiertes Blut von den Lungen, Abdomen dagegen das seinige

von den Tracheen.

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and Origin of Respiratory organs in Araneae ıbid. Vol. 54. p. 564. —

Autorresum&: „In the first place I suppose the saccules of the second

pair of lung-books to have been converted into tracheal tubules in the

common ancestor of the Dysderidae, Oonopidae and Caponiidae.

The resultant tracheae then increased in size, and, as the number

of the leaves of the anterior lung-books decreased in inverse ratio,

the former became the principal organs of respiration. "The second pair

of spiracles retained their position, or may even have moved slightly

forwards, and the conversion of the entapophyses into tracheae could

not take place here, and would, moreover, be quite unnecessary. In

the Caponiidae the anterior pair of lungbooks were converted into

tracheae in a similar manner, but at a later period, and independently

of the conversion of the posterior pair; but as the latter already provided

almost the entire body with tracheae, the anterior pair did not further

increase in size.

In the second place, in the progenitor (or progenitors) of the

remaining tracheate spiders, the posterior lungbooks became reduced

in size and effectiveness by the disappearance of their saccules, accom-

panied by an increase in the number of the leaves of the anterior lung-

books. Further, the posterior spiracles became approximated and

united to a single spiracle, and moved towards the hinder end of the

body, thereby causing the entapophyses of the tracheal segment to

elongate. In this condition the Filistatidae, Sicarıidae and Palpimanidae

have remained, with slight modifications, such as the division of the

tracheal antechambers into branches in some forms. In the great

majority of the families, however, the elongated apophyses became

Publikationen und Referate. 41

transformed into a pair of medial tracheal trunks, thus produeing a

tracheal system consisting of four simple unbranched trunks, which

is still found in soine genera at least, in nearly all the families. A new

factor having been introduced, viz. the presence of the respiratory

entapophyses lying in the large ventral sinus containing venous blood

requiring aeration, we accordingly tind the second respiratory segment

again taking a prominent part in the respiration in many forms, owing

to the increase in size and the branching of the medial trunks, accom-

panied ultimately by a corresponding reduction in the size of the

anterior lung-books, e. g. in the Attidae. This method of origin of

the tracheae is independent of that of the Dysderidae and its allies,

and the tracheal tubules, when present, would here not be derived from

saccules, but be new formations.“

Rädl, Em. Über specifisch differenzierte Leitungsbahnen. In:

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optischen Zentren; bipolare Zellen. Hinter dem Auge finden sich zwei

durch ein System von Fasern verbundene Ganglien, welche Fasern

bei u. a. den Arachniden sich kreuzen, indem die von rechts nach links,

die von links nach rechts ziehen.

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2 (In. var.), Gagrellula (n. g. pro @. albitarsis) 4, Hologagrella n. g.,

Marthanella n. g., Zaleptus 4, Hypsibunus, Harmanda n.g., Bullo-

bumum n. g.3, Bastian. g., @eayan.g.5, Holcobunus n. g.5, Priono-

stemma 8, Eusclera n. g.. Odontobunus n.&., Liobunum 8, Nelima

(n. 8. pro Liobunum silvaticum) 2, Cosmobunus. — Eumarthana (n. g.

pro Marthana vestita), Aurivillia (pro Gagrella aurivillii), Eugragella

(n. g. pro Gagrella variegata), Pectenobunus (n. g. pro Opiho para-

quayensis).

Allgemeines über Morphologie und Systematik der Opiliones, die

in Opiliones Plagiostethi und Mecostethi eingeteilt werden. Für die

42 Arachnida für 1910.

Plagiostethi wird Pococks Einteilung in Eupagosterni und Apago-

sterni akzeptiert; letztere zerfallen in die drei Familien Phalangiidae,

Sclerosomidae und Ischyropsalidae. Die Familie der Phalangiiden

wird in 5 Subfamilien: Gagrellini, Liobunini, Leptobunini, Phalan-

guni und Oligolophini geteilt, von denen die drei ersten hier behandelt

werden. — Sämtliche systematische Kategorien werden beschrieben

und in Bestimmungstabellen zusammengestellt sowie z. T. abgebildet.

(C#. „Systematik“!) Literaturübersicht p. 275—281.

— (2). Bemerkungen zu einigen neuen Gattungen der Opiliones

Plagiostethi. In: Entom. Rundschau 27. p. 177. — Strandia n.n,

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Taf. 9. — Diese schon im Bericht für 1909 kurz erwähnte Arbeit gehört

eigentlich zu diesem Bericht. — Es werden die letzten Stadien der

Spermiohistiogenese von J/xodes ricinus und Ornithodorus moubata

beschrieben. Das reife Spermium besteht aus einem langen hohlen

Rohr, das am einen Ende geschlossen ist, am anderen aber einen Fort-

satz trägt, von dem eine Geißel in das Rohr hineinragt, und der auch

das Centrosoma und den Kern trägt. Die Umbildung der Spermatiden

wird geschildert, Angaben von Bonnet und Nordenskiöld werden

kritisiert und schließlich wird die Rolle des alveolären Plasmas zur

Erhaltung des Lebens der Spermien während ihrer „Wartezeit‘“ be-

sprochen.

— (2). Zecken als Krankheitsüberträger. In: Naturw. Wochen-

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1 Taf. — Über den ectodermalen Abschnitt der männlichen Genitalien

genannter Gattungen; er ist denen der Pedipalpen am ähnlichsten.

Die reifen Spermien von Cheli/er sind schwanzlos, innen mit einem

spiraligen Bande. Bei der Begattung von Chernes wird das d vom 2

44 Arachnida für 1910.

aktiv zur Ablegung des Sperma angeregt und letzteres wird vom 9

durch den Genitaldeckel aufgenommen. Die Lungen sind nicht von

Limulus-Kiemen abzuleiten. Zum Kopfe gehören nur die 4 vorderen

Extremitätenpaare. Die Solifugen stehen den Opilionen näher als

den Chelonethen. Alle Lipcetenen stammen von den Pedipalpen ab.

Schultze, Arnold. Das Sultanat Bornu, mit besonderer Berück-

sichtigung Deutsch-Bornus. In.-Dissert. Bonn. Langensalza. 1910.

128 pp. Mit 1 Karte. — p. 61—92 behandelt die Fauna Bornus, p. 89

—90 einige allgemeine Bemerkungen über Spinnentiere ohne spezi-

fizierte Angaben.

Schurig, Walther. Hydrobiologisches und Plankton-Praktikum.

Eine erste Einführung in das Studium der Süßwasserorganismen.

XV + 160 pp. 215 Textfigg. 6 Taf. Leipzig: Quelle u. Meyer. 8°.

— 8 46 (p. 118—120, ıigg. 165—168) behandelte die Süßwassermilben;

abgebildet sind je 1 Atax, Piona und Arrenurus. Wertvoll ist die Kon-

servierungsanweisung. Erwähnt und abgebildet ist auch die Wasser-

spinne.

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n. g., Capheris, Caesetius 5 (1 n. subsp.), Diores 4, Heradıda, Palfuria

n. g., Uroctea 2, Ammozxenus 2, Smeringopus 2, Steassa n. g., Araneus,

Monaeses,--Thomisus, Xysticus, Philodromus, Thanatus 3, Tibitanes,

Tibellinus n. g., Olubiona 2, C'hiracanthium, Argistes, Thysanına n. 8,

Publikationen und Referate, 45

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— 52. — Bathyphantes enslini n.sp. Sonst werden beschrieben: Por-

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Jorden. Vetenskapliga lakttagelser. II. Zoologi. 2. Arachnider.

Araneae. 1910. 36 pp. — Mit Ausnahme der Seiten 35 und 36 erschien

diese Arbeit separat schon im Jahre 1868. Das vorliegende Heft (Schluß-

heft) des Werkes über die Eugenie-Expedition enthält außerdem

Annulatae.

Tiöche. Über massenhaftes Vorkommen von zur Familie der

Tyroglyphidae gehörenden Milben im menschlichen Stuhl. In: Central-

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— (3). Acariden aus dem Sarekgebirge. (Naturwissenschaftliche

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von Dr. Axel Hamberg. Bd.4, Lief. 4). Stockholm 1910. — p. 375

—586. — 18 nn. spp. in: Parasitus, Eugamasus 2, Pergamasus, Gama-

sellus, Zercon, Trachytes (1 n. var.), Uropoda, Tydeus, Eupodes, Alichus,

Pelops, Oribata (1 n. var.), Nothrus, Malaconothrus 2, Arthronothrus

n. g., Hoploderma. 7 nn. varr. in: Parasejus (n. g. pro Epierius glaber),

Bimichaelia, Raphignatus 2, Eupalus, Tectocephrus, H ypochthonius. In.t.

in: Dinychus.

— (4) vide Bäbler, E.

— (5). Acari. In: Wiss. Ergebn. Schwed. zool. Exped. Kilimand-

jaro. 3. Abt. 20. p. 31—57. 2 pls. — 12 nn. spp. in: Rhyncholophus,

48 Arachnida für 1910.

Erythraeus 3, Trombidium 2, Uropoda, Urodinychus, Holostaspis,

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Teil der heimgebrachten Spinnenausbeute, nämlich nur folgende Fa-

milien: Aviculariidae, Uloboridae, Dietynidae, Eresidae, Sicariidae,

Dysderidae, Caponiidae, Drassidae, Palpimanidae, Zodariidae, Pholcidae,

Theridiidae und Argiopidae. Im ganzen 148 Arten, von denen 103

als neu beschrieben werden.

Ausführlich besprochen werden Arten folgender Gattungen:

Urothele n.g. Avicularıidarum, Pierinochilus, Menneus, Amphi-

gyrum n.g. Dietynidarum, Dietyna, Stegodyphus, Dresserus, Loxo-

sceles, Ariadna, Caponia, Drassodes, Camilla n. g. Drassidarum, Scoto-

phaeus, Xerophaeus, Diaphractus, Prothesima |[recte: Prostesima],

Pythonissa, Amusia n. g. Drassidarum, Boagrius, Anisaedus, Iheringia,

Palpimanus, CO'ydrela, Storena, Diores, Artema, Spermophora, Smerin-

gopus, Rhomphaea, Episinus, Loxonychia n. g. Theridiidarum, The-

ridium, Theridiella n. g. Theridiidarum, Ulesanis, Phoroncidia, Crustu-

lina, Teutana, Asagena, Walckenaera, Notioscopus, Erigone, Brattia,

Lephthyphantes, Linyphia, Pachygnatha, Tetragnatha, Meta, Sancus

n.g. Argiopidarum, Leucauge, Dolichognatha, Argiope, Metargiope,

@ea, Cyrtophora, Cyclosa, Mangora, Larinia, Aranea, Caerostris, Gastera-

cantha, Acantharachne n.g. Argiopidarum, Paurotylus n.g. Argio-

pidarum, Oyphalonotus.

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Übersicht nach dem Stoff.

Morphologie und Histologie: Dönitz, Murray, Comstock, Falconer (5),

Schtschelkanowzew, Engelhardt, Petrunkevitch (2), Elmassian, Hamburger,

Birula, Blanc, Branca, Oudemans (7).

Physiologie: Elmassian, Fleig, Kollmann.

Entwicklung: Stschelkanowzeff, Kautzsch, Janeck, Hamburger, Heinis,

Rätz, Viets (2), Bruyant, George, Evans, Birula, Bugnion (2).

Ethologie: Monti (1), Trägärdh (1), Fischer, Godfrey, Kew, Laister, Stschel-

kanowzeff, Montgomery, Engelhardt, Res u. Bragg, Williamson (1), Lessert,

Bäbler, Brehm, Simon (1), Ellingsen (1), Strand (9), Zschokke, Simes (in: Entom.

Record 22. p.235), Standen, Me Indoo, Galli-Valerio, Heinis, Lea, Iconomopoulos,

Kleine, Krumm-Heller, Leriche, Marotel, Mf[ortensen],

Parasitismus und Symbiose: Kleine, Klugkist, Dönitz, DBenoit Bazille,

Bruyant, Dahl, Seiffert, Tsunoda, Stiles, Banks (2), Neumann, Oudemans (4, 5),

Rätz, Hadwen, Vanselow, Sweet, Rosenkrantz, Hirst (3), Bugnion, Vitzthum,

Kneissl, Silvestri, Wheeler, Donisthorpe, Hall, Cotte, Cockerell, Rübsaamen,

Kieffer und Jörgensen, Anon. (3—5), Bogdanow, Bois et Gerber, Galli-Valerio,

Guiart, Kleine.

Variation und Äthiologie: Falconer (3), Murray, Purcell, Parsons (in: Naturalist

(London) 1910. p. 214), Birula, Me Indoo, Schtschelkanowzew (3), Delsaux,

Ferton, Galli-Valerio, Monti (1).

Nützliche und schädliche Arachniden: F. Dahl, Tsunoda, Saul, Reuter, Tieche,

Orth, Blane u. Rollet, Webster, Sergent, Amberg, Sambon, Raebiger, Marzi-

nowski u. Bielitzer, Bielitzer, Leishman, Freund, Löhlein, Liebert, Vanselow,

Gmeiner, Erhardt, Reeker, Boas, Carpenter, Bois u. Gerber, Bernard, Vasiljew

u. Trzebinski, Trägärdh, Weldon, Tubeauf, Fulmek, Adeock, Anon (3—5), Brown,

Coupin, Dixon (1—3), Diguet, Faes, Galli-Valerio, Gilchrist, Goldberger, Hawkins,

Laws u. Manning, Lefebvre, Marotel, Matsumura, Mokrtezky, Noel, Ogata u.

Ishiwara, Nalepa.

Sammeln und Konservieren: Sagovskij, Oudemans (6), Viets (3).

Sammlungen und Expeditionen: Tullgren, Thorell, Sörensen, Hansen, Trä-

gärdh, Bell, Hirst, (1) Dönitz, Simon (3).

Nomenklatur usw.: Strand (7), Roewer, Murray, Lessert, Könike (2).

Historisches: Bäbler.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 51

Bibliographie: Strand (1,2), Lucas, Galiano, Brehm, Borcherding, Könike (2),

Nordenskiöld, Williamson, Svend Dahl, Huber.

Biographie: Borcherding, Monti (2).

Allgemeines und Zusammenfassendes: Clark, Oudemans (6), Kükenthal.

Faunistik.

Allgemeines; Merian (2), Ellingsen (1,3), Banks (6).

Europa und Mittelmeerregion.

Allgemeines: Ellingsen, Berlese, Oudemans (2).

Deutschland: Ellingsen (3, 5), Sellnick, Viets, Rübsaamen, Klugkist,

Könike, Könike u. Thienemann, Strand (9), Kuhlgatz, Marsson. — Rußland:

Strand (8), Laister, Ellingsen (5), Karawajew. — Schweden: Trägärdh (3),

Walter (3). — Norwegen: Ellingsen (4), Thor, Warburton, Strand (10). —

Holland: Berlese (1), Oudemans (1). — Großbritannien: Jackson, Falconer

(4), Pickard-Cambridge, Donisthorpe, George. —Schottland: Godfrey,William-

son, Evans (in: Ann. Scot. Nat. Hist. 1910 p. 57 u.251), Rodger (in: Trans.

Soc. Nat. Sci. Perth. 5. Proc. p. LIX), Waterston, George. — England: Booth

(in: Lancashire Nat. 3 p. 35), Faleoner (in: Naturalist [London] 1910 p. 132),

Falcoper (1, 2, 6), Falconer et alii (in: Naturalist [London] p. 261, 334, 394, 402),

Stainforth (1,2), Stainforth (in: Trans. Hull. Sci. F. Cl. 4. p. 102), Winter (in:

Lancashire Natur. (N. S.) 3. p. 290), Stubbs, Pickard-Cambridge, Ellingsen (3).

— Irland: Jackson, Kew, Stephens (in: Irish Natur. 19 p. 138), Pack-Beres-

ford (ebenda u. p. 186), Halbert. — Frankreich: Berlese (2), Cotte, Simon

(2), Ellingsen (3), Lambertie, Leriche. — Korsika: Simon (1). — N.-Afrika:

Birula, Roewer (1), Sergent, Simon (1), Hirst (2), Ellingsen (3). — Spanien und

Portugal: Roewer (1), Galiano, Berlese (2), Franganillo, Ellingsen (3). —

Italien: Berlese (1), Könike u. Monti, Marchi, Ellingsen (3), Cecconi, Maglio.

— Schweiz: Lessert, Heinis, Ellingsen (3), Bäbler, Julien. — Alpen: Bäbler,

Monti (1), Ellingsen (3). — Österreich-Ungarn: Walter (1,2), Thon, Raätz,

Csiki, Schechtel, Richters, Roewer (1), Ellingsen (3), Brehm u. Ruttner, Hold-

haus u. Deubel. — Bulgarien: Driensky.

Asien mit den Sundainseln.

Zentralasien: Neumann (3). — China: Oudemans (2), Roewer (1). —

Japan: Roewer (1), Strand (3), Ellingsen (3). — Formosa: Strand (4), Matsu-

mura. — Indo-China: Roewer (1). — Siam: Roewer (1). — Indien und

Ceylon: Roewer (1), Neumann (3), Ewing, Oudemans (2), Gravely, Berlese

(2, 3), Ellingsen (3), Green. — Sundainseln: Roewer (1), Oudemans (2), Berlese

(2), Loman, Merian (1), Hirst u. Hirst, Ellingsen (3). — Kleinasien: Birula.

Afrika mit Madagaskar.

Ellingsen (1, 3), Berlese (2, 3), Oudemans (2).

N.-Afrika: siehe „Europa und Mittelmeerregion‘“. — W.-Afrika: Simon

(4), Dönitz (2), Loman (2), Neumann (3), Ellingsen (3, 5), Anon (1). — Kongo:

Roewer (1), Marshall, Ellingsen (3), — Sudan: Daday (2), — Uganda:

Ellingsen (2), Daday (2). — D. O.-Afrika: Daday (1), Ellingsen (3). — Tan-

52 Arachnida für 1910.

ganyika ete.: Soar. — Kilimandjaro-Meru: Tullgren, Hansen, Sörensen,

Neumann (4). — Sansibar: Strand (4). — S.-Afrika: Simon (3), Berlese (1),

Dönitz (1), Hewitt, Neumann (1), Ellingsen (3). — Comoren: Ellingsen (3).

— Reunion: Dönitz (1). — Madagaskar: Ellingsen (3).

Nordamerika.

Banks (1), Petrunkevitch (1), Chamberlin, Roewer (1), Banks (4), Berlese

(1—3), Ellingsen (3), Cook, Coolidge, Cockerell,

Grönland: Bäbler. — Kanada: Murray, Dionne, Hadwen, Gibson.

— Vereinigte Staaten: Banks (3,5, 6), Marshall, Wheeler, Stiles, Ewing,

Cockerell, Chamberlin, Coolidge (1,2), Hall, Ellingsen (3), Davis. — Mexiko:

Roewer (1), Ellingsen (3).

Mittel- und Südamerika.

Ellingsen (3).

Mittelamerika: Roewer (1), Oudemans (2), Strand (5), Ellingsen (3),

Darling. — Westindien: Banks (#), Roewer (1), Petrunkevitch (1), Strand (6),

Ellingsen (3). — Südamerika: Petrunkevitch (1), Berlese (2, 3), Oudemans (2),

Ellingsen (3), — Venezuela: Borelli, Roewer (1), Ellingsen (3). — Brasilien:

Borelli (1), Petrunkevitch (1), Roewer (1), Ellingsen (3), Corti. — Argentinien:

Kieffer u. Jörgensen, Holmberg, Ellingsen (3). — Chile: Neumann (3).

Australasien und Polynesien,

Molukken: Merton. — Neu-Guinea: Roewer (1), Neumann (1). — Salo-

monen: Kulezynski, Hirst (3). — Australien und Tasmanien: Berlese

(2, 3), Roewer (1), Silvestri, Murray, Ellingsen (3). — N. S.-Wales: Oudemans

(2), Sweet, Loman (1), Hogg. — N. Seeland und Stewart Isld: Hogsg,

Murray. — Samoa: Kulczynski. — Fiji und Hawaii: Murray.

Arktis.

Berlese (2).

Antarktis.

Murray, Machat.

Fossile Formen.

Pocock, Engelhardt u. Kinkelıin.

Systematik.

Allgemeines: Stschelkanowzeff. (2).

Seorpiones.

Leister, Kulezynski, Kollmann.

Ananteris Cussinii n. sp. Venezuela Borelli.

Anomalobuthus rickmersi Birula.

Buthiscus bicalcaratus Birula.

Euscorpius italicus Julien.

Hadogenes gracilis n. sp. Transvaal Hewitt.

Liobuthus kessleri Bir. Birula.

Systematik. 53

Plesiobuthus paradoxus Poc. Birula.

Rhopalurus Rochae n.sp. Ceara, debilis Borelli.

Scorpio maurus, maurus magadorensis, Algier, hesperus u. subtypicus Marokko

subspp. nn., maurus subsp. n. tunetanus Tunis, propinquus, palmatus, arabicus,

fuscus, townsendi, kruglovi n. subsp. Oberlauf des Euphrat Birula.

Tityus Duckei n. sp. Para Borelli. — tenuimanus n.sp. Kalifornien Banks (6).

Vejovis hirsuticauda n. sp. Kalifornien Banks (6).

Pedipalpi.

Labochirus proboscideus Gravely.

Phrynichus lunatus Gravely.

Schizomus crassicaudatus Gravely. — montanus n.sp. Kilimandjaro Hansen,

Palpigradi.

(vacant).

Araneae.

Morphologisches: Purcell, Comstock, Engelhardt, Janeck.

Biologisches: Montgomery, Standen.

Geographisches (cf. „Faunistik‘!): Merian, Jackson, Falcover, Evans,

Booth, Winter, Stainforth, Kew, Pack-Beresford, Simon (2), Lessert, Bäbler,

Csiki, Dionne, Coolidge, Thorell.

Geologisches: Engelhardt u. Kinkelin.

Aviculariidae.

Acanthodon pretoriae (?) 2 Hewitt.

Latouchia japontca n.sp. Japan Strand (3).

Nemesia fertoni Sim. und Pompiliden Ferton,

Pisenor Hoehneli Sim. Tullgren (1).

Pterinochilus affinis Q u. Sjöstedti 2 nn. spp. Kilimandjaro Tullgren (I) — sp.

juserlgc,

Stasimopus robertsi n. sp. Pretoris Hewitt.

Urothele n.g. bei Acropholius, Type: „Idiommata“ lepida Gerst. Tullgren (1).

Uloboridae.

Menneus affinis n.sp. S Kilimandjaro Tullgren (1).

Uloborus pseudacanthus n.sp. ? Franganillo.

Psechridae.

Fecenia monlana n.sp. Q Neuprmmern Kulczynski.

Zoropsidae.

Acanthoctenus Marshii abgeb. Petrunkevitch (1).

Zoropsis maculosus Pack-Beresford (in: Irish Natur. 19. p. 138).

Dietynidae.

Amaurobius charybdis n. sp. Stewart Isld. Hogg.

Amphigyrum n.g. bei Auximus, nebulosum n.sp. 2 Kilimandjaro-Meru-Expd.

Tullgren (1).

Dictyna montana n.sp. SQ ebenda I. ec. — keyserlingi n.n. (borealis Keys. nec

O. Cbr.) Banks (1) — volupis Keys., Kopula, Montgomery.

54 Arachnida für 1910.

Eresidae.

Dresserus subarmatus 5 9, bilineatus 9, elongatus 9 nn, spp. Kilmandjaro-Meru-

Exped. Tullgren (1) -— fuscus Sim. 1. ce.

Stegodyphus sabulosus Usambara @ und affinis 2 Meru nn.spp. Tullgren (1)

— Hildebrandti Ksch. I. ce.

Oonopidae.

Calculus n.g. bei Telchius, Type: bicolor n.sp. S. Afrika Purcell.

Diblemma Donisthorpii Piekard-Cambridge (1).

Nephrochirus n.g. bei Gamasomorpha copulatus n.sp. S. W. Afrika Simon (3).

Orchestina saltabunda Fig. Petrunkevitch (1).

Salsula parvimanus n.sp. S. W. Afrika Simon (3).

Sicariidae.

Loxosceles meruensis n.sp. @ Meru Tullgren (1) — rufescens n, subsp. lucifugs

Simon (1).

Scytodes thoracica Strand (8).

Leptonetidae.

Leptoncta. kernensis n.sp. Algier Simon. (1)

Dysderidae.

Ariadna meruensis 2 u. kibonotensis Q nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tull-

gren (1).

Harpactes saevus OÖ. H. Strand (8).

Drassidae.

Amusia n.g. bei Pythonissa, Type: murina n.sp. 2 Kilimandjaro Tullgren (1).

Andromma anochetorum n.sp. W. Afrika Simon (4).

Camilla n. g. bei Leptodrassus, cordifera n. sp. @ Kilimandjaro Tullgren (}).

Diaphractus Pure. Tullgren (1). — assimilis n.sp. 2 Meru I. c.

Drassodes kibonotensis 9, gilvus Q u. lutorius Q nn. spp. ebenda I. ec, — omissus

Cbr., solitarius Pure. I. ce. — Heeri Pav., troglodytes C. L. K. Bäbler — lapi-

dosus Ferton.

Drassus neglectus, Kopula, Montgomery.

Gnaphosa petrobia L. K. Bäbler.

Melanophora rufula, Fig., Petrunkevitch (1).

Prosthesima atra, Kopula Montgomery — clivicola Bäbler.

Prothesima [recte: Prosthesima] tristella n. sp. 2 Kilimandjaro Tullgren (1) — arida

Pure., montana Pure. 1. ce.

Pythonissa plumalis OÖ. Cbr. Tullgren (1).

Scotophaeus meruensis u. regularıs nn. spp. Kilimandjaro, Meru I, e.

Xerophaeus coruscus n. subsp. kibonotensis 9, biplagiatus n.sp. 2 Kilimandjaro-

Meru-Expd. Tullgren (1).

Zelotes Gistl statt Prothesima L. K. Banks (I).

Palpimanidae.

Anisaedus aethiopicus n.sp. Q Kilimandjaro Tullgren (1).

Boagrius Sim. Tullgren (1) — incisus n.sp. d 9, ebenda I.c.

Theringia helvola n.sp. Kalahari Simen (3) — rufa n.sp. 2 Meru Tullgren (1).

Systematik. 55

Palpimanus namaquensis, nubilus, paroculus nn, spp. 8. Afrika Simon (3) — meru-

‘ensis n.sp. 2 Meru Tullgren (1).

Zodariidae.

Caesetius flavoplagiatus, Schultzei, deserticola mit n.subsp. Lüderitzi, canosus,

arenicola nn. spp. S. W. Afrika Simon (3).

Capheris haematilis n.sp. S. W. Afrika Simon (3).

Cicynethus n. g., acanthopus u. sp. S. W. Afrika Simon (3).

CO'ydrela tripunctata n.sp. $? Kilimandjaro Tullgren (1).

Diores radulifer, triangulifer, transvaalicus, vittipes nn. spp. S. Afrika Simon (3)

— kibonotensis 2 u. univittatus 2 nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tull-

sren (1).

Heradida bieincla n.sp. S. W. Afrika Simon (3).

Palfuria n.g. bei Palaestina, retusa n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Storena nyikae Poc. 2 Tullgren (1).

Tryssoclitus n. g. für Caesetius politus Sim. Simon (3).

Urocteidae.

Uroctea quwinquenotata, semilimbata nn, spp. S. W. Afrika Simon (3).

Ammozenidae.

Ammoxenus psammodromus, multosignalus nn,spp. Kalahari Simon (3).

Pholcidae.

Artema mauriciana Walck. Tullgren (1).

Pholeus phalangioides Füssly, Kopula, Montgomery.

Smeringopus hypocrita, alomarius nn. spp. S. W. Afrika Simon (3) — peregrinus

Strand Tullgren (1).

Spermophora meridionalis, Fig., Petrunkevitch (1) — ensifera $ 9, globosa 5 2

nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tullgren (1).

Theridiidae.

Argyrodes sundaicus Dol., sumatranus Th., flavescens O. Chr. Kulezynski.

Asagena tristis n.sp. $ $ Kilimandjaro Tullgren (1).

Crustulina incerta n.sp. $ 2 Kilimandjaro Tullgren (1). :

Episinus meruensis n.sp. 2 Meru Tullgren (1).

Lasaeola Lindholmi n.sp. Krim Strand (8).

Latrodeetus mactans Petrunkevitch (1), Zahlenverhältnisse der Geschlechter

Montgomery — spp. Tullgren (1) — 13-guttatus und. Pompiliden Ferton.

Loxonychia n. g., lugubris n.sp. 2 Kilimandjaro Tullgren (1).

Phoroneidia Sjoestedti n. sp. Q ebenda l. c.

Rhomphaea Sjöstedti n.sp. Q ebenda Il. c.

Steassa n. g. bei Steatoda, mormorata n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Teutana lepida Simon (3) — tigrina $ 2, singoides nn. spp. Kilimandjaro-Meru-

Expd. Tullgren (1).

Theridiella monticola n. g. n. sp. $ Kilimandjaro Tullgren (1).

Theridionexus n. g. zwischen T’heridiidae und Argiopidae, Type: cavernicolus n. sp.

Jamaika Petrunkevitch (1).

Theridium texanum n.n. pro T. elevatum Banks Banks (1) — iepidariorum, Kopula

Montgomery — /rondium, ebenso I. c. — kibonotense 9, posimarginatum 9,

56 Arachnida für 1910.

pracelusum 9, clypeatellum 2, limatum 2, migrosaceulatum 5 2, nn, spp. von

Kilimandjaro und Meru Tullgren (1) — trifile Sim. 2 I.e. — cumeolatum 9,

pluviale 9, bullatum 3, argenteoguliatum 3 9, meruense ? 5, nn, spp. von

Kilimandjaro und Meru I. e.

Ulesanis kibonotensis n. sp. & Kilimandjaro Tullgren (1).

Argiopidae.

Acantharachne n. g. bei Glyptocranium, cornuta n. sp. Q Kilimandjaro Tullgren (1).

Acrosoma gracile Walck., Kopula, Montgomery.

Alcimosphenus bifurcatus n.sp. Jamaika Petrunkevitch (1) — licenus Sim. 1. e.

Araeoncus aeguus n. sp. Cornwall Pickard-Cambridge.

Araneus relicinus Keys. $ 9, abgeb. Kulezynski — kalaharensis n. sp. Kalahari

Simon (3) — rufipalpis Luc., strupifer Sim., siriata Bös.-Lenz, cereolella

Strand, kibonotensis n.sp. Kilimandjaro, Theisi Walck., Theisiella n. sp.

Kilimandjaro Tullgren (1) — fermicae, temeraria, eruciferoides, vestiarıa

cum n. subsp. obscura, artifex, nn. spp. Kilimandjaro, Meru I. ec. — napifor-

mis Th. I. c. — sulphurina Poc. 1. e.

Argiope piecta L. K., abgeb. Kulezynski — suavissima Gerst. Tullgren (1).

Bathyphantes Enslini n. sp. Deutschland Strand (9) — pallescens n. n. (pallida Bks.

bis) Banks (1).

Braitia Sim. Tullgren (1) — (?) dubia 2 n. sp. Kilimandjaro Tullgren (1).

Caerostris kibonotensis n.sp. d 2 Kilimandjaro Tullgren (1) — sexcuspidata F.

l. e.

Ceratinella brevis Wid. et Rss. 5 Strand (8).

Ceratinopsis interpres, Kopula Montgomery.

Cornicularia karpinski O. Cbr. Bäbler.

C'yclosa conica n. var. Zamezai, Portugal Franganilloe — meruensis, kibonotensis,

iripartita nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tullgren (B).

Cyphalonotus larvatus Sim. Tullgren (1).

Cyrlophora lineata n. sp. @ Shortland Isld. Kulezynski — moluccensis Dol. I, e., —

citricola Forsk. Tullgren (1).

Diplocephalus eborodunensis Bäbler.

Dolichognatha aethiopica n.sp. Q Kilimandjaro Tullgren (1).

Eboria n.g. (Linyphiinae, Erigoneae), caliginosa n.sp. Yorkshire Falconer (?),

Stridulationsorgane Faleoner (5) — caliginosa Piekard-Cambridge (2).

Epeira labyrinthea n. var. grinnelli, Kalifornien Coolidge (%) — angulata nn. varr.

nitidifolia, levifolia, serifolia, afolia, castanea Portugal Franganillo — eruciata

nn. varr. pallida, fusca, Iberoi, erucincepta ebenda 1. ec. — umbratica nn. varr.

obscura u. nigricans, sclopetaria n. var. jacobea, Portugal 1.c. — solitaria

Petrunkeviteh (1) — adianta und Pompiliden Ferton.

Erigone capra, arctica cum v. maritima, longipalpis, atra, dentipalpis, promiscua

Jackson — aethiopica n. sp. 2 Kilimandjaro Tullgren (1).

Eugnatha pallidula n. n. pro pallida Banks Banks (1).

Gasteracantha notata Q n.sp. Neupommern Kulezynski — kibonotensis, momboensis

nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tullgren (1) — testudinaria Sim., resu-

pinata Gerst. 1. c.

Gea subarmata Th. Q Kulezynski — iransverso-vittata, infuscata nn. spp. Kili-

mandjaro Tullgren (1).

Systematik. 57

Hilaira montigena L. K. Bäbler.

Hypselistes florens Piekard-Cambridge.

Larinia decens Bl. Tullgren (1) — bifida, trifida, griseovariegata, assimilis, incerta,

quinquepunclata nn. spp. Kilimandjaro-Meru I. ce.

Lephthyphamtes Baebleri n.sp. Alpen Lessert in Bäbler — ciriensis n. sp. Algier

Simon (1) — lauricola n. sp. Krim Strand (8) — tropicalis 9, kilimandjaricus 2

nn. spp. Kilimandjaro Tullgren (1).

Leucauge festiva Bl., Levanderi Kulez., amanica Strand, kibonotensis n.sp. J 2

Kilimandjaro, meruensis n. sp. $ 9, frequens n.sp. $ 9 Kilimandjaro, brews-

tibialis n.sp. S Kilimandjaro Tullgren (1).

Linyphia nearctica n.n. pro L. humilis Emert. Banks (1) — acthiopica 3 2, kibono-

iensis $ ® nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tullgren (1).

Lophocarenum stramineum, nemorale Jackson.

Macrargus adipatus Bäbler.

‚Mangora Cbr. Tullgren (1) — (?) spinosissima n. sp. 2 Kilimandjaro Tullgren (1).

Maso sundevalli, Abnormität Falconer (3).

Neta segmentata, Abnormität Falconer (3) — menardi in Kent Stubbs — meruensis

Q, merianopsis $ 2 nn.spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Tullgren (1).

Iletargiope trifasciata Forsk. Tullgren (1).

licrathena horrida, Simoni n. n. pro horrida Sim. nec Taez., oblonga, vigorss,

sordida, Figgs. Petrunkevitch (I) — c/ypeata, spatulifera, patruelis, bifurcata,

crassispina, gladiola, bifissa, acuta, armata 1. ce.

Microneta passıba Pickard-Cambridge — viarıa Strand (8) — glacialis L.K.

Bäbler.

Micryphantes gulosus, nigripes Bäbler.

Nephila maculata Fischer — annulata, lineata Thorell,

Notioscopus sarcinotus Pickard-Cambridge (2) — monticola n. sp. 2 Kilimandjaro

Tullgren (1).

Oedothorax retusus Abnormität Falconer (3).

Pachygnatha palmquisti $ 2, mucronata 2 nn.spp. Kilimandjaro-Meru-Expd.

Tullgren (1).

Paurotylus n. g. bei Vibrada, depressus n. sp. $ Kilimandjaro Tullgren (1).

Porrhomma indecorum, Algier, corsicum Korsika nn. spp. Simon (1) — egeria,

pygmaeum Strand (9).

Sancus n.g. bei Chrysometa, bilineatus n.sp. d 2 Kilimandjaro Tullgren (1).

Scotoneta n.g. Linyphiinarum, barbara n.sp. Algier Simon (1).

Singa schefferi n.n. pro singaeformis Scheff. nec Van Hass. Banks (1).

Styloctetor brocchus L. K. Bäbler.

Tetragnatha extensa n. var. contigua, trichodes n. var. mendax, Portugal Franganillo

— praedator $, latro 5 2, unicornis $ 9, necatoria 3, jaculator $ 9, nn. spp.

Kilimandjaro, Meru Tullgren (1).

Troxochrus cirrilrons, scabriculus Piekard-Cambridge (2).

Walckenaera meruensis n.sp. 2 Meru Tullgren (1).

Zilla x-notata nn. varr. chelata, parcechelata, Portugal Franganillo.

Thomisidae.

Epicadinus tuberculatus n. sp. Brasilien Petrunkeviteh (1).

Misumena oleatoria, Kopula Montgomery.

58 Arachnida für 1910.

Monaeses austrinus n. sp. [S. Afrika ?] Simon (3).

Oryptila albimana und Pompiliden Ferton. 5

Ozyptila (= Oxyptila) Banks (1). \

Philodromus vulpio n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Stephanopis benhami n.sp. Stewart Isld. Hogg.

Thanatus purcelli, luederitzi, namaquensis nn. spp. S. Afrika Simen (3).

Thomisus schultzei n.sp. S. W. Afrika. Simon (3).

Tibellinus n.g. bei Tibellus, australus n.sp. Kalahari Simen (3).

Tibitanus nomas n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Xysticus hamatinus n.n. pro X. hamatus Keys., moestus n.n. pro jerrugineus

Emert. Banks (1) — robustus, luctator Piekard-Cambridge (?) — namaquensis

n.sp. S. W. Afrika Simon (3) — siomachosus Keys., Kopula Montgomery

= nervosus Bks., ebenso, I. ce. — glacialis L. K. Bäbler.

Olubionidae.

Agroeca celans Falconer (in: Naturalist [London] 1910 p. 132).

Anahita iclerica n. sp. portug. Guinea Simon (4).

Apochinomma farmicaeforme Simon (4).

Argistes africanus n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Barylestis n.g. bei Heteropoda, Type: H. Blaseii Sim., nigripectus, insularıs

nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Caloctenus fernandensis n. sp. Fernando Po Simon (4).

Cambalida n.g. bei Castaneira, insulana, fulvipes, coriacea un. spp. W: Afrika

Simon (4).

Castaneira thomensis, formosula, phacochroa, deminuta, delicatula nn. spp. W. Afrika

Simon (4).

"Chiracanthium simplicitarse n. sp. S. W. Afrika Simon (3) — Bestimmungstabelle

westafrikanischer Arten, melanostoma, mellitum, joculare nn, spp. W. Afrika

Simon (4) — inclusum Htz., Kopula, Montgomery.

Olubiona facilis n.sp. Yorkshire Pickard-Cambridge (2?) — nollothensis, aspidi-

phora nn. spp. S. W. Afrika Simon (3) — haplotarsus n. sp. W. Afrika Simon (4).

Copa agelenina n. sp. Kalahari Simon (3) — longespina n. sp. W.Afrika Simon (4).

Corinna senegalensis Simon (4).

Ctenus malvernensis n.sp. Jamaica Petrunkeviteh (1) — rubrifrons, hexustielus,

macellarius, decemnotatus, longurio, spadiceus, spinivulva, taurinus, leonardı,

dilucidus nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Medmassa semiaurantiaca, nyctalops nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Merenius n. g. bei Apochinomma, plumosus, myrmex, tenuiculus nn. spp. W. Afrika

Simon (4).

Micaria tersissima n. sp. S. W. Afrika Simon (5).

Micariolepis chrysis n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Palystes nigriventer n. sp. 2 Shortland Isld. Kulezynski.

Phrurolithus britcheri n. sp. New York Petrunkevitch (1).

Procopius, Bestimmungstabelle, granulosus n.subsp. helluo, aethiops, laticeps

n. sp., ensifer n. sp., gentilis n. sp. W. Afrika Simon (4).

Pseudocorinna n.g. bei Corinna, rutila, gracilior, septemmaculata nn. spp. W.Afrika

Simon (4).

Remmius praecalvus n. sp. W. Afrika Simon (4).

Systematik. 59

Thoriosa n. g. bei Otenus, fulvastra, drassina leonina nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Thysanina n.g. bei Liocranum, serica n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Selenops intricatus n. sp. W. Afrika Simon (4).

Seramba truculenta, scaurus n. sp., humilithorax n. sp. W. Afrika Simon (4).

Agelenidae.

Agelena labyrinthica, Entwicklung Kautzsch, Kopula Montgomery — naevia,

ebenso I, e. — suboculata, deserticola nn. spp. Simon (3).

Argyroneta aquatica, Entwicklung des Darmkanals Hamburger.

Desis formidabilis, pentheri n. sp. Port Alfred Simon (3).

Tegenaria derhami Sc. Kopula Montgomery — agrestis Ferton.

Textrix coarctata und Pompiliden Ferton.

r Pisauridae.

Ancylomeles vulpes, Figg. Petrunkevitch (1).

Cispius flavidus n.sp. W. Afrika Simon (4).

ÖUupiennius qualtemalicus n.sp. Guatemala Strand (5).

Dolomedes fernandensis n. sp. Fernando Po Simon (4) — triton Walck. Petrunke-

vitch (1).

Phalaea thomensis n. sp. St. Thome Simen (4).

Lycosidae.

Amblyothele n. g. bei Hippasa, albocincta n. sp. Kalahari Simen (3).

Chaleposa n. g. bei Anomalomma, pro C©. albiventris u. coccineoplumosus Simon (3).

Evippa cristata n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Hippasa decemnotata n. sp. W. Afrika Simon (4).

Loculla n.g. bei Trochosa, rauca n. sp. cum subsp. minor, W. Afrika Simon (4).

Lycosa nidifex Chamberlin (%) — avida, nychthemera Petrunkevitch (1) — caro-

linensis, Zirkulationsorgane Petrunkevitch (?) — subpersonata, leaeniformis,

purcelli, luederitzi, furvescens, ruricolaris, nolothensis, schutzei [}], ocyalina,

kalaharensis, faberrima nn. spp. S. W. Afrika Simon (3) — lindneri, principum,

thetis, lambarenensis, storeniformis, laccophila, edentula nn. spp., furva n. subsp.

minor, cingulipes W.. Afr. Simon (4) — ochreata, scutulata, Kopula Mont-

gomery — lepida, ebenso I. c.

Moenkhausiana n.g., Type: brasiliensis n.sp. Brasilien Petrunkevitch (}).

Pardosa keyserlingi n. n. pro tristis Keys. Banks (1) — nigripalpis, Kopula Mont-

gomery — pallida 1. ec. — giebeli Pav., nigra C. L. K., pyrenaea Sim., pedestris

Sim. Bäbler.

Pseudevippa n. g. bei Evippa, cana n. sp. [S. Afrika?] Simon (3).

Schizocosa, Bestimmungstabelle, celerior n. sp. Nevada Chamberlin (1) — crassipes

Walck. Petrunkevitch (1).

Tarentula, bulgarische spp. Driensky — T. (Allocosa) martinicensis n. sp. Marti-

nique Strand (6). ;

Tricassa n. g. bei Sosilaus, deserticola n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Oxyopidae.

Oxyopes viridans, Biologisches Rea u. Bragg — obscurifrons, purpurissalus, idoneus,

allectus, hastifera, campestratus, brachiatus, aslerion, argentosus nn. SPP.

W. Afrika Simon (4).

69 Arachnira für 1910.

Salticidae.

Astia vittata Kopula Montgomery.

Attus sexsignatus n. sp. ? Portugal Franganilloe — caricis u -Cambridge (2).

Ballus soziabilis n. sp. ? Fon, Franganillo.

Bathippus Rechingeri n.sp. 5 Salomonen Kulezynski.

Belippo n. g. bei Bizona, anguina n.sp. W.Afrika Simon (4).

Blaisea bicalcarata n. sp. W. Afrika Simon (4).

Calliethera unispina n.sp. ? Portugal Franganillo.

Carrhotus semiaurantiacus n.sp. W. Afrika Simon (4).

Cosmophasis squamata n.sp. 2 Salomonen Kulezynski — tricincta, lucidiventris

nn. spp. W. Afrika Simon (4).

C'yllobelus rufopictus n. sp. S. Thome Simon (4).

Cytaea subsiliens 9, Samoa, lepida 9, Salomonen nn. spp. Kulczynski.

Dendryphantes schultzei n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

Euophrys petrensis C. L. K. Bäbler.

Evarcha jucunda Luc. Ferton,

Heliophanus trepidus, redimitus nn. spp. S. W. Afrika Simon (3) — cassinicola,

harpago nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Holcolethis vellerea, albobarbata nn. spp. W. Afrika Simon (4),

Hyllus holochalceus n.sp. Fernando Po Simon (4).

Jeius minianus n. sp. Portugal Franganillo.

Maltecora n.g. bei Echinussa, janthina, divina, chrysochlora nn, spp. W. Afrika

Simon (4).

Mithion sexplagiatus, hesperius nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Mogrus semicanus n. sp. S. W. Afrika Simon (3).

M yrmarachne nexilis, foenisex nn. spp. W. Afrika Simon (4) — sansıbarica Sansibar,

jormosicola Formosa nn. spp. Strand (4).

Neaetha heteropogon n. sp. Ins. Possession Simon (3).

Pachyballus flavipes n. sp. Fernando Po Simon (4).

Palpelius (?) discedens n. sp. 2 Neupommern Kulezynski.

Pharacocerus rubrocomatus, castaneiceps nn.spp. W. Afrika Simen (4).

Phidippus purpuratus, mccooki Peckh., elarus Keh., Kopula Montgomery.

Philaeus militaris, Kopula Il. e.

Pochyta insulana n.sp. W. Afrika Simon (4).

Phlegra bresnieri Luc. und Pompiliden Ferton.

Theratoscirtus capito Simon (4).

Thyenillus n.g. bei Thyene, fernandensis n.sp. Fernando Po Simen (4).

Vicrria scintillans, flavolimbata nn. spp. W. Afrika Simon (4).

Zygoballus beitini Peckh., Kopula Montgomery

Solifugae.

Barrella n.g. bei Barrus, walsınghami n. sp. Biskra Hirst (2).

Chernetes.

Schtschelkanowzew, Stschelkanowzeff, Donistorpe.

Geographisches (ef. Faunistik): Ellingsen (4, 5), Jackson, Falconer (4),

Falconer et alii (in: Naturalist [London] 1910. p. 261, 334, 394, 402), Godfrey,

Booth, Stainforth, Kew, Dionne.

Systematik. 61

Chelifer bayoni n. sp. Uganda Ellingsen (%) — subindicus Madagaskar, brewipilosus

Kolumbien, comorensis Comoren, togoensis W. Afrika, altimanus St. Thomas,

argentatopunclatus Brasilien, glabratus Kamerun, globosus Mexiko, perpusillus

O. Afrika, pilosus, Österreich, rotundimanus Chile, subfoliosus „Afrika“,

tenggerianus Java, buettneri Togo nn. spp., kewi n. var. fwelleborni OÖ. Afrika

Ellingsen (3) — cancroides Stephens (in: Irish Natur. 19. p. 138) — togoensis

Ell., simoni Balz. Ellingsen (2%) — brevidigitatus Keys., equester With, equestroides

Ell., Feae Ell., guineensis Ell., javanus Th., navigator With, nidificator Balz.,

Palmquisti Tullgr., plebejus With, politus Sim., rotundus With, Sjoestedti Tullgr.,

subrobustus Balz., Voeltzkowi Ell., argentinus Th., camerunensis Th., chyzeri

Töm., communis Balz., intermedius Balz., Kraepelini Tullgr., macrochelatus

Töm., nodosus Schr., nodulimanus Töm., oblongus Say, ovatus Balz., albo-

maculatus Balz., anachoreta Sim., australiensis With, boncieus Karsch, brewi-

femoratus Balz., cimicoides F., crassimanus Balz., lacertosus L. K., murrayi

Poc., pallipes White, subrotundatus Balz., subrudis Balz., Wideri C.L. K.,

borneoensis Ell., cancroides L., canestrinii Balz., disjunctus L. K., exilimanus

Balz., hispanus L. K., Kewi Ell., Latreilli Leach., longichelifer Balz., meridianus

L. K., rudis Balz., rufus Balz., scabrieulus Sim., Simoni Balz., subruber Sim.,

tuberculatus H. Luc. Ellingsen (3) — togoensis Ell., camerunensis Tullgr.,

simoni B., tuberculatus Luc., cimicoides F., cancroides L., Ellingsen (5).

Ohthonius cavernarum n.sp. Rumänien, Österreich, Ellingsen (I) — 7 Arten

besprochen Ellingsen (3) — tetrachelatus Pr., rayi L. K. Ellingsen (5).

Garypinus dimidiatus L. K., nobilis With Ellingsen (3).

Garypus Beauvoisi Sav., cuyabanus Balz., javanus Tullgr., minor L. K. Ellingsen (3).

ldeobisium hispanicum n.sp. Spanien Ellingsen (3) — pyrenaicum n.sp. Frank-

reich Ellingsen (1) — pallidum Balz., bipectinatum Dad., Ellingsen (3).

Obisium anophthalmum Herzegowina, montenegrense Montenegro nn. spp.

Ellingsen (3) — Obis. spp. aus Irland, carpenteri n.n. pro muscorum Sim.

nec Leach Kew (2) — alpinum L. K., italicum Sim., lubricum L. K.

Ellingsen (3) — O. (Blothrus) spelaeum Sch. I. e. — Doderoi Sim., dumirola

C.L. K., erythrodactylum L. K., macrodactylum Dad. 1. e. — manicatum L. K.,

hellenum Sim., muscorum Leach, praecipuum Sim., simile L.K., sublaeve

Sim., sylvaticum C. L. K. Ellingsen (3) — erythrodactylum, muscorum, lubrieum

Ellingsen (5) — aegyptiacum Ägypten, longidigitatum St. Thomas nn. spp.

Ellingsen (3) — arabicum v. n. minor Sesse-Insel Ellingsen (2) — arabicum Sim.,

brevifemoratum Balz., crassichelatum Balz., elegans Balz., furculiferum Balz,

pallipes Luc., sarignys Sim. Ellingsen (3).

Opiliones,

Allgemeines: Roewer (]).

Faunistisches: Jackson, Faleoner, Evans, Booth (in: Lancashire Natur.

3..p. 35), Winter (ebenda p. 290), Stainforth, Pack-Beresford (in: Irish Nat.

19. p. 186), Strand (9), Bäbler, Coolidge, Dionne, Loman, Roewer (1).

Altobunus n.g. bei Gagrella, formosus, maculatus nn. spp. Celebes Roewer (1) —

inermis Sim. 1. ce.

Amasis n. g. mesoleucus, accentwatus, patellaris, quadricornis un. spp. Kilimandjaro-

Meru-Exped. Sörensen.

62 Arachnida für 1910.

tAnthracomarti Pocock.

Apagosterni Roewer (1).

Apembolephaenus n. g. Gonyleptidarum, bei Pachylus, Type: Jorgei n. sp. Parana-

delta Holmberg.

Asopus raptator W. S. Loman (2).

Aurivillia n. g. Type: Melanopa aurivillii Th. Roewer (1) — sepia Lom. I. e,

Aurivilliola n.n. pro Aurivillia Roewer (2).

Bastia n.g. lineata n. sp. Indien Roewer (1).

Biantes punctatus n. sp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Sörensen.

Bullobunus n.g. bei Zaleptus, luteovittatus, similis, ater nn. spp. Philippinen

Roewer (1).

Ceratobunus Th. Roewer (1) — annulatus Th., bimaculatus Th., lugubris Th.,

quadricornis Th., pulcher With, brevipes With, calcuttensis With I. e.

Cerea celeripes n.sp. Kamerun Loman (2) — lugubris W. S., nebulosa W.S. 1. e.

Cheops n.g. armatus n.sp. Kilimandjaro-Meru-Exped. Sörensen.

Chilon robustus, scaber Loman (2).

Cosmobunus Sim. Roewer (1) — unicolor n. sp. Spanien Roewer (I) — granarius

H. bie. L. e.

Crassicippus n.g. bei Gagrella, nigerrimus n.sp. Malakka Roewer (1) — semi-

granosus Sim., quadrivittatus Sim., signatus Stol., ephippiatus Th. 1. e.

Dentobunus n. g. bei Gagrella, Kraepelini Java, insignitus Malakka, luteus Borneo,

auratus Lombok, rufus Lombok nn. spp. Roewer (I) — ramicornis Th.,

tenuis Lom., chaetopus Th., dentatus With, imperator With, acuarius Th.,

bidentatus Th., bicorniger Sim. I, e.

Egaenus femoralis n.sp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Sörensen.

Embrikia n.n. pro Geaya Roew. Roewer (2).

Ereca n. g., undulata, affinis, lata, modesta, simulator, rufa nn. spp. Kilimandjaro-

Meru-Exped. Sörensen.

Eugagrella n.g. bei Gagrella Roewer (1) — variegata Dol., celerrima Lom., lati-

clavia Th., rufescens Th., Stoliczkae With, paupera With 1. e.

Eumarthana n. g., Type: Marthana vestita With Roewer (1).

Eupagosterni Roewer (1).

Eurybunus formosus n.sp. Texas Banks (4).

Eusclera n. g., aureomaculata n.sp. China Roewer (1).

Eusclerella n.n. pro Eusclera Roew. Roewer (2).

Gagrella Roewer (1) — mediocris n. sp. 2 Neupommern Kulezynski — magnifica

Pegu, nigripalpis Malakka, coriacea, luteofrontalis, fulva Siam, flava Cochin-

china, serrulata Celebes, scintillans, cuprea Molukken, cinerascens, subfusca

Philippinen, ornata S. O. Asien, fuscipes Neuguinea, coerulea, grandis China,

japonica Japan nn.spp., splendens v. n. bispinosa China Roewer (1) —.

vulcanica, variegata, simplex Loman (2) — Feae Th. cum varr. humeralis Th.

und bispinosa Th., aenescens Th., disticta Th., erebea Th., histrionica Th.,

patalungensis Sim., arthrocentra T'h., spinulosa Th., cervina Sim., binotata Sim.,

atrorubra Sim., biseriata Sim., lepida Th., armillata Th., erux With, nobilis

With, hirta With, imperator-unispinosa With Roewer (1) — flavimaculata

With, Hasselti Th., concinna Th., pullata Th., monticola Th., vulcanica Dol.,

longipalpis Th., scrobiculata Th., inseulpta Poc., sarawakensis With, bipeltata

Systematik. 63

Th., amboinensis Dol., elegans Sim., obscura Sim., Doleschalli Th., zantho-

stoma Th., Albertisii Th., splendens With Roewer (1).

Gagrellini Roewer (1).

Gagrellula n.g. bei Gagrella, annulata Java, scabra Hainan, unicolor, virescens

Indien nn. spp. Roewer (1) — albitarsis Sim., niasensis Th., lomani Th.,

albicoxa Lom., atra Lom., ferruginea Lom. 1. ce.

Geaya n.g., nigromaculata, aenescens, nigricoxa, unicolor, atrolutea nn. spp. Bra-

silien, Venezuela Roewer (1).

Hadrobunus Bks. Roewer (1) — grandis Say cum var. similis Weed, maculosus Wd.,

spinulatus Bks. 1. e.

Harmanda n. g. instructa n. sp. Indien Roewer (I).

Harmandella n.n. pro Harmanda Roew. Roewer (2).

Holcobunus n.g., nigripalpis, luteipalpis, dentatus, ater, Brasilien, unsjasciatus

Cuba nn. spp. Roewer (1) — citrinus Poc., unicolor Lom. 1. e.

Hologagrella n.g. bei Gagrella, reticulata n.sp. Malakka Roewer (1) — luzonica

Lom. Il. e.

Hypsibunus scaber n.sp. Assam Roewer (1) — vigilans With, diadematus Th.

l. e.

Ischyropsalidae Roewer (1).

Leptobunus Bks. Roewer (1) — californicus Bks., borealis Bks. 1, e.

Leuronychus Bks. Roewer (1) — pacificus Bks., parvulus Bks., ? fulviventre Cambr.

l. c.

Leptobunini Roewer (1).

Liobunini Roewer (1).

Liobunum C. L. K. Roewer (1) — biseriatum, Tanger, Portugal, maximum China,

curvipalpe Japan, Paessleri, serratipalpe, ephippiatum N. Amerika, insignitum

Mexiko, fuscum, Guatemala nn. spp. Roewer (1) — rotundum Latr., Black-

walli Meade, limbatum L. K., roseum C. L. K., rupestre Herbst, socialissimum

C.L.K., cupreum Sim., coccineum Sim., seriatum Sim., giganteum Lom.,

vittatum Say, vittatum-dorsatum Say, nigropalpi Wd., formosum Wd., exilipes

Wd., verrucosum Wd., calcar Wd., politum Weed, politum-magnum Weed,

nigripes Weed, crassipalpe Bks., bicolor Wd., longipes Weed, ventricosum Wd.,

ventricosum-hyemale Weed, flavum Bks., speciosum Bks. 1. e. — bimaculatum

Bks., townsendi Weed, consimile Bks., denticulatum Bks., marmoratum Cbr.,

dromedarium Cbr., ischionotum Dug. 1. €.

Macropsalis chiltoni n. sp. Stewart Isld. Hogg.

Maindronia n. g. bei Gagrella, gracilis Indien, rubra Ceylon nn. spp. Roewer (1) —

Maindroni Sim., triangularis With cum v. fusca With, ceylonensis Ksch.

Inc.

Marthana Th. Roewer (1) — cuspidata Lom., cornifer Lom., turrita Th., columnaris

hr L.e.

Marthanella n.g. bei Marthana, turrita n.sp. Philippinen Roewer (1).

Mecostethi Roewer (1). s

Melanopa Th. Roewer (1) p. 20 — japonica Japan, yuennanensis China, grandis

Japan, vittata Sumatra nn. spp. Roewer (1) — fragilis With, atrata Stol.,

varians With, plebeia Th., Hanseni With, tristis Th., pumilis Koch., guttata

Ksch. 1. e.

Mesosoma Weed Roewer (1) — niger Say l. e.

64 Arachnida-für 1910.

Metagagrella n. g. bei Gagrella, pustulata n. sp. Malakka Roewer (I) — sordidata Th.,

minax Th. cum v. ?rispinosa n. var. |. c.

Mitopus glacialis C. L. K. Bäbler.

Nemastoma chrysomelas Bäbler.

Nelima n.g. bei Liobunum, atrorubra Spanien, troglodytes Herzegowina nn. spp.

Roewer (1) — nigripalpis Sim., humiliıs L.K., glabra L. K., erligiosa Sim.,

fuscifrons Sim., Doriae Can., silvatica Sim., nigromaculata Luc., aurantiaca

Sim., gracilis Th., laevis Th., norvegica Strand, genufusca Ksch., 1. e.

Odontobunus n. g. africanus n.sp. Kongo Roewer (1).

Oligolophini Roewer (1).

Oligolophus palpinalis Herbst Strand (8).

Opiliones im allgemeinen: Roewer (1).

tOpiliotarbus n.g. (Phalangiotarbi) pro Architarbus elongatus Scudd. Poeock.

Palpipedoidae n. f. Sörensen.

Palpipes n. g. typus, horridus, mordaz nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Sörensen.

Pantopsalis tasmanica n. sp. Tasmanien Hogg — trippi Poe. 1. e.

Pectenobunus n. g. pro Opilio paraguayensis Canestr. Roewer (1).

Phalangiüidae Roewer (1).

Phalangiini Roewer (I).

}Phalangiotarbi Pocock.

Phalangium longipalpis New York Crosby — montanum, pietum, coxale, pteronium,

mesomelas nn. spp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Sörensen — listeri White

Hogg — ortoni Wd. Roewer (1).

Plagiostethi Roewer (1).

Prionostemma Poc. Roewer (1) — perlucidum Costa Rica, nigrum Mexiko, luteo-

scutum, dentatum, minimum, Brasilien, reticulatum S. Salvador, genufuscum

Mexiko, vittatum Venezuela nn. spp. Roewer (1) — annulipes Bks., seintillans

Poc., tristani Bks., intermedium Bks., biolleyi Bks., frontale Bks., albofasciatum

Cbr., albipalpe Bks., coriaceum Cambr., laterale Bks., bicolor Poc., coxalis Bks.

insculptum Poc., foveolatum Cbr., fulvum Cbr., coronatum Lom. Il. e.

Protolophus Bks. Roewer (1) — tuberculatus Bks., singularis Bks. 1. e.

Rhampsinitus niger n.sp. Kilimandjaro-Meru-Expd. Sörensen,

Sclerosomidae Roewer (1).

Scotomenia Th. Roewer (1) — cetrata Th. 1. e.

Selenca luteocruciata, H.-album nn.spp. Kamerun Loman (2) — gracikis W. S.,

maculata W.S. 1. e.

Sesostris n. g., gracilis n. sp. Kilimandjaro-Meru-Exped. Sörensen,

Strandia n.n. pro Maindronia Roew. Roewer (2).

Syleus Th. Roewer (1) p. 15, 17. — niger C. K. I. e.

Systenocentrus Sim. Roewer (1) — 5-dentatus, galeatus 1. e.

Trachyrhinus Bks. Roewer (1) — favosus Wd., marmoratus Bks. 1. e.

Triaenonyz testaceus New Zealand, stewartius Stewart Isld. nn. spp. Hogg.

Verpulus Sim. Roewer (1) — spumatus Sim. 1. €.

Zaleptus Th. Roewer (1) — caeruleus Indien, spinosus, biseriatus Siam, marmoratus

Australien Roewer (1) — Thorelli With, fuscus With, hirsutus With, minutus

With, festivus Th., sulphureus Th., subeupreus Th., ramosus Th., simplex Th.,

trichopus Th., manubriatus Karsch 1. e.

Systematik. 65

Acari.

Coolidge (1), Trägärdh, Bäbler, Oudemans (6), Nordenskiöld, Banks (2),

Stiles, Donisthorpe, Bernard, Saul, Docters van Leeuwen-Reijnvaan, Faes, Nalepa.

Oribatidae.

Warburton, Sellnick, Csiki.

Achipteria nicoleti n. var. ewings Florida Berlese (2) — imperialis n. sp. Palermo

Berlese (3).

Amerobelba decedens, rastelligera, bicostata n. sp. Neapel Berlese (2) — bicarinata,

crenuloides nn. spp. Italien Berlese (3).

Angelia ornatissima n. sp. Florida Berlese (1) — pulchella n. sp. Florenz, anau-

niensis n. var. longipila Italien, n. var. monodactyla Columbien Berlese (3).

Arthroplophora n.g. bei Protoplophora, Type: paradoxa n.sp. Java Berlese (2).

Arthronothrus n.g. Phthiracarinarum, biunguiculatus n.sp. Schwed. Lappland

Trägärdh (3).

Bimichaelia setigera n. var. sarekensis Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Brachythonius n.g. bei Hypochthonius, brevis nn. varr. italicus Italien, expolitus

Italien, spiciger Florida, perpusillus n.sp. Italien, latior n.sp. Florida

Berlese (1) — laetepictus n. sp. Toskana Berlese (3).

Caleremaeus n.g. Type: Notaspis monilipes Mich. Berlese (1).

Carabocepheus n. subg. von Carabodes, Berlese (1).

Carabodes (Carabocepheus) lounsburyi n. sp. S. Afrika Berlese (1).

Cepheus in der nivalen Region Bäbler.

Ceratoppia herculeana Berlese (1) — C. in der nivalen Region Bäbler.

Ceratocetes magnificus n. sp. Palermo Berlese (2).

Conoppia grandis Berlese (1).

Cosmochthonius n.g. bei Hypochthonius, (Cosmochthonius) plumatus Italien,

emmae Pisa, (Heterochthonius) gibbus Toskana nn. spp. Berlese (1) — angelus

[n. sp.?] Italien Berlese (3).

Cultroribula confinis, magnifica Berlese (1).

Cymbaeremaeus (Scapheremaeus) patella, guerini, corniger, marmoratus n.sp.

Florida, pulchellus n.sp. Florida Berlese (1) — reticulatus n.sp. Italien

Berlese (3).

Eremaeus modestus n. sp. Kalifornien Banks (3) — hessei Oudms., Fig. Oude-

mans (6).

Eremulus flagellifer, modestus, geographica, gracilior, pectinigera Berlese (1).

Eulohmannia n. subg. von Lohmannia Berlese (1).

Euzetes egenus n. sp. Florida Berlese (2).

Galumna partita, pterota nn. spp. Virginia Banks (3).

Gymnodamaeus reticulatus Italien, n. var. siculus Palermo, pusillus Piemont

nn. spp. Berlese (3).

Hermannia grandis Italien, subglabra Deutschland nn. spp. Berlese (3).

Hermanniella clavigera, punctulata cum varr. nn. septentrionalis Italien, columbiana

N. Italien Berlese (1).

Heterochthonius n. subg. von Cosmochthonius Berlese (1).

Hoploderma histricium Berlese (1) — borealis n. sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

H'ydrozetes terrestris n. sp. Palermo Berlese (1).

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 2

66 Arachnida für 1910.

Hypochthonius texanus n. sp. Texas Banks (3) — asiaticus n. sp. Java Berlese (3)

— brevis n. var. lapponica Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Lepidozetes n. g. bei Punctoribates, Type: singularis n. sp. Italien Berlese (3).

Liacarus capitatus Oklahoma, medialis Virginia, nn. spp. Banks (3) — floridensis,

columbianus Berlese (1).

Licneremaeus caesareus n.sp. Toskana Berlese (1).

Lohmannia elliptica (Eulohmannia) ribagai [? n.sp.] Italien Berlese (1).

Malaconothrus optatus, crinitus, major nn. spp. Florida Berlese (1) — globiger,

sphagnicola nn. spp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Neoliodes in der nivalen Region Bäbler — capensis n. sp. Kap der guten Hoffnung.

Berlese (2).

Notaspis brevirostris n. sp. Indiana Ewing (2).

Nothrus terminalis Texas, carinatus Virginia nn. spp. Banks (3) — superbus n. sp.

Palermo Berlese (%?) — camelus n. sp. Noumea Berlese (3) — lapponicus n. sp.

Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Oribata in der nivalen Region Bäbler — consimilis n.sp. Virginia Banks (3) —

tessellatala, nilgiria, appressala nn.spp. Indien Ewing (2) — piriformis n. var.

setiger, sarekensis n. sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Oribates roubali n. sp. Berlese (3).

Oribatella in der nivalen Region Bäbler — valida Virginia, angusta Texas nn. spp.

Banks (3) — misella n. sp. Java Berlese (2) — decumana, exilicornis nn. Spp.

producta n. var. 4. mucronata Italien Berlese (3).

Oribatula variabilis, venusta, florens Berlese (1) — caudata n.sp. Australien Ber-

lese (3) — O. in der nivalen Region Bähbler.

Oribella crosbyi Berlese (1) — cornuta n. sp. Palermo Berlese (2) — leor.tonycha

n. sp. Italien Berlese (3).

Oripoda elongata Jowa Ewing (1).

Parypochthonius urticinus Florida, acarinus Palermo nn. spp. Berlese (1).

Pelops tibialis n. sp. Virginia Banks (3) — septentrionalis n. sp. Schwed. Lappland

Trägärdh (3).

Peloribates histricinus n. sp. Florida Berlese (2) — depilatus n. sp. Kap der guten

Hoffnung Berlese (3).

Protoplophora n. g. bei Hoplophoridae, T'ype: palpalis n. sp. Palermo Berlese (1).

Protoribates (Scheloribates) crinitus n. sp. Florida Berlese (2) — P. (Protoribates)

pupula Pisa, praeincisus Java nn. spp. Berlese (3).

Punctoribates insignis n. sp. Palermo Berlese (2).

Scapheremaeus n. subg. von C’ymbaeremaeus Berlese (1).

Scutovertex perforatus n. sp. Neapel Berlese (2) — ornatissimus Berlese (1).

Sphaerochthonius-n. g. bei Hypochthonius, Typus: splendidus Berlese (1) — elegans

n. sp. Java Berlese (2).

Sphaerozetes (Tectoribates) proximus Italien, Strandi Grönland, pedemontanus

Turin nn. spp. Berlese (2) — S. (Trichoribates) lenicomus n. sp. Italien, setosus

n. var. austroamericanus Washington, oxypterus n. sp. cum n. var. meridionalis

Italien Berlese (3).

Tectocepheus personatus n.sp. Italien Berlese (2) — velatus n. var. sarekensis

Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Tegeocranus longisetus n.sp. Washington Berlese (1).

Zetorchestes equestris Berlese (1).

Systematik. 67

Gamasidae.

Myrmecophile spp. Wheeler (2).

Ameroseis bispinosus Palermo, jacobsoni Java, geometricus Afrika, flagellatus

Ostindien, favosus Tasmanien nn. spp. Berlese (2).

Anoplocelaeno subg. n. von Celaenopsis Berlese (2).

Antennophorus donisthorpei, wasmanni nn.spp. Massachusetts Wheeler (1).

Asternoseius n. g. bei Ameroseius, ciliatus n. sp. Italien Berlese (2).

Berlesia cultrigera n. sp. Java Berlese (2) — nuda n.sp. Java Berlese (3).

Brachylaelaps n. subg. von Pachylaelaps Berlese (3).

Celaenopsis (Anoplocelaeno) nummulus Java, longiseta Afrika, andeini Grosseto,

nn. spp. Berlese (3) — C. (Anoplocelaeno) affinis Java, Canadensis Canada,

aplugyna Indien, euglyphana Indien, politricha Indien, pusilla Java nn. spp.

Ceratocercon lucornis na var. elongatus Florida Berlese (2).

Copriphis n.g. modestus Java, cultratellus Java, Ägypten, hastatellus Kap der

guten Hoffnung, aster Pernambuco, puer Spanien, repandus Java, degenerans

Ostindien nn. spp. Berlese (2).

Cyrtolaelaps goliathus n.sp. Norwegen Berlese (3) — C. in der nivalen Region

Bäbler.

Dinychus appendiculatus n.sp. Florenz Berlese (2) — flagellifer n.sp. Italien

Berlese (3).

Discopoma integra Italien, simplex Java, puella Columbien nn. spp. Berlese (2).

Discourella n. subg. von Trachyuropoda Berlese (3).

Discozercon n.g. Type: mirabilis n. sp. Java Berlese (3).

Discozerconidae n. fam. pro Discozercon etc. Berlese (3). *

Elaphrolaelaps n.subg. von Pachylaelaps Berlese (2).

Epicroseius seioides n.sp. Java Berlese (2).

Eugamasus (?) ferox, spiniger nn. spp. Schwed. Lappland Trägärdh (3) — Eug.

in der ıivalen Region Bäbler.

Eucercon hirtellus n. sp. [Loc.?] Berlese (2).

Fedrizzia gloriosa n. sp. Australien Berlese (3).

Gamasellus (?) brevispinosus n.sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Gamasiphis elegantellus n. sp. Java Berlese (2) — elongatellus n. sp. Java Berlese (3).

Gamasolaelaps arcuatus n.sp. Java Berlese (2).

Gamasus frontalis Kalifornien, calcarator Virginia, partitus ebenda, predator

ebenda nn. spp. Banks (3) — @. (Gamasus) policentrus n. sp. Palermo Berlese

(2?) — @. (Gamasus) rhopalogynus n.sp. Palermo Berlese (3) — dentatilinea

n. sp. Indien Ewing (2).

Greenia jacobsoni, hirtissima nn. spp. Java Berlese (2).

Greeniella n. subg. von /phiopsis Berlese (2).

Haemolaelaps n.subg. von Laelaps Berlese (2).

Halarachne atienuata n.sp. St. Paul Island Banks (3).

Heterozercon audax Java Berlese (2).

Holocelaeno n.g. bei Holostaspis, mitis Texas, rotunda Nordamerika, crispa

Java, magna Ecuador, longicoma, bursiformis Nordamerika, trochantalis

Brasil. nn. spp. Berlese (2).

Holostaspella hirsutissima Nordamerika, caelata Südafrika, foai Java, nn. spp.

Berlese (2).

68 Arachnida für 1910.

Holostaspis caligynius Java, punctulatus Java, dispar Java, hamadryadıs Kap

der guten Hoffnung, longipes Ägypten, isidis Ägypten, adulescens Pernam-

buco nn. spp. Berlese (2).

Hoplolaelaps n. subg. von Laelaps Berlese (2).

Hoplomegistus trapeziger n. sp. Valparaiso Berlese (3).

Iphiopsis (Greeniella) submollis n. sp. Java Berlese (3).

Jacobsonia n. g. minor n. sp. Java Berlese (3).

Laelaps longitarsus n. sp. Virginia Banks (3) — L. (Hoplolaelaps) doderoi Genova,

paulseni Palermo, (Hypoaspis) gryllotalpae Java, dasygaster Afrika, (subg. ?)

remiger Java, parvulus Java, ampullula Java, scutatus Java, (Haemo-

laelaps) marsupialis Australien, nn. spp. Berlese (2) — L. (Hypoaspis) inermis,

(Laelaps) comatus nn. spp. Java Berlese (3) — wolffsohni n. sp. Chile @ude-

mans (2) — mullani n. sp.‘Bombay Oudemans (2) — marginatus, Milbenplage

Reeker — 2 nn. spp. aus Transkaspien Karawajew. »

Leiognathus spinosus n.sp. Java Berlese (2).

Macrocheles helvina n.sp. Virginia Banks (3) — hastatus n. sp. Indien Ewing (2).

Megalolaelaps enceladus Nordamerika, spinirostris Java, radiatus Java, orientalis

Java nn. spp. Berlese (2) — immanis n. sp. Südamerika Berlese (3).

Megistanus modestus n. sp. Australien Berlese (3).

Neocelaeno n. subg. von Celaenopsis Berlese (3).

Olopachys n. subg. von Pachylaelaps Berlese (2).

Pachylaelaps (Olopachys) scutatus Rom, (Pachylaelaps) cordiformis Ägypten

mit n. var. australis Kap der guten Hoffnung, runculiger Java mit n. var.

jalculiger Kap der guten Hoffn., (Onchodellus) spectabilis Java, (Elaphro-

laelaps) fenesiratus Java nn. spp. Berlese (?).

Pachyseius n.g. bei Pachylaelaps, Type: humeralis n.sp. Italien Berlese (2).

Paradoxiphis n. g. bei Megalolaelaps, tenwibrachiatus n. sp. Australien Berlese (2).

Parasejus n.g. bei Sejus, glaber n. var. minor Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Parasitus heliocopridis n. sp. Bombay Oudemans (2%) — acuminatus n. sp. Schwed.

Lappland Trägärdh (3).

Pergamasus lapponicus n. sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3) — P. in der nivalen

Region Bäbler.

Poliaspidella n. g. bei Poliaspis, berenicea n.sp. Java Berlese (3).

Poliaspis australis n.sp. Australien und Java Berlese (3).

Pteroptus echinipes New York, grossus New Mexiko, nn. spp. Banks (3) — heteropus

n.sp. Java Beriese (2).

Ptochacarus n.g. (Antennophoridae) Type: Daveyi n.sp. Australien Silvestri.

Raillietia auris Freund.

Spinturnix kolenatii n.n. pro carnifex Kol. nee Koch, noctulae n. n. pro carnifex

Oud. Oudemans (2).

Trachytes pi n. sp. Palermo Berlese (2) — mystacinus n. sp. Italien Berlese (3) —

aegrota Koch n. v. inermis, minima n.sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Trachyuropoda (Janetiella) dominula n. sp. Florida Berlese (2) — T. (Discourella)

cosmogyna Sardinien, discopomoides Piemont nn. spp. Berlese (3).

Uropoda rhombogyna n. sp. Java Berlese (3) — discus, postgenitalis nn. spp. Indien

Ewing (2) — foraminifera n.sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Uropolyaspis hamuliferus Kneissl.

Uroserius jabae n.sp. Java Berlese (3).

Systematik. 69

Zercon combianus Kolumbien, radiatus Florida nn.spp., Zriangularis n. varr.

granosus Frankreich, caudatus Italien Berlese (2) — cometa n.sp. Java

Berlese (3) — curiosus n. sp. Schwed. Lappland Trägardh (3).

Ixodidae und. Argasidae.

Allgemeines Clark — Speicheldrüsen Elmassian.

Ixodinae beschrieben von Kolenati Neumann (2).

Amblyomma hebraeum, variegatum, marmoreum und andere spp. Dönitz (1) —

darwini & 2 Galapagos Isld., boulengeri $ 2 ebenda, nitidum $ 2 Salomonen,

(Aponomma ?) neglectum $& 2 Kapland, (Aponomma) tenimberense Timor

Laut, nn. spp. Hirst (3) — decoratum, furcosum Neumann (3) — hirtum,

pilosum Mirst (3) — 1 n.sp. Nuttall.

Aponomma verschiedene spp. Dönitz (1) — Oudemansi n. sp. Neuguinea Neumann

(4) — Pattoni n. sp. Indien Neumann (3).

Argas reflexus Benoit Bazille — persicus Galli-Valerio — delicatus n. sp. Zentral-

asien Neumann (3) — victoriensis n. sp. N. Victoria Sweet — spp. als Ver-

mittler von Filiarasis Marotel.

Boophilus decoloratus und annulatus Dönitz (1).

Dermacentor reticulatus Belitzer, Marotel — rhinocerinus Dönitz (1) — reticulatus

und Piroplasmose des Pferdes Marzinowski u. Bielitzer — salmoni n.sp.

Westl. Verein. Staaten Stiles (2) — 1 n. subsp. Kilimandjaro Neumann (4).

Haemaphysalis leachi, obtusa n.sp. Reunion, Bemerkungen über weitere Arten

Dönitz (1) — punctata Hadwen — calcarata, spinigera Neumann (3) — spp.

als Vermittler von Filariasis Marotel.

H yalomma aegyptium, hippopotamense Dönitz (1) — aegyptium Laveran et Pettit.

Ixodes aequalis n.sp. Kalifornien Banks (3) — pilosus und Bemerkung über

weitere spp. Dönitz (1) — elegans n. sp. Chile, Schillingsi, angustus, loricatus

Neumann (3) — ricinus Waterston, La Baume — hexagonus Marotel —

1 n.subsp. Kilimandjaro Neumann (4) — 1 n.sp. und 1 n. var. Nuttall.

Margaropus winthemi BDönitz (1).

Ornithodorus megnini im Gehörgang Amberg — marginatus n. sp. Cuba Banks (3)

— pavimentosus, talaje und einige weitere spp. Dönitz (1) — Ornithodorus

als Überträger des Zeckenfiebers Leishman — moubata, Fig. Oudemans (6)

— spp. als Vermittler von Filariasis Marotel.

Rhipicentor bicornis, vicinus Dönitz (1).

Rhipicephalus sanguwineus, appendiculatus, evertsi n. var. mimetica S. W. Afrika,

capensis, oculatus, tricuspis, follis n. sp. S. Afrika, Bemerkungen über einige

weitere spp. Dönitz (1) — dux Kongo, glyphis Togo nn. spp. Dönitz (2) —

sanguineus, Fig. OQudemans (6) — deltoidus n. sp. Basutoland Neumann (1)

— planus n. sp. Kamerun Neumann (3) — siculus als Vermittler von Filariasis

Marotel — annulatus, abgeb. I. c. — 1 n.subsp. Kilimandjaro Neumann (4)

— 1n.sp. Nuttall.

Trombidiidae.

Parasitismus Bruyant — Larven Evans.

Abrolophus nemorum n. var. eupodes Toscana, gracilipes n. sp. Valparasio, hirtipes

n.sp. Java, longipilis n. sp. Europa Berlese (3).

70 Arachnida für 1910.

Acorolophus villosus Korfu, nasutus Buenos Aires, complanatus Deutschland,

araneoides Palermo nn.spp. Berlese (3) — Achorolophus longicollis n. sp.

Holland Oudemans (2) — gracilipes n. sp. Surinam QOudemans (2) — gagrellae

n.sp. Java Oudemans (2) — gagzoi Pan: me, siemsseni China nn. spp. Oude-

mans — 2 nn.spp. Oudemans (8).

Alicorhagia n.g. bei Alicus, Type: fragilis n.sp. Florenz Berlese (2).

Alicus (Monalicus) siculus, paolii nn. spp. Palermo Berlese (1) — Alichus rostratus

n. sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Allothrombidium trouessarti, simoni, ursinum, Noumea, meridionale Italien,

“ gracile Corfu, athleticum Sierra Leone nn. spp., sirigosum Mariannen n. var,

velutinum Dakar, n. var. sericoidum Buenos Aires, crassicornum n. sp. Buenos

Aires, tenuipes n. sp. Italien Berlese (3) — neapolitanum n. sp. Italien Oude-

mans (2).

Anoplocheylus n. subg. von Pseudocheylus Berlese (I).

Ateuchus in der nivalen Region Bäbler.

-Blankaartia n.g. Oudemans (8).

Bochartia n.g. Erythraeidarum, kuyperi n.sp. Holland @udemans (2).

Bryobia pratensis Weldon — B. in der nivalen Region Bäbler.

Coeculus hirtipes n. sp. Algier n. var. graecus Griechenland Berlese (3) — Caec.

in der nivalen Region Bäbler.

Cavannea n. subg. von Sphaerolophus Berlese (3).

Charletonia n.g. Erythraeidarum, Type: Erythraeus singularis Oudm. Oude-

mans (2).

Coleotydaeus n.g. bei Tydaeus, Type: rkombicus n. sp. Palermo Berlese (1).

Diplothrombium n. g. eximium n. sp. Deutschland. Berlese (3).

Disparipes bombi Vitzthum.

Doloisia n. g., synoti n.sp. Deutschland Oudemans (2).

Enemothrombium n. subg. von Microthrombidium Berlese (3).

Eothrombium n.g. echinatum, leptotarsum Italien, siculum Palermo nn. spp.

(Rhynothrombium) longipalpe n. var. septemtrionale Italien Berlese (3).

Ereynetes cruciatus Java, inermis Italien nn. spp. Berlese (2).

Erythracarus in der nivalen Region Bäbler.

Erythraeidae, Bestimmungstabelle der Larven Oudemans (2).

Erythraeus in der nivalen Region Bäbler — froggatti N. S. Wales, singularis

Niederlande nn. spp. Oudemans (2) — braunsi u. brunni Westafrika, volzi

Java, Sumatra [? nn. spp.] Oudemans (2).

Erythrombium n.g. für Trombidium eusisyrum n.sp. Palermo Berlese (3).

Ettmülleria n.g. Oudemans (8).

Eupodes lapponicus n.sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Eustigmaeus n. subg. von Stigmaeus Berlese (1).

Eutrombidium canestrinii Italien, frigidum Norwegen nn. spp. Berlese (3) —

trigonum Herm., Fig., Oudemans (6).

Gekobia neumanni n.sp. Senegal Berlese (3).

Hannemannia n.g. Oudemans (9).

Hauptmanniana n.g. Erythraeidarum Type: Achorolophus longicollis Oudms.

Oudemans (2) — brevicollis n. sp. 1. c.

Heterothrombidium hylodeus u. verduni nn. spp. Brasilien Oudemans (2) — poly-

discum n. sp. Durban I, c.

Systematik. 71

Lasiotydaeus tyroglyphinus Palermo, (Melanotydaeus) simplex Palermo mit

n. var. baculiger Toscana, styliger, rhaphignathoides, humeralis Palermo

nn, spp. Berlese (1) — L. (Melanotydaeus) venustulus n. sp. Palermo Berlese (3).

Leptus autumnalis Siebert.

Leeuwenhoekia n.g. Oudemans (9) — 2 nn.spp. I. c.

Linotetranus n.g. bei Tetranychus, Type: cylindricus n.sp. Palermo Berlese (1).

Macrostigmaeus n. subgen. von Stigmaeus Berlese (1).

Melanotydaeus n. subg. von Lasiotydaeus Berlese (1).

Metathrombium n.g. Type: poriceps Oudemans (1).

Michaelia subnuda n.sp. Florenz Berlese (1).

Microtrombidium (Enemothrombidium) simulans Norwegen n.var. trispinum

Hamburg, quadrispinım Norwegen, calcigerum Norwegen, spectabile Java,

argenteocinctum Java, densipapillum Schweiz, n. var. boreale Hamburg, fusi-

comum Preußen, rasum Preußen, eruentatum und n.var. curtulum Java,

diversum Noumea, confusum Italien, subrasum Italien nn.spp. — Mi-

crotrombidium pusillum nn. varr. jabanicum Java, columbianum Kolumbien,

pingue Norwegen, italicum n.sp. Italien, norvegicum n.sp. Norwegen u.

Südamerika, geographicum n. sp. Norwegen Berlese (3) — Microthrombidium

thomasi Peru, tinami Brasilien, alfred-dugesi Mexiko, goeldii Brasilien, sulae

Westafrika, bruyanti Brasilien, muris Deutschland, fahrenholzi Deutschland,

trägärdhi Nordafrika, nn. spp. Oudemans (2) — minutissimum n. sp. Durban

Oudemans (2) — 1 n.sp. Oudemans (8).

Neothrombium n.g. Oudemans (1).

Ottonia bicolor George (1) — conifera George (2).

Paratrombium n.g. (larva) bei Trombidium, egregium n.sp. [Patria?] Bruyant.

Pediculoides ventricosus Sergent, Webster — spinosus Kram., Fig. Oudemans (6).

Penthatodes in der nivalen Region Bäbler.

Platylophus n.g. argasoides n.sp. N. Afrika Berlese (2).

Podapolipus batocerae n.sp. Java Berlese (2).

Podothrombium n.g., verecundum Kolumbien, magnum Norwegen, subnudum

Messina, montanum Italien, macrocarpum und n. var. meridionale Italien,

n. var. teutonicum Deutschland, n. var. septentrionale Italien, Strandi Nor-

wegen, peragile Italien nn. spp. bicolor n. var. cisalpinum Italien Berlese (3).

_Pseudocheylus (Anoplocheylus) europaeus n.sp. Palermo Berlese (1).

Raphignathus brevis n.sp. Virginia Banks (3) — Raphignathus brevis n. var.

etruscus Toskana Berlese (1) — Raphignathus hericius n. sp. Florida Berlese (1)

— Raphignatus patrius n. var. brevipalpe, siculus n. var. lapponica Schwed.

Lappland Trägärdh (3).

Rhagidia in der nivalen Region Bäbler — heteropoda n.sp. Toscana Berlese (2).

Rhyncolophus in der nivalen Region Bäbler — communis [n. sp. ?] Scotland

George (3).

Rhynothrombium n. subg. von Eothrombium Berlese (3).

Ritteria hirsutus n. sp. Dunbar George (3).

Rohaultia n.g. Oudemans (8).

Schoengastia n. g., Type: Microthrombidium randersandei Oudm. Oudemans (2) —

trouessarli n. Sp. 1. c.

Scolotydaeus n.g. bei Rhagidia, Type; bacillus n. sp. Palermo Berlese (1).

72 Arachnida für 1910.

Sericothrombium n. g. mediterraneum Korfu, germanicum Deutschland, venetum

Italien, brevimanum Deutschland, heterotrichum Norwegen Berlese (3).

Smaridia heteropoda Kapstadt Berlese (3).

Sphaerolophus n.g. goliathus Australien, politrichus S. Amerika, spinosus Sierra

Leone, subnudus Südamerika n. var. nudus Chile, (Oavannea) cavannae Corfu,

mollicomus Italien nn. spp. Berlese (3).

Stigmaeus (Stigmaeus) rhodomelas Palermo, eutrichus Florenz, anirodes Holland,

(Eustigmaeus) otiavii Piemont, (Macrostigmaeus) serpentinus Florenz,

anguineus Pisa Berlese (1).

Stigmocheylus n. g. (Pseudocheylidae) Type: brevisetus n. sp. Pisa Berlese (1).

Syncaligus n. g. bei Caligonus, conspicuus Kolumbien, echidna Palermo Berlese (1).

Tanaupodes passimpilosus n. sp. Italien Berlese (3).

Tarsonemus fragariae Boas — hominis n.sp. Dahl — hominis beim Menschen

Blanc et Rollet — Tarsonemus und Geschwulstätiologie Reuter.

Tenuipalpus Geisenhayneri n.sp. Deutschland Rübsaamen.

Tetranychopsis in der nivalen Region Bäbler — histricina n. sp. Australien Berlese

(2) — paupera n.sp. Italien Berlese (3).

Tetranychus pantopus n. sp. Australien Berlese (2) — telarius Vasiljev et Trzebinski

— bimaculatus Weldon — carpini Oudms., Fig. Oudemans (6).

Trombicula formicarum n.sp. Holland Berlese (3).

Trombidium superbum n.sp. Arizona Banks (3) — insulare Corfu, corpulentum

Noumea, megalochirum Italien nn. spp., finctorium n. var. brevipilum Perim

Berlese (3) — Tr. sp. Carpenter — Thrombidium demeijerei n.sp. Holland

Oudemans (1) — T. Bestimmungstabelle Oudemans (2) — in der nivalen

Region Bäbler — 1 n.sp. Oudemans (8) — degeeri n.sp. Oudemans (10).

Tydaeolus n. subg. von Tydaeus Berlese (1).

Tydaeus (Tydaeolus) atomus, foliorum n. var. setulosus, ovatus n.sp. Toscana,

curtus n. sp. Italien, acutus n. sp. Palermo Berlese (1) — Tydeus sarekensis

n. sp. Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Typhlothrombium n.g. Type: histricinum (Leon.) Berlese — Typhlothrombium

n. gen. [unbeschr.!] nanus n.sp. Durban Oudemans (2).

H ydrachnidae.

Geographisches: Wiliamson, Evans, Koenike u. Thienemann, Zschokke,

De Marchi, Monti (1), Thon, Daday, Viets, Baumann, Maglio.

Hydracarına [= Hydrachnidae] Klassifikation Koenike.

Anisitsiella africana n.sp. O. Afrika Daday.

Arrhenurus taeniatus n. sp. O. Afrika Daday — scapulatus Kongo, tahoei California,

pollictus Wiskonsin nn. spp. Marshall — Arrenurus nodosus Schechtel — Ar-

rhenurus hofsteni, fuscatus nn. spp. Walter (3).

Atractides nodipalpis S. T., spinipes Koch, tener S. T., alpin Monti (1).

Aturus scaber Kr., crinitus S. T., Monti (1).

Brachypoda celeripes n.sp. Deutschland Viets (1) — versicolor Müll. Monti (1).

Diplodontus torrenticolus Walt., alpin Monti (1).

Encentridophorus Koenikei n. sp. O. Afrika Daday.

Erikia n.n. pro Nordenskiöldia Koen. 1907 Strand (7).

Eulais akmolinski n. n. pro nullipons Thor Thor — Eylais amplipons Norderney,

trapezipons Bremen nn. spp. similis n. var. gibberipons Böhmen Viets (2).

Systematik 73

Feltria spp., Kulczynskii, Nusbaumi nn. spp. Galizien Schechtel — 4 alpine spp.

Monti (1).

Hydrovolzia placophora, alpin Monti (1).

Hydryphantes ruber n. var. tricuspis Deutschland Viets (2) — ruber D. G., Fig.

Oudemans (6).

H ygrobates edentipalpis n. sp. Tanganyika Soar — titubans Walter (2) — norvegicus

S. T., reticulatus Kr., alpin Monti (1).

Koenikea tessellata n.sp. O. Afrika Daday.

Lacallea n.g. pro Hydrachna cyanipes Luc. Koenike.

Lebertia, 8 alpine Arten besprochen Monti (1).

Lemienia n. subg. pro Neumannia multipora Dad. Koenike.

Limnesia polonica n.sp. Galizien Schechtel — connata Larve Viets (?) — sp.,

alpin Monti (1).

Mideopsis minuta n.sp. Tanganyika Soar — crassipes Larve Viets (2).

Neumannia papillosa n. sp. Tanganyika Soar.

Panisus michaeli Koen., bazettae Mti., alpin Monti (1).

Partnunia angusta Koen., steinmanni Walt., alpin Monti (1).

Piona tuberifera n.sp. Deutschland, clavicornis Larve Viets (2) — brehmi n. sp.

Österreich Walter (1) — carnea Biologisches Williamson — rufa Koch als

alpine sp. Monti (1).

Protzia invalvaris Piers., rotunda Walt., beide alpin Monti (1).

Pseudosperchon verrucosus Pr. Monti (1).

Sperchon montisrosae n.sp. Monterosa Koenike u. Monti — glandulosus Koen.,

mutilus Koen., squamosus Kr., celupeifer Piers., denticulatus Koen., Koenikei

Walt., montanus Thon, Thienemanni Koen., montisrosae Koen. et Monti

cum v. plumipalpis Monti, alle alpin Monti (1).

Thyas tridentina Maglio Monti (1).

Unionicola cunningtoni n. sp. Nyassasee Soar.

Halacaridae.

Halacarus alpinus n. sp. Norwegen Thor (2).

Bdellidae.

Bdella exilicornis n.sp. Kapstadt Berlese (3) — rubra Lam., Fig. Oudemans (6)

— Bd. in der nivalen Region Bäbler.

Cyta in der nivalen Region Bäbler.

Eupalopsis reticulata n.sp. Italien Berlese (1).

Eupalus croceus n. var. minima Schwed. Lappland Trägärdh (3).

Seirus parvirostris n.sp. Florenz Berlese (1).

Sarcoptidae.

Alloptes gambettae, ditrichus Oudemans (5).

Avenzoaria totanı Can., tringae Oudms., gambetiae Oudms., bengalensis Oudms.,

calidridis Odms., australis Odms., grallatoris Odms., limicolae Odms., indica

Odms., americana Odms., asiatica Odms., und limosae Buchh. Oudemans (3).

Canestrinia manicata Brasilien, spectanda, microdisca, nepalensis Java nn. spp.

Berlese (2) — remigans Berlese (3).

Canestriniella n.g. bei Canestrinia, amplexans, togata nn. spp. Java Berlese (2).

74 Arachnida für 1910.

Chauliacia securigera Oudemans (5).

Coleoglyphus n. g. bei Coleopterophagus, Type: fuscipes n. sp. Afrika Berlese (2)

— (©. (?) simplex n. sp. Ecuador Berlese (3).

Coleopterophagus procerus n. sp. Indien Berlese (3).

Cytodites Rosencrantz.

Dermatocoptis ovis Erhardt.

Eustathia cultrifera Oudemans (5).

Labidocarpus compressus n. sp. Indien Ewing (?).

Megninia pavonis Oudemans (4).

Pterolichus pavonis 1. c.

Sarcoptes minor Löhlein — equi Gerl., Fig. Oudemans (6) — sp. Goldberger,

Trouessartia trouessarti Oudemans (5).

Varchia gambettae Oudemans (5).

Tyroglyphidae.

Im menschlichen Stuhl Tieche.

Anoetus crenulatus n. sp. Holland Oudemans (1) — dionychus Oudemans (2).

Carpoglyphus vagabundus n.sp. Pisa Berlese (2).

Glycyphagus latipes n.sp. Java Berlese (3) — tjibodas n. sp. Java Oudemans (2)

— @. als Endoparasit Tsunoda.

Histiogaster carpio Fulmek.

Histiostoma tarsalis n.sp. Kalifornien Banks (3) — brevipodum n. sp. Palermo

Berlese (2).

Hypopus tarsispinus n. sp. Florenz Oudemans (2).

Monieziella magna n.sp. Palermo Berlese (3).

Rhyzoglyphus echinopus Vasiljev u. Trzebinski.

Tyroglyphus pergrandis, (?) incertus nn. spp. Java Berlese (2?) — case: n. n, pro

siro OQudemans (2) — farinae Noöl (2).

Demodicidae.

Demodex Hirschberg — folliculorum Lefebvre, Gmeiner, Orth, Tsunoda, Anon. (4),

Vanselow — canis Leyd., Fig. Oudemans (6).

Eriophyidae.

Eriophyidae Cotte.

Eriophyes boisi auf Cinnamomum zeylonicum Bois u. Gerber — rhoinus n. sp. Co-

lorado Cockerell — crataegumplicans n.sp. Frankreich Cotte — californica

n. sp. Kalifornien Hall — heterothalami n.sp. Argentinien Kieffer u. Jör-

gensen — pyri Trägärdh — cembrae n.sp. Tubeuf — tenuis Nal., Fig.

Oudemans (6) — dieckmanni, tavaresi, jussieuae, moquininae, zizyphe nn.

spp. Brasilien Corti.

Phyllocoptes jussieuae n.sp. Brasilien Corti.

Tardigrada.

Heinis, Daday, Brehm, Zschokke.

Diphascon alpinum, chilenerse, canandese n. sp. Canada Murray.

Echiniscus Heinis. — novaezeelandiae, velaminis n.sp. New Zealand, pulcher

n. sp. Australien, kerguelensis, tessellatus n. sp. Australien, intermedius n. sp.

Systematik. Publikationen und Referate. ‘75

Australien, spiniger, duboisi, blumi, oihonnae, viridis n. sp. Hawaii, spinulosus,

gladiator, sylvanus n, sp. Canada, canadensis n. sp. Canada, bisetosus Murray.

Macrobiotus tetranyx n.sp. O. Afrika Daday — arcticus, polaris n. sp. Macmurdo

Sound, echinogeritus, montanus n.sp. New Zealand, harmsworthi, hufe-

landioides n. sp. Australien, aculeatus n. sp. Australien, areolatus n. sp. Canada,

occidertalis n.sp. Canada, canadensis n.sp. Canada, virgatus n.sp. Canada

Murray — breckneri n. sp. Karpathen Richters — coronifer in Cystenbildung

Heinis,

Oreella n.g. bei Echiniscus, mollis n.sp. Australien Murray.

Pentastomida.

Linguatula rhinaria, Ungarn Ratz.

Pentastomida des British Museum Bell — im Plankton Ostenfeld u. Wesenberg-

Lund. \

Porocephalus moniliformis Bugnion (1) — P. im Menschen Raebiger, Sambon

— monsliformis Seiffert (I—2) — armillatus Broden et Rodhain.

Prototracheata für 1910.

Von

Embrik Strand.

Publikationen und Referate.

Bell, F. 3. Onychophora. In: Guide to the Crustacea, Arachnida,

Onychophora and Myriopoda. . . . British Museum (Natural History).

London 1910. p. 118—119.

Dahl,Svend. Bibliotheca Zoologica Danica 1876—1906. Fortegnelse

over Danmarks Zoologiske Literatur 1876—1906. Köbenhavn: J.L.

Lybecker, 1910. 262 pp. — Vergleich den Arachnidenbericht. —

Peripatus p. 62. Cfr. auch Sachregister p. 230.

Hewitt, J. Note on a Transvaal species of Onychophora (Opistho-

patus). In: Ann. Transvaal Mus. 2. p. 44. Novbr. 1909 [aber mit Druck-

zeitangabe: 1—II — 1910]. — Ähnlich O. cinctipes.

Horst, R. Paraperipatus Lorentzi Horst, a new Peripatus from

Dutch New Guinea. In: Notes Leiden Mus. 32. p. 217—8.

Lucas, Robert. Prototracheata (= Onychophora) für 1904 und

für 1895—96. [Jahresbreichte]. In: Archiv f. Naturg. 71. Bd. 2. H. 2.

1905 (1910) p. 994, 1085. = Ber. Leist. Ent. 1904. Lief. 3 (1910) p. 994,

1085= Deutsche Entom. Zeits. 1905. H. 3. Lief. 3 (1910) p. 994, 1085.

Purcell, W. F. On the South African Species of Peripatidae in

the Collection of the South African Museum. In: Ann. of the South

76 Prototracheata für 1910.

African Mus. III. p. 331—351. (1909). — Geschichtliches. Hauptzüge

der Systematik; die Pococksche Gattung Peripatopsis wird ange-

nommen und eine neue: Opisthopatus aufgestellt. Letztere unter-

scheidet sich von Peripatopsis durch Folgendes: das Bein an jeder

Seite der Genitalöffnung ist nicht rudimentär, sondern so groß und

wohl entwickelt wie das vorhergehende Paar und wird wahrscheinlich

als Gangfuß benutzt. Fuß mit einer einzigen vorderen, einer hinteren

und einer dorsalen Papilla, alle groß und nahe der Spitze. Genital-

öffnung in Form von einer Querspalte, die vom Hinterende des Körpers

ein wenig entfernt ist. — Beschreibung der beiden Gattungen und

folgender Arten: Peripatopsis capensis Grube, P. moseleyi Wood-

Mason, P. balfouri Sedg., P. leonina n. sp., P. sedgwicki n. sp., P. clavi-

gera n.sp., Opisthopatus cinctipes n.Sp., sowie 5 Formen, die als ‚‚Peri-

patopsis, spec.nov. (?)“ aufgeführt werden.

Philiptschenko, Jur. Über die Abstammung des Fettkörpers

und der Nephrocyten bei den Arthropoden. In: Trav. Soc. nat. St.-P6-

tersbourg C.R., T.37. Livr.1. p. 242—255 (Russisch!) u. p. 270

—272 (Deutsch!) (1906).

Sedgwick, A. Peripatus papuensis. In: Nature (London) 83.

p. 369—370. — Per. pap. n.sp. aus Neu-Guinea.

Strand, Embrik (1). Prototracheata für 1905 [Jahresbericht].

In: Arch. f. Naturg. 72 (1906) Bd.2. H.2 (1910) p. 789—7% =D.

Entom. Zeits. 1906. H.3 (1910) p. 789—791 = Ber. Leist. Entom.

1905. Lief. 3 (1910) p. 789—790.

— (2). Prototracheata für 1906 [Jahresbericht]. In: Arch. f.

Naturg. 73.Bd.2. H.2 (1910) p. 160—161 = Ber. Leist. Entom. 1906

Liefr. 3 (1910) p. 160—161 = Deutsche Entom. Zeitschr. 1907. Beih.

Lfg. 3 (1910) p. 160—161.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberichte: Lucas, Strand (1,2). — Bibliographie: Sv. Dahl. — Führer

British Museum: Bell. — Geschichtliches: Purcell. — Fettkörper, Nephrocyten :

Philiptschenko.

Faunistik.

Südafrika ; Purcell. — Transvaal: Hewitt. — Neu Guinea : Horst, Sedgwick.

Systematik.

Opisthopatus n.g. Purcell.

Opisthopatus sp., bei cinctipes Hewitt.

Paraperipatus lorentzi n.sp. Neu Guinea. Horst.

_ Peripatidae, südafrikanische Purcell.

Peripatopsis Poc. Purcell. — P.capensis Grube, balfouri Sedg., leonina n. Sp.

sedgwicki n. sp., clavigera n.sp., moseleyi W.-M., alle aus S. Afrika l.ec. —

5spp. nn. (?) l.c.

Peripatus papuensis n. sp. (aus der Gruppe Melanoperipatus) Neu Guinea Sedgwick.

Crustacea für 1910.

I. Malacostraca.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Alcock, A. (1). Catalogue of the Indian Decapod Crustacea in the

Collection of the Indian Museum. Part 1, Brachyura. Faseieulus 11.

The Indian Fresh water crabs. — Potamonidae. Caleutta. 1910 p. 1—135,

14 pls. — Verf. gibt genaue und ausführliche Beschreibungen aller

Formen, einschließlich zahlreicher neuer Spp. u. Varr. innerhalb des

Gebietes von Britisch-Indien. Er gibt Hinweise für eine ganz neue

Einteilung der Familie, indem er auf wichtige morphologische Cha-

raktere aufmerksam macht, die bislang übersehen worden sind, die

aber eine hinreichende Grundlage für die Spaltung in Subfamilien

und Gattungen gewähren. Er äußert sich dann über die Verbreitung

der indischen Arten und zieht Vergleiche mit Blandfords zoologischen

Subdivisionen des Indischen Reiches, die auf die Verbreitung der

Vertebrata begründet sind.

— (2). On the Classification of the Potamonidae (Telphusidae).

Res. Indian Mus. Calcutta vol. 5. 1910 p. 253—261.

Alexandrowiez, J. St. Zur Kenntnis des sympathischen Nerven-

systems der Crustaceen. Jena. Zeitschr. f. Naturw. Bd. XLV. 1909

p. 395—444, 5 Taf. (XXX—XXXIV). 8 Figg. im Text. — Behandelt

histologische u. physiologische Fragen. Die Untersuchungen am

Isopodendarm waren fast resultatlos, da die Methoden zur Darstellung

der nervösen Elemente mislangen. Bezüglich der Innervation des

Darmes der Decapoda ließ sich folgendes feststellen. Der Nervus

intestinalis posterior versorgt die Darmwand, bildet auf derselben

einen Grundkomplex, der Äste zur Rings- u. Längsmuskulatur abgibt,

die daselbst einen Endplexus bilden. Die Endplexen der einzelnen

Längswülste sind von einander isoliert. Im ganzen End- u. Mitteldarm

finden sich bi-, selten tripolare Ganglienzellen, deren distale Fort-

sätze zwischen die Epithelzellen der Schleimhaut eindringen, deren

proximale dagegen sich mit dem erwähnten Grundplexus vereinigen.

Nach der Vermutung des Verfassers endigen diese Fasern ebenfalls

in der Darmmuskulatur. Physiologisch bringt die Arbeit wenig Neues,

sondern ist zumeist eine sorgfältige Kompilation des bisher bekannten.

Die bipolaren Elemente sind nach Ansicht des Verf. die Reizrezeptoren

der autonomen nervösen Mechanismen der Krebsdarmes. Der vom

letzten Abdominalganglion entspringende Nerv, dessen Grundplexus

mit dem motorischen Plexus der proximalen Fortsätze jener bipolaren

Zellen vereinigt ist, hat anscheinend die Regulierung der „automatischen

Bewegung‘ zu besorgen.

78 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Andree, K. Zur Kenntnis der Crustaceen-Gattung Arthropleura

Jordan und deren systematischer Stellung. Palaeontographica.

Stuttgart vol. 57 1910 p. 67—104, 2 Taf.

Andrews, €. W. [On the Robber Crab (Birgus latro)]. Proc. Zool.

Soc. London 1909 (1910) p. 887—889, pl. XXXIH.

Andrews, E. A. The Use of Thelycum and Petasma. Zool. Anz.

Bd. 34. 1909 p. 545—549. — Die Penaeiden besitzen eigentümliche

Organe, die mit den Ausführungsgängen der Gonaden in Zusammen-

hang stehen. Die ersten Abdominalfüße sind beim $ umgebildet u.

miteinander fest vereinigt. Bate bezeichnet diese Bildung als Petasma.

Beim 9 sehen wir eine Platte oder Tasche, oder ein zusammengesetztes

Organ zwischen dem 4. u. 5. Gangfuße. Während die petasmaähnlichen

Gebilde sich bei den Schizopoda u. Decapoda finden, schien das Thelycum

nur auf die Penaeidae beschränkt zu sein. Verf. findet jetzt bei Cam-

barus ein ähnliches Gebilde. Er findet ferner bei Parapaeneus con-

strictus die schon früher ausgesprochene Ansicht bestätigt, dass beide

Organe bei der Kopulation eine Rolle spielen. Sperma oder Sperma-

tophor werden durch das Petasma geleitet und in taschenähnliche

Gebilde des Thelyceum geführt. Bei Penaeus brasiliensis wurde im

Thelycum eine Tasche mit einer kleinen äußeren Öffnung beobachtet.

Im Inneren fand sich Sperma. Ähnliches berichtet schon Spence Bate

von Hemipenaeus tomentosus. Lucifer besitzt kein Thelycum. Die

Spermamasse wird hier mit Hilfe des Petasma direkt an die Ovidukt-

mündung gebracht. Ähnliches beobachten wir auch bei den Schrzopoda,

Lucifer stimmt mit den Schizopoda auch darin überein, daß das

Weibchen die Eier an den Thorakalfüßen mit sich herumträgt.

— (2). Natural History Observations in the Bradford for the

Year ending November 30. 1908. Bradford scient. Journ. vol. 2 p. 193

— 204. — Erwähnt auch /sopoda.

Apäthy, Istvän und Farkas, Bela. Adatok a Folyami Räk täp-

csövi mirigyeinik ismeret&hez [Beiträge zur Kenntnis der Darmdrüsen

des Flußkrebses]). Muz. Füz. Kolozovär vol. 1 [1906] 1907 p. 28—49,

117—150, Taf. III.

Appellöf, A. Udkast til ny Lov om Fredning af Hummer samt

Forslag om Anlaeg af Opdraetningsanstalter for Hummer (efter

Mead’s System). [Entwurf eines neuen Gesetzes über die Schonzeit

für den Hummer und Vorschlag zur künstlichen Zucht des Hummers

nach Mead’s System.] Bergen, Norsk Fisket. vol.29 1910 p. 368

—374, 389—399.

Arcangeli, Alceste (1). Armadillidium Gestroi B. L. Contribution

alla migliore conoscenza di questo Isopode italiano. Monitore zool.

ital. Firenze vol. 21 1910 p. 13—27, 1 tav.

— (2). Armadillidium Peraccai Tua. Contributo alla migliore

conoscenza di questo Isopode italiano. Atti Soc. tosc. sc. nat. Pisa.

Processi verbali. vol. 19 1910 p. 60—65.

Arldt, Th. Die Ausbreitung einiger Dekapodengruppen. Arch.

Hydrobiol. Stuttgart Bd. 5. 1910 p. 257—282. — cf. Bericht f. 1911.

‘ Publikationen und Referate. 79

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to the Wild Fauna and Flora of the Royal Botanic Gardens Kew. IX).

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— (2). Records of some Scandinavian Woodlice. Zoologist

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Baker, W. H. Notes on some species of the Isopod family Sphaero-

midae from the South Australian Coast. Part II. Trans. Roy. Soc.

S. Austral. Adelaide vol. 34 1910 p. 75—88 pls. XXI—XXIV.

Balss, Heinrich (1). Ostasiatische Stomatopoden. (Beitr. z.

Naturgeschichte Ostasiens, hrsg. von Dr. F. Doflein). Abhdlgn. Ak.

Wissensch. München. Suppl. Bd.2. Abhdlgn. 2. 11 pp.

— (2). Stomatopoden des Roten Meeres. (Exped. S. M. Schiff

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Wiss. Wien. Bd. 85. 1910. Beri:hte der Kommission für Ozeano-

graphische Forschungen. 4 pp.

Baumann, Franz. Beiträge zur Biologie der Stockhornseen. Rev.

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de Beauchamp, P. Sur une gregarine nouvelle du genre Porophora.

Compt. rend. Acad. S:i. Paris T. 151 1910 p. 997—999.

Bedot, M. (1). La faune eupelagique (Holoplancton) de la Baie

d’Amboine et ses relations avec celle des autres Oceans. Rev. Suisse

zool. T. 17 1909 p. 121—142. — Auch Schizopoda betreffend.

— (2). Sur la faune de l’Archipel Malais (Resume). t.c. p. 143

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Birula, A. Beiträge zur Kenntnis der Decapoden-Krebse der

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Bohn, Georges. Sur les reactions comparees de deux parasites

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sci. T.38 (1909, 1910) p. 726—729.

Bonnema, 3. H. Diluviale Zwerfsteenen van het eiland Borkum.

[Diluvial boulders from the island of Borkum.] Versl. Wis. Nat. Afd.

K. Akad. Wet. Amsterdam vol. 19 [1910] p. 141—146 1 pl. (Hollän-

disch); Proc. Sci. K. Akad. Wet. Amsterdam vol. 13 [1910] p. 137

—142, 1 pl. (Englisch).

Borcherding, Fr. Albrecht Poppe. Abhdlgn. naturw. Ver. Bremen

Bd. 19. Hft. 2. 1908 p. 193—203 mit Porträt. — Biographie.

Borradaile, L. A. (1). Penaeidea, Stenopidea and Reptantia from

the Western Indian Ocean. Trans. Linn. Soc. London ser.2. Zool.

vol. 13 pt. 2. 1910 p. 257—264, pl. XVl. — Ausbeute Stanley Gar-

diners auf den Inseln und Bänken des westlichen Indischen Ozeans.

Von den 22 Spp. sind 8, vielleicht auch 9 neu; eine ist Type einer neuen

Gatt. Alle Spp. sind bereits aus anderen Teilen des Indischen Ozeans

oder den benachbarten Meeres-Gebieten bekannt. Interessant ist das

Vorkommen von Sicyonia carinata, die auch im westlichen Atlantik

gefangen wurde. Die Bemerkungen etc. erstrecken sich auf folgende

Formen: Metapenaeus (3), Haliporus (1 n.sp.), Solenocera (1 n.sp.),

80 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Benthesicymus (1), Sicyonia (2), Sieyonella n.g. (1 n.sp.), Stenopus

(2+ 1In.sp.), Panulirus (2), Puerulus (ln. sp.), Scyllarus (1), Thenus

(1), Nephropsis (1), Axiopsis (1), Upogebia (?1) u. Callianassa (1).

Die Abb. auf pl. 16 betreffen die neuen Spp.

— (2). On the Land and Amphibious Decapoda of Aldabra. t. c.

p- 405—409. — Die Kollektion stammt aus einer fünfmonatlichen

sorgfältigen Ausbeute und ist ziemlich erschöpfend. Süßwasser-

formen fehlen, da Süßwasser auf der Insel fehlt; dagegen wurden einige

amphibische Formen aus den Mangrovesümpfen bekannt. Die 17 Spp.

verteilen sich auf 10 Gatt. u. sind gewöhnliche indopazifische Formen,

die keine lokalen Abweichungen zeigen. Beachtenswert für die Deca-

poden-Landfauna von Aldabra ist das Vorkommen des Robber Crab

(Birgus). Dieser verbindet die Fauna der Insel mit den Chagos und

dem östlichen Teile des Indopacifischen Ozeans u. unterscheidet

ihn von Minikoi, den Malediven u. Seychellen. Andere Anzeichen

in gleicher Richtung bilden das Vorkommen von Helice, die sich nicht

im nordwestlichen Indischen Ozean findet, sowie das Fehlen von

Geograpsus minikoiensis, der diesem Gebiete eigentümlich ist u. daselbst

wahrschemlich einen lokalen Vertreter des mehr östlichen @. long:-

tarsus darstellt. Abgesehen von diesen Ausnahmen finden sich keine

wichtigen Unterschiede zwischen der Fauna von Aldabra u. der der Sey-

chellen. Uca tetragonum u. Varuna literata auf den Seych. vorhanden,

auf Ald. fehlend, Metopograpsus messor auf Ald. vorhanden, auf den

Seych. fehlend, doch mögen sie in Anbetracht ihrer sonstigen Ver-

breitung übersehen worden sein. Größere Unterschiede herrschen

zwischen der Liste der Land-Decapoda von Aldabra u. den von den

Malediven bekannten Formen. Die Liste der Aldabra-Formen ist

beträchtlich größer. Aus der Betrachtung der Listen geht hervor,

daß die Land-Decapodenfauna der Inseln des westl. Indischen Ozeans

wesentlich östlich ist und dass sie in der Richtung von Südwest nach

Nordost eine continuierliche Verarmung zeigen, die in der Insel Minikoi

ihren Höhepunkt erreicht, also gerade dort, wo ä priori die Fauna am

reichsten sein sollte, da sie gerade der kontinuierlichen Landverbindung

mit dem Osten am nächsten liegt. Hieran schließt sich die Liste der

Spp. (p. 407—409).

Bouvier, E. L. (1). Un Argulide nouveau de l’Argentine. Bull.

Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 92—9.

— (2). Quelques Arthropodes recueillis aux iles Kerguelen.

t. c. p. 99 —%.

— (3). Notes sur les Arthropodes recueillis aux iles Kerguelen.

t. c. p. 178—179.

— (4). Crustaces et Pyenogonides. Actes Soc. Linn. Bordeaux

T. 64 1910 p. 221—226, pl. LXIV.

— (5). Quelques Crustaces de l’Amerique et des Sandwich du

Sud. Rev. chilena Valparaiso. T. 14. 1910 p. 178—182.

Braun, M. Die Fauna des Grundwassers und der Brunnen.

‘Schrift. phys.-ökon. Ges. Königsberg. Jahrg. 49. 1909 p. 302—306.

— Erwähnt auch Amphipoda und Isopoda.

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Isopoda, Flabellifera, Sphaeromidae: Limmoria (1 n.sp.).

— (2). Note on two species of the genus Pandalus. t.c. p. 524

—527, 2 figg. — Ergänzende Bemerkungen zu P. bonnieri Caullery

u. P.leptocerus 8. J. Smith. Verf. hatte 1899 bei der Bearbeitung

der Pandalidae festgestellt, dass P. bonnieri Caullery nahe verwandt

ist mit P.leptocerus 8. J. Smith (von der atlantischen Küste von

N. Amer.) u. daß letztere sich hauptsächlich durch die feine höckrige

Körperoberfläche unterscheidet. Apellöff hat 1906 die Vermutung

ausgesprochen, daß P. bonnieri nur eine östliche atlantische Varietät,

von leptocerus sei, da er besonders auf den Seiten u. auf dem Abdomen

zerstreut stehende Haare fand. Diese Ansicht ist von mehreren Autoren

angenommen worden. Erneute Untersuchungen beider Stücke im

Mus. Brit. lassen jedoch Merkmale unterscheiden, die wenn auch

geringfügig, so doch konstant sind. Ob aber beide nun als verschiedene

Spp., Varr., Subspp. oder Rassen aufzufassen smd läßt Verf. noch

unentschieden. Die Figuren stellen den proximalen Teil des Rostrums,

sowie das Basalsegment der Antennulae beider Spp. dar.

— (3). On Heterocuma sarsi, Miers. op. cit. vol. 6 1910 p. 612

—616, p. X. — Beschreibung der genannten Sp. nebst einer Var. der-

Bemerkungen zur Gatt. Die Taf. bringt in 13 Figg. Details

azu.

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pl. 19. — Die neue Art stammt aus einem kleinen Teiche bei Tiberias,

der sein Wasser aus einer Quelle empfängt u. einen Abiluß nach dem

Archiv für Naturgzeschichte 6

1911. V. 2.

82 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

See von Galilea (See Genezareth) hat. Sie ist augenlos. Verf. nimmt

an daß die Art nicht aus dem See stammt und aus unterirdischen Ge-

wässern durch die Quelle in den Teich gelangt ist. Sie weicht von den

beiden anderen blinden Vertretern, Palaemonetes antrorum Benedict

u. P. eigenmani Hay aus Zentralafrika sehr ab, weshalb die Aufstellung

eines neuen Gattungsnamens dafür sehr angebracht ist. Im See Gene-

zareth kommen noch zwei weitere Decapoda vor: Telphusa fluviatilıs

(nach Rathbun = Potamon potamios) u. Hemicaridina (= Atyaephyra)

desmarestii. — Von unterirdisch lebenden Decapoda sind nunmehr

9 Spp. bekannt: Atyidae: Troglocarıs schmidtii Dorm. u. Palae-

monias ganteri Hay. — Cambaridae: Cambarus 4 Spp.: ©. pellu-

cidus Tellk., hamulatus Cope u. Pack., C. setosus Fax., C. acherontis

Lönnb. ; hierzu kommen noch die beiden oben erwähnten Palaemonetes

u. die genannte Gattung Typhlocarıs m. T. galilean.sp. Taf. 19 bringt

Abb. nebst Details.

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—285, 15 pls. — I Teil Gammarina. Die Sammelausbeuten

wurden an Bord der Yacht Melita gemacht. Verf. schildert

kurz die Reiseroute und gibt eine Liste der zahlreichen Stationen,

an denen Amphipoden gesammelt wurden (p. 145—155). Hieran

schließt sich die Beschreibung der Arten, die sich folgender-

maßen verteilen. Lysiannass.: Nannonyz (1 n. sp.), Lysianassa

(4), Perrierella (1), Orchomene (1), Aristias (1), Socarnopsis n. 8.

(In.sp.), Hippomedon (1), Scopelocheirus (1), Aroui n. g. (ln. sp.),

Tryphosa (1 n.sp.), Tmetonyx (1), Lepidepecreum (1). — Stegoceph.:

Stegocephaloides (1). — Ampelisc.: Ampelisca (6). — Haustor. Bathy-

poreia (1 .n.sp.), Urothoe (1). — Phozxocephal.: Paraphoxus (1), Meta-

phozxus (2), Harpinia (2 + 1 nom. nov.). — Amphiloch.: Amphrlochus

(2), Amphilochoides (2), Gitana (1), Peltocoxa (1). — Leucothord.: Leu-

cothoe (3). — Stenothoid.: Stenothoe (1 + 2 n. spp.). — Phlias.: Pereio-

notus (1). — Colomastixid.: Colomastix (1). — Acanthonotozom.: Pano-

ploea (1), Iphimedia (1). — Lilljeborgid.: Lilljeborgia (1). — Oedice-

rosid.: Perioculodes (1), Pontocrates (1), Synchelidium (1), Westwoodilla

(1), Monoculodes (2). — Tironid.: Pseudotiron (1). — Calliopüd.:

Publikationen und Referate. 83

Apherusa (1 + 1.n.sp.). — Atyhid.: Nototropis (2). — Eusirid.: Eusi-

roides (1). — Gammarid.: Pseudoniphargus (1), Eriopisa (1), Cheiro-

cratus (2), Melita (3 + 1.n.sp.), Ceradocus (1), Maera (3), Maerella

n.g. (1), Zlasmopus (3), Pherura (1), Gammarus (6). — Dezxaminid.:

Dezxamine (2), Tritaeta (1), Guernea (1). — Tahtrid.: Talitrus (1),

Orchestoidea (1), Orchestia (5), Talorchestia (2), Hyale (” + 1.n.sp.),

Allorchestes (2). — Aorid.: Aora (1), Microdeutopus (3), Lembos (1.n.sp.

+ 1). — Photidae: Miroprotopus (1), Photis (1), Eurystheus (3), Podo-

ceropsis (1), Megamphopus (1 n.sp.), Leptocheirus (4). — Amphitoid.:

Amphithoe (1), Pleonexes (1), Grubia (1), Synamphitoe (1). — Jassid.'

Jassa (1). — Corophüd.: Erichthonius (2), Cerapopsis (1), Unciolella

n. g. (1 n. sp.), Parunciola n. g. (1 n. sp.), Syphonoecetes (1),

Corophium (6). — Chelurid.: C'helura (1). — Podocerid.: Podocerus (2).

— Bibliographie (p. 273—275): 44 Publ. — Tafelerkl. (p. 276—285).

Erklärung zu den zahlreichen Detailfig. auf pls. VI-XX. — p. 292

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J. F. Mc Clendon auf den Tortugas, Florida erbeuteten Alpheidae:

Alpheus formosus Gibbes, A. cristulifrons Rathbun, A. armillatus

H. Milne Edw., ? A. Candeı Guer., Synalpheus minus (Say), S. Town-

sendi subsp. scaphoceris n., 8. Brooksi Coutiere u. S$. Mcclendondi

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—VII and textfigs. 3—6 [explanation p. 130—131]. — Ürustacea

p. 119—122. — Auf St. Helena wird Krebsfischerei betrieben und

zwar sind die eßbaren Formen Panulirus gutiatus bekannt als ‚long-

legs“ u. Scyllarus latus als „stump“. Beschreibung der Fischerei.

— Die im folgenden behandelten Spp. verteilen sich wie folgt: Panu-

84 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

luridae: Palinurus (1); Scyllaridae: Scyllarus (1); Paguridae: Pagurus

(2, mit Abb.); Dromiüidae: Dromia (1); Grapsidae: Grapsus (1), Pla-

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Modifikationen auch für die Krebse: 1. Der Ballungsvorgang der

Pigmentzellen beruht auf intrazellulären Pigmentströmungen, nicht

Publikationen und Referate. 85

auf amöboiden Bewegungen. 2. Die plasmatische Radiärstruktur der

Pigmentzellen besteht in einem intrazellulären Stäbeskelett, dessen

Vorhandensein wegen der regen intrazellulären Strömungen genügend

erklärt ist, dessen Bau in einigem an Acantharienskelette erinnert.

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suchen des Verfs. geht hervor: 1. Nach beiderseitiger Blendung tritt

zunächst bei Palaemon die rote, auf der Expansion der Chromatophoren

beruhende Nacht-Färbung auf. 2. Dieselbe geht im Laufe von wenigen

Wochen in eine kreideweiße (P. treillianus) oder wenigstens lichtgelbe

über (P. rectirostris, das beide Augen regeneriert hatte, nahm wieder die

normale Färbung an). 3. Vorübergehende Weißfärbung kommt bei

: Haltung von Palaemon auf weißem Untergrunde durch Auftreten

einer weißlichen Substanz im Carapax zustande, während zugleich

die roten Chromatophoren sich kontrahieren. Bei Haltung auf Spiegeln

in starkem Licht wird diese Kontraktion maximal und Palaemon

durchsichtig. 4. Eine andere wolkige, weiße Trübung entsteht bei

Palaemon, die zu heftigen Springbewegungen gereizt werden, und

hat ihren Sitz in der Muskulatur des Schwanzes. Die Taf. (XIII)

von P.treilleanus ist farbig und stellt Details der Pigmentierung,

„gespensterhafte‘“ weiße Tiere (Fig. 10 11) ete., dar.

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— Amphipoda (p. 526—527): Hyperia (1), Parathemisto (1), Euthe-

misto (1), Socarnıs (1), Anonyx (1), Pseudalibrotus (1), Onesimus (1),

Paroediceros (1), Pleustes (1), Syrrhoe (1), Rhachotropis (1), Halirages

(1), Atylus (1), Amathilla (2), Gammarus (1), Protomedeia (1), Duls-

chia (1), Caprella (1). — Alle Amphipoda, die bei Spitzbergen von der

Belgica erbeutet wurden, sind schon vorher aus diesem Gebiete bekannt

gewesen. 8 Spp.: Parathem. obl., Euthem. lib., Anon. mug., Pseudal.

litt., Paroed. lync., Syrrh. cren., Halir. fulv. u. Gamm. loc. sind. auch

in weiter Entfernung von Ost-Grönland bekannt. Beim Vergleich

der Amphipoda, die von der Belgica bei Spitzbergen gesammelt wurden,

mit denen, die bei Ost-Grönland gefangen worden sind, macht sich

ein auffälliger Unterschied bemerkbar — die ostgrönländischen Arten

zeigen einen deutlichen arktischen Charakter, insofern als einige unter

ihnen: Amathillopsis spin., Acanthostepheia malmgreni, Amphitopsis

glacialis, Cleippides quadricuspis, Eusirus holmi u. Aegina spinosissima

einzig und allein in der kalten Region gefunden worden sind, während

die bei Spitzbergen gesammelten Amphipoda eine boreo-arktische

Verbreitung haben. Sie finden sich sowohl in der kalten wie in der

wärmeren Region, woselbst die Mehrzahl derselben eine weite Ver-

breitung in den Gebieten aufweist, in die das arktische Gletscher-

wasser nicht dringen kann. — 3 Spp.: Hyperia galba, Dulichia curti-

cauda u. Caprella septentrionalis können ebenfalls als boreal angesehen

werden, da sie anscheinend noch nicht ausserhalb des kalten Gebietes

beobachtet worden sind. Ein Analogon finden wir bei den Decapoda:

Hippolyte pusiola, die von der Belgica als auch von der Helgoland bei

Spitzbergen erbeutet wurde, ist nicht aus den rein arktischen Gewässern

mit einer Tiefentemperatur unter Null bekannt. Unter den Ampki-

poda von Spitzbergen scheint Amathilla pinguis die bemerkenswerteste

arktische Art zu sein, die nur aus den arktischen Gewässern (eaux arct.

elevees) bekannt ist. Ein zweiter Unterschied ergibt sich aus der Tat-

sache, dass im Ostgrönland, woselbst man mehrere Arten gefunden hat,

keine in einer beträchtlichen Anzahl vorkam, während die Amph.-

Arten, die bei Spitzbergen erbeutet wurden, sich dort in ungeheurer

Menge vorfanden. Diese Bemerkung begründet sich hauptsächlich

auf Gammarus locusta, deren Individuen, jung wie alt, in ausserordent-

licher Menge in der Bucht von Treurenberg (St. 6) gesammelt wurden.

Anonyz nugax war an dieser Stelle gleichfalls sehr zahlreich. — Eine

andere Form Pseudalbrotus littoralis war seltener, obschon noch zahl-

reich genug. Dagegen wurde Pandalus borealis in großen Mengen

auf einer der Stationen erbeutet, die weit von Ost-Grönland entfernt

ist (Stat, 45). — Sclerocrangon boreas war ebenfalls bei Spitzbergen

Publikationen und Referate, 87

sehr häufig (Station 10). Dagegen begründet sich anscheinend das

Vorhandensein grosser Mengen von Gammarus locusta bei Cap Arendts

(Koldewey-Inseln) nur auf das Auffinden derselben in beträchtlicher

Menge im Magen eines Trichechus rosmarus, der an dieser Stelle getötet

war. Verf. hat schon früher darauf aufmerksam gemacht, dass die

arktischen Ophiuroiden im allgemeinen an einer Stelle durch Indi-

viduen gleichen Alters oder gleishen Stadiums vertreten sind. Das

trifft bei den Amphipoda u. Decapoda gleichen Ortes nicht zu. Sie

sind von verschiedener Grösse u. demgemäss auch von verschiedenem

Alter. Das gilt für Gammarus locusta, Anonyz nugaz u. Pseudalhibrotus

auf Stat. 6, für Caprella septentrionalis auf Stat. 10, für Pandalus

polaris auf Stat. 45 u. für Stegocephalus inflatus auf Stat. 41. — Ausser-

dem sind bei den einzelnen Stationen (p. 127—261) Listen der er-

beuteten Crustacea angegeben.

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(Cyclaspis glacialis n.sp. u. Campylaspis frigida n.sp.). Das Material

an Euphausiaceen-Larven war sehr reichhaltig. Die Untersuchung

desselben lehrt, daß bei verschiedenen Arten die Entwicklung sehr

88 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

verschieden verlaufen kann. Hat bei zwei Formen eine Reihe von

Organen die gleiche Entwicklungshöhe erreicht, so können andere

Organe im Stadium ihrer Entwicklung sehr verschieden sein.

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nicht groß, doch sehr interessant. Sie umfaßt 25 Arten, die mit wenigen

Ausnahmen nicht sehr individuenreich sind (meist nur je 1, selten

2—3 Exemplare). — Liste der Vertreter im antarktischen und sub-

antarktischen Gebiete ( p. 3—5): 111 Spp. — Die behandelten neuen

Spp. sind: Nototanais (1), Leptanthura (1), Gnathia (1), Euneognathia

(1), Aega (1), Cirolana (1), Serolis (1), Oymodocella (1), Antarcturus

(1), Glyptonotus (1), Notasellus (1), Austronanus (1), Austrofilius (1),

O’ulmannia (2), Notoxenus (1), Haliacris (1), Austromunna (1), Antvas (1),

Austrosignum (2), Notopais (1). — Als Schluß werden die in der dem

Verf. während der Fertigstellung der Druckbogen zugegangenen

Publikation aufgeführten Spp. der Ausbeute der Französ. Antarkt.

Expedition namhaft gemacht und kurze Bemerk. dazu gegeben (p. 72).

Literatur (p. 73) (9 Publ.) Tafelerklärung (p. 74—75) zu Taf. I—-X.

— sSerolis cornutus Studer ist nur eine immature Form von 8. tri-

lobitoides Eights. Die Arcturidae bilden ebenfalls eine Familie, bei

welcher die spezifischen Charaktere ernsthaft mit sexueller Variation

verwickelt sind. Männchen und Weibchen von Antarcturus franklinı

erscheinen, wie Taf. V zeigt, als zwei verschiedene Spp. (8 als

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Publikationen und Referate. 89

zu Tandjong-Priok. Soweit bis jetzt bekannt, sind 7 Arten auf 6 Palae-

monidenarten gefunden worden: 1. Palaegyge Borrei und 2. P. Weberi

auf P. dispar, — 3. P. Bonnieri auf Pal. lar, — 4. P. fluviatilis auf

Pal. lampropus, — 5. P. de Mani auf Pal. pilimanus, — 6. P. brevipes

auf Pal. endehensis und 7. P. incerta auf P. bariensis. Beschreibung

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Metazoa finden wir eine funktionelle Gleichberechtigung aller seiner,

dem Nervenmuskelsystem angehörenden Teile. Jedes Teilchen des

Hautmuskelschlauches ist der vollen Reflexfunktion fähig. Im Laufe

der phylogenetischen Entwicklung kommt zu diesem Nervenmuskel-

system unterster Ordnung noch das Oberzentrum, wohl stets im An-

schluß an die Hauptsinnesorgane. Nicht das Geschehen innerhalb des

Hirnes selbst, sondern diejenige Mechanik soll uns hier beschäftigen,

durch die das Produkt dieses Geschehens, ‚der Impuls“, das unterge-

ordnete Nervenmuskelsystem zu beeinflussen vermag. Menschlich

subjektiv ausgedrückt lautet das Problem: ‚Der Wille mag den Ablauf

der (mechanischen) Reflexe entscheidend zu beeinflussen (Willens-

handlung)“. Wie ist die physiologische Mechanik beschaffen, durch

welche der (Willens)-Impuls dies tut? Verf. hatte schon früher gezeigt,

daß die bloße Gegenwart des Ganglions in allen Teilen der Muskulatur

gleichmäßige Herabsetzung der Erregbarkeit bedingt. Es leuchtet

ein, daß durch abgestufte quantitative Beeinflussung der Erregbarkeit

das Hirn imstande sein muß, der Schnecke jede beliebige Art und

90 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Richtung der Lokomotion aufzuzwingen. Verf. fragt sich nun: Wie

verhält sich dies alles bei den Orustacea? Die für die Schnecken gültige

Erklärung der in Frage stehenden Erscheinungen ist für Cancer

pagurus nicht anwendbar. Die Erregbarkeit eines irgendwie gereizten

Beinmuskels ist von der Anwesenheit des Gehirns gar nicht abhängig.

Trotzdem findet sich bei Flußkrebsen eine gesteigerte Erregbarkeit

der operierten Seite. Wie sind die Kreisbewegungen zu erklären?

Richet und Biedermann hatten gefunden, daß starke Ströme Scheren-

schluß, schwache Ströme hingegen Scherenöffnung bedingen. Dieser

Satz läßt sich auch auf die Gangbeine übertragen, wenn man dabei

ın Betracht zieht, daß die Gelenke der Beine abwechselnd vertikal

und horizontal liegende Achsen haben. Reizung des Gehirns cder

der von ihm ausgehenden Konnektive hat genau die umgekehrte

Wirkung wie periphere Reizung. Am Gehirn bedingen schwache

Reize Beugung der Beine, starke Reize aber Streckung. Von dem

Gedanken ausgehend, daß, wenn wirklich ein einfacher, die Bahnen

gleichmäßig durcheilender Hirnimpuls genügt, normalen Gang zu

erzielen, auch elektrische Reizung des vom Gehirn ausgehenden

Schlundkonnektivs diese Hirnwirkung zu ersetzen imstande ist, ent-

fernte Verf. bei einer Anzahl von Cancer pagurus das Hirn einseitig

(rechts), versah das betreffende Konnektiv mit Elektroden und

verschloß den Panzer hermetisch. Die Tiere führten die bekannten

Kreisbewegungen aus; bei Reizung des Gehirns durch mittelstarke

Ströme greifen die zugehörigen Beine nach außen und es kommt ein

durchaus normaler Seitengang in gerader Linie zustande, wobei die

Beine der operierten Seite stets vorangehen (ziehen). Bei stärkeren

Strömen erfolgen Kreisbewegungen in entgegengesetzer Richtung

wie die des ungereizten einseitig enthirnten Tieres. Durch Abtönung

der Stromstärke können wir dem Tiere jedwede gewünschte Richtung

aufzwingen. Verf. glaubt durch diesen Versuch den Hirnimpuls ersetzt

und ihn dadurch in seiner Wirkung ergründet zu haben. Zwischen der

Hirnmechanik der Schnecken und derjenigen der Krebse besteht ein

Unterschied. Beiden Schnecken finden wir eine allgemein quantitative

Beeinflussung der Erregbarkeit aller Muskeln, bei den Crustaceen

einseitige Erregung besonderer Muskelgruppen. Bei Cancer pagurus

ist die bloße Gegenwart des Cerebralganglions für die Erregbarkeit

bedeutungslos; es bedarf eines Impulses zur Regulation, den wir

durch elektrische Reizung ersetzen können. Bei den Schnecken

macht sich der Einfluß des Cerebralganglions auf die Gesamtbe-

wegung dauernd geltend und wenn wir diesen Einfluß mit elektrischer

Reizung nachzuahmen suchen, erzielen wir genau den umgekehrten

Effekt: Erregung anstatt Hemmung. — Mit der Erwerbung von

Extremitäten, wie die Anthropoden sie besitzen, und die eine Be-

wegung in verschiedenem Sinne zulassen, würde die rein quantitative

Regulierung peripher präformierter Bewegungen unzulänglich.

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Bei den Orustacea finden wir zwei verschiedene Arten der Lichter-

zeugung: 1. die Mehrzahl der Arten besitzt ein drüsiges Organ, das

Tropfen öliger Flüssigkeit ausscheidet, die bei Berührung mit dem

Wasser leuchten, wobei es sich wahrscheinlich um einen Oxydations-

prozeß handelt (Polycheles phosphorus).. Bei anderen leuchtet das

Exkretionsprodukt der Antennendrüsen (Aristeus coruscans und

Heterocarpus alphonsi). 2. Mehrere Arten besitzen sogenannte Photo-

phoren, d. h. zusammengesetzte Leuchtorgane, die keine Flüssigkeit

ausscheiden. Sie bestehen in den meisten Fällen aus einer Linse, der

sich zuweilen auch ein Reflektor zugesellt. Über die chemischen Vor-

gänge bei diesem Typus ist noch sehr wenig bekannt. Wahrscheinlich

handelt es sich auch hierbei um einen Oxydationsvorgang, wobei

das Oxygen auf den Photophor durch das Blut übertragen wird.

Photophoren finden wir in hochentwickelter Form bei fast allen

Euphausiacea und bei folgenden Decapoda: Sergeste challengeri Hansen,

S. gloriosus Stbbg. (Penaeidea), ferner bei Acanthephyra pellucida

Perrier, A. debilis A.M.-Edw. und Hoplophorus grimaldıi Coutiere

u. H.sp. juv. (beide Gatt. zu den Caridea Hoplophor. gehörig). Wahr-

scheinlich besitzen auch zwei andere Gattungen Gennades und Amalo-

penaeus (beide Penaeiden) ebenfalls Photophoren. Verfasser be-

schreibt und illustriert dann die Photophoren von sSergestes (p. 641

—643 pls. LIII figs 2—4 u. pl. LIV figs. 2, 3,5), von Acanthephyra

(p- 643—646 pl. LII fig. 1 u. pl. LIV fig. 1) u. Hoplophorus (p. 646).

— Das Pıgment der Photophoren. Die Photophoren tragen im lebenden

Zustande ein tiefblaues Pigment, das bei Sergestes in der obersten Zell-

schicht und bei Acanthephyra in der Linse vorhanden ist. Es ist sicher

nahe verwandt, wenn nicht gar identisch, mit dem Pigment beim

Hummer. Im absoluten Alkohol färbt sich die blaue Farbe sofort

hellrot, dasselbe tritt auch beim Kochen in Wasser ein. Zerschneidet

man die Linse von Acanthephyra und behandelt sie mit starker Schwefel-

oder Salzsäure, so geht die blaue Färbung sofort ins Rote über, nimmt

bald darauf einen dunklen grünlichblauen Ton an, der nach und nach

blasser wird. Das rote Pigment, welches uns vom Krebs und Hummer

bekannt ist, gelört den Lipochromen oder Fettpigmenten an (von

Moseley als Crustaceorubin bezeichnet, verbunden mit einer geringen

Quantität gelben Pigments (Hepatochrom), das von der Leber ab-

zustammen scheint. Die Untersuchungen von Krukenberg u. (Miss)

Newbigin scheinen darauf hinzuweisen, daß das unbeständige blau-

schwarze Pigment oder Lipochrom beim Hummer aus einer Mischung

von rotem Lipochrom mit einem Komplex einer organischen Base

besteht. Die blaue Färbung verwandelt sich in eine rote, sobald ein

Reagenz zugefügt wird, welches die Form des Proteids verändert.

Das rote Pigment liefert, extrahiert und getrocknet, mit starken

Säuren eine prächtige, wenn auch vergängliche blaue Reaktion.

Die geringe Größe der Photophoren gestattet leider solche Auszüge

nicht, doch klärt uns ein Zusatz zur Linse von Acanthephyra hin-

99 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

reichend über die Natur des Pigments auf. Die Säure schließt das

Proteid auf und verwandelt das blaue Lipochrom sogleich in rotes,

worauf sogleich die blaue Reaktion erfolgt, welche dieses Pigment

in Gegenwart einer Säure liefert. Die umgebenden Gewebe werden

durch die Säure verbrannt und werden braun. Das Vorhandensein

einer blauen Färbung findet sich bei Tiefseetieren nur äußerst selten.

Sie wurde einmal 1909 an Thysanopoda acutifrons Holt u. Tattersall

beobachtet. Die Linse von Acanthephyra vermag offenbar nur blaues

Licht durchzulassen und wahrscheinlich ist es auch bei Sergestes der

Fall, bei der zwar die Linse klar, jedoch die erste Zellschicht blau ist.

Die Erzeugung blauen Lichts scheint also bei ersterer Art notwendig

zu sein, wozu jedoch, bleibt vorläufig unerklärlich. Die Entwicklung

der Photophoren ist wenigstens auf dreierlei verschiedene Weise vor

sich gegangen. Der Bau dieser Organe ist bei Acanthephyra u. Hoplo-

phorus ganz verschieden von dem Sergestes. Überdies zeigen sie keine

Ähnlichkeit mit den bei den Euphausiaceen vorgefundenen Organen.

Beachtenswert ist ferner, daß in der letzteren Gruppe das Vorkommen

der Organe allgemein verbreitet ist (nur Bentheuphausia fehlen sie),

wogegen sie in so großen Gattungen wie Sergestes und Acanthephyra

nur auf wenige Arten beschränkt sind. Dofleim hat 1907 die Möglich-

keiten der Funktionen erörtert, denen die Leuchtorgane dienen

können. 1. Anlocken der Beute. 2. Anlocken anderer Individuen.

3. Zum Schutze. 4. Zur Beleuchtung von Objekten, die den Tieren

zu Gesicht kommen. Diese Möglichkeiten sind jedoch nicht erschöpfend,

die Photophoren am Dache der Kiemenkammer bleiben dadurch

unerklärt. — Die Mehrzahl der Meerestiere mit Photophoren lebt an

der Oberfläche oder in mittleren Tiefen und geht niemals auf den

Boden. Diese Regel ist wohl ohne Ausnahme, doch hat man ge-

legentlich zwei Euphausia-Arten (Meganyctiphanes norvegica und

Nyetiphanes couchii am Boden seichterer Gewässer gefunden (z. B.

auf der Höhe der irischen Küste in 40—60 Faden Tiefe), häufig hat

man sie auch aus Tiefen von 400—800 Faden heraufgeholt. Diese

scheinbaren Ausnahmen sind wohl auf die gewöhnliche offene Form

der Fangnetze zurückzuführen. Viele der höheren Tiere mit wohl-

entwickelten Augen leben am Grunde des Meeres, woselbst wohl

kein Sonnenstrahl hindringt; sie besitzen keine Leuchtorgane. Es ist

sicher anzunehmen, daß Licht in diesen Tiefen vorhanden ist und

wahrscheinlich in bedeutender Menge in jenen Gegenden, die dicht

mit Coelenteraten bevölkert sind und wo die Exkretionen zahlreicher

höher organisierter Tiere helles phosphoreszierendes Licht verbreiten.

Die Beschränkung der Photophoren auf Arten, die in den mittleren

Meeresschichten leben, erscheint auf Grund der Theorie erklärlich,

ebenso auch daß verhältnismäßig viel Licht auf dem Grunde selbst

vorhanden zu sein scheint. Tafelerklärung (p. 650—651) zu den Mikro-

photogrammen [nach Schnitten].

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hatte sich die Frage gestellt, ob es sich bei den nicht abweichend ge-

stalteten Samenfäden von Crustaces in jeder Hinsicht um typische

(flagellatenförmige) Spermien handelt. Als geeignetes Objekt diente

Gammarus pulex. Als Konservierungsmittel dienten: Sublimat-, Zenker-

sche, Hermannsche, Flemmingsche Lösung und Sublimat-Salpetersäure.

Sublimatlösung erwies sich am geeignetsten für Nachbehandlung

mit Eisenhämatoxylin, Flemmingsche für die Anwendung der

Bendaschen Methode, und Hermannsche ließ die Kernstrukturen

am deutlichsten erkennen. Der männliche Geschlechtsapparat be-

steht aus zwei selbständigen Schläuchen, die am 2. Thoraxringe be-

ginnend, auf die Dorsalseite des Darmes verlaufen und ventralwärts

am 7. Thoraxringe in je einem Penis endigen. Jeder Schlauch besteht

aus drei Abschnitten: Testis, Vesicula seminalis und Vas deferens.

Der erste Teil ist der größte und geht mit einer leichten Einschnürung

in den 2. halb so langen aber erheblich weiteren Teil über. Vor dem

kurzen Blindsack der Vesicula führt ein feiner Kanal, das Vas deferens,

in seitlichem Bogen um Darm und Leberschläuche abwärts zu dem

kurzen, schläg einwärts gerichteten Penis nahe der Bauchmittellinie.

Die histologische Untersuchung geschah am Querschnitten. Die

Schläuche sind mit Spermien in allen Stadien erfüllt, je nach der

Entfernung vom Beginne des Hodens. Die Samenfäden bestehen aus

einem deutlichen Spitzenstück mit 2 Körnchen (eins an der Spitze,

ein basales am Kopfe), die durch einen äußerst feinen Faden verbunden

sind. Der Kopf selbst ist walzenförmig (1,355 u Br., 16,5 « mitt. L.)

mit einem homogenen Innenkörper (Chromatin) und einem spiraligen

Überzug (Mitochondrien). Letzterer umgibt in dichten Touren den

ganzen Kopf. Der Achsenfaden, der den Kopf durchzieht, setzt sich

bis in den Schwanz hinein fort. Das den Übergang bildende Mittelstück

besteht aus plasmatischer Grundsüubstanz mit zahlreich eingestreuten

Mitochondrien. Der Schwanzfaden istsehr lang (sodaß das Spermatozoon

eine Länge von 160 u erreichen kann, bei einer mittleren Breite von

1,4 u), bandförmig und läuft nur am Anfang und Ende in eine Spitze

aus. Verf. schildert dann die Entstehung der Samenfäden, stellt Ver-

gleiche an und stellt fest, daß es sich bei @. pulex um typische Sper-

matozoen handelt.

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— DBehandelt die höhlenbewohnenden Sphaeromidae und bringt ein

auf streng wissenschaftlichen Prinzipien aufgebautes System der

Monolistrini. Er charakterisiert die Gruppe schärfer, versucht die

taxonomischen Merkmale nach Alter und phylogenetischem Rang zu

ordnen (palaeogenetische Charaktere: von der oberirdischen Stamm-

gruppe ererbt; neogenetische Charaktere: in der weiteren Entwicklung

ererbt). Bei der Wertung dieser Charaktere waren besonders die mor-

phologischen Verhältnisse der übrigen Sphaeromiden, die Entwicklungs-

tendenzen innerhalb der Gruppe und die Resultate der Beobachtungen

über den Einfluß des Höhlenlebens ausschlaggebend. Systematik

der Gruppe (ef. den systemat. Teil). Ausführliche, durch zahlreiche

Abbildungen erläuterte sorgfältige Beschreibungen der einzelnen

Formen. Vergleichende morphologische Betrachtungen, die zum Teil

auch für andere Isopodengattungen gelten. Je vollkommener das

Kugelungsvermögen, desto weiter ist im allgemeinen die Reduktion

der Uropoden fortgeschritten, wofern sie nicht in den Dienst anderer

Verrichtungen getreten sind, wie z. B. bei den schwimmenden Sphaero-

miden als Schreekmittel bei Campecopea oder als Körperstützen bei

anderen Formen. Bei den Höhlenbewohnern haben sie keinen Zweck

und sind größtenteils atrophiert, wodurch ihre Fähigkeit sich zusammen-

zurollen sehr gewachsen ist. Verf. zeigt, daß bei den eiertragenden 2

von Typhlosphaeroma eine Verbreiterung der proximalen Region

der Maxillipoden stattfindet und schließt daraus, daß zwischen der-

selben und der bei anderen Sphaeromidae damit verbunden auftretenden

Atrophie distaler Partien der gleichen Mundteile bei Brutweibchen

sowie gewissen Eigentümlichkeiten des Telsons andererseits kein

Korrelationsverhältnis besteht. Alle drei Modifikationen sind neo-

genetische und bei den verschiedenen Gruppen von einander unab-

hängig auftretende Charaktere. R. geht dann auf den Dimorphismus

der Monolistrini ein. Die $& sind etwas größer als die 29. Er führt dies

auf Wirkungen der Brutpflege zurück. Die im primitiven Marsupium

befindlichen Eier üben einen Druck auf die inneren Organe aus. Die

Tiere können infolgedessen keine Nahrung aufnehmen, wie der leere

Darmkanal bruttragender Tiere beweist. Dazu kommtnoch die Atrophie

der Mundteile und die Beobachtung, daß bei vielen Arten die Weibchen

schon nach der ersten, bei anderen nach der zweiten und dritten Brut

infolge Erschöpfung zu Grunde gehen. Die $& leben länger und werden

größer. Bezüglich der Abstammung ist R. der Ansicht, daß die Gruppe

Publikationen und Referate, 97

nicht direkt von marinen Sphaeromidae abzuleiten ist, sondern sich

erst aus oberirdischen Formen und zwar diphyletisch entwickelte.

Beide Hauptzweige zeigen eine parallele Entwicklung nach dem Gesetz

der Orthogenese, wie Verf. an der jetzigen Verbreitung der Gatt.

Caecosphaeroma u. Monolistra nachzuweisen sucht. Die arktische

Gatt. Campecopea ist die nächste Verwandte der Monolistrinv. Die

neue Gatt. Anoplocopea Rai. aus dem Mittelmeer steht zwischen

Campecopea u. den Monolistrini. Beide Gattungen können aber nicht

als Stammform der letzteren angesehen werden. Zum Schluß fordert

der Verf. ausführliche Beschreibungen nebst Abbildungen und keine

bloße Bestimmungstabellen mit Differentialdiagnosen. Die jetzige

„Typomanie‘“ fördere nur das oberflächliche Arbeiten und ist ver-

werflich.

Racovitza, E. G. et Sevastos, R. Proidotea Haugi n.g. n.sp.

Isopode oligocene de Roumanie, et les Mesidoteini nouvelle sous-famille

des Idotheidae. op. eit. ser.5 T.6 p. 175—200, 2 pls. (IX u. X).

Ramond, 6. Paul Combes, fils, et Maurice Morin. Etudes geo-

logiques dans Paris et sa banlieue. V. Note sur le gite fossilifere du

Guespel. Compt. rend. Assoc. frang. Av. Sci. Sess. 37 1909 p. 476

—493, 5 figg. — Auch Brachyura.

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section de Saint Denis & la For&t d’Orry. Bull. Soc. geol. France (4)

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Rathbun, Mary 3. (1). The stalk-eyed Crustacea of Peru and the

adjacent coast. Proc. U. States Nat. Mus. Washington, Smithsonian

Inst. vol. 38 No. 1766 p. 531—620, 21 pls. (XXXVI—LVI). — Vor-

liegende Arbeit behandelt die Crustaceen-Ausbeute von Dr. Robert

E. Coker während seiner Untersuchungen der Fischereiverhältnisse

von Peru (1906—1908). Sie umfaßt 80 Spp. der größten Mehrzahl

Decapoda, diverse Stomatopoda und 2 Amphipoda. Die Isopoda wurden

bereits im vol. 38 No. 1729 1910 p. 79—85, die Cirripedia im vol. 37

No. 1700 p. 63—74 behandelt; von den Amphipoda wurde die eine

(von der Seeküste) von Alfr. OÖ. Walker, die andere vom Titicaca-

see durch Miss Ada L. Weckel bestimmt. Über den ökonomischen

Nutzen in Kürze folgendes: Die Westküste von Südamerika weist

eine ungewöhnliche Zahl von großen Krabben auf, die einen wichtigen

Nahrungsartikel bilden. Auch verschiedene kleinere Arten dienen,

sobald sie in größeren Mengen auftreten, zur Nahrung, so die „hermit

crabs“ und die „hippas“ oder „sandbugs“. Zwei Arten derselben

bewohnen Peru. Die Eingeborenen unterscheiden sie durch ver-

schiedene Bezeichnung, obschon die Careinologen kaum Unterschiede

zu erkennen vermögen. Die große und schöne Landkrabbe Ucides

(in den Sammlungen selten) soll in den Mangrovesümpfen zahlreich

vorkommen und sehr schmackhaft sein. Bithynis ‚der river shrimp“

ist eine der häufigsten Formen, die auf den Markt gebracht wird, und

ist zuweilen über einen Fuß lang. Grapsus, „the rock crab“, in allen

tropischen Gegenden zu Hause, sowie die Hippa dienen ebenfalls zur

Archiv für Naturgeschichte 7

1911. v. 2.

98 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Speise. — Die erste Liste über Crustacea von Peru veröffentlichte

Kinahan im Journ. Roy. Soc. Dublin vol.1 1857 mit Kinahans

Ausbeute von Callao Roads und Chincha Islands, 24 Spp. Die darunter

aufgeführten Cancer longipes, Panopeus crenatus u. Cyclograpsus

cinereus sind in Cokers Sammlung nicht vertreten. Die Verfasserin

erwähnt dann die bisher in diesem Gebiete geführten Expeditionen

und die Bearbeiter des betreffenden Crustaceen-Materials und weist

darauf hin, daß für das Studium der Fauna Gay’s Historia de Chile

unentbehrlich ist. — Coker sammelte an verschiedenen Punkten

der Küste zwischen dem 3 0 30 ‘u. 17 ° südl. Breite und zwar an allen

möglichen Orten, selbst auf den Märkten und mit allen paßrechten

Hilfsmitteln. Die Zahl der neuen Spp. und Subspp. der stieläugigen

Krebse beträgt 7, von den übrigen sind 27 für die Fauna von Peru

neu, die Gesamtzahl der aus dem Gebiete bekannten Spp. beträgt

122. — Bemerkenswert sind: 1. eine Dromidia, die erste typische Art

von der Westküste von S.-Am., 2. Panopeus bermudensis, bisher

nur vom Atlantischen Ozean bek., 3. Eupleurodon trifurcatus und

Hepatella amica, seit der ersten Beschreibung noch nicht wieder ent-

deckt. Überraschend ist die Fülle von Xanthidae und Inachidae

und die geringe Zahl von Parthenopidae und anderen Orangon-Arten.

Eine große Anzahl von Arten bedarf noch weiterer Aufklärung, bevor

die Fauna der südamrik. Westküste als genügend bekannt gelten kann.

Nach einer Notiz über die ‚„Peruvianische Provinz“ und dem Hinweise,

daß einige Spp. des südl. Chile wie Lithodes antarctica und vielleicht

auch Paromola rathbuni und Palinustus frontalis eigentlich der Magel-

lanischen Provinz zuzurechnen seien, folgt die Liste der Spp., die

Coker erbeutete (p. 533—566): I/nachoides (1), Epialtus (1), Acan-

thony& (1), Eupleurodon (1), Microphrys (2), Teleophrys (1), Call-

nectes (2), Arenaeus (1), Portunus (1), Cancer (2), Platy-

xanthus (2), Xantho (1), Cycloxanthops (1), Panopeus (2), Eury-

panopeus (1), Eurytium (1), Pilumnoides (1), Eriphia (1), Speo-

carcınus (1), Ostracotheres (1), Discodactylus (1), Pinnixa (1), Pino-

therelia (1), Grapsus (1), Leptograpsus (1), Goniopsis (1), Pachy-

grapsus (1), Aratus (1), Cardisoma (1), Ucides (1), Ocypode (1), Uca

(3), Hepatus (1), Hepatella (1), Leucosilia (1), Dromidia (1 n.sp.),

Hwypoconcha (1 n.sp.). Emerita (2), Paguristes (2), Clibanarius (1),

Dardanus (4 + In.sp.), Pagurus (1), Callianassa (1), Petrolisthes (2),

Pachycheles (1), Munida (1 n.sp.), Rhynchocynetes (1), Synalpheus

(1-+ 1 n.subsp.), Peneus (2), Chloridella (2), Pseudosquilla (1)

und ZLysiosguilla (1 n.sp.). Bythynis (1) (p. 560—561). Sämtliche

Spp. sind abgebildet, zum größten Teil auf den Tafeln, die übrigen

im Text. — Liste der hauptsächlichsten Werke, die über die Decapoden-

fauna der peruvianischen Provinz handeln (p. 566—569). Zusammen-

stellung der ungefähren Breitengrade der in der vorliegenden Publikation

erwähnten Lokalitäten (p. 569). — Liste der Arten, die von Panama

bis zur Insel Chiloe vorkommen (p. 570—608). Systematisch zusammen-

gestellt nebst Angabe der Literatur und Fundorte. — Arten (16),

deren Fundort inkorrekt oder zweifelhaft ist p. 609. — Arten, die

Publikationen und Referate, 99

unbestimmbar sind (p. 609). — Zusammenstellung der Synonyme

(p. 609—618) alphabetisch. Tafelerkl. (p. 619—620).

— (2). Decapod Crustaceans collected in Dutch East India and

elsewhere by Mr. Thomas Barbour in 1906—1907. Bull. Mus.

Comp. Zool. Harvard Coll. Cambridge Mass. vol. 52 1910 p. 305—317

ls. I-VI.

. — (3). The Danish Expedition to Siam 1899—1900. V. Brachyura.

Vid. Selsk. Skr. 7 Raekke 5, 4 1910 p. 303—8367, 2 pls., 1 map.

Rauschenplat, Ernst. Über die Nahrung von Tieren aus der Kieler

Bucht. Wiss. Meeresunters. Abt. Kiel N.F. Bd.5 1901 p. 82—151.

— Betrifft auch Amphipoda, Schizopoda, Macrura, Anomura und

Brachyura.

Ravn, 3. P. 3. The Tertiary Fauna at Kap Dalton in East Greenland.

Medd. Grönl. 1904 Heft 29p. 93—140, 3 pls. — Behandelt auch Macrura,

Anomura, und Brachyura. 2 neue Spp.: Hoploparia (1) und Coeloma (1).

Reed, F. R. Cowper. Sedgwick Museum Notes. New Fossils from

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Richard, 3. Les campagnes scientifiques des. a. s. le prince Albert I

de Monaco. Bull. Inst. Öc&anogr. Monaco No. 162 Fevrier 1910 159 pp.

116 Fig. — Ist eine Huldigungsschrift an den Fürsten anläßlich der

Vollendung des 25. Jahres seiner Tätigkeit als Oceanograph. Schilderung

der Schiffe, Apparate, Fahrten, Reisewege und Forschungsergebnisse,

Liste der Veröffentlichungen des Fürsten und seiner wissenschaftlichen

Mitarbeiter, soweit sie sich auf die Forschungsfahrten der Hirondelle

und Princess Alice beziehen (29pp., einschließlich der auch in populären

Zeitschriften erschienen Artikel). Zum Schlusse wird in einem Anhange

eine kurze Beschreibung des oceanographischen Museums in Monaco

(24 pp.). Eine ausführliche Beschreibung dieser Anstalt, sowie des

im Bau begriffenen Schwesterinstituts in Paris soll folgen.

Richardson, Harriet (1). Description of a new terrestrial Isopod

from Guatemala. Proc. U. States Nat. Mus. Washington, Smithsonian

Instit. vol. 37 No. 1718 1910 p. 495—497.

— (2). Description of a new isopod of the genus Notasellus from

the east coast of Patagonia. t. c. No. 1720 1910 p. 649—650. — Zwei

Exemplare einer neuen Sp. wurden vom ‚Albatross“ im Jahre 1888

an der Ostküste von Patagonien erbeutet. Die erste Sp. der Gatt.,

N. sarsii von Süd-Georgien, wurde 1886 von Pfeffer beschrieben,

100 Crustacea (Malacostraca) für 1910,

1902 charakterisierte Dr. T. V. Hodgson eine zweite Sp.: N. australis

vom Cap Adare. 1905 zog Stebbing Stenetrium inerme Haswell zu

dieser Gatt. — Beschreibung von N. trilobatus n.sp. Fig. la Q im

Umriß, b, c Details. |

— (3). Report on isopods from Peru, collected by Dr. R.E.Coker.

op. cit. vol. 38 No. 1724 1910 p. 79—85. — Unter den von R. E. Coker

gesammelten Isopoden befinden sich zwei neue Spp.; eine dritte,

Meinertia gaudichaudii (Milne Edwards) war bisher nur von der peru-

vianischen Küste durch Schioedte u. Meinert bekannt gegeben.

In einer früheren Schrift hat Miers 1877 eine Anzlocra-Sp. von Peru

beschrieben und eine Cymothoa oestrum als wahrscheinlich daselbst

vorkommend erklärt. Dies sind die einzigen bisher bekannten marinen

Isopoda von Peru. Verf. beschreibt dann und bildet ab (nebst Details):

Meinertia Gaudichaudiüi (M.E.), Sphaeroma peruvianum n.sp., Orbi-

morphus n. g. mit constrictus n. sp., Anilocra laevis Miers (nur Literatur

und Fundort) und Oymothoa oestrum.

Baer — (4). Description of a new parasitic isopod from the Hawaiian

islands. t. c. No. 1770 1910 p. 645—647.

— (5). Terrestrial isopods collected in Costa Rica by J. F. Tristan,

with descriptions of a new genus and species. op. cit. vol. 39 No. 1775

p. 93—9.

— (6). Descriptions of a new species of Anilocra from the Atlantic

coast of North America. t.c. No. 1779 p. 137—138.

— (7). Marine Isopods collected in the Philippines by the U. S.

Fisheries Steamer Albatross m 1907—8. Washington D. C. Dept.

Comm. Lab. Bur. Fish Doc. 736 44 pp.

— (8). Jaera longicornis Lucas referred to the genus Stenetrium.

Proc. Biol. Soc. Washington D.C. vol.23 p. 109—110.

Ritchie, James (1). The occurrence of a rare crab, Paromola

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” — (2). On the distribution of the Thorny Lobster (Palinurus

vulgaris) in the British waters. Proc. Roy. Physic. Soc. Edinburgh

vol. 18. p. 68—71.

Rogenhofer, Alois. Zur Kenntnis des Baues der Kieterdrüse etc.

Arbeit. Zool. Inst. Wien. Bd.17 p.139—156, 1 Taf. Titel siehe.

p. 260 des Berichts über Orust. (Malacostr.) für 1909. — Das Material

wurde in der Umgebung von Wien gesammelt und bestand aus Por-

cellio scaber, Platyarthrus Hoffmannseggi u. Asellus aquaticus. Von

marinen Formen [von Triest, die Bopyr. von Neapel] wurden unter-

sucht: Bopyrus squillarum, Gyge branchialis, Anmilocra mediterranea,

Ligia Brandti, Sphaeroma u. Astacilla. Die Konservierung ist schwierig.

Warmes Sublimat und Pikrinessigsäure lieferten gute Resultate. Junge

und frisch gehäutete Tiere lassen sich am besten schneiden. Verf.

kommt nun zur Anatomie und Histologie der Kieferdrüse der Iso-

poden und zwar: a) Bopyridae (p. 140—142), b) Oniscoidea (p. 142

—144), c) Asellidae (p. 144) u. d) Flabellifera (p. 145). Er stellt dann

(p. 145—153) Betrachtungen und Untersuchungen über das relative

Publikationen und Referate. 101

Größenverhältnis der Kiefer- und Antennendrüsen bei Meeres- und

Süßwasserkrustazeen an. Fassen wir das Wichtigste aus der Arbeit

zusammen, so ergibtssich: „1. Die Bopyridae besitzen keine Antennen-

drüse, sondern eine Kieferndrüse, dieselbe ist nicht umfangreich und

zeigt die charakteristischen Bestandteile: Endsäckchen, Harn-

kanälchen und Ausführungsgang. — 2. Bei den Oniscinen ist die Kiefer-

drüse nicht rückgebildet, wie N&mec angibt, sondern typisch aus-

gebildet. — 3. Die Angaben von Bruntz über die Kieferdrüse der

Isopoden werden größtenteils und jene von Vejdovsky über die

Trichterzellen vollständig bestätigt. — 4. Der Größenunterschied

der Kiefer- und Antennendrüse zwischen Meeres- und Süßwasser-

‘“ formen liegt hauptsächlich m der Länge des Harnkanälchens; er

trifit auch bei den Isopoden u. bei den Orustacea somit fast ausnahmslos

zu. — 5. Die größere Drüse bei den untersuchten Süßwasserkrustazeen

kann zunächst auf das Vorhandensein größerer Zellen zurückgeführt

werden. — 6. Es läßt sich die Verlängerung des Harnkanälchens

bei den Süßwasserkrebsen mit einiger Wahrscheinlichkeit auf den

Mangel an Salzgehalt im Süßwasser zurückführen.‘ — Literaturver-

zeichnis (p. 154—156): 23 Publik. Tafelerklärung zur Taf. (p. 155

—156): Ventrale Ansicht des Kopfes von @yge branch., Drüsenzellen,

sowie Schnitte durch die Drüsen obengenannter Arten.

Roi, ©. siehe le Roi, ©.

Rose. Sur quelques tropismes. Compt. rend. Acad. Sci. Paris

T. 150 1910 p. 1543—1545.

TRzehak, A[nton]. Der Brünner Clymenienkalk. Zeitschr.

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Sayce, 0. A. On Koonunga cursor, a remarkable new Type of

Malacostracous Crustaceans (communicated, with a Supplementary

Note by W. T. Calman. Trans. Linn. Soc. ser. 2 Zool. vol. 11 1908

p- 1—16 pls. 1,2. — G. M. Thomson beschrieb 1892 einen merk-

würdigen Kruster Anaspides tasmaniae aus den Gebirgen Tasmaniens.

Er rechnete ihn zu den Schizopoda. Nach Calman ist er als rezenter

Vertreter systematisch der fossilen Syncarida aufzufassen. Auch Bathy-

nella natans Vejdovsky gehört wahrscheinlich hierher. Koonunga

cursor aus Süßwasserpfützen bei Melbourne ist mit Anaspides nahe

verwandt. Es ist daher nun möglich, die Charaktere der Anaspidacea

genauer zu präzisieren. Der Ovidukt mündet bei diesen Formen nicht,

wie man annahm, am Sternum des letzten Abdominalsegments, sondern

wie bei allen anderen Malacostraca am Coxopoditen des sechsten

Thorakalfußes. Das Organ am Sternum des letzten Thorakalsegmentes

ist eine Tasche zur Aufnahme des Spermas, eine Spermathek. Das

Thelycum der Penaeidae ist ein ähnliches Gebilde u, der Annulus ven-

102 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

tralis bei Homarus u. Cambarus weist entsprechende Verhältnisse auf.

— Die Anaspidacea stellen eine gute Ordnung dar, die zu keiner

Malakostrakenordnung nähere Verwandschaft zeigt. Im Einzelnen

ist für die neue Gattung, die gleichzeitig einen neuen Typus der Familie

darstellt, noch folgendes beachtenswert: Der Thorax ist durch Ver-

schmelzen der beiden ersten Glieder siebengliedrig geworden. Es fehlt

eine Antennenschuppe, die bei Anaspides vorhanden ist. Koonunga

hat ferner sitzende Augen. Hierzu kommen noch geringere Unter-

schiede an den Mandibeln, Maxillipeden u. Pleopoden.

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& Deep-sea Cephalopod. Ann. nat. Hist. ser. 8 vol.5 p. 5l—54. —

I. Isopoda. 1. Bruchstücke von Trichopleon ramulosum Beddard,

2. Ilyarachna Sars oder Echinozone Sars sp., 3. Nannoniscus Sp. —

II. Amphipoda. 4. gen., sp. indet. 5. Andaniotes corpulentus (G. M.

Thomson). — III. Copepoda: Oithona sp., Euterpe acutifrons u. Ponto-

stratiotes abyssicola G.S. Brady. Letztere wird beschrieben und

Details abgebildet.

— (2). Notes on the distribution of Pelagie Crustacea in Lower

and Upper Loch Fyne. Rep. Fish. Board Glasgow vol. 27 pt. 3 1910

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Publikationen und Referate. 103

— (2). Prelimmary account of the habits and structure of the

Anaspididae, with remarks on some other fresh-water Orustacea from

Tasmania. Proc. Roy. Soc. London ser. B vol. 80 1908 p. 465—473,

pl. III. — Thomson, G. M. beschrieb 1893 den interessanten Schizo-

poden aus einem kleinen Tümpel in der Nähe der Spitze des Mount

Wellington, den er Anaspides tasmaniae nannte u. besonders den

primitiven Charakter des Tieres hervorhob. Calman revidierte 1897

die Beschreibung von Thomson u. zog einen Vergleich zwischen dieser

Form und emigen im Karbon von Europa und Nordamerika gefundenen

Crustaceen (wie G@ampsonyz, Palaeocaris usw.). In einer weiteren

Schrift über die Malacostraca als ganzes schlägt er vor, die Ordnung

Schizopoda überhaupt fallen zu lassen und die Komponenten der-

selben auf die anderen Ordnungen zu verteilen. Die Mysidacea ver-

einigte er mit den Amphipoda, Isopoda u. Cumacea zur Division der

Peracarida, die Euphausiacea mit den Decapoda zur Div. Eucarida

u. Anaspides erhob er zu einer Gruppe für sich, Syncarida. Die Haupt-

merkmale der Peracarida sind die unvollständige Beschaffenheit des

Carapax, das Vorhandensein einer Bruttasche beim Weibchen (von

den Oostegiten der Thoraxgliedmaßen gebildet), das gestreckte Herz,

wenige, einfache Lebercoecen, fadenförmige Spermatozoen u. die

direkte Entwicklung ohne verwickelte Metamorphose. Die Eucarida

zeigen gerade das Gegenteil. Die Anasptides ließen sich in keine dieser

Gruppen unterbringen, da sie einerseits keinen Carapax, andererseits

keine Spur von Bruttasche aufwiesen. Nun hat Sayce jüngst eine

Form aus der Umgegend von Melbourne beschrieben, welche im all-

gemeinen Bau der Anaspides sehr nahesteht, aber sitzende Augen

besitzt, ein Merkmal, das es immer schwieriger macht, die Schizopoda

als natürliche Gruppe aufrecht zu erhalten. Die Untersuchungen

des Verfassers über die Tasmanischen Anaspididae bestätigen sowohl

vom biologischen wie anatomischen Gesichtspunkte aus Calmans

Gruppierung anzunehmen und die Anaspidacea als besondere Division

aufzufassen. Abgesehen von etwaigen fossilen Formen gehören hierher

Anaspides tasmaniae (Thomson), Paranaspides lacustris Smith von

Tasmanien (beide bilden die Familie Anaspididae) u. Koonunga cursor

Sayce (Fam. Koonungidae) aus Süd Viktoria. — Beschreibung, Vor-

kommen, Anatomie, Brutgewohnheiten von Anaspides tasmaniae

(Thomson) (p. 466—469) (Abb. Taf. 13 fig.1). Bezügl. der system.

Stellung lehrt ein Vergleich folgendes:

Peracariden-(Mysiden-)Typus: Fehlen des Carapax, Bau

des Herzens, fadenförm. Spermatozoa.

Eucariden-Typus (Malacostraca): Gehörorgan an der ersten

Antenne. Umbildung der Endopoditen der ersten beiden Pleopoden

zu Kopulationsorganen: Vorhandensein von Spermatheken. Fehlen

der lacinia mobilis an d. Mandibel.

Besondere Charaktere: 8 freie Segmente und 8 entsprechende

Ganglien. Eiablage. Maxillardrüse. Bau des Darmkanals, Platten-

ähnlicher Bau der doppelten Kiemenreihe.

104 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Ein Vergleich lehrt, daß es unmöglich ist, die Anaspides den Pera-

carida oder Eucarida einzureihen. — Beschreib. von Paranaspides

lacustris (p. 470—472), hierzu Detailfig. 3—6, Tier im toto Profil

Taf. 13 Fig. 12. Die Art ist äußerlich ganz verschieden von Anaspides

und gleicht mehr einer Mysis. Beachtenswert ist der Bau der Mandibel.

Sie trägt einen 4-gliedrigen, deutlich 2-ästigen Palpus (ein Merkmal,

das sich sonst nur bei den Copepoda findet), während das erste Thorax-

bein an der Innenseite des vorletzten Gliedes einen mit Borsten ver-

sehenen Lobus trägt, der beim Kauen mitwirkt. Das Tier stammt aus

dem Great Lake auf dem Centralplateau von Tasmanien, 3700 Fuß

über dem Meeresspiegel. Gleichzeitig wurden daselbst noch zahlreiche

Entwickelungsstadien am Grunde lebender Crustacea, sowie einige

Amphipoda (Neoniphargus u. Chxltonia) u. 3 oder 4 anscheinend neue

Arten der äußerst merkwürdigen Phreatoicus [Isop.] erbeutet. Die

reiche Entwicklung der Crustaceenfauna der litoralen Zone des Great

Lake gibt uns eine Erklärung für die außergewöhnliche Größe der im-

portierten englischen braunen Forelle. Die Anaspidacea und Phreatoicida

von Südaustralien und Tasmanien stehen zu den anderen Crustacea

im gleichen Verhältnis wie die Monotremata zu den normalen Säuge-

tieren. Merkwürdig ist ferner die Tatsache, daß sie durchaus auf die

gemäßigten Teile und zwar auf die kältesten Gebiete (in beträchtlicher

Höhe) beschränkt sind. Betrachtungen über den antarktischen Kon-

tinent. In einer Zusatznote äußert sich der Verf. noch über einige

andere COrustacea aus dem Süßwasser des tasmanischen Hochlandes,

die nahe verwandte Formen in Neu-Seeland u. Südamerika haben,

so Chiltonia australis [Amph.], Neoniphargus, Gammarus etc.

Sollaud. Sur les affınites des genres Urocaris (Stimpson) et Palae-

monella (Dana) et considerations sur l’&volution des Crevettes de la

famille des Pontoniides. Compt. rend. Acad. Sci. Paris T. 151. 1910

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Stamm, R. H. Über die Muskelinsertionen an das Chitin bei den

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Sehne besteht aus umgebildeten Hypodermiszellen.

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La Revanche de la Banquise. Paris Librairie Plon, Plon-Nourrit et Cie.,

Imprim.-Edit. 1909. — Ein Sommer auf die Karasee verschlagen. —

Sammelausbeute: Appendice IV. Notes Biologiques (p. 256—271).

Es wurden erbeutet: Decapoda: DBrachyura: Hyas araneus

Linne, Caridea: Sabinea septemcarinata Sabine, Hrippolyte spinus

Sowerby, H. gaimardi Milne-Edw., H. turgida Kröyer, H. polaris

(Sabine), H. borealis Kröyer. — Sympoda:. Diastylıs rathkei

(Kröyer), D. scorpioides Lepechin; Leucon nasicus (Kröyer), L. nası-

coides Lilljeborg; L. fulvus G.O.Sars, L. pallidus G.O. Sars, Eu-

dorella: emarginata Kröyer, Petalosarsia dechvis G.O. Sars; Campy-

laspis rubicunda Lilljeborg, Leptostylis gracilis Stappers, L. borealis

Stappers. — Amphipoda: Euthemisto libellula (Mand.), Para-

themisto oblivia Kröyer, Hyperoche kröyeri Bovallius, Hyperia galba

Montagu, Acanthozone cuspidata (Lepechin), Rhachotropis aculeata

Publikationen und Referate. 105

(Lepechin), Stegocephalus inflatus Kröyer, Eusirus cuspidatus Kröyer,

Paraediceros Iynceus M. Sars, Paratylus smithii (Goes), Byblıs sp.,

Hoplonyx sp., Pardalisca cuspidata Kröyer, Anonyx nugax Phipps,

Gammarus locusta Linne, Alibrotus littoralis Kröyer, Halimedon

megalops G.O. Sars, Monoculodes latimanus (Goes), Amathillopsis

spinifera Heller, Aegina spinosissima Stimpson. — Schizopoda:

Mysis oculata Fabr., Mysideis grandis Goes, Pseudomma truncatum

Smith, Erythrops sp., Parerythrops sp. — Isopoda: Phryxus

abdominalis Kr. auf Hippolyte gaimardı M.-Edw. — p. 264—265.

Weitere Bemerkungen dazu.

Stebbing, Thomas R. R. (1). Report on the Marine Biology of the

Sudanese Red Sea. XIV. On the Crustacea, Isopoda and Tanaidacea.

Journ. Linn. Soc. Zool. vol. 31 p. 215—230, 3 pls. (XXI—XXIH).

— (2). Isopoda from the Indian Ocean and British East Africa.

Trans. Linn. Soc. London ser.2 Zoology vol.14 Pt.1 p. 83—118,

7 pls. (V—X]).

— (3). General Catalogue of South African Crustacea. Part V

of $. A. Orustacea for the Marine Investigations im South Africa. Ann.

South African Mus. Cape Town. vol. VI pt. IV p. 281—593, pls. XV

—XXI.

— (4). Scientific Results of the Trawling Expedition of H.M.C.S.

„Ihetis“. Crustacea pt. V. Amphipoda. [With Appendix, Catalogue

of Australian and Tasmanıan Amphipoda.] Mem. Austral. Mus. Sydney

N.S.W. vol. IV pt. 12 1910 p. 567—658 4 pls. (XLVII*—LX*).

Stephenson, K. Storkrebs. I. Skjoldkrebs. [Danmarks Fauna

Handboger. 9.] Kobenhavn 1910 (Gad) 193 pp.

Stiasny, Gustav. Beobachtungen über die marine Fauna des

Triester Golfes im Jahre 1908. (Mitteil. zool. Stat. Triest No. 12.)

Zool. Anz. Bd. 34 p. 289—294, 1 Taf. — Behandelt auch Macrura,

Anomura.

Stingelin, Th. Crustaceen aus kleineren Seen der Unterwaldener-

und Berner Alpen. Rev. Suisse Zool. Geneve T. 18 p. 105—172, 2 Taf.

Strauss, E. Das Gammaridenauge. Wiss. Ergebn. der deutschen

Tiefsee-Expedition auf dem Dampfer „Valdivia“ 1898 bis 1899, heraus-

gegeben von C. Chun. Bd. 20, 1. Lfg., Jena 1909. 4°. 84 pp., 6 Taf.

47 Per Ref. von V. Franz im Zoolog. Zentralbl. Bd. 17 1910

p: 17—18.

Tattersall, W. M. The Schizopoda collected by the Maia and Puritan

in the Mediterranean. Mitteil. Zool. Station Neapel Bd. 19 1908 p. 117

—143, Taf. 7. — Lo Bianco hatte schon Bestimmungen des Materials

vorgenommen; diese werden, wo es nötig, berichtigt. — Es werden

aufgezählt: Euphausiacea (11 Spp.) u. Mysidacea (12 Spp.). Neu

sind: Calyptomma n.g: (mit der neuen Familie Calyptomminae) mit

puritanin.sp., Parerythrops lobiancoi, Pseudomma kruppi u. Euchaeto-

meropsis n.g. für Euchaetomera merolepis (Ilig). Als neu für das

Mittelmeer sind zu beachten: Euphausia brevis Hansen, Euph. gibba

G.O. Sars, Meganyctiphanes norvegica M. Sars, Nyctiphanes couchi

106 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Bell, Thysanopoda aequalis Hansen, Eucopia unguiculata Will. Suhm.,

Euchaetomera tenus G.O.Sars, Euchaetomeropsis merolepis Illig.,

Paramblyops rostrata H.u. T., Pseudomma calloptura H.u. T., Mysi-

detes farrani H.u.T., Siriella norvegica G.O.Sars, Boreomysis

arctica Kr. u. Mysidella typica G.O. Sars.

Theel, Hjalmar.. Om Plankton och ämnesomsättningen 1 hafvet.

K. Svensk. Akad. Ärsb. 1909 p. 221—249, 39 figg. — Betrifft auch

Ampbhipoda.

Thiebaud, M. siehe Fuhrmann, ©.

TToniolo, A. R. L’eocene dei dintorni di Rozzo in Istria. Rend.

Accad. Lincei (5) vol. 17 1908 Sem. 1 p. 815—824. — Behandelt auch

Brachyura.

TTrauth, Friedrich. Die Grestener Schichten der österreichischen

Voralpen und ihre Fauna. Beitr. Palaeontol. Geol. Österr.-Ungarn

Bd. 22 1909 p. 1—142, 4 Taf., 3Fig. — Auch Macrura, Anomura.

Trois, Enrico. Sopra alcuni casi colorazione anomale osservata

sopra Crostacei adriatici (Maja squinado, Carcinus maenas, Orangon

vulgaris). Atti Istit. ven. Trentino 69. ser. 8 vol. 12 1909—1910 p. 1327

—1328.

Vallentin, Rupert (1). The Fauna of St. Ives Bay, Cornwall. Journ.

Roy. Inst. Cornwall vol. 17 1909 p. 8$—111, 1 fig. — Zählt auch Amphr-

poda, Isopoda, Macrura, Anomura u. Brachyura auf.

— (2). Additional Notes on the Fauna of the Scilly Islands. t.c.

p. 351—358.

Van Douwe, €., Neresheimer, E., Vävra, V. u. Keilhack, L. Cope-

poda, Ostracoda, Malacostraca. Hft. 11 von Brauer, die Süßwasser-

fauna Deutschlands. Jena G. Fischer 1909 136 pp. 505 Fig. im Text.

— Die Malacostraca bearbeitete Keilhack. Von den Thoracostraca

kommen für die Fauna in betracht: Mwysis relicta u. 5 Arten von

Flußkrebsen. Die Arthrostraca sind vertreten durch 2 Isopoda u.

9 Amphipoda, letztere verteilen sich auf 6 Gattungen.

Verness, Elemer. A Brachyuräk es Paguridäk stereotropismusäröl.

[Über Stereotropismus der Brachyuren und Paguriden.] Mathem.

Termt. Erk. Budapest vol.28 1910 p. 188—207 Tat. II—VI.

TVerrill, Addison E. The Bermuda Islands. Part IV. — Geology

and Paleontology, and Part V. — An Account of the Coral Reefs.

Trans. Connecticut Acad. Sci. vol. 12 1907 p. 45—348, 181 figg. —

Auch Brachyura.

Vesthassel, A. Kunstig hummeravl. Et blik paa sagens historiske

udvikling ognuvaerende stilling. [Künstliche Hummerzucht. Historische

Übersicht und jetziger Stand.] Farsund (Verfasser) 1910 43 pp. 23 cm.

Preis: 0,80 Kr.

Verhoeff, Karl W. Über Isopoden. (6. Aufsatz: Armadillidium

und Porcellio an der Riviera). Jahreshefte Ver. Naturk. Stuttgart.

Bd. 66 1910. p. 115—143. — Verf. bringt darin die Resultate seiner

Forschungsreisen nach der Riviera, die er von Viareggio an der Levante

ostwärts, bis zum Golf von St. Tropez an der französischen Riviera

Publikationen und Reterate. 107

westwärts in fast allen geographischen und geologischen Abschnitten

durchstreifte. Nicht nur die Küstengebiete, sondern auch die benach-

barten Montangebiete in Höhen von 300—700 m wurden erforscht.

Im folgenden behandelt der Verf. die Vertreter der Gatt. Armadillidium

u. Porcellio und zwar gibt er sub a) je eine analytische Übersicht über

die 14 resp. 12 Spp., sub b) einen geographisch-biologischen Über-

blick; desgl. über die vertikale und horizontale Verbreitung (bei

Porcellio einschließlich Armadillo u. Syspastus). Cf. den system. Teil.

Walker, Alfred ©. (1). Crustacea collected by the late Mr.

R. L. Ascroft and Mr. Harvey in the North of the Bay of Biscay.

Ann. nat. Hist. ser. 8 vol.5 p. 158—161. — Die Ausbeute wurde im

Juni 1895 auf emer Dampferfahrt im nördlichen Teile der Bucht von

Biscaya gemacht, und zwar auf der Höhe von Isle de Yeu u. Belle Isle.

Tiefen sind nicht angegeben, doch dürften sie 100 Faden kaum über-

schreiten. Einige Spp., wie Macropodia longirostris, Bodotria scorpioides,

Pseudocoma longirostris, Orchomenella nana, Perioculodes longimanus

u. Apherusa bispinosa deuten auf ganz seichtes Wasser, wogegen

Solenocera siphonocerus an den sonstigen Fundorten nördlich des

Mittelmeeres (nämlich in der Höhe von West-Ireland [Roy. lrish

Acad. Exped. 1886 u. 1888]) nur aus Tiefen von 325 resp. 345 Faden

bekannt ist. Andere interessante Formen sind: Chlorotocus gracilipes

(zuvor nur einmal gefangen von dem ‚„Travailleur‘, auf der Höhe der

Nordküste von Marokko, 332—370 Faden), Procampylaspis armata

(bisher 1 Stück vom „Caudan“ im Golf von Gascogne, Tiefe 950 m,

erbeutet), Leptostylis walkerin.sp., Podoprion bolivarı (von Chevreux

in der Vigo-Bai 1889 und seitdem nicht wieder gefangen) und das bis-

her unbeschriebene $ von Monoculodes gibbosus. Die sich daran-

schließende Liste der Spp. zählt auf Brachyura (7), Anomura (3),

Macrura (5), Schizopoda (3), Cumacea (10), Isopoda (2), Amphi-

poda (24). — Literatur und Bemerkungen zu Diastylis bradyi Norman

und Beschr. von Monoculodes gibbosus &.

— (2%). Note on the occurrence of Hippolyte gracilis (Heller) in

the British Area. t.c. p. 216.

— (3). Notes on Amphipoda. Ann. nat. Hist. ser. 8 vol.5 p.31

— 33. — Stenothoe validus Dana, Hemijassa ocius (Sp. Bate), Podo-

cerus (Jassa?) dentex Czermiavski, Leptocheirus.

— (4). Marine Amphipods from Peru. Proc. U. States Nat. Mus.

Smithsonian Inst. Washington vol.38 No. 1767 1910 p. 621-622.

— (5). Amphipoda Hyperüdea of the „Sealark‘‘ Expedition

to the Indian Ocean. Reports of the Percy Sladen Trust Expedition ete.

vol.2 p. 49—55. — Bringt eine Liste der Hyperiidae, zum größten

Teile Plankton - Amphipoda u. zwar 28 Gatt. in 35 Spp. Interessant

ist das Vorkommen von Seina borealis G.O. Sars, die bisher nur an

den Lofoten, Norwegen (in einer Tiefe von 100-300 Faden) bekannt

war. Wie leicht sich aber diese Tiere an große Temperaturschwankungen

anpassen können, zeigt die Tatsache, daß von den 8erbeuteten Stücken

4 in einer Tiefe von 25 Faden bei einer Oberflächentemperatur von

82 ° gefunden wurden, während die übrigen 4 aus einer Tiefe-von 1200

108 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Faden stammen, wo die Temperatur wahrscheinlich 36 ° betrug. Da

jedoch dieser Fang ohne Schließnetz gemacht wurde, ist die Tiefen-

angabe zweifelhaft. Ferner wurde ein großes eiertragendes Q von

Platysceles armatus erbeutet, das angeblich ‚off sounding lead“

aus einer Tiefe von 209 Faden stammt. — Hieran schließt sich die Liste

der Spp. nebst Bemerkungen über Fundort u. Tiefe.

Ward, Henry B. Some Points in the Migration of Pacific Salmon

as shown{ by its Parasites. Stud. zool. Labor. Univ. Nebraska No. 92

9 pp. 1908.

Weckel, Ada L. Fresh water Amphipods from Peru. Proc. U. States

Nat. Mus. Smithsonian Instit. Washington vol. 38 No. 1768 1910 p. 623

—624.

Weymouth, Frank Walter. Synopsis of the True Crabs (Brachyura)

of Monterey Bay, California. Stanford University Cal. Leland Stan-

ford Jr. Univ. Pub. Univ. Ser. No. 4 1910 64 pp., 14 pls.

Wolff, Max. Ein einfacher Versuch zur Pütterschen Theorie

von der Ernährung der Wasserbewohner. Intern. Rev. Hydrobiol.

Stuttgart Bd. 3 4909 p. 715—736.

Woodward, A. S. Alpheus Spring Packard. Proc. Linn. Soc. London

117th. Sess. p. 45—46.

[Zograff, N. ©] Eme cıyuali He3ABHCHMOCTH MYcRarO u

MCHCKATO AIPa BB OILIOIOTBOPeHHOMB aünb. [Encore un cas de

P’independance des noyaux du sperme et de l’oeuf dans un oeuf

feconde.] Biol. Zeitschr. Moskva, T. 1 1910 (1—3 + resume frang.,

p-4) 1 pl.

Übersicht nach dem Stoff.

Literatur: Jahresberichte: Lucas (1) (Malacostraca für 1904), (2) (desgl.

für 1905), Hennings (für 1906). — Bibliographie: Stebbing (3) (südafrikanische

Crustacea), (4) (australischer u. tasmanischer Amphipoda), Racovitza (der

Monolistrini [ Flabellifera]). — Neuere Arbeiten über Land-/sopoda: Carl (Zu-

sammenfassende Übersicht). Liste der Arbeiten Poppes: Borcherding. — Bio-

graphien: Borcherding (Albrecht Poppe), Woodward (Packard).

Kataloge: Alcock (1) (Brachyura: Potamonidae), (2) (Potaminidae, Tel-

phusidae). — lIlustrierter und beschreibender Katalog der organischen Ano-

malien: Quijada. — Generalkatalog südafrikanischer Crustacea: Stebbing (3).

Kritik der Gruppenmerkmale, die auf die Rückenhöckerchen u. die Riefen

am Löffelfortsatz der ersten Pteopoden des 3 begründet sind: Carl (Zool.

Zentralbl. Bd. 17 p. 583). — Mängel in Verhoeffs Bestimmungsschlüsseln: Carl

(Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 586). — Die Ausschaltung des Autornamens Brandt

[seitens Verhoeff] zu Gunsten von Verhoeff ist willkürlich: Carl (Zool. Zentralbl.

Bd. 17 p. 583.) — Nomenklatur: Stebbing (3) (zahlr. südafrik. Crustacea).

Monographien ete. Revisionen: Racovitza (Monolistrini [Isop. sphaerom.]).

— Synopsis der Brachyura der Monturey-Bucht, Kaliforn.: Weymouth.

Paläogenetische und neogenetische Charaktere bei den Monolistrini:

Racovitza.

Übersicht nach dem Stoff. 109

Eine Anweisung zum Sammeln und zur Konservierung von Seetieren, die

bei Kabelreparaturen erbeutet werder, wird vom Mus. Brit. herausgegeben u.

auf Wunsch zugesandt.

Sammlungen. Expeditionen: Führer durch das Britische Museum: Calman

(5). — Indisches Museum: Kemp (4). — Expeditionen: Wissenschaftliche Ex-

peditionen des Fürsten von Monaco: Richard. — Exped. der „Belgica“:

Hansen (2) (Schizopoda u. Cumacea). — Revanche de la Banquise: Stapper

(Kara-See). — Antarktische Expedition der „Discovery“: Hodgson (/sopoda,

Tanaidacea). — „Huxley“ (Coll. in der Bai von Biscaya: Sexton (Gammaridea).

— Yacht Alexander Kowalewsky im Kola Fjord: Derjugin. — Maja u.

Puritan: Tattersall (Schizopoda). — Exped. S. M. S. „Pola“ in das rote

Meer: Balss. — Percy Sladen Trust Expedition „Sealark“: Borradaile (1)

(Decapoda), (2) (desgl.), Stebbing (Tanaidacea, Isop.), Walker (5) (Hyperiidea).

— „Siboga - Exped.‘“: Hansen (1) (Schizopoda), de Man (1) (Caridea). —

„Thetis‘ Schleppnetz-Exped.: Stebbing (4) (Amphipoda). — Expedition des

„Travailleur‘“ u. „Talisman‘“: Calman (6). — Dänische Expedition nach

Siam 1899—1900: Rathbun (3) (Brachyura). — Deutsch centralafrikanische

Expedition 1901—1904: Lenz. — National Antarktische Expedition

Hodgson. — Exped. d. „Princesse Alice‘: Chevreux.

Morphologie. Anatomie. Histologie.

Morphologie ete.: Arcangeli (Armadillidium: [Oniscoid.]), Giesbrecht (Sto-

matopoda), Issel (Paguridi), Namyie (Solenocera distincta), Nakazawa (Neomysis

japonica), Racovitza (Monolistrini, Flabellif.). — Thelycum u. Petasma: An-

drews, E. A. — Morphologische systematische Bemerkungen über Ergasilus

Sieboldti Nordm.: Freidenfelt. — Muskelinsertionen an das Chitin: Stamm. —

Das Auge von Gammarus: Strauss. — Struktur der Chromatophoren: Franz.

— Bau der Kieferdrüse: Rogenhofer (bei /sopoda). — Telsondrüse, eine neue

Drüse bei Astacus fluviatilis: Skorikov. — Tegumentaldrüsen bei Paguristes:

Issel. — Morphologie der Spermatozoen: Koster. — Nervensystem: Stato-

eysten bei C'yathura [Flabellifera]: Stebbing (2). — Sympathisches Nervensystem

des Darmes der /sopoda: Alexandrowiez. — Cireulationssystem u. Atmungsorgane:

Issel (bei der Larve von Paguristes). — Verdauungssystem: Darmdrüsen des

Flusskrebses: Apathy u. Farkas. — Photophoren: Kemp (1) (bei Caridea), (bei

Penaeidea u. Caridea: Kemp (2). — Morphologische Veränderungen der Kern-

struktur in den Drüsenzellen des Darmkanals: Maziarski (/sopoda). — Beiträge

zum Studium des Zellkerns: Maziarski. — Fall von Unabhängigkeit der Sperma-

kerne und des Eies in einem befruchteten Ei: Zograff.

Fehlen der Epimerendrüsen an den Truncussegmenten der den Meeresstrand

bewohnenden Halophilosciini Verh. u. die von den Porcellionen abweichende

Anordnung dieser Drüsen bei den Oniscinae. Verhoeff (Archiv f. Biontol. Bd. 2

p- 337—387. 1908).

Diagnostische Wichtigkeit der Mundgliedmassen, der vorderen Pleopoden

der &, der Bedornung der Pereiopoden u. der sekundären Geschlechtsmerkmale

am 7 Pereiopodenpaar des $: Carl (Feuille jeun. Natur. 4. ser. T. 38/39 annee

1908), Racovitza (Arch. zool. exper. gen. IV. ser. T. IX 1908 p. 239 sq.), Ver-

hoeff (Arch. f. Naturg. Jhg. 74 Bd. 1. Hft. 2 p. 163 sq.).

110 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Sehuppenbürste am Meropodit u. am Carpopodit des 1. u. 2. Beinpaares des &

für die Systematik wertvoll: Verhoeff (Arch. f. Naturg. Jhg. 14 Bd.1 Hft. 2

p- 163 sq.).

Vergleich zwischen dem Verhalten der Reaktionen zweier Fischparasiten

gegenüber dem Licht: Bohm.

Physiologie.

Physiologie von Neomysis japonica: Nakazawa. — Ernährung der Wasser-

bewohner, ein einfacher Versuch zur Püttsrschen Theorie: Wolff. — Physiologie

des Darmes der /sopoda: Alexandrowicz. — Peroxydierende Tätigkeit des Blutes

und der Organe bei den Crustacea: Fleig (1, 2). — Wirkung einiger Extrakte aus

Crustaceen-Drüsen auf den Blutdruck: Gautrelet. — Atmung der Landasseln:

Müller. — Wahrnehmung von Tönen bei Gammarus: Cole. — Sinne und Reflexe

bei Decapoda: Doflein. — Leistungen des Gehirns bei den krebsartigen Tieren

besonders bei Cancer pagurus: Jordan. — Schaffung sensationeller Assoziationen

bei Paguridae: Drzewina (2). — Bewegungsreaktionen, welche durch Reizung

der heteromorphen (an Stelle der Augen regenerierter) Antennulä ausgelöst

werden: Herbst. — Reaktionen der Paguridae: Drzewina (1). — Chronaxien

bei marinen Crustacea: Lapicque. — Farbenwechsel bei Decapoda: Doflein. —

Farbenwechselreaktionen bei Palaemon: Froehlich. — Beziehung zwischen

Licht und Pigmentbildung (Pigmentwanderung) bei Crenilabrus and Hippolyte:

Gamble. — Leuchten [Photophoren] und Färbung der Penaeidea und Caridea:

Kemp (2). — Geschlecht und Immunität: Smith (Nature vol. 84 p. 549. — Fälle

von abnormer Färbung bei einigen Crustacea der Adria: Trois (Maja squinado,

Carcinus maenas u. Crangon vulgaris). — Schmuckfarben einiger Süßwasser-

Crustaceen: Fritsch.

Große Rolle der geographischen u. physiologischen Isolation bei der Diffe-

renzierung der kolonieweise lebenden Trichoniscinae: Carl (Zool. Zextralbl.

Bd. 17 p. 584).

Entwieklung.

Entwicklung von Neomysis japonica: Nakazawa. — Entwicklung der Ponto-

niidae: Sollauf.

Oogenesis, Spermatogenesis, Befruchtung ete.: Genesis der Spermatozoen:

Köster. — Gametogenesis von Pandarus sinuatus: Me Clendon.

Embryologie: Embryologie von Pseudocuma pectinata [C’umac.]: Grschebin.

— Metamorphose, Larvenformen ete.: Giesbrecht [von Stomatopoda), Issel (von

Paguridae), Paolucei (Zoes von Eriphia spinifrons [C'yelometop.]), Stepbensen

(von dänischen Decapoda). — Larvaler Bau junger Flußkrebse: Skorikov. —

Jugendstadium von Palaemon lamarrei [Caridea]: Henderson u. Matthai. —

Wachstumsveränderungen bei den Gammaridea: Sexton. — Grössenzunahme

bei der Häutung von Galathea: Elmhirst. — Wachstumsverhältnis bei Penaeus:

Senov.

Regeneration: Elmhirst (bei Galathea), Herbst (von antennenähnlichen Or-

ganen an Stelle von Augen), Shell (der Pleiopoden von Gammarus u. anderen

Decapoda).

Parthenogenesis: Bushnell u. Farmer (Cancer).

Übersicht nach dem Stoff. 111

Geschlechtsbestimmung. Studien über die experimentelle Analyse des Ge-

schlechts: Smith.

n Ethologie.

Lebensweise der Decapoda: Doflein. — Biologie der Paguridae: Issel. —

Indische Potamonidae (Cyclometopa): Alcock (1). — Lebensweise von Leander

rectirostris im Schwarzen Meere: Emeljanenko. — Lebensweise der Stomatopoda:

Giessbrecht. — Biologie der Monolistrini (Flabellifera): Racovitza. — Biologie

der misantropen Paguridae: Drzewina (1). — Lebensweise von Eucrangonyz

[Gammaridea]: Embody. — Gewohnheit von Birgus auf Bäume zu klettern:

Andrews. — Biologie von Ergasilus Sieboldti Nordm.: Freidenfeld. — Leander

rectirostris im Liebhaberaquarium: Emeljanenko. — Verhalten der Larven u.

Jugendformen des amerikanischen Hummer: Hadley.

Tropismen : der Decapoda: Dofleinr. — von Daphnia u. Gammarus: Rose.

Phototaxis der ‚‚Fiddler crabs‘‘ u. ihre Beziehung zur Theorie von der Orien-

tierung: Holmes. — Stereotropismus der Brachyura u. Paguridea: Veress.

Sexualdimorphismus bei Stomatopoda: Balss. — Brutpflege ete.: Dimorphe

Männchen der Gattung Saron [Caridea]: Coutiere (1, 2), desgl. bei Palaemon

[Caridea]: Henderson u. Matthai. — Schutz der Eier bei Paguristes: Issel.

Aufenthaltsorte : Alpine Seen: Stingelin (Orustacea). — Subterrane Formen:

Monolistrini [Flabellifera]: Racovitza.. — Niphargus in Westmeath: Nichols

(Irish Natural. vol. 19 p. 103). — Branchialsystem der Caridea u. seine Beziehung

zum Aufenthaltsort: Solland. — Wanderungen des Hummers: Meek.

Plankton: Theel (auch Amphipoda). Crustacea im Magen eines Tiefsee-

Cephalopoden: Scott.

Parasitismus, Commensalismus ete.

Crustacea als Parasiten: Parasitische Kastration bei /nachus: Smith. —

Wirkung des Parasitismus von Sacculina auf Inachus: Smith. (Nature vol. 84

p. 549). — Fischparasiten: Schneider. — Tierische Ektoparasiten mit besonderer

Berücksichtigung der in Nordwest-Deutschland vorkommenden Wirtstiere:

Klugkist. — Parasiten auf Fische: Richardson (/sopoda). — auf Crustacea: Horst

(Epicaridea, Palaegyge), Patience (Isaea [Gammarid.]). — Parasiten der Crustacea:

Parasiten auf Palaemon carcinus: Horst. — Protozoa: Beauchamps (Porospora

n. g. [Gregar.], Huxley (Ganymedes anaspidis n. g. n. sp. [Gregar.] aus dem Darm-

kanal von Anaspides tasmaniae), Leger u. Dubosceq (Selenococcidium intermedium

Leg. u. Dub.). — Parasiten am paeifischen Salm. Nachweis der Wanderung

dieser Salmart an den Parasiten: Ward. — Parasit der Gattung Munida Leach:

Gu£erin Ganivet (2) (Rhizoc.: Triangulus munidae G. Smith). — Krebsepidemien :

Järvi; — desgl. in Finnland: Kemp (1). — Commensalismus der Brachyura und

Paguridae: Veress. — Symbiose zwischen Pagurus u. Actinia: Brunelli. — Asso-

ziationen von Paguridae mit Actiniae: Faurot; — desgl. der Paguridae mit

Spongiae und Actiniae: Issel. — Commensalen von Eupagurus: Elmhirst. —

Myrmekophile Orustacea: Platyarthrus: Crawley. — Trichoniscus [Onisc.] auf

Neu-Seeland: Chilton. — Isopoda in Ameisennestern : Chilton (auf Neu-Seeland).

— Färbung, Schutz und Trutzfarben : Farben und Farbenveränderung bei Deca-

poda: Doflein. — Farben britischer Penaeidea, Caridea und Stenopidea: Kemp

112 Crustacea (Malacostraca) für 1910,

(1). — Leuchten der Penaeidea und Caridea: Kemp (2). — Schmuckfarben einiger

Süßwasser-Krebse : Fritsch.

Variation und Ätologie.

Variation bei Palaemon [Carid.]: Henderson u. Matthai. — Variation bei

Pandalus: Calman (2). — Mutationen bei Atyidae: Calman (4).

Teratologie.

Abnormitäten u. Regeneration der Pleopoden von Cambarus u. anderen

Decapoda: Shull. — Seitlicher Drüsen-Hermaphroditismus bei Palinurus: Qui-

jada. — Abnorme Färbung bei Crustacea der Adria: Trois. — Perlenähnliche

Wachstumsgebilde beim Hummer: Herrick.

Verwandtschaft der Gatt. Urocaris (Stimpson) u. Palaemonella (Dana):

Sollauf.

Phylogenie.

Phylogenie der Malacostraca: Pervinquiere; — desgl. der Palaemoniidae

und Pontoniidae [Carid.]: Sollaud; — desgl. der Atyidae [Carid.]: Calman; —

desgl. der Mesidotini [Valvifera]: Racovitza u. Sevastos. — Ein neuer Typus

der Crustacea: Sayce (Koonunga cursor).

Vererbung.

Vererbung erworbener Charaktere bei den Paguridea: Bugnion (bei Pagur.

coenobita).

Ökonomie,

Krabben- und Hummerfischerei: Meek. — Verwertung der Lan-

gusten an der westafrikanischen Küste: Gruvel. — Krebs in Finnland: Kemp

(1). — Krebsfang in der Bucht von Krasnovodsk : Savrov. — Palinurus und

Scyllarus bei St. Helena: Cunningham. — Garneelen- (Palaemon serratus u.

Crangon vulgaris) Fischerei an der Küste von Irland: Kemp (1). — Hummer-

zucht: Meek. — Künstliche Hummerzucht: Vesthassel (historische Übersicht u.

jetziger Stand). — Schonzeit und künstliche Zucht: Appellöf. — Praxis der

Wiederbevölkerung der Gewässer mit Krebsen: Drouin de Bonville. — „‚Lobster

Pearl“. Tatsächliches: Herrick (ein teratolog. Gebilde). — Skoldkrebs : Stephen-

son. — Holzbohrende Crusiacea auf den Christmas-Inseln: Calman (1). —

Schaden an den Austerbänken in Peru, verursacht durch Sphaeroma [Isop.]:

Richardson. — Entwurf eines neuen Gesetzes über die Schonzeit für den Hummer:

Appellöf. — Zueht des Hummers nach den Msad’schem System: Appellöf. —

Krebsfischerei auf St. Helena: Cunningham (Proc. Zool. Soc. London 1910, 11.

p. 119—120).

Faunistik.

Crustaceen-Fauna in überschwemmten Gebieten: Novikov (2). — Charak-

teristische Veränderungen der Fauna der Seeküste: Me Intosh (Brachyura).

1. Geograpische Verbreitung.

Ausbreitung einiger Dekapodengruppen: Arldt. — Geographische Ver-

breitung von Triangulus munidae: Gu£rin-Ganivet (2).

Faunistik, 113

A. Land- und Süsswasserformen

(einschliesslich der Formen der Salzseen).

Verbreitung der Potamonidae (O'yclometopa): Alcock. — Verbreitung der

Atyidae (Caridea): Calman.

Arktisches und Antarktisches Gebiet: vacant.

Europa und Mittelmeergebiet.

Deutschland: Keilhack siehe van Douve etc. — Nordwest: Klugist

(Liste der parasitischen Crustacea). — Rheinland u. Westfalen: Fauna des

Vereinsgebietes: le Roi (Amphipoda). — Fauna der Iser betrachtet vom

Standpunkt der biogenetischen Capaeität ete.: Piraud (auch Macrura

u. Anomura). — West - Bretagne: Vorkommen von Ergasticus clouei A. M.-

Edw. in der Nähe der Küste: Guerin-Ganivet (1). — England: Bradford:

Anonymus (Isopoda). — Chester: Jackson (Oniscordea). — Kew : Bagnall (Onis-

coidea). — Lancashire: Rhodes (Lancashire Natural. vol. 3 p. 279 Oniscoidea).

— Yorkshire: Stainforth etc. (Platyarthrus [Onisc.], Naturalist London 1910

p. 176, 203, 376). — Schottland: Fair Isle: Evans (Ann. Scott. Nat. Hist.

1910 p. 251: Oniscoidea u. Gammaridea). — Irland : Scharff (Metoponorthus mela-

nurus [Onisc.], für die Fauna neu). — Donegal: Foster (Irish Naturalist vol. 19

p. 187: Oniscoidea). — Westmeath: Nichols (Irish Naturalist vol. 19 p. 193).

— Finnland: Helle (Verbreitung von Astacus fluviatilis). — Riviera: Verhoeff

(neue Spp. von Armadillidium u. Porcellio). — Italien : Arcangeli (Armadillidium).

— Verbano: de Marchi. — Schweiz: Stockhornseen: Baumann (Beiträge

zur Biologie derselben. Gammaridea), Stingelin (auch Gammaridea). — Unter-

waldner und Berner Alpen: Stingelin. — ®esterreich-Ungarn: Krain:

Racovitza (Monolistra n. sp. [Flabellif.]). — Monts Dore: Bruyant (Amphi-

poda).

Asien und Malayischer Archipel.

Uralseen: Fuhrmann u. Thiebaud. — Irtiasch-See ete.: Novikow (l). —

See Tiberias: Calman (7) (T’yphlocaris galilea n.g., n. sp.). — See Genezaret:

Calman (7) (Decapoda). — Indien: Alcock (Monographie der Potamonidae

[C'yelometopa]). — Nördliches Gebiet: Rathbun (Decapoda). — Südliches Gebiet:

Henderson u. Matthai (Palaemon, neue Spp.). — Holländisches Ostindien :

Rathbun (Decapoda). — Java : Horst ( Epicaridae). — Ceylon : Lenz (1). — Brack-

wasserformen von Calcutta u. vom Dacca-Distrikt: de Man.

Afrika und Madagaskar.

Mittelmeergebiet: Verhoeff (es ist ein Schöpfungsherd von außerordent-

lichem Reichtum. Charakteristisch für das Gebiet ist die Gatt. Haplophthalmus.

Zool. Anz. Bd. 31 1907 p. 457 sq.). — Aegypten: Budde-Lund (Zahl der Land-

Isopoda 28 mit mediterranem Charakter, nur 2 Periscyphus-Spp. haben ihre

nächsten Verwandten im tropischen Afrika. cf. Results Swedish Zool. Exp.

Egypt. and White Nile 26 A. 1908). — Tripolis u. Barka : Verhoeff (in der ungün-

stigen Tropenzeit sammelte er 10 Spp., kleinere leicht vertrocknende Spp. fehlten.

Tropisch afrik. Vertreter fehlen; nur Kosmopoliten, ferner Charakter-

tiere der circummediterranen Wüstengebiete u. südeuropäische Verwandte. Zool.

Jahrb. Abt. f. System. Bd. 26 1908 Hft. 2 p. 257 sq.). — Westküste von Afrika:

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 2. 8

114 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Gruvel (Languste u. ihre Verwertung). — Sudanesische Küste des Roten Meeres:

Stebbing (1) (Oniscoidea n. sp., Tanaidacea). — Aequatoriales Afrika: Lenz (2)

(Decapoda u. Caridea, neue Arten). — Kilimandjaro- Gebiet: Sjöstedt (Decap.,

Potamon Johmstoni Miers). — Britisch- Ostafrika: Stebbing (2) (/sopoda). —

Kilimandjaro-Meru: Budde-Lund (Oniscoidea, neue Spp.). — Ostafrika und

Madagaskar : Lenz (Decapoda: Caridina n.sp.). — Südafrika (südl. vom 16°

südl. Br.): Stebbing (4) (Katalog der Crustacea). — Transvaal: Methuen (Süß-

wasserformen). — Aldabra-Inseln : Borradaile (2) (Land- u. amphibisch lebende

Decapoda).

Amerika.

Nordamerika: Virginia: Embody (Gammaridea n. sp.). — Michigan, Walnuß-

See: Hankinson (Amphipoda). — Central- und Südamerika einschließlich West-

indien : Guatemala : Richardson (1) (Oniscoidea n. sp.). — Costa Rica : Richardson

(5) (Oniscoidea n. sp.). — Peru: Richardson (3) (/sopoda), Weckel (Süßwasser-

Amphipoda). — Peru und angrenzende Küste: Rathbun (1) (stieläugige Krebse).

Titicara-See: Werkel (Gammaridea).

Australien.

Australien und Tasmanien : Stebbing (4) (Katalog der Amphipoda). — Neu-

Seeland : Chilton (1) (Zsop. in Ameisennestern. Oniscoidea n. sp.), (2) (Revidierte

Liste der Land-/sopoda). — Melbourne : Sayce (Koonunga cursor).

B. Meeresgebiete.

Atlantischer Ozean.

Atlantischer ®zean: Hansen (Euphausiacea n.sp.). — Nordatlantischer

Ozean: Calman (2) (Pandalus [Carid.], (6) (Cumacea). — Chevreux (Gammaridea

n. sp.), Guerin-Ganivet (Ergasticus [Oxyrrhynch.]). — Dänemark : Stephenson

(revidierte Liste der Decapoda), Stephenson (Decapoda, Euphausiacea, M ysidacea,

C’umacea). — Britische Meere: Kemp (1) (Penaeidea, Caridea, Stenopidea. Ver-

breitung aller Arten), Ritchie (2) ( Palinurus vulgaris [Loricata]). — Colme (Nord):

Schodduyen, R. (Beitrag zur Biologie). — St. Ives, Bai Cornwall: Vallentin (1)

(Amphip., Isop., Macrura, Anomura u. Brachyura). — Schottische Gewässer :

Ritchie (1) (Paromola cuvieri [Dromiac.]). — Clyde: Patience (2) (Brachyura,

Euphausiacea, Mysidacea u. Flabellifera). — Cumbrae, Clyde : Patience (1) (Isaea

elmhirsti [Gammar.]). — Loch Fyne: Scott (Amphipoda, Tanaidacea, Isopoda,

Cumacea, Euphausiacea, Mysidacea u. Decapoda). — Donegal: Tattersall (Irish

Natural. vol. 19 p. 187. Gammaridea, Valvifera). — Seilly-Inseln : Vallentin (2).

— Plymouth: Morgan (Upogebia [Thalass.]). — Worthing: Walker (Hippolyte

gracilis). — Aldernay: Sharp (Liste der Decapoda). — Küste von Irland: Kemp

(Decapoda natantia). — Busen von Biscaya: Kemp (3) (Decapoda), Walker (1)

(Decapoda, Schizopoda, Cumacea, Isopoda, Amphipoda). — Nordseite: Kemp (3),

Sexton (Amphipoda, Fam. Pleustidae u. Eusiridae). — Portugal: Nobre (Liste

der Crustacea). — Marokko: Gruvel (Palinurus [Loric.] var. n.). — Mauritanien:

Bouvier (Decapoda). — Atlantische Küste von Nordamerika: Richardson (6)

(Flabellifera: Anilocra n. sp.). — Bermudas: Kunkel (Amphip.: Gammaridea). —

Westindien: Kükenthal (Macrura und Anomura), (6) (Cumacea), Tattersall

(Schizopoda).

Faunistik, 115

Mittelmeergebiet: Calman. — Golf von Neapel: Giessbrecht (Stomaiopoda).

— Busen von Triest: Stiasny.

Tropischer Teil des Atlantischen Ozeans: St. Helena: Cunningham

( Decapoda). Florida Dry Tortugas: Coutiere (3) Alpheidae [Carid.] n. sp.).

— Westafrika : Lenz (Decapoda). — Gruvel (Loricata).

Südliche Meere.

Australien und Tasmanien: Baker (Sphaeromidae [Isop.], neue Spp.),

Stebbing (3) (Katalog der Amphipoda). — Neu-Süd-Wales: Stebbing (3) (Gam-

marida, nzue Spp.). — Kerguelen: Bouvier (2, 3) (Brachyura u. Isopoda). —

Südafrika: (südl. v. 16° südl. Breite): Stebbing (3) (Katalog der C’rustacea; neue

Spp. von Oxystomata, Paguridea, Asellota, Caprellidea, C'umacea). — Südliche

Sandwich-Inseln : Bouvier (5) (Antarcturus n. sp. [ Valvif.]). — Ostküste von Pata-

gonien: Richardson (2) (Asellota: Notasellus n. sp.). — Chile: Porter (Pinno-

theridae).

Pazifischer Ozean.

Nördlicher Teil: Japan: Balss (Stomatopoda), Fukuda (Stomatopoda), Naka-

zawa (1) (Neomysis sp.), (2) (Schizopoda), Rathbun (2) (Thaumastocheles [Ne-

phrops]). — Monterey Bucht: Weymouth (Synopsis der Brachyura, Liste,

l neue Sp.).

Oestlicher Teil: Peru: Rathbun (1) (Decapoda neue Spp., Stomatopoda

n. sp.; Listen); Richardson (3) (/sopoda, neue Spp.), Walker (4) (Gammaridea).

Indopazifischer Teil: Malayischer Archipel: Bedot (2) (Stomatopoda u.

Brachyura), de Man (Caridea, neue Spp.). — Malayischer Archipel und Busen

von Siam : Hansen (Euphausiacea u. Mysidacea, neue Spp.). — Busen von Siam:

Rathbun (3) (Brachyura). — Holländisch- Ostindien : Rathbun (2) (Decapoda). —

Christmas-Inseln: Calman (1) (Holzbohrende Crustacea: Flabellifera 1 n.sp.,

Gammaridea 1 n.sp.). — Ambeina: de Man (Caridea n.'sp.). — Philippinen :

Richardson (7) (Meeres-/sopoda).

Westindischer Ozean.

Westindischer Ozean: Borradaile (1) (Penaeidea, neue Spp., Stenopidea

n.sp., Zoricata n.sp., Nephropsidea n.sp., Thalassinidea n. spp.), Stebbing (2)

(Tanaidacea neue Spp., Flabellifera neue Spp., Valvifera, Asellota u. Epicaridea,

neue Spp.). — Ostafrika: Balss (Stomatopoda var. n.). — Madagaskar, Ostafrika

u. Ceylon: Lenz (Decapoda, C'yclometopa n. sp.). — Rotes Meer: Balss (Stomato-

poda). — Sudanküste des Roten Meeres: Stebbing (Tanaidacea, Asellota n. sp.,

Flabellifera neue Spp.). — Indische Meere: Kemp (4) (Penaeid. Gennadas neue

Spp.). — Bucht von Amboina und ihre Beziehungen zu den Buchten anderer

Ozeanen : Bedot (1) (Schizopoda). — Hawaiische Inseln: Richardson (4) (/s0p.).

Arktisches und Antarktisches Meer.

Eurasische Arktis: Birula. — Arktisches Meer: Sibirisches Eismeer:

Birula (Decapoda). — Kara-See: Stappers. — Grönländisches Meer:

Grieg (Decapoda, Amphipoda). — Antarktisches Meer: Hodgson (Tanaidacea,

Isopoda, neue Spp.).

5*+

116 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

2. Geologische Verbreitung.

Im Allgemeinen: 'Arldt (Verbreitung der Decapoda). — Palaeontologie

der Bermudas: Verrill; — desgl. der Manzano-Gruppe: Girty (2). — Geologie

des Cserhät: Noszky (Brachyura). — Florissant, Colorado : Cockerell. — Phos-

phatschichten von Idaho, Wyoming u. Utha: Girty (3). — Batesford: Chapman (2).

— Diluvialgeschiebe der Insel Borkum: Bonnemas. — Dufton-Schichten :

Vietoria: Chapman (]).

Ordovizian: vacat.

Silurformation des östlichen centralen Kentucky: Foerste.

Devon: Brünner Clymenienkalk: Rzehak. — Carbon: Europa: Andree

(Arthropleura). Schottland: Pervinquiere (Malacostraca). — Unterer Kohlen-

kalk von Chabarny, Bezirk Orsk, Gouv. Orenburg: Janisevskij (Phyllocarida).

— Fauna der Caney-Schichten von Oklohama: Girty (1).

Jura: Stramberger Schichten: Remes (2) (Anomura n.sp., Brachyura

n. Spp.). Titonische Kalksteine von Skalitz: Remes (1). — Lias von York-

shire: Sheppard. — Grestener Schichten der österreichischen Voralpen u. ihre

Fauna: Trauth.

Kreideformation.

Tertiär : Binnenfauna des Fischschiefer von Transbaikalien : Reis. — Tertiär-

fauna von Cap Dalton in Ost-Grönland: Ravn (Macrura, Anomura, Brachyura).

— Paris, fossile Schichte von Guespel: Ramond, Combes u. Morin. — Eisenbahn-

linie von Paris nach Creil über Chantilly : Ramond, Dollot u. Combes. — Oligozän

(Tongrische Stufe) von Rumänien: Racovitza u. Sevastos (Proidotea n. sp.

[Valwif.]). — Eozän von Rozzo, Istrien: Toniolo. — Miozän von Torino: Sacco.

Systematik.

Decapoda.

Brachyura.

Stereotropismus der Brachyura. WVeress, Mathem. Termt. Ert. Budapest

vol. 28 p. 188 Taf. III—VI.

Phototaxis der ‚„Fiddler Crabs‘‘. Holmes, Journ. Comp. Neur. vol. 18 p. 493.

Brachyura aus dem nördlichen Teile der Bucht von Biscaya: Gonoplax rhom-

boides (Linn.), Xantho tuberculata Couch., Atelecyclus 7-dentatus (Mont.),

Portunus depurator Leach, Macropodia longirostris (Fabr.), Ebalia tuberosa

(Pennant) u. E. cranchii Leach. Walker, Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 158.

Oxyrhyncha.

Acanthonyz petiverii M. Edw. Beschreib. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 534—535 pl. 46 fg. 4 (Peru: Bay of Sechura, halbwegs

zwischen Bayovar u. Matacaballa; Chincha, North Island. Verbr.: von

Cape St. Lucas, Low. Calif. bis Chile, Galapagos Ilsl.).

Ohionoecetes tanneri Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4. p. 35 nebst Fig.

Chorilia longipes Weymouth, t.c. p. 33 nebst Fig.

Cryptopodia laevimana Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 320

nebst Fig.

Systematik. 117

Dasygius tuberculatus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 27 nebst Figg.

Epialtus marginatus Bell. Beschreib. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 534 pl. 36 fig. 2 (Galapagos Inseln, Peru (Mollendo) bis Chile,

Rio Janeiro; Independencia-Bay: einheim. Name: Apancora, auch Jaiva).

— E. productus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 28 nebst Fig.

Ergasticus clouei Guerin-Ganivet, Bul. Inst. oc&an. Monaco Nr. 184 p. 1.

Erileptus spinosus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 27 Figg.

Eupleurodon trifurcatus Stimpson. Beschr. Rathbun. Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766. p. 535 pl. 49 fig.5. Von Felsen zwischen den Gezeiten-

linien, north end of Ferrol Bay [Chimbote], zuvor von Peru nicht bek.; Cape

St. Lucas, Lower Californ.). I

Heterocrypta occidentalis Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 21 Figg.

Hyas coarctatus u. alutaceus von d. Bennett-Insel. Beschreibung. Synoryimie.

Birula, M&m. Acad. Sei. St. Petersbg. T. 19, 1. p. 4 nebst Figg. dazu. —

araneus Linne an der Kara-Pforte. Stappers p. 264. — H.araneus Linne

Grönland Stat. 4. Grieg p. 525. Reste eines Stückes in Phoca barbata

zwischen der Ins. Moffen u. den norwegischen Inseln.

Inachoides microrhynchus M. E. u. Lucas. Beschreib. Rathbun, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1766. p. 533—534 pl. 36 fig. 1 (Bay v. Sechura, auf

halbem Wege zwischen Bayovar u. Matacaballa, 5—6 Faden Tiefe, bisher

aus Peru nicht bekannt).

Loxorhynchus grandis Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 31 nebst

Fig. — crispatus p. 32 nebst Fig.

Microphrys platysoma (Stimpson) Beschreib. Rathbun, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1766 p. 535 pl. 50 fig. 3 Peru (North end of Ferrol Bay;

Verbr. Lower Calif. bis Peru, Galapagosinseln). — M. aculeatus (Bell) Beschr.

p- 536 Abb. pl.45 fig. 4 (Peru: Lobos de Afuera; bisher von Peru nicht

bek. Verbr. Galapagos Ins.; Ecuador u. Peru).

Mimulus foliatus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 t.c. p. 30 Figg.

Paratymolus pubescens Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol.5 p. 317.

Parthenope (Pseudolambrus) harpax Rathbun, t. c. p. 320 nebst Fig.

Podochela hemphillii Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 26 nebst Fig.

Pugettia gracilis Weymouth, t. c. p. 29 Fig. — richii p. 30 Fig.

Rhodia parvifrons Weymouth, t.c. p. 34 fig.

Rhynchoplax coralicola Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 316

nebst Figg.

Scyra acutifrons Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. 4 p. 33 nebst Fig.

Simocarcinus pyramidatus var. longirostris n. Lenz in Voeltzkow, Reise Ostafrika

p: 540 (Ceylon).

Teleophrys eristulipes Stimps. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 536 pl. 46 fig. 2 Peru: Bay von Sechura, halbwegs zw. Bayovar

u. Matacaballa, 5—6 Faden Tiefe. Verbr. von Cape St. Lucas, Lower Calif.

bis Peru, Galapagos Islds., auch Brasil.).

Zebrida adamsii Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 321.

CO yclometopa.

Actumnus changensis Rathbun, Vid, Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol.5 p. 357

nebst Figg.

118 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Arenaeus mexicanus Gerst. Synon. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1766. p. 537—538 pl. 37 fig.2 (Sandbank von Ankon;

zuvor von Peru nicht bek. Verbr. von Mexico bis Peru).

Callinectes toxotes Ordway. Beschr. (sehr grosse Sp.) Rathbun, t. c. p. 536—537

pl. 55 (an der Mündung des Tumbesflusses „Jaiva‘“ genannt, zuvor von

Peru nicht bek. — Verbr. Cape St. Lucas, Lower Calif. bis Peru). — arcuatus

Ordway Beschr. p. 537 pl. 56 (Austernbänke von Matapalo, bei Las Vacas,

bei Capon; bisher von Peru nicht bek. Wird „Jaiva‘‘ genannt).

Atelecyclus septemdentatus aus Südafrika. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6

p- 310.

Calocarcinus Xanthid. (nahe verw. mit Siphenomerides Rathb.) Calman, Ann.

Nat. Hist. ser. 8 vol. 3 1909 p. 30 sg. — africanus p. 30 (zwischen Aden u.

Sansibar, ca. 600 Faden Tiefe).

Cancer pugurus. Leistungen des Gehirns. Jordan, Biol. Zentralbl. Bd. 30

p- 310 sq. — C. pagurus. Fischerei dess. Merk, Sea Fisheries Rep. Nor-

thumberland 1909—1910 p. 20. — C. polyodon Poeppig. Beschreib. Rath-

bun, Proc. U. States Nat. Mus. Philad. vol. 38 No. 1766 p. 538—539 pl. 38

fig. 2 (Ecuador, Peru: Ancon, Callao. ete., Chile). — plebeius Poeppig =

irroratus Bell. Beschr. p. 539 pl. 38 fig. 1 von Peru bis Port Ortway, Pata-

gonien). — Weymouth behandelt in Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4

folgende Spp.: productus p. 40. — magister p. 40. — gracilis p. 42. — gibbo-

sulus p. 43. — jordani p. 45. — antennarius p. 47. — anthonyi p. 49. —

oregonensis p. 49. Abbildungen zu allen diesen Formen.

Caphyra unidentata n. sp. Lenz in Voeltzkow Reise Ostafrika p. 555 (Madagaskar).

Carpilodes lophopus Rathbun, Vid. Selskr. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 351 fig.

Charybdis lucifera Rathbun, t.c. p. 364 fig.

Cycloxanthops sexdecimguttatus (M. E. Lucas) Rathbun, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1766 p. 541 pl. 40 fig. 1 (Peru: diverse Fundorte, Verbr.

Ecuador bis Chile). — CO. lineatus Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn

(7) vol.5 p. 350 nebst Fig. — C. novemdentatus Weymouth, Leland Stan-

ford Univ. Publ. vol. 4 p. 50 nebst Fig.

Eriphia spinifrons. Zoeaform ders. Paolucei, Riv. mens. Pesca Pavia vol. 5 (12)

1910 p. 33 nebst Figg. — Gregarinen-Parasiten. Beauchamp, Compt. rend.

Acad. Sci. Paris T. 151 p. 997 fig. — squamata Stimpsen. Beschr. Rathbun,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 544 pl. 41 fig. 1 (Las Vacas

bei Capon. Verbr. von Nieder Calif. bis Peru).

Eurycarcinus orientalis Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol.5 p. 354 Figg.

Eurypanopeus transversus (Stimpson) „Pangoritas‘“‘ der Eingeborenen. Beschr.

Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 543 Textfig. 2

(Peru: Las Vacas bei Capon, zuvor von Peru nicht bek.) Verbr. Salvador,

Central-Amerika bis Peru). Die einheimischen Fischer halten sie für die

22 von Eriphia squamata &.

Eurytium tristani Rathbun Beschr. Rathbun, t. c. p. 543—544 pl. 47 fig. 1 (Peru:

Salto bei Capon, bisher von Peru nicht bek. Verbr.: Costa Rica bis Peru).

Gecarcininae Rathbun wohl nicht haltbar. Calman, Proc. Zool. Soc. London

1908 p. 960 sq.

Gecarcinucus (Gecarcinucus) jacquemonti Alcock, Cat. Ind. Decap. vol. 1 fasc. 2

p. 122 fig. — edwardsi p. 124. — G. (Oylindrotelphusa) steniops p. 125.

Systematik. 119

Halimede. Bemerkungen zu den Spp. der Gatt. Rathbun, Vid. Selsk. Skr.

Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 352 figs.

Heteropanope sexangula Rathbun, t.c. p. 358 nebst Fig.

Lissocarcinus boholensis Rathbun, t.c. p. 363.

Lophopanopeus bellus Weymouth, Leland Stanford Univ. Pub. vol. 4 p.51 fig.

— beathii p. 52 fig.

Menippe convexa Rathkun, Vid. Selskr. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 354 figs.

Paratelphusa. Alcock behandelt im Cat. Ind. Decap. vol. 1 fasc. 2 eine Reihe

von Arten u. bringt Figuren dazu: P. (Paratelphusa) spinigera p. 72.

— trilobata p. 74. — blanfordi p. 75. — sinensis p. 76. — grayi p. 78. —

P. (Barytelphusa) jacquemontiü p. 79. — lamellifrons p. 82. — cunicularis

p. 83. — edentula p. 84. — napaea p. 85. — pulvinata p. 86. — guerini p. 87

mit den beiden Varr. var. planata n. p. 88 u. var. pocockiana n. p. 88. —

pollicaris p. 89. — lugubris p. 91 nebst var. nigerrima n. u. var. plauta n.

p. 93. — faleidigitis p. 94. — harpaz p. 95. — masoniana p. 96. — P. (Ozio-

telphusa) hydrodromus n.sp. p. 97. — bouvieri p. 100. — P. (Phrico-

telphusa) callianira p. 102. — elegans p. 104. — gageii p. 105. — campestris

p- 107. — carinifera p. 108. — P. (Liotelphusa) levis p. 109 nebst var.

quadrata n. p. 111. — P. (Globitelphusa) bakeri p. 114 nebst var. cylindrus

p- 115. — pistorica p. 116. — gubernatoris p. 117. — pilosipes p. 118. —

fronto p. 118.

Panopeus purpureus Lockington. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 541—-542 pl. 41 fig. 2 (Peru: an d. Mündung des Tumbes

River, Boca Alamo, zuvor von Peru nicht bekannt). Verbr. von Low. Calif.

bis Peru. — chilensis M. Edw. u. Lucas p. 542 pl. 41 fig. 4 (Austerbänke

von Matapalo bei Capon; Westküste von Mexico bis Chile). — bermudensis

Benedict u. Rathbun Beschr. u. Abb. im Text Fig. 1 p. 542—543 (Peru:

Matapalo bei Capon, zuvor von Peru nicht bek.). Verbr. von Florida bis

Brasil., Bermudas).

Pilumnus. Bemerkungen zu den Arten. Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöben-

havn (7) vol. 5 p. 354. — borradailei p. 356 nebst Abb.

Pilumnoides perlatus Poeppig Rathbun, t. c. p. 544 pl. 50 fig. 2 (Peru: Bay von

Sechura, westl. von Matacaballa, 5 Faden Tiefe; San Lorenzo Isl., 2!/, Faden.

Verbr. von Panama bis Chile).

Platyzanthus orbignyi (M.-Edw. u. Lucas) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1766 p. 539—540 pl. 40 fig. 2 (Ecuador, Peru, Chile). —

crenulatus A. M. E. Beschr. p. 540 pl. 39 fig. 2 (Peru: südöstl. von Caleta

Colon, Bay of Payta; an der Mündung des Rimac bei hoher See ausgeworfen.

— Verbr. von Peru bis Patag.).

Portunus (Portunus) acuminatus (Stimpson) Beschr. Rathbun, Proc. U. States

Nat. vol. 38 No. 1766 p. 538 pl. 49 fig. 1 (Peru: Bay v. Sechura, westl. von

Matacaballa, ca. 5 Faden Tiefe, ibid. auf halb. Wege zwischen Bayovar u.

Matacaballa, 5—6 Fad. Tiefe. — Verbr. von Panama bis Peru). — P. xan-

tusii Weymouth, Leland Standford Univ. Publ. vol. 4 p. 49 fig.

Potamiscus n. g. Potamonid. Alcock, Rec. Ind. Mus. vol. 3 1909 p. 246. —

annandalıı n.sp. p. 246 (Indien). — P. ein Subg. von Potamon. Alcock,

t. c. v. 249.

120 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Potamon. A. Spp. ausIndien: Alcock behandelt in Cat. Ind. Decap. vol. 1

fasc. 2 folgende Spp. u. gibt Abb. dazu: P. (Potamon) fluviatile var. iberi-

cum p.21, var. Gedrosianum p.23, var. monticola n. p. 23. — koolooense

p. 24. — atkinsonianum p. 26 nebst var. ventriosum p. 29, var. emphyseteum

p. 29, var. ambivium p. 30. — bifarium p. 30. — andersonianum p. 32, var.

rangoonense n. p. 34, var. asperatum n. p. 35, var. manipurense p. 35, var.

tritum p. 35. — edwardsi p. 35, var. hirtum p. 36. — hispidum p. 36. —

pealianum p. 38, var. antennarium p. 40. — tumidum p. 41. — tumidulum

p. 43. — simulum p. 44. — larnaudii p. 47. — manii p. 48. — brevimargi-

natum p. 49. — pruinosum p. 50. — turgidulimanus p. 52. — stoliczkanum

p. 53. — thagatense p. 54. — P. (Potamiscus) sikkimense p. 56. — annan-

dalei p. 57. — P. (Geotelphusa) adiatretum p. 59. — P. (Acanthotelphusa)

dayanum p. 61. — wood-masoni p. 63. — fungosum p. 65. — feae p. 66. —

crenuliferum p. 66, var. floccosum p. 67. — calvum p. 68. — martensi p. 68.

— B. Spp. aus Afrika: Lenz gibt in den wissensch. Ergebn. deutsch-zentral-

afrik. Exped. vol. 3 Lief. 3 p. 1sq. Bemerk. usw. zu verschiedenen zentral-

afrikan. Spp. — P. (Potamonautes) Johnstoni Sjöstedt, Kilimandjaro-

Meru Exped. vol.21,1p.1(Kilimandjaro). —C. Neue Sp. aus Java: P.(Para-

telphusa) barbouri n.sp. Rathbun, Bull. Mus. Comp. Zool. Harvard, Cam-

bridge, Mass. vol. 52 p. 312 nebst Abb.

Potamonidae. System derselben. Alcock, Res. Ind. Mus. Calcutta vol. 5 p. 253.

Thalamita chaptali Rathbun, Vid. Selskr. Skr. (7) vol.5 p. 365 nebst Abb. —

imparimanus p. 366.

Xanthias taylori Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 52 nebst Fig.

Xantho gaudichaudii M.-Edw. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 540 pl. 39 fig. 1 (Peru: Bay von Sechura, La Punta;

von Ecuador bis Patagonien; San Juan Fernandez). — couchsi Patience,

Trans. Nat. Hist. Soc. Buteshire Rothesay 1910 p. 69 figs.

Catometopa.

Landbewohner und amphibisch lebende Arten. Borradaile, Trans. Linn.

Soc. Zool. vol. 13 p. 407.

Acmaeopleura rotunda Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol. 5 p. 327 fig.

Aratus pisoni (Milne Edw.) Beschreib. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 548—549 pl. 50 fig. 4 (Peru bei Capon. „Cangrejos de los man-

glares“. Biolog. Notiz) (Nicaragua bis Peru).

Asthenognathus hexagonum Rathbun, t. c. p. 339 nebst Figg.

Camptandrium paludicola Rathbun, t.c. p. 326 fig.

Cardisoma crassum Smith Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 549 pl. 44 (Peru: Mündung des River Tumbes „Cangrejo sin

boca“ genannt. Zuvor von Peru nicht bek.). Verbr. La Paz, Low. Calif.

bis Peru).

Chasmocarcinops gelasimoides Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol.5 p. 340 figs.

Cleistostoma lingulatum Rathbun, t.c. p. 323 figs.

Dissodactylus nitidus Smith. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766

p. 545546 pl. 48 fig. 6 (Peru: Bay v. Sechura, westl. v. Matacaballa, bisher

Peru nicht bek.). Verbr. Lower Calif. bis Peru.

Gelasimus, Phototaxis. Holmes, Journ. Comp. Neur. vol. 18 p. 493.

Systematik, 121

Goniopsis pulchra (Lockington) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 547—548 pl. 47 fig. 3 (Peru: Las Vacas bei Capon. „Chan-

duya‘ genannt. Zuvor von Peru nicht bek.). Verbr.: von Magdal. Bai, Low.

Calif. bis Peru).

Grapsus grapsus Linn. (= Pagurus maculatus Catesby) „Arafas‘‘ genannt. Rathbun,

t. c. p. 547 pl. 42 fig. 1. Fundorte in Peru; kurze biolog. Bemerk. u. Verbr.

— Gr. grapsus Linn. sehr zahlreich auf St. Helena u. gleicht in der Färbung

dem vulkanischen Boden, über den er hinwegläuft. Er ist sehr intelligent.

Eigenartige Fangweise auf der genannten Insel durch die Kinder. Cunning-

ham, Proc. Zool. Soc. London, 1910, 1, I. p. 122.

Hemigrapsus nudus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 62 fig.

— oregonensis p. 63 fig.

Hezapus sexpes Stebbing, Ann. S. African Mus. Cape Town vol. 6 p. 315 figs.

Hymenosomidae siehe unter Oxyrhyncha.

Lambdophallus anfractus. Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn vol. 5

p- 348 figs.

Leptograpsus variegatus (Fabr.) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 547 pl]. 45 fig. 2 (Peru: Mollendo. ‚Cangrejo‘‘ genannt).

Verbr. von Peru bis Chile; Juan Fernandez, auch Austral.

Macrophthalmus definitus Rathbun, Bull. Mus. Comp. Zool. Cambridge vol. 52

p- 307 fig. — M. verreauxi Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol. 5 p. 322 fig.

Megaesthesius sagedae Rathbun, t. c. p. 344 nebst Abb.

Mertonia lanka Rathbun, t.c. p.342 fig.

Mortensenella forceps Rathbun, t.c. p. 337 figs.

Oxypode gaudichaudii M. E. u. Lucas. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. 38 No. 1766 p. 550 pl. 43 fig.2. Fundorte in Peru. Lower Calif.

bis Chile; Galapagos Islds. Wird „carretero‘“ genannt.

Opisthopus transversus Weymouth, Leland Stanford Univ. Pub. vol. 4 p. 61 fig.

Ostracotheres politus Sm. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 545 pl. 43 fig. 3 (Peru: Ancon Bay (mit Crepidula-ähnl. Form

[©. dilatata]) auf Muscheln. Lebt in Molluskenschalen. — Chile).

Pachygrapsus transversus (Gibbes) (= Goniograpsus innotatus Dana) Beschr.

Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 28 No. 1766, p. 548 pl. 46 fig. 3

(Peru: Las Vacas, Matapalo bei Capon). Verbr. von Californ. bis Peru,

Galapagos Inseln ete. — crassipes Weymouth, Leland-Stanford Univ. Publ. 4

p- 61 fig.

Pinniza transversalis M. E. u. Lucas. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat.

‚Mus. vol. 38 No. 1766 p. 546 pl. 46 fig. 1 (Peru: nordöstl. von San Lorenzo

Isl., 2'/, Faden Tiefe, aus einem Röhrenstück, das dem Ende einer Röhre

von COhaetopterus gleicht). Verbr. v. Panama bis Punta Arenas, Patagon.

— Weymouth behandelt in Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 folgende

'Spp. u. gibt Abb. dazu: P. occidentalis p. 56. — tubicola p. 57. — littoralis

p- 58. — longipes p. 58. — faba p. 59.

Pinnotherelia laevigata M. Edw. u. Lucas. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 54 pl. 51 fig. 3 (Peru: Callao, Chile).

Pinnotheres nudus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 53 figs.

— P. Rathbun behandelt in d. Vid. Selsk. Skr. (7) Kjöbenhavn folgende

122 Crustacea (Malacostraca) für 1910,

Spp. u. gibt Abb. dazu: cardii p. 330. — gracilis p. 330. — burgeri p. 331.

— parvulus p. 331. — lanensis p. 332. — quadratus p. 333. — nigrans p. 334.

— kamensis p. 335. — kutensis p. 335. — saimensis p. 336.

Pinnotheridae von Chile. Porter, Act, Soc. Chile Santiago vol. 19 p. 34 sq.

Plagusia depressa Herbst. auf St. Helena weniger häufig als Grapsus grapsus.

Die Sp. ist rötlich. Es ist dies vielleicht die von Melliss erwähnte „Purple

Rock Crab“ u. „Peeling erab“. @Cunningham, Proc. Zool. Soc. London

1910 p. 122.

Planes minutus Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 63 fig..

Raphonotus subquadratus Weymouth, t. c. p. 55 fig.

Rhizopa gracilipes Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 342 figs.

Scalopidia spinosipes Rathbun, t. c. p. 344 fig.

Sceloplax granulata Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 59 fig.

Sesarma (Sesarma) minutum Rathbun, Vid. Selskr. Skr. (7) vol.5 p. 327. —

8. (Chiromantes) siamense p. 328 figs.

Speocarcinus ostrearicola n.sp. (nahe verw. mit S. granulimanus Rathb. von

Low. Calif.) Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 545

pl. 48 fig. 2 (Peru: Austernbänke von Matapalo bei Capon).

Thaumastoplax orientalis Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol. 5 p. 346. nebst Abb.

— chuenensis p. 347 nebst Abb.

Typhlocarcinops canaliculata Rathbun, t.c. p. 345 nebst Abb.

Uca princeps (Smith) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766

p- 550 pl. 48 fig. 3 (Peru: Salzsümpfe bei Puerto Grande am Rio Zarumilla

u. Chuliyache; zuvor von Peru nicht bek. Wird Maestro-Sastre genannt.

Verbr. von S. Bartolome Bay, Low. Calif. bis Peru. — insignis M. E. Beschr.

p- 451 pl. 43 fig. 1 (Salzsümpfe bei Chulliyache) Verbr. vom Golf von

Fonseca, Salvador bis Chile. — galapagensis Rathb. Beschr. p. 551 pl. 46

fig. 4 (Salzsümpfe bei Puerto Grande am Rio Zarumilla. ‚„Cangrejitos de

las salinas‘“ genannt, Peru, Galapagos).

Ücides occidentalis Linn. (= U. una M. E. u. Lucas = U. laevis M. Edw. Beschr.)

Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 549 pl. 42 fig. 2.

„Cangrejo“; zahlr. im Schlamme der Mangrove-Sümpfe. Fangmethode,

kurze Angabe. (Zuvor aus Peru nicht bek. Verbr. Low. Calif. bis Peru).

Xenophthalmus pinnotheroides Rathbun, t. c. p. 338 nebst Abb. — obscurus

p-. 338 nebst Abb.

Oxystomata.

Arcania siamensis Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol. 5 p. 314 figs.

Calappa lophos Rathbun, t.c. p. 315.

Oryptocnemus mortenseni Rathbun, t. c. p. 311 nebst Figg.

Ebalia woodmasoni Rathbun, t.c. p. 307 nebst Fig.

Hepatella amica Smith Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766

p. 552 pl. 50 fig. 5 (Peru: Bay of Sechuca, bei Matacaballo, 5 Faden Tiefe.

Aus Peru bisher nicht bek.) Verbr. Panama, Peru.

Hepatus chiliensis M. E. Beschr. Rathbun, t. c. p. 551—552 pl. 37 fig. 1 (nordöst].

der San Lorenzo Insel, 2!/, Faden Tiefe; Peru: Callao; Ecuador, Chile).

Heteronucia mesanensis Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol.5 p. 306 nebst Figg.

Leucosides. Bemerkungen zu verschiedenen Spp. Rathbun, t. c. p. 309 nebst Figg.

Systematik. 123

Leucosilia Jurinei (Saussure) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 552 pl. 45 fig. 1 (Peru: Austernbänke von Matapalo bei Capon.

Zuvor aus Peru nicht bek.) Verbr. Mazatlan, Mexico bis Peru, Galapagos Isl.).

Nasinatalis n.g. familiae incert. Stebbing, Ann. S. African Mus. Cape Town

vol. 6 p. 340. — disjunctipes n. sp. p. 340 nebst Abb. (Cap Natal).

Nucia tuberculosa Rathbun, Vid. Selsk. Skr. Kjöbenhavn (7) vol. 5 p. 307.

Nursia lar Rathbun, t.c. p. 306.

Persephona Bemerk. zu verschiedenen Spp. Rathbun, t.c. p. 308 nebst Abb.

Philyra olivacea Rathbun, t. c. p. 312 nebst Abb.

Pseudophilyra tridentata Rathbun, t. c. p. 313. — melita p. 313. Figg. zu beiden.

Randallia ornata Weymouth, Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 18 nebst

Figg. — bulligera p. 19.

Dromiacea.

Conchocoetes artificiosus Rathbun, Vid. Selsk. Skr. (7) vol. 5 p. 367.

Dromia vulgaris H. M.-Edw. Fundorte. Cunningham, Proc. Zool. Soc. London

1910 p. 122.

Dromidia Sarraburer n.sp. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766

p- 553 pl. 48 fig. 4 (‚„‚Camarones del Mare“. Im Schwamm. Bay of Sechura,

westl. von Matacaballa, 5 Faden Tiefe). — Dr. segnipes n. sp. Weymouth,

Leland Stanford Univ. Publ. vol. 4 p. 15 nebst Abb. (Monterey Bay, Calif.).

Emerita analoga (Stimpson). Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 554 pl.49 fig. 1 (Peru: Sandbank von Ancon, „mui-muis‘“

genannt, zum Ködern, S. Lorenzo Isl.; Mollendo daselbst. ‚„cameronecitos‘

genannt). Verbr. von Oregon bis Chile. — E. emerita (Linn.) Beschr. p. 554

pl. 49 fig. 6 („barquillas“ genannt, werden von den Fischern gekocht u.

gegessen, enthalten aber wenig Fleisch). Fundorte in Peru. Verbr.: Low.

Calif. bis Chile, von Florida bis Brasil.).

Hypoconcha peruviana n.sp. (steht H.digueti Bouv. von La Paz Bay, Mexico

nahe) Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 553—554

pl. 47 fig. 2 (Austernbänke bei Matapalo bei Capon. Unter der Valve von

Chione asperrima Sowerby).

Paromola cuvieri in den schottischen Gewässern. Ritschie, Ann. Scot. Nat. Hist.

1910 p. 12 nebst Figg.

Fossile Formen.

tC'yelothyreus n. g. Remes, Bull. Acad. Sci. Frans. Jos. Prag vol. 2 1895 p. 202.

— Strambergensis n.sp. p. 202 nebst Abb. (Jura, Stramberger Schichten).

TOxythyreus minor n.sp. Remes, t.c. p. 201 nebst Abb. — transitorius n. sp.

p. 201 nebst Abb. (Jura, Stramberger Schichten).

1-Prosopon Katholyckyi n. sp. Remes, t. c. p. 203 nebst Abb. — Frigii n. sp. p. 203

nebst Abb. — globosum n. sp. p. 203 nebst Abb.

Anomura.

Anomura aus der Bucht von Biscaya: Anapagurus laevis (Thompson), Galathea

dispersa Bate u. Munida bamffica (Penn.). Walker, Ann. Nat. Hist. ser. 8

vol.5 p. 158.

124 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Galatheidea.

Galathea strigoss Häutung u. Regeneration. Elmhirst, Zoologist vol. 14 p. 69.

Munida cokeri n. sp. (= Grimotea gregaria Guer.) Beschr. Rathbun, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 559—560 pl. 53 fig. 3 (Peru: Lobos de Afuera,

Camaron del Mar. Soll so zahlreich sei, daß das Wasser der Reede von

Callao blutrot erscheint).

Pachycheles grossimanus (Guerin) (verw. m. Petrolisthes) Beschr. Rathbun, t c.

p- 559 pl. 46 fig. 5 (Peru, Chile).

Petrolisthes armatus (Gibbes) (= Porcellana gundlachii Guer.) Rathbun, t.c.

p- 558 pl. 41 fig. 3 (Peru: Las Vacas bei Capon. „Salamandra‘“ genannt.

Aufenthaltsort. Zuvor von Peru nicht bek. Verbreit. der Art). — spinifrons

M.-E. Beschr. p. 559 pl. 48 fig. 5 (Pescadore Islands. Peru, Chile).

Uroptychus bouvieri Kemp, Journ. Mar. Biol. Assoc. Plymouth vol. 8 p. 414.

Fossile Formen.

f@alathea striata n. sp. Remes, Bull. Acad. Sci. Frans, Jos. vol. 2 1895 p. 200 fig.

Paguridea.

Birgus latro. Lebensweise. Andrews, Proc. Zool. Soc. London 1909 p. 887

pl. LXXXIU.

Clibanarius misanthropus. Sensorielle Assoziationen. Drzewina, Compt. rend.

Soc. Biol. Paris T. 68. 1910 p. 573. — Reaktionen. Drzewina, Arch. zool.

exper. Paris ser. 5 T.5 Notes et Revue p. 43. — Cl. panamensis Stimpson.

Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 68 No. 1766 p. 555556 pl.

47 fig. 4 (Peru: Correa bei Capon „Dıablicas‘“ genannt. Sollen ebenso eßbar

sein wie Orangon. Die Eingeborenen halten die Spitze des Gehäuses, in dem

das Tier sitzt, an Feuer, bis das Tier herauskommt).

Coenobita rugosa. Anpassung. Bugnion, Compt. rend. Soc. Biol. Paris T. 68

p- 799.

Coenobitidae von Aldabra. Borradaile, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 13 p. 408.

Dardanus sinistripes (Stimpson) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 556 pl. 49 fig. 2 (Lower Calif. bis Peru). — imbricatus

p. 556—557 pl. 49 fig. 3 (Peru: Bay von Sechura halbwegs zw. Bayovar u.

Matacaballo, 5—6 Faden Tiefe).

Diogenes exiricatus nom. nov. für Cancer diogenes Herbst nec Linn. Stebbing,

Ann. S. African Mus. Cape Town vol. 6 p. 355.

Eupagurus pubescens Kröyer. Grönland, Stat. 4, 6, 10. Grieg p. 525.

Paguridae und Actinien. Brunelli, Rend. Acad. Lincei Roma ser. 5 T. 19

p- 77, desgl. Faurot, Arch. zool. exper. Paris ser.5 T.5 1910 p. 421—486

(betrifft Eupagurus Prideauxi Heller u. Adamsia palliata Forbes sowie

Pagurus striatus Latreille u. Sagartia parasitica Gosse). — Brutgewohn-

heiten, Larvenstadien, Tegumentdrüsen. Issel, Archivio Zool.

Napoli vol. 4 p. 335 figs. — Stereotropismus. Veress, Mathem. Termt.

Ert. Budapest vol. 28 p. 188 Taf. III—VI.

Paguristes hirtus Dana Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 555 pl. 51 fig. 2 (kleines Stück in Marginella curta Sowerby,

Peru, Chile). — tomentosus M. E. Beschr. p. 455 pl. 50 fig. 1 (Peru: in d.

Schale von Oliva peruviana).

Systematik. 125

Pagurus imperator Miers von St. Helena in Gehäusen von Cassis testiculus, Bursa

coelata, Septa nodifera u. Eugryrina gigantea. Starke Abflachung des Vorder-

teils des Krebses, um in die schmale Öffnung von Cassis zu gelangen. An-

passung; man findet ihn auch in Gehäusen mit weiter Öffnung. Abb. des

Krebses. Textfig. 6. — arrosor Herbst hat kosmopolitische Verbreitung im

Gegensatz zu voriger Sp. Cunningham, Proc. Zool. Soc. London 1910 p. 121

—122.

?Pagurus Benedicti Bouvier Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 557 pl.48 fig. 1 (nordöstl. von San Lorenzo Isl., 2!/, Faden

Tiefe, zuvor aus Peru nicht bek. Verbr. Golf von Californ. bis Peru).

Parapagurus bouvieri n. sp. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 357 nebst Figg.

Hippidea vacant.

Macrura.

Macrura aus der Bucht von Biscaya: C'heraphilus nanus (Kröyer), C'hlorotocus

gracilipes M.-Edw., Pandalus brevirostris Rathke, Nika edulis Risso u.

Solenocera siphonocerus (Phil'ppi). Walker, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5p. 159.

Nephropsidae.

Astacus. Diverse Arten. Wiederbevölkerung der Gewässer mit Krebsen. Drouin

de Bouville, Bul. Soc. Sc.. Nancy T. 10 p. 242. — Krzbsepidemien in Fin-

land. Järvi, Fisk. Tidskr. Finl. Helsingfors T. 19 p.:73 figs. — A. in Finland.

Helle Luonnon Ystava Helsingfors vol. 14 p. 190. — A. fluviatilis Darm-

drüsen. Apäthy u. Farkas, Muz. Füz. Kolozsvär vol. 1 1907 p.28 u. 117

Taf. III. — A. pachypus (?) Fang in der Bucht von Krasnovodsk. Savrov,

V£estn. rybopromysl. St. Petersburg vol. 25 p. 293. — cf. ferner Potamobius.

Cambarus. Abnormitäten und Regeneration. Shull, Biol. Bull. vol. 16 p. 297

nebst Figg.

Homarus. Schonzeit, künstliche Aufzucht. Appellöf, Norsk. Fisket Bergen

vol. 29 p. 368 u. 389. — Künstliche Zucht. Vesthassal, Farsund 1910 43 pp.

— Sporozoom des Hummers. Legeru. Duboseq, Arch. Zool. Paris ser. 5 T.5

p. 187 Fig. — H. gammarus Fischerei u. Kultur. Meek, Northumberland

Sea Fisheries Rep. 1909—1910 p. 21. — H. americanus. Verhalten der Larven.

Hadley, Journ. Comp. Neur. vol. 18 p. 199. — ‚pearl‘ Herrick, Amer.

Nat. vol. 44 p. 294 figs.

Nephropsis malhaensis n. sp. (verw. mit N. atlantica Norm.) Borradaile, Trans.

Linn. Soc. Zool. vol. 13 p. 262 (Indischer Ozean: Höhe von Saya de Malha,

300 Faden Tiefe).

Potamobius fluviatilis. Larvale Drüse. Skorikov, Vestn. rybopromy3l St. Peters-

burg. T.25 1910 p. 417 figs. — cf. auch Astacus.

Thaumastochelis zaleucus. Größtes bekanntes Stück aus Japan. Rathbun, Bull.

Mus. Comp. Zool. Cambridge Mass. vol. 52 p. 314 figs.

Eryonidea.

Fossile Formen.

fEryon antiquus Sheppard, Trans. Sci. F. Nat. Club Hull vol. 4 p. 81.

126 Crustacea (Malacostraca) für 1910,

Loricata.

Palinurus frontalis. Hermaphroditismus. Quijada, Bol. Mus. Nac. Santiago

de Chile vol. 2 p. 127 figs. — vulgaris Verbreitung desselben an den britischen

Küsten. Ritchie, Proc. Roy. Physic. Soc. vol. 18 p. 68. — vulgaris var.

inflatus n. Gruvel, Compt. rend. Acad. Sci. Paris T. 151 p. 1000 (Marokko).

Panulirus ornatus Fabr. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 560 pl. 52 fig. 1 (Peru: Payta. „Langosta‘“ genannt, bisher von

Peru nicht bekannt. — Von Low. Calif. bis Peru. Indo-pacif. Gebiet). —

P.guttatus Latr. Fundorte. Cunningham, Proc. Zool. Soc. London 1910 vol. 1,

I. p. 120.

Puerulus carinatus n.sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. London Zool. vol. 13

p- 261 nebst pl. 16 fig. 5 (Saya de Malha Bank, 125 Faden Tiefe).

Scyllarus latus Latr. im Mittelmeer, bei den Canaren u. bei St. Helena. Cunning-

ham, Proc. Zool. Soc. London, 1910, 1 I. p. 120.

Thalassinidea.

Azius nodulosus Stephensen, Kobenhavn Nath. Medd. 1909 p. 276 figg.

Callianassa uncinata M.-E. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 28

No. 1766 p. 557—558 pl. 45 fig. 3 (Peru; Capon. Zuvor aus Peru nicht bek.,

Chile). — C©. (Trypaea) cristata n.sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. Zool.

London, vol. 13 p. 263 pl. 16 fig. (Indischer Ozean: Salomon Atoll, Chagos

Archipel).

Gebia siehe Upogebia.

Upogebia (Calliadne) cargadensis n. sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. London Zool.

vol. 13 p. 263 Fig. (Indischer Ozean: Cargados, 30 Faden Tiefe). — U. stellata

u. deltura De Morgan, Journ. Mar. Biol. Ass. Plymouth vol. 8 p. 475 nebst

Figg.

Caridea.

Acanthepyra debilis Photophoren. Kemp, Proc. Zool. Soc. London 1910 p. 643

nebst Abb. — A. purpurea Kemp, Dublin Fish Ireland Sci. Invest. 1908,

I. p. 56. — A. (Systellaspis) debilis p. 59 pl. VI figs. 1-15. — pellucida

p- 66.

Aegeon Lacazei Kemp, t. c. p. 156 pl. XXII figs 1—5.

Alpheopsis. de Man beschreibt in Tijdschr. Ned. Dierk. Ver. (Helder) ser. 2

vol. 11: consobrinus n. sp. p. 305. — chalciope n. sp. p. 306. — sibogae n. Sp.

p- 307. — euryone n. sp. p. 308 (alle vier aus dem Malayischen Archipel).

Alpheus. Spp. von d. Try Tortugas, Florida. Coutiere, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 37 No. 1716 p. 485—486: A. formosus Gibbes, A. cristulifrons Rathb.

A. armillatus H. M.-Edw., eine der häufigsten u. weit verbreitetsten Spp.

an der amerikanischen Küste, kommt oft in Gesellschaft von A. heterochaelis

vor. Erkennungsmerkmale beider p. 485. — Candei Guerin von Dry Tortugas;

Die Type Gu£rins stammt von Kuba. Charakteristik p. 486. Details Fig. 1.

— macrocheles Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, Ip. 120 pl. XIX

figs. 3 u. 4. — ruber p. 120 pl. XIX figs. 1,2. — de Man beschreibt in Tijd-

schr. Ned. Dierk. Ver. (Helder) ser. 2 vol. 11: tenuipes n.sp. p. 288. —

Stanleyi var. dearmatus n. p. 287. — dolichodactylus var. leptopus n. p. 289

(alle drei aus dem Malayischen Archipel).

Systematik. 127

Arete amboinensis n.sp. de Man, Archiv f. Naturg. Jhg. 76 Bd. 1 p. 25 nebst

Figg. (Amboina). — iphianassa n.sp. de Man, Tijdschr. Ned. Dierk. Ver.

(Helder) ser. 2 vol. 11 p. 312. — maruteensis var. salibabuensis n. p. 313.

Aretopsisn. g. Alpheid. de Man, t. c., p. 310. — amabilis n. sp. p. 311 (Malayischer

Archipel).

Athanas nitensis Kemp, Fish. Ireland Sci. Invest. Dublin 1908, I p. 122 pl. XIX

fig. 5. — de Man beschreibt in Tijdschr. Ned. Dierk. Ver. (Helder) Ser. 2

vol. 11: jedanensis n.sp. p. 313. — sibogae n.sp. p. 314. — parvus n. sp.

p. 315. — tenuipes n.sp. p. 316 (alle vier aus dem malayischen Archipel).

Atyidae. Mutationen u. geographische Verbreitung. Calman, Quart. Journ.

Microsc. Sci. vol. 55 p. 785 nebst Figg.

Automate anacanthopus n. sp. de Man, Tijdschr. Ned. Dierk. Ver. (Helder) ser. 2

vol. 11 p. 317 (Malayischer Archipel).

Betaeus indicus n.sp. de Man, t. c., p. 309 (Malayischer Archipel).

Bresilia atlantica Kemp, Fish. Ireland Sci. Invest. Dublin 1908, I p. 82 pl. X

figs. 1—7.

Bithynis caementarius gaudichaudii M.-E. Beschr. Rathbun, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38. No. 1766 p. 560—561 pl. 54 fig. 1 (Fundorte in Peru;

auf den Märkten. Verbr. Ecuador bis Peru).

Bythocaris gracilis Kemp, t. c. p. 117 pl. XVIII figs. 1—3.

Caridina nilotica (Roux) Verbreitung u. Varietäten. De Man, Rec. Ind. Mus.

vol. 2 1908 p. 255—283, Taf. 20. — 1. Typische Form: Nil (Kanäle, Süß-

wasserteiche u. -Seen).. — 2. var. longirostris H. M. Edw. (Mactafluß,

Oran). — 3. var. natalensis n. (= Ü. wyckii Weber, nec Hicks)

(Natal. — 4. var.paucipara Weber (Natal. — 5. var. bengalensis

n. (= (©. wyckii Henders. Nobili) (Bengalen). — 6. var. wyckii Hicks.

(Tondana, Minahassa, Celebes, 2000 ‘). — 7. var. minahassa de M.

(Minahassa). — 8. var. brachydactyla n. (= C. wyckii de M.) (Celebes: Saleyer

Flores). — var. gracilepis de M. (Celebes, Saleyer). Zum Schlusse eine Anzahl

Tabellen mit sorgfältigen, detaillierten Ausmessungen der einzelnen Stücke.

— (. togoensis var. breviatus n. Lenz, Wiss. Ergebn. Deutsch. Zentral-Afrika

Exped. 3. Lfg. 3. p. 11 (Beni, Congo). — C. voeltzkowi n.sp. Lenz, Voeltzkow,

Reise Ostafrika p. 569 (Madagaskar).

Caridion Gordoni Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 109 pl. XVI

figs 1—12.

Crangon vulgaris Kemp, t. c., p. 137 pl. XXI figs 1a—d.

Diastylis rathkei (Kröyer) u. scorpioides Lepechin an der Karapforte. Stappers

p- 264. |

Ephyrina Hoskyni Kemp, 1. c. p. 68 pl. VII figs. 1—6. — Benedicti p. 71 pl. VII

fig. 7.

Eualus gairmardi Rassen desselben u. ihre Beschreib. Birula, Mem. Acad. Sci.

St. Petersbg. T. 19, 1 p. 18—37, figs. — belcheri ibid. von Murman, Sibirisches

Eismeer.

Glyphocrangon longirostris Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 170.

Hetairus polaris. Bedornung usw. Birula, M&m. Acad. Sci. St. P&tersbg. T. 19, 1

p. 16 (Sibirisches Eismeer).

Hippolyte pusiola Kröyer. Grönland, Stat. 10. Grieg p. 525. — polaris Sabine

von Stat. 4 u. 6. — gaimardi Milne-Edwards p. 525. — H. spinus Sowerby,

128 Örustacea (Malacostraca) für 1910,

gaimardi Milne-Edwards, turgida Kröyer, polaris (Sabine) u. borealis Kröyer.

Sämtlich an der Karapforte. Stappers p. 264. — H. gracilis (Heller)

im britischen Gebiet. Walker, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 216. Auf den

Zostera-Bänken bei Worthing am 30. September 1904 in 6 Fuß Tiefe. Bisher

noch nicht im britischen Gebiet (exkl. der Channelinseln) bekannt. — varians

Wanderung des Pigments. Gamble, Quart. Journ. Micr. Sci. vol. 55 pt. 3

p- 541. — varians Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 100

pl. XIII fig. 1—7. — prideauxiana p. 101 pl. XII fig. 8—10.

Hoplophorus sp. Photophoren. Kemp, Proc. Zool. Soc. London, 1910 p. 646.

Hymenodora glacialis Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 72

pl. VIII figs. 1—3.

Jousseaumea sibogae n.sp. de Man, Tijdschr. Ned. Deerk. Ver. (Helder) ser. 2

vol. 11 p. 303. — hilarula n. sp. p. 304 (beide aus dem Malayischen Archipel).

Leander. Lebensgewohnheiten u. Anpassungen verschiedener Arten. Doflein,

Festschr. R. Hertwig Vol.3 p.215. — rectirostris Lebensgewohnheiten.

Emeljanenko, Akvarium Moskva vol. 3 p. 512. — squilla aus S.-Afrika.

Stebbing, Ann. S. African Mus. Cape Town vol. 6 p.386. — Kemp be-

handelt in Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I folg. Spp.: serratus

p. 128, 130 pl. XX figs. la—e. — adspersus p. 128 u. 131 pl. XX fig. 23. —e.

— squilla p. 129, 132 pl. XX, 3a—e.

Leptostylis gracilis Stappers u. L. borealis Stappers in der Karapforte. Stappers,

Notes Biologiques usw. Abb. v. gracilis pl. II fig. 2 zwanzigmal vergrößert.

Leontocaris lar Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 113 pl. XVII

figs. 1—17.

Limnocaridina Alberti n.sp. Lenz, Wiss. Ergeb. Deutsch. Zentral-Afrika Exped.

vol. 3 Lief. 3 p. 12 nebst Figg.

Macrobrachium jamaicense (Herbst) Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 561 pl. 51 fig. 1 (Verbreitung, aus Peru bis dato nicht

bekannt gewesen).

Nematocarcinus ensifer var. exilis. Kemp, Dublin Fish. Ireland Sei. Invest. 1908, I

p- 75 pl. IX figs. 1—10.

Ogyris sibogae n.sp. de Man, Tijdschr. Ned. Dierk. Ver. (Helder) ser. 2 vol. 11

p- 318 (Malayischer Archipel).

Palaemon. Farbenwechselreaktionen desselben. Fröhlich, Arch. f. Entwicklungs-

mechanik Bd. 29 p. 432 mit Figg. — Henderson u. Mathai behandeln in Rec.

Ind. Mus. Calcutta vol. 5 folg. Spp.: carcinus p. 281, Figg. — malcomsonii

p- 283, Figg. — idae p. 285, Figg. — sulcatus n. sp. p. 289, Figg. (Süd-Indien).

— rudis p. 291, Figg. — Nobilii n.sp. p.295 (Süd-Indien). — scabriculus

p: 296, Figg. — dolichodactylus p. 300, Figg. — dubius n.sp. p. 300, Figg.

(Süd-Indien). — lamarrei p. 301. — Lenz gibt in d. Wiss. Ergebn. Deutsch.

Zentral-Afrika-Exped. Bd. 3 Lief. 3 p. 6 Bemerk. zu verschiedenen zentral-

afrikanischen Arten und beschreibt als neu: dux n. sp. p. 9, Figg. (Ituri). —

?P. Ritteri Holmes. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 561—562, pl. 3 fig. 1 (Peru: La Palisada bei Tumbes; von Peru

bisher nicht bekannt; Verbr. San Diego, Calif.; Low., Calif., Ecuador, Peru).

Palaemonetes varians Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 129,

132 pl. XX figs 4a—e.

u Systematik. 129

Palaemonidae. Entwicklung. Sollaud, Compt. rend. Acad. Sei. Paris T. 151

p. 1158.

Pandalus bonnieri Caullery. Literatur; Ergänzung zur Beschreibung. Abb. des

proximalen Teiles des Rostrums u. des Basalsegments der Antenne. Calman,

Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 524—526. — leptocerus S. I. Smith. Literatur

Unterschiede von der vorigen Art p. 526—527. Details wie zuvor. Fig. 2.

— P. Montagui Kemp, Dublin Fish. Ireland Sei. Invest. 1908, I p. 86 pl. X

fig. 8. — propinquus p. 89 pl. XI fig. 1—4. — Bonnieri p. 92.

Parapasiphae sulcatifrons Kemp, t.c. p. 47 pl. V figs. 1—21.

Pasipha@ sivado Kemp, t. c. p. 37 pl. IV fig. 12. — tarda p. 39 pl. IV fig. s—11.

— princeps p. 42 pl. IV figs. 1—7.

Periclimenes korni(?) Kemp, Journ. Mar. Biol. Ass. Plymouth vol. 8 p. 411.

Philocheras Kemp beschreibt in Dublin Fish Ireland Sci. Invest. 1908, I: echinu-

latus p. 144 pl. XXI figs. 7a—d. — trispinosus p. 146 pl. XXI figs. 2a u. b.

— sculptus p. 148 pl. XXI figs 6a u. b. — fasciatus p. 151 pl. XXIf'gs3a u. b.

— bispinosus p. 152 pl. XXI figs. 4a u. b. — bispin. var. neglectus p. 153

pl. XXI figs. 5a u. b.

Plesionika martia Kemp, t.c., p. 93 pl. XII figs. 1—4.

Pontoniidae. Entwicklung. Sollaud, Compt. rend. Acad. Sci. Paris T. 151

p- 1158.

Pontophilus spinosus Kemp, Dublin Fish. Ireland Sei. Invest. 1908, I p. 160

pl. XXI figs. 88 —d. — norvegicus p. 162 pl. XXI fig. 9a u. b.

Processa canaliculata Kemp, t. c. p. 123.

Rhynchocinetes typus M.-E. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766

p. 562 pl. 52 fig.2 (Peru: Lobos de Afuera. „Cameron del Mar‘). Verbreitung:

Peru, Chile, Neu-Seeland, Austral., Ind. Ozean.

Sabinea septemcarinata an der Karapforte Stappers p. 264.

Saron. Dimorphismus der Männchen. Coutiere, Compt. rend. Acad. Sci. Paris

T. 150 p. 1263, auch Bull. Soc. philom. Paris ser. 20 T.2 p. 71 figs.

Sclerocrangon Jaqueti Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 140

pl. XXII figs 7—10. — Scl. boreas Phipps in Grönland, Station 4, 6, 10.

Grieg p. 525.

Spirontocaris Kemp behandelt t. c. folgende Arten: spinus p. 103 pl. XIV

fig. 1 nebst var. Lilljeborgi p. 103 pl. XIV figs 2—10. — Cranchi p. 106

pl. XV figs 1—5. — pusiola p. 107 pl. XV figs 6—8. — Sp. turgida. Bedornung

usw. Birula, Mem. Acad. Sci. St. Petersbg. vol. 19,1 p. 15 (Sibirisches

Eismeer).

Synalpheus. de Man bespricht in d. Tijdschr. Ned. Dierk. Ver. ser.2 vol. 11

folgende neue Spp.: hilarulus n.sp. p. 290. — gracilirostris n.sp. p. 291.

— theophane n.sp. p. 292. — antenor n.sp. p. 293. — bituberculatus n. sp.

p- 294. — amabilis n.sp. p. 295. — theano n.sp. p. 296. — septemspinosus

n. sp. p. 297. — quadrispinosus n. sp. p. 298. — quadridens n. sp. p. 299. —

— trispinosus n. Sp. p. 300. — triacanthus n.sp. p. 301. — bispinosus n. SP.

p-. 302 (sämtlich aus dem Malayischen Archipel). — $. Latastei Couti£re.

Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1766 p. 562—563

Textfig. 3a—m Details (Peru: Bay of Sechuca; bish. aus Peru nicht bek.).

— Townsendi subsp. peruvianus n. p. 563—564 pl. 53 fig. 4 (Austernbänke

yon Matapalo bei Capon). — S. minus Say von den Tortugas, Florida.

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 2 9

130 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Coutiere, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 37 No. 1716 p. 486. — Townsendi

subsp. scaphoceris n. Untersch. von d. Type, Details Fig. 2 (Dry Tortugas,

Florida). — Brooksi Coutiere lebt nur im „loggerhead sponge‘“ p. 487. —

Meclendonii n. sp. (ähnelt sehr $. sanctithomae Coutiere u. steht der Form

sehr nahe, die Coutiere als 8. longicarpus approxima beschrieben hat) p. 487

Details Fig. 3 (Dry Tortugas, Florida).

Penaeidea.

Amalopenaeus elegans Kemp, Dublin Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 14

pl. I figs. 1—16. — valens (?) p. 19 fig.

Benthesicymus investigatori Alc. u. Anders. Kiel am 5. Abd.-Sgm. in einen kleinen

Dorn endigend. Borradaile, Trans. Linn. Soc. London vol. 13 p. 258 (auf der

Höhe von Saya de Malha).

Chloridella dubia M.-E. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 565 pl. 54 fig. 3 (Peru: Mündung des River Tumbes. Färbung usw.

Ecuador usw.)

Gennades alcocki n.sp. Kemp, Rec. Ind. Mus. Calcutta vol. 5 p. 174 figs. — praecox

n. sp. p. 176 figs. — sordidus n. sp. p. 177, figs (alle drei aus den Indischen

Meeresgebieten). — scutatus p. 178 nebst figs. — bouviers p. 179. — carinatus

p- 179 figs.

Haliporus malhaensis n.sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. Zool. London vol. 13

p. 258 nebst Figg.

Metapenaeus mogiensis Rathb. Bemerk. zu Alcocks Fig. usw. Borradaile (1)

p- 257 (Malediven, Seychellen u. Cargados, Carajos). — stridulans Alec.

auf den Malediven p. 257. — sp. affinis Iysianassa (de Man) bei der Amir-

ranten-Gruppe.

Penaeus. Größenzunahme. Senoo, Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 91 nebst Abb.

Peneus stylirostris Stimpson. Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 564 pl.53 fig.2 (Peru: La Palisada bei Tumbes, bisher bek.

von Panama). — brevirostris Kingsley p. 564—565 pl. 54 fig. 2 (Peru: Bai

von Sechura, westl. von Matacaballo; für Peru neu, sonst. Verbr.).

Sergestes challengeri. Photophoren. Kemp, Proc. Zool. Soc. London 1910 p. 641

nebst Abb. — $. robustus Kemp, Dublin Fish. Ireland Sei. Invest. 1908, I

p. 25 pl. III figs 1—12. — arcticus p. 30 pl. III fig. 13—19.

Sicyonia lancifer (Oliv.) (South Nilandu usw., Malediven, bis 34 Faden Tiefe), u.

S. carinata (Oliv.) Verbreitung dieser Sp. sehr interessant. West-Atlantic

—Ceylon; Haddumati Atoll, Malediven. Borradaile, Trans. Linn. Soc. Zool.

London vol. 13 p. 254.

Sicyonella n.g. Sicyonin. maldivensis n.sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. Zool.

London vol. 13 p. 259 nebst Figg. 3, 3a auf pl. 16 (Indischer Ozean: Male-

diven, Cargados, Carajos).

Solenocera distincta. Morphologie. Namiye, Dobuts Z. Tokyo vol. 22 p. 150 nebst

Figg. — siphonocera Kemp, Dublin Fish. Ireland Sei. Invest. 1908, I p. 20

pl. II figs. 1—8. — 8. (Parasolenocera) maldiviensis n. sp. Borradaile, Trans.

Linn. Soc. London Zool. vol. 13 p. 258 pl. 16 fig. 1 2 (Funa du Velu, Mila-

dumadulu Atoll, Maldive Islands).

Systematik. 131

Stenopidea.

Richardina spinicincta Kemp, Dublin, Fish. Ireland Sci. Invest. 1908, I p. 166

pl. XXIII figs. 1—10.

Spongicola koehleri Kemp, Journ. Mar. Biol. Assoc. Plymouth vol. 8 p. 408.

Stenopus robustus n. sp. Borradaile, Trans. Linn. Soc. London Zool. vol. 13 p. 260

pl. 16 fig. 4 (Salomon Atoll, Chagos Archipel).

Schizopoda.

(Euphausiacea, Lophogastridea u. Mysidacea).

Schizopoda aus der Bucht von Biscaya: Nyetiphanes couchii (Bell), Lepto-

mysis gracilis G. O. Sars, Syriella norvegica G. O. Sars. Walker, Ann. Nat.

Hist. ser. 8 vol.5 p. 159.

Euphausiacea.

Thysanopodacea nom. nov. für Huphausiacea Boas. Stebbing, Ann. S. African Mus.

vol. 6 p. 395. — System. derselben. Hausen, Result. explor. Siboga Monogr.

vol. 37 p. 78. — Liste und Beschreibung der Arten von Dänemark. Stephensen,

Storkrebs vol. 1 1910. — Euphausidae von Loch Fyne. Scott, Rep.

Fish. Board Glasgow vol. 27 p. 99. — Euphausidae der Bai von Bis-

caya. Walker, Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 159.

Euphausia. Hansen bringt in d. Result. Explor. Siboga Monogr. vol. 38 Bemerk.

u. Abb. zu einer Reihe von Arten p. 89sq.: hemigibba n. sp. p. 100 Abb. —

paragibba n. sp. p. 100 Abb. — similis var. crassirostris n. sp. p. 94 (sämtlich

aus dem Malayischen Archipel). — Euph. brevis Hansen in der subtropischen

Atlantis, Euph. gibba G. O. Sars im wärmeren Atlantischen u. Stillen Ozean.

Beide wurden auch im Mittelmeer erbeutet. Tattersall.

Meganyctiphanes norvegica M. Sars aus der borealen u. arktischen Atlantis,

auch im Mittelmeer gefunden. Tattersall. — M. norvegica. Lebensweise.

Patience, Trans. Nat. Hist. Soc. Buteshire Rothesay 1909—1910 p. 73.

Nematoscelis Bemerk. u. Abb. zu verschiedenen Arten. Hansen, Result. Explor.

Siboga Monogr. vol. 38 p. 106. — atlantica n.sp. p. 107 Abb. (Atlantischer

Ozean). — gracilis n.sp. p. 109 Abb. (Malayischer Archipel).

Nyctiphanes couchi Bell in der nördl. Atlantis; auch im Mittelmeer erbeutet.

Taitersall.

Pseudeuphausia n. g. (Euwphausia nahest.) Hansen, t. c. p. 103. Type: latifrons

p- 103.

Stylocheiron. Bemerk. u. Abb. zu verschiedenen Spp. Hansen, t. c. p. 113. —

insulare n. sp. p. 115. — microphthalma n. sp. p. 117. — affine n. sp. p. 118

(sämtlich aus dem Malayischen Archipel). — St. orientalis n.sp. Nakazawa,

Annot. Zool. Jap. Tokyo vol. 7 p. 258 nebst Figg. (Japan).

Thysanopoda. Bemerk. u. Abb. zu verschiedenen Spp. Hansen, Result. Explor.

Siboga Monogr. vol. 37 p. 81. — orientalis n. sp. p. 85 nebst Figg. (Malayischer

Archipel). — Th. aequalis Hansen aus der subtropischen Atlantis; auch

im Mittelmeer. Tattersall.

M ysidacea.

Systematik derselben. Hansen, R£sult. Explor. Siboga Monogr. var. 37 p. 3sq.

— Mysidacea von Dänemark. Liste der Arten u. Beschreib. Stephensen,

132 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Storkrebs vol. 1 1910. — Mysidacea von Loch Fyne. Scott, Rep.

Fish. Board Glasgow vol. 27 p. 99. — Mysidacea von Clyde. Patience,

Trans. Nat. Hist. Soc. Buteshire, Rothesay 1909—1910 p. 76. — M ysidacea

der Bay von Biscaya siehe oben sub Schizopoda.

Anchialina typica. Hansen, R£sult. Explor. Siboga Monogr. vol. 37 p. 52 nebst

Figg. — grossa n. sp. p. 54 figg (Malayischer Archipel).

Anchialidinae nom. nov. für Gastrosaccidae Norman u. Scott. Stebbing, Ann.

S. African Mus. Cape Town vol. 6 p. 402.

Anisomysis n.g. (Mysis nabest.) Hansen, R£sult. Explor. Siboga Monogr.

37. p. 72. — laticauda n.sp. p. 72 figs. (Indischer Archipel). — ijimazi n. sp.

Nakazawa, Annot. Zool. Japon. Tokyo p. 252 nebst Figg. — mizta n. sp.

p. 253 nebst Figg. (beide aus Japan).

Arachnomysis affinis n.sp. Hansen, Result. Explor. Siboga Morogr. 37 p. 71

nebst Figg. (Malayischer Archipel).

Boreomysis arctica Kr. in der nördl. u. arktischen Atlantis heimisch, auch im

Mittelmeer gefunden. Tattersall. — B. plebeja n. sp. Hansen, R£&sult. Explor.

Siboga Monogr. 37 p. 24, figs. — Sibogae n. sp. p. 25 nebst Abb. — inermis

n.sp. p. 26 nebst Abb.

Ceratomysis egregia n.sp. Hansen, t. c. p. 21 nebst. Figg. (Malayischer Archipel).

Dactylamblyops fervida n.sp. Hansen, t.c., p. 65 nebst Figg. (Malayischer

Archipel).

Erythrops spinifera n.sp. Hansen, t. c. p. 62 nebst Figg. (Malayischer Archipel).

— E. minuta n. sp. p. 63 (Busen von Siam). — EZ. sp. an. der Karapforte. Stappers

p- 265.

Euchaetomera tenuis Hansen, t. c. p. 66 nebst Figg. — oculata n. sp. p. 66 nebst

Figg. (Malayischer Archipel). — Eu. tenuis G. O. Sars in der gemäßigten

und wärmeren Atlantis u. im Stillen Ozean, auch im Mittelmeer erbeutet.

Tattersall.

Euchaetomeropsis merolepis Illig aus dem Indischen Ozean bekannt, wurde auch

im Mittelmeer gefunden. Tattersall.

Eucopia unguiculata Hansen, R£sult. Explor. Siboga Monogr. 37 p. 20 nebst

Figg. — major n.sp. p. 21 nebst Figg. (Malayischer Archipel).

Gastrosaccus. Hansen beschreibt in d. Results Explor. Siboga Monogr. 37. folg.

neue Spp.: indicus n. sp. p. 56 figs. (Malay. Archipel). — parvus n. sp.

p- 58 figs. (Malayischar Archipel). — bengalensis n. sp. (Busen von Bengalen).

— @. vulgaris n.sp. Nakazawa, Annot. Zool. Japon. Tokyo vol. 7 p. 253

figs. — kojimaensis n. sp. p. 254 figs. (beide aus Japan).

Gnathophausia longispina. Hansen, Results Explor. Siboga Monogr. vol. 37

p- 17. — zoea p. 17. — elegans p. 18.

Gymnerythrops n.g. (Euchaetomera nahest.) Hansen, t.c. p. 67. — anomala

n. sp. p. 68 nebst figs. (Malayischer Archipel).

Hemisiriella n. g. (Siriella nahest.) Hansen, t. c. p. 45. — pulchra n. sp. p. 46 figs.

— parva n.$sp. p. 47 figs. (alle beide aus dem Malayischen Archipel).

Lophogaster intermedius n. sp. Hansen, t. c. p. 14 nebst fig. 5 (Malayischer Archipel).

Lycomysis n.g. Mysin. Hansen, t. c. p. 75. — spinicauda n. sp. p- 77 nebst figs.

(Malayischer Archipel).

Metamysis n.g. Nakazawa, Annot. Zool. Japon. Tokyo p. 250. — mitsukurii

n. sp. p. 250 figs. — sagamiensis n. sp. p. 251 figs. (beide Spp. aus Japan).

Systematik. 133

Meterythrops indica n.sp. Hansen, Result. Ezplor, Siboga Monogr: vol. 37 p. 63

figs. (Malayischer Archipel).

M ysidella typica G. O. Sars in den nördlichen Atlantis u. im Mittelmeer gefunden.

Taitersall.

M ysideis grandis Goes an der Karapforte. Stappers p. 265.

Mysidetes farrani H.u.T. in der nördl. Atlantis u. im Mittelmeer. Tattersall.

Mysis oculata Fabr. an der Karapforte. Stappers p. 265.

Neomysis japonica n.sp. Nakazawa, Dobuts. Z. Tokyo vol. 22 p. 245 (Japan).

— N. japonica n.sp. Nakazawa, Annot. Zool. Japon. Tokyo vol. 7 p. 247

figs. — nigra n. sp. p. 248 figs. — spinosa n. sp. p. 249 figs. (sämtlich

aus Japan).

Paralophogaster n.g. LZophogastrid. Hansen, Result. Explor. Siboga Monogr.

vol. 37 p. 15. — glaber n.sp. p. 16 figs. (Malayischer Archipel).

Parerythrops sp. an der Karapforte. Stappers p. 265.

Pseudanchialina n. g. (Gastrosaccus nahest.) Hansen, t. c. p. 59. — Type: pusilla

p- 60 figs. — inermis p. 61 figs.

Pseudomma truncatum Smith an der Karapforte. Stappers p. 265.

Rhopalophthalmus egregius n.sp. Hansen, Result. Explor. Siboga. Monogr.

vol. 37 p. 49 figs. — egregius Nakazawa, Annot. Zool. Jap. Tokyo vol. 7

p- 255 figs.

Siriella. Hansen beschreibt in den Result. Explor. Siboga Monogr. vol. 37 (nebst

Abb.) folgende Spp: a) aus dem Malayischen Archipel: quadrispinosa

n. sp. p. 32. — nodosa n. Sp. p. 33. — vulgaris n. sp. p. 34. — affinis n. sp.

p- 35. — inornata n.sp. p. 36. — media n. sp. p. 38. — aequiremis n. Sp.

p- 40. — anomala n.sp. p. 41. — distinguenda n.sp. p. 42. — conformalis

n.sp. p. 43. — dubia n.sp. p. 44. — b) aus Suez: serrata n.sp. p. 38. —

c) aus dem Chinesischen Meer: plumicauda n. sp. p.38. — Nakazawa

beschreibt in den Annot. Zool. Jap. Tokyo vol. 7 aus Japan: watasei n. sp.

p: 256 figs. — longipes n. sp. p. 257 figs.

Synerythrops n.g. (Erythrops nahest.) Hansen, Result. Explor. Siboga Monogr.

vol. 37 p. 64. — intermedia n.sp. p. 64 figs.

Uromysis n.g. (Mysidetes nahest.) Hansen, t.c. p. 71. — armata n.sp. p. 72

figs. (Malayischer Archipel).

Syncarida.

Anaspides tasmaniae. Gregarinen derselben. Huxley, Quart. Journ. Microsc.

Sci. vol. 55 p. 155 nebst Abb.

Stomatopoda.

Stomatopoda von Japan. Fukuda, Annot. Zool. Jap. vol. 7 p. 139 nebst Abb. —

Stomatopoda von Peru. Rathbun, Proc. U. St. Nat. Mus. vol. 38 p. 565

nebst Abb. — Stomatopoda vom Indopacifischen Gebiete. Balss, Abhdlgn.

Akad. Wiss. München Suppl. Bd. 2 Abhdlg. 2, 11 pp. nebst Fig.

Gonodactylus chiragra. Dimorphismus. Balss, Denkschr. Akad. Wiss. Wien

Bd. 85 p.3 Abb. — Neu: spinosocarinatus n. sp. Fukuda, Annot. Zool.

Japon. vol.7 p. 143 nebst Abb. (Japan).

Zysiosquilla. Neue Spp. aus Neapel beschreibt Giesbrecht in Fauna u. Flora

Neapel Bd. 33 — occulta n. sp. p. 3 Fig. — pleuracuia n. sp. p. 80 (Larven-

134 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

form) Fig. — tridens n. sp. p. 82 (Larvenform) Fig. — nuz n. sp. p. 85 (Larven-

form) Fig. — decemspinosa n.sp. Rathbun, Proc. U. St. Nat. Mus. vol. 38

No. 1766 p. 566 Abb. pl. 53 fig. 3 (Peru: Capon). Kurze biologische Notiz.

Pseudosquilla Lessonii (Guerin). Beschr. Rathbun, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1766 p. 565 pl. 52 fig. 3 (Peru: Callao: Verbr. von Wilmington,

Calif. bis Chile). — Neue Spp. aus Neapel beschreibt Giesbrecht in Fauna

u. Flora Neapel Bd. 33: constricta n. sp. p. 112 (Larvenform) Abb. —

mucronata n. sp. p.-113 (Larvenform) Abb. — caudata n. sp. p. 117 (Larven-

form) Abb. — Aus Japan: Ps. dofleini n.sp. Balss, Abhdlgn. Akad. Wiss.

München. Suppl.- Bd.2 Abhdlg. 2 p. 7 nebst Fig.

en massavensis. Balss, Denkschr. Akad. Wiss. Bd. 85 p. 1 nebst Fig. — raphidea

var. africanan. Balss, Abhdlgn. Akad. Wiss. München. Suppl. Bd. 2 Abhdlg. 2

p- 8 Fig. — Neue Sp. aus dem Golf von Neapel beschreibt Giesbrecht

in Fauna u. Flora Neapel Bd. 33: pallida n. sp. p. 25 nebst Fig. — latior n. sp.

t. cc. p. 111 (Larvenform) nebst Fig.

Cumacea.

Cumacea von Dänemark. Liste u. Beschreib. Stephensen, Storkrebs vol. 1

1910. — Cumacea von Loch Fyne. Scott, Rep. Fish Board Glasgow vol. 27

p- 98. — Cumacea aus der Bucht von Biscaya: Bodotria scorpioides (Mon-

tagu), Iphinoe serrata Norman, Eudorella truncatula Sp.-B., Procampylaspis

armata Bonnier, Campylaspis glabra G.O. Sars u. ©. macrophthalma G.O.Sars,

Pseudocuma longicornis Sp. Bate, Diastyloides biplicata G. O. Sars, Diastylis

bradii Norman u. Leptostylis walkeri. Calman, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5

p- 159.

Diastylis bradyi Norman 1879. Literatur u. Bemerk. dazu. Ist = spinosa Norman

1890. Walker, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 160. — D. capreensis Calman,

Bull. Mus. Hist. nat. Paris 1910 p. 181 nebst Fig.

Die n.g. Dicid. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 415. — calmani n. sp.

»@ p. 416 nebst Figg. (Südafrika).

Dicidae nov. fam. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 415. — Gatt. Dic

n. g.

Heterocuma sarsi Miers. Literatur. Beschreibung des unreifen @ und des reifen {.

Calman, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 6 p. 612—614. Details pl. X figs. 1—13.

— var. granulata Miers. Körnelung des Carapax sehr deutlich. Außerdem

besitzen alle Abdominalsomiten mit Ausnahme des letzten stark markierte

dorsale, dorsolaterale u. laterale Paare von Kielen, sowie ein schwächeres,

ventro-laterales Paar. Dazu kommt noch, daß die Anhänge, besonders des

1. Beinpaares u. die Uropoden etwas verlängert sind. p. 614. — H. Bemerk.

zur Gatt. Calman, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 6 p. 614—616. Ein Vergleich

von H.sarsi mit der typischen Sp. von C'umopsis (©. goodsiri) u. Vauntompsonia

(V. cristata) lehrt, daß 4. mit C©. in folgenden Punkten übereinstimmt: 1. die

Dorsalplatte des letzten Somiten ist nicht zwischen die Basen der Uropoden

vorgezogen. Bei V. ist dies in starkem Maaße der Fall, bei C. ist sie quer

abgestutzt, bei Z. ist sie ausgebuchtet; 2. die kleinere Geißel der Antennulä

besteht aus 2 Segmenten. Bei Y. ist sie unsegmentiert; 3. die Antennengeißel

des $ besteht aus sehr kurzen Segmenten, bei V. sind sie viel länger als breit;

4. die Zahl der Branchialloben ist groß; 5. das Ischium des 2. Beinpaares

Systematik. 135

ist supprimiert (f. V. siehe Calman, Fisheries Ireland, Sci. Invest. 1904, I

(1905) p. 16 pl. I fig. 1); 6. Exopoden am 2. u. 3. Beinpaar beig u. 9. V.hat

vollkommen ausgebildete Exopoden an diesen Gliedmaßen beim $ und am

4. Gliede beim $. Dazu kommen noch einige Charaktere am 1. Beinpaar.

— Andererseits unterscheidet sich 4. sarsi von Cumopsis in der Richtung

der V. nur bezügl. zweier negativer Charaktere: 1. der Pedunculus der An-

tennula beim & ist distalwärts nicht erweitert u. trägt kein Borstenbüschel

u. 2. der Endopod des $-Pleopoden ist auswärts nicht in einen schmalen

Fortsatz ausgezogen. Dazu kommen noch Unterschiede in der Gestalt des

3. Maxillipeden usw. cf. Calman, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 6 p. 615—616.

Iphinoe zimmeri n.sp. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 411 nebst Fig.

— crassipes D. Sp. p- 412 nebst Fig.

Pseudocuma pectinata. Embryologie. Grschebin, Zool. Anz. Bd. 35 p. 808 nebst

Figuren.

Tanaidacea.

Tanaidacea von Loch Fyne. Scott, Rep. Fish Board Glasgow vol. 27 p. 98. —

sp. von Molokai Isl., Hawaiische Inseln. Richardson, Proc. U. States Nat.

Mus. vol. p. 672.

Apseudes sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 85.

Kalliapseudes n.g. Apseudid. Stebbing, t. c. p. 86. — makrothrix n. sp. p. 86

nebst Fig. (Ostafrika).

Leptochelia minuta. Stebbing, Journ. Linn. Soc. London vol. 31 p. 216. —

lifuensis p. 216.

Nototanais antarcticus Hodgson, Isopoda Nat. Antarct. Exped. vol.5 p. 6.

Parapseudes hirsutus n.sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 89 figs.

(Indischer Ozean).

Tanais philetaerus Stebbing, Journ. Linn. Soc. London vol. 31 p. 215.

Isopoda.

Neuere Arbeiten über Land-/sopoda. Carl, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 58lsq. —

Cytologie der Isopoda. Maziarski, Arch. f. Zellforschung Bd. 4 p. 443—601.

— Isopoda aus der Bucht von Biscaya: Cirolana borealis Lillj. u. Astacılla

longicornis (Sowerby). Walker, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 159. — /sopoda

von Loch Fyne. Scott, Rep. Fish Board Glasgow vol. 27 p. 98.

Trichopleon ramulosum Beddard im Magen eines Tiefsee-Cephalopoden. Seott,

Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 52.

Asellota.

Antias charcoti. Hodgson, /sopoda Nat. Antarkt. Exped. vol. 5 p. 63 nebst Fig.

Austrofilius n.g. Hodgson, t. c. p. 5l. — furcatus n. sp. p. 5l nebst Fig. (Antark-

tisches Gebiet).

Austromunna rostrata n.sp. Hodgson, t.c. p. 61 fig. (Antarktisches Gebiet).

Austronanus n. g. (Jaeropsis nahest.) Hodgson, t. c. p. 49. — glacialis n. sp. p. 50

nebst Fig. (Antarktisches Gebiet).

Austrosignum n.g. Munnid. Hodgson, t.c. p. 65. — grande n.sp. p. 66 nebst

Fig. — glaciale n, sp. p. 68 nebst Fig, (beide aus dem antarktischen Gebiete).

136 Crustacea (Malacostraca) für 1910,

Coulmannia n. g. (Jolanthe nahest.) Hodgson, t. c. p. 52. — australis n. sp. p. 53

nebst Fig. — frigida n. sp. p. 54 nebst Fig. (beide aus dem antarktischen Ge-

biete).

Haliacris antarctica Hodgson, t. c. p. 58.

Jaera longicornis gehört zur Gattung Stenetrium. Richardson, Proc. Biol. Soc.

Washington vol. 23 p. 109.

Jaeridae nom. nov. für Janiridae Sars. Stebbing, Journ. Linn. Soc. London

vol. 31 p. 224.

Janira caudata n.sp. Richardson, Bur. Fish. Soc. 736, I p. 33 fig. — crosslandi

n.sp. Stebbing, Journ. Linn. Soc. vol. 31 p. 225 pl. XXIIA (Sudan. Rotes

Meer). — J. crosslandi Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 108 figs.

Notasellus trilobatus n. sp. (N. sarsii u. N. australis nahestehend, Unterschiede

liegen in der Gestalt des Abdomens, im ersten Beinpaare des d, im distalen

Ende des Außenastes des 2. Pleopoden des 3, in den mehr gerundeten antero-

lateralen Winkeln des Kopfes u. den weniger vorspringenden Augen).

Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 37 No. 1720 p. 649—650 8?

(Station 2770 der Albatross-Expedition, auf der Höhe der Ostküste von

Patagonien, 48° 37° südl. Br., 65° 46‘ westl. L., 58 Faden Tiefe, im

grauen, mit schwarzen Flecken durchsetzten Sande).

Notopais n.g. Munnopsid. Hodgson, /sopoda Nat. Antaret. Exped. vol. 5

p- 69. — spicatus n. sp. p. 70 nebst Abb. (Antarkt. Gebiet).

Notoxenus n.g. (Coulmannia nahest.) Hodgson, t.c. p. 55. — spinifer n. sp.

p. 56 rebst Abb. (Antarktisches Gebiet).

Paramunna laevifrons n.sp. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 435 nebst

Abb. (S. Afrika).

Stenetrium mediterraneum ist synonym zu S. longicornis. Richardson, Proc. Biol.

Soc. Washington vol. 23 p. 110.

Phreatoicidea vacant.

Flabellifera.

Aega ommatophylax Stebbing Trans. Linn. Soc. London Zool. vol. 14 p. 101.

— A. antarctica nom, nov. für australis Richardson nec Whitelegge. Hodgson,

Isopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5 p. 17, hierzu Figuren. — Richardson,

beschreibt in Bur. Fish. Doc. Washington 736 folg. neue Spp. von den

Philippinen: ezcisa n.sp. p. 11. — dubia n.sp. p. 12. — truncata n.Sp.

p. 14. — approximata n.sp. p. 15. — aniennata n. sp. p. 15. — acuticauda

n.sp. p- 16.

Alcirona tuberculata n. sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 8 fig.

Anilocra laevis Miers. Literatur. Fundort: Martinique, Peru. Richardson, Proc.

U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1729 p. 85. — acuta n.sp. Richardson,

Proc. U. States Nat. Mus. vol. 39 p. 137 fig. — A. dimidiata n. sp. Richardson,

Bur. Fish. Doc. 736 p. 18. — cavicauda n. sp. p. 18 nebst Fig. (beide von: den

Philippinen).

Apanthura xenocheir n.sp. Stebbing Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 94 nebst

Figg. (Indischer Ozean).

Argathona selosa n.sp. Richardson Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 9. — sul-

Systematik. 137

cata n.sp. p. 10. — similis n. sp. p. 11 (alle 3 von den Philippinen). — reidi

n.sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 41 p. 100 figs. (Zansibar).

Bathynomus affinis n.sp. Richardson, Bur. F.sh. Soc. Washington 736 p. 4 figs.

— propinquus n.sp. p. 4 figs. (beide von cCen Philippinen).

Bothryias n.g. Sphaeromid. Richardson, t. c. p. 30. — Type: fructiger n. sp.

p. 30 fig. (Philippinen).

Calathura sladeni n.sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 91 nebst

Abb. (Indischer Ozean).

Cerceis trispinosa Baker, Trans. Roy. Soc. Adelaide S. Austral. vol. 34 p. 85 figg.

Cilicaea tridens n.sp. Baker, t.c. p. 81 nebst Abb. (Süd-Australien).

Cirolana minuta Stebbing, Trans. Linn. Soc. London vol. 14 p. 98. — parva

Stebbing, Journ. Linn. Soc. vol. 31 p. 217. — Neue Spp.: epimerias n. sp.

Richardson, Bur. Fish. Soc. Washington 736 p. 5 Abb. — excisa n. sp. p. 6

Abb. — curta n. sp. p. 7 Abb. (alle drei von den Philippinen). — meridionalis

n.sp. Hodgson, Nat. Ant. arct. Exped. vol. 5 p. 20 nebst Abb. (Antarktisches

Gebiet).

Cyathura pusilla. Statocysten. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 91.

C'ymodoce pilosa Stebbing, Journ. Linn. Soc. vol. 31 p. 222. — tuberculosa Baker,

Trans. Roy. Soc. vol. 34 p. 76 figs. nebst var. bispinosa n. p. 78 figs. — septem-

dentata n. sp. p. 80 nebst figs. (Australien). — Spp. aus Ostafrika: pubescens

n.sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 104. — zanzibarensis

n.sp. p. 105. — Spp. von den Philippinen: multidens n.sp. Stebbing,

Journ. Linn. Soc. vol. 21 p. 27 nebst Abb. — tripartita n. sp. p. 29 nebst Abb.

Cymodocella tubicauda Hodgson, /sopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5 p. 31.

C'ymothoa oestrum (Linnaeus) Literatur, Verbreitung: Virginien, südwärts durch

den Golf von Mexiko u. das Caribische Meer; Peru. Jugendstadien und

erwachsene Formen. Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 No. 1729

p- 86 Abb.

Enneognathia gigas Hodgson, /sopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5p. 15 Fig. 6a—f.

Eurydice spinigera Patience, Trans. Nat. Hist. Soc. Buthechire, Rothesay 1909/10

p. 79 nebst Abb. — Neue Spp. aus dem Indischen Ozean beschreibt

Stebbing, Trans. Linn. Soc. London vol. 14: truncata n. sp. p. 95 nebst Abb.

— humilis n. sp. p. 96 nebst Abb.

Exosphaeroma reticulatum n.sp. Stebbing, Journ. Linn. Soc. London vol. 31

p. 220 pl. XXIIb (Sudan, Rotes Meer).

Gnathia antarctica Hodgson, Isopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5 p. 11 nebst Abb.

Lanocira gardineri Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 9. — latifrons

n.sp. Stebbing, Journ. Linn. Soc. London vol. 31 p. 217 pl. XXI.

Leptanthura gracilis n.sp. Hodgson, /sopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5 p. 9 fig.

(Antarktisches Gebiet).

Limnoria andrewsi n.sp. Calman, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 184—186 pl. V

figs. 7—14. Unterschiede der Sp. von segnis Chilton u. Z. pfefferi Stebbing.

Merkmale von L. japonica p. 185 (Christmas Island).

Livoneca triangulata n. sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 23. —

philippinensis n.sp. p.24. — frontalis n.sp. p. 24 (alle drei von den

Philippinen).

Lobothorax laevis n.sp. Richardson, t.c. p. 19 nebst Abb. (Philippinen).

138 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Meinertia carinata Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 103. —

M. gaudichaudii (Milne-Edwards). Fundorte: Mollendo, Peru, aus dem Maule

eines großen „Jurel‘, Mazatlan, Mex. bis Chile, Galapagos Islds., Lousiaden-

Archipel, Neu-Guinea. Beschreib. Richardson, Proc. U. States Nat. Mus.

vol. 38 No. 1729 p. 79—81. Erwachs. 2 Fig. 1 u. 2, seitl. Fig. 3, Jugendform

Fig. 2a, erwachs. $, 2b—d. — Neue Spp. von den Philippinen: beschreibt

Richardson in Bur. Fish Doc. Washington 736: guttata n. sp. p. 20. — parva

n. sp. p. 21. — angulata n. sp. p. 22.

Monolisira. Revision der Gatt. Racovitza, Arch. zool. Paris ser. 5 T.4 p. 709.

— Absoloni n. sp. p. 722 figs. (Carniolien).

Monolistrini Hansen 1905 (Sphaeromidae). Revision. Beschreibung. System

derselben nach Racovitza, Zool. exper. gen. V.ser. T. IV 1910 p. 625sgq.

—680. 1. Gatt. Monolistra Gerst. — Subg. Monolistra Gerst. mit M. caeca

Gerst. typica, M. caeca julica (Feruglio) u. M. absoloni n. sp. Racov. — Subg.

Typhlosphaeroma nn. g. Racov.: T. bericum (Fabiani). —2. Gatt. (aecosphae-

roma Dollf. — Subg. Caecosphaeroma Dollf.: ©. virei Dollf. — Subg.: Vireia

Vire (!): V. burgunda Dollf. —. Unterscheidung von paläogenetischen (von

der oberirdischen Stammgruppe ererbten) u. neogenetischen (während ihrer

weiteren Entwickelung erworbenen) Charakteren.

Pleopodias n.g. Cymothoid. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736

p- 25. — elongatus n.sp. p. 26 nebst Abb. (Philippinen).

Pontogelos n.g. Eurydicid. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 97 figs.

— aselkogeros n. sp. p. 97 (Mauritius).

Serolis trilobitoides Hodgson, /sopodia Nat. Antarct. Exped. vol. 5 p. 23 figs.

Sphaeroma peruvianum n.sp. Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1729 p. 81—83. Details Fig. 43—i (in den Austerbänken zu Matapalo

[bei Capon], Peru gesammelt. Sie sollen ökonomisch als Schädlinge der

Auster von Bedeutung sein. Sie bohren die grünen Stämme u. Wurzeln der

Mangrovestämme an, bringen diese zu Fall u. die zahlreichen daranhängenden

Austern gehen zu Grunde.

Syscenus intermedius n.sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. 736 p. 17 figs (Philippine

Islds.).

Typhlosphaeroma subg. n. von Monolistra [Type: M. berica (Fabiani)]. Racovitza,

Arch. zool. Paris ser. 5 T. 4 p. 725.

Zuzara venosa Baker, Trans. Roy. Soc. Adelaide S. Austral. vol. 34 p. 83 figs.

— Z. (Isocladus) excavata n. sp. p. 84 figs (S. Austral.). — Z. (Exosphaeroma)

laevis n.sp. p. 84 figs. (S. Austral.).

Valvifera.

Valvifera von Donegal. Tattersall, Irish. Nat. vol. 19 p. 187.

Antarcturus furcatus Bouvier, Bull. Mus. Hist. Nat. Paris 1910 p. 179. — ant-

arcticus n. sp. Bouvier, Revist. chilena vol. 14 p. 178 figs. (Sandwich Inseln).

— Hodgson behandelt in Z/sopoda Nat. Antarct. Exped. vol. 5 folgende Spp.

ausdem Antarktischen Gebiet: adareanus p. 35 nebst Abb. — franklinii

p. 38 nebst figs. — hiemalis n.sp. p. 41 nebst fig. — meridionalis n. Sp.

p-. 43 fig.

Arcturus parvus n.sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 31 fig.

(Philippinen).

Systematik. 139

Glyptonotus acutus. Hodgson, Isopoda Nat. Antarctic. Exped. vol. 5 p. 45 figs.

Idotea metallica Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. London vol. 44 p. 108.

Mesidoteini subfam. nov. Idotheid. Racovitza u. Sevastos, Arch. zool. expers

Paris ser. 5 T. 6 p. 194.

Fossile Formen.

+ Protidotea n.g. (Mesidotea nahest.) Racovitza u. Sevastos, Arch. zool. exper.

Paris ser. 5 T. 6 p. 194. — Haugi n. sp. p. 176 nebst. Abb. (aus dem Oligozän

von Rumänien).

Epicaridea. ER

ba}

Cancricepon sp. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 12 p. 116.

Cryptione laevis n.sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 35 nebst

Fig. (Philippinen).

Dactylokepon n. g. Bopyrid. Stebbing, Trans. Linn. Soc. Zool. vol. 14 p. 113,

— richardsonae n.sp. p. 113 figs. — cafoptri n.sp. p. 113 (beide aus dem

Indischen Ozean).

Ergyne savignyi n.sp. Stebbing, t. c. p. 115 figs. (Indischer Ozean).

Gigantione rathbunea n.sp. Stebbing, t. c. p. 117 figs. (Indischer Ozean).

Kepon halimi n.sp. Stebbing, t. c. p. 112 figs. (Indischer Ozean).

Merocepon n.g. Bopyrid. (Cancricepon nahest.). Richardson, Bur. Fish. Doch

Washington 736 p. 33. — xzanthi n. sp. p. 34 figs. (Philippinen).

Munidion laterale n. sp. Richardson, t. c. p. 36 figs. (Philippinen).

Orbimorphus n. g. (steht Orbione Bonnier nahe, doch sind die pleuralen Lamellen

oder Epimeren des Thorax u. das Abdomen des Weibchens nicht so stark

entwickelt. Beim & ist ferner das 1. Segm. des Abdomens durch eine knoten-

artige Wölbung des Endstückes angedeutet). Richardson, Proc. U. States

Nat. Mus. vol. 38 No. 1729 p. 83. — constrictus n. sp. p. 83—84 Fig. 5a er-

wachs. 9, Details Fig. b, c, $ Fig. 5d (Matapalo [bei Capon], Peru. Aus der

Kiemenhöhle von Petrolisthes armatus Gibbes, der in Austernbänken er-

beutet war).

Orbione penei. Beschr. des $. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 40

nebst Abb.

Palaegyge Buitendijki n.sp. Horst, Notes Leyden Mus. vol. 32 p. 68—70 5?

nebst Abb. Fig. 1 $ in toto Dorsalansicht; Details Fig. 2—4 (auf Palaemon

carcinus).

Parapenaeon bonnieri n.sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 41

(Java, auf Palaemon carcinus).

Parione n.g. Bopyrid. (Pseudione nahest.) Richardson, t. c. p. 39. — lamellata

n. sp. p. 39 (Philippinen).

Phryxus abdominalis Kr. auf Hippolyte gaimardi M.-Edw. an der Karapforte.

Stappers p. 265.

Pseudione fibriata n.sp. Richardson, t. c. p. 37. — retrorsa n. sp. p. 37. — tincerta

n.sp. p. 38 (alle drei von den Philippinen).

Scyracepon Hawaiiensis n.sp. Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

No. 1770 p. 645647 $9 (erbeutet vom Albatross auf Station 3884, Pailolo

Channel, zw. Mani u. Molokaiinsel, Territorium von Hawaii, 277—284 Faden

Tiefe. Als Parasiten auf Pilumnoplax cooki Rathbun). — Sc. tuberculosa

140 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Tattersall wurde als Parasit von Scyramathia carpenteri Norman bei Tearaght

County Kerry, Irland, erbeutet). 6 Textfig. bringen das 2 u. & sowie Details.

Trapezicepon amicorum Stekbing, Trans. Linn. Soc. Zool. London vol. 14 p. 114

pebst Abb.

Zonophryzus trilobus n.sp. Richardson, Bur. Fish. Doc. Washington 736 p. 41

nebst Figg. (Philippinen). -

Oniscoidea..

Oniscoidea. Atmung. Müller, Mitteil. naturw. Ver. Greifswalä Bd. 41 p. 21.

— Oniscoidea von Scandinavien. Bagnall, Zoologist vol. 14 p. 223. —

Oniscoidea von Fair Isle. Evans, Ann. Scott. Nat. Hist. 1910 p. 251. —

Oniscoidea von Lancashire. Rhodes, Lancashire Nat. vol. 3 p. 279. —

« Oniscoidea von Chester. Jackson, Lancashire Nat. n. ser. vol. 3 p.5l. —

Oniscoidea von Kew. Bagnall, Kew Bull. 1909 p. 244. — Oniscoidea

von Donegal. Foster, Irish. Nat. vol. 19 p. 187. — Oniscoidea von Neu

Seeland. — Revidierte Liste. Chitten, Trans. N. Zeal. Instit. Wellington

vol. 42 p. 286.

Armadillidium gestroi Archangeli, Monitore zool. ital.vol. 21 p. 13 figs. — A. Perracai

Archangeli, Atti Soc. tosc. sci. nat. Pisa. Processi verbali vol. 19 p. 60. —

Verhoeff behandelt in Jahreshefte des Würtemberg. Ver. Jhg. 66 p. 116 sq.

folgende Formen: A. subg. Armadillidium Verh. Analytische Übersicht

über die Formen (sämtlich der Sektio T’ypicae angehörig): 1. nasutum B. L.

(genuinum), 2. vulgare aut., 3. quadriseriatum Verh., 4. naupliense Verh.

(= granulatum Bra. e. p.), maculatum-Gruppe, 5. quinquepustulatum B.-L.,

6. pujetanum n.sp., 7. esterelanum Dollf., 8. maculatum Risso (non Verh.)

(= willi B.-L.) mit aberr. zonatum Dollf., 9. maculatum subsp. cingendum n.,

depressum-Gruppe: 10. depressum Bra., 11. portofinense Verh., 12. simoni

Dollf., 13. sordidum Dollf., 14. alassiense n. sp., Verhoeff. Jahreshefte des

Würtemberg. Ver. Jhg. 66 p. 116—122. — nasutum B. L. (genuinum) im Be-

reich der Küste der Riviera, Bemerk. über die Fundorte. Höchster Punkt

des Castellacio bei Genua p. 122. — 1. nasutum sorrentinum Verh. ist eine

selbständige Form, wie die Aufzucht beweist. Das Eigentümliche dieser Form

ist, dass die Stirnplatte nicht so stark herauswächst wie bei nasutum. Diffe-

rentialunterschiede zwischen nasutum B.-L. u. sorrentinum Verh. p. 122

—123. — 2. vulgare aut. im Bereich der Riviera sehr häufig, besitzt immer

ein abgestutztes Telson. Findet sich fern vom Meere unter Laub, im Strand-

gebiet selbst als auch im vom Salzwasser benetzten Gebiete, p. 123. —

3. quadriseriatum Verh. eng begrenzt; bei Noli. Vergleich mit A. gestri,

der wahrscheinlich einzuziehen ist p. 123—124. — 4. naupliense Verh. (= gra-

nulatum Bra. e.p.) nach Dollfus durch den Menschen verschleppt, p. 125.

— 5. quinquepustulatum B.-L. im trockenen Korkeichenwald bei Le Muy

am Nordabhang des Maurengebirges auf Porphyr. Unterschiede von luridum

u. corcyraeum, p. 125. — 5. quinquepustulatum B.-L. — 6. pujetanum n. sp.

(Verg'eich mit den folg.) p. 125 (unter Kalksteinen im Vartal, oberhalb

Pujet-Theniers, am Fuß einer Bergwand, neben Quercus-Laub). — 7. estere-

lanum Dollf. Charaktertier dss Esterel, am Südabhang des Pie d’Aurel im

Korkeichen- u. Kiefernwald unter Steinen; auch bei Le Muy im Mauren-

gebirge, p. 125. — 8. maculatum (Risso) (non Verh.) = willi B.-L. in dem

Systematik. 141

Gebiet zwischen Bordighera u. dem Esterel ein häufiges Charaktertier.

Lebensweise u. Fundorte, biolog. Bemerk. p. 125—127. aberr. zonatum

Dollf. betrachtet Verh. als solche, nicht als Var. p. 127. — maculatum subsp.

cingendum ein östlicher Abkömmling des echten maculatum, den Verf. nur

aus der Umgebung von Alassio kennt u. sich im Gegensatz zu jenem durch

eine recht beständige weiße Querbänderung auszeichnet. Fundorte: Berg-

abhang bei Alassio, an der Halbinsel des Kap Mela neben einer Strandkies-

bank, p. 127. — 10. depressum Bra. Fundorte: Genus, Südtirol, Florenz,

Albanergebirge; Cassino; südöstl. Frankreich am Kap Martin, Pegli. Nach

Dollfus auch bei Mentore, Cannes u. Toulon, p. 127. — 11. portofinense Verh.

bei Portofino, dann auf einem kahlen Bergrücken oberhalb Genua unter

Kalksteinplatten. Friedliches Beieinanderleben mit Euscorpius (wohl italicus).

Die A. besitzen schützende Wehrdrüsen mit scharf riechenden, grauwässerigen

Tropfen. Die A. genießen den Schutz von Euscorpius, p. 127—128. —

12. simoni Dollf. [= maculatum Verh. von Risso]. Tua gibt die Sp. nur von

Spezia an; sie ist nach Verhoeff in Oberitalien eine der häufigsten Arten.

Fundorte. Telson breit abgerundet, selten schmal gerundet. 4.

carniolense Verh. kommt an der Riviera nicht vor, falls diese

Form subordiniert werden soll, muß sie heißen simoni carniolense,

p- 129. — 13. sordidum Dollf. dem Beschreiber von S. Remo u. Korsika be-

kannt. Verhoeff sammelte sie in S. Remo u. bei Bordighera, Noli, Ferrania,

Fiesole u. Orvieto. Zeichnung der Tiere; mariense u. vallombrosae Verh.

kommen an der Riviera nirgends vor. p. 129. — alassinense n. sp. (schließt

sich eng an simoni u. sordidum an) p. 129 (Alassio; Kap Mele unter Kalk-

steinen). — 1. Vertikale Verbreitung dieser Formen (p. 129—131). Aus den

Betrachtungen ergibt sich, daß die stärker gehöckerten Armadillidium-

Arten im allgemeinen sich durch eine Vorliebe für die Meeresnähe auszeichnen,

während die weite Binnenländer bewohnenden Arten sich durch vollkommen

glatten Rücken auszeichnen. 2. Vertikale Verbreitung. Die 14 Spp. lassen

sich in 2 geographische Gruppen teilen u. zwar: a) Arten, welche weiter ver-

breitet sind u. sich jedenfalls such außerhalb der Riviera finden u. b) solche,

welche ausschließlich aus dem Bereich der Riviera bekannt sind. Weiter

verbreitete Spp. sind: vulgare, nasutum, naupliense, depressum, simoni u.

sordidum, über deren Verbreitung weitere kurze Notizen gebracht werden.

Die endemischen Arten verteilen sich auf die Formationen folgendermaßen:

Urgebirge des Esterel u. Maurengebirge mit quinquepustulatum u. estere-

lanum; mesozoische Kalke des südöstl.- Frankreichs mit maculatum im

Küstengebiet, pujetanum im Vorgebirge; Tertiärkalke der italienischen

Ponente mit aliassense u. cingendum; Triaskalk von Noli mit quadriseriatum.

Die Lokalisierung besonderer Arten durch Separation; ganz bestimmte

Rauheiten, Löcher oder Risse werden zu festen Gewohnheit. Ein auffallender

Charakterzug der endemischen Arten der Riviera Ponente liegt darin, daß

sie mit Ausnahme der alassiense der maculatum-Gruppe angehören und

durch scharf ausgeprägte, höchst auffällige, weiße bis gelbweiße Flecken-

längsreihen oder Querbänder, oder ein Gemisch von beiden ausgezeichnet

sind, während derartige Armadillidien aus dem Bereiche der Levante über-

haupt nicht bekannt sind. Neu sind: pujetanum n.sp. p. 118, alassiense

n.sp. p. 121 u. maculatum subsp. cingendum n. (alle drei von der Riviera).

142 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Bathytropa tuberculata n.sp. Racovitza, Arch. Zool. exper. ser. IV T.9 p. 389

—398 pl. XX, XXI, figs. 234—307 (Ifri Semedane, & Ait-Abd-el-Ali, commune

de Djurjura, prov. d’Alger, Algerie).

Ber.echinus n.g. Eubelin. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru Exped. vol. 21, 2.

p- 4 nebst Abb.

Bethalus marginatus n. sp. Budde-Lund, t.c. p. 12 nebst Abb.

Cozxopodias n. g. (Ethelum r.ahest.) Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 39

p- 93.” — tristani n.sp. p. 93 nebst Figuren (Costa Rica).

Diploexochus bituberculatus n. sp. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru-Exped.

vol. 21, 2 p. 11 nebst Abb. — nanus n. sp. p. 12 nebst Abb. (beide aus dem

Kilimandjaro-Gebiete).

Gelsana n.g. Eubelin. Budde-Lund, t.c. p. 6. — abnormis n.sp. p. 6 nebst

Abb. (Gebiet des Kilimandjaro).

Globamardillo n. g. Armadillid. Richardson, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 37

p- 495 nebst Fig. (Guatemala). — armatus n. sp. p. 495.

Ignamba n.g. Eubelin. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru Exped. vol. 21, 2

p- 5. — brevis n. sp. p. 5 nebst Abb. — microps n. sp. p. 6 nebst Abb. (beide

aus dem Kilimandjaro-Gebiete).

Leucocyphoniscus Verh. (= Pleurocyphoniscus Verh. nach Carl verw. mit Haplo-

thalmus) Carl, Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 584.

Metoponorthus melanurus Scharff, Irish Naturalist vol. 19 p. 92. — M. pruinosus

Brndt Fundorte in Algier. Bemerkung dazu, morphol. Details Textfig. XIII

— XVII. Racovitza, Arch. zool. exp£r. ser. 4 T. 9 p. 336—388. — sp. n. (?)

aff. melanurus Budde-Lund p. 389 (Ifri Semedane, Ait-Abd-el-Ali, commune

du Djurjura, prov. d’Alger; Algerie).

Microcercus n.g. Oniscin. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru Exped. vol. 21, 2.

p. 14. — Hierher als Type Cubaris anomala Gerst., ferner gehören in diese

Gatt. Periscyphus armadilloides B.-L. u. andere.

Nannoniscus Sars sp. im Magen eines Tiefsee-Cephalopoden. Scott, Ann. nat.

Hist. ser. 8 vol. 5 p. 52.

Oniscinae (Oniscus u. Verwandte). Als weitere, neu aufgestellte Charaktere

sind zu betrachten: 1. die feinere Struktur der Truncustergite, 2. die Ver-

teilung der Epimerendrüse, 3. die Gestalt des 1.—3. Beinpaares des d, 4. das

Fehlen oder Vorhandensein von Auszeichnungen am 7. Beinpaar des {,

ö. der Bau der Pleopoden des 3. Verhoeff, Archiv f. Biol. Bd.2 p. 337 sq.:

Tribus 1: Halophilosciini Verh. (Meeresstrandtiere): Gatt. 1. Stenophiloscia

n. g., Gatt. 2. Halophiloscia n. g. — Tribus 2: Oniscini Verh.: Gatt. 3 Oniscus

aut., Gatt. 4 Oroniscus n. g. (Untergatt. Petroniscus u. Oroniscus), Gatt. 5

Philoscia Verh. (!) (Untergatt. Lepidoniscus, Paraphiloscia u. Philoscia)

Gatt. 6 Chaetophiloscia n. g., Gatt. 7 Anaphiloscia Rac.

Oniscinae. Übersicht über die Gattungen (morphologisch) Budde-Lund, t. c. p. 8.

Phalaba n.g. Oniscin. Budde-Lund, t. c. p. 19. — brevis n. sp. p. 19 nebst Abb.

Platyarthrus hoffmannseggi in Yorkshire. Stamforth etc. im Naturalist, Londor,

1910 p. 176, 203, 376. — Lebensweise Crawley, Entom. Rec. and Journ.

of Var. vol. 22 p. 129.

Porcellio. BRacovitza behandelt im Arch. zool. exper. ser. IV T.9 folg. Spp.:

platysoma Brandt aus d. Grotte des plateau des Ruines, commune de Bougie,

prov. de Constantine, Algerie p. 373. — brevipennis Budde-Lund v. d. Grotte

Systematik. 143

de la Madelaine, pres Ziama, comm. de Tababort, prov. d. Constantine,

Alg. p. 373—374. — dilatatus Brandt v. d. Grotte des Gorges de Pierre Lis,

Grotte du Mont de Chac, Frankr. p. 374. — monticola Lereboullet Fundorte

u. Bemerk. etc. p. 375. — laevis Latr. Fundorte etc. p. 376 —377.— vestitus

n. sp. p- 377—385 pl. XVIII, XIX u. XX figs. 258—283 (Rhar-el-Baz, pres

Ziama, comm. de Tababort, prov. de Constantine, Algerie). — P. Untergatt.

Euporcellio Verh. an der Riviera durch 6 Spp. vertreten. Verhoeff, Jahres-

hefte d. Vereins f. vaterl. Naturk. Württemberg Jhg. 66 p. 133 sq.: 1. laevis

Latr., 2. dilatatus Brandt, 3. monticola Lerebouillet, 4. lugubris subsp. orarum

n., 5. spinipennis B.-L., 6. pujetanus n.sp. Die Angabe von P. Tua, bezügl.

P. marginalis B.-L. für Spezia u. Portovenere hält Verhoeff für bedenklich.

Es werden noch einige weitere Arten von Dollfuß aufgeführt. Verh. gibt

einen analytischen Schlüssel über folg. Formen: 1. dispar Verh., 2. cilicius

Verh., 3. messenicus Verh., 4. montanus B.-L., 5. spinipennis E.-L., 6. puje-

tanus n.Sp., 7. lugubris C. Koch (genuinus), 8. lugubris subsp. orarum, lug.

orarum var. alassiensis n., 9. obsoletus B.-L., 10. longicornis Stein, 11. monti-

cola Lereb., 12. achilleionensis Verh. — Bemerkungen zu Porcellio-Arten

an der Riviera,: 1. P. laevis Latr. 2. P. dilatatus Bra. u. monticola Lereb.

Bemerk. zur Verbreitung, Fundorte ete. — 4. lugubris subsp. orarum n.

[= spinipennis Verh. non B.-L.] p. 138—140. — var. orarum n. (tiefschwarz)

p- 140 (Halbinsel Antibes) u. var. alassiensis n. p. 140 (Savona, Letimbrotal

unter Steinen, auf Urschjefer) Unterschiede. Fundorte p. 140—14l. —

spinipennis B.-L. Fundorte u. Bemerk. p. 141. — pujetanus n. sp. (in der

Färbung spinipennis sehr ähnlich) p. 141—142 (im Vartal, oberhalb Pujet-

Theniers unter Quercus-Laub, am Waldrande; in. den Gorges de Cians, unter

Kalksteinen bei Annot, 600 m). — romanorum Verh. aus der Gegend von

Florenz, arcuatus B.-L. in der östlichen Riviera p. 142. — Geographisch

biologischer Überblick (p. 142): P. laevis u. dilatatus sind im Bereich der

Riviera ausgesprochene Küstenformen. P. monticola u. orarum kommen

sowohl im Küstengebiet wie in der Montanzone vor, marioni, provincialis

Dollf., Zamellatus U]j. sind Küstenformen, lamellatus Charaktertier der Strand-

zone, spinipennis u. pujetanus eigentliche Montantiere. — 2. Horizontale

Verbreitung: «) weiter verbreitet sind P. laevis, dilatatus, monticola u. wohl

auch arcuatus. #8) Nur aus dem Rivieragebiet sind bekannt orarum, spini-

pennis, pujetanus, marioni u. provincialis. Die Ponente ist durch endemische

Arten stärker charakterisiert als die Levante. p. 142—143.

Porcellionidae. Morphologie u. Systematik. Verhoeff, Sitzungsber. Ges.

naturf. Freunde 1908 p. 229—281. — Kritische Besprechung von (Carl im

Zool. Zentralbl. Bd. 17 p. 586.

Synarmadillo marmoratus n. sp. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru Exped. vol. 21,

2 p. 15 Abb. — simplex n.sp. p. 86 Abb. (beide aus dem Gebiet des Kili-

mandjaro-Meru).

Syspastus brevicornis Ebn. ist in seinem Vorkommen auf die Ponente beschränkt

u. dieses Vorkommen ist um so wichtiger, als diese Sp. sonst nur von Kor-

sika u. Sardinien bekannt ist. Verhoeff, Jahreshefte des Ver. f. vaterl. Naturk.

in Würtemberg Jhg. 66 p. 143.

Trichoniscidae Fam. Verhoeff, Archiv f. Naturg. Jhg. 74. Bd. 1 Hft. 2 1907

p. 163 sq.: 4 Unterfam. 1. Trichoniscinae. (Gatt. Trichoniscus, Trichonis-

144 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

coides, Androniscus Verh.) — 2. Mesoniscinae (Gatt. Mesoniscus Carl).

— 3. Haplophthalminae (Gatt. Haplophthalmus). — 4. Cyphoniscellinae

(Gatt. Oyphoniscellus, Pleurocyphoniscus, Leucocyphoniscus Verh., Budde-

lundiella). — Racovitza verbessert diese Einteilung, indem er den verwandt-

schaftlichen Beziehungen besser Rechnung trägt. Er scheidet Mesoniscus

Carl aus den Trichoniscidae aus u. vereinigt Verhoeffs 3. u. 4. Subfam. Seine

Unterfam. der Trichoniscinae umfaßt: A. Sectio Haplophthalmi: Gatt. 1

Haphlopthalmus Schöbl. a) Subg. Haplophthalmus Schöbl., b) Subg. Leuco-

cyphoniscus Verh. = Pleurocyphoniscus Verh.; Gatt.2 Buddelundiella

Silv., Gatt. 3? Cyphoniscellus Verh. (incertae sedis C'havesia Dollf.) — B. Sectio

Trichonisci. Gatt. 1 Trichoniscus Brdt. (Subg. Trichoniscus Brdt., Spilo-

niscus Rac., Trichoniscoides Sars, emend. Rac., Phymatoniscus Rac.,

Scotoniscus Rac., Nesiotoniscus Rac., Alpioniscus Rac., Brackenridgia Ben.,

Titanethes Schiödte u. Androniscus Verh. — Gatt. 2. Schiödtia B.-L. (incertae

sedis Oligoniscus Dollf.)

Trichoniscus commensalis n. sp. Chilton, Trans. New Zealand Instit. Wellington

vol. 42 p. 192 (Neu-Seeland, in Ameisennestern).

Tylos exiguus n. sp. Stebbing, Journ. Linn. Soc. London vol. 31 p. 228 pl. XXIII

(Rotes Meer).

Uramba triangulifera n.sp. Budde-Lund, Kilimandjaro-Meru Exped. vol. 21, 2

p. 18 nebst Abb. — marginalis n. sp. p. 19 Abb.

Amphipoda.

Amphipoda von Loch Fyne. Scott, Rep. Fish. Board Glasgow vol. 27 p. 98. —

Amphipoda aus der Bucht von Biscaya: Parathemisto oblivia Kröyer, Podoprion

bolivari Chevreux, Ichnopus spinicornis Boeck, Scopelocheirus hopei (A. Costa)

— Callisoma kröyerii (Bruz.), Tryphosites longipes (Sp. Bate), Orchomenella

nana (Kr.), Ampelisca spinipes Boeck, A. typica Bate, A. tenuwicornis Lillj.,

Peltocoxa brevirostris (T. u. A. Scott), Probolium gregarium G.O. Sars,

Iphimedia obesa Rathke, Halicoides anomalus A.O. Walker, Perioculodes

longimanus (Bate), Westwoodilla caecula (Bate) = Halimedon parvimanus

(Bate u. Westwood), Monoculodes gibbosus Chevreux, Apherusa clevei Sars,

A. bispinosa Bate, Melphidipella macera Norman, Eusirus longipes Boeck,

Cheirocrates sundevallii (Rathke), Maera tenuimana (Bate) = M.batei Norman,

Eurystheus maculatus (Johnst.) u. Phtisica marina Slabber. Walker, Ann.

nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 159—160.

Amphipode gen. u. spec. indeterm. im Magen eines Tiefsee-Cephalopoden. Scott,

Ann. Nat. Hist. ser. 5 vol. 8 p. 52.

Gammaridea.

Gammaridea von Fair Isle. Evans, Scot. Nat. Hist. 1910 p. 251. — Gamma-

ridea von Donegal. Tattersall, Irish Nat. vol. 19 p. 187.

Acanthozone cuspidata Lepechin an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Aegina spinossima Stimpson in der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Alibrotus littoralis Kröyer an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Allorchestes aquilinus (Costa) Bemerk. zur Gatt. Verbreitung etc. Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 240—241 Details pl. XVI fig. 20—25. —

Systematik. 145

A. plumicornis Heller. Morphologisches. Verbreitung, auch zu Böne, littoral

p. 241—242 Färbung.

Amaryllis macrophthalma. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 569.

Amathilla komari Fabr. Grönland, Stat. 6 u. 9. Grieg p. 527. — pinguis Kröyer

von Stat. 10 p. 527.

Amathillopsis spinigera Heller 2 mal vergrößert. Stappers, Notes Biologiques

etc. pl. II Fig. 1. — Am. spinifera Heller. Stappers p. 265 Abt. pt. II fig. 1

2 mal vergrößert.

Ampelisca brevicornis Stebbing. Fundort: Golf von Bougie u. Golfe von Böne,

8-45 m Tiefe. Farb., Verbreit. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910

p- 180. — rubella Costa aus dem Golfe von Böne. Färb. Verbreitung p. 180.

— serraticaudata Stebbing von Böne etc. Verbreit. p. 180—181. — diadema

Costa Vorkommen in d. baie d’Alger. Verbr. p. 1830—181. — typica Sp.

Bate p. 181 pl. IX fig. 1—8. Beschr. d. $ u. & (Alger, für das Mittelmeer-

gebiet neu. Sonstige Verbreitung). — tenuicornis Lilljeborg Beschr. d. 2

u. d. Details pl. IX fig. 9—16 (Golf von Gabes. Golf von Böne). Für das

Mittelmeer neu. Sonstige Verbreitung. — A. anomala. Stebbing, Ann.

S. African Mus. Cape Town vol.6 p. 450. — pusilla. Stebbing, Mem.

Austzral. Mus. vol. 4 p. 576.

Ampbhilochoides serratipes (Norman). an der Nordküste von Tunis sonstige Ver-

breitung. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 192. — longimanus

(Chevreux) ebendaher, sonstige Verbreitung. Unterschiede von den be-

kannten Spp. p. 192—193 (Golf von Gascogne).

Amphilochus neapolitanus (Della Valle). Vorkommen. Färb. Verbr. Chevreux,

t. c. p. 191. — brunneus Della Valle. Färb., Verbreit. p. 192.

Amphito& Vaillanti Lucas. Färbung. Verbreitung. Chevreux, t.c. p. 260—261.

Details pl. XX fig. 14. — A. pollex n.sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad.

New Haven vol. 16 p. 92 fig. (Bermudas).

Andaniotes corpulentus. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 575.

— A. corpulentus (G. M. Thomson) im Magen eines Tiefsee-Cephalopoden.

Seott, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol.5 p. 52.

Anonyz nugax Philipps. Grönland. Stat. 6 u. 10. Grieg p. 526; desgl. an der

Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Aora typica Kröyer von d. baie d’Alger; Golfe de Böne. Verbreitung. Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 242.

Apherusa bispinosa im Golf von Böne. Verbreitung. Chevreux, Mem. Soc. Zoo!.

France 1910 p. 207—208. — mediterranea n.sp. (A. Jurinei [M. Edw.] nahe),

p. 208—210 Textfig. 9 ? von der Seite, Details pl. XIV figs. 1—14 (Cherchel,

La Galite, Golf von Böne).

Aristias neglectus Hansen. Verbreitung. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910

p- 164.

Aroui n.g. Lysian. (Scopelocheirus Sp. Bate nahest.). Chevreux, t.c. p. 169

—170. — setosus n. sp. p. 170—174 Textfig. 3. Tier in toto, Details pl. VI

fig. 14—27 9 Beschr. d. Q u. & (Böne, 65 m Tiefe, auf Spatangus sp.). Färb.

Atylus carinatus Fabr. Grönland, Stat. 6, 10. Grieg p. 527.

Bathyporeia megalops n. sp. (von allen anderen Spp. der Gatt. verschieden, durch

die Größe der Augen, worin sie nur der B. guilliamsoniana gleich kommt).

Archiv für Naturgeschichte

1911. V. 2. 10

146 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 184—186 Textfig. 6 $ in Seiten-

ansicht, Details pl. X fig. 1—11 (Golf von Böne 10 m Tiefe).

Bruzelia australis n.sp. Stebbing, M&m. Austral. Mus. vol. 4 p. 590 figs. (Neu-

Süd-Wales).

Byblis sp. an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Ceradocus orchestiipes (Costa) auf der Höhe von Böne, 83 m Tiefe. Färb. Verbr.

Morphologisches. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 216—217.

Ceradocus parkeri n.sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 16

p- 41 fig. — colei n. sp. p. 39 fig. (beide von den Bermudas).

Cerapopsis longipes Stebbing an der Küste von Algier. u Tunis. Chevreux, Mem.

Soc. Entom. France 1910 p. 263.

Cerapus abditus Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 616 fig.

Cheiriphotis australiae n. sp. Stebbing, t. c. p. 611 figs. (Neu Süd-Wales).

Cheirocratus Sundevalli (Rathke) u. assimilis Lilljeborg. Verbreitung. Cheyraux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 212.

Chelura terebrans Philippi zu Böne ete. in Löchern im Holze zusammen mit

Limnoria stagnorum. Verbreit. Färb. Chevreux, t. c. p. 272. — Ch. insulae

n.sp. Calman, Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol. 5 p. 182—184 eiertragendes 9 u.

reifes d. Unterschiede von terebrans. Details pl. V fig. 1—6 (Christmas

islands).

Colomastix pusilla Grube. Vorkommen, Verbreitung ete. Chevreux, Mem. Soc.

Zool. France 1910 p. 202—203.

Corophium volutator (Pallas) u. C. runcicorne della Valle bei Algier. Verbreit.

Chevreux, t. c. p. 270—271. — annulatum Chevreux von Port Böne p. 271.

— acherusicum Costa. Das 9 steht ©. Bonelli M. Edw. sehr nahe p. 271

(im See von Tunis. Böne 0—20 m Tiefe. — acutum Chevreux auf Spongien

u. Ascidien auf den Quais des Hafens von Böne p. 271.

Cyproidea ornata Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 578.

Dexamine spinosa (Montagu) an der Küste von Tunis u. Algier. Verbreitung.

Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 229. — spiniventris Costa von

Cherchell, Alger, Böne, La Calle. Littoral Färbung u. Verbreitung p. 229.

Dulichia curticauda Boeck in Grönland. Station 10. Grieg p. 527.

Dryopoides Westwoodi Stebbing, M&m. Austral. Mus. Sydney, vol. 4 p. 621 figs.

Elasmopus brasiliensis (Dana) Beschr. d. $ u. eiertragende 9. (Chevreux, Mem.

Soc. Zool. France 1910 p. 222—225 Textfig. 12. 3 von der Seite, Details

pl. XIV fig. 14—20 (Cherchell, Umgegend von Böne, La Calle. Herbillon.

Littoral). Färbung. — pocillimanus (Sp. Bate). Verbreitung u. Morphologie.

p- 225 Details pl. XVI fig. 1 u. 2. — rapax Costa von Cherchell, Cap Tedles,

Kanal von Tunis, Sousse. Verbr. p. 225—226. — E. magnispinatus n. Sp.

Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 54 fig. (Bermuda).

Erichthonius brasiliensis Dana, an der Küste von Tunis u. Algier; sonstige Verbr.

Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 262—263. — difformis Stebbing

von La Calle. Verbreit. p. 263.

Eriopisa elongata Stebbing. Verbreitung. Chevreux, t. c. p. 212.

Eucrangonyx serratus n.sp. (ähnelt Euer. gracilis, doch sind Unterschiede im

Telson, in den Basalgliedern des 3.—5. Pereiopoden, in den Gnathopoden,

u. in der Größe der Eier vorhanden). Embody, Proc. U. States Nat. Mus.

Systematik. 147

vol. 38 No. 1746. p. 299—302. Unterschiede zwischen den Jugendformen

u. den erwachsenen Stadien p. 302—303, Unterschiede zwischen den Jugend-

formen von Euer. gracilis u. Eu. serratus p. 302—304. Maßtabelle zu beiden

Formen p. 305. Beschaffenheit des Fundortes p. 305. Zur Erläuterung

dienen 17 Figg. im Text (Railroad Pond, ca. 1'/, Meilen nördl. von Ashland,

Virginia. Besonders an den am dichtesten mit Sphagnum u. Utricularıa

bewachsenen Stellen in Tiefen von einigen Zoll bis 1'/, Fuß.) In Gemein-

schaft mit zahlreichen E. gracilis u. Hyalella knickerbockeri (Bate).

Eurystheus atlanticus und thomsoni. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4

p- 614. — E. palmatus (Stebbing u. Robertson) Verbreit. Morpholog. Angaben

Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 249—250. Details pl. XVII

fig. 1—5. — maculatus (Johnston): Verbreitung p. 250. — dentatus (Chevreux)

aus dem Golfe von Böne, 12—75 m Tiefe. p. 250. — Eu. lina n. sp. Kunkel,

Trans. Conn. New Haven Acad. vol. 16 p. 51 fig.

Eusiroides Della Vallei Chevreux. Verbreitung. Selten an den Küsten der Pro-

vence u. Algiers. Färb. Detail pl. XIV fig. 15. Chevreux, Mem. Soc. Zool.

France 1910 p. 211. — E. crassi Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4

p. 864. — monoculoides p. 595.

Eusirus cuspidatus Kröyer an der Kara-Pforte. Stappers p. 267. — Eus. longipes

Stenton, Proc. Zool. Soc. London 1909 p. 864. — biscayensis p. 865 fig.

Euthemisto libellula Mandt. Grönland. Station 6 u. 10. Grieg p. 526. Desgl. an

der Kara-Pforte. Stappers p. 265. Abb. pl. I fig. 3 2 mal vergrößert.

Gammarus pulex. Morphologie u. Genese der Spermatozoen. Köster, Zool. Anz.

Bd. 35 p. 490—496. — @. pulex vernimmt Töne. Cole, Proc. Roy. Soc. London

vol. 82 p. 391. — G. sp. Tropismen. Rose, Compt. rend. Acad. Sci. Paris

T. 150 p. 1543. — @. rhipidiophorus Catta ist sicherlich kein Niphargus von

La Galite. Verbreitung. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 226—227

Details pl. XV figs. 21—25 (in einem Brunnen mit brackigem Wasser, zu

La Ciotat, Bouches du Rhöne; Grotte de la Cersuta, territoire de Lagonegro,

Basilicate, Italie merid.). Zeigt viele gemeinsame Charaktere mit @. Guernei

Chevreux. Details pl. XV fig. 21—25. — pungens H. Milne Edwards von

Oued-el-Amor, bei Tabarca; Hamman Berda, bei Guelma. Constantine

in den gorges du Rummel. Verbreitung, auch in den Thermen Italiens.

— marinus Leach von Cherchell, lac de Bizerte, La Calle, Alger, Böne p. 227.

— Simoni Chevreux an der Küste von Algier u. Tunis, pulex (Linne) von

Chevreux nicht in den Departements von Algier u. Tunis gefunden, seine

einzigen afrikanischen Stücke stammen von Tlemcen p. 228. — locusta

(Linne) Vorkommen an der Küste von Tunis u. Algier nebst Bemerk. zur

Verbreitung p. 228—229. Neu: @. breweri n.sp. Kunkel, Trans. Conn.

Acad. New Haven vol. 16 p. 59 fig. (Bermudas). — @. locusta Linne. Grön-

land. Stat. 6 u. 10. Grieg, p. 527; desgl. an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Gitana Sarsi Boeck. Verbreit.; morpholog. Bemerk. Golf von Böne. Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 193.

Gitanogeiton n.g. Amphilochid. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4

p. 578. — sarsi n.sp. p. 579 (Neu-Süd-Wales).

Grubia hirsuta Chevreux in Tunis; Bone, Djerba. Chevreux, M&m. Soc. Zool.

France 1910 p. 261. — Gr. coei n. sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven

vol. 16 p. 97 fig. (Bermudas).

10*

148 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

@uernea coalita Stebbing im Golf von Gabes, Alger, Golf von Böne, 0—15 m

Tiefe. Verbreit. u. Färbung. Chevreux, t. c. p. 230.

Halimedon megalops G.O. Sars an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Halirages fulvocinctus M. Sars in Grönland. Stat. 6, 10. Grieg p. 527.

Harpinia crenulata Boeck. Vorkommen. Verbr. Chevreux, M&m. Soc. Zool.

France 1910 p. 189. Details pl. X fig. 14 u. 15. — pectinata G. O. Sars p. 189

—190 pl. X fig. 16 u. 18. — Della Vallei nom. nov. für H. neglecta Della

Valle p. 190—191 pl. XI fig. 1—8 (Golfe von Bougie). Sonstige Verbreitung.

Harpinioides drepanocheir Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 592.

Hemijassa ocius Sp. Bate (wie Jassa, aber Uropod 3 nicht unter 1 u. 2 vorgestreckt

u. der Außenast ohne Sekundärzähne oder gekrümmte Dornen. Ergänzende

Bemerk. zu Antenne 1 u. Gnathopod 2) Walker, Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol. 6

p. 32—33.

Hippomedon denticulatus (Sp. Bate) Färb., Verbr. Chevreux, M&m. Soc. Zool.

France 1910 p. 169.

Hirondellea brevicaudata n. sp. Chevreux, Bul. Instit. oc&an. Monaco 156

p- 1 figs.

Hoplonyx sp. an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Hiyale carinata Sp. Bate von Kap Tedles, ? dessen obere Antennen die Spitze der

unteren ein wenig überragen. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 233.

— Nüsoni Rathke (= H. Prevosti Stebbing = H. Stebbingi Chevreux.) Über

die Synonymie dieser Spp. Verbreit. Variationen in der Färbung der dd

p- 234—235. — @rimaldii Stebbing, pontica Rathke u. prevosti (= Orchestia

Perieri Lucas = H. Piereri Stebbing) Fundorte an der Küste von Algier

u. Tunis p. 235—236. Färbung der letztgenannten Sp., die lebhafte Sprünge

machen kann p. 236. — H. camptonyz (Heller) p. 236—237 pl. XVI fig. 3—8.

Chevreux hat, wie er zugibt diese Sp. mit Unrecht mit der H. Schmidti

Heller identifiziert. Morphologische Bemerk. Vorkommen, Verbr. u. Fär-

bung p. 236—237. — Schmidti Heller. Morpholog. Bemerk. Vorkommen

auf Cap Tedles, La Calle, La Galite, Cap Rose u. Herbillon. Sonstige Ver-

breitung p. 237—238. — Dollfusi n.sp. (steht H. Schmidti nahe) p. 238

—240 & u. e'ertragendes 9. Textfig. 13. Tier $ von der Seite. Details

pls. XVI figs. 13—19 (Cherchell, Alger, La Calle; Böne, in Algen, Cap Rose.

Littoral). Sonstige Verbreitung u. Färbung.

H yale trifoliadens n. sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 72 fig.

Hyalella knickerbockeri Weckel, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38 p. 623 nebst

Abb.

Hyperia galba Montagu. Grönland, Station 6. Grieg p. 526; desgl. an der Kara-

Pforte. Stappers. p. 265.

Hyperoche kröyeri Bovallius an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Icilius danae Stebbing, M&m. Austral. Mus. Sydney, vol. 4 p. 626 figs. — punctatus

p- 627 figs. — australis p. 628 figs.

Insula n. g. (Orchestia nahest.) Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16

p- 61. — antennulella p. 62 fig.

Iphimedia obesa Rathke. Vorkommen an der Küste von Nord-Tunis. Verbreit.

Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 203—204 Detail pl. XIII fig. 6.

Für die Mittelmeerfauna neue Sp. — I. ambigua Stebbing, Mem. Austral.

Mus. Sydney vol. 4 p. 585. — discreta n. sp. p. 586 figs. (Neu Süd-Wales).

Systematik. 149

Isaea elmhirsti. Patience, Glasgow Natural. vol.2 No. 1 p. 16 pls. I u. II. —

longipalpus n.sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 85 fig.

Lembos philacanthus Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 605. —

L. Viguieri n.sp. (steht ZL. philacanthus Stebbing nahe) Chevrier, Mem.

Soc. Zool. France 1910. p. 243—248. Textfig. 14 Tier ($) von der Seite,

Details pl. XVII fig. 4—20 (Baie d’Alger). Untersch. v. den verwandten

Spp- — Websteri von Cherchell. Littoral. Sonstige Verbreitung. I

Lepidepecreum longicorne Bate et Westwood bei Böne. Färbung. Verbreitung.

Chevreux, t.c. p. 176—177.

Leptocheirus cornuaurei Sowinsky Aufenthaltsorte in Saint Gilles-sur-Vie. Nähere

Angaben hierüber. Beschreibung von 3 u. 2. Chevreux, t. c. p. 252—256 3?

Textfig. 15. Tier von der Seite, Details pl. XVIII fig. 12—17 u. pl. XIX

fig. 14. (Riviere de Grimaud, pres Saint-Tropez, Brackwasser; Saint

Jean-de-Luz, im Flusse Nivelle, 3km von der Mündung, ete.).. — bispinosus

Norman p. 256—258 pl. XIX figs. 5—14. Eiertragendes 2 (Ostküste von

Tunis, auf der Höhe von Böne; Fosse de Cap Breton, pres Bayonne 64

—110 m Tiefe; Port-Vendres). — Della Vallei Stebbing. Synonymie. Vor-

kommen etc. p. 258—259. — guttatus Grube (steht Piilocheirus tricristatus

sehr nahe) p. 259—260. Details pl. XIX figs. 15—22 (Cap Tedles; Ostküste

von Tunis, Golf von Gabes, Golf von Böne, 3—65 m Tiefe). — Z. bisher

zu den Photidae gestellt, gehört wohl besser zu den Aoridae. Walker, Ann.

nat. Hist. ser. 8 vol. 6 p. 33.

Leucothoe incisa Robertson. Beschreib., Vorkommen, Färbung. Chevreux, Mem.

Soc. Zool. France, 1910 p. 194—195 Details pl. XI fig. 13—17. — Richiardii

Lessona im Golf von Böne, littoral Färb. p. 196. — L. commensalis Stebbing,

Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 580.

Lilljeborgia Della Vallei Stebbing Unterschiede zwischen $ u. $. Vorkommen

an der Ostküste von Tunis, Golf von Böne. Färb. Chevreux, Mem. Soc.

Zool. France 1910 p.204. Details pl. XIII fig. 7—11. — Z. aequabilis

Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 588.

Lysianassa longicornis Lucas aus dem Golf de Böne etc. Färbung; Verbreit.

Chevreux, Me&m. Soc. Zool. France 1910 p. 158. Detail pl. VI fig.9. —

ceratina (A. O. Walker). Vergleiche, Vorkommen, Verbreit. p. 158—159

Detail pl. VI fig. 10. — bispinosa (Della Valle) im Golf von Neapel p. 159.

— plumosa Boeck p. 159—162. Beschreib. Details pl. VI fig. 11—20 (9,

Nordküste von Tunis). Beschr. von $ u. 9. Färb. u. Verbreitung.

Maera grossimana (Montagu). Vorkommen. Verbr. Chevreux, M&m. Soc. Zool.

France 1910 p. 217. — inaequipes Costa u. Hirondellei Chevreux an der

Küste von Algier u. Tunis. p. 218. Verbr. — M. bruzelii Stebbing, Ann.

S. African Mus. Cape Town vol. 6 p. 457. — inaequipes Stebbing, Mem.

Austral. Mus. vol. 4 p. 599. — hamigera p. 600.

Maerella n.g. Gammar. [Type M.Gammarus tenuimana (Sp. Bate)]. Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 218—219. — tenuimana (Sp. Bate) Beschr.

des eiertragenden 9 p. 219—222 Textfig. 11, Tier von d. Seite, Details pl. XV

fig. 1—13 (Nordküste von Tunis, 170 m). Sonstige Verbreit.

Megamphopus longicornis n. sp. Chevrier, t. c. p. 251—25293 Details pl. XVIII

fig. 6—11 (Golfe de Böne; Baie d’Alger; Baie du Croisie).

150 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Melita Coroninii (Heller). Vorkommen im Golf von Böne. Morphologische Be-

merk. Chevreux, t. c. p. 212. — palmata Montagu Verbreit. p. 213. —

gladiosa Sp. B. $ mit 3 stark. Dorsalzähnen am Hinterrande jedes Segments

des Metasoms u. Urosoms. Verbr. p. 213. — aculeata n. sp. (möglicherweise

= M. oxyura n. sp. Catta) p. 213—216 Textfig. 10 $ von der Seite u. Details

pl. XIV figs. 16—24 (Nordküste von Tunis, 170 m Tiefe. Ajaccio u. Boni-

facio [Corsica]). Vom Verf. 1901 in der Liste der Spp. von Corsica irriger-

weise mit M. gladiosa bezeichnet. — M. plantanerga n.sp. Kunkel, Trans.

Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 34 fig.

Metaphoxus pectinatus A. O. Walker, Vorkommen, Verbreitung, Färbung nebst

Bemerk. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 187—188. Gnpathopoden

pl. IX fig. 19 u. 20. — Fultoni (Th. Scott.) p. 189. Abbild. d. Gnathopoden

eines jungen Exemplars pl. IX fig. 17 u. 18.

Microdeutopus gryllotalpa Costa von lac de Bizerte. Littoral Verbreitung. Che-

vreux, t. c. p. 242—243. — stationis Della Valle von La Calle; golfe de Gabes,

golfe de Böne, 8—20 m Tiefe. Sowinsky hat M. stationis aus dem Schwarzen

Meere erwähnt, die aber nach Chevreux (mit Norman) ein M. anomalus

ist p. 243. — damnoniensis (Sp. Bate). Vorkommen im golfe de Gabes p. 243.

Microprotopus maculatus Norman. Verbreitung, auch zu Bone, auf einer Boje.

Chevreux, t. c. p. 248—249.

Monoculodes carinatus (Sp. Bate) u. M.griseus Della Valle an der Nordküste

von Tunis. Verbreitung beider. Chevreux, Me&m. Soc. Zool. France 1910

p- 207. — M.gibbosus $ Walker, Ann. Nat. Hist. ser. 8 vol.5 p. 160. —

M.latimanus Goes an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Nannonyx propinguus n.sp. (steht N.@Goesi (Boeck) aus den norwegischen

Meeren nahe). Chevreux, t.c. 1910 p. 155—157. Textfig. 1, Tier in toto

u. pl. VI figs. 1—8 (Stn. 661, Golf de Böne, 25 m Tiefe).

Niphargus kochianus in Westmeath. Nichols, Irish Natur. vol. 19 p. 103.

Nototropis homochir Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 593.

Nototropis Swammerdami (Milne Edwards) Verbreitung. Chevreux, M&m. Soc.

Zool. France 1910 p. 210. — guttatus Costa von rade de La Calle, rade de

Bizerte, golfe von Böne, 8—20 m Tiefe p. 210—211 Färb.

Ochlesidae nov. fam. mit Ochlesis. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4

p- 581.

Ochlesis n. g. Ochlesid. Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 581. — innocens

n.sp. p. 582 figs. (N. S. Wales).

Onesimus edwardsi Kröyer. Grönland. Stat. 6, 10. Grieg p. 526.

Orchestia mediterranea Costa. Verbreitung. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France

1910 p. 231. — gammarellus Pallas an der Küste von Algier u. Tunis p. 231

— 232. — Montagui Audouin, Bottae H. Milne Edw. u. platensis Kröyer.

Verbreitung p. 232—233.

Orchestioidea Fischeri Stebbing in der Umgegend von Alger. Littoral. Sonstige

Verbreitung. (Chevreux, t.c. p. 231.

Orchomene humilis (Costa) = O. Batei (G.O. Sars) Stebbing. Verbreitung.

Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 163.

Panoploea minuta (G. O. Sars) im Golf von Böne, La Calle, Port d’Alger. Vor-

kommen. Färb. Verbr. Chevreux, t.c. 1910 p. 203.

Systematik. 151

Yon

Panoploeopsis n.g. (Panoploea nahest.) Kunkel, Trans. Conn. Acad. ‚vol. 16

p. 23. — porta n.sp. p. 24 fig. (Bermudas).

Paraceradocus n.g. Gammar. Stebbing, Mem. Austral. Mus.. Sydney vol. 4

p. 597. — micramphopus n. sp. p. 597 figs. (Neu-Süd-Wales).

Paradexamine flindersi Stebbing, t. c. p. 603 figs.

Paraoroides n.g. Aorid. Stebbing, t.c. p. 606 figs. — unistilus n. En p- 606

(N. S. Wales).

Paradiceros lynceus M. Sars an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Paraphoxus maculatus Chevreux. Vorkommen, Verbreit. Chevreux, Mem. Soc.

Zool. France 1910 pl. X fig. 132, 1 (Nordküste von Tunis, 170 m, Golf von

Gascogne 180 m).

Parapleustes. Charakt. Sexton, Proc. Zool. Soc. London 1909 p. 851. — gracılis

p. 852 figs.

Parathemisto oblivia Kröyer. Grönland. Stat. 6. Grieg p. 526.; desgl an der

Kara-Pforte. Stappers p. 285.

Paratylus Smithii (Goes) an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Parawaldeckia n.g. Lysianassid. (Type: Nannonyx thomsoni) Stebbing, Mem.

Austral. Mus. vol. 4 p. 571.

Pardalisca cuspidata Kröyer an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Parhyalella n.g. (Hyalella nahest.) Kunkel, Trans. Conn. Acad. vol. 16 p. 74

fig. — batesoni n. sp. p. 74 (Bermuda).

Paroediceros Iynceus M. Sars, Grönland. Station 6, 10. Grieg p. 526.

Pariphinotus n. g. (Iphinotus nahest.) Kunkel, 1. c. p. 19. — tuckeri n. sp. p- 19

fig. (Bermudas).

Parunciola n. g. Corophiid. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 266. —

Seurati n. sp. Textfig. 17 2 von der Seite. Details pl. XX figs. 17—17 eier-

tragende $ (Bai von Algier).

Peltocoxa Marioni Catta. Vorkommen, Verbreit. Vorkommen im Golf von

Gabes u. Böne. Chevreux, t. c. p. 193—194 pl. XI fig. 11 u. 12. Bemeık.

zum sexuellen Dimorphismus.

Pereionotus testudo Stebbing. Beschreib. Vorkommen. Cherchell, Golf von

Böne, Cöte de Kabylie, 0—46 m Tiefe). Färb. Verbr. Chevreux, t. c. p. 201

—202 pl. XIII fig. 1—5.

Perioculodes longimanus (Bate u. Westwood) im Golf von Böne, 8—20 m Tiefe.

Färbung, Verbreitung. Chevreux, t.c. p. 205.

Perrierella audowiniana (Sp. Bate) Färbung, Verbreitung. Cbevreux, t. c. p. 162

—163.

Pherura fucicola Leach an der Küste von Tunis u. Algier. Verbreitung. Chevreux,

p. 226.

Photis dolichommata n. sp. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 609 figs.

(N. S. Wales). — Ph. longicaudata (Bate u. Westwood). Verbreitung.

Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 249.

Pleonectes gammaroides Sp. Bate. Vorkommen im Golf von Gabes u. Böne in

Algen. Chevreux, t.c. p. 261.

Pleustes panopla Kröyer. Grönland. Station 6 u. 10. Grieg p. 526.

Podoceropsis Sophiae Boeck Verbr. Chevreux, t. c. p. 250.

Podocerus (Jassa) dentex Czerniavski. System. Stellung u. Bemerk. zur Be-

schreibung. Literatur. Walker, Ann. nat. Hist. ser. 8 vol. 6 p. 33.

152 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Podocerus chelonophilus (Chevreux et de Guerne) an der Küste von Algier auf

Thalassochelys caretta. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 272. —

hystrix n.sp. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney vol. 4 p. 622 figs. —

P. variegatus Leach von Cherchell u. Böne [Tunis u. Algier). Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 272.

Pontocrates norvegicus Boeck. Verbreitung etc. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France

1910 p. 205.—206 Details pl. XIII fig. 12—18.

Pontogeneia verilli n.sp. Kunkel, Trans. Conn. New Haven, vol. 16 p.29 fig.

(Bermudas).

Pseudalibrotus littoralis Kröyer. Grönland. Stat. 6, 10. Grieg p. 526.

Pseudoniphargus africanus (Chevreux) bei Böne, in einem Brunnen. Kef-Djemel,

bei Medjez-Sfä, Constantine, 600 m Höhe, in einer unterirdischen Quelle.

Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 211.

Protomedeia fasciata Kröyer in Grönland, Stat. 6, 10. Grieg p. 527.

Pseudotiron Bouvieri Chevreux an der Nordküste von Tunis, 170 m Tiefe. Chevreux,

t. c. p. 207.

Rhachotropis rostrata Stebbing, Sexton, Proc. Zool. Soc. London 1909 p. 869 figs.

— helleri n. sp. p. 869 figs. — Rh. aculeata Lepechin in Grönland. Stat. 6

u. 10. Grieg p. 527; desgl. an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Scopelocheirus Hopei Nordküste von Tunis, golfe de Böne. Verbreitung. Che-

vreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 169.

Siphonoecetis australis n.sp. Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 619 figs.

(N. S. Wales). — 8. Della Vallei Stebbing in d. Bai von Algier u. im Golf

von Böne. Färb. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 270.

Socarnis vahli Kröyer, Grönland, Station 4. Grieg p. 526.

Socarnopsis n.g. Lysian. (steht zwischen /chnopus u. Socarnes. Unterschiede

von beiden). Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 164. — crenulata

n. sp. p. 165—169 Beschr. v. & u. 9 Textfig. 2 Tier in toto (Cap Tedles, Nord-

küste von Tunis. Djidjelli. Cöte de Kabylie). Färbung. Verbreitung.

Stegocephaloides christianiensis (Boeck) Beschr. des 9. Chritien, t. c. p. 177—179

Textfig. 5, Tier in toto, Details pl. VIII fig. 15—28 (Nordküste von Tunis,

170 m Tiefe). Verbr.

Stegocephalus inflatus Kröyer an der Kara-Pforte. Stappers p. 265.

Stenothoe assimilis Chevreux Beschr. Walker, Proc. U. States Nat. Mus. vol. 38

p. 621—622 Abb. des $ (zahlreich in Hydroidkolonien am Boden der

„lanchas‘‘ die zum Verschiffen des Guano dienen). — St. monoculoides.

Stebbing. Vorkommen bei Kap Tedles, im Golf von Böne; la Galite, 0—12 m

Tiefe. Chevreux, M&m. Soc. Zool. France 1910 p. 196—197. — spinimana

p- 197-—-199 Textfig. 7 Tier in toto, Details pl. XII fig. 1—12 (Cherchell,

Böne, La Galite, littora). Südküste Frankreichs: Port-Vendres, Antibes,

Vi]lefranche). — dentimana n.sp. p. 199—200 Textfig. 8, Details pl. XII

fig. 13—25 (Nordküste von Tunis, 170 m Tiefe). — St. validus Dana. Hat

Dana beim Vergleich in der Beschreibung des 3. Pereiopodengliedes einen

Fehler begangen? Irrtümer anderer Systematiker wie Spence Bate, Della

Valle u. Walker bei der Beschreibung dieser oder verwandter Spp. Walker,

Ann. Nat, Hist ser. 8 vol. 6 p. 31—32.

n %

Systematik. 153

Sunamphitoe pelagica H. Milne Edw. Verbreitung. Chevreux, M&m. Soc. Zool.

France 1910 p. 262.

Sympleustes latıpes Sexton, Proc. Zool. Soc. London 1909 p. 856. — grandimanus

n. sp. p-. 857 pl. LXXX fig. 8—32.

Synchelidium haplocheles Grube. Verbreitung. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France

1910 p. 206.

Syrrhoe crenulata Goes, Grönland, Stat. 10. Grieg p. 527. — Goes fand die Art

in der Bucht v. Treurenberg.

Talitrus saltator (Montagu) an der Küste von Algier u. Tunis. Chevreux, Mem.

Soc. Zool. France 1910 p. 230—231.

Talorchestia Deshayesei (Audouin) an der Küste von Algier u. Tunis. Färbung

u. sonstige Verbreitung. (Chevreux, t.c. p. 233. — brito Stebbing p. 233.

Tmetonyx exiguus (Chevreux) von Cap Tedles. Böne. 5—10 m Tiefe. Verbreit.

Färb. Chevreux, t. c. p. 176.

Tritaeta gibbosa (Sp. Bate) im Golf von Gabes; Insel Djerba, 0—10 m Tiefe.

Chevreux, t.c. p. 230.

Tryphosa camelus n.sp. Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 574 figs. (Neu-

Süd-Wales). — Tr. minima n.sp. (Tr. insignis Bonnier nahest.) Chevreux,

Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 174—176 Textfig. 4 Pin toto, Details pl. VIII

fig. 1—14. (Saint-Eugene, bei Algier).

Unciolella n. g. Corophiid. Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 263. —

lunata n.sp. p. 264—266 Textfig. 16 Tier von d. Seite, Details pl. XX

figs. 5—16 (Umgegend von Böne, 65m Tiefe).

Urotho& pulchella (Costa) Vorkommen, Verbreit. Chevreux, t. c. p. 187.

Vijaya ist ein Synonym von Amaryllis. Stebbing, Mem. Austral. Mus. Sydney

p- 574.

Waldeckia chevreuxi n.sp. Stebbing, t. c. p. 572 figs.

Westwoodilla rectirostris (Della Valle). Ergänzung zur Beschreib. Vorkommen,

Färbung. (Chevreux, Mem. Soc. Zool. France 1910 p. 206—207. Details

pl. XIII figs. 19—22.

Hyperiidea.

Phronimidea nom. nov. für Hyperiidea. Stebbing, Ann. S. Afric. Mus. vol. 6

p- 473.

Caprellidea.

Cyamidea nom. nov. für Caprellidea. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6

p. 464 (Cape Town). i

Caprella septentrionalis Kröyer in Grönland. Station 6, 9, 10. Grieg p. 527. —

bermudia n.sp. Kunkel, Trans. Conn. Acad. New Haven vol. 16 p. 188 fig.

— (. Bemerkungen zu verschiedenen Arten. Stebbing, Ann. S. African Mus.

vol. 6 p. 465. — triodous n. sp. p. 467 figs. (S. Africa).

Dodecas decacentrum n. sp. Stebbing, Mem. Austr. Mus. vol. 4 p. 629 figs.

(N.-S.-Wales).

Metaprotella makrodactylos n. sp. Stebbing, Ann. S. African Mus. vol. 6 p. 469 figs.

Orthoprotella australis Stebbing, Mem. Austral. Mus. vol. 4 p. 632.

154 Crustacea (Malacostraca) für 1910.

Phyllocarida.

Fossile Formen.

tCeratiocaris pinguis n.sp. Chapman, Proc. Roy. Soc. Viet. Melbourne n. ser.

vol. 22 p. 107 figs. (aus dem Silur von Melbourne).

fChaenocaris tenuistriata Janiscvkij, Tomsk Izv. technol. Inst. vol. 17, 1

p- 169 figs.

tXiphidiocaris falcata n.sp. Chapman, Proc. Roy. Soc. Vict. Melbourne n. ser.

vol. 22 p. 110 figs. (aus dem Silur von Melbourne).

II. Entomostraca.

Von

Dr. Walter Stendell.

Publikationen und Referate.

(F = siehe unter Faunistik; 8 = siehe unter Systematik. — Die mit * be-

zeichneten Arbeıten waren dem Ref. nicht zugänglich, die mit f bezeichneten

behandeln fossile Entomostraken. — Clad. = Cladocera, Cop. = Copepoda,

Cirr. = Cirripedia, Phyll. = Phyllopoda, Ostr. = Ostracoda.)

*Abonyi, Sandor (1). A levelesläbu räkok &letmödja es a Limnadia

lenticularis magyarorszägi elöforduläsa. [Die Lebensweise der Phyllo-

poden und das Vorkommen von Limnadia lenticularis in Ungarn.]

Allatt. Közlem. Budapest vol.9 p. 88—95, 105.

*— (2). Az Apusok €s Branchipusok phototropismusäröl. [Über

Phototropismus bei Apus und Branchipus.] Ibid. p. 107—124, 153.

*— (3). A Branchipus-petek kikelöse sös vizzel valö kezelese.

[Die Entwicklung der Branchipus-Eier bei Behandlung mit Salz-

wasser.] Ibid. p. 163—168, 208.

Allen, E. J. u. Nelson, E. W. On the Artificial Culture of Marine

Plankton Organisms. Plymouth, Journ. Marine biol. Assoc. n.s.,

v.8 nr.5 p. 421—474. — Verf. geben zuerst eine Übersicht der Me-

thoden und besprechen die einzelnen Nährlösungen. Es war möglich,

Calanus finmarchicus zur Vermehrung zu bringen. Ebenso ließen sich

Sacculina-Larven vom Cyprisstadium an Carcinus maenas züchten.

Annandale, N. (1). Description of a new species of Scalpellum

from the Andaman Sea. Calcutta, Rec. Indian Mus. vol.5 p. 115

—116. — Die neue Species Scalpellum lambda gehört zu dem subg.

Scalpellum, das durch die weiter vorgeschrittene Degeneration der &

ausgezeichnet ist. Es steht in der Nähe von $. curiosum Hoek. 8. F.

Publikationen und Referate. 155

— (2). The Indian Barnacles of the subgenus Smilium, with

remarks on the classification of the genus Scalpellum. Ibid. p. 145

—155. 2 Textfig. — Die subg. Scalpellum und Smihium unterscheiden

sich hauptsächlich durch die Bildung der Männchen, die bei ersterem

grössere degenerative Umbildung als bei letzteren erfahren haben

(s. Annandale 1). Smilium ist also primitiver. Bei sämtlichen spec.

dieses subg. sind die großen Individuen durchaus vollständige Herma-

phroditen, während die kleinen an ihnen fixierten $ junge Herma-

phroditen darstellen. Bei subg. Scalpellum sind die meisten aus-

schließlich Weibchen. Verf. geht dann kurz auf Variationen bei den

Hermaphroditen und Q ein. Als typische spec. für Smilium nennt

Annandale S.peronii Gray für Scalpellum $. vulgare Leach. Von

subg. Smilium beschreibt Verf. als indische spec. Scalpellum (Smi-

lium) sguamuliferum, $. ($.) bengalense, 8. ($.) acutum. F.

— (3). Two Barnacles of the genus Dichelaspis new to Indian

Seas. Ibid. p. 213—214. — Zu den bekannten 10 spec. nennt Verf.

für den Golf v. Bengalen und die Arab. See Dichelaspis nierstraszi

und D.orthogonia. F.

— (4). Report on the Cirripedia Pedunculata collected by

Dr. Th. Mortensen in the Gulf of Siam. Kjöbenhavn, Nath. Meddel.,

1910, p. 81—86. — Verf. nennt Arten von Dichelaspis, Ibla cumingi

und Scalpellum (Smilium) kampeni. F.

Apstein, €. (1). Hat ein Organismus in der Tiefe gelebt, in der

er gefischt ist. Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr. v. 3, p. 17

—33, 1 Textf., 6 Tabellen. — Verf. erklärt den Umstand, dass Ober-

flächenbewohner im Tiefenplankton vorgefunden werden, unge-

zwungen dadurch, daß es sich um niedergesunkene abgestorbene

Tiere handle. Er untersucht daher, wie weit die Oberfläche zu rechnen

ist, wie schnell die Organismenleichen sinken, wie lange sie einen

frischen Eindruck machen. Danach kann Evadne Nordmannı 200 m,

Podon 260 in, auch tiefer, sinken, wobei sie noch total frisch aussehen,

könnten also tatsächlich für in der Tiefe lebende Exemplare gehalten

werden.

— (2). Das Planeton des Gregory-Sees auf Ceylon. Sammel-

ausbeute von A. Borgert, 1904—1905. 10. Abhandlung. Jena, Zool.

Jahrb. Syst. v.29 p. 661—680. 6 Textf. — Der See ist 0,55 qkm groß

und wird von einem Flusse durchströmt; an seinem Ufer befinden

sich Sümpfe. Verf. gibt Curven für Temperatur und Regenmenge

der Gegend. Die Temperatur ist kühl und wenig schwankend; Regen-

zeiten sind normalerweise nur einmal im Jahr, während des Fang-

jahres herrschten zwei Hauptzeiten. In jedem Monat wurde ein

Fang vorgenommen. Das Volumen der Fänge wurde hauptsächlich

bestimmt durch die Diatomee Melosira und Diaptomus. Dieser war

im Mai sehr häufig und nahm dann während Juni und Juli an Zahl

bedeutend ab. Vorherrschend war D. annae welcher dem von Brehm

bei Kandy gefundenen gleicht. Verf. gibt dann Tabellen für die Zahl

der Eier und Spermatophoren während der Monate. Neben Dia-

ptomus trat C'yclops leuckarti völlig zurück. Daphniden sind eben-

156 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

falls ohne Bedeutung, Ceriodaphnia rigaudi war am häufigsten. Ostr.

wurden garnicht gefunden. Zum Schluß werden Tabellen über

Quantität angefügt. F.

— (3). Die Cladoceren. Nordisches Plankton, vol. 7 p. 17—20,

9 Textf. — Es werden die Männchen von Evadne nordmanni, E. spini-

fera, Podon leuckarti, P. intermedius und P. polyphemoides beschrieben.

— (4). Cladocera. Conseil permanent international pour l’ex-

ploration de la mer. Extrait du Bulletin trimestriel 1902—1908 resume

des observations sur le Plankton. Deuxieme partie. p. 39-51. —

Es wird betrachtet die Verteilung der Clad. in Ost- und Nordsee, be-

sonders auch im Skagerak, Kattegat, Finn- u. Bottn. Busen, Kanal,

in der Irischen See. Die wichtigeren Formen sind Bosmina maritima,

Evadne spinifera, E.nordmanni,- ‚Podon intermedius, P.leuckarti,

P. polyphemoides. P. nordmanni ist häufigste Daphnide des Gebietes,

im Südwesten der Nordsee jedoch sehr spärlich auftretend. F.

— (5). Ostracoden. ibid. p. 163—169. 1 Taf. — Verf. stellt

die Verbreitungsverhältnisse der Östr. in denselben Gebieten wie die

der Clad. (s. o.), auch das Auftreten bezügl. der Zeit und des Salz-

gehaltes, dar. Die aufgeführten Formen sind Conchoecia daphnoides,

©. elegans, CO. obtusata, CO. borealis und Philomedes brenda. F.

Bergold, Alfred. Beiträge zur Kenntnis des inneren Baues der

Süßwasserostracoden. Jena, Zool. Jahrb. Anat. v.30, p. 1—42,

3 Taf., 3 Textf. — Die Untersuchungen erstreckten sich auf Oypris

reptans, C. fuscata, Cyprois monacha und Ewuricypris pubera. Die

Beschreibungen von Zenker und Claus werden ergänzt. Der Darm-

kanal setzt sich zusammen aus dem von Oberlippe und Hypostom

umschlossenen Atrium, dem Oesophagus, dem Mitteldarm und dem

Enddarm. Der Oesophagus springt mit einem als Reusenapparat

funktionierenden Wulst in den Mitteldarm vor. Dieser ist durch eine

Einschnürung in zwei Abteilungen gesondert und hat 2 Ausstülpungen,

die Hepatopankrealschläuche. Sein Epithel ist sekretorisch und

resorbierend tätig, homomorph und mit einem Stäbchensaum ver-

sehen, der auch die Zellen der Hepatopankrealschläuche überkleidet.

Die Zellen der als Speichelorgan tätigen Lippendrüse bilden ein Syn-

cytium. Von Excretionsorganen unterscheidet Verf. 3 segmental

angeordnete Drüsen: 1. Die Drüse der 1. Antenne, 2. die Schalen-

drüse, 3. die Maxillardrüse. Die Funktion der Maxillarfußdrüse ist

noch im unklaren, doch scheint dieselbe nicht exkretorisch tätig zu

sein. Der komplizierte weibl. Copulationsapparat zerfällt in 3 Teile:

die Vagina, den Spiralkanal mit dem Reseptaculum seminis u. die

in die Vagina mündende Copulations- oder Kittdrüse, die eingehend

beschrieben werden.

Birge, E. A. Notes on Cladocera. IV. Madison, Trans. Wisconsin

Acad. Sciences. vol. 16, part II, nr. 3, p. 1017—1066, 5 Taf. — Verf.

nennt für die Vereinigten Staaten als neu 20 Arten. Ausführlich be-

schrieben wird Gattung Pseudosida, deren Arten in die bidentata-

Formen und die tridentata-Formen getrennt werden. Die letzteren

Publikationen und Referate. 157

werden vielleicht eine neue Gattung bilden. Alonella teilt B. in die

Subgenera: Alonella, Paralonella und Pleuroxalonella. Verf. nennt

als neu: 1 Gattung und 4 Arten. F.S.

Bohn, Georges. Sur les reactions compar&es de deux parasites

des poissons vis a vis de la lumiere. Paris, Compt. rend. Ass. frang.

avanc. sci., vol. 38, p. 726—129.

Bouvier, E.L. (1). Un Argulide nouveau de l’Argentine. Paris,

Bull. Mus. nation. 1910 nr.2 p. 92—95. 3 Textfig. — Genaue Be-

schreibung von Argulus Ichesi n.sp. Das Tier stammt aus Buenos-

Aires, der Wirt ist nicht bekannt. 8, F.

— (2). Quelques Arthropodes recueillis aux iles Kerguelen.

Paris, Bull. Mus. nation., 1910 nr. 2. p. 95—96. — Auf Balaenopteren

wurden Pennella balaenopterae [s. Quidor], ferner Coronula reginae

und Conchoderma auritum gefunden. F.

— (3). Note sur les Arthropodes marins recueillis par M. Raillier

du Baty aux iles Kerguelen. Paris, Bull. Mus. 1910, p. 178—179.

*_ (4). Quelques Crustaces de l’Amerique et des Sandwich du

Sud. Valparaiso, Rev. chilena, vol. 14. p. 178—182.

— (5). Crustaces et Pycnogonides. Mission en Mauritanie occi-

dentale. III. Partie Zoologique. Bordeaux, Actes Soc. Linn., vol. 64,

p. 221—226, 1 Tab. — Verf. nennt von Entomostraken nur Cirr. und

zwar Balanus tintinnabulum, B.calceolus, B. perforatus, Chthamalus

stellatus, Pollicipes cornucopia. F.

Brady, 6. S. (1). Die marinen Copepoden der deutschen Süd-

polar-Expedition 1901—1903. I. Über die Copepoden der Stämme

Harpacticoida, Cyclopoida, Notodelphyoida und Caligoida. Berlin,

Deutsche Südpolar-Exped. 1901—03, vol. 11, Zool. Heft 5, p. 497

—593, 12 Taf., 69 Textfig. — Eine deutsche Übersetzung. Es werden

94 Formen aufgeführt. Diese werden getrennt als Flachwasser- und

Uferarten und als Bewohner der eigentlichen Eisregion und der hohen

See. Unter den zweiten finden sich besonders neue Formen, darunter

sogar 9 neue Genera. Die pelagischen Arten sind zum Teil kosmo-

politisch. Im Ganzen werden 73 n.sp. genannt. F.S.

— (2). A revision of the British species of Ostracod Crustacea

belonging to the subfamilies Candoninae and Herpetocypridinae.

London, Proceed. zoolog. Soc., 1910, p. 194—220, 12 Taf. — Verf.

charakterisiert 18 Arten von Candona, 2 von Candonopsis, 2 von

Siphlocandona n.g., 3 von Herpetocypris, 2 von Prionocypris und 2

von Ilyodromas. Hierunter sind 3 neue Arten. Candona siliquosa ist

neuer Name für Candona acuminata Brady u. Norman. F.S.

*— (3). On some species of C'yclops and other Entomostraca

collected by Dr. J.M. Dalziel in Northern Nigeria. Ann. Trop. Med.

Liverpool. vol. 4, p. 239—250, 3 Tab.

Brehm, V. (1). Referat über Woltereck, R.: Weitere experi-

mentelle Untersuchungen über Artveränderung, speziell über das

Wesen quantitativer Artunterschiede bei Daphniden. Verh. D. zool.

Ges. 1909. — Leipzig, Biol. Centralbl. v. 30 p. 679—688.

158 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

— (1). Einige Beobachtungen über das Zentrifugenplankton.

(Vortrag bei der 81. Versammlung deutscher Naturforscher und Ärzte

in Salzburg.) Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr. v. 3, p. 173

—177. — Verf. beobachtete die Wechselbeziehungen zwischen dem

Netzplankton und dem Centrifugenplankton, wobei es sich zeigte,

daß das erstere vom letzteren, seiner Nahrung, durchaus abhängig

ist, und die Gipfel der Netzplanktonquantitätskurve denen der

Centrifugenplanktonkurve folgen. Auch Schlammbewohner, wie

Botrydium granulatum spielen durch gewaltige Schwärmsporenbildung

eine wichtige Rolle im Centrifugenplankton.

— (3). Seltene Phyllopoden von Pöchlarn in Niederösterreich.

Stuttgart, Arch. Hydrobiol. Planktonkde., v. 6, p. 206—208. — Neben

Morina brachiata, Ceriodaphnia reticulata, Cyclops bicolor, Mauro-

thrix hirsuticornis wurden Dunhevedia crassa, Apus cancriformis und

eine Estheride, die leider nicht zu bestimmen war, gefunden. F.

— (4). Copepoden aus den phlegräischen Feldern. II. Teil.

Leipzig, Zool. Anz. v. 35 p. 423—424. — Aus dem Averner See unter-

suchte Verf. ein reichliches Plankton, in dem Poppella guernei Rich.

sehr bemerkenswert ist. Er beschreibt Laophonte hecate n.sp. F. 8.

— (5). Ein Brackwassercopepode als Binnenseebewohner. ibid.

p. 669. — In dem süßen Cepicsee in Istrien, 5km vom Meere ent-

fernt, wurde zahlreich Nannopus palustris Brady erbeutet. F.

Brehm, V. u. Ruttner, F. Süßwasserorganismen aus Dalmatien,

Bosnien und der Herzogowina. Stuttgart, Arch. Hydrobiol. Plankton-

kunde, v. 6, p. 85—98, 4 Figg. — Das Gebiet ist zoogeographisch sehr

interessant. Lathonura rectirostris wurde bisher nur 1 Mal südlich

der Alpen gefunden. Von Leydigia leydigii wurden 9 gefangen, während

g von Chydorus sphaericus am. Ende April auftreten. Diaptomus

laticeps zeigte bei 2 Abweichungen besonders im 5. Füßchen. Dia-

ptomus vulgaris n. var. verrucosa mit langem Innenast des 5. Füßchens

beim d, Canthocamptus crassus und Ü.zschokkei ebenfalls neu für

Balkan. F. S.

Burckhardt, G. (1). Hypothesen und Beobachtungen über die Be-

deutung der vertikalen Planktonwanderung. Leipzig, Intern. Rev.

Hydrobiol. Hydrogr. v.3, p. 156—172, 11 Textfigg. — Auf Grund

vergleichender Beobachtungen der litoralen und limnetischen Ver-

hältnisse des Planktons sucht Verf. die Atiologie der täglichen Vertikal-

wanderungen zu entwickeln. Bei den Zooplanktonten besteht allgemein

die Neigung zu graduell verschiedener Lichtflucht, welche die

Tiere zu konstanten Dämmerungsbewohnern bestimmter tieferer

Wasserschichten stempeln würde, wenn nicht die Oberfläche durch

geringere CO,-Gehalt wieder so günstige Bedingungen böte, daß die-

selben nicht wenigstens Nachts ausgenutzt werden sollten. Daß nun

nicht Oberrlöchenformen mit Anpassung an den Lichtwechsel von

Tag und Nacht gezüchtet wurden, verhinderte die Flucht vor dem

Ufer, mit seinen Temperaturschwankungen, Brandung, Verunreini-

gungen, Planktonphagen, Zu- und Abflüssen. Diese Uferflucht

konnte nur nachhaltig bewerkstelligt werden, wenn die Planktonten

Publikationen und Referate. 159

jedesmal, in die Tiefe sanken, was wieder bei mehr oder weniger

großer Uferferne in größerem oder geringerem Maße möglich war.

Das primum movens ist also die Lichtilucht, welche im Verein mit

der Uferflucht die vertikalen Wanderungen züchtete. Diese Vertikal-

wanderungen haben natürlich desto mehr Nutzen, je steiler die

Böschungen und je tiefer der See ist, weshalb sie wohl bei Alpenseen

so besonders stark und deutlich sind. Die Entstehung des Entomo-

stracenplanktons sucht Verf. in seiner aktiven Einwanderung vom

Ufer aus, getrieben durch negative Heliotaxis, wobei zur Ermög-

lichung der für die Erhaltung wichtiger Vertikalwanderung die Schweb-

und Schwimmfähigkeit durch Züchtung gestärkt werden mußte.

— (2). Nachtrag zum Aufsatz: Hypothesen und Beobachtungen

über die Bedeutung der vertikalen Planktonwanderung. ibid. v. 3

p. 335—338. — Verf. bringt zur Ergänzung der in (I) dargestellten

aus dem Silsersee erhaltenen Befunde noch solche aus dem Genfersee,

bei dem er an einer Stelle arbeitete, die nicht wie beim vorigen an der

Nähe des Ausflusses gelegen ist. Auch hier zeigt sich die Correlation

zwischen Tiefenwanderung und Uferflucht klar.

Caullery, Maurice. Zllobiopsis chattoni n.g., n.sp. parasite de

Calanus helgolandicus Claus, appartenant probablement aux Peri-

diniens. Paris, Bull. scient. France Belg., vol.44, p. 197 — 214,

3 Textfig.

TChapman, F. (1). New or little-known Victorian fossils in the

National Museum. Part X. Some Palaeozoic Worms and Crustacea.

Melbourne, Proc. R. Soc. Victoria new ser., vol.22, p. 101—112,

3 Tab.

T— (2). A study ofthe Batesford Limestone. Ibid. p. 263—314,

4 Tab.

— (3). On the Foraminifera and Ostracoda from Soundings

(chiefly Deep-water) collected round Funafuti by H.M. S. „Penguin“.

London, Journ. Linn. Soc. Zool., vol. 30, nr. 202, p. 388—444. 4 Taf.

— Verf. zählt 51 Arten und Varietäten von Ostr. auf. Darunter sind

9 n.sp. und 2 n.var. Zum ersten Male recent wird erwähnt Loxo-

concha latissima G. S. Brady, sonst aus dem Pliocän, Antwerp. bekannt.

In einer Tiefe unter 2000 Faden fanden sich Argilloecia affinis, C’ythere

parallelogramma, ÜC. curvirostrata, CO. dictyon, Krithe producta, K.

hyalina, K.angusta und Xestoleberis margaritea. F, S.

Chatton, Edouard (1). Sur l’existence de Dinoilagelles parasites

coelomiques. Les Syndinium chez les Copepodes pelagiques. Paris,

C. R. Ac. Sei. v. 151 p. 654—656. — Verf. nennt neue parasitische

Dinoflagellaten aus den Cop. Paracalanus parvus, Clausocalanus

arcuicornis und Corycaeus elongatus von Banyuls-sur-Mer.

— (2). Paradinium Poucheti n.g., n.sp., flagell& parasite d’A-

cartia clausi Giesbrecht (Copepode pelagique). Paris, C. R. Soc. biol.,

vol. 69, p. 341—343.

Chatton, Edouard u. Bröment, Ernest. Sur trois Ascidicoles du

genre Aplostoma Canu: Aplostoma magellanica n.sp., A. hibernica

(T. et A. Scott), A. sacculus n.sp. (Note preliminaire). Paris, Bull.

160 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Soc. zool. France v. 35 p. 80—92, 5 Textf. — Das Gen. Aplostoma

umfaßt eine Reihe Formen, die sich durch mehr oder weniger fort-

geschrittene Degeneriertheit unterscheiden, aber durch ihre graduelle

Verschiedenheit auch eine gute Zusammengehörigkeit offenbaren.

Die 3 obengenannten sp. werden eingehend beschrieben. Eine Schluß-

betrachtung zieht auch die anderen Vertreter der Gattung außer

A.eruca Norman und A. beaumonti T. u. A. Scott hinzu. A. brevi-

cauda ist am vollständigsten segmentiert und hat einen wohlabgesetzten

Kopf und 4-gliedriges Abdomen. A. banyulensis zeigt in gestrecktem

Zustande fast keine Gliederung mehr, das Abdomen ist 2-gliedrig.

Noch mehr rückgebildet sind A. magellanica und hibernica. A. sacculus

läßt nur mit Mühe Kopf und Abdomen unterscheiden. Wichtig für

die Unterscheidung sind die Ausbildung der Mundteile, Pereiopoden

und Bedornung. 8.

Chatton, E. u. Collin, B. Sur un Acinetien, nouveau commensal

d’un Copepode, Rhabdophrya trimorpha n.g., n.sp. Paris, Arch.

Zool. exper., ser.ö5, vol.5, notes et revue p. CXXXVIII—-CXLV,

3 Textf. — Die Parasiten wurden als sehr selten gefunden an Cletodes

longicaudatus.

Chilton, Charles. The Crustacea of the Kermadec Islands. Welling-

ton, Transact. N.-Zealand Inst., vol. 43, p. 544—573, 4 Textf. —

Verf. nennt 4 Cirr., Arten von Lepas, 2 Ostr. Podocop., 1 Clad. und

4 unbestimmte Cop. F.

TCockerell. Fossil Insects and a Crustacean from Florissant,

Colorado. N.York, Bull. Amer. Mus. nat. Hist., v. 28, p. 275—288.

— TCypris florissantensis n. SP.

Daday, E. v. (1). Die Süßwasser-Mikrofauna Deutsch-Ost- Afrikas.

Stuttgart, Zoologica, Bd.23, Heft 59; IX. Copepoda p. 106—119;

1 Taf.; X. Cladocera p. 120—158, 3 Taf.; XI. Branchiopoda p. 158

—159; XH. Ostracoda p. 159—235, 8 Taf. viele Textfig. — In dieser

umfangreichen Arbeit führt Verf. auch eine große Reihe von Entomo-

straken auf, deren jede Art eine genaue Beschreibung erhält. Von den

20 Cop.-Arten sind 4 für D. O.-Afr. endemisch, darunter 3 n. sp. von

Diaptomus, während 9 sp. allein in Afrika gefunden wurden. Der Rest

umfaßt mehr oder weniger kosmopolitische sp. u. zwar hauptsächlich

Oyclopidae; die afrikanischen Arten dagegen gehören besonders den

Centropagidae an. Interessant ist, daß die sonst in den südlichen Erd-

teilen verbreiteten Boeckella u. Pseudoboeckella hier völlig zu fehlen

scheinen. Clad. werden 41 Arten genannt, davon 19 für Afrika neu.

Afrika weist nunmehr 91 bekannte Arten mit 20 endemischen auf.

24 sp. kann man als specifisch südl. Tiere bezeichnen. Von Branchio-

poden wurden nur junge Exemplare von C'yclestheria hislopi gefunden,

während 36 sp. aus Afrika bereits bekannt sind. Unter den 41 Arten

beschriebener ÖOstr. sind 30 nur für D. O.-Afr. bekannt. Von allen

afrikanischen 114 sp. kommen 53 auf D. O.-A. und zwar 39 endemische.

Diesen hohen Prozentsatz an endemischen Arten gegenüber Kosmo-

politen im Vergleich besonders mit den Clad., glaubt Verf. durch den

Publikationen und Referate. 161

Mangel an einer Dauereibildung u. damit zusammenhängender Ver-

breitungsfähigkeit auf Seiten der Ostr. erklären zu können. Merk-

würdig ist, daß die genannten Ostr. fast alle O’yprinae sind, kein Ver-

treter der Darwinulidae und nur 1 der Cyiheridae. Es werden als

neu beschrieben 3 n. sp. von Cop., 3 n. g. und 26 n. sp. von Ostr. F. 8.

— (2). Monographie systematique des Phyllopodes anostraces,

Paris, Ann. Sei. nat. s.9 v. 11 p. 91—489. 89 Textf. — D. widmet

der interessanten Gruppe eine Monographie von nahezu 400 Seiten,

Er hatte ein sehr reiches Material aus den verschiedensten Gegenden

zur Verfügung. Den Namen Phyll. anostraca Sars 1867 zieht D. dem

Simon’schen Phyll. pisciformia 1886 vor. Die Unterordnung wird in

5 Fam. eingeteilt, wovon 4 neu sind, u. zwar 1. Polyartemirdae auct.

mit Polyartemia u. Polyartemiella, 2. Branchinectidae n.fam. mit

a) Artemüinae n. subf. mit Artemia u. Artemiella n. g., b) Branchinectinae

n. subf. mit Branchinectella n. g., Branchinecta u. Artemiopsis;, 3. Chiro-

cephalidae n. fam. mit a) Chirocephalhinae n. subf. mit Chirocephalus,

Pristicephalus n.g. u. Chirocephalopsis n.g., b) Eubranchipodinae

n. subf. mit Eubranchipus, c) Branchinellinae n. subf. mit Eubranch:-

nella n. g., Branchinella, Dendrocephalus u. Thamnocephalus ; 4. Branchi-

podidae n. fam. mit a) Parartemiinae n. subf. mit Parartemia,

b) Branchipodinae n. subf. mit Branchipodopsis, Branchipus u. Tany-

mastix, 5. Streptocephalidae n. fam. mit Streptocephalus. Mehrere

Untergattungen und sp. smd neu. Verf. beleuchtet dann die phylo-

genetischen Zusammenhänge der Fam. u. Gen. Die Zahl der Ex-

tremitätenpaare ist bei Polyartemia 19, Polyartiemella 17 und den

übrigen Gen. 11. Polyartemia erscheint hierdurch wie auch durch das

Vorhandensein eines Restes des Palpus mandibularis als das ursprüng-

lichste Gen. Ob je ein oder zwei Kiemenanhänge vorhanden sind,

scheint für die Verwandtschaft nicht von Wichtigkeit zu sein. Große

Bedeutung hat die Bildung des Penis, der bei den Xiphophallophora

am, sonst glatten, apicalen Glied einen langen schwertartigen Fort-

satz trägt, während bei den Echinophallophora dies Apicalglied fort-

satzlos und mit Stacheln und Zähnchen bewehrt ist. Verf. stellt

einen Stammbaum auf, der diese beiden Gruppen von Protanostraca

entsprossen läßt, wobei die hypothet. Urgattungen der ziemlich gerad-

linig sich fortentwickelnden Xiphophall. Archichirocephalus, der

mannigfach sich verzweigenden Echinophall. Archipolyartemia sind.

Für die phylogen. Beziehungen werden natürlich auch andere wichtige

morphologische Merkmale, besonders die Ausbildung der Kopffort-

sätze der d herangezogen. Es folgt eine Liste von 386 alphabet. geordn.

Fundorten sämtlicher sp., welche sich auf Europa mit 18, Asien mit 25,

Afrika mit 31, Nordamer. mit 16, Südamer. mit 7 u. Australien mit

5 sp. verteilen. 11 sp. sind von mehreren Erdteilen bekannt. Die

europäischen sp. werden für die einzelnen Länder aufgezählt, wobei

Ungarn u. Rußland die meisten aufweisen. Die sp. werden dann auch

in ihrer Verteilung auf Regionen und auf Zonen besprochen. Bei

letzteren kommen auf die Nordpolarzone 8, die nördl. gemäßigte 47,

die tropische 17, die südl. gemäßigte 20 sp. Es folgt eine Liste für

Archiv a ne 11

162 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

die Verteilung während der Jahreszeiten, und eine für Längen- u.

Breitengrade. Im Ganzen nennt D. 177 sp., var. u. form. F. 8.

— (3). Entomostraces d’eau douce. Collections recueillies par

M. le Baron de Rothschild dans l’Afrique Orientale (Abyssinie et

Ethiopie). Paris, Bull. Mus. nation., 1910 nr. 5 p. 253—265. — Verf.

gibt erst die Fundorte an, um dann die 10 sp. mit Beschreibungen

aufzuführen. Es sind: Simocephalus exspinosus, Daphnia psittacea,

Streptocephalus rothschildi n.sp., Leptestheria siliqua, Oypris neu-

manni, Eucypris rothschildi n.sp., Stenocypris decorata n.sp., O'ypri-

notus symmetricus, Oncocypris voeltzkowi, C'yclops dybowskiü. Die

3 n.sp. und Daphnia psittacea sind neu für Afrika. F, 8.

— (4). Sur un Phyllopode anostrace nouveau recueilli par

l’Expedition antaretique du Pourquoi-Pas? sous la direction deM. Jean

Charcot. Paris, C. R. Ac. Sci. v. 151 p. 688—690. — Branchinecta

gaini n. sp. ist der erste Vertreter der Phyllopoda anostraca aus der

antarktischen Region. Er hat viele Beziehungen zu nordamerikanischen

und sibirischen Formen. Genaue Charakteristik. F.S.

— (5). Quelques Phyllopodes Anostraces nouveaux.- Appen-

dice & la monographie systematique des Phyllopodes Anostraces avec

5 figures dans le texte. Paris, Ann. Sci. nat., ser. 9, vol. 12, p. 241

—264. 5 Textf. — Verf. beschreibt hier noch als Ergänzung zu seiner

Monographie aus vol. 11 dieser Zeitschrift (s. Ber. D.2) ein neues

Genus Branchinellites mit B. kugenumaensis, welches aus der Gattung

Branchinella herausgenommen wird, und mit einer neuen Art. Außer-

dem folgen hier noch Beschreibungen von 2 neuen Arten und 2 neuen

Varietäten anderer Genera. 8.

— (6). Ergebnisse der mit Subvention aus der Erbschaft Treitl

unternommenen zoologischen Forschungsreise Dr. Franz Werners

nach dem ägyptischen Sudan und Nord-Uganda. XV. Beiträge zur

Kenntnis der Mikrofauna des Nils. Wien, Sitzungsber. Kais. Ak.

Wiss. Math. naturw. Kl. v. 119, Abt. 1, p. 537—589. 2 Taf. — Die

Fänge aus Ägypten stammen meistens aus dem Nil, wenige aus benach-

barten kleinen Gewässern. Zur Zeit der Hochilut ist das Plankton

des Stromes selbst sehr artenarm; nur vereinzelt fand sich Bosmina

longirostris. Die überwiegende Mehrzahl der genannten Formen stammt

aus Tümpeln des Zool. Gartens zu Gizeh. Es werden aufgeführt 7 Cop.,

darunter interessant Cyclops macrurus u. Acartia latisetosa, ferner

5 Clad., darunter Moina brachiata, 6 Ostr., sämtlich neue Arten und

l neue Gattung.

Vom Sudan werden aufgezählt 6 Copep. und 23 Clad. aus dem

weißen Nil und Bahr-el-Gebel. F. S.

— (1). Species aliquot novae Entomostracorum. Budapest,

Archivum zoologicum, vol.1, nr. 14, p. 187—19, 3 Taf. — Neue

Arten sind Diaptomus bouvieri, Eucypris domingensis, E. capensis

und /kocyprella salina. Als andere seltenere Entomostraken: Hetero-

cope saliens, Acartia dubia, Bythotrephes longimanus var. arcticus,

Oypris neumanni, Eucypris virens und Üyprinotus incongruens. 8.

Publikationen und Referate. 163

Daehne. Über das Vorkommen zweier seltener Phyllopoden bei

Halle. Leipzig, Zeitschr. Naturwissensch. Halle, vol. 81 (5. Folge,

vol. 19), p. 459—460. — Verf. fängt seit Jahren häufig an verschiedenen

Fundorten Apus productus u. zw. an 7 Stellen jahraus, jahrein um

dieselbe Zeit, schon im April. Branchipus stagnalis wird dort gleich-

falls gefunden. F.

Deiner, Adalbert. Der Bau der Maxillardrüse bei Cirripedien.

Wien, Arb. zool. Inst. v. 18 p. 183—206. 1 Taf. 2 Textfigg. — Verf.

zeigt durch anatomische und histologische Untersuchungen, daß die

Maxillardrüse der Cirr. den typischen Bau der Crustaceenniere zeigt.

Das paarige Organ baut sich auf aus Endsäckchen, Harnkanal und

Harnleiter. Der Harleiter mündet am Basalteil der Hinterwand

der 2. Maxille. Durch eine trichterförmige Erweiterung geht er in

den Harnkanal über, welcher umfangreich und weit ist und seitlich

vom unteren Schlundganglion liegt. Der Harnkanal ist durch Muskeln

zusammenpreßbar. Das Endsäckchen mündet durch eimen engen

Trichter in den Harnkanal. Histologisch hat der Harnleiter den Auf-

bau der Haut; er ist eine Einstülpung der letzteren. Die gewebliche

Struktur des Harnkanals zeigt die Kieferdrüsennatur des ganzen

Organs sehr deutlich. Seine Wand besteht aus einem flachen Pflaster-

epithel auf zarter Basalmembran. Die Zellen haben ein senkrecht

zur Oberfläche gestreiftes Plasma und einen dicken Stäbchensaum.

Der Harnkanal hat gleich wie das Endsäckchen die Funktion Exkret

auszuscheiden. Das Endsäckchen ist ausgekleidet von einem ein-

schichtigen Epithel zottenförmiger zarter Zellen. Das Organ zeigt

bei Balaniden und Lepadiden geringe Unterschiede.

Douwe, €. van. Die Süßwassercopepoden Deutschlands: Cantho-

camptus pilosus n. spec. Leipzig, Zool. Anz. v. 36 p. 444—445. 2 Texttf.

— Die neue Art wurde in einem Wiesengraben am oberbayerischen

Wörthsee gefangen. Kurze Beschreibung. F. 8.

jlEgger, Joseph, Georg] = Hrreps, I. T. Ocrpakonsı

PBIÖHLIXB CIaHNeBB Mypru u Burtuma BB Babalkaıseroi Odracrä.

[Die Ostrakoden der Binnenfauna der Fischschiefer von der Turga

und dem Witim in Transbaikalien.] St. Petersburg, Explor. g6olog:

chem. de fer Siberie, vol.29 p.69—82 und deutsche Übersetzung

p- 69—82. 1 Tab.

Esterly, Calvin, P. Third Report on the Copepoda of the San

Diego Region. Contributions from the laboratory of the marine bio-

logical association of San Diego. XXXIII. Berkeley, Univers. of Cali-

fornia Publications in Zoology, vol. 6, nr. 14, p. 313—352, 7 Taf. —

Es werden aufgeführt, beschrieben und abgebildet: 28 Arten, darunter

21 n.sp. und I n.var. F.S8.

Ewald, Wolig. F. Über Orientierung, Lokomotion und Licht-

reaktionen einiger Cladoceren und deren Bedeutung für die Theorie

der Tropismen. Leipzig, Biol. Centralbl. v. 30 p. 1—16, 49—63, 379

— 384, 385—399. Figg., Curven. — Die umfangreiche Arbeit zerfällt

in einen descriptiven und in einen theoretischen Teil. Als Versuchs-

objekt diente vornehmlich Daphnia in einigen Arten, auch sSida,

11*

164 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Bosmina, Leptodora, Bythotrephes u.a., deren Bewegungen unter

Lichtreizen bei verschiedenen Bedingungen beobachtet und durch

Curven festgehalten wurden. Der 2. Teil erläutert die interessanten

Versuchsergebnisse. Die Clad. sind aus Mangel eines barostatischen

Apparates zur Schwerkraft nur durch die Gleichgewichtslage der

Körperform orientiert. Hiergegen vermögen sie sich zum Licht in

einer bestimmten Weise einzustellen. Die fortwährende Bewegung

der Clad. erscheint als ‚kleine Lokomotionsperioden‘“, die die Tiere

abwechselnd dem Lichte nähern und von ihm entfernen. Diese Be-

wegungungen sind außerordentlich gleichmäßig und halten die Tiere,

welche abwechselnd, je nach der Entfernung von der Lichtquelle,

einen Erhellungs- und einen Verdunkelungsreiz recipieren und dadurch

jedesmal zur Umkehr gezwungen werden, in einer bestimmten Adap-

tionszone, welche bei größerer oder geringerer Intensität der Licht-

quelle dieser näher oder entfernter liegt, wodurch die täglichen Ver-

ticalwanderungen entstehen. Verf. beleuchtet von hier aus die photo-

kinetischen Erscheinungen ganz allgemein und gibt Vorschläge zur

Änderung der bezüglichen Nomenklatur. Es ist nicht mehr angängisg,

die Reizunterschiedsempfindlichkeit von den Tropismen zu trennen,

vielmehr ist dieselbe mit der Phototaxis im Verein Ursache ver-

schiedener photokinetischer Vorgänge. Wenn hierbei eine bestimmte

Einstellung zum Lichte resultiert, wird man von Photostatik sprechen

müssen. Die verschiedenen Reaktionsformen lassen sich noch weiter

zergliedern. Die Bewegungen der Clad. zeigen z. B., daß man neben

positiv und negativ phototaktischen Tieren auch amphitrop photo-

taktische unterscheiden muß.

*Faczynski, Julian. Badania fauny planktonowej stawn Janows-

kiego w. r. 1909 z uwzglednieniem fauny przybrzeznej [Zooplankton-

Studien des Teiches in Janow bei Lemberg ım Jahre 1909, mit Be-

rücksichtigung der Litoralfauna]. Lwow, Kosmos czasopismo Pols-

kiego Towarz. Kopernika, vol. 35, p. 941—993.

Franz, V. Phototaxis und Wanderung. Nach Versuchen mit

Jungfischen und Fischlarven. Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr.

v.3, p. 306—334. — Verf. kommt durch Beobachtungen an Jung-

fischen und Fischlarven zu dem Ergebnis, daß die Bewegungen der-

selben unter Lichteinfluß nicht auf primärer Phototaxis beruhen,

sondern sich aus ihren Lebensgewohnheiten als Erregungsreaktionen

unter anormalen Zuständen verstehen lassen. Er versucht, diese

Ansichten nun auch auf das ganze Tierreich, vor allem auch auf das

Plankton zu übertragen.

Farran, 6.P. Copepoda (part). Copenhague, Bull. explor. de la

mer. Res. observ. Plankton mers explor. conseil 1902—1908. 1. Partie,

p: 60—79, 3 Taf. — Die aufgeführten Formen Paracalanus parvus,

Pseudocalanus elongatus, Rhincalanus nasutus, Metridia lucens,

M.longa, Temora longicornis, Acartia clausi u. A. longiremis werden

bezüglich ihrer lokalen u. jahreszeitlichen Verbreitung, wie auch ihrer

Verteilung mit Rücksicht auf Temperatur, Salzgehalt, Strömungs-

Publikationen und Referate. 165

verhältnisse usw. dargestellt. Die Bedeutung der Formen als Fisch-

nahrung wird erörtert.

Freidenfelt, T. Morphologisch-systematische Bemerkungen über

Ergasilus Sieboldi Nordm. nebst vorläufigen Mitteilungen über die

Lebensgeschichte des Tieres. Lund, Universitets Arsskr. N. F., vol. 6,

Afd. 2, nr. 3 (Kongl. Fysiogr.-Sällsk. Handlingar N.F., vol. 21, nr. 3)

p. 1—12, 2 Textf. — Bei und 2 scheinen sich stets 4 Furcalborsten

zu finden. Die Genitalporen liegen dorso-lateral. Cuticularverdickungen

an der Ovidukt-Mündung wurden bisher als Hakenanhang gedeutet.

Die pelagisch lebenden Nauplien setzen sich nicht fest während

der Entwicklung. Es folgen noch Metanauplius und einige Copepodit-

stadien.

Gadd, Pehr. En ny Parasit-Copepod frän Ishafvet. [Ein neuer

parasitischer Copepode aus dem Eismeer.] Helsingfors, Öfvers. Fen.

Vet. Soe., vol.52 A, nr.6, p.1—8, 1 Taf.

Gerschler, M. Willy (1). Über ein Extremitätenorgan zur Rege-

lung der Blutzirkulation bei Leptodora kindtis (Focke). Vorläufige

Mitteilung. Stuttgart, Arch. Hydrobiol. Planktonkde., v. 6, p. 215

— 217. — Da die langen, nach vorn gerichteten, zum Rauben dienenden

Beine durch Stockung leicht ohne Blutzufuhr bleiben können, findet

sich an der Verbindungsstelle des ersten und zweiten Gliedes der

ersten Extremitätfein eigentümliches Organ, das fortwährend rasch

pulsiert. Durch einen quergestreiften Muskel wird eine feine Membran

dauernd in Schwingungen versetzt.

— (2). Über ein Extremitätenorgan zur Regelung der Blut-

zirkulation bei Leptodora kindtiv (Focke). Leipzig, Zool. Anz., vol. 36,

p. 329—336, 6 Textfig. — Das oben beschriebene Organ wird hier

noch einmal genauer beleuchtet und abgebildet.

Graeter, Eduard. Die Copepoden der unterirdischen Gewässer.

Stuttgart, Arch. Hydrobiol. Planktonkde., v. 6, p. 1—48 u. 111—152.

21 Textfigg., 3 Taf., Kartenskizze. — Verf. geht zuerst auf die Ge-

schichte der Höhlencopepodenforschung ein. Das Hauptkontingent

stellen die Fam. der Cyelopiden u. Harpacticiden. Bisher waren

21 sp. sicher bekannt. Verf. vermag 6 neue hinzuzufügen. Das Augen-

pigment ist stels reduziert. Die Tiere sind meist klein u. stets hyalin.

& sind häufig, Eier selten. Die Ernährung geschieht durch organische

Abfälle. Während eine Anzahl auch oberirdisch vorkommt u. als

„Troglophile“ angesehen werden können, sind die 6 neuen Formen

„Troglobien“. Besonders niedrige Temperatur ist Ursache der Höhlen-

besiedelung. Von den neuen Arten sind nur 3 blind: O'yclops teras,

C. zschokkei n.sp. u. CO. macrurus var. subterranea.. Die anderen:

O. erinitus, ©. unisetiger u. Canthocamptus varicus n. sp. haben ein Auge.

Die blinden Formen sind auf bekannte oberirdische zurückführbar.

Die übrigen sind Relikte oberirdisch ausgestorbener Arten. F. 8.

*Grandori, Remo. Sul materiale planktonico raccolto nella 2a

erociera oceanografica. Bollet. del comitato talassografico. Nr. 6.

p. 6—27, 2 Curven-, 1 Figurentafel. — Ref. siehe A, Steuer, Zool.

Zentralbl. vol. 18, p. 151, nr. 182,

166 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

*Grochowski, Mieczyslaw. O nowym rodzaju i nowym gatunku

rodziny Sloniezki (Bosminidae) — Garbinia Adriani nov.gen. et

nov.spec., z. 1 tab. i2 ryc. w. tekscie). [Sur un nouveau genre et une

nouvelle espece de la famille Bosminidae.] Kosmos Lwow, vol. 35,

p. 341—351, 1 Taf.

Guerin- Ganivet, 3. (1). La repartition g&ographique du Triangulus

munidae G. Smith, Rhizoc&phale parasite des especes du genre Munida

Leach. Monaco, Bull. Inst. ocean. nr. 189, 3 pp. — Verf. fand den

Parasiten an Munida bamffica an den Küsten der Bretagne. F,

— (2). Sur la presence de l’Ergasticus Clouei A. Milne-Edwards

dans les fonds avoisinant les cötes de la Brötagne occidentale. ibid.

Nr. 184, 3 pp.

Häberle, D. Cirripedier (?) aus der alpinen Trias. Monatsber.

Deutsche geol. Gesellsch. 1910. nr. 1 p. 71—72.

Hill, M. D. A rare Crustacean. London, Nature, vol. 83 p. 36

—37. — Bei Eton fand man verschiedene weibl. u. männl. Exem-

plare von Cheirocephalus diaphanus. F.

T[Janisevskij, M. E.] = AInnmescrkiä, M. E. dayna HuMHe-

KAMEHHOYTOIbHATO H3BECTHHKA OKOAO Mocerka Xa0apHaro, OPCkaro

y&arza, opeHöyprekoä Ty6. [Die Fauna des unteren Kohlen-

kalkes von Chabarny, Bezirk Orsk, Gouv. Orenburg] Tomsk Izv.

technol. Inst., vol. 17 I. 1910 (pag. 1—305 + I—III) 21 Taf. u.

1 Karte.

Jeannel, R. u. Racovitza, E.@. Biospeologica, XVI. Enume-

ration des grottes visit&es 1908—1909. Paris, Arch. Zool. exper.,

ser.5 v.5 p. 67—185. — Entomostraca werden fast garnicht erwähnt.

Aus der Grotte de Sainte-Marie p. 81—83 nennen Verf. Oanthocamptus

zschokkei u. O.pygmaeus. F.

Joleaud, A. (1). Sur le pretendu mimetisme des Balanes. Paris,

Compt. rend. Soc. biolog., vol. 69, p. 101—102. — Verf. bestreitet,

daß die Schalenrudimente von Balanus eine Mimikry erzeugen.

— (2). Considerations sur la Morphologie des Cirrhipedes pedon-

cules aspides. Ibid., p. 659—661 und 1 Tabelle.

...— (8). Considerations sur la Phylogenie des Cirrhipedes pedon-

cules aspides. Ibid. p. 661—663. Verf. betrachtet die Einwirkung

der Position des Cirripedienkörpers auf die individuelle Entwicklung

der Schalenstücke. Auf Grund verschiedener Unterschiede in der

Reduktion der Kalkplatten, in Zahl und Form stellt er einen Stamm-

baum der pedunculaten beschalten Cirripedien auf.

Kapterew, Paul. Experimentaluntersuchungen über die Frage

vom Einflusse der Dunkelheit auf die Gefühlsorgane der Daphnien.

(Vorl. Mttlg.) Leipzig, Biol. Centralbl. v. 30 p. 239—256, 7 Textf.

— Verf. züchtet Daphnien im Dunkeln, um durch Nachweis einer

Veränderung der Augen das Lamarck’sche Prinzip der direkten An-

passung experimentell zu prüfen. Copep. erwiesen sich als nicht so

brauchbar. Er erzeugte bei verschiedenen eingehend beschriebenen

Serien auch eine mehr oder weniger weitgehende Depigmentation,

Publikationen und Referate. 167

wie einen Zerfall der Linsenanordnung und Form in den Haupt- und

Nebenaugen. Hierbei zeigte sich nun der Unterschied, daß Bewohner

von Gewässern mit konstanten Bedingungen ihre Charaktere länger

bewahren, dann aber plötzlich eine weitgehende Veränderung im

Auge zeigen, wovon sich die Disponiertheit auch auf die Nachkommen-

schaft überträgt, um hier schnell und stärker mit großen Umänderungen

einzusetzen. Hiergegen trat der Umwälzungsprozeß bei den Typen

aus Gewässern mit wechselnden Bedingungen schnell ein, war u. blieb

aber weniger intensiv. Die & schienen sich leichter und schneller

anzupassen.

Keilhack, L. C'ypris hessei n. sp. aus den Dauphine-Alpen. (4. Bei-

trag zur Kenntnis der Süßwasserfauna in den Dauphine-Alpen.) p. 201

— 205. 1 Taf. — Diese neue Art wurde in einem sumpfigen Tümpel

in 400 m Höhe über dem Meere gefangen. Sie ist der Untergattung

Herpetocypris sehr nahestehend, unterscheidet sich von den dahin

gehörigen Formen aber durch die gute Ausbildung der Schwimm-

borsten an der 2. Antenne, sodaß Verf. glaubt, die Untergattung von

C'ypris nicht mehr abtrennen zu können. 8. F.

Keilhack, L. u. Rühe, F.E. Über das Vorkommen des Bytho-

trephes longimanus Leydig in Norddeutschland. Leipzig, Intern. Rev.

Hydrobiol. Hydrogr. v. 3 p. 187—190. — Die Verf. fügen den bisher

bekannten Fundorten von B.1. 8 Seen hinzu, die mit einer mittleren

Maximaltiefe von etwa 15m im Gegensatz zu den bisher bekannten

Seen mit etwa 33 m mittl. Maximalt. stehen, sodaß die Annahme,

B.l. bevorzuge besonders tiefe Gewässer, schwerlich haltbar ist.

Liste sämtlicher norddeutscher B.-Seen. In vielen der 42 Seen ist

das Tier recht zahlreich, weshalb die Vermutung Ekmans, die Art

sterbe m Norddeutschland aus, irrtümlich sein dürfte. F.

Keissler, Karl von. Planktonuntersuchungen in einigen Seen

der Julischen Alpen in Krain. Stuttgart, Arch. Hydrobiol. Plankton-

kunde v.5 p. 351—364. — Verf. behandelt das Phytoplankton und

zieht das Zooplankton nur vergleichsweise hinzu.

Kolkwitz. Zur Biologie der Wilmersdörfer Kläranlage bei Stahns-

dorf. Berlin, Mittlg. Königl. Prüfungsanst. für Wasserversorgung

und Abwässerbeseitigung. Heft 13 p. 48—79. Textabbild. — Entomo-

straca treten erst in den gereinigten abfließenden Abwässern auf und

zwar ÜUyclops strenuus, ©. phaleratus u. Canthocamptus staphylinus.

Aus dem ziemlich planktonreichen Teltowkanal der auch die Ab-

wässer aufnimmt, werden noch Bosmina sp.? und Chydorus sphaericu

genannt.

Kollmann, Max. Un cas de polyembryonie chez la Sacculine.

Paris, Arch. Zool. exper. gen. ser.5 v.5. Notes et Revuenr. 2p. XXXVII

—XL, 1 Texti. — Verf. fand Sacculinen bei Stenorhynchus longirostris,

welche an derselben Wurzel hingen. Eingehender konnte er dieselben

Verhältnisse bei 2 Sacculina Betencouri konstatieren, welche an einem

Portunus variegatus gefunden wurden. Es waren ein größeres und

ein kleineres Individuum, beide an derselben Stelle des Wirtes an-

geheftet. Ihre Stiele hingen an derselben Basalmembran zusammen

168 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

und beide hatten ein gemeinsames Wurzelsystem. Der Vorgang wird

durch Polyembryonalentwicklung aus einer 2kernigen Saceulina

interna erklärt.

Kraefit, F. Über das Plankton in Ost- und Nordsee und den

Verbindungsgebieten, mit besonderer Berücksichtigung der Copepoden.

Wissenschaftl. Meeresunterschg. N.F. 2. Abtlg. Kiel, vol. 11, p.29

—108, 9 Fig., 1 Taf. — Es werden eine Anzahl von Cop.-Arten in ihrer

localen und zeitlichen Verteilung, wie auch ihrem quantitativen Auf-

treten'nach besprochen. Für die Copepoditstadien von Paracalanus,

Temora, Acartia und Pseudocalanus werden Befunde über, Segmen-

tierung und Bildung der 5. Thoraxfüßchen mitgeteilt. Auch über

die Wachstumsverhältnisse der verschiedenen Formen liegen Be-

obachtungen vor. F.

Krimmel, ®ttilie. Chromosomenverhältnisse in generativen und

somatischen 'Mitosen bei Diaptomus coeruleus nebst Bemerkungen

über die Entwicklung der Geschlechtsorgane. Leipzig, Zool. Anz.,

v. 35, p. 778—793. 16 Textfigg. — Beim Nauplius und Metanauplius

liegen die beiden Urgeschlechtszellen getrennt zu beiden Seiten des

Darmes. Nach Teilung einer der beiden Zellen geschieht die Ver-

schmelzung. Dieses Dreizellenstadien ist von kurzer Dauer. Meso-

dermale Belegzellen bilden einen soliden Sack um die Geschlechts-

anlage, wenn dieselbe 9 Individuen stark geworden ist. Am Vorder-

ende bildet sich bei & ein, bei @ zwei Stränge als Anlage der Ausführ-

gänge. In der frühen Oogenese und Spermatogenese, ja sogar in so-

matischen Zellen werden Erscheinungen angetroffen, welche typisch

für die Reifungsperiode sind und der der Synapsis folgenden Diakmese

ähneln. In dieser ‚‚Deutodiakinese“ werden 28 Chromosomen, also

die volle Zahl, gezählt. Auch im Spirem, in den Oogonien junger 2

wird die volle Zahl festgestellt. Auch bei $ läßt sich annähernd die

Zahl 28 bestimmen. Während der ganzen generativen Keimbahn-

strecke wird also die nicht reduzierte Zahl der Chromosomen bewahrt.

In den somatischen Zellen treten besonders in Darmzellen sehr ähn-

liche Verhältnisse hervor. Hier läßt sich die Zahl bald als voll, bald

als reduziert konstatieren. War die Zahl höher als die reduzierte,

so trat Zweiteilung der Chromosomen nicht selten ein. Das Epithel

der verlängerten Ausführgänge wird von den erwähnten Anfangs-

teilen weitergebildet, während die Museularis wohl durch metamere

Anlagerung von Mesenchymzellen zustande kommt.

*Linko. Trav. Soc. St.-Pötersbourg, vol. 37, Zool. Physiol., fase. 2,

p. 210—213.

Lohmann, H. Die Strömungen in der Straße von Messina und die

Verteilung des Planktons in derselben. Zweite Studie. Leipzig,

Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr. v.3 p. 275—298. 1 Doppelkarte

1. T. — Verf. schließt seinen in v. 3 der Rev. veröffentl. Beobachtungen

diese Studie an, um besonders auf die bedeutende Arbeit von

von L. Marini über die Strömungsverhältnisse und Salzgehalt-

und Temperaturverteilung im der Straße von Messina eingehen zu

können. Während sich bei einer vertikalen Veränderung die Salz-

Publikationen und Referate. 169

gehalt- und Temperaturunterschiede nur äußerst langsam ändern,

stellt das Plankton seine normale Verteilung in der Wassermasse

außerordentlich schnell wieder her, natürlich entsprechend den Loko-

motionswerkzeugen der Formen. Die Beobachtungen beziehen sich

fast alle auf Appendicularien, nur ganz wenige auf Copepoden

(Euchaeta). |

Marsh, €. Dwight. A revision of the North American species of

Cyelops. Madison, Transact. Wisconsin Acad. Sei., vol. 16, part II,

nr. 3 p. 1067—1135. 10 Taf. — Der Verf. teilt die Gattung nicht in

Untergattungen ein, obwohl er anerkennt, daß sich aus einzelnen

Arten Untergruppen bilden ließen. Er zählt die Arten auf, beschreibt

sie und ordnet besonders die Synonymie. Ein Bestimmungsschlüssel

gibt einen guten Aufschluß über die Beziehungen der Formen. Die

nordamerikanischen Arten sind COyclops ater, CO. viridis, ©. bieuspi-

datus, CO. leuckarti, O.tenuis n.sp., O. albidus, C. fuscus, C. modestus,

C. serrulatus, O. prasinus, C. varicans, C. phaleratus, C. bicolor, CO. fım-

briatus, C. aequoreus. Von Üyclops viridis werden 4 Variationen auf-

gezählt. F. 8.

*Masi, L. Notizie su aleune Cypridae raccoltea Maccarese. Roma,

Boll. Soc. zool. ital. ser. 2, vol. 11, p. 93—%6.

Matschek, Hermann. Über Eireifung und Eiablage bei Copepoden.

Leipzig, Arch. Zellforsch. v. 5 p. 36—119. 30 Textfigg. 5 Taf. — Das

Ovarium der Cop. ist unpaar bei Heterocope, Diaptomus und der

1. Hauptgruppe von Cycelops (nach Schmeil u. Vosseler), zweiteilig

bis paarig bei der 2. Hauptgruppe. Das blinde Ende ist umgebogen

und endet mit dem ‚„Keimpolster“. Die Oviduktäste gehen wenig

hinter dem oberen Schlundganglion vom Ovarıum ab. Die Dotter-

bläschen bilden sich aus undefmierbaren kleinen Granulen. Die Art

der Eiablage ist sehr variant. Die Oogenese beginnt mit der ‚„Ver-

mehrungsperiode‘“, welche durch alle oogoniale Teilungen im Keim-

polster repräsentiert wird und mit einem ausgesprochenen Kernruhe-

stadium abschließt. Die folgende Reifungsperiode beginnt mit der

Synapsis der Oocyten, welche durch eine Praesynapsis mit Hervor-

treten dünner zackiger Fäden beginnend in der späteren Synapsis

und der Postsynapsis die deutliche Spaltung des dicken glatten Fadens

aufweist. Dann wachsen die Oocyten stark heran, wobei sie zur Dia-

kinese übergehen, welche durch eine Ruhepause geteilt sein kann.

Die auftretenden Doppelstäbehen und Ringe sind durch Übergänge

(Diaptomus salinus) verbunden. Durch Auftreten von Querkerben

und Ausbildung eines sekundären Längsspaltes wandeln sich dieselben

in die Ditetraden der biserialen Anordnung um, welche als Bereit-

schaftsstellung bis zum Austritt und der Befruchtung der Eier an-

dauert. Die Reifungsteilungen erfolgen erst im abgelegten Ei. Beide

Teilungen sind Längsteilungen, bei denen immer 2 Elemente gemein-

sam (bivalente Elemente) die Mitose mitmachen. Die unvollkommene

Segmentierung in bivalente Elemente ist als Pseudoreduktion anzu-

sehen. Die endgültige Reduktion erfolgt nicht während der Reifung,

sondern an irgend einer Stelle der Embryonalentwicklung.

170 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Me Clendon, Z. F. (1). On the effect of external conditions on the

reproduction of Daphnia. N. York, Amer. Natural. v. 44 p. 404—411.

— Bei reichlichem Futter zeigten die Daphnia pulex zur Zeit der

Geschlechtsreife sich größer und hatten eine kürzere Spina als Hunger-

stadien. Höhere Temperatur bewirkte dasselbe wie Nahrungsmangel

und ließ die Geschlechtsreife früher eintreten. Einflüsse von Salz-

gehalt- und Lichtschwankungen wurden nicht konstatiert. Das Auf-

treten der Sexualgeneration wird beschleunigt durch Wärme, Hunger

u. Anhäufung von Exkretprodukten und Austrocknen des Wohn-

gewässers. — Die Geschlechtszellen sind im Gegensatz@ zu den sich

häufig teilenden somatischen Zellen nach wenigen Teilungen stehen

geblieben und bedürfen zur Weiterentwicklung eines Stimulans (durch

Wachstum beeinflußte Kernplasmarelation, Vergrößerung der Per-

meabilität der Plasmamembran). Wenn die Bedingungen wie Wärme

und Nahrung nicht als Extreme auftreten, so wird ein leichtes Sti-

mulans ausreichen, die Eier zur parthenogenetischen Entwicklung

in den Brutraum treten zu lassen, sınd sie aber sehr extreme, so muß

Befruchtung den Anstoß zur !Weiterentwicklung geben.

E® — (2). Further studies on the Gametogenesis of Pandarus sinu-

atus, Say. Leipzig, Arch. Zellforschung v.5, p.229—234. 1 Tab,.,

Textfig. — Von den Spermatiden werden einige zu Nährzellen. —

Die Spermatogonie hat einen großen Kern mit einem Chromatinnetz

und einem bis mehreren Plasmosomen. Die ersten Spermatocyten

haben einen ähnlichen Kern, aber die Plasmosomen sind so klein,

daß sie nicht unterscheidbar sind. Dann geht das Chromatinnetz in

das typische leptotäne Stadium mit 16 Chromosomen über. Ihm folgt

die Syniscesis. Die synaptischen Chromosomen haben sich parallel

zu je zweien angeordnet. Die Syniscesis lockert sich zu einem typischen

diplotänen Kern. Die Doppelchromosomen verkürzen und verdicken

sich dann und wandeln sich durch eine Teilung zu Tetraden um. Die

beiden Reifungsteilungen folgen sehr schnell und verteilen die Tetraden-

stücke auf die 4 Spermatiden mit je 8 Chromosomen. In der Oogenese

verlaufen die Erscheinungen bis zur Syniscesis ganz ähnlich. Nur

werden die Oocyten von Anfang an größer als die Spermatocyten.

Hier tritt ein mächtiges Plasmosom nach der Syniscesis auf. Die

8 Doppelchromosomen sind fadenförmig und ordnen sich radial um

das Plasmosom. Dann verkürzen sie sich und werden zu Tetraden,

die durch die Reifeteilungen aufgelöst werden. ?

Methuen, Paul A. On a Collection of Freshwater Crustacea from

the Transvaal. London, Proc. zool. Soc. 1910 p. 148—166. — Verf.

durchfischte im August 1908 einige Seen und „pans“ in Transvaal,

besonders den Chrissie-lake von 12 Meilen Umfang. Ostr. fanden

sich in der Uferzone, Cop. und Clad. mehr im freien Wasser. Verf.

stellt im Gegensatz zu verschiedenen Autoren fest, daß die süd-

afrikanischen Süßwasserentomostr. keine Beziehungen zu den

australischen, wohl aber zu europäischen Formen aufweisen, aber doch

in bestimmter Weise modifiziert erscheinen. Gen. Broteas hat von den

für Südafrika eigentümlichen Cop. die weiteste Verbreitung. Es

Publikationen und Referate, 171

werden genannt: O'ypris spinosa n. Sp., ©. gunningt n. Sp., ©. chrissiensis

n. Sp., Ü. mastigophora n. Sp., ©. tuberculata n. sp., Leydigia trispinosa

n. sp., Chydorus carolinae n. sp., Simocephalus corniger n. Sp., Daphnia

pulex u. D. gibba n. sp., Broteas falcifer, Metadiaptomus n. gen., M. trans-

vaalensis n.sp., Canthocamptus sp.? F. 8.

*[Novikov, A.] (1). Hosukopp, A. BB Kp daymb Cladocera

HEKOTOPEIXB 03epp Boroponckaro ytanza MockogBckofi TyOepHin.

[Die Cladocerenfauna einiger Seen des Kreises Bogorodsk Gouv.

Moskau.] Trd. Otd. ichtiol. Obs&. akklim. Moskva, vol.7, 1910.

. 81%.

N *— (2). Kp dayıl pakooöpasusıxp (Cladocera) 3apocram-

INMHXB 03epb. [Zur Crustaceenfauna (Cladocera) der verwachsenden

Seen.] Moskva, Dnevn. XII Sjezda russ. jest. vra&. (Prot.) 1910 (p. 544

—545).

*_— (3). [Rapport preliminaire sur les travaux au lac Irtiache etc,

(Russ.)]. Ekaterinburg Bull. Soc. Oural. nat., vol. 30, 1910, p. 135

—165.

*_ (4). [Sur le plankton des lacs Transouraliens. (Russ.)] Eka-

terinburg, Bull. Soc. Oural. nat., vol. 30, p. 166—180.

*— (5). [Contribution a la faune des crustaces (surtout des

Cladocera) des lacs envahis par la vegetation (observations perso-

nelles). (Russ.)]. Ibid. p. 181—193.

Papanicolau, Georg (1). Über die Bedingungen der sexuellen

Differenzierung bei Daphniden. Leipzig, Biol. Centralbl. v. 30 p. 430

— 440. — Verf. kann nach seinen Ergebnissen zwischen den Ansichten

von Strohl, Keilhack u. Kuttner, die einen Einfluß äußerer Faktoren

auf die Cyclen bestreiten, einerseits und Issakowitsch, Woltereck u.

Langhans, die einen größeren oder geringeren Einfluß zugestehen,

andererseits, vermitteln. Die genaue Beobachtung normaler Cyelen

lehrt, daß die der ersten Generationen große Tendenz zur Partheno-

genesis, die der späteren eine Tendenz zur Sexualität besitzen und

daß sich dazwischen alle Übergänge befinden. Ausgezeichnet ist dies

bei Moina rectirostris var. lilljeborgi zu verfolgen, deren Eier in ver-

schiedenen Farbenabstufungen regelmäßig diese Fortschritte in der

Tendenz zeigen. An der Hand von verschiedenen Zuchtserien zeigt P.

klar, daß die äußeren Einflüsse, Wärme und Kälte besonders, nur

bei den mittleren Übergangsstadien der Generationenfolge mit Erfolg

angreifen u. einwirken, dagegen bei den ersten und letzten Gene-

rationen ohne Emfluß auf Parthenogenesis, bezw. Sexualität bleiben,

vielmehr nur Degenerationserscheinungen erzeugen.

— (2). Experimentelle Untersuchungen über die Fortpflanzungs-

verhältnisse bei Daphniden. (Simocephalus vetulus und Moina recti-

rostris var. Lilljeborgii). Leipzig, Biol. Centralbl. v. 30 p. 689—692,

737—150, 753— 774, 785—802. Tabellen, Figg. — Verf. führt seine

unter 1 berichteten Befunde weiter aus und belegt sie mit zahlreichen

Tabellen und Beispielen. Er gibt Curven für die Anzahl u. Größe der

Eier und spricht über die Wachstumsverhältnisse der Formen. Als

Abnormitäten werden Deformationen des Auges erwähnt. Auch der

172 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Hunger führt bei allmählichem Eintritt die gamogenetische Fort-

pflanzung herbei. Einfluß von Stoffwechselprodukten u. chemischen

Bestandteilen auf Cyclen war nicht nachzuweisen. Verf. beleuchtet

auch cytologische Veränderungen.

— (3). Dasselbe als Inaug.-Dissert. München. Erlangen, Hof-

Univ.-Buchdruckerei, Junge und Sohn. 1911.

*Pearse. 12.Rep. Michigan Acad. Sci., p. 68—76.

Pilsbry, Henry A. (1). Report on Barnacles of Peru, collected

by Dr. R.E. Coker and others. Washington, Proc. U. 8. nat. Mus.,

v.37 p. 63—74, 4 Taf. — Commensale und parasitische Cirr. wurden

nicht gefunden, was für die Westküste von Nord- u. Südamerika

bemerkenswert ist. Es werden charakterisiert und teilweise abgebildet:

Fam. Balanidae Tetrachta porosa, Balanus 6 sp. darunter B. peruvianus

n.sp., Chthamalus cirratus u. O. scabrosus; Fam. Verrucidae Verruca

laevigata; Fam. Scalpellidae Mitella elegans; Fam. Lepadidae Lepas

anatifera L. pectinata, Conchoderma auritum. F. 8.

— (2). Stomatolepas, a Barnacle commensal in the throat of

the Loggerhead Turtle. N\. York, Amer. Natural., v. 44, p. 304—306,

1 Textfig. — Dieses kleine Cirr. fand sich zahlreich an der Mucosa

des Schlundes der Seeschildkröte Caretta caretta festsitzend. Verf.

nennt es Stomatolepas praegustator n.sp. F.

Quidor, A. (1). Sur l’Evolution et les affinites des Philichthydae.

Paris, ©. R. Ac. Sei. v. 151 p.834-—-836. 1 Textf. — Leposphilus

labrei lebt als junges Tier im Chalimusstadium an Labrus Donovani.

Die Mitteilung von C. Vogt, daß der Nauplius in der Seitenlinie para-

sitiere, ist unrichtig, vielmehr lebt das Jugendstadium mit dem Frontal-

ligament, später mit Antennen an irgend welchen Schuppen angeheftet

und steht den Dichelestidae nahe, während das freibewegliche, gut

schwimmende entwickelte Tier mit Lernaea u. Penella Ähnlichkeiten

aufweist, so daß die Phrlichthydae zwischen den Dichelestidae und

Lernaeidae rangieren.

— (2%). Sur la protandrie chez les Lernaeopodidae. Paris, C.R.

Ac. Sci. v. 150 p. 1464—1465. — Verf. beobachtete bei Anchorella

und Brachiella, daß das Pygmaeenmännchen mit ausgebildeten männ-

lichen Geschlechtsorganen an der Geschlechtsöffnung der 9 angeheftet

sind. Später finden sich dann erheblich größere Tiere, die keine Ge-

schlechtsorgane mehr haben und eine starke Entwicklung des Abdomens

aufweisen. Diese Tiere, die noch männliche Extremitäten besitzen,

befinden sich irgendwo am 2 oder direkt am Wirt. Die hinteren An-

tennen erscheinen dann als Klammerorgane. Verf. schließt daraus,

daß dasselbe Individuum nacheinander männlich oder weiblich ist,

also bei den Lernoaepodidae sich Protandrie finde.

— (3). ‘Note preliminaire sur Penella balaenopterae (Kopen et

Danielssen). Paris, Bull. Mus. nation., 1910 n. 2 p. 97—98. — Verf.

beschreibt die von Bouvier (2) erwähnte Penella balaenopterae. Das

Exemplar war leider unvollständig. Das Tier zerfällt in den Kopf

mit den Mundteilen, den Thorax mit 4 rudimentären Extremitäten-

paaren, deren erste 2 Paare noch zweiästig sind, und das sich allmählich

Publikationen und Referate. 173

stark zuspitzende Abdomen, welches zwischen einer Endgabel den

After trägt. Das Genitalsegment ist das 1. abdomimale und trägt

2 längliche Eisäckchen. Das Abdomen ist sehr stark befiedert. Der

Verf. gibt genaue Maße an.

*Rankin. Ann. N. York Acad. Sci., vol. 11. p. 225—258.

+[Reis, 0.] [Die Binnenfauna der Fischschiefer in Transbaikalıen].

Explor. geolog. chem. de fer Siberie St. Petersburg, vol.29, 1910,

p. 1-68 und deutsche Übersetzung 1—68. Taf. iv.

Richard, J. Les Campagnes scientifiques de S. A. 8. le Prince

Albert I. de Monaco. Monaco, Bull. Inst. oc&an., nr. 162. 159 pp.,

116 Fig. — Von p. 113—117 werden die wichtigeren Entomostracen-

funde aufgeführt. Hier werden erwähnt die interessanten neuen

Copepoden: Hyalopontius typicus Sars, der nur in erheblichen Tiefen

gefangen wurde, und den Gallen bewohnenden Parasiten in dem

Seeigel Phormosoma: Pionodesmotes phormosomae Bonnier. Es folgen

auch einige Vertreter der Clad., Ostr. u. Cirr. F.

Sars, 6. 0. (1). An account of the Crustacea of Norway. Bergen,

vol.5. Copepoda Harpacticoida, parts XXIX u. XXX, p. 337—368,

16 Taf. — Die Beschreibung der Danielssenia-species wird fortgesetzt.

Dann folgt ein neues Genus Psammis mit 1 n.sp., ferner Fultonia

mit 1 sp., Argestes n.g. mit 1 n.sp. Von Fam. Metidae: Metis mit

M.ignea; Fam. Balaenophilidae: Balaenophilus mit B. unisetis. In

einem Supplement folgen Zusätze. Es handelt sich um einige Arten,

sowie deren Verbreitungsgebiet. Darunter sind auch: Cervinia synarthra

n.sp. pro ©. Bradyi Norman, Harparcticus litoralis pro H. chelifer

Brady non Müller, Cervinia Bradyi, Eucanuella spinifera, Zosime

typica, Z. incrassata n.sp., Pseudobradya hirsuta, P. fusa, P. robusta

n.sp., P.elegans, Bradya armifera, Ectinosomella n.g. mit 1 n.sp.

Tegastes harparcticoides, T.calcaratus n.sp., T. longimanus und

Idyaca 1 n.sp. werden eingehender beschrieben. F. 8.

— (2). Report on the Ostracoda. Zoological results of the third

Tanganyika Expedition conducted by Dr. W. A. Cunnington, 1904

— 1905, London, Proc. Zool. Soc. 1910, p. 732—760, 10 Taf. — Verf.

nennt 29 Arten, unter denen 27 neu sind. Sämtliche Formen verteilen

sich auf 7 Genera, von denen Paracypria neu ist. Die Tiere wırden

mit dem Planktonnetz, meistens in der Nacht, erbeutet. Die meisten

Arten gehören dem Tanganyikasee, weniger dem Nyassa und Victoria

Nyanza an. sStenocypris perarmata wurde im T. und N. gefangen.

Wegen der merkwürdigen Verteilung der Arten von Paracyprva, von

welcher Gattung 12 dem Tang. angehören, während sich der Gattungs-

typ P.tenuis auf den Chatham-Isl. findet, und der ganz gleichen

Verteilung von Arten des Cop.-gen. Schizopera, erklärt Verf. wie schon

früher, daß eine Verschleppung dieser Entomostrakengattungen durch

Wasservögel nur durch sehr großen Zufall entstanden sei. F. 8.

Scharfenberg, U. v. Studien und Experimente über die Eibildung

und den Generationszyklus von Daphnia magna. Leipzig, Intern.

Rev. Hydrobiol. Hydrogr. v. 3, Suppl. 2 I, p. 1-42, 2 Taf., 8 Textfig.

— Verf. schickt einen geschichtlichen Überblick über die Kenntnis

174 Crustacea (Entomostraca) für 1910,

der Fortpflanzungsverhältnisse der Cladoceren vorauf. Seine histo-

logischen Untersuchungen erstreckten sich auf die Entwicklung des

Ovariums zu Jungfereiern einer- und Dauereiern andererseits, auf die

Abortivdauereikeimgruppe und ganz kurz auf das Anhangssäckchen

an der Antennendrüse und die in der Vierzahl auftretenden Rücken-

organe an der Basis des Brutraumes. Beide Arten von Eiern ent-

wickeln sich aus Vierzellengruppen, wobei die 3. Zelle zur Keimzelle

wird, die 3 anderen als Nährzellen fungieren. Bei der Jungferneibildung

treten nun, in einigen nach den Beinen zu gerichteten Keimgruppen

beginnend, in der 3. Zelle der Vierzellgruppe der grünliche Jungfern-

dotter auf. Dieser verbreitet sich allmählich über das ganze Ovarium.

Die Dauerei-Keimgruppe ist eine bestimmt lokalisierte Vierzellen-

gruppe. Hier resorbiert die Eizelle mehrere Keimgruppen. Der Dauer-

dotter ist schwarz und erfüllt schließlich die Hälfte des Ovariums.

Für das Auftreten der Abortivdauereikeimgruppe eine bestimmte

Regel zu geben war Verf. nicht möglich, ebenso für die Kernplasma-

relation unter verschiedenen Bedingungen. Der Übertritt der Eier

in den Brutraum geschieht durch die schwer sichtbaren Ovidukte

am Caudalende der Ovarien rechts und links vom Darmrohr. Bei der

Begattung bringt das $ seine Samenleitermündung unmittelbar an

den Ovidukt heran. Experimentell wurde der Einfluß von Ernährungs-

u. Temperaturänderungen geprüft und von den erzielten Generations-

reihen Stammbäume aufgestellt. Die hierbei erzielten Resultate

nähern sich außerordentlich den gleichzeitigen von Papanicolau

(s. d.). Es besteht ein durch Naturzüchtung erworbener innerer Turnus

von Öyclen, welche jedoch nicht ganz exakt in ihrer Eibildung vorher-

bestimmt sind, es herrscht vielmehr anfangs Tendenz zur partheno-

genetischen Vermehrung, welche allmählich abnimmt, während die

Tendenz zur sexuellen langsam wachsend an ihre Stelle tritt. Die

konstatierte Reaktionsfähigkeit gegenüber günstigen oder ungünstigen

Lebensbedingungen mit einem Einfluß auf die Umkehrung einer der

genannten Tendenzen in ihr Gegenteil mag auch durch Naturzüchtung

entstanden sein. Der innere Faktor, die jeweilige Tendenz, und der

äußere Faktor, die vorherrschende Lebensbedingung, können sich

unterstützen oder bekämpfen, stehen also in einem Konkurrenz-

verhältnis.

Scott, Thomas (1). Notes on the distribution of pelagie Crustacea

in lower and upper Loch Fyne. Glasgow, Annual Rep. Fish. Board

Scott. for 1908, part III, p. 74—99. — Die beschriebenen zahlreichen

Fänge datieren von 1905—08 aus verschiedenen Jahreszeiten. Pela-

gische Cop. sind sehr vorherrschend, besonders häufig Calanus helgo-

landicus. Im Ganzen werden genannt 13 Calanoiden, darunter Para-

pontella brevicornis, Acartia clausi, 2 Harpacticiden, 1 Cyelopide,

1 Monstrillide, Thaumaleus rigidus. F. 8.

— (2). Notes on Crustacea found in the Gizzard of a Deepsea

Cephalopod. London, Ann. nat. Hist., ser.8 v.5 p.51—54. — Von

Cop. führt Verf. an Oithona sp., Euterpe acutifrons und Pontostratiotes

abyssicola, von welchem eine Beschreibung folgt. Der Stauroteuthis

Publikationen und Referate, 175

hippocrepium stammt aus 2425 Faden Tiefe in 660 40° 8. Br. und

40° 35° W.Lge.

Sernov, 8.A. Grundzüge der Verbreitung der Tierwelt des

Schwarzen Meeres bei Sebastopol. Abteilung II: Plankton. (Über

die vertikale Verteilung des Planktons im Schwarzen Meer bei Sebasto-

pol. [Vorläufiger Bericht.]). Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr.

v. 3, p. 2399—305. 1 Tabelle. — Die Fänge erfolgten 11/, Jahre hindurch

allmonatlich in Tiefenstufen von 0, 5, 10, 20 und 30 Faden stets an

der gleichen Stelle mit einem modifizierten Netz nach Cori und hierbei

wurde eine Verteilung des Planktons nach Tiefenzonen mit Beziehung

zur Temperatur beobachtet. In den Wintermonaten ist an der Ober-

fläche das Plankton sehr gering während in den tieferen Schichten

mit sehr geringen Temperaturunterschieden die Verteilung sehr

gleichmäßig ist. Während auch im April diese Verteilung noch

wesentlich herrscht, tritt im Mai ein außerordentliches Wachsen

der Planktonmenge an der Oberfläche ein, welches das der tieferen

Schichten überwiegt. Dieses Verhältnis gleicht sich im Sommer mehr

aus bei Anwachsen der Gesamtmenge. Im Sommer herrscht animales

Plankton vor. Es werden von Entomostraca hauptsächlich Cop.

herangezogen, Clad. in wärmeren Wasserschichten vorkommend

kurz erwähnt.

Sharpe, Richard, W. (1). On some Ostracoda, mostly new, in the

Collection of the United States national Museum. Washington,

Proceed. U. S. nat. Mus. vol. 38, p. 335—341, 5 Textf. — Verf. beschreibt

die folgenden Ostracoden: Oypris (Cypris) globulosa n. sp., C. (Cypri-

notus) dentata n. sp., C’ypria obesa, Chlamydotheca barbadensis n. sp. 8.

— (2). Notes on the marine Copepoda and Cladocera of Woods

Hall and adjacent regions, including a synopsis of the genera of the

Harpacticoida. Ibid. p. 405—436, 20 Textf. — Von Cop. werden

42 genera mit 60 Arten, von Clad. 2 gen. und 2 Arten aufgeführt. Neu

ist Ilyopsyllus sarsi n.sp. In der Bestimmungstabelle der Harpactis

coiden-Geschlechter, welche 87 genera umfaßt, befinden sich knappe

Diagnosen. Parawestwoodia n. nom. tritt für den praeoccupierten

Namen Westwoodia Dana ein. F. 8.

* Skorikov, A.S.] = [Zoologische Untersuchung des Wassers

des Ladoga-Sees als Trinkwasser.] St. Petersburg 1910. p. 1—123,

1 Karte u. 1 Taf. 25 cm.

Smith, Geoffrey. Studies in the Experimental Analysis of Sex.

London, Quart. Journ. Mier. Soc. v.55 n.ser., p. 225—240. 1 Taf.

— Junge $ von Inachus mauretanicus, die von Saceulina neglecta

befallen waren, nahmen adulte weibliche Geschlechtscharaktere an.

Verf. beleuchtet die Bedeutung dieser Fälle.

Stebbing, T. R. R. General Catalogue of South African Crustacea.

(Part V of S. A. Crustacea for the Marine Investigations in South

Africa.) Cape Town, Ann. 8. Afric. Mus., vol. 6, part IV, p. 281—593,

8 Taf. — Verf. nennt eine Anzahl von Arten der verschiedenen Gruppen.

Für verschiedene Namen, besonders solche für Gruppen, führt er andere

ein. No sagt er: Arpacticidea für Harpacticoida Sars, Calanidea für

176 Crustacea (Entomostraea) für 1910.

Gymnoplea, Caligidea für Caligoida Sars, Lerneopodidea für Lernaeoida

Bars, Uyclopidea für O'yclopoida Sars, Notodelphyidea für Notodelphy-

oida, Pachos für Pachysoma Claus, Cyzicidae für Estheriidae, Ostra-

poda Straus für Ostracoda Latreille, Coronula darwini für ©. balaenaris

Darwin (non Müller). F. S.

Steuer, Adolf (1). Plankton-Copepoden aus dem Hafen von

Brindisi, (Ergebnisse einer von Dr. Ad. Steuer mit Unterstützung

des k. k. Ministeriams für Kultus und Unterricht und des Vereins

zur Förderung deutscher Kunst und Wissenschaft in Prag unter-

nommenen Studienreise nach Agypten II!). Wien, Sitz.-Ber. Ak.

Wiss. v. 119, Abtg. 1 p. 591—598, 6 Textfigg. — Verf. nennt 8 Cop.,

darunter neu für die Adria Acartia latisetosa, A. italica n. sp. und Longt-

vedia rosea. F. 8.

— (2). Adriatische Planktoncopepoden. Wien, Sitz-Ber. Akad,

Wiss., Math. Naturw. Kl. v. 119, Abtlg. 1, p. 1005—1039, 6 Textfigg.

— In der Adria nimmt nach Süden zu die Quantität des Planktons ab,

während die Artenzahl wächst. Die offene See hat reicheres Plankton

von Cop. als die Litoralzone. Da die Adria nach Norden immer flacher

wird, finden sich von Süden nach Norden zu immer weniger Tiefen-

bewohner, sodaß Verf. für die einzelnen Arten ihre nördl. Grenze

angeben kann. Die Knephoplanktonten sind verhältnismäßig große

Formen, das Phaoplankton wird vornehmlich aus Kleincopepoden

zusammengesetzt. Das Plankton stimmt in seiner vertikalen Ver-

breitung mit dem Neapler nicht völlig überein. So wurde hier Zuchaeta

hebes in 200 m Tiefe in mehreren reifen Individuen gefangen, ein Tier,

das von Neapel als Phaoplanktont bekannt ist. In Landnähe mischt

sich das litorale Phaoplankton mit dem Knephoplankton der offenen

See. Vertreter von Eucalanus, Mecynocera, Aetideus u. Haloptilus

wurden unter 100m gefangen. Im nördlichsten Teil der A. ist das

Wasser etwas brackig, wird aber im Spätherbst durch Versiegen der

Gletscherbäche und Einwirkung des Scirocco etwas ausgesalzt und

darum mit südlicheren, auch knephoplanktontischen Cop. bevölkert.

Am meisten im Brackwasser vorgedrungen fand sich Oithona nana

und Euterpe acutifrons. Interessant ist das Vorkommen einiger sonst

nur in Nordmeeren verbreiteten Planktoncopepoden. Diese Boreal-

typen sind Temora longicornis, Pseudocalanus elongatus u. Diarwxıs

pygmaea. Verf. erwähnt dann einige Mißbildungen und Ectoparasiten

bei Cop. der Adria. Neu für die Adria sind 31 Formen, darunter

3n.5p. F.S.

— (3). Veränderungen der nordadriatischen Flora und Fauna

während der letzten Dezennien. Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol.

Hydrogr. v.3, p. 6—16. — Durch starkes Seltenerwerden des aus-

gewachsenen Hummers bei Triest wird auch von seinem Parasiten

Dichelaspis darwini ein Rückgang zu erwarten sein. Scalpellum wird

nur in reinem Wasser getroffen, sodaß auch hier die zunehmende

Wasserverschmutzung in der Nähe der größeren Städte Um-

änderungen herbeiführen wird.

Publikationen und Referate. 177

Stingelin, Th. Crustaceen aus kleineren Seen der Unterwaldner-

und Berneralpen. Geneve, Rev. Suisse zool. vol. 18, p. 105—172,

2 Taf., 2 Kart. — Es werden aufgeführt 29 Clad., darunter allein

10 Varietäten und Formen von Daphnia longispina subsp. longispina

s. str., von denen eine var. major forma nova volzi neu ist, ferner

10 Cop. und 5 Ostr. Die einzelnen Arten werden besprochen. Die

Varietäten von D.longispina s.str. sind nicht als bloße „forma“

(Keilhack) zu bezeichnen, sondern auch als biologisch (Dauereier-

weibchen und &) und geographisch (Übereinstimmung mit gleichen

nordischen Typen) deutlich charakterisierte Varietäten. Man kann

sie nicht auf eine Stufe stellen mit den zahllosen Seen-Formen der

var. hyalina. Es wird bemerkt, daß sich nirgends eine D. pulex fand,

die in den Alpen nur sporadisch aufzutreten scheint. Gänzlich fehlte

auch Bosmina. — Der Saisonvariation dürften im Gebiete der Hoch-

alpen sehr enge Grenzen gezogen zu sein. Die Art der Fortpflanzung

war in den einzelnen oft nahe gelegenen Tümpeln häufig recht ver-

schieden. Merkwürdig erscheint, daß zur Zeit der stärksten Erwärmung

und üppigsten Entfaltung der Wasservegetation zur sexuellen Fort-

pflanzung mit Bildung von Dauereiern geschritten wird. Die Daphnia

longispina var. stellen ausgeprägt nordische Glacialrelikte dar. F. 8.

*Thallwitz, Johannes. Beobachtungen über den Saisonpoly-

morphismus einiger Planktoncladoceren. Dresden, Jahresbericht

der Annenschule (Realgymnasium) zu Dresden-Altstadt. 16 pp. +

1 Tab.

Turner, €. H. Ecological notes on the Cladocera and Copepoda

of Augusta, Georgia, with descriptions of new or little known species.

Transact. Acad. Sei. St. Louis. v.19 nr. 10 p. 151—176, 3 Taf. —

Das untersuchte Gebiet bei Augusta in Georgia enthält eme Anzahl

künstlicher Teiche und mehrere Bäche, die zum Savannahriver fließen.

Verf. betrachtet besonders die Vergesellschaftung verschiedener

Entomostr. unteremander und mit anderen Süßwasserbewohnern.

Es sind 15 Cop. und 24 Clad., von denen auch Notizen über Temperatur

des Wassers, Variabilität (Daphnia hyalina), Häufigkeit des Vor-

kommens und Beziehung zur Vegetation angeführt werden. Obwohl

die Gewässer zeitweise zufrieren, wurde keine Wintereibildung bei

Clad. bemerkt. Ausführliche Tabellen geben eine ausgezeichnete

Übersicht über die verschiedenen ökologischen Beziehungen und

Maße der 2. Verf. beschreibt auch 2 n. sp.: Diaptomus augustaeensis

u. Bosmina reversaspina. F. 8.

Weigold, H. Biologische Studien an Lyncodaphniden und Chydo-

riden. Leipzig, Intern. Rev. Hydrobiol. Hydrogr. v. 3, Suppl.2 II,

p. 1—118. Tabellen und Diagramme. — Verf. hat über die ökologisch

bisher wenig untersuchten Gruppen, die sehr ursprüngliche Clad.

zusammenfassen, ein außerordentlich reiches Material zusammen-

getragen, das er sehr übersichtlich in knappen Tabellen und Dia-

grammen darstellt. Es wird jede Art einzeln besprochen und dabei

zunächst auf ihre Morphologie und Variationen eingegangen. Im

ganzen werden aus dem Königr. Sachsen 35 sp. mit 8 subsp., form.

Archiv für Naturzeschichte =

1911. V. 2. 12

178 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

und var. genannt. Bezüglich der Zahl und dem Vorhandensein der

Cyelen und dem zeitlichen Eintreten der Perioden bestehen unter den

Arten und auch für die Breitengrade und die vertikalen Höhenlagen

große Unterschiede. Für die Chydoriden sind 2 Sexualperioden ur-

sprünglich anzunehmen, deren erste in mittleren Breiten fast überall

rudimentär ist. In nördlichen Ländern und in Hochgebirgen wird

die erste Sexualperiode stärker, die zweite früher, bis sich beide ver-

schmolzen zu einem Maximum im August-September erheben. F.

Weltner, W. Cirripedien von Ostafrika. Stuttgart, Voeltzkow

Reise Ostafrika 1903—1905, vol.2, p. 527—528. — Die Ausbeute

besteht aus 9 schon bekannten Arten von Sansibar, Mafia, Madagascar

und der Insel Europa im Kanal von Mozambique. Es sind Lepas

anatifera, L. a. var. b Darwin, L. pectinata, sonst nur vom atlantischen

Ozean, nicht aber aus dem Indie bekannt. Lithotrya nicobarica aus

meterdicken Felsen von Porites auf der Isl. Europa. Die Koralle war

nicht metamorphosiert. Ferner Chelonobia caretta, C. testudinaria,

beide von Chelone mydas von Isl. Europa, Tetrachta porosa, auch

sonst in wärmeren Meeren weit verbreitet, Acasta aus einem monaxonen

Schwamm von Isl. Europa, Balanus tintinnabulum u. B. amphitrite. F.

Wesenberg-Lund. Grundzüge der Biologie und Geographie des

Süßwasserplanktons, nebst Bemerkungen über Hauptprobleme zu-

künftiger limnologischer Forschungen. Mitteilungen aus dem bio-

logischen Süßwasserlaboratorium Frederiksdal bei Lyngby (Däne-

mark). Nr. VI. Aus dem Dänischen übersetzt von Oskar Guyer

(Zürich). Vorwort von Prof. €. Schröter (Zürich). 19 Textfigg. —

Die Dänische Arbeit erschien in der schwedischen Zeitschrift ‚, Ymer“,

Jahrg. 1909 Heft 1. Sie enthält eine schöne Zusammenfassung wichtiger

neuer Resultate der Süßwasserplanktonforschung. Verf. vergleicht

zuerst marines und Süßwasserplankton. Das letztere ist ärmer an

Formen, aber stabileren Lebensbedingungen unterworfen. Ein

wichtiger Bestandteil ist das Kontingent der Entomostraca. Die

Planktonorganismen treten zu verschiedenen Jahreszeiten periodisch

in verschiedenen Quantitäten auf. Besonders das Plankton niederer

einzelliger Pflanzen übt einen großen Einfluß auf das Milieu aus

(Transparenz, Farbe, Temperatur usw.). Geologische Ablagerurgen

lassen aus ihrer Zusammensetzung auf die Beschaffenheit des einstigen

Gewässers schließen. Das Süßwasserplankton stammt aus dem

Meere. Es zeigt morphologische Anpassung an das Schweben im

freien Wasser. Jahreszeitliche Temperaturschwankungen verursachen

Änderungen in spez. Gewicht und Viskosität des Wassers. Daher

ändern die Planktonten ihre Schwebeeinrichtungen in der Folge der

Generationscyelen, Temporalvariationen. Aus eben demselben Grunde

bestehen an verschiedenen Lokalitäten im Sommer verschiedene

Lokalvariationen, die in Winter überall in eine einheitliche Winter-

rasse zusammenfallen. Die hochnordischen Formen gleichen unserer

Winterrasse. Beide Variationen können als Eiszeitphänomene auf-

gefaßt werden. Verf. glaubt den Begriff „Relikt“ nicht so eng fassen

zu dürfen wie viele andere, vielmehr verteilt er seinen Inhalt auf

Publikationen und Referate. 179

„Jura“-, „Kreide“-, „Eiszeitrelikte‘“ usw. Der erstaunliche Kosmo-

politismus der Planktonorganismen weist auf das sehr hohe Alter

dieser Lebensgemeinschaft hin.

Wester, D. H. Über die Verbreitung und Lokalisation des Chitins

im Tierreiche. Jena, Zool. Jahrb. Syst. v.28, p. 531—568, 1 Taf.

1 Textfig. — Nach einer Besprechung der Untersuchungsmethoden,

besonders der Chitosan-Reaktion, geht Verf. auf die einzelnen Gruppen

des Systems ein. Von Crust. wurden Decap. und Cirrip. untersucht.

Willey, A. Association of Barnacles with Snakes and Worms.

Colombo, Spolia zeylanica, vol. 6, p. 180—181. 1 Taf. — Lepas ansert-

fera an der Wasserschlange Hydrus platurus angeheftet.

*Williamson, Wm. Note on Piona carnea C. L. Koch and Eury-

cypris pubera (O.F.M.). Edinburgh, Proc. R. Physie. Soc., vol. 18,

p. 2— 9.

Wilson, €. B. The Classification of the Copepods. Leipzig, Zool.

Anz. v.35 p. 609—620. — Verf. zählt zuerst fast alle Einteilungen

der Copepoden seit Linn& auf und kritisiert sie. Er stellt eine Reihe

von Anforderungen und Fragen, an denen er die Systeme nachein-

ander prüft, wobei aber wegen Unvollständigkeit und Unnatürlichkeit

keins standhält. Besonders handelt es sich um einen natürlichen

Anschluß der Parasiten an freilebende Formen. Es bleibt schließlich nur

noch das System von G.O. Sars übrig, das wesentlich sich auf das

von Giesbrecht aufbaut. Hiernach unterscheidet man 7 typische

Unterordnungen: 1. Calanoida, 2. Harpacticoida, 3. Cyclopoida,

4. Notodelphorda, 5. Monstrilloida, 6. Caligoida u. 7. Lernaeoida. Die

Calanoida zerfallen in Amphaskandria, Isokerandria und Heterar-

thrandria, die Harpacticoida in Achirota und Chirognatha.

Die Ergasilidae, Sichomolgidae und Corycaeidae zählt Verf. zu

den Cyclopoida, die Chondracanthidae zu den Lernaeoida. Von frei-

schwimmenden Formen, wie verschiedenen Lichomolgidae finden

sich in der neuen Anordnung alle Übergänge von Kommensalismus

und Seimiparasitismus, wie bei einigen Lichomolgidae und Corycaeidae,

zu den Vollparasiten der Ergasilidae und den sehr stark umgeformten

Chondracanthidae. Verwandtschaftlich gehören die Lernaeidae enger

zu den Caligidae und Dichelestidae als zu den Lernaeopodidae. Es

entsteht auch hier eine Reihe von den noch schwimmenden Caligus,

Lepeophtheirus und Trebius über die minder beweglichen Pandarus,

Cecrops und Laemargus und die Dichelestidae zu den unbeweglichen

degenerierten Lernaeidae.

TWithers, Thomas, H. (1). Some new species of the Cirripede

genus Scalpellum from British Cretaceous Rocks. London, Geol. Mag.

Decad. 5, vol.7, p. 151—159.

t— (2). The cretaceous Cirripede Pollicipes laevis, J. de C. So-

werby. Ibid., p. 495—501.

Zograf, N. de. Note sur le cosmopolitisme des animaux d’eau

douce. Paris, Bull. Soe. zool. France, v. 35 p. 177—187, 1 Karte. —

Kosmopolitismus ist besonders bei den Süßwasserbewohnern ver-

12*

180 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

breitet, die Ursachen sind geologische, meteorologische, biologische

u.a.m. Für geologische Einflüsse gibt Verf. als Beispiel die Über-

einstimmung der Potamofauna des europäischen Rußland. Die Flüsse

beziehen ihr Plankton aus gemeinsamen Quellgebieten, die ihrerseits

als Eiszeitrückstände zu betrachten sind. Die biologischen Eigen-

tümlichkeiten, besonders Dauereibildung, der Phyllopoden geben

meteorologischen Einflüssen, wie Wind und Regen mit Entstehen

und Trockenlegung von Gewässern und Verbreitung von Keimen

günstige Angriffspunkte.

Zulueta, Antonio de. Deuxieme note sur la famille des Lamippidae,

Copepodes parasites des Alcyonaires. Paris, Arch. Zool. exper. gen.

ser.d, v.6, p. 137—148, 13 Textfig. — Verf. betrachtet die Bildung

des Buccalapparates und der Furca bei den einzelnen Formen der

Fam. Dann beschreibt er und bildet ab 4 neue Arten Lamippe. Zum

Schluß gibt er eine Übersicht über die Verteilung der Parasiten auf

die Arten der Alcyonarier. 8.

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie.

Anatomie der Süßwasserostracoden, Darmkanal mit Anhängen, Exkretions-

organe, Geschlechtsorgane Bergold. — Bau der Maxillardrüse bei Cirripedien

Defner. — Morphologische Befunde an Ergasilus Sieboldi Freidenfelt. — Extre-

mitätenorgan für Regelung der Blutzirkulation bei Leptodora kindtii Gerschler

(1, 2). — Morphologie der Schalenstücke bei peduncul. Cirr. Joleaud (2, 3). —

Histologie des Ovariums bei Daphnia v. Scharfenberg.

Biologie.

(Ethologie, Physiologie usw.).

Züchtung von Plankton - Entomostr. in künstl. Nährlösungen Allen u.

Nelson. — Die Tiefe des Wassers, in welcher Organismen leben Apsteip (1). —

Verteilung von nord. Clad. u. Ostr. bezügl. Temperatur, Salzgehalt usw. Apstein

(4, 5). — Wechselbeziehungen zwischen Netz- und Zentrifugenplankton Brehm (2).

— Brackwassercop. als Binnenseebewohner Brehm (5). — Vertikale Plankton-

wanderung, Lichtflucht, Uferflucht Burekhardt (1, 2). — Orientierung, Loko-

motion, Lichtreaktion und deren Bedeutung für Tropismen Ewald. — Photo-

taxis und Wanderung, Erregungsreaktionen unter anormalen Zuständen Franz.

— Verteilung von nord. Cop. bezügl. Temperatur, Salzgehalt, Strömungs-

verhältnissen Farran. — Regelung der Blutzirkulation in den Antennen bei

Leptodora Gerschler (1, 2). — Höhlencopepoden Graeter. — Mimikry der Ba-

lanen Joleaud (1). — Einfluß der Dunkelheit auf die Gefühlsorgane der Daphnien

Kapterew. — Entomostraken in Abwässern Kolkwitz. — Wachstum bei nord.

Planktoncop. Kraefft. — Plankton und Strömungsverhältnisse in der Straße

von Messina Löhmann. — Eiablage bei Cop. Matschek. — Geschlechtsreife bei

verschiedenen Nahrungs- und Temperaturverhältnissen Me Clendon (1). — Be-

dingungen der sexuellen Differenzierung bei Daphnien. Vermittlung zwischen

den beiden gegensätzlichen Ansichten Papanicolau (1, 2, 3). — Ein Gallen be-

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 181

wohnender Cop. Richard. — Generationscyclen bei Daphnia v. Scharfenberg.

— Temporale u. lokale Verteilung der Cop. des Schwarzen Meeres Sernev. —

Varietäten, Formae bei Daphnia Stingelin. — Saisonpolymorphismus bei

Planktoncladoceren Thallwitz. — Oecologische Notizen über Clad. u. Cop. Turner.

— Variationen, Cyclen bei Lyncodaphniden und Chydoriden Weigeld. — Haupt-

probleme der limnologischen Forschung. Schwebeeinrichtungen, temporale u.

lokale Variationen, Relikte, Kosmopoliten usw. Wesenberg-Lund. — Chitin

bei Cirripedien Wester. — Kosmopolitismus bei Süßwasserorganismen, Phyllo-

poden, Dauereibildung Zograf.

Spermatogenesis, Oogenesis, sonstige cytologische Verhältnisse.

Polyembryonalentwicklung aus 2kerniger Sacculina Kollmann. — Chromo-

somenverhältnisse in generativen und somatischen Mitosen bei Diaptomus

Krimmel. — Oogenesis bei Cop. Matscheck. — Entwicklung der Geschlechts-

zellen bei Daphnia Me Clendon (1). — Spermatogenesis von Pandarus sinuatus

Me Clendon (2).

Ontogenie.

Polyembryonalentwicklung aus 2kerniger Sacculina Kollmann. — Ent-

wicklung der Geschlechtsorgane Krimmel. — Sexuelle Differenzierung bei Daphnia

Papanicolau (11 2). — Protandrie bei Lernaeopodidae Quidor (2).

Phylogenie.

Entstehung des Entomostraken-Süßwasserplanktons durch Einwanderung

vom Ufer aus Burekhardt (1). — Stammbaum der Phyllopoda anostraca Daday (2).

— Abstammung blinder Höhlencop. Graeter. — Stammbaum der pedunculaten

beschalten Cirr. Joleaud (3). — Entstehung des Süßwasserplanktons Wesenberg-

Lund. — Verwandtschaftl. Beziehungen der Cop.-Familien Wilson.

Symbiose und Parasitismus.

Pennella balaenopterae, C'oronula reginae u. Conchoderma auritum auf Balaeno-

ptera Bouvier (2). — Parasitische Dinoflagellaten von Cop. Chatten (1, 2). —

Paras. Suctor. von Cop. Chatton u. Collin. — Triangulus munidae an Munida

bamffica Guerin-Ganivet (1). — Stomatolepas im Schlunde von Caretta caretta

Pilsbry (2). — Anheftung von Leposphilus labrei an Labrus Quidor (1). — Cop. in

einem Tintenfisch Seott (?). — Sacculina erzeugt bei $ von /nachus weibl. Ge-

schlechtscharaktere Smith. — C'helonobia sp. an C'helone Weltner. — Lepas anseri-

fera an der Wasserschlange Hydrus platurus Willey.

Entomostraca als Fischnahrung.

Nord. Cop. als Fischnahrung Farran.

Faunistik.

Allgemeine geographische Verbreitung.

Verbreitung der Phyllopoda anostraca Daday (2).

182 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Fauna der Binnengewässer.

Europa.

Deutschland: Apus productus und Branchipus stagnalis bei Halle Daehne.

— Canthocamptus pilosus aus einem Wiesengraben am oberbayerischen Wörthsee

van Douwe. — Höhlencop. Graeter. — Bythotrephes longimanus Keilhack u. Rühe,

— Lyncodaphniden und Chydoriden aus Sachsen Weigold. — Österreich-

Ungarn: Seltene Phyllopoden von Brehm (3). — Italien: Cop. der Phle-

gräischen Felder Brehm (4). — Dalmatien, Bosnien u. Herzogowina:

Cop. v. D., B. u. H. Brehm u. Ruttner. — Großbritannien: Cheirocephalus

diaphanus bei Eton Hill. — Frankreich: Höhlencop. Jeannel u. Racovitza.

— Cypris hessei n. sp. aus Dauphine Keilhack. — Schweiz: Clad. aus kleineren

Seen der Unterwaldner- und Berneralpen Stingelin.

Asien.

Das Plankton des Gregory-Sees auf Ceylon Apstein (2).

Afrika.

Entomostraken von Deutsch-Ost-Afrika Daday (1). — Süßwasserentomo-

straken von Abyssinien und Äthiopien Daday (3). — Cop. und Clad. aus dem

ägyptischen Sudan und Nord-Uganda Daday (6). — Cop. von Transvaal Methuen.

— Ostracoden aus dem Tanganyikasee Sars (2). — Entomostraken von Süd-

Afrika Stebbing.

Amerika.

20 neue Arten von Cladoceren aus den Vereinigten Staaten Birge. — Argulus

Ichesi n.sp. von Buenos Aires Bouvier (1). — CO'yclops-spec. von Nordamerika

Marsh. — Clad. von Augusta in Georgia Turner.

Antarktischer Archipel.

Branchinecta Gaini n.sp. aus dem Antarktik Daday (4).

Fauna der Meere.

Atlantik.

Cirr. von der Westmauritan. Küste Bouvier (5). — Cop. von Norwegen

Sars (1). — Pelagische Cop. aus dem Loch Fyne Seott (1).

Nord- und Ostsee.

Cladoceren und ÖOstracoden aus Nord- u. Ostsee, Skagerak, Kattegatt uw.

Apstein (3, 4, 5). — Plankton der Nord- u. Ostsee Kraefft.

Arktik.

Cop. von Norwegen Sars (1).

Mittelmeer.

Entomostraken von den Fahrten des Fürsten von Monaco Richard. —

Planktoncop. aus dem Hafen von Brindisi Steuer (1). — Cop. der Adria Steuer (2).

Indo-Paecifik.

Scalpellum lambda in der Andamanen-See Annandale (1). — Subg. Smilium

aus dem Indik Annandale (2). — Dichelaspis-spec. aus dem Indik Annandale (3).

Faunistik. Systematik. 183

— Östracoden von den Funafuti-Isl. Chapman (2). — Entomostr. von den

Kermadec Isl. Chiton. — Cop. von der Küste von Californien Esterly. — Cirr.

von der Küste von Peru Pilsbry (1). — Cirripedien von Ostafrika Weltner.

Antarktik.

Entomostraken von den Kerguelen Bouvier (2). — Cop. von den Kerguelen,

Neu-Amsterdam, Simonsbai, St. Paul u.a. Brady (1).

Systematik.

Verzeichnis der rezenten neuen Gattungen und Arten, sowie der Synonyma.

Brachiopoda.

Phyllopoda.

Archichirocephalus gen. hyp. Daday (2).

Archipolyartemia gen. hyp. Daday (2).

Artemiella n.g., A. skorikowi n.sp. Daday (2).

Branchinecta Gaini n.sp. Daday (4, 5).

Branchinectella n.g. Daday (2).

Branchinellites n. g., B. Chudeaui n.sp. Daday (5).

Branchipodopsis wolfi n.sp. Daday (2).

Chirocephalellus n. subg. ad C'hirocephalus Prevost. Daday (2).

Chirocephalopsis n.g. Chirocephalopsis (Nematosurus) rostratus n.sp. Daday (2).

Chirocephalus stagnalis n. var. salinus, C. s. n. var. carinatus Daday (5).

Chirocephalus s. str. n.subg. ad Chirocephalus. C. (C.) spinicaudatus n. var.

typicus Daday (2).

Chirocephalus (Chirocephalellus) turkestanicus n. sp, ©. (C.) altaicus n. sp.

Daday (2).

Oyzicidae n. nom. pro Estheriidae Stebbing.

Eubranchinella n.g. Daday (2).

Pristicephalus n.g., P, priscus n.sp. Daday (2).

Streptocephalellus n. subg. ad Streptocephalus Baird Daday (2).

Streptocephalopsis n.subg. ad Streptocephalus Daday (2).

Streptocephalus rothschildi n.sp. Daday (3).

‚Streptocephalus sudanicus n.sp. Daday (3).

Streptocephalus (Streptocephalopsis) zelineri n.sp. Daday (2).

Tanymastix perrieri n.sp., T. affinis n.sp. Daday (2).

Cladocera.

Alonella dadayı n.sp. Birge.

Bosmina reversaspina n. sp. Turner.

Chydorus carolinae n.sp. Methuen.

Daphnia gibba n.sp. Methuen.

Daphnia longispina subsp. longispina s. str. var. major forma nova volzi Stingelin.

Garbinia n. g., G. adriani n.sp. Grochowski.

Ilyalodaphnia Jardinei var. barbata Weltner 1896 = Il. barbata Daday 1910

Daday (1).

Latona parviremis n. sp. Birge,

184 Crustacea (Entomostraca) für 1910.

Leydigia trispinosa n. sp. Methuen,

Odontalona n.g. O. longicaudis n. sp. Birge.

Simocephalus corniger n.sp. Methuen.

Wlassicsia kinistinensis n. sp. Birge.

Copepoda.

Acartia adriatica n. sp. Steuer (2). A. italica Steuer (I).

Aetideopsis divaricata n.sp., A. pacıfica n.sp. Esterly.

Aetideus mediterraneus n.sp. Steuer (2).

Alteutha signata n. sp., A. villosa n.sp., A. nana n. sp. Brady (1).

Amenophia ovalis n.sp., A. tenuicornis n.sp. Brady (I).

Amphiascus glacialis n. sp., A. mucronatus n.sp. Brady (1).

Aplostoma magellanica n.sp., A. sacculus n. sp. Chatton u. Br&ment.

Argestes n.g., A. mollis n. sp. Sars (1).

Argulus ichesi n. sp. Bouvier (1).

Arpacticidea n.nom. pro Harpacticoida Sars Stebbing.

Artrotrogus gigas n.sp., A. sphaericus n.sp. Brady (1).

Asterocheres tenuicornis n.sp. Brady (1).

Augaptilus lamellifer n. sp., A. lucidus n.sp., A. macrodus n. sp., A. pyramidalis

n. sp. Esterly.

Bradypontius ignotus n.sp., B. serrulatus n. sp. Brady (1).

Calanidea n. nom, pro Gymnoplea. Stebbing.

Caligidea n. nom. pro Caligoidea Sars Stebbing.

Canthocamptus pilosus n.sp. van Douwe.

Cervinia synarthra n. nom. pro ©. Bradyi Norman Sars (Il).

Collocheres dubia n. sp. Brady (1).

Corycaeus brehmi n.sp. Steuer (2).

Cryptopontius innominatus n.sp. Brady (1).

Cyclopidea n. nom. pro COyclopoida Sars Stebbing.

Cyclops glacialis n.sp. Brady (1); ©. tenuis n. sp. March.

Dactylopina n.g., D. villosa n.sp. Brady (1).

Dactylopusia crassicornis n.sp., D. simillima n. sp., D. spinipes n. sp. Brady (1).

Dermatomyzon giesbrechti n. Sp., D. herdmani n. sp., D. imbricatum n. sp. Brady (1).

Diaptomus aethiopicus n.sp., D.africanus n.sp. Daday (1); D. augustaeensis

n.sp. Turner; D. bouvwieri n.sp. Daday (7%); D. kilimensis n.sp. Daday (1).

Diosaccus sordidus n.sp. Brady (1).

Disseta maxima n. sp. Esterly.

Dyspontius latus n.sp. Brady (1).

Dystrogus uncinatus n.sp. Brady (1).

Ectinosoma scotti n.sp., E. gracilicorne n. sp. Brady (1).

Ectinosomella n.g., E.nitidula n.sp. Sars (Il).

Eremopus n.g., E.debilis n.sp. Brady (1).

Euchaeta acuta n. var. pacifica, E. diegensis n.sp., E.solida n.sp., E. propria

n. sp. Esterly.

Euchirella simplex n.sp., E. truncata n. sp. Esterly.

Euryte propinqua n.sp. Brady (1).

Gaetanus secundus n. sp. Esterly.

Systematik. 185

Harpacticus littoralis n.nom. pro H.chelifer Brady non Müller, A. pulvinatus

n.sp., H. simplex n. sp. Brady (1).

Idomene australis n. sp., I. pusilla n.sp. Brady (1).

/dyaea tenella n.sp. Sars (Il).

Idyopsis tenella n.sp. Brady (1).

Lamippe Brementi n.sp., L. papillifera n.sp., L. pteroidis n.sp., L. sympodii

n. sp. Zulueta.

Laophonte glacialis n. sp., L. gracilipes n. sp., Brady (1); L. hecate n. sp. Brehm (4);

L. varians n. sp. Brady (1).

Laophontodes propinquus n. sp. Brady (1).

Lerneopodidea n. nom. pro Lernaeoida Sars Stebbing.

Lichomolgus tenuicornis n.sp., L. fuliginosus n. sp. Brady (1).

Machairopus lenticularis n.sp., M. digitatus n.sp., M. Sarsi n.sp. Brady (1).

Megarthrum simulans n.sp. Brady (1).

Mesochra nana n.sp. Brady (I).

Metadiaptomus n. gen., M. transvaalensis n. sp., Methuen.

Metaphroso n.g., M. gracilis n. sp. Brady (1).

Microcryobius n.g., M.nanus n.sp., Brady (1).

Notodelphyidea n. nom. pro Notodelphoida Sars Stebbing.

Notodelphys antarctica n.sp. Brady (1).

Onchocalanus latus n. sp. Esterly.

Pachos n.nom. pro Pachysoma Claus Stebbing.

Parastenhelia gracilis n.sp., P.tenuis n.sp. Brady (I).

Parawestwoodia n. nom. pro Westwoodia Sharpe (2).

Perissocope n. g., P.typicus n.sp. Brady (1).

Phyllopus integer n. sp. Esterly.

Porcellidium australe n.sp., P. rotundum n.sp., P. wolfendeni n.sp. Brady (1).

Psammis n.g., P.longisetosa n. sp. Sars (1).

Pseudobradya proxima n.sp. Brady (1); P. robusta n. sp. Sars (I).

Pseudoidya n.g., P. australis n.sp., P.tenuis n. sp. Brady (1).

Pseudotachidius minimus n.sp. Brady (1).

Pseudothalestris pusilla n.sp., P. tumida n. sp. Brady (1).

Pteropontius scaber n.sp. Brady (1).

Rhynchothalestris vanhöffeni n. sp. Brady (1).

Robertsonia normani n.sp. Brady (I).

Scolecithrixz angusta n.sp., S. vorax n.sp. Esterly.

Selenodiscus n. g., S. formosus n. sp. Brady (1).

Stenheliopsis crispata n.sp. Brady (1).

Stenocopia antarctica n.sp. Brady (1).

Tegastes calcaratus n. sp. Sars (1); T. coriascus n. sp., T. frigidus n. sp. Brady (1).

Tetanopsis n.g., T.typicus n.sp. Brady (1).

Thalestris sordida n.sp. Brady (1).

Tisbe armata n.sp. Brady (1).

Undeuchaeta bispinosa n.sp., U. incisa n.sp. Esterly.

Urogonia n.g., U.typica n.sp. Brady (1).

Xanthocalanus pulcher n.sp., X. tectus n.sp. Esterly.

Zosima incrassata n.sp. Sars (I).

186 Crustacea (Entomostraca) für 1910,

Ostracoda.

Aglaiella n. g., A. stagnalis n. sp. Daday (6).

Argilloecia gracilior n.sp. Chapman (3).

Bythocypris heterodoxa n. sp., B. sollasi n.sp. Chapman (3).

Bythocythere retiolata n.sp., B. tuberculata n. sp. Chapman (3).

Candona caledoniae n. sp., ©. siliquosa n. nom. pro O. acuminata Brady u. Norman

Brady (2).

Candonopsis navicula n. sp. Daday (1); C. scourfieldi n. sp. Brady (2).

Chlamydotheca barbadensis n.sp. Sharpe (1).

Cyclocypris denticulata n.sp. Daday (1).

Cypria koenikei n.sp. Daday (1).

Cypridella devexa n. sp., ©. fossulaia n.sp., C. oxyuris n. sp. Daday (I).

Cypridopsis bidentata n.sp., CO. congenera n.sp., O. cunningtoni n.sp., C. gibba

n.sp., C. monodonta n.sp., CO. obliquata n.sp., C. pusilla n.sp., Ü. serrata

n.Sp., ©. sinuata n.sp., C. tumidula n.sp. Sars (2).

Cyprinotus decoratus n. sp. Daday (6); C. fülleborni n. sp. Daday (1).

Cypris chrissiensis n.sp. Methuen; C. (Cyprinotus) dentata n.sp.; ©. (C.) globu-

losa n. sp. Sharpe; C. gunningi n.sp., Methuen; C. inflata n.sp. Daday (1);

C. mastigophora n.sp., C. spinosa n.sp., CO. tuberculata n.sp. Methuen.

Cythere curvicostata n. var. funafutiensis, CO. sweeti n.sp. Chapman (3).

Cytheridea aegyptiaca Daday (6).

Cytheropteron assimile n. var. funafutiensis Chapman (3).

Cytherura tenuicostata n.sp. Chapman (3).

Eucypris capensis n.sp., Daday (7); E.devexa n.sp. Daday (1); E. domingensis

n.sp. Daday (7); E. kilimensis n. sp., E. kraepelini n.sp., E. laticauda n. Sp.,

B. puncticulata n.sp. Daday (1); E. rothschildi n. sp. Daday (3).

Heterocypris dubia n.sp. Sars (2).

Jliocyprella salina n.sp. Daday (?7).

Ilyocypris propinqua n.sp., Z. alta n.sp. Sars (2).

Limnicythere michaelseni n.sp. Daday (1); L. obtusata n.sp. Sars (2).

Mesocypris n. ge., M. pubescens n. sp. Daday (1).

Oncocypria n. g., O. mülleri n.sp. Daday (1).

Oncocypris costata n.sp. Daday (1).

Ostrapoda Straus pro Ostracoda Latreille Stebbing.

Paracypria claviformis n.sp., P. complanata n.sp., P. conoidea n.sp., P. curta

n.5p., P.declivis n.sp., P.deflexa n.sp., P. flexuosa n.sp., P. humilis

n.5p., P. obtusa n.sp., P. opaca n.sp., P.reniformis n.sp., P. subangulata

n.sp. Sars (2).

Pontocypris davidiana n.sp. Chapman (3).

Potamocypris alveolata n.sp. Daday (6); P. fülleborni n.sp., P. koenikei n. sp.

Daday (1); P. lobata n.sp. Daday (6).

Pseudocypris n.g., P. bouvieri n.sp. Daday (1).

Pseudocythere funafutiensis n. sp. Chapman (3).

Siphlocandona n.g., S. normani n.sp. Brady (2).

Stenocypris angulosa n.sp. Daday (1); S.decorata n.sp. Daday (3); S. elongata

Systematik, Publikationen und Referate, 187

n. sp., S. fasciculata n. sp., S. fülleborni n. sp., S. marginata n. sp., S. stagnalis

Daday (1). S. Werneri n.sp. Daday (6).

Zonocypris laevis n.sp. Sars (2).

Cirripedia,

Balanus peruvianus n.sp. Pilsbry (1).

Coronula darwini n. nom. pro C. balaenaris Darwin non Müller Stebbing.

Scalpellum lambda n.sp. Annandale (1).

III. Gigantostraca für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

TCobbold, Edgar Sterling. On some small Trilobites from the

Cambrian Rocks of Comley (Shropshire). Quart. Journ. Geol. Soc.

London vol. 66. 1910 p. 19—50, (51), pls. III—VIII. — Das Material

stammt aus den Steinbrüchen Comley Quarrel, deren Schichten näher

charakterisiert und durch eine Tafel auf p. 20 näher erläutert werden.

Die vorkommenden Trilobiten verteilen sich folgendermaßen: Miero-

discus (ln.sp. + 3), Ptychoparia (1 + 1n.sp.), Micmacca (?2 n.spp.

+ 3n.varr.), Agraulos (Subg. Strenuella) (1 n.sp.), Anomocare (2 n.spp.

+?1n.sp.), Protolenus (1 n.sp.), Mohicana n.g. (2 n.spp.). — Es

wäre vorellig, über das Alter dieser Schichten genauere Angaben zu

machen, bevor die Fauna nicht vollständig erforscht ist. Indessen ist

doch die Tatsache beachtenswert, daß die Stücke von Protolenus zu

Comley etwas über den Horizont von Olenellus u. dem grauen Sand-

stein, nämlich Microdiscus helena Wale., M. speciosus Ford, M. lo-

batus Hall u. Ptychoparia (?) attleborensis Sh. u. F. (wie auch Agraulos

strenuus Bill, der nahe verwandt zu sein scheint mit der Strenuella

aus Shropshire) in Amerika tief unten in der Olenellus-Zone gefunden

werden. Walcott gibt für die beiden letzten die Basis der Olenellus-Zone

zu Manuel’s Brook (Neufundland) an. p. 48—50 bringt die Erklärung

zu den zahlreichen Details. — Die Diskussion (p. 51) bringt Dank-

sagungen seitens Sollas, Marx, Watts und Fearnsides für die glückliche

Durcharbeitung des so iragmentarischen Materials.

Dohm. Mitteilungen über eine neue Fundstelle unterdevonischer

Versteinerungen im Kreise Daun. Verhandl. naturhist. Ver. Bonn

Bd. 66 (1909) 1910 p. 153—164. — Die Funde wurden im südwest-

188 Crustacea (Gigantostraca) für 1910.

lichen Teile des Kreises Daun auf dem Plateau zwischen Densborn,

Meisburg und Salm gemacht und zwar am nördlichsten Rande der

daselbst gelegenen Buntsandsteininseln. Nach näherer Schilderung der

Buntsandsteminseln werden die Petrefakten der beiden Fundstellen

aufgezählt und zwar ist besonders die Fundstelle II vollständig von

Homalonotus-Resten durchsetzt. Es finden sich an Trilobiten: Homalo-

notus (2 Spp. + In.var.), Oryphaeus (1) u. Acaste (1).

TGirty, George H. Palaeontology of the Manzano group. Washington

D. C. Dept. Intern. Bull. U. 8. Geol. Surv. No. 389. 1909. p. 41—141

pl. VI-XII. — Anisopyge 1 n.sp.

Hirst, A. S. Trilobita, Xiphosura, and Gigantostraca. In: Guide to

the Crustacea, Arachnida, Onychophora and Myriopoda exhibited in

the Department of Zoology, British Museum (Natural History). London

1910 p. 77—79.

T[Janisevskij, M. E.]. DayHa HHMHe-KaMmeHHOYTOIBHATO, H3BeC-

THAKaA OKOIO IOCeIka Xa6apmaro, Opcraro ybarza, Openöyprcrofi Ty6

[Die Fauna des unteren Kohlenkalkes von Chabarny, Bezirk Orsk,

Gouv. Orenburg.] Tomsk Izv. technol. Inst. vol. 17 1. 1910 p. 1—305,

I—III), 21 Taf. u. 1 Karte. — Brachymetopus (1), Griffithides (2),

Phillipsia (1). |

Lucas, Robert (1). Gigantostraca, Pycnogonida. [Jahresberichte.]

Archiv f. Naturg. Jhg. 72 (1906) Bd.2 Hit.2. 1910 p. 885—894. =

Deutsche Entom. Zeitschr. Berlin 1906 Hit. 3 [1910] p. 885—894. =

Ber. Leist. Entom. Berlin 1905 Lief. 3 [1910] p. 885—894.

— (2). Gigantostraca (Xiphosura, Trilobita, Eurypterida) für 1906.

[Jahresberichte.] Archiv f. Naturg. Berlin Jhg. 73 Bd. 2 Hft. 2 [1910]

p. 224—235 — Ber. Leist. Entom. Berlin 1906 Lief. 3 [1910] p. 224

—235 — Deutsche Ent. Zeitschr. Berlin 1907 Beihft. Lfg. 3 [1910]

p. 224—235.

Moberg, Joh. Chr. och Carl ®. Segerberg. Bidrag till Känne-

domen om Ceratopyge regionen med särskild hänsyn till dess utveckling

I Fogelsängstrakten. Lunds Univ. Ärsskr. N.F. Afdeln.2 Band 2

No.7. Kongl. Fysiograf. Sällsk. Handl. N. F. Bd. 17 No. 7 (113 + 3)pp.

7 Taf. 1—-VII. — Vorrede. Literaturverzeichnis (p. 5—13). Chrono-

logie. Kritik der Geschichte (p. 14—30). — Anhang zu den Literatur-

übersichten (p.31sq.) 1. Dietyograptusschiefer, 2. Obolus-Konglomerate

und Sandsteine, 3. Neuere Literatur über ausländische Gebilde, die

der skandinavischen Ceratopygeregion ähnlich sind. System der Cerato-

pygeregionen. Übersichtsschema (p. 44—47, 50). — Die Ceratopyge-

schichten bei Vogelsang. — Verbreitung der Ceratopygeschichten in

Schweden. V.die Fauna der C.-Regionen. Beschreib. der Spp. (p. 58 sq.)

Die Crustacea behandeln p. 75—107: Ostr.: Eremos n.g. (1 n.sp.),

Primitia (1 n.sp.); Trilob.: Beyrichia (1 + 1 n.sp.), Ceratiocarıs

(In.sp.), Agnostus (2 + In. var. + In.sp.), Shumardia (3+ 1n.sp.),

Parabolinella (2), Boeckia (1), Acerocare (1 + sp.), Triarthrus

(1), Hysterolenus (1 +? 1 n.sp.), Euloma (1), Harpides (1), Cerato-

pyge (+1 .n.sp.), Dicellocephalus (1 n.sp.), Apathocephalus (1 +

Publikationen und Referate. 189

In.var.), Dicephallina (sp.), Symphysurus (3 + 1n.sp.), Nileus (2),

Niobe (3 + n. var.), Megalaspides (2 + 1 n.sp.), Illaenus (1 n.sp.),

Orometopus (1 sp.), Holometopus (1 n.sp.), Ampyx (l+1.n.sp.),

Öyrtometopus (3), Harpina (1), Crossoura n.g. (2 n.sp.), Hypostome

(I—IV). — Übersicht (p. 108—109). Allgemeine Übersicht. Inhalts-

verzeichnis u. Tafelerkl.

Raymond, Percy E. On two new Trilobites from the Chazy near

Ottawa. Ottawa Nat. vol. 24 1910 p. 129—134, 1 pl. — Bathyurus

ln. sp., Isotelus 1 n.sp.

TReed, F. R. Cowper. Sedgwick Museum Notes. New Fossils from

the Dufton Shales. Parts Tu. II. Geol. Mag. Dec. V vol. 7 p. 211—220

pls. XVIu. XVII. — Diese kleine Fossiliensammlung wurde von Turn-

bull bei einem Durchschnitt durch den Alston Road bei Melmerby ge-

macht. Die in Frage kommenden Trilobita sind: Phacops apiculatus

Salt., Calymene senaria (Salt., non auctt.), ©. Caractaci Salt., Tri-

nucleus Nicholsoni n.sp., Acidaspis semievoluta n.sp., Lichas mel-

berbiensis Reed, Törnquistia Nicholsoni Reed, Homalonotus bisulcatus

Salt. (?), H. cf. Edgelli Salt., H.ascriptus, Illaenus Bowmani Salt. (?).

TSehmidt, Herm. jun. Beiträge zur Kenntnis des Elberfelder

Devon. Jahresber. naturw. Ver. Elberfeld Bd. 12 1909 p. 37—64,

3 pls. — Dechenella (1).

TSmycka, Franz. Beiträge zur Kenntnis der Trilobiten-Fauna

im mährischen Devon bei Celechovitz. Prag Bull. Acad. Sei. Franc.

Jos. vol.2 1895 p. 70—79, 1 pl. — Proetus 2 n. spp.

7 Waleott, Charles D. Olenellus and other genera of the Mesonacidae

(Cambrian geology and paleontology, No. 6) Smithsonian Instit. Misc.

Coll. Washinston, D. C. vol. 53 (Publ. 1934) 1910 p. 231—422, index

24 pp. pls. XXIII—XLIV. — Behandelt folgende Formen: Callavia

(5 n.spp. + 2), Elliptocephala (1), Holmia (2 -+ 1 n.sp.), Mesonacis

(3), Nevadıa n.g. (1 n.sp.), Olenelloides (1), Olenellus (5 n.spp. + 6

+ In.var.), Paedeumiasn.g.(1n.sp.), Peachellan.g. (1), Wanneria

n.g. (2 n.spp. +1).

iWiman, Carl (tl). Über die Borkholmer Schicht im Mittel-

baltischen Silurgebiet. Bull. geol. Instit. Upsala vol. V p. 149—222

pl. V-VIII u. Textfigg. — Einleitung. Historische Übersicht. Gestein

und dessen Vorkommen. Methode der Gewinnung und Behandlung

des paläontologischen Materials (p. 167—168). Die Fauna: Trilobiten

(p. 168— 173): Chasmops Eichwaldi Fr. Schm., Ch. sp., Chirurus

bimucronatus Murch, Encrinurus Seebachi Fr. Schm., Acidaspis sp.,

Lichas cicatricosus Loven, L. sp., Pharostoma pediloba F. Röm.,

Proetus ramisulcatus Nieszk., Stygina latifrons Portl., Isotelus robustus

F. Röm. und Illaenus sp., Ill. sp. — Übersichten, Tabellen hinter p. 198.

— Vergleiche. Literatur (213—217): 63 Publ. Inhaltsübersicht. Erkl.

der Taf. (p. 219—222).

— (2%). Palaeontologische Notizen 7—12. Bull. geol. Instit. Upsala

vol. 7 p. 287—295 pl. 29 u. 30. — 7. Über das Exulanslager auf Öland.

Trilob.: Paradoxides Tessini Bron., Ellipsocephalus muticus A, —

190 Crustacea (Gigantostraca) für 1910.

8. Diaphanometopus lineatus A. — 9. Pliomera Linnarssoni n.sp.

— 10. Über Holometopus A. — 11. Anomacare excavatum A.

TWoodward, Henry. On a pygidium of Bronteus from the Devonian

of Gerolstein Eifel, preserved in the collection of the late Mr. Town-

shend M. Hall in the Athenaeum Barnstaple. Geol. Mag. London

Dec. V vol. 7 p. 407—410. — Bronteus 1 n. sp. — Zum Vergleich auch

Umrisse von Br. thysanopeltis Barr. u. B. speciosus Corda.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberichte: Lucas (1), (2) (für 1906).

Führer durchs Britische Museum (Abt.Zoology): Hirst (Trilobita, Xiphosura u.

Eurypterida).

Entwicklung und Phylogenie der Mesonacidae (Trilobita): Walcott.

Hypostoma: Moberg u. Segerberg (p. 107”. Hypostomum I—IV hierzu

Taf. VII Fig. 23—26 [aus dem Ceratopygekalk von Fogelsäng)]).

Faunistik.

Cambrische Formation: Walcott (Trilobita, neue Spp.: Cavallia Spp., dar.

5 neue, Elliptocephala, Holmia, Mesonacis, Nevadia n. g., Olenelloides, Olenellus,

Paedeumias n.g., Peachella n. g., Wanneria n. g.).

Shropshire : Cobbold (Trilobita, neue Spp.: Agraulos (1 n. sp.), Anomocare

(3 n. spp.), Micmacca (2 n. spp. + 3 n. varr.), Mohicana, Protolenus (2 n. spp.),

Piychoparia (2 n. Spp.).

Ordovizianische Formation: Dufton-Schichten v. Melmerby: Reed (Trilo-

bita, neue Spp.: von Acidaspis, Homalonotus, Trinucleus).

Chazy, Ottawa: Raymond (Trilobita, neue Spp.: Bathyurus 1, Isotelus 1).

Devonische Formation: Elberfeld: Schmidt (Trilobita: Dechenella 1 n.sp.).

— Eifel: Woodward (Trilobita: 1 n. sp. von Bronteus). Mähren: Smycka

(Trilobita, 2 neue Spp. Proteus).

Unterdevon von Deutschland: Dohm (Trilob.: Homalonotus 1 var.n.).

Carbonische Formation: Neu Mexiko: Girty (Trilobita: Anisopyge 1 n. sp.).

— Unterer Kohlenkalk von Chabarny: Janisevskij (Trilobita: Brachymetopus 1,

Griffithides 2, Phillipsia 1).

Systematik.

l. Xiphosura vacant.

2. Trilobita (sämtlich fossil).

Acaste Schmidti Rud. Richter bei Oberstadtfeld, nicht selten auch von Meisburg

mit typischen Kopf- und Schwanzschildern bekannt. Dohm, Verhdign.

naturh. Ver. d. preuß. Rheinlande Bd. 66 1909 p. 159.

Acerocare norvegicum Moberg et Möller Moberg u. Segerberg p. 82 Taf. IV Fig. 27,

28. — sp. p. 82—83 Taf. IV Fig. 32, 33 (Ceratopygekalk v. Ottenby).

Systematik. 191

Acidaspis sp. (Dorn lang, stark, etwa wie bei A. pectinata Aug.) Wiman (1) p. 170.

— A. semievoluta n.sp. Reed, Geol. Mag. Dec. V, 7 p. 214 nebst Figg. 1—3

auf pl. XVII (Dufton Schichten, Melmerby). Der Kopfschild ähnelt dem

von A. evoluta. — sp. [indeser.] aus dem Starfish Bed, Girvan p. 216.

Agnostus Sidenbladhi Linns. Moberg u. Segerberg p. 77. — Sid. Linns. var. urceo-

latus Segerberg Mser. n. p. 77—78 Taf. IV Fig. 2—4.

Agraulos (Strenuella) salopiensis n. sp. Cobbold, Quart. Journ. Geol. Soc. London

vol. 66 p. 31—35 figs. 1—9 auf pl. IV (im Cambrium von Shropshire, im

grauen Kalk von Comley). — Vergl. mit A. strenuus var. nasutus p. 35.

Anisopyge inornata n.sp. Girty, Bull. U. S. Geol. Survey Washington No. 389

1909 p. 118 fig. (aus dem Carbon von Neu Mexiko).

Ampyx domatus Aug. Moberg u. Segerby p. 100 Taf. VII Fig. 7 (Ceratopygekalk

von Hunneberg u. Oslo, Norwegen). — obtusus n. sp. p. 100 Taf. VII Fig. 8

—10 (Ceratopygeregion).

Anomocare excavatum A. Stück aus dem Stinkkalk. Wiman (2) p. 295 pl. 29

Fig. 23. — Neue Spp. aus dem Cambrium von Shropshire beschreibt Cobbold

im Quart. Journ. Geol. Soc. vol. 66: platycephalum n.sp. p. 36—39 pl. V

u. pl. IV fig. 10. — parvum n. sp. p. 39—40 pl. IV figs. 11—14. — pustu-

Zatum n. sp. p. 40—42 pl. VI fig. 1, 2, 3 (sämtlich von Comley).

Apathocephalus serratus Sars et Boeck sp. et var. dubius n. Moberg u. Segerberg

p. 88—89 (im Ceratopygekalk).

Bathyurus superbus n.sp. Raymond, Ottawa Nat. vol.24 p. 129 nebst Figg.

(Chazy, Ottawa).

Beyrichia nana Brögger im Ceratopygekalk von Norwegen. Moberg u. Segerberg

p. 75. — nanella n.sp. p. 76 Taf. III Fig. 27, 28 (Ceratopygeschiefer bei

Ventlinge auf Öland; Vogelsang).

Boeckia Mobergi Wiman im Dictyograptus-Schiefer bei Nybränna bei Täsjöberget

in Angermanland. Moberg u. Segerberg Taf. IV Fig. 23—26.

Brachymetopus uralicus Janisevskij, Izv. technol. Inst. Tomsk vol. 17, 1 p. 168

mit Figg. (im Subcarbon von Chabarny).

Bronteus Halli n.sp. Woodward, Geol. Mag. Dec. V, 7 p. 408 nebst Abb. (aus dem

Devon der Eifel). Fig. 1 Pygidium dieser Sp., Fig. 2. Br. thysanopeltis Baır.

aus dem Obers!lur von Böhmen. Umriß, 45 Randstacheln am Pygid., Fig. 3

Pygid. desselb., Fig. 4. B.speciosus Corda aus dem untern Mitteldevon.

Umriß des Tieres. 40 Randstacheln am Pygidium. — Von den bekannten

Br.-Spp. haben 31 das Pygid. zweiästig, 19 dagegen nicht.

Callavia. Walcott behandelt in Smithsonian Instit. Washington Misc. Collect.

vol. 53 die Synonymie usw. der Gatt. p. 274 und bespricht eine Reihe von

Arten, darunter verschiedene neue: bicensis n. sp. p. 277 nebst Figg. (Cam-

brium von Canada). — bröggeri p. 279 nebst Figg. — burri n. sp. p. 280 nebst

Figg. (in Cambrium von Massachusetts). — callavei n. sp. p. 282 nebst Figg.

— cartlandi Raw. n.sp. p. 282 nebst Figg. (im Cambrium von England).

— crosbyi n.sp. p. 284 nebst Figg. (im Cambrium von Massachusetts). —

nevadensis n. Sp. p- 285 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada).

Ceratiocaris scanicus Westergard Mser. n. sp. Moberg u. Segerberg p. 76 Taf. III

Fig. 29 (Äkarpsmölla etc.).

Ceratopyge forficula Sars Beschr. Moberg u. Segerberg p. 85—87 Taf. V Fig. 2—5.

— latelimbata n.sp. p. 87 Taf. V Fig. 6 (im Ceratopygekalk bei Fogelsäng).

192 Crustacea (Gigantostraca) für 1910.

Chasmops Eichwaldi Fr. Schm. Beschr. Wiman (1) p. 168—169 pl. V Fig. 1-5

(Lyckholmer-Schicht F,, Spuren in der Borkholmer Schicht F, bei Bork-

holm). — sp. (die Fragmente gehören vielleicht zu Zichwaldi Fr. Schm.).

— Die Gatt. ist untersilurisch. Vorkommen derselben: im ostbaltischen

Silur nicht höher als in der Borkholmer Schicht F,, in Schweden bezeichnen

der Macrouruskalk und der Trinucleusschiefer ihre obere Grenze; in Norwegen

geht sie nicht höher als in Et. 5a.

Chirurus bimucronatus Murch im ostbaltischen Silur, in Großbritanien aus Lland-

eilo, Bala-Caradoc u. Llandovery. Wiman (I) p. 169.

Crossoura n.g. Moberg u. Segerberg p. 106. — parvilla n.sp. p. 106 Taf. VII

Fig. 20 (Fogelsäng, Ceratopygekalk). — lata n.sp. p. 106—107 Taf. VII

Fig. 21 (Ceratopygekalk von Mörbylänga).

Oryphaeus Drevermanni Rud. Richter im Kreise Daun, bisher nur in den Siegener

und Unterkoblenzschichten beider Rheinseiten. Das Vorhandensein dieser

Art u. das Fehlen von Cr. rotundifrons in Weisburg ist besonders wichtig.

Dohm, Verhdlgn. naturh. Ver. d. preuß. Rheinlande Bd. 66 1909 p. 159.

Cyrtometopus primigenus Angelin sp. Moberg u. Segerberg p. 101—102 Taf. VII

Fig. 12—14 (Ceratopygekalk von Norwegen, Hunneberg, Kinnekulle ete.)

— Joveolatus Ang. p. 102—103 Taf. VII Fig. 11. — speciosus Dalm. Synon.

p- 103—104 Taf. VII Fig. 15—17 (Ceratopygekalk von Fogelsäng).

Dechenella Burmeisteri Schmidt, Jahresber. naturw. Verein Elberfeld Bd. 12

p- 56 nebst Figg. (im Devon von Elberfeld).

Diaphanometopus lineatus A. Beschreib. der Art. (= Trilobit. n. g., n. sp. 1893)

Wiman (2) p. 291—292 pl. 29 fig. 16—20. (Ist älter als die ostbaltische Sp.).

Dicellocephalus Bröggeri n.sp. Moberg u. Segerberg p. 837—88 Taf. V Fig. 7, 8

(Ceratopygekalk von Ottenby).

Dicellophalina dieraeura Angelin sp. Synon. Moberg u. Segerberg p. 90 Taf. V

Fig. 12—14 (Hunneberg, Ottenby in Mörbilängablöcken, auch in Norwegen,

alle im Ceratopygekalk).

Ellipsocephalus muticus A. Wiman (2) p. 239—291 pl. 29 Fig. 11, 12.

Elliptocephala. Synonymie etc. Walcott, Smithsonian Inst. Misc. Collect.

Washington vol. 53 p. 267. — asaphoides p. 269 nebst Abb.

Encrinurus Seebachi Fr. Schm. Vergleiche. Fundorte. Übergangsformen.

Wiman (1) p. 169—170, pl. V fig. 6 u. 7.

Euloma ornatum Angelin. Moberg u. Segerberg p. 84 Taf. IV Fig. 41—44. Fund-

orte in der Ceratopyge-Region.

Griffithides globiceps n. sp. Janisevsky, Izv. technol. Inst. Tomsk vol. 17, 1 p- 167

nebst Figg. — @. cf. seminiferus p. 168 nebst Figg. (beide aus dem Subkarbon

von Chabarny).

Harpides rugosus Sars et Boeck Moberg u. Segerberg p. 85 Taf. V Fig. 1 (Fund-

orte in der Ceratopyge-Region).

Harpina (Harpes) excavata Linrs. Moberg u. Segerberg p. 105—106. Textfig.

p- 106, ferner Taf. VII Fig. 19. (Ceratopyge von Fogelsäng etc.).

Holmia. Synonymie ete. Walcott, Smithsonian Instit. Misc. Collect. Washington

vol. 53 p. 286. — kjerulfi p. 288 nebst Figg. — lundgreni p. 290 nebst Figg.

— rowei n. sp. p. 292 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada).

Systematik. 193

Holometopus Törnquisti n.sp. Moberg u. Segerberg p. 99—100 Taf. VII Fig. 6

(Ceratopygekalk von Ottenby).

Holometopus A (= Angelin) Bemerk. zur Gatt. u. zu den Spp. Wiman (2) p. 293

— 294. — Bronteopsis W. Thomson u. Stygina Salter. Eine Auseinander-

setzung über diese 3 Gattungen kann erst erfolgen, wenn von allen Seiten

mehr Material vorliegt.

Homalonotus rhenanus Koch im Kreise Daun. Dohm, Verhdlgn. naturh. Ver.

d. preuß. Rheinlande. Bd. 66. 1909 p. 156. — armatus Burm. Fund eines

ausgezeichneten Schwanzes mit Abdruck ebendaher. — armatus var. west-

rami n. (prachtvolles beinahe vollständiges Kopfschild, ob n. sp.?) p. 156

—159 Fig. (Kreis Daun, Fundstelle II) (sämtlich aus dem Devon von

Deutschland). — H.ascriptus n.sp. (verwandt mit ZH. bisulcatus). Reed,

Geol. Mag. Dec. V, 7 p. 216 nebst Figg. 4—8 auf pl. XVII (Dufton-Schichten

von Melmery).

Hysterolenus Tornquisti Moberg in der Ceratopyge-Region. Moberg u. Segeberg

p. 84 Taf. IV Fig. 34—39. — ?levicauda Moberg n. sp. p. 84 Taf. IV Fig. 40.

Unterschiede von Hyst. Tornquisti (Hysterolenus-Schicht bei Sandby).

Illaenus sp. (auf ein Paar Pygidien eine neue Sp. zu gründen hält Verf. nicht

für zweckmäßig). Wiman (1) p. 171 pl. V Fig. 22. — sp. p. 171. Kopffrag-

mente u. eine Pygid. — I. oriens n. sp. Moberg u. Segerberg p. 98 Taf. VII

Fig. 2 (Ottenby; Mörbylangafelsen).

Isotelus robustus F. Röm. ? Wiman (1) p. 172—173 pl. V Fig. 20, 21 (Vorkommen

der Sp.). — I. arenicola n. sp. Raymond, Ottawa Natur. vol. 24 p. 130 nebst

Figg. (Chazy, Ottawa).

Lichas cicatricosus Loven im ostbalt. Silur zur Bornholmer Schicht F?, auf der

schwedischen im Leptaenakalk. Wiman (I) p. 170 pl. V fig. 8 u. 9. — sp.

p- 170 pl. V fig. 10.

Megalaspis intacta Segerberg Mnscr. n. sp. Moberg u. Segerberg p. 96—97 Taf. VI

Fig. 20, 21 (im Ceratopygekalk von Fogelsäng). — stenorhachis Angelin p. 97

(Orthocerenkalk bei Husbyfjöl in Östergotland; Kinnekulle). — planilimbata

Ang. p. 97—98 Taf. VII Fig. 1 (Ceratopyge- u. Orthocerenkalk).

Mesonacidae Beschr. Walcott, Smithsonian Instit. Miscell. Collect. Washington

vol. 53 p. 236. Entwicklung p. 236. Gattungen ders. p. 246. Phylogenie

p. 249. — Schichten, in denen sie vorkommen, und geographische Verbreitung

p. 250. — Liste der Gattungen u. Arten p. 251, 351. Bibliographie p. 372.

Mesonacis. Synonymie. Walcott, t.c. p. 261. — mickwitzi p. 262 nebst Figg.

— torelli p. 264 nebst Figg. — vermontana n. sp. p. 264 nebst Figg.

Micmacca Matthew versteht darunter Trilobita mit groß., ziemlich vorragender,

zylindrischer Glabella, die sich bis zum Schild erstreckt; mit kontinuier-

lichen Augenloben u. einer kurzen direkten hinteren Verbreiterung der

Dorsalnaht. Trans. N. Y. Acad. Sci. vol. XIV, 1895, p. 141. Bemerk. dazu.

Cobbold, Quart. Journ. Geol. Soc. vol. 66 p. 27 nebst M. (?) ellipsocepha-

loides n. sp. (scheint eine Zwischenform zwischen Micmacca u. Ellipsocephalus

zu sein u. steht M.recurva Matthew am nächsten) p. 27—28 pl. VII fig. 8

u. 9 u. pl. VIII fig. 1. — M. ellips. var. spinosa n. p. 23—29 pl. VIII fig. 5.

— M. ellips. var. strenuelloides n. p.29 pl. VIII figs.3 u. 6. — M. ellips.

var. senior n. p. 29—30 pl. VIII fig. 2 (alle vier aus dem Olenelluskalk bei

Archiv ee rechiolke 13

1911. v. 2.

194 Crustacea (Gigantostraca) für 1910.

Comley). — M. (?) parvula n. sp. (unterscheidet sich von M. matthewi durch

ihre geringe Größe etc.) p. 30, figs. (Comley, Olenellus-Kalk).

Microdiscus comleyensis n. sp. (= M. sp. Cobbold, Rep. Brit. Assoc. 1908 (Dublin)

p- 236 [1909]) Cobbold, Quart. Journ. Geol. Soc. vol. 66 p. 21—22 (Cam-

brium, grauer Kalk von Comley, aus dem obersten 3 Zoll dicken Schicht;

200 Yards südl. vom Steinbruch). Scheint eine Zwischenform zwischen

M. speciosus Ford u. M. punctatus Salta zu sein). — lobatus Hall Fundort

wie zuvor. p. 22 pl. III figs. 17 u. 18. — helena Walcott p. 23 pl. III fig. 14

—16 (aus dem Olenelluskalk der Steinbrüche bei Comley). — speciosus Ford

von Cowley p. 23. — M. comleyensis n. sp. Cobbold, t. c. p. 21 nebst Figg.

(im Cambrium von Shropshire). — lobatus p. 22 nebst Figg. — helena p. 23

nebst Figg.

Mohicana n.g. (steht den Protolenus Spp., sowie Microdiscus comleyensis nahe

und ist anscheinend auf dieselbe 3 Zoll dicke Schicht grauen Kalkes be-

schränkt, in der auch Fragmente der größeren Trilobiten vorkommen. Sie

zeigt Charaktere, die denen von Micmacca (?) plana Matthew sehr ähnlich

sind). Cobbold, Quarterly Journ. Geol. Soc. vol. 66 p. 44—5. — lata n. sp.

p. 45—46 pl. VI fig. 4. — clavata n. sp. p. 46—47 pl. VI figs. 5—9 (ein grauer

Kalk von Comley, Cambr. von Shropshire).

Nevadia n.g. Walcott, Smithsonian Instit. Misc. Collect. Washington vol. 53

p. 256. — weeksi n. sp. p. 257 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada).

Nileus armadıllo Dalman. Bemerk. Fundorte in Ceratopygekalk. Moberg u.

Segerberg p. 93—94 Taf. VI Fig. 1—5. — limbatus Brögger p. 94.

Niobe insignis Linns. im Ceratopygekalk. Moberg u. Segerberg p. 94—95 Taf. VI

fig. 6—9. — insignis Linrs. var. angustifrons Segerberg Mscr. n. p. 95 Taf. VI

Fig. 10—14 (Ceratopygekalk von Fogelsäng). — obsoleta Linrs. p. 95 Taf. VI

Fig. 15, 16 (im Ceratopygekalk von Hunneberg, Kinnekulle, Ottenby, Fogel-

sang, Storberget u. Granhöjden, sämtlich in Norwegen). — laeviceps Dalm.

p. 96 Taf. VI Fig. 17—19, Taf. VIL Fig. 24? (im Ceratopygekalk von Fogel-

säng).

Olenelloides. Synonymie etc. Walcott, Smithsonian Instit. Misc. Collect. vol. 53

p. 345. — armatus n.sp. p. 347 nebst Figg.

Olenellus. Waleott behandelt t. c. die Synonymie.etc. der Gatt. p. 311. — argentus

n. sp. p. 314 nebst Figg. (Cambr.) von Nevada. — canadensis n. sp. p-. 316

nebst Figg. (im Cambrium von Britisch Kolumbien u. Alberta). — claytoni

n.sp. p. 319 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada). — fremonti n. sp.

p. 320 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada und Californien). — gigas

p. 323 nebst Fig. — gülberti p. 324 nebst Figg. — lapworthi p. 331 nebst Figg.

— logani n.sp. p. 333 nebst Figg. (im Cambrium von Labrador). — reti-

culatus p. 335 nebst Figg. — thomsoni p. 336 nebst Figg. — thomsoni var.

crassimarginatus n. p. 340 nebst Figg. (im Cambrium von Vermont u. Penn-

sylvanien). — walcotti p. 341 nebst Figg.

Orometopus elatifrons Ang. sp. Moberg u. Segerberg p. 98 Taf. VII Fig. 3, 4?, 5?

(Ceratopygekalk von Hunneberg, Ottenby u. Fogelsäng).

Paedeumias n.g. Walcott, Smithsonian Instit. Misc. Collect. vol. 53 p. 304. —

transitans n. Sp. p. 305 nebst Figg. (im Cambrium des östlichen Nordamerika).

Parabolinella limitis Brögger u. rugosa in Norwegen. Moberg u. Segerberg.

Systematik. 195

Paradoxides Tessini Brgn. Wiman, p. 283—289, pl. 29 Fig. 1—10.

Peachella n. g. Walcott, t. c. p. 342. — iddingsi p. 343 nebst Figg.

Pharostoma pediloba F. Röm. Vorkommen in den Ostseeprovinzen: Wesenberger

Schicht E., Lyckholmer Schicht F,. Wiman (1) p. 171.

Phillipsia derbyensis Janisevskij, Izv. technol. Inst. vol. 17, 1 p. 166 fig. (Sub-

karbon von Chabarny).

Pliomera Linnarssoni n.sp. Wiman (2) p. 292—293 pl.29 Fig. 13—15 (an der

Abraumhalde im nördl. Steinbruch bei Skultorp unweit Sköfde. Zusammen

mit Megalaspis planilimbata, Megalaspides u. Symphysurus breviceps).

Proetus ramisulcatus Nieszk. in Estland in der Borkholmer Schicht F, u. Lyck-

holmer Schicht. Wiman (1) p. 171 pl. V Fig. 12—15. — Pr. celechovicensis

n.sp. Smycka, Bull. Acad. Sei. Frang. Jos. vol.2 1895 p. 75 nebst Figg.

— moravicus n. Sp. p. 76 nebst Figg. (im Devon von Mähren).

Protolenus Latouchei n.sp. Cobbold, Quarterly Journ. Geol. Soc. vol. 66 p. 42

—43 pl. VII fig. 1—6. — morpheus n. sp. p. 44 pl. VII fig. 7 (beide im Cam-

brium von Shropshire: im grauen Kalk von Conley).

Ptychoparia (?) attleborensis Sh. u. F. von Comley, aus dem Olenellus-Kalk. Cob-

bold, Quart. Journ. Geol. Soc. vol. 66 p. 23—24 pl. III figs. 11—13. —

(?) annio n.sp. (nahe verw. mit der sibirischen Pt. czekanowskii von Toll

u. Pt. meglitzkii von Toll p. 24—25 pl. III fig. 5—8 (aus dem Olenellus-Kalk

von Comley). — Merkmale von Pt. ? prospectensis Walcott, Pt. linnarssoni

Waleott u. Pt. pernasutus.

Shumardia pusilla Sars sp. Syn. Moberg u. Segerberg p. 80 Taf. IV Fig. 10—12.

— bottnica Wiman p.81 Taf. IV Fig. 13—16. — Dicksoni Moberg n. sp.

p. 81—82 Taf. IV Fig. 17—22 (in Fogelsängs Shumardia-Zone).

Strenuella Subg. von Agraulos. Bemerk. dazu. Cobbold, Quart. Journ. Geol.

Soc. vol.66 p.3l.

Stygina latifrons Portl. Bemerk. Wiman (1) p. 171—172 pl. V Fig. 16—19, pl. VII

Fig. 17.

Symphysurus incipiens Brögger in Norwegen, Moberg u. Segerberg p. 90. —

angustatus Sars et Boeck Syn. Bemerk. p. 90—91 Taf. V Fig. 15—21, 22?

— breviceps Angelin, Beschreib. p. 92 Taf. V Fig. 23. — elongatus n. sp. p. 92

pl. V Fig. 24 (Fogelsäng, Hunneberg).

Triarthrus Angelini Linns. Moberg u. Segerberg p. 83 Taf. IV Fig. 29—31 (in

der Ceratopyge-Region).

Trinucleus Nicholsoni n. sp. (Unterschiede von seticornis ete.) Reed, Geol. Mag.

Dec. V, 7 p. 212 nebst Figg. 1—9 auf Taf. XVI (Dufton-Schichten von

Melmerby).

Wanneria n.g. Walcott, Smithsonian Instit. Misc. Colleet. vol. 53 p. 296. —

— gracile n. sp. p. 298 nebst Figg. (im Cambrium von Nevada, Californien u.

Canada). — halli n.sp. p. 301 nebst Figg. (im Cambrium von Alabama).

— walcottanus p. 302 nebst figg.

3. Eurypterida vacant.

13*

IV. Pantopoda für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Appellöf, A. Pycnogoniden. Kristiania, Report of the Second

Norwegian Arctic Expedition m the ‚„Fram‘ 1898—1902 No. 26

1910 Z pp:

Bouvier, E. L. (1). Les Pycnogonides a cing paires de pattes re-

cueillis par la mission antarctique Jean Charcot a bord du Pourquoi

Pas? Compt. rend. Acad. Sci. Paris T. 151. 1910 p. 26—832. — Penta-

pyenon n.g. (1 n.sp.), Pyenogonum (1 n.sp.).

— (2). Crustaces et Pycenogonides. Actes Soc. Linn. Bordeaux

T.64 1910 p. 221—226 pl. LXIV. — Ein neuer ?-Nymphon wurde

1908 von M. Grouvel beim Kap Blanc in der Bucht von Cansado ge-

funden. Nymphon aus solcher südlichen Breite, wurden, wenigstens

im Atlantischen Ozean, nicht erbeutet. Die zahlreichen Spp. dieser

Gatt. bewohnen den arktischen und antarktischen Ozean. Einige

jedoch sind für die tropischen Meere eigentümlich. Sie scheinen auf

das indo-pazifische Gebiet beschränkt zu sein, aus dem bisher N. longi-

caudatum Carp. von den Küsten Ceylons u. N. giraffa Loman von den

Sandbänken von Makassar bekannt geworden sind. Drei weitere Spp.,

die auf der Challenger-Expedition erbeutet und von M. Hoek be-

schrieben wurden, sind: N. perlucidum bei Celebes (825 Faden), N. longe-

colum, auf der Höhe von Chili (2225 Faden) u. N. procerum west.

von Valparaiso (2160 Faden). Alle drei finden sich nur in Tiefen mit

niedriger Temperatur. Im Atlantischen Ozean und seinen Nebengebieten

schienen sie bisher nicht gegen die Tropen vorzudringen. Dieam meisten

nach Süden vordringenden Spp. waren: N. gracile Leach von Roscoff u.

N. parasiticum Martens auf Tethys leporina im Mittelmeer. Vom Ge-

sichtspunkt der geographischen Verbreitung ist die N. Grwveli n. sp.

sehr interessant. Taf. LXIV bringt morphologische Details.

Calman, W. T. (1). Pycenogonida. In: Guide to the Crustacea,

Arachnida, Onychophora and Myriopoda .... British Museum (Natural

History) London 1910 p. 115—116.

— (2). Antarctic Pycnogons. Nature, London 1910 p. 104.

Carpenter, George H. Reports on the Marine Biology ofthe Sudanese

Red Sea. — XVI. Pycnogonida from the Red Sea and Indian Ocean,

collected by Mr. Cyril Crossland. Journ. Linn. Soc. Zool. vol. 31.

1910 p. 256—258 pls. XXVI u. XXVII. — Nymphon (1. d.sp.), Palle-

nopsis (1 n.sp.).

Cole, Leon 3. Pycnogonida of the West Coast of North America.

(Contr. 59 zool. Labor. Univ. Michigan). Harriman Alaska Exper.

vol. 10 1904 p. 247—298, 16 pls. — 11 neue Spp.: Lecythorhynchus (1),

Publikationen und Referate. 197

Ammothea (4), Amothella (2), Tanystylum (1), Clotenia (1), Halosoma

n.g. (1), Anoplodactylus (1).

Derjugin, K. [Zur Kenntnis der Fauna des Kola-Fjords. Die

Arbeiten an Bord der Yacht „Alexander Kowalevsky“ im Jahre 1908.

Vorl. Mitt. (Russ. mit deutschem Res.)]. Trav. Soc. Nat. St. Petersbg.

Comptes rendus T. 41 1910 p. 101—125, 130—131.

Elmhirst, Richard. List of Pygnogonida collected in the Clyde

area. Trans. nat. Hist. Soc. Glasgow (n. ser.) vol. 8 pt.2 1910 p. 146

—149.

Hodgson, T. V. (1). The Pygnogonida of Devonshire. Plymouth

Rep. and Trans. Devon Ass. vol. 42 1910 p. 425—429.

— (2). Pantopoda. [In: L. Schultze: Zool. und anthropol. Er-

gebnisse. Forschungsreise in Südafrika Bd.4 Lief. 1]. Denkschr.

med. Ges. Bd. 16 1910 p. 219—228. — Arumothea (2 n.spp.), Hetero-

pallene n.g. (1 n.sp.). — Die hier behandelten Pantopoda stammen

aus Angra Pequena (Lüderitzbucht) und der angrenzenden afrikanischen

Küste. Die Sammlung ist zwar klein, aber sehr interessant; sie ent-

hält 3 neue Spp., deren eine die Aufstellung einer neuen Gattung er-

heischte. Einige Exemplare sind leider unreif. Mit zunehmendem

Interesse für die Untersuchungen der Meeresfauna der afrikanischen

Küsten wird wohl noch manche interessante Form zu Tage gefördert

werden. Die bisher südlich vom Aquator erbeuteten Arten Afrikas

sind folgende: Pycnogonum cataphractum Moebius 1902, P. microps

Loman 1904, Phoxichilus clipeatus Moebius 1902, Anoplodactylus

aculeatus Moebius 1902, A. spinosus Moebius 1902, Pallene lappa

Böhm 1879, Heteropallene dubitans n. sp., Nymphon signatum

Moebius 1902, N. pilosum Moebius 1902, N. distensum Moebius 1902,

Ammothea brevicauda Loman 1904*, A. cuspidata n. sp.*, A. quadri-

dentata n.sp., Böhmia chelata Böhm 1879, B. tuberosa Möbius 1902,

Hannonia typica Hoek 1881 u. Discoarachne brevipes Hoek 1881.

Die mit * versehenen Formen sind in dem der vorliegenden Arbeit

zu Grunde liegenden Material enthalten. Besprechung und Beschreibung

derselben. Hierzu 4 Abb., welche Chelae darstellen. Übersicht über

die Gatt. der Pallenidae (p. 225). Literatur (p. 228) 6 Publik.

Lucas, Robert (1). Pycnogonida (= Pantopoda) für 1890—1902.

[Jahresbericht.] Arch. f. Naturg. Berlin Jhg.71 Bd.2 Hft.2 1905

[1910] p. 1086—1093. = Ber. Leist. Entom. Berlin 1904 Lfg. 3 1910

p. 1086—1093. = Deutsche Entom. Zeitschr. Berlin 1905 Hit. 2 Lfg. 3

[1910] p. 1086—1093.

— (2). Gigantostraca, Pygnogonida. [Jahresbericht.] Arch.

f. Naturg. Jhg. 72 (1906) Bd.2 Hft.2 1910 p. 885—894. = Deutsche

Entom. Zeitschr. Berlin 1906 Hft. 3 [1910] p. 885—894. = Ber. Leist.

Entom. Berlin 1905 Lig. 3 [1910] p. 885—894.

— (3). Pycnogonida für 1906. [Jahresbericht.] Archiv f. Naturg.

Berlin Jhg. 73 Bd. 2 Hft. 2 [1910] p. 235—236. = Ber. Leist. Entom.

Berlin 1906 Lief. 3 [1910] p. 235—236. = Deutsche Entom. Zeitschr.

Berlin Beiheft 1907 [1910] p. 235—236.

198 Crustacea (Pantopoda) für 1909.

Tesch, J[ohan], J[acob]. Bijdragen tot de fauna der Zuidelijke

Noordzee V. Pycenogonida, verzameld met de „Wodan‘“. [Beiträge

zur Fauna der südlichen Nordsee. V. Pycnogonida, gesammelt mit dem

„Wodan“.] Helder Jaarb. Ouderz. Zee 1909 1910 p. 43—64.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresberichte: Lucas (1) (für 1890—1902), (2) (für 1903—1905), (3) (für

1906).

Führer durch das Britische Museum: Calman (1) (Pycnogonida).

Pycenogonida mit 5 Beinpaaren: Bouvier (1), Calman (2).

Faunistik.

Arktisches Meer: Appellöf. — Antarktisches Meer: Süd-Shetlands: Bouvier

(1) (Pentapyenon n.g., Charcoti n.sp.). — Port Lockroy : (Pyenogonum Gaini

n. sp.). — Clyde Distrikt: Elmhirst (Liste). — Devonshire: Hodgson (Liste). —

Südliche Nordsee: Tesch. — Kola Fjord: Derjügin. — Kap Blanc, Mauritanien:

Bouvier (N ymphon sp.). — Rotes Meer: Port Sudan: Carpenter (N ymphon n. sp.).

— Ostafrika: Carpenter (Pallenopsis n.sp.). — Süd-Afrika, Angora Pequena:

Hodgson (Ammothea 2 n. spp., Heteropallene n. g. dubitans n. sp.).

Systematik.

Ammothea cuspidata n.sp. (zeigt viele gemeinsame Züge mit A. wilsoni Schim-

kewitsch) Hodgson, Denkschr. med. Ges. Jena Bd. 16 p. 219 Fig. 1 (Palpus).

— quadridentata n. sp. p. 223 nebst Figg. 2 u. 3 Palp. ete. (Südatlantischer

Ozean).

Discoarachne brevipes Hoek in False Bay, an der Westafrikanischen Küste.

Hodgson, t.c. p. 227.

Hannonia typica Hoek in d. Südbucht, Westküste des südl. Afrika. Hodgson,

t. c. p. 227.

Heteropallene n.g. (Pallene nahest. Körper kräftig, mit seitlichen Fortsätzen

von variabler Länge, die durch kleine Zwischenräume getrennt sind. Cephalon

stark verbreitert. Proboscis klein. Palpen auf ein einziges kleines Glied

reduziert. Oviger 10gliedr., mit einer Reihe zahnartiger Dorne u. ohne

Endklaue. Beine ohne kurze Klaue u. ohne Hilfsklauen. Type: Pallene

languida) Hodgson, t. c. p. 225. — dubitans n. sp. p-. 226 Fig. 4 Chela (Süd-

atlant. Ozean).

Nymphon Gruveli n.sp. Bouvier, Act. Soc. Linn. Bordeaux T. 64 p. 222 nebst

Figg. auf pl. LXIV (Cap Blanc in der Bucht von Cansado). — N. maculatum

n.sp. Carpenter, Journ. Linn. Soc. vol. 31 p. 256 pl. XXVI (Port Sudan).

Pallenidae. Übersicht über die hierher gehörigen Formen. Hodgson, Denkschr.

med. Ges. Jena Bd. 16 p. 224—225: 1. (18) Oviger 10 gliedrig. — 2. (11. 17).

Keine Spur von Palpen. — 3. (5) Oviger ohne Endklaue. — 4. Beine mit

Hilfsklauen: Pallene 9 Spp.: — 5. (3). Oviger mit Endklaue. — 6. (7) Beine

Systematik. 199

mit Hilfsklauen: Cordylochele, 4 Spp. — 7 (6). Beine ohne Hilfsklauen. —

8. Borstenbüschel am Ende der Proboseis: Pseudopallene 4 Spp. —

9. Schaft des Chelifer zweigliedrig: Pallene laevis Hoek. — 10. Cephalon

vom ersten Thoraxsgm. ab segmentiert: Pallene australiensis Hoek. —

11 (2). Rudimente von Palpen vorhanden, eingliedrig: — 12 (15). Oviger

ohne Endklaue. — 13 (14). Beine mit Hilfsklauen: Pallenopsis 16 Spp.

— 14 (13). Beine ohne Hilfsklauen: Heteropallene 2 Spp. — 15 (12). Oviger

mit Endklaue. — 16. Beine mit Hilfsklauen: Neopallene 1 Sp. — 17. Palpen

rudimentär, zweigliedrig: Pallene longiceps Böhm. — 18 (1). Oviger weniger

als 10-gliedrig 19. Ohne Endklaue. — 20. Beine ohne Hilfsklauen. Pallene

lappa Böhm. [Zahlen der Kürzung wegen vom Refer. gesetzt].

Pallenopsis crosslandi n. sp. Carpenter, Journ. Linn. Soc. vol. 31 p. 257 pl. XXVII

(Britisch Ostafrika).

Pentapycnon n. g. Bouvier, Compt. rend. Acad. Soc. Paris T. 151 p. 29. — Char-

coti n.sp. p.29 (Südl. Shetlands-Inseln). — P.charcoti Bemerk. dazu.

Calman, Nature vol. 84 p. 104.

Pycenogonum Gaini n.sp. Bouvier, Compt. rend. Acad. Sci. Paris T. 151 p. 30

(Port Lockroy).

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A, Krolls Buchdruckerei, Berlin S.

j r ! Y Sebastianstrasse 76.

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ARCHIV

NATURGESCHICHTE.

GEGRÜNDET VON A. F.A. WIEGMANN,

FORTGESETZT VON

W. F. ERICHSON, F.H. TROSCHEL,

E. VON MARTENS, F. HILGENDORF,

W. WELTNER vsD E. STRAND.

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SIEBENUNDSIEBZIGSTER JAHRGANG.

1911.

VI. BAND. 1. HEFT.

HERAUSGEGEBEN

VON

EMBRIK STRAND

KÖNIGL. ZOOLOG. MUSEUM ZU BERLIN.

NICOLAISCHE

VERLAGS-BUCHHANDLUNG R. STRICKER

BERLIN.

Inhaltsverzeichnis.

Jahresberichte für 1910.

Seite

DATELTIR EEE N 1 > 5. An Re Schepotieff .. 1

Evertebrata.

renden ne 57 a. nr. Schepotieff .. 3

Mollusca (Mit Ausschluß von Systematik, Fau-

nistik und Tiergeographie) ........ Laackmann 28

Mollusca (Faunistik, Systematik, Biologie)... . Haas. .... 54

Brachiopoda vacant.

Solenogastres vacant.

Polyplacophora vacant.

HSTVOZOR ";- : 0.) 2 el en Lucas 99

Polychaeta und Archiannelides (Polygordius,

Protodrilus und Myzostoma). . . . . . „ Nägler ., zei

SEBHYTES, 2:0) RL En Schepotieff . . 130

Dheochaeta . . in ae Michaelsen . . 132

ERRHCINER .. ..2 2.2 OEE NE Die EEE Schepotieff . . 157

eb ioenatha. .. en). ee re Ritter-Zahony 164

Sberrante WÜrMER' 2. UK „Us Anne Schepotieff . . 166

NEE SL iR EN Nägler .. „2 Aa

BErBEllEnE 4... 2.060, 20 par ne EL AS Be Fuhrmann . . 175

Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acantho-

cephales . .. (LFL. AFTER SEEN. 22. Fuhrmann . . 184

Rotatoria und Gastrotricha s. Bericht für 1911.

Acrania für 1910.

Von

Dr. A. Schepotieff, St. Petersburg.

Publikationen und Referate.

(F = siehe auch unter Faunistik; S. = siehe auch unter Systematik.

— Die mit * bezeichneten Arbeiten waren dem Ref. unzugänglich.)

Assheton, R. The geometrical relation of the nuclei in an

invaginating gastrula considered in connection with cell rhythmus,

on Driesch’s conception of Entelechy. In: Arch. Entw. mech.

XXIX, p. 46—78, 9 Figg. — Über Furchung und Gastrulation

bei Amphiozxus.

*Dendy, A. On the structure, development and morpho-

logical Interpretation of the Pineal Organs and Adjacent Parts

of the Brain in the Tuotora (Sphenodon punctatus). In: Phil.

Trans. B. CCI, p. 227—331, 20 Figg., Tab. XIX—XXXI —

Amphioxus steht phylogenetisch den wurmähnlichen Vorfahren

der Vertebraten nahe.

Gaskell, W. Origin of the Vertebrates. In: Proc. Linn. Soc.

London CXXII Sess. p. 9—15; 46—50. Diskussion von: Gar-

diner, S.; Mitchell, R.; Lankester, R.; Goodrich und Me Bride in:

ibid., p. 15—46. — Phylogenetisches. Die Chordaten stammen

von Arthropoden ab, Amphioxus stellt eine degenerierte Cyclo-

stome dar. Gegen sind: Goodrich, Lankester und Me Bride.

Gibson, H. The Cephalochorda: ‚Amphiozxides“. Percy

Sladen Trust Exped. Indian Oc. 1905, under S. Gardiner, IX.

In: Trans. Linn. Soc. London, 2. Zool. XIII, p. 213—256, 4 Figg:,

Tab.. XV. — Allgemeine morphologische und anatomische

Beschreibung der Larven und der reifen Tiere von Amphiozxides

pelagicus, A. valdiviae und Asymmetron lucayanum. Vergleich mit

Amphioxus-Arten. Phylogenetisches. F. 8.

Glaesner, L. Studien zur Entwicklungsgeschichte von Pet-

romyzon fluviatilis. 1. Furchung und Gastrulation. In: Zool.

Jahrb. Abth. Anat. XXIX, p. 139—190, 31 Figg., Tab. XI, XU.

— Vergleich der Gastrulation von Petromyzon mit derjenigen von

Amphioxus.

Hussakof, L. Notes on the Behaviour and Reactions of

Amphioxus. In: Science (2) XXXI, p. 475. — Biologisches.

Archiv für Naturgeschichte 1

TOT Van 1%

2 Acrania für 1910.

Legros, R. Sur quelques points de l’anatomie et du deve-

loppement de l’Amphioxus. Notes preliminaires. 1. Sur le ne-

phridium de Hatschek. In: Anat. Anz. XXXV, p. 561—587,

7 Figg. — Kiemennatur des Larvenmundes bei Amphioxus. Über

Entwickelung der Nephridien, Solenocytenkämme, Hatschek’schen

Kanäle, Zwischenbläschen und Boveri’s Kanälchen (aus Mesoderm-

divertikeln).

Polimanti, O0. Beiträge zur Physiologie des Nervensystems

und der Bewegung bei den niederen Tieren. 1. Branchiostoma

lanceolatum Narr. (Amphioxus). In: Arch. Anat. Phys. Abt.,

p. 129—172, 6 Figg. — Physiologisches.

Schaeffer, J. (1). Über das Verhältnis des Chordagewebes

zum Knorpelgewebe. In: Anat. Anz. XXXVII, p. 231—239.

— (2). Über den feineren Bau und die Entwickelung des

Knorpelgewebes und über verwandte Formen der Stützsubstanz.

3. Teil. In: Zeit. f. wiss. Zool. XCVII, p. 1—90, Tab.I, II. —

Histologische Untersuchungen über Chorda dorsalis und chorda-

ähnliches Geweb bei allen Wirbellosen. Der Knorpel von

Amphioxus ist dem Knorpel der Chordaten ähnlich, seine Chorda

dorsalis dagegen ist ein Gewebe für sich (Vergleich mit den Appen-

dieularien, Trachymedusen und Hydroidpolypen).

Schimkewitsch, W. Lehrbuch der vergleichenden Anatomie

der Wirbeltiere. Übers. u. bearb. v. H. N. Maier und B. W. Sukat-

schoff, Stuttgart, 652 pp., 535 Figg. — Allgemeines über Anatomie

und Ontogenie.

Spitzer, A. Über die Kreuzung der centralen Nervenbahnen

und ihre Beziehungen zur Phylogenese des Wirbeltierkörpers.

Leipzig & Wien. 268 pp., 11 Figg., Tab. — Physiologisches.

Uebersicht nach dem Stoff.

Morphologie, Anatomie, Histologie.

Aeußere Morphologie und gesamte Anatomie: Amphioxides; Gibson.

Amphioxus; Schimkewitsch. — Haut und Muskulatur: Knorpel und Chorda

dorsalis; Schaeffer (1) (2). — Nervensystem: Physiologisches; Spitzer,

Polimanti. — Exeretionssystem: Nephridienbau; Legros.

Ontogenie, Organogenie, Phylogenie.

Ontogenie: Furchung und Gastrulation; Assheton; Glaessner. Larven-

bau von Amphioxides; Gibson. Allgemeines; Schimkewitsch. Entwickelung

der Nephridien; Legros. Phylogenie: Allgemeines; Gaskell; Dendy. Ver-

gleich mit Entwickelung von Petromyzon; Glaessner. Vergleich mit dem

Knorpelgewebe anderer Wirbellosen; Schaeffer (1) (2).

Biologie, Physiologie.

Biologie: Allgemeines; Hussakof. — Physiologie: Nervensystem;

Spitzer; Polimanti.

Faunistik. Systematik. 3

Faunistik.

Atlantik (Nord).

Florida: Asymmetron macricaudatum; Gibson. — Bahamas-Ins.:

Asymmetron lucayanum, Amphioxides pelagicus (ib.). — Teneriffa: Am-

phioxides valdiviae (ib.). — Guinea Golf: Amphioxides pelagicus (ib.).

Indik.

Vorderindien: Asymmetron caudatum (ib.). — Ceylon: Heteropleuron

cingalese (ib.). — Malediven-Ins.: Heteropl. parvum, Heteropl. agassizü,

Asymmetron lucayanum (ib... — Chagos-Ins.: Asymmetron lucayanum,

Amphioxides pelagicus, Amphioxides valdiviae (ib... — Mauritius:

Amphioxides pelagicus, A. valdiviae, Asymmetron lucayanum (ib.). —

Indik: Amphioxides sternurus (ib.).

Pacifik.

Malayische Meere, Torresstr.: Heteropleuron cultellum (ib.). — Austra-

lien, Bassstr.: Heteropleuron bassanum (ib.). — New Zealand: Heteropleuron

heotari (ib.).

Systematik.

Amphioxides pelagicus, A. sternurus, A. valdiviae; Gibson.

Asymmetron caudatum, A. lucayanum, A. macricaudatum; Gibson.

Heteropleuron agassizü, H. bassanum, H. cingalese, H. cultellum, H. hectori,

H. valdivense, H. parvum; Gibson.

Tunikata für 1910.

Von

Dr. A. Schepotieff, St. Petersburg.

Publikationen und Referate.

Apstein, €. Das Vorkommen von Salpen in arktischen Ge-

bieten. In: Fauna Arctica, V, p.1—12, 13 Figg. F. 8.

Colton, H. The ‚‚Pylorie Gland“ of the Ascidian Botryllus

— an organ of Exceretion®? In: Biol. Bull. Woods Holl. XIX,

p. 35—54, 2 Figg., Tab. I, II. — Über den feineren Bau der Drüsen

(Ampullen und Röhrchen, Cilien).. Versuche mit Vitalfärbungen.

Der Vergleich mit Excretionsorganen.

Delsman, H. Beiträge zur Entwicklungsgeschichte von

Oikopleura dioica. In: Verh. Rijksinst. Onderz. Zee, 3 Deel,

24 pp., 11 Figg., Tab. I—-III. — Embryologisches. Furchung

(Vergleich mit Amphioxus) und Larvenbildung (spez. über Ent-

wicklung der Kiemen und des Darmkanals).

4 Tunikata für 1910.

Dogiel, J. Die Bedingungen der automatisch-rhythmischen

Herzcontraktionen. In: Arch. ges. Physiol. CXXXV, p. 1—103,

79 Figg., Tab. I—III. — Über das Herz von Salpa.

Farman, G. Pwyrosoma spinosum, Herdman. In: Mem. Chall.

Soc. London I, p. 220—244, Tab. VI, VII. — F. 8.

Hartmeyer, R. (1). Ascidien. In: Bronn’s Klass. Ordn. Tierr.

III, Suppl. Lief. 81—90 (p. 1281—1773 [publ. in 1910 pp. 1489

—1680] F. 8.

— (2). Die Ascidien der Danmark-Expedition. In: Meddel.

Grönl. Kjöbenh. XLV, p. 225—236. F. 8.

— (3). Pyura echinata (L.) oder Microcosmus echinatus (L.) ?

(Zugleich ein Beitrag zur Variabilität einer Ascidie). In: Sitzb.

Ges. Nat. Freunde Berlin, p. 231—240, Tab. VIII. — Gegen eine

artliche ne der beiden Formen.

Thle, J. (1). Über die sogenannte metamere Segmentierung

des Appendicularienschwanzes. In: Zool. Anz. XXXV, p. 404

—407. — Gegen die Metamerie der Tunikaten (gegen Martini).

— (2). Die Thaliaceen (einschließlich Pyrosomen) der Si-

boga-Expedition. In: Siboga Exp. 56d, p. 1—55, 6 Figg.,

Tab. I. — Allgemeines über die Muskulatur. F. 8.

Johnson, M. A quantitative Study of the Development of

the Salpa-Chain in Salpa fusiformis-runcinata. In: Univ. Calif.

Publ. Zool. VI, p. 145—176. — Über verschiedene Formen der

Kettenbildungen.

Martini, E. Weitere Bemerkungen über die sogenannte meta-

mere Segmentierung des Appendicularienschwanzes. In: Zool.

Anz. XXXV, p. 644—652. — Für die Metamerie der Tunikaten

(gegen Ihle).

Morgan, T. (1). The effects of Altering the Position of the

Cleavage Planes in Eggs with precocious Specification. In: Arch.

Entw. Mech. XXIX, p. 205—224. — Entwicklungsmechanische

Versuche mit den Eiern von Ciona intestinalis (Furchungsprozeß

unter Druck; Eierentwicklung; Schicksal des Blastoporus).

— (2). Cross-and Self-Fertilization in Ciona intestinalis.

In: Arch. Entw. Mech. XX, p. 206—235. — Über die Selbst-

befruchtung, Kreuzung, künstl. Parthenogenese und Sperma-

bilduna.

Neumann, G. Die Pyrosomen. In: Bronn’s Cl. u. Ordn. Tierr.

III. Suppl. 2 Abt. Lief. 4, 5, p. 49—8), Fig. 12—16, Tab. IV, V.

— Nervensystem, Sinnesorgane (Tast- und Sehorgane), Flimmer-

grube und Subneuraldrüse, Endostyl, Kiemendarm, abnorme

Ausbildungen der Kieme, Darmkanal bei Pyrosomen.

Schaffer, J. Über den feineren Bau und die Entwicklung des

Knorpelgewebes und über verwandte Formen der Stützsubstanz.

IlI. Teil. In: Zeit. wiss. Zool. XCVIL, p. 1—9, Taf. I, I.

Über Chorda dorsalis, chordoides Stützgewebe und Mantelgewele

bei Chordaten und Wirbellosen, speziell bei Appendicularien.

Publikationen und Referate. Übersicht nach dem Stoff. 5

Schaxel, J. Die Morphologie des Eiwachstums und der

Follikelbildungen bei den Ascidien Ein Beitrag zur Frage der

Chromidien bei Metazoen In: Arch. Zellforsch. IV, p 265—308,

Tab. XIX— XXI — Betrachtungen über die ersten Entwicke-

lungsstadien mit besonderer Berücksichtigung der Kernverände-

rungen. Allgemeines über Chromidien und Dotterbildung, De-

pressionen und Kerndualismus.

Van-Name, W. Compound Ascidians of the Coasts of New-

England and neighbouring British Provinces In: Proc. Boston

Soc. N. Hist. XXXIV, p 339—424, 25 Figg, Tab. XXXIV

—XXXIX F 8.

Übersicht nach dem Stoff.

" Morphologie, Anatomie, Histologie.

Aussere Morphologie: Allgemeines über Metamerie der Tunikaten.

Ihle (1), Martini. — Die Kettenbildungen bei Salpen. Johnson. — Die

Variabilität bei Pyura. Hartmeyer (3). — Mantel und Skelettsystem:

Chordagewebe und Mantel bei Appendicularien. Schaffer. — Darmkanal:

Allgemeiner Bau, Kiemendarm und Flimmergrube der Pyrosomen. Neu-

mann. — Die Subneuraldrüse bei Botryllus (Colton); bei Pyrosomen (Neu-

mann). — Muskulatur bei Salpen. Ihle (2). — Gefässsystem: Herz bei

Salpen. Dogiel. — Nervensystem: Sinnesorgane bei Pyrosomen. Neumann.

— Exkretionssystem bei Botryllus. Colton.

Ontogenie.

Embryologisches bei Oikopleura.. Delsman. — Entwicklungsmecha-

nische Versuche mit Eiern von Ciona. Morgan (1). — Selbstbefruchtung

und Kreuzung. Morgan (2). — Eiwachstum und Follikelbildung bei

Ascidien. Schaxel.

Faunistik.

Nord-Polarmeer.

Spitzbergen: Bugyra pedunculata, Caesira erystallina, C. retorti-

formis, C. römeri, C. septentrionalis, C. terax, Pyura echinata, P.

aurantium, Pelonaia corrugata, Tethyum loveni, T. rusticum, Den-

drodoa aggregata, D. grossularia, D. kükenthali, D. lineata, D. uni-

plicata, Pandocia libera, P. pomaria, Kükenthalia borealis, Sareobotrylloides

aureum, Chelyosoma macleanyanum, Corella borealis, Corellopsis peduneu-

lata, Phallusia dijmphniana, Ph. obliqua, Ph. prunum, Ciona intestinalis,

Polyeitor erystallinus, P. kükenthali, Holozoa clavata, H. livida, Didem-

nopsis variabile, Didemnum polare, D. structum, Diplosomoides bathy-

philum, D. dubium, Macrocliinum pomum, Amaroucium translucidum,

Aplidium lacteum, A. schaudinii, A. spitzbergense, Synaicum pachyderma-

tinum, 8. turgens. Hartmeyer (1). — Bäreninsel: Caesira cerystallina, C.

retortiformis, C. tenax, Pyura echinata, Tethyum rusticum, Dendrodoa

aggregata, D. kükenthali, D. lineata, Kükenthalia borealis, Sarcobotrylloides

aureum, Phallusia obliqua, Ph. prunum, Ciona intestinalis, Macroclinum

6 Tunikata für 1910.

pomum, Amaroucium mutabile, A. translucidum, Aplidium flavum, Synoi-

cum inerustatum, S. pachydermatinum, $S. turgens. Hartmeyer (1). —

Arktisches Norwegen: Eugyrioides rara, Caesira arctica, C. erystallina,

C. oceulta, C. septentrionalis, C. siphonalis, Ctenicella cynthiaeformis,

Pyura echinata, P. aurantium, Mierocosmus glacialis, Pelonaia corrugata,

Tethyum doliolum, T. finmarkiense, T. loveni, T. rusticum, Dendrodoa

aggregata, D. grossularia, Pandocia libera, P. pomaria, Polyeycelus fuscus,

Sarcobotrylloides aureum, Chelyosoma macleayanum, Corella parallelo-

grama, Phallusia conchilega, Ph. mentula, Ph. mitescens, Ph. obliqua, Ph.

prunum, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, Ciona gelatinosa, C. intestinalis,

Clavellina lepadiformis, Polyeitor erystallinus, Holozoa clavata, H. livida,

Didemnopsis variabile, Didemnum structum, Macroclinum pomum, Ama-

roucium mutabile, A. sarsi, Aplidium flavum, Synoicum incrustatum.

Hartmeyer (1). — Murmanküste und Barentsmeer: Eugyrioides rara,

Caesira ampulloides, C. erystallina, C. nana, C. retortiformis, C. römeri,

C. septentrionalis, Pyura echinata, P. aurantium, P. ovifera, Pelonaia

corrugata, Tethyum finmarkese, T. loveni, T. rusticum, Dendrodosa

aggregata, D. grossularia, D. kükenthali, D. linesta, D. uniplicata, Pan-

docia pomaris, Kükenthalia borealis, Sarcobotrylloides aureum, Chelyo-

soma macleayanum, Phallusia dijmphniana, Ph. obliqua, Ph. prunum,

Ciona intestinalis, Polyeitor cristallinus, P. kükenthali, Holozoa clavata,

Didemnopsis variabile, Didemnum structum, Amaroucium mutabile, A.

translucidum, Aplidium flavum, A. lacteum, Synoicum incrustatum, 8.

turgens. Hartmeyer (1). — Weißes Meer: Chelyosoma macleayanum,

Eugyra pedunculata, Eugyrioides rara, Caesira ampulloides, C. erystallina,

C. nana, C. occulta, C. retortiformis, C. septentrionalis, C. siphonalis, C.

wagneri, Pyura echinata, P. aurantium, Pelonaia corrugata, Tethyum

loveni, T. rusticum, Dendrodoa aggregata, D. grossularia, Pandocia pomaria,

Sarcobotrylloides aureum ?, Phallusia dijmphniana, Ph. obliqua, Ph.

prunum, Didemnum structum, Amaroucium translucidum, Aplidium

flavum, A. lacteum, Synoicum incrustatum, $. pachydermatinum Hart-

meyer (1). —Franz-Josef-Land: Caesira erystallina, C. retortiformis, Pyurs

echinata, Tethyum rusticum, Dendrodoa kükenthali, Phallusia prunum,

Diplosomoides dubium Hartmeyer (1). — Nowaja Semlja und Kara-See:

Eugyra pedunculata, Rhizomolgula warpachowski, Caesira erystallina, C.

retortiformis, Pyura echinata, P. aurantium, Pelonaia corrugata, Tethyum

gelatinosum, T. loveni, T. rusticum, Dendrodoa aggregata, D. kükenthali,

D. uniplicata, Sarcobotrylloides aureum, Corella borealis, Phallusia

dijmphniana, Ph. prunum, Ciona gelatinosa, C. intestinalis, Aplidium

lacteum, Cynthia echinata. Hartmeyer (3), — Sibirisches Eismeer:

Eugyra pedunculata, Eugyrioides rara ?, Rhizomolgula gigantea, Caesira

ampulloides ?, C. birulai, C. erystallina, C. retortiformis, Pyura echinata,

Pelonaia eorrugata, Tethyum loveni, Th. rhizopus, Th. rusticum, Dendrodoa

kükenthali, Pandocia libera, Chelyosoma macleayanum, Corellopsis pedun-

culata, Phallusia okliqua, Ciona intestinalis var. longissima, Didemnopsis

variabile, Diplosomoides flavescens, Polyclinum sibiricum, Amaroucium

translucidum, Synoicum pachydermatinum. Hartmeyer (1).

Faunistik. i X

Nord-Atlantik (Ost).

Island: Caesira cerystallina, C. retortiformis, Pyura echinata, P.

aurantium, Pelonaia corrugata, Tethyum cylindriforme, T. rusticum,

Dendrodoa aggregata, D. grossularia, Kükenthalia borealis, Chelyosoma

macleayanum, Phallusia obliqua, Ph. prunum, Ascidiella patula, Polyeitor

erystallinus, Didemnopsis variabile, Leptoclinides faeröensis, Macroclinum

pomum. Hartmeyer (1). — Fär-0er: Eugyra glutinans, Pyura echinata,

Pelonaia corrugata, Tethyum doliolum, T. gelatinosum, T. loveni, T.

rusticum, Dendrodoa grossularia, Pandocia libera, P. pomaria, Küken-

thalia borealis, Corella parallelogrammum, Phallusia obliqua, Ciona in-

testinalis, Leptoclinides faeröensis, Macroclinum pomum, Aplidium lacteum.

Hartmeyer (1). — Jan-Mayen: Eugyrioides arctica, E. symmetrica, Caesira

erystallina, Tethyum bathybium, Dendrodoa grossularia, Sarcobotrylloides

aureum, Chelyosoma macleayanum,Phallusia prunum, Didemnum structum ?,

Amaroucium densum ? Hartmeyer (1). — Norwegen (subarktisch): Eugyra

glutinans, Eugyrioides rara, Caesira ampulloides, ©. nana, ©. occulta, C.

septentrionalis, Pyura echinata, Pelonaia corrugata, Microcosmus glacialis,

Tethyum doliolum, T. loveni, T. rusticum, Dendrodoa grossularia, Pandocia

libera, P. pomaria, Polycyclus fuscus, Corella parallelogramma, Phallusia

conchilega, Ph. mentula, Ph. mitescens, Ph. obliqua, Ph. prunum, Ph.

virginea, Ascidiella aspersa, A. patula, Ciona intestinalis, Clavelina lepadi-

formis, Polyeitor erystallinus, Didemnopsis variabile, Leptoclinides faerö-

ensis, Macroclinum pomum, Aplidium lacteum. Hartmeyer (1). — Nordsee

(Niederland Belgien); Eugyra glutinans, Caesira ampulloides, C. nana, C.

occulta, Pyura echinata, Pelonaia corrugata, Tethyum loveni, Dendrodoa

grossularia, Pandocia libera, P. pomaria, Phallusia conchilega, Ph. obliqua

Ph. prunum, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, Cionaintestinalis, Clavelinalepa-

diformis, Macroclinum pomum Hartmeyer (1). Oikopleura dioica. Delsman. —

Dänemark und Ostsee: Eugyra glutinans, Caesira ampulloides, C. nana,

C. occulta, Pyura echinata, Pelonaia corrugata, Tethyum loveni, T. rusti-

cum, Dendrodoa grossularia, Pandocia pomaria, Corella parallelogramma,

Phallusia mentula, Ph. prunum, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, Ciona

intestinalis. Hartmeyer (1). — Großbritannien: Eugyra glutinans, Caesirs

ampulloides, C. occulta, Pyura echinata, Pelonaia corrugata, Dendrodoa

grossularia, Pandocis pomaria, Corella parallelogramma, Phallusia con-

chilega, Ph. mentula, Ph. obliqua, Ph. prunum ?, Ph. virginea, Ascidiella

aspersa, Ciona intestinalis, Clavelina lepadiformis, Polyeitor cristallinus,

Maecroclinum pomum. Hartmeyer (1). — Kanal und Frankreich: Eugyra

glutinans, Caesira occulta, Polonaia corrugata, Dendrodoa grossularia,

Pandocia pomaria, Corella parallelogramma, Phallusia conchilega, Ph.

mentula, Ph. obliqua, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, A. patula, Ciona

intestinalis, Clavelina lepadiformis, Polyeitor cristallinus, Amaroucium

densum. Hartmeyer (1). Portugal: Pyrosoma spinosum. Farman.

Nord-Atlantik (West).

Arktisch-amerikanischer Archipel: Pyura echinata, P. aurantium,

P. ovifera, Cystingia griffithsii, Pelonaia corrugata, Tethyum rusticum,

Dendrodoa aggregata, D. cylindries, D. grossularia, Phallusia prunum.

8 Tunikata für 1910.

Hartmeyer (1). — Labrador: Rugyra glutinans, Pyura echinata, P. aurantium,

P. ovifera, Pelonaia corrugata, Tethyum rusticum, Dendrodoa aggregata,

Phallusia obliqua, Ph. prunum, Didemnum structum. Hartmeyer (1). —

Baffinsbay und Davisstraße: Rhizomolgula ritteri, Caesira ceristallina, Pyura

echinata, P. aurantium, P. ovifera, Polonaia eorrugata, Tethyum loveni,

T. rustieum, Dendrodoa aggregata, Kükenthalia borealis, Corella borealis,

Phallusia obliqua, Ph.prunum, Ciona intestina lis var. longissima, Didemnum

structum. Hartmeyer (1). — Westgrönland: Eugyra glutinans, Caesira

ampulloides, C. erystallina, C. occulta, C. retortiformis, C. septentrionalis,

C. tenax, Pyura echinata, P. aurantium, P. ovifera, Polonaia corrugata,

Tethyum loveni, T. rusticum, Dendrodoa aggregata, D. grossularia, Sacro-

botrylloides aureum, Chelyosoma macleayanum, Phallusia obliqua, Ph.

prunum, Ascidiella patula, Ciona intestinalis, Didemnum struetum, Maero-

clinım pomum. Hartmeyer (1). — Ostgrönland: Rhizomolgula ritteri,

Caesira retortiformis, C. septentrionalis, Pyura echinata, P. ovifera, Tethyum

kupfferi, T. rusticum, Dendrodoa adolphi, Corella borealis, Phallusia

prunum. Hartmeyer (1). Neufundland und Ostküste von N.-Amerika:

Caesira crystallina, C. retortiformis, Pyura echinata, P. aurantium, P.

ovifera, Pelonaia corrugata, Tethyum rusticum, Dendrodosa aggregata,

Chelyosoma macleayanum, Phallusia obliqua, Ph. prunum, Ciona intesti-

nalis, Macroclinum pomum. Hartmeyer (1).

u Mittelmeer.

Afrikanische Mittelmeerküste (West): Polycycelus jeffreysi, Holozoa

walleyi, Rhodosoma eallense, Pandocia formosa, Phallusia aspera, Didem-

num albidum. D. jeffreysi. Hartmeyer (1). — Provence-Küste: Caesira

ampulloides, C. helleri, C. impura, Eugyriopsis intermedia, Ctenicella

appendiculata, C. korotneffi, Pyura corallina, P. dura, P. momus, P. morus,

P. pontex, P. papillosa, P. seutellata, Microcosmus mierocosmus, M. poly-

morphus, M. sabatieri, M. spinosus, M. vulgaris, Pyura roulei, Tethyum

canopoides, T. granulatum, T. plicatum, Pandocia pomaria, Allaeo-

carpa fusca, Botryllus schlosseri, B. stellatus, B. violatinetus, Polyeyelus poly-

eyclus, P. renieri, P. vallei, P. violaceus, Botrylloides mediterraneum, B.

orpimenti, B. prostratum, B. rubrum, Phallusia extensa, Ph. guttulata,

Ph. involuta, Ph. malaca, Ph. mentula, Ph. producta, Ascidiella aspersa,

A. lutaria, Phallusiopsis mamillata, Ph. m. var. lutes, Ph. marioni, Pero-

phora banyulensis, Perophoropsis herdmani, Ciona intestinalis, C. roulei,

C. savignyi, Diazona intacta, D. violacea, Rhopalea cerberiana, Rh. napole-

tana, Clavellina lepadiformis, C. nana, Polyeitor adriaticus, P. erystallinus,

P. posidoniarum, P. plumbeus, P. ruber, P. tridentatus, Cystodites eretaceus,

C. dellechiajei, Holozoa rosea, Trididemnum fallax, T. graphicum, T. in-

aequilobatum, Didemnopsis crassum, D. inarmatum, Didemnum asperum,

D. canum, D. commune, D. exaratum, D. fulgens, D. maculosum, D. per-

foratum, D. perspieuum, D. protectum, D. resinaceum, Polysyncraton

lacasei, P. massiliense, Leptoclinum listerianum, Polyclinum saturnium,

Glossoforum humile, G. sabulosum, Macroclinum vitreum, Amaroucium

albicans, A. conicum, A. densum, A. fuscum, A. gibbulosum, A. nordmani,

A. n. var. nigrum, A. proliferum, A. tridentatum, Aplidium asperum, A.

Faunistik. 9

griseum, Paraseidia areolata, P. flava, Sidnyum turbinatum. Hartmeyer

(1). — Balearen. Tethyum plicatum, Perophora listeri, Eeteinascidia

turbinata, Diazona violacea, Clavelina lepadiformis, Polyeitor erystallinus,

Cystodites inflatus, C. irregularis, C. polyorchis, Holozoa intermedia,

Didemnum canum, D. commune, D. exaratum, D. fulgens, D. infundibulum,

D. maculosum, D. marginatum, Amaroucium blochmanni, A. fimbriatum,

A. fuseum, A. robustum, A. rodriguezi, A. willi.

Micerocosmus mierocosmus, Phallusiopsis mamillata. Hartmeyer (1). —

Sieilien: Caesira impura, Tethyum plicatum, Ciona intestinalis. Hart-

meyer er (1). — Neapel: Rhizomolgula intermedia ?, Caesira impura, Cteni-

cella appendiculata, P Pyura dura, P. papillosa, P. scutellata, P. tesselata,

Mierocosmus claudicans, M. mierocosmus, M. polymorphus, M. vulgaris,

Tethyum canopoides, T. plicatum, Pandocia discoidea, P. gracilis, 1 24

pomaria, P. sabulosa, Alloeocarpa fusca, Botryllus aurolineatus, B. gemmeus,

B. morio, B. rosaceus, B. sannio, B. schlosseri, B. stellatus, B. tapetum,

B. tenuis, B. violatinetus, Polyceyclus elongatus, P. renieri, P. vallei, Botryl-

loides albicans, B. emeryi, B.gascoi, B.leachi, B.luteum, B.marioniformis,

B. rubrum, Rhodosoma callense, Corella parallelogramma, Phallusia fumi-

gata, Ph. ingeria, Ph. malaca, Ph. mentula, Ph. pusilla, Ph. quadrata, Ph.

salvatoris, Ascidiella aspersa, Phallusiopsis mammillata, Percphora listeri,

Cions intestinalis, C. savignii, Diazona violacea, Rhopalea neapolitana,

Archiascidia neapolitana, Clavellina lepadiformis, Polycitor crystallinus,

P. pancerii, P. plumbeus, Cystodites dellechiajei, Holozoa pilesata, H. rosea,

Trididemnum bicolor, T. cereum, Didemnum candidum, D. canum, D.

commune, D. dentatum, D. exaratum, D. fulgens, D.lahillei, D. maculosum,

D. perforatum, Polysyneraton lacazei, Leptoclinum listerianum var.

gelatinosum, L. 1. var. punctatum, L. spongiforme, Polyclinum saturnium,

Amaroueium 2ibbulosum, A. mediterraneum, A. proliferum, Paraseidia

areolata, Sidnyum turbinatum. Hartmeyer (1). — Adriatisches Meer:

Eugyra arctica, Caesira euprocta, C. helleri, Ctenicella appendiculata, C.

korotneffii, Pyura dura, P. momus, P. papillosa, P. scutellata, P. squamu-

losa, Mierocosmus elaudicans, M. mierocosmus, M. polymorphus, M. vul-

garis, Tethyum canopoides, T. plicatum, Pandocia gracilis, P. pomaria,

Alloeocarpa fusca, Botryllus baeri, B. gemmeus, B. rosaceus, B. viola-

tincetus, Polycyclus eyaneus, P. polyeyclus, P. renieri, P. vallei, P. violaceus,

Botrylloides luteum, B. purpureum, B. rubrum, Sarcobotrylloides superbum,

Rhodosoma callense, Phallusia aspera, Ph. conchilega, Ph. extensa, Ph.

fumigata, Ph. involuta, Ph. malaca, Ph. mentula, Ph. muricata, Ph. plebeia,

Ph. reptans, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, Phallusiopsis mammillata,

Perophora Jlisteri, Ciona intestinalis, Clavellina lepadiformis, Polyeitor

adriaticus, P. crystallinus, P. mucosus, Cystodites eretaceus, C. dellechiajei,

Holozoa lubrica, H. pileata, Trididemnum bicolor, T. grubei, T. lobatum,

T. variolosum, Didemnopsis inarmatum, D. tortuosum, Didemnum asperum,

D. canum, D. commune, D. coriaceum, D. dentatum, D. durum, D. exaratum,

D. fulgens, D. granulosum, D. marginatum, D. resinaceum, D. rubellum,

D. tridentatum, Polysyneratum lacazei, Leptoclinum listerianum, L. 1.

var. gelatinosum, L. spongiforme, Diplosomoides pseudoleptoclinum, Poly-

elinum ficus, Amaroucium conicum, A. densum, A. fuscum, A. lacteum,

‘

10 Tunikata für 1910.

A. mediterraneum, A. proliferum, Aplidium asperum, A. pellucidum, Par-

ascidia areolata, Sidnyum turbinatum. Hartmeyer (1). — Afrikanische

Mittelmeerküste (Ost): Eeteinascidia moorei, E. turbinata, Aplidium

lobatum. Hartmeyer (1). — Griechenland: Ctenicella appendiculata, Pyura

papillosa, Microcosmus vulgaris, Pandocia pomaria, Phallusia fumigata,

Ph. mentula, Ascidiella aspersa, Phallusiopsis mamillata, Ciona intestinalis,

Rhopalaea neapolitana, Cystodites dellechiajei, Polysyncraton lacasei,

Amaroucium fuscum, A. vitreum, Morchellium argus. Hartmeyer (1). —

Marmara-Meer: Eugyra adriatica, Caesira impura, C. occulta, Pyura dura,

P. papillosa, P. scutellata, Microcosmus vulgaris, Tethyum canopoides,

Corella parallelogramma, Phallusia fumigata, Ph. malaca, Ph. mentula,

Ph. reptans, Ph. virginea, Ascidiella aspersa, Phallusiopsis mamillata,

Cystodites eretaceus, Trididemnum grubei, Didemnum dentatum, Lepto-

elinum listerianum. Hartmeier (1). — Schwarzes Meer: Pyura momus,

Mierocosmus microcosmus, Botryllus aurolineatus, B. marionis, B. morio,

B. pruinosus, B. rubigo, B. schlosseri, B. smaragdus, B. violatinctus,

Botrylloides albicans, B. prostratum, B. rotifera, Ciona intestinalis, Tri-

didemnum cereum var. nigrum, T. c. var. sargassicola, Polysyneraton

lacazei. Hartmeyer (1).

Südatlantik (Ost).

Cap Verden und Canaren: Pyura rubrilabia, Sarcobotrylloides parvum,

S. wyvillei, Eeteinascidia turbinata, Ciona flemingi, Polycitor capsulatus,

Didemnum albidum, Leptoclinium purpureum, Amaroucium crosslandi.

Hartmeyer (1). — Die Westküste von Afrika: Gomaster dakarensis, Caesira

hupferi, C. kophameli, Pyura hupferi, Microcosmus polymorphus, Eupera

chuni, Alloeocarpa hupferi. Hartmeyer (1). — Kapland: Ctenicella con-

chata, Pyura pallida, P. stolonifera, P. vanhöffeni, Cynthiopsis coalitus,

C. herdmani, C. valdiviae, Microcosmus albidus, M. oligophyllus, Tethyum

pupa, Pandocia anguinea, P. tritonis, Gynandrocarpa domuncula, G.

placenta, Diandrocarpa monocarpa, Botrylloides meandrinum, Corella

eumyota, Phallusia canaliculata, Ph. caudata, Ph. compta, Ph. incrassata,

Ph. krechi, Phallusiopsis nigra, Chondrostachys enormis, Polyeitor illatus,

Didemnum albidum, D. edwardsi, D. speciosum var. asperum, Polyclinum

arenosum, P. isipigense, Atopogaster elongata var. pallida, Amaroucium

astraeoides, A. colelloides, A. flavolineatum, A. simplex, Psammaplidium

exiguum, P. obesum, P. pantherinum, P. subviride. Hartmeyer (1). —

S. Georgien und Bouvet-Inseln: Caesira georgiana, C. pulchra, Ascopera

bouvetensis, Pyura bouvetensis, P. georgensis, Tethyum pfefferi, T. steineni,

Polyzoa opuntia var. waerni, P. reticulata, Alloeocarpa zschani, Holozoa

eylindrica, Sycozoa georgiana, S. quoyi var. zschani, S. sigillinoides, Synoi-

cum steineri. Hartmeyer (1).

Südatlantik (West).

Ostküste von Nord-Amerika (subarktisch): Eugyra pilularis, Bostri-

chobranchus manhattensis, B. molguloides, Caesira erystallina, C. man-

hattensis, ©. retortiformis, Pyura aurantium, P. echinata, P. ovifera, P.

peetenicola, Culeolus suhmi, C. tanneri, Pelonaia corrugata, Tethyum

Faunistik. 11

arenicolum, T. partitum, T. plicatum, T. rusticum, Dendrodoa aggregata,

Botryllius gouldi, Chelyosoma macleayanum, Phallusia obliqua, Ph. prunum

Perophora viridis, Ciona intestinalis, Didemnum albidum, D. a. var.

luteolum, Macroclinum pomum, Amaroucium constellatum, Aplidium de-

spectum. Hartmeyer (1). — Bermuda: Pyura riseana, P. rubrilabia, Miero-

cosmus exasperatus subsp. typicus, Tethyum partitum var. bermudense,

Pandocia obteeta, Eusynstyela tineta, Diandrocarpa botryllopsis, Botryl-

loides nigrum, B. perspieuum var. rubicundum, Phallusia curvata, Phal-

lusiopsis nigra, Perophora viridis, Ecteinascidia turbinata, Chondrostachys

oblonga, Ch. pieta, Polyeitor capsulatus, P. clarus, P. connexus, P. ob-

scuratus, P. olivaceus, Cystodites draschei, ©. violaceus, Holozoa bermu-

densis, Trididemnum atrocanum, T. lucidum, T. orbiculatum, T. porites,

T. savigni, T. solidum, Didemnopsis inerme, Didemnum speciosum, Poly-

syneraton amethysteum, Echinoclinum verrilli, Leptoclinum atropunctatum,

L. lacteum, L. macdonaldi, Diplosomoides fragile, Amaroucium bermudae,

A. exile. Hartmeyer (1). — Westindien: Caesira contorta, C. oceidentalis,

Pyura chazaliei, P. discrepans, P. dura, P. laevigata, P. legumen, P. pallida,

P. riseana, P. torpida, Microcosmus anchylodeirus, M. biconvolutus, M.

claudieans, M. exasperatus subsp. typicus, Tethyum plicatum, Pandocia

appropinquata, P. asiphonica, P. brevipedunculata, P. cartilaginea, P.

friabilis, P. fuliginea, P. insulsa, P. nivosa, P. obtecta, P. seminuda, P.

spongiabilis, Diandrocarpa brakenhielmi, Botrylloides chazaliei, Rhodo-

soma seminudum, Corella minuta, Phallusia curvate, Ph. hygomiana, Ph.

interrupta, Ph. longitubis, Ph. prostrata, Ph. styeloides, Phallusiopsis

nigra, Ciona abdominalis, Didemnum cineraceum, D. conchyliatum, D.

tenue, Echinocelinum verrilli, Psammaplidium funginum. Hartmeyer (1).

— Ostküste von Süd-Amerika (Guyana — Buenos Ayres): Caesira eugyroides,

C. pyriformis, Tethyum flavum, T. glans, T. oblongum, T. plicatum, Pan-

docia aspera, P. pilella, P. rugosa, P. spongiabilis, Corella eumyota, Hypo-

bythius moseleyi, Phallusia meridionalis, Ph. tenera, Phallusiopsis nigra,

Cystodites draschei, Didemnum annecteus, D. speciosum, D. s. vas. asperum,

D. tenue, Leptoclinum macdonaldi, Coelocormus huxleyi, Polyclinum

molle, Aplidium crassum, A. inerustans, Psammaplidium effrenatum, Ps.

flavum. Hartmeyer (1). — Falkland-Inseln: Paramolgula horrida, P.

gregaria, Pyura paessleri, Tethyum verrucosum, Polyzoa falclandica, P.

opuntia subsp. typica, Amaroucium pallidulum, Psammaplidium paessleri,

Paramolgula gigantea, Pyura legumen f. typica, Tethyum paessleri, Polyzoa

reticulata, Alloeocarpa incrustans, Sycozoa gaimardi, 8. sigillinoides,

Amaroucium fuegienee. Hartmeyer (1). — Magalhaensischer Bezirk (Süd-

spitze von Süd-Amerika): Eugyrioides guttula, Caesira glomerata, C.

kophameli, C. pyriformis, Paramolgula gigantea, P. patagonica, P. schulzei,

Pyura legumen, P.]. var. cunninghami, P. 1. var. delfini, P. ]. var. ohlini,

P. stubenrauchi, Tethyum canopus var. magalhaensis, T. curtzei, T.

nordenskjöldi, T. ohlini, T. paessleri, T. spiriferum, Polyzoa opuntia, P. o.

var. waerni, P. reticulata, Alloeocarpa bridgesi, A. incrustans, A. inter-

media, Corella eumyota, Agnesia glaciata, Phallusia meridionalis, Ph.

tenera, Ciona intestinalis, Paessleria magalhaensis, Holozoa eylindrica,

Sycozoa gaimardi, $S. pedunculata f. robustipes, $. perrieri, S. ramulose,

12 Tunikata für 1910.

S. sigillinoides, S. umbellata, Trididemnum propinguum, Didemnum

biglans, D. tenue, Marcoelinum incertum, Atopogaster elongata, A. gigantea,

Amaroucium fuegiense, A. irregolare, A. laevigatum, A. recumbens. Hart-

meyer (1).

Indik.

Rotes Meer: Pyura gangelion, P. momus, P. pontex, Mierocosmus pupa,

M. microcosmus, Tethyum canopus, Pandocia cinerea, P. mytiligera, P.

polycarpa, P. solearis, Eusynstyela hartmeyeri, Botryllus rosaceus, Rhodo-

soma verecundum, Phallusia arabica, Ph. corallophila, Phallusiopsis nigra,

Ciona intestinalis, Didemnum candidum, Polyelinum ceythereum, P.

hesperium, P. isiacum, P. saturnium, P. uranium, Amaroucium effusum,

Aplidium lobatum, A. tremulum. Hartmeyer (1). — Ostküste von Afrika:

Diandrocarpa brakenhielmi var. stuhlmanni, Chondrostachys enormis,

Polyeitor möbiusi, Botrylloides gregalis, Pyura pallida. Hartmeyer (1). —

Somaliküste: Pyura gangelion, P. momus, P. spinosa, Pandocia miniata,

Polyandrocarpa violacea, Stoloniea prolifera, Botrylloides meandrinum,

Phallusia obocki, Ph. somaliensis, Phallusiopsis nigra, Ecteinaseidia moorei,

E. thurstoni, Didemnum albidum var. luteolum, D. bistranum, D. psamma-

todes, Aplidium africanum, Botrylloides gregalis. Hartmeyer (1). — Zanzibar-

küste: Pyura sansibarica, Microcosmus exasperatus subsp. typicus, Gynan-

drocarpa domuncula, Corella japonica, Phallusia longitubis, Polyeitor

möbiusi. Hartmeyer (1). — Mosambik -Küste: Pandocia rubida, Eusyn-

styela hartmeyeri, Botrylloides nigrum, Ecteinaseidia garstangi, Polyeitor

rhodopyge, Didemnum cretaceum, D. ianthinum, Polycelinum insulsum,

P. pullum. Hartmeyer (1). — Durban und Natal!: Pandocia natalensis,

Phallusia arenosa, Polyeitor eoeruleus, P. modestus, P. nitidus, Amaroucium

lubricum, Botrylloides gregalis. Hartmeyer (1). — Mauritius: Pandocia

nigricans, Tethyum natale, T. plicatum, Didemnum octogesimum, Poly-

elinum constellatum, P. festum, Amaroucium diaphanum, Polyeitor

möbiusi. Hartmeyer (1). — Ceylon: Caesira ridgewayi, C. taprobane, Pyura

aripuensis, P. crinistellata, P. lanka, P. pallida f. ceylonica, P. trans-

versiana var. manaarensis, Microcosmus longitubis, M. manaarensis,

Tethyum areolatum, T. aseidioides, T. lapidosum, T. pigmentatum, Pan-

docia alentura, P. curata, P. ceylonica, P. chalmersi, P. colletti, P. decipiens,

P. manaarensis, P. mutilans, P. palkensis, P. twynami, P. willisi, Eusyn-

styela imthurni, Diandrocarpa brakenhielmi var. ceylonica, D. nigricans,

Botryllus ater, Botrylloides atrum, B. chevalense, Rhodosoma ceylonieum,

Phallusia depressiuscula, Ph. donnani, Ph. mikrenterica, Ph. polytrema,

Perophora hornelli, Eeteinascidia sluiteri, E. solida, E. thurstoni, Ciona

intestinalis, Heterotrema sarasinorum, Cystodites ceylonensis, Trididemnum

areolatum, Didemnum ceylonicum, D. c. var. planum, D. frondescens, D.

margaritiferum, D.pantherinum, D. skeati, D. viride, Leptoclinumlisterianum,

L. virens, Polyelinum nigrum, Psammaplidium aurantiacum, P. ceylonicum.

Hartmeyer (1). — Golf von Bengalen: Culeolus recumbens. Hartmeyer (1).

— Südindik: Culeolus recumbens, Corynascidia suhmi, Caleolus perlueidus,

Fungulus cinereus, Bathyoneus mirabilis, Pharyngodietyon mirabile,

Caesira pedunculata, Ascopera gigantea, A. pedunculata, Tethyum con-

vexum, T. grande, Pandocia minuta, Phallusia placenta, Bathyascidia

Faunistik. 13

vasculosa. Hartmeyer (1). — Marion-Inseln: Synoicum pallidum. Hart-

meyer (1). — Kerguelen: Eugyra kerguelensis, Eugyrioides antarctica,

Tethyum laeteum, Polyzoa reticulata, Phallusia challengeri, Ph. despecta,

Ph. translucida, Tylobranchion speeiosum, Sycozoa concreta, S. quayi,

S. sigillinoides, Didemnum rubicundum, D. subflavum, Macroclinum

minutum, M. pyriforme, Amaroucium complanatum, A. globosum, A.

nigrum, A. variabile, A. v. var. tenerum, Aplidium fumigatum, A. fuscum,

A. leucophaeum, Psammaplidium retiforme, Marchellium affine, Synoicum

giardi. Hartmeyer (1). — Heard-Inseln: Sycozoa sigillinoides. Hartmeyer

(1). — St. Paul: Corella eumyota. Hartmeyer (1). Südwest- Australien:

Caesira tumulus, Astropera sabulosa, Pyura fissa, P. hisbida, P. spinifera,

P. s. var. intermedia, Microcosmus polymorphus, M. propinquus, Tethyum

bythium, T. radicosum, T. squamosum, Pandocia bassi, P. longisiphonica,

P. möbii, P. molguloides, P. obscura, P. pedunculata, P. rigida, P. tinctor,

Abyssascidia wyvillei, Phallusia obesa, Ph. oblonga, Perophora hutchin-

soni, Ciona intestinalis var. diaphanea, Chondrostachys ceylindrica, Ch.

macdonaldi, Sycozoa cerebriformis, S. murrayi var. rubida, S. pedunculata,

Sigillina australis, Trididemnum aurantiacum, Atopogaster aurantiaca,

Amaroueium alhidum. Hartmeyer (1). Tasmanien: Caesira mortoni,

Pyura pachydermatina, Pandocisa gregoria, Oorella valdiviae, Ciona in-

testinalis var. dianhanea. Hartmeyer (1).

Nord-Paeifik (Ost).

Beringmeer: Caesira ampulloides ?, Pyura echinata ?, P. aurantium,

P. ovifera, P. thompsoni, Tethyum clavatum, Dendrodoa subpedunculata,

D. tuberceulata, Chelyosoma macleayanum, Polyclinum pannosum, P.

sibiricum, Maeroclinum jordani, Amaroucium kinkaldi, A. pribilovense,

A. snodgrassi, Synoicum irregulaıe, S. turgens? Hartmeyer (1). — Alaska:

Caesira retortiformis, C. crystallina, Phallusia prunum, Amaroucium trans-

lucidum. Hartmeyer (1). — Westküste von Nord-Amerika: Rhizomolgula

arenaria, Caesira graphica, C. pugetiensis, 0. retortiformis, Pyura castanie-

formis, P. deani, P. erecta, P. haustor, P. macrosiphonus, P. okai, P.

superba, P. villosa, Tethyum gibsii, T. joannae, T. stimpsoni, T. truncatum,

T. yakutatense, Botryllus magnus, Chelyosoma productum, Corella will-

meriana, Phallusia inerustans, Ph. koreana, Ph. prunum, Ascidiella griffini,

Polyeitor lobatus, P. mollis, P. pulcher, Holozoa confusa, H. oceidentalis,

Trididemnum strangulatum, Polyelinum meridianum, Amaroucium_ cali-

fornicum, A. coei, A. dubium, A. translucidum, Psammaplidium peduncu-

latum. Hartmeyer (1).

Nord-Paäeifik (West).

Ochotsk-See: Pyura aurantium, Chelyosoma macleayanum. Hart-

meyer (1). — Nord- Japan: Pyura echinata, P. aurantium. Hartmeyer (1).

— Östlich von Japan: Culeolus murrayi, C. willemoesi, Bathyoncus dis-

coides, B. minutus, Tethyum pusillum, Hypobythius calycodes. Hart-

meyer (1). — Japan und Korea: Caesira japonica, Pyura aurantium, P. a.

f. koreana, P. comma, P. echinata, P. hilgendorfi, P. igaboja, P. japonica,

P. jakoboja, P. karasboja, P. michaelseni, P. mirabilis, P. owstoni, P.

“ in

14 Tunikata für 1910.

pallida f. japonica, P. ritteri, P. roretzi, P. sacciformis, P. sanderi, P. superba,

Microcosmus hartmeyeri, M. polymorphus, Tethyum clara, T. clava, T.

elsa, T. esther, T. fertile, T. irene, T. kroboja, T. longitube, T. plicatum,

T. sigma, Pandocia eryptocarpa, P. döderleni, P. maculata, Rhodosoma

papillosum, Chelyosoma doffleini, Ch. sibogae, Ch. siboja, Corella japonica,

Phallusia armata, Ph. divisa, Ph. granosa, Ph. koreana, Ph. longistriata,

Ph. suensoni, Ascidiella opalina, Ciona aspera, C. indica, C. intestinalis,

C. savignii, Rhopalopsis defecta, Didemnum japonicum, Leptoclinum

mitsukurii. Hartmeyer (1). — Philippinen: Holozoa vallei, Pandocia pedata,

Diandrocarpa monocarpa var. philippinensis, Cystodites philippinensis,

Holozoa vallei, Didemnum albidum, var. grande, Aplidum fumigatum,

Pandocia irregularis, Botrylloides perspicum, B. tyreum, Nephtheis thom-

soni, Didemnum moseleyi. Hartmeyer (1). — Malayischer Archipel: Eugyra

bilabiata, Eugyrioides molguloides, Caesira calvata, C. crinita, C. flagrifera,

C. forbesi, C. impuza, C. longipedata, C. martensi, C. vitrea, Pyura arenosa,

P. breviramosa, P. cerebriformis, P. fissa, P. formosa, P. fructuosa, P.

jacatrensis, P. latisinosa, P. melocactus, P. pallida, P. p. f. formosae, P. p.

f. tenuis, P. roseola, P. transversaria, Mierocosmus arenaceus, M. exasperatus

subsp. australis, M. e. subsp. typicus, M. gleba, M. haemisphaerium, M.

helleri, M. propinguus, M. ternatanus, Culeolus annulatus, C. gigas, C.

herdmani, C. quadrula, C. thysanotus, Tethyum. bicolor, T. bicornutum,

T. braueri, T. cereum, T. depressum, T. maeandrinum, T. orbiculare, T.

perforatum, T. profundum, T. psammodes, T. sedatum, T. traustedti,

Pandocia abranchiata, P. albomarginata, P. albopunctata, P. ambonensis,

P. argentata, P. asymmetrica, P. aterrima, P. aurata, P. aurita, P. biformis,

P. capitosa, P. circumorata, P. contecta, P. cryptocarpa, P. cylindrica, P.

elata, P. erecta, P. glebosa, P. herdmani, P. irregularis, P. nutrix, P. oligo-

carpa, P. olitaria, P. ovata, P. palinorosa, P. papillata, P. patens, P. phaula,

P. pieteti, P. pizoni, P. procera, P. pustulosa, P. quadrata, P. reducta, P.

reniformis, P. rigida, P. robusta, P. seriata, P. sobria, P. solvens, P. spiralis,

P. thelyphanes, P. torresiana, P. viridis, Skaiostyela scaevola, Polyandro-

carpa lateriecius, P. maxima, Diandrocarpa nigricans, D. purpurea, D.

quadricornis, D. similis, Botryllocarpa viridis, Chorizocarpa michaelseni,

Ch. sydneyensis, Ch. systematica, Botryllus separatus, Botrylloides per-

spicuum, B. tyreum, Sarcobotrylloides herdmani, S. pannosum, Hexa-

crobylus psammatodes, Rhodosoma herdmani, Rh. papillosum, Abyssascidia

pediculata, Chelyosoma sibogae, Corella aequabilis, C. japonica, Coryn-

ascidia sedens, Pterygascidia mirabilis, Dicopia fimbriata, Phallusia aperta,

Ph. archoia, Ph. austera, Ph. bifissa, Ph. bisulca, Ph. capillata, Ph. conifera,

Ph. ceylindracea, Ph. decemplex, Ph. diplozoon, Ph. divisa, Ph. empheres,

Ph. gemmata, Ph. granosa, Ph. kreagra, Ph. kunoides, Ph. lapidosa, Ph.

liberata, Ph. limosa, Ph. limpida, Ph. melanostoma, Ph. mikrenterica, Ph.

munda, Ph. nodosa, Ph. perflexa, Ph. rhabdofora, Ph. trieuspis, Ectein-

ascidia diaphanis, E. euphues, E. garstangi, E. multiclathrata, E. nexa,

E. psammodes, Sluiteria rubricollis, Ciona indica, Rhopalopsis crassa, Rh.

defecta, Rh. fusca, Rh. tenuis, Podoclavella detorta, P. fecunda, P. moluc-

censis, P. procera, Polycitor amplus, P. arenaceus, P. coalitus, P. deerratus,

P. discolor, P. gilboviridis, P. glaucus, P. ianthinus, P. laysani, P. laricatus,

Faunistik. 15

P. maculatus, P. miniaceus, P. multiperforatus, P. multiplicus, P. psam-

mobius, P. regularis, P. scaber, P. signifer, P. segmentatus, P. sluteri, P.

spirifer, P. torosus, P. violaceus, Cystodites rufus, ©. semicataphractus,

C. variabilis, Sycozoa pulchra, Nephtheis centripetus, N. faciformis, N.

malayensis, N. thomsoni, Sigillina caerules, Trididemnum caeruleum, T.

deeipiens, T. planum, T. ramosum, Didemnopsis profundum, Didemnum

albopunctatum, D. asteropum, D.bistratum, D. caesium, D. chartaceum, D.

cuspidatum, D. dealbatum, D. densipunctatum, D. digestum, D.dispersum, D.

elongatum, D. fragile, D. fraternum, D. fucatum, D. fuscum, D. giganteum,

D. gottschaldti, D. jedanense, D. laeve, D. maeandrium, D. makropnous,

D. membranaceum, D. montosum, D. moseleyi, D. neglectum, D. panthe-

rinum, D. pardale, D. patella, D. psammatodes, D. pustulosum, D. recur-

vatum, D. reticulatum, D. semifuscum, D. sibogae, D. siphoniatum, D.

skeati, D. spongioides, D. sulcatum, D. tabulatum, D. tenebricosum, D.

ternatum, D. thomsoni, D. timorense, D. torresii, Polysyneraton dubium,

P. marmoratum, P.nigropunctatum, P. ocellatum, P. rufum, Leptoclinum

calieiforme, L. eircumscriptum, L. discrepans, L. globulare, L. macdonaldi,

L. marmoratum, L. molle, L. multifidum, L. papyraceum, L. perspicuum,

L. simile, L. subviride, L. ternatum, L. varium, Diplosomoides eircum-

seriptum, D. cuculliferum, D. gelatinosum, D. molle, D. perspicuum, D.

triangulum, D. triforme, D. tropicum, Polyelinum circulatum, P. crater,

P. depressum, P. glabrum, P. hospitale, P. insulindae, P. mikropnous, P.

psammiferum, P. vasculosum, Glossoforum sundaicum, Atopogaster tropica,

Amaroucium altarium, A. crateriferum, A. diaphanum, A. profundum, A.

ritteri, Aplidium depressum, A. multiplicatum, A. tremulum, Psammapli-

dium ovatum, Ps. pyriforme, Ps. solidum, Synoicum intercedens. Hart-

meyer (1). Anchinia sp. Dolioletta. Ihle (2). — Polynesien: Oligotrema

psammites, Pyura pallida, P. p. f. papeetensis, Microcosmus claudicans,

M. miniaceus, Culeolus moseleyi, C. wyville-thomsoni, Tethyum plicatum,

Pandocia aurata, P. eviscerans, Ecteinasecidia diligens, E. garstangi, Sluiteria

rubricollis, Polycitor austerus, P. laysani, P. parvus, Nephtheis fascicularis,

Didemnum tonga. Hartmeyer (1). — Nordwest-Australien: Caesira mar-

tensi. Hartmeyer (1).

Süd-Paeifik (Ost.)

Westküste von Amerika ($. Franeisco-Iquique): Caesira regularis,

Halomolgula ovoida, Pyura aculeata, P. castaneiformis, P. johnsoni, P.

lignosa, P. okai, P. socialis, Mierocosmus transversus, Culeolus pyramidalis,

Tethyum gibsii, T. milleri, T. montereyense, Metandrocarpa dura, Chelyo-

soma productum, Benthascidia michaelseni, Phallusia clementea, Pero-

phora annectens, Ciona mollis, Cystodites eretaceus, Holozoa oceidentalis,

Trididemnum opacum, Amaroucium californicum, A. figarium, Euherd-

mania claviformis, Psammaplidium spauldingi. Hartmeyer (1). — Chili-

Küste: Pyura chilensis, P. socialis, Corella eumyota, Corynascidia suhmi.

Hartmeyer (1).

Süd-Pacifik (West.)

Südost-Australien: Caesira forbesi, C. godeffroyi, C. mollis, C. recum-

bens, C. sydneyensis, Ascopera nana, Pyura arcuata, P. cataphracta, P.

16 Tunikata für 1910.

cerebriformis, P. crinitistellata, P. irregularis, P. molguloides, P. multi-

radicata, P. pachydermatina, P. pallida f. grandis, P. solanoides, P. spini-

fera, Cynthiopsis praeputialis, Miecrocosmus acanthiferus, M. exasperatus

subsp. australis, Tethyum etheridgei, T. exiguum, T. personatum, T.

pingue, T. plicatum, T. radicosum, T. stoloniferum, T. whiteleggei, Pan-

docia attaleus, P. aurata, P. alata, P. fungiformis, P. jacksoniana, P. longi-

siphoniea, P. möbii, P. nebulosa, P. pedunculata, P. pilella, P. rigida, P.

saceiformis, P. sluiteri, P. stephanensis, P. stimpsoni, P. tinctor, P. viridis,

Polyandrocarpa lapidosa, Chorizocarpa guttata, Ch. sydneyensis, Botryl-

loides leptum, Sarcobotrylloides anceps, S. jacksonianum, S. pannosum,

S. purpureum, Phallusia ceylindracea, Ph. incerta, Ph. pyriformis, Phal-

lusiopsis phallusioides, Ciona intestinalis var. sydneiensis, Podoclavella

meridionalis, Chondrostachys australis, Sycozoa cerebriformis, S. elongata,

S. murrayi, $. tenuicollis, Sigillina australis, Didemnum fimbriatum, D.

incanum, D. jacksoni, D. pattulum, Leptoclinum rayneri, Polyelinum clava,

P. complanatum, P. fungosum, P. giganteum, P. globosum, P. jacksonianum,

P. nigrum, P. prunum, Sidneioides tamaramae, Macroclinum spongiforme,

Amaroucium anomalum, A. distomoides, A. protectans, A. rotundatum,

Psammaplidium fragile, Ps. inerustans, Ps. lobatum, Ps. peduneulatum,

Ps. solidum, Synelavella australis, S. lessoni. Hartmeyer (1). — Neu-

seeland: Caesira inversa, Pyura dura, P. pachydermatina, P. pulla, P.

subueulata, P. s. var. suteri, Tethyum bicornutum, T. cereum, T. humile,

T. nisiotis, Botrylloides perspicuum, Corella eumyota, C. japonica, Polyeitor

eircumvallatus, Cystodites aucklandicus, C. perspicuus, Didemnum densum,

D. maculatum, D. novae-zealandiae, D. scidula, D. tuberatum, Polysyn-

eraton fuscum, P. paradoxum, Amaroucium ritteri, Psammaplidium

ambiguum, P. stelliferum. Hartmeyer (1). — Chatam-Inseln: Caesira

martensi, Pyura lutea, P. triata, Microcosmus hirsutus, Tethyum argilla-

ceum, Sycozoa pedunculata, Didemnum gottschaldti, D. Jambitum, Poly-

elinum fungosum, Amaroucium constrietum, A. obesum, A. variabile,

Psammaplidium eireumvolutum, Ps. foliaceum. Hartmeyer (1). — Stewart-

Insel: Caesira filholi. Hartmeyer (1). Wr

Antärktik.

S. Orkney-Inseln: Pyura setosa, Holozoa eylindrica. Hartmeyer (1).

— Enderby-Land: Bathypera splendens, Culeolus murrayi, Bathyoneus

herdmani, Bathystyeloides enderbyanus. Hartmeyer (1). — Kaiser-Wil-

helm IL-Land: Pyura squamata, Corella antaretica, Phallusia charcoti,

Syeozoa sygillinoides, Didemnum biglans, Amaroucium caeruleum. Hart-

meyer (1). Grahamland: Caesira maxima, Pyura solebrosa, P. turqueti,

Tethyum flexibile, T. grahami, Polyeitor glareosus,Lissamaroucium magnum,

Amaroucium meridianum, Psammaplidium annulatum, P. ordinatum, P.

radiatum, P. triplex, Pharyngodietyon reductum, Corella antaretica,

Phallusia charcoti, Sycozoa sigillinoides, Didemnum biglans, Amaroucium

caeruleum. Hartmeyer (1). — Vietorialand: Caesira bacca, C. concomitans, _

C. hodgsoni, C. longicaulis, Pyura discoveryi, P. scotti, Tethyum rotundum,

T. spectabile, Chondrostachys antarctica, Didemnum glaciale, Polyelinum

adareanum, Atopogaster elongata, Amaroucium antarcticum, Psamm-

aplidium antarceticum, Ps. nigrum. Hartmeyer (1).

Systematik. 17

Systematik.

Abyssascidia pediculata, A. wyvillei. Hartmeyer (1), p. 1390.

Agnesia glaciata. 1. c. p. 1394.

Alcyonium album, A. borlasei, A. conicum, A. ficus, A. gelatinosum, A.

pellucidum, A. rubrum, A. schlosseri. 1. c. p. 1481.

?Alderia. 1. c. p. 1365.

Alina meridionalis. 1.c. p. 1480.

Alloeocarpa (syn. Synstyela) opalis, A. bridgesi, A. fusca, A. hupferi, A.

incrustans, A. intermedia, A. zschani. 1. c. p. 1374.

Amaroucium (syn. Aplidium part, Polyclinoides, Morchelliopsis, Tri-

glossium) albicans, A. albidum, A. altarium, A. anomalum, A. astrae-

oides, A. bermudae, A. blochmanni, A. caeruleum, A. caliculatum, A.

californicum, A. coei, A. colelloides, A. complanatum, A. conicum, A.

constellatum, A. constrictum, A. crateriferum, A. cristallinum, A. cross-

landi, A. densum, A. d. var. pallens, A. d. var. rupestre, A. diaphanum,

A. distomoides, A. dubium, A. effusum, A. exile, A. figarium, A. fim-

briatum, A. flavolineatum, A. fuegense, A. fuscum, A. gibbulosum, A.

globosum, A. hepaticum, A. irregulare, A. i. var. coneinnum, A. kincaldi,

A. lacteum, A. laevigatum, A. lafonti, A. lubricum, A. meridionarum,

A. mutabile, A. nigrum, A. nordmani, A. n. var, nigrum, A. obesum,

A. pallidulum, A. pribilovense, A. profundum, A. proliferum, A. pro-

tectans, A. punctum, A. recumbens, A. ritteri, A. robustum, A. rodri-

guezi, A. rotundatum, A. sarsi, A. simplex, A. snodgrassi. Hartmeyer

(1), p- 1466 ff. — A. stellatum. Colton. — A. translucidum, A. triden-

tatum, A. variabile, A. v. var. tenerum, A. vitreum, A. wili. Hart-

meyer (1), p. 1467.

Anchinia sp. Ihle (2).

?Aphanibranchion japonicum. Hartmeyer (1), p. 1442.

Aplidium africanum, A. asperum, A. caeruleum, A. crassum, A. depressum,

A. despectum, A. fallax, A. flavum, A. fumigatum, A. fuscum, A. griseum,

A.incrustans, A. lacteum, A. leucophaeum, A. lobatum, A. multiplicatum,

4. pellucidum, A. schaudinni, A. spützbergense, A. tremulum, A. zasteri-

gar: ı.. ec. p. 1469.

Archiascidia neapolitana. 1.c. p. 1425.

Archidistoma aggregatum. |].c. p. 1430.

Ascidia sp. Colton.

Ascidiella aspersa, A. a. var. albida, A. a. var. expansa, A. a. var. minuta,

A. griffini, A. lutaria, A. opalina, A. patula, A. pellucida. Hartmeyer

(1), p. 1407.

Ascopera bouvetensis, A. gigantea, A. nana, A. pedunculata. 1.c. p. 1328.

Aspiraculata Slgr. 1.c. p. 1381.

Astropera sabulosa. 1.c. p. 1325.

Atopogaster aurantiaca, A. elongata, A. e. var. pallida, A. gigantea, A. in-

formis, A. tropica. 1.c. p. 1465.

Bathyascidia (Syn. Abyssascidia, Herdmannia Hartmr.) vasculosa. |]. ce.

p- 1408.

Bathyoncus discoideus, B. herdmani, B. minutus, B. mirabilis. 1. c. p. 1368.

Archiv für Naturgeschichte. b)

1911. VI. 1.

18 Tunikata für 1910.

Bathypera splendens. 1.c. p. 1329.

Bathystyeloides enderbyanus. ].c. p. 1368.

Benthascidia mächaelseni. 1. c. p. 1396.

?Bipapillaria australis. 1.c. p. 1480.

Bostrichobranchus (Syn. Herdmania Mete.) manhattensis, B. molguloides

l. c. p. 1320.

Botryllidae. 1.c. p. 1377.

Botryllocarpa (Syn. Protobotryllus Piz.) virides. 1.c. p. 1484.

Botrylloides albicans, B. boloniense, B. chazaliei, B. chevalense, B. clavelina,

B. cyanescens, B. emeryi, B. fulgurale, B. gascoi, B. gregalis, B. insigne,

B. leachi, B. leptum, B. luteum, B. meandrinum, B. mediterraneum,

B. marioniformis, B. nigrum, B. n. var. concolor, B. n. var. planum,

B. n. var. sarcinum, B. orpimenti, B. parvulum, B. perspicuum, B. p.

var. rubicundum, B. prostratum, B. purpureum, B. pusilla, B. radiata,

B. ramulosa, B. rotifera, B. rubrum, B. sparsa, B. tyreum. ]. ce. p. 1380,

Botryllus ater, B. aurolineatus, B. baeri, B. bivittatus, B. calendula, B.

castaneus, B. gemmeus, B. gouldi, B. magnus, B. marionis, B. minutus,

B. mario, B. pruinosus, B. rosaceus, B. rubens, B. rubigo, B. sannio.

l.e. p. 1378. — B. schlosseri. Colton, Hartmeyer (1), p. 1379. — B.

separatus, B. smaragdus, B. stellatus, B. tapetum, B. t. var. dentatus,

B. t. var. variabilis, B. tenuis, B. violaceus, B. virescens. Hartmeyer

(2),P-.1379.

Caesira (syn. Cynthia Sav. part., Molgula Forb. part., Pera Stimps. part.,

Lithonephrya Giard part., Gymnocystis Giard part., Anurella Lae.-

Duth., Meristocarpus Piz.) ampulloides, C. bacca, CO. arctica, ©. birulat,

©. bleizi, C. caepiformis, C. calvata, C. citrina, CO. complanata, Ü. conco-

mitans, C. contorta, CO. crinita, CO. cristallina, C. e. var. tuberculata, C.

dentifera, C. dione, C. echinosiphonica, Ü. eugyroides, C. euprocta, C.

filholi, ©. flagrifera, CO. forbesi, C. georgiana, C. glomerata, C. godeffroyt,

C. graphica, C. greeffi, ©. hancocki, ©. helleri, C. herdmani, C. hodgsont,

C. holtiana, C. hupferi, C. impura, Ü. inconspicua, Ü. innersa, ©.

japonica, CO. kiaeri, C. kophameli, CO. lanceplaini, CO. longicaulis, C.

longipedata, C. lütkeniana, CO. manhaitensis, C. mortoni, O. martensi,

. maxima, C. mollis, C. nana, CO. oculata, CO. occidentalis, C. occulta,

. oculata, C. pedunculata, C. pugetiensis, C. pulchra, ©. pyriformis,

. recumbens, CO. regularis, C. retortiformis, C. ridgewayi, C. römert,

. septentrionalis, C. simplex, C. siphonalis, C. siphonata, C. socialis,

. solenota, C.sordida, C. sydneyensis, C. taprobane, O. tenax, C. tubifera,

C. tumulus, C. valvata, C. vitrea, C. wagneri. l. c. p. 1323 ff. u. 1483.

MOEISS

Caesiridae (Syn. Molgulidae). 1.c. p. 1316.

Chelyosoma doffleini, Ch. macleayanum, Ch. productum, Ch. sibogae, Ch.

siboja. 1.c. p. 1392.

Chelyosominae subfam. (Syn. Corellinae Herdm., Corellidae). 1. c. p. 1391.

Chondrostachys (Syn. Stereoclavella Herdm., Pyenoclavella Gout. Rhodo-

zona Name) Ch. antarctica, Ch. aurilucens, Ch. australis, Ch. ceylin-

drica, Ch. enormis, Ch. macdonaldi, Ch. oblonga, Ch. pieta. 1. e. p. 1427.

Chorizocarpa Mehlm. (Syn. Chorizocarmus Herdm. part, ? Oculinaria Gray.

Systematik. 19

Synstyela Sluit.) guttata, Ch. michaelseni, Ch. sydneyensi, Ch. syste-

matica. 1. c. p. 1376.

Ciona (Syn. Tethyum Boh. part., Ascidia L. part., Phallusia Sav. part.,

Pleurociona Roule) abdominalis, C. aspera, CO. flemingi, C. gelatinosa,

C. indica, C. intestinalis, C. i. var. diaphanea, C. i. var. sydneiensis,

C. i. var. longissima, C. mollis, C. roulei, C. savignyi. 1.c. p. 1414

u. 1487.

Cionidae Fam. (Syn. Phallusiae Cionae Sav., Cioninae Roule, Herdman

part, Cionidae Sluit., Hartm., Slgr.). l.c. p. 1412.

Clavellina corrugaia, lepadiformis, Cl. l. var. uronitens, C. 1. var. rissoana,

Ci. 1. var.? subv. bieineta, Cl.1. var.r. subv. morocycla, Cl.1. subv.

sulphurea, Cl. nana, Cl. n. var. alba, Cl.n. var. aurantiaca, Cl. producta,

Cl. savigniana. 1.c. p. 1425.

Clavelinidae Fam. (Syn. Clavelinidae Giard, Herdm. part. Archiascidiidae

Jul., Clavelinidae Slgr.). 1.c. p. 1423.

Coelocormus huzxleyi. 1. c. p. 1457.

Coelocorminae Slgr. Subfam. (Syn. Coelocarmidae Herdm.). 1.c. p. 1456.

Corella Ald. u. Hanc. (Syn.? Rhopolasia Vogt) aequabilis, C. antarctica,

©. borealis, C. eumyota, CO. japonica, CO. larvaeformis, C. minuta, CO.

novarae, C. ovata, C. parallelogramma, C. valentinae, CO. willmeriana

l..c. p. 1393 u. 1487.

Correllopsis pedunculata. 1.c. p. 1394.

Corynascidia sedens, C. suhmi. ].c. p. 1395.

Ctenicella Laec.-Duth. (Syn. Molgulidium) appendiculata, C. carpenteri, CO.

conchota, C. cynthiaeformis, C. korotneffi, C. morgatae. 1. c. p. 1328.

Culeolus annulatus, C. gigas, CO. herdmani, CO. moseleyi, C. murrayi, C. per-

lucidus, C. pyramidalis, C. quadrula, CO. recumbens, C. suhmi, C. tanneri,

C. thysanotus, O. willemoesi, C. wyville-thomsoni. 1.c. p. 1347.

Cyclosalpa pinnata. Apstein.

Cynthia echinata. Hartmeyer (3). — ©. dura. Schaxel.

Cynthiopsis Mehlsn. (Syn. Cynthia Heller, part.; Microcosmus Drasche,

Sluiter, part.) coalitus, ©. herdmani, C. praeputialis, C. valdiviae. Hart-

meyer (1), p. 1343.

Oystingia griffühsi. 1. c. p. 1345.

Cystodites aucklandicus, CO. ceylonensis, C. cretaceus, C. dellechiajei, C.

draschei, C. inflatus, C. irregularis, C. perspicuus, C. philippinensis, CO.

polyocchis, C. violaceus, C. rufus, C. semicataphractus, C. variabilis, CO.

dellechiajei var. didemniformis, C. d. var. viridis. 1.c. p. 1433 u. 1488.

Dendrodoa M’Leay (Syn. Thylacium Car. part., ?Polystyela Giard., Stye-

lopsis Traust.) adolphi, D. arctica, D. aggregata, D. cylindrica, D.

grossularia, D. kükenthali, D. lineata, D. subpedunculata, D. tuber-

culata, D. uniplicata, D. n. var. minuta. p. 1361.

Diandrocarpa Name (Syn. Synstyela Herdm. part., Synstyela Sluit. part).

botryliopsis, D. brakenhielmi, D. b. var. ceylonica, D. b. var. stuhl-

manni, D. monocarpa, D. m. var. philippinensis, D. nigricans, D.

purpurea, D. quadricornis, D. similis. 1. c. p. 1371.

Diazona Sav. (Syn. Syntethys Forb. u. Goods) intacta, D. violacea. 1. c.

p- 1416.

20 Tunikata für 1910.

Diazonidae Garst. Fam. (Syn. Clavelinidae Herdm. part., Diazonidae

Hartmr., Diazoninae Slgr.). 1.c. p. 1414.

Dicopia fimbriata. 1.c. p. 1397.

Dictobranchia Ordn. ]1.c. p. 1381.

Didemnidae Giard Fam. (Syn. Didemnidae + Diplosomidae, Giard +

Coelocarmidae Herdm., Oligosomidae Jourd.). 1.c. p. 1442.

Didemninae Slgr. Subfam. (Syn. Didemnidae + Diplosomidae Giard,

Oligosomidae Jourd.). 1l.c. 1445.

Didemnopsis Hartmr. (Syn. Didemnum Drasche, Herdmr. part., Didem-

noides Lah., Huitf.) inarmatum, D. inerme, D. tortuosum, D. variabile,

D. v. var. gelatinosum, D. crassum, D. profundum. ]. c. p. 1446 u. 1489.

Didemnum Sav. (Syn. Leptoclinum Edw. part.; Forbes part.; Giard part.;

Drasche part.; D. Valle et olii. Lacinia Sel., Lioclinum Verr. part.;

Eucoelium Giard non Savigny, Astellium Giard part.; Tetradidemnum

D. Valle part. Didemnoides Drasche non Lahille, Lepidium Hurst,

Hypurgon Sollas) albidum, D. a. var. grande, D. a. var. luteolum, D.

albopunctatum, D. annectens, D. asperum, D. a. var. aurantium, D. a.

var. griseum, D. asteropum, D. biglans, D. bistratum, D. caesium, D.

candidum, D. carpenteri, D. canum nom. nov. D. ceylonicum, CO. c.

var. planum, D. chartaceum, D. cineraceum, D. commune, D. con-

chyliatum, D. coriaceum, D. cretaceum, D. cuspidatum, D. dealba-

tum, D. digestum, D. densipunctatum, D. densum, D. dentatum,

D. dispersum, D. durum, D. elongatum, D. edwardsü, D. exaratum,

D. fimbriatum, D. fragile, D. fraternum, D. fucatum, D. fuscum, D.

fulgens, D.giganteum, D.glaciale, D.gottschaldti nom.nov. D.granulosum,

D. incanum, D. infundibulum, D. jacksoni, D. ionthinum, D. japonicum,

D. jedanense, D. jeffreysi, D. laeve, D. lahillei, D. 1. var. mellinum,

D. lambitum, D. maculatum, D. maculosum, D. maeandrium, D. makro-

pnous, D. margaritiferae, D. marginatum, D. massiliense, D. mem-

branaceum, D. montosum, D. moseleyi, D. neglectum, D. niveum, D.

octogesimum, D. pantherinum, D. parasiticum, D. pardale nom. nov.,

D. patella, D. pattulum, D. perforatum, D. psamathodes, D. pustulosum,

D. ramosum, D. resinaceum, D. recurvatum, D. reticulatum, D. rubellum,

D.rubicundum, D. scidula, D. semifuscum, D.sibogae nom.nov. D. spon-

gioides, D. siphoniatum, D. skeati, D. speciosum, D. s. var. acuti-

lobatum, D. s. var. asperum, D. s. var. bermudense, D. s. var. hamiltoni,

D. s. var. harringtonense, D. s. var. pageti, D. s. var. somersi, D.

structum, D. subflavum, D. sulcatum, D. tabulatum, D. tenebricosum,

D. timorense, D. tenue, D. t. var. magno, D. ternatanum, D. thomsoni,

D. tonga, D. torresii, D. tridentatum, D. tuberatum, D. verrucosum, D.

viride. 1. c. p. 1449 ff. u. p. 1489.

Diplosomoides Herdm. (Syn. Diplosoma Drasche part.) bathyphilum, D.

circumspictum, D. cuculliferum, D. dubium, D. flavescens, D. fragile,

D. gelatinosum, D. molle, D. perspicuum, D. pseudoleptochnum, D.

triangulum, D. triforme, D. tropicum. |]. ce. p. 1456 u. 1490.

?Distomus Gaertn. (Syn. Distoma Sav. part.; Polyzona Flem., Distomum

Trosch. part.; Arkas Gistel; Thylacium Ald., part.; ?Synstyela Giard;

?Alloeocarpa Mchlsn.) varzolosus. 1.c. p. 1375.

Systematik. 21

Doliolum. Neumann.

Dolioletta. Ihle (2).

Echinoclinum verrilli. Hartmeyer (1), p. 1452.

Ecteinascidia diaphanis, E. diligens, E. euphues, E. garstangi, E. moorei,

E. multiclathrata, E. nexa, E. psammodes, E. sluiteri, E. solida, E.

thurstoni, E. turbinata. ].c. p. 1411.

?Eucoelium hospitiolum. ].c. p. 1436.

Eudistoma subgen. E. amplum, E. arenaceum, E. caeruleum, E. capsulatum,

E. circumvallatum, E. clarum, E. convexum, E. coalitum, E. discolor,

E. deeratum, E. fuscum, E. glareosum, E. gilboviride, E. glaucum, E.

ionthinum, E. illotum, E. kükenthali, E. laysani, E. lobatum, E. lari-

catum, E. maculatum, E. modestum, E. miniaceum, E. molle, E. mucosum,

E. multiplicum, E. multiperforatum, E. regulare, E. obscuratum, E.

olivaceum, E. pancerü, E. parvum, E. plumbeum, E. posidoniarum,

E. psammobium, E. rhodopyge, E. rubrum, E. tridentatum, E. signi-

jerum, E. scabrum, E. sedens, E. segmentatum, E. spiriferum, E. torosum,

E. tridentatum var. posidonicola, E. violaceum. .c. p. 1431 u. 1488.

Eugyra adriatica, E. bilabiata, E. glutinans, E. BUN, E. pedunculata,

E. pilularis, E. translucida. 1.c. p. 1319.

Eugyriopsis intermedia. ].c. p. 1326.

Eugyroides Slgr. (Syn. Paramolgula Mchlsn. part.) arctica, E. guitula, E.

rara, E. molguloides, E. symetrica. 1. c. p. 1321.

Euherdmania Ritt. (Syn. Herdmania Ritt.) claviformis. 1.c. p. 1470.

Eupera chuni. ].c. p. 1348.

Eusynstyela Mehlsn. (Syn. Michaelsenia Name) hartmeyeri, E. imthurni,

E. tincta. ].c. p. 1370.

?Fimbria aurantia, F. risso. ].c. p. 1480.

?Fodia rufescens. 1.c. p. 1480.

Fungulus cinereus. 1.c. p. 1346.

Gamaster dakarensis. ].c. p. 1319.

Glossoforum humile, @G. luteum, G. sabulosum, G. sundaicum, @. variabile.

12e:p: 1463.

Gynandrocarpa Mchlsn. (Syn. Goodsira Herdm. part.) domuncula, G. pla-

centa. ].c. p. 1369.

Halomolgula ovoida. ].c. p. 1329.

Heterocarpa Lac. Duth. u. Del. (Syn. ?Polystyela Giard) glomerata. 1. c.

p- 1367.

Heterotrema sarasinorum. |1.c. p. 1432.

Hexacrobylidae Fam. ]1.c. p. 1381.

Hexacrobylus psammatodes. 1.c. p. 1381.

Holozoa Less. (Syn. Cellulophana 0, Schm., Distaplia D. Valle, Julinia

Calm.) bermudensis, H. clavata, H. confusa, H. cylindrica, H. inter-

media, H. livida, H. lubrica, H. occidentalis, H. pileata, H. rosea, H.

vallei. 1.c. p. 1437.

?Hyalosoma singularis. 1.c. p. 1480.

Hypobythiidae Fam. 1.c. p. 1398.

Hypobythius calycodes, H. moseleyi. 1. c. p. 1398.

Krikobranchia Ordn. |1.c. p. 1419.

22 Tunikata für 1910.

Kükenthalia Hartmr. (Syn. Goodsiria Gottsch.) borealis. 1.e. p. 1376.

Leptoclinides faeröensis. 1. c. p. 1447.

Leptoclinum Edw. s. str. (Syn. Polyclinum Lister, Didemnum Edw., Lepto-

clinum Forb. part., Diplosoma M’Don. et alii; Drasche part.; Lioclinum

Verr. part.; Lissoclinum Verr., Pseudodidemnum Giard, Astellium

Giard, Brevistellium Jourd.) atropunctatum, L. caliciforme, L. circum-

scriptum, L. globulare, L. discrepans, L. listerianum, L. lacteum, L. 1.

var. gelatinosum, L. 1. var. koehleri, L. l. var. punctatum, L. macdo-

naldi, L. marmoratum, L. multifidum, L. mitsukurii, L. molle, L. purpu-

reum, L. papyraceum, L. perspicuum, L. rayneri, L. spongiforme, L. 8-

var. carnosum, L. s. var. nigricans, L. simile, L. subviride, L. ternatum,

L. viride. 1.c. p. 1453 ff. u. 149%.

?Lissamaroucium magnum. 1. c. p. 1464.

Macroclinum Verr. (Syn. Aplidiopsis Lah., Aplidiopsis Huitf., ?Lissamaron-

cium Huit.) incertum, M. jordani, M. minutum, M. pomum, M. pyri-

forme, M. spongiforme, M. vitreum. |1.c. p. 1463.

1Mariana rubrum. |].c. p. 1480.

Metandrocarpa dura. 1.c. p. 1374.

Microcosmus Hell. (Syn. Cynthia Sav. part.) acanthiferus, M. albidus, M.

anchylodeirus, M. arenaceus, M. biconvolutus, M. claudicans. |]. ce.

p. 1344. — M. echinatus. Hartmeyer (3), (1) p. 1345. — M. exasperatus,

M. typicus, M. glacialis, M. gleba, M. hemisphaerium, M. hartmeyeri,

M. helleri, M. hirsutus, M. longitubis, M. manaarensis, M. micro-

cosmus, M. miniaceus, M. oligophyllus, M. polymorphus, M. pro-

pinquus, M. pupa, M. roseus, M. sabatieri, M. spinosus, M. ternatanus,

M. transversus, M. vulgaris. Hartmeyer (1), p. 1345.

Molgula manhattensis. Colton.

Morchellium Giard (Syn. Morchellioides Herdm., Morchellium Herdm. part.;

Lah.) affine, M. alderi, M. argus. Hartmeyer (1), p. 1475.

Nephtheis Gould (Syn. Oxycorynia Drasche, Colella Herdm. part.) fascicu-

laris, N. centripetens, N. faciformis, N. malayensis, N. thomsoni. 1. e.

p- 1440 p. 1488.

?Oculinaria australis. 1. c. p. 1377.

Oikopleura dioica. Delsman.

Oligotrema psammites. Hartmeyer (1), p- 1327.

Paessleria magalhaensis. 1.c. p. 1434.

Pandocia Flem. (Syn. Cynthia, Sav. part.; Polycarpa Hell. part.; Styeloides

Sluit.; ?Alderia Lah.; ?Polycarpoides Piz.; Monandrocarpa Mchlsn.)

abranchiata, P. aenea, P. albomarginata, P. albopunctata, P. alentura,

P. ambonensis, P. anguinea, P. appropinquata, P. argentata, P. argoensis,

P. ascidioides, P. asiphonica, P. aspera, P. asymmetrica, P. aterrima,

P.attaleus, P.aurata, P. aurita, P. barsi, P. biforis, P. brevipedunculata,

P. capitosa, P. cartilaginea, P. chalmersi, P. cinerea, P. circumarata,

P. colletti, P. comata, P. ce. var. nux, P. contecta, P. eryptocarpa, P.

curta, P. cylindrica, P. decipiens, P. depressa, P. discoidea, P. döder-

leni, P. elata, P. elongata, P. erecta, P. eviscerans, P. fastigata, P.

fibrillata, P. formosa, P. friabilis, P. fuliginea, P. fulva, P. fungiformis,

P. glebosa, P.gregaria, P. gracilis, P. haddoni, P. herdmani, P. humilis,

Systematik. 23

P. incubita, P. informis, P. insulsa, P. irregularis, P. jacksoniana, P.

libera, P. longisiphonica, P. maculata, P. manaarensis, P. miniata, P.

minuta, P. möbiü, P. molguloides, P. mollis, P. monensis, P. mutilans,

P. mytiligera, P. natalensis, P. nebulosa, P. nigricans, P. nivosa, P.

nutrix, P. obscura, P. obtecta, P. oligocarpa, P. olitaria, P. ovata, P.

palinorsa, P. palkensis, P. papillata, P. patens, P. pedata, P. peduncu-

lata, P. phaula, P. pictei, P. pilella, P. polycarpa, P. pomaria, P.

procera, P. pusilla, P. pustulosa, P. quadrangularis, P. quadrata, P.

reducta, P. reniformis, P. rigida, P. robusta, P. rubida, P. rugosa, P.

rustica, P. sabulosa, P. sacriformis, P. seminuda, P. seriata, P. simplex,

P. sluiteri syn. ceylonica nom. nov.; P. sobria, P. solearis, P. solvens,

P. spiralis, P. spongiabilis, P. stephanensis, P. stimpsoni, P. tenera,

P. thelyphanes, P. tinctar, P. torresiana, P. tritonis, P. tumida, P.

twynami, P. viridis, P. willisi. 1. c. p. 1363 u. p. 1484.

Paramolgula Traust. (Syn. Stomatropa Piz., Otenicella Piz. part.; Para-

molgula Mchlsn. part.) gigantea, P. gregaria, P. horrida, P. patagonica,

P. schultzei. ].c. p. 1326.

Parascidia Edw. (Syn. Aplidium Chiaje part., Fragarium Giard, Fraga-

roides Maur., Parascidium Lah., Parascidia Herdm. part.) areolata, P.

crispa, P. elegans, P. flava. 1.c. p. 1473.

Pelonaia corrugata. 1. c. p. 1356.

Pelonavinae subfam. 1.c. p. 1356.

Perophora annectens, P. banyulensis, P. hornelli, P. hutchinsoni, P. lsteri.

l. ec. p. 1410. — P. viridis. 1. c. p. 1410; Colton.

Perophoridae Fam. Hartmeyer (1), p. 1409.

Perophoropsis herdmani. |].c. p. 1410.

Phallusia Sav. (Syn. Tethyum Boh. part.; Ascidia L. part.; Phallusia Sav.

part.; Phallusia Flem.; Pirena Flem.; Ascidiopsis Verr., Pachychlaena

Herdm.) aperta, Ph. arabica, Ph. archoia, Ph. armata, Ph. aspera, Ph.

austera, Ph. bifissa, Ph. bisulca, Ph. canaliculata, Ph. capillata, Ph. cau-

data, Ph. challangeri, Ph. charcoti, Ph. chlorchema, Ph. clementea, Ph.

compta, Ph. conchilega, Ph. crassa, Ph. curvata, Ph. cylindracea, Ph.

decemplex, Ph.depressa, Ph.depressiuscula, Ph.despecta, Ph.djimphniana,

Ph. diplozoon, Ph. divisa, Ph. donnani, Ph. elongata, Ph. empheres, Ph.

exigua, Ph. fumigata, Ph. gelatinosa, Ph. gemmata, Ph. granosa, Ph.

guttulata, Ph. hygomiana, Ph. incerta, Ph. incrassata, Ph. incrustans,

Ph. ingeria, Ph. interrupta, Ph. involuta, Ph. koreana, Ph. kreagra,

Ph. krechi, Ph. kunoides, Ph. lapidosa, Ph. liberata, Ph. limosa, Ph.

limpida, Ph. longisiphonata, Ph. longistriata, Ph. longitubis, Ph. malaca,

Ph. melanostoma, Ph. mentula, Ph. m. var. flava, Ph. m. var. ruberrima,

Ph. m. var. rubrotincta, Ph. meridionalis. Hartmeyer (1), p. 1400 #.u.p.

1486. — Ph. mamillata. Schaxel. — Ph. mentula, Ph. m. var. rubrotincta,

Ph. mamillaris, Ph. miurenterica, Ph. mollis, Ph. m. var. carnosa,

Ph. munda, Ph. muricata, Ph. nodosa, Ph. obesa, Ph. obliqua, Ph.

oblonga, Ph. obocki, Ph. perflexa, Ph. octodentata, Ph. phusea, Ph.

placenta, Ph. plebeia, Ph. polytrema, Ph. producta, Ph. prostata, Ph.

prunum, Ph. pusilla, Ph. pyriformis, Ph. quadrata, Ph. reptans, Ph.

rhabdophora, Ph. sabulosa, Ph. salvatoris, Ph. somaliensis, Ph. spinosa,

24 Tunikata für 1910,

Ph. styeloides, Ph. suensoni, Ph. sulcata, Ph. tenera, Ph. translucida,

Ph. tricuspis, Ph. tritonis, Ph. Virginea. Hartmeyer (1), p. 1403—1405

u. p. 1486. :

Phallusiidae Fam. Traust. s. str. (Syn. Ascidiinae Herdm. part., Ascidiidae

Sluit. et alü). 1.c. p. 1399.

Phallusiopsis Hartmr. (Syn. Phallusia Sav. part.; Phallusia Herdm.)

mamillata, Ph. marioni, Ph. nigra, Ph. phallusioides, 1.c. p. 1408.

Pharyngodyetyon mirabile, Ph. reductum. |1.c. pg1477.

?Pleuralophium bilaterale. 1.c. p. 1468.

Podoclavella borealis, P. detorta, P. fecunda, P. meridionalis, P. moluccensis,

P. procera. ].c. p. 1425.

Polyandrocarpa lapidosa, P. latericius, P. maxima, P. violacea. 1. c. p. 1369.

.?Polycarpoides sabulosum. |]. c. p. 1366.

Poyleitoridae Mehlsn. (Syn. Distomidae Giard part.; Distomidae Herdm.,

Distominae —+ Sigillininae Caull.).

Polycitor gen.; subgen. Eudistoma Caull. subgen. Polycitor Ren. 1. c.

p- 1431.

Polycitor subgen. (Syn. Paradistoma Caull.) adriaticus, P. crystallinus, P.

mitidus, P. pulcher. 1.c. p. 1431.

?Polyclinoides sp. 1.c. p. 1472.

Polyclinum Sav. (Syn. Palmonellum Blvl., Aurantium Giard) adareanum,

P. arenosum, P. aurantium, P. circulatum, P. clava, P. complanatum,

P. constellatum, P. crater, P. cythereum, P. depressum, P. festum, P.

ficus, P. fungosum, P. fuscum, P. giganteum, P. glabrum, P. globosum,

P. sphaeroides nom. nov., P. insulinde nom. nov., P. hesperium, P.

hospitale, P. insulsum, P. isiacum, P. isipigense, P. meridianum, P.

mikropnous, P. molle, P. nigrum, P. pannosum, P. prunum, P. pullum,

P. sabulosum, P. saturnium, P. sitiricum, P. uranium, P. vasculosum.

l. c. p. 1460.

Polycyclus cyaneus, P. elongatus, P. fuscus, P. f. var. inradiatus, P. f. var.

rufus, P. jeffreysi, P. lamarcki, P. polycyclus, P. renieri, P. savignyi,

P. vallei, P. v. var. caerulemus, P. v. var. ianthinus, P. v. var. ochreus,

P. v. var. orphnus, P. v. var. purrus, P. v. var. xanthus, P. violaceus.

1. e.. p.. 1397 u. 1486.

Polysyncraton Nott. (Syn. Leptoclinum Giard part.; Drasche part.; Diplo-

somoides Lah. non Herdman) amethysteum, P. fuscum, P. lacazei, P.

massiliense, P. paradoxum. |].c. p. 1451.

Polyzoa Less. (Syn. Goodsiria Cunn., Goodsiria Herdm. part.; Chorizo-

carmus Herdm.) falclandica, P. opuntia, P. o. subsp. coccinea, P. o.

subsp. gordiana, P. o. subsp. lennoxensis, P. o. subsp. patagonica, P. o.

subsp. pietonis, P. o. subsp. waerni, P. reticulata. 1.c. p. 1372.

Polyzoinae subfam. Hartmr. (Syn. Polystyelidae Herdm., Polyzoidae

Mchlsn.). 1.c. p. 1369.

??Protobotryllus tenwis. 1.c. p. 1485.

?Psadiroma bicolor. 1.c. p. 1480.

?Psammaplidium annulatum, Ps. antarcticum, Ps. ambiguum, Ps. auran-

tiacum, Ps. ceylonicum, Ps. circumvolutum, Ps. effrenatum, Ps. exiguum,

Ps. flavum, Ps. foliaceum, Ps. fragile, Ps. funginum, Ps. incrustans,

Systematik. 25

Ps. lobatum, Ps. molle, Ps. nigrum, Ps. obesum, Ps. ordinatum, Ps.

ovatum, Ps. paessleri, Ps. pantherinum, Ps. pedunculatum, Ps. pyri-

jorme, Ps. radiatum, Ps. retiforme, Ps. rude, Ps. solidum, Ps. spaul-

dingi, Ps. stelliferum, Ps. subviride, Ps. triplex. 1. c. p. 1471.

Pterygascidia mirabilis. 1.c. p. 1397.

Pterygascidiidae nov. fam. (Syn. Corellascidiidae Slgr. part.) 1.c. p. 1396.

Ptychobranchia Ord. ].c. p. 1316.

Pyrosoma agassizi, P. aherniosum, P. atlanticum, P. giganteum, P. minimum,

P. operculatum, P. triangulum, P. verticillatum. Neumann. — P.

spinosum. Neumann, Farman.

Pyura Mal. (Syn. Tethyum Boh. part.; Ascidia L. part.; Vorticella, part.;

Cynthia Sav. part.; Baltenia Sav. part.; Lais Gistel; Klephtes Gistel;

Halocynthia Verr.; Herdmania Lah.; Rhabdocynthia Herdm.; Forbe-

sella Herdm.; Forbesia Lac. Duth. u. Del.) arctica, arcuata, arenosa,

P. aripuensis, P. aurantium, P. bouvetensis, P. breviramosa, P. castaner-

jormis, P. cataphracta, P. cerebriformis, P. chazaliei, P. chilensis, P.

comma, P. corallina, P. crinitistellata, P. deani, P. discrepans, P.

dura. 1.c. p. 1339. — P. echinata. Hartmeyer (1, 3). — P. coriacea,

. coerulea, P. discoveryi, P.erecta, P. fissa, P. formosa, P. galbana,

. gangelion, P. georgiana, P. haustor, P. hilgendorfi, P. hispida,

. hupferi, P. jacatrensis, P. ianthinoctoma, P. igaboja, P. irregularis,

. japonica, P. jokoboja, P. karasboja, P. laevigata, P. lanka,

. latisinuosa, P.lurida, P. legumen, P.].var. cunninghami, P.]. var.

delfini, P.1. var. ohlini, P. lignosa, P. lutea, P. macrosiphonus, P. me-

lacactus, P. michaelseni, P. morus, P. mirabilis, P. molguloides, P.

mollis, P. momus, P. multiradicata, P. okai, P. ovifera, P. ovata, P.

owstoni, P. pachydermatina, P. paessleri, P. pallida, P. papillosa, P.

riseara, P. pallida £. typica, P. p. f. ceylonica, P. p. f. formosa, P. p.

f. grandis, P. p. f. japonica, P. p. f. papietensis, P. p. f. tenuis, P.

pontex, P. papillosa, P. pectinicola, P. polycarpa, P. pulla, P. riseana,

P. ritteri, P. roretzi, P. rosea, P. roulei, P. rubrilabia, P. sacciformis,

P. salebrosa, P. sanderi, P. sansibarica, P. subfusca, P. scutellata, P.

scotti, P. setosa, P. sigillata, P. socialis, P. solanoides, P. spinifera, P. s.

var. intermedia, P.roseola nom. nov. P. fructuosa nom. nov., P. spinosa,

P. squamulosa, P. stolonifera, P. stubenrauchi, P. subfusca, P. sub-

uculata, P. s. var. suteri, P. superba, P. tesselata, P. thompsoni, P.

torpida, P. transversaria, P. t. var. monaarensis, P. trita, P. turqueti,

P.nistiae, P. vanhöffeni, P.villosa. Hartmeyer (1), p. 1341—42 u. p. 1483.

Pyuridae Hartm. (Syn. Cynthiidae Lae. Duth. part.; Haloeynthiidae

Hartmr.). 1.e. p. 1329.

Rhizomolgula arenaria, Rh. gigantea, Rh. intermedia, Rh. sitteri, Rh. war-

pachovski. 1.c. p. 1321.

Rhodosoma Ehrbg. (Syn. Phallusia Sav. part.; Schizascus Stimps. Pera

M‘Don., Peroides M‘Don., Chevreulius Lac. Duth., Corellascidia

Hartmr.) callense, Rh. ceylonicum, Rh. herdmani, Rh. papillosum, Rh.

seminudum, Rh. verecundum.

Rhodosomidae Fam. Hartmr. (Syn. Corellidae + Corynascididae part. Lah.;

Corellinae + Aseidiinae part. + Cioninae part. Herdm., Corellidae —

Ko I

26 Tunikata für 1910.

Cionidae Sluit., Corellidse + Rhodosominae + Corellaseidiidae part.

Sigr.) l.c. p. 1385.

Rhodosominae Subfam. Slgr. (Syn. Cioninse Herdm. part.; Corellidae

Lah. part., Cionidae Sluit. part.; Corellascidiinse Hartmr. part.). 1. c.

p- 1388.

Rhopalea Phil. (Syn. Rhopalona Roule) cerebriana, Rh. neapolitana. 1. ce.

p- 1417.

Rhopalopsis crassa, Rh. defecta, Rh. fusca, Rh. tenuis. ].c. p. 1418.

Salpa sp. Dogiel. — S. fusiformis, S. mucronata, S. asymmetrica, S. zonaria,

S. maxima. Apstein. — S. fusiformis-runcinata, S. cylindrica, S. zonaria-

cordiformis. Johanson.

Sarcobotrylloides anceps, S. aureum, S. herdmani, S. jacksonianum, 8.

pannosum, S.-parvum, S. purpureum, S. superbum, S. wyvillei. Hart-

meyer (1), p. 1381.

?Sacrodidemnoides misakiense. 1. ec. p. 1447.

Sidneioides tamarame. |1.c. p. 1462.

Sidnyum Sav. (Syn. Circinalium Giard., ?Sidnyum Flem., Forbes; ?Par-

ascidia Ald., Herdm. part.) turbinatum, S. t. var. concrescens, 9. t.

var. democraticum, S. t. var. foederatum, S. t. var. simplex. l.c.p. 1475.

Sigillina australis, S. caerulea. ]1.c. p. 1440.

Skavostyela scaevola. 1. c. p. 1366.

Sluiteria rubricollis. ]1.c. p. 1412.

?Stephanostoma actinoides. 1. c. p. 1480.

Stolonica Lac. Duth. u. Del. (Syn. Thylacium Car. part.) prolifera, 8.

socialis, S. s. var. maculata. 1.c. p. 1373.

Styela plicata. Schaxel.

Sycozoa Less. (Syn. Aplidium Q@. u. G., Colella Herdm. part.) cerebriformis,

S. concreta, S. elongata, S. gaimardi, S. georgiana, S. incerta, S. murrayt,

S. m. var. rubida, S. pedunculata, S. p. f. robustipes, S. perrieri, 8.

pulchra, S. quayi, S. q. var. zschani, S. ramulosa, S. sigellinoides, S.

tenuicaulis, S. umbellata, S. u. var. kophameli. Hartmeyer (1), p. 1438.

2Symphlegma viride. ].c. p. 1371.

Synclavella Caull. (Syn. Synelavelina Ritt.) australis, S. lessoni. 1. c. p. 1427.

Synclavelina Ritt. (ist als Synonymon zu streichen). 1. c. p. 1487.

Synoicidae Fam. Hartmr. (Syn. Polycelinidae Verr., Giard —+ Polyelinopsidae

Caull. (part.) + Herdmaniidae [Euherdmaniüdae] Ritt. Polycliniadae

(part.) [Polyclinidae + Aplididae] Lah.). l.c. p. 1457.

Synoicinae subfam. Hartmr. (Syn. Polyelininae Sigr. -- Euherdmaniinae

Sieger). (lee. p.1459.

Synoicum Phipps (Syn. Sidnyum Herdm.; Herdm. part., Synoicum Lah.,

Morchellium Herdm. part., Cireinalium Jac. part., Polyclinopis

Gottsch.) giardi, S. inerustatum, 8. i. var. parvum, S. intercedens, S.

irregulare, S. pachydermatinum, S. pallidum, S. steinensi, S. turgens.

1.05.90: 1477:

Tethyidae Fam. Hartmr. (Syn. Styelidae Sluit. — Polyzoidae Mchlsn.;

Polystyelidae Herdm.). 1.c. p. 1348.

Tethyinae subfam. Hartmr. (Syn. Styelinae Herdm. part., Styelidae Sluit.).

l.c. p. 1357.

Systematik. 27

Tethyum Boh. (Syn. Ascidia L. part.; Distomus Gaertn. part.; Cynthia

Sav. part.; Styela Flem.; Glandula Stimps.; Clavellinopsis Fewkes)

arenicolum, T. areolatum, T. argillaceum, T. armatum, T. ascidioides,

T. bathybium, T. bicolor, T. bicornutum, T. braueri, T. bythium, T.

canopoides, T. c. var. attennatum, T. canopus, T. c. var. magalhaense

T. cereum, T. clara, T. clava, T. clavatum, T. convexum, T. curtzei,

T. cylindriforme, T. depressum, T. doliolum, T. elsa, T. esther, T.

etheridgei, "T. exiguum, T. fertile, T. finmarkiense, T. flavum, T. flexi-

bile, T. floccosum, T. gelatinosum, T. gibsü, T. glans, T. grahami, T.

grande, T. granulatum, T. humile, T. irene, T. joannae, T. uroboja,

T. lacteum, T. lapidosum, T. longitube, T. loveni, T. maeandrium, T.

mamillare, T. milleri, T. montereyense, T. natale, T. nisiotis, T. norden-

skjöldi, T. northumbricum, T. oblongum, T. obscurum, T. ohlini, T.

opalinum, T. orbiculare, T. paessleri, T. partitum, T. p. var. bermudense,

T. perforatum, T. personatum, T. pfefferi, T. pigmentatum, T. pingue,

T. plicatum, T. profundum, T. psammodes, T. pupa, T. pusillum, T.

racemosum, T. radicosum, T. rhizopus, T. rotundum, T. rusticum,

T. scorteum, T. sedatum, T. sericatum, T. sigma, T. spiriferum, T.

squamosum, T. steineni, T. stimpsoni, T. stoloniferum, T. traustedti,

T. truncatum, T. variabile, T. verrucosum, T. vestitum, T. villosum,

T. violaceum, T. whiteleggei, T. yakutatense. ].c. p. 1358 ff.

Trididemnum D. Valle (Syn. Didemnum Giard et aliü; non Savigny; non

Edwards; Didemnum Drasche part.; Didemnum Herdm. part.) areo-

latum, T. atrocanum, T. aurantiacum, T. bicolor, T. cereum, T. c. var.

nigrum, T. c. var. sargassicola, T. fallax, T. f. var. osculiferum, T.

graphicum, T. granosum, T. grubei, T. inaequilobatum, T. lobatum, T.

lucidum, T. niveum, T. opacum, T. orbiculatum, T. parites, T. planum,

T. propingquum, T. ramosum, T. savignyi, T. solidum, T. strangulatum.

l.c. p. 1446 u. 1489.

Tylobranchion antarcticum, T. speciosum. ]1.c. p. 1417.

Mollusca für 1910.

(Mit Ausschluss von Systematik, Faunistik und Tiergeographie.)

Von

Dr. H. Laackmann, Leipzig.

Publikationen.

* Acloque, A (1). La protection du Mollusque par sa coquille.

Cosmos Paris N. S. Tome 61 1909. p. 623—625. 6 Figg.

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Anonym. Über den Hectocotylus. Prometheus. Jahrg. 20.

1909. p. 553—554. 2 Figg.

Anonym. Schutz gegen Bohrmuscheln und Pfahlwürmer.

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Adams, Lionel, E. Observations on the pairing of Arion ater

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Argaud et Bounoure, L. Contribution a l’etude anatomique

et histologique du tube digestif d’Arion rufus. Journ. de l’Anat.

et de la Physiol. Annede 46. 1910. p. 146—174. 8 Figg.

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Übersicht nach dem Stoff.

Technik und Methoden.

Drew: Gewinnung, Fixierung und Färbmethoden des Blutes

von Cardium norvegieum. — Erhard untersucht die Zellen der Typhlosolis

von Anodonta in Kirschgummilösung. Ferner Fixierungs- und Färbungs-

methoden der Kiemen-, Darm- und Lebergangszellen von Helix pomatia.

— Lams: Technische Methoden zur Erzielung guter Präparate zum Studium

der Eireifung und Furehung. — Saint-Hilaire® Fixierungsmethoden der

Eierstöcke von Eledone, Loligo und Sepiola. — Saunders u. Poole fixieren

die Eier von Aplysia punctata in Formol oder in einer Mischung von Formol

und Pikrinsäure (10 T. Formol, 1 T. Pikrinsäure, 80 T. Seewasser). Nur

dadurch wurde ein Erhärten der Gallerte erzielt. Bei der letzteren Methode

ist die Färbung leichter. — Techow macht Angaben über die Behandlung der

Schnecken (Helix pomatia, Tachea hortensis und nemoralis, Helix fruticum,

Succinea putris, Planorbis corneus, Limnaea stagnalis und Paludina vivi-

para) bei Regenerationsversuchen. — Trojan betäubt Phyllirrhoö bucephala

durch allmählichen Zusatz von Magnesiumsulfat; fixiert mit 1/,°/, Osmium-

säure. Beim Schneiden erwies sich nur die Paraffinmethode als brauchbar.

Anatomie mit Einschluss der Histologie.

Allgemeines. Bourne: Morphologie von Ineisura lytteltonensis. — Burne:

Anatomie von Rhysota foullioyi. — Hoyle: Morphologie von Polypus schultzei

Moschites nigra, Loligo reynaudi und Sepia tuberculata. — Joubin (1 u. 2):

Beschreibung einer jungen Spirula. — Kwietniewski beschreibt den ana-

tomischen Bau der Larve von Thalassopterus zancleus. — Rossmaesslers

Iconographie enthält die genaue Anatomie von Archelix lactea Müll. (ein-

schließlich axia, simocheila, ohmarina, sevilliana, bleicheri, sphaeromorpha

u. canariensis. Fine charakteristische Besonderheit zeigt nur A. bleicheri,

aber die anatomischen Verhältnisse variieren nicht weniger als die Ge-

häuse. Ferner A. lucasii nebst ghazouna, und riffensis; A. hieroglyphicula

und A. jourdaniana nebst var. propeda [Nachrichtsbl.]). — Shaw: Anato-

mische Unterschiede zwischen den Gattungen Cypraea und Trivia. —

Simroth (1): Morphologische Neubildungen bei oberitalienischen Nackt-

sehnecken. — Smallwood: Morphologie von Chromodoris zebra, Facelina

agari und Polycerella zoobothryon. — Smith, Burnett: Morphologie von

Fulgur. — Thiele (2); Anatomie von Hydrocena cattaroensis. — Vayssiere

(1): Anatomie von Eliotia. — Williams: Anatomie von Loligo pealü. —

Übersicht nach dem Stoff. 41

Wülker gibt eine Beschreibung der Anatomie japanischer Cephalopoden.

In ihrem Bau stimmen die Sepioliden Euprymna und Anioteuthis ganz

mit Sepiola überein, besonders im Besitz der Spermatophorentasche und

des paarigen Leuchtorgans am Tintenbeutel. Die Gattung Sepioteuthis

trägt durchaus den anatomischen Charakter einer echten Loliginide und

stellt keinen Übergang zu den Oigopsiden dar. Das Mantelorgan am Hinter-

ende von Sepiella hat drüsige Struktur; seine Beziehungen zum sogenannten

Hoyleschen Organ und seine Funktion als Leucht- oder Purpurdrüse lassen

sich bis jetzt nicht beweisen. —

Integument: Kwietniewski: Hautdrüsen der Larve von Thalass-

opterus zancleus. — Nach Sassi verläuft die Mantellinie von Aetheria

tubifera fast immer kontinuierlich. — Sehale: Carl gibt eine all-

gemeine, zusammenfassende Darstellung über die Flußperlmuschel und

deren Perlen, erörtert die Perlbildung und deren Ursachen und geht

speziell auf die Perlmuschel im Odenwald ein, deren Geschichte er seit der

Ansiedlung gibt. — Chun beschreibt die Schale von Spirula australis nach

einem wohlerhaltenen, von der Deutschen Tiefsee-Expedition erbeuteten

Exemplar. — Haarmann: Doppelte Lobenlinie bei Ceratiten. — Perrier

und Fischer (2): Schale von Acera. — Sassi! Kurze Beschreibung der

Schale von Aetheria tubifera. —

Zelle: Erhard beschreibt in seiner ausführlichen Darstellung

der Morphologie der Flimmerzellen die Typhlosoliszellen von Anodonta

und die Lebergangzellen von Helix pomatia. Die Zweizahl der

Kernkörperchen der Typhlosoliszellen entsteht durch Teilung der

Nucleoli in den ruhenden Kernen. Das proximale Kernkörperchen

kann in der Richtung nach dem Lumen hin austreten. Die Schlußleisten

sind als formgebende Substanzen nach Art der Plateauschen - Netze auf-

zufassen; sie befinden sich nicht in gleicher Höhe mit dem Zellsaum,

sondern unterhalb desselben. Ein gesonderter Zellsaum zeichnet die

Kiemen und Typhlosolisflimmerzellen von Anodonta sowie die Lebergang-

zellen von Helix pomatia aus. Die Flimmerzellen der Muschelkiemen, ebenso

der Typhlosolis besitzen auch in ruhendem Zustand ein in der Nähe der

Basalkörper liegendes Diplosom. Die Cilien der Typhlosoliszellen besitzen in

ihrem Innern einen Achsenfaden. Die echten Basalkörper liegen an den saum-

tragenden Zellen, den Kiemen- und Darmzellen von Anodonta und den

Darm- und Lebergangzellen von Helix unterhalb des Zellsaumes. Entgegen

den Angaben Schneiders besitzen die Typhlosoliszellen keine inner-

halb von diesen sich erstreckende Basalkörperreihe. Hier ist nur eine

Anhäufung stark sich färbenden Protoplasmas, deren Deutung unsicher

ist. Die Darmzellen von Helix besitzen Stäbchen, die je einem Basal-

körperchen aufsitzen und, selbst unbeweglich, an ihrem kugelförmig ver-

diekten äußeren Ende in bewegliche Cilien auslaufen (gegen Ellermann).

Die Lebergangzellen von Helix besitzen im sog. „toten Raum‘ Tropho-

spongien, die entgegen Holmgrens Ansicht Chromidien im Sinne

Goldschmidts sind, da sie durch Chromatinfarben gefärbt werden.

— Mitotische Teilungen in Flimmerzellen wurden gefunden in den Zellen

der Anodonta-Kiemen, in der Typhlosolis der Muschel und in den Lebergang-

zellen von Helix. Das Diplosom wirkt als Teilungsorgan, stellt sich als ein

49 Mollusea für 1910.

echtes Centrosom dar. Zwischen Basalkörper und Centrosomen bestehen

keinerlei Beziehungen, die Basalkörper nehmen an der Teilung keinerlei

aktiven Anteil; die Hennegney Lenhosseksche Theorie kann für diese

Zellen nicht mehr aufrecht erhalten werden. — Nach Faur6-Fremiet ist das

Golgische Netz in den Spermazellen wahrscheinlich der Nebenkern. —

Stauffacher: Kernstruktur und sichtbare Verbindung (Kernbrücken)

zwischen Kern und Cytoplasma in den ruhenden Zellen von C'yclas cornea. —

Muskulatur: Kwietniewski: Körpermuskulatur der Larve von T’halassop-

terus zancleus. — Nach Sassi ist der Fuß von Aetheria tubifera völlig rück-

gebildet; ein Rest seiner Muskulatur findet sich an der ventralen hinteren

Kante des Eingeweidesacks. — Sassi: Adduktoren,von Aetheria tubijera. —

Nervensystem: Bourne: Nervensystem von Incisura lyttellonensis. —

Chun: Nervensystem von Spirula australis. Die Untersuchung ergibt,

daß keinesfalls zwischen den einzelnen ganglionären Zentren längere freie

Kommissuren ausgebildet sind (Huxley, Pelseneer), sondern daß sie dicht

aneinander gerückt sind. — Dakin (2): Visceralganglion von: Pecten. —

Dreyer untersucht das Nervensystem bei verschiedenen Arten der Aeoli-

didae und Tritoniadae. Die Intercerebralkommissur ist bei vielen Arten.

ganz klar aus 3 Bündeln von Nervenfasern zusammengesetzt; eine Para-

pedalkommissur ist überall vorhanden. Bei allen untersuchten Aeolididae

enthält die Visceralkommissur ein kleines Ganglion, das den Tritoniadae

fehlt. Das Cerebroidganglion gibt 6 bzw. 7 Nerven ab; aus dem Pedal-

ganglion gehen bei den Aeolididae 3, bei den Tritoniaden 4 Nerven hervor.

Aus der Visceralkommissur gehen immer auch Nerven zu einem Darm-

plexus (sympathisches System) und zu den Parallelorganen hervor. Die

Geschlechtsorgane werden von Visceral- und einem Pedalnerven inner-

viert; die ersteren gehen zu den Lappen der Zwitterdrüse, der letztere

zum Penisganglion. Die Visceralnervenenden enden in einem Visceral-

plexus am Darm. Durch das Vorhandensein eines Nerven, der aus der

Visceralkommissur hervorgeht und in seiner Verteilung einem Mantel-

nerven entspricht, wird wahrscheinlich, daß die Aeolidier sich aus mantel-

tragenden Gastropoden entwickelt haben. Das Cerebroidganglion zeigt

in seinem Hauptganglienlager keine Grenze zwischen dem cerebralen und

pleuralen Anteil. Die Bezirke, aus denen die Nerven entspringen, konnten

festgestellt werden. Jeder Nerv fließt aus mehreren Bündeln zusammen.

Der Cerebralnerv ist ganz aus von Cerebropedal- und Pleuropedalkonnektiven

abzweigenden Bündeln gebildet. Es fehlt ihm ein Bündel aus Cerebroid-

ganglionzellen. Alle Pedalnerven enthalten Pleural-, Pedal- und wahr-

scheinlich auch Cerebralfasern. Die Cerrata von Tritonia und Marciona

sind vollständig pleural innerviert, während die Äolidier sowohl von Pleuras-

als auch von Pedalnerven innerviert werden. Das Neuropil läßt sich restlos

in eine Anzahl Bündel auflösen, auch innerhalb dieser Bündel findet sich

kein Netzwerk. Jede Ganglienzelle hat einen großen, dieken Neuritus

und wahrscheinlich zahlreiche Dendrite. Die Muskelzellen werden auf

zweierlei Weise innerviert: entweder das Plasma der Muskelzelle steht in

direktem Zusammenhang mit den Zellen des Plexus, oder die ganze Muskel-

faser ist von einem Geflecht von Nervenfasern umsponnen. Überall auf

der Muskelfaser liegen sogenannte Endplättehen, die aber keineswegs

Übersicht nach dem Stoff. 43

terminale Gebilde, sondern vielmehr alle durch das Geflecht verbunden

sind. — Sassi: Nervensystem von Aetheria tubifera.. — Smallwood und

Rogers untersuchen die Nervenzellen von Chromodoris zebra, Dolabrifera

virens, Strombus gigas, Octopus rugosus und Limax maximus. Pigmentierte

oder unpigmentierte Körnchen sind überall vorhanden. Ebenso konstant

ist das Auftreten der Vakuole in den Nervenzellen. — Nach Weigls Unter-

suchungen an Octopus, Sepia und Loligo entspricht das intrazelluläre Trocho-

spongium der Nervenzellen der höheren Wirbeltiere dem Golgi-Kopsch-

schen Apparat. Der feinere Bau des Apparates, nämlich der einzelnen

Fäden, sowie deren Verlauf, weisen die größten Abweichungen vom Wirbel-

tiertypus auf. Er setzt sich bei den Cephalopoden vorwiegend aus kürzeren

und längeren, oft gewundenen und geschlängelten Fäden zusammen, die

sich nur selten verzweigen und auch nur ausnahmsweise anastomosieren,

also kein geschlossenes Netz bilden. —

Sinnesorgane: Nach Chun besitzt das Auge von Spirula australis

die für die Oegopsiden charakteristische Lidfalte mit großer Öffnung. —

Dakin (1): Anatomie des Auges von Peeten. — Sassi findet bei Aetheria

tubifera 2 Statocysten, die sich eng an die Cerebropedalkommissuren an-

schmiegen. Sie enthalten einen unregelmäßig geformten Statolythen. —

Darmsystem: Argaud u. Bounoure: Morphologische und histo-

logische Beschreibung des Darmkanals von Arion rufus. — Bourne:

Verdauungsorgane von Incisura Ilytteltonensis. — Chun: Darmtraktus von

Spirula australis. — Ehrmann: Mundwerkzeuge von Campylaea phalerata.

— Hesse: Radula von Hyalinia kobelti. — Kwietniewski; Verdauungs-

organe der Larve von Thalassopterus zancleus. — Sassi: Verdauungskanal

von Aetheria tubifera. — Sassi findet bei Aetheria tubifera an der Vorder-

kante des Eingeweidesacks ein Organ, das aus einem sich einige Male kurz

verzweigenden Schlauch besteht. Verf. vermutet darin eine reduzierte

Byssusdrüse. — Stafford: Darm der Canadischen Auster. — Wülker gibt

eine eingehende Beschreibung der Speicheldrüsen von japanischen Cephalo-

poden. Es kommen bei den dibranchiaten Cephalopoden 3 Arten von

Speicheldrüsen vor: zwei davon sind meistens paarig, die vorderen (Buccal)

und hinteren Abdominaldrüsen; die dritte, die Unterkieferdrüse, ist immer

unpaar und in allen Gruppen gleich ausgebildet. —

Blutgefäßsystem : Bourne: Herz- und Zirkulationssystem von Incisura

lytteltonensis.— Chun beschreivt das Gefäßsystem von Spirula australis. Das

spindelförmige Herz ist bei dem wohlerhaltenen, von der Deutschen Tiefsee-

Expedition erbeuteten Exemplar auffallend in die Breite gezogen. — Dreyer

stellt Untersuchungen an über dasBlutgefäßsystem von Tritonia plebeia,Mari-

onia quadrilatera, Janus cristatus, Coryphella lineata, Rizzolia peregrina, Face-

lina drummondi, Calma cavolina und Favorinus albus. In keiner Arterie,Vene

oder Lacune ist eigentliches Epithel vorhanden. Alle diese Gefäße werden

von einer aus stark verästelten Zellen zusammengesetzten Membran aus-

gekleidet. Bei den Aeolididae ergießen sowohl die vordere als auch die

hintere Arterie ihr Blut in die sogenannte Körperhöhle; von hier aus geht

das Blut entweder durch Öffnungen an den Pleuralvenen oder durch die

Cerrata in das Herz zurück, das somit gemischtes Blut enthält. Bei den,

Tritonidae ist der Kreislauf ein doppelter; nur die vordere Arterie ergießt

44 Mollusca für 1910.

ihr Blut in die Körperhöhle; von hier wird es durch über und unter dem

Pharynx gelegene Öffnungen an den Pleural- und Pedalvenen direkt in das

Herz zurückgeleitet. Die hintere Arterie führt aber in den Lebersinus,

und ihr Blut muß auf seinem Rückwege die Cerrata durchlaufen; diese

haben besondere zu- und abführende Venen. Das Herz enthält wieder ge-

mischtes Blut. Die Cerrata sind spezialisierte Atmungsorgane, wofür bei

den Tritoniaden die Anordnung der Gefäße spricht, sowie bei den Aeolididae

die Entwicklung von accessorischen Herzen. — Naef beschreibt das Blut-

gefäßsystem von Sepia und gibt eine vergleichende Übersicht des Herzens,

der Hauptarterien und der Hauptvenen der Cephalopoden. Aus der Dar-

stellung ergeben sich mehrfache Anhaltspunkte für die Ableitung der

Dibranchiaten von den Tetrabranchiaten. Die Embryonalentwieklung der

Dibranchiaten weist einen gemeinsamen Bauplan des Gefäßsystems auf,

der den Schlüssel zum Verständnis der anatomischen Verhältnisse bietet.

Die Octopoden und Decapoden und unter den letzteren die Myopsiden

und Oegopsiden zeigen im ausgebildeten Gefäßsystem typische Ver-

schiedenheiten und erweisen sich auch in dieser Richtung als wohlcharak-

terisierte Gruppen. — Sassi: Herz und Verlauf der Aorten von Aetheria

tubifera. —

Cölom: Sassi: Leibeshöhle von Aetheria tubifera. — Thiele (1)

erörtert die Cölomverhältnisse der Mollusken und der Anneliden nach

phylogenetischer Methode. Die Annahme, daß die Hohlräume des Uro-

genitalsystems von Mollusken der Leibeshöhle der Anneliden homolog

sind, ist unrichtig; bei den letzteren haben die Gonaden ihren Hohlraum

verloren, und die Keimstoffe fallen in die Kammern der Leibeshöhle, die

als ein Teil des Schizozoel anzusehen sind. Ein Homologon des Perikards

und der Nieren von Mollusken existiert bei Anneliden überhaupt nicht,

da die primitiven Gonodukte, aus denen sie hervorgegangen sind, hier

völlig verschwunden sind. Ebensowenig:ist die Annahme richtig, daß das

Molluskenherz dem Darmsinus der Anneliden homolog ist, überhaupt

gibt es bei Mollusken kein Homologon s. s. dieses Sinus. —

Atmungsorgane: Bishop: Kurze, vergleichendeBeschreibung derKiemen

von Haliotis tuberculata, Patella vulgata, Trochus crassus und ziziphinus, Palu-

dina vivipara, Littorina litorea, obtusata, rudis Lacuna, Cypraea pyrum und

europaea.— Nach Bishop ist die Ausbildung der Schleimdrüsen in der Kiemen-

höhle bei Litiorina litorea, rudis und obtusata sehr verschieden. Auch die Ge-

schlechter zeigen in dieser Hinsicht Verschiedenheiten. — Bourne: Hypo-

branchialdrüsen von Incisura Ilytteltonensis. — Bourne: Ctenidien von

Ineisura lytteltonensis. — Nach Lefevre und Curtis sind, im Gegensatz zu

Ortmann die Wasserröhren der Anodontiden, auch wenn sie Embryonen

enthalten, ungeteilt. — Perrier und Fischer (1): Struktur der Kiemen bei

den Bulleen. — Poyarkoff: Regeneration der Kiemensackzellen bei O’ycelas

corneum. — Sassi: Kiemen von Aetheria tubifera. — Stafford: Kiemen

der Austern. —

Exkretionsorgane! Nach Chun zeigt der Harnsack von Spirula

australis nahe Beziehungen zu jenem der Myopsiden. — Deschamps:

Vergleich der Niere bei Prosobranchier und Pulmonaten. — Ehrmann:

Exkretionsorgane von Campylaea phalerata. — Krahelska gibt eine Be-

Übersicht nach dem Stoff. 45

schreibung über den histologischen Bau einer Helicidenniere unter nor-

malen Verhältnissen und untersucht weiter den Einfluß der Winterschlaf-

periode auf den histologischen Bau der Niere. Es findet während der

Winterruhe ein energisches Wachstum der Drüsenepithelien statt; ihre

exkretorische Tätigkeit wird nicht unterbrochen. Sowohl Protoplasma

wie der Zellkern resp. dessen Chromatin nehmen eine für intensive Tätig-

keitsstadien charakteristische Struktur an: das im Herbst feinkörnige

Protoplasma wird immer ausgeprägter faserig gebaut, die körnchen-

förmige Anordnung des Chromatins wird zu einer netzartigen. Durch

starke Kräuselung der Basalmembran wird die Kontaktfläche des ex-

kretorischen Epithels mit den Bluträumens der Stützleisten erheblich ver-

größert. Der direkten Aufnahme der Exkretstoffe aus der Blutlakune

gesellt sich ihr Import durch die diadeptisch in die Drüsenepithelien hinein-

wandernden und hier degenerierenden Amöbocyten zu. Da bei unter-

brochener Exkretenleerung und der intensiven Tätigkeit die Drüse zum

harnspeichernden Organ wird, müssen sich alle einzelnen Nephrocyten zu

Exkretbehältern ausbilden. Der Zelleib wird durch eine Reihe von suk-

zessiv sich entwickelnden Vakuolen in die Länge gezogen, die Grenzen

zwischen den benachbarten Zellen verwischen sich, die einschichtige Struktur

der Epithelien geht bei der starken Füllung mit Exkretstoffen in eine un-

regelmäßige syneytiale über. — Lambertenghi (1 u. 2): Histologie der

Nierenzelle von Helix pomatia und Limax variegatus. — Sassi: Niere von

Aetheria tubifera. —

Fortpflanzungsorgane: Adams: Kurze Beschreibung und Ab-

bildung der Genitalorgane von Arion ater.. — Bourne: Gonaden von

Incısura Lytteltonensis. — Chun beschreibt die weiblichen Geschlechts-

organe von Spirula australis. Die innere Öffnung des Eileiters ist weit

nach vorn bis in die Höhe der Eileiterdrüse verlegt, und der Eileiter be-

schreibt eine lange, nach hinten gerichtete Schleife, bevor er in die Eileiter-

drüse mit ihrem Ring- und Gabelsystem einmündet, ein Verhalten, wie

es ähnlich von Döring von Sepiola und Rossia nachgewiesen ist. —

Ehrmann: Bei den Geschlechtsorganen von Campylaea phalerata können

als besonders charakteristisch gelten: 1. die langen, starken Glandulae

mucosa, 2. die Weitung des Blasenstieles an seiner Mündung, 3. die Kürze

der weiblichen Endwege, 4. das um den Penis geknäuelte Flagellum. —

Hesse: Genitalapparat von Hyalinia kobelti. — Jordan: Histologie des

Eies von Cumingia tellinoides. — Künkel: Kurze Angaben über den Ge-

schlechtsapparat von Campylaea cingulata. — Kwietniewski: Genital-

organe von T'halassopterus zancleus. — Lams: Bau der Geschlechtsorgane

von Arion empericorum. — Saint-Hilaire: flistologie des Follikelepithels

bei Eledone, Loligo und Sepiola. — Sassi: Gonaden von Aetheria tubifera.

— Simroth (1); Morphologie des Penis bei Limax cinereoniger und cinereus.

— Hierher auch Pilsbry und Ferriss (1 u. 2).

Ontogenie.

Caullery u. Pelseneer beschreiben die Eikokkons von Littorina littorea.

Jede Hülle enthält gewöhnlich 2 Eier, selten eins oder drei. Nach 5 bis

6 Tagen schlüpfen die Veligerlarven aus. — Nach Cognetti di Martiis nehmen

46 Mollusca für 1910.

die Basalzellen von Helix pomatia amöboid Spermien auf. — Delsman:

Fortpflanzung bei Mytilus edulis. — Koeppern macht kurze Mitteilungen

über Furchung und Keimblätter bei Sepia. — Künkel; Embryonalent-

wicklung von Campylaea cingulata. Unmittelbar nach der Eiablage scheidet

der Dotter zwei Richtungskörper aus und dann beginnt die anfangs äquale,

totale Furchung. — Lams (1): Wachstum, Reifung, Befruchtung und

Furchung des Eies von Arion empericorum. — Lams (1); Kopulation von

Arion empericorum. — Lams (2): Dimorphismus der Samenelemente bei

Murex. — Morgan untersucht in einer ausführlichen Weise die Wirkung

des Zentrifugierens auf die Entwicklung der Eier von Cumingia. — Morgan,

Payne u. Browne fanden in 40 Fällen, daß in ein Ei von C’umingia jedesmal

das erste Spermium, das sich genau vertikal zur Oberfläche einbohrte,

und nur dieses eindrang. Das Ei trifft also keine Auslese [Neapler Ber.]. —

Morse, E. $.: Jugendstadium der Schale von Acmaea. — Saunders und

Poole geben eine eingehende Darstellung der Eisegmentierung und der

Entwicklung der einzelnen Organsysteme von Aplysia punctata. — Sim-

roth (1); Verhalten von Limaxz maximus bei der Kopula. — Smith, Edgar

A. (2); Eikapseln von Melo. — Smith, Edgar A. (3): Jugendstadien der

Gattung Humphraea. — 800s (2): Spermiogenese von Helix arbustorum. —

Soos (3): Struktur der Spermatozoen von Planorbis corneus. — Stafford;

Entwicklung der Austern. Verf. beschreibt die anatomischen Verhältnisse

von verschiedenen Stadien. — Tur: Eiablage bei Philine aperta (siehe

Pathologie. — Hierher auch Fournier.

Phylogenie.

Douvill6: Beispiele von stufenweiser Entwicklung bei Mollusken.

— Nach Dreyer sind phylogenetische Schlüsse auf die Homologie der

Cerrata auf Grund deren Innervation möglich, da diese bei den Tritoniaden

und Äolidiern verschieden sind, ja sogar verschieden innerhalb der ersten

Gruppe. — Jiekeli sucht an Molluskenschalen nachzuweisen, daß der

Gang der Stammgeschichte in der allgemeinen Gestaltung zu Formen

zurückführt, von denen er ursprünglich seinen Anfang genommen hatte.

Den ersten Anfang der Molluskenschale bildet jene Ausscheidung der

Schalendrüse, welche noch heute als eine unpaare, anfänglich hornartige

Platte erscheint. Diese Schalenform, erst später durch Kalkabsonderung

verstärkt, geht bei den meisten Univalven in eine gewundene Form über,

doch gibt es unter hochorganisierten Weichtieren, die eine lange Stamm-

‚geschichte hinter sich haben, welche, welche als Gehäuse nur eine gewölbte

Platte tragen (Patella, Fissurella). Ebenso zeigt die Windung der Schale

die Neigung, wieder zu der ursprünglicheren geraden Form zurückzukehren.

Hierzu bemerkt Haller, daß Jiekelis Annahme in starkem Widerspruch

mit all den uns bekannten Tatsachen steht. Verf. widerlegt verschiedene

Punkte, die das Molluskengehäuse betreffen. — Kilian: Konvergenz-

erscheinungen bei Ammoniten. — Naeff findet auf Grund seiner Unter-

suchungen über das Blutgefäßsystem der Cephalopoden mehrfache An-

haltspunkte für die Ableitung der Dibranchiaten von den Tetrabran-

chiaten. Die Myopsiden haben im Blutgefäßsystem die ursprünglichsten

Zustände bewahrt. Unter den Myopsiden haben die Sepioliden mehrfache

Übersicht nach dem Stoff. 47

primitive Charaktere erhalten. — Wedekind (1): Konvergenzerscheinung

bei Goniatiden. — Wedekind (2): Lobenentwicklung der Simbirskiten. —

Wood: Phylogenie der Oirithiidae. — Wülker gibt einen Ausblick über

die stammesgeschichtliche Gruppierung der Dibranchiaten und erörtert

die Beziehungen der Speicheldrüsen der Cephalopoden zu denen anderer

Mollusken. — Hierher auch Loos (1), Vadasz.

Physiologie.

Allgemeines: Nach Bradley sind im Mantel von Anodonta oder Unio

ungefähr 21/,%, Mangan, in den Eiern °/,%, im Durchschnitt etwa 4%

enthalten. Ebenso wird bei der Schale einer Unio aus dem Pliozän Mangan

nachgewiesen. Auch Pecten und Modiola enthalten Mangan. — Nach den

Untersuchungen von Glaser rühren die Nematocysten der Aeolidier (Mon-

tagua) von. Coelenteraten her und sind nicht als ein Beispiel von homo-

plastischer Entwicklung anzusehen. Ihr Wert als Verteidigungsmittel ist

gering, teils weil die Nudibranchier ihren Feinden selbst bei Abwesenheit

von Nematocysten ekelhaft sind. — Grandjean: Chemische Zusammen-

setzung des Siphos der Ammoniten und Belemniten. — Krahelska unter-

sucht den Gewichtsverlust beim Winterschlaf für Helix pomatia, H. arbu-

storum, H. fruticum und Leucochroa candissima. Die Gewichtsabnahme

während des Winterschlafes ist eine viel geringere als währehd einer Hunger-

periode von gleicher Dauer. Der Verlauf der Gewichtsreduktion gestaltet

sich für verschiedene Schneckenarten ziemlich verschieden. Die Unter-

schiede sind auf einen ungleichen Anpassungsgrad an die Ungunst äußerer

Verhältnisse, vor allem an den Wassermangel, zurückzuführen. — Nach

Paladino erhält man durch einfaches Zerquetschen der Leber von Weich-

tieren 2 Pigmente: ein wasserlösliches und ein chloroform- oder alkohol-

lösliches. Ersteres ist eisenhaltig und gibt ein kontinuierliches Spektrum,

letzteres ist eisenfrei oder enthält nur Spuren von Eisen und zeigt ein

Spektrum mit isolierten Streifen. Es werden untersucht die Leber von

Octopus vulgaris, Sepia officinalis und Aplysia limacina. — Simroth:

Physiologische Neubildungen (Pigment) bei oberitalienischen Nackt-

schnecken. Abhängigkeit der Nacktschnecken von der Pilznahrung. —

Giftigkeit der Mollusken: Netter, Fabre-Domergue (1 u. 2), Fabre-Domergue

u. Legendre. — Nach Fleig und de Rouville beruht die Giftigkeit des Speichel-

drüsensaftes der Cephalopoden (Eledone moschata und Octopus vulgaris)

auf einer intrazellulären Ausscheidung. Die sogenannten Speicheldrüsen

haben für die Verdauung gar keine oder nur eine geringe Bedeutung. —

Nach Rouville (1) sind die Extrakte beider Paare von Speicheldrüsen von

Eledone moschata für Krustaceen giftig, die der vorderen jedoch in ge-

ringerem Grade. (2): Für Kaninchen scheinen die hinteren Drüsen sehr

giftig zu sein (gegen Krause, de Livon und Briot). Die vorderen sind es

in geringerem Grade. Das Gift wirkt beim Kaninchen nicht allein auf

die Atmungsorgane. — Physiologie des Wachstums: Nach Künkel geht

das Wachstum der Embryonen von Campylaea cingulata in der Tageshelle

auffallend langsamer vor sich als in der Dunkelheit. Nach seinen Zucht-

versuchen wurden die Campylaeen 4—5 Jahre alt. — Physiologie der Be-

wegung: Bishop beschreibt die Vorgänge der Bewegung, der Festhaftung

48 Molluscea für 1910.

in der Ruhe, das Ausstrecken und Zurückziehen des Fußes bei Haliotis

tuberculata, Patella vulgata, Trochus crassus und ziziphinus, Paludina

vivipara, Littorina litorea, obtusata, rudis, Lacuna, Cypraea pyrum und

europaea. — Brown; Fortbewegungsmethoden bei Landschnecken. —

Nach Colton kriecht die relativ große Modiolaria marmorata verkehrt an

die Oberfläche wie die Limnaeen. — Simroth (5): Bewegung der Gastro-

poden. — Hierher auch: Hülsen, Köhler, Schulze.

Physiologie der Ernährung: Holzfuß berichtet über die Nahrung von

Helixarten und Nacktschnecken. — Roaf prüft die chemischen Reaktionen

im Darmkanal von Pecten während der Verdauung. — Seott findet im

Magen von sStauroteuthis hippocrepium Isopoden, Amphipoden und

Copepoden (Pontostratiotes).

Physiologie der Drüsen und Sekrete: Cavalcaselle: Über die Schlei-

mabsonderung im Fuße von Helix pomatia. — Friedländer: Über

den antiken Purpur. — Simroth (1): Deutung des roten Sekrets bei Limax.

— Trojan beobachtet das Leuchtvermögen von Phyllirrhoö bucephala. Die

Schnecke leuchtet nur in gereiztem Zustande; nach Erholungspausen

wiederholt sich das Leuchten. Unter Anwendung verschiedener Reize,

insbesondere des elektrischen, läßt sich mit Sicherheit entscheiden, daß

der ganze Körper des Tieres, inbegriffen die Tentakeln, leuchtet. Die

Lichtstärke ist nicht überall gleich, besonders schön leuchten der Kopf,

die Konturen des Körpers und einige Punkte der Seiten. Das Licht ist

flackernd. In der Körperhülle kommen 2 Arten von Drüsenzellen vor,

Schleim- und Eiweißdrüsenzellen. Die ersteren zeigen Neigung, mehr-

zellige Drüsen zu bilden, die letzteren bleiben stets vereinzelt. Die Chro-

matophoren mit zahlreichen Pigmentkörnchen funktionieren nach Art

derer bei den Cephalopoden. Auf den Lippen gibt es besonders große

Schleimdrüsen, die diesem Mollusk die Speicheldrüsen ersetzen dürften,

Das Leuchten ist von zweierlei Art, ein schwächeres, über den ganzen

Körper, Fühler inbegriffen, verbreitetes, und ein intensiveres, auf einzelne

Punkte des Körpers beschränkte. Die erste Art des Lichtes rührt von

Schleimzellen her; die intensiveren Lichtpunkte an den Seiten des Tieres

stammen von Leuchtorganen, die durch Kombination einzelliger Schleim-

drüsen zustande kommen. Jede der einzelligen Drüsen behält auch im

Verbande mit anderen ihren Habitus, das ist die Flaschenform, und einen

langen, separaten Ausführungskanal. Die Zahl der Drüsenzellen kann

durch rege Teilung bis auf 20, vielleicht auch mehr, heranwachsen. Die

Luminiszenz von Phylliorhoe bucephala ist extracellulär; das Tier ist

höchstwahrscheinlich giftig und der biologische Wert des Lichtes vielleicht

analog dem der Trutzfärbung.

Physiologie des Blutes: Drew: Physiologie der Blutkörperchen von

Cardium norvegieum. — Lang untersucht die Herztätigkeit von Helix

pomatia bei Temperaturerhöhung und Temperaturerniedrigung. — Morel

und Bellion! Zuckergehalt im Blute von Helix pomatia. Der Zucker

ist hauptsächlich in gebundener Form vorhanden. — Hierher auch Giaja.

— Winterstein: Blutgase wirbelloser Seetiere. — Hierher auch Lapieque

u. Cardot.

Übersicht nach dem Stoff. 49

Physiologie der Atmung: Nach Henze ist der Sauerstoffverbrauch

der Mollusken unabhängig vom Sauerstoffdruck. — Hierher auch

Parnas.

Nerven- und Muskelphysiologiee Dakin (2): Physiologie des Nerven-

systems bei Pecten. — Ewald weist an den Schließmuskeln von Maler-

muschel und Teichmuschel zwei verschiedenartige Aktionsströme nach:

den Zuckungsstrom und den Tonusstrom. — Fuchs faßt die an

operierten Eledone moschata (Durchschneiden des Mantelconnectiv,

möglichst zentralwärts vom Stellarganglion) beobachteten Erschei-

nungen als Erfolg bzw. Ausfall hemmender Wirkung des Zentral-

nervensystems auf die Chromatophoren auf. Das Stellarganglion

glaubt Verf. als ein nervöses Hemmungszentrum für die kolors-

torischen Funktionen ansehen zu müssen. — Fry: Einfluß der Visceralnerven

auf das Herz bei Cephalopoden. — Nach Hofmanns (1) verschiedenen Ver-

suchen ergibt sich, daß eine diffuse Ausbreitung der Erregung im Mantel-

lsappen von Aplysia depilans vom Innervationsgebiet des gereizten Nerven

&gus auch bei maximaler Reizung bloß dann erfolgte, wenn durch die Be-

wegung eine Reizung der sensiblen Hautnerven in der Umgebung be-

wirkt wurde, also nur unter Beteiligung des peripheren Reflexmechanismus.

Wird dessen Wirkung ausgeschlossen, so kann die zentrale Innervation

rein für sich studiert werden. Bei Reizung mit sehr starken Strömen findet

man für jeden Nerven einen konstanten unregelmäßig abgegrenzten In-

nervationsbezirk. Die Bezirke benachbarter Nerven greifen außerordent-

lich stark ineinander über. Reizt man zunächst mit schwachen Strömen

und geht allmählich zu stärkeren über, so findet man, daß bei der Ver-

stärkung des Reizes häufig ein neues Gebiet zum schon erregten hinzu-

kommt. — Hofmann (2): Wirkung chemischer Reizung der Muskeln und

Nerven der Chromatophoren bei Sepia, Octopus, Eledone (und anhangweise

Loligo). Zur Untersuchung gelangten von Alkaloiden: Nikotin, Physo-

stigmin, Atropin, salzssures Kokain und Pilokarpin. Von Säuren wurden

verglichen die Wirkung der Salzsäure, Essigsäure und Gärungsmilch-

säure; von Basen (außer den aufgezählten Alkaloiden die Wirkung der

Natronlauge, des Triäthylamins, gelegentlich auch Pyridin); von Salzen

die Wirkung von Ammonsulfat (Ammonchlorid) und Triäthylaminchlor-

hydrat. — Lapique (1 u. 2) untersucht den Grad der Reizbarkeit der

Muskeln bei Patella vulgata, Trochus lineatus, Mytilus edulis, Venus verru-

cosa, Solen vagina und Helix pomatia. — Parnas behandelt den Energie-

umsatz solcher glatter Muskeln, deren Funktion darin besteht, stationäre

Kontraktionszustände von langer Dauer und bei großer Belastung bei-

zubehalten. Durch Untersuchung des respiratorischen Stoffwechsels auf

Muscheln, deren Schließmuskeln bei großen Belastungen maximal kon-

trahiert bleiben (Venus verrucosa, Cytteraea chione, Pecten jacobaea) wird

bewiesen, daß solchen Kontrektionszuständen keine Erhöhung des Energie-

umsatzes entspricht. Der beobachtete Stoffwechsel ist so gering, daß der

gesamte Energieumsatz eines solchen glatten Muskels einen Bruchteil von

der Größenordnung 10% — 10° desjenigen Betrages ausmacht, welcher

die Erhöhung des Energieumsatzes eines quergestreiften Muskels bei gleicher

Belastung darstellt.

Archiv für Naturgeschichte, 4

1914 SV,

50 Mollusca für 1910.

Physiologie der Sinnesorgane: Pflugk: Accomodation des Cephalo-

podenauges. — Yung: Empfindlichkeit der lLandschnecken auf

Lichtreize.

Zeugung und Fortpflanzung: Nach DBrowne erzeugt erhöhter

Druck auf Eier von Cumingia gleiche Teilungen anstatt der un-

gleichen. — Buglia (1 u. 2): Gasaustausch bei Eiern von Aplysia

limacina in verschiedenen Entwicklungsstadien. — Conklin (1 u. 2)

untersuchte die Veränderungen der Eisubstanzen durch die Zentri-

fugalkraft bei Eiern von Physa heterostropta, Lymnaea columella

und Planorbis trivolvis in den verschiedensten Stadien. — Künkel: Ei-

ablage bei Campylaea cingulata. Die weißlich gefärbten Eier sind kuglig

und haben einen Durchmesser von 2,5—3 mm. Das dünnflüssige Eiweis

wird von 3 Hüllen umgeben, einer inneren durchsichtigen, einer mittleren

Gallerthülle, in der Kalkspatrhomboeder eingebettet sind, und eine äußere

Gallerthülle ohne Kalkspatkristalle. Die beiden Gallerthüllen saugen

Wasser ein und quellen auf und schützen den Embryo vor dem Vertrocknen,

ebenso ihrer großen Elastizität wegen gegen Druck und Stoß. — Kuschake-

witsch gibt eine Ergänzung der Beschreibung der wurmförmigen Spermien

von Aporrhais pespelicani. Verf. unterscheidet 4 verschiedene Bewegungs-

arten der Spermien. Durch künstliche Befruchtung wird nachgewiesen,

daß die wurmförmigen Spermien in die Eier einzudringen vermögen, dort

eine Reihe von degenerativen Prozessen durchmachen und schließlich

ausgestoßen werden. Verf. ist geneigt, die geschlechtsbestimmende Wirkung

der apyrenen Spermien zu bezweifeln. — Pelseneer gibt eine Aufzählung

derjenigen Gastropoden, deren Eier in Kapseln abgelegt werden, und stellt

ferner diejenigen Gastropoden zusammen, die eine Fußdrüse besitzen.

Die ventralen Fußdrüsen sind bei den Rachiglossen und bei den Toxiglossen

und bei einigen Familien der Taenioglossen vorhanden. Bei allen diesen

Familien werden die Eier in Kapseln abgelegt. Die hornigen Hüllen der

Eikapseln werden von der Fußdrüse gebildet, wie Verf. bei Purpura

lapillus nachweist. Bei einem bei der Eiablage überraschten Tier

fand Verf. die Eikapsel stets in der Fußdrüse. Die Fußdrüse tritt

bei beiden Geschlechtern auf, ist aber beim Männchen kleiner und

weniger tief.

Psychologie: Bohn (1): Orientierungsvermögen der Patella.

Pathologie und Teratologie: Balch findet bei Onchidiopsis corys

den einen Tentakel gespalten. Das eine Ende enthält eine Gruppe

von 4 Augen, die scheinbar aus einander hervorgegangen sind. —

Cooper: Abnorme Radula bei Vitrea lueida. — Dudinszky: Ungleiche

Schalen bei Unio pictorum. — Künkel!: Albinoformen von Campylaea

cingulata. — Pilsbry: Albinoformen von Oliva angulata. — Schmalz

zeichnet ein Gehäuse von Helix pomatia, das linksgewunden und

zugleich skalarid ist, und geht dann auf die Abnormitäten der Planorbis-

gehäuse ein. Es werden die verschiedenen Vermutungen erörtert,

die das massenhafte Zusammen-Vorkommen von Neubildungen zu er-

klären suchen. Es geht daraus hervor, daß massenhafte Abnormitäten-

Bildung, nicht zufällige, äußere Gehäuseverletzungen die ausreichende

Übersicht nach dem Stoff, 51

Ursache sein können, sondern erst gemeinsame und auch dauernde Ände-

rungen der Lebensbedingungen, besonders tief und früh eingreifende Ein-

flüsse auf die Entwicklung der Tiere, wie Erkrankung, Betäubung u. dgl.

Halb tote Tiere, die Bewußtsein und Orientierung verlieren, müssen nicht

nur Mißbildungen, sondern auch unter gleichen Verhältnissen annähernd

gleiche Mißbildungen hervorrufen. Weiter werden Farben- und Zeichnungs-

änderungen nach Verletzung erörtert (Helix arbustorum, Neritina fluvia-

tilis). Zum Schluß geht Verf. auf die Frage ein, ob die Planorbis-Gehäuse

links oder rechts gewunden sind. — Rolle gibt eine Abbildung einer scala-

riden Form von Achatina panthera, eine sinistrose Form von Liguus virgi-

neus. — Smallwood beschreibt eine Art Albinismus von C'hromodoris zebra.

— Smith, Edgar A. (1)! Abnorme Form von Nautilus pompilius. —

Techow (1): Vorübergehende Mißbildung bei der Fühlerregeneration von

Planorbis corneus. — Nach Tur lassen sich die abnormen Gelege bei Philine

aperta, welche die Schalen mit mehreren Eiern enthalten, nicht künstlich

durch Beunruhigung des Tieres während der Eiablage hervorrufen. Die

normalen Individuen legen niemals — selbst nicht unter den ungünstigsten

Bedingungen, die nach Beginn der Eiablage einwirken — andere als normale

Eier. Die Gelege mit mehreren Eiern in einer Schale werden immer in

spontaner Weise von besonderen ‚‚monstriparen‘“ Individuen hervor-

gebracht. In den abnormen Eiern überschreitet der Prozentsatz der Schalen

mit 2 Eiern 50°/,; derjenige der Schalen mit 3 Eiern kann 10°/, erreichen.

Es kommen Schalen mit 4 bis 8 Eiern vor, die alle zusammen eingeschlossen

sind. Die in den mehreirigen Schalen eingeschlossenen Eier entwickeln

sich selten zu Doppelmißbildungen, die sich sekundär durch Vereinigung

der primär von einander unabhängigen Keime. Sind die mehreirigen

Schalen zu eng und röhrenförmig, so verschmelzen die Eier zu einer Riesen-

larve. — Vayssiere (2)? Abnormer Tentakel bei Chromodoris elegans. —

Vayssiere (4)! Monströse Form von Nassa reticulata. — Wallis: Abnorme

Anodonta cygnaea. — Hierher auch: Roth: Korrosion der Schnecken-

schalen in Aquarien.

Regeneration: Korschelts Regenerationsversuche beziehen sich

auf Helix pomatia und z. T. auf Tachea nemoralis. An den von

der Schale entblößten Stellen bildete sich nach 2 Tagen ein

zartes organisches Häutchen, dem bald die Kalkabsonderung folgte,

so daß der Eingeweidesack schon nach wenigen Tagen von einer

schützenden Hülle überdeckt war, die aber in ihrem unregelmäßigen

Bau weder dem normalen Periostracum noch den darunter liegenden

Kalkschiehten vergeichbar ist. — Poyarkoff: Regeneration der Kiemen-

sackzellen bei Cyelas corneum. — Techow (1): KRegenerationserschei-

nungen der Fühler bei Planorbis corneus. In einem Falle bildete

der rechte abgeschnittene Fühler ein hirschgeweihartiges, verzweigtes Ge-

bilde; jedoch war der obere Zapfen nach einiger Zeit verschwunden. Dieser

Fall zeigt eine vorübergehende Abnormität, die man bei mangelnder Be-

obachtungsmöglichkeit für eine bleibende Mißbildung hätte halten können.

— Teechow (2) faßt die Ergebnisse über Regeneration der Schneckenschalen

folgendermaßen zusammen: 1. Die dem Mündungsrande des Gehäuses ent-

nommenen Schalenteile werden von Land- und Wasserschnecken in der

52 Mollusca für 1910.

normalen Weise wiedergebildet. 2. Bis 1 gem große Teile mitten aus dem

Gehäuse werden von Land- und Wasserschnecken ersetzt. Der Ersatz

entspricht aber nicht den normalen Schalenbestandteilen, sondern bildet

nur ein Äquivalent der inneren Schalenlage. 3. Größere, sich über einen

oder mehrere Umgänge gleichzeitig erstreckende Schalendefekte werden

nur von Landschnecken ausgebessert, und zwar bildet, vom Spindelpol

ausgehend, das letzte Drittel der jüngsten Windung die äußerste Grenze

der Ersatzfähigkeit. Landschnecken, denen die ganze Schale genommen

wurde, können zwer einen Anlauf zu deren Neubildung nehmen, führen

ihn jedoch nie zu Ende. Bei den Wasserschnecken finden so umfangreiche

Reparationen, wie sie bei den Landschnecken erfolgen, nicht statt. In

allen Fällen erfolgt die Regeneration verloren gegangener Schalenteile

rascher bei den Landschnecken als bei den im Wasser lebenden. 5. Teile

des Gehäusedeckels bei Paludina werden nicht ersetzt. 5. Die an Muschel-

schalen angestellten Regenerationsversuche führten bei Anodonten mit

Sicherheit nur zur Neubildung des Periostrakums am Schalenrande. 6. Die

Schalenregenerate zeigen bei mikroskopischer Betrachtung nicht den Bau

der normalen inneren Blätterschicht, sondern besitzen ein unregelmäßiges,

scholliges Gefüge. 7. Bei den in den verschiedenen Kombinationen aus-

geführten Überpflanzungen von Schalenteilen werden diese bei Land-

und Wasserschnecken nicht als Fremdkörper abgestoßen, sondern der

Schale einverleibt.

Variation und Vererbung: Baker: Variation bei Limnaeareflexa.

— Bush: Variation bei Amplustrum amplustre. — Jean unterscheidet

bei Limnaea pereger ein- und zweifarbige Formen; bei letzteren

3 Phasen: simplex alternation, reverting alternation, arrested gra-

dation. — Nach Künkel erzeugten albine Campylaea cingulata durch

drei Generationen hindurch ausschließlich albine Nachkommen. —

Poluszynski schließt auf Grund mehrerer Beispiele, daß der Recepte-

culumgang von Helix pomatia, als der phylogenetisch jüngste Teil

des Geschlechtsapparates, ziemlich variabel ist und eine ausgeprägte

Fähigkeit besitzt, Rückschläge zu bilden. — Shull: Vererbung der

Bänderung von Helix hortensis. — Wagner findet an Gehäusen einiger

Helieiniden (Helicina, Alcadia, Eutrochatella) Formunterschiede, die er

auf Geschlechtsunterschiede zurückführt. Anatomische Untersuchungen

fehlen. — Walker (1): Variation von Polygyra albolabris. — Walter (1, 2)

gibt eine eingehende Abhandlung über die Variation von Urosalpinz

cinereus. Schalen von verschiedenen Fundorten zeigen unter sich

größere Verschiedenheiten als Schalen von demselben Fundort, die einen

Lokalcharakter erkennen lassen. Endemische Schalen variieren weniger

als von andern Orten eingeführte.

Ökologie und Ethologie: Carter (1): Paarung bei Limacina maxi-

mus. — Nach Chun sind die über die Struktur des hinteren Körper-

poles von Spirula australis gegebenen Aufschlüsse völlig unvereinbar

mit allen Vorstellungen, welche Spirula eine festsitzende Lebensweise

zuschreiben und lassen sich eher mit der Auffassung in Einklang

bringen, daß sie in größeren Tiefen eine pelagische Lebensweise

Übersicht nach dem Stoff. 53

führt. — (Colgan: Über das Anpassungsvermögen von littoralen

Mollusken. Howorth? Lebensweise von Mya arenaria. — Lefövre

und (Curtis (1)! Lebensweise der Unionidenlarven. — Hierher auch Ort-

mann (2). — Lefevre und Curtis (2) geben eine ausführliche Darstellung

des Entwicklungsganges der Unioniden. — Lo Bianco: Laichablage bei

Mollusken des Golfes von Neapel. — Hierher auch Acloque. — Rosen:

Parasitische Schnecken. — Smallwood: Eiablage bei Chromodoris zebra.

— Stafford’? Lebensweise der Austernbrut.

Parasiten: Linton findet die Rhabdocoele Turbellarie Graffilla gemelli-

para n.sp. kommensal in Modiolus plicatulus lebend.

Mollusca für 1910

(Faunistik, Systematik, Biologie).

Von

Dr. F. Haas, Frankfurt a. M.

(Biographien und Nekrologe siehe p. 71).

Publikationen.

Adams, Lionel E. (1). Observations on the pairing of Arion ater

(L.).. Journ. Conch., vol. 13, p. 116—119.

— (2). Paludestrina jenkinsi in West Sussex. Ibid., vol. 13,

p- 68.

Aleock, A. und MeArdle, A. F. Illustrations of the zoology

of the Royal Indian Marine Surveyship ‚Investigator‘“. Caleutta

1910, Teil 9, Taf. 9—13.

Allen, J. A. Shall we be ordered off the Beaches? Nautilus,

vol. 24, p. 48.

Andrussow, N. Studien über die Brackwassercardiden.

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Übersicht nach dem Stoff.

(C#. außerdem ‚Faunistik““!)

Schaden und Nutzen von Mollusken.

Lebedev berichtet über von Limaciden an Saaten angerichteten

Schaden. — Hamada teilt mit, wie Solecurtus constrictus Lam. in Japan ge-

züchtet wird. — Über die eigenartige Verwendung von Conchylien zu

einem Kunstwerke berichtet Wilckens.

Abnormitäten an Mollusken.

Cooper (1) berichtet über eine anormale Radula von Vitrea lucida,

Vayssiere (2) über einen abnormen Tentakel von Chromodoris elegans Cantr.

— Gyngell (2) erwähnt eine linksgewundene Hygromia rufescens. — Jones

u. Preston erwähnen Sinistrorsität bei Cathaica fasciola. — Rolle (3) und

Schmalz erwähnen und bilden zahlreiche Monstrositäten von Schnecken-

schalen ab. — Ein skalarides Exemplar von Planorbis umbilicatus Müll.

erwähnt Levi. — Pilsbry (4) beschreibt einen Albino von Oliva. — Jackson

(1 u. 2) hat mehrfach Clausilien mit doppelter Mundbildung gefunden. —

Wallis macht Mitteilung von einem verdrehten Exemplar von Anodonta

cygnea. — Smith (5) erwähnt ein abnormes Stück von Nautilus pompilius L.

Faunistik.

A. Binnenconchylien.

Kobelt (4) stellt die Agnathen in einem Kataloge zusammen. Er hat,

trotz Pilsbrys Aufteilung dieser Abteilung, den Namen Agnatha beibehalten

und die von Pilsbry als in konvergenter Weise aus verschiedenen Wurzeln

entstandenen Rhytididae, Streptaxidae, Oleacinidae und Testacellidae als

Familien daruntergestellt. Eine erschöpfende geographische Übersicht folgt

der Aufzählung der Arten. — In einem großen Sammelreferate berichtet

Simroth (6) eingehend über die Verbreitung der Land- und Süßwasser-

Faunistik. 18

gastropoden. — Scharff (2) erwähnt in seiner Abhandlung über einen sehr

wahrscheinlichen Landzusammenhang zwischen Europa und Nordamerika

die Molluskenvorkommnisse, die für seine Ansicht sprechen.

Palaearktisches Gebiet.

Von Kobelt-Rossmässlers Iconographie der europäischen Land- und

Süßwassermollusken ist der Schluß (Lieferung 5—6) des XV. Bandes und

der Anfang (Lieferung 1—2) des XVII. Bandes erschienen. — E. Caziot

behandelt in zahlreichen kleinen Arbeiten die Verbreitung und Systematik

einzelner paläarktischer Pulmonatengattungen.

England: Sikes (1) zählt die Binnenmolluskenfauna von Monmouth-

shire und Brecknockshire, Philips (2) der Insel Inishmore, Longstaff

(1 u. 2) von Norddevonshire, Vaughan von Breconshire und Radnorshire

sowie von Carmarthenshire, Tomlin (2) von Clogham (Kerry) auf. — Mit

der Verbreitung der Pisidien, namentlich von Pisidium supinum, befassen

sich Oldham (3), Overton, Cooper (4) und Woodward (1 u. 2). Eine neue

Varietät von Helix aspersa beschreibt Taylor (1). Derselbe (2) erwähnt

eine linksgewundene Helicella caperata. — Standen berichtet über das Vor-

kommen von Pomatias elegans in Lancashire, Jackson (5) über das von

Pyramidula rotundata var. alba in Westmoreland und (4) über Vitrea lucida

in Grange-over-Sands. — Adams (2) erwähnt Paludestrina jenkinsi in

Westsussex, Vaughan Vertigo pygmaea in Pembrokeshire. — Über englische

Nacktschnecken handeln die Arbeiten von Spence, Oldham (1 u. 2) und

Meyriek. — Die Verbreitung von Valvata macrostoma in England behandeln

Kennard u. Stelfox. — Neue Fundorte von Vertigo pusilla und V. alpestris

nennt Farrer, von Hygromia revelata Tomlin (3). Boult weist auf die

irrtümliche Angabe von Azeca tridens in East Reading hin. — Neue Ver-

breitungsangaben verschiedener Binnenmollusken geben: Sikes (3) für

die Gegend von Rochester, Masefield für Staffordshire, Jackson (3) für

Shropshire, Hollis für Northampton, Barclay für Perthshire, Booth,

Musham, Saunders und Woods für Yorkshire, Vaughan für Cardiganshire

und Tomlin (4) für Herefordshire. — Haas (2) stellt das Vorkommen von

Pseudanodonta elongata in der Themse fest, weist nach, daß die von Jackson

und Kennard (1909) subfossil im Themsegebiet gefundene Margaritana in

Wirklichkeit Unio sinuatus ist und bespricht die gesamte Najadenfauna

der Themse. — Irland ist reichlich behandelt. Über irische Mollusken-

vorkommnisse berichten Stelfox (2), Stelfox u. Welch und Fogerty (3 u. 4).

Fogerty (1 u. 2) erwähnt Carychium minimum bei Limerick und Stelfox (3)

stellt die Verbreitung von Bythinia leachiü in Irland fest. —

Frankreich: Caziot und Fagot geben eine Ergänzung ihres im Jahre 1909

veröffentlichten Verzeichnisses der französischen Döpartementsfaunen. —

Caziot(12) beschreibt eine neue Varität von Helix arbustorum aus den Seealpen.

— Derselbe (1) beschreibt in einer Binnenmolluskenfauna des Departements

Yonne einige neue Varietäten von Limnäen und gibt in (4) die erstmalige

Abbildung von Bythinia cazioti Loc. — Margier (1 u. 2) berichtet über

Clausilia leucostigma Ziegler in Nimes. — Germain (2) gibt die Unioniden-

fauna der Normandie, in der er alle von der „nouvelle Ecole‘ aufgestellten

Unionen und Anodonten einzieht. —

74 Mollusea für 1910.

Deutschland: Über nassauische Molluskenvorkommnisse berichtet

Lindholm (1), Honigmann (1) zählt Mollusken aus dem Teutoburger Walde,

Hilbert (3) aus Ostpreußen auf. — Eine vorzügliche Molluskenfauna der schwä-

bischen Alb, nach Lebensgemeinschaften gegliedert, gibt Geyer (2), der in (4)

auch eine Zusammenstellung der in den altdiluvialen Neckarsanden von Mauer

gefundenen fossilen Mollusken veröffentlicht. — Ferner stellt Geyer (1) inkri-

tischer Betrachtung die deutschen Pupilla-Arten zusammen. — Müller (1) be-

richtet über Schnecken und Muscheln von Grätz, Prov. Posen. — Honig-

mann (2) zählt die Wassermollusken der Marschgräben in Schleswig-

Holstein, Clessin (4) die am Lechrain bei Augsburg lebenden Schnecken-

arten auf. — Über die Ausbeute einer Sammelreise ins östliche Erzgebirge

gibt Vohland (2) Mitteilung. — C. Boettger gibt Fundorte der in Deutsch-

land bisher fast unbekannt gebliebenen Alexia myosotis. — Szielasko be-

spricht das Vorkommen von Helix pomatia in Ostpreußen, Spriek das von

Amphipiplea glutinosa in Breslau, Schröder das von Limnaea glabra bei

Berlin. — Leschke gibt eine Liste der bei der Hamburgischen Elbunter-

suchung erbeuteten Süßwassermollusken. — Wüst (1) beschreibt Azeca

schulziana aus dem deutschen Diluvium. — Clessin (5) beschreibt eine neue

Bythinella und eine neue Lartetia aus dem Alzauswurf bei Burgkirchen. —

Müller (2) beschreibt eine neue Varietät von Anodonta fragillissima, Haas

(7) neue Lokalformen der einheimischen Unionen. — Derselbe (7) weist

nach, daß Unio musivus Spengler = Unio batavus Lam ist, vor welch

letzterem er mehrjährige Priorität besitzt. — Israel beschäftigt sich in

(1 u. 2) mit den Najadenfaunen der Weißen Elster und des Weidagebietes

in Thüringen. — Clessin erörtert das Vorkommen von Unio batavus in der

Umgebung von Regensburg (7) und das von Pseudanodonta complanata in

der oberen Donau (6). Wüst (3) berichtet über weitere Funde von Unio

sinuatus in den alluvialen Kiesen des Saaletales. — Buchner macht Be-

merkungen über einheimische Unioniden. — Kobelt (5) behandelt die

batavoiden Umionen des Hochrheines und der obersten Donau und be-

schreibt neue Lokalformen von Unio consentaneus. —

Schweiz: Eine sorgfältig durchgearbeitete, gut illustrierte Fauna

der Kantone Neuchätel, Bern, Freiburg und Waadt gibt Godet (2). —

Piaget erwähnt Xerophila obvia im Kanton Waadt. — Zschokke berichtet

über die Tiefenfauns der hochalpinen Seen. — Kobelt (5) beschäftigt sich

mit den batavoiden Unionen der Schweiz und beschreibt verschiedene

neue Lokalformen. —

Niederlande: Eine Liste der Binnenmollusken von holländisch

Friesland gibt Sikes. — Franz erwähnt das Vorkommen von Helix aspersa

bei Vlissingen.

Österreich-Ungarn: Babor und Novak geben Nachträge zu ihrem Ver-

zeichnisse pottertiärer böhmischer Mollusken. — Novak berichtet über

posttertiäre böhmische Mollusken. — Smith (3) gibt eine Liste der von

ihm bei Cortina in den südlichen Kalkalpen gefundenen Mollusken. —

Simroth (2) beschreibt in einer bemerkenswerten Arbeit mehrere neuere

Formen von Amalia, Arion und Agriolimazx aus den Südalpen und erwähnt,

unter vielen anderen interessanten Beobachtungen, die Mimiery eines

Limax mazimus nach Vipera aspis. Die Südalpen erweisen sich als

Faunistik. 75

Schöpfungszentrum für Nacktschnecken und besitzen diese Eigenschaft,

nach dem Verfasser, im Anschlusse an dessen Pendulationstheorie, durch

ihre Lage unter einem Schwingungskreise. — Kormos (3) berichtet über

neue Fundorte ungarischer Heliciden, Köhler über einzelne Schnecken auf

der böhmischen Seite des Riesengebirges. — Ehrmann beschäftigt sich

mit dem Formenkreise der Campylaea phalerata; er erläutert ihren Ver-

breitungsbezirk, beschreibt einige neue Lokalformen und geht namentlich

auf lokale Umbildung durch Höhenlage, Untergrund u. dgl. ein. — Clessin

(5) gibt die Beschreibung einiger neuer Bythinellen, Lartetien und eines

Lithoglyphus aus Ungarn und Bosnien. — Wagner (1) beschreibt eine neue

Vitrella aus dem Mürzgenist in Steiermark und (2) einige neue Acme aus

Dalmatien. — Kormos (1) weist das diluviale Vorkommen von Daude-

bardia langi und (2) von Succinea schumacheri und Limnophysa diluviana

in Ungarn nach. — Wüst (2) berichtet über diluviale Schnecken von Kron-

stadt in Siebenbürgen. — Kobelt (5) beschreibt neue Formen von Unio

consentaneus aus Oberösterreich, Kärnthen, Ungarn und Bosnien. —

Italien: Caziot (3) bespricht einige italienische Arten von Eulota und

italienische Formen aus dem Formenkreise von Ottelius orsinii. —

Spanien : Smith (1) gibt die Aufzählung der Binnenmollusken der

Gegendvon Cadix, Bullen die Liste der von ihm bei Manresa in Catalonien ge-

fundenen Schnecken. — Gude(1) beschreibt eine neue spanische Helicodonta.—

Balearen: Bullen berichtet über diluviale, alluviale und recente

Schnecken von Mallorca. —

Rußland: Skorikov veröffentlicht die Liste der im Ladogasee

und in der Newa lebenden Binnenmollusken, die anläßlich der Unter-

suchung des Ladogaseewassers auf seine Trinkbarkeit gefunden wurden. —

Lindholm beschreibt (2) eine neue Retinella aus der Krim und (3) eine neue

Form der Alaea substriata aus Nordrußland. — Derselbe (4) berichtet über

das Vorkommen von Physa acuta in Rußland. —

Balkanhalbinsel: Nägele beschreibt eine neue Clausilienform von

Konstantinopel. un:

Kleinasien und Ionische Inseln: Nägele gibt die Beschreibungen

von Xerophila peregrina von Cypern, von Xerophila cappadocica aus

Kappadozien, von Pomatia engaddensis aus Palästina und verschiedener

Orcula- und Petraeus-Arten aus Mesopotamien. — Hesse (4) berichtet über

einige kleinasiatische Schnecken und beschreibt einen neuen kleinasiatischen

Petraeus. —

Zentralasien: Simroth (4) gibt die Beschreibung mehrerer neuer

Arten der Nacktschnecken- und Raubschneckengattungen Limaz,

Agriolimax, Gigantolimax und Hwyrcanolestes aus Turkestan. —

Persien: Nägele beschreibt neue Arten von Pomatia und Subzebrinus,

de Morgan von Carychium, Kobelt (1) von Levantina und Simroth (4)

von Limax. — Kaschmir: Ein neues Pisidium beschreibt Weber.

Arabien: Neue Arten von Ennea, WVitrina und sSubulina be-

schreibt Thiele (2). — Sibirien: Dybowski (2) berichtet über die Choanom-

phalus-Arten des Baikalsees und über ihre Synonymie und bildet ver-

schiedene zum ersten Male ab. — Kobelt (5) bildet einen großen Teil der

von Lindholm 1909 aus dem Baikalsee beschriebenen Gasteropoden ab. —

76 Mollusca für 1910.

Nordafrika: Caziot und Fagot geben einen schon bei Frankreich

erwähnten Zusatz zu ihrer 1909 erschienenen Liste der Faunen der

französischen Departements und der nordafrikanischen französischen

Kolonien. — Germain (3) beschreibt eine neue Eremia aus Marokko. —

Pallary behandelt die nordafrikanischen Leucochroa, für die er den neuen

Namen Albea einführt, monographisch. — Atlantische Inseln: Pacheco

erwähnt in einer Arbeit über die Geologie der Canarischen Inseln das Vor-

kommen subfossiler Landschnecken.

Tropisches Asien und Indonesien.

China: Bavay und Dautzenberg beschreiben neue Arten und Varietäten

von Melania, Lithoglyphus und Jullienia. — Jones und Preston erwähnen

das Vorkommen einiger Eulota, Helicarion, Succinea und Corbicula und

beschreiben eine neue Succinea, sowie mehrere neue Arten von Limnaea.

— Haas (3 u. 5) beschreibt neue Arten von Nodularia und Parreyssia aus

China und eine neue Nodularia aus Hainan. — Tibet: Weber gibt die Be-

schreibung einer neuen Varietät von Limnaea auricularia. — Japan: Haas

(5) beschreibt eine neue Subspecies von Anodonta lauta Marts. — Formosa:

Haas (5) gibt die Beschreibung einer formosanischen Lokalform der Cristaria

discoidea L. — Sachalin: Einen neuen Ptychorhynchus beschreibt Haas (5).

— Hinterindien: Bavay und Dautzenberg beschreiben neue Arten und

Varietäten von M elania, Fairbankia und Planorbis aus französisch Hinter-

indien. — Aus Tonkin beschreibt Kobelt (3) ein neues Myzxostoma und (6)

einen neuen Pierocyclus, Rolle (2) eine neue Garnieria, Haas (5) eine neue

Cristaria, aus Mekong Haas (3) eine neue Hyriopsis. — Presten (3) gibt

die Beschreibung einer neuen Plectotropis aus Siam. — Vorderindien:

Annandale erwähnt das Vorkommen von Cryptaustenia succinea in Britisch

Sikkim. — Preston (3) beschreibt einen neuen Opeas aus Niederbirma. —

Sowerby (3) gibt in seiner wertvollen Arbeit über die Ampullarien die Be-

schreibung einer neuen Art aus Ceylon. — Molukken: Rolle (1) beschreibt

eine neue Corasia von der Insel Tangoelandang. — Philippinen und Palawan;

Haas (3) stellt das neue Najadengenus Pressidens auf und beschreibt eine

neue Art davon von Palawan. — Kobelt u. &. Winter-v. Möllendorff bringen

drei neue Hefte (8—10) ihrer Landmollusken der Philippinen, in denen

viele Möllendorffsche Cochlostylen erstmalig abgebildet werden.

Australien.

Neu-Guinea: Fulton (1) berichtet über zwei Papuina-Arten und be-

schreibt in einem Nachtrage (2) neue Arten und Varietäten von Planispvra,

Papuina, Calycia und Leptopoma aus Holländisch Neu-Guines. — Von

ebendort beschreibt Preston (4) eine neue Vivipara. — Aus Deutsch-Neu-

Guinea beschreibt Kobelt (6) einen neuen Pterocyclus. — Gude (2) zählt einige

Helieiden aus Neu-Guinea auf und beschreibt eine neue Papuina. — Haas

(3) gibt die Beschreibung einer neuen Art von Microdontia. — Fergusson

Island: Wagner (4) beschreibt eine neue Varietät von Palaeohelicina. —

Australien: Smith (4) beschreibt einen neuen Thersites aus dem südlichen

Zentralaustralien. — Neu-Seeland: Suter (1) zählt eine Reihe von fossilen

Mollusken auf, die noch rezenten Arten angehören. — Salomons-Inseln:

Faunistik. Pol

Dautzenberg (3) gibt eine Liste der bisher bekannten Binnenmollusken. —

Wagner (4) beschreibt eine neue Palaeohelicina. — Sandwich-Inseln:

Borcherding gibt eine Monographie der auf Kauai lebenden Gattung Oarela,

mit Beschreibung einiger neuer Varietäten. — Barabora-Insel: Wagner (4)

beschreibt eine neue Aphanoconia. — Marchesas-Inseln: Eine neue Varietät

von Orobaphana beschreibt Wagner (4). — Samoa: Wagner (4) gibt die

Beschreibung einer neuen Orobaphana. — Neu-Caledonien: Wagner (4)

beschreibt eine neue Aphanoconia.

Tropisches Afrika.

Abessinien und Nilgebiet: Preston (5) beschreibt neue Arten der

Gattungen Helicarion, Ennea, Helicella, Homorus, Limicolaria, Achatina

und Buliminus, sowie die neue Gattung Itiopiana aus Abessinien. —

Cockerell gibt die Beschreibung einer neuen Veronicella vom oberen Nil.

— Tomlin (1) beschreibt neue Arten von Buliminus (Cerastus), Zebrina

und Ennea aus Britisch Somaliland. — Eine neue Nodularia aus dem Nil

beschreibt Haas (3). und Zentral-Afrika: Preston beschreibt in

mehreren Arbeiten eine große Anzahl neuer Binnenmollusken, deren Art-

berechtigung nicht immer feststeht. In (1) werden die Diagnosen neuer

Arten von Gübbulina, Ennea, Martensia, Thapsia, Phortion, Rhachis,

Buliminus, Achatina, Curvella, Homorus, Aferulus und Tropidophora zus

Britisch Ostafrika geboten, wobei Phortion als neuer Name für den ander-

weitig vergebenen Phasis aufgestellt wird. In der gleichen Arbeit werden

neue Arten von Martensia und Curvella aus Deutsch-Ostafrika und die

neue Gattung Biomphalaria mit einer Art vom Albert-Edward-See be-

schrieben. In (5) stellt Preston neue Arten von Unio, Mutela und Spatha

aus Britisch-Zentral-Afrika und «inen neuen Unio aus dem Tanganyika-

See auf. — Neue Nacktschnecken der Gattungen Bukobia vom Victoria

Nyanza und, Urocyclus, Atoxon und Atrichotoxon n. gen. beschreibt Sim-

roth (2). — Sowerby (3) gibt die Beschreibung einer neuen Ampullaria aus

Uganda und Germain (1) einer neuen Mutela vom Albert-See. — West-

Afrika: Hidalgo (1) gibt eine Faunenliste aus Spanisch-Guinea. — Preston

3) stellt neue Arten von Helicarion, Thapsia, Subulina und Limnaea aus

dem Belgischen Kongogebiete auf. — Derselbe (7) beschreibt neue Arten

und Varietäten der Gattungen T'hapsia, Homorus, Cerastus, Pseudoglessula,

Aferulus und Ennea aus Angola. — Germain setzt seine prächtigen Arbeiten

über die Molluskenfauna des äquatorialen Afrika fort. Er beschreibt in

(1) aus Französisch West-Afrika neue Arten von Unio (Nodularia), des-

gleichen aus dem Tschad-See, und einen neuen Helicarion aus dem Kongo-

staate, in (4) gründet er die neue Pulmonatengattung Thomeonanina von

der Insel S. Thome. — 0. Boettger (2) gibt einen Nachtrag zu seiner Mol-

luskenliste von Kamerun, in dem er neue Arten und Varietäten von Ennea

und Streptostele aufstellt. — Derselbe (3) berichtet über einige Mollusken

vom Tschadsee, die seiner Ansicht, der Tschad sei vom Nil her infauniert

worden, neue Stützen geben. — Eine neue Spatha aus Kamerun beschreibt

Walker (2). — Südafrika: 0, Boettger (1) beschäftigt sich in einer größeren,

sehr gehaltvollen Sammelarbeit mit den Binnenmollusken von Deutsch-

Südwestafrika. Er stellt die Beziehungen zu der Molluskenfauna des Kap-

718 Mollusca für 1910.

landes fest und beschreibt mehrere neue Arten und Varietäten; so einen

Ancylus aus Betschuanaland, Arten von Achatina, Ena und Planorbis aus

der Kalahari und von Zonitoides und Limnaea aus dem Damaraland. —

In ähnlicher Weise hat Connolly äußerst gründlich die südafrikanischen

Stenogyrinen zusammengestellt und neue Arten beschrieben: von Euonyma

und Curvella aus Natal, von Curvella aus dem Zululande, von Euonyma

aus Transvaal und von Opeas und Curvella aus der Kapkolonie. — Collinge

hat die Nacktschnecken von Natal monographisch behandelt. — Fulton

(3) beschreibt eine neue Dorcasia aus der Kapkolonie, Preston (3) einen

neuen Unio aus dem Mashonalande. — Comoren: Simroth (2) gründet die

neue Nacktschneckengattung Comorina und beschreibt von ihr und von

Urocyclus neue Arten.

Amerika.

Vereinigte Staaten: Berry gibt eine Molluskenfauna von Unity,

Maine, Baker (4) von Unionville, Conn. — Henderson zählt die von ihm

i. J. 1909 in Nordwestcolorado gesammelten Mollusken auf. — Hannibal

zählt die Valvatiden der nordwestlichen Staaten auf und fügt einen recht

brauchbaren Bestimmungsschlüssel bei. — Vorkommen einzelner Arten

stellen fest: Johnson (2) für Vermont, Hanna für Virginia, Sterki (4) für

Kentucky, Strecker (1 u. 2) für Texas. — Baker (3) beschreibt eine neue

Varietät von Limnaea stagnalis aus Michigan und Wisconsin, und (5) von

Limnaea emarginata aus Wisconsin. — Eine neue Amnicola aus Florida

beschreibt Dall (6). — Walker (1) berichtet über das Vorkommen von

Segmentina christyi in Süd-Dakota. — Sterki (3) gibt die Beschreibung

eines neuen Sphaerium aus Indiana und (1) eines neuen Musculium aus

Michigan. — Walker (8) stellt eine neue Art von Truncilla aus Tennessee

auf, Frierson (1) von Anodonta aus Süd-Dakota. — Vanatta (3) berichtet

über Unioniden aus Südost-Arkansas und Louisiana, Walker (6) stellt den

Verbreitungsbezirk von Margaritana margaritifera in Nord-Amerika fest.

— Mexiko: Pilsbry (6) gibt einige Notizen über die Gattung Pierides. —

Derselbe (2) stellt neue Arten von Cochlicopa, Amnicola und Somatogyrus

auf und beschreibt (3) die neue Gattung Lithasiopsis mit zwei neuen Arten.

— Dall (7) beschrsibt neue Arten der Gattungen Eucalodium (Anisospira)

und Epiphragmophora (Trichodiscina). — Die Beschreibung einer neuen

Helicina gibt Wagner (4). — Zentral-Amerika: Wagner (4) beschreibt

neue Helicina-Arten aus Guatemala, Costa Rica und Nicaragua. — West-

indien: Pilsbry (2) stellt eine neue Subspecies von Lymnaea cubensis aus

Barbados auf, Wagner (4) neue Helicina-Arten von Guateloupe, Jamaica

und Haiti. — Brasilien: v. Ihering (2) gibt eine sehr erwünschte Zusammen-

stellung südamerikanischer Heliciden mit Bestimmungsschlüssel und be-

schreibt eine neue Unterart von Helicogena aus Brasilien. — Strebel be-

schreibt eine neue Untergattung und eine neue Art von Thaumastus,

Wagner (4) eine neue Helicina. — v. Ihering (1) stellt die brasilianischen

Najaden zusammen, beschreibt neue Arten und Unterarten von Fossula,

Tetraplodon, Diplodon, Mycetopoda und Glabaris, gibt Bestimmungsschlüssel

für die einzelnen Gattungen und zieht aus deren Verteilung in den bra-

silianischen Strömen wichtige zoogeographische Schlußfolgerungen. —

Faunistik. 9

Columbien: Wagner (4) beschreibt eine neue Helicina. — Peru: Strebel

stellt die neue Gattung Scholvienia mit einer neuen Art auf und Wagner (4)

beschreibt eine neue Art und mehrere neue Varietäten von Helicina. —

Argentinien: v. Ihering (2) beschreibt in seiner vorhin schon erwähnten

Arbeit über die Heliciden Südamerikas neue Arten und Unterarten von

Helicogena und Epiphragmophora. — Falkland-Inseln: Cooper und Preston

beschreiben eine neue Limnaea.

B. Marine Mollusken.

Allgemeines: Simroth (5) berichtet in einem ausführlichen

Sammelreferate über neuere, die Verbreitung der marinen Gasteropoden

betreffende Arbeiten. — Derselbe (7) gibt Beiträge zur Kenntnis der

geographischen Verbreitung der Neritiden. — Smith (3) stellt die süd-

afrikanischen marinen Mollusken, aus dem Atlantischen und dem Indi-

schen Ozean, zusammen.

Atlantischer Ozean.

England, Irland, Kanalinseln: Butterfield gibt eine Liste der marinen

Mollusken von Essex. — Hargreaves berichtet über einzelne Arten von

Yorkshire und der Doggerbank, Simpson erwähnt einige Vorkommnisse

in der Nordsee und im Shetland-Faröer-Kanal und beschreibt eine neue

Varietät von Pecten von dort. — Sikes (2) erwähnt das Vorkommen von

Crepidula fornicata und Petricola pholadiformis in Medway, Gyngell (1)

ebenfalls das von Crepidula fornicata in Lincolnshire, Cooper (2) das von

Assemania grayana in Ost-Suffolk. — Scharff (1) berichtet über die Fort-

schritte im Studium der irischen marinen Mollusken. — Tanner nennt

Hermoea dentritica von Guernsey. — Nordsee: Schrader bearbeitet die

Lamellibranchiaten der Nordsee. — Ostsee! Das Vorkommen von Rissoa

parva in Finnland erwähnt Reuter. — Spanien: Maxwell Smith (1) gibt

eine Faunenliste des Golfes von Cadix. — Hidalgo (2) berichtet über einige

Arten der spanischen marinen Fauna. — Mittelmeer: Kwieiniewski be-

richtet über neuentdeckte Larven eines mittelmeerischen gymnosomen

Pteropoden, für den er die Gattung Thalassopherus aufstellt. — Gregorio

gibt Bemerkungen über einige Arten von Cerithium und Triphoris. —

Bullen veröffentlicht eine marine Molluskenfauna von Mallorca. — West-

Afrika: Dautzenberg (1) beschreibt eine Reihe neuer Arten und Varietäten

der Gattungen Genotia, Mangilia, Marginella, Oliva, Dorsanum, Tro-

phonopsis, Modulus, Torinia, Crepidula, Natica, Actaeopyramis, Gibbula,

Cyclostrema, Dentalium, Crenella, Cardita, Lucina und Loripes, und weist

die bisher nur fossil (aus dem Tertiär) bekannte Brocchia sulcosa Br. recent

nach. — Sowerby (2) beschreibt neue Donovania und Fissurella. —

Spanisch Guinea: Hidalgo (1) zählt die marine Molluskenfauna auf. —

Südwest-Afrika: Eine neue Macoma beschreibt Thiele (4). — Kap-Kolonie:

Smith (3) stellt neue Arten von Mangilia, ?Daphnella, ?Cerithiopsis,

Marginella, Rissoa, Scissurella und Schismope auf. — Südlicher Atlantischer

Ozean: Hoyle (2) beschreibt neue Arten von Polypus und Moschites, Chun

(1) von Pierygiotheutis und Brachiotheutis. — Falkland -Inseln: Neue Arten

80 Mollusca für 1910.

und Varietäten von Chilina, Photinula, Modiolarca, C’yamium, Malvinasia,

Davisia und Psephis beschreiben Cooper und Preston. — West-Indien:

Thiele (3) liefert einen sehr schätzenswerten Beitrag zur Molluskenfauna

Westindiens, in dem er neue Arten von Bornia und Cardium von Barbados,

von Thetys von St. Thome und von Ischnochiton von Tortugas aufstellt. —

Mellvill (2) beschreibt einen neuen Latirus. — Bermuda-Inseln: Small-

wood berichtet ausführlich über Chromodoris zebra und beschreibt neue

Arten von Facelina und Polycerella.

Indischer Ozean.

Aleock und MeArdle berichten eingehend über die vom ‚Investigator’’

erbeuteten marinen Mollusken und bilden viele Arten erstmalig ab. —

Vorderer Indischer Ozean (Persischer Golf bis Ceylon): Melvill (1 u. 3)

beschreibt zahlreiche neue Arten aus dem Persischen Golf, dem Golf von

Oman, von der Mekran-Küste, von Karachi, Bombay und Astola Island.

— Bengalischer Meerbusen: Eliot (2) berichtet über einzelne Arten von

den Andamanen und beschreibt eine neue C’uthona und eine neue T'hordissa.

— Preston (3) stellt neue Arten von Drillia, Nassa, Pteronotus, Martesia,

Pandora, Avicula, Dolium und Modiola (letztere aus Lake Chilka) auf. —

Südwestlicher Indischer Ozean: Eliot (1) beschreibt eine neue Miamara

von den Seychellen, eine neue Phyllidiopsis von den Amirante-Inseln, eine

neue Ceratophyllidia von Coetivy Island und eine neue Pieraeolidia von

Saya de Malha. — Madagaskar: Lamy zählt die von F. Geay, dem ver-

storbenen Sammler des Pariser Naturhistorischen Museums, in Madagaskar

gesammelten marinen Mollusken auf. — Natal: Eliot (3) berichtet über

die Nudibranchiaten der Küste von Natal und beschreibt eine neue T'hor-

dissa. — Smith (3) beschreibt neue Arten von Leucotina, Clathurella, Colum-

tella, Coralliophila, Triphora, Turritella, Epitonium, Eulima, Calliostoma,

Cyclostrema, Haliotis, Sphenia, Saxicava und der neuen Gattung Olistoconcha.

— Halmahera: Dautzenberg (2) gibt eine Liste mariner Mollusken von

Djilolo auf Halmahera. — Nias-Kanal: Chun (1) beschreibt einen neuen

Chirotheutis. — Nord-Australien: Sowerby (1) gibt die Beschreibung einer

neuen Voluta. — West-Australien: Eine neue Voluta beschreibt Cox. —

Süd-Australien: Iredale (1) stellt eine neue Art von Plaxiphora auf und

tauft einen Chiton um. — Australien: Sowerby (2) beschreibt eine neue

Art von Phenacolepas.

Stiller Ozean.

Japan: Sasaki berichtet über dekapode Cephalopoden und Hatta

und Sasaki geben eine Liste der marinen Schnecken und Muscheln von

Hokkaido. — Südsee: Dautzenberg (3) gibt ein Faunenverzeichnis der

marinen Mollusken von den Salomons-Inseln. — Iredale (2) erwähnt einige

Arten von den Kermadee-Inseln. — Tomlin (5) berichtet über die Nomen-

klatur einiger Formen von Lifu. — Neu-Seeland: Iredale (1) beschreibt

einen neuen Chiton. — Suter (3) gibt Bemerkungen über Ornatochiton

marmoratus und (2) über die neuseeländischen Chitonen im allgemeinen. —

Queensland: Preston (8) beschreibt Varietäten von Cypraea. — Mexiko:

Dall (3) beschreibt die neue Gattung Bernardina mit der neuen Art bakeri.

Faunistik. Systematik. -81

— (Californien: Dall (1) gibt die Beschreibung neuer Arten von Hindsia,

Cymatium und Solariella aus dem Golf von Californien. — Derselbe (2)

beschreibt neue Olivella, Pomaulax und Pachypoma und (8) gibt Notizen

zu einigen kalifornischen Formen. — Alaska und Puget-Sound: Bartsch

(2). beschreibt neue Arten von Leptogyra, Alvania, Onoba und Odostomia

aus Alaska, und Baker erwähnt einige Vorkommnisse im Puget- Sound

und in Alaska.

Antarktischer Ozean.

Chun (1) stellt die neue Gattung Teuthowenia mit einer neuen Art auf.

Systematik.

A. Amphineura.

Chiton hullianus nov. nom. für C. torri Hedley & Hull. Iredale (1), Proc.

malac. Soe., vol. 9, p. 103. — suteri n. Sp., Neu-Seeland, id., p. 102.

Tschnochiton hartmeyeri n. sp., Tortugas. Thiele (3), Zool. Jahrb., Suppl. 11,

DILL.

Plaxiphora matthewsi n. sp., Süd-Australien. Iredale (1), Proc. malac. Soc.,

#01. 9, p: 99:

B. Cephalopoda.

Chirothauma subgen. nov. für Ohirotheutis (Chirothauma) imperator n. SP«,

Nias-Kanal. Chun (1), Ergebn. d. Deutsch. Tiefsee-Expedition, vol. 18,

p- 241.

Moschites nigra n. sp., Südatlantischer Ozean. Hoyle (2), Denkschr. med.

Ges., Jena, vol. 16, p. 262.

Polypus schulizei n.sp., Südatlantischer Ozean. Hoyle (2), Denkschr.

med. Ges., Jena, vol. 16, p. 261.

Pterygiotheutis gemmata n.sp., Südatlantischer Ozean. Chun (1), Ergebn.

d. Deutsch. Tiefsee-Expedition, vol. 18, p. 108.

Teuthowenia nov. gen. Chun, steht Cranchia nahe. Typus: T. antarctica

n.sp., Antarktischer Ozean. Chun (1), Ergebn. d. Deutsch. Tiefsee-

Expedition, vol. 18, p. 376.

C. Gastropoda.

I. Prosobranchiata.

Acme kobelti n. sp., Dalmatien. Wagner (2), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32,

p- 187, Taf. 16, Fig. 17—18. — wilhelmi n. sp., Dalmatien. id., p. 187,

Taf. 16, Fig. 19— 20.

Actaeopyramıs grwveli n.Sp., West-Afrika.. Dautzenberg (1), Actes soc.

linn. Bordeaux, vol. 64, p. 139, Taf. 3, Fig. 6—7.

Aferulus intermedius var. angolensis n. var., Angola. Preston (7), Proc.

malac. Soc., vol. 9, p.55. — lugubris n.sp., Britisch Ost-Afrika.

Preston (1), Ann. Mag. Nat. Hist., 8. Ser., vol. 6, p. 535, Taf. 9, Fig. 27.

Agatha vestalis n. Sp, Bombay. Melvill (1), Proc. Malae. Soc., vol. 9, p. 178,

Taf. 4, Fig. 5.

Alvania bakeri n.Sp., Alaska. Bartsch (2), Nautilus, vol. 23, p. 137.

Archiv für Naturgeschichte 6

1911. VI. 1.

82 Mollusca für 1910.

Amnicola crosseana n.Sp., Mexiko. Pilsbry (2), Nautilus, vol. 23, p. 98.

Ampullaria alucinans n. Sp., Ceylon. Sowerby (3), Proc. Malac. Soc., vol. 9,

p. 63, Textfig. — nigricans n.sp., Uganda. Ibid., vol. 9, p. 63,

Textfig.

Aphanoconia (Sphaeroconia) minutissima n. sp., Neu-Caledonien. Wagner

(4), Martini Chemnitz, Syst. Conch. Cab., IX 18II, p. 218, Taf. 43,

Fig. 14— 16. — rusticana n. sp., Borabora Island. Ibid., p. 220, Taf. 44,

Fig. 8-10.

Bythinella conica n.sp., Alz, Bayern. Clessin (5), Nachrbl. d. D. malak.

Ges., vol. 42, p. 71. — tumidula n. sp., Bosnien. Ibid., p. 72. — kormosi

n. Sp, Ungarn. Ibid., p. 73.

Calliostoma crossleyae n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govert. Mus.,

vol. 2, p. 205, Taf. 7, Fig. 17.

Cerithiopsis eutreta n.sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 10, Taf. 2, Fig. 16. — henjamensis n.sp. Mel-

vill, ibid., p. 10, Taf. 2, Fig. 17. — Cerithiopsis (Seila) ochrolivens

n.sp., Karachi. Melvill, ibid., p. 11, Taf. 2, Fig. 18. — C. ?. peilei

n. sp., Kap Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus., vol. 2, p. 196,

Taf. 7, Fig. 9, 9a.

Cerithium trigonostomum n. Sp., Mekran-Küste. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 10, Taf. 1, Fig. 15.

Clathurella westcotti n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Nat. Govt. Mus., vol. 2,

p: 190, Taf. 7, Fig. 3.

Cochliopa compacta n. sp., Mexiko. Pilsbry (2), Nautilus, vol. 23, p. 99. —

riograndensis n.sp. Pilsbry, ibid., p. 99. — pieta n.sp. Pilshry,

ibid., p. 100.

Columbella shepstonensis n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus.,

vol. 2, p. 193, Taf. 7, Fig. 6. — CO. (Seminella) salutaris n. SP., Bombay.

Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 11, Taf. 2, Fig. 19.

Ooralliophila fragosa n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus., vol. 2,

p- 194, Taf. 7, Fig. 7.

Crepidula fornicata L. var. tigrina n. var., West-Afrika. Dautzenberg (1),

Actes Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 130. — 0. f. var: radiata n. var.

Ibid., p. 130. — CO. f. var. albida n. var. Ibid., p. 130.

Crosseia alliciens n. Sp., Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 5, Taf. 1, Fig. 7.

Oyclostrema annuliferum n. Sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc.

Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 149, Taf. 3, Fig. 10—12. — pellucida n. SP.,

Natal. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus., vol. 2, p. 206, Taf. 7, Fig. 18

— 18b. — tredecimlineatum n. sp. Golf von Oman. Melvill (3), Ann.

Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 2, Taf. 1, Fig. 1. — C. (Tubiole)

nugatorium n. Sp., Mekran-Küste. Melvill (3), ibid., p. 3, Taf. 1, Fig. 2.

Cymatium adairense n.sp., Golf von Kalifornien. Dall (1), Nautilus,

vol. 24, p. 33.

?Daphnella minuscula n. sp., Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt.

Mus., vol. 2, p. 191, Taf. 7, Fig. 4.

Dolium varicosum n. sp., Orissa-Küste. Preston (3), Record Indian Mus.,

vol. 5, p. 34, Textfig.

Systematik. 83

Donovania fasciata n. Sp., West-Afrika. Sowerby (2), Proc. Malac. Soc.,

vol. 9, p. 65, Textfig. — tomlini n. sp., Persischer Golf. Melvill (3),

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 15, Taf. 2, Fig. 26.

Dorsanum gruveli n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Act. Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 102, Taf. 2, Fig. 7—8.

Drillia ganjamensis n. sp., Bengalischer Meerbusen. Preston (2), Record

Indian Mus., vol. 5, p. 117, Textfig.

Elusa enelata n. sp., Bombay. Melvill (1), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 179,

Taf. 4, Fig. 7.

Epitonium macromphalus n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus.,

vol. 2, p. 203, Taf. 7, Fig. 14, 14a. — shepstonense n.sp. Smith (3),

ibid., p. 204, Taf. 7, Fig. 15. — schepmani .n.sp., Persischer Golf.

Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 4, Taf. 1, Fig. 6. —

zatrephes n. Sp., Mekran-Küste. Melvill (3), ibid., p. 4, Taf. 1, Fig. 5.

Ethalia diotrephes n. sp., Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 6, Taf. 1, Fig. 9.

Eulima leptostoma n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus., vol. 2,

p: 204, Taf. 7, Fig. 16.

Eulimella maja n. sp., Persischer Golf. Melvill (1), Proc. Malac. Soc., vol. 9,

p: 180, Taf. 4, Fig. 8.

Fairbankia cochinchinensis n.sp., Saigon. Bavay & Dautzenberg (1),

Journ. de Conch., vol. 58, p. 17, Taf. 1, Fig. 3—4.

Fissurella (Cremides) keppeliana n.sp., Sierra Leone. Sowerby (2), Proc.

Malac. Soec., vol. 9, p. 66, Textfig.

Fluxina stenomphala n.sp., Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 7, Taf. 1, Fig. 10.

Genotia (Oligotoma) lamothei n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes

Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 64, Taf. 1, Fig. 5—7.

Gibbula joubini n.sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 147, Taf. 3, Fig. 13—18. — @. j. var. major-

depressa n. var. Dautzenberg (1), ibid., p. 147, Taf. 3, Fig. 19—20.

Gibbulina expatriata n.sp., Britisch-Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 526, Taf. 7, Fig. 1.

Haliotis (Padollus) queketti n.sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal. Govt.

Mus., vol. 2, p. 206, Taf. 8, Fig. 1, 1a.

Helicina densestriata n. Sp., Rio Grande do Sul. Wagner (4), Mart. Chem-

nitz, p. 272, Taf. 53, Fig. 11—13. — leptotropis n. Sp., Brasilien, p. 277,

Taf. 54, Fig. 20—21. — angulifera n.sp., Brasilien, p. 279, Taf. 55,

Fig. 6—8. — rotundata n.sp., Brasilien, p. 280, Taf. 55, Fig. 15—16.

— schlüteri var. chanchamayensis n. var., Peru, p. 285, Taf. 56, Fig. 15

— 17. — schl. var. densesulcata n. var., Peru, p. 285, Taf. 56, Fig. 18. —

conus N. Sp., Peru, p. 290, Taf. 57, Fig. 6—8. — phakos n. sp., Kolumbien,

p- 290, Taf. 57, Fig. 13—16. — decorosa n.sp., Kolumbien, p. 292,

Taf. 58, Fig. 4-6. — punctisulcata var. zunilensis n. var., Guatemala,

p. 295, Taf. 59, Fig. 9. — bautistae n.sp., Mexiko, p. 299, Taf. 59,

Fig. 18— 20. — tenuis var. pütieri n. var., Costa Rica, p. 303, Taf. 60,

Fig. 24. — pitalensis n. sp., Costa Rica, p. 308, Taf. 61, Fig. 17—19. —

rostrata var. mategalpensis n. var., Nicaragua, p. 313, Taf. 62, Fig. 19.

34 Mollusca für 1910.

— /estiva var. maltzani n. var., Haiti, p. 320, Taf. 64, Fig. 3. — neritella

var. reducta n. var., Jamaica, p. 324, Taf. 65, Fig. 23—24. — rhodo-

stoma var. inermis n. var., Guadeloupe, p. 327, Taf. 66, Fig. 11—12.

Hindsia perideris n. sp, Golf von Kalifornien. Dall (1), Nautilus, vol. 24,

p. 32.

Jullienia sinensis n. sp., China. Bavay & Dautzenberg (1), Journ. de Conch.,

vol. 58, p. 15, Taf. 1, Fig. 11—12.

Lartetia bosniaca n. sp., Bosnien. Clessin (5), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 71. — gracilis n. sp., Alz. Bayern. (Clessin (5), ibid., p. 71.

Latirus ernesti n. sp., Antillen. Melvill (2), Proc. malac. Soe., vol. 9, p. 147,

Textfig.

Leptogyra alaskana n.sp., Alaska. Bartsch (2), Nautilus, vol. 23, p. 136.

Leptopoma muswarensis n.Sp., Insel Muswar, Holländisch Neu-Guinea.

Fulton (2), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 372.

Lithasiopsis nov. gen. der Pleuroceratidae, Mexiko. Pilsbry (1), Proc. Malae.

Soe., vol. 9, p. 47, Textfig. 1 u. 2. — L. hinkleyi n. sp., Coy River.

Pilsbry (1), ibid., p. 48, Textfig. 3. — mexicanus n. sp., Montezuma

River. Pilsbry (1), ibid., p. 49, Textfig. 4.

Lithoglyphus buljaricensis n.sp., Dalmatien. (Clessin (5), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 72. — pallens n. sp., China. Bavay & Dautzen-

berg (1), Journ. de Conch., vol. 58, p. 13, Taf. 1, Fig. 9—10.

Mangilia elizabethae n.sp., Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt.

Mus., vol. 2, p. 190, Taf. 7, Fig. 2. — ichthys n. sp., Mekran-Küste.

Meivill (3), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 13, Taf. 2, Fig. 22.

— guerna n. Sp., Mekran-Küste. Melvill(3), ibid., p. 13, Taf. 2, Fig. 23.

— tetartemoris n. Sp., Mekran-Küste. Melvill (5), ibid., p. 14, Taf. 2,

Fig. 24. — merlini n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc.

Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 74, Taf. 1, Fig. 8-10. — merlini var.

concolor n. var. Dautzenberg (1), ibid., p. 75, Taf. 1, Fig. 11—13. —

pontyi n.Sp., Dautzenberg (1), ibid., p. 76, Taf. 1, Fig. 14—16.

Marginella bavayi n.sSp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 84, Taf. 1, Fig. 21—22. — chudeauwi n. Sp., West-

Afrika. Dautzenberg (1), ibid. p. 88. Taf. 2, Fig. 1-2. — ch. var.

major n. var., West-Afrika. Dautzenberg (1), ibid., p. 89. — ch. var.

elongata n. var., West-Afrika. Dautzenberg (1), ibid., p. 89. — ch.

var. quinquevittata n. var., West-Afrika. Dautzenberg (1), ibid., p. 90.

— ingloria n. sp. Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus.,

vol. 2, p. 191, Taf. 7, Fig. 5, 5a. — M. (Volvarina) corallina n. Sp.

Kapverdische Inseln. Bavay, Journ. de Conch., vol. 58, p. 22, Taf. 1,

Fig. 1—2.

Melania proteus Bavay et Dautzenberg. Bavay et Dautzenberg (1) ver-

öffentlichen (Journ. de Conch., vol. 58) 7 neue Varietäten dieser 1906

beschriebenen Art, nämlich: var. nuda n. var., Jünnan, p. 2, Taf. 1bis,

Fig. 1. — var. elongata n. var., Indochina, p. 3, Taf. 1bis, Fig. 2. —

var. angulata n. var., Indochina, p. 3, Taf. 1bis, Fig. 3. — var. parva

n. var., Indochina, p. 3, Taf. 1bis, Fig. 4. — var. unicolor n. var.,

Indochina, p. 3, Taf. 1bis, Fig.5. — var. curta n. var., Indochina,

p- 3, Taf. 1bis Fig. 6. — var. major n. var., Indochina, p. 4, Taf. 1bis,

Systematik. 85

Fig. 7. — Von Melania aubryana Hde werden von denselben 4 neue

Varietäten beschrieben: var. elongata n. var., Indochina, p. 5, Taf. 1bis,

Fig. 9. — var. robusta n, var., Indochina, p. 6, Taf. 1bis, Fig. 10. —

var. attenuata n. var., Indochina, p. 6, Taf. 1bis, Fig. 11. — var. paupera

n. var., Indochina, p. 6, Taf. 1bis, Fig. 12. — var. polygonalis n. var.,

Indochina, p. 6, Taf. 1bis, Fig. 13. — Melania siamensis Brot var.

nodosa n. var., Indochina, p. 10, Taf. 1bis, Fig. 14. — siamensis var.

laevigata n. var., Indochina, p. 11, Taf. 1bis, Fig. 15. — bazlleti n. sp.,

China, p. 11, Taf. 1, Fig. 7—8. — pleuroceroides n. sp., China, p. 12.

Taf. 1, Fig. 5—6.

Mitra (Pusio) geoffreyana n. Sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 12, Taf. 2, Fig. 20.

Modulus ambiguus n. Sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 19, Taf. 2, Fig. 13— 14.

Monilea chiliarches n. sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 3, Taf. 1, Fig. 4.

Myzxostoma dautzenbergi n. sp., Tonkin. Kobelt (3), Nachrbl. d. D. malak.

Ges., vol. 42, p. 184.

Natica grwveli n.sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.,

Bordeaux, vol. 64, p. 133, Taf. 3, Fig. 1-3. — grwveli var. pauci-

punctata n. var., West-Afrika. Dautzenberg (1), ibid., p. 133, Taf. 2,

Fig. 22.

Obtortio elongella n. Sp., Mekran-Küste. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 9, Taf. 1, Fig. 14.

Odostomia anabathmis n. sp., Bombay. Melvill (1), Proc. malac. Soc., vol. 9,

p- 203, Taf. 6, Fig. 13. — chariclea n.sp., Bombay. Melvill (1), ibid.,

p- 204, Taf. 6, Fig. 14. — eutropia var. crassispira n. var., Karachi.

Melvill (1), ibid., p. 205, Taf. 6, Fig. 15. — zaleuca n.sp., Charbar.

Melvill (1), ibid., p. 206, Taf. 6, Fig. 16. — O. (Evalina) cookeana n. Sp.,

Alaska. Bartsch (2), Nautilus, vol. 23, p. 138.

Ola angulata forma nivea n.f. Pilsbry (4), Nautilus, vol. 23, p- 32. —

erythrostoma var. marrati n. var. Johnson (1), Nautilus, vol. 24, p. 51.

— zeilanica var. fordi n. var. Johnston (1), ibid., p. 51. — tigrina var.

fallax n. var. Johnson (1), ibid., p. 65. — flammulata Lam. ; Varietäten

pallida n. var., castanea n. var. und isabellina n. var., West-Afrika.

Pautzenberg (1), Actes Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 79—80.

Oliwvella porteri n.sp., Kalifornien. Dall (2), Nautilus, vol. 23, p.183.

Onoba (Rissoa) asser n.sp., Alaska. Bartsch (2), Nautilus, vol. 23, p- 138.

Orobaphana oberwimmeri n.Sp, Samoa. Wagner (4), Mart.-Chemnitz,

p- 230, Taf. 45, Fig. 14—18. — rohri var. mukahivana n. var., Mar-

quesas-Inseln. Wagner (4), ibid., p. 235, Taf. 45, Fig. 22.

Oscilla evanıda n. Sp., Karachi. Melvill (1), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 194,

Taf. 5, Fig. 15.

Pachypoma magdalena n.Ssp., Kalifornien. Dall (2), Nautilus, vol. 23,

p. 135. — lithophorum n. sp., Kalifornien. Dall (2), ibid., p. 136.

Palaeohelicina moquiniana var. ecarinata n. var., Salomonen. Wagner (4),

Mart.-Chemnitz, I, 18 II, p. 240, Taf. 47, Fig. 12. — egregia var. incerta

n. var., Salomonen. Wagner (4), ibid., p. 243, Taf. 47, Fig. 23—24. —

36 Mollusca für 1910.

fischeriana var. elegans n. var., Fergusson-Insel. Wagner (4), ibid.,

p- 245, Taf. 48, Fig. 13.

Phenacolepas mirabilis n. sp., Australien ? Sowerby (2), Proc. Malac. Soc.,

vol. 9, p. 66, Textfig.

Photinula sodidula n. sp., Falkland-Inseln. Cooper & Preston, Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 111, Taf. 4, Fig. 3. — taeniata King var.

nivea n. var., Falkland-Inseln. Cooper & Preston, ibid., p- 112.

Pisania lirocinceta n. sp., Herkunft unbekannt. Sowerby (2), Proc. Malac.

Soc., vol. 9, p. 65, Textfig.

Pleuropoma, subgen. nov. von Pomatias. Caziot (10), Ann. Soc. Linn.

Lyon, vol. 56, p. 205.

Pleurotomella rhitisimeis n. sp., Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 14, Taf. 2, Fig. 25.

Pomaulax turbanicus n. sp., Kalifornien. Dall (2), Nautilus, vol. 23, p. 134.

Pterocyclus fruhstorferi n. sp., Tonkin. Kobelt (6) Martini-Chemnitz, 119,

p- 739, Taf. 107, Fig. 7—9. — bathyschisma Mlldff., erstmalig abge-

bildet bei Kobelt (6), ibid., Taf. 108, Fig. 4-6. — moellendorfi n. SP«,

Deutsch Neu-Guinea. Kobelt (6), ibid., p. 744, Taf. 108, Fig. 7—9. —

schmackeri Mlldff., erstmalig abgebildet bei Kobelt (6), Taf. 108,

Fig. 10— 12.

Pteronotus annandalei n. sp., Bengalischer Meerbusen. Preston (2), Record

Indian Mus., vol. 5, p. 118, Textfig.

Pyrgulina (Egilina) chasteriana n.sp., Golf von Oman. Melvill (1), Proc.

Malac. Soc., vol. 9, p. 197, Taf. 6, Fig. 2 u. 24. — comacum n. SPs

Golf von Oman. Melvill (1), ibid., p. 198, Taf. 6, Fig. 3. — erystallo-

picta n. Sp., Charbar. Melvill (1), ibid., p. 199, Taf. 6, Fig. 4. — dautzen-

bergi n. sp., Bombay. Melvill (1), ibid., p. 199, Taf. 6, Fig. 5. — ecerita

n. Sp., Charbar. Melvill (1), ibid., p. 200, Taf. 6, Fig. 6. — edana n. Sp.,

Bombay. Melvill (1), ibid., p. 200, Taf. 6, Fig. 7. — milicha n. Sp

Karachi. Melvill (1), ibid., p. 201, Taf. 6, Fig. 8. — pirinthella n. SP«

Karachi. Melvill (1), ibid., p. 201, Taf. 6, Fig. 9. — polemica n. SP«,

Bombay. Melvill (1), ibid., p. 202, Taf. 6, Fig. 10. — redempta n. Sp«,

Mussandam. Melvill (1), ibid., p. 202, Taf. 6, Fig. 11. — zidora n. SP»,

Mussandam. Melvill (1), ibid., p. 203, Taf. 7, Fig. 12.

Rissoa farquhari n. sp., Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus.,

vol. 2, p. 200, Taf. 7, Fig. 12. — adjacens n. sp., Kap-Kolonie. Smith

(3), ibid., p. 201, Taf. 7, Fig. 13. — R. (Apicularia) townsendi n. SP«s

Karachi u. Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8,

vol. 6, p. 7, Taf. 1, Fig. 11. — R. (Scrobs) elspethae n.sp., Mekran-

Küste. Melvill (3), ibid., p. 8, Taf. 1, Fig. 12. — ictriella n. sp., Karachi.

Melvill (3), ibid., p. 8, Taf. 1, Fig. 13.

Schismope insignis n. Sp, Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus.,

vol. 2, p. 208, Taf. 8, Fig. 4, 4a.

Seissurella jucunda n. sp., Kap-Kolonie. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus.,

vol. 2, p. 207, Taf. 8, Fig. 2, 2a.

Solariella iridifulgens n. sp., Mekran-Küste ete. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 3, Taf. 1, Fig. 3. — triplostephanus n. sp., Golf

von Kalifornien. Dall (1), Nautilus, vol. 24, p. 34.

Systematik. 87

Somatogyrus mezxicanus n. Sp., Mexiko. Pilsbry (2), Nautilus, vol. 23, p. 98.

Styloptygma beatrixz n. sp., Persischer Golf. Melvill (1), Proc. Malac. Soc.,

vol. 9, p. 176, Taf. 4, Fig. 4. — cometes n.sp., Karachi. Melvill (1),

Ipid., P.177, Taf. 4, Fig. 3:

Syrnola clearete n. sp., Golf von Oman. Melvill (1), Proc. Malac. Soc.,

vol. 9, p. 175, Taf. 4, Fig. 1.

Teinostoma emmeles n.sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 6, Taf. 1, Fig. 8.

Terebra remanalva n.sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 12, Taf. 2, Fig. 21.

Torinia malani n.sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 126, Taf. 2, Fig. 15—17.

Trifora burnupi n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus., vol. 2,

p- 196, Taf. 7, Fig. 8.

Trophonopsis gruveli n. Sp., West-Afrika. Dautzenberg (2), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 106, Taf. 2, Fig. 9—10.

Tropidophora concinna n.Sp., Britisch-Ostafrika. Preston (1), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 536, Taf. 9, Fig. 28.

Turbonilla colpodes n. sp., Persischer Golf. Melvill (1), Proc. Malac. Soec.,

vol. 9, p. 183, Taf. 5, Fig. 14. — eucteana n. sp., Bombay. Melvill (1),

ibid., p. 183, Taf. 4, Fig. 11. — eumenes n. sp., Bombay. Meivill (1),

ibid., p. 184, Taf. 4, Fig. 12. — fraterna n. sp., Golf von Oman. Melvill

(1), ibid., p. 184, Taf. 4, Fig. 13. — galactodes n. sp., Golf von Oman.

Meivill (1), ibid., p. 185, Taf. 4, Fig. 14. — icela n. sp., Golf von Oman.

Melvill (1), ibid., p. 185, Taf. 4, Fig. 15. — julia n. sp., Astola Island.

Melvill (1), ibid. p. 186, Taf. 5, Fig. 1. — michaelis n. sp., Golf von

Oman. Melvill (1), ibid., p. 187, Taf. 5, Fig. 2.— neogila n. sp., Bombay.

Melvill (1), ibid., p. 187, Taf. 5, Fig. 3. — oligopleura n. sp., Golf von

Oman. Melvill (1), ibid., p. 188, Taf. 5, Fig. 4. — pachypleura n. Sp.,

Golf von Oman. Melvill (1), ibid., p. 188, Taf. 5, Fig. 5. — Phyllidis

n.sp., Golf von Oman. Melvill (1), ibid., p. 188, Taf. 5, Fig. 6. —

punctillum n.Sp., Golf von Oman. Melvill (1), ibid., p. 189, Taf. 5,

Fig. 7. — quaestuosa n. sp., Bombay. Melvili (1), ibid., p. 189, Taf. 5,

Fig. 8. — Sykesii n. sp., Golf von Oman. Melvill (1), ibid., p. 190,

Taf. 5, Fig. 9. — Townsendi n. sp., Golf von Oman. Melvill (1), ibid.,

p- 191, Taf. 5, Fig. 11. — unicincta n. sp., Charbar. Melvill (1), ibid.,

p- 192, Taf. 5, Fig. 12. — zelemia n. sp., Golf von Oman. Melvill (1),

ibid., p. 192, Taf. 5, Fig. 13. — pallaryii nov. nomen für T. siricta

Pallary (nee Clessin). Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn. Bordeaux,

vol. 64, p. 141.

Turris invieta n. sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 15, Taf. 2, Fig. 27.

Turritella natalensis n. sp., Natal.e. Smith (3), Ann. Natal. Govt. Mus.,

vol. 2, p. 198, Taf. 7, Fig. 11.

Vitrella gratulabunda n.sp., Steiermark. Wagner (1), Abh. Senck. Nat.

Ges., vol. 32, p. 188, Taf. 16, Fig. 21—22.

Vivipara fragilis n. sp., Holländisch Neu-Guinea. Preston (4), Proc. Malac.

Soc., vol. 9, p. 113, Textfig.

88 Mollusca für 1910.

Voluta nodiplicata n. Sp., West-Australier. Cox, Proc. Malac. Soe., vol. 9,

p- 146, Taf. 3. — V. (Amoria) gatliffi n. sp., Nord-Australien. Sowerby

(1), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 611, Textfig. !

II. Opisthobranchiata.

Actaeon maltzani nov. nomen für A. senegalensis Maltzan (nec Petit).

Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 56.

Ceratophyllidia grisea n. sp., Coetivy Island. Eliot (1), Trans. Linn. Soc.,

London, vol. 13, p. 436.

Cuthona annandalei n.sp., Indien. Eliot (2), Record Indian Mus., vol. 5,

p- 248.

Facelina agari n.sp., Bermuda-Inseln. Smallwood, Proc. Zool. Soe.,

London, 1910, p. 141.

Leucotina natalensis n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus., vol. 2,

p. 188, Tas 7, Bao. 1.

Miamira magnifica n. sp., Seychellen. Eliot (1), Trans. Linn. Soc., London,

vol. 13, p. 432.

Philine berghi nov. nomen für Ph. capensis Bergh. Smith (3), Ann. Natal

Govt. Mus., vol. 2, p. 184.

Phyllidiopsis carinata n. sp., Amirante-Inseln. Eliot (1), Trans. Linn. Soc.,

London, vol. 13, p. 345.

Polycerella zoobotryon n.sp., Bermuda-Inseln. Smallwood, Proc. Zoo!.

Soc., London, 1910, p. 143.

Pteraeolidia annulata n.sp., Saya de Malha. Eliot (1), Trans. Linn. Soc.

London, vol. 13, p. 417.

Retusa turrigera n. sp., Persischer Golf. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 16, Taf. 2, Fig. 28.

Tethys modesta n. sp., St. Thomas. Thiele(3), Zool. Jahrb., Suppl. 11, p. 124.

Thordisa annulata n. sp., Andamanen. Eliot (2), Record Indian Mus., vol. 5,

p- 250. — burnupi n.sp., Natal. Eliot (3), Ann. Natal Govt. Mus.,

vol. 2, p. 223.

III. Pteropoda.

Thalassopterus nov. gen. nahe Thliptodon. Typus: Th. zancleus n. Sp.,

Messina. Kwietniewski, Zool. Anz., vol. 36, p. 270. Bisher nur als

Larve bekannt!

IV. Pulmonata.

Achatina ariel n.Sp., Abessinien. Preston (6), Proc. Malac. Soec., vol. 9,

p- 166, Textfig. — iredalei n.sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1),

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 533, Taf. 9, Fig. 20. — schin-

ziana Mouss. var. degenerata n. var., Kalahari. Boettger (1), Abh.

Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 447, Taf. 28, Fig. 12. — ampullacea n. SP.,

Kalahari. Boettger (1), ibid., p. 447, Taf. 28, Fig. 13.

Agriolimax planarioides n. Sp., Südalpen. Simroth (3), Abh. Senck. Nat.

Ges., vol. 32, p. 326, Taf. 24, Fig. 21. — scharffi n.sp., Südalpen.

Simroth (3), ibid., p. 326. — buchar n. sp., Syr-Darjagebiet. Simroth

(4), Ann. Mus. zool. Acad. imp. St. Petersburg, vol. 15, p. 523, Taf. 7,

Fig. 19—21.

Systematik. 89

Alaea substriata forma viridana n.f., Rußland. Lindholm (3), Nachrbl. d.

D. malak. Ges., vol. 42, p. 35.

Albea nov. gen. für Helix candidissima Drap. Pallary, Abh. Senck. Nat.

Ges., vol. 32, p. 111. Pallary stellt (l. c.,p. 101) fest, daß der Typus zu

Leucochroa Beck 1837 nicht H. candidissima, sondern H. albella ist;

infolgedessen setzt er H. candidissima und ihre Verwandten in die

Gattung Calcarina Moquin-Tandon. Da dieser Name, der im Jahre

1848 aufgestellt wurde, schon 1826 von d’Orbigny für eine Foraminifere

benutzt worden war, schlägt Pallary in einem Postskriptum (p. 111)

den neuen Gattungsnamen Albea vor.

Amalia kobelti n. sp., Südalpen. Simroth (3), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32,

p. 333. — baldensis n.sp., Südalpen. Simroth (3), ibid., p. 334. —

ehrmanni n. sp., Südalpen. Simroth (3), ibid., p. 334. — cypria Srth.,

Cypern, abgebildet hei Simroth (1), Deutsche Südpolar-Expedition,

vol. 12, Teil 4, Taf. 21, Fig. 18—21.

Ancylus trapezoideus n. Sp., Betschuanaland. Boettger (1), Abh. Senck.

Nat. Ges., vol. 32, p. 450, Taf. 28, Fig. 15. Subfossil !

Arion minimus (s. intermedius Norm.) var. rhaeticus n. var., Südalpen.

Simroth (3), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 337.

Atahualpa nov. subgen. zu Thaumastus: Typus: A. brunneus n. Sp., Ecuador.

Strebel, Abh. naturw. Verein Hamburg, vol. 19, p. 19, Taf. 2, Fig. 25.

Atoxon martensi n.Sp., Ost-Afrika. Simroth (2), Voeltzkows Reise in Ost-

afrika, vol. 2, p. 607, Taf. 26, Fig. 15. — fülleborni n. sp., Ost-Afrika.

Simroth (2), ibid., p. 607, Taf. 26, Fig. 16.

Atrichotoxonnov.gen.nahe Trichotoxon. Typus: A. punctatum n. sp., Ost-Afrika.

Simroth (2), Voeltzkows Reise in Ost-Afrika, vol. 2, p. 605, Taf. 26, Fig.6.

Azeca schulziana n.sp., deutsches Diluvium. Wüst (1), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 104.

Biomphalaria, nov.gen. der Limnaeiden, zuChoanomphaluszustellen. Typus:

B. smithi n.sp., Albert-Edward-See. Preston (1), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 535, Taf. 9, Fig. 26— 26a.

Boettgerilla nov. gen. der Limaciden. Typus: B. compressa n. sp., Suchum.

Simroth (4), Ann. Mus. zool. Acad. Imp. Petersburg, vol. 15, p. 530,

Taf.'7, Big.'29 23.

Bukobia hoesemanni n. sp., Victoria Nyanza. Simroth (2), Voeltzkows Reise

in Ostafrika, vol. 2, p. 607.

Buliminus affinis n. sp., Abessinien. Preston (6), Proc. Malac. Soec., vol. 9,

p- 165, Textfig. — margueritae n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1),

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 532, Taf. 8, Fig. 18. — tribula-

tionis n.Sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 532, Taf. 8,

Fig. 19. — phazemonicus n. sp., Mersiwan. Hesse (4), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 132. — B. (Cerastus) featheri n. sp., Britisch

Somali-Land. Tomlin (1), Journ. of Conch., vol. 13, p. 54, Textfig. —

boothi n.sp., Britisch Somali-Land. Tomlin (1), ibid., p. 54, Textfig. —

B. (Zebrina) libbakensis n.sp., Britisch Somali-Land. Tomlin (1),

ibid., p. 56, Textfig. — B. (Petraeus) egregius var. sertensis N. VAl.,

Euphratgebiet. Naegele, Nachrbl.d. D. malak. Ges., vol. 42, p. 149. — B.

(Subzebrinus) purus var. minor n. var., Persien. Naegele, ibid.. p. 151.

90 Molluses für 1910.

Calycia erystallina var. nigrescens n. var., Holländisch-Neu-Guinea. Fulton

(2), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 372.

Carelia cumingiana Pfr. var. kobelti n. var., Kauai. Borcherding, Abh.

Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 239, Taf. 20, Fig. 1—2. — CO. adusta Gld.

var. minor n. var., Kauai. Borcherding, ibid., p. 244, Taf. 20, Fig. 17

— 183. — C. a. var. minor f. zonata n.f., Kauai. Borcherding, ibid.,

p- 244, Taf. 20, Fig. 15—16. — C. a. var. zonata n. var., Kauai. Borcher-

ding, ibid., p. 244, Taf. 20, Fig. 13— 14.

Carychium medicum n. sSp., Persien. de Morgan, Etudes Malac. Asie An-

terieure, vol. 1, p. 38. — susianicum n. Sp., Persien. de Morgan, ibid.,

p- 2? — hyrcanicum n. sp., Persien. de Morgan, ibid., p. ?

Cerastus delicatulan.sp., Angola.Preston(7),Proc.Malae.Soe.,vol.9, p.53, Textig.

Chilina falklandica n. sp., Falkland Inseln. Cooper & Preston, Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol.5, p. 111, Taf. 4, Fig. 2.

Choanomphalus bicarinatus Dyb. (Fig. 1—4), intermedius Dyb. (Fig. 5),

omphalotus Dyb., (Fig. 6—7), eryptomphalus Dyb. (Fig. 8—9), anom-

phalus Dyb. (Fig. 10—11), minutus Dyb. (Fig. 12) und minutissimus

Dyb. (Fig. 13—15), erstmalig abgebildet bei Dybowski (2), Ann. Mus.

zool. Acad. Imp. Petersburg, vol. 15, Taf. 3.

Clausilia (Euzxina) circumdata var. byzantia n. var., Konstantinopel. Naegele,

Nachrbl. d. D. malak. Ges., vol. 42, p. 152.

Cochlostyla (Orustia) gertrudis n. sp., Philippinen. Kobelt und 6. Winiter-

v. Möllendorff, in Semper: Reisen im Archipel der Philippinen, Bd. X,

p- 205, Taf. 42, Fig.5. Dieselben bilden (ibid.) eine größere Anzahl

Möllendorffscher Cochlostylen erstmalig ab, und zwar: Cochlostyla

eryptica depressa Mlldff., ibid., Taf. 33, Fig. 3. — eryptica tumida Mlldf?.,

ibid., Taf. 33, Fig. 6. — eryptica subglobosa Mlldff., ibid., Taf. 33, Fig. 7.

— cryptica nigricans Mlldff., Taf. 34, Fig. 2. — 0. (Anixa) zebuensis

epitropis Mlldff., ibid., Taf. 35, Fig.5. — C. (Aniza) garibaldiana

holoserica Mlldff., ibid., Taf. 36, Fig! 5, Taf. 38, Fig. 1. — C. (Aniza)

garibaldiana calva Mlldff., ibid., Taf. 37, Fig. 1. — C. (Anixa) schaden-

bergi Mlldff., ibid., Taf. 37, Fig. 2, 2a. — CO. (Aniza) kobelti Mlldff.,

ibid., Taf. 37, Fig. 4, 4a. — C. (Anixa) heermanni Mlldff., ibid., Taf. 38,

Fig. 2, 2a. — C. (Orustia) pulchella Mlldff., ibid., Taf. 38, Fig. 9. —

C. (Orustia) elerae Mlldff., ibid., Taf. 43, Fig. 1, 1a. — ©. (Dryocochlias)

metaformis atrolabiata Mlldff., ibid., Taf. 44, Fig. 4. — 0. (.Dryo-

cochlias) metaformis nana Mlldff., ibid., Taf. 44, Fig. 7. — C. (Dryo-

cochlias) metaformis subnivea Mlldff., ibid., Taf. 44, Fig. 5. — (©. (Dryo-

cochlias) metaformis alticola Mlldff., ibid., Taf. 44, Fig. 8.

Comorina nov. gen. nahe Urocyelus. Typus: C. johannae n. sp. Komoren.

Simroth (2), Voeltzkows Reise in Ostafrika, vol. 2, p. 603, Textfig. 12,

Taf. 26, Fig. 14.

Corasia tangoelandangensis n. Sp., Insel Tangoelandang. Rolle (1), Nachrb).

d. D. malak. Ges., vol. 42, p. 82.

Curvella majubina n. sp., Natal. Connolly, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8,

vol. 6, p. 270, Taf. 6, Fig. 13. — saundersae n. sp., Zululand. Connolly,

ibid., p. 27C, Taf. 6, Fig. 14. — modesta n. sp., Kap Kolonie. Connolly,

ibid., p. 271, Taf. 6, Fig. 15. — caloraphe n. sp., Britisch Ost-Afrika.

Systematik. 91

Preston (1), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 533, Taf. 9,

Fig. 21. — mathildae n. sp., Deutsch Ost-Afrika. Preston (1), ibid.,

p. 534, Taf. 9, Fig. 22. — pertranslucens n. sp., Britisch Ost-Afrika.

Preston (1), ibid., p. 534, Taf. 9, Fig. 23. — shimbiense n. SP.

Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 534, Taf. 9, Fig. 24.

Cypria nov. subgen. für Amalia cypria Srth. Simroth (1), Deutsche Süd-

polar-Expedition, vol. 12, Heft 3, p. 158.

Dorcasia ponsonbyi n.sp., Kap der Guten Hoffnung. Fulton (3), Ann.

Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 212.

Ena schultzei n. sp., Kalahari. Boettger (1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32,

p- 442, Taf. 28, Fig. 9a — b. — subteres n. sp., SW. Hereroland. Boettger

(1), ibid., p. 444, Taf. 28, Fig. ss—b. — namibica n. sp., SW. Herero-

land. Boettger (1), ibid., p. 444, Taf. 28, Fig. 10a—b.

Ennea ansorgsi n. Sp., Angola. Preston (7), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 51,

Textfig. — rosenbergiana n.sp., Angola. Preston (7), ibid., p. 51,

Textfig. — roberti n. sp., Abessinien. Preston (6), ibid., p. 164, Texfig.

— meneliki n. Sp., Abessinien. Preston (6), ibid., p. 164, Textfig. —

buchholzi var. dyscrita n. var., Kamerun. Boettger (2), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 81. — orestias n.sp., Britisch Somaliland.

Tomlin (1), Journ. of Conch., vol. 13, p. 55, Textfig. — quadrilateralis

n. Sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8,

vol. 6, p. 527, Taf. 7, Fig. 2. — gwendolinae n. sp., Britisch Ost-Afrika.

Preston (1), ibid., p. 527, Taf. 7, Fig. 3. — marionae n. sp., Britisch

Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 527, Taf. 7, Fig. 4. — jod n.sp.,

Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 528, Taf. 7, Fig. 5. — spera-

bile n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 528, Taf. 7, Fig. 6.

— delicatula n.sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 528,

Taf. 7, Fig. 7. — radius n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid.,

p- 529, Taf. 7, 8. — schweinfurthi n. sp., Arabien. Thiele (1), Sitz.

Ber. Ges. naturf. Freunde, Berlin, p. 283, Taf. 10, Fig. 6.

Epiphragmophora ameghinoi n. Sp., Argentinien. v. Ihering (2), Abh. Senck.

Nat. Ges., vol. 32, p. 420. — E. (Trichodiscina) verdensis n. Sp., Mexiko.

Dall (7), Nautilus, vol. 24, p. 35. .

Eucalodium (Anisospira) orcuttin. sp., Mexiko. Dall (7), Nautilus, vol. 24, p. 34.

Euonyma pietersburgensis Preston var. levis n. var., Transvaal. Connolly,

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 255, Taf. 6, Fig. 8. — pruize-

nensis N. Sp., Nord Transvaal. Connolly, ibid., p. 261, Taf. 6, Fig. 11.

— siliqua n.sp., Natal. Connoliy, ibid., p. 262, Taf. 6, Fig. 10. —

varia n.sp., Transvaal. Connolly, ibid., p. 263, Taf. 6, Fig. 5-7. —

standeri n.Sp., Transvaal. Connolly, ibid., p. 264, Taf. 6, Fig. 9. —

unicornis N. Sp., Transvaal. Connolly, ibid., p. 265, Taf. 6, Fig. 3.

Garnieria goliath n. sp., Tonkin. Rolle (2), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 135.

Gigantomilax ferganus n. sp., Fergana. Simroth (4), Ann. Mus. zool. Acad.

Imp. Petersburg, vol. 15, p. 528, Taf. 7, Fig. 22—25. — abramowin. Sp«s

Semiretschensk. Simroth (4), ibid., p. 529, Taf. 7, Fig. 26. — pisch-

pekensis n. sp., Semiretschensk. Simroth (4), ibid., p. 530, Taf. 7,

Fig. 27—28.

99 Mollusea für 1910.

Helerigone nov. nomen für Erigone Albers, präoceupiert in Insekten. Strand,

Soc. ent., vol. 25, p. 34.

Helicarion perfragilis n. sp., Belgischer Kongostaat. Preston (5), Ann.

Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vo). 6, p. 58, Taf. 4, Fig. 1. — hararensis n. Sp.,

Abessinien. ‚Preston (6), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 164, Textfig.

Helicella (Lejeania) rosenbergi n. sp., Abessinien. Preston (6), Proc. Malae.

Soe., vol. 9, p. 165, Textfig. — rosenbergi var. depressa N. Val.,

Abessinien. Preston (6), ibid., p. 165, Textfig. — rosenbergi var. albida

n. var., Abessinien. Preston (6), ibid., p- 165.

Helicodonta hispanica n. sp., Valencia. Gude (1), Proc. Malac. Soc., vol. 9,

p- 124, Textfig.

Helicogena semiclausa deflexa n. subsp., Rio Grande do Sul. v. Ihering (2),

Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p..419. — hidalgonis latecostata n. subsp.,

Corrientes. v. Ihering (2), ibid., p. 419. — catamarca n. sp., Argentinien.

v. Ihering (2), ibid., p. 419, Taf. 28, Fig. 1—2. — bruchi n. sp., Argen-

tinien. v. Ihering (2), ibid., p. 420, Taf. 28, Fig. 3—4.

Helix arbustorum var. maynardi n. var., Seealpen. Caziot (12), Feuille

jeunes Naturalistes, vol. 40, p. 184. — aspersa n.var., England

Taylor (1), Mon. Land & Fresh Water Moll. Brit. Isl., Teil 17, p. 265.

— incognita n. sp., Italien. Caziot (3), Bull. soc. zool., vol. 55, p. 141.

— H. (Sculptaria) sculpturata Pfr. var. rinteleni n. var., Deutsch

Südwest-Afrika. Boettger (1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 347,

Taf. 28, Fig. 1a—c. — H. (Dorcasia) alexanderi Gray var. trivia n. Var.,

Süd Hereroland. Boettger (1), ibid., p. 439, Taf. 28, Fig. 3a—c. —

H. (Eremia) duroi var. nivea n, var., Marokko. Germain (3), Actes

Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 30. — H. grweli n. sp., Marokko,

subfossil. Germain (3), ibid., p. 43. — H. (Levantina) urmiensis var.

colorata n. var., Persien. Naegele, Nachrbl. d. D. malak. Ges., vol. 42,

p- 146. — H. (Pomatia) cincta var. libanica n. var., Libanon. Naegele,

ibid., p. 147. — H. (Pomatia) engaddensis var. galilaea n. var., Palästina.

Naegele, ibid., p. 147. — H. (Xerophila) cappadocia n. sp., Kleinasien.

Naegele, ibid., p. 148. — peregrina n. sp., Cypern. Naegele, ibid., p. 149.

Homorus ordinarius n. Sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 534, Taf. 9, Fig. 25. — manueli n. sp., Angola.

Preston (7), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 54, Textfig. — princeps n. Sp»,

Abessinien. Preston (6), ibid., p. 168, Textfig. — perlucida n. Sp.,

Abessinien. Preston (6), ibid., p. 168, Textfig.

Hyrcanolestes armeniacus n. sp., Transkaukasien Simroth (4), Ann. Mus.

zool. Acad. Imp. Petersburg, vol. 15, p. 535, Taf. 7, Fig. 35— 37.

Itiopiana nov. sect. von Subulina. Typus: S. meneliki. Preston (6), Proc.

Malac. Soe., vol. 9, p. 169.

Kara nov. subgen. für Thaumastus thompsoni Pfr. Strebel, Abh. Naturw.

Verein Hamburg, vol. 19, p. 16.

Leucochiloides (Microstele) oblongus n. Sp., Südwest Hereroland. Boettger

(1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 445, Taf. 28, Fig. 11a—b.

Levantina mahanica n. sp., Persien. Kobelt (1), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 41.

Limax dengis n. sp., Ost Turkestan. Simroth (4), Ann. Mus. zool. Acad.

Systematik. 93

Imp. Petersburg, vol. 15, p. 502, Taf. 6, Fig. 1-4. — persicus n. Sp.,

West Persien. Simroth (4), ibid., p. 504, Taf. 6, Fig. 5—8. — stummeri

n. sp., Balchasch See. Simroth (4), ibid., p. 510, Taf. 6, Fig. 11—12.

Limicolaria jickeliana n.Sp., Abessinien. Preston (6), Proc. Malac. Soe.,

vol. 9, p. 167, Textfig.

Limnaea siehe auch unter Lymnaea.

Limnaea anceyana n. Sp., Belgischer Kongo Staat. Preston (5), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 59, Taf. 4, Fig. 4. — brunneoflavida n. Sp.,

Falkland Inseln. Cooper u. Preston, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8

vol. 5, p. 110, Taf. 4, Fig. 1. — damarana n.sp., Damara Land, sub-

fossil. Boettger (1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 450, Taf. 28,

Fig. 16a—b. — subtruncatula n. sp., Damara Land, subfossil. Boettger

(1), ibid., p. 451, Taf. 28, Fig. 17a—b. — auricularia var. thermalis

n. var., Tibet. Weber, Zool. Jahrb., Abt. f. Syst., vol. 29. p. 302. —

L. (Gulnaria) schwilpi n. sp., Nordost China. Jones u. Preston, Proc.

Malac. Soc., vol. 9, p. 10, Textfig. — L. (Gulnaria) Lumleyi n. Sp.,

Wei-hai-wei. Jones & Preston, ibid, p. 10, Textfigg. — L. (Gulnaria)

sinensis N. SPp«, Nordost China. Jones u. Preston, ibid., p. 11,

Textfig. — renoufi var. guyardi n. var., Frankreich. Caziot (1), Bull.

Soc. Auxerre, vol. 60, p. 233. — conglobata var. minor n. var., Frank-

reich. Caziot (1), ibid., p. 235.

Lymnaea emarginata var. wisconsinensis n. var., Wisconsin. Baker (5),

Nautilus, vol. 24, p. 58. — cubensis aspirans n.subsp., Barbados.

Pilsbry (5), Nautilus, vol. 23, p. 120. — stagnalis var. lillianae n. var.,

Michigan u. Wisconsin. Baker (3), Nautilus, vol. 23, p. 112—113 und

125— 126.

Martiensia gwendolinae n. sp., Deutsch Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 529, Taf. 7, Fig. 9. — martensiana n. Sp.,

Britisch-Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 529, Taf. 7, Fig. 10. —

monozonata Nn.Sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 530,

Taf. 8, Fig. 11. — M.? shimbiense n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston

(1), ibid., p. 530, Taf. 8, Fig. 12.

Opeas innocens n. sp., Birma. Preston (3), Records Indian Mus., vol. 5,

p- 33, Textfig. 2. — lepidum n. sp., Kap Kolonie. Connolly, Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 267, Taf. 6, Fig. 12. — sublinearis n. Sp.,

Klein-Namaland. Boettger (1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 448,

Taf. 28, Fig. 14a—b.

Orcula doliolum var. tumida n. var., Deutschland, in subrezentem Sinter.

Vohland (1), Sitz. Ber. Isis, Dresden, p. 126.

Paralimax Kalischewskii n. sp., N.W. Kaukasus. Simroth (4), Ann. Mus.

zool. Acad. Imp. Petersburg, vol. 15, p. 517, Taf. 6, Fig. 14—16.

Parmacellilla ‚nov. gen. nahe Parmacella. Typus: P. filipowitscht n. SP«,

Astrabad. Simroth (4), Ann. Mus. Zool. Acad. Imp. Petersburg,

vol. 15, p. 536, Taf. 8, Fig. 33—50.

Papuina grata Mich. var. magna n. var., Muswar, Holländisch Neu-Guinea.

Fulton (2), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 371. — prattii n. Sp»,

Muswar, Holländisch Neu-Guinea. Fulten (2), ibid., p. 372. — rhodo-

chila n. Sp., Neu-Guinea. Gude (2), Proc. Malae. Soc., vol. 9,p. 82, Textüig.

94 Mollusca für 1910.

Phortion Preston, nov. nomen für Phasis, da dieser schon präoccupiert ist.

Phortion ariel n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 531, Taf. 8, Fig. 15.

Planispira (Cristigibba) doleus n. sp., Muswar, Holländisch Neu-Guinea

Fulton (2), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 371.

Planorbis confusus Rehbre. var. tigrina n. var., Indo-China. PBavay u.

Dautzenberg (1), Journ. de Conch., vol. 58, p. 18. — Pl. (Segmentina)

demangei n. sp., Hanoi, Tonkin. Bavay u. Dautzenberg (1), ibid., p- 20,

Taf. 1, Fig. 15—17. — hermanni n. sp., Kalahari, subfossil. Boettger

(1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 452, Taf. 28, Fig. 18a—c.

Plectotropis biggiei n. sp., Siam. Preston (3), Records Indian Mus., vol. 5,

p- 33, Textfig. 1.

Pseudoglessula minuscula n. sp., Angola. Preston (7), Proc. Malac. Soc.,

vol. 9, p. 54, Teextfig.

Pupa (Orcula) orientalis var. caerulescens n. var., Mesopotamien. Naegele,

Nachrbl. d. D. malak. Ges., vol. 42, p. 151. — doliolum var. mesopotamica

n. var., Mesopotamien. Naegele, ibid., p. 151.

Quechua nov. subgen. für Thaumastus salteri. Strebel, Abh. naturw. Ver.

Hamburg, vol. 19, p. 17.

Rhachis hieroglyphicus n. sp., Britisch Ost-Afrika. Preston (1), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 531, Taf. 8, Fig. 16. — wicinus n.Sp.,

Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 532, Taf. 8, Fig. 17.

Retinella kobelti n. sp., Krim. Lindholm (2), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32,

p- 223.

Rima nov. subgen. für Albea cariosa. Pallary, Abh. Senck. Nat. Ges.,

vol. 32, p. 110.

Scholvienia nov. gen. nahe Thaumastus. Typus: Sch. bitaeniata Nyst.

Scholvienia bitaeniata Nyst. f. pallida n.f., Chanchamayo, Peru. Strebel,

Abh. Naturw. Ver. Hamburg, vol. 19, p. 22, Taf. 3, Fig. 29—30. —

jaspidea Mor. f. minor n. f., Quemia, Peru. Strebel, ibid., p. 24, Taf. 3,

Fig. 31, 32, 36. — huancabambensis n.sp., Huancabamba, Peru.

Strebel, ibid., p. 27, Taf. 2, Fig. 15, 19a. — claritae n. sp., Chanchamayo,

Peru. Strebel, ibid., p. 27, Taf. 2. Fig. 16.

Streptostele media n. sp., Kamerun. Boettger (2), Nachrbl. d. D. malak.

Ges., vol. 42, p. 80.

Subulina maringoensis n. sp., Belgischer Kongostaat. Preston (5). Ann.

Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 59, Taf. 4, Fig. 3. — $. (Itiopiana)

meneliki n. sp., Abessinien. Preston (6), Proc. Malac. Soc., vol. 9,

p. 169, Textfig. — vicina n. sp., Abessinien. Preston (6), ibid., p. 169,

Textfig.. — nympha n. sp., Abessinien. Preston (6), ibid., p. 170,

Textfig. — splendens n.sp., Arabien. Thiele (2), Sitz.-Ber. Ges. Naturf.

Freunde, Berlin, p. 283, Taf. 10, Fiz. 5.

Thapsia gereti n. sp., Belgischer Kongostaat. Preston (5), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8,,vol. 6, p. 58, Taf. 4, Fig. 2. — exasperata n. Sp», Britisch

Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 530, Taf. 8, Fig. 13. — insulsa n. Sp«,

Britisch Ost-Afrika. Preston (1), ibid., p. 531, Taf. 8, Fig. 14. —

innocens n. Sp., Angola. Preston (7), Proc. Malsc. Soc., vol. 9, p. 53,

Textfig.

Systematik. 95

Thaumastus hebes n. sp., Sao Paulo, Brasilien. Strebel, Abh. Naturw. Ver.

Hamburg, vol. 19, p. 9, Taf. 2, Fig. 22.

Thersites (Glyptorhagada) hillieri n. sp., Südl. Central-Australien. Smith

(4), Proc. Malac. Soc., vol. 9, p. 24, Textfig.

Thomsenia nov. subgen, für Scholvienia claritae Streb. Strebel, Abh. Naturw.

Ver. Hamburg, vol. 19, p. 26.

Trichotoxon Voeltzkowi n. sp., Insel Pemba. Simroth (2). Voeltzkows Reise

in Ost-Afrika, vol. 2, p. 593, Textfig. 4, Taf. 26, Fig. 3—4.

Urocyclus Roebucki n. sp., Insel Pemba. Simroth (2), Voeltzkows Reise in

Ost-Afrika, vol. 2, p. 595, Taf. 26, Fig. 12. — riparius n. sp., Komoren.

Simroth (2), ibid., p. 603. — grillensis n. sp, Komoren. Simroth (2),

ibid., p. 603. — morotzensis n. Sp., Ost-Afrika. Simroth (2), ibid., p. 603.

— Bussei n. sp., Ost-Afrika. Simroth (2), ibid. p. 606, Taf. 26, Fig. 13.

Veronicella nilotica n. sp., Oberes Nilgebiet. Cockerell, Nautilus, vol. 23,

p- 108.

Vitrina arabica n. sp., Arabien. Thiele (2), Sitz. Ber. Ges. Naturf. Freunde,

Berlin, p. 281, Taf. 10, Fig. 6.

Zonitoides africanus n.sp., Damara-Land, subfossil. Boettger (1), Abh.

Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 436, Taf. 28, Fig. 2a—c.

D. Scaphopoda.

Dentalium (Laevidentalium) gruveli n.Sp., West-Afrika. Dautzenberg (1),

Actes Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 155, Taf. 3. Fig. 21—23.

E. Lamellibranchiata.

Anodonta siehe auch Anodontites.

Anodonta dakota n. Sp., Süd-Dakota. Frierson (1), Nautilus, vol. 23, p. 113,

Taf. 10.

Anodontites lautus Marts var. tumens n. var., Japan. Haas (5), Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 499.

Arvicula smithi n. sp., Ganjam-Küste, Indien. Preston (3), Records Indian

Mus., vol. 5, p. 35, Textfig. 4.

Bernardina nov. gen., Typus: B. bakeri n. sp., Mexiko. Dall (3:, Nautilus,

vol. 24, p. 171.

Bornia undulata n. sp.,, Barbados. Thiele (3), Zool. Jahrb., Suppl.

11,%p271285 Vai) Eig.,24.

Cardita contigua n.sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 168, Taf. 4, Fig. 4—6.

Cardium kobelti v. Maltz., erstmalig abgebildet bei Dautzenberg (1), Actes

Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, Taf. 4, Fig. 11—12. — guppyi n. Sp.,

Barbados. Thiele (3), Zool. Jahrb., Suppl. 11, p. 129, Taf. 9, Fig. 25.

Clistoconcha nov. gen., Typus: C. insignis n. sp., Natal. Smith (3), Ann.

Natal Govt. Mus., vol. 2, p. 218.

Corbula roumei nov. nomen für C. striata Smith (nee Lam.). — chudeaui

nov. nomen für ©. Kirata Smith (nee Lam.). Dautzenberg (1), Actes

Soc. Linn. Bordeaux, vol. 64, p. 192.

Crenella dollfusi n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 162, Taf. 4, Fig. 1—3.

96 Mollusca» für 1910.

Cristaria discoidea sautteri n. subsp., Formosa. Haas (5), Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 499. — inangulata n.sp., Tonkin. Haas (5),

ibid., p. 499.

Cyamium iridescens n. Sp., Falkland Inseln. Cooper u. Preston, Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 112, Taf. 4, Fig. 6.

Davisia nov. gen., Typus: D. cobbi n.sp., Falkland Inseln. Cooper u.

Preston, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 113, Taf. 4, Fig. 9—10.

Diplodon panco n. sp., Rio Panco, Brasilien. v. Ihering (1), Abh. Senck.

Nat. Ges., vol. 32, p. 132, Taf. 12, Fig. 6&—b. — garbei n.sp, Rio

Sao Jose, Brasilien. v. Ihering (1), ibid., p. 133, Taf. 12, Fig. 7a—b.

— ellipticus santanus n. subsp., Rio Santa Maria, Brasilien. v. Ihering

(1), ibid., p. 134. — hartwrighti n. sp. Goyaz, Brasilien v. Jhering

(1), ibid, p. 135, Taf. 12, Fig. Sa—b.

Fossula brasiliensis n. sp., Bahia. v. Ihering (1), Abh. Senck. Nat. Ges.,

vol. 32, p. 116, Taf. 12, Fig. 1a—b.

Glabaris obtusa juparana n. subsp., Lagoa Juparana, Brasilien. v. Ihering

(1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 131. — duleis n. sp., Minas,

Brasilien. v. Ihering (1), ibid., p. 132, Taf. 12, Fig. sa—b.

Hyriopsis gracilis n. sp., Bienho See, Cochinchina. Haas (3), Nachrbl. d.

D. malak. Ges., vol. 42, p. 101.

Lanceolaria bilirata Marts, erstmalig abgebildet bei Haas (8), Martini-

Chemnitz, IX 2 II, Taf. 4, Fig. 3—5. — laevis Marts, erstmalig ab-

gebildet bei Haas (8), ibid., Taf. 4, Fig. 6.

Lepton orientale n. sp., Golf von Oman. Melvill (3), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 16, Taf. 2, Fig. 29, 29a.

Loripes aberrans n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 198, Taf. 4, Fig. 15— 17.

Lueina subfragilis n. sp., West-Afrika. Dautzenberg (1), Actes Soc. Linn.

Bordeaux, vol. 64, p. 195, Taf. 4, Fig. 13—14.

Macoma schulizei n. sp., Lüderitzbucht. Thiele (4), Denkschr. med. Ges.,

Jena, vol. 16, p. 270.

Malvinasia nov. gen., Typus: M. arthuri n. sp., Falkland Inseln. Cooper

u. Preston, Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 113, Taf. 4, Fig. 7—8.

Martesia delicatula n. sp., Bengalischer Meerbusen. Preston (2), Records

Indian Mus., vol. 5, p. 119, Textfig.

Mierodontia ovata n. sp., Neu-Guinea. Haas (3), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 100.

Modiola jenkinsi n.sp., Chilkna See, Manikpatna. Preston (2), Records

Indian Mus., vol. 5, p. 36, Textfig. 5.

Modiolarca gemma n. sp., Falkland Inseln. Cooper u. Preston, Ann. Mag.

Nat. Hist., Ser. 8, vol.5, p. 112, Taf. 4, Fig. 4. — picturata n. Sp.

Falkland Inseln. Cooper u. Preston, ibid., p. 112, Taf. 4, Fig. 5.

Musculium pusillum n. sp., Michigan. Sterki (1), Nautilus, vol. 24, p. 3.

Mutela opalescens n. Sp., Shire-Fluß nahe dem Nyassa-See. Preston (5),

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 62, Taf. 4, Fig. 12. — cuneata

n. sp., Karonga am Nyassa-See. Preston (5 , ibid., p. 62, Taf. 5, Fig. 13.

M ycetopoda orbignyi n. sp., Brasilien. v. Ihering (1), Abh. Senck. Nat. Ges.,

vol. 32, p. 121. — krausei n. sp., Brasilien. v. Ihering (1), ibid., p. 121,

Systematik. 97

Taf. 12, Fig. 2a—b. — bahia n.sp., Rio Sao Franeisco, Brasilien.

v. Ihering (1), ibid., p. 122, Taf. 12, Fig. 3a—b.

Nodularia persculpta n. sp., China. Haas (3), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 98; abgebildet bei Haas (8), Martini-Chemnitz, IX 2 II,

Taf. 10, Fig. 4—7. — verrucosa n. sp., Nil. Haas (3), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 98. — continentalis n. Sp., Hunan. Haas (5),

Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 496; abgebildet bei Haas (8),

Martini-Chemnitz, IX 2 II, Taf. 9, Fig. 4—5. — denserugata n. Sp.,

Hainan. Haas (5), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 496; abge-

bildet bei Haas (8), Martini-Chemnitz, IX 2II, Taf. 8, Fig. 3—4. —

updulata n. sp., Hainan. Haas (5), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6,

p- 497; abgebildet bei Haas (8), Martini-Chemnitz, IX 2II, Taf. 10,

Fig. 2—3. — douglasiae crassidens n. subsp., China. Haas (5), Ann.

Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 499; abgebildet bei Haas (8), Martini-

Chemnitz, IX 2 II, Taf. 7, Fig. 4—5.

Pandora perangusta n. Sp., Bengalischer Meerbusen. Preston (2), Records

Indian Mus., vol. 5, p. 120, Textfig.

Parreyssia hunanensis n. sp., Hunan. Haas (3), Nachrbl. d. D. malak. Ges.,

vol. 42, p. 97.

Peeten islandicus var. scotica n. var., Shetland-Faröer Kanal. Simpson,

Journ. of Conch., vol. 13, p. 110.

Pisidium zugmayeri n. Sp., Kaschmir. Weber, Zool. Jahrb., Abt. f. Syst.,

vol. 29, p. 310.

Pressidens, nov. gen. der Unioniden. Typus: P. moellendorffi n. sp., Palawan.

Haas (3), Nachrbl. d. D. malak. Ges., vol. 42, p. 102.

Psephis foveolata n. sp., Falkland Inseln. Cooper u. Preston, Ann. Mag. Nat.

Hist., Ser. 8, vol. 5, p. 114, Taf. 4, Fig. 11.

Pseudunio nov. gen. für Unio sinuatus Lam. Haas (6), Nachrbl. d. D.

malak. Ges., vol. 42, p. 181.

Ptychorhynchus laevis n. sp., Sachalin. Haas (5), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 498.

Sazxicava lirata n. sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus., vol. 2,

p- 214, Taf. 8, Fig. 6, 6a. — arenacea n.sp., Natal. Smith (3), ibid.,

p- 215, Taf. 8, Fig. 7.

Spatha kamerunensis n. sp., Kamerun. Walker (2), Nautilus, vol. 24, p. 38,

Taf. 3, Fig. 1—2. — approximans n. sp., Shire-Fluß nahe dem Nyassa-

See. Preston (5), Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8, vol. 6, p. 63, Taf. 5,

Fig. 14. — bertilloniana n. sp., Karonga am Nyassa-See. Preston (5),

ibid., p. 63, Taf. 5, Fig. 15.

Sphaerium lineatum n.sp., Indiana. Sterki (3), Nautilus, vol. 23, p. 142.

Sphenia natalensıs n. Sp., Natal. Smith (3), Ann. Natal Govt. Mus., vol. 2,

p- 214, Taf. 8; Rip. 5, ba.

Tetraplodon juruanus n.sp., Rio Juruä, Brasilien. v. Ihering (1), Abh.

Senck. Nat. Ges., vol. 32, p. 126. — baro n. sp., Amazonas. v. Ihering

(1), ibid., p. 127. — ambiguus Lam., Lamarcks Originalexemplar ab-

gebildet bei v. Ihering (1), ibid., Taf. 12, Fig. da—d.

Truneilla lewisi n.sp., Tennessee. Walker (3), Nautilus, vol. 24, p. 42,

Taf. 3, Fig. 4-5.

Archiv für Naturgeschichte 7

1911. VI. 1.

98 Mollusca für 1910. Systematik.

Unio batavus sabulosus n. subsp., Riedbäche (Rheingebiet.,. Haas (4),

Nachrbl. d. D. malak. Ges., vol. 42, Beilage 4, p. 59. — batavus badensis

n. subsp., Kraichgau (Rheingebiet). Haas (4), Nachrbl. d. D. malak.

Ges., vol. 42, Beilage 4, p. 60. — batavus hassiae Haas, erstmalig ab-

gebildet bei Haas (1), Abh. Senck. Nat. Ges., vol. 32, Taf. 14, Fig. 14

—15. — batavus pseudocrassus Haas, abgebildet bei Haas (1), ibid.,

Taf. 14, Fig. 16; Taf. 15, Fig. 13. — tumidus lauterborni Haas, ab-

gebildet bei Haas (1), ibid., Taf. 14, Fig. 10. — kinkelini Haas, ab-

gebildet bei Haas (1), ibid., Taf. 13, Fig. 6—9. — angoniensis N. SP«s

Angoniland, Britsch Central-Afrika. Preston (5), Ann. Mag. Nat. Hist.,

Ser. 8, vol. 6, p. 59, Taf. 4, Fig. 5. — charon n. Sp., Silongwe, Britisch

Central-Afrika. Preston (5), ibid., p. 60, Taf. 4, Fig. 6. — vicinus n. Sp-,

Silongwe, Britisch Central-Afrika. Preston (5), ibid., p. 60, Taf. 4,

Fig. 7. — choziensis n. sp., Fluß Chozi nahe Bangweolo-See, Central-

Afrika. Preston (5), ibid., p. 60, Taf. 4, Fig. 8. — gereti n. sp., Tanga-

nyika-See. Preston (5), ibid., p. 61, Taf. 4, Fig. 9. — mashonae n. Sp

Mashona-Land. Preston (5), ibid., p. 61, Taf. 4, Fig. 10. — shireensis

n. Sp., Shire-Fluß nahe dem Nyassa-See. Preston (5), ibid., p. 61,

Taf. 4, Fig. 11. — consentaneus thayacus n. subsp., Thaya-Fluß, Öster-

reich. Kobelt (5), Roßmäßlers Iconographie der europäischen Land-

und Süßwasser-Mollusken, N. F., Bd. 15, p. 69, Taf. 414, Fig. 2410,

2411. — U. c. langi n. subsp., Neutra, Ungarn. Kobelt (5), ibid., p. 70,

Taf. 415, Fig. 2414. — U. c. hohenwarti n. subsp., Krösenbach, Kärnthen.

Kobelt (5), ibid., p. 78, Taf. 418, Fig. 2427. — U. c. gallensteini n. subsp»,

Krösenbach, Kärnthen. Kobelt (5), ibid., p. 79, Taf. 418, Fig. 2428. —

U. c. subterminalis n. subsp., Krösenbach, Kärnthen. Kobelt (5), ibid.,

p- 80, Taf. 418, Fig. 2429. — brandisi n. sp., Bosna bei Lasva, Bosnien.

Kobelt (5), ibid., p. 82, Taf. 419, Fig. 2434, 2435. — travnicensis

n. sp., Lasva, Bosnien. Kobelt (5), ibid., p. 83, Taf. 420, Fig. 2436— 2438.

— thayacus var., Thaya. Kobelt (5), ibid., p. 84, Taf. 420, Fig. 2439.

— U. c. ostiorum (Brot) Servain, erstmalig abgebildet bei Kobelt (5),

Roßmäßlers Iconographie der europäischen Land- und Süßwasser-

Mollusken, N. F., Bd.17, Taf. 451, Fig. 2442. — batavellus (Let.)

Locard, abgebildet bei Kobelt (5), ibid., Taf. 452, Fig. 2443. — sub-

ammicus Locard, abgebildet bei Kobelt (5), ibid., Taf. 452, Fig. 2444,

2445. — consentaneus minor n. subsp. (= amnicus Mortillet nec Zglr.),

Bonneville, Savoyen. Kobelt (5), ibid., p. 20, Taf. 455, Fig. 24582. —

consentaneus ovatus Studer, abgebildet bei Kobelt (5), ibid., Taf. 455,

Fig. 2459, 2460. — consentaneus elongatus n. subsp., Vierwaldstätter

See. Kobelt (5), ibid., p. 20, Taf. 455, Fig. 2461. — consentaneus boda-

micus n. subsp. et var., Bodensee. Kobelt (5), ibid., p. 21 u. 22, Taf. 456,

Fig. 2465— 2469. — consentaneus biaudeti n. subsp., Rhöne oberhalb

des Genfer Sees. Kobelt (5), ibid., p. 22, Taf. 457, Fig. 2470. — con-

sentaneus dilatatus Studer, abgebildet bei Kobelt (5), ibid., Taf. 457,

Taf. 2472. — consentaneus abnobae n. subsp., oberste Donau bei Beuron,

Tuttlingen und Innigkofen. Kobelt (5), p- 23, Taf. 458, Fig. 2473

— 2477. — consentaneus elongatus Clessin, erstmalig abgebildet bei

Kobelt (5), Taf. 459, Fig. 2478.

Brachiopoda für 1910.

Publikationen über diese Gruppe liegen nach Angabe des

betreffenden Bearbeiters nicht vor.

Solenogastres für 1910.

Publikationen über diese Gruppe liegen nach Angabe des

betreffenden Bearbeiters nicht vor.

Polyplacophora für 1910.

Publikationen über diese Gruppe liegen nach Angabe des

betreffenden Bearbeiters nicht vor.

Bryozoa für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Annandale, N. (1). A new Species of F'redericella from Indian

Lakes.. Rec. Indian Mus., vol. 3, 1909, p. 373—374. — Fr.

indica n. Sp.

— (2). Materials for a Revision of the Phylactolaematous

Polyzoa of India. op. cit. vol. 5, p. 37—57.

— (3) Contributions to the fauna of Yunnan based on

collections made by G. Coggin Brown, B. Sc. 1909—1910. Part 1.

Sponges and Polyzoa. t.c. p. 197—199.

— (4). Note on a freshwater Sponge and Polyzoon from

Ceylon. Spolia Zeylanica Colombo, vol.7, 1910, p. 63—64,

I: pkı (f):

Banfield, Arthur €. Premature hatching of Cristatella mucedo.

Knowledge, London, N.S. 7, 1910, p. 487.

tBower, €. R. and Farmery, G. R. The zones of the Lower

Chalk of Lincolnshire. With a list of new records from the Red

Chalk of the County. Proc. Geol. Assoc. London, vol. 21, p. 333

—359, pl. XXVII.

tBrydone, R. M. Notes on new or imperfectly known Chalk

Polyzoa. Geol. Mag. London, Dec. V, vol. 7, 1910, p. 4-5, 76—77;

145—147, 258—260, 390—392, 481—483, pls. III, VIII, XIV,

100 Bryozoa für 1910.

XXX, XXXI XXXVI —p. 4—5. Membranipora humiliatan.sp.,

M. anterides n.sp. u. M. Trimmingamensis. — p. 76—77. M.

invigilata n.sp., britannica Brydone, nebst 2 neuen Varr. —

p- 145—147. 4 weitere M.-Formen (M. sagittaria n. sp., M. dolium

n. sp., M. anguiformis n. sp. und M. Langi n. sp.), die durch ihre

Avicularien einander nahestehen, deren Seitenwände über ein

tiefliegendes Feld gefaltet sind. — p. 258—260. M. woodwardi

n. sp., M. coralliformis n. sp., Pseudostega n. g., cantiana n. sp. —

p. 390—392. Zhagasostoma Novakı nom.nov. und Rh. Nowaki

var. anglica n., Cribrilina claviceps n.sp., Or. furcifera n. sp., Or.

Filliozati n.sp., die Or.-Spp. sind keine typischen Formen, bei

zwei derselben sind die Furchen gänzlich imperforiert; auch die

Vorderwände weichen vom Crib.-Typus ab ete. — p. 481—483.

Steginopora denticulata n. sp., St. gravensis n. sp., Membraniporella

jallax n.sp. und M. pustulosa n. sp. — Die beiden Steginopora

stellen ein sehr frühzeitiges Stadium in der Entwicklung der

Steginoporidae dar, und es ist merkwürdig, daß keine Sp. dieser

Familie in einer früheren Schicht des Englischen Kalks gefunden

worden ist.

von Buddenbrock, W. Beiträge zur Entwicklung der Stato-

blasten der Bryozoen. Zool. Anz., Bd. 35, p. 534—538. — Seine

im Sommer 1909 zum Abschluß gebrachten Untersuchungen be-

ziehen sich auf Plumatella repens und Cristatella mucedo.. Von

früheren Autoren haben sich mit der Statoblastenbildung be-

schäftigt Nitsche (1868); Verworn (1887); Braem (1890); Kraepelin

(1892); Oka (1891) und Rabito(1895). Die wichtigsten Arbeiten

sind die von Braem u. Kraepelin über die Entwicklungsgeschichte

der Süßwasserbryozoen. Ihre Ergebnisse weichen aber von ein-

ander sehr wesentlich ab. Verf. hält die Beobachtungen Braems

für die richtigen. In einigen Punkten gelang es ihm, die Beob-

achtungen dieses Forschers zu erweitern und das Bild der Ent-

wickelung der Statoblasten zu vervollständigen. Die ausführliche

Arbeit soll erscheinen in der Zeitschr. f. wiss. Zool. — Der Funiculus

legt sich an als eine Wucherung des Peritonealepithels am proxi-

malen Ende des Darmes der jungen Knospe. Diese Wucherung

löst sich in ihrem distalen Teil von der Wand der Knospe ab und

bleibt nur am proximalen Ende mit ihr verbunden, so daß der

Funiculus als kurzer Zapfen frei in die Leibeshöhle vorragt. Er

wächst stark in die Länge und nähert sich mit dem freien Ende

der Koloniewand, deren Peritonealzellen ihm entgegenwachsen und

sich mit ihm verbinden. Die Beobachtungen über die nächste

Entwicklungsperiode decken sich völlig mit denen Braems. Sowohl

bei Plumatella als bei Cristatella wandern Ektodermzellen unter

Durchbrechung der trennenden Muskelschicht aus der Kolonie-

wand in den Funiculus ein. Bei Cristatella gruppieren sie sich zu

einer Zellkugel (cystogene Hälfte des einzigen Statoblasten), bei

Plumatella bilden sie den sog. Keimstock, von dessen proximalem

Ende sich späterhin sukzessiv die cystogenen Zellkugeln der hier

Publikationen und Referate. 101

zahlreichen Statoblasten ablösen. Die Einwanderung der Ekto-

dermzellen in den Funiculus vollzieht sich bei beiden Arten in

etwas verschiedener Weise. Bei Plum. bohren sich die einwandern-

den Ektodermzellen bis tief in das Innere des Funiculus ein, bei

Crist. handelt es sich nur um ein Vorstülpen der beiden die Kolonie-

wand bildenden Blätter nach innen gegen die Basis des Funiculus,

also um keine eigentliche Einwanderung. — Die sogenannte

Bildungsmasse der Statoblasten entsteht aus dem Mesoderm-

gewebe des Funiculus. Sie tritt bei beiden Formen kurz nach

Entstehung der ersten Zellkugeln auf, bei Crist. proximalwärts

von der cystogenen Hälfte des Statoblasten, bei Plum. neben

dem proximalen Ende des Keimstocks, und zwar auf der der

Knospe zugekehrten Seite des Funiculus.. Die Bildungsmasse

wächst sehr lebhaft und zieht als voluminöses Gebilde am ganzen

Keimstock entlang. Beim ersten Statoblasten ruft die cystogene

Zellkugel die Entstehung der Bildungsmasse hervor; die späteren

cystogenen Zellkugeln finden bei ihrer Ablösung vom Keimstock

bereits die ihnen zur Weiterentwicklung nötige Bildungsmasse

vor, wodurch eine wesentliche Abkürzung der Zeit erreicht wird,

die zur Ausbildung des einzelnen Statoblasten nötig ist. Die

große biologische Bedeutung dieses Vorganges wurde bisher an-

scheinend übersehen. Das Peritonealepithel des Statoblasten

entsteht aus der äußersten Zellage des die Bildungsmasse dar-

stellenden Mesodermmaterials. Die Muskulatur des Funiculus von

Plum. ist mesodermalen Ursprungs (mit Braem contra Kraepelin,

der für die ektodermale Herkunft eintritt). Die Beobachtungen

über die Weiterentwicklung der Statoblasten decken sich mit

denen Braems. Sie wird hauptsächlich charakterisiert durch die

Umwachsung der Bildungsmasse durch die cystogene Hälfte, die

sich zunächst in eine flache Scheibe verwandelt. Beim erwachsenen

Statoblasten ist dementsprechend die Bildungsmasse von 2 Ekto-

dermhüllen umgeben, deren innere das Ektoderm des zukünftigen

Tieres bildet, während die äußere alle chitinigen Teile des Stato-

blasten, den Diskus und den Schwimmapparat aus sich hervor-

gehen läßt. Die Bildungsmasse wird zum größten Teile in Dotter

verwandelt, die peripheren Zellen bleiben zum Teil unverändert

und liefern das Mesoderm des zukünftigen Tieres. Verf. cha-

rakterisiert dann noch kurz die Bildung des Schwimmrings, der

Horizontal- und Vertikallamellen und der Luftkammern.

— (2). Beiträge zur Entwicklung der Statoblasten der

Bryozoen. Zeitschr. f. wiss. Zoologie Leipzig, Bd. 96, 1910, p. 477

—524, 3 Taf. — Ist die ausführliche Publikation zu No. 1.

tClarke, John M. Early Devonie history of New York and

Eastern North America. Albany Univ. N.Y. Mem. St. Mus.,

vol. 9, pt. 2, 1909 [= Rept. 62, 4, p. 1—250, 34 pls. (I—XXXIV)].

tClough, €. T., Lee, G. W. fand others]. The Geology of East

Lothian, including parts of the Counties of Edinburgh and Berwick.

Mem. Geol. Surv. Scot., 1910, p. 1—226, pal. app. 206—217.

102 Bryozoa für 1910.

Combes, Paul. La faune halolimnique Africaine. Cosmos,

Paris, T. 61, 1909, p. 705— 70%.

Crema, C. siehe Parona, (. F.

Davidson, W. Cameron. The freshwater Polyzoon Oristatella

mucedo from Kilmacolm. Glasgow Natur., vol. 2, 1909, p. 15—16.

Drake, Henry C. and Sheppard Thomas. Classified List of

Organic Remains from the Rocks of the East Riding of Yorkshire.

P., Yorkshire Geol. Soc., vol. 17, 1910, p. 4—71.

+Fabiani, Ramiro. Paleontologia dei colli Berici. Mem. Soc.

Romana, XLIII, vol. 15, p. 45—250, pls. I-VI.

+Filliozat, Marius. Nouveaux bryozoaires cheilostomes de la

eraie. Bull. Soc. geol. Paris, ser. 4, T. 8, 1909, p. 554-560. —

Die im folgenden vom Verf. beschriebenen Bryozoa scheinen gut

die verschiedenen Schichten zu charakterisieren, in denen er sie

zu Vendöme oder in der Umgebung angetroffen hat. Sie können

vorteilhaft zur Abgrenzung der von ihm aufgestellten Kreide-

Zonen verwendet werden.

Schicht mit Marsupites testudinarius: 1. Weißlicher, mürber

Infusorienkalk. — 2. Sandiger, gelblicher Kalk mit Floridina

Cottreaui n.sp., Smittipora oculata n.sp. und Coscinopleura vin-

docinensis n. sp. — 3. Sandiger Kalk mit Rhagasostoma parvicella

Fillioz., Melicertites sp.

Schicht mit Onychocella nerei. 1. Weißlich-gelber Kalk mit

Rhagasostoma Oegon D’Orb. — 2. Weißlicher, mehlartiger Kalk

mit Rhagasostoma antiopa d’Orb.

Schicht mit Crania ignabergensis. 1. Mergeliger, weißlicher

Kalk mit Semicyrtis fenestrata d’Orb., Sparsieytis arbuscula Fillioz.,

Cea rhomboidalis d’Orb., Rhagasostoma spatulata n. sp. — 2. Merge-

liger Kalk mit Flustrina simplex d’Orb., Rosseliana Canur n. sp.,

Rhagasostoma lanceolata n. sp. — 3. Mergeliger Kalk mit Membrani-

pora ledensis n. sp., Euritina obtorta n. sp. — 4. Kieseliger, gelb-

licher Kalk mit Elea hexagona d’Orb. und Semiclausa angulosa

d’Orb.

Neu werden beschrieben Vertreter folgender Gatt.: Membrani-

pora (1), Floridina (1), Smittipora (1), Euritina (1), Coscinopleura

(2), Rosseliana (1), Rhagasostoma (2). Abb. zu, den einzelnen Spp.

finden sich auf der beigegebenen Tafel XIII.

+Foerste, Aug. F. Characteristie fossils of the Silurian forma-

tions of east central Kentucky, chiefly from the Waco limestone

horizon. (The Silurian, Devonian and Irvine formations of east-

central Kentucky, Part 3). Geol. Surv. Bull. Louisville, Kentucky,

vol. 7, 1906, p. 293—346, pls. I—-VII.

+Fraas, E. Der Petrefaktensammler. Ein Leitfaden zum

Sammeln und Bestimmen der Versteinerungen Deutschlands.

Stuttgart, (K. G. Lutz), 1910, p. 1—276, pls. I-LXXI.

+Girty, Georg H. New Genera and Species of Carboniferous

Fossils from the Fayetteville Shale of Arkansas. Ann. Acad. Sci.

New York, N. Y., vol. 20, 1910, p. 189—238. — Die} Fayetteville-

Publikationen und Referate. 103

Schicht trägt ihren Namen nach ihrem Vorkommen um Fayette-

ville im nordwestlichen Arkansas. Charakter und Verbreitung

sind genauer beschrieben im Fayetteville-Folio (U. S. Geol. Survey

folio 119, 1905). Sie ist eine schwarze, spaltbare Schicht mit Sand-

und Kalkstein-Lagern und erreicht eine Dicke bis zu 200 Fuß, die

sie einer im mittleren Teile befindlichen Sandsteinmasse verdankt.

Der mehr oder minder unreine Kalk birgt zahlreiche Fossilien,

darunter auch viele neue Bryozoa, die Verf. p. 189—214 beschreibt.

Es sind die folgenden: Fistulipora (2 n. varr.), Batostomella

(3 n.sp.), Dyscritella subg. n. (2 n.sp.), Stenopora (7 n.spp. +

6 n. varr.), Amphiporella subg.n. (1 n. sp.), Coeloclemis subg. n.

(1 n.sp.), Pyenopora subg.n. (3 n.spp.), Stenocladia subg. n.

(1. n. sp.), Syringoclemis n.g. (1 n. sp.), Polypora (1 n. sp.), Septo-

pora (1 n.sp.), Rhombopora (1 n. var.), Streblotrypa (1 n. var.),

Coeloconus (1 n.sp.), Idioclema n.g. (1 n.sp.), Collocladia n. g.

(1.n.sp.), Oystodietya (1 n. var.).

tGregory, J. W. Catalogue of the Fossil Bryozoa in the De-

partment of Geology, British Museum (Natural History). The

Cretaceous Bryozoa, vol. II, 8°, p. XLVIII, 346, 9 pls., 75 figs.

in the text. London: printed by the order of the Trustees of the

Museum, 1909. — Bd. I, der die Juraschichten behandelte, erschien

1896; Bd. II wurde 1899 veröffentlicht. Der vorliegende Band

bespricht die Formen der Kreidefelsen. Bd.TIV soll das in der

Zwischenzeit reichlich angewachsene Material nebst den C'heilosto-

mata bringen und von W.D.Lang, dem jetzigen Verwalter der

fossilen Bryozoa des Museums, bearbeitet werden. Die allgemeine

Einleitung des Bd. III bringt interessante Punkte aus der Ent-

wicklung der Gruppe während ihrer geologischen Epoche. Die

hauptsächlichsten Typen der Jetztzeit haben nach Ansicht des

Verfassers ihren Ursprung in der Kreidezeit, und es läßt sich eine

Trennungslinie zwischen den Palaeobryozoa und Neobryozoa an-

nähernd zwischen der Jura- und der Kreidezeit ziehen. Folgende

drei Ordnungen der Bryozoa reichen aufwärts vom Jura bis in die

Kreide: 1. Die Trepostomata, Formen mit massivem Zoarium und

röhrenförmigen Zooecien. Sie sind in den paläozoischen Felsen

sehr zahlreich vertreten. Gregory hat zahlreiche Arten des Jura

hierher gestellt und findet, daß sie in der unteren Kreide am

reichlichsten sind, in der oberen Kreide seltener und kleiner werden.

Die Ordnung hat sich bis in die kainozoische Zeit erhalten. Ulrich,

der Begründer der Ordnung, ist der Ansicht, daß keine Beweise

dafür vorliegen, daß sich die Gruppe länger als bis in die paläo-

zoische Formation erhielt, und er stellt zu den C'yclostomata zahl-

reiche Gattungen, die Gregory zu den Trepostomata gerechnet hat.

— 2. Cyclostomata. Sehr zahlreiche Gruppe, in den Kreidefelsen

vorherrschend. Gregory teilt sie in die Unterordnungen der

Tubulata, Dactylethrata und Cancellata. — 3. Cheilostomata. Sie

treten zuerst im Jura auf; es sind jedoch nur 2 Spp. bekannt. An

Bedeutung gewinnen sie in der Oberkreide und bilden jetzt die

104 | Bryozoa für 1910.

vorherrschende Gruppe in den rezenten Meeren. In der be-

schreibenden Nomenclatur führt der Verf. neue Termini ein, resp.

vertritt bereits von ihm gebrauchte. ‚„Gonocyst‘ ist ein be-

sonderer Typus von Ovicellus (bei einigen C'yclostomata); da er

sich von einem ‚„Gonoecium‘“ dadurch unterscheiden soll, daß er

nicht aus der Modifikation eines einzelnen Zooecium hervor-

gegangen sein soll. Nach Harmer ist jedoch der Ovicellus bei

allen Cyelostomata wahrscheinlich ein modifiziertes Zooecium.

‚„Epizoarium“ für ‚„Epitheca‘“. „Cancelli“ sind Zwischenräume

interzooezischen Ursprungs, welche entweder als einfache oder

verzweigte Tubuli oder als Maculae, runde Flecke oder Räume

in den Wandungen der Zooecien zurückbleiben. ,‚Mesoporen“

sind zu dimorphen Zoarien abortierte Zooecien. Bei den Disco-

porellidae (Lichenoporidae) ist der Unterschied zwischen Cancelli

und Discoporellidae sehr schwer. Nimmt man nun das erstere an,

so gehören sie zu den Cancellata, im letzteren Falle zu den Trepo-

stomata. Gregory bespricht dann die verschiedenen Klassifikations-

systeme der C'yclostomata. Die Meinungen gehen hier weit aus-

einander; jedenfalls macht sich aber für die fossilen Vertreter das

Bedürfnis nach einer umfassenden Einteilung geltend. Von

primärem systematischen Charakter sind besonders die Beschaffen-

heit des Zoariums, die allgemeine Gestalt des Zooeciums, die

lineare, radiale oder irreguläre Anordnung der Zooecien, der solide

oder gegitterte Bau des Skeletts beachtenswert. — Bezüglich der Be-

schaffenheitder Zooecien lassen sichdrei Typen unterscheiden: a)ein-

fache, röhrenförmige, monomorphe Zooecien mit soliden Wänden;

b) monomorphe Zooecien, deren Wände durch Höhlungen per-

foriert sind — die Cancelli; c) dimorphe Zooecien, von denen die

einen zu Stützelementen im Zoarium absorbiert sind. Nach ihrem

jetzigen Vorkommen im Englischen Kalk nimmt Verf. an, daß die

Bryozoa in ihrer Verbreitung oft eingeschränkt waren und so den

Wert zonaler Fossilien besitzen. — Die systematische Beschreibung

umfaßt zunächst die O'yclostomata der Kreide, die in Bd. I nicht

abgehandelt wurden. Von diesen gehören zu den T’ubulata die

Familien der Crisiidae, T'heonoidae, Fascigeridae und Osculiporidae

und zu den Cancellata die Desmeporidae. Zu den Trepostomata

gehören die Cerioporidae, die Heteroporidae, die Zonatulidae, die

Radioporidae und Cameroporidae. Zur Subklasse der Phylacto-

laemata gehört die Familie der Plumatellidae. Ferner sind im vor-

liegenden Bande Berichtigungen und Ergänzungen zu folg. Familien

der Cyclostomata gebracht: Diastoporidae, Idmonidae, Entalo-

phoridae, Eleidae, Horneridae, Petaloporidae und COlausidae. Bei

der Beschreibung der Arten wurde die schon in den früheren

Bänden befolgte Anordnung beibehalten: Ausführliche Syn-

onymie, Diagnose, Größe, Verbreitung, Abbildung und Ver-

wandtschaft. Hieran reiht sich eine Liste der Museumsexemplare

mit Bemerkungen über Zahl, Einzelheiten ete. Gleichzeitig sind

auch die Beschreibungen und Literaturbemerkungen aller Kreide-

Publikationen und Referate. 105

Bryozoa gebracht. So sind im vorliegenden Bande insgesamt

308 Arten behandelt, die sich auf 67 Gattungen verteilen. Das

Mus. Brit. besitzt davon 103 Arten in 38 Gatt. Zum Schluß folgt

eine Liste der Hauptfundorte für Kreide-Bryozoa (außerhalb

Englands) und ein sorgfältiges Literaturverzeichnis. Mehrere

Indices dienen zum leichten Auffinden der behandelten Spp., und

9 ausgezeichnet gelungene Tafeln erläutern das Ganze.

Hfarmer], 8. F. Polyzoa. [In] Encyclopaedia Britannica,

Ed. 11, 1910, vol. 22, p. 42—45.

Harmer, S.F. fPresidential Address. Rep. Brit. Assoc.,

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Bd. 2, Hit. 3, 1910, XIVa, p. 1-9 = Ber. Naturg. nied. Tiere,

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tJanisevskij, M. E. @®ayıa Hu;KHe-KaMmeHHOYTOJBHATO

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bouring Islands. Journ. Linn. Soc. London, vol. 30, p. 275—314,

pls. 33—42. — Vorbemerkungen über das Material und Zu-

sammenstellung einer Literatur. Die Gesamtzahl der Polyzoa in

der vorliegenden Aufzählung beträgt 139, von diesen hat Busck

in seinen Publikationen von 1858—1861 45 Spp. gebracht. Hincks

zählte 24 auf, von denen 21 für die Fauna neu sind. Waters zählte

52 Spp. auf, von denen 28 zuvor nicht erwähnt sind, und Mr. John-

son beschreibt 7 Spp., von denen 6 vorher nicht bekannt waren.

Vorliegende Publikation bringt 39 neue Spp., so daß die Zahl der

Spp. auf 139 steigt, von denen der Verf. 114 selbst gesehen hat.

106 Bryozoa für 1910.

Die Spp. verteilen sich folgendermaßen: Polyzoa: Subel. 1.

Entoprocta: Ascopodaria (1). — Subel. 2. Ectoprocta: ord. Gymno-

laemata. Subordo Cyclostomata: Crisia (3), Stomatopora (1),

Tubulipora (2), Idmonea (4+1 n.sp.), Filisparsa (1 in 2 varr.+

1 n.var.), Hornera (1), Entalophora (2+1 nom. nov.), Frondi-

pora (1), Lichenopora (3), Diastopora (1). — Subordo Ütenostomata :

Aleyonidium (1.n. sp.), Lobiancopora (1). — Subordo Cheilostomata :

Aethea (3), Pasithea (1), Gemmellaria (1), Serupocellaria (7+1

n. var.), Caberea (1), Bugula (6), Beania (1), Mollia (1), Hincksina

(2), Membranipora (3), Callopora (2), Crassimarginatella (2), Antro-

pora (1), Rosseliana (1), Membraniporella (2+1.n. var.), Cupularia

(4), Cribrilina (4+1 n. var.), Cellularia (2+1 n.sp.), Micropora

(1), Onychocella (1), Setosella (1), Calpensia (1), Onchoporella (1).

Die Gattungen Catenicella (1), Catenaria (1) und Alysidium.

Halysis n.g. (1), Reptadeonella (1), Adeonellopsis (1), Fenestrulin«

(1), Microporella (5). Tessaradoma (1), Trypostega (1), C'horizo-

pora (1), Hippothoa (2), Porella (5), Rhynchopora (1), Retepora

(2), Psileschara (1), Smittina (3), Escharina (4), Schizoporella

(6+2 n.spp.), Escharoides (1), Escharella (1 n.sp.), Lepralia (9),

Hemicyclopora (1), Phylactella (2), Lagenipora (2+1 n.sp.), Celle-

pora (+1 nom. nov.). — Tafelerkl. (p. 312—314).

— (2). Museum Normanianum, or A Catalogue of the In-

vertebrata of Europe, and the Arctic and North Atlantie Oceans,

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Von Bryozoa werden erwähnt (p. 212) resp. beschr.: Orisinella

Wimani n. sp., Monotrypa (?) sp. — Beschr. der neuen Sp. p. 294

—295 nebst Abb. auf pl. XXIII, Figs. 1—3.

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108 Bryozoa für 1910.

Übersicht nach dem Stoff.

Allgemeines: Harmer (1). — Leitfaden zum Sammeln und Bestimmen

der Versteinerungen Deutschlands: Fraas. — Bibliographie. Jahres-

berichte: Hentschel (1) (Bryozoa für 1907), (2) (desgl. für 1908). — Kata-

loge: Loppens (Süßwasser-Bryozoa), Norman, Sheppard. — Bibliographie

und Übersicht über die neueren Publikationen bezüglich der Biologie der

britischen Meeresgebiete: Pace, S. u. R.M. — Experimentelle Zoologie:

Przibram (Regeneration). — Material von Museen und Sammelausbeuten:

Collection von Canon Norman: Norman (Katalog). — Collection von

Crossland und Hartmeyer im Roten Meer: Waters. — „Lether,,-Colleetion

aus dem Jura von Yorkshire: Sheppard. — Morphologie. .‚Nephridien‘

bei den Phylactolaemata: Willem. — Aviecularia und Vibracula: Harmer (2).

— Physiologie. Verdauungsenzyme von Cellaria fistulosa: Roaf. — Ent-

wicklung ete,. Statoblasten der Bryozoa: Buddenbrock (1, 2). — Vorzeitiges

Ausschlüpfen bei Cristatella mucedo: Banfield. — Regeneration bei den

Bryozoa: Przibram. — Wachstum von Bipora: Maplestone (1). — Etho-

logie. Lebensweise: Maplestone (1) (von Bipora). — Commensalismus,

Parasitismus: DBuddenbrockia plumatellae, eine neue Mesozoenart aus

Plumatella repens und Pl. fungosa: Schröder. — Spongilla proliferens auf

Pectinatella burmanica: Annandale (4). — Aetiologie. Merkmale für die

Einteilung der Ctenostomata: Waters. FIRE

Faunistik.

Rezente Formen.

Meeresformen.

EUROPA. England: Yorks, Redear: Woods. — Ireland: Dublin

Distrikt: Nichols. — Rußland. Ladoga-See und Newa: Skorikov. — Golf

von Neapel: Fauna der Taubenbank: Walther.

ASIEN, AFRIKA. Rotes Meer: Waters (Aetea n. sp.). — Halolim-

nische Fauna von Afrika: Combes.

AUSTRALIEN. Süd: Busen von St. Vincent: Maplestone (2) (Celle-

pora verticalis n.sp.), (3) (Parmularia obliqua).

AMERIKA. Nordwestküste: Robertson (C'yclostomata).

Süßwasserformen.

EUROPA. Loppens (Fauna aquatica). — Sehottland: Kilmacolm:

Davidson (Oristatella mucedo). — Schweiz: L. Cavloceio: Zschokke (Frederi-

cella sultana).

ASIEN. Indien: Annandale (2) (Phylactolaemata). — Yunnan: Annan-

dale (3) (Plumatella javanica). — Westl.-Indien: Annandale (1) (Fredericella

indica n.sp.). — Ceylon: Annandale (4) (Pectinatella burmanica).

Fossile Formen.

ORDOVICIAN-FORMATION. England: Cumberland: Reed (Cristatella

n. sp.). — Italien: Karnien: Vinassa de Regny (Berenicea n. sp., Fenestella

n.SP., Polypora n. Sp.).

SILUR-FORMATION. Vereinigte Staaten: Kentucky: Foerste (Meeko-

pora,,a.'sp.).

Faunistik. Systematik. 109

DEVON-FORMATION. Oestliches Nordamerika: Clarke. — Polen:

Kielee: Siemiradzki (Plasmopora n. sp.).

KARBON-FORMATION. Schottland: Edinburgh: Peach u. Lee

(Fauna). — EastLothian: Cloughı. Lee. — Unterer Kohlenkalk von Chabarny:

JaniSevskij [Russisch]. — Vereinigte Staaten: Arkansas, Fauna der

Fayetteville-Schicht: Girty (8 neue Gatt. u. Untergatt., 24 neue Spp.).

JURA-FORMATION. England : Yorkshire, Ost: Drake u. Sheppard

(Fauna). — Sommerset: Fuller „Earth’”’: Richardson (einige neue Spp.).

KREIDE-FORMATION. Kalk von England: Brydone (Neue Spp. der

Gatt. Oribrilina, Membranipora, Membraniporella, Pseudostega n. g., Rhaga-

sostoma, Steginopora). — England: Unterer Kalk von Lincolnshire und

Roter Kalk: Bower u. Farmery. — Italien: Monti d’Ocre: Parona (Spp.

von Diastopora u. Heteropora).

TERTIÄR-FORMATION. Italien: Beriei: Fabiani.

Systematik.

System der Ctenostomata. Waters, Journ. Linn. Soc. London, vol. 30,

p. 237. — Cyeclostomata, Ctenostomata und Endoprocta des Roten Meeres.

Waters, op. eit. vol. 31, p. 231— 254, 2 Taf. — Oyclostomata der Westküste

von Nordamerika. Robertson. — Bryozoa des unteren Kohlenkalkes von

Chabarny. Janisevskij.

Rezente Formen.

Adeonellopsis coscinophora (Reuss).. Synonymie. Fundort etc. Norman

(1) p. 296.

Aetea Spp. bei Madeira und Nachbarinseln. Norman (1) p. 283. — Ae.

crosslandi n. sp. Waters, Journ. Linn. Soc., vol. 31, p. 253 (Rotes

Meer).

Alcyonidium effusum n. sp. (Von allen Spp. der Gatt. verschieden durch

„the very slow or the unwilling contractility of the tentacles“). Norman

(1) p. 282 (auf Ostrea cochlear). — A. topsenti n. sp. Röhrich, Archiv.

Zool. exper. et gener., Paris, T. 5, 1910, N.R., p. CLXIV (ans Ufer

der Küste von Calvados, N.-Frankreich, gespült).

Alysidium. Bibliographisches. Norman (1) p. 29.

Australella n. g. Phylactolaemat. (Plumatellin.) Annandale, Rec. Ind. Mus.,

vol. 5, p. 40, Anmerk.

Bugula ditrupae Busk bei Madeira. Norman (1) p. 285. — B. dentata Lamou-

roux. Bemerk., p. 285, pl. 36, Fig. 3. — B. gracilis Busk, p. 286, pl. 36,

figs 4—6.

Catenaria. Norman (1) p. 294.

Catenicella contei (Audouin). Norman (1) p. 295. — Bibliogr. der Gatt.,

p- 294.

Cellepora-Spp. bei Madeira etc. Norman (1) p. 310. — C. sardonica Waters.

Synonymie, p. 310. — C. margaritacea Pourtales, p. 311. Waters Angabe,

daß Buskia nitida Heller ein Synonym dazu sei, ist noch nicht erwiesen,

p. 311, pl. 42, fig. 14. — C. rotundora nom. nov., p. 311, pl. 42, fig. 8-9.

Ergänzung zur Beschreib. — C. sexspinosa Waters. Synon. Fundort,

110 Bryozoa für 1910.

p- 311. — O. verticalis n. sp. Maplestone, Proc. Roy. Soc. Vict., vol. 23,

p- 39 (S.-Australien).

Cellularia fistulosa Linne. Synonyme Bemerk. Norman (1) p. 292— 293.

— C.nodosa n.8P«, p- 293, pl. 42, fig. 4, 5 (auf Sertularellae, die auf einem

Telegraphenkabel saßen).

Cribrilina radiata (Moll... Synonymie u. morphol. Bemerk. Norman (1)

p- 291. — C.rad. var. foliata n., p. 291.— C.innominata (Couch),p. 291 bis

292. Synon.u. Beschr.— ©. Balzaci(Audouin). Morphol. Bemerk., p. 292.

Crisia Spp. von Madeira. Norman (1) p. 277. — fistulosa Heller p. 277,

pl. 35, fig. 6. — Cr. Robertson beschreibt in d. Univ. Cal. Publ. Zool,.

vol. 6, folg. Spp. der Westküste der Vereinigten Staaten: franciscana

n. sp. p. 233. — Cr. operculata n. sp. p. 240. — Cr. pacifica n. Sp.

p- 242. — mazxima n. sp. p. 243. — Cr. pugeti n. sp. p-. 244.

Crisulipora n. g. Tubuliporid. Robertson, Univ. Cal. Publ. Zool., vol. 6,

p- 254. — Or. occidentalis n. sp. p. 254 (Süd-Californien).

Oupularia guineensis Busk. Beschr. Norman (1) p. 288, pl. 37, fig. 2—6.

— (. Lowei Gray p. 290, pl. 37, figs. 7—12. — C. Johnsoni Busk

p- 290, pl. 38, figs. 1—6.

Entalophora proboscidea (H. M. Edwards). Norman (1) p. 280, pl. 35, figs. 1

—3. — E.deflexa R. Q. Couch p. 281, pl. 34, figs. 8-13.

Escharella obscura n. sp. (merkwürdige Form). Norman (1) p. 304, pl. 40,

fig. 8 (bei Madeira).

Escharina Spp. von Madeira. Norman (1) p. 302. — E. pes-anseris Smitt,

p). 40, fig. 7.

Filisparsa irregularis (Meneghini). Synonymie. Norman (1) p. 279—280.

— F. var.1iyp. p. 280, pl. 34, figs. 1—3. — F. var. 2 pennata var.n.p.34,

figs. 4,5. — F. var. 3 superba J. Jullien. Sehr variable Sp., gedredscht

an der Küste von Madeira, 50—70 Faden Tiefe; Porto Santo, südl.

von Cima, 90 Faden Tiefe.

Fredericella indica n. sp. Annandale, Rec. Ind Mus., vol. 3, p. 373 (Westl.-

Indien).

Gemellaria loricata Linn& bei Madeira. Bestätigung erwünscht. Norman

(1) p- 283.

Halysis n. g. (Zoarium kettenförmig, jedes Zooecium bildet ein besonderes

Glied, das mit dem vorhergehenden an der Rückseite der ovalen

Öffnung verbunden ist. Zooecien gestreckt, einfach. Mundöffnung

rund oder oval. Ooecien noch unbekannt.) Norman (1) p. 295— 296.

— H.diaphana Busk.

Hemicyelopora multispinata Busk steht H. polita« Norman [= Discopora

emucronata Smitt] aus den nördlichen Meeren sehr nahe. Tiefseeform.

Norman (1) p. 308, pl. 42, figs 6, 7.

Hincksina Spp. bei Madeira ete. Norman (1) p. 286.

Hornera pectinata Busk. Bemerk. dazu. Norman (1) p. 280.

JIdmonea atlantica E. Forbes. Norman (1) p. 278. — cf. hierzu pl. 33, fig. 1, 2.

— I. meneghinii Heller. Beschreib., p. 278—279, pl. 33, fig. 3—5.

(Madeira, 70 Faden Tiefe). — I.concava Reuss. Beschr., p. 279 (50

—70 Faden Tiefe, östl. von Funchal, zwischen Lazaretto u. Cabo do

Garajäo).

Systematik. 111

Lagenipora Costazei (Audouin). Sehr variabel. Norman (1) p. 309. —

L. lucida (Hincks), auf der Tiefsee bei Madeira, p 309. — L. ignota n. sp.

(verwandt mit C. rudis Busk) p.309— 310 (beiMadeira, 70 Faden Tiefe).

Lepralia. Spp. von Madeira. Norman (1) p. 305. Gründe, weshalb Lepralia

im Hinckschen Sinne nicht zu gebrauchen ist. — L. pallasiana (Moll)

p- 305. — L. peristomata Waters p. 305. — L.porcellana Busk p. 305, pl. 40,

figs. 1, 2. — L. collaris J. Jullien p. 306, pl. 41, figs. 3, 4. — L. contracta

Waters p. 306, pl. 41, figs. 5, 6. — mucronelliformis Waters p. 306. —

L. lata Busk. Synonyme u. Beschr. p. 306— 307 (auf Bellardiella gracilis,

Nassa lineata u. Calliostoma Montagui). — L. Poissonii (Audouin). Be-

schreib. ete. p. 307—308, pl. 41, figs. 7, 8.

Lichenopora hispida (Fleming), eine sehr variable Sp., Bemerk. zur Type.

Norman (1) p. 281. — L. irregularis (Johnson) p. 282.

Membranipora-Spp. bei Madeira. Norman (1) p. 287. — M. tuberculata (Bosc.).

Bemerk. dazu p. 287. — M.trichophora Busk p. 287.

Membraniporella nitida (Johnston) m. var. intermedia. Norman (1) p. 288,

p- 36, fig. 7. — M. sceletos Busck. Beschreib., p. 289, pl. 36, fig. 8.

Microporella marsupiata (Busk). Beschr. Ist bei Madeira nicht selten.

meist in Gesellschaft mit Onychocella angulosa u. Lepralia peristomata.

Norman (1) p. 297. — M.decorata Reuss. Synon., p. 297, pl. 39, figs. 2, 3.

— M. coronata (Audouin) p. 297—298, pl. 39, fig. 4. — M. nutrix

(J. Jullien) p. 298, pl. 39, fig. 1.

Mollia patellaria (Moll... Der Gattungsname ist oft fälschlich gebraucht.

Norman (1) p. 286.

Onychocella angulosa (Reuss). Synon. Fundorte bei Madeira. Norman (1)

p. 293.

Phylactella labrosa Busk. Über Waters Irrtum, daß zwei Spp. unter diesem

Namen zusammengefaßt sind. Norman (1) p. 308—309, pl. 38, fig. 9.

Porella minuta Norman var. punctata Waters. Morphol. Bemerk. Norman

(1) p. 299. — P. tubulata Busk p. 299, pl. 38, fig. 8. — P. torquata

p- 300, pl. 39, figs. 5—8.

Retepora. Spp. von Madeira. Norman (1) p. 301. — R. abyssinica var.

expansa n. Waters, Journ. Linn. Soc., vol. 31, p. 254 (Rotes Meer).

Schizoporella. Spp. von Madeira. Norman (1) p303. — Sch. biaperta (Michelin).

p- 303, pl. 40, figs. 3, 4. — Sch. armata Hincks y. 303, pl. 40, figs. 5, 6. —

Sch. Noronhai n. sp. (steht Sch. Richardi Jullien u. Calvet nahe) p. 303

— 304, pl. 41, fig. 1. — Sch. Schmitzi n. sp. p. 304, pl. 41, fig. 2.

Scrupocellaria. Spp. bei Madeira ete. Norman (1) p. 283— 285.

Tessarodoma boreale Busk. Synonymie. Bei Madeira in 200-300 Faden

Tiefe. Norman (1) p. 298.

Tubulipora pacifica n. sp. Robertson, Univ. Cal. Publ. Zool., vol. 6, p. 248.

— T. oceidentalis n. sp. p. 249 (beide von der Westküste der Vereinigten

Staaten).

Fossile Formen.

iBryozoa des unteren Kohlenkalkes von Chabarny. Janisevskij [Russisch].

TAmphiporella n.g. (Stenopora und den Baitostomellidae nahestehend)

Girty, Ann. Acad. Sei N. York, vol. 20, p. 199. — A. maculosa n. sp.

p- 200 (Karbon von Arkansas).

112 Bryozoa für 1910.

T Batostomella anomala n. sp. Girty, t. c. p. 191. — B. parvula n. sp. p. 191

—192. — B.? armata n. sp. p. 192 (alle drei aus dem Karbon von

Arkansas: Fayetteville-Schicht). Möglicherweise sind die beiden ersten

Spp- bisher unter einer zusammengefaßt worden.

TBerenicea gigantea n. sp. Vinassa de Regny, Atti Acc. Gioenia, vol. 3, 12,

p- 16 (Ordovician von Karnien).

TCallocladia n. g. (fraglich ob zu den Batostomellid. oder Rhabdomesid. ge-

hörig; oberflächlich Intrapora [I. basalis und I. undata] ähnlich.) Girty,

Ann. Acad. Sci. N. York, vol. 20, p. 212. — O0. elegans n. sp. p. 213

(Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

TCoeloclemis subg. n. (ob von Stenopora? Art des Wachstums wie bei

Anisotrypa). Girty, t.c. p. 201. — C. tumida n. sp. p- 202 (Karbon

von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

TCoeloconus tuba n.sp. Girty, t.c. p. 209—210 (Karbon von Arkansas:

Fayetteville-Schicht).

1Coseinopleura Marsson. Charakt. der Gatt. Filliozat, Bull. Soc. Geol.,

4. ser., T. 8, p. 557. Die Coscinopleurae sind wohl schwimmende oder

wenigstens wandernde Species, denn die Gatt. ist in der Tat weit ver-

breitet und findet sich bis in Amerika, woselbst sie durch Coscino-

pleura (Eschara) digitata Morton, einer sehr nahen Verwandten von

©. elegans Hagenow, vertreten ist. — C. vindocinensis n. Sp. p. 558,

pl. XIII, fig. 5 (Kreide von Frankreich: Vendöme, Schicht m. Marsup.

testud., Zone No. 2).

TOribrilina claviceps n. sp. Brydone, Geol. Mag., n. ser., Decade V, vol. 7,

1910, p. 390, pl. XXX, figs. 2—5 (regelmäßig, aber spärlich in der

M. cor-anguinum-Zone von Gravesend und in Hants, und in der Marsu-

pites-Zone von Hants). — Cr. furcifera n. sp. p. 391, pl. XXX, figs. 6

—8 (ziemlich häufig in der M. cor-anguinum- u. Marsupites-Zone von

Kent u. Hants, sie findet sich häufig in der Act. quadratus-Zone von

Hants u. Sussex, auch in der B. mucronata-Zone von Hants). — Cr.

Filliozati n. sp. p- 391— 392, pl. XXX, figs. 9 u. 10 (spärlich in der

Act. quadratus-Zone von Hants).

TOrisinella Wimani n. sp. (Vergleich mit oeilensis Wiman aus den Bork-

holmer Schichten; doch stehen die Zooecien der seitlichen Reihen bei

der letzteren nicht so weit vor, und die Rückseite soll glatt sein). Reed,

Geol. Mag., Decade V, vol. 7, 1910, p. 294—295, pl. XXIII, figs. 1—3

(Dufton-Schichten).

TCOystodictya pustulosa var. arcta n. Girty, Ann. Acad. Sci. New York,

vol. 20, p. 213 (Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

1.Dyseritella subg. von Lioclema oder Batostomella. Girty, t. ec. p. 193. —

D. robusta n. sp. [Type] p. 193. — D. inaequalis n. sp. p. 194 (beide

aus dem Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht). — Scheint

Batostomella näher zu stehen, doch läßt sie sich keiner Gatt. einreihen,

ohne derselben anormale Charaktere zuzuschreiben.

1Eschara Clio d’Orbigny gehört zu Coscinopleura. Filliozat, Bull. Soc. Geol.,

4.'ser.,'T. 8, p. 558:

TEuritina Canu (Cryptocyste prismatique pres de l’op6sie et peu accentu6

Vieilles cellules monodermioides. Avicellaire). Filliozat, Bull. Soc.

Systematik. 113

Geol., 4. ser., T. 8, p. 556. — E. obtorta n. sp. p. 556—57, pl. XILI5.

fig. 4 (Vendöme, Rue Chevre, commune de St. Firmin-des-Pres.

Schicht mit COrania ignab., Zone No. 3).

TFenestella veneris. JaniSevskij, Izv. technol. Inst. Tomsk, vol. 17, 1, 1910,

p: 33. — F.virgosa p. 34 (beide aus dem Subkarbon von Chabarny be-

schrieben). [Russisch.] — TF. (Reteporina) carnica n. sp. Vinassa de

Regny, Atti Accad. Gioenia, vol. 3, 12, p. 17 (Ordovician von Karnien).

tFistulipora excellens mit den neuen Varr. var. harrisonensis n. und (näher

mit der neuen Var. als mit der Type verwandt) var. williamsi n. Girty,

Ann. Acad. Sci. New York, vol. 20, p. 194 (beide aus dem Karbon von

Arkansas: Fayetteville-Schicht).

tFloridina J. Jullien (Opesie 3-blättr. Cryptocyste prismatisch. Onycho-

ce!lar. modifiziert. Senon u. Jetztzeit). Filliozat, Bull. Soc. Geol.,

4. ser., T'. 8, p. 555. — Cottreaui n. sp. p. 555, pl. XIII, fig. 2 (Vendöme,

Schicht mit Marsup. testud., Zone No. 2).

TIdioclema n. g. Rhabdomesid. (?). Nur 1 Sp. bekannt. Girty, Ann. Acad.

Sci. New York, vol. 20, p. 210—211. Type: I. insigne n. sp. p. 211

(Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

tLioclema subg. non. siehe Dyscritella, Pyenopora und Stenocladia.

TMeekopora bassleri n. sp. Foerstre, Geol. Survey Kentucky, vol. 7, 1906,

p- 297 (Silur von Kentucky).

1Membranipora Blainville (Eetocyste u. Cryptocyste chitinig, durch ein

Kalkgerüst gestützt. Jura und Gegenwart). Filliozat, Bull. Soc. Geol.,

4. ser., T.8, p. 554. — ledensis n.sp. p. 555, pl. XIII, fig. 1 (Rue

Chevre, commune de St.-Firmin-des-Pres). Schicht mit Crania ignab.

Zone No. 3). — M. humiliata n. sp. (ausgezeichnet durch die abnorme

Flachheit der Zooecien). Brydone, Geol. Mag., Decade V, vol. VII,

p- 4, pl. III, fig. 1— 3 (Trimingham). — M. anterides n.sp. p. 4—5, pl. III,

fig. 4—6. Die Ooecien und Avicularien (Trimingham), das System

der gestützten Wände, welche diese Sp. mit M. humiliata teilt, hebt

beide aus allen anderen Kreideformen heraus, jedoch die typische An-

ordnung der Avicularien über dem Ooecium verbindet sie wahrschein-

lich nur oberflächlich mit M.Griffithi und derfolg. Sp. — M. Trim(m)ing-

hamensis Brydone p. 5. Ergänzende Abbild. dazu pl. III, fig. 7 u. 8. —

M. invigilata n. sp. (ähnelt M. trigonopora Marss., die jedoch keine

vicarlierenden Avicularien hat. Die neue Sp. weist jedoch nicht die

kleinen Poren von M. trigonopora auf). Brydone, t. c. p- 16 (Triming-

ham und in der Zone von Micraster cor-anguinum zu Gravesend. Ein

sozusagen bedorntes (spiny) Stadium findet sich in der Zone von

Actinocamaz quadratus).— M. britannica Brydone. Ergänzende Bemerk.

u.photographische Abbild. p. 76—77, pl. VIII, fig. 3u.4. — M. brit.

var. praecursor n. p. 77, pl. VIII, fig. 5 (Form des Oberen Senon, die

speziell in den Zonen von Act. quadratus und Belemnitella mucronata

gefunden wird. Oeeien äußerst zerbrechlich). p. 77. — M. brit. var.

demissa n. (steht zwischen der Type u. der vorigen Art) p. 77, pl. VIII,

fig. 6 (Trimingham). — M. sagittaria n. sp. p. 145—146, pl. XIV,

figs. 1—3 (in der M. cor-anguinum-Zone zu Gravesend, in d. Act. qua-

dratus-Zone verschiedener Teile Hampshires und in der Belemnitella

Archiv für Naturgeschichte 8

TILL DVI.

114 Bryozoa für 1910.

mucronata-Zone der Insel Wight). — M. dolium n. sp. p. 146, pl. XIV,

figs. 4—6 (in der Act. quadratus-Zone in Hampshire und mit B. mucro-

nata in Bramford [Suffolk] und im Cromer Weybourne-Kalk, aber

nicht in Trimingham. Sie steht M. Iyra sehr nahe, wie sie Hagenow

abbildet, doch hat letztere nach der Abb. oder Beschreib. keine

vicarlierenden Avikularien, die jener Verf. wohl nicht übersehen

haben würde). — M. anguiformis n. sp. p. 146--147, pl. XIV, figs. 7 u. 8

(Trimingham. — Die Avikularien erinnern sehr an diejenigen von M.

invigilata). — M. Langi n. sp. p. 147 (reichlich bei Trimingham, gelegent-

lich auch im Cromer-Weybourne-Kalk, einmal in Act. quadratus-Kalk

von Hampshire). — M. Woodwardi n. sp. Brydone, t.c. p. 258— 259,

pl. XXT, figs. 1—-3 (in den Zonen von M. cor-anguinum und Marsupites,

frei in der Zone von Act. quadratus in Hants und in der Zone von M.

cor-anguinum in Gravesend). — M. coralliformis n. sp. p. 259, pl. XXT,

figs. 4 u. 5 (reichlich in der Zone von M. cor-anguinum zu Gravesend.

auch in Hants). — M. ledensis n. sp. Filliozat, Bull. Soc. Geol. Paris,

T. 8, p. 555 (Kreide von Frankreich).

1Membraniporella fallax n. sp. Brydone, Geol. Mag. n. ser., Dee. V, vol. 7,

p- 482, pl. XXXVI, figs. 6—8 (Zone des M. cor-anguinum von Graves-

end; eine Zwergform wurde oben auf (at the top) der Marsupites-Zone

an zwei Stellen in Hants aufgefunden. Sie steht der von Novak ab-

gebildeten Lepralia pediculus Rss. am nächsten, ist aber leicht davon

zu unterscheiden). —M. pustulosa n. sp. (nahe verw. mit Cellepora galeata

Hag., bei welcher jedoch der Aperturalring deutlich länger als breit,

die Zwischenräume zwischen den Rippen sehr kurz sind und nicht die

Seitenwände erreichen. Nur eine leichte Anschwellung deutet das

Ooecium an und die Seitenwände sind breit und gemeinsam).

TPlasmopora devonica n.sp. Siemiradzki, Spraw. Kom. fizyogr., vol. 43,

p- 77 (Devon von Polen).

1Polypora mesleriana n.sp. 6Girty, Ann. Acad. Sci. New York, vol. 20,

p- 207 (Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht). — P. tommasii

n.sp. Vinassa de Regny, Atti Acad. Gioenia, vo]. 3, 12, p. 17 (Ordo-

viecian von Karnien).

TPseudostega un. g. Membranipor. (eine Gatt., bei welcher eine sekundäre

Schicht von Zooecien gebildet wird, die sich aus einer Schicht ge-

wöhnlicher M.-Zooecien heraushebt. Sie scheint unter den Membr.

ein Analogon zu Steginopora unter den Cribrilinidae zu bilden). Brydone,

Geol. Mag., n. ser., Decade V, vol. 7, 1910, p. 259—260. — Cantiana

n. sp. p. 260, pl. XXI, figs. 5 u. 6 (selten in der M. cor-anguinum-Zone

von Gravesend und Chislehurst. Reptescharipora rustica D’Orbigny

scheint durch ihren allgemeinen Habitus dieser Art nahezustehen).

t1Pycnopora subg. n. (Ob von Lioclema ?, dieser sehr nahestehend). Girty,

Ann. Acad. Sci. New York, vol. 20, p. 202. —P. regularis n. sp. (Type)

p- 203. — P. bella n. sp. (ähnelt der folg. Sp.) p. 203. — P. hirsuta

n. sp. p. 204 (alle drei aus dem Karbon von Arkansas).

+ Rhagasostoma Koschinsky. (Opesiules distinctes, rondes, adjacentes in-

ferieurement & l’opesie et communiquant avec elle. Avicellaire modifi6

en reticulocellaire. Cenoman u. Oligozän.) Filliozat, Bull. Soc. G£ol.,

Systematik. 115

4.ser., T 8, p. 559. — Rh. lanceolata n. Sp. p. 559, pl. XIII, fig. 7 (Ven-

döme, St.-Andre, commune deMazange. Schicht mit Crania ignab. Zone

No. 2). — Rh. spatulata n. sp. p. 559, pl. XIII, fig. 8 (Vendöme, Villiers.

Schicht mit Crania ignab. Zone No. 1). — Rh. novaki nom. nov. für

Membranipora depressa Novak. Brydone, Geol. Mag., n. ser., Decade V,

vol. 7 1910, p. 390. — Rh. novaki var. anglica n. p. 390, pl. XXX, fig. 1

(Trimingham, 1 Stück in der Zone von B. mucronata von d. Isle of

Wight).

+Rhombopora persimilis var. miseri n. Girty, Ann. Acad. Sci. New York,

vol. 20, p. 208 (Karbon von Arkansas: Fayetteville). Hauptsächlich

aus Schnitten bekannt.

+Rosseliana J. Jullien. (Cryptocyste nur halb entwickelt. Orificium balb-

mondförmig. Innenrand des Opesiums konvex, die beiden seitlichen

Buchtungen bilden die Opesiuli. Senon. Jetztzeit.) Filliozat, Bull.

Soe. Geol., 4. ser., T'. 8, p. 558. — R. Canui n. sp. p. 558—559, pl. XIII,

fig. 6 (St.-Ouen [Loir-et-Cher]. Schicht mit Crania ignab. Zone

No. 2).

1Schizoporella flabellata Mapl. ist eine Parmularia. Maplestone, Proc. Roy.

Soc. Vict., vol. 23, p. 43.

rSeptopora pustilifera n.sp. Girty, Ann. Acad. Sci. New York, vol. 20,

p- 208 (Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

1Smittipora J. Jullien. (Opesium halbmondförmig. Cryptocyste prismatisch,

Onycocellar symmetrisch, nicht sichelförmig. Senon und Jetztzeit.)

Filliozat, Bull. Soc. G&ol., 4. ser., T. 8, p. 556, pl. XIII, fig. 3. —

S. oculata n. sp. p. 556 (Vendöme, Schicht mit Marsup. testud. Zone

No. 2).

1Steginopora denticulata n.sp. Brydone, Geol. Mag. n. ser., Decade V, vol. 7,

1910, p. 481, pl. XXXVI, figs. 1—3. (Selten in der Zone des M. cor-

anguinum zu Gravesend, Broadstairs, Kingsgate -Bay und Leaves-

Green bei Bromley). — St. gravensis n. sp. p- 481, pl. XXXVI, figs.

4—5. (Sehr selten in der Zone des M. cor-anguinum zu Graves-

end.)

Stenocladia subg. n. von Lioclema. (Zeigt viele Analogien zu dem Bautypus

von Idioclema.) Girty, Ann. Acad. Sci. New Yorl,, vol. 20, p. 204— 205.

— St. frondosa n.sp. [Type] p- 205— 206 (Karbon von Arkansas: Fayette-

ville-Schicht).

1Stenopora subg. siehe Coeloclemis.

tStenopora. Girty beschreibt in d. Ann. Acad. Sci. New York, vol. 20,

folg. neue Spp. u. Varr.: perattenuata n.sp. (sehr zartes Zoarium,

Fehlen von Acanthoporen ete.) p. 194. — St. longicamerota n. sp. p- 194

— 195. — St. miseri n. sp. p. 196— 197. — St. simulans n. sp. p- 197—198.

— St. mutabilis n. sp. p- 198. — St. gracilis n. sp. p. 198—199. — St.

mermis n. Sp. p. 199. — Neue Varr.: St. emaciata var. inaequalis n. p.

195. — St. em. var. arkansana n. p. 195— 196. — St. em. var. megasty-

lus n. p. 196. — St. intermittens var. harrisonensis n. p. 196. — St.

miseri var. tubulata n. p. 197. — St. ramosa var. fayettevillensis n. p. 198

116 Bryozos für 1910. Systematik.

(sämtlich aus dem Karbon der Fayetteville-Schicht im nordwestl.

Arkansas).

tStreblotrypa nickelsi var. robusta u. Girty, Ann. Acad. Sci. New York,

vol. 20, p. 209 (Karbon von Arkansas: Fayetteville-Schicht).

TSyringoclemis n. g. (fraglich, ob zu den Rhabdomesidae und COyeloporidae

gehörig, vorläufig zu den Batostomellidae gestellt). Girty, t. c. p. 206.

— S. biserialis n. sp. p. 206—207 (Karbon von Arkansas: Fayetteville-

Schicht).

TTrematopora pironai n.sp. Vinassa de Regny, Atti Acrad. Sci. Gioenia,

vol. 3, 12, p. 15 (aus dem Ordovician von Karnien).

Polychaeta und Archiannelides (Polygordius,

Protodrilus und Myzostoma) für 1910.

Von

Dr. Kurt Nägler, Berlin.

Publikationen und Referate.

F. siehe unter Faunistik; $. siehe unter Systematik.

Ashworth, J. H. (1). La collection des Arenicoliens du Museum

d’histoire naturelle de Paris (avec la description de l’Arenicola

pusilla de Quatrefages). Ann. Sci. N. (9), T. 10, p. 111—124. —

Beschreibung der Arten Arenicola marina Linn., grubei Claparede,

ecaudata Johnston, pusilla Quatrefages. Eingehende Beschreibung

der letzten Art. Das einzige Exemplar ist ein Fragment eines

kleinen Exemplars von Arenicola Claparedii Levinsen, daher

Synonymik. S8.

— (2). Die Arenicoliden-Sammlung im Königl. Zool. Museum

in Berlin. Mitteil. Zool. Mus. Berlin, 4, p. 345—354. — Erweiterung

der Kenntnisse schon bekannter und beschriebener Spezies.

Gattungsdiagnose von Arenicola. Beschreibung folgender Arten:

A. marina Linn. (piscatorum Lamarck), claparedii Levinsen,

assimilis Ehlers var. affinis Ashworth, grubei Claparede, ecaudata

Johnston. 8.

Augener, H. Bemerkungen über einige Polychäten von

Roscoff, über zwei neue Polynoiden des Berliner Museums und

über die Brutpflege von Hippono& gaudichaudi Aud. u. M. Edw.

Zool. Anz. 36, p. 232—239, 241—249, 7 Figg. — Liste der in

Roscoff (Nordfrankreich) gefundenen Arten, 54 an Zahl. Be-

merkungen über einige Arten: Harmothoe longisetis Gr. als diffe-

rente Art, Harmothoe (Malmgrenia) picta St.-Joseph, Phyllodoce

papulosa St.-Joseph, Pierocirrus microcephala Clap., Lumbri-

conereis funchalensis Kbg., Glycera lapidum Quatref. (Bestätigung

der Auffassung von Arwidsson hinsichtlich der Ausschaltung von

@l. lap. Ehl. aus der Synonymenreihe der @!. lap. Quatref.), Nereis

(Leonnates) pusillus Lnghns., Ophelia limacina H.Rathke var.

roscoffensis n. var. mit größerer Segmentzahl als südliche Lokal-

form, Prazxillela (Clymene) oerstedi Clap. — Beschreibung zweier

Arten, die Verf. für neu hält: Eunoö oersiedi Mlgr. = E. nodosa

M. Sars n. var. dybowskyi, ferner Lepidonotus sgamatus Baster =

Lep. (Physalidonotus) barbatus n.sp. — Anheften der Jungen an

der Unterseite von Hipponoe gaudichaudi, Maximum etwa 40 bis

118 Polychaeta und Archiannelides für 1910.

50 Junge. Die Jungen liegen in den Segmentfurchen der Alten

ausgestreckt. Keine Parasiten, gegen Baird. Die Größe beträgt

0,5 mm bis etwa 3,5 mm. Bestätigung der Artzugehörigkeit durch

die mikroskopische Untersuchung. Verweilen der Jungen, bis

zur Erlangung der Gestalt und Organisation der Erwachsenen,

mit Ausnahme eventuell der Geschlechtsreife. Vielleicht werden

die Eier von Hipponoe dem schützenden Schalenraum der Lepa-

diden anvertraut, bis später selbst der Schutz der Jungen über-

nommen wird. F.

*Bathes, F. A. Fossil Representation of the Lithodomous

worm Polydora. Geol. Mag. (5), vol. 6, 1909, p. 108—110.

Beauchamp, P. de (1). Sur la presence d’un hömocoele chez

Dinophilus. Bull. Soc. Zool. France 35, p. 18—25, 2 Figg. —

Beschreibung eines Hämocöls bei Dinophilus Conklini, zwischen

Körperparenchym und Darmkanal. Histologische Details mit

Berücksichtigung der Resultate führender Autoren. Durch das

Vorhandensein eines Hämocoels entfernt sich D. von den Rota-

torien wieder. Das Cölom wird als homolog mit einem Gonocoel

aufgefaßt. ‚La difference avec les Annelides est que ce me&so-

blaste ne se creuse pas d’une cavite generale rev&tue d’un Epithelium

c’est un coelenchym sans coelothele, toujours pour employer la

nomenclature de Salensky, qui a d’ailleurs soutenu ces idees

relativement au mesoderme de Dinophilus, et l’a considere, &

juste titre semble-t-il, comme une Annelide regressee et non une

forme primitive‘“.

— (2). Sur l’existence et les conditions de la parthenogenese

chez Dinophilus. C.R. Acad. Sci. Paris, 150, p. 739—741. — Bei

dem sexuell dimorphen Dinophilus Conklini Nelson kommt

Parthenogenese vor. Dauer durch mehrere Generationen, bis

Degeneration eintritt. Konvergenzerscheinung bei den Rotatorien.

Abstammung der D. von wohl entwickelten Anneliden u. Zwischen-

stellung zwischen Rotatorien und Anneliden auf Grund der

Morphologie.

— (3). Sur V’organisation de la Nerilla (note preliminaire).

Bull. Sei. France Belgique, 44, p. 11—22, 3 Figg. — Morphologie:

Cuticula, Pharynx, Blutsinus, Nephridien. N. bildet eine eigene

Familie. 8. Ir

Bonnevie, K. Uber die Rolle der Zentralspindel während der

indirekten Zellteilung. Arch. f. Zellforsch. Leipzig, 5, p. 1—35,

4 Figg., pls. 1-3. — In Übereinstimmung mit Van Beneden,

Boveri u.a. werden die Zugfasern als mehr oder weniger feste

Verbindungen unbekannter Art zwischen Chromosomen und

Centren aufgefaßt; in Übereinstimmung mit Bütschli, Wilson,

Teichmann u.a. wurde in der Zentralspindel und in den Pol-

strahlungen der Ausdruck einer strömenden Bewegung im Cyto-

plasma gesehen. Strahlungserscheinungen in Nereis limbata. Die

Bilder der Polstrahlung und der Zentralspindel können Forma-

tionen annehmen, die mit der Hypothese der Kraftlinien zwischen

Publikationen und Referate. 119

entgegengesetzt wirkenden Polen unvereinbar sind. Die Zentren

und Sphären einer karyokinetischen Figur werden als Folge der

Verlängerung der Zentralspindel voneinander entfernt. ‚‚Faser-

bildung wird auch in der Polstrahlung und Zentralspindel dadurch

vorgetäuscht, daß die Mikrosomen an den Stellen größter Hyalo-

plasmadichtigkeit ausgeschieden werden, um an der Grenzfläche

dieser Stellen als eine zusammenhängende Lage liegen zu bleiben.

Wo die Wirksamkeit der Zentren sich in gewissen Richtungen

vorzugsweise bemerkbar macht (Radien der Polstrahlung, Druck-

kurven der Zentralspindel), werden die zur Seite geschobenen

Mikrosomen feine Röhrchen bilden müssen, die oft länger be-

stehen bleiben können als die Strömung selbst.“ Die Strömungs-

richtung ist bei den früheren Teilungsphasen durch die Pol-

strahlungen zuerst zentripetal, dann wird das Gleichgewicht der

Zeile durch eine Rückströmung des verdichteten Hyaloplasmas

wiederhergestellt. Bei der Entfernung der Zentren durch Ver-

längerung der Zentralspindel werden die Zugfasern unter Ein-

ordnung der Chromosomen in die Aquatorialplatte möglichst

weit gestreckt. Der Widerstand der Zugfasern gebietet der Ver-

längerung der Zentralspindel Halt und leitet dann eine Rück-

strömung ein. Nur eine primäre Zentralspindel kann in obiger

Weise als karyokinetisch wirksam aufgefaßt werden.

Coventry, A. F. The Application of Mr. G. W. Smith’s Theory

of Dwarf Males to Myzostoma. Ann. Mag. N. H. (8), vol. 5, p. 378

—380. — Anwendbarkeit der Theorie der Zwergmännchen nach

Smith auf Myzostoma, ohne Rücksicht auf die speziellen Angaben

von Wheeler oder Beard hinsichtlich des Lebenszyklus. Analogie

mit den Pedunculaten oder Epicarida. Nach Wheelers Auffassung

enthält die Lebensgeschichte von M. eine bemerkenswerte Be-

stätigung der Theorie des sekundären Hermaphroditismus nach

Smith.

Curiel, 0.C. Descripciön de algunas especies de Nereidos de

las costas norte y norveste de Espafia, principalmente de Santander.

Madrid, 1910, 46 pp., 52 Figg. — Arten von Nereis, Perinereis

und Platynereis. F. 8.

Dehorne, A. (1). La division longitudinale des chromosomes

dans les spermatogonies de Sabellaria spinulosa Lmck. C. R. Acad.

Sci. Paris, 150, p. 1195—1197. — Die Längsteilung der Chromo-

somen geht äußerst schnell vor sich; sie tritt ein im Moment der

Rekonstitution des Tochterkernes auf Kosten der Chromosomen

der Anaphase. Jeder Kern hat in der Ruhe seine deutlich indivi-

dualisierten Chromosomen, zweimal soviel wie beim Eintritt in

das spätere Stadium. Die Längsteilung vollzieht sich also nicht

im Laufe der Anaphase oder Metaphase, sondern in der Telophase.

Jeder telophasische Kern ist bereits in Mitose.

— (2). La valeur des anses pachytönes et le mecanisme de

la röduction chez Sabellaria spinulosa Lmek. Ibid. p- 1625—1628.

— Die Theorie der Lateral-Konjugation der Chromosomen ent-

120 Polychaeta und Archiannelides für 1910.

hält eine falsche Deutung der wahren Längsteilung in den Kernen

der Cyten erster Ordnung und beruht auf ungenauer Zählung

der Chromosomen. Die Teilung vollzieht sich in der letzten gonialen

Telophase, persistiertt während der ganzen Prophase der ersten

Reifungsmitose, selbst in den pachytänen Schleifen, wo sich die

Hälften nähern, und wird vollendet erst in der Metaphase der

zweiten Mitose. Die Längsteilung bleibt also suspendiert während

der ganzen Entwicklung der Cyte erster Ordnung. Teilung des

Kernes in zwei Gruppen mit 5 Chromosomen. Diese Gruppen

lagern einander gegenüber und entfernen sich in den Cyten zweiter

Ordnung, die bezüglich der Zahl symmetrisch sind mit den Pro-

nuclei der Reifung.

— (3). Sur la coexistence de la division et d’une subdivision

des chromosomes & l’etat quiescent. C.R. Acad. Sci. Paris, 151,

p. 995—997. — In der Telophase tritt nicht nur eine Längs-

teilung, sondern auch eine Subdivision der Chromosomen auf.

Die Chromosomenteilung ist immer erkenntlich in den Chromo-

somen, die von der dichten und zusammengezogenen Form in die

verlängerte übergehen; sie liefert eine doppelte Fadenspirale auf

Kosten der Substanz jedes Chromosoms. Hinweis auf gleiche

Verhältnisse bei Tritonen und Salamandern. Die Koexistenz

zeigt die konstante Duplizität des Chromosoms, die verschiedene

Zählungsmöglichkeit, die Kernkomplikation in der Ruhe, die

Wichtigkeit der Telophase in der Kernphysiologie, die richtige

Interpretierung der Kernphänomene und die Aufhebung der

Möglichkeit einer Paralleikonjugation homologer Chromosomen.

— (4). Le mecanisme de la reduction numerique dans la

spermatogenese de Ophryotrocha puerilis Clprd. - Mecz. Zool.

Anz., 36, p. 209—222, 16 Figg. — Morphologische Persistenz der

Chromosomen während der Dauer des Ruhezustandes. Verf.

wendet sich in Einzelheiten und betreffs der richtigen Deutung

der Stadien gegen Gregoire, Schreiner u. Korschelt. Die soma-

tische Zahl der Chromosomen beträgt 4, nicht 8. Die Längs-

teilung der Chromosomen vollzieht sich für jede Mitose bereits

in der Telophase der vorhergehenden Mitose. Vergleiche ferner

besonders 3. Keine Verdoppelung der pachytänen Schleifen in

der Prophase der ersten Mitose. Die Interpretation von Gregoire

und Schreiner trifft nicht zu, sonst müßten die Spermatiden

4 Chromosomen enthalten. Hinweis auf eine Arbeit von Mat-

tiesen 04.

Dershawin, A. Zwei beachtenswerte Funde, Hypania und

Polypodium im Wolga-Delta. Zool. Anz., 36, p. 408—410. —

Vorkommen von Hypania sp. (wahrscheinlich 7. invalida Ostr.-

Grb.) im Wolga-Unterlauf, als Vertreter der kaspischen Fauna.

In Reliktenseen mit Süßwasser wurde auch diese Form gefunden,

ferner noch im Unterlauf des Buzan mit fließendem Süßwasser in

unbedeutenden Tiefen. Große Anpassungsfähigkeit. F.

Publikationen und Referate. 121

Elwes, E.V. Notes on the Littoral Polychaeta of Torquay

(Part 3). Journ. Mar. Biol. Ass. Plymouth, 9, p. 39—81. —

Littorale Polychaeten aus der Bucht von Torquay mit Be-

stimmungsschlüssel der Genera von Euniciden, Spioniden,

Cirratuliden, Maldaniden, Terebelliden, Sabelliden und Scopu-

liden. (Ref. nach Neap!. Jahresber., da dem Ref. nicht zugäng-

heh.y NS

*Enders, H.E. Observations on the Formation and Enlarge-

ment of the Tubes of the Marine Annelid, C'haetopterus vario-

pedatus. Proc. Indiana Acad. Sci. f. 1907, 1908, p. 128—135, 2 pls.

Gravely, F.H. (1). Polychaet Larvae of Port Erin. Trans.

Liverpool Biol. Soc., 23, 1909, p. 575—653, 4 pls. Siehe Gravely

(2) im Bericht pro 1909.

— (2). Studies in Polychaet Larvae. Nature, 82, p. 280. —

Nachtrag zu Gravely (1) im Bericht pro 1909. — Die früher be-

schriebene junge Odontosyllis sp. ist eine erwachsene Exogone sp.

(nicht bestimmt).

Hargitt, Ch. W. Observations on the spawning habits of

Hydroides dianthus. Amer. Natural, 44, p. 376—378. — Beob-

achtungen über das Laichen obiger Art. Ausstoßen der Geschlechts-

produkte erfolgt, wenn ein Individuum damit begonnen hat, bei

allen andern hinterher in kurzer Zeit, so daß eine milchige Trübung

des Mediums eintritt.

Horst, R. (1). On the genus Chloeia with some new species

from the Malay-Archipelago, part!ly collectted by the Siboga-

Expedition. Notes Leyden Mus., 32, p. 169—175. — Gattungs-

übersicht und Arttabelle. Beschreibung folgender neuen Arten:

Chloeia amphora Banda u. Saman, conspicua Sumatra, violacea

Ceram, Warve-bay, Bay of Bima, Bathychloeia n.g. sibogae,

Angabe der Stationen.

— (2). De Anneliden der Zuiderzee (ete.).. Tijd. Nederl.

Dierk. Ver. (2), Deel 11, p. 138—152, Figg. — Aufzählung u. Be-

schreibung der Arten. Neu ist: Streblospio Dekhuyzeni. Mitteilungen

über die bereits bekannten Arten. Im ganzen wurden 21 Arten

gefunden. F.

— (3). De Wawo van Amboina. ibid. Versl., p. 27. —

Zirka 80%, geschlechtsreifer Individuen von Zysidice oele.

Jordan, H.E. Early Maturation Phenomena in the Primary

Oocyte of Sabellaria vulgaris Verrill. Science (2), vol. 31, p. 466.

(Vorläufige Mitteilung.)

Joyet Lavergne, Ph. Notes histologiques sur la Leiochone

clypeata. Arch. Zool. Exper. (5) 5, Notes, p. 101—113, 9 Figg. —

Histologische Details über die Epidermis und die Muskulatur,

ferner über den Darmkanal, den Rüssel und die Nephridien. All-

gemeines über die Lokomotion und die Mechanik der Rüssel-

bewegung.

Lillie, F. R. (1). The Fertilization Membrane of Nereis. Science

(2), vol. 31, p. 464—465. — Vorhandensein einer alveolaren

122 Polychaeta und Archiannelides für 1910.

Plasmaschicht zwischen Dotterhaut und dem Dotterplasma

beim unbefruchteten Ei. Obige Alveolarschicht liefert die Gallerte.

Einzelheiten über den Verlauf der Befruchtung und das Ein-

dringen des einen Spermatozoons. Bei unbefruchteten zentrifu-

gierten oder mit KCl behandelten Eiern tritt auch Gallerte auf.

— (2). Function of the Spermatozoon in Fertilization,

from Observations on Nereis. ibid. p. 836. — Zentrifugierungs-

experimente über die Unterbrechung der Befruchtung, die erst

bei der Verschmelzung der beiden Sexualkerne ihr Ende erreicht.

Die Wirkungskraft des Sperimums soll auf seinem Wachstum und

seiner Organisation beruhen, nicht auf der chemischen Be-

schaffenheit.

Maidl, F. Über die Cölomverhältnisse von Myzostoma (Kriti-

sches Sammelreferat). Verh. Zool. Bot. Ges. Wien, 60, p. 200—215,

2 Figg. — Der weibliche Genitalapparat ist, wie Wheeler bewiesen,

ein Teil des Coeloms, und zwar dessen dorsaler Teil. Der männ-

liche Genitalapparat ist mit Ausnahme des Ductus ejaculatorius,

im Gegensatz zu den Vermutungen Wheeilers und in Überein-

stimmung mit den Beobachtungen Beards, v. Stummers und des

Verf., ebenfalls ein Teil des Cöloms.

Michel, A. Sur la structure des elytres d’Halosydna gelatinosa,

specialement sur des elements epidermiques en corbeilles et des

elements conjonctifs en iongues fibres helicines et en ceilules

etoilees & fins prolongements entortilles. C.R. Acad. Sci. Paris,

151, p. 1399—1401. — Bei Halosydna gelatinosa besteht das

„reseau Epidermique‘ aus großen Zeilen, die gewissermaßen ‚des

outres röticulees en corbeilles‘‘ sind; nahe der Ansatzstelle ist die

Epidermis polygonal, wozu strahlende Fibrillen gehören. ‚Les

filaments flexueux sont nuclees et constituent des fibres hElicines,

„qui avec des cellules Etoilees a prolongement entortilles, represent

un tissu conjonctif.‘‘ Die Nervenverzweigung bildet einen Plexus.

Die Elytren sind also relativ compliziert.

M’Intosh, W. €. A Mcnograph of the British Annelids. Vol. 2,

Part 2. Polychaeta. Syllidae to Ariciidae. London, 1910, p. 233

—524, Figg. 58—94, pls. 51—56, 71—87. — Beschreibung und

Aufzählung der Arten. Synonymie, Biologie, Organisation und

Fortpflanzung. Neue Arten: Fam.IX. Syllidae. Fam.X.

Nereidae. Fam. XI. Eunicidae. Lumbriconereis hibernica; L.

(Zygolobus) laurentianus Grube oder n.sp.; Marphysa Kinbergi.

Fam. XII. Goniadidae.e. Fam. XIII. Glyceridke. Fam. XIV.

Ariciidae. Aricia Edwardsi var., Aricia Grubei, Armanti. F. 8.

Monticelii, Fr. S. (1). Rhaphidrilus nemasoma Meontic. Nuovo

Ctenodrilide del Golfo di Napoli (Revisione de’ Ctenodrilidi).

Arch. Zool. Napoli, 4, p. 401—436, Figg., pls. 12—13. — Be-

schreibung der neuen Form aus dem Golfe von Neapel. Keine

Wimperorgane am Kopf. 30 Körpersegmente zirka; Anordnung

der Borsten zu Bündeln. Haut, Muskulatur und Pharynx wie bei

den übrigen Ctenodriliden. Der Mitteldarm hat keine Cilien. Ge-

Publikationen und Referate. 123

fäßsystem typisch; Nephridien nur im Kopfsegment. Nerven-

system mit geringen Abweichungen. Vermehrung durch Auto-

tomie, wie Zeppelinia, aber auch proterandischer Hermaphro-

ditismus. Dimorphismus der unvollständig getrennten Ge-

schlechter. Aus den Eiern werden längliche Larven mit be-

wimpertem Kopfe und Wimpergürteln am Körper. Diese Gürtel

verschwinden und die Rückencirren sowie Borsten sprossen hervor.

Ausschlüpfen der Larven durch Zerreißen der Körperwandungen.

Systematisch steht Rapk. der Gattung Zepp. viel näher als Cten.

Einteilung der Ctenodriliden in die Unterfamilie der Otenodrilinae

(mit Cten.) und Heterodrilinae (mit Zepp. u. Raph.). (Nach Neapl.

Jahresber., da dem Ref. nicht zugänglich).

— (2). Di un nuovo Ctencodrilide del Golfo ai Napoli. Nota

preliminare riassuntiva. Rend. Accad. Napoli, Anno 49, p. 61—64.

— Vorläufige Mitteilung zu (1).

Moore, J.P. (1). Polychaetous Annelids from Mocnterey

Bay and San Diego, California. Proc. Acad. N. Sci. Philadelphia,

61, p. 235—295, pls. ”—9. — Beschreibung und Aufzählung der

Arten. Neu sind: Trypanosyllis intermedia, Bhyllodoce medi-

papillata, Nereis (Alitt«) virens plenidentat« n.subsp., Eunice

(Eriphyle) palcloides, Marphysa stylobranchiata, californica, Drilo-

nereis nuda, Stawronereis moniloceras, Aricia johnsoni, Nainereis

robusta, longa, Tharyx multifilis, Pista elonygata, P. (Scionopsis)

atata, Polycirrus californicus, Notomastus tenuis, Eunotomastus

gordiodes, Dasybranchus glabrus, Slerocheilus pacifieus, Trophonia

capulata, Flabelligera commensalis, Protula superba. Es handelt

sich im ganzen um 64 Arten, wovon obige 21 neu sind. F.

— (2). The Polychaetous Annelids dredged by the U. S. 8.

Albatross off the Coast of Southern California in 1904. 1. Syllidae,

Sphaerodoridae, Hesionidae and Phyllodocidae. ibid. p. 321—351l,

pls. 15—16. — Beschreibung und Aufzählung der Arten. Neu

sind: Syllis (Ehlersia) heterochaeta, Pionosyllis typica, Odonto-

syilis phosphorea, Spkaerodorum papillifer, brevicapitis, sphaerulifer,

Phyliodoce ferruginea, Anaitis polynoides, Eumida tubiformis,

Eulalia nigrimaculata, levicornuta, E. (Sige) bifoliata.

— (3). The Polychaetous Annelids dredged in 1908 by Mr.

Owen Bryant off the coasts of Labrador, Newfoundland, and

Nova Scotia. Proc. U. S. Nation. Mus., vol. 37, p. 133—146. —

Beschreibung und Aufzählung der Arten. Von den 51 Arten

stammen 38 von Labrador (31 eventuell neu für diese Region),

13 von Cape Sable, Nova Seotia; 6 Arten sind bisher für amerika-

nische Gewässer noch nicht signalisiert worden. Keine Art neu.

Vertreten sind die Gattungen: Autolytus, Phyllodoce, Harmothoe,

Laenilia, Eunoe, Antinoe, Gatiyana, Eupolynoe, Lepidonotus,

Laetmonice, Nephthys, Nereis, Lumbrinereis, Nothria, Scoloplos,

Cirratulus, Chaetozone, Sabellides, Samytha, Pectinaria, Amphi-

trite, Leaena, Axionice, Nicolea, Thelepus, Terebellides, Lumbri-

clymene, Praxillela, Maldane, Brada, Trophonia, Flabelligera,

124 Polychaeta und Archiannelides für 1910.

Scalibregma, Sternaspis, Myxicola, Sabell«, Okone, Euchone, Pota-

milla, Filograna, Spierorbis.

Morgalis, S. The Regulation of the Water Content in Re-

generation. Science (2), vol. 31, p. 470. — Regulation des Wasser-

gehaltes bei der Regeneration von Podarke obscura. Steigen und

Sinken des H, O-Gehaltes im Verlauf des Wachstums wie der

Regeneration.

Perez, Ch. Les verrues tegumentaires de Pilargis verrucosa.

Proc. Verb. Soc. Sci. Phys. Nat. Bordeaux, 1909, p. 24—25, Fig.

Potts, F. A. Polychaeta of the Indian Ocean. Part II. The

Palmyridae, Aphkroditidae, Polynoidae, Acoetidae and Sigalionidae.

Trans. Linn. Soc. London, 13, p. 325—353, pls. 183—21. — Be-

schreibung und Aufzählung der Arten. Neu sind: Fam. Palmy-

ridae: Palmyropsis n.g. macintoshi Cargados Carajos, Palmyra

splendens Mauritius; Fam. Aphroditidae: Pontogenia chrysocoma

Baird n. var. minuta Wansin, Zanzibar; Fam. Polynoidae: Lepido-

notus cristalus n. var. ornata Salomon, n. var. echinata Mauritius,

n. Sp. purpureus Zanzibar, carinatus Seychelles, pusiulatus Zanzibar,

Polynoe longicirrus S. Male, Nilandu, Fadifolu; P. crinoidicola

Maldives, Suradiva u. Kolumadulu Atoll; ?P. (?) minuta S. Male;

Lagisca indica Amirante, Salomon; 2. cornuta Salomon; 8. flaccida

Zanzibar; Halosydna (?) willeyi Amirante; Lepidasthenia micro-

lepis Hulule, Male Atoll, Maldives; L. maculata Zanzibar; L.

minikoensis Minikoi; Fam. Acoetidae: Panthalis edriophtkalmus

Saya de Malha; Fam. Sigalionidae: Psammolyce farguharensis

Farquhar Atoll; Ps. gracilis (n.sp.?) Saya de Malha; Sthenelais

orientalis Amirante; Sth. calcarea Goidu, Gorfurfehendu Atoll,

Maldives; Sth. variabilis var. hirsuta Hulule, Male Atoll, Maldives;

var. glabra Zanzibar, Hulule usw.; Sth. foliosa Saya de Malha

Seychelles. Im ganzen handelt es sich um 34 Arten. Bestimmungs-

tabellen der einzelnen Genera obiger Familien. F. 8.

*Riddell, W. Spinther oniscoides Johnston. Irish Natural, 18,

1909, p. 101—108, pl.

Skorikow, A. S. Die Polychäten und Gephyreen der Ostsee.

Eine zoogeographische Skizze. Annuaire Mus. Zool. Petersburg,

15, p. 207—236, 2 Karten. — ‚„‚Scheidet man aus dem Gebiete der

Ostsee, wie es Michaelsen auffaßt, die ‚Beltsee‘‘ der Hydrologen

aus, so sinkt die Zahl der Polychaeten auf sieben. Weiter geht

Verf. auf den hydrologischen Charakter der Ostsee ein und unter-

scheidet im Bestande der Fauna von Polychaeten (u. Gephyreen)

sechs Gebiete.‘ (Ref. nach Neapl. Jahresber., da dem Ref. nicht

zugänglich).

Sterzinger, I. Einige neue Spirorbis-Arten aus Suez (etc.).

Sitzungsber. Akad. Wien, 118, Abt.I, II, 1909, p. 1441—1459,

16 Figg., 2 pls. — Beschreibung neuer Spirorben aus dem Indischen

Ocean. Hinweis auf die Bstimmungsmerkmale nach Caullery u.

Mesnil: Röhre, Operculum, Zahl der Thoraxsegmente, Borsten:

Neu sind: Sp. Heideri auf Korallen und einem Schneckengehäuse,

Publikationen und Referate. 125

Sp. Steuerı auf, Algen (Oystosira), indica, africana. militaris

var. Clpd.

Southern, R. (1). The marine Worms (Annelida) of Dublin

Bay and the adjoining distriet. Proc. R. Irish Acad., 28, B, p. 215

— 246. — Beschreibung und Aufzählung der Arten. Die gefundene

Artenzahl der Anneliden beträg t115, 2 Archiannelida, 94 Poly-

chaeta, I[4 Oligochaeta, 1 ‚leech‘“, 4 Geephyrea. Von diesen sind

6 neu für die Britischen Inseln. 37 Arten sind der irischen Fauna

neu hinzugefügt. Von Archianneliden: Dinophilus taeniatus

Harmes und Protodrilus flavocapitatus Uljanin. Von Polychaeten

keine neue Art.

— (2). A Preliminary Note on the Alciopinae, Tomo-

pteridae and Typhloscolecidae from the Atlantic adjacent to Ire-

land. Ann. Mag. N.H. (8), vol. 5, p. 428—429. Vorläufige Mit-

teilung. — Aufzählung der vorkommenden Arten. Vertreten sind

die Gattungen: Vanadis, Greeffia, Callizona, Tomopteris, Tra-

visiopsis, Sagitella. Neu sind: Travisiopsis lanceolata u. levinseni;

Beschreibung der letzteren Arten.

Stummer-Traunfels, R. von. Arktische Myzostomen. Mit

einem Anhang: Über den Bau der Borstendrüsen bei Myzostoma

gigas Graff. Fauna Arctica 5, p. 73—86, 2 F gg. — Allgemeines

über die Verbreitungsverhältnisse der Myzostomen. Zwei Gruppen,

die erste setzt sich aus Myzostoma-Arten zusammen, von denen

jede auf Crinoiden schmarotzt, deren Verbreitungsgebiete sich

ganz oder nur zum Teil decken; die zweite, von denen jede mehrere

Wirte besitzt. Große Ausdehnung des Verbreitungsgebietes.

Nachgewiesenermaßen arktisohe Formen: M. graffi Nansen, gigas

Ltk. Möglicherweise arktische Formen: M. cirriferum, carpenteri

usw. Verhältnis der arktischen zu antarktischen Myzostomen. —

Der Bau der Borstendrüse der M. gigas. Die Borstendrüsen obiger

Art und von M. giganteum hält Verf. für identisch gebildete

Organe.

Treadwell, A.L. Haplosyllis cephalata as an ectoparasite.

Bull. Amer. Mus. N. H., 26, p. 359—360, 2 Figg. — Parasitismus

auf dem Ventral- und Dorsaleirrus einer Eunicidenart. Innige

und feste Verbindung der Parasiten mit dem Wirtstiere.

Viguier, C. Maturite tres precoce d’une larve de Spionide.

C. R. Acad. Sci. Paris, 151, p. 104—106. — Im Plankton der Bucht

von Algier wurden Larven im Nectosoma-Stadium gefunden mit

sexueller Frühreife, sowohl Weibchen wie Männchen. Zugehörig-

keit zu einer sedentären Annelide, nicht weiter bestimmbar.

Große Verschiedenheit der Larven von den erwachsenen Stadien

der Spioniden.

Willem, V. Recherches sur les nephrides. Me&m. Acad. Sci.

. Belgique (2), T.2, in 4°, No.5, 68 pp., 9 Figg., 4 pls. — Be-

schreibung der Nephridien verschiedener Wurmklassen u. a. auch

der Polychäten. Phylogenetische Betrachtungen über die Ent-

wicklung der Nephridien. Ref. siehe unter allg. Biologie.

126 Polychaeta und Archiannelides für 1910.

Übersicht nach dem Stoff.

Allgemeines u. Vermischtes.

Expeditionen: Horst (1), Moore (2). — Methoden: Augener. —

Monographien: M Intosh. — Museen: Ashworth. — Nomenklatur: Beau-

champ (1). — Sammlungen: Ashworth. — Sammelreferat: Maidl. —

Synonymik: Ashworth (1), Augener, Gravely (2), M’Intosh. — System:

Fragen: Beauchamp, Monticelli, Potts, Sterzinger. — Terminologie:

Dehorne. — Theoretisches: Bonnevie, Coventry, Dehorne, Lillie.

Anatomie, Biologie, Physiologie u. ihre Entwicklung.

Anatomie u. Histologie.

Allgemein: Beauchamp, Bonnevie, Dehorne, Joyet-Lavergne, Lillie,

Maidl, Monticelli. — Haut: Beauchamp (3), Joyet-Lavergne, Michel,

Monticelli, Perez, Sterzinger, Stummer-Traunfels. — Nervensystem: Michel,

Monticelli. — Borstendrüsen: Stummer-Traunfels. — Sinnesorgane: Monti-

celli. — Muskelsystem: Joyet-Lavergne, Monticelli. — Resorptionssystem:

Beauchamp (1), Joyet-Lavergne, Monticelli. — Exkretionssystem: Beau-

champ (1), Joyet-Lavergne, Monticelli, Willem. — Chrombraune Zellen:

—. — Respirationssystem: Beauchamp (1, 3), Monticelli. — Genitalsystem:

Beauchamp (1), Maidl, Monticelli. — Kernteilung und Zentrosome: Bon-

nevie, Dehorne. — Reduktionsmechanismus: Dehorne (2, 3, 4). — Morpho-

logie: Ashworth, Augener, Beauchamp, Curiel, Dershawin, Elwes, Gravely,

Horst, Maidl, Michel, M’Intosh, Monticelli, Moore, Perez, Potts, Riddell,

Skorikow, Sterzinger, Southern, Treadwell, Viguier. —

Biologie.

Allgemein: Augener, Beauchamp (2), Dershawin, Hargitt, M’Intosh,

Skorikow, Stummer-Traunfels, Willem. — Leuehten: —. — Palolo: Horst

(3). — Parasitismus und Kommensalismus: Augener, Treadwell. — Psycho-

logie: —. — Regeneration: Monticelli, Morgulis. — Schreekwirkungen: —. —

Plankton: Viguier. — Variation u. Anomalieen: —. — Vererbung: —. —

Röhrenbildung: Enders. — Konvergenz: Beauchamp (2). — Relikten:

Dershawin. —

Physiologie.

Allgemein: Bonnevie, Joyet-Lavergne, Lillie, 'Morgulis. — Sinnes-

funktionen: Monticelli. — Assimilation: Beauchamp, Monticelli. — Muskel-

tätigkeit: Joyet-Lavergne. — Respiration: Beauchamp, Monticelli. —

Exkretion: Beauchamp, Joyet-Lavergne, Monticelli, Willem. — Nerven-

funktion: Michel, Monticelli. — Fortpflanzung siehe unter Entwieklung. —

Anpassung u. Umgebung: Dershawin. — Experimentelle Regeneration:

Morgulis. — Experimente mit Larven u. Eiern: Lillie. — Reize: Lillie.

— Degeneration: Beauchamp (2). — Strahlungserscheinungen: Bonnevie. —

Mechanismus der Rüsselbewegung: Joyet-Lavergne. — Regulation des

H, O-Gehaltes: Morgulis. —

Entwicklung.

Allgemein: Coventry, Hargitt, Lillie, M’Intosh, Monticelli, Viguier.

— Asexuelle Fortpflanzung: —. — Ontogenie: Augener, Jordan, Lillie,

127

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. Systematik.

Viguier. — Phylogenie: Beauchamp (1), Willem. — Reifungsteilungen:

Dehorne, Jordan. — Oogenese: Lillie. — Eiablage: Hargitt. — Spermato-

genese: Dehorne (1). — Segmentation: Lillie. — Organogenese: Monticelli.

— Larven: Gravely, Monticelli, Viguier. — Nährzellen u. Eier: Augener,

Monticelli. — Parthenogenese: Beauchamp (2). — Lokalrassen: Augener.

— Brutpflege: Augener. — Zwergmännchen: Coventry. — Hermaphro-

ditismus: Coventry, Monticelli. — Sexuelle Frühreife: Viguier. —

Palaeontologie.

Bathes.

Faunistik.

Allgemein faunistisch: Dershawin, M’Intosh, Moore, Potts, Skorikow,

Southern, Stummer-Traunfels.

SÜSSWASSER: Wolga -Delta: Dershawin.

NORDATLANTISCHES MEER, ÖSTL. TEIL: Roscoff (Nord-Frank-

reich); Augener; Nord-Spanien: Curiel; Bucht von Torquay: Elwes; Port

Erin: Gravely (1); England: M’Intosh; Dublin Bay: Southern (1, 2).

NORDATLANTISCHES MEER, WESTL. TEIL: Küste von Labrador

und Neufundland: Moore (3).

MITTELMEER: Golf von Neapel: Monticelli; Bucht von Algier: Viguier.

— Suez-Kanal: Sterzinger.

INDISCH-POLYNESISCHES MEER: Malaiischer Archipel: Horst (1),

Potts;

GROSSER OZEAN: Kalifornische Küste: Moore (1, 2). — Zuidersee:

Horst (2). — Ostsee: Skorikow. — Arktis; Stummer-Traunfels.

Systematik.

Allgemeines: Ashworth, Augener, Aricidae; M’Intosh.

Beauchamp, Curiel, M’Intosh, | Aricia johnsoni n. sp. Moore (1). —

Monticelli, Moore, Potts, Ster- Edwardsi var. — Grubei, Ar-

zinger. mandı n. spp. M’Intosh.

Bestimmungstabellen: Horst, Potts, | Autolytus. Moore (3).

Sterzinger. Axionice. Moore (3).

Bathychloeia n. g. sibogae n. SP.

a) Polychaeta. Horst (1).

Amphitrite Moore (3). Brada. Moore (3).

Anaitis polynoides n. Sp.; Moore (2). | Callizona. Southern (2).

Antinoe; Moore (3). Chaetopterus variopedatus. Enders.

Arenicola marina Linn.; Ashworth | Chaetozone. Moore (3).

(1), (2). — grubei Claparede; | Chloeia amphora, conspicua, violacea

Ashworth (1), (2). — ecaudata n. spp. Horst (1).

Johnston; Ashworth (1), (2). — | Chone. Moore (3).

pusilla Quatrf.; Asworth (1). — | Cirratulidae. Elwes.

Claparedii Levinsen; Ashworth | Cirratulus. Moore (3).

(1), (2). — assimilis Ehlers var. | Dasybranchus glabrus n.sp. Moore(1).

affinis; Ashworth (2).

Drilonereis nuda n. sp. Moore (1).

128

Euchone. Moore (3).

Eulalia nigrimaculata,

n. sp. Moore (2).

E. (Sige) bifoliata n. sp. Moore (2).

Eumida tubiformis n. sp. Moore (2).

Eunicidae. Elwes; M’Intosh.

Eunice (Eriphyle) paloloides n. SP.

Moore (1).

Eunoe. Moore (3). — oerstedi Mlgr.

—= nodosa M. Sars n. var. dybowskt.

Augener.

Eunotomastus gordiodes D. SP.

Moore (1).

Eupolynoe. Moore (3).

Filograna. Moore (3).

Flabelligera. Moore (3). — commen-

salis n. sp. Moore (1).

Gattyana. Moore (3).

Glyceridae. M’Intosh.

Glycera lapidum Quatrefg. Augener.

Goniadidae. M’Intosh.

Greeffia. Southern (2).

Halosydna gelatinosa. Michel.

Halosydna (?) willeyi n. sp. Potts.

Haplosyllis cephalata. Treadwell.

Harmothoe. Moore (3). — longisetis

Gr. Augener. — H. (Malm-

grenia) pieta St.-Joseph. Augener.

Hipponoe gaudichaudi Aud. u. M.-

Edw. Augener.

Hydroides dianthus. Hargitt.

Hypania sp. Dershawin.

Laenilla. Moore (3).

Laetmonice. Moore (3).

Lagisca indica n. sp. Potts. — cor-

nuta, flaccida n. spp. Potts.

Leaena. Moore (3).

Leiochone clypeata. Joyet-Lavergne.

Lepidasthenia microlepis nn. SP.

Potts. — maculata, minikoensis

n. spp. Potts.

Lepidonotos. Moore (3). — L. cri-

status n. var. ornata. Potts. —

n. var. echinata, purpureus, cari-

natus, pustulatus n. spp. Potts.

— L. sgamatus Basterr = L.

(Physalidonotus) barbatus n. SP.

Augener.

levicornuta

Polychaeta und Archiannelides für 1910.

Lumbriclymene. Moore (3).

Lumbriconereis funchalensis Kbg.

Augener. — hibernica n. Sp. M’

Intosh. — L. (Zygobolus) lauren-

tianus Grube oder n. sp. M’Intosh.

Moore (3).

Lumbrinereis.

Lysidice oele. Horst (3).

Maldanidae. Elwes.

Maldane. Moore (3).

Marphysa Kinbergi n. sp. ‚M’Intosh.

— stylobranchiata, californica n.

spp. Moore (1).

Myeicola. Moore (3).

Nainereis robusta,

Moore (1).

Nephthys. Moore (3).

Nereidae. M’Intosh.

Nereis Curiel. Lillie, Moore (3). —

limbata. Bonnevie.. — (Alta)

virens plenidentata n. subsp.

Moore (1). — (Leonnates) pusillus

Lnghns. Augener.

Nerilla. Beauchamp (3).

Nicolea. Moore (3).

Nothria. Moore (3).

Notomastus tenuis n. sp. Moore (1).

longa n. SPP.

Odontosyllis phosphorea n. SP.

Moore (2). — O. sp. = Exogone Sp.

Gravely (2).

Ophelia limacina H. Rathke var.

roscoffensis n. var. Augener.

Ophryotrocha puerilis Clpd.

horne (4).

Palmyra chrysocoma Baird n. var.

minuta. Potts.

Palmyropsis n. g. macintoshi n. SP.

Potts.

De-

Panthalis edriophthalmus n. SP.

Potts.

Pectinaria. Moore (3).

Perinereis. Curiel.

Phyllodoce. Moore (3). — ferruginea

n. sp. Moore (2). — medipapil-

lata n. sp. Moore (1). — papulosa

St.-Joseph. Augener.

Pilargis verrucosa. Perez.

Pionosyllis typica n. sp. Moore (2).

Systematik.

Pista elongata n. sp. Moore (1). —

P. (Scionopsis) alata n. SP.

Moore (1).

Platynereis. Curiel.

Podarke obscura. Morgulis.

Polyeirrus californicus n. sp. Moore

(1).

TPolydora. Bathes.

Polynoe longieirrus n. sp. Potts. —

crinoidicola n. sp. Potts. — P. (?)

minuta n. sp. Potts.

Potamilla. Moore (3).

Praxillela. Moore (3). — P. (Cly-

mene) oerstedi Clpd. Augener.

Moore (1).

Psammolyce farquharensis n. SP.

Potts. — gracilis (n. sp.?) Potts.

Pterocirrus microcephala Clpd.

Augener.

Sabella. Moore (3).

Sabellidae. Elwes.

Sabellaria spinulosa.

Protula suwperba n. Sp.

Dehorne (1),

(2). — vulgaris Verrill. Jordan.

Sabellides. Moore (3).

Sagitella. Southern (2).

Samytha. Moore (3).

Sclalibregma. Moore (3).

Sklerocheilus pacifcus nn. SP.

Moore (1).

Scoloplos. Moore (3).

Serpulidae. Elwes.

Sphaerodorum papillifer n. SP.

Moore (2). — brevicapitis, sphae-

rulifera n. spp. Moore (2).

Spinther oniscoides Johnston. Rid-

dell.

Spionidae.

soma-Larven).

Elwes. — Sp. (Necto-

Viguier.

Archiv für Naturgeschichte

1911. VI. 1.

129

Spirorbis. Moore (3). — Heideri,

Steueri, indica, afrikana nn. SPP»

militaris var. Clpd. Sterzinger.

Stauronereis moniloceros 1. SP.

Moore (1).

Sternaspis. Moore (3).

Sthenelais orientalis, calcarea n. SPP.

Potts. — variabilis var. hirsuta,

glabra. Potts. — foliosa n. Sp.

Potts.

Streblospio Dekhuyzenin.sp. Horst (2).

Syllidae. M’Intosh.

Syllis (Ehlersia) heterochaeta n. Sp.

Moore (2).

Terebellidae. Elwes.

Terebellides.. Moore (3).

Tharyx multifilis n. sp. Moore (1).

Thelepus. Moore (3).

Tomopteris. Southern (2).

Travisiopsis. Southern (2). — lan-

ceolata,levinseni n. sp. Southern (2).

Trophonia. Moore (3). — capulata

n. sp. Moore (1).

Trypanosyllis intermedia n. SP.

Moore (1).

Vanadis. Southern (2).

b. Archiannelides.

Dinophilus Conklini. Beauchamp (1),

(2). — taeniatus Harmer. Sou-

thern (1).

Myzostoma. Coventry; Maidl. —

graffi Nansen, gigas Ltk., cirri-

ferum, carpenteri, giganteum usw.

Stummer-Trauniels.

Protodrilus flavocapitatus

Southern (2).

Raphidrilus n. g. nemasoma n. Sp.

Monticelli.

Uljanin.

Gephyrea für 1910.

Von

Dr. A. Schepotieff, St. Petersburg.

Publikationen und Referate.

(F= siehe auch unter Faunistik; S= siehe auch unter Systematik)

Bledowski, R. Beiträge zur Kenntnis der Bonellia viridis

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besonderer Berücksichtigung des Darmkanals. Phascolosoma

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Bledowski. Petalostoma minutum; Paul. — Haut und Muskulatur bei

Sipunculiden; Mräzek. — Darmkanal von Pelagosphaera; Heath. Von

Petalostoma; Paul. — Exeretionssystem: Allgemeines über Nephridien;

Willem. — Ontogenie: Pelagosphaera; Heath. — Phylogenie: Bonellia,

den Anneliden nahestehend; Bledowski.

Faunistik. Systematik. 131

Faunistik.

Arktik: Phascolion strombi, Priapulus caudatus; Southern. —

Atlantik. Irland: Petalostoma minutum, Phascolosoma vulgare, Phascolion

strombi, Priapolis caudatus (ib.). England: Phascolosoma vulgare, Priapulus

caudatus (ib.). Normandie: Petalostoma minutum (ib.). Grönland: Phasco-

losoma vulgare (ib.). — Mittelmeer: Sipunculus-Larve; Stiasny. Phasco-

losoma vulgare, Phascolion strombi; Southern. — Indik. Rotes Meer:

Phascolosoma vulgare (ib.). — Antarktik: Priapulus caudatus (ib.).

Systematik.

Bonellia viridis. Bledowski. Phascolosoma improvisum, Ph. sabel-

Onchnesoma sarsü, O0. steenstrupü. lariae. Paul. Ph. vulgare. Southern.

Paul. Phascolion strombi. Southern.

Petalostoma minutum. Paul. Sou- | Priapulus caudatus. Southern.

thern. Sipunculus-Larven. Stiasny.

Pelagosphaera. Heath.

Oligochaeta für 1910.

Von

Dr. W. Michaelsen, Hamburg.

| Publikationen.

(F— siehe auch unter Faunistik; S— siehe auch unter Systematik.

Autoren, die irgend eine im Laufe des Jahres 1910 veröffentlichte

Arbeit über Oligochäten im folgenden Bericht vermissen sollten,

werden freundlichst ersucht, dem Verfasser hiervon Mitteilung

zu machen, damit über die betreffende Arbeit nachträglich re-

feriert werden kann).

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— Bericht über Oligochäten für 1908; Michaelsen (9). Oekonomisches:

Aporectodea (Allolobophora) chlorotica (Sav.) als Pflanzenschädling, die

Wurzeln abfressend; Friend (5). — Fang und Zucht von Regenwürmern;

Mattock, p. 647—648, 1 t. — Mittel zum Vertilgen von Regenwürmern;

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Oligochäten (u. anderen Schlammtieren) auf die Schlammbildung und

damit auf die Fruchtbarkeit von Überschwemmungsböden; Friend (9).

Sammein. Sammeln von ÖOligochäten; Friend (7).

Morphologie, Anatomie, Histologie.

(Man vergleiche auch die Beschreibungen der Arten unter Systematik),

Allgemeine Morphologle der Oligochäten: Vollständige Anatomie und

Histologie der Enchyträiden-Gattung Hepatogaster n. gen. Cejka (1), p- 5

—24, t. 1-3. Hautmuskelschlaueh: Akzessorische Drüsen im Haut-

muskelschlauch von Cryptodrilus saccarius Fletch. Buchanan (2), p- 221

— 222, t. 43, Fig. 1—3. — Leuchtendes Sekret von Hautdrüsen; Walter

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Hönig, p. 257— 282, 1 t., 1t. — Die Neurofibrillen bei den Lumbrieiden;

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Haller, p. 591—615, tf. 1—3, t. 22f. 1—6, t. 23, f. 7. — Das Central-

138 Oligochaeta für 1910.

nervensystem von Lumbricus; Boule. Darmkanal: Die verschiedenen

Kalkdrüsen-Formen im gen. Rhinodrilus. Michaelsen (2), p. © 131—C 134.

— Makroskopische und mikroskopische Struktur des Darmkanals bei

australischen Oligochäten (Megascolex dorsalis Fletch., M. Fielder: W.B. Sp.,

M. tenax Fletch., Oryptodrilus saccarius Fletch., Fletcherodrilus unicus

Fleteh., Diporochaeta Bakeri Fletch., D. tanjilensis W.B.Sp.). Raff,

t. 4&—51. — Drüsenkanäle im Darm-Epithel von Hepatogaster. Cejka (1),

p. 12—14. — Blutgefäßsystem; Die Blutgefäße australischer Oligochäten

(Megascolex australis Fletch., Notoscolex camdenensis Fletch., N. queens-

landica W.B. Sp., Cryptodrilus manifestus Fletceh., C. grandis Fletch., ©.

saccarius Fletch.). Buchanan (6). — Exkretionsorgane: Die Nephridien

australischer Oligechäten (Megascolex dorsalis Fletch., M. Fielderi W. B. Sp.,

Diporochaeta davallia W.B.Sp., D. grandis W.B.Sp., Digaster armifera

Fleteh., Perissogaster excavata Fletch., Megascolides australis Me Coy,

Woodwardia gippslandica W.B.Sp., W. cooraniensis W.B. Sp., Notoscolex

queenslandica W.B. Sp., Fletcherodrilus unicus Fletch. var. major W.B. Sp.).

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—130, 1t., 3tf.

Ontogenie, Phylogenie, Regeneration ete.

Ontogenie; Pseudo-Reduktion in der Eibildung bei Allolobophora

foetida. Foot u. Strobel. — Einzelheiten der Spermatogenese bei Obligochäten.

Hesse. — Organogenetische Untersuchungen über Criodrilus lacuum Hoff-

mstr.; hauptsächlich die Nephridien betreffend: a) Polzellen und Zellreihen,

b) Entwicklung der Nephridien, c) der Nervenstrang, d) Entwicklung

der Längsmuskulatur und des ‚accessorischen Bauchmuskelfeldes‘‘. Staff.

— Regeneration; Regeneration bei Limnodrilus, Tubifex, Lumbriculus und

Lumbrius. Krecker. — Regeneration am Hinterende von Tubifex rivulorum

Lam. Lomb, p. 1—44. — Regeneration bei Zumbriculus. Morgulis (1), p. 39€

—439, 3tf. — Eigenartige Einschlüsse in regenerierenden Bindegewebs-

zellen. Schröder. — Studien über die Regeneration des vorderen Körper-

endes bei den Oligochäten. Grönberg. — Transplantation: Bastardierung

durch Transplantation von ÖOvarien des Lumbricus terrestris auf Helodrilus

(.Allolobophora) caliginosus. Harms. — Transplantationsversuche an Lum-

brieiden. Leypoldt (1), p. 346—348; (2), p. 1—20, 17 tf.; (3), p. 21—79,

48 tf., 2t. —

Biologie, Physiologie.

Lebensweise; Zeit der Geschlechtsreife der Naidideen. Piguet, p. 186.

— Kommensalismus von Oligochäten und Süßwasser-Spongien. Stephen-

son (2). — Lebensweise von jungen Dendrobaena subrubicunda (Eisen) und

Eisenia foetida (Sav.), Aufenthalt in Haufen von Chara, die aus einem

Teich herausgenommen. Friend (1). — Neu-Auftreten von Regenwürmern

in frisch mit Kühen besetzten Wiesen. Hundhausen. — Regenwürmer in

Wetterschächten. Petruschka, p. 734. — Einwanderung von Regenwürmern

in feuchte Pflanzenhaufen (von Chara). Friend (6). — Physiologie: Über

die Befruchtung (Wanderung der Spermatozoen zu den Eiern) bei Par-

eudrilus pallidus Cogn. Cognetti. Haut-Atmung und Atmung durch

innere Kiemen. Cambault. — Leuchtende Regenwürmer in Irland beob-

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 139

achtet. Friend (3). — Riechen oder Schmecken bei Regenwürmern ?,

Chemischer Sinn. Hundhausen. — Reagieren der Regenwürmer auf Säuren.

Hurwitz. — Reaktion von Aeolosoma auf chemische Einwirkungen. Kribs,

p. 43—74, 2 tf. — Anoxybiotische Prozesse bei Regenwürmern. Lesser (1),

p- 282—297. — Anoxybiotische Zersetzung des Glykogens bei Regen-

würmern. Lesser (2), p. 533—544. — Gaswechsel der Regenwürmer in der

Erholung nach vorausgegangener Anoxybiose. Lesser (3). — Die Bewegung

der Regenwürmer. Morgulis (2), p. 615—624. — Chemische und physika-

lische Beeinflussung des Bodens durch Regenwürmer. Russell (1), p. 470;

(2), p. 401—402. — Peristaltische Bewegungen der Blutgefäße des Regen-

wurms. Stübel, p. 1—34, 1 t. — Aufnahme von Karmin durch die Chlo-

ragogenzellen, Überführung ins Blut und Ausscheidung durch die Nephridien.

Szüts (1, 2). Das Leuchten eines terrestrischen Oligochäten. Walter (1),

p- 103—109, 3 tf.; (2), p. 136—137, 3 tf. — Reaktion von Perichaeta und

Lumbricus auf Licht-Einwirkungen. Harper (1, 2).— Nahrung: Aktiv;

Aporrectodea (Allolobophora) chlorotica (Sav.) Pflanzenwurzeln fressend.

Friend (5). — Passiv; Regenwürmer als Nahrung für Fische. Petruschka,

p. 734. — Parasitismus: Aktiv; Pseudo-Parasitismus von Oligochäten

Henlea nasuta (Eisen), Fridericia bisetosa (Levins.), Enchytraeus Buch-

holzi Vejd., Microscolex phosphoreus (Dug.), aut Octolasium cyaneum Sav.,

aut O. lacteum Örley, Eisenia foetida Sav. Blanchard et Savignac. —

Astacopsidrilus notabilis n. sp. und A. fusiformis n. sp. an Astacopsis serratus

Shaw. Goddard (1). — Passiv: Ein mutmaßlicher Nematode als Parasit

in der Ringmuskulatur ven Diporochaeta grandis W.B. Sp. Buchanan (3),

p- 99—101, t. 20—21. — Die Amobocyten von Lumbricus. Joseph. Ein

Cysticercoid aus Tubifex. Mrazek (1), p. 315—317. — Eine Distomeneyste

im Blutgefäß eines Oligochäten. Mrazek (2), p. 522—524. — Thelohania

chaetogastris n.sp. in Ohaetogaster diaphanus (Gruith.). Schröder, p. 119

—133.

Faunistik.

Verschiedenes.

Formenreichtum der kaukasisch-transkaukasischen Lumbriciden-

Fauna; dieses Gebiet als Urheimat der Fam. Lumbricidae anzusehen.

Michaelsen (1), p. 10. — Tabelle der Oligochäten von Vorderindien, Nepal

und Ceylon. Michaelsen (3), p. 7—14. — Die faunistischen Beziehungen

der Oligochäten von Vorderindien, Nepal und Ceylon, Teilung dieses Ge-

bietes in verschiedene Untergebiete und geologisch-faunistische Geschichte

dieses Gebietes. Michaelsen (3), p. 15—45, tf. KI—-KIX. — Die ter-

restrischen Oligochäten des tropischen Afrikas und ihre geographischen

Beziehungen. Michaelsen (5), p. 4—16, Kartensk. A u. B. — Die Oligo-

chäten des Forth-Gebietes in Schottland. Evans. — Die aquatilen Oligo-

chäten Galiziens. Kowalewski. — Liste der marinen Oligochäten von der

Dublin Bay. Southern (2), p. 244. — Die terrestrischen Anneliden von-

Shropshire in West-England. Friend (2). Die Oligochäten von Worster-

shire. Friend (8). Endemisches Vorkommen und Verschleppung, Ver-

breitung endemischer Lumbrieiden, Eiszeit und Verbreitung der Lumbri-

ciden in Europa. Ude.

140 Oligochaeta für 1910.

Allgemeines.

Über peregrine Formen. Michaelsen (3), p. 15—19.

Spezielles.

Europa.

SPANIEN: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides

(Dug.). Michaelsen (1).

FRANKREICH: Microscolex dubius (Fletch.). Michaelsen (4). —

Branchiura Sowerbyi Bedd. Perrier.

SARDINIEN: Helodrilus (Eophila) sardus n. sp. Michaelsen (1). —

ITALIEN: Octolasium mima (Rosa) f. typica. Michaelsen (1). Helo-

drilus (Eophila) Laurentii n. sp. Chinaglia (1), — Octolasium lissaense

(Mich.). Chinaglia (2). —

GRIECHENLAND: lIonische Inseln, Korfu: Helodrilus (Eiseniella)

tetraedra (Sav.) f. hercynia (Mich.), H. (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f.

trapezoides (Dug.), H. (A.) chloroticus (Sav.). Michaelsen (1). — Festland:

H. (Dendrobaena) Ganglbaueri (Rosa) var. annectens (Rosa), H. (Allolo-

bophora) chloroticus (Sav.). Michaelsen (1). —

NORWEGEN: Lumbricus castaneus (Sav.). Michaelsen (1). —

GROSSBRITANNIEN. England: Aporectodea (Allolobophora) similis

n.sp. Friend (4). — Schottland: Aeolosoma quaternarium Ehrbg., Ae.

Hemprichi Ehrbg., Chaetogaster ?diaphanus (Gruith.), Ch. limnaei K.

Baer, Nais elinguis Müll. ?, Stylaria lacustris (L.), COlitellio arenarius

(Müll.), Tubifex tubifex (Müll.), T. Benedeni (Udek.) T. costatus (Clap.),

Lumbriculus variegatus (Müll.), Marionina semifusca (Clap.), Lumbricillus

verrucosus (Clap.), Fridericia magna Friend, [Pheretima indica (Horst)

in Warmhäusern], Eiseniella tetraedra (Sav.) f. typica u. f. hercynia (Mich.),

Bisenia foetida (Sav.), Ei. alpina (Rosa), Ei. rosea (Sav.), Helodrilus (Allo-

lobophora) caliginosus (Sav.), H. (A.) longus (Ude), H. (4A.) chloroticus (Sav.),

H. (Dendrobaena) rubidus (Sav.) f. typica n. var. subrubicunda (Eisen), H.

(D.) mammalis (Sav.), H. (Helodrilus) oculatus Hoffmstr., Octolasium

cyaneum (Sav.), O. lacteum Orley var. gracile (Örley), Lumbricus rubellus

Hoffmstr., L. castaneus (Sav.), L. terrestris Müll., L. festivus (Sav.). Evans.

— Irland: Chitellio arenarius (Müll.), Tubifex costatus (Clap.), Marionina

semifusca (Clap.), Lumbrieillus verrucosus (Clap.), Enchytreus albidus Henle,

E. sabulosus Southern. Southern (2). —

DEUTSCHLAND. Hamburg: Helodrilus (Eiseniella) tetraedra (Sav.)

f. hammoniensis n. f. Michaelsen (1).

ÖSTERREICH-UNGARN. Tirol: Helodrilus ( Allolobophora) caliginosus

(Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Österreich- Küstenland: Octola-

stum mima (Rosa) var. Marenzellerı n. var. u. var. tergestina n. var. Michaelsen

(1). — Böhmen: Lumbricus baicalensis Mich. Michaelsen (1). — Nieder-

Österreich: Lumbricus polyphemus (Fitz.). Michaelsen (1). — Galizien:

Nais communis Piguet, N. pardalis (Piguet), N. variabilis Piguet, N. obtusa

(Gerv.), N. pseudoobtusa (Piguet), Ophidonais serpentina (Müll.), Slavina

appendiculata (Udek.), Stylarıa lacustris (L.), Pristina longiseta Ehrbe.,

Dero Perieri (laps. pro Perrieri, Anm. d. Ref.) Bousfield, D. limosa Leidy,

Faunistik. 141

Auloporus (laps. pro Aulophorus, Anm. d. Ref.) furcatus (Oken), Tubifex

barbatus (Grube), Limnodrilus Hoffmeisteri Clap., Lumbriceulus variegatus

(Müll.). Kowalewski. —

RUSSLAND. Murman-Küste: Helodrilus (Dendrobaena) octaedrus

(Sav.). Michaelsen (1). — Kolgujew-Insel: Helodrilus (Dendrobaena) octae-

drus (Sav.). Michaelsen (1). — Alands-Inseln: Helodrilus (Dendrobaena)

octaedrus (Sav.), H. (D.) subrubicundus (Eisen), Octolasium lacteum Örley,

Lumbricus rubellus Hoffmstr., L. terrestris L., Müll. Michaelsen (1). —

Gouv. Archangelsk: Helodrilus (Bisenia) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica;

H. (Dendrobaena) octaedrus (Sav.). Michaelsen (1). — Gouv. Witebsk: Helo-

drilus ( Bimastus) constrictus (Rosa), Lumbricus rubellus Hoffmstr. Michaelsen

(1). — Gouv. Wladimir: Helodrilus (Eisenia) roseus (Sav.), H. (Ei.) foetidus

(Sav.), H. (Dendrobaena) octaedrus (Sav.), H. (Allolobophora) caliginosus

(Sav.) f. typica, H. (A.) longus (Ude), Lumbricus rubellus Hoffimstr., L.

terresiris L., Müll. Michaelsen (1). — Gouv. Nowgorod: Helodrilus (Eisenia)

roseus (Sav.), H. (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. typica, Lumbricus

rubellus Hoffmstr., L. terrestris L., Müll. Michaelsen (1). — Gouv. Kiew:

Helodrilus (Eisenia) foetidus (Sav.). Michaelsen (1). — Gouv. St. Peters-

burg: Octolasium lacteum Örley, Lumbricus rubellus Hoffmstr., L. terrestris

L., Müll., Helodrilus (Eiseniella) tetraedrus (Sav.)f. typica, H. (Eisenia)

roseus (Sav.), H. (Ei.) venetus (Rosa) var. hortensis Mich., H. (Dendrobaena)

octaedrus (Sav.), H. (D.) subrubicundus (Eisen), H. (Allolobophora) caligt-

nosus Nav. f. typica u. f. trapazoides (Dug.), H. (Bimastus) constrictus (Rosa).

Michaelsen (1). — Gouv. Mogilew: Helodrilus (Eiseniella) tetraedrus (Sav.)

f. typica, H. (Dendrobaena) octaedrus (Sav.), Octolasium lacteum Örley,

Lumbricus rubellus Hoffmstr., L. terrestris L., Müll. Michaelsen (1) —

Gouv. Ufa: Helodrilus (Eiseniella) tetraedrus (Sav.) f. typica, H. (Eisenia

foetidus (Sav.), H. (Allolobophora) caliginosus (NSav.) f. typica u. f. trapezoides

(Dug.). Michaelsen (1). — Gouv. Charkow: Helodrilus (Eisenia) roseus

(Sav.), H. (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michael-

sen (1). — Gouv. Kiew: Octolasium transpadanum (Rosa). Michaelsen (1).

— 6Gouv.Kursk: Helodrilus (Eisenia) roseus (Sav.), H. (Ei.) foetidus (Sav.),

H.(Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. typica u. f. trapazoides (Dug.), H.

(Bimastus) constrictus (Rosa). Michaelsen (1). — Gouv. Kasan: Helodrilus

(Eisenia) foetidus (Sav.), H. (Dendrobaena) kazanensis n.sp. Michaelsen

(1). — Gouv. Jekaterinoslaw: Helodrilus (Eisenia) foetidus (Sav.). Michael-

sen (1). — Nord-Kaukasus: Helodrilus (Eisenia) foetidus (Sav.), H. (Ei.)

venetus (Rosa) f. typica, var. concolor n. var., H. (Dendrobaena) Attemsi

Mich. var. ?, H. (D.) Schmidti Mich. f. iypica, H. (D.) mariupolienis Wys-

sotzki f. typica, H. (D.) Handlirschi (Rosa) var. rhenani (Bretscher), H.

(Eophila) montanus n. sp. Michaelsen (1).

Asien.

Transkaukasien: Helodrilus (Eiseniella) tetraedrus (Sav.)f. typica, H.

(Er.) t. f. eutypica n. f., H. (Eisenia) roseus (Sav.), H. (Ei.) foetidus (Sav.),

H. (Ei.) Nordenskiöldi (Eisen) f. lagodechiensis n. f., H. (Ei.) schemachaensis

n. sp., H. (Ei.) alpinus (Rosa) f. typica u. var. decipiens n. var., H. (Et.)

venetus (Rosa) f. typica, var. picta n. var., var. zebra Mich., var. concolor

142 Oligochaeta für 1910.

n. var. u. var. montana n. var., H. (Ei.) boneiensis n. sp.?, H. (Ei.) schel-

kovnikovi Mich. f. typica, var. veliensis n. var. u. var. bakuensis n. Var.

H. (Dendrobaena) Schmidti Mich. var. surbiensis n. var. u. var. violacea

n. var., H. (D.) fauceium n. sp., H. (D.) Fedtschenkoi Mich. var. lenkoranensis

n. var., H. (D.) Ganglbaueri (Rosa) var. daghestanensis Mich., H. (D.) mariu-

poliensis Wyssotzki f. typica u. var. monticola n. var., H. (D.) octaedrus

(Sav.), H. (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.), H. (A.)

cavaticus D. Sp., H. (A.) jassyensis Mich., H.(A.) agatchiensis n. sp, H. (A.)

Schneider: Mich. var. muganiensis n. var., H. (Bimastus) constrictus (Rosa),

H. (Eophila) Kaznakovi n. sp., Lumbricus rubellus Hoffmstr. Michaelsen (1).

— Kleinasien: Octolasium transpadanum (Rosa). Michaelsen (1). — Turkestan:

Samarkand: Helodrilus (Eisenia) roseus (Sav.), H.(Ei.) foetidus (Sav.), H.

( Allolobophora) caliginosus (Sav.)f:trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Tasch-

kent: Helodrilus (Allolobophora)jassyensisMich. Michaelsen(1).— Westl. Thian-

Schan: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.),

H. (A.) jassyensis Mich. Michaelsen (1). — Sibirien: Gouv. Akamolinsk:

Helodrilus (Eisenia) roseus (Sav.). Michaelsen (1). — Gouv. Tomsk: Helo-

drilus (Eisenia) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica. Michaelsen (1). — Gouv.

Irkutsk: Helodrilus (Eisenia) foetidus (Sav.). Michaelsen (1). — Die Fund-

ortsangabe „Baikal-See’” für Lumbricus baicalensis Mich. ist zu anullieren.

Michaelsen (1). — Gouv. Jenisseisk: Helodrilus (Eisenia) joetidus (Sav.),

H. (Ei.) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica. Michaelsen (1). — Neusibirische

Inseln: Hepatogaster Birulae n. sp., H. sibiricus n. sp. Cejka (1). — Gouv.

Jakutsk: Helodrilus (Eisenia) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica. Michaelsen

(1). — Transbaikalien: Helodrilus (Eisenia) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica.

Michaelsen (1). — Vorderindien: Drawida travancorensis n. sp, D. Matthai

n.Sp., D. pellucidus (Bourne) var. pallida (Mich.), D. Barwelli (Bedd.),

D. ghatensis n. sp., Moniligaster Deshayesi E. Perr., Megascolides Tenmalai

n. Sp., M. cochinensis n. Sp., Megascolex travancorensis n. Sp. f. typica, var.

quilonensis n. var. u. var. ghatensis n. var., M. insignis n. Sp., Octochaetus

Pitinyi n.sp., O. surensis n. Sp., Eudichogaster bengalensis n. sp, Dicho-

gaster Bolaui (Mich.), D. affinis (Mich.), D. Modiglianii (Rosa), Gordio-

drilus travancorensis n. Sp., Ocnerodrilus (Ocnerodrilus) occidentalis Eisen,

Glyphidrilus Annandalei n.sp., Helodrilus (Bimastus) constriectus (Rosa).

Michaelsen (3). — Dero sp. Stephenson (1). — Pristina longiseta Ehrbg.,

Nais pectinata n. Sp., N. communis Piguet var. coeca.n. var. Stephenson (2).

— (Ceylon: Die Fundortsangabe Ceylon für Moniligaster Deshayesi E. Perr.

ist zu anullieren. Michaelsen (3). — Notoscolex termiticola n. Sp., Megascolex

Adami n. sp., M. Escherichi n. Sp., M. insignis n. Sp., M. spectabilis n. SP«,

Ocnerodrilus (Ocnerodrilus) occidentalis Eisen. Michaelsen (3). — Assam:

Perionyz Anmandalei (Mich.). Michaelsen (3). — Sinai-Halbinsel: Helo-

drilus ( Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1).

— Syrien: Helodrilus (Eisenia) venetus (Rosa) var. Kervillei n. var., H.

(Dendrobaena) semiticus (Rosa) var. Kervillei n. var. Michaelsen (4). —

Tibet: Helodrilus (Bimastus) Beddardi Mich. Michaelsen (1). — China:

Helodrilus (Bimastus) parvus (Eisen). Michaelsen (1). — Pheretima hawayana

(Rosa) f. barbadensis (Bedd.), Ph. hongkongensis n. sp., Drawida japonicus

Mich. f. Siemsseni n.f. Miehaelsen (4). — Japan: Helodrilus (Allolobo-

Faunistik. 143

phora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.), H. (Bimastus) parvus (Eisen),

Michaelsen (1).

Afrika.

Ägypten: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides

(Dug.). Michaelsen (1). — Tunis: Microscolex dubius (Fletch.). Michael-

sen (4). — Algerien: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. tra-

pezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Hormogaster Redii Rosa. Michaelsen

(4). — Sierra Leone: Dichogaster scherbroensis n. sp. Michaelsen (4). —

Britisch Nigeria: Gordiodrilus robustus Bedd., Hyperiodrilus africanus Bedd.,

Beddardiella Dalzieli n. gen. n.sp. Michaelsen (4). — Kamerun: Dicho-

gaster Ehrhardti (Mich.) var. Linnelli n. var., Gordiodrilus robustus Bedd.,

Nematogenia panamaensis (Eisen). Michaelsen (4). — Portugiesisch Kongo:

Platydrilus hortensis n.Sp., Stuhlmannia Sandersi n.Sp., Hwyperiodrilus

africanıs Bedd. Michaelsen (4). — Belgisch Kongo. West-Gebiet: Dicho-

gaster papillata (Eisen), Platydrilus inermis n.sp., Eminoscolex congicus

n. sp., Büttneriodrilus mayiliensis n. Sp., Alma eubranchiata n. sp. Michael-

sen (4). — Ost-Gebiet: Dichogaster seriatospina n. Sp., D. bataguensis N. SP«,

D. itoliensis (Mich.) f. J ohnstoni (Bedd.), Platydrilus Wiesei n. sp., Bettonia

Adolphi-Friderici n.sp., Eupolytoreutus Graueri n.sp., Polytoreutus sil-

vestris Mich., Alma Aloysii-Sabaudiae Cogn., A. Stuhlmanni Mich. Michael-

sen (5). — Britisch - Ostafrika: Platydrilus Scheffleri n.sp. Michaelsen (5).

— Uganda: Pygmaeodrilus bipunctatus (Mich.) var. budduensis n. var.

Michaelsen (5). — Deutsch -Ostafrika: Pontodrilus bermudensis Bedd. f.

iypica. Michaelsen (4). — Dichogaster Tanganyikae (Bedd.), D. Karissimbii

n.sp., D. Schubotzi n. sp., D. karagoensis n. Sp., D. kwidschwiensis N. SP.s

D. kiwuensis n. sp., D. Bolaui (Mich.), D. erateris n. sp., D. gracilis (Mich.),

D. Austeni (Bedd.), D. itoliensis (Mich.) f. Johnstoni (Bedd.), Pygmaeo-

drilus bipunctatus (Mich.) var. modesta n. var., P. Grawerti n. sp. P. kiwu-

ensis n. Sp., P.Vosseleri n. sp., Stuhlmannia variabilis Mich. var. Michaelseni

(Bedd.), Bettonia budduensis n. sp., Teleudrilus aberratus n. sp., Eupoly-

toreutus Schubotzi n. Sp., Pontoscolex corethrurus (Fr. Müll.). Michaelsen (5).

— Nyassa-Land: Dichogaster Bolaui (Mich.), D. papillata (Eisen), D.

Austeni (Bedd.), D. Frickei n. sp. Michaelsen (5). — Süd-Rhodesia: Dicho-

gaster Bolaui (Mich.), Ocnerodrilus (Ocnerodrilus) occidentalis Eisen, O.

(Ilyogenia) Chubbi n. sp. Michaelsen (5). — Transvaal: Helodrilus (Allolobo-

phora) caliginosus (Sav.) f. iypica. Michaelsen (1). — Orange-Kolonie:

Helodrilus ( Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. typica u. f. trapezoides (Dug.),

H. (Bimastus) parvus (Eisen). Michaelsen (1). — Microscolex dubius (Fletch.),

Pygmaeodrilus arausionensis n.sSp. Michaelsen (4). — Nemertodrilus

Kellneri n. Sp., Microchaetus modestus Mich. var. humicultor n. var., M.

griseus Mich. Michaelsen (5). — Kap-Kolonie: Helodrilus (Allolobophora)

caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Die Fundorts-

angabe „Cape Colony, Port Elizabeth‘ für Microchaetus modestus Mich.

ist zu anullieren. Michaelsen (5).

Inseln des indischen Ozeans. -

Madagaskar: Eodrilus dauphinianus n. sp. Michaelsen (4).

144 Oligochaeta für 1910.

Malayischer Archipel.

Java: Woodwardia javanica n. sp. Michaelsen (4). — Celebes: Pheretima

Stelleri (Mich.) subsp. koroensis n. subsp. Michaelsen (4). — Kei-Inseln:

Pheretima elongata (E. Perr.), Ph. fakfakensis Cogn. f. tetratheca n. I.

Ph. halmaherae Mich. subsp. galelensis Mich., Ph. indica (Horst).

Michaelsen (6). — Aru-Inseln: Drawida parvus (Bourne), Pheretima poly-

theca (Bedd.) f. aruensis n.f., Ph. fakfakensis Cogn. f. tetratheca n.f., Ph.

Mertoni n. sp., Ph. halmaherae Mich. subsp. galelensis Mich. Michaelsen (6).

Australien.

Östliche Staaten: Astacopsidrilus notabilis n. sp., A. fusiformis n. Sp.

Goddard (1). — Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides

(Dug.). Michaelsen (1). — Südwest-Australien: Helodrilus (Allolobophora)

caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Notoscolex bran-

casteriensis n. sp. Michaelsen (4). — Tasmanien: Piutellus decatheca n. SP.,

Notoscolex Leai n. sp. Michaelsen (4). — N. gen.? n. sp. der Fam. Phreo-

drilidae. Goddard (2). — Queensland: Eodrilus queenslandieus N. SP«s

E. Dämeli n.sp.? Michaelsen (4).

Inseln des Paeifischen Ozeans.

Karolinen, Insel Jap: Drawida Barwelli (Bedd.). Michaelsen (3). —

Pheretima sangirensis (Mich.), Ph. carolinensis n. sp. Michaelsen (3). —

Neuseeland: Helodrilus ( Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. typica. Michaelsen

(1). — Mooridrilus modestus n. sp. Michaelsen (4).

Nordamerika.

VEREINIGTE STAATEN. New York: Helodrilus (Allolobophora) caligv-

nosus (Sav.) f. typica. Miehaelsen (1). — New Hampshire: Helodrilus

(Dendrobaena) rubidus (Sav.) f. typica, Henlea Scharffi n.sp. Southern (1).

— Massachusetts: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. typica

u. f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — North Carolina: Helodrilus

(Eisenia) carolinensis n. sp. Michaelsen (1). — Georgia: Helodrilus (Allolobo-

phora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Illinois.

Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michael-

sen (1). — Nebraska: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. tra-

pezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Washington: Lumbricus rubellus

Hoffmstr.

Zentralamerika.

Mexiko: Dichogaster Paessleri n. sp. Michaelsen (4).

Südamerika.

Colombia: Pontodrilus bermudensis Bedd. f. typica. Michaelsen (4). —

Ecuador. Helodrilus (Bimastus) constrictus (Rosa). Michaelsen (1). Rhino-

drilus( Thamnodrilus) Riveti n. sp., Rh. (Aptodrilus) uncinatus n. Sp. Michael-

sen (2). — Microscolex phosphoreus (Dug.). Michaelsen (4). — Peru: Helo-

drilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen

(1). — Bolivia: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides

Faunistik. Systematik. 145

(Dug.). Michaelsen (1). — Chile: Helodrilus (Allolobophora) caliginosus

(Sav.) f. iypica u. f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). — Brasilien, Petro-

polis: Helodrilus (Dendrobaena) rubidus (Sav.), H. (Allolobophora) caligi-

nosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). Glossoscolex Wiengreeni

Mich. var. Humboldti n. var. Michaelsen (4). — Uruguay: Helodrilus

(Allolobophora) caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). —

Argentinien: Microscolex Collislupi n. sp. Michaelsen (4). — Westindien:

Insel Mona: Pontodrilus bermudensis Bedd. f. typica. Michaelsen (4). —

Haiti: Pontodrilus bermudensis Bedd. f. typica. Michaelsen (4).

Inseln des Atlantischen Ozeans.

Azoren, Sa6ö Miguel: Helodrilus (Eisenia) roseus (Sav.), H. (Allolobo-

phora) caliginosus Sav. f. typica u. f. trapezoides (Dug.). Michaelsen (1). —

Madeira: Helodrilus (Bimastus) Eiseni (Levins), Lumbricus terrestris L.,

Müll. Michaelsen (1). — Canarische Inseln: Helodrilus (Allolobophora)

caliginosus (Sav.) f. trapezoides (Dug.), H. (Bimastus) Eiseni (Levins.),

Octolasium lacteum Örley, Lumbricus rubellus Hoffmstr. Michaelsen (1).

Systematik.

Verschiedenes.

Die systematische Gliederung der Fam. Lumbricidae. Michaelsen (1),

p. 2—10. — Revision der Gattung Pontodrilus. Michaelsen (4), p. 83—93.

— Systematische Gliederung der Subfam. Acanthodrilinae. Michaelsen (4),

p. 52. — Übersicht über die Gattungen und Arten der Fam. Phreodrilidae.

Goddard (2), p. 851.

Allgemeines.

Unsere Kenntnis des phyletischen Zusammenhanges zwischen den

verschiedenen Oligochätengruppen, ihre Grundlagen und die Lücken in

diesen Kenntnissen. Michaelsen (3), p. 19—20.

Spezielles.

Acanthodrilacea n. seet. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae):

„Rein meganephridisch; Nephridialporen jederseits in einer Längs-

reihe. 2 Paar Hoden und Samentrichter frei im 10. u. 11. Segment,

eingeschlossen in 2 unpaarige Testikelblasen. Prostataporen am 17.

und 19. Segment“. Zu A. die Gattung Acanthodrilus. Michaelsen

(4),:P:773:

Acanthodrilinae, Einteilung der Subfam. in Sektionen. Michaelsen (4),

p. 52. — Bestimmungstabelle der Sektionen und Gattungen der A.

Michaelsen (4), p. 53.

Acanthodrilus siehe unter Eodrilus!

Allolobophora siehe unter Aporrectodea und Helodrilus.

Alma eubranchiata n.sp. Michaelsen (4), p. 162, t. f. 14-16, Belgisch

Kongo, Kuka Munu am linken Ufer des Luburi-Flusses im Flußgebiet

des Chiloango. — A. nilotica Grube. Michaelsen (4), p. 166. — 4.

Archiv für Naturgeschichte 10

1911. VI. 1.

146 Oligochaeta für 1910.

Aloysii-Sabaudiae Cogn. Michaelsen (5), p. 837. — A. Budgetti Bedd.

< 4A. Stuhlmanni Mich. Michaelsen (5), p. 88.

Amphichaeta Leydigi Tauber. Kowalewski, p. 804.

Aporrectodea (Allolobophora) similis n. sp. Friend (4), p. 98, tf. 35, England.

— A. (4A.) chlorotica. Friend (5), p. 14.

Astacopsidrilus n. gen. (Fam. Phreodrilidae): ‚BResembling Phreodrilus

Beddard and Phreodriloides Benham, in general as regards external

charakters and anatomy, but differing from them in having sperma-

thecal structures in segment XIV, almost devoid of musculature,

without distinet openings to the exterior but communicating with

ovisacal structures in segment XIII“. Goddard (1), p. 769. — 4.

notabilis n.sp. Goddard (1), p. 769, t. 29, £. 1—5, 8; t. 30, £. 12—15;

t. 31, £.16—17, Australien (Bulli oder Gosford-Distrikt), an Asta-

copsis serratus Shaw. — A. fusiformis n.sp. Goddard (1), p. 781, t. 29,

f. 6, 7, 9; t. 30, f. 10— 11, Australien (,,Bulli distriet‘‘ oder ,„Gosford

distriet‘‘), an Astacopsis serratus Shaw.

Beddardiella n. gen. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Eudrilinae): ‚Borsten

ventral weit gepaart, lateral enger gepaart. Männlicher Porus und

Samentaschen-Porus unpaarig, ventralmedian, männlicher Porus auf

Intersegmentalfurche 17/18, Samentaschen-Porus auf Intersegmental-

furche 16/17. Weibliche Poren lateral am 14. Segment. Darm mit

2 Muskelmagen im 5. und 6. Segment, 3 unpaarigen Chylustaschen im

10., 11. und 12. Segment und 1 Paar Kalkdrüsen im 15. Segment; in-

testinale Muskelmagen nicht vorhanden. Holoandrisch; Samenleiter

mit Samenmagazin. Övarien frei, Ovarialblasen nicht vorhanden.

Eitrichter groß, mit kompliziertem Lumen, nach dem 13. Segment hin

offen, mit Eiersack im 14. Segment. Ein cölomatischer Sack zwischen

dem weiblichen Ausführapparat und der Samentasche vermittelnd.

Samentasche ganz unpaarig, ohne Divertikel“. Typus: B. Dalzieli

n.sp. Michaelsen (4), p. 133. — B. Dalzieli n.sp. Michaelsen (4),

p. 133, t., f. 24—27, Britisch-Nigeria, Yola.

Benhamia siehe unter Dichogaster !

Bettonia Mich. emend. Michaelsen (5), p.62. — Bettonia Adolphi-Friderici

n.sp. Michaelsen (5), p. 62, t.1, f. 18—19, tf. 11, Belgisch-Kongo,

Ostgebiet, Batagu-Tal am Westhang des Ruwenzori. — B. budduensis

n.sp. Michaelsen (5), p. 66, t.1, f.20, tf. XII, Deutsch-Ostafrika,

Buddu-Wald, W. vom Victoria-See.

Bothrioneurum iris Bedd. Stephenson (3), p. 241, t. 1—2.

Branchiura Sowerbyi Bedd. Perrier, p. 235, tf.

Büttneriodrilus mayiliensis n.sp. Michaelsen (4), p. 129, t. f. 22—23,

Belgisch-Kongo, Mayili.

Chaetogaster orientalis Stephenson. Stephenson (1), p.68, t.8, f.3

—4, tf. 4.

Chilota Paessleri Mich. Michaelsen (4), p. 73, tf. VIII—X. — Ch. Porteri

Mich. Michaelsen (4), p. 76, tf. XI. — Ch. cogquwimboensis [emend. pro

coguimbensis] Mich. Michaelsen (4), p. 77, tf. XII—XIHI. — Oh.

Fehlandti Mich. Michaelsen (4), p. 79, t. f. 5—6. — Ch. chilensis (Bedd.).

Michaelsen (4), p. 80.

Systematik. 147

Chilotacea n. sect. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae): „Rein

meganephridisch; Nephridialporen jederseits in einer Längsreihe.

1 Paar Hoden und Samentrichter frei im 10. Segment. Prostataporen

am 17. und 19. oder am 17. oder am 18. Segment.‘‘ Zu Ch. die Gattungen

Chilota, Yagansia u. Udeina. Michaelsen (4), p. 73.

Uryptodrilus manifestus Fletch. Buchanan (1), p. 215, t. 41, f. 4; t. 42, £. 7.

— C. grandis Fletch. Buchanan (1), p. 216, t. 41, f. 5. — C. saccarius

Fleteh. Buchanan (1), p. 218, t. 41, f.6; t. 42, f.8. — 0. saccarius

Fletch. Raff, p. 251, t. 51, f. 13.

Dero sp. Stephenson (1), p. 71, t. 7, £. 4—6; t. 8, f. 5—7; tf. 5—8, Vorder-

indien, Lahore. i

Dichogaster Paessleri n.sp.,? <Benhamia viridis Eisen part. Michaelsen

(4), p. 110, t. £. 10—11, Mexico, Manzanillo. — D. scherbroensis n. Sp.

Michaelsen (4), p. 112, t. f. 12—13, Sierra Leone, Scherbro-Insel. —

D. Ehrhardti (Mich.) var. Linneli n. var. Michaelsen (4), p. 113. —

D. Tanganyikae Bedd. Michaelsen (5), p. 17. — D. Karissimbii n. Sp.

Michaelsen (5), p. 18, t. 1, £. 7—8, Deutsch-Ostafrika, Berg Karissimbi

u. Berg Niragongo. — D. Schubotzi n.sp. Michaelsen (5), p. 20, t.1,

f. 11—12, Deutsch-Ostafrika, NW.-Ruanda, Bugoie-Wald u. Berg

Sabinjo. — D. karagoensis n. sp. Michaelsen (5), p. 23, t.1, f. 1—2,

Deutsch-Ostafrika, NW.-Ruanda, Bugoie-Wald, Karago-See u. Insel

Kwidschwi im Kiwu-See. — D. kwidschwiensis n. sp. Michaelsen (5),

p- 25, t. 1, f. 3—4, Deutsch-Ostafrika, Insel Kwidschwi im Kiwu-See.,

— D. kiwuensis n. sp. Michaelsen (5), p. 26, t. 1, f. 17, Deutsch-Ost-

afrika, Insel Kwidschwi im Kiwu-See u. Ruanda. — D. crateris n. Sp.

Michaelsen (5), p. 29, t.1, f. 15—16, Deutsch-Ostafrika, Berg Karis-

simbi. — D. seriatospina n.sp. Michaelsen (5), p. 30, t.1, f. 9—10,

Belgisch-Kongo, Ostgebiet, 90km W. vom Albert-Edward-See. —

D. gracilis (Mich.). Michaelsen (5), p. 32. — D. bataguensis n. Sp.

Michaelsen (5), p. 33, t.1, £. 5—6, Belgisch-Kongo, Ostgebiet, West-

hang des Ruwenzori. — D. Frickei n.sp. Michaelsen (5), p. 33, t.1,

f. 13—14, tf. I, Nyassa.Land, Blantyre. — D. itoliensis (Mich.) s.1.,

Erörterung der Formen: Benhamia i. var. coerulea Mich. < Dichogaster

1. f. typica, D.i.f.Johnstoni (Bedd.)> Benhamia Johnstoni (Bedd.), Dicho-

gaster f. Moorei (Bedd.) > Benhamia Moorei Bedd. + B. mollis Bedd.

Michaelsen (5), p. 37

Digaster armifera Fletch. Bage, p. 230.

Diplocardinae, phyletische Beziehungen zu Octochaetinae u. Trigastrinae.

Michaelsen (3), p. 33—95.

Diplotremacea n.sSect. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae):

„Rein meganephridisch; Nephridialporen jederseits in einer Längs-

reihe. 2 Paar Hoden und Samentrichter frei im 10. und 11. Segment.

Prostataporen 1 Paar am 18. Segment“. Zu D. die Gattung Diplo-

trema. Michaelsen (4), p. 66.

Diporochaeta perionychopsis Benh. <Perionyx p. Michaelsen (3), p. 60. —

D. davallia W.B. Sp. Bage, p. 228, t. 44, f.8; t. 45, £. 9—10. — D.

grandis W.B. Sp. Bage, p. 230, t. 45, f. 11.— D. Bakeri Fletch. Raff,

p. 252, t. 51, f. 15. — D. tanjilensis W.B. Sp. Raff, p. 252, t. 51, £. 16,

10°

148 Oligochaeta für 1910.

Drawida travancorensis n.sp. Michaelsen (3), p. 46, Vorderindien, Kot-

tayam in Travancore. — D. Matthaii n.sp. Michaelsen (3), p. 47,

Vorderindien, Calieut in Malabar. — D. pellucidus (Bourne) >D.

Bournei (Mich.) + D. Pauli (Mich.) + D. pellucida (Bourne). Michael-

sen (3), p. 48. — D. pellucidus (Bourne) f. typica >D. pellucida (Bourne).

Michaelsen (3), p. 50. — D. pellucidus (Bourne) var. Bourne: (Mich.)

>D. Bournei (Mich.) + D. Pauli (Mich.). Michaelsen (3), p. 50. —

D. pellucidus (Bourne) var. pallida n. var. Michaelsen (3), p. 51, Vorder-

indien, Shencottah in Travancore. — D. Barwelli (Bedd.). Michael-

sen (3), p. 5l. — D. ghatensis n.sp. Michaelsen (3), p. 52, t. f.1, 2,

Vorderindien, Tenmalai, Maddathoray, Kulattupuzha u. Kottayam

in Travancore. — Drawida, bisher als Feminimum betrachtet, als

Masculinum zu behandeln. Michaelsen (4), p. 48. — Drawida japonicus

(Mich.) f. typica. Michaelsen (4), p. 49. — D. japonicus (Mich.) f.

Siemsseni n.f. Michaelsen (4), p. 50, China, Futschou. — D. japo-

nicus (Mich.) f. bahamensis (Bedd.) >Moniligaster bahamensis Bedd.

Michaelsen (4), p. 50.

Eisenia als subgen. Eisenia in das gen. Helodrilus zu stellen. Michaelsen

(1), p. 9, 10. — Eisenia Nordenskiöldi (Eisen) var. caucasica Mich.

<äHelodrilus (Eisenia) foetidus (Sav.). Michaelsen (1), p. 16. — Eisenia

hortensis Mich. <Helodrilus (Eisenia) venetus (Rosa) var. hortensis

Mich. Michaelsen (1), p. 37. — Eisenia grandis Mich. <Helodrilus

(Eisenia) venetus (Rosa) var. grandis (Mich.). Michaelsen (1), p. 39. —

Eisenia foetida (Sav.). Chinaglia (2), p. 2.

Eiseniella als subgen. Eiseniella in das gen. Helodrilus zu stellen. Michael-

sen (1), p. I—10.

Eminoscolex congicus n.sp. Michaelsen (4), p. 125, t. f. 21, tf.XXIV,

Belgisch-Kongo, Mayili. — E. Ruwenzori Bedd. Beddard, p. 37,

tf.7, 8.

Eodrilacea, n. seet. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae): „Rein

meganephridisch; Nephridialporen jederseits in einer Längsreihe.

2 Paar Hoden und Samentrichter fei im 10. und 11. Segment. Prastate-

poren am 17. oder 17. und 19. Segment‘. Zu E. die Gattungen Eodrzlus,

Perieodrilus n. gen., Rhodrilus, Dinodriloides u. Microscolex. Michael-

sen (4), p. 53.

Eodrilus dauphinianus n. sp. Michaelsen (4), p. 53, tf. I—III, Madagaskar,

Port Dauphin. — E. queenslandicus n.sp. Michaelsen (4), p. 57,

t. £. 1—3, Queensland, Rockhampton. — E. Dämeli n. sp. ? ( ?<Acan-

thodrilus Schmardae Bedd.). Michaelsen (4), p. 58, Queensland, Rock-

hampton. — Eodrilus albus (Bedd.). Michaelsen (4), p. 60.

Eudichogaster und ihre Stellung im System bzw. im Stammbaum. Michael-

sen (3), p. 95. — Eu. Ashworthi Mich. Michaelsen (3), p. 32. — Eu.

bengalensis n.sp. Michaelsen (3), p. 96, t. f. 27, 28, Vorderindien,

Tribeni u. Rajmahal in Bengalen.

Eudriloides kinganiensis Mich. Michaelsen (5), p. 56.

Eupolytorentus n. gen. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Eudrilinae): ‚Borsten

ventral gestellt, lateral eng gepaart. Männlicher Porus unpaarig,

ventralmedian auf Intersegmentalfurche 16/17 oder 17/18; weibliche

Systematik. 149

Poren lateral; Samentaschen-Porus unpaarig, ventralmedian, hinter

dem männlichen Porus. Ein Muskelmagen im 5. Segment, je eine un-

paarige ventrale Chylustasche im 9., 10. und 11. Segment, ein Paar

Kalkdrüsen im 13. Segment. Holoandrisch; Testikelblasen fehlen

(stets ?); zwei Paar einfache Samensäcke von Dissepiment 10 11 und

11/12 in das 11. und 12. Segment hineinragend, auf je ein Segment

beschränkt( ?). Euprostaten paarig, durch eine unpaarige Kopulations-

tasche ausmündend; Penialborsten fehlen. Ovarien umhüllt von

Ovarialblasen (nicht bei allen Arten beobachtet), die mit den Ei-

trichter-Apparaten kommunizieren; geschlossene Eitrichter mit Eier-

sack, durch je einen Verbindungsschlauch mit dem Samentaschen-

Apparat kommunizierend. Samentaschen teilweise median ver-

schmolzen, streckenweise paarig und streckenweise unpaarig.‘“ Typus:

Eu. Schubotzi n.sp. Michaelsen: (5), p. 72. — Eu. Schubotzi n. Sp.

Michaelsen (5), p.73, t.2, f. 22—23, tf. XIV, Deutsch-Ostafrika,

Karaga-See in NW.-Ruanda. — Eu. Graueri n.sp. Michaelsen (5).

p- 76, t.2, f. 25—26, tf. XV, Belgisch-Kongo, Ostgebiet, zwischen

Uvira und Kabambure.

Eutyphoeus incommodus (Bedd.). Michaelsen (3), p. 90. — Eu. bastianus

Mich. >Eu.b. Mich. + Eu. Andersoni Mich. + ?Eu. Masoni (Bourne).

Michaelsen (3), p. 91. — Eu. Nicholsoni (Bedd.) >Eu. N. (Bedd.) +

Eu. Khani Mich. Michaelsen (3), p. 92. — Eu. provincialis Mich.

laps. pro Eu. Khani <Eu. Nicholsoni (Bedd.). Michaelsen (3), p. 92.

Fletcherodrilus unicus Fletch. var. major W.B.Sp. Bage, p. 236, t. 47,

f. 22—26. — F. unicus Fletch. Raff, p. 251, t. ‚o1»£.14:

Fridericiinae n. subf. [nom. nud.] (Fam. Enchytraeidae). Cejka (1), p. 25.

Glossoscolex Wiengreeni Mich. var. Humboldti n. var. Michaelsen (4), p. 157,

Süd-Brasilien, St. Catharina, Distrikt Humboldt, Flußgebiet des

Itapocu.

Glyphidrilus Annandalei n. sp. Michaelsen (3), p. 101, Vorderindien, Calicut,

Malapuram u. Tiruvallur in Malabar, Quilon in Travancore. — @.,

Tabelle der Arten. Michaelsen (3), p. 104.

Gordiodrilus travancorensis n.Sp. Michaelsen (3), p. 98, Vorderindien,

Nedumangad in Travancore.

Helodrilus, Diagnose zu erweitern zwecks Aufnahme der früheren Gattungen

Eisenia und Eiseniella als subgen. von HZ. Michaelsen (1), p. 9, 10.

Helodrilus (Allolobophora) kazanensis n.sp. Michaelsen (1), p. 54, Europ.

Rußland, Umgebung von Kazan. — H. (A.) caliginosus (Sav.) f. typica

und f. trapezoides (Ant. Dug.). Michaelsen (1), p. 55. — H. (A.) longus

Ude. Michaelsen (1), p. 57. — H. (A.) cavaticus n. sp. Michaelsen (1),

p. 57, Transkaukasien, Gebirgspaß des Flusses Chodzja und Dorf

Eschaktsche im Kreis Lenkoran im Gouv. Baku. — H. (4A.) jassyensis

(Mich.). Michaelsen (1), p. 58. — H. (A.) 7. var. orientalis Mich. >H,.

(A.) 5. (s.l.). Michaelsen (1), p. 58. — H. (A.) agatschiensis n. SP.

Michaelsen (1), p. 60, Transkaukasien, Schach Agatsch im Talysch-

Gebiet. — H. (A.) Schneideri Mich. var. muganiensis n. var. Michael-

sen (1), p. 62, Transkaukasien, Dorf Deirüsty in der Mugansteppe. —

150 Oligochaeta für 1910.

H. (4A.) hispanica (Ude). Michaelsen (1), p. 63. — H. (A.) chloroticus

(Sav.). Chinaglia (2), p. 6.

Helodrilus (Bimastus) parvus (Eisen). Michaelsen (1), p. 64. — H. (B.)

Beddardi (Mich.). Michaelsen (1), p. 64.

Helodrilus (Dendrobaena) Attemsi Mich. var. n.? Michaelsen (1), p. 26,

N.-Kaukasus, Kuban-Gebiet. — H. (D.) Schmidti Mich. Michaelsen

(1), p. 40. — H. (D.) Sch. f. typica. Michaelsen (1), p. 4. — H. (D.)

Sch. var. surbiensis n. var. Michaelsen (1), p. 41, Transkaukasien,

Surebi im Kreis Osurgeti. — H. (D.) Sch. var. violacea n. var. Michael-

sen (1), p. 43, Transkaukasien, Chosta, Gouv. Tschernomorskaja. —

H.(D.) faucium n. sp. Michaelsen (1), p. 44, Transkasukasien, Schlucht

Madshar bei Kaznak in Abchasien. — H. (D.) Fedtschenkoi Mich. f.

typica. Michaelsen (1), p. 48. — H. (D.) F. var. lenkoranensis n. var.

Michaelsen (1), p. 49, Transkaukasien, Schlucht des Flusses Vilash-

tschai und Arus im Kreis Lenkoran im Gouv. Baku. — H. (D.) Gangl-

baueri (Rosa) var. annectens (Rosa). Michaelsen (1), p. 50. — H. (D.)

mariupolienis (Wyssotzki) f. typica. Michaelsen (1), p. 50. — H. (D.)

m. var. monticola n. var. Michaelsen (1), p. 51, Transkaukasien,

Kaukasus, Berg Bzysch im Tschernomorskaja-Gouv. — H. (D.) sub-

rubicundus (Eisen) >H. (D.) rubidus (Sav,) var. subrubicunda (Eisen).

Michaelsen (1), p. 52. — H. (D.) rubidus (Sav.) >H. (D.) rubidus (Sav.)

f. typica. Michaelsen (1), p. 52. — H. (D.) Handlirschi (Rosa) var.

rhenani (Bretsch.). Michaelsen (1), p. 52. — H. (D.) semiticus (Rosa)

var. Kervillei n. var. Michaelsen (4), p. 167, Syrien, Berze am Anti-

Libanon.

Helodrilus (Eisenia) carolinensis n. sp: Michaelsen (1), p. 15, aus Fayette-

ville in North Carolina in Hamburg eingeschleppt. — H. (Ei.) Joetidus

Sav. >Eisenia Nordenskiöldi (Eisen) var. caucasica Mich. Michaelsen

(1), p. 16. — Helodrilus (Eisenia) Nordenskiöldi (Eisen) f. typica.

Michaelsen (1), p. 17.— H. (Ei.) N. var. lagodechiensis n. var. Michael-

sen (1), p. 18, Transkaukasien, Chotchaldagh bei Lagodechi im Kreis

Signach. — H. (Ei.) schemachaensis n. sp. Michaelsen (1), p. 20, Trans-

kaukasien, Dorf Zargeran im Kreis Schemacha. — H. (Ei.) alpinus

(Rosa) f. typica. Michaelsen (1), p. 22. — H. (Ei.) a. var. decipiens

n. var. Michaelsen (1), p. 23, Transkaukasien, Abchasien. — H. (Ei.)

venetus (Rosa), Tabelle der verschiedenen Formen. Michaelsen (1),

p. 30. — H. (Ei.) v. var. picta n. var. Michaelsen (1), p. 31, Trans-

kaukasien, Tiflis, Borshom und Bonei bei Tschebuchly am Goktscha-

See. — H. (Ei.) v. var. concolor n. var. > ?Allolobophora (Notogama)

veneta, „Exemplare von Nidge‘“ Rosa. Michaelsen (1), p. 35, N.-

Kaukasus, Quellengebiet und Oberlauf des Kuban, Transkaukasien,

Kreis Bortschala, Talysch-Gebiet, Lenkoran-Niederung, Kreis Len-

koran und Kreis Schemacha. — Helodrilus (Eisenia) venetus (Rosa)

var. hortensis > Eisenia hortensis Mich. Michaelsen (1), p. 37. — Helo-

drilus (Eisenia) venetus (Ross) var. montana n. var. Michaelsen (1),

p. 37, Transkaukasien, Kamarorau, Berg Fit-dagh im Kreis Schemacha,

und Schlucht des Flusses Sulut-tschai im Kreis Schemacha. — H.

(Ei.) v. var. grandis (Mich.) > Eisenia grandis Mich. Michaelsen (1),

Systematik. 151

p. 39. — Helodrilus (Eisenia) Schelkovnikovi Mich. Michaelsen (1),

p. 45. — H. (Ei.) Sch. var. veliensis n. var. Michaelsen (1), p. 46,

Transkaukasien, Veli im Talysch-Gebiet. — H. (Ei.) Sch. var. bakuensis

n. var. Michaelsen (1), p. 47, Transkaukasien, Kreis Lenkoran im

Gouv. Baku. — AH. (Ei.) boneiensis n. sp. ? [?<H. (Ei.) venetus Rosa)

var. picta Mich.]. Michaelsen (1), p. 33, Transkaukasien, Bonei bei

Tschobuchla am Goktscha-See. — H. (Ei.) venetus (Rosa) var. Ker-

villei n. var. Michaelsen (4), p. 166, Syrien, Djebel Kasioun bei Damos

am Anti-Libanon.

Helodrilus (Biseniella) tetraedrus (Sav.) f. eutypica n.f. Michaelsen (1),

p- 11, Transkaukasien, Ker-Ogly im Kreis Olty im Gebiet Kars. —

Ei. t. f. hammoniensis Mich. Michaelsen (1), p. 14.

Helodrilus (Eophila) Kaznakovi n. sp. Michaelsen (1), p. 65, Transkaukasien,

Nurana, Silva Pizamösa im Kreis Schemacha im Gouv. Baku. —

H. (E.) sardus n. sp. Michaelsen (1), p. 66, Sardinien. — H. (E.) mon-

tanus n. sp. Michaelsen (1), p. 68, NW.-Kaukasus, Gebirgspaß zwischen

Oschten und Tschuba am Oberlauf des Bjelaja-Flusses. — H. (E.)

Laurentii n.sp. Chinaglia (1), p. 1, Italien, Collio im Val Trompia.

Chinaglia (2). p. 7.

Henlea Scharffi n. sp. Southern (1), p. 18, tf. 1—4, New Hampshire, White

Mountains.

Henleinae n. subf. (Fam. Enchytraeidae): ‚Mit großen Verdauungsdrüsen,

die als Umbildungen der Darmwandung entstehen und ihr Sekret in

das Darmlumen entleeren‘; für die Gattungen Henlea, Buchholzia,

Hepatogaster n. gen. u. Bryodrilus. Cejka (1), p. 25.

Hepatogaster n. gen. (Fam. Enchytraeidae, Subfam. Henleinac): ‚„Porus

cephalicus liegt zwischen Prostomium und Metastomium. Die dorsalen

Poren nicht vorhanden. Das Gehirn vorn stark, hinten nur schwach

ausgeschnitten. Die Speicheldrüsen längs der dorsalen und ventralen

Fläche des Oesophagus im VI. und VII. Segmente verlaufend und

ganz in den Blutsinus eingesenkt. Im VI. Segmente entsenden sie

unbedeutende Äste in die Leibeshöhle. Die Magendarmdrüsen be-

finden sich im VIII. Segmente. Sie umgeben den ganzen Oesophagus

und münden in den Darm mit vier großen Öffnungen ein. Sie sind

aus zahlreichen Kanälchen zusammengesetzt. Die Spermatheken ein-

fach und fließen miteinander zusammen, um im VI. Segmente in den

Darm gemeinsam einzumünden.‘“ Cejka (1), p. 27. — H. Birulae n. sp.

Cejka (1), p. 26, t.1, £:1, 2, 4-12; t.2, £. 14-21. Üejka (2), Neu-

sibirische Inseln. — H. sibiricus n. sp. Cejka (1), p. 26, t.1, f.3; t. 3,

f. 22—31. Cejka (2), Neusibirische Inseln.

Hoplochaetella Rossii (Benham) > Plagiochaeta R. Benham. Michaelsen (4),

p- 62. — Hoplochaetella montana (Benham) ? > Plagiochaeta m. Benham.

Michaelsen (4), p. 62. — Hoplochaetella Rossii (Benh.). Michaelsen

(4), p. 110.

Howascolecea n.sect. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae),

nach Tabelle: „Im Mittelkörper büschelige Mikronephridien neben

den Makronephridien“. Zu HZ. die Gattung Howascolex. Michaelsen

(4), p. 53.

152° Oligochaeta für 1910.

Kynotus verticillatus (E. Perr.) als sp. spur. anzusehen. Michaelsen (4),

p. 162 (nach Untersuchung des Originals).

Lahoria hortensis Stephenson. Stephenson (1), p. 59, t. 7, £.1—3, tf. 1—3.

Lumbricidae, systematische Gliederung. Michaelsen (1), p. 2—10.

Lumbricus baicalensis Mich. >L. pusillus Wessely. Michaelsen (1), p. 73.

— Lumbricus siehe such unter Pontodrilus !

Maheinacea n.sect. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae):

„Rein meganephridisch ; Nephridialporen jederseits in einer Längsreihe.

1 Paar Hoden und Samentrichter frei im 11. Segment. Prostataporen

am 17. und 19. Segment.“ Zu M. die Gattung Maheina. Michaelsen

(4), p. 73.

Moaoridrilus modestus n. sp. Michaelsen (4), p. 67, tf. V—VII, Neuseeland-

Südinsel, Christehurch oder Dunedin. — M. dissimilis (Bedd.). Michael-

sen (4), p. 69, tf. VII (nach Untersuchung eines Originalstückes).

Megascolex Adami n. sp. Michaelsen (3), p. 64, t. £. 14, 15, Ceylon, Bulutote.

— M. Escherichi n.sp. Michaelsen (3), p. 66, tf.B, Ceylon, Hidana

bei Peradeniya. — M. Willeyi Mich. Michaelsen (3), p. 68, t. f. 19, 20.

— M. Lorenzi (Rosa). Michaelsen (3), p. 70, t. £. 9. — M. travancorensis

n. Sp. f. Zypica. Michaelsen (3), p. 72, t. f. 16, Vorderindien, Pallaode.

in Travancore. — M. travancorensis Mich. var. quilonensis n. var.

Michaelsen (3), p. 74, t. f.17, 18, Vorderindien, Shasthancottah in

Travancore. — M. travancorensis Mich. var. ghatensis n. var. Michael-

sen (3), p. 75, Vorderindien, Maddathoray in Travancore. — M. kon-

kanensis Fedarb. Michaelsen (3), p. 75, t. f. 13. — M. insignis n. Sp.

Michaelsen (3), p. 78, t. £. 6, Vorderindien, Trivandrum, Nedumangad

u. Kerumaadi in Travancore, Ceylon, Panadhure. — M. cingulatus

Schm. Michaelsen (3), p. 80. — M. spectabilis n.sp. Michaelsen (3),

p- 80, t. f. 10—12, Ceylon, Vaxvella. — M. Sarasinorum Mich. Michael-

sen (3), p. 83. — M. Fielderi W.B. Sp. Bage, p. 227, t. 44, f. 5—7. —

M. dorsalis Fletch. Bage, p. 225, t. 44, f. 1—4. — M. australis Fletch.

Buchanan (1), p. 210, t. 40, £.1. — M. dorsalis Fletch. Raff, p. 249,

t. 50, £.10. — M. Fielderi W.B.Sp. Raff, p. 250, t. 51, f.11.— M.

tenax Fletch. Raff, p. 250, t. 50, f. 12.

Megascolides Tenmalai n. sp. Michaelsen (3), p. 55, t. f. 3, Vorderindien,

Tenmalsi in Travancore. — M. cochinensis n.sp. Michaelsen (3),

p. 56, t. f. 4, 5, Vorderindien, Cochin State am Fuße der Nelliampathis

Hills. — M. australis McCoy.- Bage, p. 231, t. 45, f. 12—13; t. 46,

f. 14—15. — Megascolides siehe auch unter Notoscolex.

Mesenchytraeinae n. subf. [nom. nud.] (Fam. Enchytraeidae). Cejka (1), p. 25.

Microscolex Collislupi n.sp. Michaelsen (4), p. 63, t. f.4, tf. IV, West-

Argentinien, Cordillera de Mendoza, Tal des Rio Blanco und Tal des

Tupungo.

Microchaetus microchaetus Rapp. f. typica. Michaelsen (4), p. 158. — M.

Braunsi Mich. <.M. microchaetus Rapp. var. Braunsi (Mich.). Michael-

sen (4), p. 161. — M. decipiens Mich. <M. microchaetus Rapp. var.

decipiens (Mich.). Michaelsen (4), p. 161. — M. modestus Mich. var.

humicultor n. var. Michaelsen (5), p. 82, tf. XVI, Orange-Kolonie,

Fourisbury. — M. griseus Mich. Michaelsen (5), p. 85, tf. XVII.

Systematik. 153

Moniligaster Deshayesi E.Perr. Michaelsen (3), p. 54, Vorderindien,

Anachardie u. Neduvangand in Travancore (Fundortsangabe „Ceylon“

für das Original zweifellos irrtümlich). — Moniligaster siehe auch

unter Drawida !

Naidium Foreli Pisuet. Piguet, p. 175, t. 3, f.18.

Nais communis Pizuet. Kowalewski, p. 805. — N. pseudoobtusa (Piguet).

Kowalewski, p. 806. — N. obtusa (Gerv.). Piguet, p. 188, t. 3, f. 2—7.

— N. pseudoobtusa (Piguet). Piguet, p. 193, t. 3, f. 8. — N. variabilis

Piguet. Piguet, p. 195, t.3, f. 9—11. — N. communis Piguet var.

punjabensis Steph. Piguet, p. 198, tf. — N. simplex (Piguet). Piguet,

p. 202, t. 3, £. 12. — N. Bretscheri Mich. Piguet, p. 205, t. 3, f. 13. —

N. pardalis (Piruet). Piguet, p. 206, t. 3, f. 14—16. — N. parviseta

Walton < N. pardais (Piguet). Piguet, p. 177. — N. variabilis Piguet

var. punjabensis Stephenson. Stephenson (1), p. 66, t. 8, f. 1—2. —

N. pectinata n.sp. Stephenson (2), p. 236, t. 11, f.1, Vorderindien,

Bheemanagar in Travancore. — N. communis Piguet var. punjabensis

Stephenson. Stephenson (2), p. 237, t. 11, f.2, 4. — N. c. Piguet var.

coeca n. var. Stephenson (2), p. 238, t. 11, f. 3, Vorderindien, Bheema-

nagar in Travancore.

Nematogenia panamaensis Eisen. Michaelsen (4), p. 114.

Nemertodrilus Mich. emend. Michaelsen (5), p. 57. — N. Kellneri n. sp.

Michaelsen (5), p. 57, t. 2, f. 21, tf. 10, Orange-Kolonie, Bloemfontein.

Neodrilacea n.sect. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae):

„Rein meganephridisch; Nephridialporen jederseits alternierend in

2 Längsreihen. 2 Paar Hoden und Samentrichter frei im 10. und

11. Segment. Prostatoporen am 17. oder am 17. und 19. Segment.‘

Zu N. die Gattungen Moaoridrilus, Neodrilus u. Plagiochaeta. Michael-

sen (4), p. 66.

Neodrilus monocystis Bedd. Michaelsen (4), p. 71.

Neumanniella Ruwenzorii Bedd. Beddard, p. 33, tf. 6.

Notoscolex decipiens (Mich.). Michaelsen (3), p. 62, t. f. 21.— N. termiticola

n.sp. Michaelsen (3), p. 63, tf. A, Ceylon, Peradeniya. Michaelsen

(7), p- ® — N. brancasteriensis n.sp. Michaelsen (4), p. 95, t. £. 9,

tf. XVII, Südwest-Australien, Brancaster im Upper Blackwood

distriet. — N. Simsoni (W.B.Sp.).. > Megascolidess S. W.B.Sp.

Michaelsen (4), p. 97. — Notoscolex Leai n.sp. Michaelsen (4), p. 99,

tf. XVIII— XIX, Tasmanien, Umgegend von Hobart. — N. queens-

landica W.B. Sp. Bage, p. 236. — N. camdenensis Fletch. Buchanan

(1), p. 212, t. 40, f.2. — N. queenslandica W.B.Sp. Buchanan (1),

p- 213, t. 40, £.'3.

Ocnerodrilus (Ilyogenia) Chubbi Mich. Michaelsen (5), p. 39, tf. II.

Ocnerodrilus (Ocnerodrilus) occidentalis Eisen var. Arizonae Eisen mit der

f. typica zu verschmelzen. Michaelsen (5), p. 39.

Octochaetinae, phyletische Beziehungen zu Diplocardinae-Trigastrinae.

Michaelsen (3), p. 933—95.

Octochaetus Pittnyi n. sp. Michaelsen (3), p. 86, t.f. 25, 26, Vorderindien,

Trivandrum in Travancore u. Mangalore in Malabar. — O0. surensis

154 Oligochaeta für 1910.

n.sp. Michaelsen (3), p. 88, t. f. 22—24, Vorderindien, Sur Lake in

Orissa.

Octolasium mima (Rosa) in 3 Var. aufzulösen. Michaelsen (1), p. 72. — O.

m. (Rosa) f. typica [Exempl. von Udine] >O. m. (Rosa). Michaelsen

(1), p. 72. — O. m. (Rosa) var. Marenzelleri n. var. >O. m. (Rosa)

part. [Exempl. von Santa Lucia bei Tolmein]. Michaelsen (1), p. 71. —

O. m. (Rosa) var. tergestina n. var. [Exempl. von Triest und Rovigno].

Michaelsen (1), p. 73. — O. lissaense (Mich.). Chinaglia (2), p. 10.

Paranais uncinatus Örst. Piguet, p. 173, t. 3, f.1.

Perichaeta siehe Pheretima!

Perieodrilus n. gen. (Fam. Megascolecidae, Subfam. Acanthodrilinae, Sectio

Eodrilacea) > Plagiochaeta Benham part.: ‚Borsten zu vielen (mehr

als 12) an einem Segment. Nephridialporen jederseits in einer Längs-

linie, nicht alternierend. Männliche Poren am 18. Segment. 2 Paar

Prostataporen am 17. und 19. Segment. Samentaschenporen 2 Paar

auf Intersegmentalfurche 7/8 und 8/9. Muskelmagen wohl ausgebildet.

2 Paar freie Hoden und Samentrichter im 10. und 11. Segment.‘“

Typus: P. lateralis (Benham) (> Plagiochaeta lateralis Benham).

Michaelsen (4), p. 61. — Perieodrilus lateralis (Benham). Michaelsen

(4), p. 63. — P. Ricardi (Benham)? > Plagiochaeta R. Benham.

Michaelsen (4), p. 62.

Perionychella Mich. mit Perionyxz E.Perr. s. s. zu Perionyxz E. Perr. s.1.

zu verweisen. Michaelsen (3), p. 58.

Perionyx E.Perr. s.l. >Perionyx E.Perr. s.s. + Perionychella Mich.

Michaelsen (35), p. 58. — Perionyx perionychopsis (Benh.) > Dipochochaeta

p. Benh. Michaelsen (3), p. 60. — Liste der Arten von Perionyx s.1

Michaelsen (3), p. 60. — P. sikkimensis (Mich.). Michaelsen (3), p. 60.

— P. Annandalei (Mich.). Michaelsen (3), p. 61, t. £.7.

Perissogaster excavata Fletch. Bage, p. 231.

Pheretima bicincta (E. Perr.) >Ph. violacea (Bedd.) [nach Untersuchung

der Originale von Perichaeta bicincta E. Perr.]. Michaelsen (3), p. 84.

— Ph. elongata (E. Perr.) > Ph. biserialis (E. Perr.) [nach Untersuchung

der Originale von Perichaeta elongata E. Perr.]. Michaelsen (3), p. 34.

— Ph. quadragenaria (E. Perr.) >Ph. capensis (Horst) [nach Unter-

suchung der Originale von Perichaeta quadragenaria E. Perr.]. Michael-

sen (3), p. 86. — Pheretima Juliani (E. Perr.) > Perichaeta J. E. Perr.

Michaelsen (4), p. 103, tf. XX [nach Untersuchung der Originale]. —

Ph. carolinensis n.sp. Michaelsen (4), p. 105, tf. XXI, Carolinen-

Archipel. — Ph. hongkongensis n. sp. Michaelsen (4), p. 107, tf. XXII,

China, Hongkong. — Ph. Stelleri (Mich.) subsp. koroensis n. subsp.

Michaelsen (4), p. 109, Celebes, Koro-Tal. — Ph. polytheca (Bedd.)

f. aruensis n. f. Michaelsen (6), p. 252, tf. 1—2, Aru-Inseln, Kobroor bei

Seltutti. — Ph. fakfakensis Cogn. f. tetratheka n.f. Michaelsen (6),

p. 254, Aru-Inseln, Insel Kobroor u. Insel Wammer, Kei-Inseln, Insel

Groß-Kei. — Ph. Mertoni n. sp. Michaelsen (6), p. 256, tf. 3—5, Aru-

Inseln, Wokam. — Ph. indica (Horst) > Amyntas cingulatus Vaillant,

Bedd., nicht mit Pheretima heterochaeta (Mich.) zu verwechseln.

Michaelsen (6), p. 260.

Systematik. 155

Phreodrilidae, systematische Stellung. Goddard (1), p. 788. — Ph.,n. gen.?,

n. sp. Goddard (2), p. 845, tf. 1—5, Tasmanien. — Ph., Übersicht über

die Gattungen und Arten. Goddard (2), p. 851.

Plagliochaeta lateralis Benham und wahrscheinlich auch P. Ricarddi Benham

zu Perieodrilus. Michaelsen (4), p. 61, 62. — Plagiochaeta Rossii

Benham und wahrscheinlich auch P. montana Benham zu Hoplo-

chaetella. Michaelsen (4), p. 62.

Platydrilus inermis n. sp. Michaelsen (4), p. 116, t. f. 18, Belgisch-Kongo,

Mayili. — P. hortensis n. sp. Michaelsen (4), p. 115, tf. XXIII, Portu-

giesisch-Kongo, am Chiloango-Fluß. — P. Wisei n. sp. Michaelsen (5),

p. 48, t. 2, f. 27—28, tf. VII, Belgisch-Kongo, Ostgebiet, Avakubi am

Aruwimi. — P. Scheffleri n.sp. Michaelsen (5), p. 50, t. 2, f. 29—31,

tf. VIII, Britisch-Ostafrika, Kibwesi NO. von den Ongalea-Bergen. —

P. Zimmermanni Mich. Michaelsen (5), p. 53. — P. Vosseleri n. sp.

Michaelsen (5), p. 53, t. 2, f. 24, tf. IX, Deutsch-Ostafrika, Amani in

Usambara.

Plutellus decatheca n. sp. Michaelsen (4), p. 81, tf. XIV—XVI, Tasmanien,

Umgegend von Hobart.

Polytoreutus usambariensis Mich. Michaelsen (5), p. 831. — P. Ruwenzorii

Bedd. Beddard, p. 25, tf. 3. — P. Granti Bedd. Beddard, p. 30, tf. 4, 5.

Pontodrilus, Revision der Gattung. Michaelsen (4), p. 83. — P. bermudensis

Bedd. s.1. = (Pontoscolex arenicola Schm. ?,-+) Oryptodrilus insularis

Rosa + Pontodrilus arenae Mich. (+ P. hesperidum Bedd.?) + P.

Michaelseni Eisen + P. ephippiger Rosa + P. laccadivensis Bedd.

Michaelsen (4), p. 84. — P. arenae Mich. einstweilen als P. bermudensis

Bedd. f. arenae Mich. von P. bermudensis (Bedd.) f. typica (hierher die

übrigen oben angeführten Synonyme, wahrscheinlich mit Ausnahme

von Oryptodrilus insularis Rosa) gesondert zu halten. Michaelsen (4),

p- 89. — Pontodrilus litoralis (Grube) s.l. = Lumbricus Il. Grube +

Pontodrilus Marionis E. Perr. + P. Crosslandi Bedd. + P. albanyensis

Mich. Michaelsen (4), p. 89. — P. Marionis E. Perr., P. Orosslandi

Bedd. u. P. albanyensis Mich. als P. litoralis (Grube) f. Marionis

(E. Perr.), f. Crosslandi (Bedd.) u. f. albanyensis (Mich.) von P. Ktoralis

(Grube) f. iypica gesondert zu halten. Michaelsen (4), p. 89. — P.

matsushimensis Bedd. f. typica u. P. m. Bedd. f. chathamiana (>P. m.

Bedd. var. chathamianus Mich.). Michaelsen (4), p. 91. — P. lacustris

(Benh.) > Plutellus l. Benh. Michaelsen (4), p. 92.

Pontoscolex siehe unter Pontodrilus !

Pristina tentaculata Piguet. Kowalewski, p. 806. — P. aequiseta Bourne.

Piguet, p. 211. — P. longiseta Ehrbg. Stephenson (2), p. 235.

Pygmaeodrilus arausionensis n. sp. Michaelsen (4), p. 114, t. f. 17, Orange-

Kolonie, Bothaville.. — P. bipunctatus (Mich.) var. modesta n. var.

Michaelsen (5), p. 41, tf. III, Deutsch-Ostafrika, Ruanda. — P.b.

(Mich.) var. budduensis n. var. Michaelsen (5), p. 43, tf. IV, Uganda,

Buddu-Wald. — P. Grawerti n.sp. Michaelsen (5), p. 44, t. 2, f. 33,

tf. V, Deutsch-Ostafrika, Usumbura am Tanganjika. — P. kiwuensis

n.sp. Michaelsen (5), p. 46, t. 2, f. 32, tf. VI, Deutsch-Ostafrika, Insel

Kwidschwi im Kiwu-See.

156 Oligochaeta für 1910. Systematik.

Rhinodrilus, morphologische und verwandtschaftliche Beziehurgen zwischen

den subgen. dieses gen. Michaelsen (2), p. C 134—0C 135.

Rhinodrilus (Aptodrilus) uncinatus n. sp. Michaelsen (2), p. C 135; Michael-

sen (4), p. 156, Ecuador. — Rh. (A.), Tabelle der Arten. Michaelsen

(2), p. C 138; Michaelsen (4), p. 156.

Rhinodrilus (Rhinodrilus) paradoxus E. Perr. Michaelsen (4), p. 153 (nach

Untersuchung des Originals).

Rhinodrilus (Thamnodrilus) Riveti n. sp. Michaelsen (2), p. © 127; Michael-

sen (4), p. 142, Ecuador, El Pelado in der West-Cordillere auf der

Grenze zwischen Columbia und Ecuador. — Rh. (Th.) euzonus (Cogn.).

Michaelsen (2), p.C 131, tf.1, 2; Michaelsen (4), p. 149, tf. XXV

—XXVI. — Rh. (Th.) heterostichon (Schm.). Michaelsen (4), p. 145

(nach Untersuchung des Originals).

Rhododrilus minutus (Bedd.). Michaelsen (4), p. 63.

Stuhlmannia Sandersi n.sp. Michaelsen (4), p. 120, t. f. 19—20, Portu-

giesisch Kongo, am Chiloango-Fluß. — St. Michaelseni Bedd. >St.

variabilis Mich. f. Michaelseni (Bedd.). Michaelsen (5), p. 57.

Stylaria lacustris (L.). Kowalewski, p. 806. — St. !. (L.). Piguet, p. 209,

33 oe an RB

Teleudrilus aberratus n.sp. Michaelsen (5), p. 68, tf. XIII, Deutsch-Ost-

afrika, Insel Kwidschwi im Kiwu-See.

Trigastrinae, phyletische Beziehungen zu Octochaetinae u. Diplocardinae.

Michaelsen (3), p. 33—9%.

Woodwardia Uzeli Mich. Michaelsen (3), p. 57.— W.javanica n. sp. Michael-

sen (4), p. 93, t. f. 7, 8, Java, Buitenzorg. — W. gippslandica W.B. Sp.

Bage, p. 233, t. 46, f. 16—17. — W. cooraniensis W.B.Sp. Bage,

p- 234, t. 46, f. 17—18; t. 47, f. 20—21.

Hirudinea für 1910.

Von

Dr. A. Schepotieff.

Publikationen und Referate.

(F = siehe auch unter Faunistik; S = siehe auch unter Systematik.

— Die mit * bezeichneten Arbeiten waren dem Ref. unzugänglich).

*Ascoli, 6. Sulla struttura dei plessi dei simpatico degli

Irudinei. In: Boll. Soc. Med. Pavia, XXIV,p. 325—330. Tab. I, II.

Goddard, E. (1). Contribution to our knowledge of Australian

Hirudinea. Part 4 With a Note on a Parasitic Endoproctous

Polyzoon. In: Proc. Linn. Soc. New S. Wales, XXXIV, p. 721

— 723, 2 Figg., Tab. LVI—-LVII. F. 8.

— (2). ibid. Part 5. Leech Metamerism. In: Proc. Linn.

Soc. New S. Wales, XXXV, p. 51—68, Tab. III. 8.

— (8). ibid. Part 6. The Distribution of the Hirudinea.

In: Proc. Linn. Soc. New S. Wales, XXXV, p. 69—76. F. 8.

Hachlow, L. (1). Die Sensillen und die Entstehung der

Augen bei Hirudo mediecinalis. In: Zool. Jahrb. Abt. Anat. XXX,

p. 261—300, 3 Figg., Tab. XIII—VXI. — Genauere Beschreibung

der Sensillen (gegen Apathy), Sehzellen und Neurofibrillen.

— (2). Die Körperwand von Hirudo medicinalis, nebst

einigen Bemerkungen über die Bayerischen Organe von Clepsine

sexoculata. In: Zool. Jahrb. Abt. Anat. XXIX, p. 449—484,

Tab. XXXVI—XXXVII, 3 Figg. — Sehr ausführliche Be-

schreibung der Cuticula und der Körperwand (Epidermis, Blut-

capillaren der Epidermis, einzellige Hautdrüsen, Bindegewebe,

Pigmentzellen), sowie des Botryoidalgewebes und der Muskulatur.

Jakubski, A. Zur Kenntnis der Neuroglia der Hirudineen.

In: Zool. Anz. XXXVI, p. 179—184, 3 Figg. — Polemik mit

Mencl.

Johansson, L. (1). Über die Kiefer der Herpobdelliden. In:

Zool. Anz. XXXV, p. 1—5, 2 Figg.

— (2). Einige neue Arten Glossosiphoniden aus dem Sudan

In: Zool. Anz. XXXV, p. 146—154, 3 Figg. F. 8.

— (3). Zur Kenntnis der Herpobdelliden Deutschlands. In:

Zool. Anz. XXXV, p. 705—714, 2 Figg. und XXXVI, p. 367

—379. F. 8.

— (4). Überzählige Darmöffnungen bei Hirudineen. In:

Zool. Anz. XXXVI, p. 405—408, 3 Figg. — Über die Lage der

Mundöffnungen der Darmventilen.

158 Hirudinea für 1910.

Livanow, N. Untersuchungen zur Morphologie der Hiru-

dineen. 4. Zur Anatomie des Blutgefäßsystems.. In: Biol.

Zeitschr. I. (russ. mit deut. Resume), p. 46—63, Tab. — All-

gemeine Beschreibung des Blutgefäßsystems von Acanthobdella,

Piscicola, Protoclepsis, Hemiclepsis, Glossosiphonia und Ponto-

hdella.

Oka, A. Synopis der japanischen Hirudineen mit Diagnosen

der neuen Species. In: Annot. zool. jap. VII, p. 165—183.

1.08:

*Sanchez, D. EI sistema nervioso de las Hirudineos. In:

Trab. Lab. Biol. Madrid, VII, p. 31—186, 51 Figg., Tab. I— VII,

Schuster, Fr. Beiträge zur Kenntnis der Xerobdella lecomtei

v. Frauenfeld. In: Zool. Anz. XXXV, p. 75—83, 7 Figg. —

Allgemeine Beschreibung der Organisation mit besonderer Berück-

sichtigung der Nephridien (ihre Lage, feinerer histologischer

Bau usw.).

Seriban, J. Contributions a l’anatomie et a l’histologie des

Hirudinees. In: Ann. Sc. Univ. Jassy, VI, p. 147—236, 31 Figg.

— Allgemeine Beschreibung zahlreicher Gattungen mit spezieller

Berücksichtigung des Integumentes, der Muskulatur und des

Bindegewebes. Histologisches über verschiedene Zellen des

Bindegewebes und der Botryoidalgewebe. Uber Chloragogen-

zellen. F. 8.

Skorikow, A. Sur la fauna de la baie de la Neva et des eaux

limitrophes de l’ile de Kotline. In: Ann. Musee zool. St. Petersbg.

XV, p. 474—490. F. 8.

Southern, B. The marine Worms (Annelida) of Dublin Bay

and the adjoining district. In: Proc. R. Irish Acad. B. XXVIII,

p. 215—246. F. 8.

Willem, V. Recherches sur les nephridies. In: Mem. Ac.

Sc. Belg. (2), II, 63 pp., 9 Figg., Tab. I—IV. — Allgemeines und

phylogenetisches über Nephridien.

Übersicht nach dem Stoff.

Morphologie, Anatomie, Histologie.

Aeußere Morphologie: Allgemeines; Goddard (1), Schuster. Meta-

merie; Goddard (2). — Haut und Muskulatur: Integument und Bau der

Körperwand; Seriban; Hachlow (2). Bindegewebe und Muskulatur;

Seriban; Hachlow (2). — Leibeshöhle und Zirkulationsorgane: Allgemeines

über Blutgefäße; Livanow. Über Botryoidalgewebe; Seriban; Hachlow (2).

— Nervensystem: Neuroglia und Neurosomiten; Ascoli; Jakubski; Sanchez.

Augen und Sensillen; Hachlow (1). — Darmkanal: Darmöffnungen bei

Salifa; Johansson (4). Kiefer der Herpobdelliden; Johansson (1). All-

gemeines über den Darmkanal; Seriban. — Exeretionsorgane: Nephridien

bei Xerobdella; Sehuster. Allgemeines; Willem.

Faunistik. 15

Faunistik.

Marin.

Nordatlantik: Pontobdella muricata; Southern. — Mittelmeer: Ponto-

bdella muricata (ib.). — Japan: Ichthyobdella uobir n. sp.; Ichth. pagri n. Sp.;

Ichth. virgata n. sp.; Callobdella hostae n. sp.; Call. livanovi n. Sp.; Ponto-

bdella bimaculata, n. sp.; Pont. moorei, n. sp.; Pont. tatejomensis, n. sp.; Oka.

Süßwasser.

Europa.

Böhmen: Xerobdella lecomtei; Goddard (3); Schuster. — Deutsch-

land: Aulostomum; Dina; Herpobdella atomaria, Herp. bistriata, Herp.

lineata, Herp. nigricollis, Herp. octoculata, Herp. oct. var. pallida, Herp.

oct. var. vulgaris, Herp. testacea, Herp. vulgaris; Hirudo lineata, H. octo-

culata, H. vulgaris; Nephelis bistriata, N. lineata, N. negricollis, N. octoculata,

N. oct. var. normalis, N. quadristriata, N. reticulata, N. sexoculata, N. seriptu-

rata, N. testacea; Johannsson (3). — Italien: Ascoli. — Rumänien: Aulosto-

mum gulo; Branchiobdella astaci, Br. parasita; Glossosiphonia complanata,

Gl. heteroclita, Gl. paludosa; Haemopis sanguisuga; Haementeria costata ;

Helobdella bioculata; Hemiclepis marginata, H. tesselata; Herpobdella ato-

maria, Herp. octoculata; Hirudo medicinalis; Piscicola geometra; Trochaeta

subviridis; Seriban. — Rußland: (Neva-Mündg.). Glossosiphonia com-

planata, Gl. stagnalis; Herpobdella atomaria, H.octoculata; Piscicola geometra ;

Skorikow. — Spanien: Sanchez.

Asien.

Burma: Haemadipsa; Goddard (3). — Ceylon: Haemadipsa; (ib.).

— Indien: Haemadipsa; (ib.). — Japan: Haemadipsa; Orobdella; Goddard

(3). Carcinobdella n. g. Konibir n. sp. C. tigrina n. Sp.; Glossosiphonia

complanata, Gl. lata n. Sp., Gl. smaragdina n. sp.; Haemadipsa japonica var.

rjukjuana n. var.; Helobdella stagnalis; Hemiclepsis marginata; Herpobdella

atomaria, H. kasmiana n. Sp., H. octoculata; Hirudo nipponia var. jaejamina

n. var.; Mimobdella japonica; Ozobranchus branchiatus; Orobdella ijimai,

O. octonaria, O. Whitmani; Piscicola geometra; Scaptobdella blanchardii

n. Sp.; Trachelobdella sinensis; Whitmania acranulata; Wh. edendulis;

Oka. — Formosa: Haemadipsa japonica var. taiwana n. var.; Whitmania

pigra var. formosana n. var.; Oka.

Afrika.

Sudan: Clepsine jaegerskioeldi n. sp., Cl. fimbriata n. sp., Cl. multi-

striata n. Sp., Ol. nilotica n. sp.; Johansson (2).

Amerika.

Westindien: Cylicobdella; Lumbricobdella; Goddard (3). — Chili:

Mesobdella (ib.).

Australien.

Australien: Pontobdella australiensis n. sp., P. macrothela; Geobdella ;

Philaemon; Goddard (3). — Tasmanien: Philaemon (ib.). — Neu- Guinea:

Geobdella tristriata n. sp.; Goddard (1), (3).

160 Hirudinea für 1910.

Systematik.

Acanthobdella; Livanow.

Arhynchobdellidae (Herpobdellidae u. Gnathobdellidae); Goddard (2).

Aulastomum; Jakubski; Johansson (3); A. gulo; Seriban.

Branchellion; Goddard (2).

Branchiobdella astaci, Br. parasita; Seriban.

Callobdella;, Goddard (2); C. livanovi n. sp. ,‚Körper dunkelbräunlich bis

dunkelgrünlich; Haut fein gerunzelt; Seitenränder und Seitenbläschen

weiß; Rücken- und Bauchfläche meist mit in regelmäßigen Abständen

gelagerten weißen Punkten geziert. Schmarotzt auf Knochenfischen.

Länge 3 em, Breite 4 mm.” (p. 174); ©. hostae n. sp. ‚Körper weißlich

oder gelblich, Haut glatt, weder mit Flecken noch Streifen; Ringel-

furche deutlich. Schmarotzt auf Knochenfischen (Chysophrys hosta).

Länge 3 em, Breite 3,5 mm.” (p. 174); Oka.

Carcinobdella nov. gen. ‚Körper langgestreckt, zylindrisch, nicht deutlich

in Hals und Rumpf gesondert; Haut glatt; Saugnäpfe scheibenförmig,

nur mäßig groß, wohl abgegrenzt; es gehen 14 Ringe auf 1 Somit.

Meeresbewohner, meist auf Krabben schmarotzend.” (p. 175): Oka.

Carc. konibir n. Sp. „Körper von ansehnlicher Größe, fleischfarbig,

mit somitenweise sich wiederholenden bräunlichen Flecken; Augen

fehlen. Auf Krabben schmarotzend. Länge 9—10 cm, Breite 7—8

Millimeter” (p. 175); Care. tigrina n. sp. ‚Körper klein, weißlich, mit

dunkelbraunen Querstreifen; Augen 6. Auf Knochenfischen schma-

rotzend. Länge bis 2 em, Breite 2,5 mm?’ (p. 176); Oka.

Clepsine; Jakubski; Cl. jaegerskioeldi n. sp.; Cl. fimbriata n. sp.; Ol. mul-

tistriata n. Sp.; Ol. nilotica n. sp.; Johansson (2); Cl. sexoculata; Hach-

low (2).

COylicobdella; G@oddard (2), (3).

Cystobranchus; Goddard (2).

Dina; Goddard (2); Johansson (1), (3).

Dineta; Goddard (2).

Geobdella tristiata n. sp.; Goddard (1), (2), (3).

Glossiphonidae; Goddard (2).

Glossosiphonia; Goddard (2); Gl. complanata; Oka; Seriban; Skorikow. G@l.

heteroclita; Seriban. G@’I. lata n. sp. ‚Körper mittelgroß, abgeflacht,

wenn zusammengezogen, fast so breit wie lang, weißlich mit spärlich

auftretenden schwärzlichen Längsstreifen; Rücken mit deutlichen

Papillen, diejenigen an der Mittellinie eine kielartige Längsseite bildend;

Kopfscheibe klein; Augen 6, gleich groß, derart gestellt, daß sie

3 Gruppen zu je 2, eine vordere mediane und zwei hintere laterale

bilden. Länge 12—13 mm, Breite 6—6'!/, mm.” (p. 168); Oka. G@l.

paludosa; Seriban. Gl. smaragdina n. sp. ‚Körper klein, meist von

schöner grüner Farbe; Rücken mit schwach entwickelten Papillen;

Augen 4, auf zwei benachbarten Ringen gelegen, die des vorderen

Paares sehr klein, die hinteren ziemlich groß, derart angeordnet, daß

die Augen derselben Seite dicht beisammen sind. Länge 10—13 mm,

Breite 3—4 mm.” (p. 168); Oka. GI. stagnalis; Livanow; Skorikow.

Systematik. 161

Gnathobdellidae; Goddard (2).

Haemadipsa; Goddard (2), (3). H. japonica var. rjukjuana noVv. Var.

„Rücken dunkelbraun, mit unregelmäßig zerstreutenschwarzen Punkten“

(p- 182); H.japonica var. taiwana nov. var. „Rücken gelblich, entweder

mit 4 dorsalen, unregelmäßig und unsymmetrisch geknickten Längs-

streifen oder unregelmäßig zerstreuten bräunlichen Flecken; sonst mit

der typischen Form von Haemadipsa japonica übereinstimmend“

(p- 183); Oka.

Haementeria costata; Seriban; Goddard (2).

Haemopis; Johansson (3); Goddard (2); 7. sanguisuga; Seriban.

Helobdella; Goddard. H. leioculata; Seriban. H. stagnalis; Oka.

Hemiclepsis; Livanow; H. marginata; Oka; Seriban. H. tesselata; Goddard

(2); Seriban.

Herpobdellidae; Goddard (2).

Herpobdella; Goddard (2); Johansson (2), (3). HZ. atomaria; Johansson (1);

Oka; Seriban; Skorikow. ZH. histriata; Johansson (3). H. kasmiana

n. sp. „Körper keulen- oder spindelförmig, nur wenig abgeflacht;

Rücken glatt, rötlichbraun mit weißen Längs- und Querstreifen;

Augen 2; Kopfscheibe breiter als Hals, deutlich abgegrenzt. Auf

Dipsas und Anodonta schmarotzend.. Länge 12—13 mm, Breite

3—4 mm“ (p. 169); Oka. H. lineata, H. nigricollis; Johansson (3).

H. octoculata; Oka; Seriban: Skorikow; Johansson (3). H. octoculata

var. pallida, H. oct. var. vulgaris, H. testacea, H. vulgaris; Johansson (3).

Hirudo; Jakubski; Goddard (2). H. lineata; Johansson (3). H. medicinalis;

Hachlow (1), (2); Seriban. H. octoculata; Johansson (3). H. nipponia

var. jaejamina nov. var. „Körperlänge bis 3 cm. Kopf weniger als ein

Viertel so breit wie Rumpf“ (p. 181); Oka. H. vulgaris Johansson (3).

Hirudobdella; Goddard (2).

Ichthyobdellidae; (ib.).

Ichthyobdella pagri n.sp. ‚Körper eylindrisch, weißlich, weder mit Flecken

noch Streifen; vorderer Saugnapf scheibenförmig an, der Rückenseite

undeutlich geringelt; hinterer Saugnapf kreisförmig; Ansatzstelle nicht

geschnürt; Augen 6, in 2 Längsreihen angeordnet, 2 Ringe zwischen

dem 2. und 3. Augenpaar. Schmarotzt auf Knochenfischen (Pagrus

major)‘ (p. 172). Ichth. uobirn. sp. „Körper etwas abgeflacht, weißlich,

weder mit Flecken noch Streifen; Rumpfsomite unregelmäßig quer

gerunzelt; vorderer Saugnapf scheibenförmig an der Rückenseite

undeutlich geringelt; hinterer Saugnapf halbkugelförmig, gegen den

Körper durch Abschnürung deutlich abgegrenzt; Augen 6, in 2 Längs-

reihen. Schmarotzt auf Knochenfischen. Länge 4—4,5 em, Breite

6—7 mm“ (p. 172); Ichth. virgata n. sp. „Körper zylindrisch, Rücken

rötlichbraun, mit 5 weißen Längsstreifen und somitenweise sich wieder-

holenden weißen Querstreifen; beide Saugnäpfe kreisförmig, deutlich

abgegrenzt; Augen 6, in 2 Längsreihen angeordnet, 1 Ring zwischen

dem 2. und 3. Augenpaar. Schmarotzt auf Knochenfischen. Länge

3,5—4 cm, Breite 4 mm“ (p. 173); Oka.

Limnobdella australis; Goddard (2).

Archiv für Naturgeschichte hl

LIVE.

162 Hirudinea für 1910.

Lumbricodbella; Goddard (2), (3).

Macrobdella; Goddard (2).

Mesobdella; Goddard (2).

Microbdella; Goddard (2).

Mimobdella japonica; Oka.

Nephelis; Johansson (3); Jakubski. N. bistriata, N. lineata, N. negricollis,

N. octoculata, N. oct. var. normalis, N. quadristriata, N. reticulnla,

N. sexoculata, N. scripturata, N. testacea; Johansson (3).

Orobdella; Goddard (2), (3). O. ijimai, O. octonaria, O. Whitmani; Oka.

Ozobranchus branchiatus; Oka; Goddard (2). Oz. margoi; Goddard (2).

Philaemon; Goddard (3); Ph. pungens; Goddard (2).

Piscicola; Livanow; Goddard (2). P. geometra; Oka; Seriban; Skorikow.

Placobdella; Goddard (2).

Pontobdella; Jakubski; Goddard (2); Livanow. P. bimaculata n. sp. „Körper

langgestreckt, zylindrisch, gelblich; Warzen wohl entwickelt; vorderer

Saugnapf kreisrund, am Rande mit 6 in gleichen Abständen ange-

brachten Wärzchen versehen; auf Rückenseite des vorderen Saug-

napfes zwei große, wie riesige Augen erscheinende dunkelrote Flecke;

hinterer Saugnapf wenig größer als der vordere. Schmarotzt auf

Haifischen. Länge 3—4 em, Breite 3—4 mm“ (p. 171); Oka. P. austra-

liensis n. sp. Goddard (1). P. macrothela; Goddard (1). P. moorei

n. sp. ‚‚Körper spindelförmig. Mitte der hinteren Körperhälfte am

dicksten, gelblich; Warzen stark entwickelt, mit je 7—10 Papillen

an der Spitze; vorderer Saugnapf kreisrund, mit glattem Rande;

hinterer Saugnapf klein; Somite aus 3 gleich breiten Ringen bestehend.

Schmarotzt auf Haifischen. Länge 12—14 cm, Breite 13—14 mm“

(p- 171); Oka. P. tatejomensis n. sp. „Körper langgestreckt, spindel-

förmig, hintere Körperhälfte meist bauchartig aufgetrieben, rötlich-

braun bis dunkelgrün; Warzen nur schwach entwickelt; beide Saug-

näpfe klein; Andeutung von Seitenbläschen äußerlich erkennbar.

Schmarotzt auf Knochenfischen. Länge bis 2cm, Breite bis 3 mm“

(p- 171); Oka. P. muricata; Southern.

Protoclepsis; Livanow.

Rhynchobdellidae (Ichthyobdellidae u. Glossiphonidae); Goddard (2).

Salifinae n. subfam. ‚„Pharynx mit drei rudimentären Kiefern, einem me-

dianen und dorsalen, zwei lateralen und ventralen. Darmkanal mit

einem engen Ventil, das an der Grenze zwischen dem dreizehnten und

vierzehnten Somit auf der dorsalen Medianlinie nach außen mündet“

(p- 3); Johansson (1).

Salifa perspicax; Johansson (1).

Scaptobdella blanchardii n. sp. ‚‚Körpergestalt sehr wechselnd, je nach dem

Grade der Kontraktion, täuschend regenwurmartig wenn ausgestreckt,

dick-zylindrisch oder stark abgeplattet, wenn zusammengezogen,

wobei die Seitenränder des hinteren Körperteils bei kleineren Exem-

plaren flossenartig verdünnt und wellenförmig geschlängelt erscheinen

können; Farbe variabel, bläulich, bräunlich, dunkelrötlich bis fast

Systematik. 163

ganz schwarz. Bauchseite entweder heller oder ebenso dunkel gefärbt

als Rücken. Länge 12—15 cm, Breite 10—12 mm (p. 179);“ Oka.

Semilageneta hilli; Goddard (2).

Trachelobdella sinensis; Oka; Goddard (2).

Trochaeta subviridis; Johansson (3); Seriban.

Whitmania acranulata; W. edendulis; W. pigra; W. pigra var. formosana

n. var. „Rücken mit 5 hellen Längsstreifen. Geschlechtsöffnungen

auf den Ringen“ (p. 180); Oka.

Xerobdella lecomtei; Schuster; Goddard (2), (3).

Chaetognatha für 1910.

Von

Rudolf von Ritter-Zahony, Görz:

Publikationen.

Broch, H. Neue Studien über das Plankton am Eingang zur

Ostsee im Juli 1908 und im Januar und Februar 1909. 10 Seiten

Folio. Göteborg 1909. Wald. Zachrissons Boktryckeri. Als

Separatum der Svensk. Hydr.-Biol. Komm. Skr., Bd. III im

voraus erschienen. — S. bipunctata aus der Ostsee.

Buchner, P. (1). Keimbahn und Ovogenese von Sagitta.

Anat. Anz., Bd. 35, p. 433—443, 17 Figg.

— (2). Die Schicksale des Kleinplasmas der Sagitten in

Reifung, Befruchtung, Keimbahn, Ovogenese und Spermatogenese.

Festschrift zum 60. Geburtstag R. Hertwigs; Bd. 1], p. 233—288,

6 T., 19 Figg. Jena.

Lo Bianco, S. Notizie biologiche riguardanti specialmente

il periodo di maturitäa sessuale degli animali del golfo di Napoli.

Mit. Stat. Neapel, Bd. 19, p. 513—764. — Die Sagitten scheinen

im Golf von Neapel das ganze Jahr hindurch reife Eier zu pro-

duzieren.

Merkle, H. Das Planlton der deutschen Ostseefahrt Juli-

August 1907. Wiss. Meeresunters. N. F., Bd. 11, Abt. Kiel,

p. 321—346, 3 Figg. — $. bipunctata nördlich von der Gotland-

Tiefe bei einem Salzgehalt von 7—11%, beobachtet. S8.-F.

Ritter-Zähony, R. v. (1). Die Chätognathen, in: Fauna

Arctiea, Bd. 5, p. 248—288, 1 Taf. Jena. S8.-F.

— (2). Westindische Chätognathen. Zoolog. Jahrb. Suppl.

XT., p. 133—144, 1 Taf. 8.-F.

— (3). Chaetognatha, in: Die Fauna Südwest-Australiens,

Bd. 3, 2 Seiten. Jena. S8.-F.

— (4). Chaetognatha from the coasts of Ireland. Fisheries,

Ireland, Sci. Invest., 1910, IV. (1910). 6 Seiten. 8.-F.

Steuer, A. Planktonkunde. 723 Seiten, 365 Figg., 1 Taf.

Leipzig u. Berlin. — Nichts Neues.

Stevens, N. M. Further studies on reproduction in Sagitta.

Philadelphia Journ. Morphol., Bd. 21, 31 Seiten, 102 figg.

Übersieht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Buchner (1, 2), Ritter-Zahony (1). Onto-

genie: Buchner (1, 2), Stevens. Biologisches: Lo Bianco, Ritter-Zähony (1).

Faunistik. Systematik. 165

Faunistik. — Systematik.

Außer Broch und Merkle (s. o.), kommen nur die Arbeiten von Ritter-

Zähony (1—4) in Betracht:

Sagitta bedoti Beraneck. Südwest-Australien (Starks-Bay) (3). — S. bi-

punctata Q. G. Arktische Meere, nordatlantischer Ozean (1). Irische

See (4). Tortugas (2). Südwest-Australien (Sharks Bay) (3). —

S. decipiens Fowler. Irische See (4). — S. enflata Grassi. Tortugas (2).

Südwest-Australien (3). — S. helenae n. sp. Tortugas (2). — S. hexa-

ptera Orb. Irische See (4). Tortugas (2). — S. lyra Krohn. Nord-

meer (1, p. 275). Irische See (4). — S. macrocephala Fowler. Nord-

meer (1, p. 275). Irische See (4). — S. maxima (Conant). ; Davis-

Straße, nordatlantischer Ozean, Nordsee (1). Irische See (4). —

S. minima Grassi. Südwest-Australien (Sharks Bay) (3). — S. planc-

tonis Steinhaus. Irische See (4). — S. pulchra Donc. Südwest-

Australien (Sharks Bay) (3). — S. regularis Aida. Sharks Bay (3)

— S. robusta Donc. Tortugas (2). Sharks Bay (3). — S. serratodentata

Krohn. Nordatlantischer Ozean (1, p. 276). Irische See (4). Tor-

tugas (2). Sharks Bay (3).

Spadella cephaloptera (W. Busch). Irische See (4). — Sp. draco (Krohn).

Tortugas (2). Sharks Bay (3).

Eukrohnia fowleri Ritt.-Z. Irische See (4). — E. hamata (Möb.). Arktische

Meere (1). Irische See (4).

Krohnitta n. nov. subtilis (Grassi). Irische See (4). Tortugas (2). Sharks

Bay (3).

Aberrante Würmer für 1910.

Von

Dr. A. Schepotieff.

Publikationen und Referate mit Inhaltsangabe.

(F = siehe auch unter Faunistik; S= siehe auch unter Systematik).

Beauchamp, P. de. (1). Sur la presence d’un hemocoele chez

Dinophilus. In: Bull. Soc. Zool. Fr. XXXV, p. 18—25, 2 Figg.

— Hämocölbau.

— (2). Sur lexistence et les conditions de la partheno-

genese chez Dinophilus. In:C.R. Acad. Paris, CL, p. 739—741. —

Über dimorphe sexuelle Generationen und periodisch auftretende

parthenogenetische Entwicklung. In System steht Dinophilus

zwischen den Anneliden und Rotatorien.

Caullery, M. u. Lavall6e, A. Recherches experimentales sur

les phases initiales de l’infection d’une ophiure (Amphiura squamata)

par un orthonectide (Rhopalura ophiocomae). In: CR. Acad.

Paris, CL.,‘ p. 1781—1783. — Experimentelle Untersuchungen

und genauere cytologische Beschreibung der einzelnen Larven-

stadien (vielkernige Plasmodien, vielzellige Morulen, weibliche

und männliche Embryonen). Über Kernveränderungen (Ähnlich-

keit mit Chromidien).

Dogiel, V. Untersuchungen über einige neue Catenata. In:

Zeit. f. wiss. Zool. XCIV, p. 400—446, 6 Figg., Tab. XIII, XIV.

— Russisch: Catenata, St. Petersburg, 1—142 pp., Tab. I—-VI. —

— Allgemeine Beschreibung der Arten von Haplozoon mit be-

sonderer Berücksichtigung der Kernveränderungen, speziell der

Chromosomen. Verwandtschaft von Haplozoon mit den Peri-

dineen (gegen Neresheimer). Phylogenetisches über Mesozoa.

Über sSiedleckia und Gymnodinium pulvisculus. F. 8.

Heider, K. (1). Über Balanoglossus-Entwicklung. In: Verh.

Ges. D. Naturf. u. Ärzte, 81 Vers. II. 1, p. 193—194.

— (2). Speculatives zur Balanoglossus-Entwickelung. In:

Biol. Cbl. XXX, p. 102—116, 11 Figg. — Phylogenetisches über

Tornaria: Ähnlichkeit mit Echinodermen-Larven und Cteno-

phoren; entfernte Beziehungen zu den Chordaten; sehr entfernte

Beziehungen mit Trochophora.

Schepotieff, A. Die Pterobranchier des Indischen Ozeans.

In: Zool. Jahrb. Abt. Syst. XX VIII, p. 429—448, Tab. VII, VII.

— Allgemeine Beschreibung der Organisation neuer Arten mit

besonderer Berücksichtigung der Unterschiede von schon be-

nannten Arten. Beschreibung der einzelnen gefundenen Larven-

Publikationen und Referate. Übersicht nach dem Stoff. 167

stadien von Cephalodiscus. Verwandtschaft mit Znteropneusta

und Chordata. Beziehungen zu den Graptolithen. F. 8.

Sehröder, 0. Buddenbrockia plumatellae, eine neue Mesozoen-

art aus Plumatella repens L. und Pl. fungosa Pall. In Zeit. £.

wiss. Zool. XCVI, p. 525—537, 4 Figg., Tab. XXIIL, XXIlla. —

Der Organismus ist zweischichtig (die Eier entwickeln sich aus der

innerenSchicht). Verwandtschaft mit Orthonectiden und Dieyemiden.

Stiasny, @. (1). Zur Kenntnis der Lebensweise von Balano-

glossus clavigerus Delle Chiaje. In: Zool. Anz. XXXV, p. 561

—565, 1 Fig. — Biologisches.

— (2). Beobachtungen über die marine Fauna des Triester

Golfes im Jahre 1909. In: Zool. Anz. XXXV, p. 583—587. F.

— (3). Dinophilus apatris forma tergestina. In: Zool. Anz.

XXXV, p. 587—589. F. 8.

Shearer, €. On the Anatomy of Histriobdella homari. In.

Quart. J. Mier. Sci. (N. S.), LV, p. 287—360, 5 Figg., Tab. XVII

—XX. — Monographische Beschreibung der allgemeinen Organi-

sation mit spezieller Berücksichtigung der Nephridien und Muskel-

stränge. Histriobdella ist Repräsentant einer speziellen Organis-

mengruppe und besitzt Merkmale, die einerseits den Rotatorien,

andererseits dem Dinophilus gemeinsam sind. Sie gehört also zu

den Uranneliden.

Übersicht nach dem Stoff.

Morphologie, Anatomie, Histologie.

Aeußere Morphologie und gesamte Anatomie: Catenata (Haplozoon-

Arten); Dogiel. Rhabdopleura striata und Cephalodiscus indicus; Schepotieff.

Buddenbrockia; Schröder. Histriobdella; Shearer. — Leibeshöhle und

Zirkulationsorgane: Hämocöl bei Dinophilus; Beauchamp (1). — Excredions-

system: Nephridien bei Histriobdella; Shearer.

Ontogenie, Organogenie, Phylogenie.

Ontogenie: Entwicklung und Larven von Rhopalura; Caullery u.

Lavallee. Generationswechsel und Parthenogenese bei Dinophilus; Beau-

champ (2). Entwicklungsstadien von Haplozoon; Dogiel. Tornaria;

Heider (1) (2). Larven von Cephalodiscus; Schepotieff. Eierbildung bei

Buddenbrockia; Schröder. — Phylogenie: Beziehungen der Tornarien zu

den Echinodermen-Larven, Ctenophoren, Amphioxus und Trochophora;

Heider (2). — Shearer gibt folgendes System der Uranneliden: Histriobdella,

Dinophilus; Polygordius, Protodrilus. Beziehungen von Dinophilus zu

den Anneliden und Rotatorien; Beauchamp (2). Pierobranchia und Chor-

daten; Rhabdopleura und Graptolithen; Schepotieff. Haplozoon und Peri-

dineen; Gruppe der ‚Mesozoa” besteht aus Salinella, Dicyemidae, Or-

thonectidae und Catenata; Siedleckia und Gregarinen; Protozoa und Me-

tazoa; Dogiel.e. Buddenbrockia und Orthonectiden; Schröder.

Biologie, Physiologie.

Biologie: Balanoglossus clavigerus; Stiasny. — Parasitismus aktiv:

Buddenbrockia in Plumatella repens und Pl. sfungosa; Schröder. Haplozoon

minutum n. sp., H. delicatulum n. sp. und H. macrostylum in Darmkanal

168 Aberrante Würmer für 1910.

von Maldaneiden, H. armatum in Travesia forbesi, H. lineara in Maldane

sarsü, H. ariciae in Aricia norwegica und H. obscurum in Terebellides strömii ;

Dogiel. Histriobdella in Hummerneier; Shearer. Rhopalura ophiocomae in.

Amphiura squamata; Caullery u. Lavallöe.

Faunistik.

Nord-Atlantik (Ost).

Murman-Küste: Haplozoon armatum n. sp., H. lineare n. sp.; Dogiel.

— Norwegen: Haplozoon armatum n. sp., H. delicatulum n. sp., H. ariciae

n. sp., H. macrostylum n. sp., H. obscurum n. sp. (ib.).

Mittelmeer.

Neapel: Haplozoon minutum n. sp., H. delicatulum n. sp., Dogiel. —

Triest: Actinotrocha, Balanoglossus clavigerus, Dinophilus apatris forma

tergestina, Tornaria; Stiasny (1) (2) (3).

Indik.

Ceylon: Rhabdopleura striata n. sp.; Cephalodiscus indicus n. Sp.;

Schepotieff. — Indien: Cephalodiscus (ib.).

Systematik.

Actinomyzidia; Dogiel. Blastulidium; Dogiel.

Actinotrocha; Stiasny (2). Buddenbrockia plumatellae; Schröder.

Amoebophrya; Dogiel. Catenata; Dogiel.

Balanoglossus clavigerus; Stiasny (1).

Cephalodiscus indicus n. Sp. „Das Cönöcium besitzt viele getrennte Räume

mit je einer einzigen Öffnung. Jeder Raum ist von einem Tiere mit

seinen Knospen eingenommen; keine Endanschwellungen an den

Lophophorarmen. Tiere getrennt geschlechtlich: Weibchen und

Männchen mit 6 Lophophorarmen in einem und demselben Cönöcium.

Kopfschild sehr groß, mit geringer Pigmentierung. Viele Knospen-

paare. Eier ungestielt.’’ (p. 435); Schepotieff.

Dinophilus; Beauchamp (2). D. apatris forma tergestina;, Stiasny (3).

D. conklinii; Beauchamp (1).

Haplozoon armatum n. Sp., H. ariciae n. Sp., H. delicatulum n. sp., H. lineare

n. Sp., H. macrostylum n. Sp«, H. minutum n. sp., H. obscurum n. Sp. ; Dogiel.

Histriobdella homari; Shearer.

Lohmanella; Dogiel.

Mesozoa; Dogiel.

Rhadopleura striata n. Sp. ‚Die sich frei erhebenden Wohnröhren be-

stehen aus in regelmäßigen Kreisen angeordneten Platten;” „Der

schwarze Stolo ist viel blasser gefärbt als bei Rh. normanii Allm. und

dabei hohl, so daß die Leibeshöhlen der Rümpfe aller Individuen der

Kolonie mit einander kommunizieren” (p. 430); Schepotieff.

Rhopalura ophiocomae; Caullery u. Lavallee.

Salinella; Dogiel.

Siedleckia; Dogiel.

Tornaria; Heider (2), Stiasny (1), (2).

Nemertina für 1910.

Von

Dr. K. Nägler, Berlin.

Publikationen und Referate.

Dawydoft, C. Restitution von Kopfstücken, die vor der Mund-

öffnung abgeschnitten waren, bei den Nemertinen (Lineus lacteus).

Zool. Anz., 36, p. 1—6, 6 Figg. — Zusammenfassung: ‚Stümpfe

des Kopfendes von Lineus lacteus, welche vor der Mundöffnung

amputiert worden waren und folglich des Darmkanals vollkommen

entbehrten, sind dennoch imstande, den Darmkanal zu regenerieren.

Das vordere Ende desselben (der Oesophagus) kann sich aus dem

Ectoderm differenzieren, gewöhnlich jedoch nehmen beide Ab-

schnitte des Darmkanals, sowohl der Vorderdarm als der Mittel-

darm, ihren Ursprung aus einer gemeinsamen Anlage. Der neu

entstehende Darm von Lineus lacteus wird aus dem Mesoderm ge-

bildet. Er differenziert sich aus dem Parenchym und den Wan-

dungen der Seitengefäße.e. Würde sich im folgenden sogar eine

entodermale Herkunft der erwähnten Gefäße herausstellen, so

würde dennoch der Umdifferenzierungsprozeß ihrer Wandungen

in ein derartig spezifisch differenziertes Organ, wie der Darm, ein

interessantes Beispiel darstellen für die unbegrenzte prospektive

Potenz eines Organs, welches in einer bestimmten Richtung

differenziert ist und bestimmte physiologische Funktionen trägt.

Wird die mesodermale Herkunft der Wandungen der Seiten-

gefäße als bewiesene Tatsache anerkannt, so muß die Möglichkeit

des Ersatzes eines Keimblattes durch ein anderes anerkannt oder

dem Mesoderm die Bedeutung eines Keimblattes abgesprochen

werden.“

Dederer, P.H. Pressure Experiments on the Egg of Cere-

bratulus lacteus. Arch. f. Entwicklungsmechanik, 29, p. 225—242,

7 Figg. — Versuche über Druckeinwirkung auf die Eier von

Cerebratulus lacteus. Veränderung der Lage der Zellen; eine

Störung in der Entwicklung beruht auf Schädigung des Proto-

plasmas.

Hallez, P. (1). Enkystement de protection d’une Nemerte

d’eau douce (Prostoma lumbricoideum Duges). C.R. Acad. Sci. Paris,

150, p. 481—482. — Encystierung unter rotierender Bewegung

der Individuen; als Veranlassung dienen ungünstiges Medium,

Kälte, Nahrungsmangel usw. Die Cystenbildung beruht auf

Schleimabsonderung.

— (2). Pontes d’ete et pontes d’hiver d’une Nemerte d’eau

douce (Prostoma lumbricoideum Duges). ibid. p. 556—557. —

170 Nemertina für 1910.

Ablage der Eier in schleimigen Hüllen, reihenweise angeordnet,

in den Monaten Oktober, November und Februar. Nach zirka

10 Tagen gehen daraus junge Würmer hervor. Im Januar fand

Bildung von Cysten statt, in die etwa 35 Eier gelegt wurden.

— (3). La question de la nomenclature des Nemertes d’eau

douce. Bull. Soc. Zool. France, 35, p. 62—74. — Verf. stellt Be-

trachtungen über die Nomenklatur der Süßwassernemertinen an,

über Gattungsnamen, die bekannten Arten von Prostoma, die

Arten von Duges, Charaktere der Nemertine von Lille (Prostoma

lumbricoideum Duges). Alle Arten außer Nemertes polyhopla

sollen in dem Genus Prostoma untergebracht werden.

Monticelli, Fr. $S. Notizia preliminare del rinvenimento di

un Nemertino (Prostoma sebethis n.sp.) nelle acque del Sebeto.

Rend. Accad. Sci. Napoli, Anno 49, p. 33. — Strohgelbe Art aus

dem Süßwasser von zirka 4 mm Länge.

Morgan, T.H. Experiment bearing on the nature of the

karyokinetic figure. Proc. Soc. Exper. Biol. New York, 7, p. 132.

— Beobachtungen an den zentrifugierten Eiern von Cerebratulus.

Die Centrosomen werden nicht als Kraftzentren angesehen.

Nusbaum, J. u. Oxner, M. (1). Beiträge zur Kenntnis der

Regenerationsvorgänge bei den Nemertinen. Bull. Acad. Cracovie

B., 1910, p. 1—11, Figg., pl. (Vorläufige Mitteilung). — Unter-

suchungen an Lineus ruber Müll.

— (2). Über die Ungleichartigkeit des Regenerations-

rhythmus in verschiedenen Körperregionen desselben Tieres. Be-

obachtungen an der Nemertine Lineus ruber Müll. ibid. p. 439

—447, 2 Figg. — Bei verschiedenen Exemplaren schreitet die

Regeneration überhaupt etwas schneller oder langsamer fort,

aber in den Fragmenten, welche einem und demselben Exemplar

entstammen, läßt sich stets die Regel konstatieren, daß die Frag-

mente aus den mittleren Körperregionen am schnellsten regene-

rieren, die vordersten und hintersten am langsamsten.

— (3). Studien über die Regeneration der Nemertinen.

1. Regeneration bei Lineus ruber Müll. Arch. f. Entwicklungs-

mechanik, 30, Teil 1, p. 74—132, pls. 4—6, 29 Figg. — Histo-

logische Analyse der morphalaktischen Prozesse und eingehende

Untersuchungen über das Wesen und den Mechanismus der Ver-

arbeitung der alten Gewebe zum Zwecke der Neubildung im

Regenerate. Bei Lineus ruber kommt eine Umdifferenzierung der

sehr spezialisierten Gewebe in andere, die sich durch eine große

Plastizität auszeichnen, vermittelst eines ganzen Herdes von

besonderen migrierenden Zellen des Körperparenchyms zustande

welche anfangs als aktive Phagocyten im Organismus wirken und

dann von lebensfähigeren Zellen des Regenerates verzehrt werden,

denselben etwa eine neue Lebensenergie verleihend. Bei Lineus

ruber ist die Regenerationsfähigkeit stark ausgeprägt, bei der

schmalen und breiten Form sind Differenzen in dieser Regenerations-

fähigkeit vorhanden, die vorderhand nicht erklärbar sind. Bei

Publikationen und Referate. 171

dem ganzen Regenerationsprozeß werden 4 Etappen unter-

schieden: regulatorische Prozesse, die in der Wundheilung be-

stehen, die die Morphalaxis einleitenden Prozesse, die im Er-

scheinen der mit Reservestoffpartikeln beladenen Wanderzellen

bestehen, eigentliche Regeneration, d.h. Bildung von Anlagen

verschiedener Organe des Regenerates, und endlich eigentliche

Morphalaxis, d.h. Wachstum des Ganzen auf Kosten des alten

Körperteils mit einer Migration der Wanderzellen in das Re-

generat und mit einem Zugrundegehen dieser Wanderzellen in den

sich neubildenden Geweben des Regenerates, also mit einer

Diphagocytosis verbunden. Über die Einzelheiten siehe im Original

selbst. Es werden behandelt die Regeneration des Rhynchocöloms,

des Darms, Mundes, Afters, Rüssels, der Nervenstränge und des

Parenchyms.

— (4). Über Encystierung regenerierender Nemertinen. Biol.

Centralbl., 30, p. 546—557, 6 Figg. — Bei der Regeneration von

Lineus ruber können sich bei besonderen Bedingungen die regene-

rierenden Körperstücke mit Cysten umgeben, die schichtenweise

nach und nach gebildet werden unter Beteiligung der Schleim-

und Eiweißdrüsen. In der Cystenwand treten auch zugrunde

gehende Zellelemente auf. Verschiedene Eigentümlichkeiten im

Bau und in der Entwicklung der Cysten werden beschrieben. Das

encystierte Fragment verliert sehr viel lebendiges Gewebsmaterial

und die Regenerationsfähigkeit teilweise; jedenfalls wird sie bei

dem Involutionsprozeß sehr verlangsamt.

Oxner, M. (1). Etudes sur la regeneration chez les Nemertiens.

1. La regeneration chez Lineus ruber Müll. Introduction: Obser-

vations biologiques.. Ann. Inst. Oceanogr. Monaco, 1, fasc. 8,

34 pp. 9 pls. — Biologischer Teil über die Regenerationsstudien

von Nußbaum und Oxner.

— (2). Analyse biologique du phenomene de la regeneration

chez Lineus ruber Müll. et Lineus lacteus Rathke. C. R. Acad. Sci.

Paris, 150, p. 1618—1620. — Zerschneidungsexperimente und

Verlauf der Regeneration. — Die Bildung des Darmkanals kann

auch ohne Anwesenheit des Gehirns erfolgen. Polarität des Körpers.

Theoretisches über Keimblätter und Regenerationsformen.

Punnett, R. €. u. Cooper, €. F. On some Nemerteans from the

eastern Indian ocean. Trans. Linn. Soc. London (2), 13, p. 1—15,

Figg., pls. 1-2. — Allgemeines über die geographische Ver-

breitung. Aufzählung und Beschreibung der Arten. Neu sind:

Drepanophorus indicus Salomon, Chagos; D. sp. British East

Africa; Baseodiscus insignis Zanzibar ; sordidus Praslin Seychelles;

longissimus Zamzibar; Lineus mascarensis Zanzibar; hancocki

Cargados Carajos; indicus Amirantes; crosslandi Zanzibar ; orientalıs

Coetivy; Cerebratulus multiporatus Wasin, British East Africa;

zebra Ceylon; Diplopleura sp. Maldives. Klassifikationstabelle

über Cerebratulus, Lineus und Miecrura.

Rimsky-Korsakow, M. Zur Biologie der Süßwassernemertine

172 Nemertina für 1910.

Stichostemma graecense Böhmig. Biol. Centralbl., 30, p. 561—569

6 Figg. — Stichostemma graecense ist eine sehr variable Art. Die

Stiletbasis ist entweder kegelförmig oder birnförmig. Die Ver-

teilung des Augenpigmentes ändert sich. Uber die Entwickelung

von den undurchsichtigen kugeligen Eiern wird einiges mitgeteilt.

Die Embryonalentwickelung dauert 6—8 Tage. Die jungen

Nemertinen lebten über einen Monat in kleinen Schalen. Während

dieser Zeit tritt Verschmelzung der zwei vorderen Augenpaare

ein. Die Art wurde im Neckar bei Heidelberg und in Tümpeln

bei Straßburg mehrfach gefunden. Geographische Verbreitung.

Wijnhoft, G. (1). Die Gattung Cephalothrix und ihre Be-

deutung für die Systematik der Nemertinen. Zool. Jahrb., Abt.

Morph., 30, p. 427—534, Figg., pls. 26—29. — Zusammenfassung

der Resultate: ‚Das einschichtige Hautepithel weist in der Vorder-

darmgegend auch unicelläre Hämatoxilindrüsen auf, die noch

keine Neigung zur Paketbildung zeigen. Die innere Ringmuskel-

schicht von Cephalothrix filiformis hat noch alle Merkmale einer

Schicht des Hautmuskelschlauches bewahrt, indem sie alle Organe

umfaßt, auch die Gonaden. Alle untersuchten Cephalothrix-Arten

haben eine Längsmuskelplatte. Bindegewebe hat sich nur entwickelt

in der Region zwischen dem Gehirn und dem Munde. In dem

Nervengewebe des Kopfes hat sich eine Kopfdrüse entwickelt,

die vollkommen an die Drüsenschicht von Callinera erinnert. Es

existiert kein Unterschied zwischen einer Kopfdrüse und ‚sub-

muscular glands“. Der Rüssel hat sich in derselben Weise diffe-

renziert wie bei Callinera und weist auch Andeutungen einer ent-

fernten Verwandtschaft mit Carinomella und vielleicht mit einigen

primitiven Heteronemertinen auf. C. filiformis hat eine dem

Vorderdarm eigene Ringmuskulatur. Ein Enddarm fehlt allen

Nemertinen, ebenso eigentliche Darmtaschen. Die zwei Blut-

gefäße anastomisieren nur dorsal in der Kopfspitze und unter

dem Anus. Die Nephridien sind nicht durch einen Längskanal

verbunden, sondern jedes Endkölbcehen mündet sofort durch

einen Ausführungsgang nach außen. Die dorsalen Gehirnganglien

sind sehr mächtig; ihre Faserkerne hängen durch laterale Kom-

missuren mit den ventralen zusammen, die aber sehr wenig gegen

die ventrale Kommissur abgesetzt sind. Die dorsale Gehirn-

kommissur liegt vor der ventralen. Die dorsalen Faserkerne der

Cephalothrix-Arten s. str. weisen keine Gabelung auf. Es ist ein sub-

epithelialer Nervenplexus im Vorderdarme vorhanden, in dem

sich zwei Nerven gebildet haben, neben den Schlundnerven. Die

Analkommissur ist ventral. Die Kopfnerven sind der Nerven-

schicht von Callinera und Carinesta homolog. Scharf umschriebene

Sinnesorgane fehlen bei der Gattung Cephalothrix s. str.“

— (2). Het watervaatstelsel der Nemertinen. Tijdschr.

Nederl. Dierk. Ver., (2), Deel 11, Versl. p. 59—60 (Vorläufige Mit-

teilung). — Siehe auch (1). Mitteilungen über Cephalothrix.

Yatsu, N. (1). Experiments on cleavage in the egg of Cere-

Publikationen und Referate. Übersicht nach dem Stoff. 173

bratulus. Journ. Coll. Sc. Japan, 27, Art. 10, 19 pp., 4 Figg. —

Furchungsexperimente am Ei von Cerebratulus lacteus. Störung

der Furchung bei Entfernung einer Plasmaportion aus einer oder

zwei Blastomeren während der ersten Teilung. Weitere Schnitt-

und Trennungsexperimente, ferner Versuche durch Druckein-

wirkung. Entwicklung der Eier in Ca-freiem Wasser von (©.

lacteus und marginatus.

— (2). Experiments on germinal localization in the egg of

Cerebratulus. ibid. Art. 17, 37 pp., 26 Figg. — Zerschneidungs-

experimente während der ersten Reifungsteilung und Befruchtung

nach 1—5 Stunden. Lokalisation der Organanlagen. Ausführl.

Referat siehe im Neapl. Jahresbericht.

Übersicht nach dem Stoff.

Allgemeines und Vermischtes.

Expeditionen: Punnett u. Cooper. — Methoden: Morgan, Nusbaum

u. Oxner. — Monographien: Wijnhoff. — Nomenklatur: Hallez (3). —

System. Fragen: Hallez (3), Wijnhoff. — Klassifikationstabelle: Punnett

u. Cooper. — Theoretisches: Dawydoff, Morgan, Nusbaum u. Oxner,

Oxner (2).

Anatomie, Biologie, Physiologie und Entwieklung.

Anatomie und Histologie: Allgemein: Dawydoff, Nusbaum u.

Oxner, Wijnhoff. — Haut: Wijnhoff. — Stilettapparat: Nusbaum u.

Oxner (3), Rimsky-Korsakow, Wijnhoff. — Blutgefäßsystem: Wijnhoff. —.

Oesophagus: Dawydoff, Nusbaum u. Oxner (3), Oxner (2), Wijnhoff. —

Augenpigment: Rimsky-Korsakow. — Nervensystem: Nusbaum u. Oxner

(3), Wijnhoff. — Cölom: Nusbaum u. Oxner (3), Wijnhoff. — Nephridien:

Wijnhoff. — Muskeln: Wijnhoff. — Hämatoxilindrüsen: Wijnhoff. —

Kopfdrüse: Wijnhoff. — Morphologie: Hallez, Monticelli, Punnett u.

Cooper. —

Biologie: Allgemein: Hallez (1), Nusbaum u. ÖOxner, Oxner,

Rimsky-Korsakow. — Regeneration: Dawydoff, Nusbaum u. Oxner,

Oxner (2). — Cystenbildung: Hallez (1), Nusbaum u. Oxner (4). — Variation:

Rimsky-Korsakow. — Phylogenetisches: Wijnhoff. —

Physiologie: Allgemein: Dawydoff, Morgan, Yatsu. — Experi-

mentelles: Dawydoff, Dederer, Morgan, Oxner (2), Yatsu. — Polarität:

Oxner (2). — Umdifferenzierungen: Dawydoff, Nusbaum n. Oxner (3). —

Regenerationsrhythmus: Nusbaum u. Oxner (2). — Migration der Wander-

zellen: Nusbaum u. Oxner (3). — Diphagoeytosis: Nusbaum u. Oxner (3)

— Lokalisation der Organanlagen: Yatsu. — Centrosom: Morgan. —

Entwicklung: Allgemein: Dederer, Rimsky-Korsakow, Yatsu. —

Eier: Dederer, Hallez (2), Morgan, Rimsky-Korsakow, Yatsu. — Ookinesis:

Rimsky-Korsakow, Yatsu. — Ontogenie: Dederer, Hallez (2).

174 Nemertina für 1910.

Faunistik.

Allgemeines: Punnett u. Cooper. — Frankreich (Süßwasser): Hallez;

Italien (Süßwasser): Monticelli; Indischer Ocean: Punnett u. Cooper;

Deutschland (Süßwasser): Rimsky-Korsakow.

Systematik.

Allgemeines: Hallez (3), Wijnhoff.

Baseodiscus insignis n. sp. Zanzibar. Punnett u. Cooper. — sordidus n. Sp.

Seychelles. Punnett u. Cooper. — longissimus n. sp. Zanzibar. Punnett

u. Cooper.

Cephalothrix filiformis. Wijnhoff.

Cerebratulus lacteus. Dederer, Morgan. — lacteus u. marginatus. Yatsu.

multiporatus n. sp. British East Africa. Punnett u. Cooper. — zebra

n. sp. Ceylon. Punnett u. Cooper.

Diplopleura sp. Maldives. Punnett u. Cooper.

Drepanophorus indicus n. sp. Salomon. Punnett u. Cooper. — sp. British

East Africa. Punnett u. Cooper.

Lineus crosslandi n. sp. Zanzibar. Punnett u. Cooper. — hancocki n. Sp.

Cargados Carajos. Punnett u. Cooper. — indicus n. sp. Amirantes.

Punnett u. Cooper. — lacteus. Dawydoff, Oxner (2). — mascarensis

n. sp. Zanzibar. Punnett u. Cooper. — orientalis n. sp. Coetivy. Punnett

u. Cooper. — ruber Müll. Nusbaum u. Oxner; Oxner.

Micrura. Punnett u. Cooper.

Nemertes polyhopla. Hallez (3).

Prostoma (Hauptgenus). Hallez (3).

Prostoma lumbricoideum Duges. Hallez. — sebethis n.sp. Monticelli.

Stichostemma graecense Böhmig. Rimsky-Korsakow.

Turbellaria für 1910.

Von

Dr. O. Fuhrmann, Neuchätel.

Publikationen und Referate.

O0 siehe unter Ontogenese, Ph — unter Physiologie, R — unter

Regeneration, S — unter Systematik.

Beauchamp, P. de. (1). Notes faunistiques. Plagiostoma lemani

du Plessis et Polycelis felina Delyell (cornuta Johnson) aux

environs de Paris. In: Bull. soc. Zool. Paris, vol. 34, 1909, p.

124—129.

— (2). Archiloa rivularıs n.g. n.sp. turbellari6 alloeocoele

d’eau douce. In: Bull. Soc. Zool. de France, vol. XXXV,

p. 211—219, 2 Figg. S. — Diese interessante Turbellarie

fand sich in einem Bache bei Saint-Jean-de-Luz (Basses-Pyrenees)

nahe dem Meer, aber in vollkommen süßem Wasser in Gesell-

schaft von Planaria gonocephala und Planaria nigra. Das neue

Genus unterscheidet sich namentlich dadurch, daß die vordere

weibliche Geschlechtsöffnung (Öffnung der Bursa seminalis) sich

mit der männlichen Geschlechtsöffnung vereinigt und so also die

Samenblase sich in die Penisscheide öffnet.

Bohn, G. Tropisme et sensibilite differentielle (& propos des

Convoluta). In: Bull. du Museum nat. d’hist. nat. Paris, Annee

1909, p. 80—82. Ph. — (Polemisch.)

Child, €.M. (1). The central nervous system as a factor in

the regeneration of Polyclad Turbellaria. In: Biol. Bull. Woods

Hole, vol. 18, p. 109—119. R. — Die experimentellen Unter-

suchungen Ch.’s an Leptoplaniden ergaben, daß das Gehirn-

ganglion, oder bei dessen. Entfernung die Wurzeln der Nerven,

einen deutlichen Einfluß auf die Regeneration, was die Schnellig-

keit und den Umfang derselben anbetrifft, ausüben. In der Tat

zeigte es sich, daß bei einem Individuum, dem das Gehirnganglion

und die Wurzel der von ihm ausgehenden Nerven operativ ent-

fernt und die Wunde vollständig geheilt war, eine Regeneration

nur sehr langsam und unvollständig eintrat, wenn dem Tier der vor

dem Gehirn gelegene Teil abgeschnitten wurde. Bei intakten

Leptoplaniden dagegen, welchen ein Stück von gleichem Umfang

am Vorderende entfernt wurde, trat die Regeneration rascher

und vollständiger ein (entgegen Morgans Experimenten).

— (2). Physiological Isolation of Parts and Fission in

Planaria. In: Arch. f. Entwicklmech., Bd. 30, 2. Teil, p. 159

—205, 14 Figg. R, Ph. — Nach Ch. besteht Planaria doroto-

176 Turbellaria für 1910.

cephala und andere Arten, welche sich durch Querteilung ver-

mehren, aus zwei Zooiden, wenigstens in der Periode der un-

geschlechtlichen Vermehrung. Es gibt nach Ch. gewisse An-

zeichen, daß diese beiden Zooiden einer physiologischen Teilung

in zwei Zooide unterliegen, bevor die physikalische Teilung ein-

tritt. Die Trennung ergibt sich aus einer unabhängigen motorischen

Reaktion des zweiten Zooids, das sich festheftet, während das

vordere Zooid heftig vorwärtsstrebt, so daß sie sich voneinander

trennen. Unter natürlichen Bedingungen tritt die Spaltung

namentlich bei großen Tieren ein, kann aber experimentell auch

bei solchen von geringer Größe hervorgerufen werden, namentlich

wenn man den betreffenden Tieren den Kopf abschneidet. Die

Teilung tritt dann nach einigen Tagen ein, wenn der neue Kopf

genügend entwickelt ist, um aktive Ortsbewegung zu ermög-

lichen. V. erklärt diese Erscheinung dadurch, daß er annimmt,

daß eine Abnahme der korrelativen Kontrolle des ersten Zooids

über das zweite besteht, so daß dessen physiologische Isolierung

erhöht und seine Entwicklung zu einem neuen Ganzen- be-

schleunigt wird. Die Spaltung kann bei unverstümmelten Tieren

von einer gewissen Größe auch durch Futtermangel, anästhe-

sierende Medien, Temperaturveränderungen und wohl noch andere

Bedingungen erzeugt werden. In der freien Natur wird wohl in

den meisten Fällen die Spaltung durch einen Überfluß an Nahrung

hervorgerufen, da diese rasche Größenzunahme erzeugt. Alle

diese die Spaltung herbeiführenden Agentien haben das Gemein-

same, daß sie dazu dienen, den Grad der physiologischen Isolierung

der hinteren Körperregion von dem dominierenden Vorderteile

zu erhöhen.

*Dendy, A. On Land Planarians from Auckland and Enderby

Islands. In: Subantarctic Islands of New Zealand, Wellington,

Art. 27, 1909, p. 672—673. 8.

*Geba, J. Landplanarien von Madagaskar und den Comoren.

In: Voeltzkow, Reise Ostafrika, 2. Bd., 1909, p. 379—398, 3 Figg.,

2 Taf. 8.

Hallez, P. (1). Biologie, Organisation, Histologie et Embryo-

logie d’un rhabdocoele parasite du Cardium edule L. Paravortex

cardii n.sp. In: Arch. de zool. experim. et generale, T. IX, 1909,

p. 429—544, pl. 24—34. — Der Parasit lebt im Magen von Cardıum

bei Boulogne sur Mer, woselbst 47°/, dieses Mollusken infiziert

sind. Die Jungen schlüpfen in der Mutter aus und durchbrechen

die Körperwandung, um in den Magen des Wirtes zu gelangen.

Die Eikokon (70—80) enthalten je 2—4 Embryonen, so daß ein

Tier 200 und mehr Junge produzieren kann. Dieselben gehen in

den Darm über und verlassen durch den Siphon die Muschel, um

dann nach kurzer Zeit in den Darm von Cardium edule einzu-

dringen, wo man sie meist einzeln oder zu zweien (ausnahmsweise

7—20 Individuen) antrifft. V. gibt eine eingehende Schilderung

der Anatomie und Histologie sowie der Entwicklung von P£.

Publikationen und Referate. 177

cardii. Im Schlußkapitel bemerkt V., daß seine Untersuchungen

an Rhabdocoelen ihn in der 1892 (Morphogenie generale et

affinites des Turbellaries) ausgesprochenen Ansicht befestigen,

daß die Polycladen mit den Ctenophoren oder Acalephen ver-

wandtschaftliche Beziehungen haben und daß die Trieladen und

Rhabdocoelen von bewimperten Anthozoenlarven abstammen,

welche, statt sich zu fixieren, sich an eine kriechende Lebensweise

angepaßt haben.

— (2). Sur le Paravortex scrobiculariae Wahl. — V. fand

bei Boulogne sur Mer den von Wahl beschriebenen P. s. bei zirka

55°/, der Scrobicularıa piperata. Die Art findet sich, entgegen der

Ansicht von Wahl, auch im Magen, wo sie älter sind und zahl-

reiche Kokon enthalten, während im Darm die jüngeren Exem-

plare mit wenigen Kokon sich finden, welche später als bei ?.

cardii Hallez den Wirt verlassen, um einen neuen aufzusuchen.

— (3). Un nouveau type d’Alloiocoele (Bothriomolus con-

strictus n.g. n.sp.). In: Arch. Z. Exper., T.3, p. 611—664,

Taf. 18—20. S. S. auch Bericht 1909, p. 200, 217. — H. gibt

eine sehr detaillierte Beschreibung dieser interessanten Art.

Hofsten, N. von (1). Über die frühzeitige Besamung der Ei-

zellen bei Otomesostoma auditivum (Forel u. Du Plessis). Zugleich

ein Beitrag zur Kenntnis der Turbellarienspermien. In: Zool.

Anz., p. 431—443, 13 Figg. — V. beobachtete, daß die Eizellen.

von ©. schon als sehr kleine, am Anfang ihrer Wachstumsperiode

befindliche Ocysten die zur Befruchtung bestimmten Samen-

fäden in ihr Plasma aufnehmen. Dies ist eine im Tierreich einzig

dastehende Erscheinung. Da Martin und Bresslau diese Beob-

achtung angezweifelt, gibt H. eine genaue Schilderung der Ver-

hältnisse. Die Spermien sind in den Eiern mehr oder weniger

stark gebogen, während sie in den Hoden, Vesicula seminalis und

im Körperparenchym gerade sind. Diese Spermien stammen aus

den Hoden desselben Individuums, so daß also Selbstbefruchtung

vorliegt. Auch bei Otoplana intermedia Du Plessis und Plagio-

stoma lemani (Forel u. Du Plessis) findet eine verhältnismäßig

frühzeitige Besamung der größeren Eier im Ovarium statt. V.

schildert dann eingehend die Entwicklung und den Bau der

Spermien von ©.

— (2). Zur Synonymik und systematischen Stellung von

Castrella truncata (Abildg.). In: Z. Anz., 35 .Bd., p. 652—669,

12 Figg. 8. — Es wird eingehend die Synonymie von Casirella

truncata besprochen. Entgegen v. Graff nimmt H. mit Recht an,

daß Jensenia agilis Fuhrm. identisch ist mit J. truncata. Die ein-

gehende Vergleichung des sehr komplizierten chitinösen Kopula-

tionsorganes verwandter Formen hat H. gezeigt, daß als sichere

Synonyme von (©. truncata, CO. agilis Fuhrm. C©. serotina Dorner,

Ü. bologoviensis Plotnikow, C. obscura Plotnikow bezeichnet

werden müssen. Als sichere Arten des Genus Casirella werden ausser

©. truncata noch ©. pinguis Sillimann, C. millportianus Graff und

Archiv für Naturgeschichte 12

BITIEINT

178 Turbellaria für 1910.

C. quadrioculatus Vejd. angeführt. Die erste, typische Art, des

Genus scheint in ganz Europa überall häufig zu sein. In einem

besonderen Abschnitt bespricht H. die Frage, ob die obgenannten

Arten in das Genus Castrella Fuhrmann oder Jensenia Graff zu

stellen sind. Es wird gezeigt, daß die marine Jensenia angulata

in sehr zahlreichen Einzelheiten von den obgenannten Süßwasser-

formen abweicht, so daß die Vereinigung der Castrella-Arten mit

der marinen Jensenia-Art als eine ganz willkürliche zu bezeichnen

ist. Zum Schlusse bemerkt noch H., daß Graff, entgegen seiner

wohlbegründeten Ansicht, die alte Abteilung der Rhabdocoelida

als eine den Trieladen und Polycladen gleichwertige Ordnung

auffaßt, obwohl die Alloeocoela eher mit den Trieladen als mit

den eigentlichen Rhabdocoelen verwandt sind.

Jakubova, L. Die Polycladida der Bucht von Sevastopol

(russ.) In: Mem. Ac. Sc. Ser. 8, Bd. 24, 2,1909, pg. 1—31,1 Taf.

Keiller, V.H. A histological study of regeneration in short

head-pieces of Planaria simplicissima. In: Arch. Entwicklungs-

mech., 31. Bd., p. 131—144, 23 Figg. R. — V. untersuchte die

Regeneration bei in geringer Distanz hinter den Augen abge-

schnittenen Köpfen von Pl. simplicissima. Es zeigten sich dabei

verschiedene Arten der Regeneration, je nachdem der Schnitt

das Gehirn des Tieres trifft oder nicht. Weder ein heteromorphes

Gehirn, noch heteromorphe Augen bilden sich, wenn das Gehirn

nicht angeschnitten wird. Die heteromorphen Gehirne können

auf drei Weisen entstehen: 1. durch Regeneration in engem Zu-

sammenhang mit den Schnittenden des alten Gehirns; 2. durch

Regeneration eines vom alten getrennten und mit ihm durch

kurze Nervenstränge in Verbindung stehenden neuen Gehirns;

3. durch Verdickung der den Schnittenden zunächst gelegenen

Kommissur. Heteromorphe Augen stehen selten normal und

treten gewöhnlich paarweise, aber oft ungleich entwickelt auf.

Heteromorphe Gehirne können in Abwesenheit von Augen und

degenerierte heteromorphe Augen können bei Abwesenheit jeder

Spur von Gehirnregeneration auftreten. Da, wo es nicht zur

Regeneration wahrer Augen kommt, treten zerstreute Pigmen-

flecken im Paremchym auf; solche finden sich aber auch in einigen

Fällen in Köpfen mit heteromorphen Augen.

- *Lepeschkin, H. D. Über einen neuen Vertreter des Wurm-

typus mit vier Chromosomen (Vortex viridis) (Cytologische Be-

obachtungen). In: Biologische Zeitschrift, Bd. 1, p. 1—13, 1 Taf.,

Moskau 1910 (Russisch). Referat in Arch. f. Zellforschung, Leipzig,

9.. Bd’ pP. 676...,0;

Linton, EE On a new Rhabdocoele commensal with Modiolus

plicatulus. In: Journ. Exper. Z. Philadelphia, vol. 9, p. 371

—384, 4 Taf. Vorl. Mitteil. In: Science, (2), vol. 31, p. 472. P.

— Graffilla gemellipara n. sp. lebt in der Mantelhöhle von Modiolus

plicatulus (an der Küste von Woods Hole); sie ist kaum 2 mm

lang. Die zahlreichen Eier im Parenchym enthalten immer zwei

Publikationen und Referate. 179

Embryonen. Die Turbellarie ist lichtscheu, wie dies für ein in

der Mantelhöhle lebendes kommensales Tier zu erwarten.

Löhner, L. Untersuchungen über Polychoerus caudatus Mark.

In: Zeit. Wiss. Zool., 95. Bd., p. 451—506, Taf. 15—17. — Diese

interessante Turbellarie wird eingehend untersucht, namentlich

die Struktur des Parenchyms, das sich dadurch auszeichnet, daß

ein Verdauungsparenchym vorhanden (Freßzellen fehlen) und daß

das Stützparenchym in Rand- und Zentralparenchym differen-

ziert ist. Im Nervensystem fällt auf, daß das Gehirn aus drei

räumlich weit getrennten, durch Kommissuren verbundenen

Ganglienmassen besteht. Im zentralen Ganglion, von Faser-

massen umschlossen, liegt die Statocyste. Das periphere Nerven-

system zeigt die Ausbildung eines reich entwickelten, oberflächlich

gelegenen Nervenplexus; Längsnerven bestehen 6 Paar. Als

Tastorgane sind die eigentümlichen Caudalfäden aufzufassen.

Interessant ist vor allem der Bau der weiblichen Geschlechts-

organe, deren Gonaden eine merkwürdige Struktur aufweisen. Es

bestehen, was bei Acoelen sonst nicht vorkommt, Germo-Vitel-

larien. Die Bursa seminalis besitzt chitinöse Mundstücke, deren

Zahl nach Mark 6—50 beträgt. Dieselben sind gegen die Ventral-

fläche und das daselbst als Ovidukte fungierende Lückensystem

gerichtet. Die weibliche Geschlechtsöffnung liegt hinter der

Bursa seminalis. V. macht einige Bemerkungen über den Bau

der jüngsten Individuen. Die gefräßige und räuberische Acöle

gehört der nearktischen marinen Litoralfauna an.

Markow, M. Über das Exkretionssystem im Schlunde von

Cercyra hastata O. Schm. und Procerodes segmentata Lang aus

Sewastopol. In: Z. Anz., 55. Bd., p. 481—483, 2 Figg. — Die

Gefäßstämme im Pharynx scheinen sich nicht zu anastomosieren.

*Peaslee, L.D. Studies on Phagocata gracilis (Leidy). In:

Univ. Stud. Cincinnati, (2), vol. 6, No.2, p. 3—41, 3 Taf.

Saint-Hilaire, ©. Beobachtungen über die intracelluläre Ver-

dauung in den Darmzellen der Planarien. In: Zeit. Allg. Phys.,

Jena, 11. Bd., p. 177—248, Taf. $—16. Ph.

Steinmann, P. (1). Eine neue Gattung der paludicolen Tri-

claden aus der Umgebung von Basel (Polycladodes alba n.g.

n.sp.). In: Verh. Nat. Ges. Basel, 21. Bd., p. 186—196, 2 Figg. 8.

— P. alba n.sp. ist ein ausgesprochenes Quellentier.

— (2). Der Einfluß des Ganzen auf die Regeneration der

Teile. Studien an Doppelplanarien. In: Festschr. R. Hertwig,

Jena, 3. Bd., p. 29—54, 15 Figg. R. — V. untersucht zunächst

den Einfluß des Gesamtorganismus auf den Umfang des Re-

generationsgeschehens, also auf die Größe des Regenerates, und

kommt auf Grund zahlreicher Experimente zum Schlusse, daß,

je größer der Regenerant, um so intensiver das Regenerations-

geschehen. Anderseits wird die Größe eines Regenerates weder

durch die Größe der Verletzung, noch durch die im Schnittende

vorhandenen Organe, noch durch die der Wunde direkt zuge-

12%

180 Turbellaria für 1910.

hörenden Teile des Regeneranten, sondern durch den Gesamt-

organismus bestimmt. St. bespricht ferner die qualitative Be-

einflussung des Regenerates durch den Regeneranten und dann

die Bestimmung der Symmetrieverhältnisse des Regenerates

durch den Regeneranten, auch hier gestützt auf zahlreiche Ex-

perimente. Im allgemeinen Schlußkapitel untersucht W., wie sich

die erhaltenen Resultate mit den Anschauungen über die das

Regenerat differenzierenden Faktoren vertragen. Nach ihm zeigt

die Regeneration der Planarien einen ursprünglichen Charaxter.

Die Differenzierung des Planarienregenerates zeigt nämlich, daß

die Selbstdifferenzierung der Wundzellen gegenüber der ab-

hängigen Differenzierung durch den Gesamtregeneranten stark

zurücktritt, und so eine große Ähnlichkeit mit der ontogenetischen

Differenzierungsweise sich nachweisen läßt. Das Regenerations-

vermögen erscheint nicht als etwas Erworbenes, sondern als von

Anfang an Vorhandenes. Diesen ursprünglichen Regenerations-

modus treffen wir bei Stentor, Hydra, Planarien etc. Durch fort-

schreitende Spezialisierung geht die Fähigkeit, in einen embryo-

nalen Zustand zurückzukehren, verloren . Die Regeneration be-

schränkt sich dann auf die unmittelbar betroffenen Gewebe, und

es spielt die morphogenetische Funktion des Nervensystems eine

große Rolle. So bei einigen Tricladen, Polycladen, Regenwurm,

Crustaceen ete. Schließlich beschränkt sich das Regenerations-

vermögen nur noch auf bestimmte Zellsorten; die Regeneration

ist eine lokale Erscheinung, und das Regenerationsgeschehen ist

von dem KRegeneranten fast unabhängig geworden (Axolotl,

Eidechse ete... Während bei Planarien etc. der Vorgang der

Regeneration ontogenetischen Charakter zeigt, ist bei Triton und

Eidechse ete. die Regeneration die Leistung spezieller Gewebe

mit Selbstdifferenzierungsvermögen. Im ersten Falle ist die

Regeneration primär, im letzten Falle ein sekundärer Erwerb.

— (3). Organische Resultanten. Studien an Doppelplanarien.

2. In: Arch. Entwicklungsmech., 29. Bd., p. 169—174, 7 Figg.

R. — V. schildert einige Versuche, welche er an Planaria gono-

cephala gemacht, indem er an denselben am Vorder- oder Hinter-

ende mehr oder weniger tiefe Längseinschnitte machte. Es zeigte

sich dabei, daß Kopf und Schwanz sich bezüglich ihres Regenera-

tionsverhaltens sehr verschieden verhalten.

Wahl, B. (1). Untersuchungen über den Bau der parasitischen

Turbellarien aus der Familie der Dalyelliiden (Vortieiden). II. Teil:

Die Genera Umagilla und Syndesmis. In: Sitzungsber. Akad.

Wien, 118. Bd., Abt. I, p. 943—965, Taf. 1, 1909.. 8.

Umagilla zeigt prinzipiell den gleichen Bau wie Anoplodium.

Differenzen finden sich nur in der Form der Geschlechtsdrüsen,

der Zahl der Keimstöcke und dem Vorhandensein einer Bursa

copulatrix und eines Receptaculum seminis, die bei Anoplodium

zu einer Bursa seminalis verschmolzen sind. Umagilla besitzt.

außerdem einen komplizierten chitinösen Penis.

Publikationen und Referate. 181

Über Syndesmis macht V. nur einige Bemerkungen über

die Epithelverhältnisse des Pharynx, die wie bei den anderen von

W. untersuchten Dalyelliden gestaltet.

— (2). Untersuchungen über den Bau der parasitischen

Turbellarien aus der Familie der Dalyelliiden (Vorticeiden). III. Teil

(Schluß): Das Genus Collastoma. In: Sitzungsber. Akad. Wien,

119. Bd., p. 363—391, Figg., Taf. S. — Mehr als die Hälfte der

in Neapel untersuchten Phymosoma granulatum enthielten im

Darm bis 10 Exemplare von Collastoma minutum n.sp. V. gibt

eine eingehende Beschreibung der Art. Interessant ist, daß

zwischen den einzelnen Gattungen der parasitischen Turbellarien

und der Stellung ihrer Wirte im System gewisse Korrelationen

bestehen, und zwar so, daß die verschiedenen Arten einer Daly-

elliidengattung auch nur in näher verwandten Wirten, ja sogar

oft nur in bestimmten Organen derselben sich finden. So findet

sich Collastoma ausschließlich im Darme von Gephyreen, Ano-

»lodium in der Leibeshöhle von Holothurien, Paravortex in

Lamellibranchiern, und nur die Gattung @Graffilla bewohnt

Gastropoden und Lamellibranchier. Über die ungenügend be-

kannten Formen liegen z. T. gegenteilige Angaben vor. Auffällig

ist ferner, daß alle sicher bekannten Arten der vier Genera der

Umagillinae Parasiten von Echinodermen sind.

— (3). Beiträge zur Kenntnis der Dalyelliiden und Uma-

gilliden. In: Festschr. R. Hertwig, Jena, 2. Bd., p. 39—60, Fig.,

Taf. 2. $S. — Im ersten Kapitel behandelt W. die Epithelverhält-

nisse im Pharynx doliiformis einer Reihe von Dalyeliidenarten.

Die Eigentümlichkeit; des Pharynxepithels besteht darin, daß es

kernlos ist, d.h. daß die kernführenden Zelleiber dieses Epithels

am Hinterende des Pharynx den sog. Kropf oder die sog. Speichel-

drüsen bilden. Im zweiten Kapitel wird auf das Fehlen männ-

licher Geschlechtsdrüsen bei Graffilla parasitica Czern. aufmerksam

gemacht. Kapitel 3 behandelt die Morphologie des Geschlechts-

apparates von Syndesmis echinorum Francois. Im letzten Kapitel

wird das System der Dalyelliiden und verwandter Gattungen be-

handelt. Siebe Kap. Systematik.

— (4). Über Turbellarien. In: Verh. Zool. Bot. Ges. Wien,

60. Bd., p. 190—196 (Vortrag). S. — Verfasser gibt am Schlusse

seines Vortrages folgende systematische Übersicht:

I. Fam. Dalyellidae

a) Subf. Dalyellüinae: Vejdovskya, Provortex, Dalyellia

Jensenia (inkl. Castrella), Didymorchis, Opistomum.

b) Subf. Phaenocorinae: Paravortex, Graffilia, Phaenocora.

II. Fam. Umagillidae

a) Subf. Umagillinae: Umagilla, Syndesmis, Anoplodium;

b) Subf. Collastominae: Collastoma.

Obige Familien unterscheiden sich durcb den Mangel oder das

Vorhandensein einer Vagina als einer zweiten Verbindung (neben

dem Ductus communis) zwischen dem Receptaculum seminis und

182 Turbellaria für 1910.

dem Atrium genitale. Diese beiden Familien ersetzen die Graff-

schen Familien der Dalyelliidae und Graffillidae.

Weiß, A. (1). Tüurbellaria, Rhabdocoelida und Tricladida

paludicola.. Die Fauna Südwest-Australiens. Ergebnisse der

Hamburger südwestafrikanischen Forschungsreise 1905. Heraus-

gegeben von Prof. D. W. Michaelsen und Dr. R. Hartmeyer,

Bd. II, Lief. 22, Jena 1909. 8.

— (2). Beiträge zur Kenntnis der australischen Turbellarien.

1. Tricladen. In: Zeit. Wiss. Zool., 94. Bd., p. 541—604, Figg.,

Taf. 18—21. 8. — Die Arbeit enthält die Beschreibung von

6 neuen Arten australischer Turbellarien, deren Anatomie sich

eng an diejenige der bekannten Planarien anschließt. Interessant

ist das Vorkommen zahlreicher Sinnesgrübchen am Stirnende,

und glaubt V., daß man dieselben vielleicht als Genuscharakter

verwenden könnte.

— (3). Idem. 2. Rhabdocoelida. In‘ Ibid., 96. Bd., p. 336

— 372, T. 14, 15. 8. — V. beschreibt eingehend 2 neue Süßwasser-

turbellarien und eine neue marine Plagiostomide.

Wilhelmi, J. Nachtrag zur Mitteilung über die Polypharyngie

der Trieladen. In: Z. Anz., 35. Bd., p. 311—317, Fig. R. — W.

kritisiert die Mrazek-Steinmannsche Theorie, daß die Poly-

pharyngie durch unterdrückte Querteilung zustande gekommen

und hält an seiner Ansicht fest, daß Polypharyngie eine teratogene

Erscheinung ist, welche ursprünglich durch Verletzung der

Pharynxwurzel und Regeneration neuer Pharynge entstanden

sein kann. Dabei betont V. namentlich, daß die Teilungsebene

der sich querteilenden Planarien immer hinter dem Pharynx

liegt und nur ganz ausnahmsweise präpharyngal gelegen ist,

während, wenn die Entstehungshypothese von Mräzek-Steinmann

richtig ist, die Teilungsebene wenigstens typisch präpharyngal

sein sollte, was dann allerdings noch nicht die Lage und Anordnung

der sekundären Pharynge erklären würde.

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Beauchamp, Hofsten (2), Dendy, Hallez

(1, 3), Linton, Löhner, Markow, Peaslee, Steinmann (1), Wahl (1, 2, 3),

Weiß (1, 2, 3, 4), Wilhelmi. — Ontogenie: Hallez (1, 3), Hofsten (1),

Lepeschkin. — Physiologie: Bohn, Saint Hilaire. — Regeneration: Child

(1, 2), Keiller, Steinmann (2, 3), Wilhelmi.

Systematik

nebst g

Verzeichnis der neuen Arten und Gattungen.

(p = paludicol, m = marin, t = terricol, par. = parasitisch.)

Amblyplana graffi n.sp., 4A. mediostriata n.sp., A. tristriata n.Sp, 4.

voeltzkowi n. sp. (Comoro Islands) (t). Geba.

Übersicht nach dem Stoff. Systematik. 183

Archiloa n.g. — A. rivularis n.sp. Saint-Jean-de-Luz [Basses-Pyrönses]

(p)-. Beauchamp (2).

Bipalium fuligineum n. Sp., B. olivaceps n. Sp., B. pictum n. Sp., Madagaskar

(t). Geba.

Bothriomolus n.gen. Darm sackförmig, tief gelappt und verzweigt.

2 Ovarien vor dem Pharynx. Kopulationsorgan mit 5 Lappen, die

durch Spieulae gestützt sind, nur der vordere Lappen vom Samen-

kanal durchzogen. Eosinophile Drüsen münden in den unpaaren

Ovidukt; eyanophile Drüsen ergießen sich in eine dem Uterus der

Trieladen homogene Höhlung. Eine vordere und ventrale Sinnes-

grube steht in Beziehung zum Frontalorgan. Seitliche Wimper-

grübchen fehlen. — B. constrictus n. sp. Portel (Nordfrankreich) (m).

Hallez.

Die Familie der Bothrioplaniden wird in zwei neue Unterfamilien geteilt,

diejenige der Bothrioplaninae (Bothrioplana) und Otoplaninae (Oto-

plana, Bothriomolus). Hallez.

Castrella truncata (Abbildg.) und ihre Synonyme, s. Hofsten (2).

Collastoma Dörler. Wahl (2) gibt eine neue verbesserte Genusdiagnose.

Collastoma minutum n. sp. im Darm von Phymosoma granulatum (Neapel).

Wahl (2).

COryptocelis glandulata n. sp., Bucht von Sevastopol (m). Jakubova.

Die Gattungen der Dalyelliiden und Graffilliiden will W. in 4 Ent-

wieklungsreihen einteilen und unterscheidet 2 Familien und 4 Unter-

familien.

1. Dalyelliidae:

&) Dalyellüinae: Vejdovskya, Provortex, Dalyellia, Jensenia, Didy-

morchis, Opistomum;

b) Phaenocorinae: Paravortex, Graffilla u. Phaenocora,

2. Umagillidae:

a) Umagillinae: Umagilla, Syndesmis, Anoplodium.

b) Collastominae: Collastoma. Wahl (1, 2, 3).

Geoplana antarctica n. Sp. @G. auklandica n. sp., G. subquadrangulata Dendy

enderbyensis n. var., Subantarctic Islands of New Zealand (t). Dendy.

Graffilla gemillipara n.sp. aus der Mantelhöhle von Modiolus plicatulus,

Küste von Woods Hole (par.). Linton.

Leptoplana tremellaris n. var. taurica, Bucht von Sebastopol (m). Jakubova

Jensenia Graff ist nicht synonym Castrella Fuhrmann. Hofsten.

Mesostoma canum n. sp. Australien, Broom Hill (p). Weiß (1, 2). — Mes.

michaelseni n. sp. Australien, Boorabbin (p). Weiß (1, 3).

Paravortex cardii n. sp. aus Cardium edule, Boulogne s. mer (par.) (m).

Hallez.

Plagiostoma hartmeyeri u.sp. Australien, Sharks Bay (m). Weiß (1, 3).

Planaria böhmigi n.sp. Australien, Gooseberry Hill (p). Weiß (1, 2). —

P. graffi n.sp. Australien, Lion Mill (p). Weiß (1, 2). — P. hoernesi

n. sp. Australien, Boyanup (p). Weiß (1, 2). — P. pinguis n. sp.

Australien, Jarrahdale (p). Weiß (1, 2). — P. rava n. sp. Australien,

Brunswick (p) Weiß (1, 2). ®

184 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Polycladodes n. gen. Körper länglich, abgeplattett. Kopflappen mit

stumpfen Tentakeln. Haftgrube rundlich, sehr weit vorn, fast terminal.

Zahlreiche, in zwei Gruppen verteilte Gehirnhofaugen. Kopulations-

organ mit sehr großem, ventralem, muskulösem Drüsenorgan und

sehr langgestreckter Penisscheide. — P. alba n.sp., bei Basel (p).

Steinmann (1).

Rhynchodesmus assimilis n. Sp. Comoro Islands (t). Geba.

Stilochus vesiculatus n. Sp., St. tauricus n. sp., Bucht von Sevastopol (m).

Jakubova.

Stylochoplana taurica n. sp.? Bucht von Sevastopol (m). Jakubova.

Umagilla n. g. Dalyelliide mit grossem, nahe dem Vorderende des Körpers

gelegenen Pharynx doliiformis, kompakten paarigen Hoden, verzweig-

ten Dotterstöcken, unverästelten paarigen Keimstöcken und mit

einer nahe dem Hinterende befindlichen Geschlechtsöffnung.

Wahl (1). — U. forskalensis n. sp. aus Holothuria forskalüi, Adria bei

Umago und Neapel (par.). Wahl (1).

Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes,

Acanthocephales für 1910.

Von

Dr. Otto Fuhrmann, Neuchätel.

I. Trematodes.

Publikationen und Referate.

Die mit * bezeichneten Arbeiten waren dem Referenten nicht zugänglich

S.— siehe in Kapitel Systematik.

(Inhaltsverzeichnis am Schluss des Berichts)

Andre, J. (1). Zur Morphologie des Nervensystems von

Polystomum integerrimum. In: Zeit. wiss. Z., 95. Bd., p. 191

—202, 11 Fig. — V. fand, daß das Nervensystem der P. inte-

gerrimum demjenigen eines rhabdocoelen Turbellars ähnelt. Das

Gehirn besteht aus zwei großen seitlich vom Pharynx gelegenen

birnförmigen Ganglien, die vorn und dorsal vom Pharynx durch

ein breites Nervenband verbunden sind. Nach vorn sowie nach

hinten ziehen drei Paar Nerven.

— (2). Die Augen von Polystomum integerrimum Froel.

Ibid. p. 203—220, 13 Figg. — Die Untersuchung der Augen wird

dadurch bedeutend erschwert, daß das Pigment des Pigment-

bechers sich leicht löst und so das Auffinden der Sehzellen fast

unmöglich wird. Die zwei Paar Augen bestehen aus je einem

Pigmentbecher, einer Sinneszelle mit Stiftehenkappe, von welcher

Publikationen und Referate. 185

der Nerv, durch eine gangliöse Anschwellung durchziehend, zu

der dorsalen Kommissur der beiden Hirnhälften verläuft. Das

Auge dieses Endoparasiten zeigt also die Struktur eines funktions-

fähigen Plathelminthenauges. Auffallend ist die Resistenz des

Pigmentbechers, da derselbe bei freilebenden Turbellarien in

kurzer Zeit verloren geht, wenn man die Tiere dem Tageslicht

entzieht.

— (3). Über den Augenfleck des Miracidium von Fasciola

hepatica. In: Zool. Anz., 36. Bd., p. 400—405, 7 Figg. — Der

x förmige Augenfleck des Miracidiums besteht aus 4 einzelnen

Bechern und 4 Sehzellen. Der große Sehzellkern findet sich in

dem außerhalb des Pigmentbechers gelegenen Teil der Sehzelle;

dem Becher zugekehrt ist ein kugeliger Binnenkörper, wie solchen

bei Lumbriciden und Hirudineen beschrieben. Der Verlauf der

Nervenfasern ist, wie ihn Ortmann darstellt; die 4 Nervenfibrillen

der Sehzellen scheinen das Pigment zu durchbohren, gehen aber

in Wirklichkeit zwischen den Pigmentbechern durch.

Blaizot, L. Un nouveau Trematode Cephalogonimus europaeus

parasite intestinal de Rana esculenta L. In: Bull. soc. zocl. de

France, T.XXXV, 1910, p. 34—38, 1 Fig. $S. — Vergleicht den

Parasiten mit C. americanus St. 1902.

Blochmann, F. Sterben von Aquarienfischen durch Einwan-

derung von Cercaria fissicauda La Val. In: Centralbl. f. Bakt.

Paras., Bd. 56, 1910, p. 47”—49. — Sehr zahlreiche Exemplare

von Üercaria jissicauda in einem Aquarium veranlaßten in kurzer

Zeit den Tod von Makropoden, Gobio fluviatilis und Girardinus.

Es zeigte sich, daß diese Trematodenlarven in den Körper ein-

drangen, wo sie im Herz, im Gehirn und in den Kammern und

im Glaskörper des Auges gefunden wurden. Die wandernden

Würmer veranlaßten Extravasate.

Braun, M. Leberegel (Fasciola hepatica L.) aus dem Feld-

hasen. In: Königsberg Schr. physik. Ges., Bd. 50, 1909,

p. 97—59.

*Ceno, A. An bilharziose en Tunisie. In: Bull. soc. path.

exot. Paris, vol. 2, 1909, p. 486—488.

Daday, E.v. Die Süßwasser-Mikrofauna Deutsch-Ost-

Afrikas. In: Zoologica, Heft 59, 1910. $S. — Beschreibt 2 neue

Trematodenlarven Cercaria aculeata nova larva und Cercaria

furcata nova larva. Da die beiden Namen bereits vergeben, schlägt

V.in einem Nachtrag p. 288 neue Namen vor, und zwar für erstere

C. hoplophora und für letztere C. schizocerca. C. hoplophora ist

interessant, weil aus der Mundöffnung der Larve ein kräftiges,

pfriemenförmiges Kutikularstäbchen hervorragt. Es ist dies eine

Vorrichtung, die offenbar dazu dient, in den Wirt einzudringen.

V. glaubt, daß wegen des Fehlens der Saugnäpfe die Cercaria die

Larve eines Paramphistomiden ist. Die zweite Art ist interessant

durch den langen, tief zweigespaltenen Schwanzanhang.

186 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Dehorne. Nouvelle interpretation de la reduction dans le

Zoogonus mirus. In: C. R. Acad. Sc. Paris, T. 151, p. 459—462.

— V. diskutiert die bei Zoogonus erhaltenen Resultate von Gold-

schmidt, Schreiner und Gregoire. An Hand der Arbeiten und Ab-

bildungen dieser Autoren, die er mit den von ihm an Sabellaria

erhaltenen Resultaten vergleicht und identisch findet, kommt er

zum Schlusse, daß obige Autoren ihre Beobachtungen falsch

interpretiert haben. Nach D. existiert im Ei von Zoogonus ebenso-

wenig wie bei demjenigen von Sabellaria eine Konjugation der

Chromosomen. Die Zahl der reduzierten Chromosomen im reifen

Ei ist nicht 12 oder 6, wie Schreiner und Gregoire annehmen,

sondern 3. s. Gregoire.

Dingler, M. Über die Spermatogenese des Dicrocoelium

lanceatum Stil. et Hass. In: Arch. Zellforsch., Leipzig, 4. Bd.,

p. 672—712, 4 Figg., Taf. 31—34. — Die Kerne der Ursamenzellen

und Spermatogonien zeigen 20 längliche Chromosomen von un-

gleicher Größe (4 sind meist größer als die übrigen), die sich der

Länge nach teilen. Bei der letzten Spermatogonienteilung bilden

sich 20 einreihige Fäden, die sich durch parallele Konjugation zu

10 doppelreihigen vereinigen. Diese verwandeln sich in 10 bi-

valente Chromosomen von sehr verschiedener Form und Größe.

Die zweite Reifungsteilung geht in bekannter Weise vor sich.

Nach dem Ruhestadium des Spermatidenkernes beginnt die

Streckung, die zur definitiven Form des Spermienkopfes führt.

Im Plasma der Spermatogonien, Spermatocyten und Sperma-

tiden finden sich fadenförmige, gleichmäßig dicke und homogene

Mitochondrien, deren Abstammung aus dem Kern nirgends er-

sichtlich. Ein großer Teil derselben bleibt im Plasma des Rest-

körpers zurück und wird nicht in das Spermium aufgenommen.

Aus jeder Spermatogonie I. Ordnung geht schließlich ein 32zelliges

Spermienbündel hervor.

Garrison, Ph. E. A new intestinal Trematode of man (Fascio-

letta ilocana nov.g. sp. nov.). Philippine I. Sci. Manila (B. Medical

Sciences), vol. 3, 1908, p. 385—393, pl. 8.

Glaesner, L. Zur Embryonalentwicklung von Amphistomum

subelavatum Rud. (Diplodiscus subel. Dies.). In: Z. Anz., 55. Bd.,

1910, p. 365—372, 10 Figg. — Entgegen Bresslau und Gold-

schmidt fand V., daß die Hüllmembran aus embryonalen Bildungs-

zellen entsteht.

Gonder, R. Ityogonimus lorum (Dujardin). In: Centralbl.

Bakt., 1. Abth., 53. Bd., Orig. p. 169—174, 3 Fig., Taf. — V.

untersucht eingehend diesen seltenen, im Darm des Maulwurfs

sich findenden Trematoden. Es ist /. lorum ein pathogener Tre-

matode, der den Tod der Maulwürfe verursacht. An den An-

heftungsstellen im Darm verursacht er eine starke Entzündung.

Die Form gehört in die Familie der Heterolopinae Braun. G.

berichtet noch über schwere Erkrankungen bei Zebra, Nerun

durch Gastrodiscus aegyptiacus.

Publikationen und Referate. 187

Grögoire, V. La reduction dans Zoogonus mirus Lss. et le

„Primärtypus“. In: Cellule, T. 25, 1909, p. 243—287, 6 Figg.

2 Taf. — V. untersucht, wie A. u. K. E. Schneider (s. d. Bericht

1909), die Präparate Goldschmidts über die Eireifung von Zoogonus,

um zu einer dritten, von obigen Autoren verschiedenen Auffassung

zu kommen! Nach G. ist die Zahl der Chromosomen 12 (Gold-

schmidt 10, Schreiner 20, 22, 24 oder 26), die reduzierte Zahl 6.

Die Reduktion der Chromosomen ist bei Zoogonus die überall

beobachtete und der sog. „Primärtypus‘ existiert nicht (s. auch

Dehorne).

Johnstone, J. Internal parasites of Fishes from the Irish

Sea. In: Rep. Lancash. Sea-Fish. Lab. Liverpool, p. 16—37,

11 Figg. — V. beschreibt in dieser Arbeit Lebouria idonea Nicoll,

Prosthecobothrium dujardinii (v. Ben.), Echeneibothrium variabile

van Ben., Ech. dubium v. Ben., Rhinobothrium minimum v. Ben.

Katsurada, F. u. T. Hashegawa. Bemerkungen zur Lebens-

geschichte des Schistosomum japonicum Katsurada. In: Centralbl.

Bakt., 1. Abt., 53. Bd., Orig. p. 519—522, Fig. — In diesem

interessanten Aufsatz wird zunächst konstatiert, daß die in den

unter Wasser gesetzten Feldern und in den Kanälen arbeitenden

Leute von einem äußerst unangenehmen Jucken befallen werden,

worauf dann Effloreszenzen an denjenigen Stellen der Haut ent-

stehen, die mit dem Wasser in Berührung gekommen. Es sind

die unteren Extremitäten die Eintrittsstellen der Schistosomen-

brut. Die tierexperimentellen Untersuchungen wurden bei

Nishidöi, einer besonders stark verseuchten Ortschaft, an Katzen

und jungen Hunden ausgeführt. Obwohl die Versuchstiere nur

anderthalb Stunden ins Reisfeld eingetaucht wurden, waren doch

nach einem Monate mehrere Tausend von erwachsenen Würmern

vorhanden. Diese Tatsache macht es wahrscheinlich, daß das

Miracidium jedenfalls im Tierkörper zu einer Sporooyste aus-

wächst, die zahlreiche junge Würmer produziert. Die mit Sorg-

falt ausgeführten Experimente zeigten, daß die Schistosomenbrut

durch die Haut eindringt und in nicht ganz einem Monate sich

bis zum geschlechtsreifen Zustande entwickelt. Die Wurmbrut

schlüpft in 30° warmem Wasser schon nach 1—3 Stunden aus,

doch beträgt die Lebensdauer der Miracidien nicht mehr als

24 Stunden. Da das Sch. japonicum wie die ägyptische Art gegen

Salzsäure sehr empfindlich ist, ist es äußerst unwahrscheinlich,

daß das Miracidium einen gesunden Magen zu passieren vermag;

schon deshalb ist ein Eindringen durch die Haut wahrscheinlich.

Nach Fujinami soll auch bei Rindern Hautinfektion durch Sch.

japonicum vorkommen. Prof. Matsuura infizierte sich selbst

durch Eintauchen seiner Extremitäten in infiziertes Wasser.

Kossack, W. Neue Distomen. In: Centralbl. Bakt., 1. Abt.,

56. Bd., Orig. p. 114—120, 4 Figg. $. — V. beschreibt den Ver-

treter eines neuen Genus, das er Paradistomum nennt und das

in die Gruppe der Dicrocöliinen gehört und Platynosomum am

188 Trematodes, Centodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

nächsten steht. In das neue Genus gehört vielleicht auch Di-

stomum mutabile Molin. Über die neuen Arten siehe Kap. $.

Lebour, M. (1). Acanthopsolus lageniformis n. sp. A Trematode

in the Catfish. In: Northumberland Sea Fisheries Commitee.

Report of the scientific Investigations, 1910, p. 29—35, 1 Taf. S.

— (2). Trematodes of the Northumberland Coast, No. II.

In: Trans. Nat. Hist. Soc. Newcastle, ser. 2, Bd. 3, p. 24—45,

3 Taf.

— (3). Trematodes of the Northumberland Coast, 3. A

preliminary note on Echinostephilla virgula, a new Trematode in

Turnstone. In: Trans. N. H. Soc. Northumberland, Newcastle,

(2), vol. 3, 1909, p. 440—445, Taf. 8.

Leiper, T.R. The Entozoa of the Hippopotamus. Proceed.

of the Zool. Soc. of London, 1910, p. 233—251 (Fig. 26—35). 8.

— L. beschreibt eine Reihe neuer Trematoden. Fasciola nyanzae

n.sp. wurde in den Lebergängen gefunden, während die anderen

Arten sich im Darm, hauptsächlich im Magen fanden. Außer

den im Kap. Systematik verzeichneten neuen Arten wird noch

Paramphistomum gigantccotyle Brandes beschrieben und ab-

gebildet und Par. cotylophorum Fischoeder erwähnt.

Linton, Edwin (1). Helminth Fauna of the Dry Tortugas.

II. Trematodes. In: Carnegie Institution of Washington, No. 133,

1910, 98 pp. 28 Taf. — In der reich illustrierten Arbeit werden

nicht weniger als 30 neue Genera und 46 neue Trematodenarten

beschrieben. Ein Bestimmungsschlüssel erlaubt die Bestimmung

der in der Arbeit beschriebenen Genera und Arten. s. Kapitel

Systematik. Von bereits bekannten Arten werden folgende be-

schrieben und abgebildet: Cricocephalus delitescens Looss, C'ymato-

carpus undulatus Looss, Orchidasma amphiorchis (Braun) Looss,

Lepocreadium trulla (Linton), L. levenseni (Linton), Sterrhurus

monticellii (Linton), St. fusiformis (Lühe), Siphodera (Monostomum)

vinaledwordsii (Linton) und Aspidogaster ringeus Linton.

— {2). Trematodes of the Dry Tortugas. Science, N.S.

vol. 33, p. 303, 1911. 8. — Zwei Genusnamen obiger Arbeit

werden durch andere Namen ersetzt.

Low, R. Bruce. Fasciolidae in Pancreas. In: Journ. Trop.

Med. Hyg. London, vol. 12, 1909, p. 208—209. — V. gibt nur die

Krankengeschichte und Resultat der Sektion.

Matar6, F. Über eine neue Tetracotyle im Hirn von Phozinus

laevis. In: Zeitschr. f. wiss. Zool., Bd. 94, 1910, p. 483—540,

Taf. XVII, 3 Figg. im Text. — Am Schluß einer längeren ge-

schichtlichen Einleitung gibt V. eine Zusammenstellung von

23 Arten von Teiracoiyle. Die mit Tetracotyle infizierten Fische

stammten von der Lenzerheide bei Chur. Die Parasiten fanden

sich im Gehirn und in der Schädelhöhle. Trotzdem 200—400

dieser Trematodenlarven sich im Gehirn fanden, ließen sich keine

pathologischen Veränderungen konstatieren. Sie scheinen die

nervöse Substanz nicht anzugreifen, sondern es hatte den An-

Publikationen und Referate. 189

schein, als ob sie die schwammig faserige Nervenmasse einfach

beiseite drängen; übrigens finder sich die große Mehrzahl der

Parasiten im Innern der Ventrikel namentlich im Hohlraum der

3. Hirnblase. In der Medulla oblongata und im Anfang des Rücken-

markes sind sie nur vereinzelt zu treffen. Die Hauptnahrung der

Larven scheint aus roten Blutkörperchen zu bestehen. M. gibt

eine eingehende Schilderung der Anatomie und findet Anklänge

an ektoparasitische Trematoden.

Monticelli, Fr. Sav. Calinella craneola, n.g.n.sp. Trematode

nouveau de la famille des Udonellidae provenant des Campagnes

de S. A. S. le Prince de Monaco. In: Annales de l’Institut oc&ano-

graphique, T.I, Fasc.4, 1910, 9pp., 1 Taf. 8. — Diese neue

Ectotrematodenform fand sich auf einem parasitischen Copepoden

Alebion carchariae Kroy. Sie gehört in die Familie der Udonellidae.

Das neue Genus kann nicht mit den übrigen Genera der Familie

verglichen werden, da dieselben mit Ausnahme von Udonella nur

sehr mangelhaft bekannt sind. M. glaubt, daß im Genus Udonella

sich Formen finden, welche wohl in das neue Genus Calinella ge-

hören. Anderseits wird sich herausstellen, daß die als Udonella

caligorum bezeichneten Formen, wenn sie auf verschiedenen

Arten von Caligus parasitieren, wohl in vielen Fällen verschiedenen

Arten angehören.

Mräzek, Al. Eine Distomenceyste im Blutgefäße eines Oligo-

chäten. In: Centralbl: Bakt., 1. Abt., 53. Bd., p. 522—524, Fig. —

V. betrachtet das Vorkommen einer Trematodenlarve im Blut-

gofäßsystem von Rhynchelmis als ein zufälliges. Ebenso faßt er

encystierte Distomen in Tricladen als verirrte Parasiten auf.

*Nieoll, W. (1). On Gasterostomum tergestinum Stossich. In:

Annuar. Mus. Z. Napoli, (2), vol. 3, No. 14. 3 pp., Fig.

— (2). A contribution towards a Knowledge of the Entozoa

of british marine fishes. In: Ann. Mag. Nat. Hist. London, vol. 4,

1909, p. 1-25, pl.1. 8.

*Nicolle, €., Catouillard, G. et Gobert, E.E Enquete sur la

frequence et la repartition de la bilharziose humaine en Tunisie.

In: Arch. Inst. Pasteur Tunis, vol. 3, 1908, p. 126—132.

Noc, F. La bilharziose a la Martinique. In: Bull. Soc. Path.

fixot., T.&,.p. 20.

Odhner, Th. (1). Stichocotyle nephropis J. T. Cunningham,

ein aberranter 'Trematode der Digenenfamilie Aspidogastridae.

In: Svenska Akad. Handl., 45. Bd., No.3, 16 p, 5 Figg., 2 Taf.

— Eine eingehende Beschreibung des in den Gallengängen von

Raja clavata lebenden Trematoden, der bis 115 mm lang wird

und ventral in einer Reihe 24—30 Saugnäpfe trägt, die, mit Aus-

nahme der beiden ersten, die kreisrund sind, schmale Querwülste

mit Schlitzen darstellen. Die langgestreckte Körperform, die

einreihige Anordnung der Saugnäpfe und der unpaare Dotterstock

sind Anpassungen an das Leben in den Gallengängen.

190 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

— (2). Dicrocoelium dendriticum Rud., der „richtige“ Name

des Kleinen Leberegels. In: Z. Anz., 35. Bd., p. 317—318. —

V. weist nach, daß Distoma dendriticum (Rud.) aus dem Darm von

Xiphias gladius identisch ist mit Distoma lanceolatum. Der obige

Wirt wurde durch Spedalieri Rudolphi irrtümlich angegeben; so

muß also der von Stiles u. Hassall für obigen Parasiten angegebene

Artname D. lanceatum Stiles u. Hassall fallen und der allbekannte

Leberparasit des Schafes nun D. dendriticum (Rud.) heißen.

— (8). Microlistrum Braun, eine angeblicbe Distomen-

gattung. In: Ibid. p. 353—356, Fig.— Das von Braun an die Di-

stomengattung Glossidium Lss. angeschlossene Genus Microlistrum

ist nach dem V. eine Monostomidengattung. Was Braun bei den

Arten des Genus als einen Bauchsaugnapt beschreibt, ist eine

bestachelte Bildung des Genitalsinus, welche dem „stacheligen

Körper‘ von Galactosomum lacteum Jägerskiöld entspricht. Ent-

gegen Braun fand V. keinen Cirrusbeutel. Es könnte sich eventuell

herausstellen, daß Microlistrum identisch ist mit Galactosomum.

— (4). Gigantobilharzia acolylea n.g. n. sp., ein mit den

Bilharzien verwandter Blutparasit von enormer Länge. In: Tbid.

p. 380—385, 4 Figg. S. — O. fand in ca. 30 der Heringsmöven

einen überaus interessanten getrenntgeschlechtlichen Trematoden,

welcher die Darmvenen bewohnt. Das neue Genus ist inter-

essant, weil ihm Saugnäpfe und Hautbewaffnung in beiden Ge-

schlechtern fehlen. Das Männchen erreicht eine Länge von’ 140

—165 mm. Das Hinterende zeigt bei beiden Geschlechtern zwei

seitlich hinausragende Lappen, die bei dem Fehlen der Haft-

organe vielleicht zur Verankerung der Würmer in den Gefäßen

dienen. Anatomisch interessant ist, daß die beiden Darmschenkel

hinter dem Cirrusbeutel zu einem unpaaren Darmkanal mit ziek-

zackförmigem Verlauf sich vereinigen. Zahlreiche Hodenbläschen

münden in das mediane Vas deferens.. Das Weibchen ist nur

30—35 mm lang. Wie bei Bilharziella ist nie mehr als ein Ei im

Uterus. Keimstock stark gewunden, Dotterstock unpaar.

— (5). Über Distomen, welche den Exkretionsporus als Anus

verwenden können. In: Ibid. p. 432—433. — Wie Leiper richtig

beobachtet, münden bei Balfouria monogama Leiper die beiden

Darmschenkel an ihren Hinterenden in den hintersten Teil der

Exkretionsblase aus. Das gleiche konstatierte OÖ. auch bei dem

verwandten Echinostomum ferox Rud., d.h. bei einer südamerika-

nischen Parallelform. Der Porus muß als Anus funktionieren, weil

sonst diese in Cysten lebenden Trematoden die Fäkalien durch

den Mund in die Cyste entleeren müßten, während sie so einfach

das Hinterende aus dem Cystenporus in den Darm strecken und

die Exkremente so entleeren können. Es ist diese Disposition

eine zweckmäßige Anpassung des mit dem Darm durch einen

feinen Porus verbundenen Cysten bewohnenden Parasiten.

— (6). Nordostafrikanische Trematoden, größtenteils vom

Weißen Nil. I. Fascioliden. In: Res. Swed. zool. exp. to Egypt

Publikationen und Referate. 191

and the White Nile 1901, under the direction of L. A. Jägerskiöld,

1910, 170 pp., 6 Taf., 14 Textfigg. $S. — Diese wichtige Arbeit

enthält die eingehende Beschreibung einer großen Zahl neuer

Genera und Arten. Die Studie enthält so viel des Neuen und

Interessanten, daß es nicht möglich ist, dasselbe in dem engen

Rahmen dieses Referates hervorzuheben. Nach O. bilden die

Gattungen Callodistomum, Cholepotes und T'haumatocotyle (mit

seinen interessanten akzessorischen Saugnapfbildungen) eine be-

sondere natürliche Unterfamilie, welcher er den Namen Callo-

distominae gibt. O. sagt, daß nach seinen Erfahrungen die besten

Probiersteine einer wirklichen Verwandtschaft in den Eiern und

der Konfiguration der Exkretionsblase zu erblicken seien, weil

sie mehr konservative Bildungen sind, die sich bei oft recht ein-

greifenden Verschiebungen des Genitalapparates in der Regel

ziemlich unverändert erhalten. Nach O. ist die ganze Distomen-

fauna der Mundhöhle, der Luftwege und der Lunge der Reptilien

und Amphibien mit einziger Ausnahme der Gattung Halipegus

Lss. von Lepoderma in letzter Hand herzuleiten. Über die neuen

Familien der Lepodermatidae u. Lecithodendriidae, Dicrocoeliidae

s. Kap. 8. O. bespricht eingehend die von Dietz begründete

Familie der Echinostomidae und unterzieht sie einer strengen

Kritik; er kommt dabei zum Schlusse, daß das System dieser

Familie einer sicheren Grundlage völlig entbehrt. Die meisten

Gattungsdiagnosen von Dietz sind ganz ungenügend, indem sie

die Hauptmerkmale gar nicht erwähnen oder nicht genügend als

solche hervorheben. Anhangsweise werden dann zu einer Reihe

von Echinostomidengattungen von Dietz, nach Untersuchung des

Originalmateriales, Bemerkungen gemacht, worauf O. ein eigenes

System der Echinostomidae entwirft; s. Kap. S. Zum Schlusse

macht V. Bemerkungen über die Braunsche Familie der Opisthor-

chiidae und über die Allocreadinen. Die Fischdistomen der Gat-

tungen Stephanochasmus Lss. Dihemistephanus Lss. u. Acantho-

psolus Odhn. bilden nach OÖ. ebenfalls eine natürliche Familie,

desgleichen die Psilostomen. Die Familie der Fasciolidae s. str,

mit dem Prototypus der Distomen Fasciola hepatica (L.) muß in

drei Unterfamilien aufgeteilt werden; s. Kap. Ss. Von bekannten

Arten werden folgende beschrieben und auch abgebildet: Thau-

matocotyle pulvinata (Brn.), Astiotrema reniferum Lss., A. im-

pletum Lss., Styphlodora similis (Sons.), Leptophallus nigrovenosus

(Bellingh.), LDecithodendrium sphaerula Lss., Anchitrema san-

guineum (Sons.), Brachycoelium crassicolle (Rud.), Echinostomum

ramosum Nons., Ech. bilobum (Bud.), Ech. crocodili (Poir.), Ech.

africanum Stiles, Ech. bursicola (Crepl.), Ech. beleocephalum

(v. Linst.), Zch. liliputanum Lss., Ech. denticulatum Rud., Ech.

pendulum Lss., Ech. mordax Lss., Pegosomum spiniferum RBatz,

Balfouria monogama Leiper. Nur einen Vorwurf hätte ich der so

wertvollen Arbeit Odhners zu machen, und zwar den, daß ein

detailliertes alphabetisches Register fehlt, und so ein Auffinden

192 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

der so überaus zahlreichen Dokumente, welche überall im Text

eingestreut sind, sehr schwierig ist.

Osborn, H. L. On the structure of Oryptogonimus n. g. chyli

n. sp. an aberrant Distome, from Fishes of Michigan and New York.

In: Journ. Exper. Z., Philadelphia, vol. 9, p. 517—536, 7 Figg.

S. — Diese interessante Trematodenart wurde im Magen und

Darm von Miecropterus dolomieu und Ambloplytes rupestris aus

Lake Chantanqua, (New York) und St. Mary’s River, (Michigan),

gefunden. Cr. ch. ist nur 0,5—1,3 mm lang und zeigt als be-

sondere Eigentümlichkeit zwei direkt hintereinander liegende

Bauchsaugnäpfe, zwischen welchen die Geschlechtsorgane aus-

münden. Uterus und Vas deferens vereinigen sich in einem Atrium,

von dem aus ein kurzer Kanal zwischen den obgenannten Saug-

näpfen ausmündet. Die Geschlechtsöffnung ist also in der Einzahl.

Ein Cirrusbeutel existiert nicht. Diese und noch einige andere

weniger wichtige Eigentümlichkeiten sind es, welche es dem Ver-

fasser unmöglich machen, das neue Genus in einer der bestehenden

Trematodenfamilien unterzubringen.

Peake, E. Ü. Three cases of infection by Schistosomum japoni-

cum. The Journal of trop. Med. and Hyg., vol. XII, 1909, p. 64

—0, 7 Figg. — Namentlich medizinisch. Untersuchte auch die

Eier und Miracidien.

Pirajä da Silva (1). La schistosomose & Bahia. In: Arch. Parasit.,

Paris, T. 13, 1909, p. 283—302, 11 Figg. — In 20 Fällen konnte

V. in den Exkrementen (sie kommen nie im Urin vor) eigentüm-

liche Eier feststellen. In 3 Autopsien fanden sich in der Pfortader

und ihren Verzweigungen zahlreiche Schistosomen, die V. als

Sch. Mansoni bestimmt, die aber vielleicht einer neuen Art (Sch.

americana) angehören.

—(2). Contribution to the study of Schistosomiasis in Bahia,

Brazil. The Journal of trop. Med. and Hyg., vol. XII, 1909, p.

159—166. — Es handelt sich um Sch. mansoni. Hauptsächlich

medizinisch.

Poirier, J. Trömatodes parasites de l’Elephant d’Afrique.

In: C. R. Ass. Franc. Av. Se., 37. Sess., p. 580—582, 5 Figg. 8.

— Beschreibt zwei neue Trematoden, welche aber offenbar nicht

in die richtigen Genera gestellt wurden.

Pratt, H.S. (1). Monocotyle floridana, a new monogenetic

Trematode. In: Carnegie Inst. Washington, Publ. No. 133,

p. 1-9, 11 Figg. 8.

— (2). Parallel development in tropical Trematodes. In:

Science, (2), vol. 31, p. 471—472.

Seurat, L.G. (1). Un Trematode parasite des Pe&toncles des

environs d’Alger. In: Bull. du Musdum nat. d’hist. nat. Paris,

Annee 1909, p. 361—362. — Findet in Cysten auf den Kiemen von

Pectunculus violacescens eine Distomenlarve, die nicht benannt wird.

— (2). Sur la presence du Crossodera (Distoma) excisum

Rud., dans la baie d’Alger. In: Ibid. p. 362—363. — Findet sich

Publikationen und Referate. 193

häufig bei jungen Exemplaren von Scomber scomber, selten bei den

ausgewachsenen Individuen.

*Ssinitzin, D. Th. Studien über die Phylogenie der Trema-

toden. 3.'Cercaria plicata mihi und Tetracotyle Brandes als di-

morphe Larven der Distomiden, nebst einer Hypothese über die

Entstehung des Wirtswechsels bei den Trematoden. In: Biol.

Zeit., Moskau, 1. Bd., p. 106—144, 169—190, 2 Taf.

Stiles, W.Ch. and Goldberger, J. A Study of the anatomy

of Watsonius (n.g.) Watsoni of man and of nineteen allied species

of mammalian Trematode worms of the Superfamily Par-

amphistomoidea, In: Hygienic Laboratory, Bull. N0.60, 1910, 264 pp.

205 Figg. S. — Die anatomisch sehr interessante Gruppe der

Paramphistomiden wurde von den V. sehr eingehend studiert und

in eine Reihe von neuen Familien, Genera und Subgenera auf-

geteilt; die Familie der Paramphistomiden selbst wurde zur Super-

familie erhoben. Die Klassifikation der Superfamilie der Par-

amphistomiden ist nach St. u. G. folgendermaßen zu gestalten:

Es werden drei neue Familien geschaffen, die Gastrothylacidae,

Paramphisiomidae und Gastrodiscidae. Die Gastrothylacidae um-

fassen folgende Genera und Subgenera: Gastrothylax Poirier,

Fischoederius n.g., Carmyerius n.g. (mit den neuen Subgenera

Synethe, Carmyerius, Gastrothylacias, Gastrothylacidos und

Thylogaster) und Wellmanius n.g. Die Familie der Paramphi-

stomidae wird zunächst in die Subfamilie der Paramphistominae,

Stephanopharynginae und Cladorchinae geteilt. Erstere umfaßt

folgende Genera und Subgenera: Cotylophoron n.g., Paramphi-

stomum Fischoeder (mit den neuen Subgenera Paramphistomum,

Orthocoelium, Bothriophoron, Cauliorchis). Die Stephanopharyn-

ginae bestehen nur aus Stephanopharynx Fischoeder. Die Clador-

chinae Fischoeder umfassen Cladorchis Fischoeder (mit den Sub-

genera Üladorchis Fischoeder, Stichorchis Fischoeder), Taxorchis

Fischoeder, Pseudodiscus Sonsino (mit den Subgenera Pseudo-

discus Sonsino, Hawkesius n.subg.), Watsonius n.g., Pseudo-

cladorchis Daday, Pfenderius n.g., Microrchis Daday, Chiorchis

Fischoeder, Balanorchis Fischoeder, Diplodiscus Dies, Opistho-

discus Cohn, Catadiscus Cohn. Die Familie der G@astrodiscidae

n.fam. umfaßt nur die Genera Homalogaster Poirier, Gastro-

discus Leuckart. Über die typischen Arten, sowie die neuen

Formen und deren Wirte s. Kap. Systematik. Von schon be-

kannten Arten werden folgende näher untersucht und abgebildet:

Pseudodiscus stanleyii (Cobbold), P. collinsii (Cobbold), P. haw-

kesii (Cobbold), Watsonius watsoni (Conyngham), Pfenderius

papillatus Cobbold, Homalogaster philippinensis Stiles u. Gold-

berger. Bestimmungstabellen für Genera und Arten resumieren

die wichtigsten Charaktere der formenreichen Gruppe. Bei der

Beschreibung der einzelnen Arten führten die V. eine neue topo-

graphische Terminologie ein, indem der Körper der Trematoden

von Stiles durch Längslinien in Felder, durch Querlinien in

Archiv in us eohlenie 13

194 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

5 Zonen eingeteilt wird. ‚Areas‘ werden Regionen benannt, die

nicht von geraden Linien (so z. B. von Organen, Darmschenkel)

begrenzt sind. V. hat, wie er sagt, mit Erfolg versucht, auf Grund

dieser Terminologie Bestimmungsschlüssel für die Distomeen auf-

zustellen. Über den Wert dieser neuen Terminologie wird man

sich erst aussprechen können, wenn obige Bestimmungsschlüssel

publiziert sind.

*Ussing, Hj. ZDeucochloridium paradoxum Carus. In: Flora

og Fauna Kobenhavn, 1909, p. 6—8.

Wallin, J.E. A new species of the Trematode Genus Allo-

creadium, with a revision of the genus and a key to the sub-

family Allocreadiinae. In: Trans. Amer. Micr. Soc., vol. 29, p. 50

—66, 2 Taf. S.

Ward, H.B. Fasciolopsis Buskii, F. Rathuisi and related

species in China. In: Trans. Amer. Micr. Soc., vol. 29, p. 1—16,

2 Taf. — V. charakterisiert die beiden Formen, er glaubt, eine

neue Art aufstellen zu müssen, die zwischen den beiden obigen

Formen steht und welche er F. Goddardi (aus China) zu nennen

gedenkt. Sie soll anderweitig beschrieben werden.

Willem, V. Recherches sur les nephridies. In: Mem. Acad.

Sc. Belg. (2), T. 2, No. 5, 68 pp., 9 Figg., 4 Taf. — V. untersucht

von Plathelminthen das Exkretionssystems von Distomum_ clavi-

gerum Rud. und außerdem die Nephridien der Rotiferen, Oligo-

chaeten, Hirudineen, Bryozoen und Mollusken.

Wolffhügel, K. Sobre Trematodes Fasciola hepatica L. y

Prosthogonimus cuneatus(Rud.) parasitos de los animales domesticos

de la republica argentina. In: Centro de Estudiantes de agronomia

y Veterinaria, Ano 1, No. 7, 1909, 8 pp.

Zarnick, B. Über den Entwicklungszyklus von Dicrocoelium

lanceatum (Distomum lanceolatum). Sitzungsber. phys. med. Ges.

Würzburg, 1910, No. 2, p. 27—31, 1 Fig. — V. fand bei einem

stark infizierten Schaf eine Unzahl winziger junger Individuen

sowie zwei geschwänzte Cercarien. Dieser Befund erlaubt Schlüsse

über den bis jetzt unbekannten Entwicklungszyklus. Die ge-

schwänzte Cercarie in der Leber läßt darauf schließen, daß die

Infektion mit Dierocoelium durch Aufnahme von cercarienhaltigem

Wasser erfolgt. Entgegen der Ansicht von Leuckart besteht also

nur ein Zwischenwirt. Dieser Zwischenwirt ist, wie schon Leuckart

vermutet, eine Landschnecke, denn die Miraciden schlüpfen nicht

aus, sondern bleiben in der Schale, und die Eier werden vom

Zwischenwirt aufgenommen. Bei der Entwicklung der Cercarie

in der Leber ist interessant, daß der Eierstock stets früher reif

wird als der Hoden. Wie Henneguy und Goldschmidt gezeigt,

läßt sich bei den jungen D. lanceatum überaus deutlich erkennen,

daß der Dotterstock Schalenmaterial in. Form gelber licht-

brechender Körnchen liefert.

Übersicht nach dem Stoff. Systematik. 195

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Alle Arbeiten mit Beschreibungen neuer

oder bekannter Arten enthalten auch anatomische und histologische An-

gaben. Speziell mit Anatomie und Histologie befassen sich: Andre (1,

2, 3), Dingler, Gonder, Odhner (1, 4, 5, 6), Osborn, Stiles u. Goldberger. —

Entwieklungsgeschichte: Dehorne,Glaesner, Gregoire, Katsurada und

Hashegawa, Matre, Zarnick.

Systematik.

Neue Familien, Genera, Arten und Synonyme.

Acanthopsolus lageniformis n. sp. aus Anarrhichas lupus. Lebour.

Allechinostomum n.g. Odhner (6).

Allocreadium colligatum n. sp. aus Latrus mixtus für Distomum fasciatum Rud.

Stossich. Wallin. — A. lobatum n. sp. aus Semotilus bullaris. Wallin.

— A. mormyri (Stoss.) für Distomum mormyri Stoss. Wallin. — 4.

pallens (Rud.) für Distomum pallens Rud. Wallin.

Amphistomum bicaudatum n. sp. aus Elephas africanus. Poirier.

Antorchis n. g. an Stelle des bereits vergebenen Namens Mesorchis Linton

(1). Linton (2).

Azygia sebago n. sp. aus Salmo sebago. Ward (1) (Allg.).

Barisomum n.g. Linton (1). — B. erubescens n. sp. aus Angelichthys isa-

belita, Pomacanthus arcuatus, Scarus croicensis. Linton (1).

Bothriophoron n. subgen. Typus: B. bothriophoron. Stiles u. Goldberger.

Brachodena n.g. Linton (1). — B. pyriformis n. sp. aus Calamus calamus,

Haemulon macrostomum, H. plumieri, H. sciurus. Linton (1).

Brachycoeliinae n. subfam. Odhner (6).

Calinella n. g. Monticelli.

Calinella craneola n. g. n. sp. auf Alebion carchariae. Monticelli.

Callodistominae n. subfam. Odhner (6). mit den Genera Callodistomum,

Cholepotes und T’haumatocotyle —

Callodistomum n. g. Odhner (6). "Call. diaphanum n. sp. aus Polypterus

bichir. Odhner (6).

Carmyerius n. gen. Typus: ©. gregarius Looss. Stiles u. Goldberger. —

Carmyerius n. subgen., Typus: C. gregarius Looss. Stiles u. Goldberger.

Catoptroides spatulaeformis n. sp. aus Malapterurus electricus. Odhner (6).

Cephalogonimus europaeus n. Sp. aus Rana esculenta. Blaizot.

Cercaria furcata Dad. nee Nitzsch = Cercaria schizocerca n. sp. Daday.

Cerceria aculeata Dad. nec Ereolani = Cercaria hoplophora n. sp. Daday.

Cholepotes n. g. Odhner (6). — Ch. ovofarctus n. sp. aus S’ynodontis schall

Odhner (6).

Cauliorchis n. subgen. Typus: C. cauliorchis n. sp. Stiles u. Goldberger. —

C. cauliorchis n. sp. aus Bos indicus. Stiles u. Goldberger.

Cleptodiscus n.g. Linton (1). — ©. reticulatus n. sp. aus Pomacanthus

arenatus. Linton (1).

: Cotylophoron n. gen. Typus: ©. cotylophorum (Fisch.). Stiles u. Goldberger.

— C. indicum n. Sp. aus Ovies aries. Stiles u. Goldberger.

196 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Cryptogonimus n.g. Osborn. — C. chyli n. sp. aus Micropterus dolomieu

und Ambloplytes rupestris. Osborn.

Deontacotylea n. subord. Linton (1).

Deontacylix n.g. Linton (1). — D. ovalis n. sp. aus Kyphosus sectatrix.

Linton (1).

Deradena n. g. Linton (1). — D. acuta n. sp. aus T'ylosurus marinus. Linton

(1). — D. obtusa n. sp. aus Teuthis caeruleus, T. hepatus. Linton (1).

— D. ovalis n. sp. aus Scarus caeruleus, S. croicensis Linton (1).

Deratrema n. g. Linton (1). — D. fusillus n. sp. aus Abudefduf saxatilis,

Haemulon macrostomum, Ocyurus chrysurus. Linton (1).

Dichadena n.g. Linton (1). — D. acuta n. sp. aus Teuthis caeruleus.

Linton (1).

Dicrocoeliidae n. fam., mit den Unterfamilien Dicrocoeliinae Lss. u. Brachy-

coeliinae n. subfam. nec Lss. Odhner (6).

Dierocoelium macrostomum n. sp. aus Numida ptilorhynchus. Odhner (6).—

D. lanceolatum (Rud.), D. lanceatum Stiles sind synonym D. dentriticum

Rud. Odhner (2).

Dictysarca n.g. Linton (1). — D. virens n. sp. aus Lycodontis funebris, L.

moringa. Linton (1).

Didymorchis n. g. Linton (1). — D. Linton ist durch Pyenadena Linton zu

ersetzen. Linton (2). — D.(Pycnadena) latus n.sp. aus Calamus calamus.

Linton (1).

Dihemistephanus lydiae n. sp. aus Mola mola. Nicoll (2).

Dinurus rubens sp. nov. aus Lycodontis funebris, L. moringa. Linton (1).

Diplangus n.g. Linton (1). — D. pazillus n.sp. aus Calamus calamus,

Haemulon macrostomum, H. plumieri, H. sciurus. Linton (1).

Distomum crocodili Poir. syn. Echinostomum crocodili (Poir.) Odhner (6).

— .D. gastrophilum n. sp. aus Phocaena communis Cuv. Kossak. —

D. kerandeli n. sp. aus Elephas africanus. Poirier. — D. signatum Duj.

syn. Leptophallus nigrovenosus (Bellingh.) Odhner (6).

Echinostomidae: mit 3 Unterfamilien: 1. Echinostominae (Gattungen

Echinostomum Rud. s.str.), Echinoparyphium Dietz, Patagifer Dietz,

Nephrostomum Dietz, Prionosoma Dietz, Euparyphium Dietz. —

2. Himasthlinae (Gattungen: Himasthla Dietz, Acanthoparyphium

Dietz, Cloeophora Dietz, Pelmatostomum Dietz, Macrechinostomum

n. 8. — 3. Echinochasminae (Gattungen: Echinochasmus Dietz, Ste-

phanoprora Odhn., Allechinostomum n. g., Heterechinostomum n.g. —

Pegosomum Ratz einerseits und Chaunocephalus Dietz und Balfouria

Leiper bilden zwei weitere, sehr charakteristische Unterfamilien.

Pseudechinostomum Odhn., Cotylotretus Odhn., Calycodes Lss. und

Scapanosoma Lhe. sind ganz isolierte Gattungen. Odhner (6).

Echinostomum bursicola Looss syn. Ech. africanum Stile. Odhner (6). —

E. cloacinum n.n. Braun, syn. Ech. bursicola (Crepl.) Odhner (6). —

E. (Allechinostomum n.g.) famelicum n. sp. aus Pseudotantalus ibis.

Odhner (6). — E. garzetta Mac Callum synonym Ech. ramosum Sons.

Odhner (6). — E. lobulatum n. sp. aus Phalacrocorax africanus. Odhner

(6). — E. niloticum n. Sp. aus Parra africana. Odhner (6). — E. ornatum

n. sp. aus Crocodilus niloticus. Odhner (6). — E. pseudoechinatum.

Systematik. 197

(Olss.) synonym E. denticulatum Rud. Odhner (6). — E. (Stephano-

prora) spinosum n.n. syn. Montlifer spinulosus Dietz nec Rud. aus

Anhinga rufa. Odhner (6). — E. spinulosum Rud. ( ?) syn. E. denticu-

latum Rud. Odhner (6). — E. sudanense n. sp. aus Ephippiorhynchus.

Odhner (6). — E. umbonatum Odhner synonym Ech. crocodili Poirier.

Odhner (6). — E. variospinosum n.sp. aus Phalacrocorax africanus.

Odhner (6). — E. (Echinoparyphium) volvulus n.sp. aus Theristicus

hagedash. Odhner (6).

Echinostephilla n. g. E. virgula n.sp. aus Arenaria. Lebour (3).

Ectenurus virgula n.sp. aus Clupanodon pseudohispanicus. Linton (1).

Enenterum n. g. aureum Linton n. sp. aus Kyphosus sectatrix. Linton (1).

Episthmium Lühe syn. Echinochasmus Dietz. Odhner (6).

Fascioletta n. g., F. ilocana aus Homo sapiens. Garrison.

Fasciolidae s. str. 3 Unterfamilien: 1. Fasciolinae mit Fasciola L. s. str.

und einer neuen Gattung für Dist. magnum Bassi. — 2. Fasciolopsinae

mit Fasciolopstis (Lss.) Odhn. und einer neuen Gattung für Dist. tur-

sionis Marchi (= D. longissimum Poir.).. — 3. Brachycladiinae mit

Brachycladium Lss. (? = Campula Cobb.), Lecithodesmus Brn. und

Orthosplanchnus Odhn. Odhner (6).

Fasciolopsis goddardi n. sp. aus Homo sapiens. Ward.

Fasciola nyanzae n. sp. aus Hippopotamus. Leiper.

Fischoederius n. gen. Typus: F. fischoederi n. sp. Stiles u. Goldberger. —

F. fischoederi n. sp. aus Bos Kerabon. Stiles u. Goldberger. — F.

siamensis n. sp. aus Bos. spec. Stiles u. Goldberger. — F. ceylonensis

n. sp. aus Bos Kerabon. Stiles u. Goldberger.

Gastrodiscidae n. fam. Stiles u. Goldberger.

Gastrothylacidae n. fam. Stiles u. Goldberger.

Gastrothylacinae n. subfam. Stiles u. Goldberger.

Gastrothylacodes n. subgen. Typus: @. mancupatus Fischoeder. Stiles u.

Goldberger.

Gastrothylacias n. subgen., Typus: @G. spatiosus Brandes. Stiles u. Gold-

berger.

Gastrothylax cruciformis n. sp. aus Hippopotamus. Leiper.

Genolopa n.g. Linton (1). — G. ampullacea n. sp. aus Haemulon plumieri,

H. macrostomum, H. sciurus. Linton (1). — @. truncata n.Sp. aus

Haemulon plumieri, H. sciurus. Linton (1).

Hamacreadium n.g. Linton (1). — H. consuetum n.sp. aus Haemulon

plumieri, H. sciurus. Linton (1). — ZH. gulella n. sp. aus Neomaenis

griseus. Linton (1). — H. mutabile n. sp. aus Anisotremus virginicus,

Neomaenis apodus, N. griseus, Ocyurus chrysurus, Pomacanthus

arcuatus. Linton (1). — H. oscitans n. sp. aus Anisotremus virginicus,

Haemulon plumieri, H. sciurus. Linton (1).

Hapladena n.g. Linton (1). — H. varia n.sp. aus Teuthis caeruleus, T.

hepatus. Linton (1).

Haplometroides n.g. Odhner (6). — H. buccicola n. sp. aus Elaps spec.

Odhner (6).

Hawkesius n. subgen. Typus: H. hawkesii. Stiles u. Goldberger.

Helicometra n.g. Linton (1). — H. execta n. g. aus Chlorichthys bifasciatus,

198 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Haemulon plumieri, H. sciurus, Iridio bivittatus, Lachnolaimus mazxi-

mus. Linton (1). — H. torta n. sp. aus Epinephelus morio, E. striatus.

Linton (1).

Helicometrina n.g. Linton (1). — H. nimia n.sp. aus Calamus calamus,

Eupomacentrus leucostictus, Neomaenis griseus, Ocyurus chrysurus.

Linton (1).

Hemiurus merus n. sp. aus Olupanodon pseudohispanscus. Linton (1).

Heterechinostomum n.g. Odhner (6).

Himasomum n.g. Linton (1). — H. candidulum n. sp. aus Angelichthys

isabelita, Pomacanthus arenatus. Linton (1).

Hysterolecitha n.g. Linton (1). — H. rosea n.sp. aus Teuthis caeruleus,

T. hepatus. Linton (1).

Isthmiophora Lühe syn. Euparyphium Dietz. Odhner (6).

Lebouria crassigula n. sp. aus Calamus calamus. Linton (1).

Lechradena n.g. Linton (1). — L. edentula n. sp. aus Neomaenis griseus.

Linton (1).

Lecithodendriidae n. fam. mit den Unterfamilien Lecithodendriinae Les. u.

Pleurogenitinae Lss. Odhner (6).

Lepodermatidae n. fam. mit den Gattungen: Lepoderma Lss., Haplometra

Lss., Opisthioglyphe Lss., Haplometroides n. g. Saphedera Lss., Pneumo-

noeces Lss., Astiotrema Lss., Styphlodora Lss., Styphlotrema n. 8.

Pachypsolus Lss., Renifer Pratt, Ochetosoma Brn., Lechriorchis Staff.,

Zeugorchis Staff., Pneumatophilus n.g., Leptophallus Lhe., Oisto-

somum Odhn., Enodiotrema Lss., Glossidium Lss., Cymatocarpus Lss.,

Opisthogonimus Lhe. u. Glypthelmis Staff. Odhner (6).

Leurodera n. sp. Linton (1). — L. decora n. sp. aus Anisotremus virginicus,

Haemulon macrostomum, H. plumieri, H. sciurus, Neomaenis griseus,

Teuthis hepatus. Linton (1).

Macrodena n.g. Linton (1). — M. perfecta n. sp. aus Teuthis caeruleus.

Linton (1).

Macrechinostomum n.g. Odhner (6).

Megalosolena n.g. Linton (1). — M. estrix n.sp. aus Kyphosus sectatrix.

Linton (1).

Mesocoelium n. g. Odhner (6).

Mesolecitha n.g. Linton (1). — M. linearis n. sp. aus Teuthis caeruleus.

Linton (1).

Mesorchis n.g. Linton (1). — Mesorchis Linton ist durch Antorchis Linton

zu ersetzen. Linton (2). — M. (Antorchis) urna n. sp. aus Angelichthys

isabelita, Pomacanthus armatus. Linton (1). — Mesorchis Dietz x

Monilifer Dietz syn. Stephanoprora Odhner. Odhner (6). — M. poly-

cestus Dietz syn. Ech. denticulatum Rud. Odhner (6).

Metadena n.g. Linton (1). — M. crassulata n. sp. aus Neomaenis analis.

Linton (1).

Microcotyle incisa n. sp. auf Neomaenis griseus. Linton (1).

Monilifer spinulosus ist eine gedrungene Mesorchisart. Odhner (6).

Monocotyle floridana n. sp. aus Myliobatis freminvillei. Pratt (1).

Oistosomum caduceus Odhn. aus Crocodilus niloticus. Odhner (6).

Systematik. 199

Opisthadena n.g. Linton (1). — O. dimidia n. sp. aus Kyphosus sectatriz.

Linton (1).

Opisthioglyphe locellus n. sp. aus Sorex fodiens. Kossak.

Orthocoelium n. subgen. Typus: O. orthocoelium. Stiles u. Goldberger.

Pachypsolus ovalis n. sp. aus Caretta caretta. Linton (1).

Paradistomum n.g. Kossak. — P. rabusculum n.g. n.sp. aus Gymno-

dactylus geckoides. Kossak.

Paralecithodendrium n. subg. Odhner (6). —

Paramphistomidea n. suprfam. Stiles u. Goldberger.

Paramphistomum buzxifrons n. sp. aus Hippopotamus. Leiper. — P. crassum

n. sp. aus Bos indicus. Stiles u. Goldberger. — P. fraternum n. sp. aus

Buffelus indicus. Stiles u. Goldberger. — P. indicum n. sp. aus Bos

indicus. Stiles u. Goldberger. — P. minutum n. sp. aus Hippopotamus.

Leiper. — P. papilligerum n. sp. aus Cervus eldi. Stiles u. Goldberger.

— P. papillosum n. sp. aus Bos indicus. Stiles u. Goldberger. — P.

parvipapillatum n. sp. aus Bos indicus var. Stiles u. Goldberger. —

P. pisum n.sp. aus Hippopotamus. Leiper. — P. sellsi n.sp. aus

Hippopotamus. Leiper. — P. shipleyi n. sp. aus Cervus eldi ( ?). Stiles

u. Goldberger. — P. siamense n. sp. aus Bos indicus var. Stiles u.

Goldberger. — P.-wagandi n. sp. aus Hippopotamus. Leiper.

Pfenderius n.g. Typus: P. papillatus. Stiles u. Goldberger.

Phyllodistomum unicum Odhn. aus Epinephelus tauvina. Odhner (6). —

Ph. linguale Odhn. aus Gymnarchus niloticus. Odhner (6).

Platynosomum Jastosum n. sp. aus Felis minuta. Kossak.

Pneumatophilus n.g. Odhner (6).

Prodistomum n.g. Linton (1). — P. gracile n. sp. aus Olupanodon pseudo-

hispanicus. Linton (1).

Pseudechinostomum n. g. Odhner (6). — Ps. incoronatum n. sp. aus Ceryle

rudis. Odhner (6).

Pycnadena n.g. an Stelle des bereits vergebenen Namens Didymorchis.

Linton (1).

Schistosomum americanum n. Sp.? aus Homo sapiens. Peraja da Silva,

Linton (2).

Siphoderidae n. fam. Linton (1).

Siphodera n. g. Typus: S. vinaledwardsii Linton. Linton (1).

Stegopa n. 8. Linton (1). St.globosa n. sp. aus Neomaenis griseus. Linton (1).

Stephanochasmus n.g. Linton (1). — St. casus n.sp. aus Epinephelus

striatus, Neomaenis griseus, N. analis, Ocyurus chrysurus. Linton (1).

— St. sentus n. Sp. aus Calamus calamus, Haemulon plumieri, H. sciurus.

Linton (1).

Stephanopharynginae n. subfam. Stiles u. Goldberger.

Stephanophiala Nicoll und Stephanophialinae Nicoll sind fallen zu lassen.

Odhner (6).

Styphlotrema n.g. Odhner (6).

Synethes n. subgen., Typus: S. synethes Fischoeder. Stiles u. Goldberger.

Thaumatocotyle n.g. Odhner (6).

Theledera n.g. Typus: T. pectinata Linton. Linton (1).

200 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Theletrum n.g. Linton (1). — Th. fustiforme n.sp. aus Pomacanthus

arenatus. Linton (1).

Thylogaster n. subgen. Typus: Th. minutus Fischoeder. Stiles u. Gold-

berger.

Udonella socialis n. Sp. auf Argulus spec. des Neomaenis griseus. Linton (1).

Watsonius n.g. Typus: W. watsoni. Stiles u. Goldberger.

Wellmanius n.g. Typus: W. wellmani n.sp. Stiles u. Goldberger. — W.

wellmani n. Sp. aus Cervicapra bohor. Stiles u. @oldberger.

X ystretum n. g. Linton (1). — X. papillosum n. sp. aus Lactophrys triqueter.

Linton (1).

Zoogonus rubellus n. sp. aus Anarchichas lupus. Nicoll (2).

II. Cestodes.

Publikationen und Referate.

Barkeı, F. D. Some new cases of trihedral Taenia. In:

Science (2), vol. 31, p. 837.

Barnabo, V. Sugli effett delle inoculazioni negli animali

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Soc. zool. ital., Ser. 2, vol. 9, 1908, p. 145—150.

Blanchard, R. (1). Nouveau cas de Dipylidium caninum &

Paris. In: Arch. Parasit., Paris, T. 13, 1909, p. 243—250, 2 Figg.

— (2). Cotylorhipis furnarii (del Pont), nouveau genre de

Teniades. Ibid. p. 477—482, Fig. — Diese Cestodenform ist inter-

essant durch die flachen Saugnäpfe, an deren Rande zahlreiche

Haken fixiert sind, von welchen die hinteren weniger zahlreich,

aber größer sind als die an der vorderen Hälfte der Saugnäpfe.

Das Rostellum fehlt. Die Geschlechtsöffnungen sind unregel-

mäßig alternierend gelagert.

Bettencourt, Nicolau. Le systeme hemolytique lapin-homme

dans la sero-reaktion du kyste hydatique. In: C. R. Soc. Biol.

Paris, T. 68, 1066—1068.

Braun, M. Helminthologische Mitteilungen. In: Schrift.

Physik. Ok. Ges. Königsberg, 49. Jhg., p. 116—117. — V. de-

monstriert Diplogonoporus brauni Leon. Die Ariolaschen Diplo-

gonoporus - Arten aus Centrolophus sind nach B. sicher keine

solchen.

Brumpt, E. Fixation du plomb par les cestodes d’animaux

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Child, €. M. The occurrence of amitosis in Moniezia. In:

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Ciurea, Joan. Zum Vorkommen des Üysticercus inermis in

Rumänien. In: Zsch. Fleischhyg., Berlin, Bd. 20, 1909, p. 19—20.

Condorelli Francaviglia, M. Sul parasitismo dell Antho-

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Publikationen und Referate. 201

Cossu, Alb. Un caso di COisticerco ramoso delle meningi cere-

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2 Figg.

Cristopherson, J. B. A case of hydatid cyst in the left ventricle

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Egyptian Soudan. In: J. trop. Med., London, vol. 12, 1909,

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Daday, E.v. Die Süßwasser-Mikrofauna Deutsch-Ost-Afrikas.

In: Zoologica, Heft 59, 1910. 8. — In Diaptomusarten fand D.

zwei neue Üestodenlarven; Cercocystis dendrocercus n. larva ist

eine Taenienlarve mit 20 in zwei Kränzen angeordneten Haken.

Der Schwanzanhang ist verzweigt und tragen die kurzen Ver-

zweigungen kugelförmige Anschwellungen. Die zweite Larve ist

ein Plerocercoid mit vier Saugnäpfen und ohne Haken.

Dampf, A. Über ein Cysticercoid aus einem Floh der Spring-

maus (Alactaga jaculus) Inu: Centralbl. Bakt., 1. Abt., 54. Bd.,

Orig. p. 452—454, 2 Figg. — Cysticercoid ohne Schwanzanhang,

wohl dem Genus Hymenolepis angehörend.

Deve, F. (1). Echinococcose primitive experimentale du

Pore. Kystes hydatiques des glandes surrenales. In: C. R. Soc.

Biol. Paris, T. 69, p. 41—43.

— (2). Echinococcose primitive experimentale. Resistance

des oeufs du Tenia echinocoque & la congelation. In: Ibid. p. 568

—570. — Die Eier von Taenia echinococcus widerstehen während

4 Monaten der Kälte (—1° bis + 1°).

Dey, D. Coenurus serialis in a goat. In: Calcutta, J. trop.

Vet. sci., vol. 4, 1909, p. 556—560.

Gasse, R. Ein Beitrag zur Kenntnis der lokalen Reaktion

des Tierkörpers bei Einwanderung von Echinokokken und Finnen.

In: Centralbl. Bakt., 1. Abt., 55. Bd., Orig. p. 30—49, Taf. —

V. schildert die Struktur der Hülle, welche die fertilen und sterilen

Echinokokken sowie die in der Muskulatur gelegenen Finnen des

Rindes umgibt. Die Struktur der Hülle der fertilen und sterilen

Echinokokken ist ganz verschieden.

Goldstein. Ein merkwürdiger Fall von Finnen beim Schwein.

In: Zeit. Fleisch.-Milchhyg., 20 Jhg., p. 174

Gough, L. H. Note on a Coenurus of the Duikerbok. Trans.

of the Roy. Soc. of South Africa, vol. I, 1910, p. 343—345, 1 Fig.

— V. fand bei ('ephalophus grimmi Linn., welcher im zoologischen

Garten von Pretoria starb, eine C'oenurus serialis nahe verwandte

Form, welche in der Muskulatur zwischen Skapula und Wirbel-

säule stack. Diese Coenurusform zeigt keine Tochterblasen und

ist von bedeutenderer Größe als ©. serialis. Die Haken des

Rostellums sind von gleicher Form, aber größer. Diese Differenzen

sind bedeutend genug, um die gefundene Form nicht ohne weiteres

mit CO. serialis zu identifizieren; vielleicht handelt es sich um eine

neue Art oder eine Varietät von (. serialis.

202 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Graetz, Fr. Experimentelle Untersuchungen zur Sero-

diagnostik der Echinokokkeninfektion. In: Centralbl. Bakt.,

1. Abt., 55. Bd., Orig. p. 234—246. — Bei histologischer Unter-

suchung echinokokkushaltiger Organe gewinnt man den Eindruck

schwerster Toxinwirkungen. Die Untersuchung frischer bakterien-

freier Hydatidenflüssigkeit zeigte vollständiges Fehlen von Toxinen

und Ptomainen. Die beiden Hauptbestandteile der Cystenflüssig-

keit sind Leucin und Tyrosin, die bei Versuchstieren keinerlei

Erkrankungserscheinungen hervorrufen. Das Serum echino-

kokkenkranker Schweine zeigt gegen die homologe Cystenflüssig-

keit und gegen einen alkalischen Extrakt aus Parasitenbestand-

teilen das Phänomen der Kompletmentbindung. Die durch diese

Antigene hervorgerufene Reaktion ist spezifisch. Auch auf im-

munisatorischem Wege lassen sich im Serum spezifische Anti-

körper erzielen, die nur durch Komplementbindungsversuche

nachweisbar sind.

Hall, M. C. (1). The Gid parasite and allied species ot the

Cestode Genus Multiceps. I. Historical Review. In: U. S. Dep. of

Agriculture, Bureau of Animal Industrie, Circ. 125, 68 pp.,

1 Karte. — V. gibt zunächst eine historische Übersicht über die

Kenntnis von Coenurus cerebralis, welcher schon Hippokrates be-

kannt, und zeigt dann, daß diese Cestodenlarve eigentlich

Multiceps multiceps (Leske) zu nennen ist. In einem besonderen

Abschnitt wird die Geschichte der Kenntnis des Drehwurmes in

Amerika verfolgt. In diesem Lande ist der Coenurus des Schafes

in Montana besonders häufig, aber auch in anderen Teilen Amerikas

vereinzelt beobachtet worden. Nach einer sorgfältigen Zusammen-

stellung der Wirte von Multiceps multiceps ist derselbe außer beim

Schaf auch bei Rind, Ziege, Pferd, Gems, Muflon, Gazelle, und

einigen Antilopen beobachtet worden. Auch die zweifelhaften

und sicher unrichtigen Wirtangaben werden zusammengesstellt

und diskutiert. Als Wirt des geschlechtsreifen Wurmes ist einzig

der Hund bekannt. Die ökonomische Bedeutung des Parasiten

ist eine ziemlich bedeutende, und soll der Schaden für Montana

jährlich ca. 10 000 Dollar betragen. Interessant ist eine Zu-

sammenstellung der sehr zahlreichen Vulgärnamen, welche man

in der Literatur für die Krankheit, den Parasiten und die von

ihm befallenen Tiere angewandt. Die Synonymie des Genus

Multiceps Goeze und der Art Multiceps multiceps (Leske) füllt

5 Druckseiten. Eingehend wird dann noch Multiceps serialis

(Gervais) aus dem Hasen und Kaninchen behandelt und am

Schluß noch drei weitere Arten des Genus angeführt (M. lemuris

Cobbold, M. polytuberculosus Megnin u. M. spalacis Moniez).

— (2). Some important facts in the life history of the Gid

parasite and their bearing on the prevention of the disease.

Ibid. Circ. 159, 1910, 7 pp. — Faßt die Entwicklungsgeschichte

des Wurmes zusammen und gibt als Prophylaxis an das Verbrennen

Publikationen und Referate. 203

der Schädel der kranken Schafe und Behandlung der Hunde mit

wurmabtreibenden Mitteln.

— (3). Methods for the eradication of Gid. Ibid. Circ. 165,

1910, 29 pp., 14 Figg. — Enthält eine Zusammenstellung des

über den Drehwurm (Multiceps multiceps) Bekannten und über

die Mittel seiner Ausrottung.

— (4). A new species of cestode parasite (T’aenia balaniceps)

of the dog and of the lynx, with a note on Proteocephalus punicus.

In: Proc. of U. S. National Museum, vol. 39, 1910, p. 139—151,

9 Figg. — Gibt eine eingehende Beschreibung des neuen Parasiten

und macht dann interessante Bemerkungen über Taenia punica

Kholodkovski, welche, wie der Autor richtig auseinandersetzt, in

das Genus Proteocephalus Weinland gehört und wohl mit dem

wirklichen Wirt dieses Bandwurmes (Fisch, Amphibium oder

Reptil) in den Darm des Hundes gelangte. Gleichzeitig bespricht

eingehend die Priorität von Proteocephalus Weinland gegen

Ichthyotaenia Lönnberg und Tetracotylus Monticelli. Ein Be-

stimmungsschlüssel der Hundecestoden beschließt die Arbeit.

Heape, W. Note on the so-called musculature of „Taenia

elliptica‘‘. In: Parasitology, vol. III, 1910, p. 217—225. — V.glaubt,

daß das sog. Muskelsystem von T. elliptica nicht als solches be-

zeichnet werden darf, sondern daß es sich um kontraktile Binde-

gewebsfibrillen handelt. Namentlich bei den Dorsoventralfasern

beobachtet H. spiralig und nicht gewellt kontrahierte Fibrillen,

was eben darauf hinweisen soll, daß wir es bei dieser Taenie, wie

wohl bei den Cestoden überhaupt, nicht mit Muskeln zu tun haben,

sondern daß besonders Dorsoventral- und Circulärfasern kon-

traktile Bindegewebsfibrillen sind. Nicht sicher ist dies auch für

die Längsmuskeln zutreffend.

*Henry, A. Enorme Coenure chez une Lapine. In: Bull.

Soc. Centr. Med. Veter., T. 86, 1909, p. 297—298.

Hochstein, K. Echinococcus multilocularis in der Muskulatur

des Pferdes. In: Berliner tierärztl. Wochenschr., 1908, p. 475.

Hungerbühler, M. Studien an Gyrocotyle und Cestoden. In:

Ergebnisse einer von L. Schultze ausgeführten zoologischen For-

schungsreise in Südafrika, 1910, 25 pp., 2 Taf. $. — V. bespricht

und stellt unsere Kenntnisse über @yrocotyle rugosa und G. urna

zusammen, worauf er dann speziell Gyrocotyle rugosa näher unter-

sucht und einzelne Punkte der Anatomie berichtigt und ergänzt.

@G. urna wird kurz besprochen und einige Unterschiede mit obiger

Art hervorgehoben. Beide Arten fanden sich in Callorhynchus

antarcticus. Von Cestoden werden drei neue Arten beschrieben,

und zwar eine neue Ichthyotaeniaart, die zweite, aus Amphibien,

eine neue Davaineaart aus einem Galliformes und eine Dipylidium-

art aus Cynictis penicillata, des ferneren eine neue Varietät von

Idiogenes horridus Fuhrm. Erstere Art zeichnet sich dadurch aus,

daß die Vagina hinter und unter dem Vas deferens und Cirrus-

beutel verläuft, während die zweite Art ausgezeichnet ist durch

204 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

die bei Danaineen seltene sehr starke porale Verschiebung des

weiblichen Drüsenkomplexes; die dritte Art ist durch die Kreuzung

von Cirrusbeutel und Vagina von dem nahe verwandten D.

trinchesii zu unterscheiden. Es werden Angaben gemacht über

Davainea struthionis (Houtt.), Gyrocoelia brevis Fuhrmannn,

Anomotaenia trapezoides (Fuhrm.), Davainea trapezoides Janicki,

Hymenolepis crassa Janicki. Zum Schluß gibt V. eine Zusammen-

stellung der südafrikanischen Cestoden, von welchen 55 auf-

gezählt werden; 21 sind vorläufig nur aus Südafrika bekannt.

Janicki, C. Die Cestoden aus Procavia. In: Denkschr. Med.

Nat. Ges. Jena, 16. Bd., p. 373—396, Taf. 12—14. — V. gibt zu

nächst eine geschichtliche Zusammenstellung über unsere Kennt-

nisse der Procaviacestoden, worauf er dann die verschiedenen

von ihm selbst näher untersuchten Arten, die alle in das neue

Genus Inermicapsifer gehören, eingehend beschreibt. Es sind

dies folgende Arten: I. hyracis (Pall.) Rud., I. interpositus n. sp.,

I. setti n. sp. Außerdem werden noch kurz erwähnt I. criticus

Pagenstecher, I. pagensiecheri Setti, I. gondokorensis Klaptocz,

I. spec., T. paronai Moniez und T. spatula v. Linstow. Das neue

Genus zeigt gewisse Beziehungen zu Linstowia Zsch. und Zschokkea

(Zschokkella) Fuhrm. und ist charakterisiert durch Saugnäpfe mit

muskulösen Taschen, einseitige Genitalpori, durch Gefäßnetze

an der Grenze der Markschicht, und einem in Eikapseln sich auf-

lösenden Uterus.

Johnston, H. On the anatomy of Monopylidium passerinum

Fuhrmann. In: Journ. and Proceed. of the roy. Soc. of N. 8.

Wales, vol. 43, 1909, p. 405—411, 1 Taf. — J. fand in Australien

in Passer domesticus obgenannten, in Europa entdeckten Cestoden,

den er eingehend beschreibt und abbildet.

Johnston, J. s. Trematodes.

Kofoid, ©. A. and Watson, E. E. On the Orientation of G'yco-

cotyle and of the Cestode Strobila. In: Proceed. of the 7th Inter-

nat. Zool. Congress 1907—1910, 5 pp., 2 Figg. — Die V. konnten

den monozoischen Cestoden Gyrocotyle an lebendem Material

beobachten und fanden, daß die gekräuselte Rosette des Parasiten

sich auf der Mukosa des Spiraldarmes befestigt, während das ein

saugnapfähnliches Organ tragende Ende frei ist und sich äußerst

beweglich zeigt. Das freie Vorderende ist bei Vorwärtsbewegung

des Wurmes nach vorn gerichtet. Das fixierende Ende, welches

dem Scolex der Cestoden entspricht, ist also entgegen der üblichen

Orientierung das Hinterende von Gyrocotyle. Die sonst als Dorsal-

fläche angesehene Ventralseite des Tieres ist immer gegen die

Darmwand gekehrt; sie trägt die Vaginalöffnung, während die

Uterusöffnung dorsal liegt. Die histologische Untersuchung zeigt

nun, daß das Vorderende 2 Paar reich inervierte Stellen zeigt,

wie solche bei Planarien und einigen Heterocotylen sich finden

Es finden sich an diesen Stellen wohl Sinne. organe de. so beweg-

lichen Vorderendes. Am Hinterende treffen wir ein reich ent-

Publikationen und Referate 205

wickeltes Nervensystem, welches auffallend demjenigen der

vielgliederigen Cestoden gleicht. Die Orientierung bei der Be-

wegung von Gyrocotyle, sowie die Struktur des Vorderendes und

des Hinterendes im Vergleiche mit Heterocotyleen und poly-

zoischen Cestoden zeigen, daß der Scolex der Cestoden dem Hinter-

ende des Wurmes entspricht. Bei dieser Orientierung kommt die

Wachstumszone (Hals) wie bei Anneliden ans Hinterende zu

liegen.

ä *Laoroff, S. Resultate der Untersuchungen der Würmer-

fauna des Wolga-Flusses und der Wiesenseen bei Saratow (russ.).

In: Saratov Trd. Obs£. jest., vol. 5, 1908, p. 1—86, 2 Taf.

Larue, R. On the morphology and development of a new

cestode of the genus Proteocephalus Weinland. In: Studies from

the zoological Laboratory, The University of Nebraska, No. 95,

1909, p. 17—49, 4 Taf. — V. beschreibt eingehend eine neue

Cestodenart aus Amblystoma tigrinum, welche er Proteocephalus

tlaroides n.sp. nennt. Seine Untersuchungen über die Entwicklung

des betreffenden Parasiten scheinen darauf hinzuweisen, daß die

Entwicklung eine direkte ist ohne Zwischenwirt.

Leese, A.S. Note on tapeworms in Punjaub camels. In:

J. trop. vet. sci., Calcutta, vol. 4, 1909, p. 305—306.

Leon, N. Un nouveau cas de Diplogonoporus Brauni. In:

Centralbl. f. Bakt. Paras., Bd. 55, 1910, p. 23—27, 5 Figg. — Da

auch dieses zweite Exemplar nicht geschlechtsreif war, konnte noch

keine vollständige Beschreibung dieses interessanten Cestoden des

Menschen gegeben werden.

Lühe, M. Cystotaenien südamerikanischer Feliden. In:

Zoolog. Jahrb., Suppl. 12, 1910, p. 687—710, Taf. 19—20 und

8 Textfigg. S. — V. untersucht 3 Cestoden aus südamerikanischen

Feliden, welche Diesing als Taenia crassicollis bestimmt hatte.

Die kleinste dieser Arten erhielt allerdings später durch Diesing

den Namen Taenia oligarthra Dies. Die Untersuchung hat nun

erwiesen, daß keine dieser 3 Cestoden mit der Katzentaenie

übereinstimmt und daß dieselben, wie vorauszusehen, besonderen

Arten angehören. Der eine der Cestoden zeigte in seiner Bewaffnung

vollkommene Identität mit Cysticercus macrocystis Dies. aus

Lepus brasiliensis und muß die Taenie deshalb Taenia macro-

cystis heißen. Die dritte Art nennt L. Taenia omissa n. sp. Inter-

essant ist, daß 7. oligarthra Dies. sehr ähnlich ist T. echinococcus

v. Sieb.

Maillard, L.C. Recherche du plomb dans les cestodes d’ani-

maux saturnins. In: C. R. soc. biol. Paris, vol. 64, 1908, p. 943

— 945.

Minchin, E. A. Cysticercus stage of a Cestode in the body

cavity of a rat-flea (Ceratophyllus fasciatus) In: Proc. zool. soc.

London, 1909, II, p. 741—742,

Mrazek, Al. Ein neues Cysticercoid aus Tubifex. In: Centralbl.

f. Bakt. Paras., Bd. 53, 1910, p.315—317, 4 Figg. — Interessantes

206 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910. _

Cysticercoid, dessen Schwanzanhang in eine Anzahl selbständiger

mit dem Cysticercoid nicht mehr in Zusammenhang stehender

Gebilde zerfällt. Das Ganze ist von einer sekundären festen Cyste

umschlossen. Der Skolex zeigt 10 Haken von 0,064 mm Länge.

*Poyarkoff, E. Organe sensoriel nouveau et tr&es grossi des

muscles de la larve de Tetrarhynchus papillifer n. sp. In: Soc.

oceanog. golfe Gascogne, vol. 30, 1909, p. 1—31.

Putzu, J. Über den biologischen Nachweis der Echinokokkus-

krankheit. In: Centralbl. f. Bakt. Paras., Bd. 54, 1910, p. 77

—91. — Im Blutserum der Echinokokkuskranken gibt es spe-

zifische Antikörper, welche sich durch das Phenomen der Kom-

plementbildung nur bei Anwesenheit ihres spezifischen Antigens

darstellen lassen. Das beste Antigens ist Hydatidenflüssigkeit

vom Hammel. Die Komplemententbindungsreaktion ist bei der

Echinokokkenkrankheit das einzige unschädliche, sichere und

beweisende Hilfsmittel der Diagnose, während die Seropräzipita-

tion nur wenig verläßlich ist.

Riley, W. A. Dipylidium caninum in an american child.

In: Science (2), vol. 31, p. 349—350.

Robin, A., u. N. Fiessinger. L’etude biologique d’un cas de

ladrerie chez l’'homme. In: C. R. Soc. Biol. Paris, T. 68, p. 452.

— Die Flüssigkeit des CUysticercus cellulosae zeigt eine starke

Toxitität.

Rosseter, T. B. On the family Taenidae. In: Journ. Quekett

Mier. Club, (2), vol. 10, 1909, p. 414—418. — V. gibt eine sehr

unvollständige Übersicht über unsere Kenntnis das Genus H ymeno-

lepis betreffend (Die Literatur seit 1896 ist nicht berücksichtigt!).

Ferner beschreibt er seine Technik, die begreiflich macht, daß R.

in seinen Arbeiten zu höchst sonderbaren anatomischen Resultaten

gelangt (s. frühere Berichte.).

Shipley, A.E. Grouse Disease. The Times, 19. u. 25. April 1910.

Stephens, J.W. Observations on hooklets of C'ysticercus

cellulosae in Man. In: Ann. trop. Med. Parasitol. Liverpool,

vol. 2, 1909, p. 391—39.

Suffran. Une forme rare (sous-cutanee) de la ladrerie, chez

le Chien In: Revue Veter., 1909, p 401—405.

Sweet, G. Some new and unrecorded endoparasites from

australian Chickens In: Proc. R. Soc. Victoria Melbourne, (2),

vol. 23, p. 242—256, Taf. 31—35. 8. — Außer C'hoanotaenia in-

fundibulum (Bloch), Davainea cesticillus (Molin) und Dav. tetra-

gona (Molin) fand V. noch eine interessante neue Davaineaart.

Diese neue Art ähnelt Dav. proglottina; die Strobila besteht aus

nur 4—6 Proglottiden. Der Skolex trägt nur 44-50 Haken, die

Genitalpori münden regelmäßig alternierend aus, die Oncophären

liegen einzeln oder in Gruppen im Parenchym. Den Schluß der

Arbeit bildet eine Liste der bis jetzt in Australien beim Huhn

beobachteten Cestoden (6 Arten), Nematoden (8 Arten) und Arach-

niden (5 Arten).

Übersicht nach dem Stoff. Systematik. 207

Vaeeca, A. Elmintiasi da Dipylidium caninum (L) in un

bambino di 3 mesi di etä. Boll. della soc. zool. italiana, Roma,

vol. X, 1909, p. 319—327. — Das betreffende Exemplar war

10,5 cm lang, doch fehlte der Skolex und die ersten Proglottiden.

Weinberg, A propos de l‘apparition tardive des reactions

biologiques provoquees par les kystes hydatiques. In: C. R. Soc.

Biol. Paris, T. 68, p. 446—448. — Diese Erscheinung erklärt sich

dadurch, daß nicht genügend Flüssigkeit der Echinokokkusblase

ins Blut übergetreten ist, um in demselben die Bildung von Anti-

körpern zu veranlassen.

Weinberg et Bromfenbrenner. Application du procede de

Noguchi & l’etude des serums hydatiques. In: C.R. Soc. Biol. Paris,

T. 69, p. 249—251.

Yoshida, S. On three new species of Hymenolepis found in

Japan. In: Annotationes zoologicae Japanenses, vol. VII, 1910,

p. 255—246, 1 Taf. S.

Young, R. T. The Somatic Nuclei of certain Cestodes. Archiv

f. Zellforschung, 6. Bd., 1910, p. 140—163, 2 Taf. — V. unter-

suchte die somatischen Kerne und deren ‚‚novo origin‘ bei 12 ver-

schiedenen Cestodenarten, welche den verschiedensten Genera an-

gehören. V. glaubt, daß bei der degenerierten Gruppe der Cestoden

Zellkerne nicht nur durch Teilung schon vorhandener Kerne,

sondern auch als Neubildung direkt aus granulösem Protoplasma,

sich bilden können.

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Fast sämtliche Arbeiten, vor allem die

mit $. bezeichneten systematischen, enthalten zahlreiche Angaben über

Anatomie und Histologie. Speziell anatomische und histologische Angaben

finden sich: Child, Hall, Hungerbühler, Janicki, Larue, Young. — Ent-

wicklungsgeschichte: Larue, Poyarkoff. — Biologie: Dev6, Gasse, Hall (2).

— Abnormitäten: Barker.

Systematik.

Neue Genera, Arten und Synonyme.

Acoleus hedeyi nom. nov. für Taenia rugısa Krefft. Johnston (Allg.).

Cercocystis dendrocercus n.larva in Diaptomus. Daday.

Coenurus cerebralis muß heißen Multiceps multiceps (Leske 1780). Hall (1).

Cotylorhipis n. g., typische Art: ©. furnarii (del Pont). Blanchard.

Cysticercoid nov. aus Mesopsilla eucta (Floh). Dampf.

Davainea leptotrachela n. sp. aus Pteroclurus namaqua. Hungerbühler. —

D. varians n. sp. aus Gallus dom. Sweet.

Dilepis australiensis nom.nov. für Taenia coronata Krefft. Johnston

(s. Allg.).

Dipylidium zschokkei n. sp. aus Oynictis penicillata. Hungerbühler.

Hymenolepis exigua n. sp. aus Gallus domesticus. Yoshida. — H. inermis

208 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

n. sp. aus Gallus dom. Yoshida. — H. trichorhynchus n. sp. aus Anas

crecca. Yoshida.

Ichthyotaenia schultzei n. sp. aus Rana adspersa.. Hungerbühler.

Idiogenes horridus Fuhrm. nom. var. africanus, aus einem unbestimmten

Raubvogel. Hungerbühler.

Inermicapsifer n. g., typische Art I. hyracis (Rud.). Janicki. — I. settii

n. sp. aus Procavia spec. Janicki. — I. interpositus n. Sp. aus Procavia

spec. Janicki.

Plerocercus africanus n.larva aus Diaptomus africanus Daday. Daday.

Proteocephalus filaroides n. sp. aus Amblystoma tigrinum. Larue. — P.

pusillus n. sp. aus Salmo sebago. Ward.

Sparganum sebago n.sp. aus Salmo sebago. Ward.

Taenia balaniceps n. sp. aus Canis dom. und Lynx rufusmaculatus. Hall

(4). — T. coronata Krefft erhielt den Namen Dilepis australiensis

nom. nov. Johnston (Allg.). — T. macrocystis (Dies.) Lühe aus Felis

tigrina, Felis jaguarundi, Felis spec., Galictis spec. Lühe. — T. oli-

garthra Dies. Lühe aus Felis concolor. Lühe. — T. omissa n. Sp. aus

Felis concolor, Felis tigrina, Felis jaguarundi. Lühe. — T. punica Kholod-

kowski 1908 aus dem Hund muß heißen Proteocephalus punicus Kh.

Hall 1910. Hall (4). — T. rugosa Krefft erhielt den Namen Acoleus

hedeyi nom. nov. Johnston (Allg.). — T. pediformis Krefft ist synonym

Fimbriaria fasciolaris Pall. Johnston (Allg.). — T. tuberculata Krefft

ist eine Diploposthe. Johnston (Allg.).

Tetrarhynchus papillifer n.sp. Poyarkofi.

Trichocephaloides charadrii n. sp. aus Charadrius hiaticola. Lavrofif.

III. Nemathelminthes, Mermis und Gordius.

Publikationen und Referate.

*Albrecht, A. Zur Entwicklung der Spulwürmer beim Pferde.

In: Zs. Veterinärk., Berlin, Bd. 20, 1908, p 465—471, 1 Taf.

Alessandrini, 6. Su di un raro parassito dell’ intestino del

Maiale e sul genere Globocephalus Molin. In: Arch. Paratit.

Paris, T. 13, 1909, p. 458—476, 24 Figg. — V. beschreibt eingehend

Crassisoma urosubulatum aus Sus scrofa.

*Asmy. Ankylostomiasis in Westchina. In: Arch. Schiffshyg.,

Leipzig, Bd. 13, 1909, p. 164—166.

Bataillon, E. Contribution a l’analyse experimentale des

phenomenes karyocinetiques chez Ascaris megalocephala. In:

Archiv f. Entwickl. mech., Bd. 30, 1. Teil, p. 24—44. — Die dem

Ovidukt entnommenen Eier von Ascaris beginnen ihre Teilung nur

bei Gegenwart von Sauerstoff. Wenn Sauerstoff fehlt, wird eine

angefangene Teilung vollendet, aber nie tritt die Unterbrechung

in der Metaphase oder einem anderen Stadium ein. In mit CO,

gesättigtem Wasser erhält man nie mehr als eine Teilung. Aber

je nach der Schnelligkeit der Vergiftung stellt sich die Unter-

brechung in der Metaphase oder am Ende der Zellteilung ein. Die

durch CO, angehaltenen Teilungen vollenden sich in pyrogallur-

Publikationen und Referate. 209

saurer Salzlösung. Die erscheinenden Riesencentrosomen stellen

eine unter dem Einfluß der angehäuften CO, stattfindende Über-

treibung einer Dissimilationsreaktion vor, welche ihr Maximum

normalerweise in der Metaphase erreicht. Durch einfache O-Ent-

ziehung erhält man sie nicht. Im Gegenteil zeigen die im Pyro-

galat in Gegenwart von CO,-begierigem Kali ablaufenden

Teilungen die normalen feinen Centrosomen. Die Metaphase

erscheint wie ein vorübergehendes Gleichgewichtsstadium, während

dessen die Zelle ihre Abfälle eliminiert. Dieses Stadium kann

durch Versuchsbedingungen stabilisiert werden, wodurch die

Elimination verhindert wird.

Beretar, K. Seltene Lokalisation von Strongylus armatus.

In: Österreich. Monatschr. Tierheilk., p. 150—153.

Bertolini, 6. Sul’ Uncinarıa radiata Raill. e. su di un Oeso-

phagostoma Molin rivenuti in Bovini della Campagna romana e

della Sardegna. In: Boll. Soc. ital., Roma, Ser. 2, vol. 10, 1909,

p. 117—120.

Bilek, Fr. (1). Noch ein Wort über die fibrillären Strukturen

in den Darmzellen der Ascariden. In: Anat. Anz., 36. Bd., p. 17

—25, 3 Figg.

— (2) Die Muskelzellen der großen Ascaris-Arten. In:

Ibid., 37. Bd., p. 67—78, 10 Figg. — V. zeigt, daß die histo-

logischen Beobachtungen Goldschmidts mangelhaften Präparaten

entnommen sind, wie er sich durch Einsicht der Originalpräparate

von G. und deren Vergleich mit den seinigen überzeugen konnte.

Blankertz, R. Die Ausbildung der Tetrade im Ei von Ascaris

megalocephala univalens. In: Archiv f. Zellforschung, Bd. 6,

1910,. p. 1—18, Taf. I—II.

Blome, €. L. Uber zwei neue Wurmspecies: Trichosoma

papillosum und Heterakis cylindrica. Bern. Vet. med. Diss., 1909,

IV 16 pp., 3 Taf.

*Boehm, W. Necator americanus aus Ceylon. In: Arch.

Schiffshyg., Leipzig, Bd. 13, 1909, p. 40.

*Boveri, Th. (1). Die Potenzen der Ascaris-Blastomeren bei

abgeänderter Furchung. Zugleich ein Beitrag zur Frage quali-

tativ-ungleicher Chromosomen-Teilung. In: Festschr. R. Hertwig,

Jena, 3. Bd., p. 131—214, 24 Figg., Taf. 11—16.

— (2). Uber die Teilung centrifugierter Eier von Ascaris

megalocephala. In: Arch. f. Entwick. mech., 30 Bd., 2. Teil,

1910, p. 100—125, 32 Figg. im Text. — Es wird eingehend die

Bildung der Bälle untersucht, die sich am animalen Pole zentri-

fugierter Eier bilden und eine Folge der an der der Zentrifugen-

achse abgewandten Seite angehäuften schweren Granula sind.

Ausnahmsweise bildet sich ein Dotterball, dessen Entstehung un-

aufgeklärt ist. In einem Exkurs über die Stellung der entstehenden

Spindel im normalen Ascaris-Ei teilt B. die interessante Beob-

achtung mit, daß die Achse der ersten Teilungsfigur auf der Ei-

achse senkrecht steht, um sich aber dann so zu drehen, daß

Archiv für Naturgeschichte

1911. VL. 1. 14

210 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

in die Richtung der Eiachse fällt. Diese eigentümliche Erscheinung

faßt B. als eine phylogenetische Reminiszenz auf, indem in dem

eigenartigen Furchungstypus der Nematoden die bei den meisten

Tierabteilungen bestehenden zwei meridionalen Teilungen fehlen,

und das Ei sofort mit einer äquatorialen Furche die Teilung be-

ginnt. Die unterdrückten beiden Teilungen werden aber bei

Ascaris noch angedeutet durch die vorübergehende Streckung in

einer zur Eiachse senkrechten Richtung, in die auch die Achse der

entstehenden Teilungsfigur anfangs einstellt, um sich dann um

90° zu drehen. Zum Schlusse bespricht V. noch die Eier mit

Monastern.

Brimont, E. (1). Sur quelques hematozoaires de la Guyane

frangaise. In: C. R. soc. biol. Paris, vol. 67, 1909, p. 169—171.

*— (2). Ankylostomiase en Guyane frangaise. In: Bull.

soc. path. exot. Paris, vol. 2, 1909, p. 413—417.

*Brochard, V. (1). Recherches sur une Microfilaire humaine

des iles Wallis. In: Bull. Soc. Path. Exot., T. 3. p. 138.

— (2). L’elephantiasis arabum desiles Wallis et la theorie

filarienne. Ibid. p. 401.

*Broquet Ch. Presence de Microfilaria nocturna en Cochin-

chine. In: Bul. soc. path. exot. Paris, vol. 1, 1908, p. 563—564.

*Brunwin A. D. Some aspects of filariasis in Tiji. In: J.

trop. Med., London, vol. 12, 1909, p. 365—370.

Buchanan, 6. Note on a supposed Nematode parasitic in the

eircular muscle of an Earthworm (Diporochaeta grandis). In:

Proc. R. Soc. Vietoria, Melbourne, (2), vol. 23, p. 99—101, Taf. 20,

21. — Eine Trematodenlarve ohne Spur von Geschlechtsorganen.

*Camerano, Lorenzo. Sur les Gordiens recuellis par leCapitaine

F. H. Stewart dans le Tibet. In: Rec. Ind. Mus. Calcutta, vol. 2,

1908, p. 315—316.

*Chapais J. C. Les anguillules. L’Heterodere. In: Nat.

Canad. Quebec, vol. 36, 1909, p. 17—20.

Cleland, B. and H. Johnston (1), Worm-nests in australian

cattle due to Filaria (Onchocerca) Gibsoni; with notes on similar

structures in camels. In: Journ. and Proc. of the Royal Soc. of N.S.

Wales, vol. XLIV, p. 156—171. — Die Rinder von Queensland

zeigen sehr häufig Wurmnester, ebenso zeigen sie sich in New

South Wales und Süd-Australien, während dieselben in Tasmanien

zu fehlen scheinen. Dieser Parasit ist ohne Zweifel eingeführt

worden. Da Wurmnester beim Rinde in England sowie in Süd-

afrika nicht vorkommen, so kann das von dort eingeführte Vieh

nicht der Träger der Parasiten gewesen sein. Dagegen kommt

der Nematode beim Büffel in Indien und Timor, sowie eine nahe

verwandte Art beim Kamel in Indien vor. Von Timor und Indien

wurden aber Büffel und Kamele nach Australien eingeführt. Die

Wurmnester werden eingehend beschrieben; sie kommen nur bei

älteren Rindern vor.

Cleland, B. (2) s. Johnston.

Publikationen und Referate. 211

Caig, Ch. F. Filaria (Microfilaria) philippiensis. In: Journ.

Trop. Med. Hyg. London, vol. 12, 1909, p. 239—241. 8. — Be-

spricht seine Untersuchungen an F. ph. und dessen Entwicklung

in Culex fatigans. Entgegen Low glaubt C. nicht, daß dieselbe

identisch ist mit F. bancrofti. Im Gegensatz zu Filaria

bancrofti findet man die Larven zu jeder Tageszeit in gleicher Zahl

in den peripheren Gefäßen der Körperoberfläche. i

Daday,E.v. Die Süßwasser-Mikrofauna Deutsch-Ost-Afrikas.

In: Zoologica, Heft 59, 1910, 8. — V. beschreibt eine Reihe neuer

Arten von freilebenden Nematoden.

*Dufougere, W. Sur un cas de Filaria loa. In: Bull. Soc.

Path. Exot., T. 3, p. 309.

Edwards. Ch. L. (1). The sex-determining chromosomes in

Ascaris. In: Scienco, (2), vol. 31, p. 514—515.

— (2). The Idiochromosomes in Ascaris megalocephala and

Ascaris lumbricoides. In; Arch. Zellforsch., Leipzig, 5. Bd.,

p. 422—429, Taf. 21—22.

Emil Weil, P. et G. Boye. Action des extraits d’Ascaris

equorum sur la coagultion du sang de lapin. In: ©. R. Soc. Biol.

Paris, T. 69, p. 284—285. — Verlangsamt die Coagulation des

Blutes.

Faber, F. C. von. Die Krankheiten und Schädlinge des

Kaffees. II. In.: Centralbl. f. Bakt. Paras., 2. Abteilung, Bd. 23,

1909, p. 215—218. — In diesem Sammelreferat werden eine Reihe

von Nematoden erwähnt, welche die Wurzeln des Kaffeebaumes

angreifen; es sind dies: Heterodera radicicola (syn. Meloidogyne

exigua Göldi),, Aphelenchus coffese Zimmermann, T'ylenchus

coffeae, T. acutocaudatus, Cephalobus brevicaudatus, C. longi-

caudatus, Rhabditis bicornis, Dorylaimus javanicus.

Ferret, P., A. Dupuy u. L. Mereier. Recherches sur l’Esponja,

affection qui sevit sur les Solipedes de certaines regions du Bresil

In: C. R. Soc. Biol. Paris, T. 69, p. 654—656, 2 Taf. — Durch

einen Nematoden am unteren Teil der Extremitäten erzeugte

Krankheit der Pferde.

Fiedler, A. Fadenwurm aus einer Raupe von Cucullia scrophu-

lariae. In: Zeit. Wiss. Insektenbiol., Berlin, 5. Bd., 1909,

p. 135.

*Garrison, Ph., E. Leynes, R. Llamas. Medical survey of the

town of Taytay. In: Philippine I. Sci. Manila (B. Medical sciences),

vol. 4, 1909, p. 257—269.

*Geissler. Uber Kamerunschwellung und Filaria loa. In:

Arch. Schiffshyg. Leipzig, Bd. 13, 1909, p. 329—330.

Gendre, E. (1). Notes d’Helminthologie africaine. In: Proc.

Verb. Soc. Linn. Bordeaux, vol. 63, 1909, p. 29—41, 74—83, 43 Figg.

8. — Die in dieser Arbeit beschriebenen Parasiten stammen aus

französisch Guinea, aus dem Zentrum von Fonta-Djalon. V.

behandelt eine Reihe neuer Nematoden. Von bekannten Arten

werden eingehend beschrieben und abgebildet Heterakis strongy-

14*

212 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

lura A. Müller aus Agama colonorum Daud. (welche zuerst vom

Autor als HZ. ornata v. Linst. beschrieben wurde), Z. suctoria Mol.

aus Gallus dom. und Numida meleagris.

*— (2). Sur les larves de Mermis parasites des larves de

Stegomyia fasciata. In: Bul. soc. path. exot., vol. 2, 1909, p. 106

—108.

Gilruth, J. A., @. Sweet u. S. Dodd. Notes on blood parasites.

In: Proc. R. Soc. Victoria, Melbourne, (2), vol. 23, p. 231—241,

T. 20—30. $S. — Beschreiben einen neuen Blutnematoden aus

dem Vogel. G@ymnorhina tibicen. Die Parasiten sind 98—126 x

lange Larvenformen.

Glaue, H. (1). Beiträge zu einer Monographie der Nematoden-

species Ascaris felis und Ascaris canis. In: Zeit. Wiss. Z., 95, Bd.,

p. 551—593, 26 Figg. — G. zeigt zuerst an der äußeren Gestalt

von Ascaris felis und A. canis, daß die beiden verschiedene Arten

"sind, was auch die histologische Untersuchung bestätigt. V. fand

in der Cuticula der beiden Nematoden ein kompliziertes System

von Saftbahnen, die von einem Hauptkanal ausgehen, der seine

Wurzeln in der Hypodermis hat und sich baumartig bis in die

Außenschicht der Cuticula verzweigt und hier ausmündet. Die Saft-

bahnen sollen der Ernährung der Cuticula dienen, möglich ist

aber auch, daß diese Kanäle eine Substanz enthalten, die den

Darminhalt zu neutralisieren hat und vielleicht auch den Darm

des Wirtes angreift. Die Cuticula besteht aus 5—6 Schichten,

die bei den beiden Arten sehr verschieden stark entwickelt sind

und eingehend beschrieben werden, namentlich die typischen

Seitenflügel der beiden Arten. Es wurden des ferneren Spicula,

Subeuticula und Seitenfelder untersucht, wobei V. für letztere

die Resultate Martinis vollkommen bestätigt findet.

— (2). Beiträge zur Systematik der Nematoden. In:

Zool. Anz., 35. Bd., p. 744—759, 5 Figg. $. — In seinen Studien

über die Ascariden der Carnivoren suchte Verfasser nach Species-

merkmalen, die bei beiden Geschlechtern vorhanden sind und so

ermöglichen, auch nach dem Weibchen die Art zu bestimmen.

Verfasser bespricht die von Leiper aufgestellten Genera Bel-

ascaris und Toxascarıs und hält ihre Schaffung für verfrüht, da

von der Flügelform der beiden Ascaridengruppen wohl Übergangs-

formen existieren, welche eine Einreihung in das eine oder andere

Genus bedeutend erschweren. Er vergleicht eingehend die Flügel,

die Struktur der Cuticula, Spicula und Schwanzpapillen von

Ascaris canis Werner, A. leonina v. Linstow, A. triquetra Schrank,

A. felis Göze, und von drei unbenannten neuen Ascarisarten.

Das Ergebnis dieser Vergleichung ist, daß bei den ‚‚geflügelten‘“

Ascariden der Carnivoren sich in Flügelform, Flügelquerschnitt

und Cutieula Speciesunterschiede finden, die die Bestimmung be-

deutend erleichtern. Kurze Beschreibungen dreier neuer nicht

benannter Arten beschließen die Arbeit.

Publikationen und Referate. 213

Goldsehmidt, R. (1). Das Nervensystem von Ascaris lumbri-

coides und megalocephala. Ein Versuch, in den Aufbau eines ein-

fachen Nervensystems einzudringen. 3. Teil. In: Festschr.

R. Hertwig, Jena, 2. Bd., p. 253—354, 29 Figg., Taf. 17—23. —

Nachdem V. früher die Topographie, mikroskopische Anatomie

und den Faserverlauf geschildert, wird in dieser Arbeit der feinere

Bau der das Nervensystem zusammensetzenden Zellen und Fasern

behandelt. Die Glia, Nervenfasern, Ganglienzellen, Muskel-

innervation erfahren eine eingehende Schilderung. In einem

besonderen Kapitel gibt V. interessante Angaben über ein kom-

pliziertes sympathisches Nervensystem, das innerhalb des Syn-

cytiums der Epithelmuskelzellen des Oesophagus liegt. Dieses

Nervensystem steht mit dem Zentralnervensystem durch eine

feine Nervenfaser in Verbindung. Die Untersuchungen von G.

haben ferner gezeigt, daß die Nervenzelle 26 nur dem männlichen

Geschlechte zukommt, die Geschlechter sich also im Zentral-

nervensystem durch den Besitz resp. Nichtbesitz eines Zellen-

paares unterscheiden. Im allgemeinen Teil behandelt G. die

Frage, ob die Neurofibrillen das leitende Element des Nerven-

systems sind. Nach seinen Untersuchungen und Betrachtungen

sind die Neurofibrillen ein Zellskelett, dessen Vorhandensein ein-

fach eine physikalische Notwendigkeit ist, und das mit der eigent-

lichen Nervenfunktion nicht das geringste zu tun hat. In einem

Anhang kritisiert V. die Dogiel-Deinekasschen Untersuchungen

über das Ascarisnervensystem und zeigt, daß von allen Angaben

Dogiel Deinekas nicht eine einzige, die über das vorher Bekannte

hinausgeht, richtig ist.

— (2). Die Ascarisvergiftung. In: Münch. Med. Wochen-

schrift, No. 38, p. 1991—1992. — Das Arbeiten mit Ascaris ruft

bei vielen Personen mehr oder minder starke Erkrankungs-

symptome hervor; es sind dies Konjunktivitis, chronischer Nasen-

und Rachenkatarrh, Husten und Asthma. Die Symptome haben

große Ähnlichkeit mit denjenigen der Heuschnupfens.

*Graham, E. N. Ankylostomiasis in the Malay States. In:

Journ. of trop. Med. and. Hyg., vol. XII, 1900, p. 333—334.

*Hirschler, J. Cytologische Untersuchungen an Ascaris-

zellen. In: Bull. Acad. Gracovic. B., p. 638—645.

Hogue, M. J. Über die Wirkung der Zentrifugalkraft auf

die Eier von Ascaris megalocephala. In: Arch. Entwicklungmech.,

29. Bd., p. 109—145, 42 Figg. — Bei Zentrifugieren reifer Ascaris-

eier verteilen sich die Eistoffe in 4 Schichten. Interessant ist nun,

daß die Anordnung der im Ei enthaltenen Einschlüsse auf die

Stellung der Teilungsspindel ohne Einfluß ist. Daraus folgt, daß

im Eiprotoplasma eine für uns unsichtbare, von den eingelagerten

Substanzen ganz unabhängige Polarität bestehen muß. Ebenso

ist auffallend, daß durch die das Zentrifugieren hervorgerufene

abnorme Verteilung des Dotters und der anderen Einschlüsse,

die normale Entwicklung nicht im geringsten gehindert wird. Ein-

214 Trematbdes; Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

gehend wird die Bildung einer Plasmakugel geschildert, welche

sich bei der Teilung der zentrifugierten Eier häufig am granulösen

Pol derselben bildet. Die Entwicklung dieser ‚‚Balleier‘“ ist häufig

anormal und wurde genau studiert. Siehe Boveri.

*Holm, V. Ascaris lumbricoides passeret gennem ‚Tuba

Eustachii“ og ud af Oret. In: Kobenhavn Ugeskrift for Laeger,

vol. 71, 1909, p. 149.

*Horn, P. Beitrag zur Kenntnis der Moos bewohnenden

Tylenchus-Arten. In: Arch. Ver. Natg. Güstrow, Bd. 65, 1909,

p- 67—77, 1 Taf.

Höyberg, H. Beitrag zur Biologie der Trichine. In: Zeit-

schrift f. Tiermedizin, 14 Bd., 1910, p. 74—79. — V. kritisiert

die Arbeit von Ströse, der die Möglichkeit einer Infektion von

Ratten und Schweinen mittelst Kot trichinöser Tiere verneint.

Er behauptet, daß die Versuche St.’s ganz ungenügend seien.

Jammes, L. u. A. Martin (1). Sur l’adoptation des Nematodes

parasites & la temperature des hötes. In: C. R. Acad. Sc. Paris

T. 150, p. 418—419. — Nach den V. kann man bei den parasitischen

Nematoden, in bezug auf den Einfluß der Temperatur auf die

Entwicklung der Eier, drei Gruppen unterscheiden: 1. Nematoden,

deren Embryonen sich nur bei einer Temperatur entwickeln, die

niedriger ist als die des Wirtes (Ascaris vitulorum, A. suis, Heterakis

columbae). 2. Nematoden, deren Embryonen ebenso gut bei der

Temperatur der Wirtes als bei niedrigerer Temperatur sich entwickeln

(Ascaris equorum, A. canis, Sclerostomum equinum, Sc. vulgare

Trichocephalus depressiusculus). 3. Nematoden, deren Embryonen

sich nur in der Temperatur des Wirtes normal entwickeln (Speroptera,

“Filaria, Trichina ete.). Die V. schließen hieraus, daß die Not-

wendigkeit einer relativ niedrigen Temperatur, die Indifferenz

gegen Erhöhung dieser Temperatur und die Notwendigkeit der

Temperatur des Wirtes für die Entwicklung der Eier die aufein-

ander folgenden Etappen der langsamen Evolution darstellen,

durch welche die Nematoden sich an die Temperatur der höheren

Vertebraten angepaßt.

— (2). Röle de la chitine dans le developpement des Nema-

todes parasites. In; Ibid. T. 151, p. 250—251.— Nach den Experi-

menten des V. zeigt, wie bekannt, das von Chitin umhüllte Ei der

parasitischen Nematoden eine bedeutende Undurchdringlichkeit,

die aber bei Erhöhung der Temperatur abnimmt und dies nament-

lich, wenn sie die des Wirtes erreicht.

*Janet, Ch. Sur un Nematode qui se developpe dans la tete

de la Formica fusca. In: Mem. Soc. Acad. Oise Beauvais,

1909, 2 pp.

Johnston, H. and B. Cleland. On the anatomy and possible

mode of transmission of Frlaria (Onchocerca) gibsoni. In: Journal and

Proc. of the Royal Soc. of. N. S. Wales, vol. XLIV, p. 176—189,

Pl. 14. — Gibt eine eingehende Schilderung der Anatomie und

vergleicht F. gibsoni mit Filarien des Kamels und des Rindes.

Publikationen und Referate. 215

Was nun die Übertragung derselben anbetrifft, so bespricht V.

alle Möglichkeiten, ohne aber sichere Anhaltspunkte zu haben.

Johnston, H. s. Cleland.

*Leese, A. S. Indian Report of the Veterinary Officer In-

vestigating Camel diseases for the year ending 31st March 1909.

1910.

Leiper, R. T. (1). The structure and relationships of Gnatho-

stoma siamense (Levinsen). In: Parasitology, Cambridge, vol. 2,

1909, p. 77—80. — Im subkutanen Gewebe der Einwohner von

Siam findet man gelegentlich @. siamense. V. gibt die Beschreibung

des Männchens, da bis jetzt nur das unreife Weibchen beschrieben

wurde. V. glaubt, daß der Mensch nicht der normale Wirt des

Tieres ist, da er entgegen aller Gnathostomaarten nicht im Darm,

sondern unter der Haut sich findet.

—(2), Description of Filaria mavis n.sp. from the Thrush.

In: Zoologist (4), vol..13, 1909, p. 337—339. 8. — V. beschreibt

aus Cysten, welche unter der Haut der hinteren Extremitäten der

Drossel liegen, geschlechtsreife Nematoden, welche einer neuen

Art angehören. Die Larven dieses Wurmes sollen sich im Blut

finden.

— (3). A new Nematode worm from Trinidad. In: Proc.

Z. Soc. London, 1909, p. 742—743. 8. — Dieser neue Nematode

fand sich in subkutanen Abszessen eines Eingeborenen von Tri-

nidad. Die Männchen messen 9 mm in der Länge und 0,4 mm im

Durchmesser, die Weibchen dagegen sind 15 mm lang und 0,5 mm

breit. V. glaubt, daß der normale Wohnort dieses Parasiten der

Darmkanal eines Carnivoren ist.

— (4). The Entozoa of the Hippopotamus. In: Ibid. 1910.

p. 233—251, Fig. 26—35. 8. — V. fand bei parasitologischen

Untersuchungen an 4 Hippopotamus an den Murchison-Fällen

des Vietoria-Nils 3 Nematoden und 6 Trematoden; drei weiter

Arten aus demselben Wirte erhielt er aus Uganda. |

— (5). The original specimens of the Nematode Acantho-

cheilonema dracunculoides Cobb. In: Proc. Zool. Soc. London,

1909, p. 889. 8.

— (6). Nematodes. In: Sjöstedts Kilimandjaro-Meru-

Expedition, Stockholm, T. 3, 1909, p. 23—26. 8.

*— (7). The alleged heterogenesis in Ankylostomum duo-

denale. In: Brit. Med. J. London, 1909, II, p. 1332.

*Linden, Maria von. Die Lungenwurmseuche beim Reh und

deren Bekämpfung. In: Zs. Jagdschutzver., Berlin, vol. 14,

1909, p. 3238—333, 3385 —341, 347—349.

Linstow, 0. v. (1). Atractis perarmata n. sp. In: Centralbl.

Bakt., 1. Abt., 53. Bd., Orig. p. 516—518, 2 Figg. $. — Die neue

Art, welche V. eingehend beschreibt, gehört einem noch wenig

bekannten Genus an, das bis jetzt nur 5 Arten umfaßt. Was

diese Parasiten von den meisten Nematoden unterscheidet, ist,

daß dieselben vivipar sind. Alle Vertreter des Genus bewohnen

216 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

den Darm von Reptilien. Bei A. perarmata n. sp. fand V. 1-3

Embryonen von 2,37 mm Länge, während das erwachsene Weib-

chen 6,2 mm lang ist. Da die Jungen sich im Darm desselben

-Wirtstieres, also ohne Wirtswechsel, weiter entwickeln, sammeln

sich bei längerem Leben des Wirtes enorme Mengen des Para-

siten an.

— (2). Pseudalius ovatusn.sp. In: Ibid. 55. Bd., p. 133—135,

3 Figg. 8. — Die Vertreter dieses Genus leben sonst in luft-

führenden Organen oder auch im Zirkulationssystem; dagegen

findet sich die neue Art P. ovatus im Oesophagus und Magen

des Delphins.

Low, M. B. Filaria philippinensis. In: Journ. of trop. Med.

and. Hyg., vol. XII, 1909, p. 256. Siehe Craig.

Madden, F.C. (1). Bilharziosis ofthe Penis. In: Journ. of trop.

Med. and Hyg., vol. XII, 1909, p. 351—353, 9 Figg.

— (2). Bilharziosis of the Anus. In: Ibid. p. 370, 2 Figg.

Man, J. 6. de. (1). Beiträge zur Kenntnis der in dem weißen

Schleimfluß der Eichen lebenden Anguilluliden, nebst Unter-

suchungen über den Bau des Essigälchens und der Gattung

Anguillula Ehrb. In: Zoolog. Jahrb., Abt. Syst. Biol., 1910,

29. Bd., p. 359—394, Taf. 14—16. 8. — Die Untersuchung ergab

die auffallende Tatsache, das der früher als A. dryophila Leuck.

bezeichnete Nematode, der im weißen Schleimfluß der Eichen

lebt, fast vollkommene Übereinstimmung mit dem Essigälchen

zeigt und deshalb höchstens als Varietät aufgefaßt werden kann.

V. beschreibt zunächst eingehend das Essigälchen, worauf er

obige Varietät und eine neue Art charakterisiert.

*— (2). Note on a free-living Nematode from Rham-tso

Lake, Tibet. In: Rec. Ind. Mus. Calcutta, vol. 2, 1908, p. 314-315.

*Mareinowski, K. Untersuchungen über Nematoden. In:

Mitt. Biol. Anst. Land.-Foıstwirtsch. Berlin, 8. Heft, 1909,

. 41—46.

H *Martini. Über das Vorkommen von abgekapselten und ver-

kalkten Nematoden (Trichotracheliden) in den Muskelfascien

eines chinesischen Haushuhns. In: Zeit. Hyg. u. Infekt.-Krankh.,

65. Bd., p. 349—352.

*Mathis, €. La Microfilaria nocturna en Tonkin. Bul. soc.

path. exot. Paris, vol. 2, 1909, p. 144—147.

*Mathis, C., u. M. Leger (1). Les porteurs d’Ankylostomes au

Tonkin et dans le Nord-Anam. In: Bull. Soc. Path. Exot., T. 3,p. 32.

— (2). Douve oculaire de la Poule. Ibid. p. 245.

— (3). Helminthiase intestinale et hepatique chez les indi-

genes du Tonkin et du Nord Annam. In: Bul. soe. path. exot.

Paris, vol. 2, 1909, p. 488—492.

— (4). Foyers endemiques de filariose humaine au Tonkin.

In: Ibid., p. 483—488.

*Meyer, . . . Beitrag zum Vorkommen des Ascaris lum-

bricoides. In: Zeit. Fleisch.-Milchhyg., 20. Jdg., p. 127.

Publikationen und Referate. 217

Molz, E. Über Aphelenchus olesistus Ritz. Bos und die durch

ihn hervorgerufene Älchenkrankheit der Chrysanthemum. In:

Centralbl. Bakt., 2. Abt., 23. Bd. Orig., 1909, p. 656—6”71, 2 Figg.

Taf. — A. o. gelangt aktiv bei seinen Wanderungen auf die Ober-

fläche der Pflanzenteile und passiv mit den Erdteilchen, die durch

Schlagregen angespritzt werden, auf die Chrysanthemumblätter.

Das Eindringen derselben erfolgt namentlich durch Gewebe-

verletzungen, und bewegen sich die Nematoden in den Inter-

zellularräumen der Zellen. Häufig wandern die Tiere, namentlich

die älteren, auch auf die Oberfläche der Blätter. Die Eier liegen

in den Interzellularräumen. V. hat mannigfache Experimente

zur Bekämpfung des Alchens gemacht; er fand, daß 10 Minuten

dauerndes Einwirken einer Temperatur von 43° C alle in den

Blättern sich findenden Nematoden sicher tötet.

*Monticelli, Fr. S. Sul Gordio piccino di Delle Chiaje. In:

Annuar. Mus. Z. Napoli, (2), vol. 3, No. 13, 3 pp. — Wahrschein-

lich Tubifex tubifex.

*Neumann, L. 6. (1). La Filaire de l’Antruche. In: Revue

Veter., 1909, No. 9, p. 544—549.

— (2). Un nouveau Nematode parasite du Boeuf (Oncho-

cerca gutturosa n.sp.). 8. In: Ibid. p. 270.

Niclas. A propos d’un cas de Filariose (Microfilaria ban-

crofti),. In: Bull. Soc. Path. Exot., Tome 3, p. 399.

*Nicolle, C., Catouillard, @. et Gobert, E. Enquete sur la

frequence et la separtition de l’ankylostomiase en Tunisie. In:

Arch. Inst. Pasteur Tunis. vol. 3, 1908, p. 168—185, Fig.

Nierstraszz, H. F. Die Verwandtschaftsbeziehungen von

Chlamydonema felineum Noordh. Hegt. In: Tijdschr. Nederl.

Dierk. Ver., (2), Deel 12, p. 45—59. 8. — Für den eigentümlichen

von Noordhoek Hegt beschriebenen Nematoden kreiert N. eine

besondere Familie, deren wichtigste Charaktere folgende sind:

Die äußeren Schichten der Cuticula bilden in der hinteren Hälfte

des Körpers einen freien Mantel, in welchen das Weibchen sich

zurückziehen kann, während er beim Männchen an der Basis eines

breiten Schwanzteiles endet. Der Kopf zeigt 3 ungestielte Tast-

papillen und 2 Lippen, von welchen jede 3 Zähne zeigt. Hinter

dem Kopf liegt beiderseits ein Sinnesapparat. Das neue Genus

gehört zu den Polymyariern und besitzt sehr stark entwickelte

Seitenfelder... Eine direkte Verwandtschaft mit anderen Nema-

toden ist nicht nachzuweisen.

Noordhoek Hegt, J. C'hlamydonema felineum nov. gen., nov.

spec., ein neuer parasitisch lebender Nematode. In: Tijdschr.

Nederl. Dierk. Ver., (2), Deel 12, p. 5—44, Taf. $. — Gibt eine

eingehende Schilderung des aus dem Magen zweier in Batavia

sezierter Katzen stammenden Nematoden.

Ozoux, M. La Filaire de l’oeil du Dindon. In: C. R. Soc.

Biol. Paris, T. 68, p. 974—975. — Es handelt sich um Oxyspirura

Manson.

218 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

*Phalen, J. and Nichols, H. Notes on the distribution of

Filaria nocturna in the Philippine islands. In: Philippine J. Sei.

Manila (B. Medical Sciences), vol. 3, 1908, p. 305—309, voi. 4,

1909, p. 127—139 mit Karte.

Pelser-Berensberg, H. v. Fadenwürmer in Insekten. In:

Zeit. Wiss. Insektenbiol. Berlin, 5. Bd., 1909, p. 284—285, Fig. —

V. fand in Durban in Raupen von Danais chrysippus und ebenso

häufig bei Wanderheuschrecken und Mantiden Gordiuslarven.

Potts, F. A. Notes on the free-living Nematodes. In: Quar-

terly Journ. of mier. Sc., vol. 55, 1910, p. 433—484, 11 Figg. 8.

— Die Arbeit behandelt einige hermaphrodite Arten der Genera

Diplogaster und Rhabditis. Im systematischen Teil werden zu-

nächst 4 neue Arten beschrieben. Um Erdnematoden in großer

Zahl zu erhalten, wendet V. folgende Methode an: er legt in

gute Gartenerde, die feucht und warm gehalten wird, Fleisch-

stücke, worauf 5—6 Tage, nachdem die Zersetzung begonnen, eine

große Zahl von Diplogaster und KRhabditis erscheint, die meist

ein oder zwei Arten angehören. Es ist wahrscheinlich, daß nach

einiger Zeit andere Formen auftreten und die ersten am Anfang

der Zersetzung erscheinenden ersetzen. Es scheint also, als ob im

Boden zerstreut sich zahlreiche encystierte Larven befinden. Eier

und geschlechtsreife Erdnematoden können der Austrocknung

nicht widerstehen. Die Nematoden wurden in Tropfkulturen von

Peptonlösungen gehalten. Genauer werden die Männchen der

hermaphroditen Nematodenarten und die Häufigkeit ihres Vor-

kommens beschrieben. Im Gegensatz zu den meisten herma-

phroditen Arten zeigt Diplogaster maupası das Auftreten einer

bedeutenden Zahl von Männchen (bis 30%). Die Gonade der

Hermaphroditen zeigt zuerst Bildung der Spermatozoen in dem

der Vagina zunächst gelegenen Teil der Gonade, wo dieser als

Hoden funktionierende Teil dann später zum Receptaculum seminis

wird. Doch kann bei R. gurneyi auch an anderen Stellen der

Gonade Spermatozoenbildung auftreten. Die männlichen Ge-

schlechtscharaktere sind sehr starken Variationen unter-

worfen. Die Produktion der Männchen ist cyklisch, indem Perioden

mit Generationen reiner Hermaphroditen, mit solchen, in welchen

Männchen ziemlich zahlreich sind, abwechseln. Es war unmöglich,

die Zahl der Männchen in den Kulturen durch Selektion zu ver-

größern. Wenn die Männchen am häufigsten, zeigte sich, ent-

gegen den Beobachtungen von Maupas bei Rhabditis, daß keine

Weibchen noch unvollständig hermaphrodite Individuen in den

betreffenden Kulturen erschienen. Während 46 Generationen

wurde bei Diplogaster maupasi Selbstbefruchtung beobachtet,

ohne daß Degenerationserscheinungen auftraten. Bei Rhabditis

gurneyi ist bei einzelnen Individuen eine bei anderen hermaphro-

diten Arten ungewöhnliche Eierproduktion beobachtet worden,

ebenso sind bei dieser Art, im Gegensatz zu obiger, Männchen

Publikationen und Referate. 219

nicht konstatiert worden, so daß dieselbe als die am ausschließ-

lichsten hemaphrodite Nematodenart erscheint.

Railliet, A., u. A. Henry (1). Les Thelazies, Nematodes

parasites de ’oeil. In: C. R. Soc. Biol. Paris, T. 68, p. 213—216.

S. — Verfasser beschreiben 5 Arten des Genus T'helazies Bose und

geben eine genaue Diagnose desselben. Die Arten bewohnen die

Anführgänge der Tränendrüsen der Säugetiere und gleiten häufig

unter die Augenlider. Außer Th. rhodesi (Desmarest) und Th.

lacrymalis (Gurlt) werden noch drei neue Arten beschrieben; s.

Kap. Systematik. Am Schlusse der Arbeit werden 6 weitere

Arten, die sich unter den Augenlidern der Vögel finden, als wahr-

scheinlich auch hierhergehörend bezeichnet.

— (2). Les Onchocerques, Nematodes parasites du tissus

conjonctif. In: Ibid. p. 248—251. 8. — Eine Reihe früher als

Filarıa oder Spiroptera bezeichnete Parasiten des Bindegewebes

der Säugetiere werden in das Genus Onchocerca Diesing gestellt,

das genauer charakterisiert wird. Außer O. reticulata Dies., O.

volvulus Leuckart, ©. armillata Raill. et Henry werden noch

2 neue Arten beschrieben; s. Kap. Systematik. 5 weitere Arten

werden aufgezählt, die wahrscheinlich ebenfalls in dieses

Genus gehören. Es wird am Schlusse das neue Genus Pelecitus

(Typus Spiroptera helicina Molin) kurz charakterisiert und 5 Arten

als hierhergehörend aufgezählt.

— (3). Nouvelles observations sur les Thelazies, Nematodes

parasites de l’oeil. In: Ibid. p. 783—785. 8. — In dieser Notiz

wird die Beschreibung von 7'h. leesei vervollständigt und eine

neue Art beschrieben.

— (4). Quelques Helminthes nouveaux ou peu connue du

groupe des Bunostomiens. In: Ibid. p. 311. S. — V. gab 1909

einen Versuch der Aufteilung der Familie der Strongylidae, welche er

dahin ändert, daß er statt 3, 4 Unterfamilien unterscheidet, es

sind dies: 1. Strongylinae (früheren Sclerostominae und Ankylo-

stominae), 2. Trichostrongylinae, 3. Metastrongylinae, 4. Pseudalinae.

Die beiden letzten Subfamilien werden wohl eine besondere Familie,

die der Metastrongylidae, zu bilden haben. In der Gruppe der

Bunostomeae, welche der Unterfamilie der Strongylinae angehört,

finden sich folgende 7 Genera: Bunostomum, Necator, Brachy-

clinus n. g., Gaigeria n. g., Eumonodontus nov. nom., Bathmo-

stomum und Grammocephalus n. g. Die 5 ersten Genera haben

nach R. kaum den Wert von Untergenera, während die beiden

letzten dagegen gute Genera sind. 2 neue Arten werden be-

schrieben.

— (5). Etude zoologique de l’oesophagostome de Thomas.

In: Annals of trop. Med. and Paras., vol. IV, 1910, p. 89—94,

P. VI. 8. — Oesophagostomum stephanostomum Stossich findet

sich beim Menschen, Chimpansen und Gorilla in 3 Varietäten,

deren Unterschiede in der Bursa des Männchens sich finden.

220 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Oesoph. stephanostomum Typus aus dem Gorilla, O. st. var. denti-

gera aus dem Chimpansen und O. st. var. ihomasi aus dem

Menschen.

Rißling. Beiträge zur Infektion der Schweine mit Trichi-

nellen, insbesondere zur Infektiosität des Kotes trichinöser Tiere.

In: Zeit. Tiermed., 14 .Bd., p. 279. — Nach einer sehr eingehenden

Literaturübersicht über die Arbeiten, welche die Übertragungs-

möglichkeit der Trichinose auf Schweine durch Verfütterung

ganzer Darmabschnitte oder durch Fäzes behandeln, gibt V. die

Resultate von 8 Versuchen an, bei welchen Fäzes trichinöser Tiere

verfüttert wurden. Das Resultat war ein negatives.

*Rodenwaldt, E. (1). Flaria Kuelziin.sp. In: Arch. Schiffs-

Tropenhyg., Leipzig, 14. Bd., p. 529—535, 6 Figg.

— (2). Filaria volvulus. In: Ibid., Leipzig, Bd. 12, 1908,

p- 701—702.

— (3). Differentialdiagnose zwischen Microfilaria nocturna

und diurna. In: Ibid., Bd. 13, 1909, p. 215—220, 1 Taf.

*Simond, Noc et Aubert. Filariose de la Martinique. In: Bul.

soc. path. exot. Paris, vol. 2, 1909, p. 319—323.

Southern, R. (1). The Gordii of Ireland. In: Irish Natural.,

vol. 18, 1909, p. 115—117. — Enthält einige Bemerkungen über

Parachordodes violaceus (Baird.) und Gordius villoti (Rosa).

—* (2). On the anatomy and lifehistory of Rhabditis

brassicae n. sp. In: Journ. Econ. Biol., London, vol. 4, 1909,

p- 91—95, Taf.

*Springfeld. Einige Bemerkungen über Anguillula intestinalis.

In: Berlin. Klin. Wochenschr., p. 1224.

*Stephens, J. W. On the supposed occurence of Filaria

immitis in Man. In: Ann. trop. Med. Parasitiol. Liverpool, vol. 2,

1909, p. 317—319.

*Ströse. Die Übertragung der Trichinen auf das Schwein.

In: Arbeiten aus dem Kaiserlichen Gesundheitsamte, Bd. XXXIL,

p. 109—126. — V. kommt zum Schlusse, daß für die Übertragung

der Trichinen von Tier zu Tier nur die in einem vorgeschrittenen

Stadium der Entwicklung befindlichen Muskeltrichinen in Be-

tracht kommen und daß den Exkrementen von Tieren, die Träger

von geschlechtsreifen Trichinen sind, eine Bedeutung für die Ver-

-breitung der Trichinose nicht beizumessen ist.

Sweet, G. s. Cestodes. — Von Nematoden des Huhnes

werden erwähnt Heterakis perspicillum (Rud.), H. papillosa (Bloch),

H. maculosa (Rud.) (?), Trichosoma retusum Raill., sowie eine

neue Oxyspirura-Art (s. Kap. S.).

*Toth, E. Die Anchylostomiasis-Frage in Uses: In:

Montan. Rdsch. Wien, Bd. 1, 1908—1909, p. 8$—10.

Uchida, 8. Honpo nite etaru Strongylidae. (Strongylidae

observed in Japan.) In: Dobts Z. Tokyo, vol. 21, 1909, p. 255 —265,

321—335, 2 pls.

Übersicht nach dem Stoff. 221

*Weinberg, M. et Brimont, E. Lesions de l’intestin produites

par le Gnathostome. In: Bull. soc. path. exot. Paris, vol. 2, 1909,

p. 104—106.

Weinberg, M., Löger, M. et Romanovitch (1). De la frequence

des helminthiases dans quelques regions de la France. In: C. R.

soc. biol. Paris, vol. 65, 1908, p. 427—428.

— (2). De l’existence en France, a l’e&tat endemique, d’une

enterite a anguillule intestinale. In: Ibid., p. 396—398.

*Weinberg, M. et Romanovitsch. Sur quelques helminthiases

observees & Tunis. In: Arch. Inst. Pasteur Tunis, vol. 4, 1909,

. 1—20.

# Weinberg, M. Oesophagostomose des Anthropoides et des

Singes inferieurs. In: Arch. Parasit., Paris, T. 13, 1909, p. 161

—203, 14 Figg., Taf. 1. — Die Oesophagostomosis ist häufig bei

Anthropoiden und niederen Affen. Bei Macacus sinicus und M.

cynomolgus hat V. sie bei 309—50%, der untersuchten Tiere be-

obachtet. Die Cysten enthalten junge bis vollständig ausge-

wachsene, aber nicht geschlechtsreife Würmer, welche wohl als

Larven durch die Blutgefäße nach dem Darm geführt werden,

wo sie sich in der Submucosa oder in der Muscularis des Dick-

darmes und des Blinddarmes festsetzen. Diese Cysten brechen

nach dem Colon auf, woselbst man dann die reifen Nematoden

findet. Nach den Beobachtungen von W. scheiden die Oeso-

phagostomen, wie die Sclerostomen des Pferdes ein Haemo-

toxin aus. “

Wesenberg, C. Uber eine eventuelle Brutpflege bei Gordius

aquaticus L. In: Internat. Revue Hydrobiol. Leipzig, 3. Bd.,

p. 122—127, 2 Figg. — V. beobachtete Knäuel von @. agquaticus,

aus d u. @ bestehend, in deren Innern sich Eischnüre befanden.

Da V. dies 12mal beobachtete und die Tiere in zwei Fällen

14 Tage zusammengeballt blieben, läßt sich darauf schließen,

daß es sich vielleicht um Brutpflege handelt.

Whyte, D. Filarial Periodieity and its Association with Eosino-

philia. In: Journal of trop. Med. and Hyg., vol. XII, 1909,

p. 175—182. — Die Zahl der Mikrofilarien im Blut des Menschen

beträgt 8 bis 143 pro cm?. Die maximale Zahl wird nicht not-

wendigerweise um Mitternacht erreicht. Es zeigt sich oft ein

Maximum von Leucocyten und Eeosinophilie, wenn die größte

Zahl von Mikrofilarien in den peripheren Blutgefäßen sich be-

finden.

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Alle systematischen Arbeiten (S) ent-

halten Angaben über Anatomie und oft auch über Histologie. Speziell

anatomische und histologische Arbeiten sind: Alessandrini, Glaue (1, 2),

Goldschmidt, Johnston u. Cleland, Leiper (1). — Entwicklungsgeschkichte:

Bataillon, Blankertz, Boveri, Edwards, Hirschler, Hogue.

222 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Systematik.

Neue Genera, Spezies und Synonyme. -

Acanthocheilonema dracunculoides Cobb. Revision der Genusdiagnose nach

dem Typus. Leiper (5).

Anguillula dryophila Leuck. muß als Varietät von A. aceti (Müll.) äuf-

gefaßt werden. de Man. — A. ludwigii n. sp. aus dem Schleimfluß der

Eichen. de Man.

Ascaris n. sp. aus Felis melas. Glaue (2). — A.n. sp. aus Felis serval. Glaue

(2). — A. n.sp. aus Felis pardochraus. Glaue (2).

Atractis perarmata n. Sp. aus Cinixys belliana. Linstow (1). — A. fasciolata

n. Sp. aus Cinixys belliana. Gendre.

Bachyclonus n. g. Bunostomum mit symmetrischer Bursa, hintere Rippen

dreifingerig, doch sind dieselben erst gegen ihr Ende getrennt. Der

gemeinsame Stamm ist lang, und die hinteren Rippen setzen sich in

seiner Mitte an. Vulva im vorderen Drittel des Körpers. Typische

Art: B.indicus n.sp. Railliet u. Henry (4). — B. indicus n. sp. aus

Tapirus indicus. Railliet u. Henry (4).

Belascaris n. g. Leiper 1907, s. Glaue (2).

Cephalobus brachyuris n.sp. Daday. — C. palustris n.sp. Daday. — C.

uncatus n. sp. Daday.

Chlamydonematidae N. Hegt. n.fam. Nierstrasz. — Chlamydonema n.g.

Ch. felinum n.sp. aus der Katze. Noordhoek Hegt, Niederstrasz.

Cobboldia vivipara n.g. n. sp. aus Hippopotamus. Leiper (4).

Crassisoma n.g. Alessandrini. — C. urosubulatum n. sp. aus Sus scrofa.

Alessandrini.

Cylichnostomum pugnicaudatum n. sp. aus Phacochoerus aeliani massaicus.

Leiper (6).

Diplogaster linstowi n. sp. Potts. — D. maupasi n. sp. Potts.

Dorylaimus africanus n.sp. Daday. — D. pachydermis n.sp. Daday.

Eumonodontus nov. nom. für Monodontus Molin. Railliet u. Henry (4).

Filaria mavis n. sp. aus Turdus musicus. Leiper (2). — F. hippopotami

n. sp. aus Hippopotamus. Leiper (4). — F. (Microfilaria) philippiensis

n. sp. in Homo sapiens. Craig.

Gaigeria n. g. Unterscheidet sich von Bunostomum durch die Organisation

der Bursa, deren seitliche Teile weniger stark entwickelt sind, während

der hintere Lappen sehr stark ist. Vulva etwas vor der Körpermitte.

Railliet u. Henry (4). — Typische Art: @. pachyscelis n. sp., typische

Art: aus Schaf und Ochs. Railliet u. Henry (4).

Grammocephalus n.g. Vorderende gegen den Rücken gebogen. Mund-

kapsel mit 2 ventralen Chitinlamellen und im Grunde sehr spitzige

Lanzetten. Spiculae kurz und dick. Typische Art: @. clathratus

(Baird). Railliet u. Henry (4).

Heterakis africana n. sp. aus Cinixys belliana. Gendre. — H. cylindrica

n. sp. aus Tetrao urogallus. Blome. — H. elegans n. sp. aus Chamaeleon

gracilis Hall. Gendre. — H. calcarata n. sp. aus Numida meleagris L.

Gendre. — H. leprincei n. sp. aus Macrodipteryx macrodipterus. Gendre.

Publikationen und Referate. "293

— H. similis n. sp. aus Coracias abyssinicus, Eurystomus afer, Scops

leucotis. Gendre.

Lagochiloscaris major n. sp. aus Felis leo sabakiensis. Leiper (6). — Er:

minor n. sp. aus Homo sapiens (Trinidad). Leiper (3).

Microfilaria gymnorhinae n. sp. aus Gymnorhina tibicen. Gliruth, Sweet,

Dodd.

Mononchus tenuis n. sp. Daday.

Nematodirus Hopkeni n. sp. aus Hippopotamus. Leiper (4).

Oesophagostomum dentigerum Raill. u. Henry ist eine Varietät (dentigera)

von Oes. stephanostomum. Railliet u. Henry (5). — Oes. stephanostomum

nov. var. thomasi aus dem Menschen. Railliet u. Henry (5).

Onchocerca cervicalis n. sp. aus Pferd. Railliet u. Henry (2). — O. fasciata

n. sp. aus Dromedar. Railliet u. Henry (2). — O. guiturosa n. Sp. aus

dem Rind. Neumann (2).

Oxyspirura parvovum n. sp. aus Gallus dom. Sweet.

Pelecitus n.g. Railliet u. Henry (2). — P. africanus n. sp. Daday.

Pseudalius ovatus n. sp. aus Delphinus tursio. Linstow (2).

Rhabditis brassicae n. sp. Southern (2). — R. gurneyi n.sp. Potts. — R.

sechellensis n. sp. Potts,

Strongylidae. Klassifikation s. Railliet (5).

Strongylus gibsoni n. sp. aus Homo sapiens. Stephens.

Thelazia callipaeda n. sp. aus dem Hund. Railliet u. Henry (3). — Th.

gulosa n. sp. aus dem Ochsen. Railliet u. Henry (1). — Th. alfortensis

n. sp. aus dem Ochsen. Railliet u. Henry (1). — Th. leesei n. sp. aus

dem Kamel. Railliet u. Henry (1).

Tozxascaris n. g. Leiper 1907 s. Glaue (2).

Trichosoma papillosum n. sp. aus Tetrao urogallus. Blome.

Trilobus graciloides n. SP. Daday.

IV. Acanthocephales.

Publikationen und Referate.

Brady, St. 6. A Revision of the british species of Ostracod

Crustacea belonging to the Subfamilies Candoninae and Herpeto-

cypridinae (With a note on a parasitic Worm by Miss N. Lebour).

In: Proceed. of the zool. soc. of London, 1910, s. p. 198, Taf. XXX.

— In dieser Arbeit erwähnt V. aus Candona angulata Müller

Cysten, welche junge Neorhynchus claviceps Zaidach enthielten.

Es ist Condona ein neuer Wirt für diese Larve.

Daday, E. v. Die Süßwasser-Mikrofauna. Deutsch-Ost-

Afrika. In: Zoologica, Heft 59, 1910. 8. — V. beschreibt eine

Echinorhynchenlarve aus einem Ostracoden (Oypridopsis costata

Vavr.). Die Form ist interessant, weil ihre Entwicklung schon

ziemlich weit gediehen und besonders zwei Ovarien deutlich sicht-

bar sind; ferner zeigt der Rüssel zweierlei Haken.

Lebour, N. s. Brady.

No6, G. Sur la spermatogenese du Giganthorhynchus gigas.

In: Arch. Ital. Biol., T. 53, p. 315—317.

224 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Porta, A. Acantocefalinuoviopoconoti. In:Z. Anz., 35. Bd.,

p. 699— 703, 4 Figg. 8. — V. beschreibt mehrere neue Arten von

Acanthocephalen und gibt am Schlusse für einige Arten neue

Wirte an.

Riquier, 6. €. Lo sviluppo del Pomphorhynchus laevis Zoega

ottenuto sperimentalmente nell’ Esox lucius. In: Atti Soc. Ligust.

Sc. N. Genova, vol. 20, 1909, p. 61—70. — V. machte mit den

in dem neuen Zwischenwirte Tinca vulgaris gefundenen Larven von

Pomphorhynchus laevis Fütterungsversuche am Hecht, welche

ergaben, daß dieselben nach 65 Tagen ihre Geschlechtsreife er-

langen und nach etwa 3 Monaten ihre maximale Größe erreicht

haben.

Voss, Hermann von. Beitrag zur Kenntnis der Eireifung

bei den Acanthocephalen. In: Archiv f. Zellforsch., 5. Bd., 1910,

p. 430—448, 11 Textfigg., Taf. XXIII. — V. studiert namentlich

die Dotterkernbildung in den Eiern von Zchinorhynchus proteus,

der, entgegen der Ansicht vieler Autoren, hier nicht nucleären

Ursprungs ist, sondern aus von außen aufgenommenem Material

stammt. Es werden in den Ovarialscheiben degenerierte Eizellen

beobachtet mit riesigem Nucleolus, während Chromatinsubstanz in

Form von Chromosomen fehlt.

Systematik.

Neue Arten.

Echinorhynchus centropi n.sp. aus Centropus senegalensis L. Porta. —

Ech. rosai n.sp. aus Erinaceus europaeus L. Porta. — Ech. totani

n.sp. aus Totanus canescens. Porta.

Corynosoma marchii n.sp. aus Cinclus aquaticus. Porta. „

Allgemeines.

Galli-Valerio, Be Notes de parasitologie et de technique

parasitologique. In: Centralbl. Bakt., 1. Abt., 56. Bd. Orig.,

p. 43—47, Fig. — V. gibt eine Liste von ihm beobachteten

Parasiten (Cestoden, Trematoden und Nematoden).

Johnston, T. H. On Australian avian Zntozoa. In: Journal

and Proc. of the Royal Soc. of N. S. Wales, vol. 44, 1910, p. 84

—122. 8. — Die Arbeit ist eine interessante Zusammenstellung

aller bei australischen Vögeln gefundenen Endoparasiten (Pro-

tozoen, Trematoden, Cestoden, Nematoden, Acanthocephalen).

Linton, E. Notes on the flesh parasites of marine food fishes.

In: Bulletin of the Bureau of Fisheries, vol. XXVIII, 1908, 1910,

p. 1197—1209. — Im Fleische der Fische kommen Sporozoen,

Nematoden, Trematoden und Cestoden vor, doch nur der Butter-

fisch zeigt häufig Parasiten in seiner Muskulatur (Larve von

Othobothrium crenacolle).

Ward, H.B. (1). Internal parasites of the Sebago Salmon.

In: Bulletin of the Bureau of Fisheries, vol. XX VIII, 1908, 1910,

Verzeichnis der Wirtstiere. 225

p. 1151—1194, pl. CXXI. 8. — V. gibt zunächst eine Zusammen-

stellung der Parasiten des Salmo salar, worauf er diejenigen des

Sebagolachses bespricht, welcher nicht nach dem Meere wandert

und deshalb, entgegen dem Salmo salar, keine Parasiten marinen

Ursprungs aufweist. Es wurden nur 1 Trematode, 2 Cestoden,

4 Cestodenlarven und 2 Nematoden gefunden. W. kommt zum

Schlusse, daß die Parasitenfauna eines jeden Tieres in erster

Linie vom Wohnort abhängt. Es wird eingehend ein neuer Trema-

tode, ein neuer Cestode und eine neue Cestodenlarve beschrieben.

— (2). Recent Progress in Parasitology. In: Trans. of the

American microsc. Soc., vol. 29, p. 119—158, 1910. — Nach

einigen einleitenden Worten über die speziell Parasiten studierenden

Institute, Kommissionen und Expeditionen bespricht V. die

wichtigsten Arbeiten, welche auf dem Gebiete der parasitischen

Protozoen, Plathelminthen und Nematoden in den letzten zwei

Jahren erschienen sind. Zum Schlusse bespricht Verfasser noch

die wichtigsten Arbeiten über blutsaugende und parasitische

Krankheiten übertragende Insekten.

Verzeichnis der Wirtstiere

aus welchen neue Arten von Trematoden, Cestoden, Nemathelminthen und

Acanthocephalen beschrieben wurden.

Säugetiere:

Bos indicus: Cauliorchis cauliorchis n.sp., Paramphistomum crassum

n. Sp, P. indicum n. sp., P. parvipapillatum n. Sp., P. siamensis n. SP.

Stiles u. Goldberger.

Bos keraban: Fischoederius fischoederi n. g. n. Sp., F. ceylonensis n. Sp.

Stiles u. Goldberger.

Bos spec.: Fischoederius siamensis n. sp. Stiles u. Goldberger.

Buffelus indicus: Paramphistomum fraternum n. sp. Stiles u. Goldberger.

Canis dom.: Toaenia balaniceps n. sp. Hall (4). Thelazia callipaeda n. sp.

Railliet u. Henry (1).

Cervicapra bohor: Wellmanius wellmani n.sp. Stiles u. Goldberger.

Cervus eldi: Paramphistomum papilligerum n. Sp., P. shipleyi n. sp. Stiles

u. Goldberger.

Cynictis penicillata: Dipylidium zschokkei n.sp. Hungerbühler.

Delphinus tursio: Pseudalius ovatus n. sp. Linstow (2).

Dromedar: Onchocerca fasciata n.sp. Railliet u. Henry (2).

Elephas africanus: Amphistomum bicaudatum n. sp., Distomum kerandeli

n.sp. Poirier.

Erinaceus europaeus: Echinorhynchus rosai n. sp. Porta.

Felis concolor, F. tigrina, F. jaguarundi: Taenia omissa n. sp. Lühe.

Felis leo sabakiensis: Lagochilascaris major n. sp. Leiper (6).

Felis minuta: Platynosomum Jastosum n.sp. Kossak.

Hippopotamus: Gastrothylax cerueiformis n.sp., Paramphistomum buxi-

/rons n.sp., P. minutum n.sp, P. pisum n.sp., P. sellsi n.sp, P.

Archiv für Naturgeschichte 15

1911. VI. 1.

226 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

wagandi n. sp. Leiper. Cobboldia vivipara n. sp. Filaria hippopotami

n. Sp, Nematodirus hopkeni n. sp. Leiper (4).

Homo sapiens: Fascioletta ilocana n.g. n.sp. Garrison. Fasciolopsis

goddardi n.sp. Ward. Schistosomum americanum n. sp. Peraja da

Silva. Microfilaria philippiensis n. sp. Craig. Lagochilascaris minor

n. sp. Leiper (3). Oesophagostomum stephanostomum n. var. thomasi.

Railliet u Henry (5). Strongylus gibsoni n. sp. Stephens.

Kamel: Thelazia leesei n.sp. Railliet u. Henry.

Katze: Chlamydonema felinum n. g. n.sp. Noordhoek Hegt Nierstrasz.

Lynx rufusmaculatus: Toaenia balaniceps n.sp. Hall (4).

Ovies aries: Cotylophoron indicum n.g. n.sp. Stiles u. Goldberger.

Pferd: Onchocerca cervicalis n.sp. Railliet u. Henry (2).

Phacochoerus aeliani massaicus: Cylichnostomum pugnicaudatum n. Sp.

Leiper (6).

Phocaena communis: Distomum gastrophilum n. sp. Kossak.

Procavia spec.: Inermicapsifer settii n. Sp«, I. interpositus n. sp. Janicki.

Rind: Gaigeria pachyscelis n.g. n.sp. Railliet u. Henry (4). Onchocerca

gutturosa n. sp. Neumann (2). Thalazia gulosa n. sp., Th. alfortensis

n. sp. Railliet (1).

Schaf: Gaigeria pachyscelis n.g. n. sp. Railliet u. Henry (4).

Sorex fodiens: Opisthioglyphe locellus n. sp. Kossak,

Sus scrofa: Crassisoma urosubulatum n.g. n. sp. Alessandrini.

Taprus indicus: Bachyclonus indicus n. sp. Railliet u. Henry (1).

Vögel.

Anas crecca: Hrymenolepis trichorhynchus n. sp. Yoshida.

Arenaria spec.: Echinostephilla virgula n.g. n.sp. Lebour (3).

Centropus senegalensis: Echinorhynchus centropi n. sp. Porta.

Ceryle rudis: Pseudechinostomum incoronatum n. sp. Odhner (1).

Charadius hiaticola: Trichocephaloides charadrii n. sp. Lavroff.

Cinclus aquaticus: Corynosoma marchiüi n.sp. Porta.

Coracias abyssinicus: Heterakis similis n. sp. Gendre.

Ephippiorhynchus: Ech nostomum sudanense n.sp. Odhner (6).

Eurystomus afer: Hetrakis similis n. sp. Gendre.

Gallus dom.: Davainea varians n. sp. Sweet. Hiymenolepis exigua N. SPes

H. inermis n.sp. Yoshida. Oxyspirura parvovum n. sp. Sweet.

Gymnorhina tibiceen: Microfilaria gymnorhinae n.sp. Gliruth, Sweet u.

Dodd.

Macrodipteryx macrodipterus: Heterakis leprincei n. sp. Gendre.

Numida meleagris: Heterakis calcarata n. sp. Gendre.

Numida philorhynchus: Dicrocoelium macrostomum n.sp. Odhner (6).

Parra africana: Echinostomum niloticum n.sp. Odhner (6).

Phalacrocorax africanus: Echinostomum variospinosum n. Sp«, E. lobulatum

n.sp. Odhner (6).

Pseudotantalus ibis: Allechinostomum famelicum n.g. n.sp. Odhner (6).

Pteroclurus namaqua: Davainea leptotrachela n.sp. Hungerbühler.

Raubvogel: JIdiogenes horridus Fuhrm. africanus n. var. Hungerbühler.

Scops lemotis: Heterakis similis n. sp. Gendre.

Verzeichnis der Wirtstiere. 227

Tetrao urogallus: Heterakis eylindrica n. sp., Trichosoma papillosum n. Sp.

Blome.

Theristacus hagedash: Echinoparyphium volvulus n.sp. Odhner (6).

Totanus canescens: Echinorhynchus totani n. sp. Porta.

Turdus musicus: Filaria mavis n. sp. Leiper (2).

Reptilien.

Caretta caretta: Pachypsolus ovalis n.sp. Linton (1).

Chamaeleon gracilis: Heterakis elegans n. sp. Gendre.

Cinizys belliana: Atractis perarmata n. sp. Linstoew (1). A. fasciolata n. Sp.,

Heterakis africana n. sp. Gendre.

Crocodilus niloticus: Echinostomum ornatum n.Sp., Oistomum caducens

Odh. Odhner (6).

Elaps spec.: Haplometroides buccicola n.g. n.sp. Odhner (6).

Gymnodactylus geckoides: Paradistomum cabusculum n.g. n.sp. Kossak.

Amphibien.

Amblystoma tigrinum: Proteocephalus filaroides n. sp. Larue.

Rana adspersa: Proteocephalus (Ichthyotaenia) schultzei n. sp. Hungerbühler.

Rana esculenta: Cephalogonimus europaeus n. sp. Blaizot.

Fische.

Abudefduf sazatilis: Deratrema fusillus n.g. n. sp. Linton (1).

Ambloplytes rupestris: Cryptogonimus chyli n.g. n.sp. Osborn.

Anarrhichas lupus: Acanthopsolus lageniformis n.sp. Lebour. Zoogonus

rubellus n. sp. Nicoll (2).

Angelichthys wrabelita: Barıisomum erubescens n.g. n.Sp., Himasomum

candidulum n. g. n. Sp., Antorchis urna n.g. n.sp. Linton (1).

Anisotremus virginicus: Hansacreodium mutabile n.g. n.sp., H. oscitans

n. sp., Leurodera decora n.g. n.sp. Linton (1).

Calamus calamus: Brachadena pyriformis n.g. n.sp., Diplangus pazillus

n.8g. n.Sp., Pycnadena latus n.g. n.sp., Helicometrina nimia n.g.

n. Sp., Lebouria crassigula n.sp., Stephanorhasmus casus n.8. N. SP»

Linton (1).

Chlorichthys bifasciatus: Helicometra execta n.g. n.sp. Linton (8)

Olupanodon pseudohispanicus: Eetenurus virgula n.sp., Prodistomum

gracile n.g. n.sp., Hemiurus merus n.sp. Linton (1).

Epinephelus morio: Helicometra torta n.g..sp. Linton ( 1).

Epinephelus striatus: Helicometra torta n. sp.,; Stephanochasmus casus n. 8.

n.sp. Linton (1).

Epinephelus tauvina: Phyllodistomum unicum n. sp. Odhner (6).

Eupomacentrus leucostietus: Helicometrina nimia n.g.n. sp. Linton (1).

Gymnarchus niloticus: Phyllodistomum linguale Odhner. Odhner (6).

Haemulon macrostomum, H. plumieri, H. sciurus: Helicometra execta n. &

n. Sp.» Brachodena pyriformis n.g. n.sp., Diplangus pazillus n.g.

n. Sp., Genolopa ampullacea n.8g. n.Sp., G. truncata n. sp., Leurodera

decora n. g. n. sp., Haemacreadium erysmetum n.g. n.Sp., H. oscitans

u.g. n.sp. Linton (1).

15*

223 Trematodes, Cestodes, Nemathelminthes, Acanthocephales für 1910.

Haemulon macrostomum: Deratrema fusillus n.g. n.sp. Linton (1).

Haemulon plumieri, H. sciurus: Stephanochasmus sentus n. g. n. sp. Linton (1).

Iridio bivittatus: Helicometra execta n.g. n.sp. Linton (1).

Kyphosus secsoatrix: Enenterum aureum n.8. n.Sp., Megalowlena estrix

n. 8. n. Sp., Deontocylix ovalis n.g. n. sp., Opisthadema dimidia n. 8.

n.sp. Linton (1).

Labrus miztus: Allocreadium colligatum n.sp. Wallin.

Lachnolaimus mazimus: Helicometra execta n.g. n.sp. Linton (1).

Lactophrys triqueter: Xystretum papillosum n. sp. Linton (1).

Lycodontis funebris, L. moringa: Dictysacea virens n. sp. n.g., Dinurus

rubens n.sp. Linton (1).

Malapterurus electricus: Catoptroides spatulaeformis n. sp. Odhner (6).

Micropterus dolmien: Cryptogonimus chyli n.g. n.sp. Osborn.

Mola mola: Dihemistephanus Iydiae n.sp. Nicoll (2).

Myliobatis freminvillei: Monocotyle floridana n.sp. Pratt (1).

Neomaenis analis: Metadena crassulata n. g. n. Sp., Stephanochasmus casus

n.g. n.sp. Linton (1).

Neomaenis apodus: Hamacreadium mutabile n.g. n.sp. Linton (1).

Neomaenis griseus: Helicometrina nimia n.g. n. Sp. Lechradena edentula

n.8. n.sp., Hamacreadium qgueella n.g. n.Sp., H. mutabile n. Sp.

Leurodera decora n.g. n. Sp., Microcotyle incisa n. Sp., Stegopa globosa

n. 8. n.Sp., Stephanochasmus casus n.g. n.sp. Linton (1).

Ocyurus chrysurus: Helicometrina nimian. g. n. Sp., Stephanochasmus casus

n.8. n.Sp., Hamacreadium mutabile n.g. n.sp., Deratrema fusillus

n.8. n.sp. Linton (1).

Polypterus bichir: Callodistomum diaphanum n.sp. Odhner (6).

‚Pomacanthus arcuatus: Oleptodiscus reticulatus n.g. n.sp., Theletrum

fustiforme n. g. n. sp., Barisomum erubescens n. g. n. Sp., Himasomum

candidulum n.g.n.sp. Antorchis urna n. g.n. sp., Hamacreadium mutabile

n.g.n.sp. Linton (1).

Salmo sebago: Azygia sebago n. Sp., Proteocephalus pusillus n. Sp., Spar-

ganum sebago n.sp. Ward (1).

Scarus caeruleus, S. croicensis, S. spec.: Deradena obtusa n. g.n. sp. Linton (1).

Scarus croicensis: Barisomum erubescens n. g. n.sp. Linton (1).

Semotilus bullaris: Allocreadium lobatum n. sp. Wallin.

Synodontis schall: Cholepotes ovofarctus n.g. n.sp. Odhner (6).

Teuthis caeruleus, T. hepatus: Deradena obtusa n.g. n.sp., Hapladena

varıq n.g. n.sp. Linton (1).

Teuthis caeruleus: Dichadena acuta n.g. n.sp., Hysterolecitha rosea n. 8.

n. Sp., Macradena perfecta n.g. n. sp., Mesolecitha linearis n. g. n. Sp.

Linton (1).

Teuthis hepatus: Hwysterolecitha rosea n.g. n.Sp., Leurodera decora n.8g.

n.sp. Linton (1).

Tylosurus marinus: Deradena acuta n.g. n.sp. Linton (1).

Invertebraten.

'Alebion carchariae: Calinella craneola n.g. n.sp. Monticelli.

Argulus (des Neomaenis griseus): Udonella socialis n. sp. Linton (1).

Verzeichnis der Wirtstiere.

Diaptomus spee.: Cereocystis dendrocercus n.larva. Daday.

Diaptomus africanus: FPlerocercus africanus n.larva. Daday.

Mesopsylla eucta (Floh): Cysticercoid nov. Dampf.

Pflanzen.

Eichen: Anguillula ludwigii n. sp. de Man.

Freilebende Trematodenlarven und Nematoden.

Cephalobus brachyuris n. Sp., ©. palustris n. sp., C©. uncatus n. Sp.

(Süßwasser).

Cercaria schizocerca n. Sp., C. hoplophora n.sp. Daday. (Süßwasser).

Diplogaster linstowi n. sp, D. maupasi n. sp. Potts. (terrestrisch).

229

Daday.

Dorylaimus africanus n. sp, D. pachydermis n.sp. Daday. (Süßwasser).

Monochus tenuis n.sp. Daday. (Süßwasser).

Plectus africanus n.sp. Daday. (Süßwasser).

Rhabditis gurneyi n. Sp., R. sechellensis n. sp. Potts. (terrestrisch).

Trilobus graciloides n.sp. Daday. (Süßwasser).

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ARCHIV

NATURGESCHICHTE.

GEGRÜNDET VON A. F.A. WIEGMANN,

FORTGESETZT VON

W. F.ERICHSON, F.H. TROSCHEL,

E. VON MARTENS, F. HILGENDORF,

W. WELTNER unD E. STRAND.

>>-

SIEBENUNDSIEBZIGSTER JAHRGANG.

1911.

VI. BAND. 2. HEFT.

HERAUSGEGEBEN

VON

EMBRIK STRAND

KÖNIGL. ZOOLOG. MUSEUM ZU BERUIN.

NICOLAISCHE

VERLAGS-BUCHHANDLUNG R. STRICKER

BERLIN.

Inhaltsverzeichnis.

Jahresberichte für 1910 und z. T. 1911.

Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910 Strand

Ctenophora für 1910 und 1911... ... .. .. . Zaackmann

Siphonophora für 1910 und 1911... . . . . . Laackmann

Graptolitida für 1910 und 1911. . . . . 2... . Laackmann

Hydromedusae für 1910 ......... 20. . Schepokerf

- Seyphomedusae für 1910 . . » 2 2 2..2..2.2.2..2.. Schepotieff

Anthozoa sur 1910 .... 2 en ae Noel en. Da

Sonne REN IILO helle ee ll) ne hen en tn Zee

Protozoa (mit Ausschluß der Foraminifera) für 1910 Nägler

Foraminifera für 1910 und 1911 ..... 0... Laackmann

Seite

113

. 123

146

339

Echinodermata

(mit Einschluß der fossilen)

für 1910.

Von

Embrik Strand.

(Berlin, Königl. Zoolog. Museum.)

Publikationen und Referate.

Acloque, A. Le developpement des Echinodermes. In:

Cosmos (Paris), N. S. 60, p. 569—571, 3 Figg. (1909).

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tAiraghi, Carlo (1). Revisione degli Asteroide e degli echinidi

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Figg.

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43, fasc. 15, p. 499—503.

Allen, E. J. On the artificial culture of marine Plancton or-

ganisms. In: Journ. mar. biol. Assoc. Plymouth, N. S., vol. 8,

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Allen, E. J. and Nelson, E. W. On the artificial culture of

marine plankton organisms. In: Quart. Journ. mier. sci. (N. S.)

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lacanthus, 1 Diadema, 1 Echinothrix, 1 Astropyga, 1 Asthenosoma,

1 Echinometra, 4 Salmacis, 1 Mespilia, 3 Lagunum, 1 Lovenia;

1 Archaster, 1 Craspidaster, 3 Astropecten, 2 Lwidia, 1 Goniodiscus,

1 Stellaster, 2 Anthenea, 5 Pentaceros, 1 Palmipes, 1 Fromia, 1 Re-

taster, 1 Echinaster.

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1 Goniocidaris, 1 Echinothrix, 1 Astropyga, 1 Chaetodiadema,

1 Echinometra, 1 Echinostrephus, 1 Microcyphus, 2 Salmacıs,

1 Toxopneustes, 2 Clypeaster, 2 Laganum, 1 Echinodiscus, 1 Maretia,

1 Lovenia, 1 Brissopsis, 1 Schizaster.

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metra, Stenometra, Comanthina n. subg. — Bei der Untersuchung

dieses Materiales könnten eine Anzahl vorläufige Notizen über

einen Teil desselben von P. H. Carpenter sowie viele Nomina nuda

von C. F. Lütken identifiziert oder erklärt werden. — Von Singapore

war wertvolles Material vorhanden. — In der Einleitung bespricht

Verf. die Möglichkeit (,‚possibility, though, it must be admitted,

extremely remote‘ ‘) einer jahreszeitlichen” Wanderung der litoralen

Comatuliden Ostindiens. Über die allgemeinen Verbreitungs-

möglichkeiten der Crinoiden. Über einige ecologische "Theorien

betreffend Uintaerinus.

— (2). The origin of the Crinoidal muscular articulations.

In: Amer. Journ. Sc., 29, p. 40—44, 5 Figg.

— (3). On the origin of certain types of Crinoid stems. In:

Proc. U. S. Nat. Mus., 38, p. 211—216.

— (4). The phylogenetie interrelationships of the recent

Crinoids. In: Proc. U. S. Nat. Mus., 38, p. 115—118. — Verf.

findet, daß bei den rezenten Crinoiden ‚the stems offer the best

ceriteria for tracing out phylogenetie relationsships“. ‚Next in

importance to the stems come the basals, and using these two

structures alone me can form a very satisfactory phylogenetic

tree“. Dementsprechend teilt Verf. die rezenten Crinoiden in

drei scharf differenzierte Gruppen: 1. Holopus, 2. Phrynocrinus,

Ptilocrinus, Calamocrinus, Hyocrinus, Gephyrocrinus, Bathyerinus,

Rhizocrinus, ‘3. Comatulida, Pentacrinitidae.

— (5). A new Crinoid from the Salomon Islands. In: Proc.

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— (7). Proisoerinus, a new Genus of recent Crinoids. Ebenda,

p. 387—390. 3 Figg. — Proisocrinus ruberrimus n. g. N. Sp.

— (8). The striet application of the law of priority to generie

names. In: Science, N. S8., vol. 31, p. 145—6. — Beispiel:

Enerinus.

Publikationen und Referate. 7

— (9). An interesting structural analogy. In: Ann. mag.

nat. hist., (8) 5, p. 358—361, 2 Figg. — Analogie in der Ausbildung

des sogenannten Schneeschuhes an den Zehen von Bonasa und der

Entwicklung von Seitenplatten und Deckplatten an den Pinnulen

der Thalassometriden.

— (10). The probable origin of Crinoidal nervous system.

In: Amer. Natural, 44, p. 243—244. — Führt das Nervensystem

der Crinoiden auf das der Arthropoden zurück.

— (11). Remarks on the pentamerous symmetry of the

Crinoidea. In: Amer. Journ. Sei., 29, p. 353—357, 1 Fig. — Die

pentamere Symmetrie der Crinoiden ist entstanden aus der ur-

sprünglichen bilateralen Vierstrahligkeit dadurch, daß ein Strahl

zwischen die zwei vorderen bilateralen eingeschoben ist.

— (12). On the type specimen of the Crinoid described by

Müller as Alecto purpurea. In: Proc. biolog. Soc. Washington, 23,

p- 95—98, 1 Fig.

— (13). A new European Crinoid. In: Proc. U. S. Nat.

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— (14). Five new species of recent unstalked Crinoids. In:

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phora n. Sp., von multispina Koehl. und supplicans Lym. durch die

Form der Armplatten etc. abweichend.

— (3). Ophiurans and ‚‚Jordan’s Law“. In: Science, N. S.,

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— (4). The development of an apodous Holothurian (Chiro-

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lung genannter Art im Vergleich zu Synaptula hydriformis.

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Science (2) 31, p. 474. — Objekte: Ophiocoma risei, echinata und

Ophiura appressa. — Die Umkehr der Rückenlage in die normale

Lage wird zum wesentlichen Teil durch die Drehung der Arme

am proximalen Ende ermöglicht. Gegen helles Licht verhalten

genannte Arten sich negativ. Beim Kriechen kann jeder Arm

die Führung übernehmen.

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sicht der gesamten von Dänen publizierten zoologischen Literatur

während der angegebenen Zeit; ganz populäre Aufsätze sind nicht

mitgenommen worden. Durch ein systematisches Sachregister

(p. 244) und ein alphabetisches Verzeichnis der von Dänen 1876

bis 1906 aufgestellten neuen Gattungen und Arten (p. 187) kann

Publikationen und Referate. 9

man die Echinodermata behandelnde Literatur leicht auffinden.

— Cf. auch Sachregister p. 230.

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tiques. Absence de repliement et de metasyndese. Les stades

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„complex semi-fluid colloidal system‘‘ mit einer halb durch-

lässigen Plasmamembran, die der Sitz einer elektrischen Polari-

sation ist. Die Zellteilung fängt an mit einer ‚kritischen‘ Zu-

nahme der Durchlässigkeit der Membran.

— (2). The action of isotonie solutions of neutral salts on

unfertilized Echinoderm eggs. (Proc. Amer. Phys. Soc.) In:

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lionen auf das Seeigelei mittels Cyankalium. Ebenda, 29, p. 279

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— (5). Über die Hemmung der Giftwirkung von Hydroxy-

lionen auf das unbefruchtete Seeigelei mittels Sauerstoffmangel.

Ebenda, p. 289-292. — Die cytolytische Wirkung einer alka-

lischen Chlornatriumlösung auf das befruchtete Ei wird durch

Sauerstoffmangel wenigstens verzögert.

— (6). und Wasteneys, Hardolph. Sind die Oxydations-

vorgänge die unabhängige Variable in den Lebenserscheinungen ?

Ebenda, 36, p. 345—356. — Über die Abhängigkeit der Ent-

wicklung des Arbacia-Eies von Oxydationsprozessen.

— (7). Über den Einfluß der Konzentration der Hydroxy-

lionen in einer Chlornatriumlösung auf die relative entgiftende

Wirkung von Kalium und Kalzium. In: Biochem. Zeits., 28,

p. 176—180.

— (8). Über die Hemmung der zerstörenden Wirkung neu-

traler Salzlösungen auf das befruchtete Ei mittels Cyankalium.

Ebenda, 27, p. 304—310.

22 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

— {9). und Wasteneys, H. Warum hemmt Natriumzyanid

die Giftwirkung einer Chlornatriumlösung für das Seeigelei ?

Ebenda, 28, p. 340—349. — Bemerkungen zu dieser Arbeit von

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glichen mit den Pluteen der reinen Züchten derselben 2 9. Daß

im Bastard entweder die väterliche oder mütterliche Form über-

wiegt ist nicht wahr; es sind vielmehr nur bestimmte Merkmale

dominant, die durch das Ei oder das Spermium übertragen

sein können.

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gestatten. Cheirasteridae n.fam.: Pontaster 2, Pectinaster 7,

Luidiaster 5, Cheiraster 9, Marcelaster 1, Gaußaster 1. Bentho-

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about coordination. Hypothesis of psychoid centre for Starfish

untenable.

— (2). The temperature coefficient of the duration of life

in Tubularia crocea. In: Arch. Entw.-Mech., 29, p. 287—289. —

„The same as that found in sea urchin eggs‘“.

— (3). On the righting movements of the starfish. In:

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Gegen die unbedingte Priorität. Gibt die typische Art flg. Gat-

tungen an, die Verf, im Streit mit dem Prioritätsgesetze festgelegt

haben will: Phyllacanthus, Arbacia, Diadema, Strongylocentrotus,

Echinus, Echinocyamus, Fibularia, Spatangus, Echinocardium,

Schizaster, Brissopsis.

— (2). Echinological Notes. I. On the ‚Cystacanths”.

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West ice a In: Vidensk. Medd. naturh. Foren. Kjöben-

havn, (7) 2 203—209, 1 pl., 2 Figg. — Ist vielleicht die kleinste

bekannte Orkan Ist eine isoliert stehende Form. — Gattungs-

diagnose: „Disk very small, covered with few large plates, the

„primaries‘‘ being very conspicuous, while the radial shields are

very small. Buccal shields nearly vertically placed. A single,

large mouth-papilla to each side of mouth-angle; one tooth. No

bursae. Ventral plates well developed, dorsal arm-plates wanting.

Spines smooth. Pores continuing to the end of the arm, the

papillae like the arm-spines, except that on the first pore. Vertebrae

26 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

only partly coalesced. The disk is very easily thrown off through

autotomy.“

— (4). Arbaciella elegans. Eine neue Echiniden-Gattung

aus der Familie Arbaciidae. In: Mitt. nat. Mus. Hamburg, 27,

p. 327—342, 2 Taf., 3 Figg. — Arbaciella n.g.: Schale klein,

halbkugelförmig. Apikalfeld nicht besonders groß, nur ein Drittel

des Schalendurchmessers einnehmend. Analfeld mit 4 Platten.

Apikalseite nur mit Epistromawärzchen und Pedicellarien. Die

Stacheln, die nur an der ÖOralseite vorkommen, sind flach, mit

wohlentwickelten Käppchen. Primäre Interambulacralplatte

nicht in die Medianlinie des Interambulacralfeldes hineinragend.

Poren an der Oralseite bogenförmig, an der Apikalseite linear

geordnet. Mundhaut mit zerstreuten feinen Platten außerhalb der

Buccalplatten. Nur opicephale Pedicellarien bekannt. — Type:

A.elegansn. sp. Kongoküste.

— (5). On some West Indian Echinoids. Bull. 74 of the

United States Nat. Mus. 31 pp., 4°, 17 plates. — Beschreibt mit

bekannter Gründlichkeit und bildet schön ab je eine Art der

Gattungen Calocidaris, Tretocidaris, Stylocidaris, Cidaris (auch

1 var.n.), Araeosoma und Diadema. Pag. 22 ist eine „Revised

list of the Echinoids known to occur in the American region of

the North Atlantie and in the West Indies‘; diese enthält 82 Arten.

Darunter findet sich die arktisch circumpolare Strongylocentrotus

droebachiensis, die fast kosmopolitische Echinocardium cordatum,

weit verbreitete Arten wie Echinus elegans, alexandri, affinis,

Araeosoma jenestratum etc.

Mortensen, Th. et Rosenvinge, L. K. Sur quelques plantes

parasites dans les Echinodermes. In: Vidensk. Selsk. Forh.

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Coccomyxa ophiura lebt parasitisch bei Ophioglypha texiurata und

albida, vielleicht auch bei Solaster endeca. Dagegen ist sie nicht

die Ursache der grünen Verfärbung bei Clypeastriden (Echino-

cyamus pusillus). BRosenvinge beschreibt die Alge. — Echino-

phyces mirabilis Mrtsn. (p. 349 sq.) lebt in den Stacheln von

Rhynchocidaris triplopora Mrtsn. und bewirkt eine Verlagerung

der Geschlechtsöffnungen genannter Art und der Ctenocidaris

speciosa Mrtsn., bei welcher die Echinophyces ebenfalls vorkommt.

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ventralen und dorsalen Körperteile gehen stets aus gesonderten

Anlagen hervor, die sich weder im Ei noch später gegenseitig voll

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miliaris (L.). Beschreibung der Mikropyle in der Gallerthülle des

Eies und ihre Rolle bei der Befruchtung. — Es wird hervorgehoben,

daß es, um die feinere Struktur des Eies kennen zu lernen, nicht

genügt, das reife Ei allein zu studieren, sondern auch die vorher-

gehenden Stadien müssen berücksichtigt werden. Wichtig ist es,

die das Ei umgebenden Häute und Membrane, und zwar auch ihre

Entwicklung, zu studieren. Schon in frühem Stadium des Ovarial-

eies bildet sich um dasselbe eine gelatinöse, klare Membran, die

in älteren Stadien immer völlig entwickelt vorhanden ist. Gefärbt

wurde diese Membran mit einer schwachen Metylenblaulösung. —

Wie künstliche Befruchtung am besten zu erzielen ist. — Die von

den früheren Verfassern gegebene Darstellung, daß im Be-

fruchtungsmoment sich-an der Oberfläche des Eies eine feine

Membran oder Dotterhaut abscheidet, ist insofern nicht korrekt,

als es keine neue Membran ist, die sich bildet, sondern das Ei

kontrahiert sich und löst sich dadurch selbst von der gelatinösen

Membran ab, dıe dann im optischen Querschnitt als eine scharfe

Ringlinie rings um das Ei erscheint. Diese Membran läßt sich

während des ganzen Morula- und Blastula- und anfangs des

Gastrulastadiums beobachten.

— (2). Zur Kenntnis der Struktur des Protoplasmas, be-

sonders in den Eiern der Echinodermen. Ebenda, No. 12, 29 pp.,

2 Taf. —- Objekt: Parechinus miliaris. Kurzer historischer

30 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Rückblick. Die unreifen Eier in den Ovarien zeigen eine retikuläre

Struktur des Protoplasmas, während eine schaumige, wabige,

alveoläre Struktur in diesen jungen Eiern nirgends vorhanden ist;

Dotterkörner sind auch noch nicht ausgebildet, treten aber später

auf. Das Protoplasma der befruchteten Eier.

— (3). Über den Bau des Eies der Echinodermen im un-

befruchteten und befruchteten Zustande. Im: Biol. Unters.

Retzius, (2), 15, p. 1—54, Taf. 1—13.

— (4). Zur Kenntnis der Spermien der Echinodermen.

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das Ambulakralskelett, Körperscheibe, Madreporenplatte, Habitus.

Über Vorkommen und Verbreitung. Unter dem Namen Encrin-

asteriae faßt Verf. Aspidosoma, Bundenbachia, Protaster, Palae-

ophiura, Sturtzura zusammen. Als Gegensatz die Ophiurasteriae.

Beide Gruppen zusammen bilden die Auluroideen, die den

echten A und Ophiuroideen gleichwertig sind.

f— (3). Über einige ‚„Ophiuriden und Asteriden‘‘ des eng-

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Sharp, Erie W. Some notes on the marine zoology of Alderney.

In: Trans. Soc. nat. Sci. Guernsey, 1909 (1910), p. 92 —96.

7Sheppard, Thomas. Catalogue of the specimens in the ‚‚Lether‘“

Collection and of the Cornbrash fossils in the Hull Museum. In:

Trans. Sci. F. Nat. Cl. Hull, 4, part 2, (1909), p. 71—80.

Sheppard, Thomas vide Drake and Sheppard.

7Simioneseu, J. (1). Studi geologice si paleontologice din

Dobrogea. IV. Fauna triasica din insula Popina. In: Publ.

Adamachi Ac. Romana (Bucarest), p. 495 —524.

+— (5). Etudes geologiques et pal&ontologiques de Dobrogea.

II: Pelecypodes, Gasteropodes, Brachiopodes et Echinodermes des

couches jurassiques de Härsova. [En Roumain avec resume

Frangais!. Bucarest, Public. Acad., 1910. 4°. 109 pp. avec

7 plchs. et 17 figs.

T— (3). Sur quelques points fossiliferes du trias de Dobrogea.

In: Ann. Scient. Univ. Jassy, 6, p. 124—228. — Crinoiden.

T— (4). Le Jurassique de Dobrogea. In: Ann. Scient. Univ.

Jassy, T.6, p. 49—64, 11 Figg. — Crinoiden, Echinoiden.

Simpson, Jas. J. and Brown, R.N.R. Asteroidea of Portu-

guese East Africa, collected by Jas. J. Simpson (1907—1908). In:

Proc. R. Phys. Soc. Edinburgh, 18, p. 45—60, 4 Figg. — Be-

handeln: 1 Archaster, 2 Astropecten, 2 Luidia, 1 Stellaster, 1 An-

thenea, 5 Pentaceros, 2 Culcita, 1 Ophidiaster, 2 Linckia, 1 Nardoa,

1 Retaster; Jugendformen von Anthenea und Pentaceros. — Über

die Regeneration der Arme bei Linckia diplax. — Ein Fierasfer

als Schmarotzer bei Pentaceros lincküi.

[Skiff, F. 3. V.] Annual report of the Director to the Board

of Trustees for the year 1909. Publication 140 (Rep. Ser., Vol. III,

No. 4) Field Mus. of Nat. History, 1910, p. 327—432. — Pag. 392,

pl. LII, gibt ein gutes Bild von einer selten schön erhaltenen

Kolonie von Uintacrinus socialis; mehr als 200 Individuen sind

erkennbar,

TSlatarsky, 6. N. Obere Kreide oder neokretazeische Serie in

Bulgarien. In: Jahrb. d. Univers. zu Sophia. I. Physiko-math.

Fakult., V, (1908—1909). Sophia 1910. 79 pp. — Periaster n. Sp.

u. Hemipneustes n. sp. (Senon), Schizaster n. sp. (Campanien).

Sluiter, C. Ph. Westindische Holothurien. (Im II. Teil von:

Kükenthal und Hartmeyer, Ergebn. einer zoolog. Forschungsreise

nach Westindien im Jahre 1907). In: Zool. Jahrb., Suppl. Bd. 11,

p. 331—342, 6 Figg. — 26 spp., 6 nn. in: Stichopus, Cucumaria 2,

Thyone 3. Im ganzen: 10 Holothuria, 2 Mülleria, 4 Stichopus,

3 Cucumaria, 5 Thyone, 1 Synapta, 1 Chiridota.

Archiv für Naturgeschichte. 3

IINVE 2.

34 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Smith, Stanley. The faunal succession of the Upper Bernician,

In: Trans. Nat. Hist. Soc. Newcastle (N.S.) 3, p. 591—645,

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Smolenski, @. Das Untersenon von Bonarka. I. Cephalo-

poden und Inoceramen. In: Bull. Intern. Acad. Krakow, 1906,

p. 717—129, pls. 26—28.

Snellen, M. et Ekama, H. Rapport sur l’Expedition polaire

Neerlandaise, qui & hiverne dans la Mer de Kara en 1882/83.

Utrecht, J. van Boekhoven. 8°. 141-+-CVIII pp., 14 pls., Figg. —

Asteroiden, Echinoiden.

{Sokolov, D.N. Compte rendu pr&liminaire sur les recherches

geologiques dans la partie S. W. de la feuille 130. In: Bull. Com.

geol. St.-Petersbourg, 25, p. 519—520, (1906). — Echinoiden,

Sommer, Karl. Die Fauna des Culms von Königsberg bei

Gießen. In: N. Jahrb. Mineral. Geol. Pal., Beil.-Bd. 28, (1909),

p. 611—660, pls.

Sorby, H.C. On the preservation of marine animals with

their natural colour. In: Mus. Journ. (London), 7, (1908), p. 223—7.

tStauffer, C. R. The middle Devonian of Ohio. In: Bull. Geol.

Surv. Ohio, (4) 10, (1909), 204 pp., 17 Taf.

Steinmann, Gustav vide Schlueter.

Steuer, Adolf. Veränderungen der nordadriatischen Flora und

Fauna während der letzten Dezennien. In: Verh. Ges. deutscher

Naturf. Arzte, Vers. 81, Tl. 2, Hälfte 1, p. 184—186. — Asteroiden,

Echinoiden.

Stiasny, Gustav. Beobachtungen über die marine Fauna des

Triester Golfes im Jahre 1909. In: Zool. Anz., 35, p. 583—7. —

Vorkommen von Plutei und Auricularien. Ophioplutei massenhaft

aufgetreten im Golfe von Triest im August und September.

Stockard, Charles R. Studies of Tissue Growth. II. Functional

activity, from regulation, level of the cut, and degree of injury, as

factors in determining the rate of regeneration. The reaction of

regenerating tissue on the old body. In: Journ. exper. zool., 6,

p. 433—469, 1 pl., 8 Figg. (1909). — Ophiuren.

7Stolley, E. Pentacrinus briareus Miller und P. subangulatus

Miller im norddeutschen Posidonienschiefer. In: 16. Jahresber.

Ver. Nat. Braunschweig, p. 126—132.

Strand, Embrik (1). Echinodermata (mit Einschluß der fossilen)

für 1907 [Jahresbericht]. In: Arch. f. Naturg., Jhg. 74, Bd. II,

H.3. XV. 74 pp.

— (2). Ecehinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1908

[Jahresbericht]. In: Arch. f. Naturg., 75, Bd. 2, H. 3, 1909 (1910),

29 pp. = Ber. Naturg. nied. Tiere, (N. F.) 25, 29 pp.

Summer, B. Franeis. An intensive study of the fauna and

flora of a restricted area of sea bottom. In: Bull. of the Bureau

of Fisheries, 28, 1908. Proc. of the 4th Intern. fish. Congress

Washington 1908. Washington 1910. 9 pp, 27 Figg., 1 Diagr.,

1 Karte. — Ref. von G. Stiasny in: Zoolog. Zentralbl., 18, p. 184—5.

Publikationen und Referate. 35

‘Tarr, R.S. and Martin, L. Recent changes of level in the

Yakutat Bay Region, Alaska. In: Bull. geol. Soc. Amer., 17,

(1906), p. 29—64, 12 pls.

Schriften über Zoologie, welche in den periodischen Werken ent-

halten und vom Jahre 1861—1880 selbständig erschienen sind.

Mit Einschluß der allgemein naturgeschichtlichen, periodischen und

paläontologischen Schriften. Achtzehnte Lieferung. Leipzig

(Wilhelm Engelmann) 1910, p. 5513—5800. Preis M. 7,—. —

Enthält ‚Nachträge (Verbesserungen, Ergänzungen und Zu-

sätze“), und zwar für flg. Abschnitte: I. Literatur. II. Hilfs-

mittel. III. Geschichte der Naturwissenschaften. IV. Allgemein

naturwissenschaftliche Schriften,

Tennent, David H. (1). Variation in Echinoid plutei. A study

of variation under laboratory conditions. In: Journ. exper. Zool.,

9, p. 657— 714, 21 Figg. — Toxopneustes variegatus. Über die

Variabilität gezüchteter Plutei genannter Art.

— (2). The dominance of maternal or of paternal characters

in Echinoderm hybrids. In: Arch. Entw.-Mech., 29, p. 1—14,

2 Figg. — ‚‚Hipponoe dominance in sea-water of a high O. H.-

Concentration; Toxopneustes dominance in sea-water of a lower

O. H.-Concentration“. In gewöhnlichem Seewasser ist der Ein-

fluß von Hipponoe größer als von T.

TTesch, P. Over jurassische fossielen op secundaire ligplaats

in Noord-Brabant en Limburg. In: Versl. wis.-nat. Afd. Akad.

Wet. Amsterdam, D. 18, p. (361)—(366), (1909). — Auch englisch

erschienen: cf. Bericht f. 1909!

Thesing, €. Ersatz verlorener Körperteile bei Tieren. In:

Himmel und Erde, 22, p. 241—252, 306—320, 23 Figg.

{Thevenin, Armand. Note sur des fossiles rapportes de Mada-

gascar par M. Gray. In: Bull. Mus. Paris, 1907, p. 85—88.

iThiery, Paul et alii. Note sur l’Infralias de Provencheres-

sur-Mense. (Stratigraphie par P. Thiery). Chaumont 1907. 36 pp.

TThiery, P. (1). Note sur une anomalie des ambulacres chez

Echinus melo. In: Bull. Soc. sei. nat. Haute-Marne, 5, (1908),

p. 35>—39, pl. III.

T— (2). Note sur le ‚„Pseudodiadema Picteti‘. Ebenda, 6,

(1909), p. 166—168.

Thompson, B. The Junction Beds of the Upper Lias and

Oolite inferior in Northamptonshire. Part II. Stratigraphical and

Palaeontological. In: Journ, Northamptons. nat. hist. Soc. Field

Club, Vol. 11, p. 197—216, 235—244, 1 pl.; vol. 12, p. 54-69;

vol. 13, p. 55—63, 93—105 (1902/06). — Crinoiden, Echinoiden.

Cf. den Bericht für fossile Echinodermata für 1902!

iTipper, @6. H. Notes on Upper Jurassie fossils colleeted by

Captain R. E. Lloyd near Aden. In: Rec. geol. Surv. India,

Vol. 38, p. 336—341, 2 pls. — Crinoiden.

36 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

i[Tokarenko, L.] [Fauna des oberdevonischen Kalksteines von _

Werchne-Ouralsk im Gouvernement Orenburg.] (Russisch!). In:

Trav. Soc. Nat. Univ. Kasan,T. 37, Livr. 2,40 pp., 3 Taf.—-Crinoiden. :

’Tommasi, A. Spigolature di paleontologia baldense. In:

Rend. ist. lombard., (2) 41, (1908), p. 601—616.

tToniolo, A. R. L’eocene dei dintorni di Rozzo in Istria. In:

Rend. Acc. Lincei (Roma), (5) 17, Sem. 1, (1908), p. 815824.

7Torley, K. Die Fauna des Schleddenhofes bei Iserlohn. In:

Abh. geolog. Landesanst. (Berlin), 53, (1908), p. 1—56, 10 pls.

Tornquist, A. Über die außeralpine Trias auf den Balearen

und in Katalonien. In: Sitz.-Ber. Ak. Wiss. Berlin, 36, (1909),

p. 902—918. _

Trouessart, [E. L.]. La distribution geographique des animaux

vivants et fossiles. In: Naturaliste (Paris), Ann. 28, p. 65-66,

78—80, 90—92, 104—105, 114—117, 126—129, 137—138, 151

—153, 162—164, 176—178, 1885—190, 202—203, 210—213; Ann. 29,

p. $—-11, 21—23, 29—31, 43—45, 59%—61, 69%—71, 82—84, 94

—96, 103—105, 118—119, 125—127, 138—140, 151—153, 165

—167, 175—176, 185—187, 199—200, 212—215, 222—224, 235

—238, 249—251, 259— 262, 272—274, 286—287, 6 Figg. (190607).

+Tuppy, Johann. Über einige Reste der Iserschichten im.

Osten des Schönhengstzuges. In: Zeitschr. mähr. Landesmus,,

Bd. 10, p. 52—86, 1 Fig. — Crinoiden, Echinoiden.

TTwenhofel, W.H. The Silurian section at Arisaig, Nova

Scotia. With a correlation note by Charles Schuchert. In: Amer.

Journ. Sci., 28, (1909), p. 143—164.

TVadäsz, M. E. (1). Geologische Notizen aus dem Bükkgebirge

im Komitat Borsod. In: Földt. Közl. (Budapest), 39, p. 164—174

(Ungarisch!) und p. 227—238 (Deutsch!).

T— (2). [Die palaeontologischen und geologischen Verhält-

nisse der älteren Schollen des linken Donau-Üters.] (Ungarisch!).

In: Földt. Evk. (Budapest), 18, p. 99—171, Taf. IV.

TValette, Aurelien. Revision des Echinides fossiles de l’ Yonne,

Partie II. In: Bull. Soc. sci. nat. Auxerre, 61, (1908), p. 3—203.

Vaney, €. Une nouvelle esp&ece de Promachocrinus (Promacho-

crinus joubini). In: Bull. Mus. hist. nat. Paris, 1910, p. 158—162,

2 Figge.

iVedel, L. et Brun, P. de. Coupe de Pierremorte & la faille des

Cevennes par Meyrannes. In: Bul. Soc. &tud. sci. nat. Nimes, 36,

(1908), p. 1—9.

iVedel, L. vide Brun et Vedel.

TVerbeek, R.D.M. vide Lambert,

Verrill, A. E. Description of new Genera and Species of Star-

fishes from the North Pacific Coast of America (Contrib. Mus. Yale

Univ. No. 70). In: Amer. Journ. Sei., (4) 28, (1909), p. 59 —0.

iVinassa de Regny, P. (1). Sull’estensione del carbonifero

superiore nelle alpi carniche. In: Boll. Soc. geol. ital., 25, p. 221

—232, 4 Figg., (1906). — Echinoiden.

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f— (2). Fossili ordovieiani del nucleo centrale carnico. In:

‚Atti Accad. Gioenia Sc. nat. Catania, (5) 3, Mem. 12, 48 pp.,

3 tav. — Crinoiden.

Vogl, Viktor. [Die Fauna des Bryozoenmergels bei Piszke)].

(Ungarisch!) In: Földt. Evk. (Budapest), 18, p. 173—204.

: Walther, J. Die Sedimente der Taubenbank im Golfe von

Neapel. Anhang zu d. Abhandl. d. K. Preuß. Akad. d. Wissensch.

vom Jahre 1910, 49 pp., 2 Karten. — U. a. 28 Seesterne, Antedon

rosacea und phalangium festgestellt.

Wanderer, K. Cenoman-Aufschluß im Sandsteinbruch west-

lich von Alt-Coschütz bei Dresden. In: Sitz.-Ber. ‚‚Isis‘‘ (Dresden),

1910, p: 19—22. a

TWanner, Johannes (1). Über eine merkwürdige Echino-

dermenform aus dem Perm von Timor. In: Zeitschr. indukt. Ab-

stammungslehre, 4, p. 123—144, 2 Taf. — Timorechinus n. g. mit

2 nn. spp., Schizoblastus 1 n. Sp.

...-T— (2). Einige geologische Ergebnisse einer im Jahre 1909

ausgeführten Reise durch den östlichen Teil des indoaustralischen

Archipels. Vorläufige Mitteilungen. In: Centralbl. Min. Geol. Pal.,

1910, p. 137—147.

T— (3). Neues über die Perm-, Trias- und Juraformation

des indoaustralischen Archipels. In: Centr. Min. Geol. Pal., 1910,

p. 736— 741. — Crinoiden.

Warburg, Elsa. Geological description of Nittsjö and its

environs in Dalarne. In: Geol. Fören. Förhandlingar Stockholm,

32, p. 425—450, pl. 15 und Karte.

Warburg, Otto (1). Über die Oxydationen in lebenden Zellen

nach Versuchen am Seeigelei. In: Hoppe-Seylers Zeitschr. physiol.

Chemie, 66, p. 305—340.

— (2). Bemerkungen zu einer Arbeit von Jacques Loeb und

Wasteneys. In: Zeitschr. physiol. Chemie, 69, p. 496—497. — Zu

Loeb (9) und Wasteneys.

— (8). Über die giftige Wirkung der Natriumchloridlösung.

In: Biochem. Zeitschr., 29, p. 414415.

Weaver, Ch. E. Stratigraphy and Paleontology of the San

Pablo Formation in Middle California. In: Univ. California Publ.

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Hauptversammlung zu Münster i. W., 22.—25. Mai 1908. In:

Sitz.-Ber. naturhist. Ver. Bonn, 1908, D. (1909), p. 41-67,

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dale. In: Proc. Geol. Polyt. Soc. Yorkshire, 17, p. 83—86.

{Wiman, Carl. Studien über das nordbaltische Silurgebiet.

In: Bull. geol. Inst. Univ. Upsala, 8, p. 73—168, 4 Taf., 4 Figg.,

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tWindhausen, Anselm. Die geologischen Verhältnisse der

Bergzüge westlich und südwestlich von Hildesheim. In: Mitt.

Roemer-Mus. Hildesheim, No. 21, 1907, 18 pp., 1 Karte.

Winterstein, Hans. Zur Kenntnis der Blutgase wirbelloser

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Echinoiden.

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(London), Nr. 646, p. 408—410.

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1908. Abt. VII. Zoologie des Meeres (exclus. Vertebraten). In:

Intern. Rev. ges. Hydrobiol. Hydrogr., Suppl. Bd. II, 1910, 26 pp.

— 620 Arbeiten über marine Evertebraten verzeichnet.

Yatsu, Naohide (1). Extraovate Experiments on the egg of

Sea-urchin. In: Annat. Zool. Japon, 7, p. 213—218, 8 Figg. —

Arbacia, Echinus, Strongylocentrotus.

— (2). A note on the polarity of the primary oocyte of

Asterias forbesi. In: Annat. Zoolog. Japon, 7, p. 219—221. —

Die Längsachse fällt nicht mit dem des Eies oder Embryos zu-

sammen.

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— Wenlock. In: Trans. Caradoc F. Club (Shrewsbury) 5, part 1,

1910, p. 33—40.

Zeleny, Charles (1). Some experiments on the effect of age

upon the rate of regeneration. In: Journ. experim. Zool., 7, p. 563

—593, (1909). — Die Regeneration geschieht rascher bei jüngeren

Individuen. — Ophiuren.

— (2). The relation between degree of injury and rate of

regeneration. — Additional observations and general discussion.

In: Journ. exper. Zoology, 7, p. 513—561, (1909). — Ophiuren.

rZelizko, J. V. (1). Faunistische Verhältnisse der unter-

silurischen Schichten bei Pilsenetz in Böhmen. In: Verh. geol.

Reichsanst. Wien, 1909, p. 63—67.

T— (2). Ein eigenartiges Fossil aus dem böhmischen Unter-

silur. In: Centralbl. Miner. Geol., 1910, p. 2333—234. Vide

Bather (2).

rZittel, K. A. v. Grundzüge der Paläontologie (Paläozoologie).

3. Auflage, neu bearbeitet von F. Broili. Abt.I: Invertebrata.

München 1910. gr. 8%. 617 pp., mit 1414 Figg.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 39

Übersicht nach dem Stoff.

Bibliographie: Lambert et Thiery, Strand, Bather et Lambert, Choffat,

S. Dahl, Deperet, Gregoire, Taschenberg, Woltereck.

Nekrologe: Steinmann, Boveri (3), Choffat.

Geschichte: der Systematik der Echiniden: Lambert et Thiery; der

Exped. des Prinzen von Monaco: Richard.

Museen: Coulon, Hawkins, Jimenez, Nobre, Schöndorf, Sheppard,

Sternberg, Bachmann, Kofoid.

Technik: Schöndorf, Sorby, Bassler, Horwood, Nörregaard, Allen,

Allen & Nelson, Bachmann, Buscalioni e Vinassa de Regny, Fraas, Kofoid,

Schurig.

Terminologie: Lambert et Thiery, Slocom.

Nomenklatur: Bather, Mortensen, A. Clark, Gregoire.

Morphologie: Becher, Aranda y Millan, A. Clark (2—-4, 9, 10),

Herouard, Lambert etThiery, Dendy, Schöndorf, Hawkins, Valette,Hornyold,

Mortensen, Hume, Parks, Heron-Allen & Earland, von Peetz, Edwards,

Montgomery, Hartog, Kollmann, Bottazzi, Branca, Gandolfi-Hornyold,

Goldfarb, Przibram, Rückert, Stockard, Thesing.

Physiologie Loeb (1—14), Jennings, Mangold, Becher, Drago,

Moore, Charrin & Le Play, Morgulis, Bottazzi, Buytendijk, Delage, Gan-

dolfi-Hornyold, Goldfarb, Gregoire, Harvey, Henze, L£caillon, Lillie, Loeb

u. Wasteneys, Lyon, Morse, Roaf, Rückert, Thesing, Winterstein.

Entwicklungsgeschichte: H. L. Clark, Driesch, Dubuisson, Ries,

Boveri, Eismond, Löwenstein, Jordan, Marcus, Masing, Retzius,

Schaxel, Yatsu, Brown, Drago, Godlewski, Lyon et Terry, Ries,

Montgomery, (Conseil exploration de la mer), Mac Bride & Simpson,

Edwards, Loeb & King & Moore, Kerr, Gravely, Hofsten & Bock, Mac

Bride, Gemmill, Oswald, Simpson & Brown, Richters, Alcock, Greögoire,

Gurwitsch, Harvey, Heffner, Lillie, Loeb u. Wasteneys, Lyon, Stockard,

Thesing, Zeleny.

Entwieklungsmechanik: McClendon, Allen & Nelson, Payne, Tennent,

Garbowski, O. Warburg, Mathews, Loeb, Hindle, Mac Bride, Allen, Boveri,

Delage, Harvey, Heffner, Lillie, Loeb u. Wasteneys, Przibram, Schultz,

Schurig, Stockard, Zeleny.

Ethologie® Reagan, Lebour, Andrews, Caullery & Lavallee, Irving,

Mortensen & Rosenvinge, Calmette & Austen, Schultz, Averincev, Merkel,

Simpson & Brown, Bartsch, Jennings, Leuthardt, Gandolfi-Hornyold,

Lo Bianco, Müllegger, Nathanson, Schmalz.

Variation und Ätiologie: Averincev, Seguin, Thiery, Fabiani, Baltzer,

Tennent, Loeb & King & Moore, A. Clark (2—4, 10, 11), Oswald, Bower &

Farmery, Diener, Przibram.

Faunistik.

A. Rezente Formen.

Allgemeines: Arldt, H. Clark (3), Simroth (Pendulationstheorie 1907),

Summer, Trouessart.

40 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Atlantischer Ocean: Woods, Herouard, Becher, Colgan, Sharp, Kerr,

Ritchie, Nobre, Arranda y Millan, A. Clark (3), Mortensen, Koehler &

Vaney, Britten, Döderlein, H. Clark (2), Döderlein & Hartmeyer, Küken-

thal, Mortensen, Slüiter, Reagan, Carpenter, Cunningham, Grieg, .‚Osten-

feld & Wesenberg-Lund.

Schwarzes Meer: Jagodovskij.

Mittelmeer: Steuer, Stiasny, Walther.

Indischer Ocean: Koehler, Bedot, Brown, Koehler & Vaney, Simpson

& Brown, Bell, Merton, Pearson.

Paecifischer Ocean: Edwards, Verrill, Fisher, H. IL. Clark (5),

A. Clark (5—7). Bao

Arktischer Ocean: Hofsten & Bock, Breitfus, Derjugin, Grieg,

Linko, Snellen & Ekama.

Antarktischer Ocean: Dendy, Bell, Vaney, Benham.

B. Fossile Formen.

Allgemeines: Vogl, Vadasz. Savin, Grabau & Schimer, Zittel, Boule,

Fraas, Fritel, Hoernes, S. R. Williams.

Kaenozoicum.

Plistoeän: Tarr & Martin, Lambert (5), Bonnema, Hume, Drake &

Sheppard, Oeyen, Ells, Horwood, Koenen. — Plioeän: Weaver, Airaghi.

— Mioeän: Lambert & Collet, Airaghi, Lambert & Lecointre, Baquie,

Bentivoglio, Nelli, Stefanini, Trabucco, Scholz, Das-Gupta, Marshall &

Browne, Arnold, Ferrero, Gregorio. — Oligoeän: Baquie, Airaghi, Wind-

hausen, Canestrelli, Leuchs, Taeger, Wegner. — Eoeän: Bourgain-Lindt,

Taeger, De Stefani & Martinelli, Toniolo, Oppenheim, Airaghi, Lupton,

Leriche, Fugger, Geinitz, Roth Telegdi, Fourtau, Heim, Cottreau.

Mesozoieum.

Obere Kreide: Palaeontologia universalis. — Löscher, Fugger, Leuchs,

Wanderer, Wilchowitz, Frech, Wegner (Deutschland). — Bower & Farmery,

Dibley, Drake & Sheppard (England). — Airaghi, Scalia, Dolle, Tommasi,

Filliozat, Gosselet, Leriche, Valette (Italien, Frankreich). — Jimenez de

Cisneros (Spanien). — Böhm & Heim (Schweiz). — Ravn (Dänemark). —

Fritsch, Rydzewski, Smolenski (Polen). — Cottreau & Lemoine (Kanaren).

— Kossmat, Thevenin, Pervinquiere, Fourtau (Afrika). — Hume, Wanner

(Asien). — Sternberg, Slocom (U. 8. A.). — Brüggen, Böse (8.-Amerika).

— Dainelli, Favre, Frie, Renngarten. — Slatarsky (Bulgarien). — Untere

Kreide: Stille, Fugger, Kober (Deutschland). — Carter, Drake & Sheppard

(England). — Bourquin-Lindt, Loriol, Kilian & Haug, Schardt, Kilian

(Frankreich). — Jimenez de Cisneros (Spanien). — Tommasi, Parona

(Italien). — Athanasiu (Rumänien). — Veatch (Louissiana). — Dainelli,

Favre, Fri&, Heim, Krenkel, Renngarten. — Ober-Jura: Hahn, Hermann,

Spandel, Wegner, Wittenberg (Deutschland). — Drake & Sheppard (Eng-

land). — Lambert, Douxami, Favre & Thiebaud, Lemoine, Lemoine et

Rouger, Pfeiffer, Rollier, Kilian & Haug (Frankreich). — Airaghi (Italien).

Systematik. 41

— Furlani, Koch (Österreich-Ungarn). — Müklberg (Schweiz). — Simionescu

(Rumänien). — Kasansky, Tipper, v. Rehbinder (Asien). — Darton, Fisher

{U. 8. A.). — Tesch (Holland). — Unter-Jura: Baum, Drake & Sheppard,

Lissajous, Sheppard, Richardson, Peron & Valette, Roman & Brun,

Schardt, Trauth. — Lias (+ Rhaetik): Fugger, Hahn, Leuthardt,

Stolley, Trauth, Drake & Sheppard, Horwood, Keay, Airaghi, Brun &

Vedel, Thiery, Vedel & Brun, Koch, Jaccard, Mansuy, Diller, Kronecker,

Thompson. ‘— Trias? Haas, Hahn, Kittl, Geyer, Grupe, Fugger, Leuchs,

Scalia, Tornquist, Doby, Airaghi, Ogilvie-Gordon, Diener, Deprat & Man-

suy, Caneva, Kronecker, Simionescu (1, 3).

Palaeozoicum.

Perm: Wanner, Caneva. — Permo-Carbon: Etheridge, Green. —

Ober-Carbon: Wilson, Jourdy, Sommer, Beede & Rogers, Vinassa de

Regny (1). — Unter-Carbon: Smith, Cornet, von Peetz, Schöndorf, Jani-

sevskij, Vadasz, Mansuy, Girty, Graton & Gordon, Lindgren, Darton,

Diller, Kindle. — Devon: Reid, Maillieux, Jaekel, Gaib, Schöndorf, Torley,

Berger, Reed, Greger, Öhern, Slocom, Stauffer, Raymond, Weller, Gortani,

Öehlert, Tokarenko. — Silur: Fritsch, Reynolds, Yelland & La Touche,

Schöndorf, Holtedahl, Jahn, Warburg, Wiman, Twenhofel, Parks, Savage,

Diller, Schuchert & Twenhofel. — Ordovieium: Bather, Vinassa de Regny,

Bather in Zelizko, Zelizko, Savage, Schuchert & Twenhofel. — Cam-

brium: Reed.

Systematik.

Allgemeines: Bedot; H. L. Clark, Bull. Harv., 52, No. 17; Döderlein

und Hartmeyer; Doflein u. Hesse : Felix; Grabau and Shimer; Schöndorf,

Jahrb. Wiesbaden, 63, p. 246; Zittel.

Holothurioidea.

Hol. aus Westindien. Sluiter.

Bathyplotes cinctus u. roseus nn. spp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney,

Rec. Ind. Mus., 5, pt. II.

Benthodytes browni, recta u. spuma nn.spp. Antarktis. Vaney, Trans.

Edinb., 46.

Chiridota rufescens. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus., 1908, p. 48. —

benhami n.sp. Aucklandinseln. Dendy. — dunedinensis, geminifera

l. e. — geminifera. Dendy, J. Linn. Soc., 30, p. 251. — rotifera. A.Clark,

J. exp. 'Z00l,% 9... 497:

Chondrocloea beseli, striata. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus., 1908.

Oolochirus violaceus. 1. ce.

Cucumaria alcocki n. sp. Ind. Ocean. 1. ec. — analis n. sp. Antarktis. Vaney,

Trans. Edinb., 46. — antarctica. 1. c. — ardens, ariana n. sp. Indischer

Ocean. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus., 1908. — argillacea n. Sp.

Tortugas. Sluiter. — armata, aspera nn. spp. Antarktis. Vaney, Trans.

Edinb., 46. — bacilliformis n. sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney,

Ech. Ind. Mus. — brevidentis v. cornleyensis n. var. „Aucklandinseln.

42 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Dendy, Subant. Isl. — californica. Edwards, Zool. Jahrb. — conspicua

n. sp. Antarktis. Vaney, Trans. Edinb. — crocea 1.c. — crocea, jung.

Mae Bride & Simpson. — croceoida nsp. Antarktis. Vaney, Trans.

Edinb. — digitata n.sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney, Rer.

Ind. Mus. — discolor. Vaney, Trans. Edinb. — echinata, forbesi.

Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus. — fallax. Edwards, Zool. Jahrb. —

frauenfeldi. Britten. — frondosa. Edwards, Zool. Jahrb. — grandis.

Vaney, Trans. Edinb. — hyndmanni. Aranda y Millan. — imbellis

n. sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney, Ree. Ind. Mus. — imbricata,

inflexa, investigatoris mn. spp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney,

Ech. Ind. Mus. — insolens. Vaney, Trans. Edinb. — japonica. Edwards,

Zo00l. Jahrb. — laevigata, lateralis, leonina. Vaney, Trans. Edinb. —

leonina var. Dendy, Subant. Isl. — leonina africana var. n. Lüderitz-

bueht. Britten. — marionii. Aranda y Millan. — miniata. Edwards. —

mosaica, perdita.. Koehler & Vaney, Rec. Ind. Mus. — pentactes.

Aranda y Millan. — perfida, periprocta nn. spp. Antarktis. Vaney,

Trans. Edinb. — pigra n.sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney,

Ech. Ind. Mus. — planci. Aranda y Millan. — psolidiformis n. sp.

Antarktis. Vaney. — rapaz n. sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney,

Eeh. Ind. Mus. — secunda n. sp. Antarktis. Vaney, Trans. Edinb. —

vicaria n.sp. Barbados. Sluiter.

Enypniastes (?) decipiens n. sp. Indischer Ocean. Koehler & Vaney, Rec.

Ind. Mus.

Euapta (Synapta) grisea. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus.

Euphronides scotiae n.sp. Antarktis. Vaney, Trans. Edinb.

Haplodactyla australis, molpadioides.. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus.

Havelockia herdmani. 1. «.

Holothuria atra. 1. c. — catanensis. Aranda y Millan. — difficilis, edulis.

Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus. — ezilis n.sp. Indischer Ocean.

l.c. — floridana. Edwards. — forskäli. Ritehie. — glaberrima, im-

patiens, integra n. Sp. Indischer Ocean, kurti, lubrica, maculata, mona-

caria. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus. — nigra. Aranda y Millan. —

ocellata, pardalis, parva. Koehler & Vaney, Ech. Ind. Mus. — pok.

Aranda y Millan. — prompta n. sp. Indischer Ocean, pyxis,

remollescens, rugosa, scabra, tenuissima. Koehler et Vaney, Ech. Ind.

Mus. — tremula, tubulosa. Aranda y Millan. — vagabunda. Koehler et

Vaney, Ech. Ind. Mus.

Labidodemas semperianum. |]. ce.

Leptosynapta bergensis und inhaerens. Becher.

Molpadidae Norwegens. Herouard.

Mülleria decanora, mauritiana, miliaris. Koehler et Vaney, Ech. Ind. Mus.

Pannychia glutinosa. Aranda y Millan.

Paractinopoda. Becher.

Pelopatides dissidensn. sp. Indischer Ozean. Koehler et Vaney, Rec. Ind. Mus.

Peniagone mossmani, piriei, wiltoni nn. spp. Antarktis. Vaney.

Phyliophorus bedoti ist Synonym von Holothuria pleuripes. Bedot. — celer,

intermedius nn. spp. Indischer Ozean. Koehler et Vaney, Ech. Ind.

Mus. — peruvianus. H. L. Clark, Bull. Harv. 52.

Systematik. 43

Protankyra innominata. Koehler et Vaney, Ech. Ind. Mus.

Pseudopsolus ferrari n.sp. Antarktis. Bell.

Pseudocolochirus n. g. pro Stichopus chloronotus. Pearson (1).

Pseudostichopus ocultatus. Aranda y Millan. villosus. Vaney.

Psolidium (Cucumaria) coatsi n. sp. Antarktis. Vaney. — convergens. 1. c.

Psolus antarcticus. |]. c.

Psychropotes brucei, laticauda nn.spp. Antarktis. longicauda var. ant-

arctica var.n., ebenda. Vaney.

Scotoplanes globosa. 1.c.

Sporadipus impatiens. Aranda y Millan.

Stichopus chloronotus. Koehler et Vaney, Ech. Ind. Mus. — multifidus n. sp.

Tortugas. Sluiter. — regalis, richardi. Aranda y Millan. — varzegatus.

Koehler et Vaney, Ech. Ind. Mus.

Synallactes anceps n. sp. Indischer Ozean. Koehler et Vaney, Rec. Ind.

Mus. — robertsoni n. sp. Antarktis. Vaney.

Synapta digitata, inhaerens. Aranda y Millan. — minuta n. sp. Nordsee.

Becher.

Thyone articulata n.sp. Antarktis. Vaney. — aurantiaca. Aranda y Millan.

— constitutan. sp. Barbados. Sluiter. — dura, festiva nn. spp. Indischer

Ozean. Koehler et Vaney, Ech. Ind. Mus. — gibber. H. L. Clark, Bull.,

Harv. — micropunctata n. sp. Tortugas. Sluiter. — raphanus. Aranda

y Millan. — serratus n. sp. Lüderitzbucht. Britten. — trita n. sp. Tor-

tugas. Sluiter.

Echinoidea.

tEchinoiden, fossile, ef. Airaghi, Arnold and Anderson, Bather, Blayac

et Cottreau, Böse, Boule, Bourquin-Lindt, Bower & Farmery, Bresson,.

Brown, Brüggen, Canestrelli (2), Caneva, Cortier et Lemoine, Cottreau,

Cottreau & Lemoine, Dainelli, Dalloni, Darton (1), Douxami (2), Dub-

jansky, Favre, Ferrero, Filliozat, Fournier, Fraas, Frech, Gregorio, Haack,

Hahn, Heim, Horwood, Jakowlew, Joksimowitsch, Kilian et Reboul,

Krenkel, Lambert, Lemoine, Lemoine et Rouyer, Leriche (3—5), Lissajous,

Löscher, Lohmann, Michel-Levy, Mrazee, Nelli, Nörregaard, Oeyen,

Petkovitsch, Reagan, Reed, Renngarten, Rouyer, Rovereto, Sacco (2),

Sealia, Schlosser, Scholz (2), See, Seguin, Simionescu, Slatarsky, So=

kolow, Strand, Thiery, Thompson, Tuppy, Vinassa (1).

Abatus cordatus. Koehler, Bull. Mus. Paris.

}Acrocidaris formosa. Rollier; Simioneseu, Ann. Inst. Rom. 3.

fAcrosalenia sabaudiensis n.sp. Valanginien, Savoyen. Savin. — sp.

Richardson. — spinosa. Richardson, Geol. Mag.

Agassizia scrobiculata. H. L. Clark, Bull. Harv.

tAnanchites (Stenonia) tuberculatus. Palaeontologia Universalis.

jAnanchytes ovata. Fugger, Löscher. ovata, sulcata. BRavn.

Araeosoma belli Mrts. Mortensen (5). — fenestratum, violaceum. 1. ce.

Arbacia, A. lixula ist die Type. Mortensen, A. M. Nat. Hist. — punctulata.

M’Clendon, Science 30 u. 31. — pustulosa. Mangold. — sp. Payne.

spatuligera. H. L. Clark, Bull. Harv.

44 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Arbaciella n. g. bei Arbacia, Type: A. elegans n. sp. Kongo-Küste. Mor-

tensen.

TArbacina catenata. Savin.

TArchaeocidaris regimontana. Sommer. — sp. Greene.

Asthenosoma grubei. Brown.

tAstrodapsis jacalitosensis n. sp. Miocän Kalifornien. Arnold. — tumidus.

Weaver. — whitneyi. Arnold, Weaver. '

TAstrolampas. Sanin.

tTAulacocidaris salviensis. Valette.

1Botriopygus obovatus. 1.c.

1Brissopneustes danicus, suecicus. BRavn.

Brissopsis, Type: B. lyrifera. Mortensen. — luzonica. Brown. tgenei,

nicoleti, peechiolii, ponteganensis. Airaghi, — Trotundatus Pav. var. n.

elongatula. Ungarn, Oligocän. Vogl. x

+Brissospatangus humei n.sp. Eocän, Ägypten. Fourtau, Bull. Inst. Eg.

tBrissus lecointreae n.sp. Faluns de Touraine. Lambert (2).

Calocidaris micans Mrts. Mortensen (5). — abyssicola. 1. ce.

Calveria hystrix. 1. c.

TCaratomus ceircularis. Löscher.

TCardiaster. — aequituberculatus. Valette. — ananchytis. " Löscher. —

cotteaui, gramulosus, peroni, pygmaeus. WValette. — sp. Geinitz.

TCassidulus. — californicus. Arnold. — hemisphaericus, intermedius nn. Spp.

Ripley Group, Mississippi. Slocom. — subquadratus. |]. c.

Chaetodiadema granulatum. Brown.

Cidaris abyssicola var. teretispina var. n. West-Indien. Mortensen (5).

rugosa Cl., cidaris 1. e. — cidaris, metularia. Mortensen, Ann. M. Nat.

Hist. ;

TCidaris — alata. Sealia. — aquaenovae n. sp. Trias Monte Judica. Scalia.

— asperula. Valette. avenionensis. Roth Telegdi. — baltica. Ravn.

— blumenbachi. Hermann, Simionescu, A. Inst. Rom. 3. — bouchardt.

Richardson. C. cf. brauni. Haas. — calatidifera n. sp. Trias Monte

Judica. Sealia (1, 2). — campanulifera n.sp. Trias Monte Judica.

Sealia. — carinifera. Parona. — cervicalis. Simioneseu. — conulifera

n. sp. [nom. nud.] Trias Monte Judica. Sealia. — cornaliae, zu Plegio-

cidaris. Airaghi. coronata. Hermann, Simionescu, Spandel. — cra-

terifera, cupulifera nn. spp. Trias, Monte Judica. Sealia. curionii,

zu Plegiocidaris. Airaghi. — delorenzoi n.sp. Trias Monte Judica.

Sealia (1, 2). — dobrogensis n.sp. Jura Härsova. Simioneseu, Publ.

Ac. Rom. — domariensis, zu Rhabdocidaris. Airaghi. — elegans.

Spandel. — erbaensis. Airaghi. — euspinosa n. sp. [nom. nud.]. Monte

Judica. Sealia. — falsani, referiert zu Plegiocidaris Airaghi. — felo-

grana. BRehbinder. — florigemma. Simioneseu, Ann. Inst. Rom. 3. —

fowleri. Richardson. — fumagalli, zu Plegiocidaris. Airaghi. — gaultina.

Valette. — gingensis. Favre et Thiebaud. guinchoensis. Simionescu.

— hagenowi. Ravn. — interlineata. Airaghi. — laeviuscula. Lambert,

Ann. Soe. linn., 56. — lamberti. WValette. — lanceata. Tornquist. —

lardyi. Schardt, Valette. legayi. Lemoine et Rouyer. — cf. lineata.

Simioneseu. — marginata 1. c. — cf. monilifera. Hermann, Kilian &

monilis. Lambert, Feuille j. nat.

urei. Smith.

Systematik. 45

Haug. moorei zu Plegiocidaris. Airaghi. cf. muricata. Schardt.

— muricata. Valette. — nodosa n. sp. [nom.nud.]. Trias, Monte Judica.

perornata. Valette. — philastarte. Rollier. pilum. Lambert.

pistillum. Ravn. — pretiosa. Savin. proprinqua [sie]. Simionescu.

— pustulosa. Savin. reussi. Wilschowitz. — sicula n. sp. Trias,

sp. Kossmat, Leriche. — spinosa. Lambert. — subvesiculosa. Lambert.

— transversa. Tornquist. — velifera. Valette. — verticellata. Tornquist.

— vesiculosa. Fugger.

TCircopeltis aequituberculata. Seguin.

TClitopygus ricordeaui, salviensis. Valette.

tClypeaster duncanensis, wahrscheinlich Synonym zu complanatus. Das

Gupta. ludovici salvatoris n.sp. Miocän, Majorque. Lambert et

Collet. — sp. Hawkins.

TOlypeopygus paultrei, robineaui. Valette.

tClypeus Mülleri. Richardson, Geol. Mag. — ploti. Richardson, Proc. Geol.

Assoc.

TCodiopsis doma. Gosselet. jaccardi, lorini. Valette.

Coelopleurus floridanus interrupta var.n. Agulhasbank. Döderlein.

TCollyrites capistrato [sic], carinata, elliptica. Simioneseu. — friburgensis.

Airaghi.

TConoclypeus anachoreta. Savin.

TConulus albogalerus. Hawkins.

castanea var. subrotundus, circularis,

desori, icannensis, oblongus, subconicus. Valette. — subrotundus.

Hawkins.

TC yathocidaris erebus. Lambert et Thiery.

TCyphosoma. — C. cf. archiaci, joudi, major, peruanum, pinzasi, schlag-

intweiti nn. spp. Peru, Senon. Brüggen. — taeniatum. Ravn.

Dermatodiadema A. Ag. ist Synonym zu Plesiodiadema Pom. Mortensen,

Ann. nat. Hist.

Diadema, sazatile ist die Type. 1.c. — antillarum Phil. Mortensen (5).

TDiademopsis desori, erbaensis. Airaghi. sp. Trauth. .

tDiplocidaris dumortieri. Lambert et Thiery, Ess. nom. — gigantea. Simio-

neseu. — jacquemeti. Lambert et Thiery, Ess. nom. — verrucosa. Simio-

nesceu.

TDiplopodia argoviense.. Kilian et Haug. — autissiodorensis, variolaris.

Valette.

T.Discoidea cylindrica. Bower and Farmery, Hawkins, Jimenez de Cisneros.

— forgemolli. Hawkins. — minima. Löscher. pulvinata v. major

var.n. Cenoman, Kanaren. Cottreau et Lemoine.

1Discoides. — conicus, cylindricus, inferus, minimus, subuculus. Valette.

T.Dorocidaris. — defrancei. Lambert et Thiery, Ess. nom. — papillata. Airaghi.

— staadti n. sp. Thanetien, Chalons-sur-Vesles. Lambert et Thiery, 1. ce.

TEchinanthus scutella. Taeger.

Echinarachnius excentricus. Reagan. Tgibbsi cum v. aschleyi. Arnold.

TEchinobrissus. — E. ef. iranicus, pseudominimus. Brüggen.— scheuchzert.

Kilian et Haug. woodwardi. Richardson, Geol. Mag., 7.

46 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910,

Echinocardium, Type ist cordatum. Mortensen, Ann. Nat. Hist.

tEchinoconus. — conicus. Frech. — orbicularis. Ravn. — vulgaris. Frech,

Ravn.

t-Echinocorys. — conicus, declivis, gibbus, gravesi. Valette. — ovatus. Airaghi,

Valette. — scutatus, striatus, vulgaris. Valette.

tEchinocrinus. Girty.

Echinocyamus, pusillus ist die Type. Mortensen, Ann. Nat. Hist. — pusillus.

Colgan.

TEchinocyphus mespilia. Löscher.

TEchinolampas. — affinis. Canestrelli. — discus. Airaghi. — francei. Savin.

— lucianii. de Stefani et Martelli. — scutiformis. Savin. sub-

eylindricus. Taeger. — subcylindricus var.n. rojanensis var. n. Eocän,

Ägypten. Fourtau.

Echinometra lucunter. Hume. vanbrunti. H. Clark, Bull. Harv., 52.

Echinopluteus antarcticus n.sp. Antarktis. Mae Bride and Simpson.

Echinus. — E. esculentus ist die Type. Mortensen, Ann. Nat. Hist. —

margaritaceus. Benham. melo. Thiery. sphaera. Irving.

TEchinus. — hungaricus, E. cf. margaritaceus, melo. Airaghi, Rend. Lomb.

— E.sp. Spandel. verruculatus. Hume.

TEnallaster. — bravoensis n. sp. Cenoman, Mexiko. Böse. couloni. Savin.

— E. ef. mexicanus, obliquatus, texanus. Böse. texanus. Veatch.

Encope micropora. H. Clark.

TEodiadema admeto. Scalia.

tEosalenia miranda. Lambert et Thiery.

TEpiaster. — aguilerae n. sp. Cenoman, Mexiko. Böse. — crassissimus,

distinctus. Valette. duncani n. sp. Kreide, Semha. Kossmat. —

nutrix. Thevenin. orientalis n.sp. Kreide, Semha. Kossmat. —

ricordeaui. Valette.

Eucidaris tribuloides. Mortensen (5).

fEuspatangus cleopatrae n.sp. Eocän Ägypten. Fourtau.

Fibularia ovulum ist die Type. Mortensen, Ann. Nat. Hist. — Ylecoöntreae

n. sp. Lambert, Feuille j. nat.

T@aleola gauthieri, papillosa. Valette.

1@alerites subconicus. Löscher.

TGauthieria radiata. Valette.

T@tisopygus. Fourtau.

T@Glyphocyphus radiatus. Valette.

TGlypticus hyeroglyphicus [sie]. Simioneseu.

Hermann.

Goniocidaris canaliculata. Brown.

TGoniopygus durandi, hemicidariformis n.sp. Peru, Senon. Brüggen. —

ef. marticensis. Kossmat. — noguesi. Savin. — peltatus. Sehardt. —

superbus. Brüggen.

THemiaster.—africanus. Sealia, Rend. Line. — asterias, bufo. Valette., —

bufo. Athanasiu. — calvini. Böse. — fourneli var. mesai et varr. nn.

obliquus, rotundatus. Peru, Senon. Brüggen. — gracilis. Scalia, Rend.

Line. — griepenkerti, icaunensis. Valette. lacunosus n. sp. Ripley

group, Mississippi. Sloeom. — minimus. Kilian et Haug, Valette. —

lamberti. Seguin. — sulcatus.

« Systematik. 47

parastatus. Slocom. — phrynus. Jimenez de Cisneros. — semhae n. Sp.

Kreide, Semha. Kossmat. — steinmanni. Brüggen. — sudanensis.

Cottreau.

+Hemicidaris.—bravenderi. Richardson, Geol. Mag. —choffati. Simioneseu.

— crenularis. Douxami, Kilian & Haug, Müklberg, Simioneseu—

desori. Lemoine et Rouyer. herbichi. Taeger. — intermedia, stra-

monvum. Bollier. verticillata, villae. Airaghi.

tHemidiadema neocomiense. Valette.

tHemipedina minima 1.c. — nattheimensis. Herrmann. tetragramma.

Richardson, Proc. Geol. Ass.

+Hemipneustes n.sp. Bulgarien, Senon. Slatarsky.

+Heterocentrotus sp. Hume.

Hipponoe, Variation. Tennent (2).

+Holaster. — conicus. Valette. faxensis. Ravn. — grasi. Savin. — grasi,

icaunensis, intermedius, laevis, latissimus, nodulosus. Valette. — planus.

Löscher. subglobosus. WValette, Bower and Farmery. — trecensis

Bower & Farmery, Valette.

Holectypus. — corallinus. Lemoine et Rouyer. — depressus. Hawkins,

Richardson, Proc. Geol. Ass. — limitis n. sp. Cenoman, Mexiko,

Böse. macropygus. Valette. H. cf. orificatus. Simioneseu. —

serialis. Hawkins. — sp. Rehbinder. ud

t+Hypodiadema balsami, zu Pseudodiadema, desori zu Diademopsis. Airaghi.

— rathieri. Lemoine et Rouyer. — saleniformis. Savin.

tInfulaster excentricus. Löscher.

tLaganum depressum v. sinaiticum. Hume.

tLeiocidaris donceuxi. Lambert et Thiery. — itala. Fugger.

tLeiopedina sp. Airaghi.

tLenita patellaris. Leriche.

tLinthia variabilis n.sp. Ripley group, Mississippi. Slocom.

Lissodiadema, Synonym von Laganum, lorioli Synonym von Lag. depressum.

Bedot.

tLoriolella ludovicii. Airaghi.

tLoriolia foucardi. Valette.

Lovenia cordiformis. H. L. Clark. — subcarinata. Brown.

1Macraster cf. texanus. Böse.

1Macropneustes meneghini. Taeger.

1Magnosia forbesi. Richardson, Proc. Geol. Assoc.

+Maretia omaliusi. Leriche.

Mellita Stokesi. H. L. Clark.

tMetaporhinus convexus. Airaghi.

tMicraster. — anceps, beonensis. Valette. — breviporus. Löscher, Stille. —

brevis inel. icaunensis. Leriche. ef. brongniarti. Böhm u. Heim. —

brongniarti, cayeuxi. Valette. — coranguinum. Frech, Fugger, Valette. —

corbovis. Valette. cortestudinarium. Wilschowitz. decipiens,

gauthieri, gosseleti, icaunensis. Valette. icaunensis, Synon. von

brevis. Leriche. — leskei, normanniae. Valette. regularis. Filliozat.

— renatus, rostratus, schroederi, senonensis, tropidotus. Valette.

tMieropsis leymerii. Brüggen.

48 Ecehinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

1Miocidaris lorioli n. sp. Hettangien, Gammal. Lambert et Thiery.

1Noetlingia boulei. Thevenin.

1Nucleopygus ebrayi. _Valette.

TOffaster pilula, pomeli. Valette. sphaericus. Bower and Farmery.

TOligopygus meunieri. Senegal. Meunier.

TOrthopsis miliaris, perlata. Kossmat.

TParacidaris florigemma. Douxami, Kilian et Haug. — smithi. Lambert,

Ann. Soc. Lyon.

1Pedina rostrata. Richardson, Proc. Geol. Ass.

TPeltaster clathrotus, courtauti, lardyi. Valette.

Schardt.

TPeriaster n.sp. Senon, Bulgarien. Slatarsky.

1Pericosmus wrpadis. Vogl. timorensis n.8p. Lambert, Jaarb. Mijn.

Batavia.

TPeroniaster cotteaui, nasutulus. Valette.

1Pholidocidaris sp. Permo-Carbon, Kansas. Greene.

Phormosoma, 3 Spp. Mortensen (5).

Phyllacanthus, imperialis ist die Type. Mortensen, Ann. Mag. Nat. Hist.

TPhyllobrissus ebrayi. Valette. — güllieroni. Kilian et Haug. — gresslyv.

Valette.

TPhymosoma corollgre, koenigi [sic]. Valette. — mezxicanum n. sp. Cenoman

Mexico. Böse. — nobile. Savin. — quinquangulare, radiatum. Löscher.

— regulare. Valette.

TPlagiopygus zittei. Fourtau, Bul. Inst. Egypt.

T-Plegiocidaris. — bruni n. sp. Oxfordien, Var. Lambert, Ann. Lyon., Lam-

bert et Thiery. — cornaliae, curionii, falsani, fumagalli. Airaghi. —

martini, Thiery. — moorei, ombonii. Airaghi. seguini Dn. Sp. Argo-

vien, Clapouze. Lambert, Lambert et Thiery. — uniformis. Valette.

TPlesianthus böhmi n.sp. Miocän, O.-Afrika. Scholz.

Plesiodema Pom. Mortensen, Ann. Mag. Nat. Hist.

TPlesiolampas paquieri, saharae. Cottreau.

TPleurodiadema pereiroi. Simionesceu.

Podophora pedifera. H. L. Clark.

TPolycyphus normannus. Richardson, Proc. Geol. Ass. — punctatus.

Simioneseu.

1Polydiadema rhodani, tenue. Valette.

TPolygoniopygus intricatus. Valette.

TPolyplopodia cotteaui n. Sp., raulini. WValette.

1Porocidaris serrata. Taeger.

Pourtalesia, 3 Spp. Mortensen (5).

iProholaster auberti. Pervinquiere.

TProspatangus delphinus. Savin.

1Psammechinus bernouillensis n.sp., montmolini, rathieri. WValette.

iPseudocidaris clunifera. Valette.

stellatus. Kilian et Haug,

1Pseudodiadema albense. Valette. — balsami. Airaghi. — carthusianum.

Savin. — depressum. Richardson, Proc. Geol. Ass. — dupini. Valette.

— hemisphaericum. RBollier. — icaunense. Valette. marticense.

Kossmat. picteti. Thiery. revili n.sp. Valanginien, Savoie.

Systematik. 49

Savin. — rotulare. Kilian et Haug. — texanum. Veateh. — thurmanni.

Lemoine et Rouyer. — cf. variolare. Böse.

1Pseudopyrina cotteaui, incisa. Valette.

TPygaster macrocyphus. Hawkins. — semisulcatus. Richardson, Proc.

Geol. Ass.

1Pygorhynchus lamberti n.p. Barr&mien Savoyen. Savin.

TPygorhytis pseudoringens. Savin.

TPygurus montmollini ricordeaui. WValette. — rostratus. Schardt. —

royerianus. Lemoine et Rouyer.

1Pyrina.— clarki n.sp. Cenoman Mexico. Böse. — freucheni Ravn.

inaudita n. sp. Cenoman Mexico. Böse. incisa. Savin. — inflata.

Athanasiu. — pygaea. Kilian et Haug.

tRhabdocidaris. — crassissima. Simionescu, Ann. Inst. Rom. — domarien-

sis. Airaghi. — R.cf. maxima. Simioneseu. — nobilis. Hermann, Simio-

neseu. — orbignyana. Simioneseu. — orbignyi. Lemoine et Rouyer.

sp. Cottreau, Kittl. — stoppaniü. Airaghi. thurmanni. Simionescu.

— verticillata, zu Hemicidaris, villae. Airaghi.

+Salenia. — austeni. Valette. — cristatan.sp. Eocän, Ägypten. Fourtau,

Bull. Inst. Eg. — foliumquerei. Valette. — granulosa. Löscher. — in-

crustata, mamillata. Valette. mezxicana. Böse. rugosa. Löscher.

tSalenidia gauthieri, heberti. Valette.

Salmacis globator. Brown.

Schizaster canaliferus ist die Type der Gattung. Mortensen, A. M. N. H.

TSchizaster globulosus. Airaghi. lorioli. Ungarn, Oligocän. Vogl.

major, marianii, scillae. Airaghi. uhligi n. sp. Miocän, O.-Afrika.

sueuri. 1. c.

Scholz. — vicinalis libycus var.n. Eocän, Ägypten. Fourtau, Bull.

Inst. Eg. — 1 n.sp. Campanien, Bulgarien. Slatarsky.

tScutella. — S. Lambert, Feuille j. nat. — gabbi. Weaver. — merriami.

Arnold. paulensis. Müklberg. perrini. Arnold.

1Scutellina rotunda. Leriche.

TSpaniocyphus tenuis. Savin.

Spatangus purpureus. Kerr, Mortensen, A. M. N. H. — 3 Spp. Mor-

tensen (5).

1Spatangus. — deydieri. Savin. — sp. Taeger. — taramellii n. sp. Miocän,

Lombardei. Airaghi. Spatangidenreste.e. Böhm u. Heim.

Sphaerechinus granularis. Mangold.

TStenonia tuberculata. Airaghi.

Stereocidaris indica. Bell. — Tmerceyi. Valette.

1Sternotaxis placenta, planus. Valette.

TStirechinus sp. Pliocän, Lombardei. Airaghi.

1Stomechinus intermedius var. germinans. Richardson, Proc. Geol. Ass. —

lineatus. Hermann. perlatus. Kilian et Haug, Müklberg, Rollier,

Simioneseu.

Strongylocentrotus albus. H. L. Clark. dröbachiensis. Averincev, Mor-

tensen, Reagan. gibbosus. H. L. Clark. — lividus. Drago, Schaxel.

1Strongylocentrotus dröbachiensis. Oeyen, Tarr and Martin.— lividus.

Airaghi.

Stylocidaris lineata n.sp. W.-Indien. Mortensen (5). — affinis. 1. e.

Archiv für Naturgeschichte N 4

III. NVT.02

50 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910. F

TTemnocidaris danica. BRavn.

TTemnopleurus toreumaticus. Hume.

tTetracidaris kiliani. Lambert et Thiery.

Tetrapygus niger. H.L. Clark.

TTiaromma rotulare, schlueteri. Valette.

TTimorechinus mirabilis Dn. 8., N. Sp., multicostatus n. sp. Timor, Perm.

Wanner.

TTozxaster collegnii. Valette. — granosus. Schardt. — neocomiensis, retusus.

Valette. cf. ricordeaui. Savin. — ricordeau:. VWValette.

Tozxopneustes, Variation. Tennent (1, 2).

TTrematopygus archiaci, olfersi. WValette.

Tretocidaris bartleiti Ag., abgeb. Mortensen (5).

iTretodiscus auritus. Hume. elongatus. Lambert.

. 1 Trochotiara bourgueti. WValette. — neglectum, ef. ricetensis. Lemoine et

Rouyer.

TTylocidaris clavigera. Löscher, Valette. vexilifera. Ravn.

t1Typocidaris corbaricus. Lambert et Thiery. essenensis, folcariensis,

hirudo, praehirudo, sceptrifera, serrata. Valette.

annulata. 1.e.

Asteroidea.

tAsteroiden, fossile, cf. Bentivoglio, Chapman, Dalloni, Dubjansky,

Fraas, Haack, Heim (1), Löscher, Schöndorf, Strand.

Acantharchaster aciculosus, intermedius, variabilis nn. spp. Kalifornien;

variabilis pedicellaris subsp. nova. Beringsmeer. Fisher (1).

Allasterias n. g. bei Asterias, Type rathbuni n. sp. mit varr. anomala und

nortonensis. Pazifische nordamerikanische Küste. Verrill.

Anthenea flavescens. Brown. — mertoni n.sp. Molukken. Koehler (2). —

regalis, Ganjam; rudis, Mergui-Archipel nn.spp. Koehler (4).

t Aspidosoma arnoldi, eifelense, goldfussi nn. spp., Devon; petaloides cum. var.

goslariensis, roemeri n. sp., Devon; schmidti, tischbeinianum. Sehön-

dorf, Palaeontographica.

Asterias brandti. Mac Bride et Simpson. — forbesi. Yatsu. — A. (Urasterias)

forcipulala n. sp. N.-Amerika, pacifische Küste. Verrill. — A. (Coscin-

asterias) forreri. Jennings. — gelatinosa. H. L. Clark. — longstaffi

n.sp. Antarktis. Bell. A. (Pisaster) papulosa n. sp. N.-Amerika,

pacifische Küste. Verrill. perrieri. Koehler (1). polythela,

victoriana nn. spp. N.-Amerika, pacifische Küste. Verrill.

tAsterias jurensis. Spandel. — nodosa, Type von Triboletia. Loriel. —

remondi. Weaver.

Asterina chilensis. H. L. Clark, Bull. Harv. — fimbriata. Benham. — hart-

meyeri n.sp. Barbados. Döderlein u. Hartmeyer. — loriolöi n. sp.

Kurrachee. Koehler (4). — lüderitziana. Döderlein. — minuta. Döder-

lein u. Hartmeyer. — spinigera n. sp. Singapore. Koehler (3).

Astroceramus fisheri n.sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Astrogonium jordani, mozaicum, roseum. |]. c.

Astronyxz cooperi n.sp. Indischer Ozean. Bell.

Astropecten debilis n.sp. Penang. Koehler (4). — erinaceus. H. L. Clark.

— granulatus. Koehler (2). griegi n. sp. Indischer Ozean. Koehler

Systematik. Su

(7). — inutilis, Malabar; nobilis, pugnax, Persischer Golf. nn. spp.

Koehler (4).

jAstrospecten (!) rectus. Lemeoine.

Benthopecten celaviger, Oregon; mutabilis, Britisch-Columbia. Fisher (1). —

incertus. Ludwig.

Brisinga gracilis n.sp.; Indischer Ozean, panopla, parallela n.sp. Koehler (7).

tCalliaster mirus. Sehöndorf.

TCalliderma mosaicum. Carter.

Capillaster multiradiata. Bartsch.

Caulaster dubius n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Ceramaster, Type ist granularis. Fisher (3). clarki n. sp. Beringsmeer.

Fisher (1).

Chaetaster vestitus n. sp. Andamanen. Koehler (4).

Cheiraster agassizi subsp. n. evoplus. San Diego. Fisher (1). — granulatus

niasicus nn. spp. Indien. Ludwig. — inops, snyderi. Koehler (7).

Circeaster n. g., Antheneidae, magdalenae, marcelli nn. spp. Indischer Ozean.

Koehler (7).

Cladaster validus n.sp. Aleuten. Fisher (1).

Oraspidaster hesperus. Brown.

Cribrella mutans n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7). — sanguinolenta.

Jordan.

Dipsacaster anoplus, Oregon; borealis, Beeringsmeer; laetmophilus, Unalaska.

Fisher (1).

Disasterina spinosa n. sp. Andamanen. Koehler (4).

Dorigona confinis n.sp. Indischer Ozean. 1.c. — belli, ludwigi nn. spp.

Indiseher Ozean; ternalis. Koehler (7).

Evoplosoma augusti n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Ferdina offreti n.sp. Andamanen. Koehler (4).

Freyella indica n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

F’romia andamanensis n. sp. Andamanen. Koehler (7). — armata n. sp.

Andamanen. Koehler (4). major. Koehler (2). — schulizei n. sp.

False Bay. Döderlein.

Gaussaster n. g. bei Cheiraster, vanhoeffeni n.sp. Antarktis. Ludwig.

Gephyreaster n. g. Mimasterinarum, Type Mimaster swifti. Fisher (3).

Goniaster, Type ist Asterias tessellata Lam. Fisher (3). — Tquinqueloba.

Ravn.

Gomiodiscus insignis, Indischer Ozean; porosus Mergui-Archipel; vallei,

Balasore Bay nn. spp. Koehler (4).

Goniodon angustatus n.sp. Neu-Seeland. Koehler (3).

TGoniolina geometrica. Lemoine et Rouyer.

Heliaster helianthus, polybrachius. H. L. Clark. — fsp. Tar u. Martin.,

Henricia hyadesi. H. €. Clark, Bull. Harv. — astenactis. Kalifornien;

longispina, Vancouver nn. Spp.; leviuscula multispina und annectens

subspp. nn. Fisher (1). ornata. Benham.

Heterozonias n. g. Solasteridarum, Type: Crossaster alternatus. Fisher (3).

Heuresaster n.g. Poraniidarum, hodgsoni n. sp. Antarktis. Bell.

Hippasteria leiopelta n.sp. Kamtschatka. Fisher (1). — spinosa n. sp.

N.-Amerika, pacifische Küste. Verrill.

dilatatus. 1.c.

52 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Hymenaster alcocki n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7). — koehleri n. sp.

Nord-Paeifik. Fisher (2). pentagonalis. Koehler (7). perissonotus

n. sp., Nord-Paeifik; quadrispinotus. Fisher (2).

Iconaster gardineri n. sp. Indischer Ozean. Bell. — pentaphyllus. Koehler (7).

Johannaster n. g. Plutonasteridarum, Type: superbus n. sp. Indischer Ozean.

Koehler (7).

Labidiaster annulatus. Koehler (1).

Leptychaster propinquus n. sp. Beeringsmeer. Fisher (1).

Linckia dubiosa n. sp. Andamanen. Koehler (4). marmorata. Simpson

and Brown. — diplax, Regeneration. 1.c.

Lophaster fureilliger vexator subsp. n. Kalifornien. Fisher (2).

Luidia columba. H.L. Clark, Bull. Harv. — denudata, integra nn. spp.

Indischer Ozean. Koehler (4). — maculata. Koehler (2). — mauritiensis

n.sp. Indischer Ozean. Koehler (4). — phragma n.sp. Peru. H.L.

Clark, Bull. Harv. — marginata n. sp. Woher ? Koehler (3). — brew-

spina Lütk., foliata Grube, tenellata Lütk., ferruginea Ludw., forcipifer

Slad., asthenosoma Fish., Ludwigi Fish., debilis Grube. 1. c. — 2 Spp.

Brown (1). — 2 Spp. Simpson and Brown.

Lydiaster n.g. bei Antheniaster, johannae n.sp. Indischer Ozean. Koeh-

ler (7).

Lysaster n.g. Pentagonasteridarum, lorioli n.sp. Mauritius. Bell.

Mediaster ornatus. Koehler (7).

Metrodira subulata. Koehler (2).

Mithrodia bradleyi. H.L. Clark, Bul. Harv.

Nardoa carinata, frianti, le monnieri, Andamanen; squamulosa, Indischer

Ozean nn. spp. Koehler (4). — 1sp. Simpson and Brown.

Nepanthia brachiata n.sp. Andamanen. 1.c.

Nidorellia armata. H.L. Clark, Bull. Mus. Harv.

Notomyota. Ludwig.

Odinia austini, clarki nn. spp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Odontaster singularis. H. L. Clark.

Ophidiaster armatus n.sp. Molukken. Koehler (2). — campbelli Perr.

Benham. — hirsutus. Andamanen; ornatus, Ceylon, nn. spp. Koehler

(4). — tumescens n,sp. Molukken. Koehler (2).

tOreaster decoratus. Wilschowitz.

Oreaster occidentalis. H.L. Clark, Bull. Harv.

+. Palaeaster. — caractaci. Sehöndorf, Jahrb. Wiesbaden, 63, p. 227. — meri-

dionalis. Chapman. montanus. Scehöndorf, Palaeontogr. — Smythi.

Chapman.

+Palasterina bonneyi, primaeva. Schöndorf, Jahrb. Wiesbaden 63.

Palmipes ludoviei n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7). 1sp. Brown (1).

Pararchaster indicus n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Parasterina obesa n.sp. Chile. H.L. Clark.

Paulia horrida. H.L. Clark.

Pectinaster hispidus. Koehler (7).

Pentaceros granulosus. Brown (1). — 4 weitere spp. 1. ec. — indicus, Ceylon;:

novae-caledoniae, Indischer Ozean, nn. spp. Koehler (4). lincki..

Simpson and Brown. — rouxi n.sp. Molukken. Koehler (2). Tsp.

Systematik. 53

Eoeän, Unterberg. Fugger. bedoti n.sp. Neu-Britannien. Koehler

(3). — chinensis, decipiens. 1.c. — 5spp. Simpson and Brown.

Pentagonaster (+-Stephanaster), Type: P. pulchellus. Fisher (4). — P. (Tosia)

annandalei, P. (T) cuenoti, P. döderleini nn. spp. Indischer Ozean.

Koehler (7). incertus n.8p. Antarktis. Bell. — P. (Philonaster)

mortenseni n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7). {sp. Lemoine et

Rouyer.

Persephonaster roulei n.sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Pharia pyramidata. H.L. Clark. Bull. Harv.

Phataria unifascialis. ].c.

Phidiaster n. g. bei Psilaster, agassizi n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Pisaster. Verrill.

Plinthaster, Type: P. perrieri, schließt auch Pyrenaster ein. Verrill.

Pontaster pilosus. Koehler (7).

Poraniopsis inflata flexilis subsp. n. Kalifornien. Fisher (2).

Porcellanaster caulifer. Koehler (7).

Pseudarchaster dissonus n.sp. Oregon. Fisher (2).

Pteraster coscinopeplus n. sp. Fisher (3). hebes n. sp. Pazifische Küste

Nord-Amerikas. Verrill. jordani, militaris, multispinus. Fisher (3).

— marsippus n. Sp. 1.c. — octaster n. sp. Nord-Amerika, Pazif. Küste.

Verrill. — pulvillus, temnochiton, trigonodon nn.spp. N.-Pazifik.

Fisher (3).

Pyrenaster, Type P. dentatus, ist Synonym von Plinthaster. Fisher (4).

Retaster, 1sp. Brown (1), Simpson and Brown.

Sclerasterias nitida n. sp. Indischer Ozean. Koehler (4).

Sidonaster n.g. bei Porcellanaster, vaneyi n. Sp. batheri n. sp. Indischer

Ozean. Koehler (7).

Solaster constellatus n. sp. Pazifische nordamerikanische Küste. Verrill.

— endeca. Entwicklung. Gemmil, mit Parasit (?). Mortensen u.

Rosenvinge. — ezxiguus, Kalifornien; hypothrissus, Alaska, nn. spp.

Fisher (2). — galaxides n.sp. Pazifische nordamerikanische Küste.

Verrill. — papposus. Sorby.

Sphaeriodiscus n.g. Goniasterinarum, Type: Stephanaster bourgeti. Fisher (4).

Stellaster, 1sp. Brown (1), Simpson and Brown.

1Stenaster confluens. Schöndorf. Paläontogr.

Stephanaster, Synonym von Pentagonaster, S. bourgeti ist die Type von

Sphaeriodiscus. Fisher (4).

Stichaster aurantiacus. H. L. Clark, Bull. Harv. — suteri cum v. laevigatus

Benham.

1Sturtzaster marstoni. Schöndorf, Jahrb. Wiesbaden.

Styracaster caroli. Koehler (4).

Thoracaster alberti n.sp. Indischer Ozean. ].c.

Thrissacanthias n. g. Astropectinidarum, Type: Persephonaster penicillatus

Fisher (3).

Toria, Type ist T. australis. 1.c. — arctica n. sp. Pazifische nordamerik.

Küste. Verrill.

TTriboletia n.g. bei Pseudarchaster, Type: Asterias nodosa Trib. Loriol.

TUranaster kinahani. Schöndorf, Jahrb. Wiesbaden.

54 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

Urasterias subg. n. von Asterias, Type: U. linckii. Verrill. — panopla,

forcipulata. 1. e.

Zoroaster adami n. sp. Indischer Ozean. Koehler (7).

Ophiuroidea.

System der paläozoischen Seesterne, nach Schöndorf, Paläont.

Auluroidea.

I. Ophiurasteriae

Lapworthura Sympterura

„Ophiura‘“‘ Furcaster

Eospondylus Eoliudia

Miospondylus

II. Encrinasteriae

Aspidosoma Bundenbachia

Protaster Palaeophiura

Sturzura

System der paläozoischen Ophiuriden. Parks.

Amphiodia chilensis. H. L. Clark, Bull. Harv.

Amphipholis pugetana. ].e.

Amphiura accedens n. sp. Molukken. Koehler (2). — capensis. Döderlein.

— famula n. sp. Indischer Ozean. Koehler (6). — ficta n. sp. Molukken.

Koehler (2). — squamata. Benham, Caullery et Lavall&e. — velox n. sp.

Molukken. Koebler (2).

Astrotoma rigens n. sp. Indischer Ozean. Koehler (6).

TGregoriura spryi. Chapman.

TLapworthura miltoni. Scehöndorf, Jahrb. Wiesbadn.

Miecrophiura decipiens n. g. n. sp. West-Indien. Mortensen, Med. nat. For.,

p- 203.

Ophiactis kröyeri. H.L. Clark, Bull. Harv. — minor n. sp. S.-W.-Airika.

Döderlein.

Ophiarachnella infernalis. Koehler (2).

Ophiocoma risei, echinata. Cowles (2).

Ophioderma leonis n.sp. S.-W.-Afrika. Döderlein.

Clark.

Ophioglypha brevispina, hexactis. Koehler (1). — podica n. sp. Indischer

Ozean. Koehler (6). — texturata und albida, parasitische Alge. Mor-

tensen et Rosenvinge.

TOphiolepis damesi. Keay.

TOphiomusium ferrugineum. Leuthardt.

Ophiopezella luetkeni, Synonym von Pectinura septemspinosa. Bedot.

Ophiopluteus compressus. Gravely. sp. Mae Bride and Simpson.

Ophiosteira antarctica. Bell.

Ophiotholia mitrephora n.sp. West-Indien. H.L. Clark, P. U.S. Nat.

Mus., p. 665.

Ophiothrix aristulata. Döderlein. bedoti n. nom. pro Ophiocnida pietetv.

Bedot. fragilis. Kerr, Mac Bride. — magnifica. H.L. Clark, Bull.

Harv. — picteti n.n. pro ?Ophiocoma scolopendrina. Bedot.

Ophiucoma pumila. Morgulis.

panamense. H.1I.

Systematik.

Ophiura koehleri n.sp. Antarktis. Bell. appressa. Cowles (2).

TOphiurella lariensis n. sp. Trias, Lombardei. Airaghi.

Pectinura yoldii. Koehler (2).

1Protaster. Parks. whiteavesianus n.sp. Canada. |].c.

1Sturtzura leptosoma. Schöndorf, Jahrb. Wiesbaden.

1Sympterura minveri. 1.c.

TTaeniaster. Parks. — cylindricus zu Lapworthura. |].c.

Crinoidea.

F' +Orinoidea, fossile, cf. Arey, Bussandri, Calvert, Caneva, Chapman,

Clarke, Collet, Cramer, Dainelli, Dalloni, Darton (2), Ells, Fournier, Fraas,

Gortani, Haack, Hahn, Kindle, Kober, Koenen, Kronecker, Lemoine et

Royer, Lindgren ete., Lissajous, Löscher, Lohmann, Maillieux, Mansuy,

Michel-Levy, Oehlert, Parks (2), Rzehak, Sacco (1), Savage, Scalia,

Scholz (1), Schuchert u. Twenhofel, Simionescu (3, 4), Skiff, Stolley,

Strand, Thompson, Tipper, Tokarenko, Tuppy, Vinassa de Regny (2),

Wanner (3), H. S. Williams, S. R. Williams, Wiman.

Crinoidea, cf. A. H. Clark: Muskelartikulationen (Amer. J. Sci.)

pentamere Symmetrie (1. c.), Nervensystem (Americ. Nat., 44), Verwandt-

schaftsverhältnisse rezenter Crin. (Proc. U. S. Nat. Mus., 38, p. 115—118

Crinoidenstämme (l. e.).

TTriassische Crinoiden. Haas, aus dem unteren Kohlenkalk

Janisevskij.

TAcanthocrinus longispina. Maillieux, Bull. 23, p. 191.

Alecto purpurea ist eine Comatula. A.H. Clark, Proc. Biol. Soe., 23, p. 96.

Amphimetra mölleri A.Cl., variipinna Carp., producta A. Cl., formosa A. Cl.,

ensifer A.Cl., schlegelii A.Cl. A.H. Clark (1. — 1 n.sp. A.H.

Clark (14). ;

TAncyrocrinus bulbosus. Slocom.

Antedon adriani n.sp. Antarktis. Bell. — adriatica n.sp. Triest. A. H.

Clark, P. U. S. p. 331. — rosacea und phalangium im Golfe von Neapel.

Walther. — rosacea. Baltzer.

TAntedon leenhardti n.sp. Albien, Sault. Loriol. sp. Furlani.

TApiocrinus meriani. Kilian u. Haug, Bull. Carte. — mespiliformis. Spandel.

— roissyanus. Kilian u. Haug. l.c. — sp. Hermann, Lemoine et

Rouyer.

TAristocrinus concavus. Greger.

jAspidocrinus Jaekel 1907 ist praeocceupiert: Aspidocrinus Hall 1859.

Cossmann.

Asterometra lepida A.Cl. A.H. Clark (1).

TBactrocrinus birmanicus n. sp. Devon, Shan States. Reed. Bsp Tel

jBalanocrinus laevigatus, suberenatus. Sealia, Atti Gioenia, p. 4. — B. cf.

marcousanus. Behbinder. pentagonalis. Kilian et Haug, Reh-

binder. — subteres. Parona. cf. subteres. Koch.

Bathyerinus. A. H. Clark (4). — perrieri n.sp. 2212 m., Cap Glier. Koehler

et Vaney, Bull. Paris, p. 27. — recuperatus. ].c.

TCainocrinus andreae v. major, als major n. sp. behandelt. Leuthardt.

Calamocrinus. A.H. Clark (4).

56 Eehinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

tCamerocrinus (Lobolithes) quartritarum n.sp. Fritsch, Mise. Pal. I, p. 4.

Captillaster sentosa Carp. Singapore; multiradiata L. Ebenda, Nikobaren,

Java. A.H. (Clark (1).

Catopiometra rubroflava A.Cl. Korea, China. A.H. Clark (1).

TCeriocrinus hemisphericus. Greene.

Colobometridae. A.H. (Clark (1).

Colobometra vepretum n.sp. Singapore. A.H. Clark (1). — diadema n. sp.

Salomonen. A.H. Clark, P. Biol. Soc.

Comanthus. A.H. Clark (1). — C. wird in drei Subgenera: Comantheria,

Comanthina n. subg. und Comanthus geteilt. 1.c. — C. (Comanthina)

nobilis Carp. Singapore, C. (Comanthus) valida Carp. Queensland; C.

aster A.Cl. Formosa. A.H. Clark (1). — 2 nn. spp. A. H. Clark (1).

Comaster typica Lov., Fiji; gracilis Hartl., Singapore; novaeguineae Müll.

China. A.H. Clark (1).

Comatella stelligera Carp., Samoa, Tonga; maculata Carp., Queensland

A.H. Clark (1).

Comatula solaris Lam., pectinata L. A.H. Clark (1).

Cominia decameros A.Cl. A.H. Clark (1).

Compsometra serrata A.Cl. A.H.Clark (1). — lacertosa n. sp. Victoria.

A.H. Clark, P. U.S. p. 275.

Cimenez de Cisneros, Bol. Madr., 8,

p- 366.

Craspidometra acutieirra Carp. N.S. Wales, Singapore. A. H. Clark (1). —

in.sp. A.H.C(lark (14).

TCupressocrinus cf. crassus, schlotheimi. Reed.

COyllometra albopurpurea A.Cl. A.H. Clark (1).

TO yathidium holopus. BRavn.

Dichrometra grandis A.Cl., flagellata J. Müll., protectus Lütk., tenera Hartl.

A. H. Clark (1).

TElaeacrinidae. v. Peetz.

TEnerinites. Unter-Silur, Pilsenetz. Zelizko.

Encrinus, Type ist E. kliiformis. Clark, Science, 31, p. 145. — cassianus.

Ogilvie-Gordon, Scalia. — liliiformis. Geyer. reticulatus.

varians. Ogilvie-Gordon.

TEntrochus dubius. Grupe.

TEugeniacrinus ? caryophyllatus, hoferi. Spandel. — sp. Koch.

Gephyrocrinus. A.H. (Clark (4).

T@lyptocrinus fimbriatus. Savage.

THapalocrinus victoriae. Chapman.

Heliometra glacialis Leach cum varr. maxima u. biarticulata A.Cl. A.H.

Clark (1).

Heterometra quinduplicava Carp., aspera n. sp., Singapore; singularis A. Cl.,

martensi Hartl. A.H. Clark (1).

THexacrinus. — cf. elongatus. interscapularis. Torley. — minor.

Maillieux, Bull. Belge, 23, p. 146. — cf. pyriformis, sp., cf. spinosus.

l.:6;

Himerometra crassispina Hartl. Singapore. A.H. Clark (1).

Systematik. 57

Holopus. A.H. Clark (4).

1Hydreionocrinus globularis. Smith. — cf. mc’cayi. Jourdy.

Hyocrinus. A.H. Clark (4).

THypocrinus pyriformis. Weanner.

1Hypsocrinus fieldi. Slocom.

Iridometra nana Hartl. Nikobaren, Singapore. A.H. Clark (1).

TLecythocrinus sp. Beed.

tLobolithen. Jahn.

tLophocrinus sp. Reed.

1Mariacrinus sp. Raymond. — sp.? Twenhofel.

Mariametra subcarinata A.Cl. A.H. (Clark (1).

Mastigometra. A.H. Clark (1). — flagellifera. 1.e.

tMegistocrinus cf. latus. Greger

1Melocrinus benedeni, chapuisi, dorlodoti, globosus. Maillieux. — gregeri.

Greger. hyeroglyphicus [sie!], inornatus, konincki. Maillieux (2). —

lyliü. Greger. mespiliformis. Maillieux (2). ef. nodosus. Greger.

— obscurus. Maillieux (2). — tersus. Greger.

+Millerierinus. — escheri, icaunensis. BRehbinder.

— sp. Wittenburg.

Nemaster iowensis. Clark, Ann. Nat. Hist., 5, p. 361.

Oligometra serripinna Carp., imbricata A.Cl. A.H. (Clark (1).

Parametra orion A.Cl. A.H. Clark (1).

TPentacrinites lanceolatus. Wilschowitz.

Pentacrinitidae. A.H. Clark (4).

1Pentacrinus. — asteriscus. Darton, C. A. Fisher. — bavaricus. Jaccard.

briareus. Stolley. browni, carinatus. BRavn. cingulatus. Beh-

rosaceus. Simioneseu.

sp. Lemoine et Rouyer.

binder. — cf. cristagali. Baum. diaboli. Fugger. — cf. nodosus

Baum. — cf. psilonoti. Trauth. pusillus n.sp. Cenoman Sku£.

Fritsch, Misc, Pal., II, p. 18. — sigmaringensis. Hermann, Spandel.

— sp. Richardson, Tipper. subangularis. Stolley. — subbasalti-

formis. Geinitz. tirolensis. Vadasz. — tuberculatus. Jaccard.

iPeriglyptocrinus priscus. Parks.

TPhyllocrinus hoheneggeri. Kober. — sp. Koch.

Phrynocrinus. A.H. Clark (1).

jPlatyerinus rugosus. Smith.

Pontiometra andersoni Carp. Singapore. A.H. Clark (1).

TPoteriocrinus granulosus. Jourdy. — nuciformis. Smith. — sp. Cornet.

Proisocrinus ruberrimus n.g. n.sp. A.H.Clark, Proc. U.S. N. M., 38,

p- 387.

Promachocrinus joubini n.sp. Biscaybucht. Vaney. kerguelensis. Bell.

Ptilocrinus. A.H. Clark (4).

Ptilometra macronema. A.H. Clark, Ann. Nat. Hist., 5, p. 361.

Rhizocrinus. A.H. Clark (4).

Stenometra dorsata n.sp. Nagasaki. A.H. Clark (1).

Stephanometra monacantha Hartl. Nikobaren, Tonga, Singapore; marginata

Carp., Singapore; tenuipinna Hartl. A.H. (Clark (1).

1Storthingocrinus fritillus. Reed.

Strotometra hepburniana A.Cl. A.H. Clark (1).

58 Echinodermata (mit Einschluß der fossilen) für 1910.

TTanaocrinus cf. typus. Savage.

TTaxocrinus nobilis. Smith. — sp. Reed.

TTechnocrinus sp. Ohern.

Thaumatometra tenuis A.Cl. A.H. Clark (1).

TTraumatocrinus sp. Diener.

Tropiometra carinata Lam., afra Hartl. A.H.Clark (1).

TUintacrinus. A. H. Clark, A.N.H. 5, p. 361. — socialis. Sternberg, Kolonie

abgebildet. Skiff.

TZeacrinus beyrichi. Maillieux (2).

Zygometra fluctuans Carp. Singapore. A.H. Clark (1).

TCystidea.

Echinodermenwurzel. Bather (2), Zelizko (2).

Anomalocystites incipiens. Zelizko (1).

Caryocystites sp. Wiman.

Carylocrinus carnicus n. sp. Ordovicium, Karnische Alpen. Bather, Rev.

ital. — spp. l.e. — carnicus. Vinassa de Regny.

Echinosphaerites aurantium. Wiman.

Eocystites sp. Beed.

Lepadocystites clintonensis n. sp. Ontario, Clinton Formation. Parks.

Lepidodiscus lebouri. Smith.

Pyrocystites sp. Zelizko.

iBlastoidea.

Codaster hindei. Slocom. ie

Nucleocrinus verneuii. Stauffer.

Nymphaeoblastus miljukovi n.g. n.sp. Unterkarbon, Kirghisensteppe.

Peetz.

Pentremites sp. Kindle, Weller.

Pentremitidea sp. Slocom.

Schizoblastus permicus n.sp. Perm, Timor. Wanner.

Incerta sedis.

TCyclocrinus. — balticus. Wiman. — macrocephalus. Favre et Thiebaud.

schmidti, sp., cf. spaski. Wiman.

TCyclocystoides ef. illinoisensis. Savage.

TSphaerites scutatus. Spandel.

Gtenophora für 1910 und 1911.

Von

Dr. H. Laackmann.

Publikationen und Referate.

Bauer, Vietor. Über die anscheinend nervöse Regulierung der

Flimmerbewegung bei den Rippenquallen. Zeitschr. f. allg. Physiol.,

Bd. 10, 1910, p. 231—248. — Die Beobachtungen des Verfassers,

angestellt an Bero&e ovata und forscalü, betreffen den Nachweis

eines anscheinend nervösen Regulationsapparates für den Flimmer-

schlag mit allen Eigenschaften eines nervösen Zentralorgans.

Bigelow, Henry B. Coelenterates from Labradore and New-

foundland, collected by Mr. Owen Bryant from July to October

1908. Proceed. U. S. Nat. Mus., vol. 37, 1910, p. 301—320, Taf. 30

—32. — Verf. gibt eine Aufzählung der gefundenen Formen: Pleuro-

brachia pileus, Mortensia ovum und Beroe cucumis. Die beiden

ersten Arten sind häufig.

*Ghigi, Allessandro. Raccolte planctoniche fatta dalla R. nave

„Liguria‘‘ nel viaggio di circonnavigazione del 1903—05 sotto il

commando di 8. A. R. Luigi di Savoia Duca degli Abruzzi.

Ctenofori Publ. Ist. Studi super. prat. Firenze, vol. 2, 1909, p. 1—21.

*Kemna, Ad. Morphologie des Coelenteres. Ann. Soc. roy.

malac. Bruxelles, Tome 44, 1910, p. 143—204.

Kineshita, Toosaku. Uber den Einfluß mechanischer und

elektrischer Reize auf die Flimmerbewegung von Bero& forscalit.

Zentralbl. Physiol., Bd. 24, 1910, p. 726— 728. — Bemerkenswert

ist bei den Versuchen des Verf., die in der Station Triest angestellt

wurden, daß sich die Pole don Bero& forscäalii in bezug auf den

mechanischen Reiz ungleich verhalten. In der Regel tritt Still-

stand der Flimmerbewegung nur bei mechanischer Reizung des

oralen Poles ein. Umgekehrt kann man am ruhenden Tier durch

Reizung des aboralen Poles eine Flimmerbewegung hervorrufen,

was am oralen Pol nicht erzielt werden kann. .Beroe ovata und

Eucharis verhalten sich ebenso. Die Periodendauer des Plättchen-

schlages wird durch Einwirkung eines Reizes beschleunigt.

Krumbach, Thilo. Notizen über die Fauna der Adria bei

Rovigno. IV. Die Ctenophorenfauna von Rovigno nach den

Novemberstürmen 1910. Zoolog. Anz., Bd. 37, 1910, p. 315—319,

1 Fig. — Verf. beobachtet nach den Stürmen einen flüchtig

vorübergehenden Ctenophorenschwarm. Es wurden gefangen:

Euchlora rubra, Pleurobrachia rhodopis, Lampetia pancerina,

60 Ctenophora für 1910 und 1911.

Deiopea kaloktenota, Eucharis multicornis, Cestus veneris und

Bero6 forscalii. — Deiopea kaloktenota ist erst ein einziges Mal in

einem Exemplar in der Adria gefunden. Verf. gibt eine genaue

Beschreibung mit abgeänderter Diagnose.

Mortensen, Th. Tjalfiella tristoma n.g.n.sp. A sessile Cteno-

phore from Greenland. Preliminary Note. Meddel. nat. Foren.

Kjebenhavn, (7), Aarg. 2, 1911, p. 249—253, 1 Fig. — Die selt-

same Art wurde 1908 von Jensen auf einer Pennatulide Umbella

lindahlii gefunden. In einigen der konservierten Exemplare fand

Verf. Embryonen auf verschiedenen Entwicklungsstadien, und die

am weitesten entwickelten erwiesen sich als Ctenophoren auf dem

Cydippestadium. Dadurch wurde Tjalfiella als lebendgebärende,

festsitzende Ctenophore erkannt. Sobald die jungen Tiere zur

festsitzenden Lebensweise übergegangen sind, machen sie große

Veränderungen durch, die sie äußerlich nicht mehr als Cteno-

phoren erkennen lassen. Den ausgewachsenen Tieren fehlen die

Rippen vollständig. Die beiden Tentakel sind unverzweigt, aber

mit den für die Ctenophoren charakteristischen Klebzellen aus-

gestattet. Auf der Oberseite liegt in der Mitte das Sinnesorgan.

Die Genitalorgane finden sich in vier Paar Erhöhungen auf der

Oberseite des Tieres; jede Erhöhung enthält Ovar und Hoden

zugleich. Sie öffnen sich nach außen durch einen Kanal, wie bei

Ctenoplana. Eine eigenartige Umgestaltung hat die Mundöffnung

durch die festsitzende Lebensweise erfahren. Zu beiden Seiten

bilden sich durch Umwandlung der Seitenlappen 2 große Kanäle,

die sich neben den Tentakellappen nach außen hin öffnen. Die

Nahrung wird durch die beiden Kanäle in die ursprüngliche

Mundöffnung befördert.

Stiasny, Gustav. Beobachtungen über die marine Fauna des

Triester Golfes während des Jahres 1910. Zoolog. Anz., Bd. 37,

1911, p. 517—522. — Pleurobrachia rhodopis am 24. III und 5. IV.

* Yatsu, Nashide. Observations and Experiments on the

Ctenophore Egg. Annot. zool. japon., vol.7, 1911, p. 333—346,

26 Figg. Proc. 7. Internat. Zoolog. Congress, 1907 (1910), 4 pp.,

4 Figg.

Neue Genera und Speeies.

Genera nova: Ghigi: Sabaudia, Moseria (für Pleurobrachia pig-

mentata). Mortensen: Tjalfiella.

Species novae: Mortensen: Tjalf.iella tristoma.

Siphonophora für 1910 und 1911.

Von

Dr. H. Laackmann.

Publikationen und Referate.

Bigelow, Henry B. Coelenterates from Labradore and New-

foundland, collected by Mr. Owen Bryant from July to October

1908. Proceed. U. St. Museum, vol. 37, 1910, p. 301—320, Taf. 30

— 32. — Über die nördliche Ausdehnung des warmen Golfstromes

gibt der Fund von der typischen Warmwasserform Diphyopsis

campanulifera Aufschluß, die an der Oberfläche bei der Fogo-

Insel gefischt wurde.

*Bigelow, Henry B. Bicayan Plankton. Part XIII. The

Siphonophora. Trans. Linn. Soc. London, (2), Zoolog., vol. 10,

1911, p. 337—358.

Hadzi, J. Über die Nesselzellenverhältnisse bei den Hydro-

medusen. Zool. Anz., Bd. 37, 1911, p. 471—478, 1 Fig. — Verf.

findet bei den Hydromedusen in bezug auf Wanderung der Nessel-

zellen ähnliche Verhältnisse wie bei den Siphonophoren.

Issaköwitsch, Alexander. Die Randdrüsen von Porpita medi-

terranea Eschz. Ein Beitrag zur Chromidienlehre. — Festschr. z.

60. Geburtst. R. Hertwigs (München), Bd. 2, Jena 1910, p. 303

—322, Taf. 24, 2 Figg. — Verf. gibt anfangs eine allgemeine Be-

schreibung über die Anordnung der Randdrüsen von Porpita. Die

Drüsen liegen in ununterbrochener Reihe am äußersten Rande des

Kragens. Sie sind von Drüsenzellen eingekleidet, die als direkte

Fortsetzung des oberen Kragenepithels anzusehen sind, welches

durch Einbuchtung Drüsen bildet. Verf. beschreibt den histo-

logischen Bau der Drüsenzellen und geht dann auf jene inter-

cellulären Vorgänge ein, welche die allmähliche Verwandlung der

Zellen des oberen Epithels in Drüsenzellen bedingen. Die ex-

kretorische Tätigkeit der Zellen wächst mit der Entfernung von

der Einbiegungsstelle und erreicht am Boden der Drüse ihre

höchste Entwicklung. Vom Boden der Drüse beginnend,

schrumpfen die Dimensionen der ihre Außenwand bildenden

Drüsenzellen allmählich zusammen. Der größte Teil des Stoffes,

der ihren Körper bildete, hat sich in Schleim verwandelt und ist

ausgeflossen. Verf. schildert die Veränderung des Kernes der

Drüsenzellen während ihres Unterganges. Der Ersatz der Drüsen-

zellen aus dem Kragenepithel erfolgt durch direkte Kernteilung.

mit darauf folgender Zellteilung.

62 Siphonophora für 1910 und 1911.

*Kawamura, Tamiji. Bozumira to Katsuonoeboshi (Über

Rhizophyra und Physalia). Dobuts. f. Tokio, vol. 22, 1910, p. 445

-— 454, Tar:

Korotneff, Alexis. Histologische Beobachtungen über die

Mitochondrien, sowie die Struktur und Entwicklung der Muskel-

fasern einiger Wirbellosen. Arch. Zellforschg., Leipzig, Bd. 5,

1910, p. 406—421. — Verf. untersucht den Polymorphismus des

Epithels der Siphonophoren und trachtet, denselben mit der Frage

der Mitochondrien und Chondriosomen in Verbindung zu bringen.

Zur Untersuchung gelangen: Praya maxima, Vellela mediterranea

und Physophora hydrostatica.

Moser, Fanny. Über Monophyiden und Diphyiden. Zoolog.

Anzeiger, Bd. 38, 1911, p. 430—432. — Verf. hat die Jugend-

stadien der Diphyiden untersucht. Das jüngste Diphyiden-

stadium stellt ein Einglockenstadium dar. Durch allmähliche

schrittweise Veränderungen, die bisher fast vollständig unbeachtet

blieben, wandelt sich dieses in die ausgewachsene Diphyide um.

Verf. erkennt in verschiedenen Arten (Doramasia pieta, Diphyes

nierstraszi, Doramasia bojani, Doramasia pictoides) jugendliche

Diphyiden.

Poche, Franz. Über die wahre Natur der von Will und Busch

in Siphonophoren beobachteten ‚Eingeweidewürmer“. Zoolog.

Anz., Bd. 38, 1911, p. 369—373. — Bei den von Will 1844 in

Diphyes (Cucubalus) kochii entdeckten Parasiten handelt es sich

um Trypanosoma (Oryptobia) grobbeni, die Verf. ebenfalls in

Exemplaren von Halistemma tergestinum und Monophyes gracilis

aus dem Golfe von Triest beschrieben hat. Bei Untersuchung

von Cucubalus kochii findet Verf. ferner einen Trematoden.

*Ritehie, J. Occurence of Velella spirans, Eschholtz, in

Scottish Waters. Ann. Scot. Nat. Hist. Edinburgh, vol. 74, 1910,

p- 121.

Steche, 0. Das Knospungsgesetz und der Bau der Anhangs-

gruppen von Physalia. Festschr. 60. Geburtst. R. Hertwig,

Bd. 1, Jena 1910, p. 355—372, 10 Figg. — Als wichtigstes Prinzip

für die Entwicklung der Anhangsgruppen bei den Siphono-

phoren hat sich an einer größeren Zahl von erforschten Formen

ergeben, daß sich am oberen Ende des Stammes unter den

Schwimmglocken resp. der Luftflasche eine Knospungszone be-

findet. Dort entstehen aus undifferenziertem, lebhaft wucherndem

Material in gesetzmäßiger Folge Anhangsgebilde, die mit Ver-

längerung des Stammes nach hinten verschoben werden. Am

Ende des Stammes ist stets der älteste Polyp, der Primärpolyp der

Larve zu finden; auf ihn folgen nach vorn zu immer jüngere

Individuen resp. Gruppen von solchen bis zur Knospungszone.

Bei Physalia hat sich eine durchgreifende Änderung vollzogen.

Der Stamm, von der enormen Luftflasche aufgebläht, nimmt im

postembryonalen Leben nicht wesentlich mehr an Länge zu. Es

gibt keinen freien, lang ins Wasser herabhängenden kontraktilen

Publikationen und Referate. 63

Stamm, sondern sein durch den Primärpolypen bezeichnetes Ende

bleibt stets am hinteren Pol der Luftflasche fixiert. Infolgedessen

ist ein allmähliches Weiterschieben der am Vorderende gebildeten

Knospen ausgeschlossen. Dementsprechend findet sich bei den

Physalien keine Knospungszone am Vorderende mehr. Vielleicht

existiert etwas derartiges bei den jüngsten Larven, die Verf. nicht

untersuchen konnte. Bei Physalia gilt das Gesetz der gleich-

mäßigen Zusammensetzung aller Anhangsgruppen durchaus nicht.

Die Gruppen, die in der Umgebung der Primärpolypen entstehen,

erreichen nie ihre volle Ausbildung, da ihnen die Genitalanlagen

fehlen. Die Stellung der einzelnen Anhänge zueinander in der

Gruppe ist ebenfalls wechselnd. Für den Entwickungsrhythmus

der Einzelanhänge gilt im allgemeinen, daß sich, wie bei Rhizo-

physa, zuerst der Polyp, dann der Fangfaden und endlich die

Genitalanlage differenziert. Eine ganz spezifische Eigenschaft von

Physalia ist die Tätigkeit, verlorene Anhänge zu regenerieren.

*Will, Ludwig. Die sekretorischen Vorgänge bei der Nessel-

kapselbildung der Coelenteraten. Rostock (H. Warkentien) 1910,

p. 1-4. Sitzungsber. u. Abhandl. naturf. Ges. zu Rosock, N. F.,

Bd. 11.

Neue Genera und Speeies.

Genera nova: Bigelow : Nectopyramis.

Species novae: Bigelow: Nectopyramis thetis, Diphyes spec. ?

Graptolitida für 1910 und 1911.

Von

Dr. H. Laackmann.

Publikationen und Referate.

jFaura y Sans, M. Graptolitos citados en Cataluüa. Mem.

Soc. espaf. Hist. nat., T. 6, 1909, p. 45—65.

jFrieke, Max. Die silurischen Ablagerungen am Südrande

des Zwickauer Kohlenbeckens mit besonderer Berücksichtigung

der Graptolithenfauna. 45.—48. Jahresber. Ver. Nat. Zwickau

1910, p. 1-53, 12 Figg.

Hall, T. S. Notes on a Collection of Graptolites from Tollong,

New South Wales. Rec. Geol. Surv., N. S. Wales, vol. 8, 1099,

p. 339—341, 1 Taf. — Verf. beschreibt eine neue Varietät von

Dicranograptus.

Hind, Wheelton. On the Occurence of Dendroid Graptolites

in British Carboniferous Rocks. Proc. Yorkshire geol. and polyt.

Soc., vol. 16, 1909, p. 155—157, 1 Taf. — Verf. beschreibt zwei

neue Arten von Callograptus und Desmograptus.

64 Graptolitida für 1910 und 1911.

Hundt, Rudolf. Stellung der Graptolithen im System und

ihre Lebensweise. Naturw. Wochenschr., Bd. 26, 1911, p. 681

—684, 4 Figg. — Verf. gibt eine allgemeine Darstellung über den

Bau der Graptolithen.

Jones Owen, Thomas. The Hartfell-Valentian Succession

in the Distriet around Plynlimon and Pont Erwyd (North Car-

diganshire). Quart. Journ. geol. Soc. London, vol. 65, p. 463—537,

2 Taf., 19 Figg. — 2 neue Arten von Monograptus.

Malaise, €. Fucoides dans le Taramon de l’assise de Grand-

Manil. Ann. Soc. geol. Belgique, T. 36, 1909, p. B. 50—B 52,

1 Fig. (Graptolites).

Ruedemann, R. Some marine algae from the Trenton

limestone of New- York. Fifth Report of the Director of the

Science division. N. Y. St. Educ. Dept. Mus. Bull. Albany, Nr. 133,

1909, p. 194—216, Taf. 1—3. — (Mastigraptus?) flaccidus n. Sp..

‘Törnquist, $8.L. Graptolitologiska bidrag. Geol. Fören.

Stockholm, vol. 32, 1911, p. 1559—1574, 1 Taf.

Westergärd, A. H. Studier öfver Dictyograptusskiffern och

des gränslager med särskild hänsyn tilli Skäne förekommande

bildningar. Acta Univ. Lund N.F. Afd.2, Bd.5, Nr.3. (K.

fysiogr. Sällsk. Handl., N. F. Bd. 20, No. 3, 79 pp., 5 Taf.)

Hydromedusae für 1910

nebst Nachträgen zum Bericht für 1909.

Von

Dr. Alexander Schepotieff, St. Petersburg.

Publikationen und Referate.

(F = siehe auch unter Faunistik; S= siehe auch unter Systematik.)

Bedot, M. Materiaux pour servir & l’histoire des Hydroides.

3me periode (1851—1871). In: Revue suisse zool. XVIII., p.

189—490. 8. |

Berninger, J. Über Einwirkung des Hungers auf Hydra. In:

Zool. Anz. XXXVI, p. 271—279, 18 Figg. 1910.

Billard, A. (1). Sur .quelques Sertulariidae de la collection

du British Museum. In: C. R. Acad. Paris. CXLVIII, p. 193.

1309.2..8.

— (2). Sur quelques Plumulariidae de la collection du

British Museum. ibid, p. 367. 1909. 8.

— (3). Sur les Hydroides de la collection Lamouroux.

ud, p. 1063. 1909. .8.

— (4). Revision d’une partie de la collection des Hydroides

du British Museum. In: Ann. Sc. Nat. (9), XI, p. 1—67, 24 Figg.

3910. 8.

— (5). Revision des especes types d’Hydroides de la col-

lection Lamouroux. In: Ann. Sc. Nat. (9), IX, p. 307—-337,

10 Figg. 1909. 8.

Borowsky, W. Zweineue Varietäten von Tubularia indivisa L.

In: Wiss. Meeresunt. (2), IX, p. 225—234, 5 Figg., Tab. 1910. 8.

Boulenger, Ch. On the Origin and Migration of the stinging-

Cells in Craspedote Medusae. In: Quart. Journ. Micr. Sci. (N. S.)

LV, p. 763—783, 5 Figg., Tab. XLII, XLIII. 1910. — Über

Nesselkapseln.

Broch, H. (1). Die Hydroiden des arktischen Meeres. In:

Fauna Arctica, V, p. 129—248, 46 Figg., tab. II—IV. 1909. F. S.

— (2). Hydroiduntersuchungen. 2. Zur Kenntnis der

Gattungen Bonneviella und Lictorella.. In: Nyt Mag. Naturv.,

Kristiania, XLVII, p. 195—205, 6 Figg. 1909. — Systematische

Notiz.

Coward, W. On Ptilocodium repans, a new Gymnoblastic

Hydroid epizoic on a Pennatulid. In: Versl. Akad. Amsterdam,

XVIH, p. 729— 735, Tab. 1909.

Archiv für Naturgeschichte 5

1911. VI. 2.

66 Hydromedusae für 1910.

Frischholz, E. Biologie und Systematik im Genus Hydra.

In: Zool. Ann. Würzbg., III, p. 105—155, 18 Figg. 1909. 8.

Goldfarb, A. Light as a factor in the Regeneration of Hy-

droids. Second study. In: J. Exp. Z. Philad., VIII, p. 133—142.

1910. — Wirkung des Lichtes auf Regeneration von T'ubularia

crocea und Pennaria tiarella.

Goto, S. On two Species of Hydractinia living in Symbiosis

with a Hermit Crab. In: J. Exp. Z. Philad. IX, p. 469-496,

3 Figg. 1910. — 8.

Hargitt, Ch. New and little kown Hydroids of Woods Hole.

In: Biol. Bull. W. Hole. XVII, p. 369—385, 10 Figg. 1909. F. S.

Hartlaub, €. Über einige von Ch. Gravier in Djibuti ge-

sammelte Medusen. In: Zool. Jahrb. Abt. Syst. XXVII, p. 447

— 476, tab. XIX—XXIH. 1909. — F. 8.

Hase, A. Über die deutschen Süßwasser-Polypen Hydra

fusca L., Hydra grisea L. und Hydra viridis L. In: Arch. Rass.

Ges. Biol. VI, p. 721—753, 10 Figg. 1910. — Über Lebensalter,

Fruchtbarkeit, Koloniebildungen und Tentakelzahlveränderungen

bei Hydra.

Heath, H. The Association of a Fish with a Hydroid. In:

Biol. Bull. Woods Hole XIX, p. 73—78, 2 Figg. 1910. —

Jäderholm, E. (1). Northern and Arctie Invertebrates in

the Collection of the swedish State Museum. 4. Hydroiden. In:

Svensk. Akad. Handl. XLV, p. 1—124, tab. I-XII. 1909. F. S.

— (2). Über die Hydroiden, welche Dr. C. Skottsberg in

den Jahren 1907—1909 gesammelt. In: Arkiv Zool. Upsala VI,

No. 14, p. 15, tab. 1910. — F. 8.

Ikeda, I. On a new species of Corymorpha from Japan (C.

tomoensis). In: Annot. Z. Jap. VII, p. 153—164, tab. V.—F.S.

Kemna, A. Morphologie des Coelenteres. In: Ann. Soc.

Z. Malac. Belg. XLIII, p. 229—337, XLIV, p. 143—204. 1910. —

Phylogenetisches. Beziehungen der Prämedusen (Hydra, Hale-

remita) zu den Gasträaden.

Kirekpatrik, R. The Hydrozoa and Porifera of St. Helena.

In: Proc. Zool. Soc. London, 1910, p. 127—131, tab. VII. — F. 8.

Kishinouye, K. Some Medusae of Japanese Waters. In:

J. Coll. Se. Japan. XXVII, Art. 9, p. 1-35, tab. I-V. — F. 8.

Koelitz, W. Morphologische und experimentelle Untersuchun-

gen an Hydra. Erstes Stück. In: Arch. Entw. Mech. XXXI,

p. 191—257, Tab. VI, VII. 1910. — Sehr ausführliche Untersuchung

über Regeneration (am Körper, an Teutokeln) von Hydra-Arten.

Beschreibung der verschiedenen Arten von Hydra. Begulations-

versuche am Körper und an Tentakeln. Verbreitung der einzelnen

Arten. F.S.

Kühn, A. Die Entwicklung der Geschlechtsindividuen der

Hydromedusen. Studien zur Ontogenese und Phylogenese der

Hydroiden 2. In: Zool. Jahrb. Abt. Anat. XXX, p. 43—174,

16 Figg. tab. IV—XI. 1910. — Sehr ausführliche Untersuchung

Publikationen und Referate. 67

über die Phylogenie der Geschlechtsindividuen der Hydromedusen.

Spezielle Betrachtung von Syncoryne sarsii, 8. pulchella, Coryne

fruticosa, Cladonema radiatum, Tubularia asymmetrica, Clava

squamata, Podocoryne carnea, Obelia dichotoma, Gonothyraea

loveni und Laomedea flexuosa. Im vergleichenden Teil allgemeine

Betrachtung der Gonophoren in den verschiedenen Hydroiden-

gruppen. Über ontogenetische Stadien und die Phylogenie der

Gonophoren. - Darstellung der typischen Stadien der Medusen-

entwicklung (‚‚Eumedusoida‘“, ‚eryptomedusoide‘“ und ‚hetero-

medusoide‘““ Formen, styloide Gonophoren).

1909, p. 1—18, tab. I, IH. — F. 8.

— (2). Japanische Medusen. In: Abh. Akad. München,

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Rittenhouse, S. The Embryology of Stomotoca apicata. In:

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Schaffer, J. Über den feineren Bau und die Entw ickelung

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68 Hydromedusae für 1910.

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Stevens, N. Regeneration in Antennularia. In: Arch, Entw.

Mech. XXX, 1. T., p. 1—7, 2 Figg. 1910. —

Toppe, 0. Untersuchungen über Bau und Funktion der

Nesselzellen der Cnidarien. In: Zool. Jahrb. Abt. Anat. XXIX.

p. 191—280, Tab. XIII—XVI. 1910. — Sehr ausführliche Be-

schreibung der Nesselzellen bei Velella spirans, Tubularia mesem-

dryanthemum, Pennaria cavolinii, sowie bei verschiedenen Hydra-

Arten. Die Nematocyten von Hydra. Über die Entladung der

Nesselorgane (durch die Muskelkontraktionen, sowie durch Auf-

quellung des Secrets). 8.

Torrey, H. (1). The Leptomedusae of the San Diego Region.

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1910. — Experimentelles über Hydrothenen.

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Will, L. Die sekretorischen Vorgänge bei der Nesselkapsel-

‘bildung der Cölenteraten. In: Sitz.-Ber. Nat. Ges. Rostcok (2),

‘I, p. 1-41, 7 Figg. 1910. — Entwicklung der Nesselkapseln.

Übersicht nach dem Stoff.

Morphologie, Anatomie, Histologie.

Nesselkapseln: Allgemeine Beschreibung, Boulenger, Toppe. Ent-

wicklung. Will. — Stützgewebe: Allgemeines. Schaffer. — Geschlechts-

organe: Über Gonophoren und über die Entwicklung der Geschlechts-

‚individuen der Hydromedusen, Kühn.

Ontogenie, Philogenie.

Entwicklung der Nesselkapseln. Will. — Embryologisches über Sto-

motoca apicata; Rittenhouse. Über die Entwicklug der Geschlechts-

individuen der Hydromedusen. Kühn. — Phylogenie der Hydromedusen.

‘Kühn.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 69

Biologie, Physiologie.

Biologie: Biologisches über Corymorpha. Torrey (5). — Biologie der

Hydra-Arten. Frischholz, Hase, — Biologisches über Tubularia; Moore (2).

— Über Einwirkung des Hungers auf Hydra. Berninger. — Experimentelles

über Hydrothenen; Torrey (2). — Über Geotropismus von Corymorpha;

Torrey (4). — Symbiose: von Podocoryne mirus mit Fisch Hydrichthys

mirus und Minaus inermis. Heath. Stechow von Hydractinia mit Pagurus.

Goto. — Regeneration von Hydra-Arten; Koelitz von Antennularia. Ste-

vens, von Corymorpha. Torrey (3). Tubularia. Moore (1). —Wirkung

des Lichtes auf Regeneration. Goldfarb.

Faunistik.

1. Marine Arten.

Arktik.

Sarsia flammea, S. tubulosa, Turris campanula, T. vesicaria; Mayer.

Tubularia sp.. Stechow.

Davis Str. u. Jones Sund: Antennularia antennaria, Campanularia

groenlandica, C. integra, C. speciosa, C. volubilis, C. verticillata, Campa-

nulina humilis, C. syringa, C. producta. Broch. Cladocarpus cornutus.

Jäderholm (1). Cladocarpus holmi, Cl. formosus, Coryne brevicornis, Cory-

morpha islandica, Diphasia abietina forma filicola, D. fallax, D. wandeli,

Eudendrium annulatum, E. rameum, Filellum serpens, Grammaria abietina,

Haleeium beanii, H. labrosum, H. muriecatum. Broch. Hydractinia coricata.

Jäderholm (1). Lafoöa fruticosa, L. gracillima forma typica, L. grandis,

Lafoeina maxima, L. tennis, Laomedea hyalina, L. longissima, Lovenella

quadridentata, Plumularia groenlandica, Sertularia fabricii, 8. mirabilis,

S. pumila, $. tenera, Sertularella polyzonium forma typica, S. tenella,

Stegopoma fastigiatum, $. plicatile, Thujaria alternitheca, Tubularia

indivisa, Thuiaria laxa, Th. lonchitis, Toichopoma obliquum; Broch.

Grönland: Amalthaea islandica. Stechow. Antennularias antennina,

Jäderholm (1). Bougainvilles superfieialis, Campanularia groenlandica,

C. humilis. Broch (1). Campanularia verticellata, C. groenlandica, C. spe-

eiosa, C. integra, Calycella syringa, Campanulina turrita, Cladocarpus

Holmi, C. erenulatus. Jäderholm (1). Clava squamata. Broch (1). Coryne

pusilla. Steehow. Corymorpha groenlandica, Coryne mirabilis. Broch (1).

Cryptolaria ( ?) borealis, Cuspidiella humilis, Diphasia abietina, D. wandeli,

D. filicula, Eudendrium capillare. Jäderholm (1). E. capillare. Broch (1).)

Filellum serpens, F. expansum. Jäderholm (1). Garveia groenlandica,

Grammaria immersa. Broch (1). Grammaria abietum, G. immersa. Jäder-

holm (1). Halecium labrosum, H. tenellum. Broch (1). Halecium murieatum,

H. tenellum, Hebella pucillum. Jäderholm (1). Hydractinia allmani, H.

cornea. Broch (1). Hydractinia allmani, H. echinata, Lafo&a dumosa, L.gra-

eillima, L. fructicosa, L.maxima, L. tenuis. Jäderholm(1). Monobrachium para-

situm. Broch (1). Monocaulus groenlandica. Stechow. Myriothela phrygia.

Broch (1). Obelia longis, O. flabellata, O. geniculata. Jäderholm (1). Peri-

gonimus repens, Broch (1). Perigonimus yoldiae-arcticae, P. roseus, Podo-

70 Hydromedusae für 1910.

coryne carnea. Jäderholm (1). Ptychogastria polaris, Ptychogena lactes,

Sarsia mirabilis, S. brachygaster, S. princeps. Mayer. Schizotrichia groen-

landica, Selaginopsis mirabilis, Sertularia pumila, Sertularella gigantea,

S. trieuspidata, S. tenella, S. polyzonia. Jäderholm (1). Sertularella

trieuspidata. Broch (1). Staurophora mertensii. Meyer. Stegopoma pli-

eatile, S. faseiatum, Tetrapoma quadridentatum. Jäderholm (1). Taumantias

eschscholtzi. Mayer. Thuiaria thuja, Th. lonchitis, Th. fabricii, Th.

immersa, Th. Thompsonii, Th. alternitheca, Toichopoma obligquum. Jäder-

holm (1). Toichopoma obliguum, Tubularia indivisa, T.regalis. Broch (1).

Tubularia indivisa. Jäderholm (1). Turris digitalis, T.eurystoma, T. coni-

fera. Mayer.

Island: Antennularia antennina, Bougainvilles muscus, Campanulina

lacerata, C. syringa. Broch (1). Calycella syringa, Jäderholm (1). Clava

squamata, Cladocarpus holmi. Broch (1). Clava squamata, Clytia John-

stoni, Corymorpha nutans. Jäderholm (1). Coryne sarsii, C. eximia, C.

pusilla, Corymorpha nutans, C. glacialis, €. islandica. Broch (1). Coryne

vermicularis. Jäderholm (1). Diphasia wandeli. Broch (1). Dicoryne con-

ferta. Broch (1), Jäderhelm (1), Diphasia abietina, D. filieula, D. ro-

sacea, D. fallax. Jäderholm (1). Eudendrium ramosum, E. insigne. Broch

(1). E. rameum. Stechow. Filellum serpens, Grammaria 3 bietina. Broch(l).

Gr. abietina, Halecium labrosum, H. kukenthali, H. murieatum. Jäderholm

(1). Haleeium muricatum, H. labrosum. Broch (1). Hybocodon prolifer,

Mayer. Hydrallmania falcata, Hydractinia carnea, H. echinata. Broch (1).

Hydrallmania faleata. Jäderholm (1). Lafoöa gracillima forma typica, L.

grandis, L. fructicosa. Broch (1). Lafoöa dumosa, L. gracillima, L. fruc-

ticosa. Jäderholm (1). Lovenella quadridentalis. Broch (1). Obelia lon-

gissima. Mayer, Jäderholm (1). Opercularella lacuotrix. Jäderholm (1).

Pontachogon haekuelii. Mayer. Perigonimus repens. Broch (1). Ptycho-

gena lactea. Mayer. Selaginopsis mirabilis. Jäderholm. Sertularia pumila,

S. tenera, S. cupressina, S. mirabilis. Broch (1). Sertularia pumila. Jäder-

holm (1). Sertularella tamarisca, S. tricuspidata, S. polyzonias forma

typica, S. p. forma gigantea, S. rugosa. Broch (1). Sertularella tamarisca,

Jäderholm (1). Syncoryne sarsi, Thuiaria argentea, Th. thuja, Tubularia

larynx. Jäderholm (1). Tubularia indivisa, T. larynx, T. pulcher. Broch (1).

Jan-Mayen-I.: Campanularia integra,C.volubilis. Broch(1). Campanularia

integra, Eudendrium vaginatum, E. annulatum. Jäderholm (1). Euden-

drium insignis, E. ramosum, Grammaria abietina, Halecium curvicaula,

H. tenellum, H. haleeium. Broch (1). Halecium curvicaula, Hydractinia

echinata. Jäderholm (1). Hiydractania echinata, Lafoda gracilis, forma

typica, L. pygmaea. Broch (1). Lafoöa gracillima, Obelia longissima.

Jäderholm (1). Sertularella tenella, S. pinnata, S. polyzonias forma typica.

Broch (1). Sertularella rugosa. Jäderholm (1).

Far-Oer: Calycella syringa, Coryne pusilla. Jäderholm (1). Clado-

carpus formosus. Ritchie (2), Broch (1). Lafoöa dumosa, Plumularia echinu-

lata, Thuiaria cupressina, Th. birulae. Jäderholm (1).

Nördl. Norwegen: Amalthaea uvifera, A. vardoensis. Mayer. Campa-

nulina humilis. Broch. Campanularia groenlandica, C. verticillata. Jäder-

Faunistik. 71

C. uvifera, C. glacialis, C. sarsii, C. nutans, C. nana, Coryne eximia. Broch

(1). Eudendrium annulatum. Jäderholm (1). Gymnogonos sp. Stechow.

Halecium tortile.. Broch (1). Halecium beani. Jäderholm (1). Hydrac-

tinia echinata. Broch (1). Lampra sp. Stechow. Lafoöina maxima, Mono-

coryne gigantea, Myriothela mitra, M. minuta, M. gigantea, M. verrucosa,

Ophiodes gorgonoides. Broch (1). Ophiodes gorgonoides, Podocoryne

carnea, Schizotrichia variabilis. Jäderholm (1). Sertularia mirabilis, S.

argentea, S. albimaris, S. pumila, Sertularella polyzonias forma gigantea,

Stegopoma fasciatum, St. plicatile, Tubularia simplex. Broch (1).

Murman-Küste: Campanularia volubilis, Calycella syringa, Diphasia

abietum, Eudendrium eannulatum, Filellum serpens, Grammaria abietina,

Gr. immersa, Haleecium scatum, H. repens. Jäderholm (1). Halecium

repens, H. minutum, H. scutum, H. labrosum, H. muricatum. Broch (1.)

Halecium curvicaule, H. muricatum, Hydrallmania falcatae. Jäderholm

(1). Lafoöa gracillima forma typica, L. g. f. elegantula. Broch (1). Lafoea

fruticosa, L. gracillima, L. grandis. Jäderholm (1). Melicertum campanula,

Plumularia fragilis.. Broch (1). Plumularia fragilis.. Jäderholm (1). Pty-

chogena lactea, Ptychogastra polaris, Sarsia mirabilis. Mayer. Selaginopsis

mirabilis, Selag. hartlaubi, Sertularella gigantea, Thuiaria birulae, Th.

fusca, Th. kolaönsis, Th. carica, Th. thuja. Jäderholm (1). Toichopoma

obligquum. Broch (1), Jäderholm (1). Turris conifera. Mayer.

Weisses Meer: Campanularia groenlandica, C. vertieillata, C. integra,

C. volubilis. Broch (1). Campanularia flexuosa, C. levinseni, C. groen-

landica, C. vertieillum, C. volubilis, Calycella syringa. Jäderholm (i).

Campanulina syringa, C. lacerata, Clava squamata, Coryne mirabilis),

Diphasia abietina forma filicula, D.a.f. typica, Filellum serpens. Broch (1).

Filellum tubiforme, Gonothyrea loveni, G. hyalina, Grammaria abietina,

Jäderholm (1). Grammaria abietina. Broch (1). Halecium labrosum, H,

halecinum, H. tenellum, H. mirabile, H. muricatum, H. besni. Jäderholm

(1). Halecium haleeinum, H. beanii, H. labrosum, H. muricatum, H. te-

nellum, H. mirabile. Broch (1). Hebella parvula, H. pacillum. Jäderholm

(1). ? Hydractinia borealis. Broch (1). Hydrallmania falcata. Jäderholm

(1). Lafo&a graeillima forma typica, L. dumosa, L. pueillum, L. pygmaea,

L. fruticosa, Lafoöina maxima. Broch (1). Lafo&a dumosa. Jäderholm

(1). Laomedea loveni, L. hyalina, L. geniculata, L. flexuosa, Lovenella

quadridentata. Broch (1). Monobrachium parasiticum. Broch (1). Meyer.

Obelia solowetzkiana, O. geniculata, Opercularella lacerata, Perigonimus

roseus, P. yoldiae-arcticae. Jäderholm (1). Perigonimus yoldiae-arcticde.

Broch (1). Protaria beroe, P. borealis. Mayer. Selaginopsis mirabilis.

Jäderholm (1). Sertularia mirabilis, S. pumila, S. tenera, S. albimaris,

S. inflata. Broch (1). Sertularia pumila. Jäderholm (1). Sertularella

trieuspidata, S. polyzonias forma gigantea. Broch (1). Sertularella ta-

marisca, S. negosa, S. gigantea. Jäderholm (1). Stauridium productum,

Thuiaria lonchitis, Th. obsoleta, Th. lata, Th. carica. Broch (1). Thuiaria

thuja, Th. inflate, Th. thompsoni, Th. lonchitis,. Jäderholm (1). Tisa-

ropsis diademata. Mayer. Tubularia indivisa Broch (1).

Nowaja Semlja: Campanulina syringa. Broch (1). Corymorpha

nutans. Jäderholm (1). Filellum serpens, Grammaria abietina. Broch (1).

19 Hydromedusae für 1910.

Halecium tenellum. Jäderholm (1). Halecium muricatum, Hydractinia

carica, Lafo6a grandis. Broch (1). Obelia dichotoma. Jäderholm (1).

Protaria beroö, Mayer, Sertularella rugosa.. Jäderholm (1). Tubularia

larynx, Thuiaria pinaster. Broch (1). Thuiaria argentea, Th. ceupressina.

Jäderholm (1).

Bären-Insel: Antennularia antennina. Jäderholm (1). Campanularia

speciosa, Campanulina syringa. Broch (1). Cladocarpus bonnevieae, Cl.

Holmi. Jäderholm (1). Eudendrium annulatum, Grammaria abietina,

Gr. immersa, Halecium irregulare, H. eurvicauda, H. muricatum, Hal-

cornaria compressa, Hydrallmania faleata. Broch (1). Halecium muri-

catum. Jäderholm (1). Lafoöa gracillima forma elegantula, Lafosina

maxima, L. tenuis, Lovenella quadridentata. Broch (1). Pandea maasi.

Mayer. Perigonimus abyssi, Sertularia pumila, S. albimaris, S. mirabilis,

Sertularella polyzonias forma gigantea. Broch (1). Selaginopsis arctica,

Sel. decemserialis. Jäderholm (1). Stegopoma fastigiatum, St. plicatila,

Thuiaria decemserialis, Thuiaria arctica, Th. obsoleta, Toichopoma obliguum,

Tubularia christinae. Broch (1).

Norwegisches Nordmeer: Antennularia variabilis. Jäderholm (1).

Bougainvillea von benedenii. Broch (1). Campanularia hinecksii, Clytia

Johnstoni. Jäderholm (1). Corymorpha abyssalis, C. atlantica. Broch (1).

Diphasia pinaster. D. coronifera, D. fallax, D. abietina, Eudendrium ra-

meum. Jäderholm (1). Eudendrium rameum. Broch (1). Stechow. Gram-

maria abietina. Broch (1). Gonothyrea hyalina, Galanthula marina. Jäder-

holm (1). Halecium minutum, H. muricatum, H. halecinum. Broch (1).

Halecium sessile. Jäderholm (1). Hydractinia ornata, Hydrallmanisa

faleata, Hydractinia allmani, Lafo6a frueticosa, Lietorella pinnata, Lafo6a

tenuis. Broch (1). Lafoöa eleguntula. Jäderholm (1). Perigonimus repens,

Sertularella tamarisca. Broch (1). Sertularella polyzonias, S. tamarisca.

Jäderholm (1). Stylactis arctica, Thecocarpus myriophyllum. Broch (1).

Jäderholm (1). Thuiaria fabricii, Th. laxa, Th. hippuris (?), Tubularia

indivisa. Jäderholm (1). Tubularia larynx, T. cornucopia, T. regalis, T.

indivisa. Broch (1).

Spitzbergen u. Franz-Josef Land: Campanularia verticillata, C. vo-

nulina humilis, C. syringa, Cladocarpus dubius. Broch (1). Cladocarpus

formosus, Clytia Johnstonii. Jäderholm (1). Coryne pusilla, Corymorpha

pidiella humilis. Jäderholm (1). Diphasia abietina forma typica, D. thu-

jarioides. Broch (1). Diphasia abietina, Eudendrium tenellum, E. capillare.

Jäderholm (1). Eudendrium rameum, E. tenellum, E. aunulatum, E.

eapillare. Broch (1). Eud. rameum Steehow. Filellum serpens. Broch (1).

Jäderholm (1). Grammaria abietina, G. immersa. Broch (1). Gonothyrea

clarki, Grammania abietina, G. immersa, Halecium boreale, H. lobrosum,

H. kükenthalü, H. beani, H. muricatum. Jäderholm (1.) Halecium or-

natum, H. minutum, H. corrugatum, H. halecinum, H. muricatum,

H. labrosum, H. curvicauda, H. beanii, H. kükenthali, H. septentrionale.

Broch (1). Hydractinia allmani, H. monocarpa, H. carica. Jäderholm (1).

Hydractinia monocarpa, H. minuta, H. carnea. Broch (1). Hydrallmania

Faunistik. 73

falcata. Jäderholm (1). Lafo&a fruticosa, L. gracillima forma typica,

L.pygmaea. Broch (1). Lafoea grandis, L. gracillines, L. fruticosa. Jäder-

holm (1). Lafoöina tenuis, L. maxima. Broch (1), Jäderholm (1). Lampra

arctica. Jäderholm (1). Lov£enella quadridentata, Monobrachium para-

situm. Broch (1). Obelia longissima. Jäderholm (1). Perigonmius abyssi,

P. repens. Broch (1). Ptychogastra polaris, Pantochogon haeckelii, Mayer.

Rhizogeton nudum. Ritchie (4), Broch (1). Sarsia princeps, S. brachy-

gaster, Mayer, Selaginopsis mirabilis, S. obsoleta. Jäderholm (1). Sertu-

laria mirabilis, S. tenera, S. albimaris, Sertularella tenella, S. polyzonias

forma typica, S. p. f. gigantea. Broch (1). Sertularella gigantea, S. pellu-

eida, S. tricuspidata. Jäderholm (1). Stegopoma plicatile. Jäderholm (1),

Broch (1). Thaumantias iconspieua. Jäderholm (1). Thuiaria carica, Th.

obsoleta. Broch (1). Thuiari& hjörti, Th. immersa, Th. thompsoni, Th.

arctica forma spitzbergensis, Th. birulae. Jäderholm (1). Toichopoma

obliquum. Broch (1). Tetrapoma quadridentata. Jäderholm (1). Tubularia

regalis, T. larynx. Broch (1).

Kara-See: Calycella syringas, Campanulina borealis, Campanularia

syringa, Campenularia groenlandica, C. verticillata, Coryne brevicornis.

Broch (1). Diphasia pulchra, D. abietum. Jäderholm (1). Diphasia thuja-

rioides, D. abietina forma typica. Broch (1). Eudendrium rameum, Fillellum

serpens, F. expansum, Halecium tenellum, H. beanii, Hebella pocillum.

Jäderholm (1). Halecium beanii. Broch (1). Hydractinia monocarpa,

H. carica. Jäderholm (1). Hydractinia carica, H. allmani. Broch (1).

Hydrallmania falcata. Broch (1). Jäderholm (1). Lafoöa fructicosa, L.

gracillima. Jäderholm (1). Lafoöa fructicoss, L. pocillum, L. dumosa,

L. graeillima forma typica, Laomedes gelatinosum, Monobrachium para-

situm. Broch (1). Obelia longissima. Jäderholm (1). Perigonimus yoldiae-

arcticae. Broch (1). Jäderholm (1). Selaginopsis mirabilis. Jäderholm (1).

Sertularia mirebilis, S. polyzonias forma gigantea. Broch (1). Sertularella

gigantea, S. tricuspidata, Stegopoma plieatile. Jäderholm (1). Stegopoma

plieatile. Broch (1). Thuiaria arctica forma spitzbergensis, Th. a. f. sibi-

rica, Th. lonchitis, Th. argentea. Jäderholm (1). Thuiaria carica. Broch A).

Jäderholm (1). Tubularia regalis. Broch (1).

Sibirisches Eismeer: (inkl. Nordenskjöld-Meer u. Neu-Sibir.-Inseln)

Calycella syringa, Campanularia borealis. Jäderholm (1). Campanularia

integra, C. humilis, C. groenlandica, C. lacerata, Campanulina syringa.

Broch (1). Campanularia vertieillata, Cuspidiella humilis, Diphasia varia-

bilis, D. turgida, D. pulchra. Jäderholm (1). Diphasia turgida, D. thu-

jarioides, D. abietina. Broch (1). Eudendrium rameum, E. caricum. Broch

(1). Jäderholm (1). Filellum serpens. Broch (1). Jäderholm (1). Grammaria

abietina, Gr. immersa. Broch (1). Jäderholm (1). Halecium muricatum,

H. beani. Broch (1). H. beanii. Jäderholm (1). Hydractinia allmani,

H. monocarpa. Broch (1). Jäderholm (1). Laomedea longissima. Broch(1).

Lafo&a maxima, L. fruticosa, L. graeillima. Jäderholm (1). Broch (1).

Lofo&a pucillum, L. maxima, Lovönella quadridentata, Myriothela phrygia.

Broch (1). Obelia dichotoma, O. longissima, Perigonimus yoldiae-arcticae,

P. abyssi. Jäderholm (1). Selaginopsis pinaster, S. mirabilis, S. obsoleta.

74 Hydromedusae für 1910.

Jäderholm (1). Sertularia mirabilis, S. tenera, $. robusta, S. plumosa,

S. Tolli, Sertularella tricuspidata, S. polyzonias forma gigantea. Broch (1).

Sertularella gigantea, S. trieuspidata, Stegopoma plicatile. Jäderholm (1).

St. pliestile. Broch (1). Thuiaria carica, Th. robusta, Th. lonchitis, Th,

arctia, Th. thompsoni, Th. Tolli, Th. plumosa, Th. vegae. Jäderholm (1).

Thuiarica carica. Broch (1). Tubularia indivisa. Broch (1). Jäderholm (1).

Atlantik.

Nord-Atlantik.

Labrador: Campanulina grandis, Campanularia integra, C. volubilis,

C. hincksii, C. Johnstoni, C. vertieillata, Clava multicornis, Cl. leptostyla,

Coryne mirabilis, Corymorpha glacialis, Diphasia fallax, Diphasia rosacea,

D. abietina forma typica, D. a. f. filicula, Grammaria abietina, Halecium

muricatum, H. halecium, Hydrallmania falcata, Hydractinias polyelina,

Laomedea longissims, L. flexuosa, L. dichotoma, L. geniculata, L. gela-

tinosa, Lafo&a gracillima forma typics, L. pocillum, Sertularis mirabilis,

S. argentea, S. cupressina, Sertularella rugosa, S. tamarisca, S. polyzonias,

forma typica, Thuiaria thuja. Broch (1).

Nord-Atlantie West (Golf-Stream, Ostküste von Nordamerika, New-

foundland), Aeginopsis laurentii, Aglantha digitale vaz occidentalis, Acquo-

re& tenuis, Ac.albida, Aeginopsis (?) pschyderma. Mayer. Antennularis

antennina. Broch (1). Acaulis primarius. Jäderholm (1). Antennulerie

antennina, Stechow, Aglantha digitale. Mayer. Antennularis antennina.

Jäderholm (1). Aeginura latecarinata. Vanhöffen. Aglaura hemistoma,

Bougainvilles autummalis, B. carolinensis, B. superciliaris, B. britennica,

B. rugosa, Blackfordia virginica n. sp., Bl. manhattensis n. sp., Colycopsis

typa. Mayer, Campanulina lacerats, C. syringa, Campanularia Johnstoni,

C. verticillata, C. integra, C. hinexsii, C. volubilis. Broch (1). Campanularia

integra, C. volubilis, C. flexuosa, C. negleceta, C. verticillata, C. gelatinosa,

Calycella syrings. Jäderholm (1). Clytia follesta. Mayer. Clytia Johnstoni,

Cl. simplex. Vanhöffen. Clytie volubilis. Hergitt. Cladocarpus cornutus,

Cl. pourtalesi. Jäderholm (1). Cladocoryne floccosa noVv. var. sargassensis

Hargitt. Corynitis agassizi. Mayer. Corymorpha pendula. Broch (1).

Cuspidiella humilis. Broch (1). Cunocantha octonaris var. köllikeri, C. octo-

naria,Crossata brunea. Mayer. Dicoryne flexuosa, Diphasia abinetins f. fili-

cula, Diphasia abietins f. typica, D. fallax, D. rosacea. Broch (1). Diphasia

abietina, D. filicula, D. fallax, D. rosacea. Jäderholm (1). Dicoryne con-

ferta. Broch (1). Eudendrium capillare. Broch (1). Jäderholm (1). E.ra-

meum. Broch (1). Eucheilota ventricularis, E. duodecimalis var. parvum,

Eutima mirum, E. cuculata, Eirene variabilis.. Mayer. Eudendrium ra-

mosum, Eud. capillare. Broch (1). Steehow. Eetopleura dumortieri, Euchei-

lota duodecimalis, E. bermudensis, Eutima elephas. Mayer. Filellum ser-

pens. Jäderholm (1). Gonionemus murbachii. Mayer. Grammaria abietina.

Broch (1). Jäderholm (1). Gemmaria gemmosa. Stechow. Geryonis pro-

boscidalis. Mayer. Gemmaria implexa. Vanhöffen. Halecium articulo-

sum, H. muricatum, H. sessile.. Broch (1). Jäderholm (1). Halecium ha-

lecium. Broch (1). Halecium beani, H. labrosum. Jäderholm (1). Halecium

novum. Vanhöffen. Halicreas papillarum, Halopsis ocellata, Hybocodon.

Faunistik. 75

pendula, H.. prolifer, Hydrichthys mirus. Mayer. Hydrichthys mirus,

Stechow. Hydractinia echinata, Hydrallmanis falcata. Jäderholm. (1).

Hydrallmania falcata. Broch (1). Keratosum n.g. Hargitt. Lafo&a humosa.

Broch (1). Jäderholm (1). L. fructicosa. Broch (1). Laodicesa cruciata.

Mayer. Laomedea gelatinosa, L. gracilis, L. flexuosa, L. longissima, L. dicho-

toma, L. geniculata, L. hyalina, L. loveni. Broch (1). Liriope scutigera, L.

crassus, Lymnorea borealis. Mayer. Lov£enella producta. Jäderholm (1).

Melicertum campanula. Mayer. Monocaulus pendulus. Stechow. Mitrocoms

crucista, Margelopsis hartlaubi, Nemopsis bachei, Obelia hyalina, O.

bidentata, O. pyriformis. Mayer. Opercularella lacerata. Jäderholm (1).

Obelia gelatinoss, O. genicullata, O. nigra, O. plana, O. comissurealis. Mayer.

Obelia diehotoma, O. flabellasta, O. genieulata, O. longissima. Jäderholm (1).

Mayer. O. hyalina. Vanhöffen. Orchistoma tentaculata, Pennaria tiarella

Mayer. Plumularia setaces. Jäderholm (1). Stechow. Plumularia sargassi

n. sp., Pl. margaretta. Vanhöffen. Perigonimus jonesi, Pegantha clara.

Mayer. Perigonimus repens. Broch (1). Podocoryne carnesa. Jäderholm (1).

Podocoryne areolata, P. carnes, P. fulgarens, Persa incolorata, Phortis

gibbosa. Phialidium singularis, Proboscidactyla ornata var. gemmifere,

Ptychogena lactes, Rathkea octopunctata var. grata, R. octopunctata,

Sarsia mirabilis, S. hargitti. Mayer. Schizotrichia gracillima, Selaginopsis

mirabilis, Sertularia pumila. Jäderholm (1). Sertularia pumila, S. tenera,

S. cupressina, S. argentes. Broch (1). Sertularia inflata, S. mayeri. Van-

höffen. Sertularella tamarisca, S. trieuspidata, S. rugosa, S. gayi, S. poly-

zonias f. typica, S. tenella. Broch (1). Sertularella polyzonias, S. rugosa,

S. tricuspidata, S. gayi. Jäderholm (1). Sibogita typa, seabberia strangulata,

Stylactis hooperi, S. arge, Stomotoca pterophylla, Stormobrachium tenta-

culare. Mayer. Stegopoma plicatile. Jäderholm (1). Staurophora mer-

tensii, Stomatoca rugosa, Thaumantias rubrum. Mayer. Thecocarpus

myriophyllum. Broch (1). Thuiaria cupressina, Th. argentea, Th. thuja,

Th. lonchitis. Jäderholm (1). Th. lata, Th. lonchitis. Broch (1). Tiaropsis

diademata. Mayer. Tiura rotunda. Maas (3). Tima formosa. Mayer.

Tubularia indivisa, T. larynx. Broch (1). Jäderholm (1). Turritopsis

nutricula, Turris vesicaria, T. prismatica, Willsia brooksii n. sp. Zygodae-

tyla (?) erassa, Z. groenlandica, Zanclea celadophora. Mayer.

Nord- Atlantik West.

Norwegen: Acaulis primarius. Jäderholm (1). Antennularia antennina-

Broch (1). Jäderholm (1). Antenn. ramosa, A. norwegica. Jäderholm (1)-

Amalthaea sarsii, Bougainvillea obseura. Mayer. B. v. Benedeni, B. ra-

mosa. Broch (1). Jäderholm (1). Campanulina syringa, C. producta. Broch

(1). Campanularia vertieillata, C. grandis, C. gelatinosa, C. flexuosa, C.

(1). Clava squamata. Broch (1). Jäderholm (1). Cladocarpus bicuspis,

Cl. pourtalesii, Clytia Johnstoni, Corymorpha nutans, Coryne pusilla,

Corymorpha sarsii. Jäderholm (1). Coryne lovenii, C. pusilla. Broch (1).

Corymorpha sp. Stechow. Cosmetirs pilosella, Crossota „norwegica“.

Mayer. Dicoryne conferta. Broch (1). Jäderholm (1). Dicoryne flexuosa.

Broch (1). Diphasia abietina, D. filieula, D. pinaster, D. alata, D. fallax,

76 Hydromedusae für 1910.

D. elegans, Eudendrium capillare, E. tenellum, E. wrightii, E. vaginatum,

E. rameum. Jäderholm (1). Eudendrium ramosum, E. annulatum, E. te-

nellum, E. capillare. Broch (1). E. rameum. Broch (1). Stechow. Filellum

serpens, Grammaria abietina. Broch (1). Gonothyrea hyalina, Grammaria

abietina. Jäderholm (1). Halecium halecium, H. labrosum. Broch (1).

Jäderholm (1). H. sessila, H. beani, H. seutum, H. muricatum. Broch (1).

H. planum, H. tenellum, H. plumosum, Halicarnaria integra. Jäderholm

(1). Homoeonema platygopon. Mayer. Hydractinia echinata, H. all-

manii. Jäderholm (1). H. carnea, H. minuta. Broch (1). Hydrallmania

falcata. Broch (1). Jäderholm (1). Lafoöa gracillima, L. fructicosa, L. du-

mosa. Broch (1). Jäderholm (1). Lafoöa grandis. Jäderholm (1). Lafoöina

tenuis. Broch (1). Jäderholm (1). Lovenella productum. Jäderholm.

Myriothelaphrygia, M.cocksiü. Broch (1). Melicertum octocostatum. Mayer.

Obelia dichotoma. Jäderholm (1). Obelia nigra, O. plana. Mayer. Ophioides

parasitica. Jäderholm. Pandea saltatoria.. Meyer. Pennaria primarius.

Broch (1). Perigonimus abyssi, P. roseus, P. repens. Broch (1). Jäderholm

(1). Perigonimus muscoides. Jäderholm (1). Plumularia pinnata, Pl. se-

tacea, Pr. catarina, Pl. bonnevieae, Podocoryne carnea. Jäderholm (1).

Podocoryne areolata, Sarsia mirabilis, S. gemmifera. Mayer. Schizo-

trichia frutescens, Sch. graeillima. Broch (1). Jäderholm (1). Sertularia

operculata, S. pumila. Jäderholm (1). Sertularella gayi, 8. rugosa, 8.

tamarisca. Broch (1). Jäderholm. S. trieuspidata. Jäderholm (1). S. po-

lyzonias f. typica. Broch (1). Solmaris corona, Steenstrupia rubra. Mayer.

Stegopoma fasciatum, S. plicatile, Syncoryne sarsii, S. loveni, Jäderholm

(1). Thaumantias forbesii. Mayer. Thecocarpus myriophyllum, 'Thuiaria

tenera, Th. fusca, Th. argentea, Th. lonchitis, Th. thuja. Jäderholm (1).

Tubularia indivisa. Broch (1). Jäderholm (1). Tubularia humilis, T. regalis.

Broch (1).

Großbritannien: Aequorea forskalea, Agastra mira. Mayer. Antennu-

laria antennina. Jäderholm (1). Bougainvillea muscus. Broch (1). B.nord-

gaardi, B. pyramidata, B. dinema. Mayer. Campanularia neglecta, Calycella

syringa, Campanulina turrita, Clava squamata, Caldonema radıatum,

Clytia Johnstoni, Corymorpha nutans, Coryne vermicularis, C. pusilla.

Jäderholm (1). Corymorpha nova. Broch (1). Corymorpha sp., Coryne

pusilla. Steehow. Cosmetira pilosella. Mayer. Cuspidiella humilis, Diphasia

rosacea, D. pinaster, D. fallax. Jäderholm (1). Eudendrium insigne, E.

capillare. Broch (1). Eudendrium Wrightii, E. rameum. Jäderholm (1).

Eutima insignis, Eucope globosa. Mayer. Eudendrium capillare. Stechow.

Filelum serpens, Halecium muricatum, H. sessile, H. tenellum, H. hale-

cium, H. beani, Hebella parvula, H. pacillum, Hydractinia echinata. Jäder-

holm (1). Laodicea (?) chapmani. Mayer. Lafoöa pocillum. Broch (1).

Lafoöa gracillima, L. dumosa. Jäderholm (1). Liriope appendiculata,

Mitrocoma megalota, M. polydiademata, Nemopsis rucifera, Obelia dicho-

toma, O. nigra, O. plicata, O. plana. Mayer. Perigonimus repens. Jäder-

holm (1). Stechow. Plumularia setacea, Pl. pinnata, Pl. similis, Pl. cata-

rina, Polyplumaria flabellata. Jäderholm (1). Sarsia producta, S. eximia,

Saphenia gracilis. Mayer. Sarsia producta, S. eximia, Saphenia gracilis.

Mayer. Schizotrichia frutescens, Sertularia pumula, S. operculata, Ser-

Faunistik. 7

tularella trieuspidata, S. tamarisca. Jäderholm (1). Slabberia catenata,

SI. halterata, Solmaris multilobata, S. corona, Stomotoca diadema. Mayer.

Stauridium productum. Broch (1). Stegopoma fasciatum, Syncoryne

sarsi, Thecocarpus myriophyllum, Thuiaria fusca, Th. cupressina, Th.

argentea, Th. thuja, Th. lonchitis. Jäderholm (1). Tima bairdii, Tiaropsis

multieirratus, Trichorhiza brunnea. Mayer. Tubularia simplex, T. humilis.

Broch (1). T. indivisa. Jäderholm (1). Turris neglecta, T. digitalis, Willsia.

stellata. Mayer.

Nordsee: Aequorea discus. Mayer. Antennularia ramosa, A. antennina

Jäderholm. Bougainvillea prineipis, B. autumnalis, B. flavida, B. xantha.

Mayer. B. ramosa. Jäderholm (1). Stechow. Campanularia gelatinosa,

C. verticillata, C. integra, Cladonema radiatum, Clytia Johnstonii, Cory-

morpha nutans, Coryne pusilla. Jäderholm (1). Coryne pusilla. Stechow.

Cuspidiella grandis, Dicoryne conferta, Diphasia fallax, D. filieula, D. abie-

tina, D. pinaster, D. rosacea. Jäderholm (1). Eirene viridula, Eutimium

socialis, Eucheilota maculata. Mayer. Eudendrium capillare. Stechow.

Eutima elephas. Mayer. Filellum serpens, F. expansum, Halecium tenel-

lum, H. sessile, H. beani, Hydrallmania falcata, Lafo6a fruticosa, L. du-

mosa, Lovenella clausa. Jäderholm (1). Margelopsis haekelii, Melicertum

octacostatum, Nemopsis sp., Obelia helgolandica, O. adelungi. Mayer,

. Obelia flabellata, O. longissima, Opercularella nana, Podocoryne carnea,

Plumularia setacea, Pl. catarina, Pl. pinnata. Jäderholm (1). Perigonimus

repens. Stechow. Sarsia eximia. Mayer. Schizotrichia fructescens, Ser-

tularia pumila, S. operculata, Sertularella gayi, S. rugosa, S. polyzonias,

S. tamarisca. Jäderholm (1). Stauridium producetum. Broch (1). Stauro-

phora mertensii. Mayer. Syncoryne sarsi, Thuiaria cupressina, Th. tenera,

Th. argentea, Th. lonchitis, Th. thuja. Jäderholm (1). Tiaropsis multi-

cinata. Mayer. Tubularia indivisa, T. humilis, T. larynx. Jäderholm (1).

T. humilis. Broch (i). T. indivisa nov. var. Borowsky.

Kattegatt (Westküste v. Schweden): Acaulis primarius, Antennularia

antennina, A.ramosa, Bougainvillea van- benedeni, B.ramosa, Campanularia

gelatinosa, C. neglecta, C. verticillata, C. gigantea, C. volubibis, C. flexuosa,

C. hincksii, C. integra, Calycella syringa, Cladonema radiatum, Clava glo-

merata, Clytia Johnstoni, Coryne vermicularis C. pusilla, Cuspidiells

grandis, Dicoryne conferta, Diphasia filieula, D. rosacea, D. fallax, D.

abietina, D. pinaster, Eudendrium capillare, E. annulatum, E. armatum,

E. rameum, Filellum expansum, F. serpens, Gonothyrea loveni, G. gracilis,

Halecium halecium, H. tenellum, H. articulatum, H. muricatum, H. beani,

Hydractinia echinata, Hydrallmania falcata, Lafo&a dumosa, L. gracillima,

Lafo&ina tenuis, Lovenella producta, L. clausa, Obelia dichotoma, O. lon-

gissima, O. flabellata, O. geniculata, Opercularella lacerata, Perigonimus

abyssi, P. repens, P. roseus, P. muscoides, Plumularia catharina, Pl. similis,

Pl. setacea, Pl. pinnata, Podocoryne carnea, Schizotrichia graeillima,

Sch. frutescens, Sertularia pumila, Sertularella gayi, S. tenella, S. poly-

zonias, S. rugosa, Stegopoma fastigatum, Syncoryne lov£ni, S. sarsi, Theco-

.carpus myriophyllum, Thuiaria fusca, Th. lonchitis, Th. thuja, Tubularia

larynx, T. indivisa. Jäderholm (1).

78 Hydromedusae für 1910.

Ostsee. Gr. Belt: Eudendrium capillare. Stechow. — Kieler Bucht:

Clava squamata, Clytia Johnstoni, Eudendrium rameum, Podocoryne

carnea, Syncoryne sarsi, Sertularia pumila. Jäderhelm (1). — Östl. Ostsee:

(Stockholm ete.) Campanularia flexuosa, Gonothyrea loveni, Obelia ge-

niculata, Sertularella tenella. Jäderholm (1).

Nord-Atlantik Ost.

(Europ. Küste): Aglaophenia latecarinata, A. pluma. Vanhöffen.

Antennularia antennina, A. norwegica, A. ramosa. Jäderholm (1).

Ant. antennina, Antenella gracilis, A. secundum. Stechow. Aglantha

elongata, Aglaora hemistoma, Bougainvilles superficialis, B. britannica.

Mayer. Bougainvilles ramosa. Stechow. Jäderholm (1). Bonneviella

grandis. Broch (1). Bythotiaria murrayi. Mayer. Calycella syringa, Cam-

panularia gelatinosa, C. neglecta, C. flexuosa. Jäderholm (1). Campanularia

integra, C. hincksü, C. vertieillata, C. volubilis. Broch (1). Jäderholm (1).

Campanularia Johnstoni, Campanulina humilis, C. producta, C. grandis,

C. lacerata, C. syringa, Clava multicornis. Broch (1). Cladonema radiatum.

Mayer. Jäderholm (1). Clytia Johnstoni. Vanhöffen. Jäderholm (1).

Clytia volubilis. Mayer. Cl. simplex. Vanhöffen. Coryne pusilla. Stechow.

Vanhöffen. Coryne vermicularis. Jäderholm (1). Crossota brunnea, Cu-

noctantha fowleri. Mayer. Cuspidiella grandis. Jäderholm (1). Diphasia

pinaster, D. filicula, D. abietum. Jäderholm (1). Diphasia rosacea, D.fallax,

D. abietina £. filicula, D. a. f. typica, D. wandeli, Dicoryne conferts. Broch

(1). Dicodonium dinema, Dipleurosoma typicum. Mayer. Eudendrium

ramosum. Broch (1). E. capillare, E. rameum. Jäderholm (1). E. rameum

Stechow. Ectopleura dumortieri, Eirene viridula, Eleutheria dichotoma,

Eucheilota paradoxia, Eutima elephas, E. campanulata, Eucodonium

brownei. Mayer. Filellum serpens. Jäderholm (1). Gemmaria implexa

Vanhöffen. Gonothyrea hyalina, G. gracilis, G. loveni, Grammaria abietina.

Jäderholm (1). Gossea corynetes. Mayer. Grammaria abietina. Broch (1).

Halecium halecium, H. senile, H. tenellum. Broch (1). Jäderholm (1).

H. irregulare. Jäderholm (1). H. muricatum, H. labrosum. Broch (1).

.‚H.novum. Vanhöffen. Hebella pocillum. Jäderholm (1). Hybocodon pro-

lifer. Mayer. Hydractinia echinata. Broch (1). Jäderholm (1). H. carnea,

Broch (1). Hydrallmania falcata, Lafo&a dumosa, L. fruticosa. Broch (1).

Jäderholm (1). Lafo&a gracillima. Jäderholm (1). Lafoäina tenuis, Lao-

medea gelatinosa, L. geniculata, L. flexuosa, L. gracilis, L. dichotoma,

L. longissima, L. hyalina, L. loveni. Broch (1). Laodicea cruciata. Mayer

Lictorella pinnata. Broch (1). Jäderholm (1). Liriope crassus, Melicertum

octocostatum, Obelia gelatinosa, O. plana, O. geniculata. Mayer. Obelia

hyalina, O. geniculata. Vanhöffen. Obelia longissima, O. geniculata, O.

flabellum, O. diehotoma, Opercularella lacerata. Jäderholm (1). Peri-

gonimus repens. Stechow. Broch (1). Phialidium hemisperieum, Ph.

buskianum. Mayer. Plumularia pinnata. Broch (1). Pl. echinata, Pl.

setacea, Pl. bonnevieae, Pl. pinnata. Jäderholm (1). Plumularia setacea.

Stechow. Plumularia margaretta, Pl. sargassi n. sp. Vanhöffen. Podo-

coryne carnea. Jäderholm (1). Mayer. Podococyne areolata, P. polystyla.

Mayer. Polyplumaria flabellata. Jäderholm (1). Rathkea blondins, Rh.

Faunistik. 79

octopunctata, Sarsia gemmifera, S. tubulosa, S. prolifera, Saphenia dinema.

Mayer. Schizotricha gracillima. Broch (1). Schizotricha frutescens. Jäder-

holm (1). Sertularia pumila, S. tenera, S. cupressina, S. argentea, S. fa-

bricii, S. opereulata, S. pumila. Jäderholm (1). Sertularia mayeri, S. in-

flata. Vanhöffen. Sertularella tamarisca, S. rugosa, S. gayi, S. polyzonias

f. typiea. Broch (1). Jäderholm (1). Sertularella trieuspidata, S. tenella.

Broch (1). Sminthea euryaster, Steenstrupia aurota, St. rubra, Stomo-

brachium (?) stauroglyphum. Mayer. Stegopoma plicatile. Broch (1).

St. faseiatum, S. fostigiatum. Jäderholm (1). Tiara rotunda. Maas (3).

Thecocarpus myriophylium, Thaumentias inconspicua, Thuiaria salicarnia.

Th. cupressina, Th. argentea, Th. thuja. Jäderholm (1). Thuiaria laxa,

Th. lonchitis. Broch (1). Tubularia indivisa. Jäderholm(1). Turris pileata,

Mayer. Tubularia indivisa. Broch (1). T. larynx. Jäderholm (1). Zanclea

implexa, Z. gemmosa. Mayer.

Mittelmeer: Aequorea violacea, Aglaura hemistoma, Mayer. Antennu-

laria norwegica, A. antennina, A. ramosa. Jäderholm (1). A. antennina,

A. perrieri var. antennoides. Stechow. Bougainvilla ramosa. Jäderholm (1).

Steehow. Bougainvilles multieilia, B. moniculata, Bythotiara murrayi.

Mayer. Bythotiara n. g. murrayi n. sp. Maas (3). Cunina lativentris, C.

proboscidea, C. prolifera, Cunantha striata, Cunocantha polygonia. Mayer.

Clava squamata. Jäderholm (1). Cytaeis pusilla, Conis eyclophthalma,

Cunocantha octonaria, C. parasitica. Mayer. Cladonema radiatum, Coryne

pusilla, Campanullaria gelatinosa, C. neglecta, C. gigantea, C. flexuosa,

C. integra, C. hincksii, Clythia johnstoni, Calycella syringa, Cuspidiella

humilis. Jäderholm (1). Coryne pusilla. Stechow. Cythaeis tetrastyle,

C. atlantica, Cladonema radiatum. Mayer. Dicoryne conferta, Diphasia

pinaster, D.abietina. Jäderholm (1). Eirene viridula, Eutima campanulata,

Eleutheria claparedii, Eucope picta. Mayer. Eudendrium capillare, E.

wrightii, E. rameum. Jäderholm (1). E. capillare, E. rameum. Stechow.

Gastroblasta raffaeli, Geryonia proboscidialis. Mayer. Gonothyrea gracilis,

Halecium beani, H. labrosum, Hebella pocillum, Hydractinia echinata.

Jäderholm (1). Homaeonema militare. Mayer. Lafo&a dumosa, L. gracil-

lima. Jäderholm (1). Laodicea eruciata, Liriope crassiformis, L. eurylea,

L. mucronata, Mitrocoma annae, M.cirrata, Mnestra parasites, Oceania

armata, Octogonade mediterranea, Olindias phosphorica, Orchistoma pileus,

O. agarieiforme, Obelia gelatinosa. Mayer. Obelia geniculata, OÖ. dichotoma.

Jäderholm (1). Pandea conica, Pachycordyle weismanni, Pegantha (?),

P. cyanostyla, Petasus atavus, Pennaria disticha, Persa dissogonima,

P, lucerna, Perigonimus eidaritis. Mayer. Perigonimus repens. Jäder-

holm (1). Phialidium buskianum, Ph. hemisphericum, Podocoryne carnea,

P. octostyla. Mayer. Plumularia setacea. Stechow. Jäderholm (1). Pl.

pinnata. Jäderholm (1). Rathkea fasciculata, Rhopalonema velatum,

Rh. caeruleum, Salmissus albescens, S. ephesias, Saphenia bitentaculata,

Slabberia pyramis, Sl. ophiogaster, Sminthea euryaster, Solmundella

bitentaculata var. meditenacea, Solmaris corona, S. solmaris, S. flavescens

S. leucostyla, Steenstrupia aurata. Mayer. Schizotrichia frutescens, Ser-

tularia operculata, S. pumila, Sertularella tamarisca, S. polyzonias, Thui-

aria thuja, Thecocarpus myriophyllum. Jäderholm (1). Tiaropsis mediter-

80 Hydromedusae für 1910.

ranea, Tima lucullana. Mayer. Tubularia indivisa, T. larynx. Jäderholm (1).

Turris rotunda, T. coeca, Zanclea costata. Mayer.

Adriatisches Meer: Aglaura hemistoma var. nausicaa. Mayer. An-

tenella secondaria, Antennularia perrieri var. antennoides, Coryne pusilla.

Stechow. Dicodonium ocellatum, D. adriaticum, Eleutherias diehotoma,

Mayer. Hydractinis carnea.. Broch (1). Lymnorea dibolia, Margelopsis

stylostoma, Obelia gelatinosa, Ptychogastria asteroides, Polycanna fungia.

Mayer. Perigonimus repens. Stechow. Slabberia catenata, Tima lucullana,

Zancles implexa. Mayer.

Marmara -Meer: Rhopalonema polydactylum. Mayer.

Schwarzes Meer: Rathkea blumenbachii. Mayer. Sertularella poly-

zonias. Jäderholm (1).

Azow-Meer: Maeotias inexspectata, Thaumantias maeotica. Mayer.

Mit!el-Atlantik.

Aglaophenia latecarinata, Campanularia elytioides, Clythia johnstoni.

Ritchie (1). Eirene quadrigatum. Mayer. Lafoöa grandis. Jäderholm (1).

Obelia hyalina. Ritchie (1). Pegantha dactyletra.. Mayer. Plumularia

setacea, Sertularia mayeri. Ritchie (1).

Azoren-Ins.: Aegina eschscholtzii. Mayer. Antenellasecundaria. Stechow.

Antennularia ramosa. Jäderholm (1). Campanularia hincksii. Jäderholm

(1). Cunina campanulata, Cuvieria huxleyi, Mayer. Diphasia pinaster,

Halecium beani, H. labrosum. Jäderholm (1). Liriope lütkeni, Melicertum

panoctonarium, Pegantha (?), P. eyanostyla. Mayer. Plumularia setacea.

Jäderholm (1). Stechow. Sertularella gayi, S. polyzonias. Jäderholm (1).

Tima flavilabris. Mayer. Thecocarpus myriophyllum, Thaumantias incons-

pieua. Jäderholm (1).

Madeira -Ins.: Antenella secundaria, Antennularia antenrina. Stechow.

Ant. antennina, A. ramosa, Diphasia abietum, Lafo&a graeillima, Plumu-

laria setacea. Jäderholm (1).

Kanarische Inseln: Aegina aeginoides ?, Aeginura lanzerotae, Aglaura

hemitoma var. laterna, Aglantha globulifera. Mayer. Antennularia perrieri

var. antennoides. Stechow. Bougainvillea platygaster, Cythaeis tetras-

tyla, Dendronema stylodendron, Eutima gentiana, Liriope canariensis,

Melicertissa clavigera, Petasus tetranema, Pegantha lunulata, Pegantha ( ?),

P. eyanostyla, Sarsia gemmifera, Staurodiscus tetrastaurus, S. heteros-

celis, Solmaris corona, Toxorchis arcuatus. Mayer.

Tropisches Atlantik.

Aegina rhodina, Cunina maciloginosa, Halicreas rotundatum, Homae-

onema militare, H. typicum, Liriope crucifera, L. cerassiformis, Pantacho-

gon rubrum, Pegantha sieboldi ?, P. triloba, Rhopalonema coeruleum,

Rh. clavigerum, Rh. striatum, Rh. velatum, Solmaris forskalii, Solmun-

della bitentaculata. Mayer.

Trop. Atlantik West.

Westindien (inel. Florida): Aequorea floridana, Aeginura incisa,

Antenella gracilis, Bougainvillea frondosa, B. niobe, Cladonema mayeri,

Cl. perkinsi. Mayer. Clytia Johnstoni. Jäderholm (1). Clytia volubilis,

Faunistik. 8

C. falleata, Cubaia aphrodita, Cunoctantha parasitiea, Diehotomia cannoides,

Dieodonium jeffersoni, D. floridana, Dipleurosoma collapsa, D. ochraces

n. sp., Dissonema turrida, Ecetopleura pacifica, E. minerva Nucheilota

bermudensis, Eucope parvigastra. Mayer. Eudendrium tenellum. Jäder-

holm (1). Eutima coerulea, Gastroblasta ovalis. Mayer. Halecium tenellum.

Jäderholm (1). Hybocodon forbesii. Mayer. Lafo&a dumosa, L. gracillima,

Jäderholm (1). Laodicea ? neptuna, Liriope conirostris, Lymnorea alex-

andri, Melicertissa celavigera. Mayer. Monostechos quadridens. Stechow.

Netocertoides branchiatum, Niobia dendrotentacula. Mayer. Obelia geni-

culata. Jäderholm (1). Olindias tenuis, Pachycordyle degeneratus, Pandes

violacea, Pennaria tiarella, Phialidium discoidum, Ph. Meeradyis, Ph.

gelatinosum, Ph. globosum, Phialacium carolinae, Phortis pyramidalis,

Ph. lactea, Podocoryne dubia, P. minuta, P. gracilis, Protaria formosa,

Pseudoelytia pentata, Rathkea elegans, Sarsia angulata. Mayer. Salanderis

gracilis. Stechow. Sertularella gayi, S. rugosa, S. tenella. Jäderholm (1).

Habberia catenata, H. strongulata, Staurodiscus tetrastaurus, Stomatoca

octsedra, St. rugosa, Tiaropsis rosea, Thaumantias lacustris, Toxorchis

kellneri n. sp., Turris superba, Turritopsis nutricula, Zancleopsis diehoto-

ma. Mayer.

Brasilien: Aglaophenia allmeri, A. dubia, A. minima. Ritchie (1).

Aglauropsis agassizii, Amalthaea (?) Hybocodon (?) januarii. Mayer.

Amalthaea januari. Stechow. Corynitis arcuata, Cytaeis atlantica. Mayer.

Halicornaria longicauda. Ritchie (1). Liriope bi olor Mayer. Monos-

trechos quadridens. Ritchie (1). Olindias somboquiensis. Mayer. Sertularia

eornicina, S. heterodonta n. sp., S. rathbuni. Ritchie (1). Sertularella

gayi, S. polyzonias. Jäderholm (1). Thamnitis tetrella, Tima teuschri.

Mayer. :

Trop. Atlantik Ost.

C. Verde-Inseln: Antennularia perrieri var. irregularis. Stechow.,

Ant. ramosa. Jäderholm (1). Bougainvillea platygaster. Mayer. Campanu-

laria integra. Jäderholm (1). Cunina duplicata, Cuvieria carisochroma.

Mayer. Diphasia pinaster. Jäderholm (1). Eucopella crenata ? Mayer.

Eudendrium annulatum. Jäderholm. Filellum serpens, Gonothyrea gra-

eilis, Halecium beani. Jäderholm (1). Monostechos quadridens. Stechow.

Obelia hyalina. Vanhöffen. Podocoryne anechinata, Ptychogena longigona.

Mayer. Sertularella fusiformis? Ritchie (1). Thecocarpus myriophyllum,

Jäderholm (1).

Trop. Westafrika (Guinea Str.; Fernando-Po Ins.): Campanularia

hincksi. Jäderholm (1). Cytaeis tetrastyla, Halicreas glabrum, Liriope

minima, L. distanogona, L. hyperbolica, L. eurylia, Podocoryne carnea,

Salmissus marschali. Mayer. Sertularia operculata, Sertularella gayi.

Jäderholm (1).

St. Helena-Ins.: Eudendrium eunninghami n.sp. Kirkpatrick. Hale-

cium tenellum, Sertularella gayi. Jäderholm (1). S. gayi. Ritchie (1).

Süd-Atlantik.

Campaniclava clionis n. sp., Campanuarina syringa, Coryne sarsii, C.

mirabilis. Broch (1). Clytia striata, Cl. noliformis. Vanhöffen. Diphasia

Archiv für Naturgeschichte 6

1911. VI. 2.

82 Hydromedusae für 1910.

rosacea, Halecium beanii, H. haleeinum, H. tenellum. Broch (1). Hebellä

corrugata. Vanhöffen. Hydractinia carnea. Broch (1). Isonema macro-

gaster. Maas (1). Liriope catharinensis. Mayer. Obelia geniculata, Van-

höffen. Pegantha dodecagona. Mayer. Perigonimus repens. Broch (1).

Salmissus faberi. Mayer. Sertularia gayi. Broch (1). Silicularia rosea,

Tubularia erocea. Vanhöffen. Tubularia indivisa. Broch (1).

Süd-Atlantik West.

Patagonien, Uruguay: Campanularia gelatinosa, C. integra, Lafoöa

gracillima, Obelia geniculata, Sertularia operculata, Sertularella gayi.

Jäderholm (1).

Feuerland: Obelia longissima. Mayer. Perigonimus repens. Jäder-

holm (1). Syncoryne sarsi. Jäderholm (1). Tubularia sp. Stechow.

Falkland -Inseln: Aglauropsis conantii, Bougainvillea macloviana.

Mayer. Calycella syringa. Jäderholm (1). Campanulina chilensis. Ritchie

(1). Corynitis (?) coerulea, Eleutheria vallentini, Eucope falklandica.

Mayer. Filellum serpens, Halecium beani, H. tenellum. Jäderholm (1).

Hybocodon unicus, Laodicea pulchra. Mayer. Lafoea gracillima. Jäder-

holm (1). Obelia geniculata. Jäderholm (2). Obelia geniculata. Jäderholm

(1). Mayer. Perigonimus repens. Stechow. Jäderholm (2). Ritchie (1).

Phialidium simplex, Podocoryne tenuis. Mayer. Plumularia curvata.

Ritchie (1). Rathkea formosissima, Sarsia gracilis.. Mayer. Sertularia

operculata, Sertularella polyzonias, S. tricuspidata, S. tenella. Jäderholm

(1). S. allmani, S. polyzonias. Jäderholm (2). Staurophora falelandica,

Tiaropsis davisii, Vallentinia falclandica, Willsia mutabilis. Mayer.

Süd-Atlantik Ost.

Kapland: Aglantha elongata. Mayer. Aglaophenia heterodonta,

Antennopsis scotiae. Ritchie (1). Antennularia ramosa. Jäderholm (1).

Campanulina turrita, Clytia raridentata, Cl. compressa. Vanhöffen. Cu-

nina oligotis. Mayer. Diphasia abietina. Jäderholm (1). Eudendrium annu-

latum (2). Ritchie (1). Halecium halecium. Jäderholm (1). Halicreas

alba. Mayer. Hydractinia pervispina. Vanhöffen. Mitrocoma minervae.

Mayer. Obelia geniculata. Jäderholm (1). Ritchie (1). Obelia dubia, Perigo-

nimus restitus forma radicans. Vanhöffen. Plumularia echinulata. Jäder-

holm (1). Ritchie (1). Pl. pinnata. Jäderholm (1). Pl. lagenifera var.

septifera. Ritschie (1). Podocoryne carnea. Jäderholm (1). Mayer. Sal-

missus bleenii. Mayer. Shizotricha futescens, Sertularia operculata,

Sertularella polyzonias, S. gayi. Jäderholm (1). Solanderia labyrinthica.

Stechow. Thuiaria argentea. Jäderholm (1). Th. articulata. Ritchie (1).

Tristan da-Cunha-Ins: Sertularella gayı. Jäderholm (1). Turris re-

tieulata. Mayer. h

Süd-Georgien: Diphasia abietina. Jäderholm (2). Eudendrium ra-

meum. Steehow. Filellum serpens. Jäderholm (2). Obelia geniculata.

Jäderholm (1). Sertularella interrupta. Jäderholm (2). Tubularia indivisa.

Jäderholm (1).

| Faunistik. 83

Paeifik.

Nord-Pacifik.

Aeginopsis laurentü. Mayer. DBonneviella grandis, Campanularia

volubilis, C. integra, C. speciosa, C. vertieillata, Campanulina syringa,

Diphasia abietina forma typica, D. a. f. filieula, D. variabilis, D. thuya-

rioides, D. turgida, Eudendrium ramosum, Grammaria immersa, Lao-

meda dichotoma, L. longissima, L. hyalina, Lafo&a fruticosa, Perigonimus

repens, Sertularia pumila, S. argentea, S. tenera, Sertularella rugosa,

S. gayi. Broch (1). Turris brevicornis. Mayer. Thecocarpus myriophyllum

Thuiaria decemserialis, Th. obsolenta, Th. cylindrica. Broch (1).

Bering-Meer: Campanularia integra, s. verticillata. Jäderholm (1).

Gonionemus agassizii. Mayer. Lafoeafruticosa, Obelia longis, Selaginopsis

pinaster, S. obsoleta, Stegopoma plicatile, Sertularella gayi, Thuiaria

plumosa, Th. thuja. Jäderholm (1). Tubularia indivisa. Broch 1.

Alaska: Aequorea caerulescens. Torrey. Branchiocerianthus im-

perator. Stechow. Coryne eximia, Campanulina syringa, C. lacertae.

Broch (1). Campanularia verticillata. Jäderholm (1). Corymorpha carnea.

Stechow. Campanularia speciosa, C. grandis. Jäderholm (1). Diphasia

turgida, D. filieula, D. variabilis, D. abietina, Eudendrium vaginatum.

Jäderholm (1). Filellum serpens, Grammaria immersa. Broch (1). Halecium

halecium, H. murieatum. Broch (1). Jäderholm (1). H. geniculatum, H.

corrugatum, H. scutum, H. ornatum. Broch (1). Hebella pocillum, Lafosa

dumosa, L. gracillima. Jäderholm (1). L. gr. f. typica, L. fruticosa, L. du-

mosa. Broch (1). Obkelia plicatilis, O. longissima, O. borealis, O. dubia,

Sarsia eximia, S. mirabilis. Mayer. Sertularia pumila, Jäderholm (1).

S. fabrieii, S. plumosa, S. argentea, S. robusta, S. mirabilis. Broch (1).

Sertularella rugosa, S. polyzonias. Broch (1). Jäderholm (1). Sertularella

pinnata. Broch (1). S. tenella, S. tricuspidata, Selaginopsis mirabilis.

Jäderholm (1). Stegopoma plicatile, Tubularia indivisa, Thuiaria pinaster.

Broch (1). Tubularia sp. Stechow. Thuiaria thuja, Th. fabricii, Th. robusta,

Th. argentes. Jäderholm (1).

Nord-Pacifik West.

Kamtschatka:?: Proboscidactyla flavicirrata. Mayer. Sertularella

gigantes. Jäderholm (1).

Kurilen-Ins.: Sarsia rosaria. Kishinouye.

Sachalin: Favonia sulcata n. sp. Kishinouye. Polyorchys kara-

futaensis n. Sp.

Japan: Aegina pentanema n. sp. Kishinouye, Ae. rosea. Maas (2).

Aeginopsis laurentii. Mayer. Aglaophenia laxa, A. suensonii nov. var.

ijiwai, A. bilobidentata n. sp., Stechow. Aglaura hemistoma. Maas (2).

Antenella secundaria, A. gracilis, Antenellopsis dofleini n. sp. Anten-

nularia perrieri var. irregularis, A. antennina var. minor, A. perrieri var.

antennoides, A. japonica n. sp., Bougainvailles ramosa, Branchioceriantus

imperator. Stechow. Campanularia speciosa, C. grandis. Jäderholm (1).

Catablema multicirrata n. sp. Kishinouye. Cladocarpus cerenatus var.

‚allmani. Ritchie (2). Conis mitrata. Mayer. Coryne pasilla. Stechow.

84 Hydromedusae für 1910.

Jäderholm (1). Corymorpha carnea. Steehow. Ctenaria ctenophora. Mayer.

Cytaeis vulgaris, Cunina peregrina. Maas (2). Dendrocoryne secunda

D. misakensis, Diplocheilus allmani. Stechow. Eudendrium vaginatum.

Jäderholm (1). Eucheilota paradoxica. Maas (2). Eudendrium rameum,

E. armstrongi nov. Steehow. Favonis nipponica n. sp. Kishinouye.

Gemmaria gemmosa. Steehow. Gonionemus depressum, G. agassizii.

Mayer. G. vertens var. depressum. Maas (2). Halicornaria hians, H. eshi-

kawai n. sp., H. expansa, H. roretzii, Hydractinia epiconcha n. Sp, H.

sodalis, Hydrichthella n. g., epigorgia n. 8Pp., Hydrocoryne miurensis N. SP.

Stechow. Lafo&a fruticosa. Jäderholm (1). Lizzia shimiko n. sp. Kishi-

nouye. Liriope rosacea. Maas (2). Lytocarpus phoeniceus, L. balei. Stechow.

Mesonema pensile. Maas (2). Monostoechas quadridens. Steehow. Nemopsis

dofleini n. sp. Obelia sp. Maas(2). Obelia plicata. Mayer. O. genieulata. Jäder-

holm(1). Olindioides formosa. Maas (2). Mayer. Perigonimus repens. Stechow.

Phialidium discoida, Ph. paeifieum. Maas (2). Plumularia habereri n. sp.

Pl. hertwigi n. sp. Stechow. Pl. setacea. Stechow. Jäderholm (1). Podo-

coryne minor. Stechow. Proboscidactyla flavieirrata? Maas (2). Rhopa-

lonema velatum. Maas (2). Sarsia rosaria. Mayer. S. japonica n. sp. Maas

(2). Scolionema gemmifera n. sp. Kishinouye. Sertularella trieuspidata,

Jäderholm (1). Solanderia leuckarti. Stechow. Solmundella bitentaculata,

Solmaria rhodolma, Spirocodon saltatrix. Maas (2). Sp. saltatrix. Mayer.

Staurophora discoidea n. sp., Stomotocaatra. Mayer. Tiara papua. Maas (2).

Thecocarpus niger. Stechow. Thuiaria lonchitis. Jäderholm (1). Tubularia

sagamina n. sp. Stechow. Turritopsis nutricola. Maas (2). Urashimea

globosa n. Sp., U. macrotentaculata n. sp. Kishinouye. Willia pacifica n. SP.

Zancles sp. Maas (2).

Gelbes Meer (u. Korea): Calycella syringa, Lafo&a gracillima. Jäder-

holm (1). Obelia chinensis. Mayer. Sertularella gigantea. Jäderholm (1)

China-Küste: Lytocarpus phoeniceus. Stechow. Opercularella

lacerata. Jäderholm (1). Petachnum tiaropsis. Mayer.

Nord-Pacifik Ost.

Westküste Nord-Amerikas, inkl. Californien: Aequorea ‚‚vietoria‘“.

Mayer. Aequorea coerulescens. Torrey. Aglantha digitale, Bougain-

villea glorietta, Chiarella centripetalis. Mayer. Campanularia volubilis,

C. hincksii. Jäderholm (1). Campalecium sp., Chiarella centripetalis,

Clavula fontata, Clytia universitatis, Cl. volubilis. Mayer. Clytia

Johnstoni. Jäderholm (1). Corymorpha palma. Stechow. Diphasia fi-

lieula, D. variabilis. Jäderholm. Eudendrium rameum. Jäderholm (1).

Stechow. Eutimalphes brownei n. sp., Torrey. Filellum serpens. Jäderholm

(1). Gonionemus vertens. Mayer. Gonothyrea gracilis, G. hyalina. Jäder-

holm (1). Hybocodon chilensis. Mayer. Irene mallis n. sp. Torrey (1).

Lafoda dumosa, L. fruticosa. Jäderholm (1). Mitrocoma discordea N. SP.

Torrey (1). Mitrocoma discoidea, Mierocampana conica, Melicertum georgi-

cum, Obelia gracilis, O. surcularis, O. griffini, O. corona. Mayer. O. purpurea

Mayer. Perigonimus repens. Jäderholm (1). Stechow. P. pugetensis,

Phialidium hemisphericum, Ph. gregarinum, Ph. languidum. Mayer.

Faunistik. 85

Ph. lomae n. sp., Phialopsis diegensis n. sp., Phialium bakeri n. sp. Torrey

(1). Plumularia setacea. Stechow. Jäderholm (1). Polyorchis penicillata,

P. minuta, Proboscidactyla oceidentalis, P. flavieirrata. Mayer. Ptychogena .

californica n. sp., Scerippsia pacifica n. sp. Torrey (1). Sertularia pumila,

Sertularella trieuspidata. Jäderholm (1). Tubularia sp. Stechow. Tu-

bularia larynx, Thaumantias inconspieua. Jäderholm (1). Th. cellalaria.

Mayer. Thuiaria argentea, Tubularia indivisa. Jäderholm (1). Tiarop-

sidium kelsey n. sp. Torrey (1). Turris pelagica. Mayer.

Tropisches Pacifik.

Trop. Pacifik West.

Philippinen-Ins.: Obelia geniculata. Jäderholm (1). Pegantha pan-

theon. Mayer. Solanderia sp. Stechow.

Malay. Arch.; Aequorea pensilla, Ae. macrodactyla, Ae. globosa,

Aeginura grimaldii. Mayer. Antenella gracilis, A. secundaria. Stechow.

Bougainvillea fulva. Mayer. B. ramosa. Stechow. Cunissa polyparpa,

Cunocantha octonaria. Mayer. Clytia johnstoni. Jäderholm (1). Eutima

levuka. Mayer. Halicreas papillosum. Mayer. Halecium halecium, H.

humile. Jäderholm (1). Heterotiara anonyma, Hydractena salenskii. Mayer.

Laodicea fijiana. Mayer. Lictorella pinnata. Jäderholm (1). } ytocarpus

phoeniceus. Steehow. Melicerta malayica. Mayer. Morostechos qua-

dridens. Stechow. Obelia bidentata, Octocanna polynema, Olindias ma-

layensis, Obelia arruensis, O. geniculata. Mayer. O. geniculata. Jäderholm

(1). Pennaria disticha, Proboseidaetyla armata var. stolonifera, Phialidium

discoidum, Phialueium virens. Mayer. Pfilocodium n. g. repens n. SP.

Coward. Rathkea octonemalis, Sibogita geometrica, Steenstrupia bi-

gelo i. Mayer. Sertularia operculata, Thecocarpus myriophyllum. Jäder-

holm (1). Tubularia sp. Stechow. Tiaropsis rosea. Mayer.

N. 0. Autralien: Toxorchis thalassina, Zygocanna pleuronota. Mayer.

Trop. Pa-ifik (Polynesien, exkl. Hawaii-Ins.): Aequorea globosa,

Ae. macrodactyla, Ae. pensilis, Aegina eitrea, Aglaura hemistoma, Bou-

gainvillea fulva, Cunina mucillaginosa, C. globosa, Cannata dodecantha,

Cytaeis vulgaris, Clytia rangiroe, Cl. falleata, Crossota brunnea. Mayer.

Corymorpha carnea. Stechow. Dipleurosoma pacifiea, Ectopleura pacifica,

Gonicnemus suvaensis, Homaeonema typicum, Laodicea fijiata, Liriope

tetraphylla, L. erucifero, Lymnorea ocellata, Obelia linearis, O. striata,

Pegantha ? weberi, P. cyanostyla, Pennaria vitrea, Pegantha martagon,

P. tribola, P. magnifica, P. godeffroyi, P. laevis, Phialidium ambiguum,

Ph. paeifieum, Ph. rubengha, Phortis kambara, Ph. elliceana, Pennaria ?

vitrea, Pantachogon rubrum, Protaria formosa, Pandea violacea, Rhopa-

lonema caeruleum, Rh. velatum, Solmundella bitentaculata, S. b. var.

mediterraneum, Sarsia mirabilis. Mayer. Sertularella tenella. Jäderholm.

Solmaris forskalii, Turris papua. Mayer.

Trop. Pacifik Ost.

Hawaii-Ins.: Calycella syringa, Eudendrium rameum. Jäderholm (1).

Eud. rameum. Stechow. Eucope dissonema. Mayer. Filellum serpens.

Jäderholm (1). Laodicea eucope. Mayer. Lafoöa fruticosa, Lictorella

86 Hydromedusae für 1910.

pinnata. Jäderholm (1). Lytocarpus balei, L. phoenicens, Monostoechos

quadridens. Stechow. Pegantha punctata. Mayer. Salanderia fusca,

Theeocarpus niger. Stechow.

Westküste Centralamerika (Mexiko, Panama): Aglantha digitale

var. intermedia, A. elongata, Aglaura hemistoma. Mayer. Branchiocerian-

thus imperator. Stechow. Cunoctantha octonaria, C. tenella, Dissonema

turrida, Eutimium seiatillans, Eirene medusifera, Eucheilots duodecimalis,

Gosses brachymera, Haliereas papillosum, Lymnorea alexandri, Meli-

certum (?) proboseifer, Proboseidactyla ornata var. stolonifera, Pennaria

pacifica, Pandea violacea, Stomotoea divisa, Habberia brownei, Sarsia

resplendens, S. coccometra, Stomatoca octaedra, Tetrorchis erythrogaster,

Zanclea gemmosa. Mayer.

Galapagos-Ins.: Cytaeis vulgaris, Stomatoca divisa, Sibogita simu-

lans. Mayer. Lafoöa gracillima. Jäderholm (1).

Peru- Küste: Aegina alternans, Clavula papua, Halitrephes maasi,

Heterotiara anonyma, Halicreas racovitzae, Pegantha smaragdina, Pty-

chogena erythrogona. Mayer.

Süd-Paeifik.

Süd-Pacifik West.

Australien: Bougainvillea trinema, B. prolifera. Mayer. Campanu-

laria integra. Jäderholm (1). Dissonema saphinella. Mayer. Diplochilus

mirabilis. Stechow. Dicodonium dissonema, Eucope hyalina, Eutima pre-

tiosa. Mayer. Halecium tenellum. Jäderholm (1). Halicornaria hians,

Stechow. Laodicea ? fertilis. Mayer. Lafo&a dumosa. Jäderholm (1).

Mitrocoma lendenfeldi, Obelia australis, O. serratula, O. angulosa. Mayer.

Obelia genieulata, Opercularella lacerata. Jäderholm (1). Pandea minima,

Pennaria adamsia, P.rosea, Pteronema darwinii. Mayer. Plumularia cor-

nutum. Stechow. Sarsia minima, S. radiata. Mayer. Sertularia operculata,

Sertularella polyzonias, S. tenella. Jäderholm (1). Solanderia fusca. Ste-

chow. Stauroglaura tetragonima, Steenstrupia australis, Tiaropsis mac-

leayi, Turritopsis (?) lata. Mayer.

Neu-Zeeland: Antennularia antennina. Stechow. Jäderholm (1).

Aglaophenia laxa, Chitins ericopsis. Stechow. Campanularia integra,

Clytia johnstoni. Jäderholm (1). Eucope annulata, Eucopella arenata,

Liriope agaricus, Obelia nigrocaulus, O. geniculata, OÖ. australis. Mayer.

Obelia geniculata. Jäderholm (1). Pelagohydra mirabilis. Mayer. Plu-

mularia setacea. Stechow. Sertularella tenella, S. polyzonias, Sertularia

operceulata, S. pumila. Jäderholm (1). Solanderia sp., Tubularia sp. Stechow.

Süd-Pacifik Ost.

Chili: Aglaura hemistoma var. radiata, Botrynema brucei. Mayer.

Campanularia integra. Jäderholm (1), (2). Eudendrium rameum. Stechow.

Filellum serpens, Gonothyrea gracilis, Halecium tenellum. Jäderholm (1).

H. tenellum, H. beani. Jäderholm (2). Hybocodon christinae, Obelia ge-

niculata, O. longissima. Mayer. Jäderholm (1). (2). O. dichotoma. Jäder-

holm (1). O. delicatula. Mayer. Plumularia setacea. Stechow. Jäderholm

(1), (2). Lafoöa dumosa. Jäderholm (1). Sarsia mirabilis. Mayer. Sertu-

Faunistik. SY

larella polyzonias. Jäderholm (1). Sertularella subdichotoma, Sertularia

minima, S. operculata. Jäderholm (2). Solmaris cornea. Mayer. Thau-

mantias inconspieua. Jäderholm (1).

J. Fernandez-Ins.: Filellum serpens, Sertularella polyzonias, Thau-

mantas inconspiecua. Jäderholm (1). Zancla nitida. Mayer.

Indik.

Rotes Meer: Calycella syringa. Jäderholm (1). Dicodonium cornuturm,

Gastroblasta timida, Obelia bifurca, Pegantha aureola, Perigonimus va-

gans, Petasata eucope. Mayer. Plumularia setacea, Pl. catarina. Jäderholm

(1). Pl. setacea, Solanderia erosslandi. Stechow. Solmissus marschalii.

Mayer. Sertularella polyzonias. Jäderholm (1). Solmaris forskalii. Mayer.

Golf von Aden: Solmaris forskalii. Mayer.

Djibuti: Amphogona pusilla n. sp., Aequorea papua, Bougainvillea

fulva, Eutimalphes modesta n. sp., Irene pellucida, Liriope haeckelii, L.

rosacea, Octarchandra orientalis n. sp.? Phialidium sp., Zanclea sp. Hart-

laub.

Tropisches Indik: Aegina brunnea, Aglantha ignea, Aequorea pen-

silis, Aglaura haemistoma. Mayer. Corymorpha carnea. Stechow. Crossot&

brunnea, Cunina multifidie, C. mucilaginosa, Halicreas conica, H. ro-

tundatum, H. glabrum, Irenopsis hexanemalis, Lymnarea macrostoma,

Liriope erucifera, L. tetraphylla, Pegantha (?), P. cyanostyla. Mayer. Plu-

mularia pinnata. Broch (1). Pegantha martagon, P. triloba, Pantachogon

rubrum, Rhopalonema eoeruleum, Rh. velatum, Solmaris lenticula, Sarsia

coniea, Salmundella bitentaculata, S. b. var. mediterranea, Solmaris fors-

kalii, Turris papua, Zygocannula diploconus. Mayer.

Tropisches Indik.

Trop. Indik West,

Oman: Branchocerianthus imperator. Stechow.

Vorderindien, Malabar-Küste: Podocoryne minoi. Stechow.

Ceylon: Aequorea parva, Ae. conica. Mayer. Antenella gracilis.

Stechow. Cytaeis herdmanii, Eutima orientalis, E. eurva, Gonionemus

hornelli. Mayer. Lytocarpus phoeniceus, Monostechos quadridens. Stechow.

ÖOctocanna polynema, Podocoryne benhami, Proboscidactyla ‚minima‘‘,

Phortis palkensis, Ph. ceylonensis. Mayer. Plumularia setacea. Jäderholm

(1). Stechow. Slabberia brownei. Mayer.

Maldiven: Aglaura hemistoma var. octogona, Amphogona apsteini.

Mayer. Aequorea maldivensis. Stechow. Aglaura hemistoma var. pris-

matica, Eirene danduensis, Eutima lactea, Gonionemus pelagieus, Liriope

indiea, L. hemispherieus. Mayer. Lietarella pinnata. Jäderholm (1). Ly-

tocarpus phoeniceus. Stechow. Olindias singularis, Phialidium brunes-

cens, Pseudoclytia gardineri, Phialueium vireus, Steenstrupia tetrabrochia,

Timoides agassizü, Willsia (?) varians. Mayer.

Ostafrika: Branchioceriantus imperator. Stechow. Aeginodiscus

actinodıscus, Cunissa polyphera. Mayer. Haleeium tenellum. Jäderholm

(1). Liriope haeckelii. Mayer. Solanderis minima. Stechow.

Mosambik: Diphasia pinaster. Jäderholm (1).

88 Hydromedusae für 1910.

Madagaskar: Petasta rabbeana. Mayer.

Mauritius I.: Solanderia labyrinthica. Stechow.

Trop. Indik Ost.

Golf v. Bengal: Eudendrium armstrongi. Stechow.

Mergui-Arch.: Obelia andersoni. Mayer. Corydendrium sessile n. SP.,

Idia pristis, Calycella oligista n. sp. Ritchie (4).

Andamanen-Ins.: Diphasia thornelyi n.sp., Aglaophenia septata n.sp.,

Halicoanaria hians var. nov. profunda, Lytocarpus annandalei n. Sp., Ser-

tularella polyzonias var. nov. cornuta, Hebella crateroides n. sp. Ritchie (3).

Christmas-Ins.: Halicornaria hians nov.var. laxa, Rhizogeton nudum.

Ritchie (5).

Süd-Indik.

Süd-Indik West.

Natal: Coryne pusilla, Diplocheilus mirabilis. Stechow. Campanularia

integra. Jäderholm (1). Solanderia rugosa, S. spinosa, S. atrorubens.

Stechow.

Kerguelen-Ins. : Coryne conferta, Cladonema vallentini n. sp., Clytia

serrulata, Campanularia tineta. Vanhöffen. Dipetasus digonimus. Mayer.

Eudendrium rameum. Stechow. Hydractinia pacifica, Hebella striata,

Lafo&a gracillima, Myriothela austro-georgiae, Obelia geniculata. Van-

höffen. O. geniculata. Jäderholm (1). Mayer. Ptychogastria antarctica.

Mayer. Maas (1). Perigonimus maclavianus n. Ssp., Sertularella polyzonias,

Silieularia rosea. Vanhöffen. Sertularella polyzonias, Schizotrichia fru-

tescens. Jäderholm (1). Thamnostylus dinema. Mayer. 'Tubularia indivisa.

Vanhöffen.

St. Paul-Ins.: Aglaophenia parvula, Campanularia paulensis n. SP.

Lafo&a gracillima, Sertularella polyzonias. Vanhöffen. Sertularia operculata.

Jäderholm (1).

Crozet-Ins.: Lafo&a graeillima. Vanhöffen.

Süd-Indik Ost.

Australien: Aeginura myosura, Eucopella bilabiata. Mayer. Hale-

cium beani. Jäderholm (1). Homaeonema macrogaster. Mayer. Lafoea

gracillima. Jäderholm (1). Zygocana purpurea. Mayer.

Antarktik.

Campanularia vertieillata. Jäderholm (1). Camp. subrufa. Van-

höffen. Corymorpha sp. Steehow. Crossota brunnea. Maas (1). Haliereas

racovitzae. Mayer. Halecium tenellum. Jäderholm (1). Hydractinia par-

vispina, H. clavata, Halecium secundum. Vanhöffen. Lampra sp. Stechow.

Phialidium iridescens. Mayer. Perigonimus belgicae n. sp. Vanhöffen.

Solmundella bitentaculata var. mediterranea, $. bitentaculata. Mayer.

Sertularella glaeialis, S. articulata, S. biformis, Schizotricha antarctica,

Staurotheca antarctiea, Selaginopsis pachyclada, Tubularia striata n. Sp.

Vanhöffen.

Gough-I: Obelia longissima, Thyroseyphus tridentatus, Antenella

quadriaurita n. sp. Ritchie (1).

Faunistik. 89

Süd-Orkney-I.: Lafoöa graeillima var. benthophila n. var., Myriothela

austro-georgiae. Ritchie (1). Obelia longissima. Jäderholm (1).

Bouvet-I.: Isonema amplum. Maas (1). Homaeonema amplum.

Mayer.

Graham Ld.: (Exped. „Frangais‘, „Belgiea‘‘): Atractylis antarctia,

Campanulina turrita, Cryptolaria conferta, Campanulina belgieae, Euden-

drium ramosum. Vanhöffen. Gonionemus conauti, Homaeonema raco-

vitzae, H. album. Maas (1). Halecium gracile, H. tenellum, Hydractinia

augusta, Lafoöa antaretia, L. plicata, Myriothela austro-georgiae, Obelis

longissima, Perigonimus belgicae, Sertularella gigantea. Vanhöffen. Sal-

mundella mediterranea. Maas (1). Schizotricha antarctica, Sch. turqueti,

Stegopoma opereulata, Schizotricha bifurca, Staurotheca antarctia. Van-

höffen. Vallentinia falklandica. Maas (1).

Coats Ld.: Halecium robustum, Hebella striata. Vanhöffen.

K. Wilhelm II.-Ld.: Atroctylis antarctica, Bimeria corynopsis N. SP«s

Campanularia lobata n. sp., C. subrufa, Clathrozoon drygalskii Nn.8p., Campa-

nularia tineta, C. laevis, Campanulina belgieae, Dietyocladium affine,

Eudendrium ramosum, Halecium antarcticum n. Sp. H. tenellum, H. ro-

bustum, Hebella striata, Lafo6a gaussica n. sp., L. serpens, L. antarctica,

L. gracillima, Perigonimus maclovianus, Sertularella articulata, Stauro-

theca antaretica, Schizotricha operculata, Sertullarela glacialis, S. sub-

dichotoma, Tubularia grandis n. sp. Vanhöffen.

Vietoria-Land: Campanularia lobata, C. tineta, C. laevis, Dietyo-

cladium affine, Eudendrium ramosum, Halecium tenellum, Hydractinia

angusta, Halecium robustum, Lafo@ina longitheca, Lampra parvula, L.

mierorhiza, Myriothelaaustro-georgiae. Vanhöffen. Ptychogena ? antarctica.

Mayer. Plumularia glacialis, Sertularella glacialis, S. articulata, Stylactis

halecii, Tubularia ralphi, T. longstaffi, T. Hodgsonii. Vanhöffen.

Kosmopoliten (in allen Meeren).

Campanularia johnstoni, C. integra, Diphasia abietina forma typica,

Eudendrium rameum, Filellum serpens, Halecium tenellum, Hydrallmania

falcata, Halecium beani, Laomedea geniculata, Lafoöa gracillina forma

typica, Laomedea longissima, Lafo&a dumosa, L. fruticosa, Laomedea

gracilis, Perigonimus repens, Sertularella polyzonias forma typica, Ser-

tularia pumila, Sertularella tenella, Tubularia indivisa. Broch (1).

Süßwasser-Arien.

Europa: Hydra fusca. Frischholz. H. grisea, H. vulgaris, H. oligactis,

H. polypus. Koelitz. Craspedacusta sowerbii. Mayer.

Asien, China: Craspedacusta kawaii. Mayer.

Afrika, Aegypten: Moerisia lyonsi. Mayer. Hydra-Arten. Koelitz.

Tanganika-See: Limnocladia tanganjicae (ib.). — Vietoria-See: Limno-

cladia tanganjicae var. vietoria (ib.), Hydra sp. Koelitz.

Amerika (Nord): Cordylophora lacustris. Smith. Hydra-Arten,

Koelitz. Microhydra ryderi. Mayer.

Australien: Hydra-Arten. Koelitz.

90 Hydromedusae für 1910.

Systematik.

Acaulis primarius, Stimpson, Jäderholm (1), Bedot (p. 232).

Acharadria larynz, Wright, Bedot (p. 232).

Actinogonium pusillum (v. Beneden). Syn. Coryne von Benedeni, Hincks,

Bedot (p. 233).

Aegina aeginoides ( ?), Mayer (p. 454). — Ae. alternans Bigelow. (ib. p. 453. —

Ae. brunnea Vanhöffen. (ib. p. 453). — A4e. eitrea Eschsch. (ib. p. 450).

— Ae. eschscholtzii Hkl. = Ae. rhodina ? (ib. p. 450). — Ae. pentanema

n. sp. Kischinouye. Ae. rhodina Hkl. = Ae. canariensis Hkl. Mayer:

(p. 450). — Ae. rosea Eschsch. Maas (2).

Aeginodiscus acanthodiscus Hkl. Mayer (p. 486).

Aeginopsis laurentii Brandt (ib. p. 472). — Ae. ( ?) pachyderma (ib. p. 473).

Aeginura grimaldii Maas (ib. p. 470). — Ae. incisa (ib. p. 472). — Ae. lan-

zerotae Maas (ib. p. 469). — Ae. myosura Hkl. (ib. p. 468).

Aequorea albida A. Agass. (ib. p. 331). — Ae. caerulescens Brandt. Torrey. —

Ae. conica Browne. Mayer (p. 334). — 4e. discus Hkl. (ib. p. 327). —

Ae. floridana Mayer (ib. p. 330). — Ae. forskalea Peron et Lesueur.

(ib. p. 325). — Ae. globosa Eschsch (ib. p. 332). — 4Ae. macrodactyla

Bigelow. (ib. p. 333). — Ae. maldivensis Browne (ib. p. 330). — 4e.

parva Browne (ib. p. 334). Hargitt. — Ae. pensilis. Mayer (p. 333). —

Ae. tenuis (ib. p. 332). — Ae. „victoria‘‘ Maas = Ae. forskalea? (ib.

p- 330). — Ae. violacea Milne-Edw. (ib. p. 327).

Aglantha digitale Hkl. (ib. p. 402). — A. digitale var. occidentalis Maas (ib.

p- 404). — A. d. var. intermedia Bigelow (ib.). — 4. elongata (ib. p.

404). — A. globulifera Hkl. (ib.). — 4. ignea (ib. p. 405).

Aglaophenia angulosa Lamx. Bedot (p. 233). — A. acutidentata Allm. +

A. chalarocarpa = A. pluma L. Billard (2). — 4. allmani Nutting.

Ritehie (1). 4. amathioides Lamx. = „jeunes colonies de ’Hydrall-

mania falcata (L.)‘‘ Billard (3). — A. arcuata Lamx. Bedot (p. 234). —

4.brachiata (Lamk.). (ib. p. 234). — A. brevirostis (Busk). (ib. p. 234). —

4A. bilobidentata n. Sp. Stechow (p. 91). — A. cerucialis Lamx. Billard

(5), Bedot (p. 234) = A. macrocarpa Bale. Billard (3). — 4. cupressina

Lamx. Bedot (p. 234). — Billard (4), (5). — 4. delicatula (Busk). Bedot

(p- 235). Billard (4). — A. divaricata (Busk). Bedot (p. 235). — [4A.

dichotoma Kirchenpauer]. Bedot (p. 235). — A. dubia Nutting. Rit-

ehie (1). — 4. flexuosa Lamx. = Thecocarpus Giardi Billard nom. nov.

T. flexuosus (Lamx.). Billard (3). — A. elegans Lamx. Bedot (p. 235). —

4A. elongata Meneghini (ib. p. 235). — A. filamentosa (Lamarck) (ib.

p- 235). — A. formosa (Busk). ib. p. 236). — [A. tusca Kirchenpauer]

(ib. p. 236). — A. kirchenpaueri (Heller) (ib. p. 236). — A. gracilis

Lamx. = Antennularia ramosa Lamx. Billard (3). A. glutinosa

Lamx. = Heteroplon pluma Allm nom. nov. Plumularia glutinos«

(Lamx.) Billard (3). — A. heterodonta Jäderh. Ritchie (1). — [A. mi-

nuta Fewkes 1881]. Bedot (p. 236). — 4. late-carinata Allm. Van-

höffen, Ritehie (1). — A. laxa Allm. Steehow (p. 93). — A. !. „Varietät

mit langen Nematophoren‘“ (ib. p. 96). — 4. I. „Varietät von Misaki‘

(ib. p. 95). — A. minima Nutting. Ritchie (1). — 4. myriophyllum (1..).

Systematik. 91

Bedot (p. 237). — A. octodonta (Heller) (ib. p. 237). — A. parvula Bale.

Vanhöffen. A. patagonica (d’Orbigny). Bedot (p. 238). — [A. patula

Kirchenpauer] (ib. p. 238). — 4. pelagica Lamx. Bedot (p. 238). =

A.latecarinata (?). Billard (3). — 4. pennaria (L.). Bedot (p. 238). —

A. pennatula (Ellis et Solander) (ib. p. 239). — A. phoenicea (Busk.) (ib.

p- 240). — A. pluma (L.). Bedot (p. 240). Billard (4). Vanhöffen. —

[A. savignyana Kirchenpauer.] Bedot (p. 241). — A. simplex (d’Or-

bigny) (ib. p. 241). — A. speciosa (Pallas) (ib. p. 241). — A. spicata

Lamx. Syn. Agl. pennaria. Bedot (p. 241) = Lytocarpus secundus

Kehp. = Sertularia pennaria L. nom nov. L. pennarius (L.). Billard

(3). — A. septata n. sp. Ritchie (3). — 4. struthionides (Murray). Be-

dot (p. 242). — A. suensonii Jäderh. var. ijimai nov. var. Stechow

(p. 89). — A. tricuspis Mac Crady. Bedot (p. 242). — A. trifida L.

Agass. (ib. p. 242). — A. tubulifera Hincks. Bedot (p. 242). Billard (4).

— A. uncinata (Lamk.). Bedot (p. 242). — A. urceolifera (Lamk.)

(ib. p. 243). — [A. ureus Kirchenpauer] (ib. p. 243).

Aglaura hemistoma Peron et Lesueur. Maas (2). Mayer. — A.h. var. la-

terna. Mayer (p. 397). — A. h. var. nausicaa Hkl. (ib. p. 397). — A.h.

var. prismatica Maas (ib.). — A. h. var. radiata Hkl. (ib. p. 397). —

A. h. var. octagona (ib. p. 397).

Aglauropsis agassizii Müller (ib. p. 362). — A. conantii Browne (ib. p. 362).

Agastra mira Hartlaub (ib. p. 234).

Amalthaea islandica Allm. Stechow (p. 71). — A. januarii (Steenstrup)

Allm. Bedot (p. 243). Stechow (p. 71). — A. ( ?) Hybocodon ( ?) januariv

Steenstrup. Mayer (p. 23). — A. sarsi (Steenstr) Allm. Bedot (p. 243).

Mayer (p. 22). — A. wvifera OÖ. Schmidt. Bedot (p. 244). Mayer (p. 22).

— A. vardaensis Lomon. Mayer (p. 23).

[Amathaea]. Bedot (p. 244) = Amalthaea.

Amphisbetia L. Agass. — Sertularia operculata. Bedot (p. 244).

Ampbhitrocha L. Agass. = Sertularella sp. Bedot (p. 244).

Amphogona apsteini Browne. Mayer (p. 405). — A. pusillan.sp. Hartlaub.

Anisocalyx Donati 1750. = Plumularia. Bedot (p. 244).

Antenella gracilis Allm. Stechow (p. 85). — A. quadriaurita n. sp. Ritchie (1).

— A. secundaria L. Stechow (p. 84).

Antennellopsis dofleini n. sp. (ib. p. 86).

Antennopsis scotiae Ritchie. Ritchie (1).

Antennularia antennina L. Billard (2). Broch (2). Jäderholm (1). Stechow

(p. 82). Stevens. — A..a. var. minor Kirchenpauer. Stechow (p. 82). —

A. decussata Kirchenp. = A. eymodocea Busk. Billard (2). — 4.

japonica n. sp. Stechow (p. 80). — A. norvegica Bonnevie. Jäderholm

(1). A. perierri Billard. Stechow (p. 81). — A. p. var. antennoides

Billard. Steehow (p. 82). — A.p. var. irregularis Quelch (ib. p. 83). —

A.ramosa Lamx. Jäderholm (1). — A. variabilis Broch. Jäderholm (1).

Atractylis sp. Bedot (p. 245). — A. antaretica Hickson u. Graveley. Van-

höffen.

Azygoplon „ist ganz zu streichen“. A. rostratum Allm. = Halicarnopsis

avicularıis Kpr.: A. productum Bole = Diplocheilus. Stechow (p. 89).

Bimeria corynopsis n. sp. Vanhöffen. B. vestita Wright. Bedot (p. 245).

92 Hydromedusae für 1910.

Blackfordia manhattensis n.sp. Mayer (p. 277). — Bl. virginica n. Sp. (ib.

p- 277).

Bonneviella grandis Allm. Broch (1).

Botrynema brucei Browne. Mayer (p. 395).

Bougainvillea antumnalis Hartlaub = B. gibbsi Mayer. Mayer (p. 151). —

B. britannica Forbes (ib. p. 157). — B. carolinensis (Mac Crody). Bedot

(p. 246). = Hippocrene carolinensis MceCrady. Mayer (p. 158). — B.

finema Greene = B. superciliaris (ib. p. 157, 164). — B. frondosa

Mayer (ib. p. 159). — B. fruticosa Allm. Bedot (p. 246). — B. flavida

Hartlaub. Mayer (p. 158). — B. fulva Ag. et Mayer (ib. p. 157). Hart-

laub. — B. glarietta Torrey. Mayer (p. 172). — B. maniculata Hub. (ib.

p- 159). — B. muscus Allm. Bedot (p. 246). Broch (1). B. maclo-

viana Lesson. Mayer (p. 157). — B. multicilia = Lizzia multieibia

Hub. Mayer (p. 157). — B. niobe Mayer (ib. p. 158). — B. nordgaardi =

Margelis nordgaardi Browne (ib. p. 158). — B. obscura Bonnevie (ib.

p. 172). — B. prolifera = Lizusa prolifera V. Zend. (ib. p. 159). —

B. platygaster Hkl. (ib. 158, 165). — B. principis = Margelis prin-

cipis Steenstr. (ib. p. 157). — B. pyramidata = Hippocrene pyramıdata

Forbes (ib. p. 158). — B. ramosa (van Beneden). Bedot (p. 246). Ste- -

chow (p. 26). Jäderhoim (1). — B. rugosa clarke. Mayer (p. 159). —

— DB. superciliaris (L. Agass.) Bedot (p. 248). Broch (1). Mayer

(p. 162, 157). — B. trinema = Margelis trinema v. Lend. (ib. p. 159). —

B. van Benedeni Bonnevie. Jäderholm (1). Broch (1). B. zantha

Hartlaub. Mayer (p. 158).

Branchiocerianthus imperator Allm. Stechow (p. 49).

Bythotiara n. g. murrayi n. sp. Maas (3). Mayer (p. 185).

Calicella = Calycella. Bedot (p. 243).

Calycella fastigiata (Alder) (ib. p. 249). — C. plicatilis (Sars) (ib. p. 249). —

Sgn. Campanularia syringa et Olytia syringa. Bedot (p. 249).

Calycopsis typa Fewkes. Mayer (p. 131).

Campalecium sp. Torrey (ib. p. 290).

Campaniclava cleodorae (Gegenb.). Bedot (p. 250). — U. chionis n. sp. Van-

höffen.

Campanularia amphora A. Agass. Bedot (p. 251).— Ü. angulata Hincks (ib.

p- 251). — C. anthipathes (Lam.) (ib. p. 251). — C. borealis Markt.-

Tesch. Jäderholm (1). — €. brasiliensis Meyer. Bedot (p. 251). — €.

calceolifera Hincks (ib. p. 251). — C. caliculata Hincks (ib. p. 252). —

C. exigua (Sars) (ib. p. 253). — C. flexuosa (Hdler.) Hincks. Bedot

gelatinosa Lamk. Jäderholm (1). Syn. Laomedea gelatinosa Lamx.

Syn. Laomedea geniculata Lamx. Bedot (p. 254). — C. gigantea Hinks.

Bedot (p. 255). Jäderholm (1). — C. grandis Allm. Jäderholm (1). —

Bedot (p. 255). Broch (1). Jäderholm (1). — C. integra Mc. Gillivray.

Systematik. 93

Bedot (p. 255). Broch (1). Jäderholm (1), (2). C. johnstomii Alder.

lobata Vanhöff. Vanhöffen. — C. macrocythara (Lamx.). Bedot (p. 256).

Billard (5). — C. maior Meyen. Bedot (p. 256). — C. neglecta Hincks.

Bedot (p. 256). — Jäderholm (1). — €. olivacea M. Edwards. Syn.

Olytia olivacea Lamx. Syn. Laomedeaolivacea Lamx. Syn. Laomedea

olivacea Blainville. Bedot (p. 256). — C. paulensis n. sp. Vanhöffen. —

C.raridentata Alder. Bedot (p. 257). — C. reptans (Lamx.) (ib. p. 257). —

C. retroflexa Allm, Billard (4). — C. speciosa Clarke. Jäderholm (1).

Broch (1). — C. subrufa Jäderh. Vanhöffen. — O. syringa (L.). Syn.

undulata. Bedot (p. 258). — C. urnigera Blainville (ib. p. 258). — C.

(p. 258). Jäderholm (1). Broch (1). Billard (5). — C. volubiliformis

Sars. Bedot (p. 259). — C. volubilis Alder (L.) Bedot (p. 259). Jäder-

holm (1). Broch (1).

Campanulina belgicae Hartlaub. Vanhöffen. — C. borealis Thompson.

Jäderholm (1). — C. lacerata Johnston. Broch (1). — O. panicula G.O.

holm (1).

Cannota dodecantha Hkl. Mayer (p. 222).

Catablima multicirrata n. sp. Kishinouye.

Ceratella fusca Gray. Bedot (p. 262).

Chiarella centripetalis Maas. Mayer (p. 182).

Chitina ericopsis Carter. Stechow (p. 41).

Cionistes reticulata Wright. Bedot (p. 262).

Cladocarpus bicuspis (G. O. Sars). Jäderholm (1). Cl. bonnevieae nom.

nov. Syn. Aglaophenia compressa Bonnevie. Jäderholm (1). — Cl.

carnutus Verrill. Jäderholm (1). — Cl. crenatus var. allmanı nom. noV.

Ritehie (2). — Cl. crenatus Allm. Billard (4). — Cl. crenulatus Levinsen.

Jäderholm (1). C/. dubius nom. nov. Broch (1). — Cl. formosus Allm.

Ritchie (2). Broch (1). Jäderholm (1). — Cl. holmi Levinsen. Jäder-

holm (1). Broch (1). — Cl. pectiniferus Allm. Billard (4). — Cl. pour-

talesi Verrill. Jäderholm (1).

Cladocoryne floccosa Rotch. Bedot (p. 262). Kühn. — Cl. flacca n. var. sar-

gassensis. Hargitt.

Cladonema radiatum Duj. Bedot (p. 263). Mayer (p. 99). Jäderholm (1).

Kühn. — Cl. mayeri Pekins. Mayer (p. 101). — Cl. perkinsii Mayer.

Mayer (p. 101). — Cl. vallentini n. sp. Vanhöffen.

Clathrozoon drygalskii n. sp. Vanhöffen.

Clava diffusa Allm. Bedot (p. 263). — Cl. glomerata Lönnbg. Jäderholm (1).

Cl. leptostyla L. Ag. Bedot (p. 264). Broch (1). — Cl. multicornis (Fors-

94 Hydromedusae für 1910.

kal). Bedot (p. 264). Broch (1). — Cl. nodosa Wright. Bedot (p. 265). —

Cl. sguamata (Müller) (ib. p. 265). Cl. sq. Hincks. Broch (1). Jäderholm

(1). Kühn.

Clavatella prolifera Hincks. Bedot (p. 266). |

Clavula sp. Bedot (p. 267). — Cl. fontata. Mayer (p. 491). — Cl. papua.

Mayer.

Clytia compressa Clame. Vanhöffen. — Ol. intermedia L. Ag. Bedot (p. 268).

— Cl. folleata. Mayer (p. 264). — Cl. johnstoni (Alder). Bedot (p. 268).

Jäderholm (1). Ritchie (1). Vanhöffen. — Cl. noliformis (Mac Crady).

Bedot (p. 270). Vanhöffen. Cl. rangirae. Mayer (p. 265). — Cl.

raridentata Alder. Vanhöffen. — Cl. simplex Corydon. Vanhöffen. —

Cl. serrulata Bole (ib.). — Cl. striata Clarke (ib.). — Cl. universitatss

Torrey. Mayer (p. 265). — Cl. volubilis n. sp. Hargitt. Mayer (p. 262).

Conis cyclophtalma Hkl. Mayer (p. 130). — C. mitrota Brandt. (ib. p. 130).

Coppinia Hassal. (Bedot p. 270). — €. arcta (Dalyell) (ib.)

Cordylophora lacustris Allm. Bedot (p. 271). Smith.

Corydendrium parasiticum (L.). Bedot (p. 272). — C. sessile n. sp. Rit-

chie (4).

Corymbogonium Allm. Bedot (p. 272).

Corymorpha sp. Steehow (p. 71). — C. abyssalıs nom. nov. Broch (1). —

C. carnea. Stechow (p. 71). — C. groentiandica Allm. Broch (1). —

C. islandica Allm. (ib.). — €. nova Alder. Bedot (p. 273). Broch (1). —

C. nutans M. Sars. Bedot (p. 273). Broch (1). Jäderholm (1). — C.

palma Torrey. Stechow (p. 71). — C. pendula L. Agass. Broch (1). —

C. purpurea Bonnevie. Broch (1). — €. sarsii. Jäderholm (1). Broch (1).

— C. spitzbergensis n. sp. Broch (1). — C. tomaensis n. sp. Ikeda. —

C. uvifera M. Sars. Broch (1).

Corynitis agassizii Me. Crady. Mayer (p. 72). — C. arcuata Hk]. (ib. p. 73). —

C. (? J)eaerulea (ib. p. 73).

C. caespes Allm. Bedot (p. 273). — C.cerberus Gosse. Bedot (p. 274). —

C. conferta Allm. Vanhöffen. — C. eximia Allm. Broch (1). — €.

(p- 276). — CO. hincksii Bonnevie. Broch (1). — C. lovenii Bonnevie (ib.)

Stechow (p. 33). Jäderholm (1). Broch (1). Vanhöffen. Toppe. C.

rosaria L. Agass. Bedot (p. 278). — C. sarsii Bonnevie. Broch (1). —

C. van-benedeni Hincks. Bedot (p. 278). — CO. vermicularis Hincks.

Bedot (p. 278). Jäderholm (1).

Corynitis agassizi Me. Crady. Bedot (p. 278).

Corynopsis alderi (Hodge). Bedot (p. 279).

Corythamnion Allm. Bedot (p. 279).

Corythamnium Allm. (ib.).

Cosmetira pilosella Hartlaub. Mayer (p. 261).

Cotulina L. Ag. Bedot (p. 279).

Craspedacusta kawaii. Meyer (p. 365). — Or. sowerbü, R. Lank. (ib. p. 363).

Systematik. 95

Crossota brunnea Vanhöffen. Mayer (p. 396). Maas (1). Cr. „norwegica“

Vanhöff. Mayer (p. 396).

Oryptolaria (?) borealis Levinsen. Jäderholm (1). Cr. conferta Allm.

Vanhöffen. — Cr. exserta Johnston. Bedot (p. 280). — Cr. priwa

Busk. (ib.)

Ütenaria etenophora Hkl. Mayer (p. 98).

Cubaia aphrodite Mayer. Mayer (p. 351).

Cunantha Hub. ‚the problematic‘ „Genus“. „It is probably only a yuory

Aegina‘“‘. (Mayer p. 449). — C. striata Hkl. (ib. p. 449).

Eysenhardt. Mayer (p. 481). — C. multifidia Hkl. (ib. p. 475). — C.

oligatis Hkl. (ib. p. 475). — C.peregrina Bigelow (ib.p. 481). Maas (2). —

Cuspidiella costata Hincks. Bedot (p. 280). — C. grandis Hincks (ib. p. 280).

Jäderholm (1). C. humilis Hincks. Bedot (p. 280). Jäderholm (1).

Cymodocea ramosa Lamx. —= Antennularia antennina L. Billard (3).

O'ytaeis atlantica = C. macrogaster Hul. = C. tetrastyla Eydoux et Souleget

= nigritina Hkl. Mayer (p. 132). — C. herdmani Bro ne (ib. p. 132). —

C. vulgaris Agass. et Mayer (ib. p. 132). Maas (2).

Dehitella atrorubens Gray. Bedot (p. 281).

Dendrocoryne misakiensis Inaba. Stechow (p. 39). — D. secunda Inaba

(ib. p. 40).

Dendronema stylodendron Hkl. Mayer (p. 102).

Dichotomia cannoides Brooks (ib. p. 223).

Dicodonium adriaticum Graeffe (ib. p. 45). — D. carnutum Hkl. (ib. p. 45). —

D. dinema = Sarsiella dinema Hartlaub (ib. p. 45). — D. dissonema

Hkl. (ib. p. 45). — D. floridana Mayer (ib. p. 45). — D. jeffersoni Mayer

(ib. p. 45). — D. ocellatum = Dinema ocellatum Hkl. (ib. p. 45).

Dicoryne conferta Allm. Bedot (p. 281). Jäderholm (1). Broch (1). D.

flexzuosa G. O. Sars. Broch (1).

Dietocladium affine Jäderh. Vanhöffen.

Dipetasus digonimus Hkl. Mayer (p. 361). ’

Diphasia alata Hincks. Bedot (p. 282). Billard (4). Jäderholm (1). D.

abietina Levinsen. Jäderholm (1), (2). — D. abietina forma typica.

Broch (1). — D. abietina forma filicula. Broch (1). D. antennata

Hincks. Bedot (p. 282). — D. corniculata (Murray). Bedot (p. 282). —

D. cornifera Allm. Bedot (p. 282). Jäderholm (1). — D. elegans G. O.

Sars. Jäderholm (1). — D. fallax (Johnston). Syn. Sertullaria fallax

Johnston. Bedot (p. 282). Broch (1). Jäderholm (1). — D. filicula

Levinsen. Jäderholm (1). — D. pinaster (Ellis et Solander). Syn.:

96 Hydromedusae für 1910.

Dynamena pinaster Lamx. Syn.: Sertularia pinaster Ellis et Salander.

Bedot (p. 283). — pinaster Agass. Jäderholm (1). — D. pinnata (Pallos).

Syn. Sertularia pinnata Pallas.. Bedot (p. 284). — D. pulchra

Nutting. Jäderholm (1). — D. rosacea L. Broch (1). Jäderholm (1).

Syn. Dynamena rosacea Lamx. Syn. Sertularia rosacea L. Bedot (p.

285). — D. thornelyi n. sp. Ritchie (3). — D. thujarioides Clark. Broch

(1). — D. tamarisca (L.). Syn. Sertularia tamarisca L. Bedot (p. 286). —

D. turgida (Clarke). Syn. Thuiaria turgida Clarke. Jäderholm (1).

Broch (1). — D. variabilis Clark. Broch (1). Syn. Sertularia variabilis.

Jäderholm (1). — D. wandeli Levinsen. Jäderholm (1). Broch (1).

Diplonema Greene. Bedot (p. 287).

Diplocheilus-Arten. Synonymie bei Stechow (p. 89). — D. Allmani Torrey

(ib. p. 89). — D. mirabilis Allm. (ib. p. 88).

Dipleurosoma collapsa Mayer. Mayer (p. 226). — D. ochracea n. sp. (ib. p.

226). — D. pacifica Agassiz et Mayer (ib. p. 225). — D. typicum Agassiz

et Mayer (ib. p. 224).

Diplura fritillaria (Steenstrup). Bedot (p. 288).

Dismorphosa. Bedot (p. 2838).

Dissonema saphanella Hkl. Mayer (p. 115). — D. turrida Mayer (ib. p.

116, 490).

Dynamena barbata Lamx. Bedot (p. 289), „appartient aux Bryozoaires“.

Billard (3), p. 1064. — D. brevicella Lamx. = Sertularia aperculata L

Billard (3). — D. distans Lamx. „voir: Sertularia lamourouzi. Bedot

(p. 289). — D. divergens Lamx. = Sertularia bicuspidata Lamk. Bil-

lard (3). Bedot (p. 289). — D. disticha Lamx. „Voir: sSertularia dis-

ticha“. Bedot (p. 289). — D. evansi Lamx. „Voir: Sertularia evansi“.

Bedot (p. 289). — D. lucernaria Kirchenpauer. Bedot (p. 289). — D.

obligqua Lamx. = Pasythea quadridentata El. et Sol. Billard (3). P.q.

var. Balei Billard (ib.) — D. operculata Lamx. ‚voir Sertularia oper-

culata“. Bedot (p. 290). — D. pinaster Lamx. ‚voir Diphasia pinaster““

(ib. p. 290). — D. pulchella d’Orb. „voir: Sertularia pulchella‘“ (ib.

p- 290). — D. rosacea Lamx. ‚voir: Diphasia rosacea“ (ib. p. 290). —

D. serra sec. Heller. Bedot (p. 290). — D. sertularioides Lamk. = Sertu-

laria tubiformia Lamk. Billard (3), ‚„voir: sSertularia sertula-

rioides“. Bedot (p. 29). — D. tubiformis Lam’. „voir: sSertularia

sertularioides‘ (ib. p. 291). — D. turbinata Lamk. = Sertularia loculosa

Busk. Billard (3), ‚„voir: sSertularia turbinata‘‘. Bedot (p. 291).

Dyomea Vogt. Bedot (p. 291).

Ectopleura dumortieri L. Ag. Mayer (p. 69). Syn.: Tubularia dumortieri

van Beneden. Bedot (p. 292). — E. minerva. Mayer (p. 70). — E. paei-

fica Thornely (ib. p. 70).

Eirene donduensis Bigelow (ib.).. — E. medusifera Bigelow (ib.). — E.

quadrigatum (ib. p. 313). — E. variabilis (ib. p. 312). — E. viridula

Eschsch. (ib. p. 311).

Eleutheria claparedii Hartlaub (ib. p. 95). — E. dichotoma Quatrefoges

(ib. p. 94). — E. vallentini Brown (ib. p. 96).

Eucheilota bermudensis Mayer (ib. p. 282). — E. duodecimalis A. Agass.

(ib. p. 283). — E.d. var. parvula. (ib. p. 284). — E. paradoxica Mayer

Systematik. 97

(ib. p. 285). Maas (2). E. maculata Hartlb. Mayer (p. 285). — E.

ventricularis Mc. Crady (ib. p. 282).

Eucodonium brownei Hartlaub (ib. p. 68).

Eucope annulata Lend. (ib. p. 237). — E. dissonema (ib. p. 237). — E.

falklandica (ib. p. 237). — E. globosa (ib. p. 235). — E. hyalina v.

Lend. (ib. p. 237). — E. parvigastra (ib. p. 238). — E. picta Keferstein

et Ehlers (ib. p. 236).

Eucopella bilabiata (ib. p. 233). — E. crenata Hartlaub (ib. p. 234). Rit-

chie (1).

Eudendrium annulatum Norman. Bedot (p. 293). Broch (1). Jäderholm (1).

Ritchie (1). — E. arbuscula Wright. Bedot (p. 293). — E. armstrongi

nom.nov. Syn. E.ramosum Armstrong. Stechow (p. 28). — E. armatum

Jäd. Jäderholm (1). — E. capillare Alder. Bedot (p. 293). Broch (1).

Jäderholm (1). Stechow (p. 29). — E. caricum Jäderholm. Broch (1).

Jäderholm (1). E. cunninghami n. sp. Kirkpatriek. — E. dispar L.

Agass. Bedot (p. 294). — E. insigne Hincks. Bedot (p. 294). Broch (1).

— E. racemosum (Cavelini). Bedot (p. 295). — E. rameum (Pallas).

Bedot (p. 295). Johnston. Jäderholm (1). Broch (1). Stechow (p. 27). —

E. ramosum L. Bedot (p. 295). Ehrenbg. Broch (1). Vanhöffen. —

E. tenue A. Agass. Bedot (p. 297). — E. tenellum Allm. Broch (1).

Jäderholm (1). — E. vaginatum Allm. Bedot (p. 297). Jäderholm (1). —

E. wrightii Hartlb. Jäderholm (1).

Eutima campanulata. Mayer (p. 296). — E. coerulea (ib. p. 296). — E.

cuculata Brooks (ib. p. 296). — E. curva Browne (ib. p. 296). — E.

elephas Hkl. (ib. p. 296). — E. gentiana HKl. (ib. p. 296). — E. insignis

Hkl. (ib. p. 296). — E. lactea Bigelow (ib. p. 296). — E. levuka Agassiz

et Mayer (ib. p. 296). — E. mira Me Crady (ib. p. 295). — E. orientalis

Browne (ib. p. 296). — E£. pretiosa (ib. p. 296).

Eutimalphes brownei n. sp. Torrey. — E. modesta n. sp. Hartlaub.

Eutimium scintillans. Mayer (p. 306). — E. socialis (ib. p. 306).

Favonia nipponica n. sp. Kishinoye. — F. sulcata n. sp. (ib.).

Filellum expansum Levinsen. Jäderholm (1). — F. serpens Hincks. Bedot

(p. 298). Jäderholm (1) (2). Broch (1). F. tubiforme Schydlo sky

Jäderholm (1).

Galanthula marina Hartlaub. Jäderholm (1).

Garveia groenlandica Levinsen. Broch (1). —@. nutans Wright. Bedot (p. 298).

Gastroblasta ovalis. Mayer (p. 281). — @. raffaeli Lovy (ib. p. 280). — @.

tinıda Keller (ib. p. 279).

Gemmaria implexa Alder. Bedot (p. 299). Vanhöffen. — G. gemmosa

Me. Crady. Stechow (p. 34).

Globiceps Ayres. Bedot (p. 300).

Geryonia proboscidialis Eschsch. Mayer (p. 425).

Gonocladium Allm. Bedot (p. 300).

Gonionemus agassizii Murbach et Sheazer. Mayer (p. 342). — @. conautiti

Browne. Maas (1). — @. depressum Goto. Mayer (p. 342). — @. hornelli

Browne = @. suvaensis (ib. p. 342).— @. murbachii Mayer (ib. p. 342). —

G. pelagiceus Bigelow = @. suvaensis (ib. p. 342). — @. suvaensis Agassiz

et Mayer (ib. p. 342). — @. vertens A. Agass. (ib. p. 342). Maas (2).

Archiv für Naturgeschichte 7

1911. VE. 2.

98 Hydromedusae für 1910.

Gonothyrea clarki Marktanner-Turneresch. Jäderholm (1). —@'.gracilis (Sars.).

Bedot (p. 300). Jäderholm (1). — @. gracilis (Sars) var. Bedot (p. 301). —

@G. hyalina Hincks. Bedot (p. 301). Jäderholm (1). — @. loveni Allm.

Bedot (p. 301). Jäderholm (1). Kühn.

Gossea brachymera Bigelow. Mayer (p. 368). — @. corynetes L. Agass. (ib.p. 367).

Grammaria abietina M. Sars. Bedot (p. 303). Broch (1). Jäderholm (1). —

Gr. gracilis Stimpson. Bedot (p. 303). — Gr. immersa Nutting. Broch (1).

Jäderholm (1).

Gymnocoryne coronata Hincks. Bedot (p. 303).

Gymnogonos sp. Stechow (p. 71).

Halecium antarcticum n. sp. Vanhöffen. — H. articulatum Clark. Broch (1).

Jäderholm (1). H. beani Johnston. Bedot (p. 304). Jäderholm (1),

(2). Broch (1). — H. boreale Lorenz. Jäderholm (1). — H. capillare

(Pourtales). Bedot (p. 305). — H. corrugatum Nutting. Broch (1).

H. curvicaule Lorenz. Jäderholm (1). Broch (1). — H. dichotomum

Allm. Billard (4). — H. füliforme Alder. Bedot (p. 305). — H. flexile

Allm. Billard (4). — H. geniculatum Norman. Bedot (p. 305). Nutling.

Broch (1). — H. gracile Bole. Vanhöffen. — H. halecinum (L.). Schweig-

ger. Bedot (p. 305). Jäderholm (1). Broch (1). — H. humile Pictet.

Jäderholm (1). — H. irregulare Bonnevie. Jäderholm (1). Broch (1). —

H. kükenthali Markt.-Turneret. Jäderholm (1). Broch (1). — AH. la-

brosum Alder. Bedot (p. 306). Broch (1). Jäderholm (1). H. la-

mourouxianum (d’Orb.). Bedot (p. 306). — H. mirabile Schydlowsky.

Jäderholm (1). Broch (1). — H. minutum Broch. Broch (1). — AH.

muricatum (Ellis et Solander). Bedot (p. 307). Johnston. Jäderholm

(1). Broch (1). H. nanum Alder. Bedot (p. 307). Vanhöffen. H,

ornatum Nutting. Broch (1). — H. patagonicum (d’Orb.). Bedot (p.

307). — H. planum Bonnevie. Jäderholm (1). — H. plumosum Hincks.

Bedot (p. 307). Jäderholm (1). — H. pulchellum (Pourtales). Bedot

(p. 307). — H. repens Jäd. Broch (1). Jäderholm (1). — H. robustum

Allm. Vanhöffen. — H. secundum Jäd. Vanhöffen. — H. septentrionale

Mark. Turner. Broch (1). — H. sessile Norman. Bedot (p. 307). Broch

(1). Jäderholm (1). — H. scutum Clarke. Jäderholm (1). Broch (1).

H. siphonatum (Pourtalös). Bedot (p. 308). — H. tenellum Hincks.

Broch (1). Bedot (p. 308). Jäderholm (1), (2). Vanhöffen. — 7. Tehuel-

chum (d’Orb.). Bedot (p. 308). — H. tortile Bonnevie. Jäderholm

(1). Broch (1).

Halia Hincks. Bedot (p. 308).

Halicornaria sec. Allman. Bedot (p. 308). — H. arcuata (Lamx.). Billard

(4), (5). — H. allmani Markt.-Turner. Billard (4). H. compressa

Bonnevie. Broch (1). — H. cornuta Allm. = H. arcuata Lamk. Bil-

lard (2). — H. expansa Jäderh. Stechow (p. 103). — H. hians Busk. (ib.

p- 101). Ritchie (3). H.h. var. profunda nov. (ib.), var. laxa nov.

Ritchie (5). — H. integra G. O. Sars. Syn. Aglaophenia integra G. O.

Sars. Jäderholm (1). — H. Ishikawai n. sp. Stechow (p. 100). — A.

longicauda Nutting. Ritchie (1). — H. mitrata Allm. = Lytocarpus

filamentosus Lamk. Billard (2). — HA. roretzii Markt.-Turner. Stechow

(p. 102).

Systematik. 93

Halicorneria Parfitt = Halicornaria. Bedot (p. 309).

Halicornopsis avicularis (Kirchenpauer). Stechow (p. 89). — H. elegans

Lamk. Billard (5), (4).

Halicreas alba. Mayer (p. 393). — H. conica (ib. p. 394). — H. glabrum

Vanhöffen (ib. p. 392). — H. papillosum Vanhöffen (ib. p. 391). —

H. rotundatum Vanhöffen (ib. p. 392). — H. racovitzae (ib. p. 393).

Halitrephes moesi Bigelow (ib. p. 394).

Halocharis L. Agass. Bedot (p. 309).

Halocordyle Allman (ib. p. 309). — H. tiarella (Ayres) (ib. p. 309).

Halopsis ocellata A. Agass. Mayer (p. 323).

Halybotrys Filippi. Bedot (p. 310).

Hebella erateroides n. sp. Ritchie (3). — H.corrugata Thornely. Vanhöffen. —

H. parvula (Hincks). Jäderholm (1). H. pocillum Nutting (ib.). —

H. striata Allm. Vanhöffen.

Heteractis Allman. Bedot (p. 310).

Heterocordyle conybearei Allm. (ib. p. 310).

Heteropyzis Heller (ib. p. 310).

Heterostephanus annulicornis (Sars.) (ib. p. 311).

Heterotiara anonyma Maas. Mayer (p. 107, 439).

Hincksia L. Agass. Bedot (p. 311).

Hippocrene Mertens (ib. p. 311).

Homaeonema album Vanhöffen. Maas (1). H. amplum Vanhöffen —=

honema amplum. Maas. Mayer (384). — H. macrogaster Vanhöffen

(ib. p. 384). — H. militare Maas (ib. p. 384). — H. platygonon Maas (ib.

p- 384). — H. racovitzae Maas. Maas (1). — H. typicum Maas = Colo-

bonema sericeum V anhöffen = Colobonema typicum Maas. Mayer (p. 384).

Hybocodon chilensis Hartlaub. Mayer (p. 42). — H. christinae Hartlaub

(ib. p. 43). — H. forbesi Mayer (ib. p. 38). — H. pendula Hkl. = Cory-

morpha pendula L. Agass (ib. p. 38). — H. prolifer L. Agass. Bedot

(p- 311). Mayer (p. 38). — H. pulcher Hartlaub. Mayer (p. 43). — H.

unicus Browne (ib. p. 38). — H. unicus Browne (ib. p. 38).

Hydra-Synonymik u. Systematik. Frischholz. Bedot (p. 310). Koelitz.

Toppe. — H. attenuata Pallas. Bedot (p. 312). — H. carnea L. Agass.

(ib. p. 312). — H. fusca L. Frischholz. Hase. H. grisea L. Hase.

Frischholz. — H. gracilis L. Agass. Bedot (p. 312). — H. oligactis

Pallas (ib. p. 313). Koelitz. H. rubra Lewes. Bedot. FH. polypus

Pall. Koelitz. (p. 313). — H. tenuis Agres (ib. p. 314). — H. viridis L.

Bedot (p. 314). Hase. — H. vulgaris Pallas. Bedot (p. 315). Koelitz.

Hydractinia allmani Bonnevie. Jäderholm (1). Broch (1). — H. angusta

Hartlaub. Vanhöffen. — H. borealis Mereschk. Broch (1). — H. carica

Bergh. Broch (1). Jäderholm (1). — H. carnea M. Sars. Broch (1). —

H. clavata Jäderh. Vanhöffen. — H. echinata Johnston. Jäderholm (1).

Bedot (p. 316). Broch (1). — H. epiconcha n. sp. Stechow (p. 19). —

H. minuta Bonnevie. Broch (1). — H. monocarpa Allm. Broch (1).

Jäderholm (1). — H. ornata Bonnevie. Broch (1). — H. pacifica Hartlb.

Vanhöffen. H. parvispina Hartlb. (ib.) — H. polyclina L. Agass.

Bedot (p. 318). Broch (1). — H. sodalis Stimpson. Bedot (p. 318).

Stechow (p. 21). Gota. — H. spiralis n. sp. Goto.

100 Hydromedusae für 1910.

Hydrallmania falcata L. Broch (1). Billard (5). Jäderholm (1). Syn. Ser-

tularia falcata L. Bedot (p. 319). — H. franeiscana (Trask.). Bedot

(p. 320).

Hydranthea margarica Hincks. Bedot (p. 320).

Hydrichthella n. g. ‚„Periderm fehlt. Freßpolypen ohne Tentakel. Enkrus-

tierend, ähnlich wie die Hydraktinien, jedoch fehlen die Stacheln.

Polymorphismus; es kommen vor: tentakellose Freßpolypen und zwei

Arten von Wehrpolypen: dickere mit 4—8 urzen, stark geknöpften

Te .takeln oben, ähnlich denen von Coryne, aber in einem Wirtel, —

und schlankere, die wie ein langer geknöpfter Tentakel aussehen.

Sporosaes einzeln an den Freßpolypen.‘“ Stechow (p. 31). H. ept-

gorgia n. sp. (ib.).

Hydrichthys mirus Fewkes. Mayer (p. 67). Stechow.

Hydrocoryne n. g. „Tentakel sämtlich geknüpft, in mehreren Reihen dicht

zusammengedrängt. Hydrocaulus dick, ohne bestimmte Grenze in

den Hydranthen übergehend. Hydrorhiza polsterartig, von einem

maschenförmigen Skelett durchsetzt, das aus mehreren Stockwerken

besteht. Entwicklung durch Medusen, die in Trauben am unteren

Teil des Hydrocaulus entstehen. Stützlamelle gegen das Ektoderm

mit rippenartigen Auswachsungen. Periderm fehlt. Kolonienbildend.‘“

Stechow (p. 39). H. miurensis n. sp. (ib.).

Hydractena salenskit Dawydoff. Mayer (p. 459).

Hypsorophus Allm. Bedot (p. 320).

Idia pristis Lamk. Bedot (p. 321). Billard (4), (5). Ritchie (4).

Irene m llis n. sp. Torrey. — I. pellucida Will. Hartlaub.

Irenopsis hexonemalis Goette. Mayer (p. 310).

Isonema amplum Vanhöffen. Maas (1). — I. macrogaster Vanh. (ib.).

Keratosum n. g. Hargitt.

Lafo&a antaretica Hartlaub. Vanhöffen. — L. cornuta Lamk. = L. dumosa.

Billard (3). — L. calcarata A. Agass. Bedot (p. 321). — L. dumosa

(Fleming). Bedot (p. 321), M. Sars. Broch (1). Jäderholm (1). Billard

(5). — L. d. var. robusta Sars. Bedot (p. 323). — L. elegantula Broch.

Jäderholm (1). — L. fruticosa M. Sars. Bedot (p. 323). Broch (1).

Jäderholm (1). — L. gaussica n. sp. Vanhöffen. — L. gracillima G. O.

Sars. Jäderholm (1). Alder. Vanhöffen. — L.g. forma typica. Broch (1).

— L. g. forma elegantula. Broch (1). — L. g. forma bentophila n. var.

Ritehie (1). — L. grandis Hincks. Broch (1). Jäderholm (1). In

geniculata (Allm.). Billard (4). — L. talecioides Allm. Bedot (p. 323). —

L. megalotheca Allm. Billard (4). — L. parvula Hincks. Bedot (p. 323). —

L. pocillum Hincks. Bedot (p. 324). Broch (1). — L. plicata Hartlaub.

Vanhöffen. — L. pygmaea hine s. Bedot (p. 324). Broch (1). — L.

serpens Hassall. Vanhöffen.

Lafoöina maxima Levinsen. Broch (1). Jäderholm (1). — L. longitheca

Jäderholm. Vanhöffen. — L. tenuis M. Sars. Bedot (p. 324). Jäderholm

(1). Broch (1).

Lampra sp. Stechow (p. 71). — L. arctica Jäderh. Jäderholm (1). — L.

microrhiza Hickson et Grovely. Vanhöffen. L. parvula Hickson et

Growely (ib.).

Systematik. 101

Laodicea cruciata L. Agass. Mayer (p. 201). — L.(?) chopmani Gegenb.

(ib. p. 206). — L. ( ?) eucope (ib. p. 206). — L. ( ?) fertilis (ib. p. 206). —

L. fijana Agass. et Mayer (ib. p. 205). — L. ( ?) neptuna (ib. p. 206). —

L. pulchra Browne (p. 205).

Laomedea diaphana A. Agass. Bedot (p. 324). — L. dichotoma. Broch (1). —

L. flexuosa Hincks. Broch (1). Kühn. — L. gelatinosa. Broch (1). —

L. geniculata L. Broch (1). — L. gigantea A. Agass. Bedot (p. 325). —

L. gracilis M. Sars. Broch (1). Pickering. „Voir Obelia genieulata.‘“

Bedot (p. 325). — L. hyalina Hincks. Broch (1). L. longissima.

Broch (1). — L. loveni Allm. Broch (1). — L. pacifica A. Agass. Bedot

(p. 325). — L. rigida A. Agass. (ib. p. 325). — L. simplex Lamx. =

Campanularia tridentata Bole nom. nov. T’hyroscyphus simplex. Billard

(3). — L. torresi Busk. Bedot (p. 325).

Lar sabellarum Gosse. Bedot (p. 325).

Leptoscyphus tenuis Allm. (ib. p. 326).

Lictorella antipathes Lamk. Billard (4), (5). —L. cyatifera Allm. Billard (4). —

L. pinnata G. O. Sars. Broch (1). Jäderholm (1).

Limnocladia tanganjicae Günther. Mayer (p. 370), var. victoria (ib. p. 370).

Lineolaria spinulosa Hincks. Bedot (p. 326).

Lariope agaricus Hkl. Mayer (p. 411). — L. appendiculata (ib. p. 411). —

L. bicolor Eschsch. (ib. p. 411). — L. catharinensis F. Müller (ib. 412). —

L. cerassiformis Lesson = Dipharia exigna Quoy et Gaiward (ib. p. 411).

— L. crucifera Hkl. = L. compacta Maas = (?) L. rosacea Eschsch.

(ib. p. 411). — L. conirostris Hkl. = L. scutigera A. Agass (ib. p. 412.)

— L. canariensis Hkl. (ib. p. 411). — L. crassus Hkl. (ib. p. 411). —

L. distanogona Maas (ib. p. 412). — L. euryleia Hkl. (ib. p. 412). —

L. haeckelii Goette (ib. p. 412). Hartlaub. — L. hemisphericus Bigelow.

Mayer (p. 411). — L. hyperbolica Maas = (?) L. tenuirostris L. Agass.

(ib. p. 411). — L. t.indica Bigelow =L.(?) hyalina Agass. et Mayer

(ib. p. 412). — L. lütkeni Hkl. (ib. p. 412). — L. minima Maas (ib. p.

412). — L. mucronata Gegenb. (ib. p. 411). — L. rosacea Eschsch.

Maas (2). Hartlaub. — L. scutigera Me. Crady. Mayer (p. 412). — L.

tetrophylla Chamisso et Eysenhardt (ib. p. 412).

Lizzia shimiko n. sp. Kishinouye.

Lovenella clausa Hincks. Bedot (p. 326). Jäderholm (1). — L. producta

Hincks. Jäderholm (1). — L. quadridentata Hincks. Broch (1).

Lymnorea alexandri Mayer. Mayer. — L. borealis Mayer (ib.p. 154). — L»

dibolia (ib. p. 153). — L. macrostoma (ib. p. 153).

Lytoscyphus articulatus (Lamk.) Bedot (p. 326). — L. fruticosus (Esper)

(ib. p. 327). — L. marginatus (Allm.). Billard (4).

Lymnorea ocellata Agassiz et Mayer. Mayer (p. 153).

Lytocarpus annandalei n. sp. Ritchie (3). — L. bolei Nutting. Stechow (p. 99).

— L. phoeniceus Busk. (ib. p. 97). Billard (4). — L. filamentosus (Lamx.)

(ib.). — L. pennarius L. Billard (5) (4). — L. racemiferus Allm. Bil-

lard (4).

Maeotias inexspectata Ostroumoff. Mayer (p. 369).

Manicella Allm. Bedot (p. 327).

102 Hydromedusae für 1910.

Margelopsis haeckelii Hartlaub. Mayer (p. 80). — M. hartlaubi (ib. p. 82). —

M. stylostoma Hartlb. (ib. p. 81).

Melicertissa clavigera Hkl. (ib. pag. 210). — M. malayica Browne (ib.p. 211).

Melicertum campanula Oken (?). Agass. (ib. p. 207). — M. georgieum A.

Agass. (ib.p. 209). — M. vetecostatum Hkl. (ib. p. 208). — M. panoctum

(ib. p. 209). — M.(?) Aglantha ( ?) proboscifer Maas (ib. p. 209).

Merona cornucopiae Norman. Bedot (p. 327).

Mesonema pensile Modeer. Maas (2).

Microhydra ryderi Potts. Mayer (p. 366).

Microcampana conica Fewkes (ib. p. 44).

Mitrocoma annae Hkl. (ib. p. 287). — M. cirrota (ib. p. 288). — M. cruciata

(ib. p. 289). — M. discoidea n. sp. Torrey. Mayer (p. 289). — M. lenden-

feldi. Mayer (p. 290). — M. minervae Hkl. (ib. p. 288). — M. megalota

(ib. p. 289). — M. polydiademata (ib. p. 290).

Mnestra parasites Krohn. (ib. p. 97).

Moerisia lyonsi Boulenger. Mayer (p. 488). Boulenger.

Monocaulus glacialis (Sars). Bedot (p. 328). — M. groenlandica Allm.

Stechow (p. 71). — M. pendulus L. Agass. Bedot (p. 328). Stechow

(p. 71).

Monostoechos quadridens Mc. Crady. Bedot (p. 328). Stechow (p. 33.)

Ritchie (1).

Monocoryne gigantea (Bonnevie). Broch (1).

Monobrachium parasiticum Mereschowsky. Mayer (p. 230). Broch (1).

Myriothela austro-georgiae Jäderh. Ritchie (1). Vanhöffen. — M. cocksi

G.O.Sars. Broch (1). (Vigurs). Bedot (p. 329). — M. gigantea Bonnevie.

Broch (1). — M. minuta Bonnevie (ib.). — M. nitra Bcnnevie (ib.). —

M. phygyia M. Sars. Broch (1). Bedot (p. 329). — M. verrucosa Bonne-

vie. Broch (1).

Nemertesia antennina Lamk. Bedot (p. 330). — N. cymodocea (Busk.)

(ib. p. 331). — N. janini Lamk. (ib. p. 331). — N. ramosa Lamk. (ib.

p- 331). Syn. N. janini Lamk. — N. tetrasticha (Meneghini) (ib. p. 332).

— N. triseriata (Pourtales) (ib. p 333).

Nemopsis sp. Mayer. — N. bachei L. Agass. Bedot (p. 333). Mayer (p. 173).

— N. crucifera Hkl. (ib. p. 174). — N. dofleini n. sp. Maas (2).

Nemertesia antennina L. Billard (5). — N. cymodocea Busk. Billard (4). —

N. indivisa (Allen.) (ib.). — N. ramosa Lamk. Billard (5).

Netocertoides brachiatum Mayer. Mayer (p. 229).

Niobia dendrotentacula Mayer (ib. p. 187).

gulosa Bale (ib. p. 243, 257). — O. arruensis Markt.-Tuıner (ib. p. 243,

256). — O. australis Lend. (ib.) p. 240, 247). — O. andersoni Hincks (ib.

p- 243, 257). — O. bidentata Clarke (ib. p. 241, 254). — O. borealis

Nutting (ib. p. 246, 249). — O. bifurca Hincks (ib.). — O. chinensis

Markt.-Turner. (ib. p. 241, 256). — O. corona Torrey (ib. p. 241, 253). —

O.commissuralis Me Crady. Bedot (p. 334). Mayer (p. 240, 244). —

O. diophona (L. Agass.) Bedot (p. 334). — O. dichotoma Hincks.

Mayer (p. 240, 246). Jäderholm (1). Kühn. Syn. Campanularia

dichotoma Lamarck, Syn. Laomedea dichotoma Lamx. Bedot (p. 334).

Systematik. 103

O. dubia Nutting = O.(? ) dichotoma Hincks. Mayer (p. 240, 248). Van-

höffen. O. delicatula Thornely. Mayer (p. 243, 257). — O. flabellata

Hincks. Jäderholm (1). Syn.: O. plana (Sars.). Bedot (p. 336). — O.

fusiformis (A. Agass.) (ib. p. 336). — O. griffini Calkins. Mayer (p. 241,

252). — O. gelatinosa Hincks. Mayer (p. 240, 244). Syn. Campanularia

gelatinosa Fleming, Laomedea gelatinosa Lamx. Bedot (p. 336). — O.

geniculata L. Billard (5). Jäderholm (1), (2). Mayer (p. 24). Ritchie (1).

Vanhöffen. Syn. Laomedea geniculata Lamouroux, Syn. Campanularia

geniculata Fleming, Syn. Laomedea lairii Lamouroux, Syn. Campa-

nularia lairii M. Edwards, Syn. ? Laomedea gracilis Pickering, Syn.

Obelia diaphana (L. Agassiz). Syn. Obelia lucifera (Farber). Bedot

(p- 338). — O. gracilis Calkins. Mayer (p. 241, 253). — O. helgolandica

Hartlaub (ib. p. 241, 253). — O. hyalina Clarke (ib. p. 241, 248). Van-

höffen. Ritchie (1). O. linearis Thornely. Mayer (p. 243, 257). —

O. longissima Hincks. Mayer (p. 241, 255). Jäderholm (1), (2). Van-

höffen. Ritchie (1). — O. nigrocaulis Hilgendorf. Mayer (p. 494). —

O. nigra Browne (ib. p. 243, 256). — O. piriformis (A. Agass.). Bedot

(p- 342). — O. plicata Hincks. Mayer (p. 242, 256). Bedot (p. 342). —

O. plana Hkl. = O. flabellata Hincks. Mayer (p. 249). — O. purpurea

n. sp. Torrey. — O. pyrijormis Verrie. Mayer (p. 240, 247). — O.

solowetzkiana Schydlowsky. Jäderholm (1). O. surcularis Calmus.

Mayer (p. 241, 252). — O. striata Clarke (ib. p. 240, 248). — O. serratula

Bole (ib. p. 243, 257).

Oceania armata Köll. (ib. p. 147).

Octoconna polynema Hkl. (ib. p. 320).

Octognade mediterranea Zoja (ib. p. 322).

Octorchandra orientalis n. sp. Hartlaub.

Olindias molayensis Maas. Mayer (p. 353). — O0. mülleri. Toppe. — O0.

F. Müller (ib. p. 353). — O. singularis Browne (ib. p. 353). — O. tenuis

Fewkes (ib. p. 353).

Olindioides formosa Goto (ib. p. 358). Maas (2).

Opercularella lacerata Hincks. Jäderholm (1). Bedot (p. 342). — O. nova

Hartlaub. Jäderholm (1).

Ophioides arboreus (Allm.). Billard (4). — O. dichotomus (Allm.) (ib.) —

O. gorgonoides Bonnevie. Broch (1). Jäderholm (1). — O. mirabilis

Hincks. Bedot (p. 343). — O. parasitica G. O. Sars. Jäderholm (1).

Orchistoma agariciforme Keller. Mayer (p. 212). — O. tentaculata Mayer (ib.

p. 212). — O. pileus Lesson (ib. p. 211).

Pachycordyle degeneratus. Mayer (p. 21). — P. weismanni Hargitt (ib. p. 21).

Pandea conica Lesson (ib. p. 118). — P. maasi (ib. p. 119). — P. minima

Lend. (ib. p. 118). — P. saltatoria Lesson (ib. p. 118). — P. violacea

Agassiz et Mayer (ib. p. 119, 490).

Pantachogon haeckelii Maas (ib. p. 389). — P. rubrum Vanhöffen (ib. p. 389).

Parypha L. Agass. Bedot (p. 343).

Pasyihea gracilis Dana (ib. p. 344). — P. hexodon Busk (ib. p. 344). — P.

quadridentata (ib. 344). Billard (5). — P. qu. var. bolei Billard. Syn.

Dynamena obliqua Lamx., Syn. Sertularia obligua M. Edw. Bedot(p.344).

104 Hydromedusae für 1910.

Pegantha aureola = Salmoneta aureola Hkl. Mayer (p. 440). — P.(?)

cyanostyla Eschsch. (ib. p. 441). — P. clara R. Bigelow (ib. p. 445). —

P. dactyletra Maas (ib. p. 440). — P. dodecagona Peron et Lesuer (ib.

444). — P. godeffroyi = Solmaris godeffroyi Hkl. (ib. p. 441). — P.

laevis H. Bigelow (ib. 444). — P. lunulata = Solmoneta lunulata HEl.

(il. p- 440). — P. martegon Hkl. = P. simplex Bigelow (ib. p. 440).

P. magnifica Hkl. (ib. p. 440). — P. pantheon Hul. (ib p. 440). — P.

punctata = Solmaris punctatus Hkl. = Aequorea punctata Quoy et

Gaiward (ib. p. 440). — P. sieboldii ( ?) Hkl. (ib. p. 444). — P. smarag-

dina Bigelow (ib. p. 441). — P. triloba Hkl. (ib. p. 440). — P.(?)

weberi = Solmaris weberi Hkl. (ib. p. 441).

Pelagohydra mirabilis Dendy (ib. p. 83).

Pennaria adamsia Lend. (ib. p. 27). — P. canolini. Toppe-. — P. disticha

Goldfuss. Bedot (p. 344). Mayer (p. 24). — P. gibbosa L. Agass. Bedot

(p- 345). — P. pacifica Clark. Mayer (p. 28). — P. primarius Bonne-

vie. Broch (1). — P. rosea Lend. Mayer (p. 27). — P. tiarella Me Crady

(ib. p. 25). Goldfarb. — P. ( ?) vitrea Agassiz et Mayer. Mayer p. 28, 487).

Perigonimus abyssi G. O. Sars. Broch (1). Jäderholm (1). — P. belgicae

n. sp. Vanhöffen. — P. ( ?) bitentaculatus (Wright). Bedot (p. 345). —

P.(?)coceineus (Wright) (ib. p. 345). — P. (stomotoca ?) ceidaritis

Weismann. Mayer (p. 115). — P. jonesii Osborn u. Hargitt. Mayer

(p. 114). — P. maclovianus n. sp. Vanhöffen. — P. ( ?) miniatus (Wright).

Bedot (p. 346). — P. minutus Allm. (ib. p. 346). — P. muscoides M.

Sars. Bedot (p. 346). Jäderholm (1). P. palliatus (Wright). Bedot

(p. 3 1). — P. pugetensis. Heath. — P. ( ?) quadritentaculatus (Wright).

Bedot (p. 347). — P. repens Hincks. Broch (1). Bedot (p. 347). Jäder-

holm (1), (2). Ritehie (1). Stechow (p. 25). — P. roseus Bonnevie.

Broch (1). Jäderholm (1). — P. serpens Allm. Bedot (p. 348). — P.

sessilis (Wright) (ib. p. 348). — P. vagans Thornely. Mayer (p. 490). —

P. vestitus Allm. forma radicans. Vanhöffen. Bedot (p. 348). — P.

yoldiae-arcticae Birula. Broch (1). Jäderholm (1).

Persa dissogonima Hkl. Mayer (p. 407). — P. incolorata Me Crady (ib. p.

407). — P. lucerna Hkl. (ib. p. 407).

Petachnum tiaropsis Hkl. (ib. p. 361).

Petasata eucope Hkl. (ib. p. 361). — P. rabbeana Hkl. (ib. p. 361).

Petasus atavus Hkl. (ib. p. 361). — P. tetranema Hkl. (ib. p. 361).

Phialidium sp. Hartlaub. — Ph. ambiguum. Mayer (p. 274). — Ph. brunes-

cens (ib. p. 274). — Ph. buskianum Browne (ib. p. 270). — Ph. discoida

Mayer. Maas (2). — Ph. discoidum Bigelow. Mayer (p. 272). — Ph.

gelatinosum (ib. p. 272). — Ph. globosum (ib. p. 272). — Ph. gregarvum

HKI. (ib. p. 272). — Ph. hemisphericum (ib. p. 266). — Ph. iridescens

Maas (ib. p. 273). — Ph. languidum HkKl. (ib. p. 269). — Ph. lomae n. Sp.

Torrey. Ph. Mccradyi. Mayer (p. 271). — Ph. pacificum Maas (ib.

p. 273). Maas (2). — Ph. singularis (ib. p. 273). — Ph. simplex Browne,

(ib. p., 274),

Phialium bakeri n. sp. Torrey.

Phialopsis n. g. „Eucopidae with a smallnumber of long tentacles (16—32),

numerous rudimentary tentacles (marginal papillae), and eirri; nu-

Systematik. 105

merous large statocysts with several statoliths; gastrie peduncle

feeby developed“. Torreyv. — Ph. diegensis n. sp. (ib.)

Phialucium carolina Maas = Oceania carolinae Maas. Mayer (p. 275). —

Ph. rubengha Maas = Mitrocoma rubengha Agass. et Mayer (ib. p. 275).

— Ph. vireus Maas = Oceania vireus Bigelow (ib. p. 275).

Phortis ceylonensis (ib.p. 309). — Ph. elliceana Agass. et Mayer (ib. p. 309). —

Ph. gibbosa Me Crady (ib. p. 307). — Ph. kombara (ik. p. 309). — Ph.

lactea Mayer (ib. p. 309). — Ph. palkensis (ib.). — Ph. pyramidalsi

Mayer (ib. p. 308).

Plumularia armata Allm. Billard (4). Pl. bifrons (Heller). Bedot (p. 349).

— Pl. bonnevieae Billard, Syn. P. rubra Bonnevie. Jäderholm (1).

Pl.brevirostris Busk. Billard (2). — Pl.brochiata Lamk. nom. nov. Theco-

carpus brachiatus. Billard (3). — Pl. campanula Busk. Bedot (p. 349) =

P. secondaria L. Billard (2) (2 var.). Billard (4). Ph. catharina John-

ston. Bedot (p. 349). — Jäderholm (1). — Pl. cornutum Bole. Stechow

(p. 78). — Pl. curvata Jäderh. Ritchie (1). Pl. diaphana Heller.

Bedot (p. 349). — Pl. disticha Heller. Bedot (p. 350). — Pl. dolicho-

theca (Allm.) Billard (4). — Pl. echinulata Lamk. DBedot (p. 350).

Jäderholm (1). Ritchie (1). — Pl. fragilis Hamann. Broch (1). Jäder-

holm (1). — Pl. frutescens (Ellis et Solander). Bedot (p. 350). — Pl.

grimaldi (Lamx.). Bedot (p. 351). — Pl. glutinosa (Lamk.) (ib. p. 351). —

Pi. halecioides Alder (ib. p. 351). — Pl. helleri Hincks (ib. p. 351). —

Pl. hiasis Busk. (ib. p. 351). — Pl. Hertwigi n. sp. Stechow (p. 76). —

Pl. glutinosa (Lamk.) Billard (4), (5). — Pl. glacialis Hickson et Gro-

veley. Vanhöffen. — Pl. habereri n. sp. Stechow (p. 77). — Pl. groen-

landica Levinsen. Broch (1). — Pl. insignis Allm. Billard (4). IR!

‘. abietina. Billard (4). — Pl. i. flabellum (ib.). — Pl. kirkpatricke

Billard (ib.) — Pl. lagenifera var. septifera Torrey. - Ritchie (1). — Pi.

longicornis Busk. Bedot (p. 351). — Pl. margaretha Nutting. Van-

höffen. Pl. mirabilis (Allm.). Billard (4). — Pl. phoenicea Busk. +

Pl. aurita Busk. = Lytocarpus phoeniceus Busk. Billard (2). — Pi.

pinnata Lamk. Syn. Pl. elegantula G. O. Sars. Jäderheolm (1). — Pi.

pinnata (L.) Bedot (p. 352). Broch (1). — Pl. pinnatifrons (Heller).

Bedot (p. 353). — Pl. ramosa Busk. Bedot (p. 353). — Pl. ramosa

Busk = Aglaophenia divaricata (Busk). Billard (2). — Pl. ramulifera

Allm. Bedot (p. 353). — Pl. scalica Lamk. (ib. p. 353). Billard (4). —

Pi. sargassi n. sp. Vanhöffen. — Pl. secundaria (Gmelin). Bedot (p.

354). — Pl. setacea Lamk. Jäderholm (1), (2). Stechow (p. 79). Ellis.

Ritchie (1). L. Bedot (p. 354). — Pl. s. var. gaimardi Billard. Billard (5).

Syn. Pl. grimardi Lamouroux. Bedot (p. 355). — Pl. similis Hincks.

Bedot (p. 355). Jäderholm (1). — Pl. sulcata Lamk. Bedot (p. 355)—.

Pl. variabilis Bonnevie. Broch (1).

Podocoryne aculeata (Wagner). Bedot (p. 355). — P. areolata Hincks. Mayer

(p- 140). Alder. Bedot (p. 356). — P. anechinota Ritchie. Mayer (p.

492). — P. carnea Sars. Bedot (p. 356). Mayer (p. 136). Jäderholm

(1). Kühn. — P. benhami Phorkely. Mayer (p. 142). — P. dubia

Mayer (ib. p. 141). — P. fulgurans (ib. p. 139). — P. gracilis (ib. p.

141). — P. humilis (ib. p. 142). — P. minuta (ib. p. 140). — P. minoi

106 Hydromedusae für 1910.

(Aleoea). Stechow (p. 17). — P. octostyla (ib. p. 140). — P. polystyla

(ib. p. 140). — P. proboscidea Hincks. Bedot (p. 358). — P. tenuis. °

Mayer (p. 141).

Polycanna fungia Hkl. Mayer (p. 327).

Polyarchis karafutoensis n. sp. Kishinouye. P. minuta Murbach et

Shearer. Mayer (p. 219). — P. penicillata A. Agass. (ib. p. 218).

furcata (Allm.) Billard (4). — P. unifurcata (Allm.) (ib.)

Proboscidactyla flaviculata Brandt. Mayer (p. 189). — Pr. f.(?) var. stolo-

nifera Maas. Maas (2). Pr. ‚„minima‘‘ Browne. Mayer (p. 192). —

Pr. „occidentalis‘‘ Browne (ib. p. 193). — Pr. ornata Browne (ib. p.

189). — Pr. o. var. gemmijfera (ib. p. 192). — Pr. o. var. stolonifera

Bigelow (ib. p. 191).

Protohydra leuckartii Greef. Bedot (p. 358).

Protaria beroe. Mayer (p. 106). — Pr. borealis (ib. p. 106). — Pr. jormosa

(ib. p. 107).

Pseudoclytia gardineri Browne (ib. p. 279). — Ps. pentata Mayer (ib. p. 278).

Ptilocodiidae fam. nov. Coward.

Ptilocodium repens n. g. n. Sp. (ib.)

Pteronema darwinii Hkl. Mayer (p. 92).

Ptychogena ( ?) antarctica Browne (ib. p. 217). — Pt. californica n.sp. Torrey.

— Pi. erythrogopon Bigelow. Mayer (p. 217). — Pt. lactea Agass. et

May. (ib. p. 215). — Pt. longicona Maas (ib. p. 217).

Ptychogastria antarctica Browne et Maas (ib. p. 375). Maas (1). — Pt.

asteroides Browne-Maas. Mayer (p. 379). — Pt. polaris Allm. (ib. p. 372).

Rathkea blumenbachiü Brandt (ib. p. 176). — R. blondina = Lizzia blondina

Forbes (ib. p. 176). — R. elegans = Lizzia elegans Mayer (ib. p. 176). —

R. fasciculata = Melicerta Jasciculata Peron et Lesueur = Lizzia

köllineri Gegenb. (ib. p. 176). — R. formosissima = Lizzia formosissima

Browne (ib. p. 176). — R. octonemalis Maas (ib. p. 176). — R. octo-

punctata = Oytaeis octopunctata Bars = Lizzia octopunctata Korbes

(ib. p. 176). — R. o. var. grata = Lizzia grata A. Agass. (ib.)

Reticularia Thompson. Bedot (p. 358).

Rhizocline Allm. (ib. p. 358).

Rhizogeton fusiformis, L. Agass. (ib. p. 358). — Rh. nudum n. sp. Broch (1).

Ritchie (5).

Rhopalonema clavigerum = Marmonema clavigerum Hkl. Mayer (p. 377). —

Rh. coeruleum Hkl. = R. funerarum Vanhöff. = ? Dionea funeraria

Quay et Gaim. Mayer (p. 377). — Rh. polydactylum Hkl. = Homaeo-

nema elongatum Maas (ib. p. 377). — Rh. striatum Maas (ib. p. 377). —

Rh. velatum Gegenb. (ib. p. 377). Maas (2).

Salacia tetracythara Lamk. = Thuiaria fenestrata. Billard (3).

Saphenia bitentaculata Eschsch. Mayer (p. 294). — S$. gracilis = Plancia

gracilis Forbes et Goods. = Goodsirea mirabilis Wrigth. — S. mi-

rabilis Hkl. Mayer (p. 294). — S. dinema Eschsch. = Geryonia dinema

Peron et Lesueur (ib. p. 294).

Sarsia angulata Mayer (ib. p. 51). — S. brachygaster Grönberg (ib. p. 51). —

5. coccometra Bigelow (ib. p. 488). — S. conica = Codonium conicum

Systematik. 107

HkI. (ib. p. 49). — S. eximia = Syncoryne eximia Hincks (ib. p. 49). —

S. flammea Hartlb. (ib. p. 50). — S. gemmifera Forb. = S. siphono-

phora HKI. (ib. p. 50). — S. gracilis Browne (ib. p. 51). — S. hargüti =

S. producta Hargitt (ib. p. 50). — S. japonica n. sp. Maas (2). S.

mirabilis L. Agass. Mayer (p. 49). — S. minima v. Lend. (ib. p. 51). —

S. princeps Hul. (ib. p. 51). — $. prolifera Forbes = S. codonophora

HkI. (ib. p. 50). — $. (stauridosarsia) producta = Stauridia producta

Wright (Hartlb.) (ib. p. 50). — $. resplendens Bigelow = S. eximia (?)

(ib. p. 487). — S. rosaria — Coryne rosaria A. Agass. (ib. p. 487).

Kischinouye. — S. radiata Lend. Mayer (p. 49). — S. tubulosa Lesson

(ib. p. 49).

Schizocladium Allm. Bedot (p. 359).

Schizotricha antarctia Jäderh. Vanhöffen. — Sch. bifurca Hartib. (ib.)

— Sch. frutescens (Ellis et Solander). Syn.: Sertularia frutescens Ellis

et Sol. Jäderholm (1). — Sch. gracillima Nutting (ib.) Broch (1). —

Sch. groenlandica. Syn.: Plumularia groenlandica Levinsen. Jäder-

holm (1). — Sch. turqueti Billard. Vanhöffen. Sch. variabilis (Bonnevie).

Jäderholm (1).

Scolionema n. g. ‚Olindiidae with two kinds of tentacles: those of one

kind are providet with a sucker at some distance from the distal end

and project more oi less horizontally, while those of the other kind

are weakly developed and without sucker, and curve downwards and

inwards. Medusa-buds are produced from the middle-part of the four

perradial canals. Closely allied to the Genus Gonionema.‘‘ Kishinouye

(p. 30). Sc. gemmifera n. sp. (ib.)

Scrippsia n. g. ‚‚Polyorchida with gastrie peduncle, lateral branches of

the radial canals in the form of numerous long tubular gonads from

the peduncular portion of each radial canal; tentacles numerous in

several cyceles“. Torrey (p. 14). — Sec. pacifica n. sp. (ib.)

Selaginopsis arctica Bonnevie. Jäderholm (1). — S. decemserialis Mereschk.

(ib.). — S. dichotoma (Allm.). Billard (4). — S. hartlaubi Nutting.

Jäderholm (1). S. juncea n. sp. Vanhöffen. — S. obsoleta Kirchen-

pauer. Jäderholm (1). — S. pinaster Nutting (ib.) S. pachyclada Jäderh.

Vanhöffen. — S. mirabilis Normon. Jäderholm (1).

Sertularella arbuscula (Lamk.). Billard (4), (5). Syn.: Sertularia arbuscula

Lamk. Bedot (p. 359). — S. articulata Allm. Vanhöffen. Billard (4). —

S. allmani Hartlb. Jäderholm (2). S. biformis Jäderh. Vanhöffen.

— S. capillaris Allm. = S. Johnstoni Gray. Billard (1). — S. cuneata

Allm. et S.crassipes Allm. —= S. arborea Kirchenp. Billard (1). — S.

crassicaulis (Haller). Bedot (p. 359). — S. distans Lamk. Bedot (p.

359). Billard (5). — S. divaricata (Busk.) Bedot (p. 359). — $. fla-

bellum (Allm.). Billard (4). — S. fusiformis Hincks. Bedot (p. 360).

Ritchie (1). S. gigantea Mereschk. Vanhöffen. Jäderholm (1). —

S. glacialis Jäderh. Vanhöffen. — S. gaudichaudi (Lamk.). Bedot

(p. 360). Billard (4), (5). — S. gayi Lamk. Bedot (p. 36).) Broch (1).

Jäderholm (1). Ritchie (1). Billard (5). — S.g. var. allmani. Billard (4).

— 5. greeni (Murray). Bedot (p. 360). — S. interrupta Hartlaub. Jäder-

holm (2). — S. johnstoni (Gray.). Bedot (p. 361). Billard (4). — S.

108 Hydromedusae für 4910.

milneana (d’Orb.). Bedot (p. 361). — S. parvula (Allm.). Billard (4). —

S. picta (Meyen). Bedot (p. 361). — S. pinnata Clark. Broch (1). —

S. polyzonias L. Bedot (p. 361). Jäderholm (1) (2). — S. p. forma

typica L. Broch (1). S. p. forma gigantea L. Broch (1). — S. p.

forma cornuta nov. Ritchie (3). — S. pellucida Jäderh. Jäderholm (1). —

S. quadridens (Bale). Billard (4). — S. rugosa (L.). Bedot (p. 362).

Gray. Jäderholm (1). Broch (1). — S. subdichotoma Kirchenp. Jäder-

holm (2). Vanhöffen. S. tamarisca Saemundson. Syn.: Diphasia

tasmanica (L.) Ag. Jäderholm (1). Broch (1). — S. tenella (Alder).

Bedot (p. 363). Hincks. Jäderholm (1). Broch (1). — S. tricuspidata

Alder. Bedot (p. 364). Broch (1). Jäderholm (1). — S. tridentata Lamk.

Billard (5), (4). Syn., Sertularia tridentata Lamk. Bedot (p. 364). —

S. turgida (Trask.). Bedot (p. 364). — S. unilateralis Lamk. Bedot (p.

364). Billard (4), (5).

Sertularia abietina L. Bedot (p. 365). — S. actoni Philippi (ib. p. 366). —

S. anguina Trask (ib. p. 366). — S. arbuscula Lamk. = Sertularella

arborea Kirchp. Billard (3)., „voir: Sertularella arbuscula‘“‘. Bedot

(p- 366). — S. argentea Ellis et Solander. Broch (1). — S. albimaris

Mereschk. Broch (1). — S. australis (Kirchenp.). Bedot (p. 366). —

S. amplectens Allm. = Desmoscyphus gracilis = Sertularia versluysi

Nutting. Billard (1). S. bispinosa Gray. Billard (1), (4). Bedot (p. 367). —

S. bicuspidata Lamk. Bedot (p. 366). Billard (1). S. cedrina L.

(Selaginopsis cedrina Kirchenpauer). Bedot (p. 367). — S. challengeri

Nutting. Billard (4). — S. crinis Allm. Billard (1). — S. cornieina

Me Crody. Ritchie (1). S. crinoidea Allm. Billard (1). — S. conferta

(Kirchenp.). Bedot (p. 367). — S. confervaeformis Esper (ib. p. 367). —

S. cornicina (Me Crady) (ib. p. 367). — S. cupressina L. Broch (1). —

S. distans Lamk. Billard (5). Bedot (p. 368) = Sertularella laxa Allm. =

S. mediterranea Hart!b. Billard (3). — S. dentata Lamk. Bedot (p. 368).

— Thuiaria eupressina. Billard (3). — S. digitalis Busk. Bedot (p. 368).

— S. disticha Bose. Syn. Dynamena disticha Lamk. Bedot (p. 368). —

S. divaricata Lamk. (ib.) — $. elongata Lamk. Bedot (p. 369)). Billard

(1), (5), (4). — S. evansi Ellis et Sol. Syn. Dynamena evansii Lamk.

Bedot (p. 369). — $. fabricii Levinsen. Broch (1). — S. geminata Bale.

Billard (4). — S. fülicula Ellis et Solander. Bedot (p. 369). — S. fusca

Johnston (ib. p. 370). — S. gracilis Hassal (ib. p. 371). — $. grosse-

dentata (Kirchenpauer) (ib.p. 371). — S. heterodonta n. sp. Ritchie (1).

S. imbricata Busk. Bedot (p. 371). — $. inflata Schydlowsky. Broch

(1). Vanhöffen. — S. lamourouxi M. Edw. Syn. Dynamena distans

Lamk. Syn. Seriularia gracilis Hassal. Bedot (p. 371). — S. mayeri

Nutting. Ritehie (1). Vanhöffen. — S. minima D. W. Thomps. Jäder-

holm (2). Billard (4), (5). — S. mirabilis Verrill. Broch (1). S. mutu-

lata Busk. Bedot (p. 372). — S. obsoleta Lepechin. [Seloginopsis ob-

soleta Kirchenp.] Bedot (p. 372). — S. operculata L. Jäderholm (1), (2).

Ritehie (1). Billard (4), (5). Syn. Dynamena operculata Lamk. Syn.

Sertularia serra Lamk. Bedot (p. 373). — S. orthogonia Busk. Bedot

(p. 374). — S. patula Busk. (ib.) — S. penna (Kirchenp.) (ib.) — 8.

pinnata Pallas. ‚Voir: Diphasia pinnata“ (ib. p. 374). — S. plumosa

Systematik. 109

Clark. Broch (1). — S. pumila L. Jäderholm (1). Broch (1). Syn.

Dynamena pumila Lamk. Bedot (p. 375). — SS. pulchella (d’Orb.)

Dynamena pulchella d’Orb. (ib. p. 374). — S. purpurea L. (Selaginopsis

purpureus Kirchenp.) (ib. p. 376). — S. rigida Lamk. Billard (3). —

S. rathbuni Nutting. Ritchie (1). — S. robusta Clark. Broch (1).

S. serra Lamk. Bedot (p. 376). — S. sertularioides (Lamk.). Syn.:

Dynamena sertularioides Lamk. Syn. Dwynamena tubiformis Lamk.

Syn. Sertularia tubiformis M. Edw. (ib. p. 377). — S. splendens Lamk.

„voir: Thuiaria cupressina‘“‘. Bedot (p. 377). Billard (3). S. scandens

Lamk. = S. elongata Lamk. Billard (3). — S. subcarinata Busk. Be-

dot (p. 377). — S. tamarisca L. „voir: Diphasia tamarisca“. Bedot

(p. 377). — S. tenera G. O. Sars. Broch (1). — S. tridentata Lamk. =

Sertularella tridentata. Bedot (p. 377). = Sertularella lata (Bale),

nom. nov. Sertularella tridentata (Lamk.) Billard (3). — S. tridentata

Busk. Bedot (p. 378). — S. trigonostoma Busk. (ib. p. 378). Billard (4). —

S. turbinata (Lamk.). Billard (4), (5). Syn. Dynambra turbinata Lamk.

Bedot (p. 378). — S. tolli Jäderh. Broch (1). S. unilateralis Allm.

Billard (1). — S. unguwiculata Busk. Bedot (p. 379).

Sibogita typa. Mayer. — S. geometrica Maas (ib. p. 186). — S. simulans

Bigelow (ib. 187).

Stlicularia rosea Meyen. Bedot (p. 379). Vanhöffen.

Slabberia brownei. Mayer (p. 489). — Sl. catenata Forbes et Goods. (ib. p. 77).

— SI. halterata Forbes (ib. p. 75). — SI. ophiogaster (ib. p. 79). — SI.

pyramis (ib. p. 79). — Sl. strangulata HKkl. (ib. p. 76). — SI. str. var.

fragilis (ib. p. 77).

Sminthea euryaster Gegenb. (ib. p. 383).

Solanderia sp. Stechow (p. 41). — 8. (Dehitella) atrorubeus Gray. (ib. p. 41). —

S. crosslandi Thornely (ib. p. 41). — S. fusca Gray (ib. p. 41). — S.

gracilis Duch. et Mich. Bedot (p. 380). Stechow (p. 41). — S. laby-

rinthtica Hyatt. Stechow (p. 41). — S. leuckarti Marschall (ib. p. 41). —

S. minima Hickson (ib.). — S. rugosa Marshall (ib.). — S. spinosa

Carter (ib.).

Solmaria rhodolma Brandt. Maas (2).

Solmaris corona — Aegineta corona Keferst. et Ehl. Mayer (p. 432). — 8.

flavescens = Aegineta flavescens Gegenb. (ib. p. 432). — S. forskaliüi =

Polycolpa forskalii Hkl. (ib. p. 432). — S. lenticula Hkl. (ib. p. 432). —

S. leucostyla (ib. p. 432). — S. multilobata Maas (ib. 432). — S. solmaris =

Aegineta solmaris Gegenb. (ib. p. 432).

Solmissus albescens Hkl. (ib. p. 482). — S$. bleckii Hkl. = $. ineisa ? (ib.

p-. 482). — S. ephesias Hkl. (ib. p. 482). — S. marschalii Agass. et

Mayer (ib. p. 484).

Solmundella bitentaculata Quay et Gaim. Maas (2). Mayer (p. 455). — $.b.

var. mediterranea (ib. p. 456). — S. mediterranea J. Müller. Maas (1).

Spadix Gosse = Myriothela Sars. Bedot (p. 380).

Spirocodon saltatrix Hkl. Mayer (p. 220). Maas (2).

Stauroglaura tetragonima Hkl. Mayer (p. 406).

Stauridiosarsia nov. subgen. ‚„Medusa similar to Sarsia, but the hydroid is

Stauridia, not Syncoryne‘“‘. Mayer (p. 64).

110 Hydromedusae für 1910.

Stauridium productum Wright. Bedot (p. 380). Broch (1).

Staurodiscus heterosceles Hkl. Mayer (p. 214). — S. tetrastaurus Hkl. (ib.

p. 214).

Staurophora discoidea n. sp. Kishinouye. — St. falelandica Browne. Mayer

(p- 293). — St. mertensii Brandt (ib. p. 291).

Staurotheca antarctia Hartlb. Vanhöffen. — S. dichotoma Allm. Billard (4).

Steenstrupia aurata = Euphysa aurata Forbes = E. durata + E. medi-

terranea Hkl. = ( ?) E. virgulata A. Agass. Mayer (p. 30). — St. australis

Leud. (ib. p. 30). — St. bigelowi Maas (ib. p. 30). — St. rubra Forbes =

S. flaveola Forbes = S. galanthus Hkl. = ? S. gracilis Brooks = (?)

S. cranoides Hkl. = 8. linucata Leuckart (ib. p. 30). — St. tetrabrochia =

Euphysa tetrabrochia H. Bigelow (ib. p. 30).

Stegopoma fastigiatum Alder. Broch (1). Jäderholm (1). — St. operculata

Hartlb. Vanhöffen. — St. plöcatile Levinsen. Jäderholm (1). Broch (1).

Stomotoca apicata. Rittenhouse. — St. atra Agass. Mayer (p. 111). — St.

divisa Maas (ib. p. 114, 490). — St. dinema L. Agass. (ib. p. 109). —

St. octaedra (ib. p. 111). — St. pterophylia Hkl. (ib. p. 113). — St. ru-

gosa Mayer (ib. p. 112).

Stomobrachium lenticulare Brandt (ib. p. 322). — St. (?) stauroglyphum

(ib. p. 323). — St. tentaculatum L. Agass. (ib. p. 322).

Stylactis arctica Jäderh. Broch (1). — St. arge Clarke. Mayer (p. 151). —

St. fucicola (Sars.). Bedot (p. 381). — St. halecii Hicks. et Granely.

Vanhöffen. — St. hooperi Sigerfoos. Mayer (p. 150). — St. inermis

Allm. Bedot (p. 381). — St. sarsi (Sars) (ib. p. 381).

Syncoryne decipiens Duj. (ib. p. 381). — S. listeri v. Bened. (ib. p. 382). —

S.loveni Sars. Bedot (p. 382). Jäderholm (1). — S. mirabilis (L. Agass.)

Syn. Sarsia mirabilis L. Agass. Bedot (p. 385). — S. pulchella (Allm.)

Syn. Codonium pulchellum (Forbes) (ib. p. 386). Kühn. — S. retzculata

(A. Agass.). Bedot (p. 386). — S. sarsi Loven (ib. p. 386). Jäder-

holm (1). Kühn.

Syndietyon A. Agass. Syncoryne. Bedot (p. 387).

S’ynthecium alternaus Allm. Billard (4). — S. campylocarpum Allm. Billard

(4). — S. elegans Allm. Bedot (p. 387). Billard (4). — S. orthogonium

(Busk.). Billard (4). S. sertularioides Lamk. Billard (5).

Tiara rotunda (Dianea rotunda Quoy et Gaim.) Hkl. Maas (3). — T. papua

Lerson. Maas (2).

Tiaropsis macleayi Lend. Mayer (p. 259). — T. mediterranea Metschn.

(ib. p 260). — T. multicirata L. Agass. (ib. p. 259). — T. rosea Agass.

et Mayer (ib. p. 260). — T. davisii Browne (ib. p. 259). — T. diademata

L. Agass. (ib. p. 258).

Tiaropsidium n. g. „with 8 open statocysts, each with on ocellus et its

base; with two kinds of tentacles; without marginal ceirri and gastrie

peduncle.‘‘ Torrey (p. 18). — T. kelsey n. sp. (ib.).

Tima bairdii Forbes. Mayer (p. 315). — T. flavilabris Eschsch. (ib.) —

T. formosa L. Agass. (ib.) — T. lucullana = Dianea lucullana Delle

Chiage (ib. p. 315). — T. teuscheri Hkl. (ib. p. 315).

Timoides agassizii Bigelow (ib. p. 212).

Tetrapoma quadridentatum Levinsen. Jäderholm (1).

Systematik. 111

Tetrorchis erythrogaster Bigelow. Mayer (p. 383).

Thalia sec. L. Agass. Bedot (p. 387).

Thamnitis tetrella Hkl. Mayer (p. 152).

Thamnocnidia L. Agass. („voir: Gen. Parypha‘‘). Bedot (p. 387).

Thamnastylus dinema Hkl. Mayer (p. 151).

Thaumantias cellularia Hkl. (ib. p. 199). — Th. eschscholtzii Hkl. (ib. p. 198).

— Th. forbesii Hkl. (ib. p. 199). — Th. inconspicua Forbes. Jäder-

holm (1). — Th. lacustris. Mayer (p. 199). — Th. maeotica Ostroumoff

(ib. p. 200). — Th. rubrum (ib. p. 199).

T'hecocarpus angulosus Lamk. Billard (5), (4). Th. brevirostris Busk.

Billard (4). — Th. flexuosus Lamk. Billard (5). — Th. myriophyllum

Nutling. Jäderholm (1). Broch (1). — Th. niger Nutting. Stechow

(Paz):

Theuaria sec. Irvine = T'huiaria. Bedot (p. 388).

Thuiaria alternitheca Levinsen. Broch (1). Jäderholm (1). Th. argentea

{L.). Bedot (p. 388). Jäderholm (1). — Th. arctica Bonnevie. Broch (1).

Syn. Sertularia arctica Allm. forma sibirica. Jäderholm (1). — Tr.

a. forma spüzbergiensis (ib.). — Th. articulata Pallas. Bedot (p. 389).

Billard (4). Ritchie (1). Th. birulae (Schydb.). Syn. sSertularia

albimaris Meresschn. Jäderholm (1). — TR. carica Levinsen. Jäderholm

{1). Broch (1). — Th. crisioides Lamk. Bedot (p. 390). Billard (5).

Th.cupressina L. Billard (5). Jäderholm (1). Syn. Sertularia cupressina

L., Syn. Sertularia dentata Lamk. Syn. Sertularia splendens Lamk.

Bedot (p. 390). — Th. cupressoides (Lepechin). Syn. Sertularia cup-

ressoides Lepechin (ib. p. 391). — Th. cylindrica Clark. Broch (1). —

Th. dolichocarpa Allm. = T. zelandica Gray. Billard (1). — TA. de-

cemserialis Mereschm. Broch (1). — Th. fabricii Levinsen. Bedot

(p. 391). Jäderholm (1). — Th. fenestrata Bale. (ib. p. 391) = Th.

tetracythera.. — Th. fusca Johnston. Syn. sSertularia fusca John.

Jäderholm (1). — Th. flexilis Allm. Bedot (p. 392). — Th. hippis-

leyana Allm. = Th. zelandica. Billard (1). — Th. hippuris (?) Allm.

Jäderholm (1). — Th. hjorti Broch (ib.) — Th. immersa Nutting (ib.) —

Th. inflata (Schidlowsky) (ib.) — Th. kolaensis Jäderh. (ib.) — Th.

latiuscula (Strimpson). Bedot (p. 392). — Th. laxa Allm. Jäderholm (1).

Bedot (p. 392). Broch (1). — TA. lichenastrum (Pallas).. Syn. sSer-

tularia lichenastrum Pallas. Bedot (p. 392). — Th. lonchitis Ellis et

Solander. Broch (1). Jäderholm (1). — Th. obsoleta Lepechin. Broch (1).

— Th. pinaster Lepechin (ib.)— Th. plumosa Clarke. Jäderholm (1). —

Th. persocialis Allm. = T. articulata Pollas. Billard (1). Th. robusta

Clarke. Jäderholm (1). — Th. salicornia Allm. Bedot (p. 391). Jäder-

holm (1). Th. tetracythara (Lamk.). Syn. Thuiaria fenestrata Bale.

Bedot (p. 392). Billard (1). — Ph. tenera (G. O. Sars) Bonnevie. Jäder-

holm (1). — Th. Thompsoni (Schydlowsky). Syn. sSertularia albi-

maris Thompson. Jäderholm (1). Th. thuja L. Bedot (p. 393). Broch

(1). Jäderholm (1). — Th. tolli Jäd. Jäderholm (1). — Th. vegae Thomp-

son. Jäderholm (1). — Th. zelandica Gray. Bedot (p. 393). Billard (4).

Thyroscyphus simplex (Lamk.). Bedot (p. 393). Billard (5). Th. torresiv

(Busk.). Billard (4). — Th. tridentatus Bale. Ritchie (1).

112 Hydromedusae für 1910.

Toichopoma obligquum Levinsen. Jäderholm (1). Broch (1).

Toxorchis arcuatus Hkl. Mayer (p. 228). — T. kellneri n. sp. (ib. p. 229). —

T. thalassina Maas (ib. p. 226).

Trichydra pudica Wright. Bedot (p. 394).

Trichorhiza brunnei Russel. Mayer (p. 29).

Trochopytis L. Agass. Bedot (p. 394).

Tubiclava fruticosa Allm. (ib. p. 394). — T. lacernae Allm. (ib. p. 394).

Tubularia sp. Stechow (p. 45). T. asymmetrica. Kühn. — T. attenuata

Allm. Bedot (p. 395). — T. bellis (ib. p. 395). — T. coronata Abild-

gaard (ib. p. 395). — T. couthouyi L. Agass. (ib. p. 395). — T. cingulata

n. sp. Vanhöffen. — T. christinae (Hartlb.) Broch (1). — T. cornu-

copia Bonnevie (ib.) — T.crocea A. Agass. Vanhöffen. Bedot (p. 396).

Moore (1), (2). — T. cristata Me Crady. Bedot (p. 396). — T. dumortieri

v. Bened. (ib. p. 396). — T. humilis Allm. Broch (1). Bedot (p. 396). —

T. hodgsoni Hiekson et Granely. Vanhöffen. — T. indivisa L. Bedot

(p. 397). Vanhöffen. Borowsky (nov. var.). Jäderholm (1). Broch (1).

— T. insignis Allm. Bedot (p. 399). — T. larynz Ellis et Solander.

Jäderholm (1). Broch (1). — Syn. DTubularia coronata Abildgaard

Bedot (p. 399). — T. longstaffi Hickson et Gravely. Vanhöffen. T.

mesembryanthemum Allm. Bedot (p. 401). Toppe. T. microcephala

(A. Agass.). Bedot (p. 401). — T. pacifica Allm. (ib. p. 402). — T.

polycarpa Allm. (ib. p. 402). — T. pulcher (Sämundson). Broch (1).

T.ralphi Bale Vanhöffen. — T. regalis Boech. Bedot(p. 402). Broch (1).

— T. sagomina n. sp. Stechow (p. 43). — T. simplex Alder. Broch (1).

Bedot (p. 402). — T. spectabilis (L. Agass.). Bedot (p. 402). — T.

striata n. sp. Vanhöffen. — T. tenella (L. Agass.). Bedot (p. 403).

„Turris‘‘ — Clavula. Mayer (p. 120, 491). — T. brevicornis Murbach u.

Shearer (ib. p. 122). — T. campanula = Catablema campanula Hkl.

(ib. p. 121). — T. conifera = Tiara conifera Hkl. (ib. p. 121). — T.

coeca Hartlb. (ib. p. 121). — T. digitalis Forbes (ib. p. 122). — T.

eurystoma — Catablema eurystoma Hkl. (ib. p. 122). — T. neglecta

Lesson. Bedot (p. 403). — T. pileata = Tiara pileata L. Agass. Mayer

(p. 122). — T. pelagica Ag. et Mayer. Mayer (p. 121). — T. prismatica =

Tiara prismatica Maas (ib. p. 121). — T. papua Lesson (ib. p. 121). —

T. reticulata Hkl. (ib. p. 121). — T. rotunda = Tiara rotunda Hkl.

(ib. p. 121). — T. superba. Mayer (ib. p. 121). — T. vesicaria A. Agass.

(ib. p. 121).

Turritopsis (?) lata v. Lend. (ib. p. 146). — T. nutricula Me. Crady (ib. p.

143). — T. n. var. pacifica. Maas (2), nov. var.

Urashimea n. g. „Cladonemidae with four radial canals, four amentiform

tentscles, and meridional bands of nematocysts on exumbrella. There

are four, interradial, hollow spaces, wich spaces I propose to call the

interumbrellar spaces. They are something quith different from the

„Scheitelhöhle‘‘ or the ‚‚Nesselschläuche“. Kishinouye (p. 27). — U.

globossa n. sp. (ib.) — U. macrotentaculata n. sp. (ib.)

Vallentinia falklandica Browne. Mayer (p. 352). Maas (1).

Vortielava humilis Alder. Bedot (p. 404). — V. proteus Alder (ib.)

Systematik. 113

Willsia brooksii n. sp. Mayer (p. 194). — W. mutabilis Browne (ib. p. 194). —

W. pacifica n. sp. Maas (2). — W. stellata Forbes. Mayer (p. 113). —

W. (?) varians (ib. p. 194).

Wrightia arenosa Alder. Bedot (p. 405).

Zanclea sp. Hartlaub. Maas (2). Bedot (p. 405). — Z. cladophora — Gemmaria

cladophora A. Agass. Mayer (p. 86). — Z. costata Gegenb. (ib. p. 87). —

Z. implexa Allm. (ib. p. 89). — Z. gemosa Me Crady (ib. p. 88,p. 489). —

Z. nitida (ib. p. 91).

Zancleopsis dichotoma Hartlb. (ib. p. 91).

Zygocanna purpurea (ib. p. 338). — Z. pleuronata Hkl. (ib. p. 338).

Zygocannula diplocoma Hkl. (ib.).

Zygodactyla (?) crassa A. Agass. (ib. p. 336). — Z. vitrina (Gosse). Syn.

Polycanna vitrina Hkl. Bedot (p. 406). — Z. groenlandica L. Agass.

Mayer (p. 335).

Zygophylax grandis n. sp. Vanhöffen.

Scyphomedusae für 1910

nebst Nachträgen zum Bericht für 1909.

Von

Dr. Alexander Schepotieff, St. Petersburg.

Publikationen und Referate.

(F= siehe auch unter Faunistik; S = siehe auch unter Systematik.)

Bigelow, R. A comparison of the sense-organs in Medusae of

the family Pelagidae. In: J. Exp. Z. Philad., IX, p. 751—785,

38 Figg. — Vergleichende Untersuchungen über den Bau der

Sinnesorgane bei Chrysaora, Pelagia und Dactylometra. Über

Otholithen und Nervengewebe. Über die Entwicklung der Sinnes-

organe.

Hargitt, Ch. et 6. (1). Studies in the Development of Scypho-

medusae. In: Science (2), XXXI, p. 462—463..— (Vorl. Bericht.)

— (2). Ibid. In: J. Morph. Philad., XXXI, p. 217—262,

48 Figg. — Biologisches über Eiablage der Medusen. Furchung

und erste Entwicklungsstadien. Über Scyphistoma.

Herouard, E. (1). Sur les cycles evolutifs d’un Scyphistome.

In: C. R. Acad. Paris, CXLVIII, p. 320, 1909. — Taeniolhydra

— eine Hungerform von einer Acraspeda.

— (2). Sur les enteroides des Acraspede. Ibid., p. 1225

—1227, 1909.

Kemna, A. Morphologie des Coelenteres. In: Ann. Soc. Z.

Malac. Belge, XLIIL, p. 2293—337, XLIV, p. 143—204. — Phylo-

genetisches.

Archiv für Naturgeschichte 8

1911. V1.2.

114 Scyphomedusae für 1910.

Kishinouye, K. Some Medusae of japanese Waters. In: Jl.

Coll. Se. Jap., XXVII, Art. 9, p. 1-35, tab. I-V. — F. $.

Maas, 0. Japanische Medusen. In: Abh. Akad. München,

1. Suppl., VIII. Abh., p. 1-52, tab. I-III. — F. S.

Mayer, A. G. Medusae of the World. III. p. 498—735,

tab. LVI—-LXXVI, Figg. 3383—428. — F. 8.

Morse, M. Pulsation in Scyphomedusae deprived of their

marginal organs. In: Science (2), XXXI, p. 544545. — Notiz

über Medusenpulsation.

Retzius, 6. (1). Über den Bau des Eies der Echinodermen im

unbefruchteten und befruchteten Zustand. In: Biol. Unt. Retz.

(2), XV, p. 1—54, tab. I—XI1I. — Bemerkungen über Eibau von

Aurelia, Cyanea und Prostheceraeus.

— (3). Weitere Beiträge zur Kenntnis der Spermien mit

besonderer Berücksichtigung der Kernsubstanzen. Ibid., p. 63

—82, tab. XVI—-XX. — Bemerkungen über Spermatozoen von

Cyanea und Aurelia.

Schaxel, J. Die Eibildung der Meduse Pelagia noctiluca Per.

et Less. Untersuchungen über die morphologischen Bezichungen

der Kernsubstanzen untereinander und zum Cytoplasma. In:

Festschr. R. Hertw., I, p. 167—212, 2 Figg., tab. <—XII. —

Sehr ausführliche histologische Untersuchung über Oogenese bei

Pelagia mit besonderer Berücksichtigung der Kernveränderungen.

Über den feineren Bau der Ovarien. Das Ei der Vermehrungs-

und Wachstumsphase. Bildung des Eies und Dotters. Über

Oogonien und Oocyten, Keimbläschen und Ooplasma. Feinerer

Bau des reifen Eies. Allgemeines über Chromatinemission in Ge-

schlechts- und anderen Zellen. Theoretisches über den extra-

nucleären Chromatin. Allgemeines über die Eibildung bei Cnidarien

und über die Beziehungen von Kern und Plasma bei Metazoen.

Nesselzellen der Cnidarien. In: Zool. Jahrb., Abt. Anat., XXIX,

p. 191— 270, tab. XIII—XVI. — Über Nesselkapseln bei Pelagia.

Wietrzykowski, W. Sur le d&veloppement des Lucernarides.

(Note preliminaire.) In: Arch. Zool. Exp., (5), V. Notes, p. 10

—27, Figg. 1-12. — Notiz über Befruchtung, Knospen und

Larven von Haliclystus.

Übersicht nach dem Stoff.

)

M:rphologie, Anatcmie, Histelogie.

Sinnesorgane: Über den feineren Bau der Sinnesorgane bei Chrysaora,

Pelagia und Dactylometra. Bigelow. — Nesselzellen: Toppe. — Geschlechts-

organe: Feiner Bau der Eier. Retzius (1); der Spermatozoen. Retzius (2).

— Über Eibildung bei Pelagia noctiluca. Schaxel.

Übersicht nach dem Stoff. Faunistik. 115

Ontogenie, Phylogenie.

Über Eibildung bei Pelagia. Schaxel. — Entwickelung der Lucer-

narien. Wietrzykowski. — Über die ersten Entwicklungsstadien der

Medusen. Hargitt, Ch. et @. — Phylogenetisches. Kemna.

Biologie.

Biologisches über Eiablage der Medusen. Hargitt, Ch. et 6.

Bewegungen der Medusen. Morse.

Über

Faunistik.

Arktik.

Spitzbergen: Halielystus octoradiatus, Lucernaria haeckelii, L. in-

fundibulum, L. kükenthali, L. walteri, Periphylla hyacinthina. Mayer.—

Grönland: Aurelia flavidula, Halimocyathus lagena, Halielystus octoradiatus,

Lucernaria quadricornis, Periphylla hyacinthina, Stenoscyphus ( ?) hexa-

radiatus (ib... — Labrador: Haliclystus auricula, Lucernaria pyrami-

dalis (ib.).

Atlantik.

Nerd-Atlantik.

Atolla bairdii, A. wyvillei forma verrilli. Mayer. A. chuni. Maas.

Lucernaria bathyphila, Nauphantopsis diomedeae, Nausithoe punctata,

Lucernaria batyphila, Pelagia perla. Mayer.

NORD-ATLANTIK WEST. Aurellia aurita forma ‚‚marginalis‘‘,

Cyanea capillata var. versicolor, C. c. var. arctica, C. e. var. fulva, Chiropsal-

mus quadrumarius, Dactylometra quinqueecirrha, Halielystus aurieula, H.

salpinx, Halimocynthus platypus, H. lagena, Lucernaria quadricornis,

Periphylla hyacinthina, Pelagia cyanella, Phacellophora ornata, Rhopilema

verrillii, Stomolophus meleagris, Tamoya haplonema. Mayer.

NORD-ATLANTIK OST. Norwegen: Cyanea capillata, Depastrum

cysthiforme, Lucernaria quadricornis. Mayer. — Großbritannien: Cata-

stylus pietonum, Depastrum cyathiforme, Halielystus octoradiatus, Lucer-

naria campanulata. (ib.) — Nordsee: Craterlophus tethys, Cyanea capillata,

C. c. var. lamarckina, Depastrum cyathiforme, Rhizostoma pulmo var.

oetopus. (ib.). — Skagerrak: Cyanea capillata var. lamarckii. (ib.) —

(Europäische Küste): Aurellia aurita, Catastylus togi, C. pietonum,

Cyanesa capillata, C. c. var. lamarckii, Halielystus auricula, H. octora-

diatus, Halimocyathus lagena, Lucernaria campanulata, Periphyllum

hyacinthina, Rhizostoma pulmo var. octopus. (ib.) — Mittelmeer:

Aurellia aurita, A. cruciata, Capria sturdzii, Charybdea marsupialis,

Chrysaora hysoscella, Cotylorhiza tuberculata, Drymonema dalmatina,

Lipkea ruspolina, Lucernaria campanulata, Nausithoe punctata, Pha-

cellophara sicula, Pelagia noctiluca, P. n. var. ‚neglecta‘“, Periphylla

hyacinthina forma dodecobostrycha, P. corona, Rhizostoma pulmo, R. p.

var. lutea. (ib.) — Adria: Cotylorhiza tubereulata, Chrysaora hysoscella,

Discomedusa lobata, Drymonema dalmatina, Halielystus salpinx, Lucer-

naria campanulata, Nausithoe phaeacum, N. punetata. (ib.) — Schwarzes

116 Seyphomedusae für 1910.

Meer: Lucernaria ecampanulata. (ib.) — Madeira-Ins.: Aurellia solida. (ib.)

—- Kanarische Ins.: Cotylorhiza tubereulata, Pelagia noctiluca. (ib.) —

Azoren-Ins.: Dactylometra quinqueecirra, Periphylla hyaeinthina. (ib.)

Trop. Atlantik.

Cnarybdea pyramis, Pelagia crassa, Periphylla hyaeinthina. (ib.)

TROP. ATLANTIK WEST. West-Indien: Aurelia flavidula, Cassiopea

frondosa, C. xamachana, Carybdea aurifera, C. xaymacana, C. alata var.

pyramis, Dactylometra lactea, Linuche unguiculata, Pelagis cyanella,

Stomolphus meleagris, Tamaya haplonema, Tripedallia eystophora. (ib.)

— Surinam: Stomolphus meleagris var. fritillaria. (ib.) — Brasilien: Dry-

monema gorgo, Chrysaora hysoscella var. blassevillei, Chiropsalmus quadru-

manus, Catastylus ceruciatus, Lychnorhiza lucerna, Pelagia phosphora,

Tamoya haplonema. (ib.)

TROP. ATLANTIK OST. Cap Verde-Ins.: Patera ( ?) cerebriformis.

(ib.) — Senegal. Catastylus togi. (ib.) — Sierra-Leone: Carybdea mur-

rayana. (ib.) — Fernando-Po-Ins.: Catastylus tripterus, Undosa undulata.

(ib.) — Guinea: Chirodropus gorilla, Pelagia phosphora, Periphylla hyaein-

thina forma dodeeabostrycha. (ib.) — St. Helena-Ins.: Chirodropus pal-

matus. (ib.)

Süd-Atlantik.

Atolla wywilli, Nausithoe rubra. (ib.)

SÜD-ATLANTIK WEST. Chiropsalmus zygonema, Phacallophora

ornata, Stomatonema reticulatum. (ib.) — Falkland-Ins.: Couthouya

gaudichaudi. Maas. Dermonema chierchiana. Mayer.

SÜD-ATLANTIK OST. Atolla chuni, Chrysaora hysoscella var.

fulgida, Daetylometra africana, Rhizostoma pulmo var. capensis. (ib.) —

Tristan d’Acunha-Ins.: Nausithoe challengeri. (ib.) — Süd-Georgien:

Halielystus antaretieus. (ib.) |

Paeifik.

Atolla wyvillei forma verrilii, Aurelia colpota, Nausithoe punctata.

(ib.) Periphylla regina. Maas.

Nord-Paeifik.

Aurelia hyalina, A. limbata, Chrysaora helvela, Chr. melanaster,

Cyanea capillata, Phacellophora comtrehatiea. Mayer. — Alaska. Cyanea

capillata var. postelsii, Halielystus aurieula. (ib.)

NORD-PACIFIK WEST. Bering-Ins.: Halielystus stejnegeri. (ib.) —

Kamtschatka: Sthenonia albida. (ib.) — Kurilen-Ins.: Thaumatoseyphus

distinetus n. sp. Kishinouye. — Ochotsk-Meer: Chrysaora convolata n. sp.

(ib.) — Sachalin-Ins.: Chrysaora sp., Cyanea purpurea n. sp. (ib.) — Japan.

Aurelia aurita var. colpota. Maas. A. limbata. Kishinouye. Charybdea

rastonii. Maas. Ch. mora n.sp. Kishinouye. Cephea cephea var. setan-

chiana, C. cephea, Cyanea capillata var. nozakii. Mayer. €. citrea n. sp.

Kishinonye. Daetylometra longicirra, D. ferruginata. Mayer. D. pacifica

var. ferruginata. Maas. Halielystus tenuis n. sp. Kishinouye. Kishi-

Faunistik. 14%

nouyea (nom. nov.) nogatensis, Kuragea depressa, Mastigias papua. Mayer.

M. papua var. physophora. Maas. Neopelagia eximia n. sp. Kishinouye.

Palephyra pelagica. Mayer, Parumbrosa polylobata n.sp. Kishinouye.

Phacellophora sieula. Mayer. Ph. ambigua. Kishinouye. Pelagia panopyra.

Mayer, Maas, Kishinouye. Rhopilema esculenta, Sanderia malayensis,

Stenoseyphus inobai. Mayer. Tamoya virulenta n. sp, Physanostema

thysanura. Kishinouye. Versura palmata. Mayer. — China. Chrysaora

helvola var. chinensis, Mastigias ocellata, Rhopilema hispidum. Mayer.

NORD-PACIFIK OST. Aurellia labiata, Chrysaora melanaster var.

gilberti, Pelagia panopyra, Phacellophora ambigua. (ib.)

| Trop. Paeifik.

TROP. PACIFIK WEST. Philippinen-Ins.: Atolla bairdii forma

valdiviae, Aurellia labiata, Atolla wyvillei, "Chiropsalmus quadrigatus,

Catastylus purpureus n. sp., Cassiopea ornata, Cephea octostyla, Charybdes

rostoni, Discomedusa philippina n.sp., Labonema smithii n. sp. n. Sg.

Linuche aquila, Lychnorhiza bartchi n.sp., Mastigias ocellata, Pelagia

panopyra var. placenta, Periphylla hyacinthina forma dodecabostrycha,

Thysanostoma thysanura, Versura venasi n.sp. Mayer. — Malayische

Arch.: Atorella subglobosa, Cassiopea andromeda var. malayensis, C.

ornata var. digitata, C. andromeda var. acycloblia, Catastylus stichropterus,

dendrium, Crambione mastigophora, Chiropsalmus buitendijki, Eupilema

scapulare, Lorifera flagellata, L. lorifera var. pacifica, Linuche aquila,

Mastigias ocellata, M. papua, M. papua var. sibogae, Procharybdis tetra-

ptera, Periphylla hyacinthina forma dodecabostrycha, Pericalpa campana,

Pelagia panopyra, Paraphyllina intermedia, Rhopilema hispidum, Sanderia

malayensis, Versura palmata, V. anadyomene. Mayer.

TROP. PACIFIK. Polynesien: Carybdea alata, C. maseri, C. grandis,

C, alata var. grandis, Cassiope andrasia, C. mertensiü, Cephea cephea var.

conifera, C. c. var. dumokuroa, Floresca parthenia, Linuche aquila,

Mastigias papua, M. pantherina, Nausithoe elausi, N. picta, Periphylla

hyacinthina forma regina, Zonephyra zonaria.. Mayer. — Hawaii-Ins.:

Carybdea alata, C. rostonii, Cephea cephea, Lonifera flagellata, Periphylla

hyaecinthina forma dodecabostrycha. Mayer.

TROP. PACIFIK OST. Atorella vanhoffeni, Atolla gigantea, Cata-

stylus ornatellus, Chrysaora blossevillei var. plocamia. Mayer. Chrysaora

plocamia. Maas. Charybdea rostonii, Linuche aquila, Nausithoe albatrosii,

Pelagia flaveola, P. panopyra var. placenta, Periphyllopsis braueri, Peri-

phylla hyacinthina forma dodecabotrycha. Mayer.

Süd-Paeifik.

Chrysaora placamia, Choutouya chierchiana. Maas. Atolla wyvillei,

Aurellia vitiana, A. clausa, Periphylla hyacinthina forma dodecabostrycha.

Mayer.

SÜD-PACIFIK WEST. Australien: Chouthouya gaudichaudi. Maas.

Crambione cookii n. sp., Catastylus mosaicus, Cyanea annaskala, Archi-

118 Scyphomedusae für 1910.

rhiza aurosa, Palephyra antiqua, Phyllorhiza punctata, Tesseraria seypho-

meda. Mayer. — Neu-Zeeland: Craterolophus macrocystis, Pericalpa cam-

pana, Lucernaria campanulata. Mayer. Cannorhiza connexa.

SÜD-PACIFIK WEST. S. Fernandes-Ins.: Leptobrachia leptopus,

Tesserontha connecteus. Mayer. — Feuerland: Chouthouya pendula,

Medora capensis, M. reticulata. Maas.

Indik.

Aurelia colpota, Atolla wyvillei forma verrilii, Pelagia phosphora,

Periphylla hyacinthina, P. h. dodecabotrycha, Nausithae rubra, N. punctata,

Torerema thamnastema. Mayer. — Rotes Meer: Cassiopea depressa var.

pieta, C. polypoides, C. andromeda, Cephea cephea, Catastylus ursini,

Cotylarhiza tuberculata, Lorifera lorifera, Mastigias gracile, Polyrhiza

vesiculosa, Palephyra antiqua, Rhizostoma pulmo var. corona. Mayer. —

Golf von Aden: Cassiopes andromeda. Hartlaub. Polephyra indica, Sanderia

malayensis. Mayer. Persischer Gelf: Aurellia aurita. Mayer.

Trop. Indik.

Pelagia flaveola, Poralia rufescens, Floresca parthenia, Mastigias

papua, Linuche aquila, Toreuma gegenbauri. Mayer.

TROP. INDIK WEST. Vorderindien: (Malabar): Cephea cephea.

Mayer. Malediven-Ins.: Aurellia solida, A. maldivensis, Cephea octostyla,

Cassiopea andromeda var. maldivensis. (ib.) — Ostafrika: Atorella sub-

globosa, Cassiopea andromeda, Catastylus stuhlmanni, C. viridescens,

Cephea cephea var. coerulea, Chrysaora helvola var. calliporea, Cassiopea

andromeda var. zanzibarica, Mastigias papua var. siderea, Versura palma-

nata. (ib.) — Mosambik: Cassiopea depressa. (ib.) — Madagaskar: Pale-

phyra antiqua, Tessers typus. (ib.).

TROP. INDIK OST. Golf von Bengalen: Chrysaora helvella var.

calliporea. (ib.) — Coeos-Ins.: Aurosa furcata, Floresca parthenia, Mastigias

ocellata, Periphyllopsis "braueri, Versura pinnata. (ib.) — NW.-Australien:

Cephea cephea, Haplorhiza punctata, Toreuma dieuphila, Versura versi-

cata. (ib.)

Süd-Indik.

Atolla wyvillei, Periphylla regina. Maas. — Kerguelen-Ins.: Atolla

achillis, Periphylla regina. (ib.), Desmonema chierchiana, Tessera prin-

ceps, Pericolpa quadrigata, Halielystus kerguelensis. Mayer. — Neu-

Amsterdam-Ins.: Periphyllopsis braueri. (ib.) — Süd-Australien: Charybdea

rostonii, Pseudorhiza haeckeli, Ps. aurosa, Pericolpa tetralina. (ib.)

Atlantik.

Atolla wyville, Desmonema chierchiana, Periphylla hyacinthina

forma regina. (ib.) — Kaiser Wilhelm II.-Land: Lucernaria australis. (ib.)

— 6Graham-Land: Desmonema chierchiana, Diplumaris antarctica, Des-

monema gaudichaudi, Periphylla hyacintha forma regina. Mayer. Chou-

thouya gaudichaudi, Diplulmaris antarctica n.g. Maas.

Systematik. 119

Systematik.

Archirhiza aurosa Hkl. Mayer (p. 712).

Atolla achillis Hkl. Maas. A. bairdü, A. b. forma valdiviae Vanhöftfen.

Mayer (p. 563). A. chuni Vanhöff. (ib. p. 566), Maas. A. gigantea.

Mayer (p. 565). A. wywillei Hkl. (ib. p. 566), Maas. A. w. forma

verrillii Verril. Mayer (p. 567).

Atorella subglobosa Vanhöffen. (ib.p. 568). A.vanhöffeni Bigelow. (ib.p. 568.)

Aurelia sp. Retzius (1), (2). A. aurita Lamk. Synonymik. Mayer (p. 623).

A. a. „from America‘. (ib. p. 623.) — 4. aurita forma ‚marginalis‘“.

(ib. p. 627.) — A.a. „Aurelia dubia‘‘ Vanhöffen, (ib. p. 627.) —

A..ca. var. colpota Brandt. Maas. — A. cruciata Hkl. „This is only &

variety of A. aurita‘“. Mayer (p. 620). — A. „clausa‘‘ Lesson „= young

of A. labiata““. (ib. p. 622.) — A. colpota Brandt = A. caerulea von

Lend. (ib. p. 620.) — 4. flavidula Peron et Lesueur = A. habanensis

Mayer. „This is only a variety of A. aurita.‘“ (ib. p. 620.) — A. flaw-

dula. Hargitt, Ch. et @&. — A. hyalina Brandt. Mayer (p. 620). — 4.

labiata Chamisso et Eysenhdt. (ib. p. 628.) — 4. lümbata Brandt. Kishi-

nouye, Mayer (p. 622). — A. maldivensis H. B. Bigelow. Mayer (p. 629).

— A. solida Browne. (ib. p. 627.) — 4. vitiana Agass. et Mayer. (ib.)

Aurosa furcata Hkl. (ib. p. 630.)

Cannorhiza connexa Hkl. (ib. p. 714.)

Capria sturdzii Antipa. (ib. p. 539.)

C(h)arybdea alata Reymond. Syn. C. pyramis, C. obeliscus, C. philvppina,

C. grandis. (ib. p. 510.) — C. alata var. grandis Agass. et Mayer. (ib.

p- 511.) — C. alata var. pyramis Hkl. (ib. p. 511.) — C. a. var. mosert

— (. moseri = ‚a variety or young stage of C. grandis‘‘. Mayer (p. 508).

— C. murrayana = „a variety of C. marsupialis ( ?)“. (ib. p. 508). —

C. murrayana Hkl. (ib. p. 512.) — C. marsupialis. (ib. p. 507.) —

C. pyramis = „a variety of C. alata“. (ib. p. 508.) — C. rostonii

Haacke. (ib. p. 508), Maas. — C. zaymacana Conont. Mayer (p. 509).

Cassiopea andromeda Eschsch. (ib. p. 637), Hartlaub. — CO. a. var. acy-

cloblia Schultze. Mayer (p. 638, 640). — C. a. var. maldivensis Browne.

var. zanzibarica Chun. (ib. p. 639). — C. depressa H..l. (ib. p. 649.) —

C. d. var. picta Vanhöff. (ib. p. 649, 638). — C. frondosa Lamk. (ib.

P- 638, 647.) — C. meriensii Brandt. (ib. p. 638, 649.) — CO. ndrasia

Agass. et Mayer. (ib. p. 638, 650.) — C. ornata Hk]. (ib. p. 648.) —

C. o. var. digitata Maas. (ib. p. 638, 648.) — C. polypoides Keller.

(ib. p. 640.) — C. zamachana R. P. Bigelow. (ib. p. 638, 641.)

Catastylus eruciatus. (ib. p. 665, 667.) — C. mosaicus. (ib, p. 665.) — Ü.

ornatellus. (ib. p. 666, 670.) — C. orsini. (ib. p. 666, 669.) — €. pal-

mipes. (ib. p. 667.) — C. pictonum. (ib. p. 665.) — °C. purpureus n. SP.

(ib. p. 666, 671.) — CO. stiphropterus. (ib. p. 670.) — C. stuhlmannı.

(ib. p. 669.) — C. togi. (ib. p. 668.) — C. tripterus. (ib. p. 671.) —

C. turgescens. (ib. p. 671.) — C. viridescens. (ib. p. 670.)

120 Seyphomedusae für 1910.

Cephea cephea. (ib. p. 654.) — C. c. „var. conifera“ Hkl. (ib. p. 655.) —

octostyla L. Agass. (ib. p. 652.) — C. c. var. caerulescens Maas. FR:

p- 653.) — CO. typhlodendrium. (ib. p. 658.)

Chiropsalmus buitendijki Horst. (ib. p. 515.) — Ch. quadrigatus Hkl. (ib.

p- 516.) — Ch. quadrumanus L. Agassiz. (ib. p. 515.) — Ch. zygonema

HK]. (ib, pol)

Chirodropus gorilla Hkl. (ib. p. 518.) — Ch. palmatus Hkl. (ib. p. 519.)

Choutauya chierchiana Vanhöffen. Maas. — Ch. gaudichaudi Lesson. (ib.)

— Ch. pendula. (ib.)

Chrysaora sp. Kishinouye, Bigelow. — Chr. blossevillei var. plocamia.

Mayer (p. 581). — Chr. convoluta n. sp. Kishinouye. — Chr. helvola

Brandt. Mayer (p. 581). — Oh. h. var. chinensis. (ib. p. 582.) — Ch.

h. var. calliporea, Ch. hysoscella Eschsch., Syn. Ch. mediterrannea. (ib.

p- 579.) — Ch. h. var. blossevillei. (ib. p. 581.) — Ch. h. var. fulgida.

(ib. p. 581.) — Chr. melanaster Brandt. (ib. p. 582.) — Chr. m. var.

„güberti‘‘“ Kishinouye. (ib. p. 582.) — Chr. plocamia Lesson. Maas.

Cotylorhiza tuberculata L. Agassiz. Mayer (p. 659).

Crambione mastigophora Maas. (ib. p. 676.) — Cr. cooki n. sp. (ib. p. 677.)

Craterlophus macrocystis v. Lend. (ib. p. 538.) — O.tethys Clark. (ib. p. 538.)

Uyanea sp. BRetzius (1), (2). (p. 601). —

— C. ce. var. nozakü. (ib. p. 601.) — C. c. var. fulva. (ib. p. 600.) —

C. c. var. arctica. (ib. p. 597.) — C. c. var. versicolor. (ib. p. 600.) —

CO. purpurea n. sp. (ib.)

Dactylometra sp. Bigelow. — D. africana Vanhöffen. Mayer (p. 588). —

D. ferruginaster Kishinouye. (ib. p. 588.) — D. lactea L. Agassiz.

(ib. p. 583.) — „D. longicirra‘‘ Kishinouye. (ib. p. 589.) — D. pacifica

var. ferruginaster. Maas. — D. quinquecirra L. Agassiz. Mayer (p. 585).

Depastrella carduella Hkl. = Depastrum cyathiforme, D. allmani Hkl.,

D. polare Hkl. (ib. p. 524.)

Depastrum cyathyforme Gosse. (ib. p. 524.)

Desmonema chierchiana Vanhöffen. (ib. p. 593.) — D. gaudichaudii Agassiz.

(ib. p. 593.)

Diplulmaris n.g. „Ulmaride (semaeostome & canaux 6troits, ramifies a la

peripherie et communigquant avec un canal circulaire), a 16 rhopalies,

16 tentacules et 32 lobes, alternant rögulierement“. Maas (p. 9.) —

D. antarctica n.sp. (ib.), Mayer (p. 610).

Discomedusa lobata claus. (ib. p. 607.) — D. philippina n. sp. (ib. p. 607.)

Drymonema dalmatina Hkl. (ib. p. 603.) — D. gorgo F. Müller. (ib. p. 604.)

Eupilema scapularg Hkl. (ib. p. 709.)

Floresca parthenia Hkl. (ib. p. 605.)

Haliclystus sp. Wietrzykowski. — H. auricula Clark. Mayer (p. 532). —

H. antarcticus Pfeffer. (ib. p. 536.) — H. kerguelensis Vanhöffen.

(ib. p. 536.) — H. octoradiatus Clark. (ib. p. 534.) — H. salpinz Clark.

Systematik. 121

(ib. p. 535.) — H. stejnegeri Kishinouye. (ib. p. 535.) — H. tenuis

n.sp. Kishinouye.

Halimocyathus lagena Hkl. Mayer (p. 537). — H. platypus Clark. (ib. p. 537.)

Haplorhiza punctata Hkl. (ib. p. 713.) — H.(?) simplex Hkl. (ib. p. 713.)

Kishinouyea nom. nov. (Schizopiscus, Kittl. 1891, Kishinouye 1902; Lucer-

naria nogatensis, Oka. 1897). Mayer (p. 531). — K. nogatensis. (ib.)

Kuragea depressa Kishinouye. (ib. p. 589.)

Labonema smithiüi n.g. n. sp. (ib. p. 688, 689.)

Leptobrachia leptopus Brandt. (ib. p. 696.)

Lipkea ruspolina Vogt. (ib. p. 540.)

Linuche unguieulata Eschsch. (ib. p. 558.) — L. aquila. (ib.)

Lorifera flagellata. (ib. p. 695.) — L. lorifera Hkl. (ib. p. 694.) — L. I.

„var.“ pacifica. (ib. p. 695.)

Lucernaria australis Vanhöffen. (ib. p. 530.) — L. bathyphilla Hkl. (ib.)

p. 530.) — L. campanulata Lamx. (ib. p. 530.) — L. haeckelii Antipa.

(ib. p. 529.) — L. infundibulum Hkl. (ib. p. 529.) — L. kükenthali

Antipa. (ib. p. 529.) — L. pyramidalis Hkl. = L. quadricornis (?).

(ib. p. 528.) — L. quadricornis O. F. Müller. (ib. p. 527.) — L. walteri

Antipa. (ib. p. 529.)

Lychnorhiza bartschi n. sp. (ib. p. 674.) — L. lucerna Hkl. (ib. p. 673.)

Medora capensis L. Agassiz. Maas.

Mastigias gracile. Mayer (p. 681). — M. papua var. physophora. Maas. —

M. papua var. siderea. Mayer (p. 679). — M. papua L. Agassiz. (ib.

(ib. p. 678.) — M. papua var. sibogae Maas. (ib. p. 680.) — M. ocellata

Hkl. (ib. p. 680.) — M. pantherina Hkl. (ib. p. 681.) — M.(?) rosea

Vanhöff. (ib. p. 681.)

Medora reticulaia L. Agassiz. Maas.

Nauphantopsis diomedeae Fewkes. Mayer (p. 548).

Nausitho& albatrossii Vanhöffen. (ib. p. 557.) — N. challengeri Vanhöffen,

N. punctata Kölliker. (ib. p. 554.) — N. phaeacum Hkl. ( ?) (ib. p. 556.)

— N. clausi Vanhöffen. (ib. p. 556.) — N. rubra Vanhöffen, N. ‚picta‘“

Agassiz et Mayer — N. punctata (?). (ib. p. 557.)

Neopelagia n.g. ‚„Pelagidae with four perradial and four interradial Ten-

tacles in the place of eight prineipal sensory elubs.‘‘ Kishinouye (p. 13).

— N. eximia n. sp. (ib.)

Palephyra antiqua Hkl. Mayer (p. 551). — P. indica Vanhöffen. (ib.

p- 553.) — P. pelagica. (ib. p. 552.)

Parumbrosa n.g. ‚„Ulmaridae with eight sensory elubs, twenty-four ten-

tacles, and sixty-four marginal lobes, every two of which alternate

with a sensory club or a tentacle‘‘. Kishinouye (p. 19). — polylobata n. sp.

Patera (?) cerebriformis Lesson. Mayer (p. 604).

Paraphyliina intermedia Maas. (ib. p. 549.)

Pericolpa campana Maas. (ib. p. 542.) — P. quadrigata Hkl. (ib. p. 542.)

— P. iteiralina Hkl. (ib. p. 542.)

Periphylla hyacinthina Steenstrup. (ib. p. 544.) — P. h. forma regina. (ib.

p. 547.) — P. h. forma dodecabostrycha. (ib. p. 546.) — P. corona Hkl.

(ib. p. 543.) — P. regina. Maas.

Periphyllopsis braueri Vanhöffen. Mayer (p. 547).

122 Sceyphomedusae für 1910.

Pelagia crossa Vanhöffen. (ib. p. 576.) — P. cyanella. Bigelow, Mayer

(p. 574). — P. flaveola Eschsch. Mayer. — P. noctiluca. Poppe, Schaxel.

— P.n. var. ‚„neglecta‘“‘. Mayer (p. 574). — P. panopyra Peron. Maas,

Mayer (p. 575), Kishinouye. P. p. var. placenta. Mayer (p. 575). —

P. perla. (ib. p. 576.) — P. phosphora Hkl. (ib. p. 576.)

Phacellophora ambigua Hkl. (ib. p. 615), Kishinouye. — Ph. comtrebatica

Brandt. Mayer (p. 613). — Ph. ornata Hkl. (ib. p. 616.) — Ph. sicula

(ib. p. 613.)

Phyllorhiza punctata v. Lend. (ib. p. 684.)

Polyrhiza vesiculosa L. Agassiz. (ib. p. 663.)

Poralia rufescens Vanhöffen. (ib. p. 617.)

Procharybdis tetraptera. (ib. p. 506.)

Prostheceraeus sp. BRetzius (1).

Pseudorhiza aurosa v. Lend. Mayer (p. 682). — Ps. haeckelii Haacke (ib.

p- 683.)

Rhizostoma, Arten — Synonymik. Mayer (p. 699). — Rh. pulmo Agassiz.

(ib. p. 698, 699.) — Rh. pulmo var. capensis. (ib. p. 698, 703.) — Rh.

pulmo var. corona Eschsch. (ib. p. 693, 703.) — Rh. pulmo var. octopus

Oken. (ib. p. 698.) — Rh. pulmo var. lutea Eschsch. (ib. p. 703.)

Rhopilema esculenta Kishinouye. (ib. p. 704.) — Rh. hispidum Maas. (ib.

p- 706.) — Rh. verrillü. (ib. p. 707.)

Sanderia malayensis Goette. (ib. p. 590.)

Stenoscyphus (?) hexaradiatus Broch. (ib. p. 525.) — Sten. inabai Kishi-

nouye. (ib. p. 525.)

Sthenonia albida Eschsch. (ib. p. 611.)

„Stomatonema reticulatum‘‘ Fewkes. (ib. p. 714.)

Stomalophus meleagris L. Agassiz. (ib. p. 710.) — S. m. var, fritillaria.

(ib. :9.,711;)

Taeniolhydra. Herouard (1), (2).

Tamaya haplonema F. Müller. Mayer (p. 513). — T. virulenta n. sp.

Kishinouye.

Tessera typus Hkl. Mayer (p. 523). — T. princeps Hkl. (ib. p. 522.)

Tesserantha connecteus Hkl. (ib. p. 523.)

Tesseraria scyphomeda Hkl. (ib. p. 523.)

Thaumatoscyphus n.g. ,Stenoscyphidae with eight principal tentacles

transformed into small and slender bodies, not adhesive“. Kishinouye

(p. 2). — T. distinetus n. sp. (ib.)

Toreuma dieuphila = Cassiopea dieuphila Peron et Lesueur. Mayer (p. 636)

— T. „gegenbauri‘“ Hkl. (ib. p. 636.) — T. „thomnastoma‘““ Hkl.

(ib. p. 636.)

Thysanostoma thysanura Hkl. Kishinonye, Mayer (p. 692).

Tripedallia cystophora Conant. Mayer (p. 514).

Versura anadyomene. (ib. p. 686.) — V. palmata Hkl. (ib. p. 685.) —

V. pinnata Hkl. (ib. p. 686.) — V. moasi n.sp. (ib. p. 687.) — V.

vesicota (?). (ib. p. 686.)

Undosa undulata Hkl. (ib. p. 609.)

Zonephyra zonaria? Hkl. (ib. p. 552.) — Z. connectens Hkl. (ib.)

Anthozoa für 1910.

Von

Privatdozenten Dr. Ferdinand Pax,

Kustos des Zoologischen Museums der Universität Breslau.

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Bezüglich der Arbeiten über fossile Anthozoen sei auf folgende

Zeitschriften verwiesen:

1. Geologisches Zentralblatt, herausgegeben

von K. Keilhack [hier Paläozoologie im Sachregister].

2. Neues Jahrbuch für Mineralogie, Geo-

logie und Paläontologie, herausgegeben von

128 Anthozoa für 1910.

Bauer, Koken und Liebisch [hier das Sachverzeichnis sowie

Paläontologie im Materienverzeichnis].

3. Zentralblatt für Mineralogie, Geologie

und Paläontologie, herausgegeben von Bauer,

Koken und Liebisch.

Übersicht nach dem Stoff.

Bibliographisches.

Ashworth berichtet in kurzen Referaten über die Anthozoenliteratur

des Jahres 1909.

Ein annähernd vollständiges Verzeichnis der im Jahre 1909 erschienenen

Publikationen über Coelenteraten verdanken wir Woodeock, der gleich-

zeitig durch Einreihung der einzelnen Arbeiten unter bestimmte Schlag-

worte ihren wesentlichsten Inhalt kennzeichnet.

Pace gibt eine Bibliographie, welche die neueren Arbeiten über die

Biologie der britischen Meeresteile umfaßt.

Anatomie.

Simpson (3) gibt eine Schilderung des makroskopischen und mikrosko-

pischen Baues der Gorgonelliden, soweit er ihm für systematische Zwecke

von Wichtigkeit zu sein scheint. Das Coenenchym, der Bau des Gastro-

vaskularsystems und der Polypen, die Struktur der Achse und die Form

der Spicula werden eingehend behandelt.

Sobald eine Kolonie von Telesto rosea eine gewisse Größe

erreicht hat, tritt nach Kinoshita (1), getrennt von der äußeren Spicula-

lage, noch eine weitere Schicht auf, die aus einzeilig angeordneten, an-

fänglich spindelförmigen Spieula besteht. Diese Spieulaschicht entwickelt

sich allmählich von der Basis des Stammes aus in akropetalem Wachstum;

die Spieula werden immer dieker und schließlich durch Hornsubstanz

miteinander verbunden. Dadurch, daß gelegentlich mehrere derartige Spi-

eulaschiehten in Form von konzentrischen Ringen auftreten, die mit-

einander durch Trabekeln verbunden sind, entstehen eigenartige Quer-

schnittgebilde, die scheinbar an das Diekenwachstum pflanzlicher Organis-

men erinnern.

Nach Müller (3) stimmt Corallium in dem Besitze eines ekto-

dermalen Achsenepithels mit den Gorgoniiden überein. Das Achsenskelett

wird durch Ausscheidung kristallinischer Kalkmassen gebildet, wodurch

eine Verkittung der mesogloealen Spicula zustande kommt. Die Vereini-

gung der Spieula mit dem Achsenskelett wird durch ein Auseinander-

weichen der benachbarten Zellen des Achsenepithels ermöglicht, welche

sich dann wieder zusammenschließen.

Pax (1) beschreibt den histologischen Bau der Tentakel von Flabellum

inconstans. Schon bei schwacher Vergrößerung fallen eine Anzahl knopf-

förmiger Anschwellungen im Eetoderm auf, die sich bei genauerer Betrach-

tung als Nesselbatterien erweisen. Dicht gedrängt stehen in diesen Nessel-

organen dünnwandige Nematocysten nebeneinander, nach außen gewöhn-

Übersicht nach dem Stoff. 129

lich schwach divergierend, und nur ganz vereinzelt schieben sich zwischen

sie diekwandige Nesselzellen oder Drüsenzellen ein. Homolog diesen knopf-

artigen Nesselbatterien an den Tentakeln der Flabellumarten sind

nach der Ansicht von Pax zweifellos die von Heicke als Sinnes-

knospen bezeichneten Bildungen an den Tentakeln von Rhodarea lagrenaei,

denen Heicke die Funktion von Tastapparaten zuschreibt. Die

Sinneszellen, de Heicke, gesehen haben will, dürften degenerierte

Nematoeysten sein, während die stäbehenförmigen Fortsätze seiner Sinnes-

zellen als explodierende Nesselzellen, rnöglicherweise aber auch als die

Mündungen schief durchschnittener Drüsenzellen aufzufassen sind. Im

Hinblick auf die Frage nach der Verbreitung spezifischer Nesselorgane

unter den Coelenteraten macht der Verfasser darauf aufmerksam, daß bei

einer japanischen Actinie, Dofleinia armata, auf Mundscheibe

und Tentakeln warzenähnliche Gebilde auftreten, die ebenfalls die Funk-

tion von Sinnesorganen besitzen. Im wesentlichen ließ sich eine Über-

einstimmung im Bau der Nesselorgane bei Actiniarien und Madreporarien

feststellen. Der einzige Unterschied besteht darin, daß die Nesselwarzen

der Aetinien im allgemeinen aus diekwandigen, die Nesselknöpfe der Stein-

korallen dagegen aus dünnwandigen Nematocysten gebildet werden. Die

mikroskopische Untersuchung des Skelettes von Flabellum inconstans erfolgte

auf Dünnschliffen. Neben einer konzentrischen Schichtung des Kalkes pa-

rallel der Theca und den größeren Septen tritt noch einefeinfaserige Struktur

auf, die senkrecht zu den Septen verläuft und ihren Ausgang nimmt von

jenen eigentümlichen dunklen Linien, die man nach dem Vorgange eng-

lischer Forscher als ‚„‚centres of calieification‘‘ bezeichnet. Schließlich lassen

sich noch Sprungsysteme beobachten, die nicht ganz regellos verlaufen,

sondern wenigstens streckenweise den Schichtflächen folgen. Drei kleine

Kelche von Flabellum inconstans mit ausgesprochen juvenilen Charakteren

gaben dem Verfasser Gelegenheit, die Anlage der ersten Septencyklen

zu verfolgen, die bei dieser Art schon auf einem verhältnismäßig frühen

Entwicklungsstadium stattfindet. Das Skelett von Flabellum besteht haupt-

sächlich aus kohlensaurem Calcium, ganz geringen Mengen von kohlen-

saurem Magnesium, und wenig organischer, wahrscheinlich stickstoffhaltiger

Substanz. Die mineralogische Untersuchung vermittels der Meigenschen

Reaktion führte zu dem Ergebnisse, daß das Skelett von Flabellum incon-

stans aus Aragonit besteht, der unter den kalkabscheidenden Coelenteraten

überhaupt viel verbreiteter zu sein schein als Caleit.

Ontogenie.

Im Anschlusse an die eingehende anatomische Beschreibung einer

neuen Arachnactisart aus der Ausbeute der Siboga-Expedition behandelt

Me Murrich (1) die Entwicklung der Septen und der Tentakel innerhalb

der Gattung Arachnactis.

Pax (5) gibt eine zusammenfassende Darstellung der Ontogenie der

Cerianthaceen, Actiniaceen und Zoanthaceen.

Die postembryonale Entwicklung von Anthoplexaura dimorpha hat

Kinoshita (2) zum Gegenstande von Studien gemacht, die er im Sommer

1909 im Marinen Laboratorium in Misaki ausgeführt hat. Die orange-

Archiv für Naturgeschichte 9

1911. VI. 2.

130 Anthozoa für 1910.

oder dotterfarbenen Planulae, die er aus dem Mutterpolypen heraus prä-

parierte, wurden in Glasgefäße gebracht, die mit einer Schicht von Paraffin

ausgegossen waren und in die man Bruchstücke von Echinodermen- und

Molluskenschalen gelegt hatte. Auf diesem Substrate setzten sich die Planu-

lae sehr bald fest. Die Metamorphose, d. h. die Ausbildung der Tentakel

und des Stomodaeum, nahm nur 1—2 Tage in Anspruch. Eier und Larven

von Seeigeln wurden den jungen Gorgoniden als Futter gereicht. Ende

Oktober versenkte der Verfasser die Zuchtgefäße in der Aburatsubo-Bai

und kippte sie in 1 Faden Tiefe um, so daß die Öffnung nun nach unten

gekehrt war. Unter diesen Bedingungen wuchsen die Polypen so rasch,

daß sie schon nach einer Woche die Dicke der ursprünglichen Mutter-

polypen erreichten und nach zwei Wochen sogar Knospen entwickelten.

Schon während der Metamorphose treten Spicula auf. Anfänglich sind sie

im ganzen Mauerblatte unregelmäßig verteilt; sobald sie aber eine gewisse

Länge erreicht haben, ordnen sie sich in jedem interseptalen Feld in zwei

Längsreihen an. Kinoshita erblickt in dieser eigentümlichen Verteilung

der Spicula nur eine rein mechanische Folge der Kontraktion der Polypen.

Sehr bald beginnen die primären Polypen an ihrer Basis zwei oder drei

lappenförmige Ausläufer zu entsenden. Später verschmelzen die Stolonen

um die Polypenbasis herum zu einem kontinuierlichen Saum, der als der

Vorläufer der basalen Ausbreitung der erwachsenen Kolonien zu deuten

ist. Die Achse der Gorgoniiden ist nach Kinoshita nicht mesogloealen

Ursprungs, sondern ein Abscheidungsprodukt des Achsenepithels, also

im Derivat des Ektoderms. Anfänglich besteht die Achse aus einer hyalinen

Grundmasse, die von einem Netzwerke feiner Hornfasern durchzogen wird.

Durch eine kappenförmige Auflagerung neuer vom Ektoderm der Fuß-

scheibe ausgeschiedenen Materials kommt es zu einem Höhenwachstum

der Achse, die die Fußscheibe gewissermaßen vor sich herschiebt, ohne

indessen selbst in die Magenhöhle der primären Polypen einzudringen.

Das Wachstum der Keimzellen der Aleyonaceen verläuft, wie Müller (2)

betont, sehr langsam; bei Aleyonium digitatum, bei dem die Eiablage

im Dezember und Januar erfolgt, sind schon im vorhergehenden Mai die

Eizellen im unteren Abschnitte der kurzen Filamente als Gruppen kleiner,

heller Zellen von rundem oder polygonalem Umriß zu erkennen. Die Ur-

eier, die ursprünglich dem oberflächlichen Entoderm angehören, sinken

allmählich in das Entoderm ein und liegen der mesogloealen Lamelle des

Filaments auf. Das weitere Wachstum der Eizelle erfolgt durch Resorption

benachbarter Eizellen. Wenigstens wird bei Tubipora chamissonis eine

Nährzelle aufgenommen. Während der Kern der Nährzelle zugrunde geht,

wandelt sich der Kern der persistierenden Zelle weiterhin um, indem es

zur Bildung eines Binnenkörpers im Kern kommt. Im Binnenkörper findet

sich das gesamte mit Kernfarbstoffen färbbare Chromatin in Form von Nucle-

olen. Der Kern, der vom Verf. als Perinucleus bezeichnet wird, ist völlig

frei davon. Um die Eizelle häufen sich kleine, indifferente Zelle an, die dem

Entoderm entstammen und fast wie Lymphocyten aussehen; sie treten

später zur Bildung des Follikelepithels zusammen. Damit ist das erste

Stadium der Eireifung abgeschlossen. Die zweite Entwicklungssphase

rechnet der Verf. von der Bildung des Follikelepithels bis zur Chromatin-

Übersicht nach dem Stoff. 131

reduktion. Die Eier werden nun gestielt und ragen, vom Follikelepithel

überzogen, frei in die Gastralhöhle. Meist bilden sich Eiträubchen, die

Eier von sehr verschiedenen Dimensionen enthalten. Die Größenzunahme

beruht nun im wesentlichen auf der Dotterbildung. Entweder bleibt die

Anordnung der Eier in Träubchen bis zum Schlusse der Eireifung erhalten,

oder es kommt durch weiteres Längenwachstum der Scheidenwände zu

einer reihenförmigen Anordnung der Eier. Bei den Aleyonaceen scheinen

die Dottersubstanzen in gelöstem Zustande in die Eizelle einzutreten, da

das Follikelepithel durch eine kutikulare Basalmembran von dem Ei ge-

trennt wird. ‚In der Eizelle findet dann, indem die Löslichkeitsgrenze

dieser Substanz überschritten wird, die Abscheidung in Schollenform statt.‘

Bezüglich der Reduktionsteilungen kommt der Verf. in einigen Punkten

zu anderen Ergebnissen als frühere Autoren: „Die mit der Eireifung ver-

bundene Chromatinreduktion vollzieht sich unter Umwandlung von Idio-

chromatin in Trophochromatin durch Chromidien, welche in den Eikörper

auswandern; der reduzierte Kernanteil wird völlig in Nucleolarsubstanz

verwandelt. Dieser Anteil entspricht dem weiblichen Pronucleus.‘

Hierher auch *Cary.

Phylogenie.

Kinoshita (5) behandelt die Stammesgeschichte der Aleyonarien.

Simpson (3): Stammesgeschichtliche Beziehungen der Gorgonelliden.

Das Studium einer aberranten Wuchsform von Anthelia glauca, bei

der teilweise eine basale Verschmelzung der benachbarten Polypen einge-

treten ist, gibt Thomson (2) einen Fingerzeig bezüglich einer phylogene-

tischen Verknüpfung der beiden Gattungen Anthelia und Xenia.

Balss unterscheidet innerhalb der Pennatulaceen fünf Ordnungen,

nämlich die Spicatae, Pennatuleae, Umbelluleae, Renillese und Veretilleae,

wobei er die Spicatae als die seines Erachtens primitivsten Formen an den

Anfang seines Systems stellt. Von den drei Wegen, die uns zu phylogene-

tischer Erkenntnis führen, liefert die Paläontologie die geringsten Resultate.

Schon aus den Dimensionen der fossilen Graphularien glaubt Balss den

Schluß ziehen zu können, daß es sich überhaupt nicht um Pennatuliden

handelt. ‚Denn die Achsen der re enten Tiere sind durchwegs sehr dünn,

die Achse von Funiculina quadrangularis z. B., die zu den diekeren gehört,

mißt an ihren Kanten ungefähr 2 mm; solehe Durchmesser wie 4—5 mm,

wie esz.B. Frech für seine Prographularia triadica angibt, kommen bei den

re enten nur im Stiel von Balticina auf ganz kurzen Strecken vor. Auch

sind die Achsen der Pennatuliden symmetrisch gebaut, und solche Längs-

furchen, die Frech auf der einen Seite einer Graphularia beschreibt, gibt

es bei den re enten Formen nicht.“ Dagegen dürften die Abdrücke, die

Stefani aus der oberen Kreide Italiens beschrieben hat, tatsächlich

Pennatuliden angehören. Der zweite Weg zu phylogenetischer Erkenntnis,

die vergleichende Entwicklungsgeschichte, hat uns vor allem mit dem

sog. Protocaulon-Stadium bekannt gemacht, das mit der noch lebenden

Gattung Bathyptilum übereinstimmt. Balss schließt daraus, daß die

Ordnung der Spicatae an den Anfang des Pennatulidensystems zu stellen

sei. Den dritten Weg schließlich, die vergleichende Anatomie, benützt

Balss vornehmlich zur Begründung seines Systems: „Wir stellen dann

132 Anthozoa für 1910.

die Stöcke an den Anfang, bei denen die Polypen nur in einer Reihe an jeder

Seite der Rhachis (Distichoptilum, Bathyptilum) stehen, dann kommen

die Stöcke, bei denen die Polypen in größerer Zahl in Querreihen, jedoch

untereinander unverbunden an der Rhachis stehen (Kophobelemnon, Pro-

toptilum, Stachyptilum etc.). Davon leiten wir dann die Formen ab, wo

die Polypen unter sich verbunden in Reihen stehen (Virgulariiden, Balti-

ciniden), und zum Schlusse kommen die höchst differenzierten Formen,

die die Polypen auf Blättern tragen. Andererseits leiten wir von den nieder-

sten Gruppen als spezielle Äste die anderen Ordnungen, nämlich die Renil-

liden und Umbelluliden, ab.“

Kükenthal und Broch: Phylogenie der Pennatulaceen.

Von einer gemeinsamen Wurzel, deren Annahme jedoch hypothetisch

bleibt, haben nach Pax (5) in stark divergenter Entwicklung die drei Antho-

zoengruppen ihren Ausgang genommen, die man gewöhnlich unter dem

Namen Aktinien zusammenfaßt. Erst später haben sie eine konvergente

Entwicklung eingeschlagen. Die Konvergenz beruht darauf, daß alle drei

Gruppen zwar von koloniebildenden Vorfahren abstammen, mit Ausnahme

einiger Zoanthaceengattungen aber zur solitären Lebensweise übergegangen

sind. Ein Skelett haben sie entweder nie besessen, oder sie haben es im Laufe

der Entwicklung verloren. Doch spricht die Tatsache, daß wir in keiner

Gruppe Spuren eines solchen finden, zugunsten der ersten Auffassung.

In allen drei Gruppen hat schließlich auch das Muskelsystem eine beson-

ders kräftige Entwicklung erfahren.

Die Nachprüfung der im Naturhistorischen Museum in Paris aui-

bewahrten Originale von Palaeactis vetula, die früher von Dollfus als fossile

Aktinien beschrieben worden sind, brachte Pax (6) zu der Überzeugung,

daß es sich um eine jener auf mechanischem Wege entstandenen anorgani-

schen Bildungen handelt, wie sie an Flachküsten mit kräftigen Gezeiten

noch heute unter dem Spiele der Wellen entstehen. Jedenfalls aber kann

seines Erachtens die problematische Natur dieses Fossils und die Unzulässig-

keit seiner Verwertung für phylogenetische Schlußfolgerungen nicht scharf

genug betont werden. Palaeontologische Funde, die über das geologische

Alter der Aktinien Auskunft geben könnten, fehlen also. In diesem Punkte

vermögen freilich Tatsachen der geographischen Verbreitung ergänzend

einzutreten. Unter den stichodactylinen Aktinien der westindischen Ge-

wässer finden sich eine Anzahl pacifischer Typen, deren Verbreitung nur

verständlich erscheint, wenn wir sie als Relikte der Tertiärzeit deuten.

Die Arten, um die es sich hierbei handelt, gehören ausnahmslos hoch diffe-

renzierten Gattungen an und gleichen zum Teile ihren im stillen Ozean

lebenden Verwandten so sehr, daß man geneigt ist, beide für Rassen einer

und derselben Spezies zu erklären. Die Stichodactylinen zeigten also

wahrscheinlich schon zur Tertiärzeit denselben Grad der Differenzierung

wie heutzutage und haben seither offenbar keine wesentliche Weiterent-

wieklung erfahren. Denn wir können nicht annehmen, daß in zwei von

einander durch eine Barriere geschiedenen Meeresgebieten sich zwei Typen

so vollständig parallel weiter entwickelt haben sollten, daß sie gewisser-

ımaßen am Ende der Entwicklung einander genau so nahe ständen wie aın

Anfange; und wenn selbst diese Möglichkeit für eine einzelne Form zu-

Übersicht nach dem Stoff. 133

gegeben würde, so dürfte sie doch für eine größere Anzahl von Arten aus-

geschlossen erscheinen, zumal hier nicht eine Parallelentwicklung zwischen

den Faunen zweier Lokalitäten, sondern zwischen der Westindiens und

derjenigen der verschiedensten Teile des pazifischen Ozeans vorliegen würde.

Jedenfalls hat die Annahme eines gewissen Stillstandes in der Entwicklung

der Stichodactylinen seit der Tertiärzeit wohl die größere Wahrscheinlich-

keit für sich. Wenn nun aber die Aktinien zur Tertiärzeit schon einen so

hohen Grad von Differenzierung besessen haben, dann muß die Zeit ihrer

Entstehung einer viel früheren Epoche angehört haben. Der Verfasser

glaubt kaum fehl zu gehen, wenn er sie ins mesozoische, vielleicht sogar

ins palaepzoische Zeitalter verlegt. .

Physiologie und Ökologie.

Auf Grund experimenteller Erfahrungen über Reizerscheinungen bei

Isophyllia kommt Carpenter zu folgendem Schlusse: ‚There is experimental

evidence of the transmission of impulses of at least a nervoid character

from eetodermal receptor cells through the mesogloca to endodermaleffectors

(museles). This transmission is not confined to a single polyp, but may

pass from one polyp to another. It is known that branching cells (so called

connective-tissue cells) occur in the mesogloa of Isophyllia. These extend

from the ectoderm to the endoderm, and so have the topographical relations

of adjustor cells, placing the receptor in communication with the effector.

In the absence of exact information as to the origin, mutual relationships,

and functions of these cells, it is nevertheless suggested that future studies

ınay show them to be primitive synaptie neurones.“

Hierher auch *Bohn (1—3) und Rand.*

Hartmeyer berichtet über das Tierleben der westindischen Korallen-

riffe.

: Balss betrachtet die Form der Pennatuliden als eine Anpassung an

die verschiedenen äußeren Bedingungen und unterscheidet darnach folgende

drei Typen: 1. Tiere des bewegten Wassers, die ausnahms-

los durch den Mangel einer den ganzen Stock durchlaufenden Kalkachse

charakterisiert sind. Entweder ist die Kalkachse nur in Rudimenten vor-

handen (Veretillum und Cavernularia) oder sie fehlt ganz (Renilla und Echi-

noptilum). Für diese fast allen in bewegtem Wasser lebenden Seefedern

gemeinsame Organisation gibt Balss folgende Erklärung. Eine feste, den

ganzen Körper durchlaufende Achse würde, da sie den Wogen einen festen

Widerstand bietet, die Tiere der Gefahr des Zerrissenwerdens allzu sehr

aussetzen. „Bei dem Fehlen der Achse dagegen wird der ganze Körper

nur durch das in ihn hineinströmende Wasser selbst versteift. Indem dieses

bald das ganze Tier aufbläht, bald aber auch durch die Siphonozooide

den Körper schnell verläßt, so daß dadurch das Tier ganz einschrumpft,

so ist dadurch eine außerordentlich schnelle Anpassungsmöglichkeit an

stille oder heftige Bewegung des Wassers gegeben. Dazu kommt noch bei

Renilla die scheibenförmige Gestalt des Körpers, die, ähnlich der Gestalt

eines Seesterns, der Strömung nur die Kante, nicht die Fläche darbietet.“

2. Die Formen der mittleren Tiefen (200—300 m) sind

kleinere, gedrungene Formen, deren Polypen nicht auf Blättern stehen,

134 Anthozoa für 1910.

sondern direkt am Stiele sitzen, so daß das ganze Tier einen im Schlamme

sitzenden Stab darstellt. Wohl zum Schutze gegen Feinde sind die Polypen

alle mehr oder weniger mit Spieula bewehrt und sitzen in Kelchen. 3. Die

Formen der Tiefsee zeichnen sich im allgemeinen durch eine

auffällige Größe ihrer Polypen aus, ohne daß es bis jetzt möglich wäre,

eine biologische Erklärung dieser Erscheinung zu geben.

Gravier macht Angaben über die Biologie der Pennatuliden.

Stuckey und Walton teilen biologische Beobachtungen über die Symbiose

einer neuseeländischen Aktinie (Cradactis magna) mit einem Krebs (Hali-

carcinus planatus) mit.

*Faurot: Symbiose zwischen Aktinie und Einsiedlerkrebs.

Hierher auch *Brunelli.

An den Dry Tortugas lebt, wie Pax (5) berichtet, in Symbiose mit

Stoichactis helianthus ein kleiner, 2,7cm langer Fisch (wahrscheinlich

Psenes maculatus), der merkwürdigerweise der Beobachtung früher ent-

gangen ist. Die Erörterung dieser Symbiose gibt dem Verfasser Gelegen-

heit zu einer Zusammenstellung der gegenwärtig bekannten Fälle einer

Symbiose zwischen Aktinien und Fischen. Diese Zusammenstellung zeigt,

daß es sich in fast allen bekanntgewordenen Fällen eines symbiotischen

Verhältnisses zwischen Fischen und Aktinien um Angehörige der in den

tropischen Meeren verbreiteten Familien der Pomacentriden (Fische) und

Stoichactiden (Aktinien) handelt.

Faunistik.

Kükenthal (3): Aleyonarien Südwestaustraliens.

Thomson (2): Alcyonarien des Chagos-Archipels, der Seychellen und

Amiranten.

Thomson (5): Aleyonaceen Südafrikas.

Nutting: Muriceiden des malayischen Archipels.

Leidenfrost berichtet über das Vorkommen von Corallium rubrum

im Quarnero.

Broch (1) beschreibt einige jugendliche Exemplare einer neuen Vir-

qularia-Art aus der Lüderitzbucht, die wahrscheinlich mit der südafri-

kanischen Form identisch ist, die früher schon von Hickson irrtümlicher-

weise als V. reinwardti bestimmt worden ist.

Balss: Pennatulidenfauna Japans.

Nach Pax (2) sind Veretillum cynomorium und Chitonactis richardi

in der Bucht von Arcachon häufig. Für das Gebiet der Zosterawiesen ist

eine grün gefärbte Lokalrasse von Anemonia sulcata besonders charakte-

ristisch.

Pax (5) gibt ein kritisches Verzeichnis der aus den westindischen Ge-

wässern bekannten Aktinien, in dem nur einige von den älteren Autoren

aufgestellten Arten fortgelassen worden sind, weil ihre systematische

Stellung nicht mehr mit Sicherheit zu ermitteln ist. Nur 24% der an der

Küste der Bermuda-Inseln lebenden Aktinien fehlen in Westindien, 76%

des Faunenbestandes der Bermuda-Inseln kommen auch in Westindien vor.

Faunistik. 135

Stuckey und Walton: Aktinienfauna von Manukau Harbour (Neu-

Seeland).

Cunningham berichtet über das Vorkommen von Phymactis Sanctae

Helenae und Maeandrina Ascensionis an der Küste von St. Helena.

Summers: Antipatharien des Indischen Ozeans.

Geographische Verbreitung.

Balss behandelt die Tiefenverbreitung der Pennatuliden, wobei er

dem Einflusse der Temperatur besondere Aufmerksamkeit schenkt. Die

Verbreitungsmöglichkeiten der Seefedern sind nur gering. Große Wande-

rungen können sie nicht ausführen, da sie den größten Teil ihres Lebens

sessil sind. Verschleppungen durch Schiffe oder Tiere „kommen bei so

extremen Schlammbewohnern ebenfalls nicht in Betracht, und wir können

daher als einziges Verbreitungsmittel den Transport der Larven durch

Meeresströmungen annehmen.‘ Als eine wichtige Barriere der Ausbreitung

erweist sich die Temperatur, indem hier die Grenzen, innerhalb deren

die einzelnen Arten vorkommen, nur eng sind. Vom Wasserdruck sind die

Seefedern wahrscheinlich in hohem Maße unabhängig, wie das gleichzeitige

Vorkommen derselben Formen in den verschiedensten Meerestiefen be-

weist. Das Licht beeinflußt die Tiere nur wenig, und der Einfluß des Salz-

gehaltes ist noch nicht näher untersucht. Das Substrat ist dagegen wieder

insofern von wesentlicher Bedeutung, als die Seefedern ausschließlich

Schlammbewohner sind. In der Litoralregion unterscheidet Balss auf

Grund der geographischen Verbreitung der Pennatuliden drei große Faunen-

bezirke: einen ostafrikanisch-indisch-japanisch-australischen, einen ameri-

kanischen und einen skandinavisch-amerikanischen. Die Pennatuliden

des Abyssals zeigen im allgemeinen eine kosmopolitische Verbreitung.

Nutting: Horizontale und bathymetrische Verteilung der Muriceiden.

Nach Pax (1) sind bisher aus dem subantarktischen und antarktischen

Gebiete 8 sichere Arten von Steinkorallen bekannt geworden, die sich

auf vier verschiedene Gattungen verteilen. Dazu kommen noch drei weitere

Arten, deren systematische Stellung noch zweifelhaft ist. Die Küsten des

antarktischen Festlandes bewohnen nur vier Arten, nämlich Caryophyllia

antarctica, Desmophyllum spec., Flabellum inconstans und Flabellum spec.

Ausschließlich solitäre Formen haben sich hier angesiedelt und sich offen-

bar unter dem Einfluß gleichförmiger Existenzbedingungen über weite

Gebiete verbreitet. Eine Differenzierung in Lokalfaunen hat in der Ant-

arktis anscheinend nicht stattgefunden, sondern alle Arten sind wahr-

scheinlich mehr oder minder eircumpolar verbreitet. Mit Sicherheit ist

der Nachweis einer eircumpolaren Verbreitung bisher nur für Caryophyllia

antarctica erbracht worden. Die überwiegende Mehrzahl der antarktischen

Steinkorallen ist endemisch. Ihre nächsten Verwandten leben sämtlich

in niederen Breiten. Caryphyllia clavus ist fast kosmopolitisch verbreitet.

Sie findet sich in derselben Var. Smithi, die Patagonien bewohnt, auch in

der Tiefsee, aus der das Azorenplateau aufragt. Die einzige typische Abyssal-

form ist Leptopenus discus, die im Westen der Crozetgruppe in 1000 Faden

Tiefe gefunden wurde. Alle übrigen antarktischen und subantarktischen

Steinkorallen haben sich im tieferen Litoral angesiedelt. Es ist gewiß

136 Anthozoa für 1910.

beachtenswert, daß diejenigen von ihnen, die in niedere Breiten vordringen,

dort die Tiefsee bewohnen. Bei einer derartigen Tiefenverbreitung antarkti-

scher Steinkorallen muß es eigentlich im höchsten Maße auffällig erscheinen,

daß bipolare Arten nach dem gegenwärtigen Stande unserer Kenntnisse

völlig fehlen, denn hier hätte das Abyssal leicht die verbindende Brücke

bilden können, auf der ein Austausch von Pol zu Pol erfolgen konnte.

Die Gattung Gyrostoma war bisher nur aus dem indopazifischen

Gebiete bekannt; die von Pax (3) neu beschriebene @. Sancti-Thomae als

erste atlantische Art darf daher ein gewisses tiergeographisches Interesse

beanspruchen.

Die Gattung Parazoanthus ist, wie Pax (4) angibt, nahezu kosmo-

politisch verbreitet; nur den Polargebieten der Erde fehlt sie vollständig.

Das Gebiet ihrer intensivsten Verbreitung liegt im Atlantischen Ozean,

auf den etwa drei Viertel aller Spezies entfallen. In hohem Maße auffällig

ist die große Armut der Aktinienfauna des indomalayischen Archipels,

eine Tatsache, die durch Mertons Reiseausbeute von den Aru Inseln

aufs neue bestätigt wird. Während die Aleyonaceen und Gorgonaceen in

den Sammlungen dieses Forschers in bezug auf Arten- und Individuen-

zahl außerordentlich reichlich vertreten sind, umfaßt die gesamte Aktinien-

ausbeute nur zwei Arten. Daß dies nicht etwa auf einem Zufalle beruht,

der auf Fehler in der Sammeltechnik zurückzuführen ist, beweisen An-

gaben in der Literatur, die sich in dem gleichen Sinne aussprechen. Das

spärliche Auftreten von Aktinien ist ein Charakterzug des ganzen indo-

malayischen Archipels einschließlich Neu-Guineas sowie der Aru- und Kei-

Inseln, und dasist um so auffälliger, alsan dieses aktinienarme Gebiet Meeres-

abschnitte grenzen, die zu den an Aktinien reichsten Teilen der Erde ge-

hören: die Torresstraße, deren üppige Fauna uns die eingehenden Forschun-

gen Haddons enthüllten, und das der Nordostküste vorgelagerte große

Barrierriff, von dessen Tierleben Saville-Kent eine von frischem Hauche

eigener Anschauung durchwehte Schilderung entworfen hat.

Pax (5) geht bei der Darstellung der geographischen Verbreitung

der Aktinien von einer Besprechung der Verbreitungsmittel aus. Über

das aktive Lokomotionsvermögen der Aktinien veröffentlicht der Verfasser

eine Reihe eigener Beobachtungen an lebenden Tieren, so vor allem an

Paranemonia ceinerea, einer Aktinie, die, ebenso wie unsere Wasserschnecken,

an der Wasseroberfläche zu kriechen vermag. Pax vertritt die Anschauung,

daß nicht der von den Aktinien ausgeschiedene Schleim das Kriechen

an der Wasseroberfläche ermögliche, sondern daß die Tiere an dem ober-

flächlichen Flüssgkeitshäutchen entlang kriechen, wie dies neuerdings

von Brockmeier auch für die Schnecken experimentell nachgewiesen worden

ist. Unter den passiven Verbreitungsmitteln kommt den Meeresströmungen

die größte Bedeutung zu. Daher finden wir auch bei allen Aktinien, die

ein pelagisches Entwicklungsstadium durchlaufen, zahlreiche Anpassungs-

erscheinungen an diese Lebensweise, auf die hier im einzelnen nicht

eingegangen werden kann. Als eine wirksame Barriere der Ausbreitung

erweist sich vor allem die Abstufung der Salinität im Meere, eine Tatsache,

die sich in der geographischen Verbreitung der Aktinien unverkennbar

widerspiegelt. Durch planmäßig vorgenommene Experimente suchte der

Faunistik. 137

Verfasser den Einfluß des Salzgehaltes auf verschiedene Aktinienarten

festzustellen. Im Laufe eines Jahres gelang es ihm unter anderem, durch

allmähliche Verminderung der Salinität Aktinien, die nachweislich

einem hohen Salzgehalt desMeerwassers angepaßt sind, in einem Seewasser

zu züchten, dessen Salzgehalt nur noch 4°/,, betrug. Die zu den Experi-

menten verwandten Tiere entstammten dem europäischen Mittelmeere,

das eine Salinität von 37°/,, aufweist. Die einzige Art, die sich im Aquarium

in salzarmem Wasser fortgepflanzt hat, ist Paranemonia’cinerea. Schon

die erste Generation zeigte gewisse Abweichungen vom normalen Typus.

Sie zeichnete sich im allgemeinen durch eine auffallend blasse Färbung aus,

auch blieb sie bedeutend hinter der Durchschnittsgröße der Art zurück.

Wahrscheinlich sind diese Erscheinungen aber auf ungünstige Lebens-

bedingungen in der Gefangenschaft zurückzuführen. Den Einfluß der

Temperatur auf die Verbreitung der Aktinien sucht der Verfasser durch

einige zoogeographische Beispiele von Küsten mit kaltem Auftriebswasser

zu erläutern.

Simpson (3): Horizontale und vertikale Verbreitung der Gorgonel-

liden.

Nach Steuer (2) sind die Aktinienlarven im Golf von Triest nur im

Frühlingsplankton (Januar bis Mai) zu finden. Die Aktinienlarven bilden

einen verschwindend kleinen Teil des Planktons und treten nur sehr vor-

übergehend in ihm auf, da ihre Schwärmzeit im allgemeinen 7—8 Tage

selten übersteigt. Der größte Reichtum an Aktienienlarven begegnet uns

in den Tropen, wo besonders die Cerianthiden eine große Formenmannig-

faltigkeit entwickelt haben. Zoanthidenlarven sind bisher überhaupt

nur dort gefunden worden. Die Tiefenverbreitung der planktonischen

Aktinienlarven erstreckt sich von 0—400 m.

Thomson (2) bespricht die geographische Verbreitung der von der

Perey Sladen Trust Expedition erbeuteten Alcyonarien. Das größte tier-

geographische Interesse nimmt die an der Westküste Patagoniens heimische

Plumarella delicatissima in Anspruch, die bei Providence Island in 125 Faden

Tiefe wiedergefunden worden ist. Mehrere nunmehr im Indischen Ozean

entdeekte Arten waren bisher nur aus dem Atlantischen Ozean bekannt,

so Acanthogorgia truncata, die früher nur aus dem Golf von Biscaya erwähnt

worden ist, und Seirpearia flagellum, die auf die Azoren und Madeira be-

schränkt zu sein schein: beide Arten sind von der Percy Sladen Trust

Expedition im Chagos-Archipel entdeckt worden. Zahlreiche der von der

genannten Expedition gesammelten Alcyonarien waren früher nur von

der ostafrikanischen Küste oder aus dem Roten Meere bekannt, während

andere das Areal ihrer Verbreitung bis in die australischen Gewässer aus-

dehnen.

Riffbildung.

Hartmeyer schildert an der Hand der vorliegenden Angaben in der

Literatur, aber auch auf Grund eigener Anschauung den Aufbau der west-

indischen Korallenriffe.

Hierher auch Drummond, *Spieer und *Wood-Jones (1—3).

138 Anthozoa für 1910.

Zucht und technische Verwertung.

Die italienische Korallenfischerei erstreckt sich nach Steuer (3) nicht

nur auf die heimischen Gewässer (Neapel, Sizilien und Sardinien); Italiener

befischten auch vor nicht langer Zeit die Korallenbänke der französischen

und der afrikanischen Küste des Mittelmeeres. Die Korallenfischerei an der

spanischen Küste ist unbedeutend, und Dalmatien liefert schon seit etwa

15 Jahren keine Korallen mehr nach Italien. Um so wichtiger ist für

Italien der japanische Import. In Japan wird erst seit etwa 70 Jahren

Korallenfischerei ausgeübt; aber trotz der noch sehr primitiven Methoden

sollen im Jahre 1907 10 000kg im Werte von über 2 Millionen Mark ge-

fischt worden sein, von denen ein großer Teil von italienischen Händlern

für den Export nach Torre del Greco angekauft wurde. Nach der Ansicht

des Verfassers wird von manchen die Gefahr der japanischen Konkurrenz

übertrieben groß dargestellt. Ihrer Qualität nach reicht die japanische

Koralle nicht an den Durchschnitt der italienischen heran; sie ist niemals

einheitlich rot, sondern im Innern weiß. Daher erscheint die japanische

Koralle nach der Bearbeitung unschön gescheckt. „Allerdings zeichnen sich

auch heute noch die japanischen Korallen durch eine bisweilen ganz ge-

waltige Größe und Dicke der Äste aus; aber nur allzu oft sind diese ab-

gestorben, innen zerfressen, hohl und daher für die Bearbeitung von wenig

Wert“. In Torre del Greco bei Neapel besteht seit dem Jahre 1878 eine

königl. Korallenindustrieschule, in welcher neben Cameenschneiden haupt-

sächlich die Verarbeitung der Korallen gelehrt wird. Von Natur weiße

Korallen, die man durch Einlegen in ein Bad von Wasserstoffsuperoxyd

künstlich rot gefärbt hat, verlieren, dem Lichte ausgesetzt, bald ihre Farbe.

Gelegentlich werden auch weiße Korallen mit Anilinfarben rot gefärbt.

Falsche Korallenperlen werden aus Marmor, Porzellan und Galalith (aus

dem aus Magermilch ausgeschiedenen Kasein hergestellt) erzeugt. Im all-

gemeinen sind falsche Korallen leichter alsechte, auch sind sie stets auffallend

gleichmäßig rot gefärbt. Echte Korallenperlen zeigen auch in geschliffenem

Zustande zarte Linien an der Oberfläche, die den Falsifikaten fehlen.

Die Insel Zlarin bei Sebenico, deren Bewohner noch in bescheidenem

Umfange die Korallenfischerei betreiben, besuchte Steuer (1), um den

gegenwärtigen Tiefstand der österreichischen Korallenfischerei aus eigener

Anschauung kennen zu lernen. Trotz der Unterstützung, die die „Öster-

reichische Gesellschaft für Seefischerei und Fischzucht‘‘ in Triest den

Korallenfischern auf Zlarin gewährt, ist nach der Ansicht des Verfassers

der Rückgang dieses Erwerbszweiges unaufhaltsam, wenn nicht sofort

energische Gegenmaßregeln getroffen werden. Seine eigenen Vorschläge

faßt Steuer in folgenden Sätzen zusammen: ‚1. Das gefischte Rohmaterial

ist im Inlande zu verarbeiten. 2. Statt sich auf Subventionierung der dal-

matinischen Korallenfischer zu beschränken, sollten geeignete, junge

Leute, mit Reisestipendien versehen, ins Ausland (Italien) geschiekt werden,

um die Verarbeitung der Edelkoralle (Schleiferei, Schnitzerei) gründlich

zu erlernen und diese Gewerbe bei uns in Österreich einzubürgern. 3. Mit

dem unter behördlicher Aufsicht stehenden Verkauf der Produkte unserer

künftigen Korallenindustrie müßte in den adriatischen Badeorten begonnen

werden. 4. Die heute gänzlich darniederliegende Korallenfischerei müßte

Faunistik. 139

von Grund aus reorganisiert werden (rationelle Abfisehung, Aufsuchen

neuer Korallengründe).““

Hierher auch *Me Intosh und St. Quintin.

Klassifikation.

Ausgehend von der Überzeugung, daß der äußere Habitus der See-

federn sich zuerst veränderten Existenzbedingungen anpassen, die innere

Organisation dagegen als das konservativere Element die ursprünglichen

Verhältnisse stets getreuer bewahren wird, hat Balss als Kriterium zur

Unterscheidung der Pennatulidengattungen ein Merkmal der inneren

Anatomie zu verwenden gesucht, nämlich die Anordnung der Muskulatur

im Stiele. Freilich verhehlt er sich auch nicht, daß der Anwendung seines

Prinzips gewisse Schwierigkeiten entgegenstehen. So weisen Acanthoptilum

und Funiculina eine sehr ähnliche Ausbildung der Muskeln auf, indem bei

ihnen die inneren Fiedermuskeln fehlen. Aber da beide Gattungen große,

lang gestreckte Formen darstellen, erscheint es nicht ausgeschlossen, daß

hier identische Funktion eine konvergente Entwicklung der Muskulatur

bewirkt hat. Das Verhältnis des Stieles zum Kolben, die absolute Länge

der Achse, das Vorhandensein oder Fehlen von Spicula in den Tentakeln,

die Anzahl der Polypen eines Blattes usw. Merkmale, die gewöhnlich zur

Unterscheidung der Arten verwandt werden, hält Balss für sehr proble-

matische Unterschiede.

Nach Broch (3) stellen die Spieula der Pennatuliden Charaktere dar,

die eine weit schärfere und sicherere Artunterscheidung gestatten als die

von der Systematik bisher benützten Merkmale.

Hiekson beschreibt eine neue, solitär lebende Steinkoralle aus dem

Persischen Golf, Pyrophyllia inflata, deren wichtigstes Kennzeichen das

Auftreten von nur acht Protosepten und acht Metasepten ist. Sie zeigt in

ihrem Bau eine gewisse Ähnlichkeit mit den fossilen Tetracorallia; unter

den rerenten Formen dürfte mit ihr am nächten Guynia annulata verwandt

sein. Hickson schlägt vor, für diese beiden Formen eine neue Familie Guynii-

daezu errichten, die im System in die Näheder Turbinoliiden zu stellen wäre.

Nach der Ansicht von Kinoshita (3) muß die Gattung Keroeides aus

der Familie der Suberogorgiiden entfernt und für sie eine neue Familie

Keroeididae errichtet werden.

Kinoshita (4) beschreibt eine der Tiefe der Sagamibucht (Japan) ent-

stammende Antipatharienkolonie (Hexapathes heterosticha), die in bezug

auf die Verzweigung wie im Habitus ihrer Polypen lebhaft an die Gattung

Bathypathes erinnert, in der Ausbildung der Mesenterien sich aber wesent-

lich von ihr unterscheidet.

Kükenthal (1) gibt eine kritische Übersicht der bisher beschriebenen

Arten der Alcyonaceengattung Anthomastus und faßt unsere Kenntnis

der einzelnen Spezies in kurzen Diagnosen zusammen.

Innerhalb der Ordnung der Pennatulacea lassen sich nach Küken-

thal und Broch fünf große natürliche Gruppen unterscheiden: 1. Penna-

tulacea radiata, mit radiär angeordneten Polypen am walzenförmigen Kiele,

2. Pennatulacea foliata, mit Polypen, die gleichmäßig auf der dorsalen Fläche

des blattförmig verbreiterten Kieles angeordnet sind, 3. P. bilateralia,

140 Anthozoa für 1910.

mit bilateral angeordneten Polypen an den Seiten des langgestreckten

Kiels, 4. Pennatulacea verticillata, bei denen die Polypen außerdem in

Wirteln stehen, und 5. Pennatulacea penniformia, mit federförmigem

Polypar, an dem die Polypen auf lateralen Wülsten oder Blättern stehen.

Als Einteilungsprinzipien haben die Autoren nicht ausschließlich diejenigen

Merkmale benützt, die bisher dazu verwendet worden sind, sondern haben

andere mehr vernachlässigte in den Vordergrund geschoben, insbesondere

die Gestalt der Spicula.

Müller (1): Synonymie der Gattung Rhizozxenia.

Bei den Gorgonaceen ist das zuverlässigste Kriterium in systematischer

Hinsicht nach Nuttings (1) Ansicht die Form der Spieula. Zwar ist auch sie

gewissen Variationen unterworfen, insofern als sogar ein und dieselbe

Spezies mehrere Spiculaformen besitzen oder die gleiche Spiculaform

mehreren Gattungen gemeinsam sein kann, aber im allgemeinen findet

sich doch eine Dominanz gewisser Spiculaformen, die für die verschiedenen

Arten einer Gattung konstant ist. Die ursprünglichste Form des Spiculum

ist die Spindel. Denn erstens kehrt sie bei allen Muriceidengattungen

und fast bei allen Arten wieder, dann aber gehen selbst die kompliziertesten

Spieulaformen, wie die Skelettnadeln der Gattungen Echinogorgia, Acampto-

gorgia und Heterogorgia, im Laufe ihrer individuellen Entwicklung aus

spindelförmigen Spicula hervor. Nutting unterscheidet zehn Grundtypen,

auf die sich seiner Ansicht nach alle übrigen Spiculaformen zurückführen

lassen. Neben der Form der Spicula findet auch ihre Anordnung als gene-

risches Merkmal Verwendung. Der von Nutting entworfene Bestimmungs-

schlüssel für die Gattungen der Muriceiden ist der Ausdruck eines künst-

lichen Syrtems, das auf phylogenetische Bedeutung keinen Anspruch er-

hebt. Der Versuch einer brauchbaren Klassifikation auf phylogenetischer

Grundlage muß noch der Zukunft vorbehalten bleiben; denn unsere gegen-

wärtigen Kenntnisse der Muriceiden sind nach der Auffassung von Nutting

noch zu lückenhaft.

Pax (3) rechnet im Gegensatze zu Haddon nur solche Sagartiiden

zum Genus Aiptasia, denen ein Sphinkter fehlt, da der Typus der Gattung,

Aiptasia couchii, keine Andeutung eines Ringmuskels besitzt und in diesem

Merkmal mit den westindischen Arten, A. tagetes, A. annulata, A. lucida

und A. leiodactyla übereinstimmt. Innerhalb der Gattung Arptasia

unterscheidet Pax zwei Gruppen, nämlich die Gruppe der Pstilonemata,

deren Tentakel völlig glatt sind und die Gruppe der Dactyliophorae, deren

Tentakel ringförmig oder spiralig verdickte wulstförmige Verdickungen

aufweisen.

Die Untersuchung westindischer Zoanthiden führte Pax (5) zu dem

Ergebnisse, daß viele sogenannte Spezies, die bisher als „gute Arten‘ im

Sinne der Systematik aufgefaßt worden sind, wahrscheinlich nur aberrante

Wuchsformen darstellen. Dadurch, daß andrerseits gleiche Wachstums-

bedingungen verschiedenen Zoanthidenarten ein ähnliches äußeres Gepräge

verleihen, wird die Unterscheidung der Spezies ganz besonders erschwert.

Die Zoanthiden bieten unter den Cölenteraten wohl eines der lehrreichsten

Beispiele von Konvergenz, das bisher nur völlig unbeachtet geblieben ist.

Simpson (3): Klassifikation der Juncella-Gruppe der Gorgonelliden.

Systematik. 141

Systematik.

Neue Familien, Gattungen und Arten.

I. Oectocorallia.

Aleyonacea.

nov. gen. Malacacanthus. Thomson (5).

Nephthyigorgia. Kükenthal (3).

Sclerella. Thomson u. Mackinnon.

nov. spec. Alcyonium fauri. Thomson (5). Mossel Bay. — A. rotiferum.

Thomson (5), Kuskamma Point. — A. salomonense. Thomson u.

Mackinnon, Salomons-Inseln.

Anthomastus antarcticus. Kükenthal (1), Bruvetinsel. — A. granulosus.

Kükenthal (1), Japan. — A. muscarioides. Kükenthal (1), Japan.

Bellonella studeri. Thomson (5), Port Elizabeth.

Capnella gülchristi. Thomson (5), Cape Morgan. — C. monila. Thomson u.

Mackinnon, S. W. Indischer Ozean.

Clavularia scintillans. Thomson u. Mackinnon, Egmont-Riff.

Dendronephthya gardineri. Thomson u. Mackinnon, Seychellen. — D.

michaelseni. Kükenthal (3), Westaustralien.

Moalacacanthus rufus. Thomson (5), False Bay.

Metalcyonium natalense. Thomson (5), Natal.

Nephthya australis. Kükenthal (3), Westaustralien. — N. complanata.

Kükenthal (5), Westaustralien. — N. corallina. Kükenthal (3), West-

australien. — N. granulata. Kükenthal (3), Westaustralien. — N.

Hartmeyeri. Kükenthal (3), Westaustralien. — N. quercus. Kükenthal

(3), Westaustralien. — N. rubra. Kükenthal (3), Westaustralien.

Nephtyigorgia aurantiaca. Kükenthal (3), Westaustralien. — N. crassa.

Kükenthal (3), Westaustralien. — N. pinnata. Kükenthal (3), West-

australien.

Siphonogorgia harrisonii. Thomson u. Mackinnon, Providence Island. —

S. hicksoni. Thomson u. Mackinnon, Providence Island. — S. robusta.

Thomson u. Mackinnon, Providence Island.

Stereacanthia elongata. Thomson u. Mackinnon, Providence Island.

Stereonephthya armata. Kükenthal (3), Westaustralien. — S. kükenthali.

Thomson u. Mackinnon, Amisanten. — S. macrospiculata. Thomson u.

Mackinnon, Salomonsinseln. — S. ochracea. Kükenthal (3), West-

sustralien.

Studeriotes crassa. Kükenthal (3), Westaustralien. — S. longiramosa.

Kükenthal (3), China-See.

Sympodium salomonense. Thomson u. Mackinnon, Salomonsinseln.

nov. var. Dendronephthya michaelseni var. laevis. Kükenthal (3), West-

australien.

Sephonogorgia koellikeri var. rugosa. Thomson u. Mackinnon, Providence

Island, Amiranten. — S. pendula var. ramosa. Thomson u. Mackinnon

Providence Island.

142 Anthozoa für 1910.

Gorgonacea.

nov. fam. Keroeididae. Kinoshita (3).

nov. gen. Dendrogorgia. Simpson (2).

Hicksonella. Simpson (4).

Isidoides. Nutting (4).

Plumigorgia. Nutting (4).

Versluysia. Nutting (1).

nov. spec. Acamptogorgia ceylonensis. Thomson u. Russel, Ceylon. —

A. foliata. Thomson u. Russell, Salomonsinseln. — A. spatulata

Nutting (1), Malayischer Archipel.

Acanella sibogae. Nutting (3), Malayischer Archipel. — A. weberi. Nutting

(3), Malayischer Archipel.

Acanthogorgia striata. Nutting (1), Celebes, Banda-See. — A. studeri.

Nutting (1), Malayischer Archipel. — A. tenera. Thomson u. Russell,

Indischer Ozean. — A. turgida. Nutting (1), Malayischer Archipel.

Acis alternaus. Thomson u. Russell, Salomonsinseln. — A. dejecta. Thom-

son u. Russell, Indischer Ozean. — A. obscura. Thomson u. Russell,

Salomonsinseln. — A. serrata. Nutting (1), Malayischer Archipel. —

A. solorensis. Nutting (1), Malayischer Archipel. — A. squamata.

Nutting (1), Malayischer Archipel.

Anthogorgia aura. Nutting (1), Malayischer Archipel. — 4. verrili. Nutting

(1), Malayischer Archipel. |

Anthomuricea brunnea. Nutting (1), Sumatra. — A. reticulata. Nutting (1),

Malayischer Archipel. — A. sanguwinea. Nutting (1), Malayischer Ar-

chipel. — A. timorensis. Nutting (1), Timor.

Bebryce acanthoides. Thomson u. Russell, Providence Island. — B. thom-

soni. Nutting (1), Malayischer Archipel.

Cactogorgia agariciformis. Simpson (1), Fundort unbekannt. — C. lampas.

Thomson u. Mackinnon, Indischer Ozean.

Calicogorgia rigida.. Thomson u. Russell, Salomonsinseln, Providence

Ceratoisis wrighti. Nutting (3), Malayischer Archipel.

Dendrogorgia capensis. Simpson (2), Südafrika.

Echinogorgia complexa. Nutting (1), Malayischer Archipel. — E. flora.

Nutting (1), Malayischer Archipel. — E. ramosa. Thomson u. Russell,

Indischer Ozean. — E. ridleyi. Nutting (1), Neuguinea.

Echinomuricea collaris. Nutting (1), Bandasee. — EZ. costata. Nutting (1),

Timor. — E. eylindrica. Nutting (1), Kei-Inseln. — E. pulchra. Nutting

(1), Malayischer Archipel. — P. spinifora. Nutting (1), Neuguinea,

Aru-Inseln.

Ellisella flava. Nutting (4), Malayischer Archipel.

zorgonella delicatula. Nutting (4), Malayischer Archipel. — @. rigida.

Nutting (4), Malayischer Archipel.

Gorgonia dubia. Thomson u. Russell, Amiranten.

Heterogorgia clausa. Nutting (1), Malayischer Archipel. — H. humilis.

Nutting (1), Floresstraße. — MH. magna. Nutting (1), Malayischer

Archipel. — H. muricelloides. Nutting (1), Malayischer Archipel. —

Systematik. 143

H. operculata. Nutting (1), Celebee. — H. reticulata. Nutting (1), Ma-

layischer Archipel. — H. stellata. Nutting (1), Malayischer Archipel.

Hicksonella capensis. Simpson (4), Natal.

Isidoides armata. Nutting (4), Malayischer Archipel.

Isis reticulata. Nutting (3), Malayischer Archipel.

Juncella sanguinea. Nutting (4), Malayischer Archipel.

Leptogorgia formosa. Nutting (5), Malayischer Archipel.

Lophogorgia pinnata. Nutting (5), Malayischer Archipel.

Melitodes flabellum. Thomson u. Mackinnon.

Menacella sladeni. Thomson u. Russell, Providence Island.

Menella grayi. Nutting (1), Malayischer Archipel. — M. rubescens. Nutting

(1), Malayischer Archipel.

Mopsea alba. Nutting (3), Malayischer Archipel. — M. flava. Nutting (3),

Malayischer Archipel.

Muriceides collaris. Nutting (1), Kei-Inseln. — M. dubia. Nutting (1),

Aru-Inseln. — M. javensis. Nutting (1), Java.

Muricella dubia. Nutting (1), Malayischer Archipel. — M. gracilis. Nutting

(1), Malayischer Archipel. — M. grandis. Nutting (1), Malayischer

Archipel. — M. stellata. Nutting (1), Malayischer Archipel.

Nicella carinata. Nutting (4), Malayischer Archipel. — N. coralloides.

Nutting (4), Malayischer Archipel.

Peltastisis cornuta. Nutting (3), Malayischer Archipel. — P. uniserialis.

Nutting (3), Malayischer Archipel.

Placogorgia alternata. Nutting (1), Malayischer Archipel. — P. bebrycoides.

Nutting (1), Malayischer Archipel. — P. campanulifera. Nutting (1),

Malayischer Archipel. — P. cryptotheca. Nutting (1), Malayischer

Archipel. — P. dendritica.e Nutting (1), Malayischer Archipel. —

P.dentata. Nutting (1), Malayischer Archipel. — P. pulchra. Nutting (1),

Kei-Inseln. — P. reticuloides. Nutting (1), Malayischer Archipel. —

P. squamata. Nutting (1), Malayischer Archipel. — P. studeri. Nutting

(1), Kei-Inseln.

Platycaulus sibogae. Nutting (5), Malayischer Archipel.

Plexaura aggregata. Nutting (2), Malayischer Archipel. — P. attenuata.

Nutting (2), Malayischer Archipel. — P. flava. Nutting (2), Malayischer

Archipel. — P. pinnata. Nutting (2), Malayischer Archipel. — P.

platystoma. Nutting (2), Malayischer Archipel. — P. recta. Nutting (2),

Malayischer Archipel.

Plumigorgia hydroides. Nutting (4), Malayischer Archipel.

Seirpearia andamanensis. Simpson (3), Andamanen. — S. anomala. Simp-

son (3), Andamanen. — S. ceylonensis. Simpson (3), Ceylon. — 8.

hicksoni. Simpson (3), Andamanen. — S. quadrilimata. Simpson (3),

Laccadiven. — S. ramosa. Simpson (3), Andamanen. — S. thomsoni.

Simpson (3), Bai v. Bengalen. — S. verrucosa. Simpson (3), Andamanen.

Seirpearella hemispherica. Nutting (4), Malayischer Archipel. — S. regia.

Nutting (4), Malayischer Archipel.

Stenogorgia studeri. Nutting (5), Malayischer Archipel.

Thesea flava. Nutting (1), Malayischer Archipel. — T. flexilis. Nutting (1),

Malayischer Archipel. — T. immersa. Nutting (1), Timor. — T. pallida

144 Anthozoa für 1910.

Nutting (1), Malayischer Archipel. — T. placodonna. Nutting (1),

Malayischer Archipel. — T. sanguinea. Nutting (1), Malayischer

Archipel. — T. simplex. Nutting (1), Malayischer Archipel.

Verrucella flaviflora. Nutting (4), Malayischer Archipel. — V. stellata.

Nutting (4), Malayischer Archipel.

Versluysia argentea. Nutting (1), Timor. — V. dentata. Nutting (1), Ma-

layischer Archipel. — V. operculata. Nutting (1), Malayischer Archipel.

— V. reticulata. Nutting (1), Malayischer Archipel. — V.rosea. Nutting

(1), Malayischer Archipel.

Villogorgia flavescens. Nutting (1), Malayischer Archipel. — V. inermis.

Nutting (1), Malayischer Archipel. — V. serrata. Nutting (1), Aru-In-

seln. — V. timorensis. Nutting (1), Malayischer Archipel.

nov. var. Calicogorgia robusta var. rosea. Thomson u. Russell.

Plumarella delicatissima var. dentata. Thomson u. Russell, Providence.

Sceirpearia furcata var. robusta. Simpson (3), Andamanen.

Pennatulacea.

nov. fam. Balticinidae. Balss.

nov. gen. Actinoptilon. Kükenthal (2).

nov. spec. Actinoptilon echinatum. Kükenthal (2), Somaliküste. — A. molle.

Kükenthal (2), Kapland.

Cavernularia marquesarum. PBalss, Japan.

Kophobelemnon heterospinosum. Kükenthal (2), Westsumatra.

Leioptilum solidum. Broch (2), ohne Fundort.

Lituaria habereri. Balss, Japan.

Pennatula inflata. Kükenthal (2), Somaliküste.

Protoptilum cyaneum. Kükenthal (2), Somaliküste.

Pteroides dofleini. Balss, Japan. — P. heteroradiatum. Broch (2), ohne

Fundort. — P. jungerseni. Broch (2), Neupommern. — P. lusitanicum.

Broch (2), Portugal.

Sarcophyllum roseum. Broch (3).

Struthiopteron elegans. Broch (2), ohne Fundort.

Virgularia halisceptrum. Broch (2), ohne Fundort. — V. schulizei. Küken-

thal (2), Südafrika.

nov. var. Pennatula phosphorea var. antarctica. Kükenthal (2), Bouvetinsel.

II. Hexacorallia.

Cerianthacea.

nov. spec. Apiactis obconica. MeMurrich (2), Malayischer Archipel.

Arachnactis sibogae. MeMurrich (1), Malayischer Archipel.

Cerianthus taedus. MeMurrich (2), Malayischer Archipel.

Pachycerianthus fimbriatus. MeMurrich (2), Malayischer Archipel. — P.

monostichus. MeMurrich (2), Malayischer Archipel.

Antipathacea.

nov. subfam. Cladopathinae. Kinoshita (4).

nov. gen. Hexapathes. Kinoshita (4).

nov. spec. Antipathes salicoides. Summers, Portugiesisch Ost-Afrika.

Systematik. 145

Cirripathes contorta. Pesch, Malayischer Archipel. — CO. indica. Summers,

Mergui-Archipel. — CO. musculosa. Pesch, Malayischer Archipel. —

C.nana. Pesch, Malayischer Archipel. — C. ramosa. Pesch, Malayischer

Archipel. — C. rumphii. Pesch, Malayischer Archipel. — (0. trans-

lucens. Pesch, Malayischer Archipel.

Pteropathes simpsoni. Summers, Mergui-Archipel.

Actiniacea.

nov. subfam. Glyphactiniinae. Boule.

nov. gen. Glyphoperidium. Roule.

@Glyphostylum. Boule.

nov. spec. Atptasia leiodactyla. Pax (3), Haiti.

Bunodes minima. Stuckey u. Walton, Neuseeland. — B. rosea. Stuckey

u. Walton, Neuseeland.

Bunodosoma kükenthali. Pax (3), Barbados.

COystiactis koellikeri. Pax (3), Westindien.

Glyphoperidium bursa. Roule, Booth Wandell Island. — @. vas. Roule,

Booth Wandell Island.

Glyphostylum calyx. Roule, Booth Wandell Island.

Gyrostoma sancti-thomae. Pax (3), St. Thomas.

Paractis fleurei. Stuckey u. Walton, Neuseeland.

Zoanthacea.

nov. spec. Palythoa hartmeyeri. Pax (3), Dry Tortugas.

Parazoanthus aruensis. Pax (4), Aru-Inseln.

Zoanthus poriticola. Pax (5), Dry Tortugas.

Madreporacea.

nov. fam. Guyniidae. Hiekson.

nov. spec. Porites gabonensis. Gravier (4), Gabun. — P. somaliensis,

Gravier (5), Somaliküste.

Pyrophyllia inflata. Hickson, Persischer Golf.

Ulophyllia bonhourei. Gravier (5), Somaliland.

Archiv für Naturgeschichte 10

1911. VI. 2.

Spongiae für 1910.

Von

Dr. Robert Lucas.

Publikationen und Referate.

Annandale, Nfelson] (1). Notes on freshwater sponges. De-

scription of a new species from Cape Comorin. Rec. Ind. Mus.

Caleutta, vol. 5, p. 31.

— (2). Contributions to the Fauna of Yunnan based on

collections made by J. Coggin Brown, B. Sc. 1909—1910. Sponges

fand Polyzoa]. t. c. p. 197—198.

— (3). Note on a Freshwater Sponge and Polyzoon from

Ceylon. Spolia Zeylan., Colombo, vol. 7, 1910, p. 63—64.

— (4). Freshwater Sponges in the collection of the United

States Nat. Museum. — Part 3. Description of & new species of

Spongilla from China. Proc. U. States Nat. Mus. Smithsonian

Instit., vol. 38, 1910, p. 183. — Spongilla (Stratospongilla) sinensis

n. SP.

— (5). Fresh-Water sponges in the collection of the United

States Nat. Museum. — Part 4. Note on the Fresh-water sponge,

Ephydatia japonica, and its allies. t. c. No. 1771, 1910, p. 649—650.

Galiano, E. F. Consideraciones acerca de la posiciön de las

esponjas en el reino animal. Bol. Soc. espaü. hist. nat., vol. 10,

1910, p. 75—80.

Greig-Smith, R. The slime of the household bath-sponge.

Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, vol. 35, 1910, p. 29—35.

Jörgensen, Max. Beiträge zur Kenntnis der Eibildung,

Reifung, Befruchtung und Furchung bei Schwämmen (Syconen).

Archiv f. Zellforschung, Leipzig, Bd. 4, 1910, p. 163—242, 5 Taf.

Kirkpatrick, R. (1). Further notes on Merlia normani Kirkp.

Ann. Nat. Hist., ser. 8, vol. 5, 1910, p. 288—291.

— (2). On the Affinities of Astroclera willeyana Lister. Ann.

nat. Hist., ser. 8, vol. 5, p. 380—383, pl. XI. — Astrosclera wil-

leyana, Lister von Andrews, bei den Christmas-Inseln erbeutet,

saß an einem Korallenfelsen in 46 Faden Tiefe. Mikroskopische

Schnitte durch den Schwamm lehren, daß die Art eine Ectyonine

ist mit supplementärem Skelett, das aus Aragonitpartikelchen ge-

bildet wird, zunächst getrennt, später aber zu konkreten Wänden

und Blöcken miteinander verbunden. Die Figg. auf pl. XI stellen

den Schwamm in toto und seine Details dar.

— (3). On Hexactinellid Sponge Spieules and their Names.

t.c., p. 208—213, pl. VIII. — Die Nadeln der Hexactinelliden

werden oft in 2 Klassen geteilt, Megascleren und Microscleren.

Publikationen und Referate. 147

Erstere stützen, fixieren und schützen den Körper als Ganzes,

letztere gewähren den Strängen des trabekulären Netzwerkes

sicheren Halt. Nach Ansicht des Verfassers lassen sich nun die

Nadeln noch auf andere Weise, und zwar auf Grund einer rein

morphologischen Basis klassifizieren. Nähme man nämlich Exem-

plare aller bekannten rezenten Hexactinelliden, würfe sie in einen

Kessel, kochte sie mit Salpetersäure und sortierte die restierenden

Nadeln auf Grund ihrer morphologischen Charaktere, ohne sich

durch phylogenetische oder sonstige Spekulationen beeinflussen

zu lassen, so ließen sich sämtliche Nadeln in 2 große Hauptgruppen,

A und B, teilen. Bei der einen Gruppe sind die Strahlen der ganzen

Länge nach hohl, bei der andern dagegen nur im Zentrum, während

der Rest des Strahles oder des Strahlensystems solide ist. Den-

jenigen Teil des Strahles, der den Zentralkanal trägt, bezeichnet

der Verf. mit „Actin‘, die soliden Teile mit „Enddornen“

oder „distaleAnhänge‘. Als Bezeichnung für die Gruppen

A und B liegen die Begriffe homaxial oder homactinal und heter-

axial oder heteractinal nahe, doch sind sie unlogisch; er schlägt

die Ausdrücke ‚„holactin‘“ und ‚astral‘ vor. Die morphologische

Gruppierung, die uns Verf. gibt, ist nun folgende. Die Holactine-

Gruppe teilt sich in Microhexaktina und in Megascleren (hierzu

gehören die Macrohexaktina, Pentaktine, Tetr.- [oder Staur-]

aktine, Triaktine, Diaktine und Monaktine). — Die Astrale Gruppe

teilt sich in 2 Gruppen: a) mit centripetalen Enddornen mit

Hexadisken und Amphidisken, b) mit zentrifugalen Enddornen

(Hexaster [oxy-, disco-]). Die letztere Gruppe läßt drei Sektionen

unterscheiden: 1. Holohexaster, die ‚cöme“-Gruppe und Dis-

koktaster;, 2. Hemihexaster, und 3. Monohexaster, Stauraster,

Triaster u. Diaster. — p. 210—213 bringen Erklärungen zu den

vorerwähnten Ausdrücken, die im Original durchstudiert werden

müssen. Die Tafel bringt Abbildungen zu den erwähnten haupt-

sächlichsten Elementen.

— (4). On Hexactinellid Spicules and their Names. —

Part II. Supplementary. t.c., p. 347—350, with 5 figs. — In

der vorliegenden Publikation behandelt der Verf. im Anschluß an

die vorige Arbeit eine Reihe von Nadeln, die ohne Zweifel holaktin

sind, die aber an dem einen Ende des Strahles Dornen tragen. Es

handelt sich um die Clavulae und Scopulae einiger Dictyoninae

wie Eurete semperi F. E. Sch., Farrea occa (Bowerbank) Carter,

Hyalonema Sieboldii Gray. Die Spinae und Discae dieser Formen

sind als Centrospinen und Centrodisken zu bezeichnen, um sie

- von den echten Enddornen und Enddisken am distalen Ende der

Aktinen der astralen Spiculae zu unterscheiden. Mikrohexactinen

kommen bei einigen Dietyoninenarten vor, scheinen aber den

meisten Hezasterophora-Spp. zu fehlen. Fig. 1-5 bringen Ab-

bildungen von Scopulae und Clavulae der genannten Spp. Gleich-

zeitig benutzt der Verf. die Gelegenheit, um eine Berichtigung zu

seiner 1909 erschienenen Arbeit über die Phylogenie von Ampki-

10*

148 Spongiae für 1910.

discophora zu bringen, die sich auf das Vorhandensein resp. Fehlen

von Microhexactinen bezieht.

— (5). On a remarkable Pharetronid Sponge from Christ-

mas-Island. Proc. Roy. Soc. London, B. 83, 1910, p. 124—133,

2 pls. — Kurzes Resume: Nature, vol. 85, 1910—1911, p. 345.

— (6). A sponge with siliceous and calcareous skeleton.

Nature, London, vol. 83, 1910, p. 338.

— (7). Hydrozoa and Porifera in Cunningham, J.T. On

the Marine Fishes and Invertebrates of St. Helena. With De-

scription of new species of Hydrozoa and Porifera. Proc. Zool.

Soc. London, 1910, 1, I, p. 127—130. Porifera p. 128—130. —

Fam. Chondrosidae F. E. Schulze. Chondrosia plebeja O. Schmidt.

‘Morphologie dieser Art. Zu O'hondrosia gehören 5—6 gute Spp.:

reticulata Carter. — Das gesamteKanalsystem von Ch. plebeja zeigt

6 verschiedene Systeme: 1. the initiale pore canals, — 2. the larger

incurrent canals, — 3. the radiating bristle canals terminating in

prosodi, — 4. the cordon of flagellated chambers, — 5. the aphodi,

— 6. the larger excurrent canals terminating in oscules. — Pigment-

zellen kommen vor, sind aber nicht zahlreich; 'Thesocyten sind

zahlreich. Längs der Wände der Einströmungskanäle finden sich

Zellen, die einzelligen anzugehören scheinen.

— (8). Siehe Schulze, F. E.

Kolb, Rudolf. Die Kieselspongien des schwäbischen Weißen

Jura. Palaeontographica, Stuttgart, vol. 57, 1910, 15, p. 141

—256, 11 Taf. — Das Vorwort (p. 141—142) bringt Angaben über

das Material ete. Der allgemeine Teil (p. 143—151) bespricht

Quenstedts Bearbeitung der Spongien, an welcher das bleibend

Wertvolle die Tafeln sind; der Text jedoch verlor von vornherein

bedeutend an Wert, da zu gleicher Zeit Zittels grundlegende

Arbeiten über Spongien erschienen. Quenstedts Einteilung ge-

schah lediglich nach der äußeren Form, ein eigentliches System

stellte er überhaupt nicht auf. Wenn auch durch Zittel ein voll-

ständiger Umschwung zum besseren eintrat (Betrachtung des

Skeletts, der Skelettelemente und des Kanalsystems), so muß

man doch trotz gewisser absprechender Urteile dem Quenstedt-

schen Verfahren einige Gerechtigkeit widerfahren lassen, da auch

Zittel in seiner Betrachtungsweise wieder etwas über das Ziel

hinausgeschossen hat. — Die Zoologen benutzen in erster Linie

nicht das Stützskelett, sondern die Oberflächen-, Dermalnadeln

zur Systematik, ein Weg, der bei den fossilen Schwämmen aus-

geschlossen ist. Verf. geht dann auf die verschiedenen Erhaltungs-

formen der Kieselschwämme des schwäbischen weißen Jura näher

ein (Verkalkung, Verkieselung), erwähnt die verschiedenartigen

Fremdkörper und ihre Deutung, sowie die unregelmäßigen Ab-

weichungen in der Form (Verzerrung, Verdrückung) und gibt am

Schluß Angaben über die Verbreitung nebst einer Übersichts-

Publikationen und Referate. 149

tabelle (p. 151). — Der spezielle Teil (p. 152 sq.) bringt die Be-

schreibung der Gatt. u. Spp. (teilweise auch Abb.) folgender

Formen: sSilicea: Ord. Hexact. OÖ. Schmidt (= Triaxonia F.E.

Schulze. Subord. Lyssacina Zitt. Fam. ? (Monakidae Marshall):

Stauractinella Zittel (= Baccispongia) (1). — Subord. Dictyonina

Zitt. Craticularidae Rauff (= Euretidae Zitt. pp.). Tremadictyon

(3+ ? sp.), Craticularia (11-+3? spp.), Sporadopyle (4), Sphenaulax

(1), Verrucocoelia (4). — Fam. Staurodermi: Subf. Stauroderminae:

Cypellia (4+1 n.sp.), Stauroderma (1). — Unterfam. Porospon-

ginae: Casearia (1+1 n.sp.), Porocypellia (1), Porospongia (3),

Cavispongia (2). — Fam. Ventriculitae: Pachyteichisma (3),

Trochobolus (1+1 n. sp.), Phlyctaenium (2). — Anhang: ? Pleuro-

stoma (sp.). — Klasse Demospongiae: Ordo Teiractinellidae Marsh.

(= Tetraxonia Schulze). Unterord. Lithistina. Trib. Tetracladina:

Protetraclis (1), Sontheimia n.g. (2 n.spp.), Rhizoietraclis n. g.

(1. n.sp.), Gen. indet. — Tribus Zutaxicladina Bauff: Mastosia

(1), Zecanella (2), Kyphoclonella n.g. (1 n. sp.). — Trib. Anomo-

cladina (Didymmorina): Cylindrophyma (1), Melonella (1). Tribus

Rhizomorina: COnemidiastrum (5+?sp. +1 n.sp.), Ayalotragos

(5), Pyrgochonia (1), Discostroma (1), Leiodorella (1), Epistomella

(1), Platychonia (3+!i+1n.sp. + ®in.sp.), Mecrorhizophora

n.g. (2 n.sp.), Rhizinia n.g. (ln. sp.), Polyrhizophora (1), Onco-

cladia. n.g. (ln. sp.). Gen. indet. — Tribus Megamorina (‚Rhabdo-

morina Rauff): Megalithisia (1+2 n.spp.), Placonella (1), Ano-

morphites n. g. (2 n. spp.). — Subord. Choristina: Trib. Astrophora

Sollas. Subtr. Sterrastrosa Sollas. Fam. Rhaxellidae: Rhazxella. —

Trib. Megasclerophora: * Fam. Tethyopsillidae: Discispongia n.g.

(1 n.sp.). Ordo Monactinellida = Monaxonia F.E.S.: Opetio-

nella (2). Anhang: Spongiennadeln aus dem Weißjura von

Nattheim p. 254. — Verzeichnis der benutzten Literatur (p. 255

— 256). 50 Publ. (alphab.). Hieran schließen sich die Tafeln nebst

Erklärungen.

Korschelt, E. u. Heider, K. Lehrbuch der vergleichenden

Entwicklungsgeschichte, 1910, Lief. 4. Ungeschlechtliche Fort-

pflanzung. Porifera p. 475—493.

Kudelin, N. Kp hayus ry6okp HYepHaro Mmopa (Onecckaro

3amB&). [Zur Frage der Spongien des Schwarzen Meeres.] M&m.

Soc. nat. Odessa, T. 35, 1910, p. 140, Taf. I u. I.

von Lendenfeld, Robert (1). The sponges. 1. The Geodidae.

Reports on the scientific results of the Expedition to the eastern

tropical Pacifie by the ‚Albatross‘‘ 1904—1905 and 1888—1904.

21.) Mem. Mus. Comp. Zool. Harvard Coll. Cambridge Mass.,

vol. 41, 1910, p. 1—259, pls. I—XLVIIl.

— (2). The sponges. II. The Zrylidae. Reports on the

scientific results of the Expedition to the eastern tropical Pacific

by the ‚Albatross‘‘ 1904—1905 and 1888—1904. 21.) t. c., p. 261

— 323, pls. I—-VIU.

150 Spongiae für 1910.

Lundbeck, W. Desmacidonidae (Pars). The Danish Ingolf

Expedition, vol. VI, Pars 3, 1910, p. 1—124, pls. I—XI. — Fam.

Desmacidonidae: Subf. 1. Mycalinae Gruppe 2. Myailleae:

Tedania (1), Histoderma (2), Histodermella (2 n.spp.), Inflatella

(2), Cornulum (1), Bemerk. zu den 4 Gattungen. Grayella (2+1

n. 8p.). Zusammenstellung der 24 Gr.-Spp. und ihre Spiculae etc.

— Subfam. 2. Ectyoninae: Hymedesmia (7444 n.spp.); Über-

sichtstabelle über die Hym.-Spp.; Hymenancora (4 n. spp.), Lepto-

labis (1 n.sp.). Hieran schließen sich die Tafeln nebst ihren Er-

klärungen. Dem Bande ist eine Liste der Stationen nebst An-

gabe der geographischen Lage etc. beigegeben.

Maas, Otto (1). Über Involutionserscheinungen bei Schwämmen

und ihre Bedeutung für die Auffassung des Spongienkörpers. fIn:

Festschrift für R. Hertwig. Bd.3.] Jena, (G. Fischer), 1910,

p- 93—130, 3 Taf.

— (2). Über Nichtregeneration bei Spongien. Archiv f.

Entwicklungsmechanik, Leipzig, Bd. 30, 1910, Teil 1, p. 356—378.

— Nach einleitenden Bemerkungen und Fragestellung beschreibt

Verf. den anatomischen Bau des verwendeten Objekts Chon-

drosia reniformis, (im Mittelmeere häufig). Bei diesem Schwamme

sind Mark und Rinde deutlich unterscheidbar und leicht von

einander zu trennen, was für die anzustellenden Versuche von

Vorteil ist. Zur Ausführung der Experimente wurden Schwämme

mittleren Alters von etwa 2—3 cm Durchmesser gewählt und

daraus Ausschnitte verschiedener Größe und verschiedenen Ge-

webematerials von etwa 2—5 mm hergestellt, a) solche, die Rinde

und Mark, b) solche, die nur Rinde allein, ce) solche, die nur Mark

allein enthielten. Unter diesen drei Kategorien lassen sich noch

verschiedene Variationen anstellen. Von jeder der drei Haupt-

sorten der Ausschnitte wurden Stücke mit einem unversehrten

kleinen Kontrollexemplar der O'hondrosia in je ein Glas zusammen-

getan und unter verschiedenen Bedingungen (mit und ohne

Lüftung, verschiedener Helligkeit etc.) gehalten. Das äußere

Resultat ist ein durchaus eindeutiges. a) Die aus Mack und Rinde

bestehenden Stücke überleben sämtlich, stellen die äußere Form

sowohl wie die äußerlich sichtbaren Teile des Kanalsystems

(Osculum) nach kürzerer Zeit wieder her, ersteres durch Um-

biegung, Umrollung des gesamten Körpers von außen, letzterer

durch eine entsprechende innere Umlagerung. Ein besonderes

Wachstum tritt zber auf dem Anschnitt nicht ein, trotzdem alle

Gewebe an ihm vorhanden sind. b) Die nur aus Mark allein be-

stehenden Stücke sind ebenso lebensfähig, bekommen einen

Rindenüberzug, der aber keine völlige Neubildung zu sein braucht;

denn ähnliche Gewebselemente wie in der Rinde, liegen

auch in dem ausführenden Kanalsystem im Mark. Ein besonderes

Wachstum zeigen auch diese Stücke nicht. ce) Die nur aus Rinde

bestehenden Stücke sind nicht lebensfähig, können sich nur kurze

Zeit halten, niemals aber, auch bei etwaigen Versuchen der Re-

Publikationen und Referate. 151

organisation und Selbstverkleinerung, ein wirkliches Markgewebe

erzeugen. Ihr Absterben wird höchstens etwas aufgehalten, wenn

Markreste ihnen anhaften. Die folgenden Seiten (p. 364—371)

geben an der Hand von 2 Figg. (3 u. 4) das Resultat der histo-

logischen Untersuchung der Regenerate und Nichtregenerate

wieder. — In allen Fällen kann Verf. einen auffälligen Mangel

an Ersatzfähigkeit feststellen. Dieser Mangel ist zweierlei Art:

einmal eine überhaupt äußerst schwach entwickelte Fähigkeit der

Neubildung aller Gewebe überhaupt, auch von Gleichem aus

Gleichem ; das andere Mal ein völliges Versagen von Neubildungen,

auch aus andersartigem oder ursprünglich indifferentem Material

(letzteres bei Stücken, die nur aus Rinde bestehen). Verf. sucht

die Ursachen dieser Erscheinung zu ergründen. Er untersucht,

ob der verschiedene Gehalt an Zellsorten bei Rinde und Mark

(Archäocyten, Zellen der Geißelkammern) dafür verantwortlich

zu machen ist und findet den Grund in der geringen Ausprägung

der Individualität beim Spongienorganismus. Jeder Schnitt, der

sämtliche Gewebe besitzt, ist gewissermaßen ein Ganzes. Er

braucht nicht ‚Organe‘ im Sinne der Organe der höheren Tier-

gruppen neu zu bilden, sondern nur Umlagerungen von Zellen

und Zellgruppen vorzunehmen. Es handelt sich hier um ‚„Mechano-

morphosen“ (im Sinne Rouxs) und gar nicht um eigentliche Re-

generate. Zum Schluß folgt (p. 376—378) ein umfangreiches

Literaturverzeichnis.

Minchin, E. A. siehe Robertson.

Nagai, M. Tonasu no ranshi no jusei narabi ni sono bunkatsu

ni tsuite. [On fertilisation and cleavage of Tetilla egg.] Dobuts.

Z., Tokyo, vol. 22, 1910, p. 76—85.

.... Neuberg, Carl. Beobachtungen an Jodproteinen. Anhang 1.

Über Spongin. Bearb. von L. Scott. Anhang 2. Über eine

Fehlerquelle bei der Jodbestimmung in organischen Verbindungen.

Biochem. Zeitschr., Berlin, Bd. 27, 1910, p. 261—270.

Parker, 6. H. The reactions of sponges, with a consideration

of the origin of the nervous system. Journ. Exper. Zool., Phila-

delphia, vol. 8, 1910, p. 1—41.

TRenngarten, V. O dayk&5 MEIOBBIXBb U TUTOHCKUXB OTAO-

’KeHiä TO-BOCToyHaro ‚larecraHa. [Sur la faune des depöts

eretaces et tithoniques du Daghestan sud-oriental.] Bull. com.

geol. St. Peterburg, T. 28, 1909 [1910], p. 637—688, + Res.

frane. p. 685—686, Taf. XX u. XXI.

Robertson, Muriel and Minchin, E. A. The division of the

collar-cells of Olathrina coriacea (Montagu): a contribution to the

theory of the centrosome and blepharoplast. Quart. Journ. Mier.

Seience, London, vol. 55, p. 611—640, 2 pls.

Scharff, R. F. On the evidences of a former land bridge

between northern Europe and North America. Proc. Roy. Irish

Acad., vol. 28, B., 1909—1910, p. 1—28.

152 Spongiae für 1910.

7Schrammen, A. Die Kieselspongien der oberen Kreide von

Nordwest-Deutschland. Teil 1. Tetraxonia, Monaxonia und

Silicea incert. sedis. Lief. 1—2. Palaeontographica, Stuttgart,

Suppl. 5, 1910, p. 1—175, 24 Taf.

Schulze, Franz] Efilhard], and Kirkpatrick, R. Preliminary

notice on Hexactinellida of the Gauss-expedition.e Zool. Anz.,

Bd. 35, p. 293—302. — 7 neue Spp., 4 neue Subspp., und zwar

Hyalonema (1), Caulophacus (1), Rossella (4+2 subspp.), Aulo-

rossella (1 n.sp. + 1 n. subsp.), Chonelasma (1 n. subsp.).

Sharp, E. W. (1). Additional sea anemones and other notes

on marine Zoology. Trans. Soc. nat. sci., Guernsey, 1909,

p. 479—481.

— (2). Additions to the Guernsey list of sponges. op. cit.,

1910, p. 173—175.

Sollas, J. B. J. Porifera or Spongida. Zool. Record, London,

vol. 46, 1909 [1910], No. 3. 8 pp. — Jahresbericht.

+Taylor, T. Griffith. The Archaeocyathinae from the Cambrian

of South Australia, with an account of the morphology and

affinities of the whole class. Mem. Roy. Soc. Adelaide, S. Australia,

vol. 2, 1910, p. 55—188, 16 pls.

Topsent, E. (1). Description d’une variete nouvelle d’eponge

d’eau douce (Ephydatia fluviatilis Auct. var. syriaca Tops.). Bull.

soc. amis sci. nat. Rouen, T. 45, 1910, p. 17—21.

— (2). Les Hexasterophora recueillis par la Scotia dans

l’Antaretique. Bull. Inst. ocean. Monaco, No. 166, 1910, p. 18.

— (3). Development of sponges from tissue cells outside

the body of the parent. Bull. Bureau Fish., vol. 28, 1910, p. 1265

—1271.

‘ Urban, F. Zur Kenntnis der Biologie und Cytologie der

Kalkschwämme (Familie Clathrinidae Minch.). (Vorl. Mitt.)

Internat. Rev. Hydrobiol., Leipzig, Bd. 3, 1910, p. 37—43.

Weber-Van Bosse, Anna. Sur deux nouveaux cas de sym-

biose entre algues et eEponges. Ann. Jard. bot. Buitenzorg, 3m® Sup-

pl&ment, 1910, p. 587—593, 2 pls.

Welter, 0. A. Die Pharetronen aus dem Essener Grünsand.

Verhdlgn. d. nat.-histor. Ver. d. preuß. Rheinlande und West-

falens, Bd. 67, 1910, p. 1—78.

Weltner, W. (1). Spongillidae. (Die Fauna Südwest-Australiens

hrsg. von W. Michaelsen u. R. Hartmeyer, Bd. 3, Lfg. 5.) Jena,

(G. Fischer), 1910, p. 135—144.

— (2). Spongiae für 1908. [Jahresbericht.] Archiv £.

Naturg., Berlin, Jhg. 75, Bd. 2, Hft. 3 [1910], XVII, p. 1—26. —

Ber. Naturg. nied. Tiere, Berlin, N. F., Bd. 25, 1910, p. 1—26.

— (3). Ist Astrosclera willeyana Lister eine Spongie ? Archiv

f. Naturg., Jhg. 76, Hft. 1, 1910, p. 128—134.

Wilson, H.V. A study of some epithelioid membranes in

monaxonid sponges. Journ. Exper. Zool., Philad., vol. 9, 1910,

p- 537—577.

Übersicht nach dem Stoff. 153

— (2). Die Hexactinelliden der Deutschen Südpolar-Ex-

pedition 1901—1903. (Aus dem Engl. übersetzt.) Deutsche Süd-

polarexpedition 1901—1903, Bd. 12, H.1. Berlin, (G. Reimer),

1910, p. 1—62, 10 Taf.

Zschokke, F. Die Tiefenfauna hochalpiner Wasserbecken.

Verhdlgn. Naturf. Ges. Basel, Bd. 21, 1910, p. 145—152.

Übersicht nach dem Stoff.

Jahresbericht: Sollas (für 1909), Weltner (2) (für 1908). — Literatur:

Koll (Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 255—256 [fossile Spongien]).

Morphologie.

Morphologie der Archaeocyathinae: Taylor. — Fibren bei den Pharetro-

ninae: Welter. — Hexactinelle Spieulae und ihre Benennung: Kirkpatrick

(3). — Skelett von Astrosclera willeyana: Kirkpatrick (5). — Teilweise

kieseliges, teilweise kalkhaltiges Skelett von Merlia normani: Kirkpatrick

(1). — Kanalsystem von Chondrosia plebeja: Kirkpatrick (6). — Bau der

Epidermis, der Poren, sowie der Porenkanäle bei Stylotella heliophila und

Reniera sp. indeterm.: Wilson (1). — Fehlen von Nervengewebe bei Stylo-

tella heliophila: Parker. — Involutionserscheinungen und ihre Bedeutung

für die Auffassung des Spongienkörpers: Maas. — Cytologie der Clathri-

nidae: Urban. — ‚Cellules spheruleuses‘“ bei Histodermella: Lundbeck (The

Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3, p. 15). — Spongiennadeln aus dem Weiß-

jura & von Nattheim: Kolb (Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 254,

Taf. 19, Fig. 1—39).

Physiologie.

Reaktion auf natürliche und künstliche Reize bei Stylotella heliophila

Wilson: Parker. — Druck, der durch die Tätigkeit der Choanocyten erzeugt

wird: Parker. — Methoden zum Verschluß der Poren: Wilson (1) bei

Stylotella, Reniera, Lissodendoryx). — Involutionserscheinungen und ihre

Bedeutung für die Auffassung des Spongienkörpers: Maas. — Fehler-

quelle bei der Jodbestimmung in organischen Verbindungen: Neuberg.

Entwicklung.

Eibildung, Eireifung, Befruchtung und Furchung bei den Syconen:

Jörgensen. — Involution und ihre Bedeutung für die Auffassung des Spon-

gienkörpers: Maas. — Teilung der Collarzellen bei Clathrina coriacea:

Robertson u. Minchin. — Regeneration der Epidermis bei Stylotella: Wilson

(1). — Entwieklung von Spongien aus Gewebszellen außerhalb des Körpers:

Wilson (2). — Regeneration bei Chondrosia reniformis: Maas. — Asexuelle

Vermehrung bei Porifera: Korschelt u. Heider. FR

Ethologie.

Spongilla-Arten, die in der Ebene im tiefen Wasser, im Gebirge im

seichten Wasser leben: Zschokke. — Symbiose zwischen Spongiae und

Algen: Weber-Van Bosse. — Degeneration, Symbiose mit roten Algen bei

Clathrinidae: Urban.

154 Spongiae für 1910.

Phylogenie.

Phylogenie der Spieula: Kudelin [Russisch. — Phylogenie der

Hexactinellen Spieulae: Kirkpatrick (3).

Faunistik.

Rezente Formen.

Europa.

Guernsey: Sharp (1) (Beiträge zur Liste der Porifera). (2) (Leuconia

fistulosa). — Sehwarzes Meer: Kudelin (Monazonidae, 3 neue Spp.).

Asien.

Ceylon: Annandale (3) (Spongilla proliferens). — China: Annandale

(4) (Spongilla n.sp.). — Südwest-China: Annandale (2) (Spongilla 2 neue

Spp.). — Kap Comerin: Annandale (1) (Spongilla n.sp.).

Australien.

Christmas Islands: Kirkpatrick (4) (Pharetronid. n. sp.). — Australien:

Weltner (Liste der Spongillidae). — Westaustralien: /eltner (Ephy-

detia n.Sp.).

Meeresgebiete.

Antarktischer Ozean.

Geographische Verbreitung der antarktischen Hezactinellida: Schulz

u. Kirkpatrick (2). — Antarktische Hezxasterophora: Topsent (7 neue Spp.)

— Antarktische Hexactinellida: Schulze u. Kirkpatrick (1).

Atlantischer Ozean.

Nordatiantischer Teil: Lundbeck (Halichondrina 57 neue Spp.). —

St. Helena: Kirkpatrick (6) (Chondrosia plebeia).

Pazifischer Ozean.

Verbreitung der Erylidae im pazifischen Gebiet: Lendenfeld (1)

(4 neue Spp.). — Verbreitung der Geodidae im pazifischen Gebiete: Lenden-

feld (2) (15 neue Spp,).

Palaeontologie.

Oberkreide von Nordwest-Deutschland: Schrammen (Tetraxonia:

Choristida 4 neue Spp.; Lithistida 58 neue Spp.; Monazxonia 3 neue Spp.;

Stlicea 5 neue Spp. unbestimmter Stellung). — Kreide von Daghestan:

Renngarten (Porifera 12 neue Spp.). — Grünsand (Tourtia ete.) von Essen:

Welter (9 neue Spp.). — Jura von Deutschland: Kolb (Tetractinellida,

Lithistida 15 neue Spp., Choristida 1 neue Sp., Hexactinellida 3 neue Spp.).

— Untere u. mittlere Kambrische Formation von Südaustralien: Taylor

(Verbreitung der Archaeocyathinae, 32 neue Spp.).

Systematik.

Systematische Stellung der Spongiae im Tierreich: Galiano, Bol. soc.

espaü. hist. nat., vol. 10, 1910, p. 75. — Bestimmung der zylindrischen

Schwämme, zumal derjenigen von Sontheim. Kolb, Palaeontographica,

Bd.97. Lig. d, p. 21%

Systematik. 155

I. Calearea.

A. Homocoela: vacant.

B. Heterocoela.

Rezente Formen.

Murrayona n. g. Pharetronid. Kirkpatriek, Proc. Roy. Soc. London, vol. 83

1910, p. 127. — M. phanolepis n. sp. p. 127 (Christmas Islands).

Murrayonina nov. subfam. Pharetronid. Kirkpatrick, t. c. p. 127. — Gatt.

Murrayona n. 2.

Pharetronidae. Historischer Überblick. Kirkpatrick, t. c. p. 124.

Pharetrones L. Kurze Übersicht. Welter, Verhdlgn. naturhist. Ver. preuß.

Rheinlande u. Westfalens, Bd. 67, p. 12.

Sycandra raphanus. Eibildung, Reifung, Befruchtung, Furchung der

Syconen. Jörgensen, Archiv f. Zellforschung (Leipzig), Bd. 4, 1910,

p- 163. $

Fossile Formen.

TPachymura n. g. der Inozoa Steinmann. Welter, Verhdlgn. naturhist. Ver.

preuß. Rheinlande u. Westfalens, Bd. 67, p. 58. — P. goldfussi n. sp.

p- 58 (Grünsand von Essen).

TPachytilodia pomum Schlüter n.sp. Welter, t.c. p. 62 (Grünsand von

Essen).

TPetrostroma goldfussi nom.nov. für Lithothamium goldfussi Gümbel.

Welter, t.c. p. 38. — P. digitata n. sp. p. 38 (Grünsand von Essen).

TPharetrones L. Kurze Übersicht. Welter, t. ce. p. 12.

tPlectroninia. Über die Verwandtschaft mit den älteren Spongiae. Welter,

t.c. p. 27. — P. assindiae n.sp. p. 27 (Grünsand von Essen).

TPorosphaerella n.g. Welter, t.c. p. 23. — P. subglobosa n. sp. p. 23, mit

den neuen Varr.: var. stromatoporoides n., var. expansa n., var. columella

n. und var. socialis n. p. 25—27.

1Sagittularia n.g. Lithonin. Welter, t.c. p. 34. — S. adfixza n. sp. nebst

var. expansa n. p. 34 (Grünsand von Essen).

1Steinmanella n. g. (Type: St. biformis F. A. Römer). Welter, t.c. p. 66

— St. latidorsata n. sp. p. 66. — St. crassa n. Sp. p. 66 (beide aus der

Tourtia von Essen).

TTrachytila n.g. Welter, t. c. p. 64. — T. tuberosa n. sp. p. 64 (Grünsand

von Essen).

il. Myxospongidae.

Chondrosia plebeja O. Schmidt. Morphologie u. Anatomie. Kirkpatrick.

Proc. Zool. Soc. London, 1910, 1, I, p. 128—130. — Zur Gatt. Chon-

drosia gehören CO. reniformis Nardo, C. plebeja O. Schmidt, C. ramsayi

C. reticulata Carter (= C. collectrix Lendenfeld = C. spurca Carter).

vor der Atlantischen Küste von Marokko, 60 Faden; Grand Canary

auf Felsen zur Zeit der Ebbe, St. Helena, 30 Faden. — Die von den

Christmas Isl. (1900) als C. plebeja bezeichneten Stücke gehören

Maas, Archiv f. Entwicklungsmechanik, Bd. 30, 1910, p. 358.

156 Spongiae für 1910.

III. Hexatinellida.

Terminologie der Hexactinelliden-Nadeln, Einführung neuer Termini.

Schulze u. Kirkpatrick, Deutsche Südpolar-Expedition, Bd. 12, p. 7. —

Hexactinelliden-Nadeln und ihre Benennung. Kirkpatriek, Ann. Nat.

Hist., ser. 8, vol. 5, p. 208 u. 347.

A. Lyssaeina.

Acoelocalyx n.g. Euplectell.,brucei n. sp. Topsent, Bull. Instit. ocean. Monaco»

1910, p. 5—8 (64° 48’ südl. Br. 44% 25’ westl. L., 2485 Faden Tiefe)-

Anozycalyx üimai Kirkp. Die sogen. Strobilokomen sind Makro-Disko-

hexaster von 165—255 p Durchmesser. Verf. macht den Vorschlag,

diese Spieulae mit strobiloidem Kapitulum und einigen Verticillae von

mit Disken versehenen Endstrahlen „Makrostrobilokomen“

zu nennen. Ebenso verlangen die sogen. Graphiokomen von 4. “ıimai

eine neue Bezeichnung, und wird der Name ‚„Pappokom‘“ für diese

Spieulae mit sehr divergenten Büscheln schlanker Strahlen vor-

geschlagen. Die großen Mikrodiskohexaster haben einen Durchmesser

von 120 p., nicht 60 p., wie im „„Discovery‘‘ Report steht. Auf Grund

der Untersuchung der Strahlen ist die Definition der Gattung so zu

ändern: Oxyhexaster fehlend oder äußerst selten. Die Gattung ist

zu den Rossellinae zu stellen. Schulze u. Kirkpatrick, Zool. Anz., Bd. 35,

p. 301—302.

Aulorossella Kirkp. Die Gatt. wurde für die 3 Spp. der antarktischen

‚Rossellinae aufgestellt und charakterisierte sich durch den Besitz von

3 Arten von Diskohexastern und oxypentaktinen Hypodermalia mit

kurzen, gabelähnlichen Strahlen, die mit dem Schaft einen spitzen

Winkel bilden ete. Dadurch, daß bei einer Var. die hypodermalen

Pentaktinen und Büschel von diaktinen Pleuralia vorhanden sind, be-

darf die Gattungsdiagnose einer geringen Verbesserung und lautet

nunmehr: „Rossellinae.... with or without hypodermal pentactins,

these spieules when present having short smooth pronglike tangential

rays making an acute angle with the radial ray“. F.E. Schulze u.

Kirkpatrick, Zool. Anz., Bd. 35, p. 300. — A. vanhoeffeni n. sp. p. 300

—301 (Gauss-Exp.). — 4. vanhoeffeni subsp. p. 301 (Gauss-Exp.,

380—385 m). — Diagnostische Tabelle der Aulorossella-Formen:

A. mit seichter gastraler Höhle: 1 A. longstaffi Kirkp. — B. mit

tiefer gastraler Höhle: a) mit zahlreichen Oxyhexastern mit langen

Hauptstrahlen u. 4 dornähnlichen Endstrahlen unter den Auto-

Gastralia A. pilosa Kirkp. — b) Ohne Oxyhexaster unter den Auto-

Gastralia: 1 mit vorwiegend pentaktinen Auto-Gastralia A. levis

Kirkp. — Nur mit hexaktinen Auto-Gastralia: A. vanhoeffeni n. Sp.

Bathydorus levis F.E. Sch. var. citraius n. Topsent, Bull. Instit. oc&an.

Monaco, 1910, p. 15—16 (69° 33’ südl. Br., 15° 11‘ westl.L. u. 2620

Faden Tiefe und 71° 22’ südl. Br., 16° 34’ westl. L., 1410 Faden Tiefe).

Calycosoma validum F. E. Sch. Bemerk. dazu. Topsent, Bull. Instit. ocean.

Monaco, 1910, p. 17—18 (62° 10’ südl. Br., 41° 20’ westl. L., 1775 Faden

Tiefe).

Systematik. 157

Caulophacus antarcticus n.sp. F.E. Schulze u. Kirkpatrick, Zool. Anz.,

Bd. 35, p. 295—296 (Nordwestl. der Gauss-Exped.-Station 2450 —

3397 m). — C. scotiae n.sp. Topsent, Bull. Instit. oe&6an. Monaco

1910, p. 10. — C. instabilis n. sp. p. 12.

Doeosaccus n. g. Euplectell., ancoratus n. sp. Topsent, Bull. Instit. ocean.

Monaco, 1910, p. 8 (64° 48° südl. Br., 44° 25° westl.L., 2485 Faden

Tiefe).

Hyalonema drygalskii n.Sp. (ist nach der von F.E. Schulze [Valdivia, Hezxact.

1904, p.161, 163] aufgestellten Übersicht leicht von den 45 bereits be-

kannten Spp. zuunterscheiden. Sie gehört zu einer Gruppe von 5 Spp., bei

denen die Umbrellae der Makramphidisken schaufelförmig sind und

lanzettförmig zugespitzte Enden aufweisen, und die Mikro-Oxyhexaetinen

stark gekrümmte Strahlen haben. Bei 7. apertum F.E.Sch. sind die

Strahlen der Oxyhexactinen rauh. H. elegans F. E. Sch. und HZ. gracile

unterscheiden sich durch den Besitz von Makramphidisken mit halb-

eiförmigen Umbrellen und langen Zähnen. FH. masoni hat autodermale

Pinuli mit pappelbaumähnlichen Pinularstrahlen, und H. lametta F.E.

Schulze hat seine Makramphidisken im Parenchym zerstreut, wohin-

gegen sie bei H. drygalskii vertikal zur Oberfläche orientiert sind. Be-

sondere Züge der neuen Sp. sind: die geringe Größe der Makramphi-

disken und das gänzliche Fehlen der autogastralen Pinuli.) F.E.

Schulze u. Kirkpatrick, Zool. Anz., Bd. 35, p. 233—295 (Gauss-Exped.

Station 24. XI. 1903, 2725 m).

Malacosaccus pedunculatus. Topsent, Bull. Instit. oc&an. Monaco, 1910,

p. 1—3 (71° 22° südl. Br;, 16° 34° westl. L., 1410 Faden Tiefe). — M.

\‚coatsi n. sp. p. 3—5 (Fundort wie zuvor).

Rossella antarctica subsp. gaussi n. F. E. Schulze u. Kirkpatrick, Zool. Anz.,

Bd. 35, p. 296 (Gauss-Station, 350—380 m). — 2. racovitzae subsp.

minuta n. p. 296—297 (Gauss-Station, 330—385 m Tiefe). — M.

hexactinophila Kirkp. (Discovery Report, Hexactin. p.12) ist eine

Subsp. von racovitzae Topsent und als M. racovitzae subsp. hezxactino-

phila Kirkp. zu führen, p. 297. — M. gaussi n. sp. p. 297 (Gauss-

Station, 350—380 m Tiefe). — M. Iychnophora n. sp. (gehört zur M.

racovitzae-Gruppe) p. 298 (Gauss-Station 27. IX. 1902, 385 m). — M.

fibulata n. sp. (nur in 3 kleinen Bruchstücken vorhanden. Gehört zur

„racovitzae“-Gruppe (p. 2938—299). — M. mizta n.sp. (gehört zur

Ozydiactina-Gruppe und scheint der Ausgangspunkt einer Gruppe zu

sein, die einerseits zu R. podagrosa Kirkp. und R. nuda Topsent, andrer-

seits zu Aulorossella vanhoeffeni subsp. armata n. und A. vanhoeffeni

n. sp. führt) p. 299 (Gauss-Station 8. XT. 1902, 350 m).

B. Dietyonina.

Rezente Formen.

Chonelasma lamella subsp. choanoides n. F.E. Schulze u. Kirkpatrick,

Zool. Anz., Bd. 35, p. 302 (Station nordwestl. der Gauss-Station, aus

Tiefen von 2450—3397 m).

158 Spongiae für 1910.

Fossile Formen.

+Cascaria Quenst. Charakt. der Gatt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lief. 5, p. 186. — CO. articulata Bourquet sp. p. 187, Taf. 12, Fig. 15

—22, Taf. 13, Fig. 1-6. — C. depressa n. sp. p. 188—189, Taf. 20,

Fig. 2 u. Textfig. 9 (vermutlicher Längsschnitt) (Weißjura d. Hossingen).

iCypellia Pomel. Charakt. Von den durch Quenstedt aufgestellten Arten

kann Kolb, t. c. p. 176—177, nur 3 Spp. aufrechterhalten. — C. rugosa

Goldf. sp. Charakt. etc. p. 177—181, Taf. 11, Fig. 17—22; Taf. 12,

Fig. 2—11, auch Textfig. 4—8. — 0. imberbis Quenst. p. 181. — C.

grandis n. sp. (schließt sich auch an Cyp. rugosa an) p. 181, Taf. 20,

Fig. 1 (Fundort ?, doch ist unschwer auf Weiß y oder dö von Heuberg

zu schließen). — C. trabeculata Quenst. gehört vielleicht zu einer

eigenen Gattung, p. 182. — C. prolifera Zitt. sp. p. 182—184. Charakt.

dieser Formen aus dem Weißjura.

-tTrochobolus Zittel. Charakter. Kolb, t. cc. p. 201. — T. texatus Goldf. sp.

p. 201—202. — T. dentatus n. sp. p. 202, Taf. 20, Fig. 3, 4 (Weißjura &,

Sontheim).

IV. Gemospongiae.

A. Tetractinellida.

1. Choristida.

Rezente Formen.

Erylus. Lendenfeld beschreibt im Mem. Mus. Comp. Zool. Harvard, vol. 41:

E. oxyaster n. sp. p. 268—272, pl. III, IV (Galapagos-Inseln). — £.

sollasii n.sp. p. 272—290, pls. I—III (Hawaiische Inseln). — E.

rotundus n.sp. nebst den folg. neuen Varietäten von Hawaii, p. 290

— 310, pls. V—-VIII: E. rotundus var. megarhabda n., E. rotundus var.

typica n., E. rotundus var. cidaris n., (sämtlich von den Hawaiischen

Inseln). — E. calliculatus n. sp. p. 310—315, pls. V—-VIII (Hawaiische

Inseln).

Geodia variospiculosa. Neue Varietäten aus Japan. Lendenfeld, t.c. p. 55

— 71, pls. XVII—XIX: var. intermedia n. und var. micraster n. —

G. atazastra n. sp. p. 79sq. Neue Varr. p. 79—95: G. atax. var. an-

gustana n. und var. latana n. (alle drei Formen aus Panama). — @.

mesotriaena n.sp. p-. 96sq., pls. XXI—XXXV (auf der Höhe von

Kalifornien). — @. mesostr. var. pachana n., G. mesostr. var. microana

n. und @. mesostr. var. megana n. (sämtlich auf der Höhe von Kali-

fornien). — @. agassizüi n. sp. p. 113—151, pl. XXVI—XXXIV (West-

küste von Nordamerika). — G@G. mesostriaenella n.sp. p. 151—155,

pl. XXXIV—XXXV (auf der Höhe von Kalifornien). — @. breviana

n. sp. p. 155—161, pls. XXXV—XXXVI (Kalifornien). — @. ovis n. Sp.

p. 161—170, pls. XL—XLII (Kalifornien). — @. micropora n. Sp.

p. 170—175, pls. XXXVI—XXXVI (Galapagos-Inseln). — @. amphi-

strongyla n. sp. p. 175—181, pl. XX (Easter Isl.). — @. lophotriaena

n. sp. p. 181—187, pls. XLVII—XLVIII (Neu-Seeland). — @. acanth-

tylastra n. sp. p. 188—193, pl. XLV—XLVII (Unter-Kalifornien). —

Systematik. 159

@. globostellifera n. sp. p. 231 (Ridle). — @. hülgendorfi var. typica n.

p. 237 (Japan).

Geodinella robusta n. g. mit den Varr. var. megasterra n., var. carolae n. und

var. megaclada n. Lendenfeld, t. c. p. 205—219, pls. I—IV (Westküste

von Nordamerika).

Sidonops. Lendenfeld behandelt t.c. folgende Formen: SS. californica

n.sp. p. 18, pl. V (Unter-Kalifornien). — S. angulata n. sp. p. 24 sg.

mit den Varr. $. ang. var. megana n., S. ang. var. microana n., S. ang.

var. orthotriaena n. p. 24—40, pls. XII—XV. — $. ozxyastra n. Sp.

p- 40—46, pls. VI—VIII (Galapagos-Inseln). — S. bicolor n. sp. p. 46

—55, pls. IX—XI (auf der Höhe von Kalifornien).

Fossile Formen.

+Discispongia n.g. Tethyopsillid. (Der einzige choristine Schwamm [ab-

gesehen von Rhaxinia] und zugleich der erste, der im Zusammenhang

im weißen Jura gefunden wurde). Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lfg. 5, p. 251—252. — D. unica n.sp. p. 252—253, Taf. 18, Fig. 26

—42; Taf. 21, Fig. 16 (Weißjura e, Sontheim).

tGeodiopsis n.g. (Geodia nahest.). Schrammen, Palaeontologie, Suppl. 5,

p- 117—118. — @. microthrinax n.sp. (Kreide von Deutschland).

tPropachastrella n.g. (Type: Pachastrella primaeva Zittel. Schrammen,

b20.1.D..7};

tStolleya florida n.sp. Schrammen, t.c. p. 54 (Kreide von Deutschland).

TTetillopsis n. g. Tetillid. Schrammen, t.c. p. 49—50. — T. döringi n. sp.

u. T. longitridens n. sp. (beide aus der Kreide von Deutschland).

iTheneopsis nom. nov. Tethyopsis Zittel. Schrammen, t.c.p. 54.

2. Lithistida.

Fossile Formen.

Gen. indet. Teiraclad. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5,

p- 209—210, Taf. 21, Fig. 7—9 (Weißjura &, Sontheim). — Gen. ined.

Rhizomor. Kolb, t. c. p. 245, Taf. 20, Fig. 30, 31 (Weißjura &, Sontheim).

tAcrochordonia auricula n. sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5

p- 97 (Kreide von Deutschland).

jAnomorphites n.g. Megamor. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, p. 249,

' Taf. 18, Fig. 16—25. — A. plicatus n. sp. p. 249, Taf. 18, Fig. 16—20;

Taf. 21, Fig. 5 (Weißjura e, Sontheim). — 4. trigonus n. sp. p. 249,

Taf. 18, Fig. 21—25; Taf. 21, Fig. 6 (beide aus dem Weißjura & von

Sontheim).

jAulaxinia. Sehrammen beschreibt in der Palaeontographica, Suppl. 5,

p. 78—79: fallax n.sp., A. melo n.sp., 4. ventricosa n.sp. und A.

sulcifera subsp. maliformis n. (sämtlich aus der Kreide von Deutschland).

tBrochodora suhg. nov. für Doryderma Zittel. Schrammen, t.c. p. 58.

jCavispongia Quenst., gen. incert. sedis. Charakt. Kolb, Palaeonto-

graphica, Bd. 57, Lief. 5, p. 191—194, Taf. 13, Fig. 9—21; Taf. 14,

Fig. 1—3. — C. porata Quenstedt. Charakt. p. 194—196, hierzu

Textfig. 10—12. — C. cylindrata Quenst. p. 196—197, Textfig. 13—15

(beide aus dem Weißjura).

160 Spongiae für 1910.

tChalaropegma n.g. Megarhizid. Schrammen, t.c. p. 168. — Oh. cerebri-

formis n. sp. p. 168 (Kreide von Deutschland).

YOnemidiastrum Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p- 217—218. — stellatum Goldf. sp. Literatur u. Beschreib. p. 218

—219. Aufzählung der Quenstedtschen Varr. von Goldfussi, p. 218

(schwäbisener Weißjura). — C. striato-punctatum Goldf. sp. p. 220. —

C. rimulosum Goldf. Beschr. p. 220—221. — C.? sp. vom Heuberg,

Weißjura 6, p. 221. — CO. pluristellatum Zitt. Literatur u. Beschr.

p. 221—222, Fig. 183—20 Längsschnitte u. Umrisse (Weißjura d, Heu-

bers). — CO. variabile n.sp. p. 222—223, Taf. 15, Fig. 28. Taf. 16,

Fig. 1. Taf. 20, Fig. 18—21 (Weißjura e u. 5). — On. ef. tuberosum

Münst. p. 223—224. — Cn. cf. cancellatum Münst. sp. p. 224. — Cn.

cf. baccatum Quenst. p. 224 (sämtlich vom Weißjura).

tCoelosphaeroma n.g. KRhizomorinid. Schrammen, Palaeontographica,

Suppl. 5, p. 159. — C. appendiculata n. sp. p. 159 (Kreide von Deutsch-

land).

+Oollosolacis n. g. Schrammen, t. ce. p. 103. — C. plicata n. sp. p. 103 (Kreide

von Deutschland).

+Coscinostoma n. g. Rhizomorinid. Schrammen, t.c.p. 162. — C. fragilis

Deutschland).

Craterella auricula n. sp. Schrammen, t.c. p. 30 (Kreide Deutschlands).

+Oraticularia Zitt. Synmon., Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lfg. 2, p. 15”—158, Taf. 11, Fig. 11. 12. Zahl der Arten u. Varr. eine

p-. 159. — C. parallela Goldf. sp. p. 159—161. — C. procumbens Goldt.

sp. p. 161. — C. rhizoconus Quenst. sp. p. 161—162. — C. reticalica

Quenst. sp. p. 162. — Cr. ef. culeus Quenst. p. 162—163. — Or. cf.

leptophyllus gigas Quenst. p. 163. — Cr. ef. Schweiggeri Goldf. p. 163.

— C. foliata Quenst. p. 164. — Or. ef. Schlotheimii Quenst. (non Goldf.)

p. 164—165. — C.? sp. (ef. Discus Quenst.) p. 165. — C.? sp. p. 165.

— (C.? sp. p. 165—166. Literatur u. Beschreib. zu allen diesen Formen,

die aus dem schwäbischen Weißjura stammen.

+Cycloclema n.g. (Type: Rhagadinia compressa Hinde),. Sehrammen,

Palaeontographica, Suppl. 5, p. 105.

}Cylindrophyma Zitt. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5,

p. 213, Taf. 15, Fig. 12—18. — C. milleporata Goldf. sp. p. 213—215

(Weißjura).

+Cytoracea costata n. sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5,

p. 155. — C. rimosa n. sp. p. 155. — C. turbinata n. sp. p. 155.

Dactylotus n.g. Sehrammen, t.c. p. 115. — D. micropelta n. sp. p. 115

(Kreide von Deutschland).

+Discodermia colossea n.sp. Schrammen, t.c. p. 98. — D. glebra n. sp.

p- 98 (beide aus der Kreide von Deutschland).

+Discostroma Zittel lehnt sich etwas an Pyrgochonia, vielleicht mehr noch

an Hyalotragos rugosum an. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lig. 5, p. 234. — D. intricatum Quenst. sp. p. 234 (Schwäbischer

Weißjura).

Systematik. 161

1Doryderma. Schrammen beschreibt in d. Palaeontographica, Suppl. 5,

p- 59—60 folg. neue Spp. aus der Kreide Deutschlands: D. ramusculus

n.5p., D. plana n. sp., D. tuberosa n. sp., D. ficus n. sp. und D. pusilla

n. Sp.

TEpistomella Zittel.e. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p- 235—236. — E. clivosa Quenst. sp. p. 236 (Schwäbischer Weißjura

e u &., Örninger Tal, Sontheim, Sozenhausen).

THallirhoa fusiformis n. sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5, p. 95.

tHeterostinia immanis n. sp. Schrammen, t.c. p. 63. — H. depressa n. sp.

p- 63 (beide aus der Kreide Deutschlands).

1Homalodora subsp. n. für Doryderma Zittel. Schrammen, t.c. p. 59.

THyalotragos Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p- 225, Taf. 16, Fig. 2—8, Längsschnitt Textfig. 21. — H. patella

Goldf. sp. p. 226—227 (Weißjura). — H. pezizoides Goldf. sp. p. 227

—228, Längsschnitt Textfig. 22. — H. radiatum Goldf. sp. p. 228,

Taf. 16, Fig- 2. — H. rugosum Münst. sp. p. 228—229, Taf. 16, Fig. 3,

Längsschnitt Textfig. 23. — H. infrajugosum Quenst. sp. p. 231—232,

Taf. 16, Fig. 4—8. Beschreib. dieser Formen etc. (sämtlich aus dem

Weißjura von Schwaben).

TJerea gracilis n.sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5, p. 91

(Kreide Deutschlands).

TJereica. Schrammen beschreibt t.c. p. 146—148 folgende neue Spp. aus

der Kreide Deutschlands: J. excavata n. sp. J. turbo n. SP. J. oligo-

stigma n. SP.

1Kyphoclonella n. g. Eutazxiclad. (Cylindrophyma nahest.) multiformis n. sp.

Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 212—213, Taf. 15, Fig. 4

—11, Taf. 20, Fig. 14—17 u. Textfig. 17 Querschnitt (Weißjura :

Sontheim).

TLecanella Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 210

— 211. — L. pateraeformis Zitt. aus dem Weißjura &, Sontheim p. 211.

— L. flabellum Quenst. sp. p. 211—212, Taf. 14, Fig. 36; Taf. 15

Fig. 1—3 (Weißjura e&, Kienlesberg bei Ulm, Sontheim).

TLeiochonia pinguis n.sp. und L. robusta n.sp. Schrammen, Palaeonto-

graphica, Suppl. 5, p. 159—160 (beide aus der Kreide Deutschlands).

TLeiodorella Zitt. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 235.

Taf. 16, Fig. 10—12. — L. tubata Quenst. sp. p. 235 (Weißjura. Sehr

selten).

TLopadophorus n.g. Schrammen, t.c. p. 109. — L. griepenkerli n. sp. u.

L. lacunosus n. sp. p. 109—110 (beide aus der Kreide Deutschlands).

jMacrobrochus n.g. (Sphaerocadus nahest.). Schrammen, t.c. p. 174. —

M. emscheris n. sp. p. 174. — M. rimosus n. sp. p. 174 (beide aus der

Kreide Deutschlands).

1Mastosia Zitt. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 210.

— M. Wetzleri Zitt. p. 210, Taf. 21, Fig. 1 (Weißjura e&, Sozenhausen,

Gussenstadt).

TMegalithista Zittel. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 245—246,

Taf. 17, Fig. 25—49. Taf. 18, Fig. 1—11 (Schwäbischer Weißjura). —

M. foraminosa Zitt. p. 246—247, Taf. 17, Fig, 29 ete. Beschreib. (Weiß-

Archiv für Naturgeschichte 11

1911. VI. 2.

162 Spongiae für 1910.

jura &, Nattheim). Das Quenstedtsche Exemplar stammt angeblich

aus „Franken“, welche Angabe aber unrichtig ist. — M. Quenstedtii

n. sp. p; 247—248, Taf. 18, Fig. 1—11 (Weißjura &, Örninger Tal). —

M. minuta n. sp. p. 248 (Weißjura &, Sontheim).

}Melonella Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5,

p. 215—216, Taf. 15, Fig. 19—26. — M. radiata Quenst. p. 216—217.

Taf. 15, Fig. 27 (schwäbischer Weißjura).

+Microrhizophora n. g. Rhizomorin. Kolb, t.c. p. 241, Taf. 16, Fig. 19, 20.

— M. pentagona n. sp. p. 241, Taf. 20, Fig. 25, 26 (Weißjura &, Sont-

heim). — M. platyformis n. sp. p. 242, Taf. 20, Fig. 27 (Fundort wie

vorige). {

+Myrmeciophytum n. g. (Type: Stellispongia verrucosa Roem.). Schrammen,

Palaeontographiea, Bd. 57, Lfg. 5, p. 80.

+Oncocladia n. g. Rhizomor. (Platychonia nahest.) mit sulcata n.sp. Kolb,

Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5, p. 244—245, Taf. 17, Fig. 16—24;

Taf. 21, Fig. 4 (Weißjura &, Sontheim).

+Pachypoterion koeneni n. sp. u. P. auritum n. sp. Schrammen, Palaeonto-

graphica, Suppl. 5, p. 63—64 (beide aus der Kreide Deutschlands).

+Pachysalax n. g. Rhizomorinid. Schrammen, t.c. p-157. — P. processifer

n. sp. p- 157 (Kreide Deutschlands).

+Pachyteisma Zittel. Kolb, Palaeontographiea, Bd. 57, Lig. 5, p. 197—198,

Taf. 14, Fig. 4—10, Textfig. 16. — P. lamellosum Goldf. sp. Literatur

p. 198—199. — P. lopas Quenst. sp. P. 199—200. — P. linteatum

Quenst. sp. p. 200 (sämtlich aus dem Weißjura).

+Pachytrachelus n. g. Sphaerocladinid. mit exspectatus n. sp. Schrammen,

Palaeontographica, Suppl. 5, p- 170—174 (Kreide von Deutschland).

+Phalangium*) n. g. Corallistid. mit den beiden Spp. cylindratum n. sp. u.

scytaliforme n. sp. Schrammen, t.c. p. 69—70 (beide aus der Kreide

von Deutschland).

+Phlyctaenium Zittel. Kolb, Palaeontographiea, Bd. 57, Lig. 5, p. 203. —

Ph. cylindratum Quenst. sp. p. 203—204 (Weißjura d, Fridingen).

+Phymatella. Sehrammen beschreibt in der Palaeontographica, Suppl. 5,

p. 73—76 folg. neue Spp. aus der Kreide von Deutschland: P. spinosa

n.sp. u. Ph. sphaeroides n. sp.

jPlaconella Hinde. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p. 248. — P. perforata Hinde p. 248—249 (Oberer Jura [£]. Nattheim,

Württemberg). x

+Placoscytus nom. nov. für Sollasella Schram. Schrammen, Palaeonto-

graphica, Suppl. 5, p. 101.

+Platychonia Zittel. Wurde von Quenstedt mit anderen, sogar teilweise

zu den Hexactinellidae gehörigen Arten unter dem Namen Plani-

spongiae beschrieben. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lfg. 5, p. 236. — P. vagans Quenst. sp. p. 237. — P. auriformis Quenst.

sp. p. 237—238, Textfig. 27. — P.? triangula Quenst. sp. p. 238 (Weiß-

jura). — P. compressa n.sp. p. 238—239, Taf. 16, Fig. 13. Taf. 20,

*) Ist ein nom. praeocc.; wird vom Verf. laut brieflicher Mitteilung

umgetauft.

Systematik. 163

Fig. 22, 23. — ef. P. feralis Quenst. ist vielleicht mit ‚vagans‘‘ ver-

wandt, p- 2393—240. — P. osculifera n. sp. (voriger sehr nahe, wenn

nicht gar identisch) p. 240, Taf. 16, Fig. 14—18; Taf. 20, Fig. 24

(sämtlich aus dem Weißjura).

tPleurostoma sp. aus Weiß e von Sontheim. Kolb, Palaeontographica,

Bd. 57, Lig. 5, p. 204.

1Plinthodermatium n.g. Rhizomorinid. Scehrammen, Palaeontographica,

Suppl. 5, p. 158. — P. ezile n.sp. p. 158 (Kreide von Deutschland).

rPolyrhizophora Linck. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5.

p. 243—244, Taf. 17, Fig. 10—15; Taf. 21, Fig. 2, 3. — P. jurassica

Linck. Einzige Sp. p. 244—245, Taf. 17, Fig. 10—15; Taf. 21, Fig; 2

u. 3 (Weißjura &, Sontheim).

+Porocypellia Pomel (emend. Zitt.).. Charakt. Kolb, t.c. p. 186. — P.

piriformis Goldf. sp. p. 189.

tPorospongia d’Orbigny. Charakt. Kolb, t.c. p. 189—190, Taf. 13, Fig.

7, 8. — P. fungiformis (Goldf.) Zittel sp. p. 190. — P. marginata Münst.

sp. p. 190—191. — P. impressa Münst. sp. p. 191. Literatur u. Charakt.

dieser Formen aus dem Weißjure.

}Protetraclis Steinmann. Charakt. Kolb, t. c. p. 204—205, Taf. 14, Fig. 11

—20. — P. Linki Steinm. Beschreib. p. 205—206 (Weißjura e u,&

Sontheim, Nattheim).

tPycenodesma n.g. mit globosa n.sp. Schrammen, Palaeontographica,

Supp!l. 5, p. 115—116 (Kreide von Deutschland).

fPyrgochonia Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5,

p. 232, Taf. 6, Fig. 9, Längsschnitt Fig. 25, Querschnitt Fig. 24. —

P. acetabula Goldf. sp. p. 233—234 (Weißjura).

}Rhagadinia doederleinz n.sp. Schrammen, Palaeontographica, Supp!l. 5,

p- 104 (Kreide von Deutschland).

tRhazxella Hinde. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5,

p- 250, Taf. 19, Fig. 39 (auffällig ist, daß das englische Vorkommnis

dem untersten Weißjura angehört, während bei uns die obersten

Schichten die Skelettpartikel oder die Skelettpartikelchen liefern)

p- 250.

TRhizinia n.g. Rhizomorin. Kolb, Palaeontographica, Suppl. 5, p. 242

—243, Taf. 16, Fig. 21; Taf. 17, Fig. 1; Taf. 20, Fig. 28, 29 (Weißjura :,

Sontheim).

fRhizotetraclis n.g. Tetraclad. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lifg. 5,

p- 208—209. — Rh. plana n.sp. p. 209, Taf. 17, Fig. 2—9; Taf. 20,

Fig. 13 (Weißjura &, Sontheim). — Das Skelett besteht aus einem

eigentümlichen Gemisch verschiedenartiger Elemente, wie wenn der

Schwamm verschiedene Familien in sich vereinigte. Die sehr häufigen

Tetraclone, die wie bei Sontheimia einen reduzierten Arm haben,

weisen noch ganz entschieden auf die Tetracladinen hin. Wie dort,

sind auch hier die einzelnen Clone gegabelt. Von dieser Form gibt es

nun alle möglichen Übergänge, einerseits bis zu rhizomorinen, andrer-

seits bis zu eutaxicladinen Skelettelementen.

1Rhoptrum n.g. mit scytaliforme n.sp. Schrammen, Palaeontographica,

Suppl. 5, p. 104 (Kreide von Deutschland).

118

164 Spongiae für 1910.

tSeliscothon. Schrammen beschreibt t.c. p. 165—166 aus der Kreide

Deutschlands: $. pingue n.sp. u. S. planum ab. pustulosa n.

1TSiphonia. Schramm charakterisiert t.c. p. 93—95 aus der Kreide von

Deutschland: griepenkerli n. sp, SS. maliformis n. sSp., S. micropora

n.sp. u. S. fusiformis n. sp.

+Sontheimia n.g. Tetracladin. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p- 206—207, Taf. 14, Fig. 21—23. — S. parasitica n. sp. p. 207, Taf. 14,

Fig. 21—28; Taf. 20, Fig. 5—9 (Weißjura &, Sontheim). — $. perforata

n. sp. p. 207—208, Taf. 14, Fig. 29—33; Taf. 20, Fig. 10—12 (Fund-

stelle wie zuvor).

1Sphenaulax Zittel. Synon. u. Charakt. der Gatt. Kolb, t. c. p. 172—173

— 5. costata Goldf. Synonymie u. Beschr. p. 173—174; Erhaltungs-

zustand und Verdrückung der Stücke; kurze Bemerk. zu den Quen-

stedtschen Arten p. 174 (im schwäbischen Weißjura).

tTSporadopyle Zittel. Charakt. d. Gatt. Kolb, t.c. p. 166. — Die Spp.

gehören zu den am schwersten bestimmbaren (einerseits fast aus-

nahmslos schlecht erhalten, andererseits gibt es eine Reihe unsicherer

Formen). — S. obliqua Goldf. — S. pertusa Goldf. p. 168, Textfig. 1

(p. 166), 2 (p. 168). — S. texturata Schloth. p. 168—169. — S. ramosa

Quenst. sp. gehört zu den schwierigsten Vertretern unserer Schwamm-

fauna, und nirgends ist die Bestimmung schwieriger als bei dieser

Form, p. 169—172, Textfig. 3. Verf. bringt darin gleichzeitig Bemerk.

zu Klemm [Über alte u. neue Ramispongien und andere verwandte

Schwammformen aus der Geislinger Gegend in Württ. Jahresh. 39,

1883, p. 243—308].

1Stauractinella Zittel (= Baccispongia Quenst.). Einziger Vertreter der

Lyssacina im weißen Jura und wohl im Jura überhaupt. Charakt. der

Gatt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lig. 5, p. 152. — St. jurassica

Zittel p. 153, Taf. 11, Fig. 1, 2 (Weißjura).

1Stauroderma Zittel. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfg. 5,

p. 184. — St. Lochense Quenst. sp. p. 184—185. Beschr. (Weißjura).

tStichophyma robusta n.sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5,

p- 144 (Kreide von Deutschland).

Thecosiphonia. Schrammen beschreibt in d. Palaeontographica, Suppl. 5,

p- 83—85 aus der Kreide Deutschlands: 7. torgeri n.sp., T. ramosa

n.sp. und T. postumus n. Sp.

TTremadictyon. Synonymie u. Charakt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lfg. 5, p. 153—154. — T. reticulatum Goldf. sp. Literatur u. Beschr.

p. 154—155 (Weißjura a?, B—-5, Heuberg, Thüringen ete.). — T.

radiatum Quenst. sp. p. 155—156 (Weißjura ö, &, Oberdigisheim). —

T. rugatum Quenst. sp. (riesige, schüsselförmige Schwämme, von

Quenstedt nicht mit Unrecht als ‚„Megaspongiae‘‘ bezeichnet) p. 156

(Weißjura ß, Balingen, Hossingen-Unterdigisheim). — T.? sp. genaue

Bestimmung infolge des Erhaltungszustandes nieht möglich. Ein Zu-

sammenhang mit der Crat. ef. Schlotheim Qu. nicht unmöglich. p. 156

—157 (Weißjura ß der „Tübinger‘‘ Alb).

+Turonia cerebriformis n.sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5,

p. 88 (Kreide von Deutschland).

Systematik. 165

+ Verrucocoelia Etallon. Charakt. der Gatt. Kolb, Palaeontographica, Bd. 57,

Lig. 5, p. 174—175. — V. verrucosa Goldf. sp., V. gregaria Quenst. sp.,

V. bipartita Quenst. sp. u. V. caespitosa Goldf. sp. Literatur u. Charakt.

dieser 4 Formen, die möglicherweise 4 Varr. einer Sp. bilden können,

p. 175—176.

+ Verruculina cupula nom. nov. für marginata Roem. Schrammen, Palaeonto-

graphica, Suppl. 5, p. 142. — V. angulata n. sp. p. 142—143 (Kreide

von Deutschland).

Tetraetinellida incerta sedis.

Fossile Formen.

TAlloioraphium nom. nov. für Heterorhaphidites Schramm. Schrammen,

Palaeontographica, Suppl. 5, p. 125.

;Helobrachium n. g., consecatum n. sp. Sehrammen, t. c. p. 128 (Kreide

von Deutschland).

Megaloraphium n. g. Ophiraphidid. Schrammen, t.c. p. 127. — M. auri-

forme n. sp. p. 127 (Kreide Deutschlands).

tOphiraphidites. Schrammen beschreibt t.c. p. 120—123 aus der Kreide

von Deutschland: O. annulatus n. sp. u. O. ramosus n. SP.

+ Polytretia n. g. Ophiraphidid. Schrammen, t.c. p. 126. — P. seriatopora

n. sp. p. 126 (Kreide Deutschlands).

B. Monaxonida.

1. Hadromerina.

Prosuberites epiphytum. Kudelin, M&m. Soc. nat. Odessa, T. 35, 1910,

p. 27—30, pl. II, Fig. 10 (Jopsent, Golf von Odessa).

2. Halichondrina.

Rezente Formen.

Verteilung der Spp. auf die Gatt. Hisioderma, Histodermella, In-

flatella u. Cornulum. Lundbeck, The Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3,

p. 26. — Systematische Bemerk. zu diesen Gatt. p. 27—29.

Ephydatia japonica und Verwandte. Bestimmungsschlüssel. Annandale,

Proc. U. States Nat. Mus., vol. 38, p. 649. — E. fluviatilis var. syriaca

n. Topsent, Bull. Soc. Rouen, T. 45, p. 17 (Syrien). — E. multiformis

n.8p. Weltner in W. Michaelsen u. R. Hartmeyer, Die

Fauna Südwest - Australiens, Bd. 3, Lfg.5, p. 135—144 (West-

Australien).

Cornulum Cart. Charakt. Lundbeck, The Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3,

p. 22. — C. textile Cart. Literatur, Beschr. p. 22—25, pl. II, Fig. 13

—14, pl.V, Fig. 1. Bemerk. zum Embryo. (Diverse Fundorte der

Ingolf-Exped. Die Sp. ist demnach verbreitet zwischen 1° 56' und

56° 05‘ westl. L. und 61° 10‘ u. 74° 17° nördl. Br. in d. Baffin-Bay, Ost-

Grönland und um die Faröe-Inseln, in Tiefen von 116—338 Faden.

Tiefen. Gehört vorwiegend der kälteren Zone an.

Esperella lorenzii Schmidt. Spieula derselben, sowie Varietäten. Kudelin,

Möm. Soc. nat. Odessa, T. 35, 1910, p. 24—26, pl.I, Fig.6; pl. II,

Fig. 2, 3, 4.

166 Spongiae für 1910.

Grayella Cart. (= Yvesia Tops. 1892). Charakt. Lundbeck, The Danish

Ingolf Exped., vol. VI, 3, p. 29. — G. pyrula Cart. Literatur, Beschreib.

p. 30—34, pl. II, Fig. 15—19; pl. V, Fig. 2 (die Fundorte der Dänisch.

Ingolf-Exp. liegen in d. Dänemark-Straße zw. Island u. den Faröe-

Inseln und südlich von diesen). Mit Rücksicht auf die früheren Fund-

orte liegt die Verbreitung der Sp. zwischen 74° u. 38° n. Br. u. zwischen

36° westl. u. 31° östl. Länge u. bathymetrischer Verteilung von 70

— 752 Faden Tiefe. — @. gelida n. sp. (steht pyrula sehr nahe) p. 34—35

pl. II, Fig. 20; pl. V, Fig. 3 (Dän. Ingolf-Exp., Station 116, 70° 05°

nördl. L. 8° 26‘ westl.L., südl. von Jan Mayen, 371 Faden Tiefe.

Bodentemperatur —— 0°4 C.) — @. carnosa Tops. p. 36—37, pl. III,

Fig. 20—21; pl.V, Fig. 4 (Dänemark-Straße). — Liste der 24 Gr.-

Spp. nebst Angabe der Spieula und der äußeren Gestalt, p. 37—39.

Von diesen scheinen 4: G. arctica Arm. Hans., @. dura Arm. Hans,., @.

pedunculata Tops. und G@. lobata Arnesen mit @. pyrula Curt. identisch

zu sein, so daß die Zahl der Spp. 20 beträgt, von denen @. armigera

Bow. u. @. membranacea Arm. Hans. zweifelhaft sind.

Histoderma Cart. Charakt. d. Gatt. Lundbeck, Danish Ingolf Exped.,

vol. VI, 3, p. 1. — H. appendiculatum Cart. Beschreib. p. 7”—11, pl.I,

Fig. 6—11; pl. IV, Fig. 2 (Ingolf Exped., östl. von Reykjanaes Ridge,

p. 11, pl.I, Fig. 12—13; pl. IV, Fig. 3 (Fundorte der Ingolf-Exped.:

Denmark Strait und zwischen Island u. den Faröe-Inseln). Die Süd-

grenze der Sp. liegt bei 59° nördl. Breite). — Bemerk. zu den Spp.

p. 25—27.

Histodermella n.g. Desmacidonid. Lundbeck, The Danish Ingolf Exped.,

vol. VI, 3, p. 13. — H. Ingolfi n. sp. p. 14—16, pl. II, Fig. 1—4; pl. IV,

Fig. 4 (Danish Ingolf Exped.: Stat. 78, 60° 37‘ nördl. Br., 27° 52‘

westl. Länge, 799 Faden Tiefe, a. d. östlichen Senkung von Reykjanaes

Ridge). Bei dieser Sp. treten die „cellules sphöruleuses‘“ oft in un-

geheurer Zahl auf. — H. coriacea n. sp. (größer und kräftiger als vorige

Sp. Sieht, nach der Abb. u. Beschreib. von Carter, d. Phloeodietyor

birotuliferum Cart. sehr ähnlich. Diese Ähnlichkeit beruht wahr:

scheinlich nur auf einer Analogie) p. 16—18, pl. II, Fig. 5—6; pl. IV,

Fig. 5 (Fundort wie zuvor). — Weitere Bemerk. siehe p. 25—27.

Hymedesmia Bow. (= Leptosia Topsent 1892). Charakt. Lundbeck, The

Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3, p. 39—42. Ist wahrscheinlich eine

alte Gatt. p. 86. — H. Koehleri Tops. p. 42—44, pl. V, Fig. 5 (Dänisch.

Ingolf-Exped.: Fundorte bei d. Dänemark-Straße zwischen Island u.

den Faröe-Inseln, sowie östlien von diesen). Gegenwärtig also bek.

vom 66°—38° nördl. Br. u. zwischen 2° u. 31° westl. Länge mit einer

bathymetr. Verbreitung v. 138—1350 Faden Tiefe). — H. lacera n. sp.

p. 44—45, pl.V, Fig.6 (Station 113 der Dänisch. Ingolf-Exped.:

69° 31‘ n. Br., 7° 06° westl. Länge, 1309 Faden Tiefe (Bodentemperatur

-+—-1°0 C; Forsblads Fjord in Ost-Grönland, 72° 28° nördl. Br., 50

—90 Faden Tiefe. Wohl eine Form der kälteren Zone). — H. storea

n.sp. p. 45—46, pl.V, Fig.7 (Dänisch. Ingolf-Exped., Stat. 105,

65° 34° n. Br., 7° 31’ westl. L., 762 Faden Tiefe. Bodentemp. —- 0°8C;

Systematik. 167

Stat. 125, 68° 08° n. Br., 16° 02° westl. L., 729 Faden Tiefe; Boden-

temp. wie zuvor. Ist also auf die kalte Zone beschränkt. — H. lamina

n. sp. (charakt. durch die Chelae arcuatae) p. 46—47, pl. V, Fig. 8

(Davisstraße, bei Ost-Grönland und den Faröe-Inseln). — H. mollis

n. sp. (meist auf Brachiopoda) p. 47—48, pl. VI, Fig. 1 (Fundorte der

Dän. Ingolf-Exped. Verschiedene Stationen in der Davisstraße, Den-

mark-Strait, südl. von Island und westl. von den Faröe-Inseln). —

H. curvichela n. sp. p. 48—50, pl. VI, Fig. 2 (Denmark-Strait, 310 Faden

Tiefe; im Osten der Faröe-Inseln, 250 Faden Tiefe, desgl. westl. von

den Faröe-Inseln, 160 Faden Tiefe. Der Fundort Station 15, 68° 18°

- nördl. Br., 25° 29 westl. Länge, 330 Faden Tiefe wies —— 0°75 C

Bodentemperatur auf). — H. rugosa n. sp. p. 50—51, pl. III, Fig. 1;

pl. VI, Fig.3 (Dänische Ingolf-Exped., Stat. 9, 64° 18° nördl. Br.,

27° 00° westl. Länge, 295 Faden Tiefe in d. Denmark-Strait). — AH.

splenium n. sp. (etwas mit H. storea verw.) p. 51—52, pl. VI, Fig. 4

(im Norden von Island, Stat. 125 der Dän. Ingolf-Exped., 68° 08'

nördl. Br., 16° 02° westl. Länge, 729 Faden Tiefe, Bodentemperatur

008 C). — H. tenuicula n. sp. p. 52—53, pl. VI, Fig. 5 (Davis-,

Denmark-Strait, östl. u. westl. von den Faröe-Inseln. As dünne Über-

züge von 0,25 mm Dicke auf einer Hamacantha implicans, auf einer

Brachiopodenschale, auf einer Röhre von Placostegus tridentatus und

auf einem Steine mit Petrosia crassa). — H. similis n. sp. p. 53—54

pl. VI, Fig. 6 (diverse Fundorte in der Denmark Strait, im Süden von

Island und im Osten von den Faröe-Inseln; Bildet kleine Überzüge

auf Brachiopodenschalen, Muscheln u. Gasteropoda und auf kleinen

Steinen, ein Stück auf einer abgestorbenen Oeculina, ein anderes auf

Istrochota oxeata, auf der seine größte Ausdehnung 16 mm beträgt).

Die Sp. ist verwandt mit longistylus n. sp. H. curvichela n. sp. und

muß überdies mit H. (Hymeniacidon) paupertas Bow. verwandt sein.

— H. nummulus n. sp. p. 55—56, pl. III, Fig. 11; pl. VI, Fig. 7 (Den-

mark Strait. Bildet kleine Überzüge auf Steinen. Beide sind reichlich

‘ mit mehreren anderen Spongien überwachsen; ein drittes Stück be-

kleidet die zerbrochene Basis einer auf einem Steine sitzenden Hornera.

Die größte Ausdehnung erreicht nur 10 mm). Durch seine Spieulae

ähnelt die Sp. der H. rugosa und ist auch mit H. stylata nahe verwandt.

— AH. dubia n. sp. (verw. mit H. Koehleri) p. 56—57, pl. VI, Fig 8

(im Osten der Faröe-Inseln, 250 Faden Tiefe. Auf einem Steine zu-

sammen mit HM. Koehleri, H. baculifera Tops., H. curvichela, Eurypon

sp., Plocamia sp.; größte Ausdehnung nur 10 mm und sehr dünn). —

H. stylata n.sp. (H. nummulus nahest.) p. 57—58, pl. III, Fig. 2;

pl. VI, Fig. 9 (Ingolf-Exp., Stat. 113, 69° 31‘ nördl. Br;, 7° 006‘ westl. L.

zwischen Island und Jan Mayen, 1309 Faden Tiefe, Bodentemperatur

—-1° 0! C). — H. verrucosa n. sp. p- 58—60, pl. III, Fig. 3; pl. VI,

Fig. 1 (Denmark Strait u. im Süden von Island). — H. procumbens

n. sp. p. 60—61, pl. VII, Fig. 2 (Fundorte in d. Denmark Strait und

im Süden von Island). Auf der Schale einer Arca und einer toten

Oculina). — H. perforata n. sp. p. 61—62, p]. III, Fig. 4; pl. VII, Fig. 3

(diverse Fundorte der Ingolf-Exped. in der Davis Strait, Denmark

168

Spongiae für 1910.

Strait, im Süden von Island und zwischen Island und den Faröe-Inseln.

Hauptsächlich auf lebenden, auch toten Brachiopoda, auf Bryozoa,

‘ einer Wurmröhre und einer Pecten-Schale). Größte Ausdehnung

ca. 16 mm, und nicht unter 5 mm Dicke. — H. clavigera n. sp. p. 62—63,

pl. III, Fig. 8b; pl. VII, Fig. 4 (Denmark Strait, 65° 50‘ nördl. Br.

26° 53° westl. Länge, 208 Faden Tiefe). Nahe verw. mit H. perforata.

— H. platychella n. sp., p. 63, pl. VII, Fig. 5 (Denmark Strait, Stat. 89

der Ingolf-Exped., 64° 45° nördl. Br., 27° 20‘ westl. Länge, 310 Faden

Tiefe). — H. basispinosa n. sp. p. 64—65, pl. III, Fig. 5; pl. III, Fig. 6

(Davis Strait, Ingolf-Exp., Stat. 28, 65° 14’ nördl. Br., 55° 42' westl. L.

in 420 Faden Tiefe). — H. longistylus n. sp. p. 66—67, pl. VII, Fig. 7

(Ingolf-Exp., Station 7, 63° 13‘ nördl. Br., 15° 41‘ westl. L., 600 Faden

Tiefe; 61° 0% nördl. Br. u. 7° 54’ westl. L., 180 Faden Tiefe. Die

Fundorte liegen im Süden von Island und im Westen von den Faröe-

Inseln). — H. oceulta Bow. Literatur u. Beschr. p. 67—69, pl. III,

Fig. 6; pl. VII, Fig. 8 (im südl. Teile der Denmark Strait, im Süden

von Island; zwischen Island und den Faröe-Inseln, Schottland,

Azoren, auf Steinen, kleinen Schalen und ein Stück auf einer Röhre,

von Placostegus tridentatus. Hat eine weite bathymetrische Verteilung

von 96—1200 Faden). — H. simillima n. sp. p. 69—71, pl. III, Fig. 7;

pl. VII, Fig. 9 (bei Ost-Grönland, im Westen und Süden von Island),

im Osten von den Faröe-Inseln; bathymetr. Verbr. von 96—691 Faden).

— H. occulta u. H. simillima sind sehr ähnlich, doch zeigen beide

Unterschiede in der Entwicklung der Hautspieula). — H. baculifera

Tops. Literatur, Beschreib. p. 71—72, pl. VIII, Fig. 1 (Fundorte in

der Denmark Strait, im Süden von Island und im Osten von den

Faröe-Inseln. Bildet sehr dünne Überzüge (0,3 mm dick) auf Steinen

und Röhren von Placostegus tridentatus. Nach Topsent im Mittelmeer,

im Norden von Algier und bei 38° 35° 30" nördl. Br. u. 28° 05° 45

westl. L., 660 Faden Tiefe). — H. levis n. sp. (H. baculifera nahest.)

p. 73, pl. VIII, Fig. 2 (Davis Strait, Denmark Strait und im Osten

von den Faröe-Inseln). — H. bractea n.sp. p. 74, pl. VIII, Fig. 3

(Ingolf-Exp., Denmark Strait, 64° 45‘ nördl. Br., 27° 20‘ westl. L.,

310 Faden Tiefe. Auf einer Brachiopodenschale zusammen mit einem

Stück von Hymenancora duplicata n. g. n. Sp.). — H. laevistylus D. SP.

p. 74-75, pl. VIII, Fig. 4 (Ingolf-Exp.: Denmark Strait, Stat. 89,

64° 45° nördl. Br., 27° 20‘ westl. L., 310 Faden Tiefe). — H. Bower-

banki n.sp. p. 75—76, pl.III, Fig. 8a, pl. VIII, Fig. 5 (Denmark

Strait: Station 85, 63° 21° n. Br;, 25° 21° westl. L., 170 Faden;

65° 50° nördl. Br., 26° 53° westl. L., 208 Faden; auf Steinen und einer

Wurmröhre). — HA. truncata n. sp. p. 77—78, pl. III, Fig. 9; pl. VOL,

Fig. 6 (Ostküste von Grönland, Denmark Strait, im Norden von

Island und bei den Faröe-Inseln). — H. latrunculioides n. Sp. p. 78—80,

pl. III, Fig. 10; pl. VIII, Fig. 7 (0,5 mm dick, größte Br. 12 mm. —

Denmark Strait, Stat. 85, 63° 21‘ nördl. Br., 25° 21’ westl. L., 170 Faden

Tiefe; Stat. 89, 64° 45‘ nördl. Br., 27° 20’ westl. L., 310 Faden Tiefe).

— H. irregularis n. sp. p. 80—81, pl. VIII, Fig. 8 (Fundorte in der

Denmark Strait und bei den Faröe-Inseln). — H. proxima n. sp. p. 81

Systematik. 169

—83, pl. VIII, Fig. 9 (Bildet dünne Überzüge auf Röhren von Placo-

stegus tridentatus. Denmark Strait, Stat. 85, 63° 21’ nördl. Br., 25° 21°

westl. L., 170 Faden Tiefe). — H. crux O. Schmidt. Literatur, Be-

schreib. p. 83—84, pl. III, Fig. 11; pl. VIII, Fig. 10 (Denmark Strait

und im Westen von Faröe Islands). — H. aenigma n.sp. p. 84—85,

pl. IX, Fig.1 (20mm breit, ca. 0,5mm dick. — Denmark Strait,

Station 89, 64° 45° nördl. Br., 27° 20’ westl. L., 310 Faden Tiefe)

Während gegenwärtig nur wenige Formen mit bedornten Chelae be-

kannt sind, bilden Hinde und Holmes mehrere fossile Formen derselben

ab: H. filifera OÖ. Schmidt p. 86—88, pl. III, Fig. 12; pl. IX, Fig. 2

(Davis Strait, Denmark Strait und bei den Faröe-Inseln). Sicherlich

ein Bewohner der wärmeren Zone. Bisher bek. von Norwegen, SW.

von Bukenfjord, 106 Faden. — H. grandis n. sp. p. 88—90, pl. III,

Fig. 13—14; pl. IX, Fig.3. Bemerk. zu den Embryonen (Denmark

Strait u. am östl. Ende der Reykjanaes Ridge. — Bathymetrische

Verbr. 568—799 Faden Tiefe). — H. digitata n. sp. p. 90—91, pl. III,

Fig. 15; pl. IX, Fig. 4 (Denmark Strait, Stat. 89, 64° 45° nördl. Br.,

27° 20’ westl. L., 310 Faden Tiefe). — H. trichoma n. sp. (Unterschiede

von H. grandis und H. digitata) p. 91—92, pl. III, Fig. 16; pl. IX,

Fig. 5 (Denmark Strait, Stat. 85,-63° 21’ nördl. Br., 25° 21’ westl. L.,

170 Faden Tiefe). — H. macrosigma n. sp. p. 33—93, pl. IX, Fig. 6

(Denmark Strait und im Süden von Island). — H. pugio n. sp. p. 94,

pl. IX, Fig.7 (Denmark Strait, Stat. 15, 66° 18° nördl. Br., 25° 59'

westl. L., 330 Faden Tiefe; Bodentemperatur —— 0° 75 C). — H. con-

sanguinea n. Sp. p. 95, pl. IX, Fig. 8 (in der Davis Strait und Denmark

Strait).. — H. planca n.sp. p. 96—97, pl.X, Fig.1 (Davis Strait,

Denmark Strait und im Osten von den Faröe-Inseln; ist ein Bewohner

der wärmeren Zone). Die 3 soeben genannten Spp. lassen sich, ab-

gesehen von anderen Merkmalen, leicht durch die Sigmata unter-

scheiden. — H. culirisigma n. sp. p. 97”—98, pl. X, Fig. 2 (am Reykja-

naes Ridge, im Südwesten von Island). — H. mucronata Tops. p. 98

—100, pl. X, Fig. 3 (Davis Strait, 63° 30° nördl. Br., 54° 25° westl. L.

582 Faden Tiefe; Topsent erwähnt die Sp. von 37° 55° nördl. Br. u.

25° 24° westl. L., 465 Faden Tiefe). — H. tenuisigma n.sp. p. 100

—101, pl.X, Fig. 4 (Denmark Strait, Stat. 9, 64° 18° nördl. Br.

27° 00° westl. L., 295 Faden; Stat. 98, 65° 88° nördl. Br., 26° 27° westl.

L., 138 Faden). — H. Dujardinii Bow. Literatur. Beschreib. p. 101

—104, pl. X, Fig. 5 (Davis Strait, Ost-Grönland, Ostküste von Island

und Faröe-Inseln. 90—582 Faden Tiefe. Unter Berücksichtigung der

bisherigen Fundorte ist die Sp. von 65°—34° nördl. Br. und zwischen

60° westl. u. 10° östl. L. bekannt). — H. primitiva n. sp. p. 104—105,

pl. X, Fig. 6 (Davis Strait, Denmark Strait, zwischen Island und den

Faröe-Inseln und im Osten der letzteren). — H. longurius n. sp. p. 105

—106, pl. X, Fig. 7 (Davis Strait, Stat. 32, 66° 35‘ nördl. Br., 56° 38°

westl. L., 318 Faden Tiefe; Island im Ofjord an der Nordküste, 18 Faden

Tiefe; Hornsvig an der Südostküste, 84 Faden Tiefe). —H. aeguata n. sp.

p. 106—107, pl. X, Fig. 8 (Bei Ikamiul in N.-Grönland). — H. dermata

n. Sp. p. 107—109, pl. III, Fig. 17; pl. XI, Fig. 1 (Ingolf-Exp., Stat. 2,

170 Spongiae für 1910.

63° 04‘ nördl. Br., 9° 22° westl. L., 262 Faden Tiefe; Forsblads Fjord

in Ost-Grönland, 50—90 Faden Tiefe, Ost-Grönland und im Westen

der Faröe-Inseln). —.H. tornotata n. sp. p. 109—110, pl. III, Fig. 18;

pl. XI, Fig. 2 (Fundorte in der Denmark Strait, im Südwesten von

Island, und bei den Faröe-Inseln. Stat. 81, 61° 44° nördl. Br., 27° 00°

west]. L., 485 Faden Tiefe; Stat. 89, 64° 45° nördl. Br., 27° 20° west]. L.,

310 Faden; im Osten der Faröe-Inseln, 160 Faden). — H. mucronella

n. Sp, p. 110—111, pl. III, Fig. 19; pl. XI, Fig. 3 (bei Ost-Grönland,

70° 32° nördl. Br., 8° 10° westl. L., 470 Faden Tiefe). — Zusammen-

stellung der sonst noch beschriebenen 16 Spp., so daß die Gesamtzahl

der H.-Spp. rund 70 beträgt. — Analytische Bestimmungstabelle zu

all diesen Spp. p. 112—115. — H. pansa Bowerbank scheint eine

Hymedesmia oder ein Eurypon zu sein, p. 116. — H. pilata Bowerb.

u. pulchella Bow. scheinen ebenfalls zu Eurypon zu gehören p. 116.

— H. areolata Thiele ist wohl keine Hymedesmia, p. 116. — Weitere

Bemerk. zu den 4.-Spp. von Thiele.

Hymenancora n. g. Desmacidonid. (Gleicht völlig der Gatt. Hymedesmia

besitzt aber Ancorae, wogegen die letzteren Gatt. Chelae aufweist.)

Lundbeck, The Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3, p. 1116—1117. —

Hierher gehören außer der folg. neuen Sp. noch H. Peequeryi Tops.

1892, H. minima Tops. 1892, H. biscutella Tops. 1904, H. umbellifera

Tops. 1904, F. laevis Thiele 1905, H. tenuissima Thiele 1905, H. exigua

Kirkpatrick 1907 und H. rufa Kirkpatrick 1907. — H. interjecta n. sp.

p- 117—118, pl. XI, Fig. 4 (Ingolf-Exped.: Station 54 im Süden von

Island, 63° 08° nördl. Br., 15° 40’ westl. L., 691 Faden Tiefe; Stat. 98

in der Denmark Strait, 65° 38° nördl. Br., 26° 27° west]. L., 138 Faden

Tiefe). Die Ancorae dieser Sp. scheinen den chelae arcuatae nahe ver-

wandt zu sein, es sind aber echte Ancorae. — H. conjungens n. Sp.

p- 118—119, pl. XI, Fig. 5 (im Süden von Island, 63° 21’ nördl. Br.,

16° 22° westl. L., 296 Faden Tiefe). — H. duplicata n. sp., p. 119—121,

pl. XI, Fig. 6 (Denmark Strait, Station 89, 64° 45° nördl. Br., 27° 20°

westl. L., 310 Faden Tiefe). — H. tenuisclera n. sp. (nahe verw. mit

H. biscutella Tops.) p. 121—122 (diverse Fundorte in der Davis Strait,

im Süden u. Osten von Island, im Westen von den Faröe-Inseln und

zwischen diesen und Norwegen).

Hymeniacidon perarmatus Bowerbank ist möglicherweise verw. mit A.

occulta und H. simillima ; möglicherweise ist sie aber eine Hetyodory:.

Lundbeck, The Danish Ingolf Exped., vol. VI, 3, p. 115.

Literatur, Beschr. p. 18 (Ingolf Exped., Davis u. Denmark Straits,

Stat. 32, 81, 97. Fadentiefe 318, 485, 450). Die Sp. ist also im Atlanti-

schen Ozean, einschließlich der beiden obigen Straßen verbreitet

zwischen 66° 35° und 38° 31‘ nördl. Br. mit einer bathymetrischen

Verbreitung von 106—485 Faden Tiefe. — I. viridis Tops. (unter-

scheidet sich äußerlich von der vorig. Sp. nur, daß sie beträchtlich

größer ist und der Pedunculus fehlt) p. 20—22, pl. II, Fig. 11—12;

pl. IV, Fig. 7. Beschr. (auch kurze Notiz über den Embryo. Von der

Systematik. 171

Dänisch. Ingolf-Exped. bei Station 92, 64° 44° nördl. Br. u. 320 52°

westl. L., bei 976 Faden Tiefe). Bisher bek. vom Fundorte, der 25°

südl. vom Fundorte der Ingolf-Exped. zwischen 38° u. 39° nördl. Br.

lag, und zwar bei den Azoren in Tiefen von 241 u. 391 Faden. — 7.

ascidioides Fristedt ist eine Histoderma physa p. 22. — I. sp. Vosmer

ist eine Vosmaeria. Weitere Bemerk. siehe p. 25—27.

Leptolabis Tops. Lundbeck charakterisiert die Gatt. in The Danish Ingolf

Exped., vol. VI, 3 folgendermaßen: Incrusting forms; external

appearance, skeleton and megasclera as in Hymedesmia; the dermal

spicules tylota; the characteristie microsclera are foreipes of one or

two forms, to these are added chelae arcuatae and sigmata. Es ge-

hören hierher L. [als Dendoryx] luciensis Tops., L. [Leptosia] ezilis

Tops., L. forcipula Tops., L. fore. var. brunnea Tops. [nach Lundbeck

eine besondere Sp.], Z. arcuata Tops., L. [Hymedesmia] irritans Thiele.

— L. assimilis n. sp. p. 122—124, pl. XI, Fig. 8 (Ingolf-Exp., Stat. 46,

westl. von den Faröe-Inseln, 61° 32° nördl. Br., 11° 36° westl. L.,

730 Faden Tiefe).

Pachychalina odessana n. sp. Kudelin, M&m. Soc. Odessa, T. 35, 1910, p. 23,

pl.I, Fig. 5; pl. II, Fig. 9 (Golf von Odessa).

Petrosia clavata aus dem Schwarzen Meere. Spicula [Russisch]. Kudelin,

te. 2.9, pl.U, Fig.1.

Phlyetaenopora bistorguis Tops. soll nach Topsent in die Nähe von Histo-

derma gehören. Lundbeck bezweifelt es; cf. The Danish Ingolf Exped.,

vol. VI, 3, p. 26—27.

Reniera inflata Schmidt. Altersmerkmale ders. Kudelin, Mem. Soc. Odessa,

T. 35, 1910, p. 7, pl. I, Fig. 4. — R. odessana n. sp. p. 5, pl. I, Fig. 1;

pl. II, Fig. 11. — R. sp.? p. 9, pl. 1, Fig. 3. — R. boutschinskii n. sp.

p-10, pl. I, Fig.2; pl. II, Fig. 5 (alle drei aus dem Golf von

Odessa).

Spongilla (Euspongilla) proliferens in SW.-China. Anandale, Rec. Ind.

Mus. Calcutta, vol. 5, p. 198; desgl. auf Ceylon. Annandale, Spolia

zeylan., vol. 7, p. 63. — Neue Spp.: Spongilla (Stratospongilla) sinensis

n. sp. (S. aspinosa Potts nahest., von der sie sich durch den kompakten

Bau und den Mangel an nicht zum Skelett gehörigen Nadeln unter-

scheidet. Annandale, Proc. U. States Nat. Mus., vol. 38, p. 183 (China).

— S. ultima n.sp. Annandale, Rec. Ind. Mus. Caleutta, vol. 8, p. 31

(Cape Comorin). — S. (? Stratospongilla) coggini n.sp. Annandale,

op. eit., vol.5, p. 198. — $. (Euspongilla) yunnanensis n. sp. p. 198

(beide von SW.-China).

Tedania Gray. Charakt. d. Gatt. Lundbeck, Danish Ingolf Exped., vol. VI,

3, p.1. — T. suctoria O. Schmidt. Literatur, ausführl. Beschreib.

p- 1—7, pl.I, Fig. 1-5; pl.IV, Fig. 1 (reichlich vertreten im ganzen

Ingolf-Gebiet; zahlreiche Fundorte).

Tedaniella. Kritik der Gattung und über die Phylogenie der Nadeln.

Kudelin, Mem. Soc. Odessa, T. 35, p. 11, 15—22. — T. sp.? p. 13,

pl. II, Fig. 6 u. 7 (Golf von Odessa).

172 Spongiae für 1910.

Fossile Formen.

tHalichondria vosmaeri n.sp. Schrammen, Palaeontographica, Supp!. 5,

p: 131 (Kreide von Deutschland).

tRhizopsis n. g. Desmacidonid. Schrammen, t.c. p. 132. — R. horrida

n. sp. p. 132 (Kreide von Deutschland).

Monaxonida incerta sedis.

Fossile Formen.

tOpetionella Zittel ist die einzige Monactinelliden-Gatt. im Weißen Jura.

Kolb, Palaeontographica, Bd. 57, Lfrg. 5, p. 253.— 0. jurassica Zittel,

p- 253, Taf. 21, Fig. 14—19 (beide im Weißjura [Impressaton], Geis-

lingen). — O. poculum n. sp. Schrammen, Palaeontographica, Suppl. 5,

p- 134 (Kreide von Deutschland).

Spongiae incerta sedis.

Rezente Formen.

Astrosclera willeyana, eine Ectyonine. Kirkpatrick, Ann. nat. Hist., ser. 8,

vol. 5, p. 380. — Ist Astr. willeyana eine Spongie? Weltner, Archiv

f. Naturg., Berlin, Jhg. 76, Hft. 1, p. 123—134. — Astr. willeyana.

Skelett und systematische Stellung derselben. Welter, Verhdlgn.

preuß. Rheinlande, Bd. 67, p. 47.

Merlia normani. Natur derselben. Weltner, Archiv f. Naturgesch., Jhg. 76,

Hit. 1, p. 133; Bemerk. dazu. Kirkpatriek, Ann. nat. Hist., ser. 8,

vol. 5, p. 288.

Monticulipora. Kirkpatrick, t.c. p. 290.

Fossile Formen.

tArchaeocyathinae. Monographie derselben. Taylor, Mem. Roy. Soc. 8.

Austral., vol. 2, 1910, p. 55—188.

tArchaeocyathus. Taylor charakterisiert t.c. p. 118 folgende neue Spp.

aus dem Kambrium von Südaustralien: A. ajax n. sp., A. stapipora

n. 8p., equivallum n. Sp., A. grandipora n.sp., A. retesepta n.8p., 4.

retezona n. Sp., A. tubavallum n. sp., A. wirrialpensis n. Sp., A. trachealis

n.8p., A. sellicksi n. sp. und A. dissepimentalis n. Sp.

tArchaeofungia n. g. Taylor, t. c.p. 131. — A. ajax n. sp. p. 131 (Kambrium

von Süd-Australien).

TCoscinocyathus australis n.sp. Taylor, t.c. p. 137. — equivallum n. BP.

p. 137. — C. aulax n.sp. p. 137. — CO. didymoteichus n. sp. p. 137

(sämtlich aus dem Kambrium von Süd-Australien).

TCoscinoptycha n.g. Taylor, t.c. p. 141. — C. convoluta n. sp. p. 141. —

C. bilateralis n. sp. p. 141 (beide aus dem Kambrium von Süd-Australien).

. +Dietyocyathus simplex n. sp. Taylor, t.c. p. 144. — D. irregularis n. Sp.

p. 144 (beide aus dem Kambrium von Süd-Australien).

tDokidocyathus n. g. Taylor, t. c. p. 145. — D. simplicissimus n. sp. p. 145

(Kambrium von Süd-Australien).

+Ethmophyllum dentatum n. sp. Taylor, t.c. p. 128 (Kambrium von Süd-

Australien).

Systematik. 173

rMetaldetes n.g. Taylor, t. c. p. 151. — M. cylindricus n. sp. p. 151 (Kam-

brium von Süd-Australien).

tProtopharetra dubiosa n.sp. Taylor, t.c. p. 149. — P. rete n. sp. p. 149

(beide aus dem Kambrium von Süd-Australien).

tPycnoidocyathus n. g. Taylor, t.c. p.131. — P. synapticulosus n. Sp.

p. 131. — P. ptychophragma n. sp. p. 131. — P. simplex n. sp. p. 131

(alle drei aus dem Kambrium von Süd-Australien).

tSomphocyathus n.g. Taylor, t.c. p. 134. — S. coralloides n. sp. p. 134

(Kambrium von Süd-Australien).

tSpirocyathus radiatus n.sp. Taylor, t.c. p. 147. — 8. vrregularıs n. Sp-

p. 147 (beide aus dem Kambrium von Süd-Australien).

tSyringocnema n.g. Taylor, t.c. p. 153. — S. favus n. sp. p. 153 (Kam-

brium von Süd-Australien). e

Protezoa mit Ausschluß der Foraminifera

für 1910.

Von

Dr. Kurt Nägler.

Publikationen und Referate.

Addario, 6. jr. Über das Vorkommen der Prowazek-

und Halberstädter’schen Körperchen in der normalen

Bindehaut des Menschen und Affen. Vorläufige Mitteilung. Arch.

Augenheilk., 67, p. 197—206, 9 Fig. — Verf. kommt zu dem

Resultat, daß die im Epithel der normalen Bindehaut beschriebenen

intracellulären Gebilde gleiche Charaktere wie die Trachom-

körperchen besitzen. Die Anwesenheit der fraglichen Gebilde

auch in der normalen Bindehaut des Affen bestätigt, daß von

ihrer Spezifität (Prowazek und Halberstädter) für Trachom keine

Rede ist.

*Akiyama, Sh. Tahitsusei zockuchyn ni tsuite. (On Poly-

cystid Gregarines). Dobuts Z. Tokyo, 22, p. 1—10, 205—214,

382—388, 437—445.

Alexeieff, A. (1). Sur quelques Points de la Structure des

„Binucleates‘ de Hartmann. C. R. Soc. Biol., LXIX, p. 532—534.

-— Verf. berichtet kurz über seine Resultate, die er betreffs der

Struktur verschiedener Binucleaten angestellt hat. Von Hart-

mann (1911) ist bereits eine Entgegnung erschienen, auf die ich

hier verweise. Struktur und Teilung des Kernes und Blepharo-

plasten bei Trypanoplasma, Prowazekia und T’rypanosoma. Gegen

den Verf. ist zu bemerken, daß die Aufstellung der Gattung

Prowazekia mit den Arten Pr. cruzi Hartmann und Chagas und

Pr. parva Nägler zu Recht besteht: von einer Synonymie mit

Bodo edax und Bodo saltans ist keine Rede, da echte Bodo-Formen

ohne Blepharoplast verkommen. An der Kernnatur des Blepharo-

plasten spricht der Verf. gänzlich unbegründete Zweifel aus. Auch

über die Berechtigung der Binucleaten ist seine Auffassung zurück-

zuweisen.

— (2). Sur les Flagelles intestinaux des Poissons marins.

Note preliminaire. Arch. zool. exper., ser. 5, VI, Notes et Revue

No. 1, p. 1—20, 12 Textfigg. — Verf. beschreibt einige Flagellaten

aus folgenden Meeresfischen: Motella tricirrata, mustela, Box

boops, salpa. Bei Urophagus intestinalis Moroff werden Fort-

pflanzungsceysten beschrieben, ferner eine eventuell junge oder

autonome Form, für die dann der Name Trimitus motellae n. g.

Publikationen und Referate. 175

n.sp. vorgeschlagen würde. Ferner werden behandelt Tricho-

monas Prowazeki Alexeieff, Trichomastix motellae n.sp., Tetra-

mitus Mesnili syn. Macrostoma Mesnili Wenyon, Trepomonas sp.,

Trypanoplasma intestinalis Leger aus dem Oesophagus von Box

boops. Über den Blepharoplast bleiben einige Unklarheiten be-

stehen; jedenfalls wird ihm Kernnatur abgesprochen. Ferner

wird noch eine unsichere Form als Trichomonas ? Legeri n.sp.

bezeichnet.

Allain et Trautmann. Trypanosomiase humaine et pneumonie.

Bull. Soe. Path. Exot. Paris, 3, p. 25 u. 26. — Verf. beschreiben

2 Fälle gleichzeitigen Vorkommens von Schlafkrankheit und

Pneumonie, von denen der erste einen günstigen Einfluß der

Pneumonie auf den Verlauf der Schlafkrankheit darstellt.

Andre, E. Sur quelques Infusoires marins parasites et com-

mensaux. Rev. Suisse Zool. Geneve, 18, p. 173—188, pl. III. —

Verf. beschreibt mehrere marine parasitische und kommensale

Infusorien: Eurychilum n.g. actiniae n.sp. aus der Gastro-

vascularhöhle von Sagartia parasitica; Cryptochilum echini Maupas,

Or. Cuenoti Florentin aus Phascolosoma vulgare; Conchophthirus

antedonis n.sp., Condylostoma patens O.F.M. aus Actinien,

Euplotes charon O.F.M. aus Echinus esculentus und Sagartia

parasitica; Orthochona n.g. anilocrae n. sp.; Foettingeria actinarum

Clap. aus Actinien; Ahabdostyla sertulariarum S. Kent var.

amphiurae n. var. auf Amphiura squamata; Zoothamnium sp. auf

den Maxillen an Maia squinado; Cothurnia paguri n.sp.; ferner

unbest. Arten der Vorticellina und Trachelina.

Anonymus. Digestion de la graisse chez les Intusoires. Rev.

scient. Ann., 48, Sem. 2, p. 54-55. — La cellule de l’infusoire est

incapable d’agir sur la graisse.

Ansehütz, G. (1). Untersuchungen über direkte Einwirkung

des Chinins und Methylenblaus auf Protozoen. Centralbl. Bakt.

Parasitk., Abt. 1, 54, Orig., p. 277—283, 1 pl. —- Verf. hat zu-

nächst die Einwirkung von Chininchlorhydrat und Methylenblau

auf Plasmodium kochi untersucht. Die Etappen der Einwirkung

sind folgende: Aufblähung des Parasiten und Aufhören der inneren

Spannung, Abschnürung von Plasmapartien an der Peripherie,

sog. Morulation, tropfige Entmischungen, Kavulation des Plasmas.

Bei Proteosoma und Haemoproteus orizivorae war geringe Wirkung

vorhanden. Bei Trypanosomen wurde in erster Linie das Proto-

plasma beeinflußt; Spirochaeta gallinarum stirbt ab. Colpidien

werden in freiem Zustande abgetötet, die Cysten nicht.

(2). Über Übertragungsversuche von Haemoproteus oryzivorae

und Trypanosoma paddae, nebst Bemerkungen über den Ent-

wicklungsgang des ersteren. Centralbl. Bakt. Parasit., Abt. 1, 54,

Orig., p. 323—331, 2 pls. — Verf. berichtet zunächst über die

Cytologie des Trypanosoma paddae aus dem Reisvogel und

unterscheidet mehrere Typen. Teilung und Rosettenbildung

wurde in vivo beobachtet. Bei starker Infektion werden die

176 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Reisvögel getötet. Eine Übertragung auf Kanarienvögel ist mög-

lich, bei Tauben, Hühnern, Eulen, Kaninchen und Ratten gelang

sie nicht. Bei Chinin 1: 500 starben die Trypanosomen nach

15 Minuten ab. — Bei Haemoproteus orizivorae wurde asexuelle

Vermehrung auch im Knochenmark, Gehirn und Lunge des Reis-

vogels konstatiert. Zwei Arten dieser Schizogonie und Partheno-

genese kommen vor. Der volle Entwicklungscyklus und der

Zwischenwirt sind noch unbekannt.

Appel u. Werth. Infektionsversuche mit Plasmodiophora

brassicae Woronin. Berlin. Mitteil. Biol. Anst., H. 10 (1909),

1910, p. 17—18. — Verf. haben konstatiert, daß eine Anpflanzung

von herniekranken Kohlrabipflanzen einen zu geringen Befall von

Plasmodiphora brassicae nach einigen Jahren aufwies, um Schlüsse

daraus ziehen zu können. Die Liste der Wirtspflanzen von PI.

brassicae wird um 3 Arten vermehrt.

Apstein, €. (1). Chaetoceras gracile Schütt und Chaetoceras

Vistulae n.sp. Wiss. Meeresuntersuch., 2. Abt. Kiel, Bd. 11,

p. 135—137, 2 Figg.— Verf. tritt für eine Identification von Chaeto-

ceras gracile und septentrionale ein, letzterer Name muß also fort-

fallen. Die neue Art Ch. Vistulae wird beschrieben aus der Weichsel

bei Neufahrwasser.

— (2). Knospung bei Ceratium tripos var. subsalsa. Internat.

Revue Hydrobiol., Leipzig, 3, p. 34—36. — Vorläufige Mitteilung.

Aragäo, H. de Beaurepaire. Pesquizas sobre a Polytomella agilis

n.g. n.sp. (Untersuchungen über Polytomella agılıs.) Mem. Inst.

Osw. Cruz Rio de Janeiro, 2, p. 42—57, pl. III. — Verf. hat

Polytomella agilis in Reinkulturen in einer Infusion von Kohl-

blättern untersucht. Von Polytoma unterscheidet sich obiges

Flagellat durch den Besitz von 4 Geißeln statt 2, ferner durch

das Fehlen einer Hüllmembran und eines Entosoms, sowie durch

den verschiedenen Teilungsprozeß. Der Körper ist eiförmig, die

Länge beträgt einschließlich des Rüssels ca. 17 u. Die Geißeln

entspringen dicht unter dem Rostellum und können durch Rhizo-

plastfasern mit dem Kern verbunden sein. Der Kern ist ein

typischer Caryosomkern mit Außenchromatin und Centriol. Hin-

sichtlich der Biologie werden einige Einzelheiten betreffs der Be-

wegung und des Tygmotropismus, sowie der Ernährung, die

osmotisch erfolgt, mitgeteilt. Die Längsteilung wird eingeleitet

durch eine Mitose des Außenkerns und Caryosoms. Eine deutliche

Centrodesmose tritt erst in späteren Stadien klar zutage. Im

allgemeinen verläuft die Teilung durchaus normal. Die Rekon-

stitution der Tochterkerne wird ausführlich beschrieben. Die

Geißeln entstehen aus dem geteilten Basalkorn neu. Kopulation

wurde selten beobachtet, auch in vivo. Die Zygute zeigt kugelige

Form. Die Kernreduktion beginnt in sehr vorgeschrittenen

Stadien der Kopulation; es wurde die Ausstoßung nur eines

Reduktionskörperchens beobachtet. Die reduzierten Kerne ver-

schmelzen dann. Die normal erfolgende Eneystierung wird nicht

Publikationen und Referate. 177

als Folge ungünstiger Bedingungen, sondern als Notwendigkeit

einer Ruheperiode nach einer Phase günstiger Lebensbedingungen

angesehen. Die Geißeln lösen sich sukzessive ab, die Form wird

vollkommen rund. Der Kern ist in der Cyste unter den Mikro-

granulis schwer zu erkennen. Die Cyste mißt 8 u und zeigt hell-

gelbe Färbung. Über eine weitere Entwicklung auch der Kopula-

tionseysten wurde nichts beobachtet. Ferner werden noch kurz

einige Degenerationsformen beschrieben; Kernfragmentation ist

auf diesen Stadien häufig und täuscht eventuell sogar Kern-

verschmelzung vor.

Atkinson, J.M. Malarial fever during the Puerperium.

Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Sci.), 5, p. 193—196.

Auerbach, M. (1). Zwei neue Cnidosporidien aus cyprinoiden

Fiseben. Zool. Anz., 36, p. 440—441. — Verf. betont die Wichtig-

keit der Kenntnis der geographischen Verbreitung der Cnido-

sporidien und beschreibt 2 neue Arten: Myzxidium macrocapsulare

aus der Gallenblase von Scardinius erythrophthalmus L. aus den

Altwässern des Rheins; Plistophora elegans aus dem Ovarium

eines Bastards von Brachsen und Rotauge aus den Rheinaltwässern

bei Karlsruhe.

— (2). Cnidosporidienstudien. Zool. Anz., 35, p. 767—1777.

— Verf. gruppiert zunächst die Arten der Gattung ZLeptotheca

Thel. nach 2 Hauptgruppen mit ovalen regelmäßigen Sporen und

mit nicht ovalen. Neu beschriebene Arten sind ZL. informis aus

der Gallenblase von Molva vulgaris, Bergen, ferner L. longipes

aus der Gallenblase von Brosmius brosme, Bergen. Verteilung

der Arten auf die verschiedenen Wirte in Tabellenform. Einige

Bemerkungen über Myzidium und Sphaeromyxa, Plistophora

ovicola n. sp. ein neuer Parasit in den Eiern von Coregonus exiguus

bondella Fatio.

Auerbach, M. (3). Die Cnidosporidien (Myxosporidien,

Actinomyxidien, Microsporidien). Eine monographische Studie.,

Leipzig (W. Klinkhardt) 1910, p. VIII+266, 83 Figg. — Verf.

bespricht nach einer allgemeinen Einleitung im morphologischen

Teil die vegetativen Formen und Sporen der Myxosporidien,

Actinomyxidien und Microsporidien. Der biologische Teil enthält

zunächst folgende Kapitel: Vorkommen der Cnidosporidien,

Wirtsliste, geographische Verbreitung, Sitz der Parasiten im Wirts-

organismus, Biologie der Sporen außerhalb der Wirte, Parasiten

der Cnidosporidien. Bei der Fortpflanzung wird multiplikative

und propagative Fortpflanzung unterschieden, ferner eine zu-

sammenfassende Darstellung aller bisber publizierten An-

schauungen über die Fortpflanznng der Cnidosporidien (chrono-

logisch geordnet) gegeben. Im systematischen Teil folgt nach

den Bestimmungstabellen und verschiedenen Systemen ein Kapitel

über die Verwandtschaftsverhältnisse der Cnidosporidien, im

Anschluß daran eine Beschreibung der seit 1897 neu entdeckten

Gattungen und Arten. Ein besonderes Kapitel behandelt die

Archiv Te RN TERSChIchNe 12

. 4»

178 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Technik. Wichtig ist ferner der historisch-literarische Teil mit

einer eingehenden Besprechung der Literatur. Im Nachtrag werden

weitere neue Arbeiten berücksichtigt.

Awerinzew, 8. (1). Über Gromia dujardini M. Sch. Zool.

Anz., 35, p. 425—427. — Verf. teilt kurz einiges über Sterkome

und, Kinochondren bei Gromia dujardini mit. Der Unterschied in

der Gestalt der Pseudopodien bezieht sich auf den Generations-

wechsel. Vorläufige Mitteilung.

— (2). Über die Stellung im System und die Klassifizierung

der Protozoen. Biol. Centralbl., 30, p. 465—475. — Verf. stellt

einige allgemeinere Betrachtungen über das System der Protozoen

an. Zwischen Protozoen und Metazoen soll kein qualitativer,

sondern nur ein quantitativer Unterschied bestehen. Beide

stammen aus einer Wurzel als parallele Zweige des Stammbaums.

Die Herkunft der Metazoen aus Protozoenkolonien wird bestritten.

— (3). Zur Frage über die Krebsgeschwülste. Centralbl.

Bakt. Parasit. Abt. 1, 56, Orig., p. 506—508. — Verf. glaubt, daß

die bösartigen Geschwülste (2 Fälle von Cancroid) durch Parasiten

hervorgerufen werden, die den größten Teil ihres Lebens im Kern

der Zellen verbringen und nur zur Zeit der Degeneration der Kerne

aus ihnen heraustreten. Vielleicht stehen die fraglichen Gebilde

den Chlamydozoa nahe. Vorläufig muß man diesen Angaben sehr

skeptisch gegenüberstehen.

— (4). Donnees nouvelles sur l’bistoire du developpement

de Lymphocystis johnstonei. (Communication pre&liminaire.)

St. Petersburg Bull. Ac. sc. (Ser. 6), p. 1327—1332, 6 Figg. —

Siehe die ausführliche Arbeit im Arch. f. Protistenk. 1911.

Babak, E. Über die Oberflächenentwicklung bei Organismen

und ihre Anpassungsfähigkeit. Biol. Centralbl., 30, p. 225—239,

257—267. — Anpassung der äußeren und inneren Oberfläche an

die Lebensbedingungen und die Bedürfnisse des Körpers.

Bader, —. vide Rodet, A.

Bagshawe, A.G. Recent advances in our knowledge of

sleeping sickness.. Journ. trop. med. London, 13, p. 343—348;

Lancet, London, II, p. 1278—1279.

Balachonzeff, E. N. (Phytobiologie des Ladoga-Sees.) St. Peters-

burg, (1909) 1910, VI+417 pp., 12 pls. u. 1 Karte. Russisch.

Baldrey, F.S. (1). Transmission of Surra. Journ. trop. vet.

sci. Calcutta, 5, p. 595—596, 6 charts. — Verf. zeigt an Experi-

menten, daß Schweine als Wirte der Surratrypanosomen in Indien

in Betracht kommen.

— (2). Piroplasmosis in India. Journ. trop. vet. sci., Cal-

cutta, 5, p. 569—579, pl. XXXIX. — Verf. berichtet über be-

obachtete Fälle von Piroplasmose in Indien.

— (3). Notes and observations on the evolution of Tr.

lewisi in the rat-louse, Haematopinus spinulosus. Journ. trop. vet.

sci., 5, p. 101—105. — Kurzer Auszug aus der ausführlichen

Arbeit im Arch. f. Protistenk. 1909.

Publikationen und Referate. 179

Balfour, A. (1). Coceidiosis of African cattle. Paris, Bull.

Soc. path. exot., 3, p. 429—431. — Verf. hat Coccidiose bei Ziegen

in 2 Fällen im Sudan beobachtet.

— (2). Further observations on fowl spirochaetosis. Journ.

trop. vet. sci., Caleutta, 5, p. 308—322. — Verf. berichtet über

Übertragungsversuche der Hühner-Spirochaetose durch Zecken.

Siehe bereits Journ. trop. med., London, 12, 1909.

Balfour, A. vide Thomson, D. B.

Barling, J. E. vide Welsh, D. A.

Basile, €. (1). Alcune osservazioni sulla presenza di Leish-

mania nei cani. Roma Rend. Acc.Lincei (Ser. 5), 19, I, p. 158

— 160. — Vorläufige Mitteilung über das Vorkommen von Leish-

mania beim Hunde.

— (2). Sulla Leishmaniosi del cane e sull’ ospite intermedio

del Kala-Azar infantile. Roma Rend. Acc. Lincei, Ser. 5, 19,

II, p. 523—527. — Verf. berichtet über seine Befunde bei Leish-

maniosis beim Hunde und über den Zwischenwirt des „Kala-

Azar infantile“. Überträger: Pulex serraticeps.

Bateman, H.R. vide Bruce, D.

Battaglia, M. Einige Untersuchungen über das Trypanosoma-

Nagana. Centralbl. Bakt., Jena, Abt. 1, 53, Orig., p. 113—169. —

Verf. geht nach historischen Bemerkungen zur Morphologie des

Genus Trypanosoma über und, beschreibt im speziellen Try».

brucei. Die einzelnen Kapitel sind folgende: Symptome, Tem-

peratur der Nagana, pathologische Anatomie, angewendete Technik,

Symptomatologie, quantitative und qualitative Charaktere des

Blutes der von Nagana-Trypanosomen befallenen Tiere intra

vitam. Dann folgt eine Darstellung der Morphologie und des

morphologischen Entwicklungsganges des Tryp. Bruce. Der

sporenlose und der sporuläre Vermehrungscyklus werden an-

gegeben. Es sollen auch bei Tr. Brucei Makro- und Mikrosporen,

Makro- und Mikrosporidien vorkommen nach morphologischem,

biologischem und experimentellem Kriterium. Kulturen sind nie

reichlich erhalten worden. Die Infektion scheint nur durch ver-

letzte Schleimhäute möglich zu sein. Versuche mit Atoxyl haben

ergeben, daß dies weder heilt noch schützt. Eine Infektion auf

Tauben ist nicht gelungen.

Baumann, F. Beiträge zur Biologie der Stockhornseen. Rev.

suisse Zool., 18, p. 647—728, 1 Fig. — Verf. bringt u. a. eine Liste

der in den über 1500 m hoch gelegenen Stockhornseen vor-

kommenden Protisten. Amöben zahlreich, Heliozoen fast gar

nicht. Biologisches über Oeratium hirundinella. Infusorien viel-

leicht in Winter- und Sommerformen geschieden, viele Arten.

Baumgarten, P. von u. Dibbelt, W. (Unter Mitwirkung von

Fachgenossen). Jahresbericht über die Fortschritte in der Lehre

von den pathogenen Microorganismen, umfassend... Protozoa.

Jahrg. 24, 1908, Abt. 1, Leipzig (S. Hirzel) 1910, p. 1—640.

128

180 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Baumgartner, E. Die tierischen und anaeroben pflanzlichen

Protisten der Mundhöhle des Menschen. Ergebn. ges. Zahnheilk.,

Wiesbaden, 1, p. 729—787. — Verf. gibt nach kurzem historischen

Rückblick eine allgemeine Übersicht der tierischen und pflanz-

lichen Protisten der Mundhöhle des Menschen. Es werden be-

sprochen Entamoeba buccalis, Protozoen mit noch nicht bestimm-

barer Gattungszugehörigkeit nach Ellermann (siehe Bericht

pro 1907), Spirochäten, Protozoen der Schmelzkaries (auch noch

nicht abgeschlossene Beobachtungen des Verf.), Spirochaeta Vin-

centi (fraglich, ob es sich um eine besondere Art handelt). Ferner

wird auf die Bakterien eingegangen. Die Arbeit ist als Sammel-

referat zu bezeichnen.

Beauchamp, P. de. Sur une Gregarine nouvelle du genre

Porospora. Paris, C. R. Acad. sci., 151, p. 997—999. — Verf.

beschreibt die neue Art Porospora legeri aus Eriphia spinifrons.

Beauchamp, P. de et Collin, B. Quelques documents sur

Hastatella radians Erlanger. Arch. zool. Paris, ser. 5, 5, Notes et

Revue, p. 283—33. — Verf. beschreiben Hastatella radians mit

2 Stachelkränzen. Die Stacheln sollen als Schwebeapparat dienen.

Die Teilung wird nur unvollständig angegeben.

Beck, M. Experimentelle Beiträge zur Infektion mit Try-

panosoma gambiense und zur Heilung der menschlichen Trypano-

somiasis. Berlin, Arb. Kais. Gesundheitsamt, 34, p. 318—376,

5 Abbildungen u. mehrere Temperaturkurven. — Verf. hat ex-

perimentell mit einem T’ryp. gambiense-Stamm Mäuse, Meer-

schweinchen und andere Tiere in Deutschland infiziert. Bei

Mäusen und Ratten verläuft die Infektion unter dem Bilde der

Septicämie, bei andern Versuchstieren als chronische Gewebs-

erkrankung. Über die Morphologie wird wenig mitgeteilt. Ein-

gehend werden die Übertragungsversuche beschrieben bei den

verschiedensten Tieren. Eine Übertragung durch verschiedene

Insekten auf gesunde Tiere konnte nicht erzielt werden. Auch

Ornithodorus moubata kommt als Überträger nicht in Betracht.

Heilversuche wurden mit Atoxyl und ähnlichen Mitteln angestellt.

Mit dem Serum vorbehandelter Tiere einen immunisatorischen und

heilenden Erfolg zu erzielen, ist bis zu einem gewissen Grade

möglich. Es gelang, durch Vorbehandlung von größeren Tieren

mit Tryp. gambiense ein spezifisch agglomerierendes Serum zu

gewinnen; dieses Serum ist imstande, die Trypanosomen der

Schlafkrankheit in hängenden Tropfen zur Agglomeration zu

bringen. Das Serum wirkt hierbei wahrscheinlich spezifisch auf

die einzelnen Trypanosomenarten. Komplement-Ablenkungs-

versuche en zu keinem praktischen Ergebnis geführt.

Behn, P. (1). Über Entwicklungsformen des Trypanosoma

franki. Berlin, tierärztl. Wochenschr., No. 42, p. 1—4, 1 Fig. —

Beschreibung eines Trypanosomen-Individuums aus dem Ohr-

venenblut einer Kuh, Länge 55 u, Breite 12 «. Granulationen

im Plasma.

Publikationen und Referate. 181

— (2). Präflagellate Entwicklungsstadien der in deutschen

Rindern kulturell nachweisbaren Trypanosomen. Ibid. No. 46,

p- 1—2. — Die präflagellate Entwicklung der Kulturtrypanosomen

am 1.—2. Tage nach dem Überimpfen soll in Leucocyten vor

sich ‚gehen.

(3). Infektion eines Kalbes mit Trypanosomen vom Typus

des Fa us theileri mittelst Blut von Kühen, in denen nur

kulturell Flagellaten nachweisbar waren. Ibid. No. 50, p. 1—7,

4 Figg. — Positive Infektion eines Kalbes von 31% Monaten am

11. Tage nach der Injektion. Kleine, schlanke und große, breite

Formen, letztere später auftretend. Riesentrypanosomen bis zu

70 u. Typische Kulturtrypanosomen bereits am 1. Tage nach

Anlage der Kulturen. Nach einer Anmerkung Knuths sollen die

Riesentrypanosomen Geschlechtsformen sein (?).

*Belitzer, A. V. (Untersuchungen über die Piroplasmose der

Pferde des Jahres 1909 im Gouv. Rjazan.) Arch. veterin. nauk.,

St. Petersburg, 40, p. 922—937. — Russisch.

Bettencourt, A. et Borges, J. (1). Sur une T'heileria parasite

du Cephalophus grimmi L. Lisbonne Bull. Soc. Portugaise sci.

nat., 3, p. 64—65. — Beschreibung von Theileria dama aus Cepha-

lophus grimmi L.

— (2). Idem. Arch. R. Inst. Bact. Lisboa, 3, p. 19—20.

*Bevan, L. E. u. Mac Gregor, M. E. Note on the passage of

& human Trypanosome through domestic animals. Journ. comp.

path. ther., Edinburgh, 23, p. 160—167.

Billet, A. Evolution chez le m&me sujet du paludisme tierce

primaire en paludisme tierce secondaire. Paris, Bull soc. path.

exot., 3, p. 182, 187°—194. — Verf. betrachtet die Praecox-Form

alscharakteristisch ‚„desaccesfebrilesrecents, atype tiercefondamen-

tal avec toutes ses varietes.‘“ Paludisme primaire et secondaire.

Biot, C. Action revivifiante du chlorure de sodium sur les

hat mit Erfolg Wiederbelebungsversuche der Trypanosomen aus

toten Ratten nach Zusatz von isotonischer Lösung von ‚‚chlorure

de sodium‘““ angestellt.

Blaizot, L. Etudes sur la spirochetose des poules produite

par Spir. gallinarum (Virus somali). — Une propriete de la race

cultivee sur poussins. C. R. Soc. Biol. Paris, 68, p. 29—31. —

Verf. konstatiert, ‚que les Spirochetes d’adulte immunisaient

completement la Poule contre ceux du Poussin.‘“‘ Junge und alte

Tiere verhalten sich dabei wie fremde Spezies.

Bock, S. vide von Hofsten, N.

Boldt, M. (1). Zwei neue Gregarinen-Arten aus Octolasium

complanatum Ant. Duges. Zool. Anz., 36, p. 289—293. — Verf.

beschreibt aus istrianischen Regenwürmern (Octolasium compla-

natum) 2 neue Gregarinen: Rhabdocystis claviformis n.g. n. Sp.

und Monocystis piriformis n. sp., sehr selten. Ferner wurde

massenhaft Monocystis herculea Bosanquet gefunden.

182 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

— (2). In den Samenblasen der ostpreußischen Regen-

würmer parasitierende Monocystideen. Königsberg, Schr. physik.

Ges., 51, p. 55—66. — Verf. gibt eine Übersicht der in den Samen-

blasen der ostpreußischen Regenwürmer parasitierenden Mono-

cystideen mit historischem Rückblick. Die Arten sind folgende:

Morocystis agilis Stein e. p. Schmidt, lumbriei Henle, lumbriei

olidi Hesse, turbo Hesse, herculea Bosanquet, arcuata n.sp. aus

Lumbricus castaneus u. rubellus (bogenartig gekrümmt), Rhyncho-

cystis pilosa Cuenot, porrecta Schmidt, Nematocystis magna Schmidt,

lumbricoides Hesse, Zygocystis cometa Stein. Bestimmungstabelle

der Arten und Verteilung auf die Wirte. F. S

Bordier, H. u. Horand, R. Action des rayons ultraviolets sur

les Trypanosomes. Paris, C. R. Acad. Sci., 150, p. 634—635, 886

—887. — Verf. haben auf Trypanosoma lewisi ultraviolette Strahlen

einwirken lassen mit dem Erfolge, daß bereits nach 15 Sekunden

alle Individuen tot waren. Auch die Erythrocyten werden in

vitro verändert. X-Strahlen rufen keine Veränderungen der

Trypanosomen hervor. Unter dem Einfluß der ultravioletten

Strahlen werden die Trypanosomen sehr schnell granuliert und

später durchsichtig und mit dem Ultramikroskop nicht mehr auf-

findbar. Im besonderen werden noch technische Änweisungen

mitgeteilt.

Borgert, A. (1). Die Mitose bei marinen Ceratium-Arten.

Zo0l. Anz., 35, p. 641—644. — Vorläufige Mitteilung zu 2. Verlauf

der Kernteilung, nur mit Berücksichtigung der Mitose.

— (2). Kern- und Zellteilung bei marinen Ceratium-Arten.

Arch. f. Protistenk., 20, p. 1—46, pls. I—III. — Verf. beschreibt

die Kern- und Zellteilung bei mehreren marinen Ceratium-Arten.

von denen eingehend besonders (©. tripos und (©. fusus behandelt

werden. Nach kurzen historischen Bemerkungen wird die unter

mitotischer Kernteilung vor sich gehende Schizogonie besprochen.

Die Kernstruktur ist bei dem ruhenden Kern netzartig, gewöhn-

lich kommen ein bis mehrere Nucleolen vor. In der Nähe des

Kernes, auf der antapikalen Seite, liegt ein durch Kernfarbstoffe

nicht tingierbares Kügelchen, das als ‚Nebenkörperchen‘“ be-

zeichnet wird. Bei der Kernteilung treten mehrere derartige Ge-

bilde auf. Im Knäuelstadium sind die Kernsegmente längs-

gespalten, „infolgedessen sich bereits in den ersten Stadien dieser

Kernphase jeder Abschnitt aus zwei durch einen Zwischenraum

getrennten parallelen Fadenenden gebildet zeigt“. Die gespaltenen

Fadenabschnitte werden nun zu einer dichten Masse parallel

nebeneinander gelagert. Es tritt eine Drehung um 90° ein, und es

entsteht ein Chromosomenbündel, das eine verschiedene Gestalt

zeigt. Das Äquatorialplattenstadium ist in seiner Längsachse

jetzt um 45° gegen die durch die Querfurche bezeichnete Linie

geneigt. Nucleolen werden des öfteren auch während der Äqua-

torialplatte beobachtet. Die Kernspindel kommt nicht zur Aus-

bildung, zu bemerken ist nur eine polare Protoplasmaansammlung.

Publikationen und Referate. 183

Das Nebenkörperchen liegt im Innern eines Plasmakegels an dem

einen Kernpol. Bei der Bildung der Tochterplatten erfahren ‚‚die

von Polfläche zu Polfläche verlaufenden Chromosomen eine

Durchteilung in der Mitte, quer zur Längsausdehnung, und die

Hälften wandern auseinander“. Zur Zeit der Spaltung der Äqua-

torialplatte beginnt auch die Zellteilung, zunächst nur einseitig.

Weiterhin wird das Verhalten der Tochterplatten nach der

Trennung und die Rekonstruktion der Tochterkerne beschrieben.

Die Begrenzung der jungen Kerngebilde wird immer bestimmter,

sie runden sich ab. Charakteristisch ist eine hier auftretende

Krümmung der Kernplatten. Die Fadenhälften trennen sich,

um als einfache Segmente das punktierte Aussehen des normalen

Kernes hervorzurufen. Auch auf den Endstadien sind Nucleolen

nachweisbar. Das ‚„Nebenkörperchen‘ scheint bei der Teilung des

Individuums an einer Stelle der Trennungsebene der Körper-

hälften ausgestoßen zu werden. Die Durchteilung des Panzers

ist bereits von Kofoid ausführlich beschrieben worden. Neben

der mitotischen Kernteilung kommt nun bei Ceratium tripos, wie

Apstein zuerst festgestellt hat, auch noch direkte Kern-

halbierung vor, und zwar auf dem Wege einer queren Durch-

schnürung oder in Gestalt einer Zerlegung des Kernes in der

Längsrichtung. Die Verteilung der Nucleolen auf die beiden

Tochterkerne ist variabel. Das ‚‚Nebenkörperchen“ erfährt

gleichzeitig mit der Kernhalbierung eine Verdoppelung. Die

amitotische Kernteilung führt zur Knospenbildung. Knospen

wurden besonders im Oktober beobachtet. Bezüglich der Ketten-

bildung und des Heteromorphismus und der sie begleitenden

Kernteilungen sind die Ansichten noch nicht geklärt. Sexualität

ist für marine Formen dem Verf. nicht bekannt. (Siehe Jollos

1910, der sie bei G@ymnodinium wahrscheinlich gemacht hat.) —

Des weiteren werden nun die Kernverhältnisse beschrieben bei

Clap. u. Lachm., bei letzterer Art wieder nach mehreren gefundenen

Stadien. In den Schlußbemerkungen geht Verf. u. a. auf das Ver-

halten der chromatischen Substanz und auf die Frage nach der

Natur des Nebenkörperchens ein. Eine aktive Rolle bei der Kern-

teilung kann letzteres nicht spielen. ‚Am meisten Wahrschein-

lichkeit kommt, falls es sich nicht doch um eine der Lichtperzeption

dienende Differenzierung handelt, wohl der Annahme zu, daß

hier eine besondere Art von Bildung vorliegt, die zusammen mit

den Chromatophoren in die Reihe der Stoffwechsel-

oder Umsetzungsorgane (Plastiden) zu zählen

ist.“ Großes Interesse beansprucht die Chromosomenfrage.

Während bei Ceratium hirundinella nach Lauterborn in-

folge der einmaligen Querteilung nur eine Verdoppelung der

Chromosomenmenge erfolgt und jeder Schizont die ursprüngliche

Zahl von Fadenenden erhält, erfährt bei marinen Ceratien die

184 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Menge der Kernsegmente durch die zweimalige Teilung derselben

eine Vermehrung auf das Vierfache, und jeder Teilsprößling muß

schließlich das Doppelte der ursprünglichen Chromosomenzahl

aufweisen. Verf. vergleicht hiermit die Verhältnisse bei Aulacantha

und weist auf die Übereinstimmung hin. Die direkte Kernteilung

wird als regulatorischer Prozeß aufgefaßt und in dem Wechsel

zwischen Mitose und Amitose ein Weg erblickt, auf dem wieder

eine Herabsetzung der Chromosomenmenge auf die normale Höhe

erreicht wird. Leider hat Verf. die Arbeit von Jollos 1910

nicht berücksichtigt, auf die hier zum Vergleich hingewiesen sei.

— (3). Die tripyleen Radiolarien der Plankton-Expedition.

Porospathidae und Cadiidae. (Ergebnisse der Plankton-Expedition

der Humboldt-Stiftung. Bd. 3.) Kiel u. Leipzig (Lipsius u. Tischer),

1910, p. 3831—415, pls. XXIX— XXX. — Verf. gibt nach einer

allgemeineren Einleitung eine Übersicht über die Systematik mit

Definition der Genera und Arten. Dann folgt eine ausführliche

Beschreibung der Arten. Die Faunistik gelangt auch eingehend

zur Besprechung nach horizontaler und vertikaler Verbreitung.

Porospathis holostoma ist nicht allzu häufig. Auch von dem Genus

Cadium gelangen die Arten und die Faunistik zur Besprechung.

Mit Rücksicht auf die höchste Entfaltung des Individuenreich-

tums im Gebiete des Süd-Äquatorialstromes stehen die Cadiiden

mit den Caemuentelliden, Cannosphaeriden und Medusettiden

unter den Tripyleen zusammen.

Borges, J. vide Betteneourt, A.

Borowsky, W.M. Untersuchungen über Actinosphaerium

eichhorni. Arch. f. Protistenk., 19, p. 255—288, pls. XVII—XVIN.

— Verf. teilt zunächst einiges über sein Material mit, das aus den

Hockenheimer Moortümpeln und Aquarien des zool. Institutes

in Heidelberg stammt, dann über Hungerkulturen, über das Ver-

halten des Actinosphaerium bei schwachem Andrücken mit dem

Deckglas, über die körnigen Bestandteile des Protoplasmas. Hier-

bei werden 3 verschiedene Arten von Körnchen unterschieden:

„größere, etwas stärker lichtbrechende und daher bei tiefer Ein-

stellung dunkle Körnchen, welche hauptsächlich der Marksub-

stanz eingelagert sind; sehr kleine Körnchen, welche entlang den

Achsenfaden der Pseudopodien, oder in den Wänden der äußersten

Vakuolen der Rindenschicht wandern, also überhaupt zum größter.

Teil auf der Oberfläche des Tieres zerstreut; stark lichtbrechende,

kristallinische, bräunliche Exkretkörnchen, sie sind besonders

zahlreich in den Vakuolen der Rindenschicht, wo sie wegen ihrer

lebhaften Molekularbewegung leicht auffallen‘. Ausführlich werden

behandelt die Degenerationserscheinungen in Futter- und Hunger-

kulturen, ferner Teilung und Bau der Kerne, wobei der Verf.

gegensätzliche Angaben zu der Beschreibung R. Hertwigs

macht. Die Beschreibung der Kernteilung bietet nichts Neues.

Neu wäre die Behauptung, daß „Chromidien‘“ nicht vorkommen

Publikationen und Referate. 185

und daß die einzige Art der Kernreduktion eine Kernver-

schmelzung wäre.

Borrel, A. Elements intra-cellulaires dans le sarcom. C. R.

Soc. Biol. Paris, 68, p. 584—586. — Verf. konstatiert ‚Chromidial-

Körper‘, ähnlich den Negri’schen Körperchen, bei einem Fall von

Sarcom an der Vagina von Hündinnen.

Bosanquet, W. €. Brief notes on two Myxosporidian organisms

(Pleistophora hippoglossoideos n. sp. and Myzxoidium mackiei n. sp.).

Zool. Anz., 35, p. 434—438. — Verf. beschreibt zwei neue Myxo-

sporidien: Pleistophora hippoglossoideos aus Hippoglossoides liman-

doides mit fraglichen Teilungsstadien und der Sporenbildung, ferner

Myzxidium mackiei aus Trionyx gangeticus aus den Nierenkanälen.

Die Sporen werden genauer beschrieben.

Bouet, G. et Roubaud, E. (1). Expe£riences diverses de trans-

mission des Trypanosomes par les Glossines (notes preliminaires).

Ann. Inst. Pasteur, Paris, 24, p. 658—667. — Übertragung des

Tryp. Cazalboui durch Glossina palpalis. Natürliche Übertragung

des Tryp. dimorphon durch @l. p. Experimentelle Übertragung

des Tryp. pecaudi durch @!. p. und des T'ryp. Cazalboui durch

@l. tachinoides und longipalpis.

— (2). Idem. III u. IV. Paris, Bull. Soc. path. exot., 3;

p. 599—603, 722—725. — Die Verf. kommen zu dem Resultat,

daß nicht alle Glossinen dieselbe Bedeutung für die Übertragung

verschiedener Trypanosomiosen haben. Übertragung von Tryp.

pecaudi und dimorphon durch Glossina palpalis, tachinoides und

Zongipalpis.

Bouffard, G. Glossina palpalis et Trypanosoma cazalbou:.

Ann. Inst. Pasteur, Paris, 24, p. 276—295. — Verf. hält Stomoxys

für den Überträger des Tryp. cazalboui, Glossina palpalis kann nur

6 Tage nach der Infektion übertragen, und zwar „a longue Echeance

derte. ce.‘ Der Entwicklungszyklus des Tryp. vollzieht sich ganz

im Rüssel. ‚„Contrairement & l’opinion &emise par Rou b au dX,

la culture dans la trompe est durable et non passagere.“ Die

Prophylaxe gegen Souma und Schlafkrankheit muß Hand in

Hand geben und erstreckt sich besonders auf Entholzung und

Tränkung der Pferde aus dem Trog.

Bowman, F.B. (1). The Incidence and Complications of

Malaria in the Phäippine Islands with special Reference to its

with Arsenophenylglyein. Philippine Journ. Sci. Manila

B. (Med. Sci.), 5, p. 2931—8302. — Verf. gibt an, daß chronische

Nephritis die gewöhnliche Folge von wiederholten Fieberanfällen

ist. Periphere Neuritis und manche Fälle, die als Beri-beri dia-

gnostiziert worden sind, können auf Malaria Bezug haben. Be-

handlung mit Arsenophenylglyein hat keinen definitiven Erfolg

und kann zu Vergiftungen führen.

-. — (2). Complement Fixation in Yaws. Philippine Journ.

Sci. Manila B. (Med. Sci.), 5, p. 485—487. — Verf. schließt aus

186 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

seinen Komplement-Versuchen, daß, wie bereits Castellani

angegeben hat, Yaws und Syphilis nicht identisch sind.

Braun, M. u. Lühe, M. A handbook of practical parasitology.

(Translated by L. Foster.) London (Bale, Sons u. Danielsson),

1910, VIII+1—208 pp., 100 text-figs.

Brehm, V. u. Ruttner, F. Süßwasserorganismen aus Dalmatien,

Bosnien und der Herzegowina. Arch. Hydro ol. Planktonk., 6,

p. 85—98, 4 Figg. — Die Verf. haben eine zoogeographische

Studie angestellt und charakterisieren die Fundorte in Dalmatien,

Bosnien und der Herzegowina und knüpfen daran Bemerkungen

über die Mikroflora. Über Protozoen speziell ist fast nichts in dieser

Arbeit enthalten.

Breinl, A. u. Hindle, E. Observations on the life-history of

Trypanosoma lewisi in the rat-louse (Haematopinus spinulosus).

Ann. trop. Med. Liverpool, 3, p. 553—564, pls. XIX u. XX. —

Verf. beschreiben und bilden ab (übrigens sehr schlecht, so daß

wahrscheinlich schlecht fixierte Präparate vorlagen!) einzelne

Formen des Tryp. lewisi aus Haematopinus spinulosus. Vor allem

werden Herpetomonas-ähnliche Stadien und runde Formen be-

schrieben. Eine weitere Abhandlung soll folgen.

Brewer, J. W. (1). A Case of Infection with Balantidium

co. N.Y. med. Journ., 91, p. 1295. — Verf. teilt einen Fall von

Balantidium coli mit.

*— (2). The Animal Parasites found in the Intestines of

Native Children in the Philippine Islands. N.Y. med. Journ.,

91, p. 1112—1113.

Bridre, J. vide N&gre, L.

Brimont, €. vide Mesnil, F.

Broch, H. (1). Die Peridinium-Arten des Nordhafens (Val

di Bora) bei Rovigno im Jahre 1909. Arch. f. Protistenk, 20,

p. 176—200, pl. XIII, 11 Textfigg. — Verf. gibt einen Beitrag zur

Aufklärung der planktonischen Verhältnisse in der Val di Bora.

Nach einem kurzen historischen Rückblick wird einiges üper die

Nomenklatur der Plattenanordnung eines Peridinium mitgeteilt.

In der system. Übersicht werden die 1909 gefundenen Arten auf-

geführt und, beschrieben; neu ist Peridinium adriaticum. Die

P.-Arten sind (mit Ausnahme der bisher geographisch unbekannten

Arten P. tristylum und P. adriaticum) kosmopolitische oder sub-

tropische Arten, die zum Teil Lokalformen oder Saisonformen

bilden. Die P.-Arten der Val di Bora weisen in ihrem Auftreten

zwei Maxima auf: ein kürzeres, quantitativ reicheres Frühjahrs-

maximum und ein längeres, quantitativ kleineres Herbstmaximum.

Für das Frühjahrsmaximum sind besonders charakteristisch ?.

conicum, oceanicum forma arupinensis und P. crassipes forma

typica, für das Herbstmaximum P. quarnerense und. crassipes

forma autumnalis. Auf Tafel 13 wird das Auftreten der Peridinium-

Arten graphisch dargestellt.

Publikationen und Referate. 187

— (2). Das Plankton der schwedischen Expedition nach

Spitzbergen 1908. In: Hofsten, N. von und, Bock, S., Zool. Ergeb-

nisse der schwed. Expedition nach Spitzbergen 1908. Stockholm

Vet.-Ak. Handl., 45, 9, p. 25—64, Karte u. Figg. — Verf. be-

richtet über die Planktonproben aus dem Eisfjord und gibt eine

Übersicht über die planktonischen Verhältnisse des Eisfjordes im

Juli und August 1908. Systematische Übersicht mit ergänzenden

Bemerkungen. Von Protozoen speziell: Dinobryon pellucidum

Levander u. Phaeocystis poucheti Langerh., von Peridineen zirka

30 Arten, von Radiolarien Acanthochiasma krohni Haeckel, Proto-

eystis harsioni Borgert, Collozoum inerme Haeckel u. Protocystis

tridens Borgert; ferner mehrere Tintinnen-Arten. Im II. Teil

werden die Peridinium-Arten des Spitzbergengebietes gesondert

und ausführlich besprochen. Neu davon sind: Peridinium dubium

spitzbergense, monacanthus. Die Bedeutung der Plattenverhältnisse

und der Wachstumserscheinungen für das System wird eingehend

erörtert. Zum Schluß werden mehrere Planktontabellen gegeben.

Broden, A. et Rodhain, J. Action de l’emetique sur le Try-

panosoma congolense (s. Cazalbou:r). Bull. Soc. path. exot. Paris, 3,

p. 233—239. — Die Verf. haben eine kräftige Einwirkung einer

&metique de potasse ou de soude“ auf T'ryp. congolense s. Cazalboui

festgestellt. Prophylaktische Behandlung mit 6 mg pro kilo.

Brodsky, A.L. The division and encystement of Amoeba

hyalina Dangeard. Biol. Zs. Moskva, 1, p. 145—158 + russ. 159

—160, 1 pl. — Verf. beschreibt die Kernteilung der Amoeba hyalina

Dangeard mit variierender Chromosomenzahl und, ohne deutlich

sichtbares Centriol. Desgleichen werden noch ungeklärte Vor-

gänge am Kern bei der Encystierung beschrieben. (Siehe die

Arbeit von Hartmann über Amoeba hyalına).

*Brown, J.M. (1). Rhizopods from the Sheffield district.

Naturalist, London, p. 91—93.

— (2). Fresb-water Rhizopods from the English Lake

District. London, Journ. Linn. Soc., 30, (Zoology), p. 360—368,

1 pl. — Verf. gibt eine Liste der gefundenen Rhizopoden aus dem

englischen Seen-Bezirk (Westmorland und Cumberland): Amoeba

5, Daciylosphaerium 1, Arcella 2, Centropyzis 2, Difflugia 9,

Pontigulasia 2, Lesquereusia 2, Hyalosphenia 1, Nebela 7, Quadrula

1, Heleopera 1, Cochliopodium 1, Euglypha 4, Placocystis, Assulina,

Cyphoderia je 1, Trinema 2, Corythion, Sphenoderia, Paulinella,

Microgromia je 1. Bemerkungen über einige der Arten. Keine

neue Art, nur eine neue Varietät von Nebela.

Bruce, D. (1). Human trypanosomiasis. Lancet, London, II,

p- 408—409.

— (2). Discussion on human trypanosomiasis. Brit. med.

Journ., London, II, p. 864—865. — Betrifft die vom Verf. ge-

machten Vorschläge zur Erforschung und Bekämpfung der Schlaf-

krankheit.

188 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Bruce, D., Hamerton, A. E., Bateman, H.R. and Mackie,

F. P. (1). Amakebe: a disease of calves in Uganda. London, Proc.

R. Soc., 82, B., p. 256—272, pl. X. — Verf. berichten über die

Piroplasmose des Hornviehs aus Uganda. Nomenklatur, Symptome

usw. Die Blutproben enthalten Piroplasma bigeminum u. mutans.

Die Amakebe-Krankheit soll mit dem Ostküstenfieber identisch

sein. ""Überträger Rhiphicephalus appendiculatus, evertsi u. simus.

(2). The development of Trypanosomes in tsetse-flies.

nd, Proc. R. Soc., 82, B., p. 368—388. — Trypanosoma

gambiense vermehrt sich im Darm von Glossina palpalis zu un-

gefähr 5°, der an infizierten Tieren gesogenen Fliegen. Am 34. Tage

nach dem ersten Saugakt werden die Fliegen infektiös und bleiben

es 75 Tage lang. Auch Tr. dimorphon, vivax und nanum vermehren

sich in Gl. palpalis, so daß diese als Überträger angesehen werden

muß. Die Fortpflanzung im Tubus der Proboscis ist charakte-

ristisch für Tr. vivaz.

— (3). Trypanosome diseases of domestic animals in Uganda.

1. Trypanosoma pecorum. London, Proc. R. Soc., 82 B, p. 468

—479, pl. XI—XH. — Verf. berichten über den Erreger einer

schweren Krankheit der Haustiere in Uganda: Trypanosoma

pecorum. Es ähnelt in bezug auf Cytologie, Wirkung auf die Tiere

und Kulturen dem Tryp. dimorphon (Lav. u. Mesnil) und dem

Tryp. Edingtons von Zanzibar. Tr. pecorum ist nicht pathogen

für Meerschweinchen. Zwischenwirt unbekannt, vielleicht eine

Tabanus-Art.

— (4). Experiments to ascertain if cattle may act as a reser-

voir of the virus of sleeping sickness (T’rypanosoma gambiense).

London, Proc. R. Soc., 82 B, p. 480—484. — Verf. haben bewiesen

experimentell, „that cattle in the fly-area do naturally harbour

Trypanosoma gambiense.‘“ Cattle und Antilope dienen also ge-

wissermaäßen als Reservoir des Virus der Schlafkrankheit, die

durch Glossina palpalis übertragen wird. Das natürliche Vor-

kommen steht noch in Frage.

— (5). Mechanical transmission of sleeping sickness by the

Tsetse-flies. London, Proc. R. Soc., 82 B, p. 498—501. — Verf.

meinen, daß eine mechanische nor der Schlafkrankheit

durch Glossina palpalis stattfinden kann bei unterbrochener

Fütterung, wenn kein großer Zeitraum dazwischen liegt. Meist

liegt wohl keine mechanische Übertragung vor.

(6). Trypanosome diseases of domestic animals in Uganda.

II. Primo brucei Plimmer and Bradford. London, Proc.

R. Soc., 83B, p. 1—14, pls. I u. II. — Verf. haben der Erreger

der Trypanosomen-Krankheit des ‚„Uganda-ox‘ identifiziert mit

Tryp. brucei, dem Erreger der Nagana in Zululand und anderen

Teilen Südafrikas.

— (7). Idem. III. Trypanosoma vivax Zieman. London,

Proc. R. Soc., 83 B, p. 15—27, pls. III—V. — Verf. beschreiben

in Trypanosoma vivax den leicht erkennbaren Erreger einer

Publikationen und Referate. 189

schweren Rinderkrankheit in Uganda. Als Überträger fungiert

wahrscheinlich @lossina palpalis. Als Reservoir kommen in der

Fliegen-Region Antilopen in Betracht.

Brumpt, E. (1). Sur quelques particularites morphologiques

et physiologiques des Trypanosomes (perte du flagelle et formation

de pigments divers). Paris, Bull. Soc. path. exot., 3, p. 366-367.

— Verf. beschreibt den Verlust der Geißel bei Trypanosoma rajae

und hält sie für ein aktives Phänomen. Auch in Kulturen des

Tryp. rajae und scyllii treten nach einiger Zeit geißellose Former.

auf mit Pigmentbildung. Diese Crithidia-Formen besitzen später

schwarzes Pigment, ebenso noch andere Trypanosomen. Eine

Erklärung der biologischen Eigentümlichkeit liegt nicht vor.

— (2). Precis de parasitologie. Paris (Masson et Cie.) 1910,

XXVI-+915 pp., 4 pls. in cols., 681 text-figs.

Budington, R.A. The Behavior and Structure of a New

Species of Gregarine. (Amer. Soc. Zool.) Science, N. 8. 31, p. 470.

— Verf. beschreibt eine neue (polycystide) Gregarine aus dem

Darmtraktus von Balanus eburneus. Der Kern zeigt 5 differente

Caryosome (,‚Prochromosomen‘‘). Da die Species unbenannt ist,

so sind, weitere Mitteilungen abzuwarten.

Bütschli, 0. Vorlesungen über vergleichende Anatomie.

I. Lieferung. Leipzig (W. Engelmann) 1910, VIII-+401 pp.,

264 text-figs. — Verf. bespricht die vergleichende Anatomie der

Protozoen gesondert und legt der Übersicht der Organellen eine

physiologische Einteilung zugrunde. Zu den euplasmati-

schen Organellen gehören: Bewegungsorganellen, Ecto- und

Entoplasma mit Pellicula und Myonemen, Einrichtungen zur

Nahrungsaufnahme, zur Ausstoßung unverdauter Nahrungsreste,

Stoffwechselorganellen, Stigmata oder Augenflecke; zu den allo-

plasmatischen Organellen: Trichiten, Trichocysten, echte

Nematocysten, Schutzhüllen, Gehäuse- und Schalengebilde, Skelett-

gebilde; zu den autonomen Organellen: Chromatophoren,

Nuclei und Centrosome, Chromidien.

Bumann, H. Beitrag zur Behandlung der Hundepiroplasmose

mittelst Trypanblau. Zeitschr. Hygien., Leipzig, 67, p. 201—224.

— Verf. berichtet über angestellte Virulenz-Versuche mit Piro-

plasmen, die kein positives Resultat ergeben haben. DasTrypan-

blau übt einen wirksamen günstigen Einfluß auf den Verlauf

derPiroplasmose aus. Es wurde eine Immunität erlangt, die 63 Tage

anhielt. Nach etwa 105 Tagen nach Wahrnehmung der letzten

Krankheitserscheinungen konnte mit dem Blute des mittelst

Trypanblau geheilten Tieres bei einem jungen Hunde Piroplas-

mose erzeugt werden. Das Blut des behandelten wie des natur-

immunen Tieres ist noch 116 Tage nach der Infektion kontagiös.

Burzell, H. H. vide Woodruff, L. L.

*Buscalioni, L. e Comes, 8. La digestione delle membrane

vegetali per opera dei Flagellati contenuti nell’ intestino dei

190 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Temitidi e il problema della simbiosi. Catania Atti Acc. Gioenia,

Ser. 5, 3, Mem., 17, p. 1—-16.

Buschkiel, A. L. Beiträge zur Kenntnis des Ichthyophthirius

multifiliis Fouquet. Arch. f. Protistenk., Bd. 21, p. 61—102,

pls. IV u. V u. 1 Textfig. — Verf. berichtet nach historischer Ein-

leitung, einem Kapitel über das Vorkommen des Ichthyophthirius

multifiliis über die Kultur des Parasiten im Aquarium und der

vom Fisch abgewanderten Individuen. Die eingehenden Unter-

suchungen erstrecken sich auf den Entwicklungseyklus und die

Kernfragen. Teilung in der Haut des Fisches wurde nicht beob-

achtet. Nach Abwanderung vom Wirt erfolgt Encystierung. Die

Entstehung des Nebenkernes aus dem Macronucleus wird ge-

schildert, ferner die Reifung und Befruchtung, die sich (mit Neres-

heimer) in Gestalt einer Autogamie vollzieht. Die Darstellung

der Reifungsteilung nach Neresheimer kann nicht bestätigt werden,

vollständige Klarheit wurde noch immer nicht erzielt. Metagame

Teilungen sind vorhanden. Der Zeugungskreis wird schematisch

wiedergegeben. Im allgemeinen Teil geht Verf. auf die Miero-

nukleusbildung und seine Einwanderung in den Hauptkern, ferner

kurz noch auf die Autogamie ein.

Calkins, 6. N. Protozoology. London (Bailliere, Tindall u.

Cox) 1910, IX+349 pp., 4 pls. col., 125 text-figs. — Verf. teilt

sein Lehrbuch in folgende Kapitel ein: Allgemeine Organisation

der Protozoen, Physiologie, Protoplasma-Alter; Konjugation,

Reifung und Befruchtung; Parasitismus, die pathogenen Fla-

gellaten, die pathogenen Hämosporidien, die pathogenen Rhizo-

poden.‘“‘ Im allgemeinen ist das Buch nicht zu empfehlen und

zum mindesten jetzt als veraltet anzuseben.

Calvocoressi, 6. Die Malaria unter den Mekkapilgern. Zeitschr.

Hygien., Leipzig, 67, p. 19—30, pl. I. — Verf. berichtet über dıe

Malaria unter den Mekkapilgern: Tropica 71,9%, Tertiana 24,2%,

Quartana 3,5%, Mischinfektion der beiden ersten 0,3%,. Anno

1908, bei relativ strengem Winter, war das Verhältnis der Tertiana

zur Tropica 1:2. Die einzelnen Formen der Parasiten werden

oberflächlich und nach schlechten Abbildungen beschrieben, zum

Teil wird der Entwicklungsgang angegeben.

Cannata, S. vide di Cristina, G@.

Cannata, S. vide Jemma, R.

Cantaeuzene, J. Sur un spirochete thermophile des eaux de

Dax. (Reun. biol. Bucarest.) C. R. Soc. Biol. Paris, 68, p. 75

— 77. — Verf. beschreibt eine neue Art Spirochaeta Dazxensis aus

den Thermalwassern von Dax (Temp. 52—54°). Die Länge be-

trägt 30—100 «. Im allgemeinen ist diese Form mit Spir. plicatilis

verwandt. Es werden verschiedene Formen im einzelnen be-

schrieben.

Carini, A. (1). Stades endoglobulaires des 'Trypanosomes.

Ann. Inst. Pasteur Paris, 24, p. 143—151, pl. I. — Verf. beschreibt

mehrere endoglobuläre Trypanosomenformen aus Leptodactylus

Publikationen und Referate. 191

ocellatus. In den ersten endoglobulären Stadien ihrer Entwicklung

besitzen die Trypanosomen keine Spur ihres charakteristischen

Lokomotionsapparates. Es würde auf diesem Stadium unmöglich

sein, sie von irgendwelchen Blutparasiten zu unterscheiden. Vert.

deutet dies zugunsten der Annahme Schaudinns über die

Verwandtschaftsverhältnisse der Blutprotozoen.

*— (2). Sobre uma Haemogregarina da Phylodrias schotti

Schlege. Sao Paulo Rev. Med., No. 17 (reprint 4).

*— (3). Sobre a Haemogregarina muris. Sao Paulo Rev.

Soc. Sci., 5, (reprint 2), 12 figs.

— (4). Sobre uma piroplasmose equina observada em S. Paulo

Sao Paulo Archiv Soc. Med. Chirurg. (reprint 5).

— (5). Sur quelques parasites semblables & des bacilles

rencontres dans les hematies du Leptodactylus ocellatus. Ann. Inst.

Pasteur, 24. Annee, p. 152—156, pl. II. — Verf. beschreibt aus

den roten Blutkörperchen von Leptodactylus ocellatus ‚‚bazillen-

förmige“, kernhaltige Elemente, die er eventuell zu den Protozoen

stellt, da sie eine angebliche Schizogonie haben sollen.

Casagrandi, O0. L’etiologia del vaiuolo umano. Ann. Igiene

spez., Torino, N. S. 20, p. 188, 1 tav. (Il virus vaioloso studiato

in rapporto al Cyitorrhyctes variolae p. 44.)

Cash, J. and Hopkinson, J. British fresh-water Rhizopods

and Heliozoa. Vol.2. Rhizopoda part Il. London (for the Ray

Society), 1909, p. XVIII+166, 32 pls.

Castellani, A. and Chalmers, A. J. (1). Note on an intestinal

Flagellate in Man. Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Sci.) 5,

p. 211—213, 1 pl. — Die Verf. beschreiben kurz ein parasitisches

Plagellat aus Stühlen von Fällen von Ankylostomiasis aus Ceylon.

Die Kultivierung gelang auf Nutrose-Agar. Dieses Flagellat wird

als Bodo asiaticus bezeichnet. Nach Whitmore (1911), der

seine Cytologie und Vermehrung eingehend untersucht hat, ist

es ein Binucleat und gehört zu Prowazekia. Whitmore bezeichnet

es als B. asiatica. Referat im nächsten Bericht.

— (2). Manual of tropical medicine. London (Bailliere, Tindall

u. Cox, XXIII+1242 pp., 14 pls., 373 text-figs.

Caullery, M. (1). Sur un Protozoaire marin du genre Cik-

ophrys Cienkowsky (C. marina n.sp.). Paris, C. R. Ass. frang.

avanc. sci., 38, (Lille) (1909), 1910, p. 708—709.— Verf. beschreibt

die neue Art Oilkiophrys marina.

— (2). Ellobiopsis C'hationi n.g. n.sp. Parasite de Calanus

helgolandicus Claus, appartenant probablement aux Peridiniens.

Bull. Scient. France Belgique, XLIV, p. 201—215, pl. V, 3 text-

figg. — Beschreibung: Cysten mit dünner Wand, eiförmig, dann

kugelig, dann längsgestreckt und endlich in zwei Teile geteilt

durch einen transversalen Einschnitt. Das Plasma ist granuliert,

durchsät von einer großen Zahl chromatischer Körner ohne eine

andere Kerndifferenzierung. Die Cysten sind durch einen Stiel

mit fibrillärer Struktur an ihrem Wirt befestigt, in den sie tief

192 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

hinein einen stielartigen Fortsatz senden. Die Art lebt parasitär

auf den vorderen Anhängen von Calanus. — Scott hat den gleichen

Parasiten als Infusor beschrieben.

biologie, ethologie, parasitaires, systematique. Arch. zool. Paris,

ser. 5, 3, p. 341—609, pls. IX— XVII. — Verf. behandelt in dieser

überaus ausführlichen und gründlichen Monographie die „In-

fusoires astomes“. Nach einer historischen Einleitung wird das

Vorkommen der Parasiten und der spezielle Sitz in vergleichender

Weise besprochen. Bei fast allen Gruppen sind sie bisher gefunden

worden, bei Hleutheria, Echinodermen, Rotatorien, Anneliden,

Bryozoen, Mollusken, Crustaceen, Anuren und Urodelen. Als

Sitz kommen in Betracht: der Verdauungstraktus, das Gastro-

vaskularsystem, Leber, Cölom, cavite palleale und Uterus, Genital-

drüsen. Die geographische Verbreitung findet auch Berück-

sichtigung. Neu beschrieben werden folgende Genera und Spezies:

Kofoidella eleutheriae n.g. n.sp. aus Eleutheria dichotoma, Into-

shellina Maupasi n.g.n.sp. aus T'’ubifex sp., Hoplitophrya hamata

n.sp. aus Lumbricus terrestris, Maupasella nova n.g. n.sp. aus

Lumbriciden von Algier, Anoplophrya Maupasi n.sp. aus Aelo-

soma Hemprichii, Schultzellina mucronata n.g. n.sp. aus Allurus

tetraedrus Sav., Perezella pelagica n.g. n.sp. aus Copepoden,

Uronema Rabaudi n.g. n. sp. aus Copepoden, Isselina intermedia

n.g.n.sp. aus Littorina obtusa. Esfolgteine vergleichende Ana tomie,

die vorzüglich ist, ferner eine Beschreibung der Fortpflanzungs-

vorgänge, der Transversal-Teilung, Knospung, Ketten-Knospung.

In dem systematischen Teil wird alles Wissenswerte über die Be-

ziehungen der einzelnen Formen zusammengestellt. Folgende

Familien werden unterschieden: Kofoidellidae Cepede, Into-

shellidae Cepede, Anoplophrydae Cepede (mit den Unterfamilien

der Rhizocaryinae, Bütschliellinae, Anoplophryinae, Mesnilellinae,

Hoplitophryinae, Maupasellinae), Discophryidae Oepede, Ladidae

Cepede, Cepedellidae Cepede, Herpetophryidae Cepede, Perezellidae

Cepede, Colliniidae Cepede, Protophryidae und Orchitophryidae

Cepede. — Weiter werden behandelt: Die Wirkung der astomen

Infusorien auf ihre Wirte, parasitäre Kastration und teratogene

Wirkung.

Chagas, €. (1). Estudos de citolojia em nova especie de

Coccidio, Adelea hartmanni, do intestino do Dysdercus ruficollis L.

(Cytologische Studien über Adelea hartmanni, ein neues Coccidivm

aus dem Darme von Dysdercus ruficollis L.) Bio de Janeiro, Mem.

Inst. Osw. Cruz, 2, p. 168—185, pls. XI—XV. — Verf. beschreibt

die ganze Entwicklung der Adelea hartmanni aus dem Darmkanal

der Wanze Dysdercus ruficollis. Nach allgemeinem historischen

Rückblick über die Coceidienforschung, betont der Verf., daß er

die Befunde von Jollos bei Adelea ovata bestätigen kann. Zu-

nächst wird die Makroschizogonie bei Ad. hartmanni beschrieben.

Der Kern des Makroschizonten zeigt zwei verschiedene Formen.

Publikationen und Referate. 193

entsprechend den zwei Arten der vor sich gehenden multiplen

Teilung. Das Caryosom enthält auch hier ein Centriol, dessen

Centrodesmose gut ausgeprägt ist. In den Stadien, die der Plasma-

teilung vorausgehen, verwischt sich die deutliche Mitose. Die

Anzahl der Merozoiten ist sehr groß. Bei der Mikroschizogonie

treten die cytologischen Verhältnisse noch klarer hervor. Die

multiple Teilung vollzieht sich hier scheinbar immer durch die

Ruptur eines Kernes mit vielen Caryosomen. Eine echte Re-

duktionsteilung der Makrogametocyten findet statt, wobei ein

Teil des Caryosoms aus dem Kern heraustritt nach einer Teilung

des Centriols. Die Reduktion ist als modifizierte Kernteilung auf-

zufassen. Die Verbindung der Gametocyten zeigt bei diesem

Coceidium die Eigentümlichkeit, daß an der Oberfläche der ver-

bundenen Organismen eine Membran existiert; es bleibt unent-

schieden, ob dies Kopulationscysten sind, oder ob die Membran

die Grenze der Epithelzelle darstellt, in der die Organismen heran-

wachsen. Die Zahl der Mikrogametocyten bei der Kopulation

beträgt meistens zwei, manchmal sogar vier. Der Mikrogametoecyt

dringt fast immer an dem zugespitzten Ende der Spindel ein, und

es findet eine Fusion seines Chromatins mit dem des Makro-

gameten auf der Zentralspindel statt. Von den beiden Kernen,

die im Ookineten aus der ersten Teilung hervorgehen, geht meistens

nur einer eine zweite Teilung ein, so daß in der Cyste drei Sporo-

blasten gebildet werden. In jedem Sporoblasten werden 4 Sporo-

zoiten gebildet. Man könnte daran denken, mit Rücksicht auf die

3 Sporoblasten ein neues Genus aufzustellen, allein die Ähnlich-

keit der Entwicklung mit der von Adelea ovata läßt dies als un-

nötig erscheinen.

— (2). A New Form of Human Trypanosomiasis. Lancet,

vol. 178, p. 1774. Siehe die betr. Arbeit pro 1909.

Chagas, C. vide Hartmann, M.

Chagas, C. u. Prowazek, S. v. Bemerkung zu der Arbeit von

R. Gonder und H. v. Berenberg-Goßler: „Malariaplasmodien der

Affen“. Malaria, Bd.I, Hft. 1, Leipzig, 1909, p. 138.

Chalmers, A. J. vide Castellani, A.

Chatton, E. (1). Sur l’existence de Dinoflagell&s parasites

coelomiques. Les Syndinium chez les Copepodes pelagiques.

Paris, C. R. Acad. sci., 151, p. 654-656. Verf. beschreibt ein

parasitisches Dinoflagellat Syndinium n.g. turbo n. sp. aus Para-

calanus parvus Claus, Olausocalanus arcuicornis Dana und Cory-

caeus elongatus Claus. Es wurden Makro- und Mikrosporen be-

obachtet. Die Syndinium gehen ins Epithel und entwickeln sich

in Plasmodien in den Höhlungen des Wirtes.

— (2). Paradinium poucheti n.g. n.sp., Flagelle parasite

d’Acartia clausi Giesbrecht (Copepode pelagique). Paris, C. R.

Soc. Biol., 69, p. 341—843. — Verf. beschreibt in der vorläufigen

Mitteilung die parasitische Peridinee Paradinium poucheti.

Archiv für Naturgeschichte 13

1911. v1. 2.

194 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

— (3). Protozoaires parasites des branchies des Labres:

Amoeba mucicola Chatton, Trichodina labrorum n.sp. Appendice:

parasite des Trichodines. Arch. zool. Paris, ser. 5, 5, p. 239—266,

pl. III. — Verf. beschreibt von der Schleimhaut der Kiemen und

der Haut von Symphodus tinca L. und 8. melops L. zunächst eine

parasitische Trichodina labrorum n.sp., nebst historischen und

vergleichenden Bemerkungen. Dann folgt die ausführliche Be-

schreibung der Amoeba mucicola Chatton mit pathogener Wirkung

auf ihren Wirt. Die Amöbe gehört zur Limax-Gruppe. Die Kern-

teilung verläuft als Mitose mit 2 schwach ausgebildeten Chromo-

somen und deutlicher Centriolteilung. Im Anhang wird noch ein

Parasit der Trichodinen beschrieben, der eventuell zur A. mucicola

zu rechnen ist. In diesem Falle würden die Trichodinen die Über-

träger dieser Amöbe von einem Wirt auf den andern sein.

— (4). Essai sur la structure du noyau et la mitose chez les

Amoebiens. Faits et theories. Arch. zool. Paris, ser. 5, 5, p. 267

—337. — Verf. gibt eine eingehende zusammenfassende Dar-

stellung der Kernverhältnisse und der Kernteilung bei den Amöben,

den nackten und beschalten. Zunächst werden die Tatsachen

übersichtlich zusammengestellt; von Autoren, deren Befunde

wichtig sind, werden besonders berücksichtigt: Vahlkampf, Nägler,

Aragäo de Beaurepaire, Hartmann, Prowazek, Dobell, Doflein,

Schaudinn u.a. m. Vergleichsweise werden dann auch die Kern-

teilungen bei anderen Protisten besprochen. Die sich anschließen-

den Theorien beziehen sich auf das Nucleo-Centrosom, den Kern-

dualismus und den Dualismus des Chromatins. Verf. stellt 3 Typen

der Protistenkerne auf und dementsprechende Typen der Kern-

teilung: Promitose (Nägler), Mesomitose und Metamitose.

Caryosom und Centrosom sind einander nicht homolog, das

Homologe sind in beiden die Centriole. Die alte Auffassung des

Kerndualismus von Hartmann in ihrer allgemeinen Aus-

dehnung wird mit Recht verworfen, wie dies Hartmann bereits

selbst getan hat. Der Kerndualismus bleibt beschränkt auf Bi-

nucleaten und Infusorien. Das Caryosom ist nicht rein vegeta-

tiver Natur, was aus seiner Rolle bei der Teilung und Befruchtung

hervorgeht. Die ganze Arbeit des Verf. bietet eine gute Ein-

führung in die betreffenden Probleme.

— (5). Le kyste de Gilruth dans la muqueuse stomacale

des Ovides. Arch. zool. Paris, ser. 5, 5, Notes et Revue, p. 114

—124, 7 Textfigg. — Verf. beschreibt den von Gilruth entdeckten

Parasiten nun auch bei Schafen und Ziegen in Frankreich. ‚Il est

localise & la region anterieure de la caillette, celle ou la muqueuse

a surface lisse et de couleur rosee forme de larges duplicatures

longitudinales.‘“ In den Fällen einer starken Infektion findet man

annähernd eine Cyste auf 1gem. Zunächst wird die reife Cyste

beschrieben, dann die Sporozoiten im Reifezustande. Jede Spore

enthält einen elliptischen Kern mit gut erhaltener Kernmembran,

die durch ein chromatisches Netzwerk mit einem kleinen Caryosom

Publikationen und Referate. 195

in Verbindung steht. Das eine Ende ist schnabelartig. Im Innern

liegt neben kleineren Reservestoffkörnern ein stark lichtbrechender

Körper. Die Cyste zerplatzt, und es tritt Phagocytose der Um-

hüllung ein. Eingehend wird beschrieben das plasmodiale Stadium

der Cyste und die Bildung der Sporozoiten eines vielkernigen

„Blastophors“. Zum Schluß wird die Gilruth-Cyste mit Coceidien

und Gregarinen (auch Plasmodidae) verglichen und die Ver-

mutung ausgesprochen, daß es sich um eine Schizogonie eines den

Coceidio-Gregarinen nahestehenden Protozoons handelt, dessen

Gamogonie vielleicht bereits bekannt ist. Sollte es sich um eine

neue Form handeln, so wird der Name Gasirocystis n.g. gilruthi

n.sp. vorgeschlagen.

— (6). A propos de Rhynchomonas luciliae Patton flagelle

parasite de la Lucilie serenissime. Bull. Soc. path. exot., 3, p. 363

—365. — Verf. wendet sich gegen Patton, der davon spricht,

daß man bei Insekten nur Flagellaten der Gattungen Herpeto-

monas und Orithidia gefunden habe, und führt verschiedene andere

auf. Der Gattungsname Rhynchomonas für die von Patton be-

schriebene Art dürfte nicht zu Recht bestehen.

Chatton, E. u. Collin, B. Sur un Acinetien nouveau commensal

d’un Copepode, Rhabdophrya trimorphka n.g. n.sp. Arch. zool.

exper. Paris, ser. 5, 5, Notes et Revue, p. 138—145, 3 Textfigg. —

Die Verf. beschreiben einen neuen Kommensalen auf Cletodes

longicaudatus Boeck, der ziemlich selten vorkommt. Die An-

heftung geschieht an der Dorsalseite des Wirtes. Es kommen vor

Individuen mit Tentakeln und von verlängerter Körpergestalt

bis zu 175 u, ferner vermiforme Individuen ohne Tentakel, endlich

„krallenförmige‘‘ von nur 45 u Länge. Letztere sitzen immer auf

den Antennen der Männchen. Der Körper aller Formen ist von

einer dichten Pellicula bekleidet, die noch eine Schleimhülle trägt.

‚Das Plasma ist dicht und feinkörnig. Der Kernapparat besteht

aus einem elliptischen Macronucleus und einem runden Miero-

nucleus, der in einer seitlichen Einbuchtung des Ma. liegt. Ah.

wäre ein Beispiel für einen Trimorphismus bei den Acineten. Die

vermiformen Individuen werden wohl durch Knospung aus den

tentakeltragenden hervorgegangen sein. Die ‚krallenförmigen‘“

Individuen scheinen reduzierte vermiforme zu sein und gleich-

zeitig speziell angepaßte. Ah. gehört zu den Trichophryidae, in

die Nähe der Gattungen Dendrosoma und Dendrosomides.

*Christiansen, M. Om Forekomsten af Trypanosomer i

Blodet hos sundt Kvaeg. (On the occurence of Trypanosoma in

the blood of sound cattle.) Köbenhavn Mdskf. Dyrl., 22, p. 321—325.

*Oleland, J.B. and Johnston, T.H. The Haematozoa of

Australian Batrachians No. 1. Sydney, N.S.W. I. R. Soc., 44,

p- 252—260, 1 pl.

Cleland, J. B. vide Johnston, T. H.

*Cockerell, T. D. A. Notes on Protozoa (of Boulder county,

Colorado). Boulder Univ. Col. Stud., 6, 1909, p. 305—307.

13*

196 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Cole, L. J. and Hadley, P. B. Amoeba meleagridis. Science,

New York N. Y., N. Ser. 32, p. 918—919. — Verf. weisen auf die

wahrscheinlich bestehende Vermischung von Entwicklungsstadien

eines Coccidiums bei Blackhead mit Entwicklungsformen von

geißeltragenden Organismen hin. Die Existenz der Amoeba

meleagridis wird bestritten und gegen Smith wird polemisiert.

*Colledge, W. R. Report on pontlife. Queensl. Nat. Brisbane,

1, p. 155 u. 162.

Collin, B. La conjugaison d’Anoplophrya branchiarum Stein.

Bull. Acad. Se. Lettr. Montpellier, No. 2/3, 1910, p. 49—50. —

Siehe Collin (2) im Bericht pro 1909.

Collin, B. vide Chatton, E.

Collin, B. vide Beauchamp, P. de.

Comandon, J. La symbiose fuso-spirillaire. Arch. Parasit.,

Paris, 13, p. 436—457, pl. 2. — Verf. teilt einiges mit über die

Symbiose der Spir. pallida sive Vincenti, buccalis, dentium mit

Bacillus fusiformis, Leptothrixz, Trichomonaden und anderen

Protisten.

Comandon, Levaditi et Mutermilch. Mecanisme de la phago-

cytose des trypanosomes.. Demonstration cin&matographique.

Bull. Soc. path. exot. Paris, 3, p. 365.

*Comes, S$. (1). Lophophora vacuolata Comes, nuove genere

e nuova specie di Flagellato dell’ intestino dei Termitidi. Catania

Boll. Ace. Gioenia, Ser. 9, fasc. 13, p. 11—19.

*— (2). Alcune considerazioni citologiche a proposito del

dimorphismo sessuale riscontrato in Dinenympha gracilis Leidy.

(Nota prel.) Catania, Boll. Acc. Gioen., Ser. 2, fasc. 13, p. 20—29.

Comer, S. vide Busealioni, L.

Conor, A. et Nicolle, Ch. Application du ‚606‘ au traite-

ment du kala-azar. Bull. Soc. path. exot. Paris, 3, p. 717—718.

— Verf. berichten über die rapide Heilung eines Kala-azar-Hundes

mit 606.

Conseil, A. et Nicolle, Ch. Action du ‚606° sur le paludisme.

Bull. Soc. path. exot. Paris, 3, p. 708—716. — Verf. glauben, daß

606 größere Dienste bei Bekämpfung des Sumpffiebers leisten

wird. Eine Behandlung mit Chinin wird dann das übrige tun.

Bei einmaliger Injektion verschwinden jedenfalls noch nicht alle

Parasiten aus dem Blut.

Conseil, A. et Tribaudeau, J. Application du ‚606‘ au traite-

ment de la syphilis en pays arabe. Bull. Soc. path. exot. Paris, 3,

p. 537—541. — Verf. berichten über die außerordentliche Heil-

wirkung von 606 selbst bei schwerer Syphilis. Die Therapie bei

einmaliger Injektion verspricht Arabien frei von Lues zu machen.

Crawley, H. Trypanosoma americanum n. sp., Trypanosome

which appears in cultures made from the blood of American cattle.

(Prel. Note.) Journ. comp. path. ther. Edinburgh, 23, p. 1726;

Journ. trop. vet. sci., Calcutta, 5, p. 295—308, figg. — Verf. be-

Publikationen und Referate, 197

schreibt in einer vorläufigen Mitteilung eine neue Art Trypano-

soma americanum nach angelegten Blutkulturen von Rindern.

di Cristina, G. u. Cannata, $. Über die morphologischen und

kulturellen Eigenschaften des Parasiten der infantilen Milzanämie

(Leishmania infantum). Experimentelle Untersuchungen. Centralbl.

Bakt., Abt. 1, Orig., 55, p. 494—496. — Verf. haben Leishmania

infantum in Kulturen gezüchtet (nach Nicolle u. Novy-Neal) und

beschreiben das Wachstum der Kolonien auf der Oberfläche des

Agars. Nach 30 Tagen werden Degenerations- und normale Ent-

wieklungsformen beobachtet. Die einzelnen Formen werden kurz

ohne Abbildungen beschrieben. Wahrscheinlich kommt eine Aniso-

gamie vor mit Bildung von Cytogameten, die schließlich die Geißel

verlieren. Die Chromatinkörperchen enthaltenden Formen sollen

Reifungsstadien vorstellen, die Kugelformen sollen kopulieren.

di Cristina, 6. vide Jemma, R.

Crossland, €. vide Hibbert, W. A.

Cushny, A. vide Thomson, J. D.

Daday, E. von (1). Ergebnisse der mit Subvention aus der

Erbschaft Treitl unternommenen zoologischen Forschungsreise Dr.

Franz Werner’s nach dem ägyptischen Sudan und Nord-Uganda.

XV. Beiträge zur Kenntnis der Mikrofauna des Nils. Wien. Sitz.-

Ber. Ak. Wiss., 119, Abt. 1, p. 537—589, 3 pls. — Verf. stellt von

Protisten der Süßwassermikrofauna Ägyptens einige kosmo-

politische Arten fest, ferner aus dem Sudan vom weißen Nil und

Bahr el Gebel zahlreiche Testaceen.

— (2). Die Süßwasser-Mikrofauna Deutsch-Ostafrikas. Zoo-

logica, Stuttgart, H.59 (= Bd. 23, Lfg. 1—5), p. 1—314, pls. I

—XVIII. — Verf. behandelt teilweise die Protistenfauna des

Nyassa und seiner Umgebung und gibt die Fundorte an. Die

einzelnen Arten werden angeführt und kurz beschrieben. Neu

sind Trachelomonas ovalis, Uronychia paupera, Acineta symbiotica,

A. calyx, Solenophrya polypoides. Im ganzen werden 74 Arten

aufgeführt. Meist sind die Arten kosmopolitisch. Charakteristisch

für Deutsch-Ostafrika sind 8 Arten, die alle vonDaday als neue

Arten bezeichnet sind. Es wird noch eine Übersicht der bis jetzt

bekannten Protozoen Afrikas gegeben, 186 an der Zahl, davon

sollen 46 ausschließlich von afrikanischen Fundorten stammen.

Dakin, W.S. vide Herdman, W. A.

Dalyell, E. J. vide Welsh, D. A.

Dangeard, P. A. (1). Sur une Algue marine du laboratoire

du Concarneau. Paris, C. R. Acad. Sci., 151, p. 991—993. — Verf.

beschreibt eine neue Polyblepharide als Stephanoptera Fabreae

n. 8. n. sp. Besitz von nur 2 Geißeln. Die Fortpflanzung geschieht

durch Längsteilung und eine Art Knospung. Die Geißeln werden

zu je einer auf die Tochtertiere verteilt, je eine neue sproßt dann

seitlich der alten hervor. Die Encystierung wird kurz beschrieben.

Beträchtliche Anpassung an gesättigtes Meerwasser in den

Kulturen.

198 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

— (2). Etudes sur le Developpement et la Structure des

Organismes Inferieurs. Le Botaniste, 11. ser., p. 1—311, 33 pls. —

Verf. behandelt in vorliegender Monographie zwar recht ein-

gehend verschiedene Protisten, aber spätere Detailuntersuchungen

haben bereits ergeben, daß verschiedene Ungenauigkeiten und

Irrtümer vorliegen und daß vor allem die Figuren recht schlecht

gezeichnet sind. Die theoretischen Folgerungen des Verf. bringen

nichts wesentlich Neues und sind größtenteils auch bei anderen

Autoren bereits besser zu finden. — Nach einer allgemeinen Ein-

leitung werden im einzelnen folgende Protisten behandelt: Amoeba

mit normaler Teleomitose: A. Gleichenii Duj., A. C'hattoni n. sp.,

A. paradoxa n.sp.; Amöben, deren Kernteilung noch nicht be-

obachtet ist: A. viridis Leidy; Amöben vom Pelomyzxa-Typus:

Pelomyxa vorax n.sp. (mit Amoebophilus Penardi n.sp.); Laby-

rinthula Zopfii n.sp., @ymnophrydium hyalinum Dang.; weiter

von den Thecamoeben: Cochliopodium bilimbosum Auerbach,

Arcella vulgaris Ehrh., Nuclearia delicatula; Lecythodytes paradoxus

Dang. und Lecythina n. g. stercorea n. sp. Auch über die folgende

Gruppe der Flagellaten folgt erst eine allgemeinere Einleitung.

Speziell behandelt werden: Bodo caudatus (Duj.) Stein, B. ovatus

Stein, B. edax Klebs, C’ercomenas longicauda Duj., Monas vulgaris

u. guttula (nach einer im Druck befindlichen Arbeit von Nägler

sind die Angaben des Verf. betr. der Kernteilung sehr ungenau),

Anthophysa vegetans Stein, Trepomonas agilis Duj., Codonosiga

botrytis, Codonocladium umbellatum Stein, Salpingoeca minor n. sp.,

Spongomonas minima n.sp.,; von Chloromonadineen Vacuolaria

virescens Cienk., von Cryptomonadineen Chilomonas paramaecium

Ehrb. (über diese Art siehe die eingehende Arbeit von Nägler

1912 im Arch. f. Protistenk.), Oryptomonas ovata Ehrb., Cr. sp.;

von Euglenen Euglenopsis vorax Klebs, Peranema trichophorum

Ehrbg., Scytomonas pusilla Stein. Der 5. Teil behandelt folgende

allgemeine Fragen: Das extranucleäre Chromatin, der Kern und

seine Teilung, die allgemeine Sexualität. Hieran schließt sich

eine Theorie der Sexualität.

Darling, 8. T. (1). Experimental sarcosporidiosis in the

guinea-pig and its relation to a case of sarcosporidiosis in Man.

Journ. trop. vet. sci., 5, p. 470—480, pl. XXXV; Journ. exp. Med.

New York, 12, p. 19—28, pls. I u. II. — Verf. berichtet über

experimentelle Infektion von Meerschweinchen durch Sarcocystis

muris. Sarcosporidien werden erst nach langer Incubationszeit

von circa 150 Tagen an gefunden. Auch Übertragung auf Menschen

ist möglich und eine Diagnose der Herkunft der Parasiten schwer

zu stellen. Morphologisch stellen beide Formen abweichende

Typen in anderen Wirten dar.

— (2). The morphology of the parasite (Histoplasma capsu-

latum) and the lesions of histoplasmosis, a fatal disease of tropical

Publikationen und Referate. 199

America. Journ. exp. Med. New York, 1909, 11, p. 515—531,

pls. 19—23. Siehe Bericht pro 1909.

— (3). Equine trypanosomiasis in the canal zone. Paris,

Bull. soc. path. exot., 3, p. 381—385. — Verf. gibt eine kurze

Beschreibung einer Viehseuche der Maultiere von der Gegend des

Panamakanals und sieht als Erreger Tryp. hippicum n.sp. an.

Vergleich mit der Derrengadera der Pferde in Columbien.

— (4). Sarcosporidiosis in the opossum and its experimental

production in the Guinea pig by the intramuscular injection of

sporozoites. Bull. Soc. path. exot., Paris, 3, p. 513—518. — Verf.

beschreibt eine neue Sarcosporidiose beim Opossum (Didelphys)

nicht nur in den gestreiften Muskeln, sondern auch im Binde-

gewebe, in den glatten Muskeln, im Drüsengewebe und im Herz.

Auch innere Organe enthielten die Parasiten teilweise. Die Sarco-

sporidien entwickeln sich also auch in andern Geweben als nur

in denen der Muskeln. Die Größe der Parasiten betrug 1,5 bis

2 mm., die Sporozoiten waren bananenförmig (8:12 « und

2:4). Eine Suspension der Sporozoiten wurde einem Meer-

schweinchen mit Erfolg eingeimpft. Verf. vergleicht diese Infek-

tion mit der auch beim Menschen beobachteten.

Darre, H. et Gery. L. Etude anatomo-pathologique des

eryth&mes trypanosomiasiques. Bull. soc. path. exot. Paris, 3,

p- 728—732. — Verf. haben die Erytheme bei der Trypanosomiasis

untersucht und vergleichen sie mit der Roseolenbildung bei Lues,

die auffallender hervortritt.

Deaderick, W. H. Recurrences in malaria; their cause and

prevention. Bull. soc. path. exot. Paris, 3, p. 498—504. — Verf.

versucht die Rückfälle beim Sumpffieber zu erklären und führt

sie in der Mehrzahl auf Parthenogenese der Macrogameten zurück.

Nur durch gründliche Behandlung sind sie zu vermeiden. Es

werden gegeben 20 cg Chinin alle 6 oder 7 Tage während 12 Wochen.

Deseler, Br. Ein Beitrag zur Züchtung von Piroplasmen in

künstlichen Nährböden. Zeitschr. Hyg., Leipzig, 67, p. 115—134,

pl. III. — Verf. konstatiert mit Kleine und Nuttall, daß die Piro-

plasmen des Hundes sich in 0,6—0,8%, NaCl-Lösung am besten

in ihrer Entwicklung verfolgen lassen. Stark ausgeprägte Strahlen-

formen wurden nicht beobachtet. Die Strahlenformen treten am

1. Tage auf, sind am 3. Tage verschwunden. Eine Vermehrung

bei den Versuchen glaubt Verf. ausschließen zu dürfen.

Dibbel, W. vide Baumgarten, P. von.

Doane, R. W. Insects and disease. London (Constable u. Co.),

XIV -+227 pp., 112 textfigs.

*Dobell, €. €. (1). On some parasitic Protozoa from Ceylon.

Spol. zeyl. Colombo, 7, pt. XXVI, p. 65—87, pl. II.

— (2). Contributions to the life-history of Haemocystidium

simondi Castellani et Willey. Festschr. f. R. Hertwig, Bd.1,

Jena (G. Fischer), p. 123—132, pl. VII. —- Verf. beschreibt den

Lebenscyklus von Haemocystidium simondi aus Hemidactylus

200 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

leschenaultii. Die Schizonten teilen sich in 2, selten in 4 Mero-

zoiten, die nach einem amöboiden Stadium neue Blutkörperchen

infizieren. Nach Ausbildung männlicher und weiblicher Gameto-

cyten werden diese wahrscheinlich kopulieren in einem Blut-

körperchen. Zwischenwirte wurden nicht gefunden, und die Para-

siten scheinen auf Kaltblüter beschränkt zu sein. Alles spricht

für eine Aufrechterhaltung des Genus Haemocystidium und eine

Trennung von Plasmodium.

*Dodd, S. Piroplasmosis of cattle in Queensland. Journ.

comp. path. ther. Edinburgh, 23, p. 141—160.

Dodd, S. vide Gilonth, J. A.

Doflein, F. Studien zur Naturgeschichte der Protozoen.

VI. Experimentelle Studien über die Trypanosomen des Frosches.

Arch. f. Protistenk., Bd. 19, p. 207”—231, Taf. XI—XIII u. 1 Text-

figur. — Verf. will in seinen Studien nur die Tatsachen in theorie-

freier Weise zunächst einmal darstellen; um später erst die theo-

retischen Anschauungen zu erörtern. Es handelt sich um zwei

Formen von Trypanosomen aus dem Blute von Rana esculenta,

um „eine kurze und plumpe, die in der Regel keine freie Geißel

besitzt“, und um ‚eine langgestreckte mit wohlausgebildeter

Geißel“. Daher erhebt sich die Frage, gehören diese Formen zu

einer Art als differente Geschlechtsformen, oder sind es ge-

trennte Arten? Bringt man die Froschtrypanosomen auf künst-

liche Nährböden, so tritt eine Umwandlung in kleinere Organismen

ein, die eventuell mit gleichfalls in Froschblut vorkommenden

Lankesterellen verwechselt werden könnten, wie z. B. vermutlich

Geißelansätze bei den Lankesterellen sich in Wirklichkeit als feine

Gallertfäden herausstellen. Die Lankesterellen erfahren nun in

den Kulturen keine Weiterentwicklung, sondern sterben ab und

kommen mithin für eine Ableitung der kleinen Kulturtrypano-

somenformen nicht in Betracht. Dagegen hat Verf. die Um-

wandlung des Trypanosoma rotatorium beobachtet auf Blutagar.

Es trat zunächst Zweiteilung ein, die im Blute nicht stattfand.

Dann folgte Rosettenbildung. ‚Zum Schluß resultiert aus ver-

schiedenen Teilungsvorgängen meist ein Klümpchen von ungefähr

gleich großen jungen Individuen“. Während der Teilung sind keine

Geißeln wahrnehmbar. Die Teilprodukte sind zum Schluß birn-

förmig oder oval. Nach Loslösung der einzelnen Individuen

werden sie kugelig, und es tritt eine feine kurze Geißel auf. „Das

Ganze furcht sich ab wie ein tierisches Ei.‘ Die kleinen Kugeln

strecken sich in die Länge und werden zu kleinen Flagellaten, die

sehr von ihrem Muttertier abweichen. Verf. vergleicht sie mit

Herpetomonas-Formen, wobei er aber unberücksichtigt läßt, daß

H. zweigeißelig ist. Eine Weiterentwicklung obiger Formen ge-

langte nicht zur Beobachtung. Die genaue Untersuchung zahl-

reicher Kulturen hat weiter zu dem Resultat geführt, daß ‚stets

nach kurzer Zeit in jeder Kultur sich Individuen von sehr ver-

schiedener Form und Beschaffenheit vorfinden.‘‘ Es folgen Einzel-

Publikationen und Referate. 201

heiten der Umwandlungsformen einer Kultur, ferner Bemerkungen

über Anlage und Pflege der Kulturen nach dem Rezept von

Novy. Später traten Agglomerationsrosetten und abgekugelte

Ruheformen auf. Besprechung der Haupttypen der Kultur-

formen. Sehr häufig sind blattförmige Individuen mit häufigen

Anzeichen einer beginnenden Teilung; ferner spindelförmige

Individuen auch ohne Ausbildung einer deutlichen undulierenden

Membran mit beiderseitig zugespitzten Körperenden; keulen-

förmige Individuen mit zahlreichen Granulationen und mit aus-

geprägter Metabolie; ‚crithidiaähnliche‘‘ Individuen mit Ansatz

einer deutlichen undulierenden Membran; typische Trypanosomen

mit undulierender Membran, besonders reichlich und breit in

Kulturen mit viel Kondenswasser; spirechätenähnliche Stadien,

fadendünn, mit langer Geißel, sehr biegsam; abgekugelte Stadien

als Dauerformen. Alle obigen Formen kommen in verschiedenen

Dimensionen vor. ‚Eine genauere Betrachtung zeigt, daß alle

die geschilderten Formen durch kontinuierliche Übergänge mit-

einander verbunden sind.‘ Individuen mit Anzeichen einer Zwei-

heit stellten sich immer als inadäquate Teilungsstadien heraus.

Speziell bei spirochätenförmigen Individuen konnte die Ab-

stammung von breiteren Individuen nach dem Leben festgestellt

werden. Verf. hält die spirochätenähnlichen Tiere für ‚„Jugend-

formen, eventuell Hungerstadien“. Eine Kopulation ist

nicht beobachtet worden, es gelang in keinem Falle, eine end-

gültige Verschmelzung und weitere Umwandlung eines Paares

nachzuweisen. Eine Analogie mit den Befruchtungsvorgängen

bei Trypanosoma lewisi, wiesievonProwazekundBaldrey

(1909) beschrieben worden sind, hier zu suchen, wie Doflein

„unwillkürlich versucht war‘, ist durchaus nicht angezeigt, da

sie bei T’ryp. lewisi im Zwischenwirt (Haematopinus) stattfinden,

der für T’ryp. rotatorium eventuell erst zu suchen wäre. Die Ver-

schmelzungsvorgänge sind hier rein vegetativer Natur und beruhen,

wie Doflein selbst richtig bemerkt, auf einer eigenartigen Kle-

brigkeit der Oberfläche. Massenverklebungen kommen nicht selten

vor auf Grund von Chemo- und Thigmotaxis. Ebenso variabel

wie die äußere Form und die Oberflächenschicht ist auch die Be-

schaffenheit des Protoplasmas und seiner Einschlüsse. Bezüglich

der in Längsreihen angeordneten Granulationen hat Verf. ‚den

Eindruck, als handle es sich um einen Stoff, welcher sich in den

Tieren während des Wachstums aufspeichert und während der

Verschmelzungsvorgänge wenigstens zum Teil verbraucht wird.‘

— Von den zwei Schlüssen, die Doflein als berechtigt hin-

stellt, kann man dem ersten zustimmen, wenn er sagt: „Wir

müssen sehr vorsichtig sein, wenn wir morphologische Merkmale,

Form, Lage der Zellbestandteile, Dimensionen usw. zur Charak-

terisierung der ‚Arten‘ von Trypanosomen verwenden wollen‘.

besonders im Hinblick auf die von Jahr zu Jahr sich mehrenden

Beschreibungen neuer Trypanosomenarten aus allen möglichen

202 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910

Tieren. (Bemerk. d. Ref.) Seinen zweiten Schluß dagegen:

„Solange nicht bessere Gründe gefunden sind, dürfen wir Form,

innere Struktur, Bewegungsapparat, Reichtum an Reservesub-

stanzen usw. nicht ohne weiteres zur Kennzeichnung der Trypano-

somenindividuen als „Männchen“, „Weibchen“ oder „indifferente

Formen‘‘ verwenden‘, müssen wir ablehnen, solange Doflein

nicht bessere Gründe findet, uns wahrscheinlich zu machen, daß

es sich bei allen seinen beschriebenen Formen nicht ohne weiteres

um rein vegetative handelt, während er wirkliche

Geschlechtsformen, die eventuell nur in einem Zwischen-

wirt existieren, bis jetzt noch nicht beschrieben oder gesehen hat.

Dogiel, V. (1). Beiträge zur Kenntnis der Gregarinen.

IV. Callynthrochlamys phronimae Frenz. u.a.m. Arch. f. Pro-

tistenk., Bd. 20, p. 60—78, Taf. VII u. 9 Textfigg. — Verf. be-

richtet zunächst über die eigentümlichen Kernverhältnisse von

Callynthrochlamys. In dem Kern liegen 10—20 kleine, runde

Caryosome, um den Kern herum liegt ein Geflecht dünnster

radiärer Röhrchen, deren jedes eine unmittelbare Ausstülpung

der Kernhülle darstellt. Das Lumen der Röhrchen stellt also eine

Fortsetzung der Kernhöhlung dar, am distalen Ende sind die

Röhrchen blind geschlossen. Der Durchmesser des Kernes mit

der Röhrenzone beträgt 40 «u. Verf. hält diesen eigenartigen

Kernbau für ‚eine Anpassung zur Förderung des Stoffwechsels

zwischen Kern und Protoplasma‘“. Weitere morphologische Einzel-

phyidae unter den Polycystiden. — Beschreibung der neuen

Arten: Chlamydocystis captiva aus den Amöbocyten von Thelephus

cincinnatus, Urospora travisiae mit heteropolarer Körpergestalt,

aus der Leibeshöhle von Travisia forbesi, U. ovalis aus den Sper-

matogonien von Tr. forbesi, Pterospora ramificata aus der Leibes-

höhle von Nicomache lumbricalis.

(2). Untersuchungen über einige neue Catenata. Zeitschr.

wiss. Zocl, 94, p. 400446, pls. XIII u. XIV. — Verf. setzt seine

Untersuchungen über Catenaten fort und beschreibt 4 neue Arten

des Genus Haplozoon aus Terebellides strömii Sars und Aricia

norvegica, ferner aus dem Darme zweier nicht näher bestimmten

Maldaniden aus dem Fjord von Trondheim. Neu sind die Arten:

Haplozoon delicatulum, ariciae, macrostylum und obscurum. Zum

Vergleich herangezogen und beschrieben werden ferner sSied-

leckia nematoides Caull. u. Mesnil aus Aricia norvegica u. S. sp.

aus Aricia foetida. Zwischen Haplozoon und Siedleckia konnte

hinsichtlich der Morphologie keinerlei Übereinstimmung fest-

gestellt werden. sSiedleckia wird als vielkernige Gregarine an-

gesehen. Verglichen wird gleichfalls noch @ymnodinium pulvisculus

Pouchet. Die Peridineen werden als die Zaplozoon am nächsten

stehenden Formen angesehen; den Übergang zu den Catenaten

bilden vielleicht G@ymnodinium pulvisculus und Apodinium myce-

toides Chatton. Verf. fügt selbst hinzu: ‚Solange der Entwicklungs-

Publikationen und Referate. 203

eyklus von Haplozoon nicht vollständig bekannt sein wird, so lange

dürfen wir auch die Abstammung dieser Gattung von den Peridi-

neen nicht mit voller Bestimmtheit aufrechterhalten.“ Die Ein-

reihung der Catenaten in die Mesozoen war mehr eine provisorische.

Die Auffassung Hartmanns und Neresheimers von den Mesozoen

soll nicht eindeutig formuliert sein; jedenfalls soll diese Formu-

lierung zur Folge haben, daß einige Formen zu den Mesozoen ge-

rechnet werden könnten, die unzweifelhaft zu den Protozoen ge-

hören (z. B. die Myxosporidien). Zum Schluß wird noch ein all-

gemeiner Überblick über die bisher bekannten Catenaten gegeben,

die sich aus 6 Arten rekrutieren. Beim Vergleich sind besonders

zu berücksichtigen: die Anordnung der Scheidewände zwischen

‘ den Zellen in bezug auf die Längsachse des Körpers und die An-

zahl der Stilette in der Kopfzelle.

Donath, J. Reflex und Psyche. Samml. klin. Vortr., N. F.

Nr. 592 (Inn. Med. Nr. 190), p. 519—538. — Verf. meint in dem

hierher gehörigen Zusammenhang, daß es ein müßiges Beginnen

wäre, Hypothesen über die erste Bildung des Nervensystems bei

Protisten aufzustellen. Jedenfalls sind auch die psychischen Er-

scheinungen nur Spezialisationen und Weiterentwicklungen des

Zellebens.

.. . Dönitz, W. u. Hartmann, M. Parasitische Protozoen und ihre

Überträger. I. Taf. 1-9. Mit Text. U. Taf. 1 u. 2. Leipzig

(W. Klinkhardt).

Drew, H. G. Some notes on parasitic and other diseases of

fish. (2nd series). Parasitol. Cambridge 3, p. 54—61, pl. IX. —

Verf. beschreibt als neu Glugea shiplei aus Gadus luscus, und

zwar befindet sich der Sitz in den Muskeln, ferner zwei Fälle von

Abdominal-Tumoren bei Pleuronectes platessa, einen Fall von

„vitreous‘‘-Degeneration in den Muskeln von Gadus aeglefinus,

verursacht durch eine @lugea, und endlich noch einen Fall von

Epithelioma papulosum bei Pleuronectes platessa ohne Protozoen-

befund. .

Dreyer, W. Über durch Protozoen im Blut hervorgerufene

Erkrankungen bei Menschen und Tieren in Aegypten. Arch. f.

Schiffshygien., 14, p. 37—45. — Verf. berichtet über einige Er-

krankungen und deren Erreger in Aegypten. Behandelt werden

Malaria, Recurrens, Hühnerspirillose, Trypanosomiosen, Texas-

fieber, ‚„egyptian fever‘‘, Piroplasmose bei Pferden.

Dsehunkowski, E. u. Luhs, J. (1). Entwicklungsformen von

Piroplasmen in Zecken. Ber. IX. Internat. tierärztl. Kongr. Haag,

1909, (reprint 1—5, 14 u. 15, 20), 1 pl.

— (2). Die Protozoenkrankheiten des Blutes der Haustiere

in Transkaukasien. Ber. IX. Internat. tierärztl. Kongr. Haag,

1909, (reprint 20), 2 pls.

— (8). Leishmania beim Hunde in Transkaukasien. Ber.

IX. Internat. tierärztl. Kongr. Haag, 1909, (reprint 6—8, 16

uu47,021);1 pl.

204 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifers für 1910.

Duboseg, 0. u. Collin, B. Sur la reproduction sexuee d’un

p- 340—341. — Die Verf. beschreiben sexuelle Vorgänge bei einem

Parasiten, den sie in Cyttarocyclis Ehrenbergii Cl. et L. gefunden

haben. Aus den Gametocyten gehen 4 gleiche Gameten hervor,

die kopulieren. Vielleicht handelt es sich um Entwicklungs-

stadien von einem Gymnodinium oder von Oxyrrhis marina.

Analogie mit Befunden bei Gymnodinium Jucorum Küster nach

Jollos. Siehe daselbst.

Duboseg, O0. vide Leger, L.

Dudley, F. W. and Whitmore, E. R. Hydrophobia in the

Philippines. Philippine Journ. Sci. B. (Med. Sci.), 5, p. 455—461,

1 pl. — Die Verf. haben bei der Wut auf den Philippinen die

Negrischen Körperchen konstatiert und mit Erfolg Infektions-

versuche angestellt. £

*Dudukaloff, A. u. Dudukaloff, N. (Über künstliche Kulti-

vierung von Trypanosomen aus Rindern. 2. Mitteil.). Arch. veterin.

nauk. St. Petersburg, 40, p. 14, 1 pl. — Russisch.

Duke, H. L. Some observations on a new Gregarine (Met«-

mera schubergi n. g. n. sp.). Quart. Journ. Micr. Sci. London, 55,

p. 261— 286, pl. XV u. XVI. — Verf. beschreibt aus Glossosiphonia

eomplanata Linn. die neue Gattung Metamera schubergi, zu den

Dactylophoridae gehörig. Trophozoit ca. 150 «x zu 40 u. Kopu-

lation isogam. Die Cysten platzen durch eine einfache Naht,

Sporen kahnförmig mit 8 Sporozoiten 9 « zu 7 u. Auch in wenigen

Exemplaren von Hemiclepsis marginata (zu Heidelberg) auf-

gefunden. Die bereits wieder geteilten Centriolen bei der Telophase

sind deutlich sichtbar.

Dunbar, A. W. Antimalarial Prophylactice Measures and

their Results at the Naval Station, Olongapo, P. J. Philippine

Journ. Sci. Manila B. (Med. Sci.), 5, p. 285—289.

Dunkerly, 8. J. (1). Notes on the Choanoflagellate genera

Salpingoeca and Polyoeca, with description of Polyoeca dumosa.n. Sp.

Ann. Mag. Nat. Hist. London (Ser. 8), 5, p. 186—191, pl. VI u. VII.

— Verf. beschreibt kurz e unvollständigen Abbildungen

Teilungen von Salpingoeca vaginicola und Polyoeca dumosa n. Sp.

Die Stiele sind nicht verzweigt, vielmehr setzen sich die jungen

Individuen am Kelchrande des Muttertieres fest.

— (2). Note on our present knowledge of the Choanofla-

gellata. London, Journ. Quek. Microsc. Cl. (Ser. 2), 11, p. 19

—24, 38 u. 39, pl. I. — Sammelreferat.

Eeeles, R. 6. Natural seleetion and our viscera. Med. Rec.

New York, 77, p. 993—1001.

Edmondson, €. H. A report on the freshwater Protozoa of

Tahiti. Science, New York, N.Y. N. Ser. 32, p. 349-351. —

Verf. hat 44 Protozoen-Arten auf Tahiti beobachtet, von den

sicher bestimmten gehören 9 zu den Sarcodinen, 6 zu den Mastigo-

phoren, 21 zu den Infusorien. Die Arten werden kurz besprochen,

Publikationen und Referate. 205

neu ist keine. Es wird auf die kosmopolitische Verbreitung hin-

gewiesen. j

Ehrlich, P. Über die neuesten Ergebnisse auf dem Gebiete

der Trypanosomenforschung. (Vortrag). Arch. f. Schiffshygien.,

13, 1909, Beiheft 6, p. 91—116. — Verf. berichtet in einem Vor-

trage über angestellte Versuche zur therapeutischen Biologie der

Trypanosomen. Es werden behandelt arzneifeste und serumfeste

Stämme, eingehend die Arsenoceptoren. Die theoretischen Vor-

stellungen der hier stattfindenden Prozesse werden äußerst klar

und durchdacht vorgetragen. Besonders empfohlen wird für die

Therapie das Arsenopbenylglycin bei Trypanosomiosen.

Elmhirst, R. and Martin, €. H. On a Trypanoplasma from

the stomach of the conger eel (Conger niger). Zool. Anz. Leipzig, 35,

p. 475—477. — Die Verf. beschreiben eine neue Art Trypano-

plasma congeri aus Conger niger und bilden einige ungenügende

Teilungsstadien ab. Vorläufige Mitteilung.

Emmerling, 0. Hydrolyse der Meerleuchtinfusorien der Nord-

see (Noctiluca miliaris). Biochem. Zeitschr. Berlin, 18, 1909,

p- 372—374. — Verf. hat bei der Hydrolyse einer größeren Menge

von Noctiluca miliaris von Aminosäuren 9 prozentualiter bestimmt.

Es wurden in den Spaltungsprodukten ca. 71%, an N wieder-

gefunden. |

Entz, 6. jun. Egy edesvizi Gymnodiniumröl. (Über ein

Süßwasser-Gymnodinium). Allatt. Rözlem. Budapest, 9, p. 157

—163, 207—208, pl. III. — Gymnodinium zachariasi.

Erdmann, Rh. (1). Kern und metachromatische Körper bei

Sarcosporidien. Archiv f. Protistenk. 20, p. 2339—250, Taf. XV,

und 6 Textfigg. — Verfasserin gibt zunächst einen Überblick über

unsere Kenntnis von den einzelnen Bestandteilen der sichel-

förmigen Körperchen, die sich in älteren Sarkosporidien-

eysten befinden, speziell über die Frage nach der Kernnatur

der fraglichen Gebilde. ‚Das große in einer Kapsel liegende Gebilde,

das mitunter nur aus Körnchen besteht, die dicht aneinander

gedrängt sind, mitunter aber eine fädige Struktur zeigt, und das

niemals am körnchenfreien Ende liegt hält Verf. für den Faden-

apparat (gegen Watson, der es als Kern ansprach). Der

wirkliche Kern ist von kleinem kompakten Bau. ‚Runde Körper,

welche sowohl bei den Rundzellen wie bei den Sichelzellen, in

ganz besonders großer Masse bei den Endstadien der Entwicklung

der Rundzellen sowohl wie derjenigen der Sichel auftreten,

stammen vom Kern ab“, und sind als metachromatische

Körper nach den angestellten Reaktionsversuchen nach

Guilliermond aufzufassen. Die ‚runden Körper‘ sind

stark chromatisch und nicht glykogen- oder paramylonhaltig.

Es folgen Einzelheiten über die Eigenschaften der metachroma-

tischen Körper, unter denen besonders noch ihre vom Kern ver-

schiedene Färbbarkeit mit polychromem Methylenblau nach

Bouin’scher Fixierung hervorzuheben ist. Der wirkliche Kern

206 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

der Sarcosporidien färbt sich dabei stets mehr blau als rot. Verf.

gibt gegenüber den Abbildungen von Negri, Watson und

Darling bessere und distinktere. Ein Fadenapparat, den

Watson für den Kern fälschlicherweise gehalten hat, ist auch

in vivo zur Beobachtung gelangt, indem Verf. einen von den

Polfäden aus dem stumpfen Ende der Sarkosporidien austreten

sah. — Bezüglich der Beurteilung der Natur der meta-

chromatischen Körper schließt sich Verf. der Ansicht

an, daß sie vom Kern abstammen, wenngleich es unentschieden

gelassen wird, ob alle Körner, die sich im Protoplasma der Sarko-

sporidiensichel befinden, metachromatische Körper sind. Volutin-

proben fielen zweifelhaft aus. Bei der Frage nach der Bedeu-

tung der metachromatischen Körper muß vor-

läufig noch unentschieden bleiben, ob sie Reservestoffe

nach Guilliermond oder Träger giftiger En-

zyme sind. Die Untersuchungen der Verf., daß die gesamten

Zellen des Darmkanals nach einer frischen Fütterung abgestoßen

werden, so daß die Sarkosporidie ihren Weg durch die Wände des

Darmkanals finden kann, wobei das sonst mit den runden Körnern

stark beladene Plasma fast vollkommen hell geworden ist und

‚eventuell das als Sarcocystin bekannte Enzym frei wird, sprechen

mehr für letztere Ansicht.

— (2). Die Entwicklung der Sarcocystis muris in der Mus-

kulatur. Sitzungsber. Ges. naturf. Freunde, Nr. 8, p. 377—387,

Taf. XVIII—XIX, 5 Textfigg. — Die Verf. berichtet zunächst

historisch über die bisherigen Daten der Sarkosporidienforschung.

Bisher sind nur die Stadien inder Muskulatur von allen

Autoren beschrieben worden. Zunächst werden einige Angaben

über den Entwicklungsabschnitt vor dem Eindringen der Para-

siten in die Muskulatur gemacht, die immer noch keine vollständige

Klarheit bringen. Aus fraglichen Ruheformen entwickelt sich

dann nach der 4. bis 6. Woche die junge Sarkosporidie und be-

fällt den Muskel. Des weiteren werden nun die hierher gehörigen

Stadien einzeln beschrieben. Der Entwicklungsgang der Sarko-

sporidie in der Muskulatur soll in 4 Perioden zerfallen: in die

Periode der zusammenhängenden Zellen, der stark chromatin-

reichen Zellen, der sich lebhaft teilenden Zellen (Sporoblasten)

und der weiter sich zur Sichel differenzierenden Zellen (Sporen).

Durch Auswandern der Zellen in der dritten Periode, als Sporo-

blasten, wird die Infektion verbreitet und die große Zahl der

im 4. Monat auftretenden Schläuche erklärt. Die weiteren Be-

funde über Entwicklung, Infektionsweg usw. sollen im Arch. f.

Protistenk. veröffentlicht werden.

— (8). Beiträge zur Morphologie und Entwicklungsgeschichte

des Hammelsarkosporids in der Maus. Centralbl. f. Bakt. Parasit.,

Abt. 1, 53, Orig., p. 510—516, 4 pls. — Der Verf. ist es gelungen,

das Hammelsarkosporid auf Mäuse zu übertragen. Es folgt eine

morphologische Beschreibung des Hammelsarkosporids in der Mus-

Publikationen und Referate. 207

kulatur der Maus, ferner eine histologische Beschreibung der

Formen in der Cyste des Hammelsarkosporids. Die Deutung der

Befunde soll in einer späteren Arbeit erfolgen. Die gleichen

Formen wurden auch in den Cysten des Hammelsarkosporids in

der Maus gefunden. Hinsichtlich des Entwicklungskreises der

Sarkosporidien im Darmtraktus lassen sich mit genügender Sicher-

heit die Anfangsstadien der Infektion noch nicht feststellen.

„Im Magen und in den darauf folgenden Teilen des Verdauungs-

kanals bis zum Blinddarm wurden am 10. Tage nach der Fütterung

in den Darmzotten und in den Lumen runde Körper mit Proto-

plasmasaum und kleine amöboide Formen gefunden.“ Vielleicht

sind dies Anfangsstadien der Sarkosporidien. In der 5. Woche

nach der Fütterung wurden in Lymphspalten der Muskulatur

kleine runde Cysten gefunden. Zwischen Sarkolemmschlauch und

der Muskulatur wurde ein einzelliges Stadium gesehen mit 2 Kernen.

Hieran würde sich das von Bertram erwähnte zweizellige

Stadium schließen. Weitere Veröffentlichungen der Verf. werden

hierüber Klarheit bringen.

— (4). Depression und fakultative Apogamie bei Amoeba

diploidea. Festschr. zum 60. Geb. R. Hertwigs, Bd. 1, p. 325

-—348, pls. 25 u. 26. — Die Verf. hat Experimente mit der A.

diploidea angestellt, um die eventuelle Verschiebung der Kern-

plasmarelation festzustellen, ferner eine Abänderung der Sexualität.

Es werden zunächst die morphologischen und biologischen Ver-

änderungen der in 25° und 37° C. aufgezogenen Kulturen be-

schrieben. Bei 25° trat bereits stärkeres Wachstum, Neigung

zur Vielkernigkeitsbildung und reichliche Vakuolisierung auf.

Die Verf. erweitert die Befunde Nägler’s hinsichtlich des Vor-

kommens und der Teilung eines Centriols bei dieser Art. Die

gleichen Phasen, die bei der normalen Kernteilung nach Nägler

auftreten, finden sich auch bei der in 25° aufgezegenen Kultur.

Die im Ruhestadium befindlichen Kerne weisen Degenerations-

formen auf. Kopulationscysten traten sehr selten auf. Nach dem

5. Male gelang es der Verf. nicht, die Kulturen mit Erfolg nach

einer jedesmaligen Überimpfung nach 4 Tagen weiter zu führen.

Bei 37° ist die Lebensdauer einer Kulturfolge noch geringer.

Häufig soll Einkernigkeit auftreten. Es werden weiter die Ver-

änderungen einer asexuell aufgezogenen Kultur beschrieben. Diese

Versuche sind mit Vorsicht aufzunehmen, da nach Beobachtungen

des Ref. Kopulation bereits nach 12 Tagen eintreten kann,

während die Verf. erst nach längerer Zeit ihre Überimpfungen

vornahm. Im Lauf der Kulturen sollen dann die Amöben die

Fähigkeit verloren haben zu kopulieren. Die Kernteilung verläuft

nach einem abgekürzten Modus. Es werden ‚„Ruheformen‘“ ge-

bildet, die meistens Chromatinarmut zeigten im Verhältnis zur

Zellgröße. — Im theoretischen Teil geht die Verf. ein auf den

Verlauf der Kernteilungen bei den unter veränderten Bedingungen

aufgezogenen Tieren, auf die Vielkernigkeit, die Vereinigung der

208 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Gametenkerne bei veränderten Avufzuchtsbedingungen, ferner auf

den Verlust der Sexualität. Am wichtigsten wäre wohl das Auf-

treten einer vererbbaren fakultativen Apogamie anzusehen. Da

der Ref. selbst teilweise zu anderen Resultaten gelangt ist, die

später publiziert werden sollen, so wäre die Arbeit immerhin mit

Vorsicht aufzunehmen.

Estabrook, A. H. (1). Effect of chemicals on growth in

Paramaecium. Journ. Exper. Zool. Philadelphia, Pa. 8, p. 489

— 534. — Verf. konstatiert, daß die Wirkungen von Chemikalien

auf das Wachstum von Paramaecium sekundärer Natur sind; sie

sind die Folge vom Zusammenwirken chemischer und der andern

vitalen Prozesse des Tieres.

— (2). Effect of External Agents upon Growth in Para-

maecium. (Amer. Soc. Zool.) Science, N. 8. 31, p. 467. — Siehe 1.

Evans, H. G. (and with Rennie, T.). Elephant Surra. Trypa-

nosomiasis in the Elephant. Journ. trop. vet. sci. Calcutta, 5,

p. 233—239, 535—568, pl. XXI. — Verf. beschreibt in vorläufiger

Mitteilung eine Trypanosomiasis beim Elefanten. Die Trypano-

somen sind von Tr. evansi nicht zu unterscheiden. Aetiologie und

Therapie werden kurz behandelt. Im zweiten Abschnitt wird

ausführlich über Infektionsversuche mit weißen Ratten und Ka-

ninchen, Meerschweinchen, Hunden und Ziegen, ferner über direkte

Infektion berichtet.

Fantham, H. B. (1). Experimental studies on Avian cocci-

diosis, especially in relation to young grouse, fowls and pigeons.

London, Proc. Zool. Soc., II, p. 708—722, pl. LXII; (short account.

Nature London, 84, p. 548—549. — Verf. teilt einiges über die

Vogel-Coceidiose mit hinsichtlich der Symptome, der Resistenz,

der Lebensdauer der Coccidien-Oocysten und des Effektes ver-

schiedener Reagentien auf letztere. Auch über die Entwicklung

von Eimeria avium findet sich einiges.

— (2). The morphology and life-history of Eimeria (Cocei-

dium) avium: a Sporozoon causing a fatal disease among young

grouse. London, Proc. Zool. Soc., II, p. 672—691, pls. LU—LVIL.

— Verf. teilt den Entwicklungskreis von Eimeria avium voll-

ständig mit und bespricht die einzelnen Stadien ausführlich,

ferner die Differenzen mit Bimeria schubergi Schaudinn, das größer

ist. Die Merozoiten von EZ. a. sind angeordnet ‚en barillet‘‘, die

von E. sch. „en rosace“. Eneystierung tritt bei EZ. a. bereits vor

der Befruchtung ein, die durch eine Micropyle vor sich geht. Der

Macrogamet enthält bei Z. a. viel Reservematerial. Die Cysten

sind oval, die von E. sch. rund. Zur Sprache kommen noch die

Wirkungen des Parasiten auf den Wirt und seine Verteilung.

— (3). Observations on the parasitie Protozoa of the red

grouse (Lagopus scoticus), with a note on the grouse-fly. London,

Proe. Zool. Soc., II, p. 692—708, pls. LIX—LXI. — Verf. be-

schreibt von Blutparasiten aus Lagopus scoticus zunächst Leuco-

cytozoon lovati Seligmann u. Sambon, Haemoproteus Mansoni

Publikationen und Referate. 209

Sambon, Spirochaeta lagopodis n. sp., ferner aus dem Verdauungs-

traktus Trichomonas eberthi, Spirochaeta lovati n. sp., Entamoeba

lagopodis n. sp. (einzelne Teilungsstadien, harmlos, vergleichbar

mit Ent. coli), Monocystis sp. Als Überträger einzelner Formen

fungiert eventuell Ornitkhomyia.

— (4). On the occurence of Schizogeny in an Avian Leuco-

cytozoon (L. lovati), parasitic in the red grouse, Lagopus scoticus.

Ann. trop. Med. Liverpool, 4, p. 255—260, pl. XXI. — Vgl. 3.

— (5). Onanew Trypanoplasm, Tr. dendrocoeli, n. sp. from

Dendrocoelum lacteum. Proc. zool. Soc. London, p. 670—671. —

Verf. beschreibt zum ersten Male aus einer Planarie die neue Art

Trypanoplasma dendrocoeli. Erbliche Übertragung scheint möglich,

da die Parasiten sich in den Eiern vermehren durch Längsteilung.

Weitere Übertragungsversuche bleiben abzuwarten. Die Größe

der Parasiten beträgt 20—40 u, der Blepharoplast ist gut zu er-

kennen.

— (6). Observations on the Blood of Grouse. Proc. Zool.

Soc. London, p. 722—731, pl. LXIII. — Verf. hat Untersuchungen

über normale und pathologische Blutzellen von Vögeln, besonders

vom Waldhuhn, angestellt. Von pathogenen Formen kommen in

Betracht Spirochaeta lagopodis Fantham, Leucocytozoon lovati und

Eimeria (Coceidium) avium.

Fantham, H.P. vide Nuttal, G. H.

Fantham, H. P. vide Porter, A.

Fantham, H. P. vide Stephens, J. W.

Faure6-Fremiet, E. (1). Le tentacule de la Noctiluca miliaris.

Paris, Bull. soc. zool., 35, p. 8. — Les granulations a cöte du

cordon strie du tentacule sont des mitochondries, disposees en

chainette.

*— (2). Le plankton de la Baie de la Hougue. Paris,

Bull. soc. zool., 35, p. 225—226.

(3). Sur deux Infusoires planktoniques. Paris, Bull.

soc. z00l., 35, p. 226—227.

— (2). Eitudes de cytologie comparee. La fixation chez les

Infusoires cilies. Bull. sci. France-Belgique, Paris, 44, p. 27—50.

— Verf. konstatiert, daß die Haftapparate der Infusorien aus

umgebildeten Cilien bestehen.

— (5). La division de l’Urostyla grandis. Experiences de

merotomie. Bull. sci. France-Belgique Paris, 44, p. 215—219. —

Verf. hat bei Urostyla grandis während der Teilung einige Zer-

schneidungsexperimente angestellt und berichtet über die Regene-

rationsvorgänge der Individuen, die je nach den Schnittebenen

früher oder später und auch verschieden eintraten.

— (6). Etude sur les mitochondries des Protozoaires et des

cellules sexuelles. Arch. anat. microsc. Paris, 11, p. 457—648,

pls. XIX—XXII u. 57 Textfigg. — Verf. hat sich eingehend in

dieser monographischen Studie mit den Mitochondrien

befaßt. Er bespricht zunächst die morphologischen Charaktere der

Archiv für Na urge-chichte

1911. VI. 2. 14

210 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Mitochondrien bei den Protozoen, ihre chemische Natur, Um-

bildungsprodukte, Altern und Rolle der Mitochondrien im Plasma.

Er unterscheidet einen homogenen und inhomogenen Typus.

Weiter werden die Mitochondrien in den Sexualzellen verschiedener

Metazoen eingehend behandelt. — Die Mitochondrien sind bei den

Protozoen konstante morphologische Elemente, die zum Aufbau

der Zelle gehören. Ihre Entwicklung steht in einem Parallelismus

mit dem Kernapparat (Teilung!), aber hat keine direkte Beziehung

zu ihm. Vom physiologischen Standpunkte aus sınd die Mito-

chondrien wahrscheinlich als aktive Elemente anzusehen. Sie

können sich umbilden in deutoplasmatische Körner und eventuell

Eisensalze fixieren. Weitere Beobachtungen müssen hier vervoll-

ständigend eingreifen; auch sind sie nicht zu verwechseln mit

Plasmagranulationen, die vorübergehend z. B. bei Cochliopodium

und Vorticellen auftreten. Deren Natur bleibt auch noch unklar,

vielleicht sind sie sekretorischer Natur.

— (7). La continuite des mitochondries a travers des gene-

rations cellulaires et le röle de ces elements. Anat. Anz. Jena, 36,

p. 186—191. — Verf. konstatiert zwei Arten der Umbildung der

Mitochondrien, reversible, die ihre Teilung nach sich ziehen, und

irreversible, die eine Umbildung zu deutoplasmatischen Elementen

zur Folge haben. Uber Kontinuität und Rolle der Mitochondrien

siehe auch 6.

— (8). Mitochondries et liposomes. Paris, C. R. Soc. Biol.,

68, p. 537—539. — Verf. hat bei Opercularia notonectae 2 Sorten

von Körnern gefunden, von denen sich die einen nach Gram

färben, also keine Mitochondrien sind; sie haben kein konstantes

Auftreten und teilen sich nicht.

— (9). Variations d’une espece du genre Haplophragmium.

Variationen einer Haplophragmium-Art mit.

— (10). Le Myecterothrix tuamotuensis (Trichorhynchus tua-

motuensis) Balbiani. Arch. f. Protistenk., 20, p. 221—238, pl. XIV

und 8 Textfigg. — Verf. gibt nach historischer Einleitung eine

Beschreibung von Mycterothrix tuamotuensis in allen cytologischen

Einzelheiten. Betreffs der Biologie sind Teilungs- und Dauer-

cysten hervorzuheben und hieran sich anschließende Fragen.

— (11). Appareil nucleaire, chromidies, mitochondries. Arch.

f. Protistenk., 21, p. 186—208, 23 Textfigg. — Verf. verbreitet sich

eingehend über die Chromidialtheorie, hinsichtlich der Genese

der sog. Chromidien, Mitochondrien usw. Er betont, daß es oft

sich dabei um grundverschiedene Sachen handelt und daß ver-

schiedene derartige Bildungen im wesentlichen cytoplasmatischen

Ursprungs sind, daß sie also nicht vom Kern stammen, auch wenn

ihre Entwicklung parallel der des Kernes läuft. Es wird nun be-

sprochen der Kerndualismus bei den Infusorien, die Typen der

Kernstrukturen. Es werden dabei unterschieden der homogene

und heterogene Granula-Typus, ferner Kerne ‚a spireme‘“; die

Publikationen und Referate. al

Kernteilungen gemäß diesen Typen werden abgebildet und, einzeln

besprochen. Auch über den Einfluß des Centrosoms handelt ein

kurzes Kapitel. Die Schlußfolgerungen beziehen sich mehr auf

die Infusorien und sind in dem oben angedeuteten Sinne gehalten.

Vergleiche hierzu auch die anderen Arbeiten des Verfassers.

— (12). Vacuoles colorables par le rouge neutre chez un

Infusoire cilie. C. R. ass. anat. Paris, 11, 1909, p. 286—288.

*Feletti, R. Sul Kala-Azar osservato a Catania. Catania,

Atti Ace. Gioenia, Ser. 5, 3, Mem. 16, p. 1—7, 1 tav.

Ferguson, A. R. and Richards, 0. Parasitie granuloma: a con-

dition allied to Oriental Sore occuring in Egypt. Ann. trop. Med.

Liverpool, 4, p. 151—166, pls. XII—XV. — Verf. teilen einiges

über ein parasitäres Granuloma mit, das in Ägypten mit der

Orient-Beule zusammen vorkommt. Leishmania tropica ist häufig

zu finden. Meist ist ‚„Auto-inoculation‘‘ vorhanden. Patholo-

gisches u. Klinisches. Zur Behandlung empfohlen wird ‚„excision

and immediate skin- grafting‘“.

Fiebiger, J. Über Sarcosporidien. Wien, Verh. Zool.-Bot.

Ges., 60, p. 73—88. — Verfasser hat gemeinsam mit Moroff, Th.

die Miescher’schen Schläuche beim Büffel untersucht. Es werden

einige Entwicklungsstadien in dieser vorläufigen Mitteilung be-

schrieben, Sporobasten, Entstehen und Zugrundegehen der Sichel-

körperchen usw. Die Resultate werden folgendermaßen zusammen-

gefaßt: ‚Die Stäbchenhülle ist nicht als ektoplasmatische Hülle

des Schlauches, sondern als verändertes Muskelgewebe aufzu-

fassen. Die Sichelkörperchen entstehen durch eigentümliche

Umformungs- und Auswachsungsprozesse aus den Sporoblasten.

Es findet auch nachträglich eine Vermehrung der Sichelkörperchen.

durch Längsteilung statt. Das Zugrundegehen der Sichelkörper

geht nicht bloß im Zentrum des Schlauches, sondern auch in den

peripheren Kammern vor sich. Durch die Schläuche werden die

Muskelkerne zur Vermehrung, Umänderung und Zuwanderung

angeregt.“

Filipjev, J. Zur Organisation von Tocophrya quadripartita

Cl.—L. Arch. f. Protistenk., 21, p. 117—142, pl. VIII u. 1 Text-

fig. — Das Material zur vorliegenden Untersuchung stammt von

einem auf Schnecken (Limnaeus, Paludina, Planorbis) haftenden

Belage des botanischen Gartens in Petersburg. Der Belag besteht

aus Kolonien von Epistylis plicatilis, an deren Stielen Individuen

von Tocophrya befestigt sind. Verf. schildert zunächst den mor-

phologischen Bau. Die Tentakel bestehen aus einer Pellicula,

die eine Fortsetzung der Körperpellicula darstellt und apikalwärts

einen besonderen elastischen Ring bildet, aus dem Protoplasma,

das eine plasmatische Kugel an einem Ende und eine kurze Fort-

‚setzung nach innen bildet, und aus dem Zentralkanal. Der Macro-

nucleus besteht aus Chromatinkörnern mit einer homogenen

Zwischensubstanz ; beim Hungern nehmen diese Körner an Umfang

zu. ‚Helle Flächen“ sind wahrscheinlich Alveolen. Der Macro-

14*

212 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

nucleus teilt sich durch ‚‚fibrilläre Amitose“. Der Miceronucleus

enthält ein deutliches Caryosom. ‚Das Protoplasma eines aus-

gesaugten Infusors bildet Klumpen, die sich teilen und in die

„ungefärbten Körner“ Bütschli’s verwandeln, welche die

Rolle von KReservenahrungsstoffen spielen und während des

Hungerns aufgebraucht werden.“ Die Wimpern treten schon

während der Teilung auf. Es folgen Einzelheiten über die Orien-

tierung des Embryos. Er ist bilateral symmetrisch, seitlich kom-

primiert, besitzt 5 Wimperreihen. Vorn liegt der Saugnapf, hinten

liegen 5—6 einzelne Wimpern. ‚Bei der Festsetzung stülpt sich

der Saugnapf nach innen ein, so daß der von ihm ausgeschiedene

Stiel zuerst im Innern des Körpers der jungen Infusorie ange-

bracht ist, die Wimpern werden zum Teil zerstört, zum Teil ein-

gezogen, die Tentakel treten seitlich auf und werden sodann durch

sekundäre Einstülpung nach vorn verlagert.“ Der Macronuncleus

des Embryos ist rund, mit sehr großen Körnern. Die Achse der

erwachsenen Tocophrya erscheint im Embryo unter einem rechten

Winkel gebogen. Die sogenannten ‚‚mitotischen Spindeln‘ des

Macronucleus sollen nichts mit der Teilung zu tun haben, sondern

repräsentieren Phasen aus der Verwandlung des runden Kernes

in den normalen. — Die Symbiose zwischen Zpistylis und Toco-

phrya scheint für letztere von großem Vorteil zu sein, indem durch

den Wasserstrom, den E. erzeugt, Infusorien zur Nahrung herbei-

getrieben werden, ferner auch für die Atmung. — Es gelangten

gelbbraune Cysten zur Beobachtung, ferner von Parasiten Tachy-

blaston Martin und Acinetopsis Robin.

Fischer, B. Kurzgefaßte Anleitung zu den wichtigeren hygie-

nischen Untersuchungen, zugleich Übergangsprogramm mit Vor-

schriften für die hygienischen Kurse in Kiel. Für Studierende

und Ärzte.... T. I. Mikroskopische und bakteriologische, auch

mykologische, protozoologische und serodiagnostische Unter-

suchungen. Mit 3 Übersichten als Einleitung. Berlin (A. Hirsch-

wald), p. VI. + 178.

Fischer, — vide Zwick, —.

Flemming, —. Über Chlamydozoen vom Standpunkte des

Mediziners. Centralbl. Bakt. Jena, Abt. 1, 47, Referate, Beih.,

p. 98—107. — Verf. berichtet im Anschluß an einen Vortrag von

Hartmann (siehe daselbst) auf der 4. Tagung der freien Vereinigung

f. Mikrobiol. in Berlin besonders über Chlamydozoen beim Trachom.

Foran, P. F. The etiology of blackwater fever. Journ. trop.

med. London, 13, p. 193—195. — Verf. bespricht 3 Theorien des

Schwarzwasserfiebers, die des Chinins, der Malaria und eines

Specificums. Letztere hat die größte Wahrscheinlichkeit für sich.

Der Erreger soll ein Piroplasma sein. Klinische Symptome und

einige der a Formen gelangen kurz zur Behandlung.

Franga, C. (1). Sur les Hematozoaires des Sauriens. II. Pa-

rasites ec du Psammodromus algirus du Portugal.

Arch. R. Inst. Bact. Lisboa, 3, p. 1—9, pl. I. — Verf. gibt zu-

Publikationen und Referate. 213

nächst eine Synopsis der in Psammodromus algirus vorkommenden

Haemogregarinenarten: Aaemogregaria psammodromi Soulie, H.

pallida Franga und A. lusitanica n. sp.; letztere wird ausführlicher

beschrieben.

— (2). Sur la classification des Piroplasmes et description

de deux formes de ces parasites. Arch. R. Inst. Bact. Lisboa, 3,

p. 11—18 pl. II. — Verf. verbreitet sich teils historisch, teils

systematisch über die Fam. der Piroplasmidae und weist auf die

5 bekannten Genera hin: Piroplasma, Theileria, Nicollia, N uttallia

n. g., Smithia n. g. Beschrieben werden Nuttallia herpestidis und

Smithia microti.

— (3). Sur les Hematozoaires des Sauriens. III. Hemo-

gregarines de Lacerta muralis. Arch. R. Inst. Bact. Lisboa, 3,

p. 21—40, pl. III. — Verf. konstatiert bei Lacerta muralis teils

einfache, teils Mischinfektionen mit Haemogregarina nobrei, bi-

capsulata, marceaui u. nana. Im der Synopsis werden die Arten

ihren Charakteren nach unterschieden. Die neuen Arten 4.

nobrei, marceaui u. nana werden beschrieben.

— (4). Sur un Trypanosome du lerot. Arch. R. Inst. Bakt.

Lisboa, 3, p. 41—43. — Verf. beschreibt als neu T'rypanosoma

elyomis aus Eliomys quercinus. Es unterscheidet sich von Tr.

lewisi durch die Größe, durch die längere Geißel und durch die

größere Distanz des Kernes vom Blepharoplasten.

— (5). Hemogregarines de deux couleuvres du Portugal.

Arch. R. Inst. Bakt. Lisboa, 3, p. 137”—141. — Verf. beschreibt

als neu aus Tunis Zaemogregarina zamenis Lav. emend. Manceaux

—= H. manceauxi aus Zamenis hippocrepis, da sie von H. zamenis

Laveran verschieden sein soll. Ferner wird kurz berichtet über

H. coronellae n. sp. aus Coronella girundica.

— (6). Sur la classification des Piroplasmes. Lisbonne,

Bull. Soc. Portugaise sci. nat., 3, p. 11—13. Vgl. 2, pro parte.

Franga, €. u. Pinto, M. Sur le leucocytozoaire du ‚Mus.

decumanus‘“‘. Arch. R. Inst. Bact. Camara Pestana, Lisboa, III,

p. 207”—217, pls. IV u. V. — Die Verf. geben nach historischer

Zusammenfassung eine Diagnose des Genus Leucocytogregarina:

wurmförmige Blutparasiten, im Innern der Leucocyten, ohne

Pigment. Schizogonie in Cysten in den inneren Organen, auch in

Organzellen. Alle bisher beschriebenen Formen finden sich in

den Mammalia. Dann folgt eine Beschreibung der Leucocyto-

gregarina muris Balfour und ihrer Schizogonie in Lunge und

Leber. Als Zwischenwirte kommen Haematopinus spinulosus und

Laelaps echidninus in Betracht.

Frane®,R.H. Die Kleinwelt des Süßwassers. Leipzig (Th.Tho-

mas), 160 pp., 50 pls., figg. — Populär.

Fritzsche, R. Zur Physiologie von Loxophyllum meleagris.

Arch. Hydrobiol. Stuttgart, 6, p. 99—105, pl. IV. — Siehe Be-

richt pro 1909. Hier nur etwas ausführlicher dargestellt. Die

Zeichnungen sind dieselben wie in der früheren Arbeit.

214 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Frei, W. Physikalisch-chemische Untersuchungen über Piro-

plasmose der Pferde. Zeitschr. Infektionskrankh. parasit. Krankh.

Hyg. Haustiere, 7, p. 105—130. — Verf. faßt seine Resultate

folgendermaßen zusammen: ‚Die Piroplasmosis der Pferde ist

eine Krankheit, die nicht nur im Fieber, Auftreten der Parasiten

und in der Blutkörperchenzahl, sondern auch mit Bezug auf die

physikalisch-chemischen Blut- und Serumeigenschaften in Pe-

rioden abläuft. Die durch die intraglobulären Parasiten erzeugte

Hämolyse ist hauptsächlich verantwortlich für die physikalisch-

chemischen Veränderungen des Blutes und in gewissem Grade

auch für diejenigen des Serums. Blutkörperchenvolumen, Vis-

kosität u. spez. Gewicht des Blutes nehmen ab. Viskosität, Leit-

fähigkeit, osmotischer Druck und Oberflächenspannung des

Serums nehmen ab. Der osmotische Druck kann in einzelnen

Fällen eine über 100%, betragende, dem Absinken vorhergehende

Zunahme aufweisen. Die mit den in vorliegender Arbeit ange-

wandten Methoden beobachteten physikalisch-chemischen Verän-

derungen in den kranken Tieren beginnen in vielen Fällen vor

der Temperaturerhöhung. Die Inkubationszeit für Piroplasmosis

ist in diesen Fällen also viel kürzer, als bis jetzt angenommen

wurde, bei einzelnen nicht mehr als 24 Stunden, bei anderen

4 Tage. Die physikalisch-chemischen Veränderungen des Harns

sind nicht so typisch wie die von Blut und Serum. Alle zeigen

Abhängigkeit vom Zustand des Serums als Konsequenz der regulato-

rischen Funktion der Nieren.‘

Fröhlich, A. Über die Anwendung der Pikraminsäure in der

Färbetechnik. Zeitschr. wiss. Mikr 27, 1910, pp. 349—352. —

Verf. gibt das folgende Verfahren an: Färbung mit Hämalaun

(nach Mayer),, übertragen in eine Lösung Pikraminsäure conce.

Alkohol absol., dann Chromotrop 2 R oder 6 B (Höchst) cone.

Alk. absol. bis zu 2 Minuten, dann Xylol.

Gabbi, U. Il Kala-Azar nella seconda infanzia, nell’ adoles-

cenza e nell’adulto. Roma Rend. Acc. Lincei, Ser. 5, 19, I, p. 407

—408. — Verf. berichtet kurz über infantilen Kala-Azar auf ver-

schiedenen Stadien.

Gabbi, U. u. Lacava, F. Il primo caso di bottone d’Oriente

in Italia. Roma Rend. Acc. Lincei, Ser. 5, 19, I, p. 301—302.

Gaiger, S. H. A preliminary check-list of the parasites of

Indian domesticated animals. Journ. trop. vet. sci. Calcutta, 5,

p. 65— 71. — Verf. gibt eine ausführliche Liste der Parasiten der

indischen Haustiere. Von Protozoen sind vertreten die Gattungen:

Piroplasma (equi, bigeminum, mutans, parvum, canis), Spirochaeta,

Trypanosoma (evansi, theileri, equiperdum), Haematozoon (lewsi)

u. Leucocytozoon canis, Sarcocystis u. Coceidium( ?).

Galieoff, P. S. (Neue Angaben über den geschlechtlichen

Vorgang bei den Gregarinen). Moskva Dnevn. XII. Sjezda russ.

jest. vrac. (Prot.), p. 544. — Russisch.

Publikationen und Referate. 215

*Gambera, M. Fortschritte auf dem Gebiete der mikro-

skopischen Hilfsapparate im Jahre 1909. Jahrb. Mikr. Jahrg., 1,

p. 68-89, 6 figg. 2

Ganslmayer, H. Uber das Vorkommen der Negri’schen

Körperchen bei Wut. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 55, Orig., p. 487

—493. — Verf. konnte in 37 Fällen von 40 Wut erzeugen durch

Verimpfung von Submaxillaremulsion an 2 Meerschweinchen und

ein Kaninchen. In den Submaxillardrüsen konnten Negri’sche

Körperchen nach den angewandten Färbemethoden in der Form,

wie sie im Ammonshorn nachgewiesen werden, nicht aufgefunden

werden, auch nicht in 20 Parotisdrüsen, die auf Virulenz nicht

vorher geprüft waren, die aber von Tieren stammten, an denen

gleichzeitig die Submaxillardrüsen Verwendung gefunden hatten.

Georgewitch, J. Note sur le developpement in vitro de

Crithidia melophagia. Paris, C. R. Soc. Biol., 68, p. 2938—299.

— Verf. hat Kulturen der COrithidia melophagia im Serum ver-

schiedener Tiere züchten können. Sehr häufig sind Rosetten-

bildungen um einen Fremdkörper herum. Der Blepharoplast

wandert vom ‚stade gregarinien au stade fusiforme‘‘ nach dem

anderen Ende des Körpers. Die Kolonien halten sich im hängen-

den Tropfen mehrere Tage.

Gerber, P. Uber Spirochaeten in den oberen Luft- und Ver-

dauungswegen. Centralbl. Bakt., Abt. 1, 56, Orig., p. 508—521,

3 pls. — Verf. betont, daß alle Untersuchungen (gegen Gußmann

u. Neuber) über die Spir. pallida, die sich nicht auch mit den

andern Spirochaeten der Mundrachenhöhle auseinandersetzen,

für die Diagnose wertlos sind. Die glatte normale Schleimhaut-

oberfläche der Mundrachenhöhle wurde fast immer frei von allen

Organismen gefunden, dagegen wurden viele Organismen kon-

statiert im Zahnhals, den Lakunen der Tonsillen und dem Zungen-

rücken. Es werden gewisse Spirochaeten beschrieben, die weder

zu Spir. buccalis, dentium oder media gehören. Diese Formen

werden bezeichnet als: Spir. inaequalis, undulata, denticola, tenuis,

recta. Ob diese Formen neue Arten sind oder zusammen gehören

zum Teil, bleibt unentschieden. Eine Unterscheidung der Spir.

pallida und dentium ist schwer zu treffen, die Sp. pallida wurde

selten diagnostiziert. Zum Schluß werden noch einige Farb-

methoden mitgeteilt. E

Gerschler, M. W. Notiz über die Fauna eines im Freien

stehenden Taufbeckens. Arch. Hydrobiol. Stuttgart, 6, p. 219

—222. — Verf. fügt den Beobachtungen von Zacharias über die

Fauna eines im Freien stehenden Taufbeckens einiges hinzu.

Es kommen außer den beobachteten Arten noch vor: Oyclidium

Glaucoma Ehrenb., Pleurotricha grandis Stein, Haematococcus

lacustris Girod var. rotunda.

Gery, L. vide Darre, H.

Giemsa, G. (1). Zur Färbung von Feuchtpräparaten und

Schnitten mit der Azureosinmethode. Centralbl. Bakt., Abt. i,

216 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

54, Orig., p. 489—490, 2 pls. — Verf. veranschaulicht die Unter-

schiede, die nach der alten Trockenmethode und der neuen Methode

bei einem Material gleicher Herkunft bestehen, durch Abbildungen.

Die Anwendungsmöglichkeit der neuen Methode erstreckt sich

auf alle möglichen Protisten.

— (2). Über eine neue Schnellfärbung mit meiner Azureosin-

lösung. Arch. f. Schiffshygien., 14, p. 695—696. — Verf. teilt

einiges mit über eine Schnellfärbung mit der Azureosinlösung; der

Glyceringehalt der Farblösung wird praktisch besser durch Methyl-

alkohol oder Aceton herabgesetzt.

*Gilruth, 3. A. (1). Note on a Haemogregarine in the blood

of Varanus varius. Melbourne Proc. R. Soc. Vict., N. 8. 23,

p: 36—38, pl. VI. — Beschreibung der Art.

— (2). Notes on a Protozoon parasite found in the mucous

membrane of the abomasum of a sheep. Melbourne Proc. R. Soc.

Vict., N. 8. 23, p. 19 u. 20, pl. III. — Vergleiche Chatton,E.

über die Gilruth-Cyste.

— (3). Notes on a Protozoon parasite found in the mucous

membrane of the abomasum of a sheep. Discussion. M. Mesuil.

Paris, Bull. soc. path. exot., 3, p. 297—299..— Cfr. 2.

— (4). Spirochaetae in lesions affecting the Pig. Proc. R.

Soc. Victoria, N. 8. 23, p. 105—109.

Gilruth, J. A., Sweet, G. and Dodd, 8. Notes on blood-para-

sites. Melbourne Proc. R. Soc. Viet., N. 8.23, p. 231—241,

pls. XXVIII—-XXX. — Proteosoma biziurae n. sp. aus Biziura

lobata, Haemogregarina megalocystis n. sp. aus Python spilotes.

Beschreibung obiger neuen Formen.

Goldschmidt, E. Die Verbreitung des Piroplasma canis im

Organismus infizierter und mit Arsenpräparaten behandelter

Hunde. Zeitschr. Immunitätsforsch., Jena, Orig., 5, p. 663—688,

1 pl. — Verf. hat Untersuchungen angestellt über die pathologisch-

anatomischen Veränderungen bei Hunden, die mit Piroplasma

canıs (russischer Virus) infiziert und zum Teil mit Arsenpräparaten

behandelt waren.

Gonder, R. (1). Ein Parasit von Colpoda cucullus. Arch. f.

Protistenk., 18, p. 275—277, 2 Textfigg. — Verf. beschreibt einen

Parasiten der Colpoden, der für ihr Weiterleben in Kulturen ver-

hängnisvoll wurde. Die Parasiten befallen die Colpoden in großer

Anzahl, sie besitzen runde bis ovale Gestalt; Länge 4,5 u—8,5 u.

Das Vorderende, womit sich der Parasit anheftet, erscheint etwas

zugespitzt. Die feinen Strukturen der Pellicula deuten auf ein

Cilienkleid. Der Kern ist bläschenförmig mit großem Caryosom.

Im hinteren Ende liegt ein stark färbbarer Körper unbekannter

Natur. Die Stellung des fraglichen Parasiten bleibt vorderhand

offen.

— (2). Die Entwicklung von Theileria parva, dem Erreger

des Küstenfiebers der Rinder in Afrika. Arch. f. Protistenk.,

Ba. 21 H.2 p. 143—164, pls. IX— XIII u. 1 Textfig,. — Die

Publikationen und Referate. 2TU

Bedeutung obiger Arbeit beruht auf der teilweisen Klarlegung der

Entwicklung des Erregers des Küstenfiebers, der richtigen Deutung

der Koch’schen Plasmakugeln und der Trennung der Gattungen

Theileria und Babesia. Infolge des charakteristischen Entwick-

lungsganges muß für den Erreger des Küstenfiebers der Rinder

eine neue Gattung Theileria angenommen werden, wie bereits

Franga, Bettencourt und Borges nach ungenügenden morpho-

logischen Merkmalen angegeben haben, da die Babesien diese

spezifische Entwicklung nicht durchmachen. Der Zerfall der sog.

„Koch’schen Kugeln“ in eine Menge typischer Küstenfieber-

parasiten wurde in vivo beobachtet. Theileria ist zum Unter-

schiede von Babesia mutans durch Blut nicht übertragbar in

endoglobulärem Zustande. Bei dem Pir. annulatum Dschun-

kowsky und Luhs aus Transkaukasien handelt es sich viel-

leicht um eine Varietät des Küstenfiebers.. Vor allem müssen

experimentelle Reininfektionen vorliegen. Als Material zur Unter-

suchung wurden nicht infizierte Rinder aus England verwendet

und als Überträger Rhiphicephalus appendiculatus. Im Zeugungs-

kreis von Th. parva wurde die Weiterentwicklung der vermut-

lichen Ookineten in der Zecke lebend verfolgt, Kopulation findet

wahrscheinlich auch in der Zecke statt. Infizierte Zecken, die

teilweise an einer Kuh, teilweise an einem Kaninchen angesetzt

wurden, konnten später keine Infektion mehr hervorrufen, da

sie sich von ihrer Infektion gereinigt batten. — Die agame

Generation im Rinde wächst aus kleinen extraglobalären, ein-

kernigen Gebilden zu mehrkernigen heran. In großen mono-

nucleären Lymphocyten vollzieht sich die Weiterentwicklung intra-

eellulär. Darauf tritt Zerfall in die Agameten ein; obige Entwick-

lung kann sich wiederholen. Auf diese Generation folgt eine

gamogene, deren Gametocyten durch Zerfall eines Agamonten frei

werden und regelmäßiger geformte, kompaktere Kerne besitzen.

Diese freien oder intracellulären Formen werden durchschnittlich

am 18. Tage nach der Infektion gefunden, kurz bevor die Blut-

formen auftreten. Mit der Bildung der Gametocyten im Blut

erreicht die Infektion im Rinde einen gewissen Abschuß, da keine

Weiterentwicklung im Blute stattfindet. Auch die gamogenen

Formen in den Organen, z. B. Lymphdrüsen und Milz, nehmen ab.

Wenn nun die Gametocyten in den Magen einer Zecke gelangen,

so tritt Gametenbildung u. wahrscheinlich Kopulation von Micro-

und Macrogameten ein, die zur Ausbildung von beweglichen

Ockineten führt, aus denen dann die zur Infektion des Rindes

dienenden Sporozoiten in den Speicheldrüsen der Zecke hervor-

gehen. — Die Krankheit, die sich durch langsam ansteigendes

Fieber dokumentiert, ist am besten Tag für Tag zu verfolgen, um

durch Lymphdrüsen- und Milzpunktation die Entwicklungsstadien

zu erhalten. Die Kernvermehrung erfolgt durch eine primitive

Mitose am Caryosom, öfters auch durch Zerfall in mehrere Chro-

matinbrocken. Bei den Agameten ist ferner ein zweiter Kern

218 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

vorhanden, der Blepharoplast, wenn auch- ‚niemals gut aus-

geprägt‘. — Die Rinder, die die Infektion überstehen, sind immun.

Eine Parthenogenese findet bei T'heileria parva nicht statt, daher

treten auch keine Recidive auf und es ist nicht möglich, neue

Zecken vom Rinde aus nach überstandener Krankheit zu in-

fizieren. — Beim Übergange des Agamonten zum Gamonten findet

man Chromidienbildungen. Die Bewegung der Gametocyten in

den roten Blutkörperchen ist relativ träge (gegen Nuttal),. Zum

Schluß stellt Verf. noch Vergleiche mit den Entwicklungseyelen

verwandter Formen an, z. B. Plasmodium Kochi.

— (2). Lamblia sanguinis n. sp. Arch. f. Protistenk., Bd. 21,

H. 2, p. 209—212, 1 Fig. — Verf. beschreibt aus dem Herzblut

eines Falken Elanus coeruleus von Transvaal eine neue Lamblia-

Art. Der Darmbefund war negativ, während bisher Lamblien nur als

als Darmparasiten bekannt waren. Es handelt sich um eine

typische Lamblia mit 8 Geißeln, doppeltem Achsenstab usw.,

ferner besitzt obige Art eine kleine napfartige Vertiefung, ver-

mittelst deren sie sich an den Herzwänden festzusetzen vermag.

L. sanguinis gleicht am meisten L. muris, sie unterscheidet sich

von den anderen Lamblien durch die Begrenzung des Peristom-

feldes und die weiter seitliche Lagerung der beiden Kerne.

— (4). Trypanosoma vespertilionis (Battaglia). Centralbl.

Bakt. Orig., 53, Abt. 1, p. 293—302, 2 pls. u. 1 Textfig. — Verf.

hat die Trypanosomen aus Vesperugo, Vespertilio und Rhino-

lophus in Süditalien untersucht. Als Überträger glaubt er eine

Milbe, Leiognathus arcuatus Koch, ansehen zu müssen. Etwa

25%, der untersuchten Fledermäuse waren infiziert. Die vor-

kommenden Trypanosomen werden alle als zu einer Art gehörig

bezeichnet. Die Priorität würde von den als verschieden be-

schriebenen Arten der Name Tryp. vespertilia besitzen. Der

Hauptkern ist weit an das Vorderende gerückt, der Blepharoplast

liegt im kurz zugespitzten Hinterende. Kulturen und Infektions-

versuche auf Ratten, Meerschweinchen und Hunde mißlangen.

Der Kern enthält ein Caryosem, das eine sog. Autosynthesis

durchmacht, ferner führt es Reduktionen aus. Die beschriebenen

Figuren bezieben sich leider nur auf Trockenanstriche, nach

Giemsa gefärbt. Auch der Blepharoplast macht Reduktionen

durch. Über die Teilung ist nichts Besonderes zu sagen. Verf.

beschreibt mehrere breite und längliche Formen, die er als Sexual-

formen deutet, indessen wurde Kopulation weder in der Fleder-

maus noch in der Milbe beobachtet. In den Milben wurden Or;-

thidia-Formen gefunden, und zwar verschiedene Entwickelungs-

stadien, die als bestimmte Entwicklungsphasen der Trypanosomen

angesehen werden müssen. Pathogenität liegt wahrscheinlich

(gegen Battaglia) nicht vor.

— (5). The life-cycele of Theileria parva, the cause of East

Coast fever of cattle in South Africa. Journ. comp. path. ther.

Publikationen und Referate. 219

Edinburgh 23, p. 3238—335, 1 pl. — Vergl. 4 und die Arbeiten von

1911 im Arch. f. Protistenk.

— (6). Der Zeugungskreis von T'heileria parva, dem Erreger

des Küstenfiebers der Rinder in Afrika. (Zusammenfassende

Beschreibung.) Zeitschr. Infekt.-Krankh. Haustiere Berlin, 8,

p. 406—416, pl. XII. — Vergl. 4 und die Arbeiten von 1911.

— (7). On the development of Piroplasma parvum (a Proto-

zoan) in tbe various organs of cattle.. Cape Town Trans. R. Soc.

Auen) Afrika, 2, p. 63—68, 17 figs. — Vergl. 4 und 6 usw.

(8). On the development of Piroplasma in the different

organs. nn! Transvaal Mus. Pretoria, 2, p. 49—52, 5 figs., 1 pl. —

Vergl. 7.

Gonder, R. u. Rodenwaldt, E. Experimentelle Untersuchungen

über Affenmalaria. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 54, Orig., p. 236—240.

— Die Verf. fassen ihre Resultate folgendermaßen zusammen.

Das Eintreten von Schwarzwasserfieber ist wahrscheinlich, in

Übereinstimmung mit den Ergebnissen von Ivannowicz, an das

Vorhandensein der Milz gebunden. Das Plasmodium kochi kann

nicht auf Menschen übertragen werden, ebensowenig die Plas-

modien des Menschen auf Affen. Die Entwicklungsdauer von einer

Schizogonie bis zur folgenden beträgt bei Pl. kochi 48 Stunden.

Durch Splenektomie wird das Pl. für das Versuchstier pathogen,

was sich in der Temperaturkurve, in der Überschwemmung des

Blutes mit Parasiten u. in ihrem Verbleiben im Blut für viele

Monate äußert. Den letzteren Effekt hat auch die Entmilzung bei

einem mit Babesia canis latent infizierten Hunde. Eine Chinin-

wirkung auf Pl. kochi ist vorhanden.

Greif, W. Das sexuelle Leben der niederen Tiere. Nat.

Wochenschr., 25, p. 282—284. — Populär referierend.

Griffin, L. E. Euplotes worcesteri n. sp. 1. Structure II.

Division. Philippine Journ. Sci. Manila D., 5, p. 291—312, 315

—336, pls. I—VIII. — Verf. berichtet im ersten Teil eingehen’i

über Struktur und Cytologie von Euplotes worcesteri n. sp. Ver-

schiedene Formen, die der Macronucleus annehmen kann, werden

abgebildet. Die systematische Stellung wird kurz gestreift. Im

zweiten Teil wird die Teilung, besonders die Kernteilung, nach

allerdings nicht immer guten Abbildungen beschrieben. Auch

die Neubildung des Peristoms wird berücksichtigt.

Gross, J. (1.) Protozoa, Zool. Jahresber. Berlin (1909), p. 174.

Jahresbericht über Protozoa pro 1909.

— (2). Cristispiran . g., ein Beitrag zur Spirochaetenfrage.

Mitteil. Zool. Station Neapel, 20, p. 41—93, pl. III. — Verf. hat

versucht, zur Kenntnis der Spirochaeten neue Beiträge zu liefern.

Soweit sich dies auf die theoretischen Ausführungen bezüglich

der system. Stellung bezieht, sind diese als verfehlt zu bezeichnen.

Es wird neu aufgestellt die Fam. der Spironemacra, zu den Bak-

terien gehörig ( ?), mit den neuen Genera Cristispira und Spironema

Vuillemin. Neu beschrieben werden Cr. pectinis aus Magen und

220 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Darm von Pecten jacobaeus, Cr. interrogantis von ebendaher.

Material und Methodik. Die Charakteristik der Cristispiren ge-

staltet sich folgendermaßen: Spiralig gezogener Körper und

Crista; Teilung durch einfache Durchschnürung oder Ausbildung

einer Scheidewand, meist mit vorhergehender Incurvation. Ein

besonderer Periplast fehlt. Die pathogenen Spirochaeten haben

angeblich im wesentlichen den geichen Bau wie die Muschel-

spirochaeten (Cristipiren) und sollen sich durch Querteilung ver-

mehren, eine Crista fehlt. Bei naher Verwandtschaft erscheint

doch eine generische Trennungangebracht. DerKörper der Spiro-

nemaceen ist ferner walzenförmig, ein Äquivalent des Zell-

kernes fehlt. Sie werden also wohl mit Recht als gesonderte Gruppe

zu betrachten sein.

*Growe, W.B. The Fauna of the Midland Plateau. The

Mycetozoa. Proc. Birmingham nat. Hist. philos. Soc. 12, No. 3,

23 pp.

HErünen $. A. (Trypanosomen im Blute von Zieseln (Sper-

mophilus eversmanni im Gebiete der Jakuten). Arch. veterin.

nauk. St. Petersburg, 40, p. 1193—1200. — Russisch.

* Guarneri, G. Sulla etiologia della infezione vacceinica

(Cytoryctes). Ann. Univ. tosc. Pisa, 29, Mem. VI, p 1—44, 1 tav.

Günther, H. Die Wirkung der Röntgenstrahlen auf einige

Protozoen und Fermente, unter besonderer Berücksichtigung

der Wärme- und ultravioletten Strahlen. Zeitschr. med. Elektrol.

Leipzig, 11, 1909, p. 127—136, 161—174; Diss. Jena 1909. —

Verf. berichtet nach einer allgemeineren Einleitung und kurzer

historischen Übersicht über seine angestellten Versuche über

die Wirkung von Wärme- und ultravioletten Strahlen auf Proto-

zoen. Zur Untersuchung wurden verwendet hauptsächlich Col

pidium colpoda, Chilodon cucullus und Chilomonas paramaecium.

Die Einwirkung einer Uviollampe war dem Abstand der Kulturen

indirekt proportional. Der Einfluß der Wärmestrablen ist ein sehr

großer, die ultravioletten Strahlen von der Intensität der Uviol-

lampe sind unschädlich. ‚Es ist unbewiesen, daß die Intensität

der bei den Röntgenstrahlen vorhandenen ultravioletten Strahlen

so groß ist, daß diese eventuell eine Schädigung bewirken können.“

Weitere Versuche wurden angestellt über die Wirkung der Röntgen-

strahlen auf Protozoen, speziell über die Röntgenotaxis. Es ergab

sich, daß bei einer Höchstdauer einer Einzelbestrahlung von 10

Stunden und einer Gesamtbestrahlung von 18 Stunden, bei einem

Röhrenabstand von meist 5cm (Glaswand der Röntgenröhre —

Kulturoberfläche) weder eine Reizwirkung noch eine Schädigung

beobachtet wurde bei Paramaecium caudatum, Colpidium colpoda,

Chilodon cucullus, Chilomonas paramaecium, Urostyla grandis,

Coleps hirtus, Vorticella microstoma, Actinophrys sol, Gromia

oviformis, Bodo ovatus u. Trypanosoma Brucei. Auch einige Ferment-

präparate wurden nicht beeinträchtigt. Wahrscheinlich ist also

(gegen Schaudinn u. a.) bei Versuchen mit Röntgenstrahlen

Publikationen und Referate. 221

einschädigender Einfluß von Wärmestrahlen

vorhanden gewesen. Verf. meint, daß erst intra- oder extracelluläre

bestimmte Angriffspunkte vorhanden sein müssen, die eine Re-

aktion bei Röntgenbestrahlung ermöglichen, ferner natürlich eine

Bestrahlung von größerer Intensität.

Guiart, J. Precis de parasitologie. Bibliotheque de Gilbert

et Fournier. Paris, Bailliere et fils, 628, pp., 549 figg. (Anal. par

M. Weinberg, Bull. Inst. Pasteur, 8, p. 254—255.

Haase, 6. Studien über Zuglena sanguinea. Arch. f. Pro-

tistenk. Bd. 20, p. 47—59, Taf. IV’—VI. — Verfasserin hat bei

ihren Studien Sexualität bei Z. s. dadurch angeblich erzielt,

daß sie ihre Kulturen in tiefen Tellern dem vollen Licht aussetzte

und die Nährlösung immer mehr verdünnte. ‚Die sexuellen Formen

traten dann nach 5—10 Tagen auf.“ Verf. gibt zunächst mor-

phologische Details über die Chromatophoren mit ständigem

Pyrenoid, über die Höckerreihen des Periplast, über die Doppel-

geißel, über den Kern mit einem Kanal für den Stoffwechsel-

austausch zwischen Caryosom und Außenplasma. Die vegetative

Kernteilung verläuft nach dem Typus der Promitose. Im Innern

eines „Zwischenkörpers“ soll eventuell ein Centriol vorhanden

sein, das bei diesen vegetativen Teilungen ‚‚seine Kräfte stemmend

entfaltet‘. Fragmentierte Caryosome gelangten nur selten und in

geringer Zahl zur Beobachtung. Die Sexualität soll sich folgender-

maßen äußern: Die Entwicklungsvorgänge der Gameten spielen

sich an Individuen ab, die ihre Geißeln abgeworfen und nicht

die rundovale Form der Ruhestadien haben. Der Kern des Game-

tocyten teilt sich zunächst regelrecht mitotisch mit Polkappen

und austretenden Centrosomen. Die Tochterkerne bleiben im

Mutterkaryosom liegen und teilen sich mit undeutlicheren Mitosen

weiter bis zu 8 Enkelkernen. Der Außenkern fängt allmählich an

zu degenerieren und die jungen Kerne wandern aus ihm aus,

lockern sich auf und umgeben sich mit Plasma. ‚Der Kern der

jungen Gameten zeigt in einer Grundmasse dunkel färbbare

Kügelchen, wohl die Chromosomen. Um ihn herum zeigt sich

bereits ein heller Hof, aber noch ohne Chromatin und Membran.“

Dann findet eine heteropole Teilung statt, das kleinere Teilungs-

produkt entwickelt sich zum Chromatophor mit Pyrenoid. Das-

selbe wandert aus dem Außenkern aus und teilt sich, so daß der

reife Gamet zwei Chromatophoren hat und mit einer Schleimhülle

versehen die Leiche des Muttertieres verläßt. Die Gameten be-

wegen sich amoeboid und kopulieren zu einer Zygote; die meta-

gamen Kernverhältnisse sind der Verf. nicht zugänglich gewesen.

Die Zygote teilt sich in 4—8 Individuen, die nun Euglenengestalt

annehmen, und als Zwergeuglenen um !/,, Körpergröße der er-

wachsenen Form bald zu typischen Agamonten heranwachsen.

Eine Verwechselung mit Parasiten soll nach Ansicht der Verf.

nicht möglich sein, da sie die amoeboiden Euglenen in vitam ko-

pulieren sah und stets die typischen Chromatophoren erkannte. —

322 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Im theoretischen Teil geht Verf. kurz auf die beiden Kernteilungs-

modi, die Binuclearitätshypothese und die Verwandtschaft der

Chromatophoren mit Kernen ein.

Hadley, Ph. B. Studies in avian coceidiosis. III. Coceidiosis

in the English sparrow and other wild birds. Centralbl. Bakt.

Abt. 1, 56, Orig., p. 522—523. — Verf. weist die große Verbreitung

der Coceidiose unter wilden Vögeln und unter den Sperlingen

nach, letzterer dient zur Übertragung der gefährlichen Krankheit

von einer Landschaft auf die andere.

Hadley, P. B. vide Cole, L. J.

Hadween, $. vide Nuttall, G. H.

Haji, S. 6. The Australian camel trade and trypanosomiasis.

Journ. trop. vet. sei. Caleutta, 5, p. 72—88. — Verf. berichtet über

einige Fälle von Kamelsurra.

Halberstädter, L. vide Morgenroth, J.

Hallopeau, —. Considerations generales sur l’evolution du

treponeme päle dans l’organisme humain. C. R. Acad. Sei. Paris

150, p. 1354—1355. — Verf. stellt in Leitsätzen die Resultate über

die Entwicklung des Treponema pallidum im menschlichen Or-

ganismus zusammen; vorwiegend medizinisch.

Hamerton, A. E. vide Bruce, D. usw.

Hartmann, M. 1. Über eine neue Darmamoebe, Entamoeba

testudinis n. sp. (Nova ameba intestinal, Entamoeba testudinis

n. sp.) Mem. Inst. Osw. Cruz, Rio de Janeiro, T. II, fasc. 1, p.

1—10, pl. 1. — Verf. beschreibt aus einer Testudo graeca eine neue

Entamoebe, zunächst aus den Entleerungen der Schildkröte,

dann auch aus dem oberen Teile des Diekdarmes. Zur Erlangung

der Fäces war es nur nötig, die Schildkröte auf den Rücken zu

legen. Die Größe der Amoebe beträgt eirca 50—70 u. Die Be-

wegung ist Limax-ähnlich. Der Kern ist meist oval und gegen das

Plasma durch eine doppelt konturierte Membran abgesetzt. Die

ganze Kernstruktur gleicht der von Entamoeba tetragena. Vor

allem konnte das Vorkommen cyklischer Veränderungen am

Carysom konstatiert werden. Im Innern des Caryosoms werden

ein oder zwei Centriole angetroffen. Neben Kernen mit auf-

geblähtem und wabigem Caryosom kommen auch solche mit

einem neugebildeten kleinen, kompakten Caryosom vor. Die peri-

pheren Chromatinkörner können gleichfalls an Größe und Anzahl

wechseln. Von Fortpflanzungsvorgängen wurde nichts gefunden.

Der Kern der Eniamoeba testudinis steht in seiner ganzen Aus-

bildung etwa in der Mitte zwischen Entamoeba tetragena und

Enta. blattae. Verf. deutet eine phylogenetische Entwicklungsreihe

der Entamoebenkerne an und betont, daß alle Kerntypen sich

von einfachen Caryosomkernen ableiten lassen. Zum Schluß

werden die sicheren Entamoeben aufgezählt. Es gehören hierher

folgende Arten: Entamoeba muris Grassi, buccalis Prowazek,

coli Loesch em. Schaudinn, histolytica Schaudinn, ranarum Grassi,

tetragena Viereck, blattae Bütschli u. testudinis n. Sp. |

Publikationen und Referate. 223

— (2). Notiz über eine weitere Art der Schizogonie bei

Schizotrypanum cruzi Chagas. Arch. f. Protistenk., 20, p. 361—-363,

1 Textfig. — Verf. konstatiert in der Lunge eines mit Schizo-

irypanum cruzi infizierten Meerschweinchens Stadien eines großen,

multiplen Vermehrungsvorganges (Schizogonie). Die Endothel-

zellen sind stark vergrößert und fast ganz aufgebraucht und erfüllt

von den kleinen Parasiten, deren Zahl nach der Abbildung über

20 beträgt. Verf. erblickt bierin ein weiteres wichtiges Zwischen-

glied zwischen Trypanosomen und Hämosporidien, das deren

Zusammengehörigkeit noch fester begründet.

— (3). Uber Chlamydozoen. Centralbl. Bakt. Parasitenk. I.

Abt. Referate, Bd. 47, Beibeft, p. 94—98. — Im wesentlichen re-

ferierend. Die Ansicht, daßdasMolluscum contagiosum

von Protozoen verursacht wird, kann sich auf die Dauer nicht

halten, nur Calkins und Negri halten noch daran fest.

Fortschritte in der Lehre von den Chlamydozoen wurden erzielt

bei Trachom durchProwazek undHalberstädter,

ferner durch Frosch, Greef und Claussen; Leber

und Hartmann, Herzog, Lindner, Wolfram

u.a. m. In den Kreis der Betrachtungen zu ziehen sind auch die

Befunde bei Variola-Vaccine, Geflügelpocke,

Lyssa, Scharlach, Masern, Maul- und Klauen-

seuche und Gelbsucht der Seidenraupen. Beim

Trachom und bei der Einschluß-Blennorrhöe scheint es sich um

ein spezifisches Virus zu handeln. Die Initial- und Elementar-

körperchen sind als belebte Parasiten anzusehen. Allerdings ıst

dies noch nicht bewiesen und die ganze Chlamydozoenfrage ist

noch immer nicht gelöst.

— (4). Untersuchungen über Bau und Entwicklung der

Triehonymphiden (Trichonympha hertwigi (n. sp.). Fest-

schr. zum 60. Geb. R. Hertwigs Bd. 1, p. 351—396, pls. 27—30. —

Den Verf. haben seine Untersuchungen an den Triehonymphiden

zu dem Resultate geführt, um die Hawptpunkte vorwegzunehmen,

daß es keine Flagellaten sind und daß eine Polyenergidität vor-

liegt. Die untersuchte Form stammt aus einer Art der Termiten-

gattung Captotermes. Zunächst wird ein kurzer Überblick über

die Geschichte der Trichonymphidenforschung gegeben. Dann

folgt eine Darstellung des Baues und der Entwicklung obiger Art.

Die Auffassung L ei d y’s betreffs der Jugendformen wird bestätigt.

Die werden zunächst eingehend beschrieben. Sie sind eirca 10

-—100 «lang, 8—40 „ breit und haben etwa die doppelte Größe

der Schwärmer aus den sog. Formen A. und B. Ob sie aus einer

Kopulation hervorgehen, ist nicht bewiesen worden. Die Gestalt

ist meist spindel- oder birnförmig, die Oberfläche ist meist gleich-

mäßig von langen feinen Cilien bedeekt. Die kreiselförmige Be-

wegung der Individuen resultiert aus der Anordnung der Cilien

in Spiralreihen. Die Cilienreihen entspringen am Vorderende von

einem mit Kernfarbstoffen färbbaren Gebilde, den Verf. als

224 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Blepharoplast bezeichnet. Vorn am Kopf liegt ein röhrenartiges

Organ, dessen Röhre durch das Zusammentreten der enggestellten

Basalkörperreihen zustande kommt. Der Kern liegt bei den

jüngsten Stadien in der Höhe des Vorderendes. Bei einem Teil

der älteren Formen, die ein deutliches Kopforgan und ein lang

ausgezogenes Vorderende aufweisen, ist er mehr nach hinten ge-

lagert: Übergang zu der erwachsenen Form A. Bei anderen

Individuen von gleicher Größe, ohne Kopforgan und mit stumpferem

Vorderende, behält der Kern seine ursprüngliche Lage, ganz wie

bei der Form B. Der Kern stellt sich auf diesen Stadien als ein-

faches Monocaryon dar, mit Außenchromatin und einem Carysom.

Eine Kernmembran scheint zu fehlen. Das Caryosom teilt sich

hantelförmig, die Tochtercaryosome bleiben in der alten Kern-

höhle zusammen. Dies führt zur Entstehung der Sekundärkerne.

Die Form A wird als männliche Form gedeutet und ist durch

Übergänge mit den Jugendformen verbunden. Die Einzelheiten

werden ausführlich beschrieben, besonders das Kopforgan und die

Cilien. Der Kern ist ein Polycaryon, wie aus seiner Genese und

aus seinem Schicksal bei der Gametenbildung hervorgeht. Die

Polyenergidität ist auf späteren Stadien schwer erkennbar, da der

Kern einen schwammigen Bau annimmt. Er gleicht den Ruhe-

kernen der Metazoen. Von der Kernteilung werden nur die Pro-

phasen beschrieben. Es handelt sich um eine Längsteilung. Außer

dieser kommt noch eine Gametenbildung vor, deren spätere Stadien

nur in schwärmenden Termiten beobachtet wurde. Das Kopf-

organ wird bei seiner spindelförmigen Teilung mit Centralspindel

als Blepharoplast oder Centrosem gedeutet. Zu Beginn der Ga-

metenbildung treten vom Kern ‚einzelne Körnerreihen, Chro-

mosomen oder Sekundärkerne ins Protoplasma über und bilden

dort Ansammlungen von Chromatinkörnchen, die man ohne

genauere Kenntnis für Chromidien halten würde.“ „Es handelt

sich fraglos nicht um eine Ausscheidung unindividualisierter

sogenannter Chromidien, sondern um das Auftreten von wohlin-

dividualisierten, durch fortgesetzte Caryosomenteilung im Pri-

märkern entstandenen Sekundärkerne.“ Die Umwandlung der

fadenförmigen Sekundärkerne in die bläschenförmigen wurde

noch nicht festgestellt. Die im Plasma verstreuten Sekundärkerne

vermehren sich durch Mitose, vielleicht auch durch Promitose,

Oft sind nur Chromatinkörnchenhaufen im Plasma zu erkennen,

die im Innern ‚zwei durch eine Centrodesmose verbundene Cen-

triole‘“ enthalten. Die große Menge der im Primärkern zurück-

bleibenden Sekundärkerne ist somatischer Natur, da ersterer

allmählich zugrunde geht. Die Abknospung der Schwärmer ver-

läuft wie bei der Form B, sie wurde leider nur ungenügend be-

obachtet. — Die Form B stimmt nun in allen ihren Eigenschaften

direkt mit den Jugendformen überein, so daß es oft nicht möglich

ist, sie voneinander zu unterscheiden. Auch hier werden nun weitere

Einzelheiten beschrieben. — Die Caryosome der Primärkerne

Publikationen und Referate. 225

vermehren sich durch fortgesetzte Teilung, und es besteht die Ten-

denz, sich zu schleifenförmigen Fäden zusammen zu schließen,

die ganz das Aussehen von Metazoen-Chromosomen erhalten.

„Da sich die sogenannten Chromosomen genetisch aus einzelnen

hintereinander gereihten Tochtercaryosomen oder Sekundärkernen

aufbauen, so haben wir in der Längsspaltung derselben die gleich-

zeitige Zweiteilung der Caryosome zu erblicken. Auch hier folgen

einige kurze Mitteilungen über die Kernteilung. Bei der Form B

wurden fast ausschließlich die letzten Stadien der Gametenbildung

gefunden. Die Sekundärkerne verteilen sich an der Oberfläche

der Zelle. Der Primärkern scheint sich ganz in seine Einzelelemente

aufzulösen. Von der Zelloberfläche schnüren sich kleine kegel-

förmige Knospen ab, die ein oder zwei kleine Caryosomkerne

enthalten. Die Kernteilungen in den sich abschnürenden Gameten

sind vielleicht als Reduktionsteilungen aufzufassen. An den

Gameten konnten 2 Geißeln beobachtet werden. Leider sind auch

hier die Beobachtungen über die freien Formen wieder lücken-

haft. Kopulation wurde nicht mit Sicherheit festgestellt. Wäre

die Kopulation bewiesen, so würden die Formen A und B mit

Sicherheit die Gamonten. Verf. gibt den wahrscheinlichen Ent-

wicklungskreis dementsprechend an. — Im allgemeinen Teil

kommt zuerst die systematische Stellung der Trichonymphiden

zur Sprache, besonders nach den Angaben von Leidy, Kent,

Grassi, Bütschli. Sowohl von Flagellaten, wie von

Infusorien unterscheiden sie sich, auch die Zwischenstellung

zwischen Ciliaten und Gregarinen ist fraglich. Es ergibt sich die

Notwendigkeit, eine den obigen Formen entsprechende neue

Gruppe zu errichten, die als Klasse der Trichonymphiden

dem System der Protozoen einzureihen ist. Über die polyenergiden

Kerne und ihre Bedeutung für die Chromidienlehre und Metazoen-

Cytologie werden nun noch interessante Ausführungen gemacht,

über die der Verf. im Zusammenhange in einem Vortrage 1911

(Konstitution der Protistenkerne) berichtet. (Siehe daselbst.)

Hier möge nur noch eine Definition folgen: ‚‚Der Begriff Energide

ist kein physiologischer, sondern ein morphologischer resp. ent-

wicklungsphysiologischer und erstreckt sich auf alle durch Zwei-

teilung eines einwertigen Caryosomkernes resp. Üentriols ent-

standenen Tochterelemente einer Zelle, seien dieselben nun ge-

sondert als Einzelelemente oder in einem einzigen Kernbläschen

als Polykaryon vereint, seien es gleichwertige generative oder

ungleichwertige heterologe (generativ, trophisch, lokomotorisch)

Energiden.“‘ Die Energidenlehre hat sich zunächst als Arbeits-

hypothese bereits ihre Berechtigung erworben.

Hartmann, M. u. Chagas, €. (1). (Sobre a Divizäo nuclear

da Amoeba hyalina Dang.) Über die Kernteilung von Amoeba

hyalina Dang. Mem. Inst. Osw. Cruz T. II, p. 159—166, pl. 10. —

Die Verf. teilen einiges über den Verlauf der Kernteilung bei

Amoeba hyalina mit, wobei besonders die Konstatierung des Vor-

Archiv für Naturgeschichte 15

1911. VI. 2. 2

2926 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

kommens eines Centriols von Wichtigkeit ist, das Dangeard

übersehen hat. Auf den Präparaten ist die Differenzierung in

Ecto- und Entoplasma so deutlich erhalten, wie bei keiner anderen

Amöbe. Der Kern ist ein Caryosomkern mit wenig Außenchromatin

und ohne Kernmembran. Beim Beginn der Kernteilung zerfällt

das Caryosom in eine Anzahl Chromatinkörner. Zuvor teilt sich

das Centriol hantelförmig, und es entsteht eine überaus deutliche

Centrodesmose. In der Phrophase und in der Äquatorial- und

Tochterplatte wurden 8 Chromosomen gezählt. Erwähnenswert.

ist noch die Spindelausbildung. ‚.Die schon in der Arbeit von

Nägler (1909) vertretene Auffassung, daß ganz allgemein

im Caryosom der Amöben (und Protozoen überhaupt) ein Centriol

sich findet, kann nun als feststehende Tatsache gelten.“ Es wird

auf die Ähnlichkeit der Mitose dieser Form mit Spongomonas

hingewiesen. Die lokomotorische Komponente des Kerns stellt

sich als achromatische Spindel mit einfachem Centriol an den

Polen dar.

— (2). Estudos sobre flajelados. (Flagellaten-Studien.)

Mem. Inst. Osw. Cruz, Rio de Janeiro, T. II, fasc. 1, p. 64—125,

pls. 4-9 und Textfig. — Die Verf. haben freilebende Flagellaten

aus Tümpeln von Manguinhos untersucht, um auf Grund der

cytologischen Befunde zu einem natürlichen System zu gelangen.

Ferner werden zwei Flagellaten beschrieben, die auf Agarplatten

gezüchtet wurden. Auch über die Untersuchungstechnik wird

einiges mitgeteilt. Im speziellen Teil gelangt zuerst C’ercomonas

parva n. sp. zur Besprechung. Die Gestalt ist birnförmig und trotz

amöboider Veränderlichkeit monaxon. Am Vordernde entspringt

eine lange Geißel, das hintere Ende besitzt einen Schwanzfortsatz.

Die Länge beträgt 6, 5—20 x. Vom Kern im Vorderende geht ein

Achsenstab nach hinten. Der Achsenstab ist ein starres, elastisches

Gebilde, das durch Änderung der Oberflächenspannung verbogen

wird. Genetisch stellt der Achsenstab die von der vorausgegangenen

Kernteilung erhaltene Centrodesmose dar. Die Geißel entspringt

aus einem Basalkorn, das durch den Rhisoplast mit dem Kern

verbunden ist. Die Bewegung ist leicht pendelnd nach vorwärts

mit gestreckter Geißel. Der Kern ist ein einfacher Caryosomkern

mit Centriol. Der Charakter der Längsteilung wird verwischt,

Kernes wird erst später um 90° gedreht. Die Kernteilung selbst

vollzieht sich promitotisch. Die Geißel scheint nach der Teilung

vom Caryosom aus neu gebildet zu werden, ebenso wie nach

der Exeystierung durch heteropole Mitose des Caryosoms. Die

Geißel scheint aus mehreren Fibrillen zu bestehen. Auf der Agar-

platte tritt nach einer vegetativen Lebenszeit Encystierung ein.

Im Gegensatz zu Senn wird die Gattung Cercomonas beibehalten,

von Qicomonas unterscheidet sie sich durch den Achsenstab. —

Von Amphimonadaceen gelangten Spongomonas uvella

Stein und Sp. (Rhipidodendron) splendida Stein zur Untersuchung.

Publikationen und Referate. 227

Es sind Formen mit 2 gleichlangen Geißeln, die durch Gallert-

hüllen zu Kolonien vereinigt sind. Eine Unterscheidung als zwei

Gattungen auf Grund der Gallerthülle erscheint nicht angängig,

da in der Ausbildung der Gallerthülle auch Übergangsformen

vorkommen, die Individuen selbst sind in freiem Zustande kaum

zu unterscheiden. Bei Sp. splendida sind die Gallertkörnchen

kleiner als bei Sp. uvella, die Gestalt bei ersterer Art mehr lang-

gestreckt und zylindrisch, bei letzterer oval oder kugelig. Die freien

Formen nehmen amöboide Form an. Die Geißeln, die im unteren

Ende oft verklebt sind, entspringen aus einem Diplosom, das nach

der Teilung mit dem Kern durch einen Rhizoplast verbunden ist.

Auch kann das Diplosom direkt der Kernmembran aufsitzen.

Der Kern ist ein Caryosomkern mit Membran und Centriol. Auch

spielen sich am Caryosom zyklische Veränderungen ab. Bei der

Teilung werden die Geißeln zunächst abgeworfen. Bei der Kern-

teilung ragen die Tochtercentriole zunächst über die Caryosom-

grenze an entgegengesetzten Seiten hinaus. Es entsteht eine

charakteristische Mitosefigur, bei der die Chromosomenplatte

in Seitenansicht die Zentralspindel weit überragt. Nach Auflösung

der Kernmembran streckt sich die Spindel mit den Tochterplatten

stark in die Länge durch Wachstum. Bei der beginnenden Spindel-

auflösung kann die Centrodesmose mehrmals deutlich zutage

treten. Die Geißeln entstehen durch heteropole Teilung des Caryo-

soms, wobei entweder die doppelten Centriole, die schon bei der

Mitose an jedem Pol vorhanden waren, sich gleichzeitig teilen und

direkt das Diplosom liefern oder verteilt werden und das eine

als Basalkorn durch eine weitere Teilung das zweite Basalkorn

bildet. Auch im Stadium der Äquatorialplatte können die neuen

Geißeln von den Centriolen aus gebildet werden. Die Zellteilung

ist als Längsteilung anzusehen. Die Familie der Spongomonadinen

wird aufgehoben, da die Gallertausscheidung sekundär erfolgt.

Alle hierher gehörigen Formen werden zu den Amphimonadaceen

gezählt. — Weiter wird Cyathomonas truncata Fres beschrieben.

Der Kern besitzt neben dem typischen Caryosom auch Außen-

chromatin, das von ersterem herstammt. Die Mitose spielt sich

am Caryosom ab, wobei das Außenchromatin an den Polen lagert,

während das zentrale Caryosom zur Äquatorialplatte wird. Ein

Centriol konnte noch nicht differenziert werden. Später erfolgt

eine Drehung der Spindelachse um 90°. Die alten Geißeln werden

von dem einen Tochtertier übernommen, die Bildung der neuen

Geißeln konnte nicht mit Genauigkeit klargestellt werden. Das

neue Diplosom entsteht wahrscheinlich durch Teilung des alten.

Mit Senn wird Cyathomonas zudenAmphimonadaceen

gerechnet, (nach Ulehla (1911) an den Anfang der Crypto-

monadinenreihe gestellt). — Von den zu den Binucleaten

gehörenden Formen wird eine neue Gattung beschrieben, Prowa-

zekia cruzi n.g.n.sp., die aus menschlichen Fäces auf Agarplatten

gezüchtet wurde. Diese Form erscheint den Verf. identisch mit

15*

228 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

einem von Prowazek (03) beschriebenen Bodo, dessen ‚‚Geißel-

säckchen‘‘ einen zweiten Kern, den Blepharoplast, darstellt. Die

Länge dieser zweigeißeligen Form beträgt etwa 8S—12 u. Von

den Geißeln ist eine als Schleppgeißel anzusehen. Beide Kerne,

der Hauptkern und der Blepharoplast besitzen typische Caryosome.

Der Bau des Geißelkernes stimmt mit dem bei den übrigen Binu-

cleaten beschriebenen überein. Die Teilung beider Kerne wird aus-

führlich beschrieben, sie spielt sich zeitlich bald früher am Haupt-

kern, bald am Blepharoplast ab. Beim Hauptkern wird auch ein ab-

gekürzter Teilungsmodus angegeben. Der Blepharoplast bildet

eine typische Kernspindel. Die neuen Geißeln des einen Tochter-

tieres werden vom Basalkornapparat aus, der von dem einen

Blepharoplast durch heteopole Mitose entsteht, neu gebildet.

Die Zellteilung vollzieht sich der Länge nach. Die Geißeln bleiben

in den auf den Agarplatten gebildeten Dauercysten noch eine Zeit

lang erhalten. Die echten Bodonen enthalten nur den Hauptkern,

dessen Caryosom mit dem Basalkornapparat durch den Rhizo-

plast verbunden ist. Es wird auf die nahe Verwandtschaft der

Prowazekia mit den Trypanoplasmen hingewiesen. —

Von Chromomonadinen resp. Cryptomonadinen

wurde Chilomonas paramaecium untersucht und die Angaben von

Prowazek wurden bestätigt betreffs des Kernbaues. Ferner

wird das Vorkommen eines Centriols behauptet. (Hinsichtlich

der Kernverhältnisse siehe eine Arbeit von Nägler 1912 im

Arch. f. Protistenk., wo u. a. die Kernteilung eingehend beschrieben

wird). — Von den Euglenoidea gelangte Peranema trichophorum

Ehrb. zur Untersuchung, und es wurde im Nucleocentrosom bei

der Kernteilung ein Centriol gefunden. Peranema ist ein zwei-

geißeliges Flagellat, dessen eine Geißel zum Teil rückgebildet ist.

Die Kernteilung verläuft ähnlich wie bei Zuglena. Es scheint

dabei vorkommen zu können, daß sich die Centriole rascher teilen,

als das Caryosom sich streckt, und dann an den Polen aus ihm

heraustreten. In der Aquatorialplatte wurden 6 Chromosomen

gezählt, die bei der Rekonstitution der Tochterkerne noch längere

Zeit im Außenkern erhalten bleiben. Die Einzelheiten bei der

Geißelneubildung wurden nicht festgestellt. — Im allgemeinen

Teil der Arbeit werden nun zuerst der Kern und Geißelapparat

der Flagellaten einer vergleichenden Betrachtung unterzogen.

Das Vorkommen des Centriols oder das Vorhandensein von Zentral-

organen im Caryosom aller Protozoen wird verallgemeinert und

als „wohlbegründete wissenschaftliche Tatsache“ angegeben. In

dem Kapitel über Kernbau und Mitose werden die allgemeinen

Richtlinien einer Phylogenie der Kernentwicklung gezogen und

3 Haupttypen aufgestellt. Zunächst die Caryosomkerne z B. bei

Amöben und Binucleaten, dann die Kerne mit dauerndem Außen-

chromatin, das auch generatives Material enthält z. B. bei Eugle-

noideen und Thecamöben, endlich die Kerne, deren Caryosom

sich bei der Mitose auflöst. An der Bildung der Äquatorialplatte

Publikationen und Referate. 229

nehmen Außenkern und Caryosommaterial in gleicher Weise teil.

Hierher gehören die Kerne der Phytomonadinen. (Betreffs ver-

schiedener Einzelheiten ziehe man das Original selbst zu Rate,

da dies eine der wichtigsten neueren Zusammenfassungen gibt.

Ferner ist hierüber ein Vortrag Hartmann’s 1911 erschienen,

der über die Konstitution der Protistenkerne alles Wichtige zu-

sammenfaßt.) — Hinsichtlich des Geißelapparates werden auch

mehrere Typen unterschieden und mit der Ausbildung heterologer

Energiden erklärt. Die einzelnen Etappen dieser Ausbildung lassen

sich der Reihe nach folgendermaßen anordnen: Hauptkern,

Blepharoplast, Basalkorn, Geißel. Dazwischen liegen 3 heteropole

Teilungen, die die betreffenden Energiden hervorgehen lassen.

Die alte Auffassung der Doppelkernigkeit von Hartmann

und Prowazek wird einer Revision unterzogen und dahin

modifiziert, daß nur ein Dualismus der Kernsubstanzen vorliegt

in einer lokomotrischen und generativen Komponente. Echte

doppelkernige Zellen sind die Trypanosomen, die Heliozoen und

Infusorien. Die Zellenlehre wird durch die Deutung der poly-

energiden Elemente des Flagellaten in eine Energidenlehre um-

gewandelt. — Zum Schlusse wird noch die Darstellung eines

natürlichen Systems der Flagellaten auf obigen Grundlagen ge-

geben. Besonders die Ordnung der Protomonadinen

wird neu eingeteilt: a. in Monozoa (umfassend Cercomona-

daceae, Oicomonadaceae, Craspedomonadaceae, Bodonaceae, Mona-

daceae, Amphimonadaceae, Trimastigaceae, T’etramitidae.) DasSystem

basiert in großen Zügen auf der Anzahl und Insertion der Geißeln.

Zu b.Diplozoa gehören die Distomatidae. Die Sub-

klasse der Euflagellaten oder Flagellaten im engeren Sinne wird in

folgende Ordnungen eingeteilt: Rhizomastigina, Protomonadina,

Binucleata, Chloromonadina (provisorisch), Euglenoidea und Phy-

tomonadina. — Bezüglich der Begründung der Binucleaten vergl.

die Arbeiten von Hartmann u. Jollos und Nägler

über Prowazekia parva.

— (3). Vorläufige Mitteilung über Untersuchungen an

Schlangenhämogregarinen, nebst Bemerkungen zu der vorstehenden

Arbeit von E. Reichenow über Haemogregarina stepanoun.

Arch. f. Protistenk., 20, p. 351—360, 12 Textfigg. — Die Verf.

konstatieren eine Übereinstimmung der Resultate mit denen von

Reichenow hinsichtlich der Zugehörigkeit. der Haemogregarinen

zu den Coceidien, dagegen eine Differenz in cytologischer Hin-

sicht. Dis Angaben beziehen sich auf Haemogregarina lutzi n. Sp.

(aus noch unbestimmten Schlangen) und auf 4. serpentinum Lutz

aus Eunectes murina. Bei einer frischen Infektion wurde die

ungeschlechtliche Schizogonie beobachtet. Die Merozoiten wachsen

in Erythrocyten heran und dringen dann in die Lungen- und

Lebercapillaren ein. Dort wachsen sie weiter bis zu 50 «u. Der Kern

enthält ein großes Caryosom mit Centriol. Letzteres schnürt sich

vom Caryosom los und tritt ins Plasma über. Dort teilt es sich

230 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

hantelförmig und rückt an die Pole der Kernspindel, ‚in der die

Chromatinkörner in unregelmäßigen Längsreihen sich anordnen,

während der große Rest des Caryosoms meist schon vor Ausbildung

der Spindel aufgelöst wird.“ Vielleicht sind Reichenow bei

seiner kleineren Form die sich hier abspielenden Vorgänge ent-

gangen. In den Telophasen soll das Centriol wieder zum Caryosom

wachsen, im Stadium der Schizonten mit 32 Kernen ist es

von den Chromatinkörnern nur schwer zu unterscheiden, da

letztere es strahlenförmig umgeben. Hier vollzieht sich dann die

Aufteilung der Schizonten in Merozoiten, wie bei den Coceidien.

Ferner werden Gametogoniceysten beschrieben, solche mit 8—16

Teilprodukten und solche mit 2, die als Macro- und Microgameto-

gonieformen unterschieden werden. Ob ein Zwischenwirt existiert

und in ihm die sexuelle Entwicklung sich abspielt, ist fraglich bei

dieser Form. Die Macromerozoiten sind größer als die Merozoiten,

über ihr weiteres Schicksal können die Verf. nichts aussagen.

Die anderen Formen würden eventuell als Macrogameten zu be-

zeichnen sein und die abgebildeten Cysten mit 2 Fortpflanzungs-

körpern wären dann das Resultat einer Sporogonie. Weitere

Untersuchungen werden hierüber Aufklärung bringen. Eine Hin-

zuziehung der Plasmodien zu den Coceidien nach Reichenow

ist gänzlich unzulässig, ebenso auch seine Auffassung von der

Nichtbeteiligung des Caryosoms bei der Kernteilung. Bei Auf-

lösung des Caryosoms bleibt jedesmal ein als Teilungszentrum

dienendes Nucleocentrosom (Centriol) erhalten.

Hartmann, M. und Jollos, V. Die Flagellatenordnung „Binu-

cleata“. Phylogenetische Entwicklung und systematische

Einteilung der Blutprotozoen. Arch. f. Protistenk., 19, p. 81—106,

12 Textfigg. — Die Verf. versuchen, weitere Stützpunkte für die

Zusammengehörigkeit aller als Binucleaten bezeichneten Blut-

protozoen klarzustellen und sie systematisch einzuordnen. Zu-

nächst wird der Kerndualismus bei den betreffenden Forraen

besprochen. DBetont wird die Kernnatur auch des Blepharo-

plasten nach den Untersuchungen von Berliner und Rosen-

busch (1909), ferner die Geißelentstehung. Es wird auf Über-

gangsformen hingewiesen zu den sog. Hämosporidien z. B. Eindo-

irypanum nach Mesnil und Brimont und Schizotrypanum

nach Chagas. Über die Zugehörigkeit der Hämogregarinen und

der Gattung Lankesterella zu den Binucleaten sind neuerdings

berechtigte Zweifel geäußert worden, so daß die Hämogregarinen

besser zu den Coceidien gestellt werden. Des weiteren werden nun

eingehend die sog. Hämosporidien besprochen. Die letzte Stufe

der endoglobulären Lebensweise und das Endglied der Reihe

stellen die Malariaparasiten dar. Schritt für Schritt läßt sich die

Rückbildung des lokomotorischen Apparates bei allen diesen

Blutprotozoen verfolgen. Ferner wird auf die allen Formen ge-

meinsame Entwicklung in Zwischenwirten hingewiesen; in den

Grundzügen des Entwicklungslaufes stimmen alle Binucleaten

Publikationen und Referate. 231

überein. Wichtig ist die Schizogonie bei Schizotrypanum nach

Chagas. Des weiteren werden besprochen die Kopulation und

die fortschreitende Entwicklung der Gameten bei den Binucleaten.

Interessante und wichtige Formen bilden den Ausgangspunkt der

Reihe: ZLeptomonas, Herpetomonas und Prowazekia. Bei der ganzen

Ordnung der Binucleaten darf man insofern von einem biphy-

letischen Ursprung reden, als die Familie der Trypanoplasmiden

durch die Gattung Prowazekia von den Bodonaceen, die übrigen

Familien durch Leptomonas von Oicomonadaceen hergeleitet

werden können. Verf. geben nun eine Tabelle des Systems und einen

allerdings noch stark hypothetischen Stammbaum der Binu-

cleaten. Nur das System sei hier noch aufgeführt.

Ordnung: Binucleata.

1. Fam. Trypanoplasmidae.

Gattungen: Prowazekia (Hartmann und Chagas), Trypanoplasma

(Laveran und Mesnil).

2. Fam. Trypanosomidae.

Gattungen: Leptomonas (Kent em. Chatton und Alilaire), Herpe-

tomonas (Kent em. Prowazek), Trypanosoma (Gruby), Schizo-

trypanum (Chagas), Endotrypanum (Mesnil und Brimont).

3. Fam. Halteridiidae.

Gattung: Haemoproteus (Kruse).

4. Fam. Leucocytozoidae.

Gattung: Leucocytozoon (Danilewsky).

5. Fam. (?). Haemogregarinidae.

Gattungen: Haemogregarina (Danilewsky) pro parte, Caryolysus

(Labbe) ?, Lankesterella (Labbe).

6. Fam. Piroplasmidae.

Gattungen: Leishmania (Ross), Toxoplasma (Nicolle), Babesia

[= Piroplasma sive Pirosoma] (Starcovici).

7. Fam. Plasmodiidae.

Gattungen: Achromaticus (Dionisi), Polychromophilus (Dionisi),

Proteosoma (Labbe), Plasmodium (Marchiafava und Celli).

Hartmann, M. vide Dönitz, W.

Hartmann, M. vide Kisskalt, K.

Heckenroth, F. Sur un essai d’obtention d’une race de Na-

gana resistante d’emblee & l’Emetique. Ann. Inst. Pasteur Paris,

24, p. 721—727. — Verf. konstatiert bei den Nagana-Mäusen,

behandelt mit schwachen Dosen ‚d’emetique de potassium“,

große Differenzen in der Sensibilität des Virus. In ?/, der Fälle

stellte sich eine vorübergehende oder bleibende Resistenz heraus,

die nicht übertragbar ist, mit Ausnahme zweier Fälle. In einigen

Fällen ‚„apres avoir subi l’action de doses therapeutiques re-

petees ou non d’emetique“, zeigte das Virus eine ‚„Sensibilisation‘

durch 2—6 Wochen.“

Heinis, Fr. Systematik und Biologie der moosbewohnenden

Rhizopoden, Rotatorien und Tardigraden der Umgebung von

230 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Basel mit Berücksichtigung der übrigen Schweiz. Arch. Hydro-

biol. Stuttgart, 5, p. 89—166, 217—256. — Verf. berichtet nach

einer allgemeinen Einleitung über die Moosfauna, dann über das

Untersuchungsgebiet und die Methodik. Es folgt ein Verzeichnis

der untersuchten Moose. Im systematisch-faunistischen Teil

werden von Protozoen die Rhizopoden berücksichtigt und

alle gefundenen Arten aufgezählt. Kurze Bemerkungen erstrecken

sich auf Amoeba terricola Ehrbg., A. alba Greef und Corycia coronata

Penard, ferner noch auf einige der sehr zahlreich gefundenen

Testaceen.

*Henry, H. On the Haemoprotozoa of British sea-fish (Prel.

note). Journ. Path. Cambridge, 14, p. 463—465.

*Herdmann, W. A., Seott, A. und Dakin, W. J. An intensive

Study of the marine plankton around the South end of the Isle

of Man. Part III. Liverpool Proc. Trans. Biol. Soc., 24, p- 255

—359, 2 pls. Yh

Herzog, H. Über eine neue Methode der Schnellfärbung und

der Kontrastfärbung der Trachomkörper im Schnittpräparat.

Arch. Ophthalm., 74, p. 520—525. — Doppelfärbung mit modi-

fizierter Pick-Jakobsohn’scher Lösung.

Hesse, E. Trypanoplasma vaginalis n. sp., parasite du vagin

beschreibt als neu Trypanoplasma vaginalis aus Hirudo medieinalis

und Aulastomum gulo; Sitz die 2 Genitalorgane. Die Infektion

soll stets häufig sein. Die Größe variiert zwischen 6—15 a. Kern

und Blepharoplast sind deutlich wahrnehmbar. Ferner kommen

noch amoeboide Organismen vor, deren Zugehörigkeit zu Tr. vagt-

nalis eventuell in Frage kommt. Vergl. hierüber eine in Aussicht

gestellte spätere ausführliche Publikation.

Hesse, E. vide Leger, L.

*Hibbert-Ware, A. and Crossland, €. AMycetozoa of the Scar-

borough district. Naturalist London, p. 147.

*Hikson, 8. J. The origin of sex (President’s Address). Man-

chester Rep. Trans. Micr. Soc. (1909) 1910, p. 34—45.

*Hilton, A. E. (1). The life-phases of Mycetozoa. London,

Journ. Quek. Microse. Cl. Ser. 2, 11, p. 55—60, 137 exhibits.

— (2). Mycetozoa. London,-Journ. R. Micr. Soc., p. 802—803.

Hindle, E. (1). Degeneration phenomena of Trypanosoma

gambiense. Parasitol. Cambridge, 3, p. 423—435, pl. XXX. —

Verf. beschreibt die Degenerationsphänomene bei Trypanosoma

gambiense nach Behandlung des infizierten Tieres mit Arseno-

phenylglyein: Abrundung, Auftreten von Chromatinkörnern im

Plasma, Degeneration des Axialfilamentes, Verschwinden des

Tropho-Nucleus, freie Kerne als Resultat der Degeneration und

nicht eines Entwicklungsstadiums (‚‚latent bodies‘‘ nach Moore und

Brein!).

— (2). A biometrie study of Trypanosoma gambiense.

Parasitol. Cambridge, 3, p. 455—458, 2 diagrams. — Verf. bildet

Publikationen und Referate. 233

2 Kurven ab, die die relative Häufigkeit der Trypanosomen zu

der Länge und zu gleichen Proportionen veranschaulicht. Es

geht daraus hervor, daß 3 deutliche Kurvenhöhenpunkte vor-

handen sind, die auf die Existenz 3 verschiedener Typen bei

Trypanosoma gambiense schließen lassen.

Hindle, E. vide Breinl, A.

. Hirschfeld, L. vide Wasielewski, Th. v.

Hoefer, P. A. Über ein unbekanntes Protozoon im mensch-

lichen Blute bei einem Falle von Anämie. Centralbl. f. Bakt.

Parasitenk. 55, Orig. Abt. 1, p. 19—23, 1 pl. — Verf. beschreibt

ein noch unbekanntes und unbenanntes Protozoon bei einem Falle

schwerer Anämie aus der Umgebung von Leipzig, Die betr.

Patientin soll viel unter Mückenstichen gelitten haben. Bei keinem

der fraglichen Gebilde wurde Pigment beobachtet. Da die Befunde

noch zu gering sind, so läßt sich über Atiologie und system. Stel-

lung des betreffenden Parasiten nichts aussagen. Jedenfalls wären

weitere Forschungen in dieser Hinsicht durchaus wünchenswert.

Hoffmann. Die Ätiologie der Schlafkrankheit. Arch. f.

Schiffs- und Tropenhyg. Bd. 14, H. 20, p. 6493—650. — Verf. be-

richtet in einem Vortrage auf dem deutschen Kolonialkongreß

über die Ätiologie der Schlafkrankheit. Wesentlich referierend.

von Hofsten, N. und Bock, S. Zoologische Ergebnisse der

schwedischen Expedition nach Spitzbergen 1908, unter Leitung

des Prof. G. de Geer. Eine Untersuchung über die Bodenfauna

des Eisfjords nebst einer Übersicht über das Plankton und die

hydrographischen Verhältnisse. Svensk. Vet.-Ak. Handl., Bd. 45,

Nr. 9, 64 pp., 1 Karte, 28 figs.

Vide Broch, H.

Holmes, J. D. The treatment (and cure) of Surra in horses

by means of arsenie and its derivatives. Parasitol. Cambridge, 3,

p. 73—107, 288—306, pls. XXII—XXVII; Journ. tr.p. vet. sci.

Caleutta, 5, p. 145. — Verf. berichtet über 32 Fälle von erfolg-

reicher Heilung bei mit Surra infizierten Pferden durch Arsen-

präparate.

Honigmann, H., Beiträge zur Kenntnis des Süßwasserplank-

tons. Magdeburg Abh. Mus. Natk., 2, 1909, p. 49—87, pl. LI.

*Hopkinson, J. The fresh-water Rhizopoda and Heliozoa

of County Wicklow. Irish Nat. Dublin, 19, p. 1—4.

Hopkinson, J. vide Cash, J.

Horand, R. vide Bordier, H.

*Horta, A. et Paredes, €. Sur l’existence en Portugal de la

psorospermose du porc. Lisbonne Bull. Soc. Portug. sci. nat., 4,

Bi.

Huxley, J. S. (1). On Ganymedes anaspidis (nov. gen., n. Sp.),

a gregarine from the digestive tract of Anaspides tasmaniqe

(Thompson). Quart. Journ. Mier. Sci. London, 55, p. 155—175,

pl. XI. — Verf. beschreibt aus der Leber von Anaspides tasmanıae

die neue Gregarine Ganymedes anaspidis, die als neue Fa-

234 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

milie Ganymedidae zwischen Monocystiden und Polycystiden ge-

stellt wird. Charakterisiert ist die Form durch ein ‚extensible

organ‘ am Vorderende, das zur Fixierung an den Wirtszellen

dient. Ferner ist vorhanden ‚a special cup-like structure“ am

Hinterende, die zur Kopulation mit dient. Es tritt eventuell eine

vollkommene Plasmaverschmelzung ein mit Existenz einer zweiten

trophischen Phase. Der Nucleolus liegt in dieser Phase auf der

einen Seite des Kernes, teilweise im Kontakt mit dem Plasma.

Um die Copulae herum scheidet sich eine Cystenmembran ab

mit deutlichem Kleinerwerden. Die weitere Entwicklung voll-

zieht sich außerhalb des Körpers von Anaspides.

— (2). Note on Shepheardella taeniformis Siddall. Zool.

Anz. Leipzig, 36, p. 124—125. — Verf. berichtet einiges über obige

Art hinsichtlich der Farbe, Größe und Agamogonie.

*Jeilio, B. Sulla flora batterica e sulla fauna protozoica nell’

intestino di alcuni pesci teleostei d’acqua dolce. Ann. Jgiene

sper. Torino. N..S. 20, p. 199—210.

Jmmisch, K. Die Beschälseuche der Pferde. Leipzig, Verh.

Ges. Deutsch. Natf., 81, 2, II, (1909), p. 311—313. — Verf. be-

richtet über die mit Miessner gemeinsam gemachten Unter-

suchungen über die Beschälseuche der Pferde in Ostpreußen.

Klinische Befunde und Ätiologie gelangen zum Vortrag. Die

Frage der Identität der Beschälseuche mit der Dourine erscheint

noch nicht genügend geklärt. Einige biologische Versuche werden

kurz gestreift.

Jshikawa, H. Über Differenzierungserscheinung im Amöben-

protoplasma unter dem Einfluß von Narkose und Erstickung.

(Internat. Physiol.-Kongr.) Centralbl. Physiol., 24, p. 806. —

Verf. hat durch Alkalien und Narcotica eine Sonderung des Ecto-und

Entoplasmas bei Amöben erzielt und hält diese Erscheinung für

eine allg. Reaktion des Plasmas gegen lähmende Einflüsse.

Jaffe, J. Über trypanozide Eigenschaften der Organe und

ihrer Extrakte. Oentralbl. Bakt. Abt. 1, 55, Orig., p. 519—527. —

Verf. weist eine starke hämolytische Wirkung der trypanoziden

Alkoholextrakte nach, ferner Ätherausfällung mit gleicher Wir-

kung. Die Annahme, daß die trypanoziden Substanzen mit der

Wirkung der Arsenikalien auf die Trypanosomen in Zusammen-

hang stehen, hat sich nicht bestätigt.

Janicki, €. Untersuchungen an parasitischen Flagellaten.

I. Teil. Lophomonas blattarum Stein. L. striata Bütschli. Zeitschr.

f. wiss. Zool., 95, p. 243—315, pls. VI—IX und 16 Textfiguren. —

Verf. berichtet über Organisation und allgemeine Lebenserschei-

nungen zweier Arten von Lophomonas aus dem Enddarm von

Periplaneta orientalis. Bei L. blattarum wird die Nahrungsaufnahme

eingehend behandelt, ferner die cytologischen Verhältnisse be-

treffend das Plasma, den Kelch, Achsenstab und Kern. Der Geißel-

schopf ist am inneren Kelchrand, oberhalb des Kernes befestigt;

für jede Geißel dient ein Diplosom zur Insertion. Beziehungen

Publikationen und Referate. 235

der Basalkörner zum Kern konnten nicht konstatiert werden,

wohl aber zum Achsenstab. Die Bedeutung des Collare bleibt

unklar. Eingehend wird der Kern und die Kernteilung behandelt,

zunächst bei den einkernigen Formen. Auch hier sind Centriole

wahrnehmbar. Weiter handelt ein Kapitel über Vergleichendes

über die Kernteilung, über die Kernvermehrung bei zwei- und

mehrkernigen Formen und über die Encystierung. — Desgleichen

werden Bau- und allgemeine Lebenserscheinungen bei L. striata

Bütschli beschrieben und u. a. auch auf das Vorkommen poly-

energider Kerne hingewiesen. Betreffs der Produkte der Oyste und

der Sexualität bleibt noch Verschiedenes offen. Die Lophomonaden

werden vorläufig als Flagellaten und zu den Trichonymphiden

gehörig bezeichnet. R

Jemma, R. (1). Über Spontaninfektion durch Leish-

man?’sche Parasiten bei Hunden. Centralbl. Bakt., Abt. 1, 56,

Orig., p. 40—41. — Verf. konstatiert, daß Spontaninfektion durch

Leishman’sche Parasiten bei zirka 170 beobachteten Hunden in

Palermo niemals angetroffen wurde (gegen Basile).

— (2). Über infantile Milzanaemie durch Leishman’sche

Parasiten (Kala-azar ?). Deutsch. Arch. klin. Med., 100, p. 465

— 486. — Verf. versteht unter infantiler Milzanaemie eine spezielle

Krankheitsform, die durch Leishmansche Parasiten ver-

ursacht wird, während die irrtümlich (Pianese) als Milzanaemie

bezeichneten Formen, die sekundär zu Syphilis, Malaria, Tuberku-

lose usw. sind, nicht als Milzanaemie angegeben werden dürfen,

sondern als Splenomegalie mit Anämie. — Es werden 6 neue

Fälle beschrieben. Obige Krankheit als infantilen Kala-Azar be-

zeichnen zu wollen, ist trotz der Verwandtschaft der Erreger

nicht angängig. Vorwiegend medizinisch.

Jemma, R. Di Cristina, @. u. Cannata, S. Experimentelle

Infektion mit Leishmania infantum bei Hunden. Centralbl. Bakt.,

Abt.1, 57, Orig., p. 60—68. — Die Verf. haben Infektionsversuche

angestellt mit intra vitam extrahiertem Milzblut an Anaemia

leidender Rinder und mit Milz-Leberpulpa- und Knochenmark-

emulsion eines daran gestorbenen Rindes, ferner mit dem gleichen

Material an infizierten Hunden. Infektionswege waren: der

Blutweg, der intraperitoneale, subkutane, dermale und intra-

lineale. Die Leishmanschen Parasiten wurden nur im Rücken-

mark gefunden. Nicht alle infizierten Hunde gehen ein. Ein

erkranktes Tier wird kachektisch, geht an Körpergewicht zurück,

hat leichte Temperaturschwankungen und Alterationen der Blut-

formel. Als erstes Kennzeichen tritt progressive Abmagerung auf.

Die Infektion des Hundes scheint analog zu der des Menschen

zu verlaufen. Die histologischen Alterationen der verschiedenen

Organe sind verschieden, im allgemeinen herrschen die degenera-

tiven Erscheinungen und die der endothelialen Proliferation vor.

Die Invasion und Reaktion der verschiedenen Organe bleibt

noch festzustellen.

236 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Jennings, H. S. (1). Experiments on the Effect of Conjugation

on the Life-History in Paramaecium. (Amer. Soc. Zool.) Science

N.S. 31, p. 466—467. Verf. findet keine ‚rejuvenation‘ nach

der Konjugation.

— (2). What conditions induce conjugation in Paramaecium ?

Journ. Exper. Zool. Philadelphia Pa., 9, p. 2793—300, 4 text-figs

and 2 tables. — Verf. hat konstatiert, daß bei Paramaecien die

Konjugationsperioden unter gleichen Bedingungen bei verschie-

denen Rassen verschieden häufig auftreten und unter Umständen

überhaupt keine Konjugation beobachtet wird. Die äußeren Be-

dingungen sind je.nach den Rassen verschieden. Eine senile De-

generation als Ursache wird abgelehnt.

— (3). Heredity, variation and evolution in Protozoa.

2. Heredity and variation of size and form in Paramaecium, with

studies of growth, environmental action and selection. Phila-

delphia Pa., Proc. Amer. Phil. Soc., 47, (1908) 1909, p. 3933—546,

text-figs., tables diagr.

— (4). Experimental evidence on the effectiveness of selec-

tion. Amer. Nat. Lancaster Pa., 44, p. 136—145. — Allgemeines

über Selection in einem Vortrage.

— (5). Das Verhalten der niederen Organismen unter

natürlichen und experimentellen Bedingungen. Autor. deutsche

Übers. von E. Mangold. Leipzig u. Berlin (B. G. Teubner), XIII

+578 pp. (Vide Zool. Rec., 1905, Protozoa No. 197). — Referat

folgt eventuell im nächsten Bericht.

Jennings, H.S. and Hargitt, G.T. Characteristies of the

Diverse Races of Paramaecium. (Amer. Soc. Zool.) Science N. S.

31, p. 472. — Unterscheidung zweier Rassen von Paramaecium,

die eine mit zwei Micronuclei ist kleiner als die mit nur einem

Micronucleus. Die kleinere Rasse entspricht ?. aurelia, die größere

P. caudatum. Ausnahmen sind selten. Bis zu 3 Jahren Konstanz

der Rassen. Konjugation unter den versch. Rassen findet nicht statt.

Jentzsch, F. Ein elektrischer Heizapparat für mikroskopische

Beobachtungen. Zeitschr. wiss. Mikr., 27, p. 259—264, 5 figs. —

Verf. beschreibt und bildet einen elektr. Heizapparat ab, der wohl

besonders in der Mineralogie Verwendung finden wird. Hergestellt

von der Firma Leitz.

Jollos, V. (1). Bau und Vermehrung von Trypanoplasma

helicis. Arch. f. Protistenk., 21, p. 103—110, pl. VI. — Verf. be-

richtigt die Angaben Friedrich’s über Bau und Vermehrung

von Trypanoplasma helicis. Betont wird die Formenmannig-

faltigkeit. Der Bau des Kernes entspricht im wesentlichen dem

der Trypanosomenkerne. Caryosom und Centriol sind vorhanden.

Der Blepharoplast besitzt starke Färbbarkeit. Der Bau des Be-

wegungsapparates sowie Kernteilung und Blepharoplastteilung

wird beschrieben. Die Kernnatur des Blepharoplasten steht nun-

mehr vollkommen fest. Betrefis der system. Stellung der Trypano-

plasmen siehe Hartmann u. Jollos 1910.

Publikationen und Referate. 231

— (2). Dinoflagellatenstudien. Arch. f. Protistenk., 19,

p. 178—206, pls. —10. — Verf. gibt zunächst eine kurze histo-

rische Übersicht der bisherigen Resultate der Dinoflagellaten-

forschung. Daran schließt sich die Mitteilung über das Kultur-

verfahren von Gymnodinium fucorum nach Küster sowohl in

künstlichem Meerwasser wie auch auf Agar mit Fucusextrakt,

ferner über die Methodik bei der Fixierung. — Zuerst wird Gymno-

dinium fucorum behandelt. Die freien Flagellatenformen sind be-

reits von Küster beschrieben worden. Die Encystierung dieser

Formen wird auf den Agarplatten willkürlich hervorgerufen. Es

werden Fortpflanzungs- und Schutzceysten gebildet. Bei Zusatz

von Wasser können nach einiger Zeit wieder die freien Flagellaten-

formen entstehen. Es werden nun Protoplasma und Kern der

eneystierten Formen eingehend besprochen. Der Kern ist ein Caryo-

somkern mit Centriol und stark entwickeltem Außenchromatin.

Bei der Kernteilung ist eine deutliche Centrodesmose wahrnehm-

bar. Das Caryosom kann sich in seltenen Fällen auf abgekürzte

Weise teilen. Meistens streckt es sich stark in die Länge. Die

Tochterkerne bleiben oft noch durch eine lange Centrodesmose

miteinander verbunden. Die Durchschnürung von Caryosom und

Außenkern erfolgt unabhängig von einander, d.h. so, „daß bald

der eine, bald der andere Teil etwas voraus ist“. Das Centriol

scheint fast immer doppelt vorzukommen, derartig daß die Tochter-

centriolen sehr nahe beieinander liegen. Die Durchschnürung des

Plasmas ist schon fast vollzogen mitunter, während die Oentro-

desmose noch besteht. Die Tochterzellen liegen in einer gemein-

samen Cystenmembran. Die Geißelbildung erfolgt meist erst

nach Wasserzusatz. Auch Vierteilung innerhalb der Cyste kann

vorkommen. Beide Geißeln entstehen vom Kern aus. Die seit-

liche Geißel entsteht durch heteropole Caryosomteilung. Das

„Basalkorn“ teilt sich nochmals, und die entstehende Centro-

desmose wird zur Geißelfibrille.. Die hintere Geißel entsteht

auch aus dem Kern ohne ein sich nochmals teilendes Basalkorn.

Nach der Ausbildung des lokomotorischen Apparates löst sich

die Cystenmembran, und die jungen Flagellaten schwärmen aus.

Cysten und bewegliche Formen wechselten miteinander ab, bis

schließlich Schwärmerbildung nach monatelanger Beobachtung

zufällig eintrat. Mit den kleinen aufgetretenen Flagellaten wurden

Kulturplatten geimpft und nach zirka 3 Wochen traten wieder

typische Gymnodinien auf. Cytologisch konnte die Entstehung

der Schwärmer nicht verfolgt werden. Die Schwärmer sind etwa

5 ulang. Der Kern enthält ein großes Caryosom und ein Centriol.

Die Geißelentstehung ist die gleiche wie bei den großen Formen.

Der Kern teilt sich mitotisch mit Spindelbildung und Äquatorial-

platte. Die Centrodesmose bleibt längere Zeit erhalten. Die

Teilung ist als Längsteilung zu bezeichnen. Da von den Schwärmern

zu den gewöhnlichen Gymnodinien ein kontinuierlicher Übergang

besteht, so wird wohl der Sexualakt vor der Schwärmerbildung

238 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

erfolgt sein. Kopulation selbst wurde nicht beobachtet. — In den

Untersuchungen über die Kernverhältnisse bei den marinen

Ceratiumarten (CO. tripos, fusus und furca) kann Verf. die Befunde

von Lauterborn bestätigen und erweitern. Der Kern ent-

hält mehrere Nucleolen und auf den Teilungsstadien auch ein

Centriol mit Centrodesmose. Am besten bezeichnet man das

fragliche Gebilde als „Nucleocentrosom‘“ in allen den Fällen, wo

neben dem kleinen Teilungsorgane im Kern noch echte Nucleolen

vorhanden sind. Der Außenkern zeichnet sich durch Umfang

und Chromatinreichtum aus. Die Geißeln entstehen auf die

prinzipiell gleiche Weise wie bei Gymnodinium. Bei den marinen

Arten gehen die Cysten nicht aus einer Kopulation hervor, sondern

das Plasma tritt aus und umgibt sich mit einer festen Cysten-

membran. In der Cyste spielen sich Kernteilungsvorgänge ab,

die eine Autogamie vermuten lassen. ‚Auf jeden Fall kommt es

wohl bei den Ceratien nach einer langen Reihe vegetativer Ver-

mehrungen mit dem Eintritt der kälteren Jahreszeit zu einem

Sexualakt und daran anschließend zu einem der Überwinterung

dienenden Ruhestadium‘“. — Im allgemeinen Teil betont Verf.

die nahe Verwandtschaft des typischen ‚„massigen‘‘ Kernes von

Ceratium mit dem typisch „bläschenförmigen‘“ von Gymnodinium

und das Vorhandensein von Centriolen bei beiden. Auch bei den

Peridineen läßt sich eine fortschreitende Ausbildung des Kern-

teilungsmodus erkennen. Oxyrrhis gehört wohl auch zu den

Peridineen, und diese lassen sich eventuell von den Crypto-

monadinen ableiten. Auch mit Noctiluca (Cystoflagellaten)

scheinen die Dinoflagellaten verwandt zu sein. Der Unterstamm

des Dinoflagellaten zerfällt in die beiden Ordnungen der

Peridineen und Cystoflagellaten.

Jollos, V. vide Hartmann, M.

Johnston, T. H. u. Cleland, J. B. (1). The Haematozoa of

Australian Reptilia. No.I. Sydney N.S. W. Proc. Linn. Soe.,

35, p. 677-685, pl. XX. — Verf. beschreiben als neu folgende

Arten mit Aufzählung der untersuchten Reptilien: Haemo-

gregarina dendrophidis aus Dendrophis punctulatus Gray, H. sp.

aus Diemenia psammophis var. reticulata Krefft, H. varanicola

aus Varanus varius Shaw und H. hinuliae aus Lygosoma quoyi

Dum. u. Pribr. Figuren unzureichend.

— (2). Ona new Melanin-producing Haematozoon from an

Australian Tortoise. Proc. R. Soc. N. S. Wales, 43, p. 97—103,

12 fieg,, T. 3.

Johnston T. H. vide Cleland, J. B.

Jowett, W. (1). Biliary fever or Malignant Jaundice of the

dog (Canine Piroplasmosis). The drug treatment. Journ. trop.

vet. sci., Calcutta, 5, p. 256—276. — Verf. berichtet über die er-

folgreiche Behandlung des „biliary fever‘“ mit Trypanblau.

*— (2). Note on a cattle Trypanosomiasis of Portuguese East

Africa. Journ. comp. path. ther., Edinburgh, 32, p. 251-271, 5 pls., figs.

Publikationen und Referate. 239

Junius, — Untersuchungen zur Ätiologie des Trachoms.

Zeitschr. Augenheilk., 24, p. 283—410, 5 pls. — Verf. hat Unter-

suchungen über die Ätiologie des Trachoms angestellt. Er gibt

zunächst eine größere histor. Einleitung und verhält sich den

Ergebnissen gegenüber vorläufig abwartend hinsichtlich der Frage

nach der Natur des Erregers.

Kaas, J. Methodes d’immobilisation des Infusoires. Roma,

Mem. Acc. Nuovi Lincei, 27, 1909, p. 253—274. — Verf. hat zur

Lebendbeobachtung, um die Infusorien zu immobilisieren, ver-

schiedene Alkaloide verwendet. Siehe Bericht pro 1909.

Kalb, R. Über eine neue Spirochätenfärbung. Münch. med.

Wochenschr., 57, p. 1393—1394. — Verf. berichtet über eine kurze

diagnostische Spirochätenfärbung mit Eosin-Triacid.

Karwacki, L. u. Szokalski, €. (1). Culture des Spirochetes

d’Obermeier dans l’organisme de la sangsue. C. R. Soc. Biol. Paris,

68, p. 218—230. — Verf. konstatieren, daß Spirochaeta Obermeieri

über 100 Tage in Blutegeln leben kann. Die spirocheticide Wirkung

der eingeführten Antikörper ist sehr gering.

— (2). Mode de division des Spirochetes d’Obermeier dans

Verf. haben Längsteilung bei den Spirochaeta Obermeieri in den

Blutegeln beobachtet; vielleicht kommt auch Querteilung vor.

— (3). Distribution des Spirochetes dans l’organisme de la

Sangsue. (Troisieme Note.) C. R. Soc. Biol., 68, p. 449—450. —

Verf. fanden, daß die Spir. in das Mesenchym und die Drüsen

eindringen, wo wahrscheinlich die Vermehrung stattfindet.

Kasanzeff, W. Zur Kenntnis von Loxodes rostrum. Arch. f.

Protistenk., 20, p. 79—96, pl. VIII u. 4 Textfigg. — Verf. be-

richtet zunächst über seine Kulturversuche mit Lozxodes rostrum.

Es gelang ihm die Züchtung mit gutem Erfolge in einem sog.

Einmachglas mit Leitungswasser, einigen Stückchen Muskelfleisch

(Fuß von Anodonta) und ÖOscillarien. Im allgemeinen sterben die

Loxodes in Kulturen sehr leicht ab. Die Färbung mit Methylgrün-

Säurefuchsin soll ständig das Resultat haben: Micronuclei grün,

Macronuclei rot, besonders stark der Binnenkörper. Verf. hat be-

sonders den Kernapparat untersucht. Der Macronucleus enthält

in einem Netzwerk der Kugelschale aufgehängt einen Binnen-

. körper. Vom Mieronucleus gelangten einige Spindeln zur Beob-

achtung. Die Zahl der Ma. und Mi. wechselt, gewöhnlich sind je

2 vorhanden. Die Ma. werden aus den Mi. gebildet, da Übergangs-

stadien nicht nur in der Struktur, sondern auch der Färbbarkeit

bestehen. Die Maximale beobachtete Zahl von Ma. beträgt 32

bei 27 Mi. Es werden noch verschiedene Einzelheiten betreffs der

Anordnung und Zahl der Kerne mitgeteilt. Auch Konjugation

wurde beobachtet mit konstanter Zahl und Beschaffenheit der

Ma. Auch hier folgen weitere Einzelheiten, doch sind die Beob-

achtungen zu unvollständig, als daß man ein klares Bild ge-

winnen könnte.

240 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Kaufmann, W. Über die Grenzen optischer Abbildung.

Schrift. phys. ökon. Ges. Königsberg, 51, p. 31—32. — Verf.

spricht in einem Vortrage über die Grenze des Auflösungsvermögens

beim Mikroskop, die jetzt bereits erreicht ist. Auch über das

Ultramikroskop wird berichtet.

Kellermann, K. F. Flagella Staining of Pseudomonas radiei-

cola B. Moore. (Soc. Amer. Bacter.) Science, N. 8. 31, p. 554. —

Methodisches über Geißelfärbung bei Pseudomonas radieicola.

Kerandel, J. Un cas de trypanosomiase chez un mediein

(auto-observation). Bull. soc. path. exot. Paris, 3, p. 642—662. —

Verf. gibt eine eingehende Darstellung seiner eigenen Krankheits-

geschichte über den Verlauf der Schlafkrankheit, die er sich im

Kongo zugezogen hatte und von der er vollständig geheilt wurde.

Die Wirkung des Atoxyls ist nur vorübergehend; „emetique‘ in

intravenösen Injektionen hat volle Heilwirkung gezeigt.

Kerandel, J. vide Mesnil, F.

*Kerr, T. S. A Case of Malignant Malaria, with an Unusual

Development of Crescents. Trans. Soc. trop. Med. Hyg., 3,

p. 399 —402.

Khainsky, A. (1). Zur Morphologie und Physiologie einiger

Infusorien (Paramaecium caudatum) auf Grund einer neuen histo-

logischen Methode. Arch. f. Protistenk., 21, p. 1—60, pls. I—III,

2 Textfigg. — Verf. benutzt eine neue Methode, die in der An-

wendung des Broms und Chlors mit verschiedenen weiteren Arten

der Bearbeitung auf die histologische Technik besteht. Bei starker

und rascher Bromeinwirkung wird am besten die Struktur der

Pellicula und des Ectoplasmas konserviert. Die Paramaecien

wurden fixiert in einer Lösung Brom+Bromwasser, und zwar

10—12 Stunden. Das Auswaschen in aqua dest. wurde in kleinen

Probiergläsern vorgenommen. Bromsilberniederschläge waren be-

sonders am Kern und an den Nahrungsvakuolen vorhanden. Für

die Erhaltung der Cilien und Trichocysten wurden Modifikationen

vorgenommen, ebenso für Präparate in Schnitten. Zum Färben

wurden meist komplizierte Methoden benutzt, je nach den be-

sonderen Zwecken. Zunächst werden Pellicula und Cilien be-

schrieben. Die vorherrschende Form der Feldchen auf der Pellicula

ist die hexagonale. Das Innere eines jeden Feldchens bildet eine

Vertiefung, in deren Mitte die Cilie entspringt. Bei Brombehand-

lung gehen die Cilien zugrunde, die Trichocysten bleiben nicht

ausgeschnellt erhalten, und man erhält ein vollständiges Bild von

ihrer Lage. Die Angabe von Schuberg betreffs der Differen-

zierung der Cilien in zwei Abschnitte wird bestätigt. Die Pellicula

ist aufs engste kontinuierlich mit den Cilien verbunden; diese

entspringen in der Oberschicht des Corticalplasmas aus einem

Basalkorn, von dem nach innen zu eine feine Fibrille abgeht. Es

wird auf die Verwandtschaft der Cilien mit Flagellatengeißeln

und mit den Cilien der Flimmerepithelzellen hingewiesen. Die

Basalkörner werden als rein mechanische Stützpunkte für die

Publikationen und Referate. 241

Cilien bei ihrer Bewegung aufgefaßt. Das ‚Eetoplasma zerfällt in

eine undeutlich alveoläre ‚‚Subpelliculare‘‘ und in das Cortical-

plasma. Die Trichoeysten verbreiten sich in regelmäßigen Längs-

reihen; es wird ein komplizierter Prozeß von Strukturverände-

rungen der Trichocysten in Verbindung mit chemischen Um-

wandlungen beschrieben. Die Trichocysten üben auch im normalen

Zustande einen Druck auf die Pellicula aus, ihr Ausschnellen er-

folgt bei starkem Druck. ‚‚Der Ausschnellungsmechanismus der

Trichocysten zeigt, daß die Masse ihres Körpers eine Flüssigkeit

ist, während die Trichocysten vor ihrer Umwandlung eine festere

Konsistenz besitzen.“ Die flüssige Substanz löst sich nicht in

Wasser, und die Trichocysten bleiben daher nach dem Ausschnellen

erhalten. — Die kontraktile Vakuole wurde auf verschiedenen

Tätigkeitsstadien fixiert und ihre histologische Natur auf Schnitten

festgestellt. Sie besitzt keinerlei Öffnung oder Porus nach außen,

sondern die Pellicula bedeckt sie als ununterbrochene Schicht,

die als Einsenkung in einen engen Kanal mit dichtem Boden

übergeht. Unter dem Kanal sammeln sich Flüssigkeitströpfchen,

Bildungsvakuolen, die durch ihren Zusammenfluß die pulsierende

Vakuole bilden, die sich nur durch ein Oberflächenhäutchen vom

umgebenden Plasma abgrenzt. Mit der allmählichen Vergrößerung

der kontraktilen Vakuole und unter der Druckeinwirkung be-

ginnt der Kanal der pulsatorischen Einsenkung sich zu erweitern

und sein Boden wölbt sich vor, die Tiefe des Kanals nimmt ab.

Dann bildet sich auf dem Boden eine horizontale Papilla pulsa-

toria, dann folgt die Entleerung. Die Zahl der Zuführungskanäle

beträgt bei Paramaecien acht. Nach der Systole beginnt der

Prozeß von neuem mit der Diastole. Der Pulsationsprozeß ist

unabhängig vom Chemismus der Zellstoffe, nur die Geschwindig-

keit ist eine Funktion der Temperatur. Einfluß des mechanischen

Druckes auf die kontraktilen Vakuolen, osmotische Erscheinungen:

die Lösungen neutraler Salze retardieren die Pulsfrequenz. Wirkung

von O,H und anderen Gasen und Einfluß hydro- und elektro-

lytischer Prozesse auf die kontraktile Vakuole. Die Hauptfunktion

der kontraktilen Vakuole ist die Ausscheidung des mit Oxydations-

produkten belasteten Wassers und in diesem Sinne eine respira-

torische. — Eine weitere neue Methode beruht auf der Anwendung

neutralisierter Farblösungen für die sog. ‚intracelluläre‘“‘ Vital-

färbung. Am empfindlichsten erwies sich Neutralrotlösung:

1—2 Tropfen 0,01°/, neutralisierter farbloser Neutralrotlösung

in 10 ccm H,O. Beobachtet wurden besonders die Entwicklungs-

perioden der Nahrungsvakuolen. Es findet jedesmal der Eintritt

einer saueren Reaktion statt, die von einem besonderen Ferment,

das in die Nahrungsvakuole gelangt und freie HCl enthält, hervor-

gerufen wird. Einwirkung der Temperatur auf die Nahrungs-

vakuolen und ihre Histologie. ‚Die Entoplasmakörnchen, die

sich vital mit basischen Farbstoffen färben lassen, sind denen in

den Nahrungsvakuolen der zweiten Periode enthaltenen völlig

Archiv es 16

242 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

gleich und sind die ersten Produkte der Assimilationsprozesse

der Nahrungsvakuole“. Sie sind Produkte einer Proteolyse, die

unter der Einwirkung des saueren Ferments verläuft, das eine

gewisse Zeit nach der Ablösung der Nahrungsvakuole vom Schlunde

in ihr auftritt. Der Macronucleus läßt bei den angewendeten

Methoden eine charakteristische Metachromasie und Chromatin-

deformation erkennen, der Micronucleus zeigte keine besonderen

Veränderungen.

— (2). Untersuchungen über Arcellen. (Vorläufige Mit-

teilung.) Arch. f. Protistenk., 21, p. 165—185, pls. XIV u. XV.

— Verf. hat Arcella vulgaris Ehrbg. und mitrata Penard unter-

sucht auf Grund allgemeiner physiologisch-histologischer Methodo-

logie. Die beste Färbung auf Chromidial- und Kernsubstanzen

ergab sich mit Erythrosin-Methylenblau. Zunächst wurde der

Bildungsprozeß der Schale verfolgt. Mittelst Tropäolinfärbung

wurde bei einem jungen Tier ein Schaumhäutchen nachgewiesen.

Die Alveolen nehmen hexagonale Gestalt an, und aus ihrer Ver-

schmelzung kommt die allmähliche Kammerbildung zustande.

Eine Ablagerung brauner Substanzen schiebt die Alveolen gleich-

zeitig mit der Verdickung ihrer Wände auseinander. Die Alveolen-

wände können sich loslösen und aus der Schale herausfallen. Die

Substanz der jungen Schalen enthält wahrscheinlich eine Oxy-

aminosäure, die in alten Schalen ein Eisensalz bildet. Die Gas-

blasen der Arcellen spielen keine physiologische Rolle und sind

dem Organismus schädlich. Bei der Vermehrung der Arcellen

wird der Kernbau beschrieben und die vorhandene Metachromasie.

Die Kernteilungsprozesse können sich direkt und indirekt voll-

ziehen. Bei der direkten Kernteilung vereinigen sich in dem Kern-

raum kleine Körnchen teilweise und bilden oft einen zweiten

Binnenkörper. Dann erfolgt Verlängerung des Kernes und all-

mähliche Ein- und Durchschnürung. Der Binnenkörper kann sich

indess auch durch Zweiteilung vermehren; auch die Körnchen ver-

mehren sich durch Teilung. Der Kernteilungsprozeß geht un-

abhängig von der Jahreszeit zwischen 1 und 5 Uhr nachts vor

sich. Die Kerne vermehren sich durch die direkte Teilung sehr

rasch und relativ einfach. Bei der indirekten Kernteilung gehen

im Binnenkörper Strukturveränderungen vor sich, er wird netz-

förmig. Schließlich besteht kein Kernraum mehr, da das Volumen

des Binnenkörpers ständig zunimmt. Es tritt nun eine regelmäßige

Anordnung des Netzwerkes auf, und allmählich bildet sich die

Spindelfigur heraus. Die Spindelfasern sind durch feine Quer-

streifen verbunden. Die weiteren Stadien wurden nicht verfolgt.

Vom physikalischen Standpunkte soll kein prinzipieller Unter-

schied zwischen beiden Kernteilungen bestehen. Bei der Auf-

lösung der ausgefallenen Substanzen tritt der Hydrolyse ent-

sprechend Spindelbildung auf. Die Zweiteilung soll nach dem

Katenoidgesetze erfolgen, wobei die inneren Druckkräfte zwei-

zentrisch an den beiden Polen wirken. Die direkte Kernteilung

Publikationen und Referate. 243

hat eine sehr intensive Arcellenteilung zur Folge, die indirekte ist

mit der Konjugation verbunden. ‚Die Chromidiogamie (gegen

Swarzewsky u. Elpatiewsky) beruht auf ganz unbegründeten

Voraussetzungen über die Bedeutung der Chromidialsubstanz der

Arcellen.“ Nachdem sich die Arcellen vereinigt haben, tritt

keine Kernverschmelzung ein, die Kerne teilen sich nur in-

direkt. ‚‚Die konjugierten Arcellen bilden ein neues drittes Indi-

viduum in der Weise, daß das Plasma beider herausfließt, wobei

wahrscheinlich je ein Kern aus beiden Konjuganten in

das neue Individuum eintritt.“ Die neugebildete Arcella bleibt

nun längere Zeit mit den alten Tieren zusammen. Auch Polygamie

kann eintreten. Von einer Konjugation darf man bei den Arcellen

nur dann sprechen, wenn gleichzeitig Vermehrung die Folge ist.

Weitere Untersuchungen hierüber sind dringend nötig. — Die

vitale Färbung und die Verdauungsprozese. Die Chromidial-

substanz steht in engster Beziehung zur Ernährung und nimmt

am Verdauungsprozeß teil. Beim Hungern und bei Sauerstoff-

einwirkung wird die Chromidialsubstanz einer chemischen und

morphologischen Metamorphose unterworfen, die vollständige

Umwandlung, Zerfall und Verschwinden der Chromidialstoffe zur

Folge hat. Hinsichtlich der angestellten Experimente und Fär-

bungen unterscheidet sich die Chromidialsubstanz bei den Arcellen

„sehr wesentlich und prinzipiell“ vom Kern und Plasma.

— (3). Physiologische Untersuchungen über Paramaecium

caudatum. Biol. Centralbl. Leipzig, 30, p. 267—278. — Verf. hat

Untersuchungen angestellt über das Hungern und die Wirkung des

reinen Sauerstoffs bei Paramaecien. Die Methodik wird als physi-

kalisch-histologische bezeichnet. Die auftretenden Struktur-

veränderungen in den Hungerperioden werden beschrieben. Die

Oxydationsprozesse entwickeln sich mit ungleicher Geschwindig-

keit. Die morphologischen Veränderungen gehen hauptsächlich

im Endoplasma vor sich parallel mit der Entwicklung der Vakuoli-

sation. Die Stoffe des Endoplasmas und des Kernes sind ver-

schieden, erstere weisen rasche Oxydation auf. Der Chemismus

des Kernes ist mit Assimilationsprozessen eng verbunden. Der

im Macronucleus produzierte Kernsaft wird für Dissimilations-

prozesse gebraucht, sammelt sich beim Hungern an und bedingt

die komplizierte Metamorphose des Macronucleus. Der Teilungs-

mechanismus des Ma. soll auf einer zweizentrischen Aufquellung

beruhen.

Kisskalt, K. u. Hartmann, M. Praktikum der Bakteriologie

und Protozoologie. 2. erweiterte Aufl. T. 2. Protozoologie von

M. Hartmann, Jena (G. Fischer), VI + 106 pp. — Das Praktikum

enthält in der vermehrten und verbesserten Auflage nach einer

allgemeinen Übersicht über Technik, Bau und Entwicklung der

Protozoen folgende spezielle Kapitel: Amoebina: A. lacertae,

diploidea, Ent. buccalis, coli, tetragena, histolytica: Myxosporidia:

Sphaeromyza sabrazesi; Sarcosporidia: Sarcocystis tenella; Fla-

16*

244 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

gellata: Bodo lacertae, Trichomastix lacertae, T’richomonas lacertae

u. muris, Lamblia (n. Octomitus) muris, Trypanosoma lewist, brucei,

Haemoproteus noctuae, Leucocytozoon ziemanni, Plasmodium vivaz,

malariae, immaculatum, Proteosoma praecox, Babesia canis; Spiro-

chaeta: Spir. balbianii, buccalis, dentium, pallida, refringens;

Coccidia: Eimeria stiedae, Gregarinida: Monocystis sp. Orliata:

Opalina ranarum, Balantidium entozoon, coli, Nyctotherus cordi-

formis. — Das Praktikum dient zur Einführung in die Protisten-

kunde besonders der parasitischen Formen, während die frei-

lebenden wenig berücksichtigt sind. Das Hauptgewicht ist auf

gute technische Anweisungen und die wichtigsten eytologischen

Fragen gelegt, die Abbildungen sind teils gute Originale, teils

ausgewählte Darstellungen anderer Autoren. Besonders dankens-

wert ist das jedem Kapitel angefügte Literaturverzeichnis und ein

eingehendes Sachregister.

Kleine, F. Trypanosomenbefunde am Tanganyika und andere

Beobachtungen. Deutsche Med. Wochenschr. Berlin, 36, p. 1400

— 1403. — Verf. beschreibt ein noch nicht genauer untersuchtes

Rindertrypanosoma vom Tanganyika. Ziegen und Schafe sind

für eine Infektion nicht empfänglich. Ferner wird als neu be-

zeichnet T’rypanosoma caprae, das für Ziegen spezifisch ist. „Je

mehr es sich herausstellt, daß es für einzelne Säugetierarten spezi-

fische Trypanosomen gibt, desto mehr verliert die Stellung des

Trypanosoma gambiense mit seiner unter natürlichen Bedingungen

nur auf den Menschen beschränkten Pathogenität ihre Besonder-

heit.‘“ Es gibt keine angeborenen Crithidien in den Glossinen.

Das Trypanosoma grayi wurde gefunden in Fliegen, die an jungen

Krokodilen gesogen hatten. Versuche hierüber sind noch nicht

zum Abschluß gelangt. Erwähnt werden einige Nebenbefunde

über andere Trypanosomen, Piroplasmen und Haemogregarinen.

Der Versuch über den Einfluß von Säugetierblut auf Larven-

ablage usw. wurde wiederholt. Eine Zusammenfassung der Be-

funde mit Abbildungen usw. erfolgt an anderer Stelle.

Knuth, P. Über die in deutschen Rindern gefundenen Trypa-

nosomen. Berlin. tierärztl. Wochenschr., Nr. 42, p. 4-8. —

Von 31 erwachsenen Rindern waren 67,7%, von 7 Jungrindern

14,6% und von 3 Saugkälbern 0% mit Trypanosomen infiziert.

Der Überträger tritt vielleicht nicht im Stalle auf und nur in

wärmerer Jahreszeit. Als Überträger kommen in Betracht Sto-

moxys calcitrans, Tabanus, Haematopota und eine Hippoboscide.

Bestätigungen des Vorkommens von Tryp. durch die Blutbouillon-

methode. 20 an Maul- und Klauenseuche leidende Rinder hatten

keine Trypanosomen.

Knuth, P., Rauchbaar, 6. u. Morgenstern, P. Nachweis von

Trypanosomen beim Rinde im Kreise Oberwesterwald mittelst

Züchtung in Blut-Bouillon. Vorläuf. Mitteilung. Berliner Tier-

ärztl. Wochenschr., Nr. 27, p. 1—3. — Es hat sich ergeben, daß

von 25 Rindern nicht weniger wie 7 mit Trypanosomen infiziert

Publikationen und Referate. 245

waren. In den Kulturröhrchen fanden sich zahlreiche Entwick-

lungsformen und Agglomerationen von Trypanosomen. Das

fragl. Trypanosoma gehört zum Typus Tr. theileri und ist als

Tr. franki bezeichnet worden.

Knuth, P. u. Rauchbaar, G. (1). Zum Vorkommen von

Trypanosomen bei Rindern in Deutschland. 2. vorläuf. Mitteil.

Berliner Tierärztl. Wochenschr., Nr. 31, p. 13. — Die Prüfung

von 16 Milchkühen, einem Zuchtbullen und zwei Kälbern ver-

schiedener Rassen aus allen Teilen Deutschlands ergab, daß von

den 17 erwachsenen Tieren 10 mit Trypanosomen infiziert waren,

während die übrigen und die beiden Kälber frei davon waren.

— (2). Weitere Nachforschungen nach Trypanosomen beim

Rinde im Kreise Oberwesterwald nebst einem Beitrag zur Kenntnis

der in deutschen Stechfliegen (Spezies: Tabanus und Haemato-

pota) parasitierenden Flagellaten. Zeitschr. f. Infektionskrankh.,

parasit. Krankh. Hygien. Haustiere, 8, p. 140—154, pls. X u. XI.

— „Das vonFrank festgestellte Vorkommen von Trypanosomen

beim Rinde, welchen Frosch den Namen Trypanosoma franki

zu geben vorgeschlagen hat, ist bis jetzt der einzige Fall dieser

Art in Deutschland geblieben.“ — Nachweis der Trypanosomen.

Große Widerstandsfähigkeit des Tr. theileri u. Tr. franki in blutigem

Bindegewebssaft. Bis jetzt ist nur Übertragung von Rind zu

Rind gelungen; Spezifität der Trypanosomen für bestimmte Tier-

arten. Pathogener Befund nach Morgenstern bei dem einen

Fall in Deutschland. Methoden zum Aufsuchen der Trypanosomen.

Bedeutung der Stechfliegen in andern Fällen als Überträger. —

Vorkommen von Crithidia-Formen in deutschen Stech-

fliegen. Methode der Fliegenuntersuchung. — Nachtrag. Siehe

Knuth, Rauchbaar u. Morgenstern. Als Überträger kommen

eventuell in Betracht: Fliegen, Mücken, Zecken, Flöhe, Läuse.

Köhler, A. Über die Verwendung des Quecksilberlichtes für

mikroskopische Arbeiten. Zeitschr. wiss. Mikr., 27, p. 329—335,

1 Fig. — Verf. berichtet über eine neue monochromatische Queck-

silberlichtlampe, die gut beim Mikroskopieren zu verwenden ist.

Kofoid, Ch. A. A revision of the genus Ceratocorys, based on

skeletal morphology. Berkeley Calif. Univ. Publ. Zool., 6, p. 177

— 187. — Verf. berichtet über das Genus Ceratocorys und geht

eingehend auf die Morphologie des Skelettes ein. Als neu wird

beschrieben C. magna.

Kohl-Yakimoff, N. vide Yakimoff, V. L.

Koidzumi, M. On the Development of Haemogregarina sp.

Parasitic in Common Japanese Tortoise, Olemmys japonicus.

Arch. f. Protistenk., 18, H. 3, p. 260—274, pl. XVI. — Verf.

beschreibt einzelne Entwicklungsstadien einer Haemogregarina sp.

aus Clemmys japonicus, frühe Stadien, asexuelle Fortpflanzung

oder Schizogonie, ‚wurmförmiger Körper‘ und seine Entwicklung.

Eine angebliche leucocytozoale Infektion gehört zu den Haemo-

246 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

gregarinen. Hinsichtlich des Entwicklungscyklus der Haemo-

gregarinen siehe Reichenow.

Kolacev, A. Über den Bau des Flimmerapparates. Arch.

mikr. Anat., 76, p. 349—372, 1 pl., 2 Figg. — Verf. hat u. a. den

Flimmerapparat von Opalina ranarum untersucht. Die Basal-

körner liegen unter der Caticula in den Wänden der Protoplasma-

oberfläche. Entsprechend den Flimmerhaaren erstrecken sich ins

Entoplasma Fibrillen, die in den Wandungen des grobwabigen

Kortikalplasmas verlaufen. Die Fibrillen ziehen in Windungen

zwischen den Kernen und besonderen sog. „Inhaltskörpern‘“,

infolgedessen sie auf einem Schnitt nicht immer in ganzer Aus-

dehnung ae, werden können.

Korssak, D. W. vide Yakimoff, V. L.

Krause, = Über das Auftreten von extramembranösem

Plasma und Gallerthüllen bei Ceratium hirundinella O.F. Müller.

Internat. Revue Hydrobiol. Leipzig, 3, p. 181—186. — Verf.

beschreibt 3 Arten von extramembranösem Plasma bei Ceratium

hirundinella und sucht physiologisch dieses Vorkommen zu er-

klären. Eventuell spielt bei Anheftungen auf Melosira-Fäden ein

fakultativer Parasitismus mit. Das Plankton kann oft durch

Gallertmassen verklebt sein.

Kruse, W. Allgemeine Mikrobiologie. Die Lehre vom Stoff-

und Kraftwechsel der Kleinwesen. Für Ärzte und Naturforscher

dargestellt. Leipzig (F. C. W. Vogel), XV + 1184 pp.

Kuenen, —. Die Atiologie und Diagnose der Amoebiasis.

Janus Leyde, 14, 1909, p. 542—569, 629—643. — Verf. berichtet

in einem Vortrag über Ätiologie, Diagnose und Therapie der

Amoebiasis.

Kunstler, J. Formations fibrillaires chez le C'hilomonas

paramaecium Ehrbg. Paris, C. R. Soc. Biol., 69, p. 200 u. 201.

— Verf. teilt einiges über fibrilläre Bildungen bei Chilomonas

paramaecium mit.

Laaeckmann, H. (1). Zur Kenntnis der heterotrichen Infu-

soriengattung Folliculina Lamarck. Deutsche Südpolarexpedition

1901—1903, Bd. 12, H. 1; Berlin (G. Reimer), p. 77—89, pls. XIII

u. XIV. — Verf. beschreibt als neu: Folliculina melitta (Hülse

und Weichkörper). Die Frage nach dem Vorhandensein von

Micronucleen ist noch strittig. Vorkommen bei der Gauß-Station

auf Hydroiden (Sertularella) festsitzend. Ferner wird beschrieben

F. telesto in großen Mengen auf Korallenstöcken. Über F. ampulla

O. F. Müller folgen auch einige Beobachtungen.

— (2). Die Tintinnodeen der deutschen Südpolar-Expedition

1901—1903. Deutsche Südpolar-Expedition 1901—1903, Bd. 11,

H. 4; Berlin (G. Reimer), p. 341—496, pls. XXXIII—L, 1 Karte.

— Verf. beschreibt aus der Antarktis zahlreiche neue Tintinnen:

flava, cristallina, drygalskii Laackm., nobilis Laackm., calyei-

formis Laackm., convallaria, affinis, parva Laackm., kerguelensis;

Publikationen und Referate. 247

ferner 3 Coxliella-Arten, 4 von Leprotintinnus und Tintinnus

acuminatoides n. sp. var. secata n. var., T. costatus n. sp. und

T. quinquealatus Laackm., Codonella morchella Cleve. — Es folgt

ein Kapitel über zeitliches und quantitatives Auftreten der Arten.

Im November und Dezember ist hier ein Minimum vorhanden,

in der zweiten Hälfte des März dann ein Maximum. Beziehungen

der antarktischen Tintinnenfauna zur arktischen und Warm-

wasserfauna. — II. Tintinnodeen aus dem Indischen und Atlan-

tischen Ozean mit Beschreibung der Arten und neuen Varietäten.

Neue Arten sind Undella monocollaria, tricollaria, hemisphaerica

und feligera.

Lacava, F. vide Gabbi, U.

Lafont, A. Sur la presence d’un Leptomonas, parasite de la

classe des Flagelles, dans le latex de trois Euphorbiacees. Ann.

Inst. Pasteur, Paris, 24, p. 205—219, 7 Textfigg. — Verf. gibt

eine ausführliche Beschreibung der Zeptomonas Davidi aus 3 Euphor-

biaceen. Impfversuche auf kleine Tiere verliefen negativ. Die

Wirkung der Leptomonas auf die infizierten Pflanzen ist deutlich

pathogen; es wird für diese Pflanzenkrankheit der Name ‚‚Flagel-

lose‘‘ vorgeschlagen. Die geographische Verbreitung wird ein-

gehend besprochen. (Nach Donovan, 1909, sollte obige Form

Phytomonas heißen.) Als Überträger kommen vielleicht Hemi-

pteren in Betracht (Nysius euphorbiae). Weitere Studien bleiben

abzuwarten.

Lampert, K. Fischparasiten und Fischkrankheiten. Jahresb.

Ver. vaterl. Nat. Württemberg, 66, p. 74—75. — Verf. referiert

in einem Vortrage u. a. über Fischkrankheiten, die durch Protozoen'

hervorgerufen werden.

Laubenheimer, K. Photographische Wandtafeln pathogener

Protozoen. Mit kurzem erläuterndem Text (IV mit 1 Taf.) Heidel-

berg (C. Winter), 10 pls.

Lauterborn, R. Berichte über die Ergebnisse der 7. u. 8. biolo-

gischen Untersuchungen des Oberrheins auf der Strecke Basel-

Mainz (21. Januar bis 5. Februar, und 4. bis 16. Juli 1908). Arb.

Kais. Gesundheitsamt Berlin, 33, p. 453—472; 36, p. 238—259.

— Verf. berichtet über das Bild der Verunreinigung und Selbst-

reinigung des Rheines zur Winterzeit. Die Planktonten werden

aufgezählt, von Protisten u. a. Ceratium hirundinella, Paramaecium

putrinum, Eudorina elegans, Glenodinium aciculiferum (sehr häufig

im Rheinau-Hafen), Disematostoma Bütschlii, Codonella cratera.

Im strömenden Rhein ist eine auffallende Armut an eigentlichen

Planktonorganismen zu konstatieren, was teilweise durch die

Jahreszeit bedingt ist. — Bei der 8. biol. Untersuchung wurden

gefunden von Planktonten ferner Dinobryon divergens var., D.

sertularia var. angulalta u. a.m. Die Altwässer erwiesen sich stets

reichhaltig an verschiedenen Organismen. Die Profile werden

eingehend behandelt.

D2A8 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

— (2). Die Vegetation des Oberrheins. Verhandl. nat.-med.

Ver. Heidelberg, N. F. 10, p. 450-502, 2 Figg. — Allgemein

Biologisches über Flora und niedere Fauna des Oberrheins, nebst

Bemerkungen über einige Algen, u. a. über Hydrurus, Naegeliella

flagellifera Correns, Gonyaulax apiculata Entz, Peridineen.

Laveran, A. (1). Nouvelle contribution a l’etude de Trypano-

soma congolense Broden. Ann. Inst. Pasteur, 24, p. 81—95. —

Verf. erweitert seine Befunde über Trypanosoma congolense und

fügt zunächst einiges der Morphologie hinzu. Kulturversuche

fielen negativ aus. Es besteht eine pathogene Wirkung bei ver-

schiedenen Versuchstieren. ‚‚Les observations montrent d’une

part, l’inefficacite de l’atoxyl et de son derive acetyle, d’autre

part, l’efficacite de l’emetique d’aniline et de l’emetique de sodium.“

Differential-Diagnostisches.

— (2). De l’effieacite d’un &metique d’arsenic et d’antimoine

dans le traitement de differentes trypanosomiases. Paris, C. R.

Acad. Sci., 151, p. 580-582. Verf. hat mit Trypanosomen

infizierte Meerschweinchen behandelt mit ‚un &metique d’arsenic

et d’antimoine“. Es wurden gute Heilerfolge erzielt.

— (8). An sujet de Trypanosoma vivax et de Trypanosoma

cazalbowi. Discussion: M. Mesnil. Paris, Bull. soc. path. exot., 3,

p- 80—82.

— (4). Les progres de la pathologic exotique. Rev. sci.

Paris, 4 7, 20 semest., 1909, p. 513—525, Fig. — Sammelreferat.

Laveran, A. u. Pettit, A. (1). Sur les formes de multiplication

endogene de Haemogregarina sebai. Paris, C. R. Acad. Sci., 151,

p. 182—185. — Verf. beschreiben aus 2 Individuen von Python

Sebai Haemogregarinen-Fortpflanzungscysten, die in den Dimen-

sionen und der Zahl der Merozoiten, ferner dem Sitz variieren,

aber doch zu derselben Art Haemogregarina sebai gehören.

— (2). Sur une Hemogregarine nouvelle de Damonia sub-

trijuga Schlegel. Paris, C. R. Acad. Sci., 151, p. 1017—1019. —

Verf. beschreiben aus Damonia subtrijuga (Schildkröte) die neue

Art Haemogregarina Pellegrini.

— (3). Sur une &pizootie des truites. Paris, C. R. Acad.

Sei., 151, p. 421-423. — Verf. berichten einiges über die Taumel-

krankheit bei Salmoniden und deren Ätiologie. Der Entwicklungs-

zyklus des Erregers ist noch unbekannt, seiner verwandtschaft-

lichen Stellung nach gehört er vielleicht zu den Haplosporidien.

Weitere Details und überhaupt Abbildungen bleiben abzu-

warten.

— (4). Culture de la Leishmania donovani en milieu liquide.

Paris, C. R. Soc. Biol., 68, p. 114—115. — Verf. haben sehr

gute Kulturen von Leishmania donovani in Peptonlösung und

defibriniertem Blut erhalten. Bereits nach 8 Tagen treten die

Kolonien als weiße Pünktchen hervor.

— (5). Sur une Coccidie de Agama colonorum. Paris, C. R.

Soc. Biol., 68, p. 161—163. — Verf. beschreiben eine neue Coceidie

Publikationen und Referate. 249

aus den Epithelialzellen ‚‚de la vesicule biliaire et des gros canaux

biliaires“. Diese Art wird als Coccidium agamae bezeichnet.

— (6). Au sujet des Trypanosomes du mulot et du com-

pagnol. Paris, C. R. Soc. Biol., 68, p. 571—573. — Verf. berichten

über weitere Studien an Trypanosoma Grosi aus Mus sylvaticus

und Tr. microti aus Microtus arvalis. Beide Formen haben Ähn-

lichkeit mit Tryp. lewisi. Übertragung dieser letzteren Art auf

Mus. sylv. und Microtus ist möglich, aber keine Weiterimpfung.

— (7). Au sujet de Haemogregarina agamae et de ses formes

Verf. beschreiben Haemogregarina agamae auch aus den Leuco-

cyten. Eine Klassifizierung der Haemogregarinen nach ihrem

Sitz in Erythrocyten oder Leucocyten ist demnach nicht zu-

lässig.

— (8). An sujet du Trypanosome du lerot (Myozus nitela)

et de la puce qui parait le propager. Paris, C. R. Soc. Biol., 68,

p. 950952. — Verf. berichten über positive Infektionsversuche

mit Trypanosoma Blanchardi Brumpt bei Myoxus nitela; bei

Mäusen und Ratten ist eine experimentelle Infektion nicht möglich.

Kulturen gingen nicht an. Als Überträger kommt eine neue

Flohart Ceratophyllus Laverani Rothschild in Betracht, in der

Tryp. Blanchardi gefunden wurde. Die Cysten, die gleichfalls

im Darmtraktus vorkommen, gehören einer Gregarine an.

— (9). Sur les formes de multiplication endogene de Haemo-

gregarina platydactyli Billet. Paris, C. R. Soc. Biol., 69, p. 176

— 177. — Verf. beschreiben die Bildung von 4—30 Merozoiten bei

.den Schizonten der Haemogregarina platydactyli.

— (10). Au sujet des Hemogregarines de Lacerta muralis.

Paris, C. R. Soc. Biol., 69, p. 303—305. — Haemogregarına bicap-

sulata und H. lacertae.

— (11). Sur le röle d’Hyalomma aegyptium L. dans la

propagation de Haemogregarina mauritanica Ed. et Et. Sergent.

— (12). Sur les eultures de Leishmania donovanı en milieu

liquide. Paris, Bull. soc. path. exot., 3, p. 216—217. — Vgl. 4.

Lebedeff, W. Über Trypanosoma rotatorium Gruby. Festschr.

z. 60. Geburtst. R. Hertwig’s, Bd. I, p. 399—436, pls. 31—32,

Figg. — Historische Einleitung. Das Material stammt aus der

Nähe Moskaus. 95%, Frösche waren infiziert, und zwar chronisch.

Vorkommen der Trypanosomen besonders in Leber, Lunge und

Niere. Nur bei akuter Trypanosomiasis findet eine experimentelle

Infektion statt. ‚Man konstatiert in allen Stadien von Trypano-

soma rotatorium einen sehr scharf ausgeprägten Polymorphismus.

Es gibt 4 Stammformen: 1. die ‚indifferente‘“‘ Form, der Blepharo-

plast ist meistens mit dem Kerne eng verbunden, die Tiere kommen

‘hauptsächlich in der akuten Periode vor; 2. die „gewöhnliche“

langgeißelige Form aus der chronischen Periode; 3. die „sterile“

Form aus der chronischen Periode, von plumper Gestalt undfmit

250 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

kurzer Geißel; 4. die ‚chromidienhaltige‘“‘ Form, die der in-

differenten Form ziemlich ähnlich ist, mit polarem Kern und einer

Menge von kleinen chromatischen Partikelchen im Plasma ein-

gebettet, ausschließlich in alten chronischen Fällen.“ — Vor-

kommen von polar differenzierten Kernen, ferner von lan g-

gestreckten Kernen bei den ‚gewöhnlichen‘ Formen.

Mitosestadien hat Verf. nicht gesehen. Unregelmäßigkeiten der

Kerne. Der Blepharoplast soll bei einem Tiere bei der Teilung

erhalten bleiben, beim andern neu vom Hauptkern aus entstehen.

„Es ist nicht ausgeschlossen, daß bei der Teilung der alte Geißel-

apparat gelegentlich ganz verloren geht, doch in einigen Fällen

muß er unbedingt bei einem Tiere erhalten bleiben.‘ Blepharoplast

und Hauptkern sind durch einen Verbindungsstrang verbunden.

— Teilungen der ‚‚sterilen oder kammartigen‘ Form wurden nicht

beobachtet. — Annahme eines Depressionszustandes der Chro-

midialformen, ‚die für den Befruchtungsvorgang ganz besonders

geeignet sind“. Scheidung des kaltblütigen ‚Trypanosoma‘“

vom warmblütigen ‚Trypanozoon“ mitLühe. ‚Indem Kondens-

wasser von Agar-Agar in sterilen Glasröhren und im Darme ver-

schiedener Blutegel wandeln sich die chromidienhaltigen Tiere

in die Crithidien um. Dabei entstehen die Kerne durch Kon-

densierung der Chromidien. Die Crithidien differenzieren sich in $

und 9. Es findet ein Verschmelzungsakt statt. Die Kopula

wächst schließlich in ein Trypanosom aus. Infektionsversuche mit

Crithidien verursachen eine Erkrankung der gesunden Frösche.

Alle von Franca beschriebenen selbständigen Arten der Frosch-

trypanosomen sind auf Modifikationen von Trypanosoma rota-

torium zurückzuführen.‘ — Die Angaben des Autors über Teilung,

Chromidialformen und Neuentstehung des Kernes bedürfen noch

dringend der Nachprüfung.

— (2). Einige Beobachtungen über T'rypanosoma rotatorium.

Vorläufige Mitteilung. Biol. Centralbl., 30, p. 223 u. 224. — Kurzer

Auszug aus 1.

Leboeuf, A. et Ringenbach. Sur quelques Hematozoaires du

Congo (Trypanosomes, Microfilaires, Leucocytozoaire). Ann.

Inst. Pasteur, Paris, 24, p. 945—954, pls. XVI u. XVII. — Die

Verf. beschreiben zunächst Trypanosomen aus Fischen vom

Congo: Tryp. Simondi aus Auchenoglanis biscutatus, 5 andere

Varietäten wurden bei Synodontis notatus gefunden; 3 davon sind

vielleicht neu und werden als Tryp. synodontis A, B und C be-

zeichnet. Weiter wird berichtet über Haemogregarina canıs.

Leboeuf, A. vide Mesnil, F.

Leese, A. S. (1). Summary of first series of Experiments on

treatment of Surra in Camels. Journ. trop. vet. sci. Caleutta, 5,

p. 57—66. — Verf. berichtet über die experimentelle Behandlung

der Surra bei Kamelen mit Brechweinstein allein oder mit Atoxyl

abwechselnd, ferner gefolgt von einer kurzen Behandlung mit

Quecksilberchlorid.

Publikationen und Referate. 251

— (2). Second series of Experiments on treatment of Surra

in Camels. Journ. trop. vet. sci. Calcutta, 5, p. 397—410. —

Weitere Experimente bei kombinierter Behandlung.

Leger, L._ Mycetozoaire nouveau endoparasite des in-

sectes. Ann. Univ. Grenoble, Paris, 22, p. 165—168. — Verf.

beschreibt Peltomyces hyalinus aus Olocratus abbreviatus. —

u. Dub. et la systematique des Sporozoaires. Arch. zool. Paris,

ser. 5, 5, p. 187—238, pls. I u. II. — Verf. teilen einiges über die

noch unvollständig bekannte Entwicklung von Selenococcidium

intermedium mit. Es werden beschrieben die wurmähnlichen

Formen und die indifferente Schizogonie, die Microgametocyten

und Microgameten und Macrogameten, ferner die Wirkung auf die

Wirtszelle. Weiterhin wird beschrieben Toxocystis homari n. g.

n. sp. als völlig neuer Parasit. sSelenococcidium wird mit Aggre-

gata und Porospora verglichen. Die Verwandtschaftsverhältnisse

von Selenococcidium zu den Schizogregarinen, Coccidien, Haemo-

sporidien und selbst Haemoflagellaten werden eingehend be-

sprochen. Eine Klassifikation der Sporozoen wird versucht, des-

gleichen eine Phylogenie mit Aufstellung eines Stammbaumes.

Löger, L. u. Hesse, E. Cnidosporidies des larves d’Ephemeres.

Ann. Univ. Grenoble Paris, 22, p. 169—172; Paris, C. R. Acad.

Sei., 150, p. 411—414. — Verf. beschreiben aus den Larven von

Ephemera vulgata L. verschiedene neue Cnidosporidien: Nosema

sehneideri, Stempellia n. g. mutabilis und Telomyza n. g. gluger-

formis. Für letztere Art wird die neue Familie der Telomyxi-

den geschaffen, die eine Mittelstellung zwischen Mierosporidien

und Myxosporidien einnimmt. Vorläufige Mitteilung.

Leger, M. vide Mathis, €.

Leishmann, W. B. Observations on the Mechanism of In-

fection in Tick Fever, and on the Hereditary Transmission of

Spirochaeta duttoni in the Tick. Trans. Soc. trop. Med. Hyg., 3,

p. 77—95, 1 pl., Discuss. p. 96—106. — (Probably voided by tick.

in secretion of Malphigian tubules.)

Lemmermann, E. (1). Algen. (Kryptogamenflora der Mark

Brandenburg, hrsg. vom botanischen Verein der Provinz Branden-

burg, Bd. 3, H. 2—4.) Leipzig (Gebr. Bornträger), p. 257—686.

— II. Klasse. Flagellatae. A. Allgemeiner Teil: Bau der Zelle,

Bewegung, Ernährung, Vermehrung, Koloniebildung, Reizer-

scheinungen, Vorkommen, Saisondimorphismus, Parasiten, Sym-

biose, Literatur. B. Systematischer Teil. — III. Klasse. Peridi-

niales. A. Allgemeiner Teil: Bau der Zelle, Ernährung, Ver-

mehrung, Reizerscheinungen, Bewegung, Schwebemittel, Vor-

kommen, Variabilität, Parasiten, Literatur. B. Systematischer

Teil. — Das Werk ist als einziges neueres Bestimmungsbuch zu

empfehlen, wenn auch bereits teilweise veraltet.

252 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

— (2). Beiträge zur Kenntnis der Planktonalgen. XXVI

— XXX. Arch. f. Hydrobiol., Stuttgart, 5, p. 231—338. — Verf.

berichtet zunächst über das Plankton des Paraguay. Von Fla-

gellaten und Chlorophyceen keine neuen Arten, nur eine neue

var. Trachelomonas incerta Lemm. nov. var. punctata, selten. Es

handelt sich um reines Süßwasserplankton, das sich zusammen-

setzt aus reinen Tropenformen, allgemein verbreiteten Formen der

Teiche und Altwässer und alpinen Formen. Zu den einzelnen

Formen folgen kurze Bemerkungen. Zum Schluß eine Aufzählung

der Leitformen verschiedener Flüsse. — Unter den Plankton-

formen aus dem Schliersee keine neuen Formen, Aufzählung der

Arten mit Bemerkungen über Peridinium Westii Lemm. und

P. Willei Huitf-Kaas. — Dinobryon sociale Ehrenb. bildet von

derselben Zelle aus hintereinander zwei verschiedene Wohngehäuse

aus, die fast vollständig ineinander stecken. Neu ist Dinobryon

inflatum aus Schweden. — Diagnose der Art Peridinium trochoi-

deum (Stein) Lemm. nob.

Lenartowiez, J. T. u. Potrzobowski, K. Eine einfache Methode

der Darstellung der Spirochaeta pallida. Centralbl. Bakt. Abt. 1,

56, Orig., p. 186—191, 1 Textfig. — Die Verf. geben nach histo-

rischem Rückblick über die bisher verwendeten Methoden zur

Darstellung der Spirochaeta pallida eine neue Methode an: Fixierung

mit 1, —2% Osmiumsäurelösung und Färbung mit Ziehl’scher

Fuchsinlösung. ‚In gut fixierten und gefärbten Präparaten sieht

man als Grund das Serum, rosa oder rot gefärbt, darauf die deutlich

sich abhebenden Spir. pallidae als „Negative“. Die Spir. re-

fringeus wird immer rot gefärbt. Wahrscheinlich geht die Pallida

mit Osmiumsäure eine Verbindung ein.

races de trypanosomes resistantes aux anticorps. Bull. soc. path.

exot., Paris, 3, p. 368—376. — Verf. haben Versuche über den

Mechanismus der Immunisation der Trypanosomen gegenüber den

Antikörpern angestellt. ‚Les trypanosomes nous apparaissent

done comme des &tres doues d’une grande plastieite biologique,

et l’on est frappe de la rapidite avec la quelle ils se seleetionnent

et se vaceinent, afin de s’accommoder & de nouvelles conditons de

vie peu favorables & leur d&veloppement.“

Levaditi, €. et Mutermilech, St. (1). Mecanisme de la Phago-

cytose. Paris, €. R. Soc. Biol., 68, p. 1079—1081. — Verf. unter-

scheiden bei der Phagocytose zwei Phasen, die der Berührung des

Objekts (Trypanosomen) mit dem Leucocyten und die der Um-

hüllung und Zerstörung. Der erste Akt der Berührung „resulte

de la rencontre fortuite du phagocyte et du trypanosome, et

traduit l’existence d’une affinite speeifique de l’antigene sensi-

bilise pour le protoplasma leucocytaires.“ Phys.-Chem. und vitales

Phänomen.

— (2). Diagnostie des trypanosomiases par le phenomene

de „l’attachement‘“. Paris, C. R. Soc. Biol., 69, p. 635—637.

Publikationen und Referate. 253

Levaditi, €. vide Comandon.

Liebetanz, E. Die parasitischen Protozoen des Wiederkäuer-

magens. Arch. f. Protistenk., 19, p. 19—80, pls. I—II u. 1 Textfig.

— Verf. hat die parasitischen Protozoen aus dem Magen vom

Rind, Schaf und der Ziege untersucht und beschreibt nach ein-

gehender Mitteilung über Material und Untersuchungsmethoden

die gefundenen Formen. Von Cercomonadinen kommen vor

S'iphaeromonas communis, minima u. masxima, Oikomonas com-

munis, minima, Cercomonas rhizoidea communis, rh. minima,

rh. maxima, Piromonas communis, minima u. maxima. Ferner

werden oberflächlich beschrieben Amoeba bovis u. Mastigamoeba

bovis, ferner Peridinium tabulatum Clap. u. Lachm. und Amphi-

dinium lacustre Stein. — Verf. berichtet weiter einiges über die

vielen parasitischen Infusorien, die allgemeine Verbreitung der

Protozoen, die physiologische Bedeutung der Flagellaten und

Infusorien, die Infektionsquelle der Wiederkäuer. Die Tierver-

suche haben zu dem Resultate geführt, daß das Heu die Infektions-

quelle darstellt. Eine Infektion von Tier auf Tier findet nicht

statt. Da die cytologischen, diagnostischen und entwicklungs-

geschichtlichen Befunde überaus mangelhaft sind, so bietet sich

hier ein dankbares Feld für eine eingehende Nachuntersuchung.

Material scheint in Fülle vorhanden zu sein.

Lindner, K. Zur Färbung der Prowazek’schen Ein-

schlüsse. Centralbl. Bakt., Abt. 1, 55, Orig., p. 429—432, 1 pl.

und 1 Textfig. — Verf. berichtet über die Färbetechnik bei der

Diagnose der Chlamydozoen beim Trachom. Vorläufige diagnos-

tische Färbung (10 cem Ag. dest., 5 gtt. Giemsa, 1 gtt. 1% Essig-

säure; Dauer 1 Stunde), dann Nachfärbung nach Giemsa

feucht.

Lipska, 9. (1). Les effects de l’inanition chez les Infusoires.

Arch. sei. phys. Geneve, 29, p. 420—422. — Kurzer Auszug aus 2.

— (2). Recherches sur l’influence de l’inanition chez Para-

maecium caudatum. Revue Suisse Zool. Geneve, 18, p. 591—646,

pl. IV. — Verf. hat Untersuchungen angestellt über die Er -

schöpfung bei Paramaecium caudatum. Nach historischer Ein-

leitung wird die Methodik eingehend angegeben. Die physiolo-

gischen Vorgänge, die sich vollziehen, werden klar dargestellt.

Zur Untersuchung kommen Lebensdauer, Dimensionsänderungen,

Veränderungen des Entoplasmas und der Kerne, Absterben,

Degeneration und Vakuolisation. Näheres siehe in der Arbeit

selbst.

Low, 6. €. (1). The Transmission in Nature of Trypanosoma

gambiense. Journ. trop. Med. London, XIII, p. 209. — Verf.

glaubt, da bezüglich der Übertragung des T’ryp. gambiense durch

die Glossinen-Arten noch Unklarheiten bestehen, daß eventuell

mehrere Arten der Trypanosomen in Betracht kommen.

— (2). The Duration of infeetion of Malaria. Journ. trop.

Med. London, XIII, p. 342. — Verf. konstatiert noch nach zwei

254 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Jahren und 3 Monaten nach der Infektion bei einem Patienten

Tertiana-Parasiten. Eine Reinfektion ist auszuschließen.

Lucas, R. Protozoa (mit Ausschluß der Foraminifera) für

1904. [Jahresbericht]. Arch. Naturgesch. Berlin, 74, Bd. 2, H. 3,

(1908) XVIIHa, p. 1—170. — Desgl. für 1905 und 1906.

Op. eit. 75, Ba. 2,0H.08, XVII, pP. 1161 ungen

— Ber. Natg. nied. Tiere, Berlin, N. F. 25, 1910 gleiche Pag.

Lucet, M. Sur la presence de Spirochetes dans un cas de

gastroenterite hemorragique chez le chien. C. R. Acad. Sci.

Paris, 151, p. 260—262. — Verf. berichtet über das Vorkommen

von Spirochäten bei einem Falle von Gastroenteritis „hemorr&-

gique‘‘ beim Hunde. Autopsie. Atiologisches.

Lühe, M. vide Braun, M.

Luhs, J. vide Dsehunkowski, E.

Maecgregor, M. E. vide Bevan, L. E.

Mackie, E. P. vide Bruce, D.

Mackinnon, D. L. (1). New Protistan parasites from the

intestines of Trichoptera. Parasitol. Cambridge, 3, p. 245—254,

pl. XVIII. — Verf. beschreibt als neu Trrichomastix trichopterae

aus den Larven verschiedener Trichopteren. Material und Methodik

sind kurz beschrieben, ferner einzelne Teilungsstadien und endlich

eine Spirochaeta sp.

— (2). Herpetomonads from the alimentary tract of certain

dung-flies. Parasitol. Cambridge, 3, p. 255—274, pl. XIX. —

Verf. teilt einige Beobachtungen über den Entwicklungszyklus

von Herpetomonas aus Homalomyia sp. und Scatophaga lutarıa

mit. Einzelne Encystierungsstadien werden beschrieben. Betreff

der system. Stellung hat die Verf. falsche Anschauungen. Die Arbeit

ist auch bezüglich der eytolog. Details mit Vorsicht aufzunehmen.

Maire, R. et Tison, A. Sur quelques Plasmodiophoracees.

Paris, C. R. Acad. Sei., 150, p. 1768—1770. — Die Verf. teilen

einiges über den Entwicklungszyklus von Tetramyza parasıitica

Goebel mit, Autogamie wurde bei dieser Form nicht gefunden. Die

Kernteilung während der Schizogonie verläuft bei allen Plasmodi-

ophoraceen in der gleichen Weise. Auch über Teeiramyxa Triglo-

chinis Molliard wird kurz über einzelne Stadien berichtet.

Manceeaux, L. vide Nicolle, Ch.

Manteufel vide Ollwig.

Marehand, E. F. Le Plasmodiophora brassicae Woronin,

parasite du melon, du celeri et de V’oseille-pinard. Paris, C. R.

Acad. Sci., 150, p. 1348—1350. — Verf. berichtet über das gelegent-

liche Vorkommen von Plasmodiophora brassicae auch bei der

Melone, dem Sellerie und Spinat Da die Infektion leicht von

statten geht, so sind die Vertilgungsmaßregeln streng durchzu-

führen.

de Marchi, M. Introduzione allo studio biologico del Verbano.

Milano Rend. Ist. Lomb., 43, p. 698— 719. — Verf. berichtet ganz

Publikationen und Referate. 255

allgemein über die Biologie des Verbano (Lago Maggiore) und

zählt die gefundenen Arten auf. Keine neue Art.

Marssen, M. Berichte über die Ergebnisse der 7. und 8. bio-

logischen Untersuchungen des Rheins auf der Strecke Mainz

bis Coblenz (27. Januar bis 5. Februar, und 18. bis 22. Juli 1908).

Arb. Kais. Gesundheitsamt Berlin, 33, p. 473—499; 36, p. 260

— 290. — Verf. gibt u. a. eine Aufzählung der gefundenen Plank-

tonten. Von Protisten werden u. a. festgestellt: Cryptomonas

erosa, Monaden, Colpidium colpoda. Einzelne Profile werden genauer

klargelegt, Einzelheiten siehe in der Arbeit selbst. Vergl. auch

Lauterborn. — In der 8. biol. Untersuchung wird eine aus-

führliche Liste der Planktonten des Rheins oberhalb Mainz unter-

halb Weisenau gegeben, ferner wurden auch hier die Altwässer und

Nebenflüsse des Rheins eingehend untersucht.

Martin, C. H. Observations on Trypanoplasma congeri. Part

1. The division of the active Form. Quart. Journ. Mier. Sci.

London, 55, p. 485—49, pl. XXI. — Verf. hat die Teilung des

Basalapparates, der Geißeln und des Kerns bei Trypanoplasma

congeri festgestellt. Letztere verläuft promitotisch. Der Kine-

tonucleus teilt sich durch einfache Einschnürung nach starkem

Längenwachstum.

Martin, €. H. vide Elmhirst, R.

Martin, G. et Ringenbach, —. Penetration du Trypanosoma

gambiense & travers les teguments et les muqueuses intactes. Paris,

Bull. soc. path., 3, p. 433—437. — Verf. berichten über das Durch-

dringen des Integuments und unverletzter Schleimhäute seitens

des Trypanosoma gambiense. Vergl. auch Manteufel 1909.

Martin, L. et Darre, H. (1). Resultats eloignes du traitement

dans la trypanosomiase humaine. Bull. Soc. path. exot. Paris,

3, p. 333—341. — Verf. beschreiben eine erfolgreiche Behandlung

der Schlafkrankheit mit Atoxyl.

— (2). Remarques sur l’evolution et le pronostic de la

trypanosomiase chez les blanes. Bull. Soc. path. exot. Paris, 3,

p. 389—398. — Verf. beschreiben 2 Modificationen der Schlaf-

krankheit bei den Weißen, heilbare und rückfällige Formen.

Zwei Jahre nach den ersten Anzeichen der eigentlichen Schlaf-

krankheit tritt gewöhnlich Exitus ein.

Martini, E. (1). Über Prowazekia cruzi und ihre Beziehungen

zur Ätiologie von ansteckenden Darmkrankheiten zu Tsingtau.

Zeitschr. Hygien. Leipzig, 67, p. 275—278. — Verf. berichtet über

das Vorkommen der Prowazekia cruzi Hartm. und Chagas in

Tsingtau und ihre Beziehung zu eventuellen darmkatarrhähnlichen

Zuständen bei starker Infektion im menschlichen Darm.

— (2). Über einen bei amöbenruhrähnlichen Dysenterien

vorkommenden Ciliaten. Zeitschr. Hygien. Leipzig, 67, p. 387

—390, pl. VII. — Verf. teilt in dieser vorläufigen Mitteilung

einiges über Uronema caudatum n. sp. mit, das bei amöbenruhr-

ähnlichen Dysenterien vorkommt. Kulturen in physiol. Koch-

256 Protozoas mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

salzlösung bei Zimmertemperatur gehen an. Ansteckungsweise

durch Trinken von Wasser aus Sumpftümpeln, in denen ja die

Uronema-Arten sonst leben, ist wahrscheinlich.

*Martoglio, F.; Stella, V. e Carpano, M. Su un plasmodio della

scimia. Nota prima. Ann. Igiene sper. Torino N. 8., 20, p. 287

— 300, 1'tav., 5 figs. E

Marzinowski, E. J. (Über Kulturen von Leishmania tropica

(s. Ovoplasma orientale s. Helcosoma tropicum), dem Parasiten der

Orientbeule.) Med. obozr. Moskva, 72, 1909, p. 645—650, 3 pls. —

Russisch.

Marzoechi, V. Sul parassita del gialliume del ‚Bombyz

Mori‘‘ (Microsporidium Polyedricum Bolle).. Ann. Acad. Agric.

Torino, 52. p. 83—95. — Der Kern der intranucleären Stadien

von Microsporidium polydricum zerfällt in Sporozoiten mit Übrig-

bleiben eines Restkörpers; Weiterentwicklung zu den polyedrischen

Körperchen.

*Mason, F. E. Sarcocystis-cysts in the camel in Egypt. Journ.

comp. path. ther. Edinburgh, 23, p. 168—176.

Masson, P. Les Leishmanioses. Rev. sci. Paris, 47, I. sem. 1909,

p- 655—657.

Mast, H. Die Astrosphaeriden. (Wiss. Ergebn. d. Deutschen

Tiefsee-Expedition, 19, H. 4.) Jena (G. Fischer), p.123—190,

pls. XIV’—XXXI. — Verf. bespricht im allgemeinen Teil zunächst

die Stellung und bisherige Einteilung der Astrosphaeriden,

‘das Skelett und seine Struktur, dessen Entwicklung, die Radial-

stacheln, ferner Begründung eines natürlichen Systems nach den

Skelettstrukturen, die Größenverhältnisse zwischen Skelett und

Zentralkapsel, Beziehungen zwischen Kern und Sklelett und

zwischen extrakapsulärem Weichkörper und Skelett, Struktur

von Weichkörper und Kern, Formenreichtum und Verbreitung.

Hinsichtlich der Individuenzahl ist der Jndik reicher als der

Atlantik. Neu sind folgende Formen: I. U.-Fam. Monosphae-

rinae: Acanthosphaera spinosa, dodecastyla, pachyconcha, helia-

cantha, Heliosphaera octacantha, Cladococcus doryphorus, indicus,

Heteracantha n. g., dentata, elegans, racemosa, ienuis, lynchnos-

phaera, fragilis, varians, indica, II. U.-Fam. Actinosphaerinae:

Haliomma solare, cruciatum, simplex, capense, minutum, Helio-

soma irregulare, centroplegma, aculeatum, tenue, Elatomma varia-

bile, arborescens, Heterosoma n. g. heptacanthum, polyacanthum,

ramosum, Actinomma regulare, heptacanthum, intermedium, aequale,

Caryomma heterocyclum; III. U.-Fam. Heterosphaerinae: Heteros-

phaera n. g. tenuis, dodecastyla, cromyommoides, intermedia;

IV. U.-Fam. Arachnosphaerinae: Diplosphaera gracilis, Astros-

phaera dentata, granulata, Arachnosphaera irregularis; V. U.-Fam.

Spongosphaerinae: Astrospongus n. g. simplex, ramosus, inter-

medius, Arachnospongus n. g. varians, Rhizoplegma coeloden-

droides, Lychnosphaera tenuis, Rhizospongus n. g. arachnoideus,

fragilis, dendrophorus, Spongopila varians, gracilis, polyaconcha,

Publikationen und Referate. 257

helioides, Diplospongus n. g. dendrophorus, arachne, Spongio-

concha n. g. inversa, ÜOentrocubus macracanthus, Heterospongus

n. g. varians, Excentroconcha n. g. minor, maior, Acanthospongus

n. g. minutus.

Mast, S. 0. (1). Abnormal Individuals of Didinium nasutum

and their Bearing on the Question of Natural Selection. (Amer.

Soc. Zool.) Science N. S., 31, p. 472—473. — Verf. beschreibt

einige anormale Individuen von Didinium nasutum und spricht

kurz über die Frage der natürlichen Auslese und Eliminierung

derartiger anormaler Formen.

— (2). Reactions in Amoeba to light. Journ. Exper. Zool.

Philadelphia Pa., 9, p. 265—277, 2 text-figg: Science (2) 31,

p- 474. — Verf. hat Versuche über den Heliotropismus der Amoeba

proteus angestellt. Bei direktem Reiz tritt sofort Aufhören der

Bewegung ein. Anderung der Strahlenrichtung ruft auch Ver-

änderungen der Oberfläche hervor.

Matheny, W.A. Effects of alkohol on the life-eycle of Paramae-

cium. Journ. exper. Zool., 8, p. 193—206, 1 fig. — Verf. schließt

aus seinen Experimenten, daß kein Beweis vorliegt dafür, daß

Alkohol als periodisches oder konstantes Reizmittel wirkt. Kleine

Dosen wirken auf die allgemeine Vitalität nicht schädigend ein;

zu 2%, oder weniger findet keine Wirkung statt. Über 3%, hinaus

wird die Teilungsrate verringert und schließlich sterben die In-

dividuen.

Mathis, €. et Leger, M. (1). Sur un nouveau Leucocytozoon de

aus dem Haushuhn in Toknin ein neues Zeucocytozoon Sabrazesi,

das sich von dem im gleichen Wirt vorkommenden L. Caulleryi

unterscheidet auch in der Periodieität des Entwicklungszyklus.

— (2). Leucocytozoon d’une Tourterelle (Turtur humilis)

Biol., 68, p. 118—120. — Verf. beschreiben 2 weitere neue Arten:

Leucocytozoon Marchouxi aus Turtur humilis und L. Simondi aus

Querquedula crecca.

— (3). Parasites sanguicoles d’un passereau du Tonkin

(Ixus hainanus) boulboul de l’ile d’Hainau). Paris, C. R. Soc. Biol.,

69, p. 30—32. — Verf. beschreiben aus Ixus hainanus die neuen

Arten Leucocytozoon Brimonti und Trypanosoma Brimonti. Letztere

Art nähert sich dem von Lav. und Mesnil beschriebenen Tr. paddae.

— (4). Sur Trypanosoma clariae (Montel 1905) d’un poisson

d’Indo-Chine, Olarias macrocephalus. Paris, C. R. Soc. Biol., 69,

p. 349—351. — Verf. berichten über das Vorkommen von Tryp.

clariae Montel in Olarias macrocephalus und fügen einiges Vervoll-

ständigende hinzu über eine kleine und große Varietät.

— (5). Trypanoplasm d’un poisson du Tonkin, Olarias

macrocephalus. Paris, C. RB. Soc. Biol., 69, p. 351—353. — Verf.

beschreiben weiter aus Olarias macrocephalus die neue Art Trypano-

plasma clariae, die erste entdeckte Art bei einem Siluriden,

Archiv für Naturgeschichte 17

911. VI. 2.

258 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

»— (6). Sur un Flagelle, Prowazekia weinbergi n. sp.,

frequemment observ& dans les selles de ’homme. Bull. Soc. Med.-

Chir. Indo-Chine (reprint 6). — Vorläufige Mitteilung.

— (7). Nouvelles recherches sur Leucocytozoon sabrazesi

et Leucocytozoon caulleryi de la poule domestique du Tonkin.

Paris, Bull. soc. path. exot., 3, p. 504-510. — Verf. kommen zu

dem Resultat, daß, wenn die Blutinfektion durch die Sexualformen

von L. sabrazesi dauerhaft ist, die durch die Gametocyten von

L. caulleryi nur vorübergehend mit einigen Rückfällen auftritt.

— (8). Sur des Haemoproteus de quelques oiseaux du Ton-

kin. Paris, Bull. Soc. path. exot., 3, p. 704—708. — Verf. berichten

über das Vorkommen von 12 vielleicht verschiedenen Arten von

Haemoproteus aus Vögeln von Tonkin. Es wird eine Tabelle der

unterscheidenden Charaktere gegeben und die Spezifität des

Parasiten in je einem Wirte als Postulat betont. Ob sich dies be-

stätigt, bleibt abzuwarten.

Mavrodiadi, P. (Ergänzung zur Entwicklung und Biologie

der Gregarine Steinia ovalıs F. S.) Varsava, Prot. Obsc. jest., 21,

1909, p. 106—115, 6 text-figg.

Mayer, M. (1). Über die Entwicklung von Halteridium.

Vorl. Mitteil. Arch. f. Schiffshygien. Leipzig, 14, p. 197—202. —

Siehe die ausführliche Arbeit 1911 im Arch. f. Protistenk.

— (2). Über das ostafrikanische Küstenfieber der Rinder.

Arch. f. Schiffshygien. Leipzig, 14, Beih. 7, p. 307—324, 1 pl. —

Verf. kommt zu dem Resultat, daß die Verschiedenheit von

Piroplasma parvum und mutans und die ätiolog. Bedeutung des

ersteren für das Ostküstenfieber noch nicht erwiesen sei, ebenso-

wenig der Zusammenhang mit den Plasmakugeln. Degenerations-

phänomene, Plasmakugeln unbekannter Natur; Niereninfarkte,

Charasteristica der Seuche. Vergl. die Arbeiten von Gonder, der

die noch strittigen Fragen bereits gelöst hat.

Mayer, A. 6. The converse relation between ciliary and

neuro-muscular movements. Publ. Carnegie Inst. Washington,

No. 132, p. 1—25, 8. Figg. Verf. berichtet über die Wirkung der

Kationen von Na, Mg, K, Ca auf die neuromuskulare- und Cilien-

bewegung; Na verhindert meist die Cilienbewegung, reizt schwach

bei der Neuromuskularbewegung; Mg hat den entgegengesetzten

Effekt.

Mayor, J. F. G. Blackwater Fever. Journ. trop. Med. London,

XIII, p. 225. — Verf. teilt einiges über Schwarzwasser-Fieber

mit aus Ostrogbo und Süd-Nigeria. Siehe ferner Ann. trop. Med.

Parasitol. 1909.

Me Jntosh, J. On the absence of spirochaetes in mouse tu-

mours. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 54, Orig. p. 235—236. — Verf.

hat keine Spirochaeten in den von ihm untersuchten Tumoren

gefunden, was er gegenüber den positiven Angaben mehrerer

Autoren damit erklärt, daß nicht die Tumoren, sondern die Mäuse

infiziert waren mit Spirochäten.

Publikationen und Referate. 259

Me Jntosh, J. vide Levaditi, €.

Meirowsky, —. Über einfache Methoden zur schnellen Fär-

bung lebender Spirochäten. Münch. med. Wochenschr., 57, p.

1452—1453. — Verf. berichtet über diagnostische Färbungen

des Spir. pallida und refringens mit Methylviolett und Kristall-

violett, ferner der Spir. dentium mit Neutralrot.

Meißner, H. und Jmmisch, K. B. Untersuchungen über

die ostpreußische Beschälseuche und ihre Beziehungen zur al-

gerischen Dourine. Arch. wiss. prakt. Tierheilk., 36, Suppl.-Bd.,

p. 306—346. — Verf. berichten über Untersuchungen über die ost-

preußische Beschälseuche, teils experimentell, teils nach einigen

Fällen. Chemotherapeutische Heilversuche mit Arsenophenyl-

glyein, Agglutination. Zwischen Beschälseuche und Dourine

besteht ein Parallelismus, die Identität ist noch nicht er-

wiesen. N

Meixner, A. Über die Fauna des Ausflusses des Cokeslagers

von Bradford. Graz. Mitteil. Natw. Ver. Steiermark, 45, 1909,

p. 231—233.

Mello, U. Un cas de toxoplasmose du chien observe & Turin.

Paris, Bull. soc. path. exot., 3, p. 359—363. — Verf. beschreibt

einen Fall von Toxoplasmose beim Hunde, das Krankheitsbild

erinnert an Kala-Azar, der Erreger wird, nach der Angabe Mesnil’s,

als Toxoplasma canis bezeichnet.

Menetrier, P. Salpingite amibienne. Arch. parasitol. Paris,

14, p. 154—159. — Verf. beschreibt einen Fall von Amoeben-

Salpingitis und bildet einen Schnitt der Mucosa ab, der eine Infil-

tration mit Amöben zeigt, deren Charakter und parasitäre Rolle

noch unbestimmt bleibt.

Merkle, H. (1). Das Plankton der deutschen Ostseefahrt

Juli— August 1907. Wiss. Meeresuntersuch. Kiel N. F., 11, p.

321— 346, 4 Figg. — Verf. berichtet über Gewinnung und Bear-

beitung des Materials, über die Verteilung von Salzgehalt und

Temperatur während der Ostseefahrt, über die Planktonvolumina,

über die Verbreitung der wichtigsten Organismen, u. a. von Peridi-

neen: Peridinium divergens, Dinophysis acuta und acuminata,

von Tintinnodeen und Cothurnia maritima.

— (2). Untersuchungen an Tintinnodeen der Ost- und Nord-

see. Wiss. Meeresuntersuch. Kiel N. F. 11, Abt. Kiel, p. 139—186,

pls. II und III. — Verf. beschreibt zunächst allgemein Material

und Methoden, dann die zur Verfügung stehenden Arten. Neu

sind: Tintinnopsis parva, T. sacculus (Brandt) var. magna n. var.,

Tintinnus acuminatus (Clap. et Lachm.) var. altiplicatus n. var.

Ferner wird berichtet über Fortbewegungserscheinungen, Nahrung,

Fortpflanzungserscheinungen bei Cyttarocylis denticulata und

Piychocylis urnula, Bildung von Sporocysten und Sporen, Ent-

wicklung junger Tiere, Teilungen, Konjugation; endlich über die

Tintinnodeen der deutschen Ostseefahrt Juli/August 1907, keine

neue Art.

17*

260 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Mereier, L. Contribution & l’etude de l’Amibe de la Blatte

(Entamoeba blattae Bütschli). Arch. f. Protistenk., 20, p. 143—175,

Taf. X— XII, 6 Text-Figuren. — Verf. bemerkt zunächst zur No-

menklatur, daß der Gattungsname Entamoeba für alle parasitären

Formen Geltung haben möge, wenngleich auch die unter diesem

Gattungsnamen zusammengefaßten Arten polyphyletischen Ur-

sprunges wahrscheinlich sind und ihre Einreihung in die Gattung

Entamoeba vielleicht nur auf Konvergenzerscheinungen beruht. —

Bestätigung des Vorkommens der E. bl. in Periplaneia nur an

bestimmten Lokalitäten, und zwar dann in reichlicher Infektion.

Die Durchschnittsgröße beträgt in vivo 50 „a. Einzelheiten der

Lebendbeobachtung bezüglich des Protoplasmas und Kernes.

Eine kontraktile Vakuole konnte nicht bemerkt werden. —Der

Entwicklungszyklus ist kurz folgender: Aus den Infektionscysten

gehen kleine, einkernige Gametenformen hervor, die kopulieren.

Aus der Copula werden typische Amöben, die sich durch vegetative

Zweiteilung fortpflanzen. Dann folgt die Gametenbildung in

vielkernigen Cysten. — Der Kern der vegetativen Formen ist

eiförmig, hat bis zu 15 « Durchmesser. Unter der Kernmembran

liegt eine Granulazone; die Innenzone ist hell, besitzt eine feine

alveoläre Struktur und enthält Nucleolen. Die beiden Zonen

gleichen sich aus und sind variabel in ihrer Ausdehnung. Die

Kernteilung wird eingeleitet durch das Verschwinden der Nucleolen,

es treten feine chromatische Granulationen auf, die sich bandförmig

in der Innenzone anordnen. Das Band zerfällt in mehrere Stücke.

von variabler Zahl; Verf. nennt sie Pseudo-Chromosomen. Diese

ordnen sich nun in zwei Gruppen an entgegengesetzten Kernpolen

an. Dann schnürt sich die Kernmembran ein und der Kern wird

hantelförmig bis zur Durchschnürung. Die Pseudochromosomen

gruppieren sich und geben eine große Chromatinmasse. Nach

Janicki 09 verläuft die Kernteilung nach zwei Typen, einem

mehr direkten und einem mitotischen mit Caryosombildung, die

Verf. mit Recht anzweifelt. Wahrscheinlich handelt es sich bei

diesen Abbildungen, die beide Autoren geben, um das Faktum

eines zyklischen Vorganges am Caryosom, wie es neuerdings des

öfteren konstatiert wurde. (Bemerk. d. Ref.) Der Kerntilgungs-

modus dürfte als Promitose (Nägler 1909) zu bezeichnen sein.

Die Zellteilung folgt nach der Beendigung der Kernvorgänge- und

Umsetzungen auf den status quo ante. Das Ausstoßen eines

Kernes und das Vorkommen freier Kerne dürfte gegen Janicki

auf pathologischen Veränderungen beruhen, indem irgendwelche

Parasiten das Plasma der Amöbe zerstört haben und der Kern

allein infolge seiner Membran noch eine Zeit lang übrig bleibt,

(wie es Ref. nach eigenen neueren Beobachtungen bestätigen

kann). — Zu Beginn der Gametenbildung enthält das Protoplasma

keine Einschlüsse oder Verdauungsvakuolen mehr, wohl aber

treten die Nucleolen in Form vegetativer Chromidien aus dem

Kern aus (Analogie mit Amoeba dofleini nach Neresheimer).

Publikationen und Referate. 261

Die Differenzierung der beiden Kernzonen ist nicht so scharf

wie bei den vegetativen Stadien. Jeder der Tochterkerne teilt sich

weiter, wobei ein Centrosom auftritt. Alle weiteren Kernteilungen

brauchen nicht synchron zu verlaufen. Diese Kernteilungen gehen

intracaryosomal vor sich mit deutlichem Centrosom; ob Chromo-

somen auftreten, läßt sich nicht mit Bestimmtheit sagen. Verf.

bezeichnet diese Art von Kernteilung als Mitose mit Erhalten-

bleiben der Kernmembran. Die Anzahl der Kerne beträgt 8, wenn

nun eine Differenzierung im Plasma entsteht, in eine alveolär-

periphere Zone und in eine granuliert-zentrale. Der Beginn der

Encystierung ist charakterisiert durch die zentrale Lage der Kerne

und die Ausscheidung der Cystenmembran. Weitere Kernteilungen

finden statt, wobei die Details immer undeutlicher werden. Verf.

beschreibt Anomalieen und vergleicht seine Beobachtungen mit

denen von Janicki, mit dem er in großen Zügen überein-

stimmt, und mit denen von Elmassian, dem er eine richtige

Deutung der einzelnen Stadien abspricht. Bei künstlicher Infektion

der Schaben findet die weitere Entwicklung der Cysten auf dem

Wege bis zur Mitte des Darmes statt. Die Umhüllungsmembran

lockert sich auf und wird unregelmäßig, die 20 Kerne circa lagern

sich peripher. Die periphere Plasmazone wird schließlich wellen-

förmig durch das Loslösen kleiner, einkerniger Elemente, der Ga-

meten, eventuell Arisogameten. Diese kopulieren, auf eine Cyto-

gamie folgt die Caryogamie. Die Copula wächst zum vegetativen

Stadium heran. Von einer Reduktion hat Verf. nichts bemerkt. —

Züchtungsversuche verliefen ergebnislos. — Von Parasiten der

E. b. unterscheidet Verf. mit Chatton und Brodsky

Kern- und Plasmaparasiten. Vorkommen und Abbildungen

von Nucleophaga im Kern, von Fadenbakterien, Microsporidien,

niederen Champignons und von Entwicklungsstadien eines unbe-

kannten Parasiten im Protoplasma.

Mesnil, F. Sur l’identification de quelques Trypanosomes

pathogenes. Paris, Bull. soc. path. exot., 3, p. 376—381. — Verf.

bezeichnet das Virus von Schilling vom Togo als Tryp. togolense

und konstatiert, daß die Verwandtschaft zwischen diesem und dem

Tryp. evansi sehr entfernt ist. Surra (var. Mbori) existiert auf dem

rechten Ufer des Senegal. Dourine- und Taher-Trypanosomen der

algerischen Pferde stimmen nicht überein. Ferner wird mit Tryp.

venezuelense eine neue amerikanische Form aus Pferden bezeichnet.

Mesnil, F. und Brimont, E. Trypanosome et Microfilaire d’un

Edente, le Tamandua tridactyla L. Paris, C. R. Soc. Biol., 69,

p. 148—151. — Verf. beschreiben aus Tamandua tridactyla L.

die neue Art Tryp. Legeri, die große Ähnlichkeit mit Vogeltrypano-

somen aufweist. Charakteristisch sind die Breite des Körpers und

der voluminöse Blepharoplast. Teilungsstadien wurden bisher

bei der nicht seltenen Art noch nicht gefunden.

Mesnil, F. et Kerandel, J. Sur l’action preventive et curative

de l’arsenophenylglyein dans les trypanosomiases experimentales

262 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

et en particulier dans les infections & Trypanosoma gambiense.

(2° note.) Bull. soc. path. exot. Paris, 3, p. 732—136. — Verf.

berichten über Vorbeugungs- und Heilversuche mit Arseno-

phenylglycin bei experimentellen Trypanosomiosen, im besonderen

bei Infektionen mit Tr. gambiense.

Mesnil, F. et Leboeuf, A. De l’action comparee des serums

Biol., 69, p. 382—384. — Verf. berichten über die vergleichende

Wirkung von Serum der Primaten auf die Nagana-Infektion

der Mäuse. Der Wirkung nach folgen einander die Sera der Meer-

katze, des Menschen, des Mangube und Mandrill. Auch bei anderen

Trypanosomiosen werden Untersuchungen angestellt. Vorläufige

. Mitteilung.

Metealf, M. M. Studies upon Amoeba. 1. On the localization

of the excretory funktion in Amoeba proteus. 2. A new species of

Amoeba, parasitic in tadpoles. 3. The life-cycle in Amoeba. Journ.

exper. Zool. Philadelphia Pa., 9, p. 301—331, 45 Figg., 1 pl. —

Verf. kommt zu dem Resultat, daß es sich bei der Lokalisierung

der excretorischen Funktion bei Amoeba proteus darum handelt,

ob die kontraktile Vakuole bei ihrem jedesmaligen Wiederauftreten

in derselben Plasmapartie erscheint. Alle kleinen Vakuolen, die

auftreten und verschmelzen, liegen in einer Granulamasse oder

daneben. Zwischen der Granulamasse und den excretorischen

Vakuolen besteht eine bestimmte und konstante Beziehung. Die

Granula liegen ständig an der inneren Oberfläche des Ectosarcs.

Es liegt eine beginnende Spezialisierung der Cytomierosomen

im Zusammenhang mit der Exkretion vor. Die Granula werden

um eine neue Vakuole erst gebildet und sind nicht wesentlich für

die Funktion der Vakuole. Die Cytomikrosomen unterliegen einer

Metabolie und bekommen später einen funktionellen Anteil an der

Exkretion. — Es folgt die Beschreibung einer neuen Amöbenart

aus den Kaulquappen von Bufo cinerens, Rana esculenta und Bom-

binator pachypus, die Verf. Amoeba currens nennt auf Grund

ihrer starken aktiven Lokomotion. Die Angabe des Verf., daß er

die Gattungen Amoeba und Entamoeba nicht unterscheiden möchte,

ist vorläufig nicht begründet, sondern nach neueren Forschungen

geradezu zu fordern. — In dem Kapitel über einen Lebenszyklus

bei den Amöben beschreibt Verf. zunächst Flagellosporen-

bildung bei Amoeba proteus (?). Es werden amöboide Gemmulae

frei, die zu Flagellaten werden und weiterhin copulieren zu einer

amöboiden Copula, die zum gewöhnlichen vegetativen Stadium

heranwächst. Die Flagellatenstadien sind nach dem Cercomonas-

Typus gebaut. Auf die Kernphänomene soll später eingegangen

werden. Ob es sich um Amoeba proteus handelt und ob die Phä-

nomene nicht doch durch Parasiten hervorgerufen werden, bedarf

weiterer Klärung. (Bemerk. d. Ref.) — Auch bei einer weiteren

kleineren Amoeba sp. wird Gemmulation beschrieben, ferner

Publikationen und Referate. 263

netzförmige Amöbosporen einer Amöbe von Würzburg. Kopulation

wurde hierbei noch nicht beobachtet.

Mettam, A. E. Piroplasmosis and experimental piroplasmosis.

Trans. R. Acad. Med. Ireland, 28, p. 343—359. — Verf. berichtet über

natürliche und experimentelle Piroplasmosis in einem Vortrage.

Meunier, A. Microplankton des Mers de Barents et de Kara.

Duc d’Orleans, Campagne arctique de 1907. Bruxelles (Ch. Bu-

lens), XVIII + 355 pp., 37 pls. — Verf. berichtet in groß an-

gelegter Studie über das Microplankton des Barent- und Kara-

meeres. Es werden beschrieben als neu vonPeridineen: Peridinium

saltans, ovatoides, complanatum, gracile, turgidum, anceps, gra-

vidum, rhombus, sphaericum, elongatum, robustum, granisparsum,

verrucosum, bulla, hyalinum, Glenodinium inflatum, Diplopsalop-

sis n. g. sphaerica, Nephrodinium n. g. nivale, karianum, Proto-

ceratium splendens, Amylax n. g. lata, nivicola, perpusilla, Oxy-

toxum Belgicae, Dinophysis cuneiformis, D. vertex, semen, Spiro-

dinium lacryma, fusus, Echinum n. g. nudum, minus, sphaericum,

micraster, Folliculus n. g. flagellifer,;, von Oryptomonadineen:

Dinobryon Belgicae, Corbieulan. g. socialis,; vonSilicoflagel-

laten: Diaster n. g., ferner ‚‚organismes enigmatiques“. Poly-

asterias n. 8., Pterosperma laciniatum, octogonum, hexagonum,

itrigonum, Saturnus hemisphaericum, lenticulare, polyedro-sphae-

ricum, Chitonosperma n. g. umbilicatum, coronatum, Glyphosperma

n. 8. flagelliferum, aervosum(?), Radiosperma n.g. corbiferum, Amphi-

cephalosperma n. g. bullans, Setosperma n. g. equatorale, Fusopsis

n. g. elongata, spiralis, umbracula, flagrifera, pauperata, polyedra,

Piropsis n. g. Acineta reticulata, polita, minuta, Sphaeropsis n. 8.

heterosetosa, brevisetosa, longisetosa, nimbata, nivalis, elliptica,

echinata, spumosa, laevigata;, von Tintinniden: Oyttarocylıs cus-

pidata, hemifusus, spicalis, Amphorella fistula, tubularis, coch-

leata minutissima, annulata, Tintinnopsis major, macrotus, tu-

bulosoides, cylindrica, lata, angusta, fusus, rapa, ventricosoides,

nivalis, oliva, patula, acuta, urnula, undella, incurvata;, Conocylis

n. g. helix, constricta, striata; Strombidium longipes; von Rhizo-

poden mehrere Thecamoeben; von Hypotrichen: Euplotes cau-

data, truncata,; von Holotrichen: Didinium Gargantua, C'yclo-

trichvum n. 8 cyclokaryon, Proboscidium n. g. armatum, Prorodon

karianus, Cephalotrichium n. g. tonsuratum, Zonotrichium n. 8.

discoides, Condylostoma circumpedatum, Climacostomum gigas,

Laerymaria marina, Stappersia n. g. fusus, Gymnozoum n. 8.

viviparum; von Acineten: Podophrya macropus, Acineta

inclusa;, von Radiolarien: Botryopyle stenostoma, ferner

Sticholonche ventricosa. Beigefügt sind Planktontabellen und Kar-

ten der Stationen.

Meunier, L. et Vaney, €. Nouveau procede de fixation du

plankton. C. R. Soc. Biol., 68, p. 727—729. — Zusatz von ,„qui-

none“ 20d. 4: 1000 zu Formol bei der Planktonfixierung; bessere

Färbungen.

264 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Meyer, G. Die geographische Verbreitung der Schlafkrankheit.

Petermann’s Mitteil., 56, p. 57—58, 1 pl. — Allgemein geographisch

und faunistisch.

Minakata, K. Colours of plasmodia of some Mycetozoa. Nature

London, 83, p- 489. — Verf. berichtet kurz über die Farben der

Plasmodien einiger Mycetozoen als Ergänzung zu der Monographie

Lister’s 1894. Ferner wird über Zahl und Vorkommen der My-

cetozoen in Japan einiges mitgeteilt.

Minchin, E. A. (1). Some considerations on the phenomena

of parasitism amongst Protozoa. (Presidential Address.) _ London

J. Queck. Microsc. Cl. Ser. 2, 11, p. 1—18.

— (2). On somes parasites observed in the rat-flea (Cera-

tophyllus fasciatus). Festschr. f. R. Hertwig Bd. 1. Jena (G.

Fischer), p. 289—302, pl. XXIII. — Verf. beschreibt Malphigiella

n. g. refringens n. sp. aus den Malphigischen Gefäßen bei Cera-

tophyllus fasciatus und bildet verschiedene vegetative Stadien und

Cysten mit 4 Kernen ab. M. wird zu den Entamoeben gestellt.

Weiter wird berichtet über Pericardial-Zellen. Eine erneute Unter-

suchung zur Klärung der system. Zugehörigkeit erscheint dringend

geboten.

— (3). Some applications of microscopy to modern science

and practical knowledge. Nature London, 82, p. 353—356. —

Siehe bereits im Bericht pro 1909.

(4). A new Trypanosome parasitice in human beings.

Nature London, 84, p. 142—144. — Auszug aus der Arbeit von

en 1909.

(5). The fight against sleeping-sickness. Nature, London,

83, 'Pp. D. 279-281. — Verf. berichtet über einige Werke über die

Ätiologie und Therapie der Schlafkrankeit; Koch, Beck und Kleine

1909; Bibliogr. of Trypanosomiasis 1909; Sleeping sickness Bu-

reau Bull. 13, 1910; Rep. Measures Suppr. Sleep. Sickn. Uganda.

Colonial Reports 1909.

Minchin, E. A. und Thomson, J. D. The transmission of

Trypanosoma lewisi by the rat-flea (Ceratophyllus fascisatus)

Prelim. comm. London, Proc. R. Soc., 82 B, p. 273—285. — Verf.

ziehen aus den Experimenten folgende Schlüsse: Der Rattenfloh

Ceratophyllus fasciatus kann Tryp. lewisi von infizierten Ratten

auf nicht infizierte übertragen. Die Übertragung geht durch eine

eyclische Methode vor sich, die direkte Übertragung konnte

nicht bewiesen werden. Die Inkubationszeit beträgt im Mini-

mum 6 od. 7 Tage, meist mehr. Die Fortpflanzungsperiode be-

trägt über 12 Tage. Beginn des Cyklus mit einer Fortpflanzung

Crithidia-ähnlicher Formen im Rectum. Vergl. hierzu die gegen-

sätzlichen Befunde von Nöller 1912.

Minchin, E. A. und Woodeock, H. M. Observations on certain

blood-parasites of fishes oceuring at Rovigno. Quart. Journ.

Mier. Sei. London, 55, p. 113—154, pls. VIII—X. — Verf. be-

schreiben aus Trigla lineata folgende Formen: Haemogregarına

Publikationen und Referate. 265

Rovignensis n. sp. mit anschließenden allgemeinen Betrach-

tungen, Tryp. sp. (cf. triglae), Tryp. rajae aus Raja sp. Vergleich

der Kernstruktur bei Haemogregarinen mit der bei Trypanosomen.

Im Anhang wird noch erwähnt, daß Halteridium auf Grund seiner

Kernstruktur zu den Trypanosomen zu stellen ist.

Miropolski, A. D. (Sur le developpement des noyaux de

‚Pseudospora (Diplophysalis) nitellarum Cienk.) St. Petersburg,

Sceripta bot. .26, (1908—1909), p. 57—67. Russisch, u. res. frang.,

p. 68—70, pl. IV.

Mitchell, €. vide Powers, J. H.

Montague, A. A. Tertiary Yaws. Journ. trop. Med. London,

XIII, p. 161—162. — Verf. berichtet über einige Fälle von

tertiärer Yaws.

*Montgomery, E. R. (1). Trypanosomes and their trans-

mission (fly-disease) in relation to South Africa. Bulawayo Proc.

Rhod. Sci. Ass., 9, p. 14—28; Discussion t.c. p. 283—40.

— (2). Coceidiosis of cattle in East Africa. Paris, Bull.

soc. path. exot., 3, p. 2933—296. — Verf. berichtet über das Vor-

kommen von Rindercoceidiose, verursacht durch Zrimeria stiedae

in Ost-Afrika und beschreibt einige Formen des Parasiten, sowie

Klinisch-Atiologisches. "

Morgenroth, J. und Halberstädter, L. Uber die Beeinflussung

der experimentellen Trypanosomeninfektion durch Chinin. Sitz.-

Ber. Königl. Preuß. Akad. Wiss. Berlin, XXXVIII, p. 732—748.

— Nach früheren Autoren, z.B. Laveran und Mesnil, Lingard,

Moore, Nierenstein u. Todd, Plimmer u. Thomson, Uhlenhuth u.

Woithe, übt das Chinin keine Wirkung auf die Trypanosomen-

infektion aus; nach Vassal u. Mesnil tritt bei großen Dosen ein zeit-

weiliges Verschwinden der Trypanosomen ein. Bei gleichzeitiger

Injektion der Chininbase mit der Infektion und forcierten Dosen an

den 4—6 folgenden Tagen fanden die Verf., daß bei Nagana eine

Schutzwirkung eintritt. Versuche mit Chininderivaten zeitigten

eine längere Dauer der Prophylaxe. Eine intraperitoneale In-

jektion von Chinin bei Mäusen hat überhaupt keine Wirkung auf

die Infektion gehabt. — Fortdauernd mit Chininkakes gefütterte

Mäuse waren 2 Wochen nach der Infektion frei von Trypano-

somen und völlig munter. Es ergibt sich, daß die Wirkung des

Chinins durch Fütterung bei weitem derjenigen bei subkutaner

Injektion überlegen ist. Die Verf. weisen darauf hin, „daß eine

Prüfung der pharmokologischen Funktion der Chininderivate im

Trypanosomenversuch Anwendungsmöglichkeiten für die Malaria

erkennen lassen wird‘. — Methodik des Reagenzglasversuches

der Wirkung von Chinin auf Trypanosomen und seine Hinzuziehung

zum Tierversuch. Hinweis auf die Vorstellungsweise der Chemo-

receptoren Ehrlichs. — DBezeichnet man die Verteilung einer

eingeführten Verbindung beim chemotherapeutischen Versuch ge-

mäß ihrer Einwirkung als Organotropie und Parasito-

tropie und die gesamte Wirkung eines Mittels als Orga-

266 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

nergie und Parasitergie, so erscheinen die beiden

Faktoren in folgender Form:

Parasitergie — Parasitotropie + Empfindlichkeit (Parasit)

Organergie — Organotropie + Empfindlichkeit (Wirt).

Ist nun z. B. Parasitergie = Organergie, so ergibt eine weitere

Gleichsetzung, ‚daß das gleiche Resultat durch die verschieden-

artigste Gestaltung dieser einzelnen Faktoren erreicht werden

kann‘. Je nachdem nun das Resultat so ausfällt, daß Organergie

> oder <“ Parasitergie, so fehlt ‚die Berücksichtigung eines

Zeitfaktors in seiner Beziehung zur absoluten Menge bzw.

zur Konzentration des chemo-therapeutisch wirkenden Agens in

den Körpersäften“. In praktischer Weise wird diesem Zeitfaktor

schon Rechnung getragen bei der Chemotherapie der Spirochäten-

krankheiten nach Ehrlich durch ‚Depotbehandlung‘ und

„den starken, aber vorübergehenden Schlag“.

Morgenstern, P. vide Knuth, P.

Moroff, Th. (1). Bemerkungen über vegetative und repro-

duktive Erscheinungen bei Thalassicola. Biol. Centralbl., 30,

p. 210—216, 5 Textfigg. — Verf. teilt in der vorläuf. Mitteilung

einiges über Pigmentbildung und Kern mit. Die Nucleolenbildung

aus Chromatinfäden stellt einen lebhaften, mit der vegetativen

Tätigkeit der Zelle in engster Beziehung stehenden Prozeß dar.

Durch die Nucleolenauflösung wird starkes Kernwachstum hervor-

gerufen. Kleine Chromatinkörner, die ins Plasma übertreten,

wachsen zu den sog. Eiweißkugeln mit ihren Konkretionen heran.

Beim Beginn der reproduktiven Tätigkeit löst sich der Kern zum

größten Teile auf, gleichzeitig findet Chromidialbildung statt.

Die meisten der übrig gebliebenen Chromatinfäden ordnen sich

radiär um einen zentralen Punkt an. Die erste Spindelbildung

wurde nicht beobachtet. Bei der Isosporenbildung zerfällt der

große Kern in eine Anzahl Partien, die einen oder mehrere Tochter-

kerne in sich enthalten. Die Einzelheiten sind noch unvollkommen

beobachtet. Auch die Chromidialkörnchen werden bei späteren

Kernteilungen ziemlich gleichmäßig auf die Tochterkerne verteilt.

Bei der Anisosporenbildung liegen kleine homogene Sekundär-

kerne im Plasma; es entstehen Kerngruppen (Nester). Einen

Dimorphismus der Kerne hat Verf. nicht gefunden, auch keine

mitotischen Kernteilungen bei anisosporenbildenden Individuen.

Die Untersuchungen von Borgert, Hartmannu. Ham-

mer beweisen das Gegenteil.

— (2). Über vegetative und reproduktive Erscheinungen

bei T’halassicola. Festschr. f. R. Hertwig, Bd. 1, Jena (G. Fischer),

p. 73—122, Figg. — Verf. gibt zunächst kurze Bemerkungen über

die Lebensweise von T'halassicola, ferner über Systematik; dann

folgt eine Beschreibung der Struktur, der vegetativen Erschei-

nungen, der Vorbereitung zur reproduktiven Tätigkeit, der Kern-

vermehrung, der Gametenbildung. Angaben von Hartmann und

Hammer werden bezweifelt und auch die theoretischen An-

Publikationen und Referate. 267

schauungen Hartmanns über Polyenergidität angegriffen. Im

allgemeinen Teil werden noch besonders behandelt die Natur der

Nucleolen, die trophischen und die Geschlechtschromidien.

Morse, M. Shaking Experiments with Protozoa. Proc. Soc.

Exper. Biol. Med. New York, 7, p. 58—60. — Verf. hat mit

Paramaecium, Stylonychia, Euglena und Spirillum Schüttelver-

suche angestellt. Nur Pa. u. Eugl. waren nach 24 Std. fast alle

tot; die Teilungsfähigkeit der noch unversehrten Paramaecien

war nicht herabgesetzt. Es wird versucht, die Herabsetzung der

Beweglichkeit durch Zerstörung von Enzymen zu erklären.

Mräzek, M. Sporozoenstudien. Zur Auffassung der Myxo-

eystiden. Arch. f. Protistenk., 18, H.3, p. 245—259, pls. XIV

u. XV u. 5 Textfigg. — Verf. beschreibt aus Limnodrilus und Lum-

briculus weitere Myxocystiden. Das, was früher als Myzxocystis

angesehen wurde, ist kein selbständiger Organismus, sondern eine

von Mikrosporidien infizierte Wirtszelle, speziell ein Lymphocyt.

Der eigentliche Parasit bleibt zeitlebens ein intrazellulärer Parasit,

der im Innern der Wirtszelle auch zur Sporenbildung schreitet.

Die feineren Vorgänge der Sporenbildung wurden nicht verfolgt;

sie ist nicht endogen, sondern aus jedem Meronten geht eine Spore

hervor. Die Frage nach der morphologischen Bedeutung der

vermeintlichen ‚‚vegetativen‘‘ Kerne der Microsporidien wird

dahin entschieden, daß mit Korotneff u. Schröder

gegen Stempell diese als Kerne der Wirtszelle aufzufassen

sind. Weder vermischt sich das Plasma des Parasiten und der

Wirtszelle vollkommen, noch umwächst der Parasit den Kern

der Wirtszelle, so daß schließlich dieser Kern bis in die Cyste mit

aufgenommen wird. Verf. überträgt die festgestellten Verhältnisse

ohne weiteres überhaupt auf die Microsporidien, so daß es wohl

nirgends eine endogene Sporenbildung innerhalb mehrkerniger

Meronten gibt und daß die Plistophoridae und Glugeidae sich

ähnlich wie die Nosematidae verhalten. Verf. glaubt, daß die

Cnidosporidia eine ziemlich natürliche Gruppe sind und daß man

nicht von Ordnungen wie Myzosporidia, Microsporidia usw. reden

soll, sondern eher von einer Anzahl gleichmäßiger Familien. Vert.

bezweifelt ferner, daß es eine Neosporidie gibt. Durch negative

Entscheidung würde das System der Sporozoen angeblich be-

deutend vereinfacht werden. Hinsichtlich der Myxosporidien

glaubt Verf. manche Zweifel an den bisherigen Deutungen aus-

sprechen zu müssen.

Mühlens, P. (1). Über Züchtungsversuche des Spirochaeta

pallida und Sp. refringens, sowie Tierversuche mit den kultivierten

Spirochäten. Klin. Jahrb., 23, p. 339—362, 3 pls. — Verf. be-

richtet über Züchtungsversuche einer Spirochaete aus einer

syphilit. Drüse und deren eventuelle Identität mit der pallıda.

Spezif. Erscheinungen im Tierversuch (mit Ausnahme von Serum-

reaktionen beim Affen und Kaninchen) konnten nicht erzielt

268 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

werden. Verlust der Virulenz. Immunisierungsversuche. Morpho-

logie der Arten.

— (2). Praktische Ergebnisse aus dem Gebiete der Tropen-

krankheiten. Berlin. klin. Wochenschr., 47, p. 439—440. Kurzes

Sammelreferat über Dysenterie, Leberabscesse u. a. m.

— (3). Über einheimische Malaria quartana. Deutsche med.

Wochenschr., 36, p. 1948—1951, 4 Figg. — Verf. konstatiert, daß

einheimische Malaria quartana noch vereinzelt in Nordwest-

Deutschland vorkommt; M. tertiana ist in einzelnen Gegenden

noch ziemlich zahlreich zu finden. Behandlung mitChininschokolade

bei einem Kinde. Diagnostische Methodik.

Müller, R. Brasilianische Menschentrypanosomen (Med. Ges.

Kiel). München. med. Wochenschr., 59, p. 1860. — Verf. referiert

und demonstriert über Schizotrypanum ceruzi, dem Erreger der

brasilianischen menschlichen Trypanosomiasis. Siehe Chagas

1909 u. 1910.

Murray, J. Mieroscopie life at Cape Royds. British Antaretic

Expedition 1907—1909. Reports on Scientific Investigations,

vol. 1 (Biology). London (W. Heinemann), p. 17—40, pls. I—-VIN.

— Verf. zählt u. a. einige gefundene Infusorien, Rhizopoden und

Heliozoen auf. Die beigefügten Abbildungen genügen nicht.

Musgrave, W.E. Intestinal Amoebiasis without Diarrhoea.

A Study of fifty fatal Cases. Philippine Journ. Sci. Manila B.

(Med. Sci.), 5, p. 227—231. — Verf. berichtet über die Pathologie,

Symptomatologie und Diagnose der Amoebiasis ohne Diarrhoe.

Mutermileh vide Comandon.

Mutermilch, St. vide Levachiti, €.

Nägler, K. (1). Fakultativ parasitische Micrococcen in

Amöben. Arch. f. Protistenk., 19, p. 246—254, pl. 16. — Verf.

beschreibt bei einer nicht näher bestimmten Amöbenart einen

Fall von fakultativem Parasitismus einer Coccenart im Proto-

plasma. Durch Infektionsversuche mit anderen Amöben und

durch Kulturversuche wurde mit Sicherheit festgestellt, daß es

sich nicht um Nahrungsprodukte, Zelleinschlüsse irgend welcher

Natur usw., sondern um echte Micrococcen handelt. Ferner

wurden im Plasma der Amöben Chytridiaceen und gefressene

kleinere Amöben beobachtet. Auf Grund des Teilungsbildes der

fraglichen Gebilde sind auch Beziehungen zu den C'hlamydozoen

auszuschließen. Als Begleiterscheinung der Infektion trat immer

eine Kerndegeneration auf. Zum Schluß gibt Verf. noch eine

Übersicht der schon beschriebenen Fälle von Parasitismus von

Coccen in Protisten. Die Bakterien sind teils Parasiten, teils

Nahrungsmittel verschiedener Protisten. Im obigen Falle handelt

es sich unzweifelhaft um fakultativen Parasitismus.

— (2). Prowazekia parva n.sp., eine weitere freilebende

Binucleatenform. Arch. f. Protistenk., 21, p. 111—116, pl. 7. —

Verf. beschreibt eine freilebende Binucleatenform, die aus pflanz-

lichem Detritus auf Agarplatten gezüchtet wurde. Die neue Art

Publikationen und Referate. 269

unterscheidet sich von Prowazekia erui Hartmann u. Cha-

gas, ist aber gleichfalls doppelkernig. An der Kernnatur des

Blepharoplasten kann auf Grund des Teilungsbildes kein Zweifel

bestehen (gegen Alexeieff kommen auch echte Bodoformen

ohne einen Kinetonucleus vor). Infolge der nahe am Plasma-

körper sich hinziehenden Schleppgeißel und der ganz am Rande

liegenden Basalkörner steht obige Form dem Trypanoplasma

helicis (J ollos) sehr nahe. Die Kernteilung stellt sich als Pro -

mitose dar. Verf. betont am Schluß die Wichtigkeit der Auf-

stellung der Binucleaten (Hartmann) für die phylogenetische

Betrachtungsweise.

— (3). Protozoa (mit Ausschluß der Foraminifera) für 1907

u. 1908. (Jahresberichte.) Arch. f. Naturgeschichte, Berlin, 75,

Bd. 2, H. 3, XVIIIa, p. 1—81 u. 1—55. = Ber. Natg. nied. Tiere,

Berlin, N. F. 25, gleiche Paginierung.

— (4). Das Befruchtungsproblem und der Dualismus des

Geschlechtes. Sexual-Probleme, Zeitschr. f. Sexualwiss. u. Sexual-

politik, 6. Jahrg., H.1, p. 23—31. — Mit besonderer Berück-

sichtigung der Protozoen.

Neeb, H. M. Parthenogenesis of the female crescent body.

Journ. trop. Med., London, 13, p. 98$—102, 5 Figg.; ferner Phi-

lippine Journ. Sei., Manila, B. (Med. $ei.), 5, p. 179—187, pl. I.

— Vgl. ferner den Bericht pro 1909. Nach schlechten Abbildungen

berichtet Verf. über Parthenogenese bei Tropica- und Tertiana-

Macrogameten.

Negre, L. Sur le stade intestinal de la Sarcosporidide e la

souris. Paris, C.R. Soc. Biol., 68, p. 997—998. — Verf. beschreibt ein

Stadium der Sarcosporidien aus dem Verdauungskanal der Maus;

Cyste in der Darmschleimhaut von 36 « mit 9—10 Protoplasma-

massen. Sie ist im Begriff, in die Darmhöhlung zu fallen, wo ähn-

liche freie Cysten gefunden wurden.

Negre, L. et Bridre, J. Sur la nature du parasite de: la

—1267. — ‚Le serum d’animal a Iymphangite epizootique se

comporte comme un serum anti-levure, et le parasite de la

lymphangite epizootique comme une levure.‘“ Blastomyceten-

Natur des Parasiten.

Negri, A. (1). Sulla morfologia e sul ciclo del parassita della

rabbia (Neurocyctes hydrophobiae Calkins). — Roma, Mem. Acc.

Lincei, Ser. 5, 7, p. 469—486, pls. I—IIl. — Vgl. ferner im Be-

richt pro 1909.

— (2). Beobachtungen über Sarkosporidien. III. Mitteil.

Centralbl., Abt. 1, 55, Orig., p. 373—383, 1 pl. — Verf. hat zu

seinen Untersuchungen über Sarkosporidien vor allem Mus decu-

manus var. albinus verwendet, und seine Befunde beziehen sich

auf Sarcocystis muris. Nach historischen und technischen Be-

merkungen werden die einzelnen Entwicklungsstadien aus der

Peetoralmuskulatur beschrieben. Die jüngste Form ist ein Stadium

100)

70 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

von 25 « Länge nach dem 50. Tage der Infektion. Am 20, Tage

treten neben den Sporoblasten auch schon gewöhnlich 4 paar-

weise miteinander vereinigte Sporozoiten auf. Der wahrscheinlich

einzellige, sehr kleine Parasit zerfällt bereits früh in Sporoblasten,

die sich lebhaft durch gleichmäßige Zweiteilung vermehren. Bei

einer technisch gut durchgeführten Methodik werden sich hin-

sichtlich der Cytologie noch wichtige Resultate ergeben. (Siehe

die Arbeiten von Erdmann, Rh.)

Neiva, A. Formagäo de raca do hematozoario do impaludismo

rezistente & quinina. (Über die Bildung einer chininresistenten

Rasse des Malariaparasiten) Mem. Inst. Osw. Cruz, Rio de

Janeiro, T. II, fasc. 1, p. 131—140. — Verf. hat bei der Malaria-

bekämpfung in Brasilien gefunden, daß die Dosen von Chinin,

die anfangs ausreichten, sich später als unzulänglich erwiesen, und

daß Leute, die infolge regelmäßigen Chiningebrauches an Ort und

Stelle fieberfrei waren, sofort nach Rückkehr in die Stadt und

Aufhören des Chiningebrauches wieder Anfälle bekamen. Die zu

Anfang therapeutisch wirkenden Dosen waren später nicht im-

stande, dieselbe Wirkung zu erzielen. Die Einleitung der Malaria-

bekämpfung wird ausführlich dargestellt. Verf. zeigt, daß sich

bei der Behandlung eine Parasitenrasse von immer größerer

Chininresistenz gebildet hat. Schließlich wurden täglich un-

unterbrochen 0,5 Chinin eingegeben, und hierbei unterblieb das

Auftreten von Anfällen; allerdings traten Recidive auf, wenn die

Gegend verlassen und das Einnehmen unterbrochen wurde. Verf.

glaubt, daß eine Chininbehandlung, die nicht auf einmal die ganze

Bevölkerung trifft, den Plasmodien schließlich die Mittel liefert,

nach und nach eine solche Resistenz gegen das Specificum zu

erwerben, daß sie zur Bildung einer unterschiedlichen Rasse

führt.

*Nichols, H. J. Experimental Yaws in the Monkey and

Rabbit. Journ. exper. Med., 12, p. 616—622, 2 pls.

Nicolle, Ch. et Manceaux, L. (1). Recherches sur le bouton

d’Orient. Cultures, Reproduction experimentale, Immunisation.

Ann. Inst. Pasteur, 24, p. 673—720. — Die Verf. berichten ein-

gehend über die Orientbeule und ihren Erreger Leishmania tropica.

Kulturen sind leicht zu erhalten. In den Kulturen unterscheiden

sich L. tropica und infantum nicht. Das Virus der Orientbeule ist

pathogen für Menschen, niedere Affen und Hunde, auch von den

Kulturen herrührend. Die Inkubationszeit kann variieren zwischen

16-166 Tagen. Die angestellten Infektionsversuche werden ein-

gehend klargelegt. Ferner wird auf die Beziehungen zum Kala-

Azar und die Rolle der Hunde bei den Leishmaniosen hingewiesen.

— (2). Reproduetion experimentale du bouton d’Orient

chez le chien. Origine canine possible de cette infection. Paris,

C. R. Acad. Sci., 150, p. 889-891. — Verf. berichten über die

experimentelle Erzeugung der Orientbeule beim Hunde und den

eventuellen Ursprung dieser Infektionskrankheit vom Hunde aus.

Publikationen und Referate. 271

Nur der Hund ist außer Mensch und Affen für das Virus emp-

fänglich.

Nicolle, Ch. vide Conor, A. vide Conseil, A.

Nierenstein, E. Über Fettverdauung und Fettspeicherung

bei Infusorien. Zeitschr. allg. Physiol. Jena, 10, p. 137—149, 1 pl.

— Verf. hat die Fettverdauung bei Paramaecium caudatum unter-

sucht und kommt zu dem Schluß, daß diese in den Nahrungs-

vakuolen so vor sich geht, daß das Fett darin in seine wasser-

löslichen Komponenten zerlegt wird und daß letztere im Endo-

plasma wieder zu Neutralfett synthesiert werden.

Nuttall, @. H. (1). On Haematozoa occuring in a animals

in Africa. (Piroplasma rossi n. sp. und HAaemogregarina canis-

adusti n. sp., found in the jackal.) Parasitol. Cambridge, 3, p. 108

—116, pls. X u. XI. — Verf. beschreibt aus Canıs adustus die

neuen Arten Piroplasma rossi und Haemogr. canis-adusti, ferner

aus Bos caffer typicus die neue Art Spiroch. bovis caffris.

— (2). The degenerative appearances observed in Piro-

plasma canis and in Trypanosoma brucei following upon drug

treatment. Parasitol., Cambridge, 3, p. 202—209. — Verf. be-

richtet über Degenerationsphänomene bei Piroplasma und Tryp.

brucei nach Behandlung mit Trypanblau und Arsenophenylglyecin.

— (3). The drug treatment of canine piroplasmosis. Journ.

trop. vet. sci., Caleutta, 5, p. 437—463. — Siehe auch Parasitol.,

Cambridge, 2, 1909. Versuche mit verschiedenen Heilmitteln, von

denen Trypanrot und Trypanblau die besten Erfolge gaben.

Nuttall, H. 6. and Hadwen, S. The successful drug treatment

of canine piroplasmosis, together with observations on the effects

of drugs upon Piroplasma canis. Journ. trop. vet. sci., Calcutta,

5, p. 106—134. — Auszug aus Parasitol., Cambridge, 2, 1909.

Heilversuche mit Trypanrot und Trypanblau.

Nuttall, H. G. and Fantham, H.B. Theileria parva, the

parasit of East Coast fever in cattle. Parasitol., 3, p. 117—129,

pl. XII. — Vergleiche die betr. Arbeiten von Gonder, R. über

Theileria parva, den Erreger des Ostküstenfiebers.

Nuttall, 6. H. F. u. Striekland, C. Die Parasiten der Pferde-

piroplasmose resp. der „Biliary Fever“. Centralbl. Bakt., Abt. 1,

96, Orig., p. 524—525. — Verf. beschreiben 2 Parasiten bei der

Pferdepiroplasmose. Der eine von Laveran aus Südafrika

beschriebene Parasit Piroplasma equi müßte Nuttalia equi nach

Franea heißen, da er kleine charakteristische Kreuzformen

bildet, während die zum Genus Piroplasma gehörigen Formen

(P. bovis, canis, pitheci) Birnformen bilden. Die sog. Kreuzformen

sind Teilungsformen: die Entwicklung aus einem amöboiden Ge-

bilde und das Ausschlüpfen von 4 kleinen Parasiten aus den

Blutkörperchen wurde festgestellt. Ein echtes Piroplasma kommt

in Rußland vor bei Pferden, hierfür wird der Name P. caballı

vorgeschlagen. Weitere Untersuchungen müssen feststellen, ob

Hämoglobinurie nur bei Pferden durch Anwesenheit von P.

272 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

caballı bedingt wird. Beide Parasiten sind durch Blutimpfung

resp. durch Zecken übertragbar. ‚‚Piroplasmosis“ und ‚Nut-

talliosis°‘ können wohl nebeneinander vorkommen.

Oboldujeif, G. A. (Piroplasmose der Pferde und Hunde in

West-Sibirien.) Mess. med. vet. soc. St. Petersburg, 22, p. 969

— 970. — Russisch. I

Ogata, M. Über die Atiologie der Tsutsugamushi-(Kedani)-

Krankheit. Tokyo, p. 1—14, 2 pls. — Verf. berichtet zusammen-

fassend über die Ätiologie der Tsutsugamushi-Krankheit, die

durch eine Milbe übertragen wird auf die Menschen, die in Japan

mit Gräsern und Bäumen eines bestimmten Flußgebietes in Be-

rührung gekommen sind. Die Inkubationszeit nach dem Milben-

stich beträgt durchschnittlich 10 Tage. Am 3. oder 4. Erkrankungs-

tage treten Roseolen auf, weiterhin Fieber, Delirien usw. Die

Mortalität beträgt 30—50%. Als Erreger sieht der Verf. eine

Gregarine an, deren Natur als solche aber sehr in Zweifel

gezogen werden muß. Was über Form und Entwicklung dieser

angeblichen Gregarine mitgeteilt wird und die betreffenden Ab-

bildungen, die übrigens sehr schlecht sind, lassen eher an einen

Pilz denken. Jedenfalls ist eine bessere cytologische Nachprüfung

dringend notwendig. Kaninchen und Affen erkranken auch auf

dem Infektionsherde durch Milbenstiche mit Geschwürbildung

auf der Stichstelle, was mit Lymphdrüsenanschwellung und

hohem Fieber verbunden ist. Über die Reinkultur des Parasiten

geht man am besten mit Stillschweigen hinweg. Eine Behandlung

mit Quecksilberschmierkur und Jodkalium innerlich hatte guten

Erfolg. Auch als Prophylaxe wird die Schmierkur empfohlen.

Ollwig u. Manteufel. Babesia mutans in Deutsch-Ost-Afrika

und Beobachtungen zur mikroskopischen Differentialdiagnose

dieses Parasiten. Arch. Schiffshygien., Leipzig, 14, p. 765—769.

— Verf. berichten über Vorkommen von ‚„Pseudoküstenfieber‘“,

verursacht durch Babesia mulans in Stäbchenform. Letztere

beim Küstenfieber lassen eher auf eine Mischinfektion schließen.

Ostenfeld, C. H. (1). Thorosphaera, eine neue Gattung der

Coceolithophoriden. Berlin, Ber. Deutsch. bot. Ges., 28, p. 397

—400. — Verf. beschreibt aus dem Mittelmeer vom sog. Nano-

plankton der interessanten Kalkflagellaten die neue Gattung und

Art Thorosphaera elegans.

— (2). Marine plankton from the east-Greenland sea.

II. Protozoa. Köbenhavn, Danmarks-ekspeditionen til Grönlands

Nordostkyst 1906—1908, No. 11. Reprint from Medd. Grönl.,

43,, p. 289—299. — Verf. beschreibt einige Planktonten in zum

Teil neuen Varietäten, Tintinnodeen und Radiolarien. Keine

neue Art. 2

*— (3). Halosphaera and Flagellata. Cons. perman. intern.

Explor. Mer. Bull. trim. Res. Crois period., p. 20—38.

Pace, D. Parasiten und Pseudoparasiten der Nervenzelle.

Vorläufige Mitteilung über vergleichende Parasitologie des Nerven-

Publikationen und Referate. 273

systems. Zeitschr. Hygien., 60, p. 62—74, pls. 1—4. — Verf. be-

richtet über Pseudoparasiten der Nervenzelle bei Tollwut und

läßt es noch unentschieden, ob die Babesschen schwarzen

Körnchen eventuell hierher zu zählen sind. Weiter wird be-

richtet über Nosema lophii und die Angaben Dofleins werden

bestätigt und erweitert.

Paredes, €. vide Horta, A.

Parisi, B. (1). Sphaerospora caudata n. sp. Zool. Anz., Leipzig,

36, p. 253—254. — Verf. beschreibt die neue Art Sphaerospora

caudata aus Alosa finta Cuv. var. lacustris.

— (2). Su alcuni flagellati endoparassiti. Arch. f. Pro-

tistenk., 19, p. 232—238, pl. XIV. — Verf. beschreibt einige

parasitische Flagellaten: T’richomonas (Tetratrichomonas) Prowa-

zeki Alex. aus Crocodilus palustris Less, Tr. (Trichomastix) ortho-

pterorum n.Sp. aus Periplaneta, Ectobia und Gryllotalpa, Tr. sp.

aus Amblyostoma mezxicanum. Ferner gibt er eine Gattungs-

diagnose von Trichomonas und Trichomastix.

Pascher, A. (1). Über einige Fälle vorübergehender Kolonie-

bildung bei I leken. (Vorläufige Mitteil.) Berlin, Ber. D. bot.

Ges., 28, p. 339—350, pl. IX. — Verf. berichtet über primitive

Koloniebildung bei Chromulina fenestrata, Pyramidochrysis modesta,

Ochromonas sociata n. sp. botrys, Chromulina Hokeana n.sp. Die

Genese der Koloniebildung versucht Verf. übersichtlich zu ver-

anschaulichen. Von Chlamydomonas sp. werden Palmella-Stadien

beschrieben.

— (2). Chrysomonaden. Der Großteich bei Hirschberg in

Nord-Böhmen. Naturwissenschaftliche Untersuchungen, veranlaßt

und herausgegeben von der Gesellschaft zur Förderung deutscher

Wissenschaft, Kunst und Literatur in Böhmen. Monogr. u.

Abhandl. Intern. Revue ges. Hydrobiol., Hydrogr., Bd. 1, Leipzig

(W. Klinkhardt), p. 1—66, 3 pls. — Verf. beschreibt u. a. neu:

Chrys apsıs (n. g. pro Chromulina fenestrata), Ohromulina 4 n. spp.,

Ochromonas 2, Dinobryon 1, Sphaleromantis (n. g. pro C'hromulina

ochracea).

Patella, V. La genese endotheliale des leucocytes mono-

nucleaires du sang. Siena (S. Bernardin), IX+242 pp., zahlreiche

Abbildungen. — Für die Protozoologie von vergleichendem Werte.

Patton, W.S. (1). Experimental infection of the Madras

bazaar fly, Musca nebulo Fabr. with Herpetomonas muscae-

domesticae. Paris, Bull. Soc. path. exot., 3, p. 264—274, 1 pl. —

Verf. berichtet über das Vorkommen von Herpetomonas Muscae-

domesticae in Musca nebulo und über positive Übertragungs-

versuche. Einzelne Entwicklungsstadien werden beschrieben. Die

Cysten dienen zur Erhaltung der Art bei ungünstigen Lebens-

gl nicht zur Infektion.

(2). Preliminary report on a new Piroplasm (Piroplasma

En n.sp.) found in the blood of the hounds of the Madras

hunt and subsequently discovered in the blood of the jackal

Archiv für Naturgeschichte 18

1911. v1. 2.

274 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

(Canis aureus). Paris, Bull. Soc. path. exot., 3, p. 274-281, Fig.

— Verf. beschreibt die neue Art Piroplasma gibsoni aus Canis

aureus und berichtet über Infektions- und Heilungsversuche.

Ätiologisches. Im Blute kommt noch vor Leucocytogregarina (gen.

Porter) rotundata n. sp.

— (8). Rhynchomonas luciliae n.g. n.sp. A new Flagellate

parasitic in the malphigian tubes of Lucilia serenissima Walk.

Paris, Bull. Soc. path. exot., 3, p. 300—303. — Vgl. auch Chatton.

Verf. beschreibt aus den Malphigischen Gefäßen von Lucilia

serenissima die neue Form Rhynchomonas luciliae; der Gattungs-

name ist bereits durch Klebs für eine andere Form vergeben

worden.

Paulsen, 0. Marine Plankton from the East-Greenland sea;

collected during the ‚Danmark Expedition‘ (1906—08). III. Peri-

diniales. Meddel om Grönland, Kobenhavn, 43, p. 303—318, Figg.

— Beschreibung u. Aufzählung der Arten. Neu ist: Peridinium

varicans, Apodinium( ?) Chaetoceratis.

Penard, E. Rhizopodes nouveaux. Revue Suisse Zool.

Geneve, 18, p. 929—940, pl. VIII. — Verf. beschreibt einige neue

Thecamoeben: Pseudodifflugia caudata, Heleopera sordida, Dif-

flugia subaequalis, Nebela gracilis, Plagiopyxis n. g. callıda.

Peter, Otto. Morphologische und experimentelle Studien über

ein neues, bei Rindern in Uruguay (Südamerika) gefundenes

Trypanosoma. Leipzig. Barth.

Petschenko, B. de. (1). Contribution & l’etude de l’immunite

chez les protozoaires. Centralbl. Bakt. Abt. 1, Orig., p. 90—92,

6 Textfigg. — Verf. beschreibt einen parasitischen Microorganismus

Müllerina paramaecii in Paramaecium caudatum und seinen

Infektionsmodus. Die Paramaecien besitzen eine „reaction

defensive‘‘, die schließlich zur Immunität führen kann. Weitere

Versuche sind nötig, um das interessante Phänomen aufzuklären.

— (2). (Die faserig-kristalloiden Strukturen im Körper der

Paramaecien. Varsava, Izv. Univ., 6, p. 1—8, 7, p. 9—16, 8, p. 17

—32, 9, p. 33—52, 2 pls.

Pettit, A. vide Laveran, A.

Pfeffer, E. Untersuchungen über die Gregarinen im Darm

der Larve von Tenebrio molitor. Arch. f. Protistenk., 19, p. 107

—118, pl. III. — Verf. hat seine Untersuchungen besonders zum

Zwecke der Beschreibung der intracellulären Stadien an poly-

cystiden Gregarinen und der Vermehrung innerhalb des Wirtes

angestellt. Als Material diente hauptsächlich Olepsidrina poly-

morpha und cuneata. Es werden mehrere intracelluläre junge

Stadien beschrieben. Auf diesem Stadium kann Vermehrung

durch Teilung stattfinden, vielleicht nur bei günstigen Nahrungs-

verhältnissen. Die Larven infizieren sich durch Aufnahme von

Gregarinenceysten mit der Nahrung. Die Sporozoiten wandern

völlig in die Darmepithelzellen ein, wo also Vermehrung statt-

finden kann. Am Ende des Larvenstadiums verlassen die Gre-

Publikationen und Referate. 275

garinen normalerweise als Cysten den Darm, so daß der Darm

der Puppe frei von Parasiten ist. Verf. geht noch kurz’auf verein-

zelt gefundene, eigentümliche Kernverhältnisse ein, ferner auf

Krystalle in den Mehlwurmfäces.

Philippi, E.E Die Grundproben der Deutschen Südpolar-

Expedition. (Deutsche Südpolarexpedition 1901-1903, Bd. 2,

Geogr. u. Geol.) Berlin (G. Reimer), p. 411—616, pls. XXXI

—XXXIII. — Verf. gibt u. a. auch eine zusammenfassende Be-

schreibung der Grundproben, nebst Überblick des geographischen

Vorkommens.

*Pierantoni, U. Su alcuni EZuplotidae del golfo di Napoli.

Napoli Boll. Soc. nat., 23 (Ser. II, 3), (1909), 1910, p. 53—64.

tav. I. — Vgl. Bericht pro 1909. Beschrieben werden Oytologie

und Entwicklungsgeschichte von Uronychia transfuga, magna

n.sp. Diophrys appendiculatus. Referat im Neapl. Jahresbericht.

Pinto, M. vide Franca, C.

*Pittaluga, G. Viaje de estudio & la Guinea espafola. Ob-

servaciones acera del Trypanosoma gambiense y algunos otros

Protozoos parasitos del hombre y del los animales (contin.) Madrid,

Rev. Acad. Cien., 8, p. 446—459, 554-562, 673—686.

Plimmer, H. G. Report on the deaths which occured in the

Zoological. Gardens during 1909. London, Proc. Zool. Soc., I,

p. 131—136. — Vgl. Bericht pro 1909.

*Poletajeff, V. (Über Sarcosporidien, durch welche eine

Affektion des Endocardiums bei Rindern hervorgerufen wird.)

Arch. veterin. nauk. St. Petersburg, 40, p. 802-804. — Russisch.

Polieard, A. Sur la coloration vitale des Trypanosomes. Paris

C. R. Soc. Biol., 68, p. 505—507. — Toxische Wirkungen einiger

Farbstoffe. Sensibilität der Reaktion von Meyer. Unabhängig-

keit der ‚„nephrites aigues congestives et purement degeneratives‘“.

Ponselle, A. Contribution & la physiologie du Spirillum

gallinarum. Assimilation du glucose. (Premiere note). C. R. Soc.

Biol. Paris, 69, p. 307—309.

Popoff, M. Über den Einfluß chemischer Reagentien auf den

Funktionszustand der Zelle. München, Sitz. Ber. Ges. Morph., 25,

p. 55—58. — Verf. berichtet über die Einwirkung von CO, u. NH,

auf die Zelle; es entstehen Änderungen, die Depressionszuständen

entsprechen.

Porter, A. (1). The structure and life-history of Orithidia

melophagia Flu, an endoparasite of the sheep-kid, Melophagus

ovinus. Quart. Journ. Mier. Sci. London, 55, p. 189—224, pls. XII

u. XIII. — Verf. beschreibt eingehend Crithidia melophagia Flu

aus der Schaflaus Melophagus ovinus. Die Postflagellatenstadien

in Eiern und Puparien dienen zur erblichen Übertragung. Fort-

pflanzung durch Längsteilung im Flagellaten- und Praeflagellaten-

zustand. Neu beschrieben wird noch Spirochaeta melophagi.

— (2). The Leucocytozoa. A rejoinder to Mr. C. M. Wenyon.

Parasitol. Cambridge, 3, p. 239—244. — Vgl. Science 1909. Ent-

19*

276 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

gegnung auf die Arbeit von Wenyon, 1910, Parasitol. III, p. 63

— 72. Siehe daselbst.

Porter, A. u. Fantham, H. B. On a new Trypanoplasm, Tryp.

dendrocoeli n. sp., from Dendrocoelum lacteum. London, Proc.

Zool. Soc., IL, p. 670—671. — Siehe Fantham.

Potrzobowski vide Lenartowiez, J. T.

Powers, J. H. and Mitchell, Cl. A new species of Paramae-

cium (P. multimieronucleata) experimentally determined. Biol.

Bull. Wood’s Holl. Mass., 19, p. 324—332, 1 pl. — Verf. beschreiben

als neu Paramaecium wmultimicronucleata, Konjugationsstadien

und stellen Betrachtungen an über Varietäten der Kernausbildung

bei den Paramaecien.

Pringsheim, H. Die Variabilität niederer Organismen. Eine

deszendenz-theoretische Studie. Berlin, J. Springer, 216.pp. —

Verf. hat eingehend die Variabilität der niederen Organismen

studiert und behandelt diese und deren Vererblichkeit eingehend.

Im allgemeinen bietet diese Studie eine gute Einführung in die

betr. Probleme der Deszendenztheorie.

Prineipi, P. Contributo allo studio dei radiolari miocenici

italiani. Boll. soc. geol. ital., 28, p. 1—22, 1 tav. — Verf. be-

schreibt 24 n. spp. der Gattungen: Cenosphaera 2, Carposphaera 2,

Thecosphaera 2, Dorysphaera, Doryconthidium 2, Dorylonchidium 2,

Stylosphaera, Amphisphaera 2, Amphistylus 2, Staurolonche, Stauro-

sphaera, Hexastilus, Haliomma, Cenellipsis 2, Lithapium, Prunulum,

Dorydruppa 2, Druppocarpus, Lithatractus, Porodiscus 5, Ommato-

discus 2, Stylodictya, Spongotrochus, Dorcadospyris, Tristylospyris,

Dictyospyris, Cornutanna, Cyrtocalpis 2, Lynchocanium, NSetho-

cyrthis 3, Theocorys 3, Stichocorys 3, Lithomitra, Eucyrtidium 3,

Eusyringium, Syringium n. g., Cyrtocapsa 3, Stylocapsa n. g. 3;

2 n. var. in Siphonosphaera und Xyphosphaera.

Prowazek, 8. v. (1). Giftwirkung und Protozoenplasma.

Arch. f. Protistenk., 18, 3. H., p. 221—244, 7 Textfigg. — Verf.

hat versucht die Giftwirkung einiger Pharmaka auf das Zell-

protoplasma zu studieren. Als Untersuchungsobjekt dienten

Colpidium, Polytoma, Glaukoma und Limax-amöben. Zentri-

fugieren beeinflußt die Colpidien in keiner nennenswerten Weise,

erst nach 2 Stunden trat Gestaltsveränderung ein. Gegenüber

den Giften Chinin, Atropin und Strychnin zeigten sich bei den

Colpidien individuelle Resistenzunterschiede, die überhaupt bei

den Protisten allgemein verbreitet zu sein scheinen. Die Resistenz

ist nicht Folge einer sexuellen Differenz oder des Teilungsrythmus,

sondern ergibt sich aus dem innern Stoffwechsel und stellt sich

bald zwischen den Sprößlingen einer Zelle ein. Die Resistenz-

verschiedenheit verschwindet bei lebhafter Teilung der Infusorien

und nimmt im Laufe des Alterns ab, ist aber während des Lebens

Schwankungen unterworfen, die kurvenmäßig darstellbar sind.

Die Morphe und ihr Verhältnis zum Colpidiumplasma wird eingehend

behandelt. Das Plasma ist flüssig und stellt ein kolloidales hetero-

Publikationen und Referate. BIN

genes zweiphasisches System dar, dessen Phasen sich in Kapillar-

flächen berühren. Wahrscheinlich handelt es sich um eine Emulsion

von Eiweißkörpern mit Lipoiden ; letztere rufen die innere Struktur-

spannung hervor. Die einzelnen Stadien des Kavulationsprozesses

infolge tropfigerEntmischung werden beschrieben. Die Pellicula

läßt sich durch Saponin isolieren, die Basalkörper der Cilien be-

finden sich im Diplosomzustand. ‚Es scheint, daß die Farbstoffe

in die Protozoenzelle nicht allseitig durch Osmose, sondern lokal

durch Adsorption aufgenommen werden.“ Die typische Cyto-

morphe steht in engstem Zusammenhang mit der spezifischen

Pellicula; das Entoplasma ist ein flüssiges Emulsoid. Die Diplo-

somen sollen an die Peripherie vom Hauptkern aus rücken, sich

reihenweise anordnen und die Morphe der Ciliaten bestimmen.

Verf. wird dementsprechend den Ausbau einer Theorie der Cyto-

morphe versuchen und eine Typenlehre der Protisten ent-

werfen. — Die Giftwirkung einiger Alkaloide auf das Plasma

scheint in erster Linie physikalisch, dann erst chemisch zu sein.

Physikalisch erklärbare Strukturänderungen und Entmischungen

spielen im Plasma die Hauptrolle. Die Alkaloide haben als eigent-

liche plasmatische Lebensgifte zu gelten. Die chemischen Prozesse

von untergeordneter Bedeutung folgen der van’t Hoff’schen Regel.

Die Wirkung der Alkaloide auf das Plasma äußert sich darin, daß

zuerst die deutliche Alveolarstruktur auftritt, die nach einiger

Zeit verschwindet, worauf die tropfige Entmischung einsetzt und

die Lipoidgebilde sich nCavula umwandeln. Gleichzeitig tritt

Zellaufblähung ein, da die Strukturspannung nachläßt. Manche

Einzelheiten werden hierbei beschrieben. Die Wirkung der Alka-

loide unter Einfluß von Alkali und Säuren wurde ferner studiert.

Die Colpidien werden unter Einfluß von schwachen Säuren durch

die Alkaloide nicht beeinflußt, im Gegensatz zu alkalischen Sub-

stanzen. Letztere beschleunigen sogar den Eintritt des Todes bei

Gegenwart obiger Alkaloide sowie einiger Farbstoffe, die durch

den Charakter der sog. Vitalfarbstoffe ausgezeichnet sind. Die

Säuren arbeiten der Cavulation entgegen und sind im physika-

lischen Sinne Antagonisten der Alkaloide in bezug auf die Proto-

plasmastruktur. Die der Atropinwirkung ausgesetzt gewesenen

Colpidien kann man durch Zentrifugieren, Auswaschen und

Pilocarpinzusatz noch retten vom Tode, falls die Morphe

nicht bereits zu sehr entspannt worden war. Der Chromatin-

inhalt des Kernes zerstiebt im Plasma und färbt sich nicht mehr

so stark. Die Chromidien treten demnach als solche kaum aus

dem Kern aus und sind einer Metagenese unterworfen. Das

Todesphänomen koinzidiert jedesmal mit der Vernichtung der

individuellen Morphe. Verf. neigt bei allen Experimenten mehr

zu einer physikalischen als zu einer chemischen Deutung.

— (2). Studien zur Biologie der Protozoen. V. Arch. f.

Protistenk., 20, p. 201—222, 7 Textfigg. — Verf. untersuchte

zunächst die Struktur des Protoplasmas unter Benutzung einer

278 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

neuen, sehr hellen Nernst-Lampe von Zeiss und mit Hülfe des

Dunkelfeldapparates. Das Entoplasma der Colpidien weist keine

Elementarstrukturen auf, das Plasma der untersuchten Formen

(Colpidium, Cyelidium, Monas u. a.) verhält sich wie ein einfaches

physikalisch-chemisch definierbares Hydrosol. Erst bei Druck-

wirkung tritt tropfige Entmischung ein, und es bilden sich die

sog. Cavula, die sich unter dem optischen Bilde einer Dreikante

aneinanderlegen. Sie besitzen einen optisch leeren, flüssigen

Inhalt und ‚‚sind gleichsam von einem irreversiblen Teil des

plasmatischen Hydrosolkomplexes in der Form einer Nieder-

schlagsmembran umhüllt, in der auch Lipoide vorhanden zu sein

scheinen. Die Granula im Macronucleus sollen die kleinsten des

Zelleibes sein und ändern das gebeugte Licht in Blau. Die Tat-

sache, daß hier keine organische Elementarstruktur vorkommt

veranlaßt den Verf., vom Substanzproblem abzusehen und auf

eine funktionelle Analyse der intensiv mannigfaltigen Naturfak-

toren hinzuweisen. Die Fähigkeit der Haptogenmembranbildung

kann, wie angestellte Versuche lehren, eingebüßt werden. Die

Bildung der Haptogenmembran wird in mehreren Fällen be-

schrieben und auf ihre Sichtbarkeit hingewiesen. In dem Kapitel

über das Teilungsproblem der Protozoen, wird darauf hingewiesen,

daß beim Wachstum der Zellen zwei Prozesse vorzuliegen scheinen,

wobei der eine (Plasmawachstum) Vorgang kontinuierlich erfolgt,

während der Kernwachstum plötzlich unter Flüssigkeitsaufnahme

und gleichzeitiger Strukturänderung erfolgt. Die Zellteilung

der Infusorien stellt einen komplizierten Vorgang dar, der aus von

einander zunächst unabhängigen Partialprozessen entstanden

sein mag. Derartige Funktionen können experimentell getrennt

zur Darstellung gebracht werden. Der Teilungsvorgang setzt

sich zusammen z. B. aus Zelleibdurchschnürung, Cytostombildung,

Teilung des Macro- und Micronucleus u. a. m. Hunger kann nur

als Reiz für die Teilung funktionieren. Der Einfluß von Saponin

und Äther wurde bei reinen Colpidienkulturen studiert. Eine

wesentliche Beeinflussung findet nicht statt. Chinin- und Atoxyl-

lösungen vermindern die Teilungsfähigkeit. Eine Erhöhung der

Teilungsfrequenz scheint einzutreffen bei Ätropin 1: 2000 nach

einer Einwirkungsdauer von 8—10 Minuten, nachdem es dann

nach gründlichem Auswaschen durch Pilocarpin 1 :1000 ver-

drängt worden ist. Physiologische Kochsalzlösung schädigt

zuerst; die Individuen, die sich nicht abgerundet haben, erholen

sich in reinem Wasser nach einiger Zeit wieder und vermehren

sich lebhafter als die Kontrolltiere. — Ferner hat Verf. Versuche

angestellt über die Wirkungsweise von zwei sogenannten lipoid-

löslichen Substanzen auf die Protozoenzelle. Ein Vitalfarbstoff,

mit dem die Colpiden vorbehandelt werden und wobei sie an

Resistenz gegenüber Chinin gewinnen, ist z. B. Methylenblau.

Seine Wirkungsweise wird folgendermaßen plausibel zu machen

gesucht. Er besetzt zuerst die Angriffspunkte in der Zelle, an die

Publikationen und Referate. 279

dann das wirksamere Chinin nicht mehr in derselben Weise heran-

treten kann.

— (3). Weitere Untersuchungen über das Vaccinevirus.

Centralbl. Bakt., Abt. I, 56, Orig., p. 41—43. — Verf. hat Immu-

nisierungsversuche mit abgetötetem Vaccinevirus angestellt. Die

geimpften Corneae zeigten kein Guarnerisches Phänomen.

Mit dem bei 58° C. abgetöteten Virus wurden Albinokaninchen

subkutan mit Erfolg immunisiert. Versuche mit Kolloidfiltern

zeigten, daß die Filtrierungsflüssigkeit keim- und virusfrei war,

aber es konnte mit ihr nicht immunisiert werden. Ferner wurden

Versuche angestellt über die Absorption der kleinen Erreger, über

ihre Größe und Sinkgeschwindigkeit.

— (4). Contribuicäo para o conhecimento da fauna de

protozoarios do Brasil. (Beitrag zur Kenntnis der Protozoen-

fauna Brasiliens.) Mem. Inst. Osw. Cruz, Rio de Janeiro, T. II,

p- 149—158, 3 Textfigg. — Verf. teilt zunächst eine Liste der in

Brasilien gefundenen Protozoen mit. Von Trinema enchelys Ehrb.

wurde die Teilung in vivo verfolgt, mit intranucleärer Spindel-

bildung und Unsichtbarwerden des Innenkörpers. Bei C'hilomonas

paramaecium Ehrb. wurden angeblich Kernteilungsstadien ge-

funden. (Nach Nägler 1912 sind dies keine normalen, bei der

eigentlichen Teilung auftretenden Stadien.) Bei Prorodon teres

Ehrb. wurden Zweiteilungen in der Cyste beobachtet. In Colpoda-

cysten wird der Kavulationsprozeß beschrieben, ‚„Intimstruk-

turen‘ sind nicht vorhanden. Im Flusse Tiete in Sao Paulo wurden

Planktonproben entnommen, ferner Schlammproben aus Tümpeln

in der Nähe von Tiete. Testaceen kamen reichlich und in großen

Formen vor, sie liefern auch das eupotamische Plankton des

Tiete. Neue Formen wurden nicht gefunden, alle Formen kommen

auch in Europa vor. Dies deutet auf ein kosmopolitisches Vor-

kommen aller freilebenden Protozoen hin. Immerhin bleiben

eingehende Untersuchungen hierüber abzuwarten.

— (5). Parasitische Protozoen aus Japan, gesammelt von

Herrn Dr. Mine in Fukuoka. Arch. Schiffshygien., Leipzig, 14,

p- 297—302. — Verf. beschreibt neue Protozoen-Arten aus Japan:

Spirochaeta minei aus dem Darm von Termes lucifugus, Sp. mactrae

aus dem Kristallstiel von Mactra sulcataria, Leptomonas sarco-

phagae aus dem Darm der Fleischfliege, Haemogregarina_ hetero-

donti aus den roten Blutkörperchen von Heterodontus japonicus,

H. emydae aus Emyda japonica, H. clemmydis aus Clemmys

japonicus, Toxoplasma talpae aus dem Leberausstrich eines Maul-

wurfes, T'helohania grapsi aus der Muskulatur des Krebses Grapsus

haematocheira D.H., ferner bereits bekannte Myxosporidien,

Coceidien und Gregarinen.

— (6). Einführung in die Physiologie der Einzelligen

(Protozoen). Leipzig (B. Teubner), IV+172 pp., 51 Figg. — Kurze

Einführung in die Probleme der Physiologie der Einzelligen, im

allgemeinen noch sehr fragmentarisch und unübersichtlich gehalten.

280 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Prowazek, S. v. vide Chagas, (.

Pulvirenti, G. Sulla cultura della ZLeishmania. Catania, Atti

acc. Gioenia, Ser. 5, 3, M&m., 18, p. 14, 1 tav. — Verf. berichtet

über das Kulturverfahren bei Leishmania.

Quidor, A. Un appareil pour la microphotographie stereo-

scopique et son utilisation en syst@matique. Arch. zool. exper.,

(5) 5, Notes et Revue, p. LXVII-LXXXI, 5 Figg.

. . *Ratz, J. Trichomonas galamb mäjäban (Trichomonas aus

der Leber der Tauben). Allatt. Közlem. Budapest, 9, p. 192

—197, 209—210.

Rätz, St. v. Über die Struktur der Sarcosporidienschläuche.

Arch. Tierheilk., Berlin, 36, Suppl.-Bd., p. 573—589. — Verf. be-

richtet nach historischer Einleitung über das Vorkommen der

Sarcosporidien, dann über die Form der Schläuche und die Struktur

des Ectoplasmas, ferner über Struktur des Entoplasmas und der

Sporen. Die Sporen enthalten an einem Pol eine Kapsel und

einen Faden. Beziehungen zu den Nosematiden.

Rauchbaar, G. vide Knuth, P.

Reichenow, E. (1). Haemogregarina stepanowi. Die Ent-

wicklungsgeschichte einer Haemogregarine. Arch. f. Protistenk.,

20, p. 251—350, pls. XVI—XIX, 8 Textfigg. — Verf. gibt eine

ausführliche Darstellung des Entwicklungskreises der Haemo-

gregarına stepanowi aus Emys orbicularis; der Zwischenwirt ist

Placobdella catenigera. Nach einleitenden historischen Bemer-

kungen, sowie über Material und Methoden, folgt Anatomisches

und Physiologisches über den Egel. Zunächst wird dann die ge-

schlechtliche Entwicklung der Hämogregarine im Egel beschrieben.

In dem Nahrungsbrei, der aus dem Magen in den resorbierenden

Darm übergeht, wurden 2 deutlich von einander verschiedene

Formen gefunden. Zunächst liegen sie noch in den Blutkörper-

chen und sind beide ‚‚bohnenförmig‘. Sie sind aber bereits sexuell

differenziert. Die Macrogameten zeichnen sich durch großen

Reichtum an Reservestoffen aus; der Kern ist klein und rund

und enthält einen Binnenkörper, der als Nucleolus bezeichnet

wird. Das Plasma der Micerogametocyten ist weniger mit Re-

servestoffen beladen, der Kern ist groß und zeigt im optischen

Durchschnitt eine rechteckige Gestalt; ferner ist er sehr chromatin-

reich und kann auf späteren Stadien gleichfalls einen Nucleolus

enthalten. Volutin im Plasma ist nicht vorhanden. Die Micro-

gametocyten weisen an einem Ende eine eigentümliche Streifung

auf, die Verf. mit irgendeiner Bewegungsmöglichkeit zum Auf-

suchen der Macrogameten in Beziehung bringt. Beide Sexual-

formen sind fast gleich groß, 12—15 u lang, 4%—6 u breit. Nach-

dem diese Formen im Darm angelangt sind, verlieren sie ihre

schützende Hülle und werden mehr wurmförmig. Die Macro-

gameten legen sich dem Darmepithel an, die meisten Mierogameto-

cyten sind frei im Nahrungsbrei verteilt. Noch ehe nun der Micro-

Publikationen und Referate. 281

gametocyt mit einem Macrogameten zusammentrifft, ordnen sich

die Chromatinkörner im Kern zu Reihen, und ein Nucleolus wird

sichtbar. Nach dem Aneinanderlegen umgeben sich beide Sexual-

formen mit einer dünnen Hülle. Die Chromatinkörnchen des

Macrogameten ordnen sich nach erfolgter Verschmelzung zu einer

geringen Anzahl getrennter Anhäufungen zusammen. Eine Re-

duktion war nicht aufzufinden, sie muß bereits früher bei Bildung

der weiblichen Zelle erfolgt sein. Der Kern des Microgametocyten

wird noch chromatinreicher, sein Nucleolus wird ausgestoßen.

Hier erfolgt nun eine zweimalige Teilung, die zur Bildung von

4 Mierogametenkernen führt. Der Macrogamet ist inzwischen be-

trächtlich gewachsen, der Microgametocyt dagegen geschrumpft.

Verf. vermutet, daß die vier (nach der Befruchtung drei) sich

chromatisch färbenden Gebilde neben dem Macrogameten nicht

nur die Microgametenkerne, sondern die ganzen Micro-

gameten darstellen. Die Vorgänge bei der Konjugation zeigen

nun eine große Übereinstimmung mit den bekannten Vorgängen

bei vielen Coceidien. Es dringt ein Microgamet in den Macro-

gameten ein und lockert sich auf. Daraufhin erfolgt die Kern-

kopulation, wobei beide Kerne in Auflösung begriffen sind, um

zur Bildung einer Befruchtungsspindel zu schreiten. Das Chro-

matin ordnet sich fadenförmig an, mitten in der von dem Chro-

matinknäuel eingenommenen Vakuole liegt der weibliche Nucleolus

Das Chromatin verteilt sich schließlich auf mehrere größere

Klumpen, und das Syncaryon verkürzt sich. Der weibliche

Nucleolus verschwindet erst, wenn sich der Kern nun zur Teilung

anschickt. Bei der folgenden Sporogonie verläuft die erste Kern-

teilung völlig abweichend von den übrigen Teilungen. Der Kern

wird spindelförmig, die Stränge aufgereihter Chromatinkörner

ordnen sich in seiner Längsachse. Bei der Bildung der Tochter-

kerne lassen sich einige achromatische Bahnen erkennen, auf

denen die Chromatinkörner auseinander rücken. Die zweite

Teilung schließt sich unmittelbar an die erste. Die Achsen der

beiden sich teilenden Kerne stehen senkrecht aufeinander. Auf

dem Stadium mit 4 Kernen scheint eine längere Rast gemacht

zu werden. Es folgt nun noch eine dritte Teilung, die in gleicher

Weise wie die zweite verläuft. Damit sind 8 Kerne gebildet. Nun

erfolgt die Ausbildung der Sporozoiten. Die Sporozoiten lösen

sich nach ihrer Ausbildung vom Restkörper los und werden frei.

Dann dringen sie durch die Darmwand in die umhüllenden Blut-

räume bis zum Rückengefäß. Die Sporozoiten erleiden dort

monatelang keine Veränderungen. Sie gelangen durch das Rücken-

gefäß beim Blutsaugen des Egels durch den auf den Magen aus-

geübten Druck durch das ‚Herz‘ und die ‚„lymphatische Drüse“

in das in den Rüssel sich fortsetzende Gefäß. Es findet also eine

unmittelbare Übertragung der Sporozoiten statt auf die Schild-

kröte. Die Infektionsversuche sind einwandfrei, aber noch nicht

ganz geklärt. Im allgemeinen scheinen erwachsene Egel als Über-

282 Protozoa mit Ausschluß der Forsminifera für 1910.

träger zu dienen. Die im Egel zurückbleibenden Sporozoiten

können im Gewebe des Wirtes weiter wandern. Gelegentlich

kommen geschwulstartige Ansammlungen vor. Eine Weiterent-

wicklung findet nicht statt. — Die Vermehrung der Hämogrega-,

rinen in den Schildkröten ist eine Schizogonie. Die Teilungs-

stadien finden sich ausschließlich im Knochenmark, die heran-

wachsenden Formen überall im Blute. Die Anzahl der gebildeten

Merozoiten variiert von 12—24 und 6—4, je nach der Größe der

Schizonten. Die Verschiedenheit der Schizonten steht mit dem

verschiedenen Alter der Infektion in Zusammenhang. An die

Schizonten mit sechs oder weniger Merozoiten schließen sich die

Entwicklungsstadien an, die zur Ausbildung der sexuell differen-

zierten Formen führen. Das Eindringen der Sporozoiten in die

Blutkörperchen wurde nicht beobachtet, ebensowenig die Art des

Heranwachsens der Sporozoiten zu den Schizonten. Eingehend

werden nun beschrieben die Merozoiten, Schizonten und ver-

schiedene diese betreffende Punkte. Es scheint, als ob hier chro-

matische Substanz aus dem Kern ausgeschieden und vom Zell-

körper ausgestoßen wird. Bei der Schizogonie scheint auch kein

Teilungsapparat vorhanden zu sein. (Siehe dagegen Hart-

mann u. Chagas.) Die Bildung der geschlechtlich diffe-

renzierten Formen findet folgendermaßen statt. Wenn das Kern-

wachstum hinter dem des Zellkörpers zurückbleibt und die Volutin-

körner zunehmen, so resultiert ein Macrogamet, im umgekehrten

Falle ein Mierogametocyt. Auch indifferente Formen werden ge-

bildet, die wieder zu Schizonten heranwachsen. Weitere Kapitel

behandeln die Beziehungen der Hämogregarinen zum Wirte. Es

tritt keine schädigende Wirkung auf die Wirtszelle ein. Einfluß

der Überwinterung des Wirtes auf die Hämogregarinen; die

Macrogameten besitzen die längste Lebensdauer. — Das Volutin

dient als Reservestoff für den Kern. Im chemischen Sinne ist

Volutin ein Sammelbegriff, nur in physiologischen Sinne einheitlich.

Über die Natur des Nucleolus (Caryosom) siehe Hartmann

u. Chagas, da die Ansichten des Verf. nicht zutreffen,

wenn er z.B. behauptet, dem Caryosom käme keine Bedeutung

als Kernteilungsorgan zu. — Die verwandtschaftlichen Be-

ziehungen der Hämogregarinen zu den Coccidien stehen fest.

Und zwar dürfte die Gattung Haemogregarina zu dn Ade-

leiden hinzuzuziehen sein. Sie unterscheidet sich von Adelea,

Klossia und Orcheobius durch das Fehlen der Sporen, von Legerella

durch die Achtzahl der Sporozoiten. Auch das von Christo-

phers beschriebene Leucocytozoon canis glaubt Verf. hier ein-

reihen zu können. Aus der Ähnlichkeit der H. stepanowi mit dem

einzigen bisher aus einem Egel bekannt gewordenen Coceidium

Orcheobius herpobdellae ergibt sich, daß der Egel als eigentlicher

Wirt und die Schildkröte als Zwischenwirt zu bezeichnen sind.

Auch die Ansichten des Verf. über die Beziehungen der Hämo-

gregarinen zu den Plasmodien erfahren von Hartmannu.

Publikationen und Referate. 283

Chagas ihre Zurückweisung. Der von Hahn aufgestellte

Entwiceklungskreis der H. st. ist abzulehnen.

— (2). Der Zeugungskreis der Haemogregarina stepanowi.

Berlin, Sitz.-Ber. Ges. natf. Freunde, p. 1—4, pl. 1. — Kurzer Aus-

zug und vorläufige Mitteilung von 1.

Reichenow, E. vide Schellack, C.

Reicher, K. Mikrokinematographische Aufnahmen der Dunkel-

feldbeleuchtung und Makrokinematographie. Berliner klim.

Wochenschr. 47, p. 484—486.

Reinhard, L. (Vorläufige Mitteilung über das Phytoplankton

des Schwarzen Meeres, der Meeresstraße von Kertsch, des Bospo-

rus und des Marmarameeres). Kharkoff Trav. Soc. nat., 43, (1909),

p. 295—323. — Russisch.

Rennie, T. vide Evans, H. 6.

Rhumbler, L. Die verschiedenartigen Nahrungsaufnahmen

bei Amöben als Folge verschiedener Colloidalzustände ihrer Ober-

flächen. Arch. Entw.-Mech. Leipzig, 30, Tl. 1, p. 194—223. —

Verf. beschreibt die verschiedenen Arten der Nahrungsaufnahme

bei den Amöben durch Circumvallation und Invagination bei einer

Amöbe mit expansiv gespannter fester Pellicula. Bei der Amöba

terricola wird die Expansiv-Spannung nachgewiesen und eine

mechanische Erklärung gegeben. ‚Alle seither bekannt gewordenen

Arten der Nahrungsaufnahme der Amöben lassen sich ebenso wie

ihre Bewegungserscheinungen auf Grund der Spannungs-Anomo-

genitäten in kolloidalen Grenzflächen in einfacher einleuchtender

Weise mechanisch erklären.‘

Richards, O0. vide Ferguson, A. R.

Ringenbach, — vide Leboeuf, A.

Ringenbach, — vide Martini, @.

Rissler, R. S. und Gomez, L. The Prevalence of intestinal

Parasites in Rizal and Cavite Provinces and in Cagayan Valley.

Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Seci.), 5, p. 2695—275. —

Die Verf. haben u. a. Infektionen mit Amoeben nur selten be-

obachtet, ferner von Monaden und Balantidium coli.

Robertson, M. Studies on Ceylon Haematozoa. No. II.

Notes on the life-cycle of Haemogregarina nicoriae Cast. und

Willey. Quart. Journ. Mier. Sei. London, 55, p. 741—762, pls.

XXXI-—XLI. — Verf. beschreibt den Entwicklungszyklus

von Haemogregarina nicoriae aus der ceylonischen Schildkröte

Nicoria trijuga. Als Überträger fungiert der Egel Ozobranchus

shipleyi Harding. Im Blute der Schildkröte kommen zwei Formen

vor. Der Kern enthält ein zentrales Korn und periphere Anord-

nung der Chromatinbrocken. Eine Art Zentrodesmose scheint

aufzutreten. Die eine Art der Schizogonie vollzieht sich in den

Kapillaren der Lunge, die andere in den Erythrocyten. Bei ersterer

entstehen circa 70, bei letzterer nur 6—8 Merozoiten, die die sexuelle

Generation darstellen sollen. Im Darm des Egels finden sich

nun bewegliche Formen. In der Darmwand findet Kopulation statt,

234 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

wie bei Coccidien. Nach stattgefundener Reduktion des Micro-

gametocytenkernes tritt Verschmelzung der Gametenkerne ein.

Da nur nach Schnittserien gearbeitet worden ist, so liegen hier

nur unvollkommene Beobachtungen vor. Die entstehenden acht

Sporozoiten wandern in die Blutgefäße und gelangen beim Sau-

gen wieder in die Schildkröte. Damit ist der Entwicklungszyklus

geschlossen, der im wesentlichen mit dem von Reichenow

(1910) bei H. stepanowi beschriebenen übereinstimmt.

Robinson, M. On the Reproduction of Kalpidorhynchus areni-

colaeCughm. Quart. Journ. mier. sci. N. S., 54, p. 565—576, 1 pl. —

Verf. beschreibt die Fortpflanzung von Kalpidorhynchus arenicolae,

im einzelnen die Kopulation, die Zygote, die Sporogonie und die

Kerndetails. Die Caryosombildung soll vor sich gehen durch

‚„& kind of internal budding from the chromatin layer“.

Rodenwaldt, E. vide Gonder, R.

Rodet, A., Rubinstein et Bader. Trypanosomiases et in-

fections bacteriennes; influence reciproque; etude experimentale.

Bull. Soc. path. exot. Paris, 3, p. 83—87. — Verf. stellen fest,

daß im Verlauf einer Trypanosomeninfektion mit Tr. brucei eine

Receptivität gegenüber bakteriellen Infektionen vorliegt. Bei der

experimentellen Nagana liegt kein günstiger Einfluß vor.

Rodhain, J. vide Broden, A.

Rogers, L. The Prevention and Treatment of amoebie Ab-

scess of the Liver. Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Sei.),

5, p. 219—228. — Verf. berichtet über die Beziehungen des

tropischen Leberabscesses zur Amoebendysenterie und die Be-

handlung mit Chinin.

Rosenbusch, F. Uber eine neue Encystierung bei Crithidia

muscae domesticae. Centralbl. Bakt. Orig., Abt. I, 53, p. 387—393,

1 pl. — Verf. betont nochmals, daß ein- und zweigeißelige

Formen in der Fliege vorkommen, die zu den Gattungen Orithidia

und Herpetomonas gehören. Bei der Eneystierung der Cr. werden

der Blepharoplast, sowie die Geißel leicht eingezogen, bis das

Basalkorn in der hinteren Zellspitze zu liegen kommt, nun wird die

Geißel im Zellinnern aufgespult, allmählich tritt Formänderung

und Zellverkleinerung ein. Die Lagenänderung des Blepharoplasten

beruht auf einer Zusammenziehung des Zentralfadens, die Ein-

rollung der Geißel auf der Kontraktion der Mantelfasern. Des

weiteren werden nun verschiedene Crithidia-Formen beschrieben

und auch eine zweite Art der Encystierung mit Ablagerung einer

sich stark färbenden Substanz am Hinterende, die scheinbar aus

dem Kern entsteht. Verf. glaubt die Encystierungstiere als Ga-

metenbildung aus den indifferenten Flagellatenstadien ansehen

zu können. Doch sind weitere Ergebnisse abzuwarten.

Ross, R. and Thomson, D. (1). A case of sleeping sickness

studied by precise enumerative methods: regular periodical in-

crease of the parasites disclosed. London Proc. R. Soc., 82 B,

p. 411—415; Ann. trop. Med. Liverpool 4, p. 261—265; Brit. med.

Publikationen und Referate. 285

Journ. London I, p. 1544—1545. — Verf. berichten über einen Fall

von Schlafkrankheit, bei dem sie ein periodisches Anwachsen der

Parasiten konstatiert haben; eine dies veranschaulichende Kurve

ist beigefügt.

— (2). Some enumerative studies on malarial fever. London

Proc. R. Soc., 82 B, p. 159—173; Ann. trop. Med. Liverpool, 4,

p- 267—306. — Vergl. 1.

Roth, W. Die parasitischen Chilodontiden C’hilodon eyprini

Moroff und Chilodon hexastichus Kiernik. Wochenschr. Aquarienk.

Braunschweig, 7, p. 73—75, 89—90. — Populär.

Roubaud, E. (1). Influence des reactions physiologiques des

Glossines sur le developpement salivaire et la virulence des Try-

panosomes pathogenes. Paris, C. R. Acad. Sci., 151, p. 729— 732. —

Verf. berichtet über experimentelle Versuche über den Einfluß

physiologischer Reaktionen der Glossinen auf die Entwicklung

des Trypanosomen. Auch über die Modifikation der Virulenz

wurden Versuche angestellt.

— (2). Precisions relatives aux phenomenes morphologiques

du developpement des Trypanosomes chez les Glossines. Paris,

C. R. Acad. Sci., 151, p. 1156—1158. — Verf. kommt zu dem Re-

sultat, daß die verschiedenen Phänomene, die bei den Glossinen

unter dem Einfluß des Virus auftreten können, folgende sind:

eine temporäre Darmkultur ohne Bedeutung für die Übertragung,

eine Dauerkultur, die zur Totalinfektion des vorderen und mittleren

Darmes führt, ferner „une evolution par fixation directe dans la

trompe, de la forme Trypanosomes du sang — Leptomonas —

Tryp. salivaires‘‘ und endlich ‚‚une evolution par fixation indirecte

dans la trompe“.

Roubaud, E. vide Bouet, G.

Roudsky, D. (1). Sur l’inoculation de cultures de T’rypanosoma

leunsi Kent au rat blanc et sur la receptivite de la souris blanche

Verf. hat nach intraperitonealer Impfung der Ratte mit Tryp.

lewisi aus Novy-Kulturen neben den gewöhnlichen Formen auch

leicht veränderte gefunden die nach und nach verschwinden.

Nach einer zweiten Passage in der Kultur, treten im zirkulierenden

Blut anormale Fortpflanzungsformen auf, die auch auf weiße Mäuse

übertragbar sind.

— (3). Sur le Trypanosoma lewisi Kent renforcee. Paris,

C. R. Soc. Biol., 69, p. 3834—386. — Verf. schließt aus seinen an-

gestellten Versuchen, daß sich Trypanosoma lewisi unter gewissen

Bedingungen bei der weißen Maus akklimatisieren kann; die nicht

pathogenen Trypanosomen der kleinen Säugetiere stammen viel-

leicht von einer Art ab, die sich später den einzelnen Wirten

speziell angepaßt hat.

— (2). Sur la receptivite de la souris blanche a T’rypano-

soma lewisi Kent. Paris, C. R. Soc. Biol., 68, p. 458—460. — Verf.

konstatiert, daß im allgemeinen die Impfung der Maus mit Tryp.

285 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

lewisi aus Kulturen, von Fortpflanzungsformen oder nach peri-

tonealer Punktion der Ratte nicht von Erfolg begleitet ist. Indes

erwies sich Rattenblut infektiös für die Maus, wenn die Ratten

einer Serie angehörten, bei der jedes Tier mit sehr starker Dosis

einer stark infizierten Ratte infiziert war. ‚On peut se demander

s’il n’etait pas fait une sorte de selection des formes ayant tendance

a passer rapidement dans le sang‘.

Reux, J. Faune infusorienne des eaux stagnantes des environs

de Geneve. Geneve Mem. Inst. Nat., 19, 1909 p. 1—150, pls.

I—VIM.

Rovereto, G. Conclusions d’une etude sur l’Oligocene des

Apenins de la Ligure. Paris, Bull. Soc. Geol. Ser., 4, 10, p. 66—72.

Row, R. Further Observations on Leishmania tropica of Oriental

Sore of Cambay, India. Brit. Med. Journ. London II, p. 807-808.

Rubinstein, — vide Rodet, A.

Ruttner, F. vide Brehm, V.

Sachs-Mücke, — Trachomkörperchen im trachomatösen

Tränensack. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 56, Orig., p. 112—114,

1 pl. — Konstatierung der Trachomkörperchen im Tränensack.

Sangiorgi, 6. Experimentelle Untersuchungen über die Über-

tragung der Protozoen-Blutparasiten durch Cimezx_lectularius.

Centralbl. Bakt. Abt. 1, 57, Orig., p. 81—84. — Verf. sieht die

Übertragung von Trypanosomen von infizierten auf das gesunde

Tier durch den einfachen mechanischen Stechakt der Bettwanze

als möglich an. In der Leibeshöhle der Wanze entwickeln sich

keine Trypanosomen, nur 3—4 Tage erhalten sie sich einigermaßen,

dann verschwinden sie unter Degenerationserscheinungen. Sie

büßen daselbst ihre Virulenz in der angegebenen Zeit nicht ein

und sind imstande, nach einer 18—20 Tage langen Inkubationszeit

das Versuchstier (Mus albus) zu töten. Zu den Versuchen wurden,

die Trypanosomen der Nagana und des Mal de Caderas verwendet.

Schaefer, A. A. Selection of food in Stentor coeruleus Ehrbg.

Journ. Exper. Zool. Philadelphia Pa., 8, p. 75—132, tables I—XI.

2 Text figg. — Verf. konstatiert eine ausgesprochene Selektion

des Stentor coeruleus bei der Aufnahme der Nahrung, unverdauliche

Partikelchen werden fortgeschleudert. Einige Organismen, z. B.

Trachelomonas und Phacus longicaudus werden nicht aufgenommen.

Bei starkem Hunger ist die getroffene Selektion weniger gut aus-

geprägt. Der Zustand des Gesättigtseins wird genauer beschrieben

und die gleichzeitige Abhängigkeit von empfangenen Reizen.

Die Selektion ist nur physikalisch, nicht chemisch.

Schellack, €. und Reichenow, E. Neue Beiträge zur Kenninis

der Lithobius-Coccidien. (Vorgetragen von Reichenow.a.d.

VIII. internat. Zool.-Kongreß in Graz 1910). Zool. Anz., 36,

p. 380—383. — Verf. konstatieren zunächst, daß die bereits von

Leger beschriebene Barrouxia alpina am häufigsten in Lithobius

forficatus neben den anderen 3 bekannten Coceidien-Arten vor-

kommt. Siedlecki hat die Schizogonie dieser Art irrtümlich

Publikationen und Referate. 237

in den Zeugungskreis von Adeles hinein gedeutet. Die Cysten

entwickeln sich sehr langsam. Die Figuren von Jollos, die er

von Adelea gibt, sollen sich fast sämtlich auf diese Barrouzxia alpina

beziehen. Verf. haben mit reinem Material gearbeitet und kommen

zu wesentlich anderen Resultaten als Jollos. Die Binnen-

körper im Kern nehmen nicht durch Teilung, sondern durch

Neubildung an Zahl zu. Die Kernteilung im jungen Schizonten

stellt eine primitive Amitose dar (?), ‚bei der die Binnenkörper

sich nicht teilen, sondern auf die Tochtertiere verteilt werden.“

Die Bildung der Micro- und Macrogameten wird kurz angedeutet,

auch ein Überblick über den Zeugungskreis gegeben. Die Schizo-

gonie von Adelea und die Ausbildung des Sexual-Formen wird in

gleicher Weise angedeutet. Bei der Reifung der Macrogameten

soll der Binnenkörper gegen Schaudinn und Siedlecki

nicht ausgestoßen, sondern aufgelöst werden. Auch die Reduktion

nach Jollos wird in Zweifel gezogen. Die Befruchtungsspindel

und die anschließenden Vorgänge werden kurz besprochen. Ein

doppelter geschlechtlich differenzierter schizogonischer Zyklus

kommt bei Adelea nicht vor. Zentriole konnten gegen Jollos

nirgends festgestellt werden.

Schepotieff, A. Amöbenstudien. (Nebst Bemerkungen über

Nucleophaga.) Zool. Jahrb. Jena, Abt. f. Anat., 29, p. 485—526,

pl. XXXIX. — Verf. beschreibt aus leeren Austernschalen im

Lago di Fusaro bei Neapel mehrkernige Amöben und deren Ent-

wiekelungsstadien. Die Art wird als Amoeba flava Gr. identifiziert.

Es werden behandelt der Bau der vielkernigen Amöben, die Vor-

bereitung zur Encystierung, die Cysten, bei denen frische Cysten

und solche mit Chromidialsubstanz bei fortgeschrittener Kern-

auflösung unterschieden werden, ferner ältere Cysten und endlich

solche mit Anlage von Schwärmsporen als Vorbereitung zur Sporo-

gonie.. Aus den Cysten gehen einkernige Isogameten hervor,

deren Kopulation nur indirekt beobachtet wurde. Die Zygoten

und einkernigen Amöben wurden gleichfalls hinsichtlich ihrer

Cytologie untersucht. Die Kerne teilen sich mitotisch mit Cen-

triolen. Verf. geht im allgemeinen Teil auf die Geschichte der

Amöbenforschung ein und vergleicht den Entwicklungszyklus bei

4A. flava mit den bisherigen Befunden. Besonderes Gewicht wird

auf den Entwicklungskreis gelegt. Auch hinsichtlich der Systematik

versucht Verf. reformierend zu wirken, indem er die Amöbo-

zoen zu den Flagellaten stellen will, ob mit Recht, erscheint

sehr fraglich. Es folgen noch Bemerkungen über den Entwicklungs-

zyklus von Nucleophaga und deren Verwandtschaft mit den

Chlamydozoen. Die Ausführungen tragen einen stark hypothetischen

Charakter.

Schilling, Cl. Das Vorkommen von Autogamie bei Trypano-

soma lewisi. Arch. f. Protistenk., 19, p. 119—126, 11 Textfiguren.

— Verf. untersuchte das eigentümliche Verhalten des Haupt-

kernes und des Blepharoplasten von Tryp. lewisi bei der Teilung.

258 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Ein regelmäßiges zeitliches Verhältnis ist hierbei nicht zu konsta-

tieren. ‚In Zellen, die 2 Hauptkerne und 2 Blepharoplasten ent-

halten, sieht man häufig, daß entweder einer der beiden Blepharo-

plaste — und zwar ist es in der Regel zuerst der mit der alten

Geißel in ‚Verbindung stehende Kern — manchmal auch beide

neu gebildete Blepharoplaste an einen bzw. beide Hauptkerne

herantreten“. Der Blepharoplast scheint sich in den Hauptkern

einzusenken und an das Carysom anzulegen. Zu einer Verschmelzung

kommt es nicht. Verf. bezeichnet diesen Vorgang als Kernkon-

jugation (?). Noch innerhalb des Mutterorganismus können sich

nun weitere Kernteilungen anschließen. Die erste Teilung beider

Kerne, des Hauptkernes und der Blepharoplasten, wird als Reduk-

tionsteilung (?) aufgefaßt. Die angeblichen Reduktionskerne

gehen nicht zugrunde, sondern nehmen an den anschließenden

Teilungsvorgängen weiterhin teil... Der Blepharoplast verläßt

den Hauptkern, scheinbar unverändert, wieder. Verf. deutet

obige Kernkonjugation mit der folgenden lebhaften Teilungs-

perirde als Autogamie.

Sehmidt, F. W. Die Aufhebung der Formalinhärtung ana-

tomischer und histologischer Präparate und eine darauf basierende

neue Methode der differenzierenden Silberfärbung. Anat. Anz.,

36, p. 652—654. — (Enthärtungsflüssigkeiten: Silbernitrat-

lösung, Zitronensäure, 153% Salpetersäure. Differenzierung in

der Silberfärbung). Zeitschr. f. wiss. Mikr., 27, p. 214—218.

Schmitt, F. M. Zum Vorkommen von Trypanosomen vom

Typus des Trypanosoma theileri in deutschen Rindern. Berliner

tierärztl. Wochenschr., 26, p. 841—842. — Vergleiche die Arbeiten

von Knuth, Rauchbaar und Morgenstern.

Schneider, @. Fischparasiten. Riga, Korr.-Blt. Naturf.Ver., 53,

p. 112—113. — Verf. berichtet kurz u. a. über das Vorkommen von

parasitischen Infusorien der Art Cyclochaeta domergnei Wallengren.

*Schodduyn, R. (1). Quelques observations faites dans un

(Hille) (1909), p. 717—1723.

*— (2). Contribution a l’etude biologique de la Colme

(Nord). Paris, C. R. Ass. france. avane. sci., 38, (1909), p. 713—717.

Schönebeck, —. Beobachtung eines anscheinend pathogenen,

zur Gruppe des Trypanosoma theileri gehörigen Trypanosoms

in Deutsch-Ostafrika, zugleich ein Beitrag zur Behandlung und

Prophylaxie der Trypanose. Arch. f. Schiffshygiene, Leipzig, 14,

p. 548—550. — Verf. beschreibt ein zur Gruppe des Tryp. theileri

gehöriges Trypanosom aus einem Rinde von Siwale (Deutsch-Ost-

afrika) und berichtet über die erfolgreiche Therapie mit einer

Mischung von Atoxyl 0,2 + Acid. arsen. 0,2 pro die einmal mit

NaCl zu gleichen Teilen.

Scholz, E. Beiträge zur Kenntnis der deutsch-ostafrikanischen.

Tertiärablagerungen. I. Berlin. Monatsber. d. geol. Ges., p. 368

—379, 2 pls.

Publikationen und Referate. 289

bei Sphaeromyxa sabrazesi Laveran et Mesnil. Arch. f. Protistenk.,

19, p. 1—5, 10 Textfigg. — Verf. kommt in der Nachuntersuchung

über die Anlage der Sporocyste bei Sphaeromyxa zu den gleichen

Resultaten wie Keysselitz, der sie folgendermaßen angibt. Es

legen sich 2 Propagationszellen aneinander an nach Abschnürung

je zweier kleiner Zellen, die nach ihrer Verschmelzung die Sporo-

cystenhülle bilden. Die beiden großen Zellen, die Gametoplasten,

vermehren sich unter mitotischer Teilung ihrer Kerne bis auf 12,

so daß insgesamt 14 Kerne in der Sporocyste vorhanden sind.

Bei $Sph. tritt keine Zellabschnürung ein, nur Teilung derKerne,

die in gemeinsamem Protoplasma liegen bleiben. Zwei Zellen

mit einem großen, lockeren Gametoplastenkern und einem klei-

neren, kompakten Kern der Sporocystenhülle verschmelzen mit-

einander. Dann tritt Abrundung der Cyste ein, und die kleinen

Kerne treten in Beziehung zur Hülle. Ihre Lage ist variabel.

Die 4 eigentlichen Gametenkerne scheiden wie bei Myzxobolus

Reduktionskerne aus. Ferner weist der Verf. noch kurz auf eine

eventuelle Teilung der Sporocystenhüllenkerne und auf die Aus-

stoßung der einen Teilhälfte hin. Letztere sollen dann Kernan-

sammlungen bilden.

Sehuberg, A. Über Microsporidien aus dem Hoden der Barbe

und durch sie verursachte Hypertrophie der Kerne. Arb. Kais.

Gesundheitsamt Berlin, 33, p. 401—434, pls. VI—IX. — Verf.

beschreibt Microsporidien aus dem Hoden der Barbe; aus den

Hoden waren Microsporidien bisher noch nicht bekannt. Die be-

fallenen Stellen des Hodengewebes wiesen vollständige Zerstörung

auf, was praktisch für den Bestand einer Fischart von Bedeutung

sein kann. Bei der Verteilung der Microsporidien im Hoden

treten weitgehende Veränderungen des normalen Baues auf.

Die Pansporoblasten enthalten viele Sporen; demnach gehört die

betr. Form in das Genus Plistophora Gurley und wird als Pi.

longifilis als neue Art bezeichnet. Die Sporen variieren in der

Größe, die Gestalt ist birnförmig. Die Polfäden wurden an frischem

Material durch NH, zum Ausschnellen gebracht und sind sehr

lang. Das Stadium, das der Spore vorhergeht, wird als Sporoblast

beschrieben mit nur einem Kern. Die Sporoblasten entstehen aus

Sporonten bzw. Pansporoblasten durch Aufteilung des Inhaltes.

Bau und Einrichtung der Sporen wird einer eingehenden Be-

trachtung unterzogen. Eine besondere Polkapsel soll nicht vor-

handen sein, auch bei den übrigen Microsporiden nicht. Der Pol-

faden ist in der großen, hinteren Vaknole aufgerollt eingeschlossen.

Die ‚„metachromatischen Körner‘ in den beiden Vakuolen sind

keine Kerne, ihre Natur steht noch nicht fest. Über die wirklichen

Kerne befindet sich Verf. im Widerspruch zu anderen Autoren;

jede Spore und jeder Sporoblast enthält nur einen Kern. Den wirk-

lichen Kern der reifen Spore hat z. B. Stempell bei Nosema

überhaupt nicht gesehen. Die Lagebeziehungen von Pansporo-

Archiv ER Baur sechichle

290 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

blasten und großen Kernen im Wirtsgewebe machen es wahr-

scheinlich, daß letztere die stark vergrößerten Kerne der ursprüng-

lichen Wirtszelle des Pansporoblasten darstellen. ‚Mit dem Nach-

weis, daß die ‚„vegetativen Kerne‘ dem Wirtsgewebe entstammen,

werden alle Angaben Stempells über die Entstehung der

Sporonten aus ihnen und alle theoretischen Folgerungen, soweit

sie sich auf die ‚„vegetativen Kerne‘ beziehen, gegenstandslos“.

Der Nachweis der bedeutenden Hypertrophie, welche Zellkerne

des Wirtstieres durch die Microsporiden erleiden, ist mit Recht

einer allgemeinen Beachtung wert. Auch hinsichtlich der Kern-

hypertrophie bei Geschwülsten können Untersuchungen über

parasitär entstandene Kernhypertrophie wichtige Anregungen

und Aufklärungen bringen.

Sehuberg, A. und Schubotz, H. Zur Frage der Geflügelpocken.

(Freie Ver. Mikrobiol.) Centralbl. Bakt. Parasit. Abt. 1, Ref. Bd.

47, Beil., p. 108—114. — Die Pockenkörner sollen keine Pro-

tozoen sein.

Schubotz, H. vide Schuberg, A.

Schüler, J. Über die Ernährungsbedingungen einiger Flagel-

laten des Meerwassers. Wiss. Meeresuntersuch. Kiel N. F., 11,

Abt. Kiel, p. 347—365. — Verf. berichtet über die Ernährungs-

bedingungen einiger Flagellaten des Meerwassers und beschreibt

Euglena baltica n. sp. und ÜUryptoglena americana Davis (Oyano-

monas americana Oltmanns). Teilung von der Zuglena wurde be-

sonders in ganz verdünntem Fukusdekokt verfolgt; auch simultane

Dreiteilung wurde beobachtet. Beschrieben werden u. a. morpho-

logische Eigentümlichkeiten, Cysten, Augenfleck, Paramylon,

Einfluß der Reaktionen (Säure und Alkali), Einfluß der Konzen-

tration bei den Kulturen, der organischen Nahrung, Teilungs-

geschwindigkeit, Degenerationserscheinungen. Üryptoglena ist

ist nicht oligonitrophil, da sie auch gebundenen N und besonders

organisch gebundenen N zu verwerten vermag.

Schurig, W. Hydrobiologisches und Plankton-Praktikum.

Eine erste Einführung in das Studium der Süßwasserorganismen.

Mit einem Vorwort von R. Woltereck. Leipzig, Quelle und Mayer,

8°, 160 pp., 6 Taf., 215 Figg.

Schwalbe, E. Die Bedeutung der Kleinlebewelt in Natur und

Kultur. Nat. Wochenschr., 25, p. 529—536. — Populär.

Seott, A. vide Herdmann, W. A.

Segre, 6. Über die Anwesenheit des Neuroryctes hydro-

phobiae in den Nebennieren. Centralbl. Bakt. Abt. I, Orig., 53,

p. 505—510. — Verf. hat Stadien des Entwicklungszyklus von dem

Parasiten der Lyssa, Neuroryctes hydrophobiae, in den Neben-

nieren nicht nachweisen können bei 15 Meerschweinchen (gegen

da Costa). Fixiert wurde mit Zenker’scher oder Flemming)-

scher Flüssigkeit, gefärbt mit der Mann}'schen Methode.

In den Zellen der Marksubstanz der wutkrank gemachten Tiere

wurden Gebilde beobachtet, die ein Produkt schwerer Regressions-

Publikationen und Referate. 291

und Degenerationsprozesse sind und mit den Parasiten der Lyssa

nichts zu tun haben. Vielleicht ist die Virulenz der Nebennieren

auf die Anwesenheit von Parasiten-Entwicklungsstadien zurück-

zuführen, die durch die gegenwärtigen Untersuchungsmittel nicht

identifizierbar sind.

Seitz, A. (1). Serotherapie und Immunität bei Protozoen-

krankheiten. Handbuch der Serumtherapie, herausgegeb. von A.

Wolff-Eisner, München, p. 1—11. — Verf. weist auf die Unterschiede

der bakteriellen Infektion und den Protozoenkrankheiten hin, als

deren gemeinsames Charakteristikum er nach Schilling

den Zustand der ‚labilen Infektion‘ bezeichnet. Ferner betont

er, daß es sich bei den Protozoenkrankheiten hinsichtlich der

Kultivierung ihrer Erreger, ihrer Chemotherapie, der Toxinbildung

und Immunisierung erst um tastende Versuche handelt. Die Sero-

therapie hat bis jetzt nur geringe Fortschritte zu verzeichnen.

Nur bei der Piroplasmose sind wertvollere Erfahrungen gesammelt;

worden. Im einzelnen werden dann behandelt die Immunisierung

gegen Tryp. lewisi, die Schlafkrankheit, die Tsetse-Krankheit der

Haustiere, die Piroplasmosen, die Malariakrankheiten und die

Syphilis.

— (2). Zur Frage der Hartmann’schen Binucleaten. Cen-

tralbl. Bakt. Parasitenk. Abt. 1, 55, Orig., p. 497—502, 1 pl. —

Verf. glaubt in Lankesterella ranarum einen Blepharoplast (mit

Franca) gefunden zu haben und rechnet diese Form zu den

Binucleaten. Nach Untersuchungen Nöller’s 1912 ist dies nicht

der Fall, vielmehr gehört diese Form zu den Haemogregarinen

und ist verwandt mit den Coceidien. Die Beobachtungen Hart-

manns und von Ravens bezüglich des Vorhandenseins

von Hauptkern und Blepharoplast bei Proteosoma können be-

stätigt werden.

Selenew, J. F. (1). Zur Morphologie der Spirochaeta pallida.

Ring- und Sternformen derselben. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 54,

Orig., p. ”—11, 2 pls. — Verf. deutet seine früher als neue Arten

beschriebenen Spirochaetenformen nunmehr richtig als Ring-

Stäbchenformen der Spirochaeta pallida (mit Krzysztalowiez und

Siedlecki).. Sämtliche äußeren Eigenschaften dieser Spirochaete

unterliegen Schwankungen, von dem Schaudinn’schen Typus

abweichend. Die betr. Formen werden eingehend geschildert und

abgebildet. Die biologische Bedeutung der verschiedenen Evo-

lutions- und Involutionsformen bleibt unaufgeklärt.

— (2). Zur Biologie meines Infusoriums; seine Anwesenheit

im Prostatasekret. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 55, Orig., p. 497—502,

1 pl. — Verf. konstatiert das Vorkommen seines Infusoriums

bei 3 Patienten mit torpider Gonorrho® im Prostatasaft. Die

Infusorien dringen in die Prostata ein. In allen 3 Fällen besteht

auch Verdacht auf Syphilis; die Krankengeschichte dieser Fälle

wird ausführlich wiedergegeben. Einzelne Stadien des Infusors

werden beschrieben. Die Degenerationsformen sind das Resultat

19*

292 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

des phagocytären Kampfes. Die Kerne werden nach ungenügenden

Präparaten dargestellt. Bei der Teilung sollen bis 6 Hauptkerne

(Macronucleen!) vorhanden sein; die angebliche Schizogonie ist

nicht bewiesen. Die Cytologie ist äußerst mangelhaft behandelt.

Senn, 6. L’Oxyrrhis marina Duj. et le systeme des Flagelles.

Arch. Sci. Phys. Geneve, 28, p. 492—493. — Verf. berichtet über

Transversalteilung bei Oxyrrhis marina, Größe, Geißelansatz und

über die system. Stellung; O. gehört vielleicht auf Grund seines

Geißelbaues und Kernbaues zu den Dinoflagellaten, speziell in die.

Nähe von Hemidinium.

Sergent, Et. et Sergent, Ed. (1). Sur l’immunite dans le pa-

ludisme des oiseaux. Conservation in vitro des sporozoites de

Plasmodium relictum. Immunite relative obtenue par inoculation

Verf. schließen aus den Untersuchungen, daß die Kanarienvögel

nach einer ersten Sumpffieber-Infektion eine relative Immunität

gewinnen, wie beim Menschen. Es ist möglich, die Gefahren einer

ersten Infektion durch den Stechakt der Mücken zu vermeiden

durch Einimpfen von Sporozoiten ‚„conserves in vitro“. Die In-

fektion ist dann nur schwach oder fast gleich Null.

— (2). Etudes epidemiologiques et prophylactiques du pa-

ludisme (Te campagne en Algerie, 1908). Ann. Inst. Pasteur Paris,

24, p. 55—80.

— (3). Idem. (8e campagne en Algerie, 1909). Ann. Inst.

Pasteur, 24, p. 907—920.

Sergent, Ed. et Foley, H. Recherches sur la fievre recurrente-

et son mode de transmission, dans une &pidemie algerienne. Ann.

Inst. Pasteur Paris, 24, p. 337—373. — Verf. berichten über eine

Krankheit, die sich mehr der europäischen Recurrens nähert als.

dem afrikanischen Zeckenfieber. Der Erreger ist die neue Art

Spirochaete berbera. Übertragung auf Affen ist möglich, andere

Infektionsversuche verliefen ohne Erfolg. Die Krankheit verläuft

gewöhnlich gutartig. Pediculus vestimenti wird bei allen Kranken

gefunden. ‚Il faut exclure totalement des fauteurs de l’epidemie

sud-oranaise: les Puces, les Punaises, les Moustiques.‘

Stzary, A. Sur une forme annulaire du Tr&poneme pale. C.

R. Soc. Biol., 69, p. 339—340.

Sözary, A. et Paillard, H. Constation du treponeme dans le

liquide c&phalo-rachidien au cours de l’hemiplegie syphilitique.

C. R. Soc. Biol. Paris, 68, p. 295—296. — Verf. berichten kurz

über das Vorkommen einer Y-Form der Lues-Spirochäte.

Shibayama, 6. On malarial parasites of the orang-outang.

Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Sci.), 5, p. 189—191, 1 pl.

— Verf. beschreibt ein Plasmodium aus dem Orang-Utan, das sich von.

Pl. pitheci Halb. und Prowazek nicht unterscheidet. Verschiedene

Formen erinnern an Quartana-Parasiten. Die Schizogonie verläuft

wie die Tertiana beim Menschen.

Publikationen und Referate. 293

Sieber, H. Über Anaplasma marginale. Beitrag zur Kenntnis

des Texasfiebers und der ‚Galziekte‘‘. Berliner tierärztl. Wochen-

schr., 26, p. 993—998. — Vergl. die ausführl. Arbeit 1911.

Siedentopf, H. (1). Über einen neuen Fortschritt in der Ultra-

mikroskopie. Physiol. Congr.) Centralbl. Physiol., 24,

p. 782—783. — Arch. intern. Physiol., 10, p. 22.

— (2). Über ultramikroskopische Abbildung. Verh. Ges.

deutsch. Natf. Ärzte Vers. 81, TI. 2, H. 1, p. 27—29.

Siegel, J. Gelungene Kultur des Oytorrhyctes luis. _Vor-

läufige Mitteilung. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 57, Orig., p. 68—81,

1 pl. und 1 Textfigur. — Verf. behauptet, daß seine Cytorrhycten

eine Gruppe der Coccaceen sind, die sich durch das Vorkommen

von sehr kleinen Entwicklungsformen auszeichnen. Die frühere

Hypothese, daß die im Blute Syphilitischer gefundenen Gebilde

identisch sind mit den zum Teil mehr in Schleimhüllen zusammen-

gestellten Formen der Ausstriche von Hautaffekten, wird angeblich

durch Kulturen bestätigt. Die spezifische Bedeutung dieser Ge-

bilde als Erreger soll erwiesen sein. Auch bei Pocken, resp. Vaccine

und Maul- und Klauenseuche soll es sich so verhalten. Die angeb-

lichen Cytorrhycten sind Eiweißniederschläge von konstanter

Form und konstantem Vorkommen; jedenfalls sind die Angaben

des Verf. mit äußerster Vorsicht aufzunehmen.

*Siepi, P._ A propos d’Opercularia articulata Ehrbg. Feuille

jeune Natural (4) Ann., 40, p. 96—97.

Singareva, A. J. (Zur Frage über Leucocytozoon Danilewski

und die Besonderheiten seines Baues.) Arch. sci. biol. St. Peters-

burg, 16, p. 181—202, 1 pl. — Russisch.

Skorikoff, A. $S. (Zoologische Untersuchung des Wassers

des Ladoga-Sees als Trinkwasser.) St. Petersburg, p. 1—123,

1 Karte und 1 pl. — Russisch.

Smith, St. The limits of educability in Paramaecium. Journ.

Comp. Neur. Philadelphia Pa., 18, p. 499—520, 4 Figg.

Smith, Th. Amoeba meleagridis. Science, New York, N. Y.

N. Ser., 39, p: 509—512. — Verf. polemisiert gegen Cole und Had-

ley; die Coccidiennatur der Amoeba meleagridis ist nicht erwiesen.

*Smith, G. E.E An Adress on the Mechanism of Infection

in Tick Fever and in the Hereditary Transmission of Spirochaeta

duttoni in the Tick. Lancet 178, p. 11—14.

Smith, G. U. Recherches experimentales sur la spirillose

humaine. Ann. Inst. Pasteur, 24, p. 374—375. — Verf. berichtet

über Übertragungsversuche der Spirochaeta obermeieri durch Pedi-

culus vestimenti und der Spir. novyi durch Haematopinus spinulosus.

Sowerby, M. H. Some experiments in trypanosomiasis;

an endeavour to discover the reservoir of Trypanosoma evansı.

Journ. trop. vet. sci. Caleutta, 5, p. 584-591, pls. XL—XLVI.

— Verf. hat morphologische Studien über die Identität der Surra-

Trypanosomen in verschiedenen Tieren angestellt. Als Ausgangs-

material wurde infiziertes Blut von Büffeln benutzt.

294 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Spillmann, L. Dispositiv facilitant la recherche du spirochete

au moyen du condensateur a fond obscur. (Reun. biol. Nancy).

Staniewiez, W. Etudes experimentales sur la digestion de

la graisse dans les Infusoires cilies. Krakow Bull. Intern. Acad.

p. 199—214, pl. IX. — Verf. schließt aus den Experimenten:

„Quoique les infusoires soient capable d’ingerer la graisse, ils ne

la decomposent pas et ne la changent pas en une Emulsion assez

subtile pour &tre directement assimilable. La graisse qui se trouve

dans les infusories provient des corps que ces &tres peuvent digerer,

par consequent, elle provient en premiere ligne des corps albu-

mines et des hydrates de carbone.‘“

Stannus, H. $S. Piroplasmosis among cattle in the Mombera

distriet, Nyassaland, 1909. Parasitol. Cambridge, 3, p. 307—311,

pl. XXVIII. — Verf. beschreibt eine Piroplasmose aus Nyassa-

land epidemiologisch, symptomatisch und ätiologisch. Nur kurz

einiges über den Erreger und die „blue bodies‘“.

Stella, V. vide Martoglio, F.

*Stempell, W. (1). Entwicklungsgang des Erregers der Pe-

brine-Krankheit der Seidenraupe. 38. Jahresber. westfäl. Prov.-

Ver. Zool. Sect., p. 36—38.

— (2). Zur Morphologie der Microsporiden. Zool. Anz.

Leipzig, 35, p. 801—807; 36, p. 80. — Verf. polemisiert gegen Schu-

berg und Mrazek \betreffs der Deutung der großen Kerne der

Glugea-Cysten. Die betr. Autoren haben teils in Formen, die sie

nicht selbst untersucht haben, falsche Deutungen hineingelegt,

teils auch nicht genügend alle Stadien untersucht.

Stephens, J. W. and Fantham, H. B. On the peculiar mor-

phology of a Trypanosome from a case of sleeping sikness and the

possibility of its being a new species (Tr. rhodesiense). London

Proc. R. Soc., 83 B, p. 283—33, pl. VI; Ann. trop. Med. Liverpool,

4, p. 343350, pl. XXII. — Verf. beschreiben Tryp. rhodesiense,

das vielleicht eine neue Art darstellt infolge seiner stumpfen Form

mit am Hinterende gelagertem Kern. Als Überträger fungiert

Glossina fusca oder morsitans.

*Stevens, J. Note on Zoothamnium geniculatum. London,

Journ. Queck. Microsc. Cl. Ser., 2, 11, p. 35.

Stevens, N.M. The Chromosomes and Conjugation in Bo-

veria subceylindrica var. concharum. Arch. f. Protistenk., 20, p.

126—131, 22 Texfigg. — Verf. beschreibt Chromosomenbildung ( (4)

bei der Mitose des Micronucleus. Dieser teilt sich erst in 2, dann

in 4 Abschnitte, von denen 2 länger und breiter als die anderen

beiden sind. Dann tritt Transversalteilung jedes Chromosoms

ein. Ferner werden einzelne Konjugationsstadien beschrieben.

Ob die Zahl des Chromosomen bei der 2. Micronucleusteilung re-

duziert wird, bleibt unsicher. Auch die Entwicklung der Exkon-

juganten bleibt unvollständig. Interessant ist die Vereinigung

Publikationen und Referate. 295

der Konjuganten am aboralen Pol und das Verhalten der Chromo-

somen in der ersten Micronucleusspindel.

Stiasny, 6. (1). Über die Beziehung der sog. ‚‚gelben Zellen‘

zu den koloniebildenden Radiolarien. Arch. f. Protistenk. 19,

p. 144—166, 18 Textfigg. — Verf. hat aus seinen Untersuchungen

über Sphärozoen das Resultat gewonnen, daß die sog. „gelben

Zellen‘ Jugendstadien der erwachsenen Individuen (der sog.

Nester) darstellen. Er unterscheidet 2 Stadien: das Zooxanthellen-

stadium und das vielkernige Stadium des erwachsenen Individuums.

Besprochen werden die Verhältnisse bei den Genera Collosphaera

(die das Skelett zusammensetzende Kieselsäure soll ein Kern-

derivat sein) und Collozoum. Im allgemeinen Teil versucht Verf.

seine Theorie gegenüber den gegenteiligen Literaturangaben

zu verteidigen. Schließlich faßt er seine Resultate dahin zusammen,

daß das Wachstum der Sphärozoenkolonien stattfindet durch

Knospung aus den Nestern, durch simultanen Zerfall der Nester

und durch Umwandlung von Kernen, die den Nestern entstammen

in gelbe Zellen. Wie Verf. selbst erwähnt, ist er nicht in der Lage,

durch eine lückenlose Reihe von Entwicklungsstadien seine Be-

hauptungen zu bekräftigen und zu belegen. Seine Angaben sind

also mit Vorsicht aufzunehmen und bedürfen der Nachprüfung und

der übrigens sehr fraglichen Bestätigung.

— (2). Zur Kenntnis der gelben Zellen der Sphaerozoen.

Biol. Centralbl. Leipzig, 30, p. 417—424. — Verf. beschreibt den

Bau der Zooxanthellen in den Sphaerozoen. Vergl. 1.

Stimson, A. M. Facts and problems of rabies. Bull. hygien.

Lab. Treas. Dept. publ. Health mar. Hospit. Lerv. Nr. 65, 85

pp., 4 pls. — Negri’sche Körperchen spezifisch für Tollwut.

*Stockman, S. Preliminary note on a Trypanosome of Bri-

tish cattle. Journ. comp. Path. Ther. Edinburgh, 23, p. 189—192.

Stole, A. (Über kernlose Individuen und kernlose Teile der

Amoeba proteus.) Prag Vestn. Ceske Scol. Nauk., 1909, p. 1 bis

13. — Vergleiche 2.

— (2). Uber kernlose Individuen und kernlose Teile der

Amoeba proteus. Ein Beitrag zur Erforschung der plasmatischen

und nucleären Tätigkeit. Arch. f. Entwicklungs-Mechanik, 29,

p. 152—168, 2 pls. — Verf. zieht aus dem Studium der kernlosen

Individuen und der kernlosen Teilstücke der Amoeba proteus

hinsichtlich der Tätigkeit des Plasmas und Kernes folgende

Schlüsse: Das kernlose Plasma ist einer durch bestimmte Bewe-

gungsreaktionen sich äußernden Reizbarkeit fähig, führt dieselben

charakteristischen Bewegungen aus wie das kernhaltige Plasma,

ist einer Atmungs- und Exkretionstätigkeit fähig, vermag Nahrung

aufzunehmen und diese zu verdauen und ist dagegen einer Assimi-

lation in der Richtung der Konstruktion des lebendigen Eiweiß-

stoffes, der lebendigen Substanz nicht fähig. Letzteres vermag

das Plasma nur unter Mitwirkung des Kernes.

296 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

*Stolinikoff, V. J. (Die Piroplasmose der Rinder im Gebiet

Akmolinsk). EN veterin. nauk. St. Petersburg, 40, p. 1360

— 1362. — Russisch.

Stolinikoff, V. J. vide Yakimoff, V. L.

Straßburger, —. Demonstration eines Kranken mit Balanti-

dium coli. (Niederrhein. Ges. Nat.-Heilk. Bonn.) Deutsche med.

Wochenschr., 36, p. 2364.

Striekland, C. and Swellengrebel, N. H. (1). Notes on Trypa-

nosoma lewisi and its relation to certain Arthropoda. Parasitol.

Cambridge, 3, p. 436—454. — Verf. berichten über Vorkommen

von Tryp. lewisi in Ratten unter natürlichen Bedingungen, über

die Beziehungen zu Ectoparasiten, über Übertragungsexperimente,

mechanische Übertragung durch Flöhe.

(2). The development of Trypanosoma lewisi in the

EN (Ceratophyllus fasciatus). Cambridge, Proc. Phil. soc..

15, p. 531—533. — Verf. beschreiben aus dem Darm von Cera-

tophyllus fasciatus Crithidien, deren Zugehörigkeit zum Tryp.

lewisi offen bleibt oder nach Nöller 1912 teilweise nicht stimmt.

Weitere Einzelheiten über die Umwandlungsstadien werden mit-

geteilt, Kopulation wurde nicht beobachtet.

Striekland, €. vide Nuttall, G. H.

Striekland, C. vide Swellengrehel, N. H.

Strong, R. P. The Specific Cure of Yaws with Dioxydiamido-

Arsenobenzol. Philippine Journ. Sci. Manila B. (Med. Sci.), 5,

p. 433—449; viele Tafeln. — Verf. hat Yaws mit Dioxydiamido-

Arsenobenzol mit gutem Erfolge behandelt.

Strong, R. P. and Teague, O0. The treatment of trypano-

somiasis with especial reference to Surra. Philippine Journ. Sci.

Manila B. (Med. Sci.), 5, p. 21—54. — Die Verf. haben mit Erfolg

Arsenophenylglycin bei der Behandlung der Surra verwendet bei

Affen und Pferden. Mehrere andere untersuchte Mittel hatten nicht

den gewünschten Erfolg.

Sun, A. Über einen Parasiten aus der Met von

Ptychodera minuta. Arch. f. Protistenk., 20, 132—142, Tafel

IX, 5 Text-Figuren. — Beschreibung von Prbisöhtdsgott ptycho-

derae n. g. n. sp., welchen Parasiten die Verf. nach der Ähnlichkeit

der Entwicklung mit der von parasitierenden Amöben nach

Walker (1908), dessen Untersuchungen aber höchst mangelhaft

und teilweise unrichtig sind, für einen Vertreter parasitierender

Amöben hält. Falls sich die Zugehörigkeit zu dn Haplos-

poridia ergibt, „so unterliegt es natürlich fast keinem Zweifel,

daß auch diese phylogenetisch den parasitischen nackten Sarcodina

nahestehen.‘‘ — Einzelheiten über die primitive Kernteilung und

die Sporenbildung mit Übertritt des Chromatins aus dem Kern in

das Plasma.

Süpfle, K. Die Vererbung der Vaccineimmunität. Centralbl.

Bakt. Abt. 1, 54, Orig., p. 38—44. — Verf. kommt zu dem Schluß,

daß die Vaceineimmunität von immunen Müttern auf die Nach-

Publikationen und Referate. 297

kommen vererbt werden kann; diese Vererbung erfolgt aber nur

ausnahmsweise und bedingt nur einen partiellen, vorübergehenden

Schutz.

*Surbeck, G. Eine auffallende Parasitenhäufung bei Coregonen.

Schweiz. Fisch.-Zeitg. Jahrg., 18, p. 245—250.

Swarezewsky, B. Beobachtungen über Lankesteria sp., eine

in Turbellarien des Baikalsees lebende Gregarine. Festschr. für

R. Hertwig, Bd. 1, Jena (G. Fischer), p. 635—674, pls. XLVI

—XLIX. — Verf. beschreibt den Entwicklungszyklus einer

Gregarine Lankesteria sp., die in den Darmepithelzellen und im

Parenchym von Turbellarien parasitiert. Die Gregarinen werden

im Parenchym frei und es folgt die Gametogonie mit Sporocysten-

bildung. Die Gregarinen, die sich einzeln encystiert haben, sollen

eine Schizogonie durchmachen und die Schizonten sollen dann wieder

in das Darmepithel eindringen. Diese sog. ‚„‚Schizozoiten‘‘ dürften

eventuell Parasiten sein. Die Bildung der Sekundärkerne aus

Chromidien erscheint weiterhin sehr fraglich.

Sweet, G. vide Gilruth, J. A.

Swellengrebel, N. H. (1). Normal and abnormal morphology

of Trypanosoma lewisi in the blood of the rat. Parasitol. Cambridge,

3, p. 459—478. — Verf. meint, daß die Kernteilung bei den Blut-

formen des T’ryp. lewisi einer Amitose nahe steht, die Blepharoplast-

teilung wird als Promitose (Nägler) bestimmt. Abnormitäten und

Chromidienbildung, keine Sexualität bisher bewiesen.

— (2). Fixation and staining-of Trypanosoma lewisi. Para-

sitol. Cambridge, 3, p. 226—238. — Verf. berichtet über Fixierung

und Färbung von Tryp. lewisi und gelangt zu dem ganz merk-

würdigen Resultat, daß die Trockenmethode auch zur Erkennung

feinster Details geeignet sei. Dem entgegen ist die stete Feucht-

fixierung und Weiterbehandlung zu betonen.

— (3). Notiz über eine neue freilebende Amoebe Amoeba

Salteti n. sp. Arch. f. Protistenk. Bd. 19, p. 167—177, Taf. V und

VI. — Verf. beschreibt eine weitere neue Amöbe nach dem Li-

maxtypus (Nägler 1909), die er aus dem Lemnamaterial

aus einer Grube in der Nähe Amsterdams kultiviert hat auf Agar

nach Frosch. Größe 16—21.uin vivo, 6—13 „u auf fixierten Prä-

paraten. Die Encystierung tritt leicht ein; multiple Teilung wurde

in vivo beobachtet. Eine deutliche Kernmembran ist nicht immer

zu sehen, Außenchromatin ist kaum vorhanden. Der konstanten

äußeren Gestalt des ruhenden Caryosoms entspricht nicht

der innere Aufbau, der sehr variabel ist. Vom Centriol gehen einige

Plastinstreifen zur Peripherie des Caryosoms und es scheint kein

konstantes Gebilde zu sein, wie es auch bei der promitotischen

Kernteilung hervortritt. Das Caryosom kann schon vollständig

geteilt sein, ehe der Außenkern sich einschnürt. ‚‚In wenigen Fällen

kommt es zu einer unscharf begrenzten Ansammlung einer sich

etwas dunkler wie das Achromatin färbenden Substanz in der

Äquatorialgegend des sich teilenden Caryosoms.“ Vahlkampfs

298 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Amöbe mit Mitose auf der einen Seite, andererseits A. salteti mit

einer ‚fast vollständigen“ Amitose, dazwischn Näglers

Limax-Amöben, stellen eine phylogenetische Reihe dar und lassen

den Begriff Näglers ‚Promitose‘“ noch fester begründen.

Weitere Einzelheiten der zu Ende gehenden Kernteilung. Nach der

Eneystierung treten chromatophile Körnchen um das Caryosom

herum auf; zuletzt verschwindet es gänzlich und nur ein innerer

Körnchenkreis bleibt zurück, der nach und nach aufgelöst wird.

Eine Gruppenanordnung der Körnchen spricht Verf. als Chro-

midialbildung an, wobei ‚das Chromatin in gelöstem Zustande

den Kern verläßt und aus diesem Chromatin erst im Cytoplasma

die Körnchen entstehen.“ Einzelheiten der Cystenkeimung.

Sexuelle Vorgänge sind nicht beobachtet worden. ‚Neben einer

Bestätigung eines Teiles der umfangreichen Nägler’schen Arbeit

geben diese Befunde m. E. eine weitere Stütze für die Binu-

clearitätshypothese“ und lassen mit Hinblick auf die von Noe

beschriebene Amoebe aufs neue ‚die Berechtigung des Hartmann-

Nägler’schen Desideratums einer genauen Kenntnis der frei-

lebenden Amöben, damit man die Befunde parasitischer

Amöben besser beurteilen kann‘, erkennen.

*— (4). Over de morphologische overeenkomst tusschen

vrijlebende en parasitische Amoeben. (Über die morphologische

Übereinstimmung zwischen freilebenden u. parasitischen Amoeben).

Amsterdam, Werk. Gen. Nat. Geneesk. Heelk. (Ser. 2), 6, p. 253

—258.

— (5). Zur Kenntnis des Baues und der Zellteilung von

Trypanosoma gambiense und Tr. equinum. Tijdschr. Neder!.

Dierk. Ver., (2), Deel 11, p. 80—98, pl. V. — Verf. hat die Teilung

des Axialfilamentes bei Trypanosomen weiter untersucht und

stellt fest, daß es als Nucleo-Centrosom wirkt und ferner Be-

ziehungen zum Blepharoplast aufweist. Analogie mit dem Achsen-

stab bei Trichomastix und Trichomonas.

Swellengrebel, N. H. and Striekland, B. A. The development

of Trypanosoma lewisi outside the Vertebrate Host. Parasitology,

3, p. 360—389, figg. — Aus den Resultaten ihrer Experimente

schließen die Verf., daß die Entwicklung von Tr. !. außerhalb des

Wirbeltier-Wirtes nicht begrenzt ist auf eine Art oder Gattung,

sondern daß sie stattfinden kann in Haematopinus, Ceratophyllus

und unvollständiger in Acanthia lectularia. Die Entwicklung

braucht ferner nicht immer kombiniert zu sein mit Langlebigkeit

im Invertebratenwirt. Beim Vergleich des Verhaltens von Tr. 1.

in den 4 Inv.-Wirten ergibt sich, daß der am meisten komplette

Zyklus stattfindet im Floh, da hier Formen auftreten, die niemals

in Kulturen gefunden werden; in der Laus kann die Entwicklung

wirklich beschrieben sein, wie in einer natürlichen Kultur; in der

Wanze kommen nur Orithidia-Formen vor; in der Zecke (Ornitho-

doros) entwickeln sich die T’rypanosomen nicht, nur einige werden

kurze Zeit erhalten. — Vergleiche von Crithidia-Species aus

Publikationen und Referate. 299

Flöhen mit den Stadien der Tr. ergaben, daß es sich wahrschein-

lich um Identität handelt (gegen Mac Kinnon; Patton u. Strick-

land). In Haematopinus konnten entgegen Prowazek und

Baldrey keine Sexualstadien gefunden werden (?).

Swellengrebel, N. H. vide Striekland, C.

Szokalski, C. vide Karwacki, L.

Tanaka, Y. Über die Arten der durch die tierischen Para-

siten hervorgerufenen Krankheiten in Japan. München. med.

Wochenschr., 57, p. 2586—2587. — Verf. berichtet als Beitrag

zur geographischen Pathologie über die Arten der durch die

tierischen Parasiten hervorgerufenen Krankheiten. Von Protozoen-

krankheiten kommen vor: Amöbendysenterie, Malaria, Rinder-

malaria (Warabeyami).

Teague, O0. vide Strong, R. P.

Tedeschi, A. (1). Experimenteller Beitrag zur Erforschung

der Spirochaete des afrikanischen Rückfallfiebers (Spirochaeta

duttoni). Centralbl. Bakt., Abt. 1, 54, Orig., p. 12—20. — Verf.

kommt zu dem Resultat, daß das indifferente Verhalten des

Protoplasmas der Spirochaeta Duttoni selbst hypertonischen Salz-

lösungen gegenüber eine große Lebensfähigkeit und eine große

Widerstandskraft der Infektion beweist. Agglutinine stellen sich

erst spät ein, und zwar nach überstandener Infektion, und deren

Wirkung ist, wenn auch rasch und energisch, von verhältnismäßig

kurzer Dauer. Die Erforschung der Ruhestadien ergab negative

Resultate. Die Infektion soll ständig im Blut bleiben, auch

während der fieberfreien Pausen, in endoglobulären Formen, in

den Blutkügelchen und in den Leucocyten. Künstlich wurde

keine Immunität gegen die Infektion erhalten, dagegen eine

Immunität gegen Spir. gallinarum sehr leicht. Weitere Experi-

mente sind zur Klärung vieler Fragen noch nötig.

— (2). Contributo sperimentale allo studio della Spiro-

chete della febbre ricorrente africana (Spirochaeta Duttoni). Ann.

Igiene sper. Torino, N. S. 20, p. 167—178. — (Comportamento

verso soluzioni saline hypertoniche; potere agglutinante del sicro

di animali immuniszati naturalmente; fagocitosi (indice obsonico

sempre assai basso); forme di riposo (negativo), Immunitä arti-

ficiale. Aus dem Arch. f. Protistenk,),

Teichmann, E. Über das Gift der Sarcosporidien. Experi-

mentelle Untersuchungen am Kaninchen. Arch. f. Protistenk., 20,

p- 97”—125, 2 Textfigg. — Verf. schreibt dem Sarcosporidiengift

eine Sonderstellung zu; es ist am nächsten verwandt mit dem

Wutgift, andererseits auch mit den pflanzlichen Alkaloiden. Das

Gift der Sarcocystis tenella wirkt auf Kaninchen stark ein, die

letale Dosis ist in 0,0002 g der getrockneten Sarkosporidiensubstanz

enthalten. Es wird im Zentralnervensystem lokalisiert und dort

an Lipoide gebunden. Durch Extraktionsmittel läßt es sich von

da zurückgewinnen. In NaCl-Lösung verliert es durch Erhitzen

auf 100° seine Wirksamkeit. Durch Vereinigung mit Lecithin

300 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

wird die Giftigkeit des sog. Sarcosporidins herabgesetzt, durch

Vereinigung mit Schafserum und mit Serum immunisierter.

Kaninchen abgeschwächt. Durch Nachbehandlung mit Immun-

serum können vergiftete Kaninchen nicht gerettet werden. Der

bei der Ausätherung des Gehirns verbleibende Rückstand be-

sitzt keine das Gift abschwächende Eigenschaft. Eine Immuni-

sierung der Kaninchen gegen das Gift findet statt. Vorbehandlung

mit normaler Nervensubstanz und mit Serum immunisierter Tere

bewirkt keine Immunität. Das Blut des Schafes und Kaninchens

wird durch das Gift nicht gelöst Das Serum immunisierter Tiere

übt keine agglomerierende Wirkung auf Sarkosporidien aus, auch

Präzipitation findet nicht statt. Die Sarkosporidien werden

durch Kaninchenserum aufgelöst. Eine Trennung von Toxin und

Antitoxin aus neutralem Gemisch gelingt nicht.

Teppaz, L. vide Thiroux, A.

Terry, B. T. An attenuated Surra of Mauritius with immu-

nity tests after recovery. Journ. trop. vet. sci., Calcutta, 5, p. 464

—469. — Verf. hat gefunden, daß die Virulenz der Surra von

Mauritius durch wiederholte Passagen durch Meerschweinchen

für Mäuse sehr vermindert wird. Drei Mäuse wurden plötzlich von

der Infektion geheilt, zwei blieben Wirte der Trypanosomen für

4—7 Wochen nach dem Auftreten der Infektion. Die geheilten

Mäuse erlangten keine bleibende Immunität. Während die Viru-

lenz der Parasiten für Mäuse abnahm, stieg sie für Meerschweinchen.

Bei der Kultivierung der Parasiten in der Maus wurde die Virulenz

für diese Tiere wiederhergestellt nach 4—8 Passagen.

Theiler, A. (1). Further notes on Piroplasma mutans. Pt. IL.

Final proof showing that P. mutans has to beconsidered a distinct

species. Journ. comp. Path. Ther., Edinburgh, 22, p. 115—132.

— Verf. sucht zu beweisen, daß Piroplasma mutans als distinkte

Species zu betrachten ist.

— (2). Anaplasma marginale, a new genus and species of

the Protozoa. Cape Town, Trans. R. Soc. 8. Africa, 2, pt. 1.

p- 69—72, figs.; Ann. Transvaal Mus. Pretoria, 2, p. 53—53.

— (3). Anaplasma marginale n.g. n.sp. Paris, Bull. soc.

path. exot., 3, p. 135—137. — Verf. beschreibt aus küstenfieber-

kranken Rindern die neue Gattung und Art Anaplasma marginale.

Vgl. ferner (4) und Sieber 1911.

— (4). Texasfieber, Rotwasser und Gallenkrankheit der

Rinder. Zeitschr. Infektions-Kr. Haustiere, Berlin, 8, p. 39—62,

pl. I. — Verf. stellt fest, daß der Begriff Texasfieber zwei ursäch-

lich verschiedene Krankheiten umfaßt, das Texasfieber im engeren

Sinne, anderswo Rotwasser genannt, verursacht durch Piroplasma

bigeminum, die Piroplasmosis, und jene Krankheit, durch

Anaplasma marginale verursacht, Anaplasmosis genannt.

Letztere wird ausführlich beschrieben; Übertragung, Immunität,

Therapie usw. Identität mit der ‚„Gall-sickness‘.

Publikationen und Referate. 301

— (5). Gall-sickness of South-Africa (anaplasmosis of cattle).

Journ. comp. Path. ther., Edinburgh, 23, p. 98—115. — Vergleiche

2.,0,.,3:

Thiroux, A. Une Hemogregarine de Crocodilus niloticus. Paris,

C. R. Soc. Biol. 69,, p. 577 u. 578. — Verf. beschreibt aus Crocodilus

niloticus die neue Art Aaemogregarina Pettiti, die verwandt ist

mit H. crocodilorum Börmer.

Thiroux, A. et Dufougere, W. Sur un nouveau spirille du

Ceropithecus patas. C. R. Acad. Sci. Paris, 150, p. 132—133. —

Verf. beschreiben als neu Spirochaeta pitheci, verwandt mit Spir.

duttont.

Thiroux, A. et Teppaz, L. (1). Traitement des trypanosomiases

chez les chevaux par l’orpiment seul ou associe & l’atoxyl ou &

l’emetique de potasse. Ann. Inst. Pasteur Paris, 24, p. 220—233.

— Die Verf. empfehlen zur Behandlung der Surra nach den an-

gestellten Versuchen ‚‚orpiment-&metique“. In einer Tabelle

werden die erzielten Resultate vergleichsweise zusammengestellt.

— (2). Traitement du Surra chez le dromedaire par l’orpi-

ment seul ou associe a l’emetique ou a ’atoxyl. Ann. Inst. Pasteur

Paris, 24, p. 234—238. — Die angestellten Versuche lassen noch

nieht mit Sicherheit eine erfolgreiche Behandlung erkennen.

*Thomson, D. B. and Balfour, A. Two Cases of Nonulcerating

„Oriental Sore‘, better termed Leishman Nodules. Trans. Soc.

trop. Med. Hyg., 3, p. 107—128, 5 pls.

Thomson, J. D. and Cushny, A. R. On the action of antimony

compounds in trypanosomiasis in rats: being a Report to a Sub-

Committee of the Tropical Diseases Committee of the Royal

Society. London, Proc. R. Soc., 82 B, p. 249—256. — Verf. be-

richten über Therapie der Trypanosomiasis mit Antimon-Ver-

bindungen.

Thomson, D. vide Ross, R.

Thomson, J. D. vide Minchin, E. A.

Tison, A. vide Maire, R.

Tobey, E. N. The cytology and life-history of Trypanosomes.

Journ. Med. Research, Boston, 22, p. 379—387. — Verf. berichtet

in einer Art Sammelreferat ohne Vollständigkeit über Cytologie

und Entwicklungsgeschichte der Trypanosomen. Strittige Fragen

werden auch nach eigenen Beobachtungen kurz behandelt.

Tomaselli, A. Morfologia della Leishmanie nell’succo splenico

di bambini affetti da leishmaniosi. Catania, Atti Acc. Gioenia,

Ser. 5, 3, Mem., 19, p. 1—3, 1 av.

*Torrend, C. Punctularia tuberculosa Pat. et son &tat gastero-

spore, Ceriomyces venulosus (Berk. and C. Torrend). Lisbonne,

Bull. Soc. Portug. sci. nat., 4, p.9 u. 10.

Trautmann, — vide Allain.

Tribaudeau, J. vide Conseil, A.

Truffi, M. (1). Immunisierungsversuche gegen Syphilis bei

Kaninchen. Centralbl. Bakt., Abt. 1, 54, Orig., p. 145—150. —

302 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Verf. hat gefunden, daß analog dem bezüglich der Affen Nach-

gewiesenen, die subkutane Einführung von Kaninchenimmun-

serum bzw. von menschlichem, an abgetötetem, spirochäten-

reichem Material nicht den Organismus des Kaninchens gegen die

subkutane syphilitische Infektion schützen kann.

— (2). Über die Empfänglichkeit des Kaninchens gegenüber

syphilitischen Reininfektionen. Centralbl. Bakt., Abt. 1, 54, Orig.

p. 337—341. — Verf. kommt zu dem Resultat, daß eine Immunität

des syphilitischen Kaninchens gegen Reinfektionen außer Zweifel

steht, daß dieselbe aber keine absolute ist. Das Gedeihen einer

neuen Infektion in der Periode der ersten Inkubation sowie in den

ersten Tagen nach Auftreten des Primärsyphiloms ist ein häufiges

Vorkommnis, seltener tritt es ein, wenn die Reinfektion be-

deutend später als die erste Manifestation stattgefunden hat;

selbst weitere Wiedereinimpfungen sind möglich.

Tyzzer, E. E. An extracellular Coccidian, Oryptosporidium

muris n.g. n.sp. of the gastrie glands of the common mouse.

Journ. Med. Research, 23, N. S. 18, p. 48”—509, pls. XX u. XXT.

— Verf. beschreibt nach schlechten Abbildungen das neue Genus

Cryptosporidium muris und berichtet über einige Experimente.

Sporocyste nicht vorhanden oder vereinigt mit der Oocyste, so

daß der ganze Organismus eine einzige Spore bildet mit 4 Sporo-

zoiten. Äus dem Schizonten gehen 8 Merozoiten hervor. Die

ganze Entwicklung ist extracellulär. Während der Wachstums-

periode befinden sich die Individuen auf der Epithelobertläche der

Darmdrüsen, und alle Formen, mit Ausnahme der der Merozoiten

und Sporozoiten, besitzen eine dünne Membran und ein Haft-

organ. Alle Formen enthalten Lipoidmaterial in Tropfenform.

Uffard, 6. B. Glossina palpalis et Trypanosoma Cazalboui.

Ann. Inst. Pasteur, 24, p. 276—295. — Verf. kommt zu dem

Resultat, daß sich der Entwicklungszyklus von Tryp. Cazalboui

gänzlich im Rüssel der Glossina palpalis vollzieht.

Uhlenhuth u. Mulzer. Allgemein-Syphilis bei Kaninchen und

Affen nach intravenöser Impfung. Berlin, Arb. Kais. Gesundheits-

amt, 34, p. 222—229. — Verf. berichten über typische syphilitische

beiderseitige Hodenerkrankung und luetische Keratitis bei einem

Kaninchen nach intravenöser Impfung, über typische Haut-

erkrankung eines niederen Affen und über gummiartige Syphilome

an der Nase zweier intravenös geimpfter Kaninchen.

Ullmann, K. Meine Erfahrungen mit Ichthyophthirius.

Wochenschr. Aquar.-Terrar.-Kunde, 7, p. 292. — von H. Lehnert

p. 337. — Die Bekämpfung der Ichthyophthirius-Seuche von

L. Schulze, p. 391—392, 1 Fig. — Populär.

Vaney, C. vide Meunier, L.

Vincent, H. Note sur les variations du complement dans

V’acces palustre. Compt. rend. soc. biol., T. 69, No. 37, p. 563—564.

*Virieux, J. A propos d’Opercularia articulata Ehrbg. Feuille

jeunes natural., Paris, 40, p. 96—97.

Publikationen und Referate. 303

Visenti, A. Über die Morphologie und den Entwicklungskreis

der bei Kranken Kalabriens und Siziliens beobachteten Leish-

mania. Arch. f. Schiffshygien., Leipzig, 14, Beih. 4, p. 1—15,

1 pl. — Verf. schließt, daß ‚‚die beschriebenen Formen, welche

Leishmania in Milz-, Leber-, Knochenmark-, Lymphdrüsenpräpa-

raten der Kala-Azar-Kranken Kalabriens und Siziliens aufweisen

kann, beweisen, daß im Menschen ein Prozeß von amitotischer

Teilung stattfindet, der in seinen Hauptlinien auch von Feletti

angegeben wird und mit dem übereinstimmt, was englische Autoren

im Kala-Azar in Indien und Nicolle in Tunis beschreiben.‘

Vislouch, 8.M. (Palatinella cyrtophora Lauterb. f. minor

(nova forma) und Synura reticulata Lemm., zwei für Rußland

neue Chrysomonaden.) St. Petersburg, Bull. jard. bot., 10, p 181.

—184 + deutsches Res. p. 185. — Russisch.

Wager, H. The effect of gravity upon the movements and

aggregation ol Euglena viridis Ehrbg., and other micro-organisms.

(Abstract.) London, Proc. R. Soc., 83 B, p. 94—96. — Verf. be-

schreibt bei Euglena viridis, deses, Chlamydomonas volvox und

Peridineen das eigentümliche Phänomen einer Ansammlung der

Individuen in kreisförmigen Gruppen in engen, dunkel gehaltenen

Gefäßen und einer cyklischen Bewegung, verursacht durch die

Schwerkraft ohne einen Tropismus. Die Aufwärtsbewegung be-

ruht auf der Aktivität der Organismen. Hinweis auf die Plankton-

bewegungen.

Walker, E.L. Trypanoplasma ranae n. sp. and its life-cyele

in cultures. Journ. Med. Research, 23, (N. S. 18), p. 391—406,

pl. X. — Verf. beschreibt Trypanoplasma ranae aus Rana palustris

Leconte in Kulturformen und bildet Geschlechtsformen und

Kopulation mit nachfolgender Sporulation (2 Sporen) ab. Weitere

Studien und bessere Abbildungen bleiben abzuwarten.

Ward, H.B. Recent Progress in Parasitology. Trans. Amer.

mier. Soc., 29, p. 119—158.

Wasielewski, Th. v. und Hirschfeld, L. Untersuchungen über

Kulturamöben. Abhandl. d. Heidelb. Akad. d. Wiss. (Stiftung

H. Lanz). Math.-naturw. Kl., Abt. 1, p. 1-31, pls. 1—4, 5 Figg.

— Verf. berichten zunächst über eine Amöbenart, die aus Stroh-

aufgüssen gezüchtet war und die sie ohne zoologische Benennung

als „Strohamoebe I‘ bezeichnen. Es lassen sich 3 Formen unter-

scheiden: Kriech-, Schwimm- und Dauerformen. Die Größe der

Kriechformen schwankt zwischen 8 und 60 u. Neben Zweiteilung

wurde im Dauerpräparat Drei- und Vierteilung beobachtet. Bringt

man eine Aufschwemmung von Cysten und Bakterien zusammen

in eine Kartoffelschale mit der Nährbrühe, so schlüpfen die

Amöben aus und wandeln sich allmählich zu Flagellatenstadien

um, wobei eine Verunreinigung der Kultur ausgeschlossen sein

soll. Auch auf Agarplatten mit Luftblasen, wo man Deckgläser

auf diese Stellen legt und sich Kondenswasser bildet, tritt obige

Umwandlung ein. An Stelle der hinteren zarten Fortsätze bilden

304 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

sich zwei Geißeln. Die Umbildung kann verschiedentlich modifiziert

werden; auch Rückbildung in die Kriechform tritt ein. Bei Nähr-

böden mit verhältnismäßig hohem Salzgehalt unterbleibt gewöhn-

lich die Fähigkeit, Schwimmformen zu bilden. — Der Kern zeigt.

nach Romanowsky-Färbung eine Zusammensetzung aus zwei ver-

schieden färbbaren Teilen. ‚Die äußere Schicht färbt sich leuchtend

rotviolett und schließt mit einem etwa 1 « dicken Ring, der bis-

weilen kleine, farblose Bläschen, aber nur selten eine Körnung

zeigt, einen großen, dunkelblau gefärbten Körper, das Caryosom,

ein.“ Ein Centriol ist vorhanden. Bei der Kernteilung teilt sich

zuerst die blaue Masse in zwei Kugeln, ‚die an die Spitze des

eiförmig gestreckten Kernes treten, die rote Masse sammelt sich

bandförmig in der Mitte der zwei blauen Kugeln, zerfällt in 3—5

längliche Körner (Chromosomen), welche sich teilen und mit den

blauen Kugeln voneinander abrücken“. Zuletzt vereinigen sich

die blaue Kugel, die roten Körner und das zartblaue Linin-

material zu einem neuen Tochterkern mit der angegebenen Lage-

rung. Eine Kernmembran ist nicht deutlich wahrnehmbar. Die

Kernrandschicht enthält mehrere (bis 9) Bläschen. Mehr. als

4 Kerne wurden auch in den Riesenformen nicht beobachtet.

Zweifelhaft bleibt die Bedeutung von Zelleinschlüssen und Zell-

knospen. — II. Die Strohamöben können auch Schwimmformen

bilden. Der Kern besitzt einen dreieckigen bis eiförmigen Rand-

körper, der zwischen Randoberfläche und Caryosom liegt. ‚Vor

der Teilung streckt er sich, die Teilstücke treten an die Kernpole.

Er färbt sich nach der Romanowsky-Färbung leuchtend rot. Sein

weiteres Schicksal bedarf der Aufklärung. Er bleibt auch bei den

Schwimmformen im Kern liegen, ohne daß bisher besondere Be-

ziehungen des Geißelansatzes zu ihm festgestellt werden konnten.‘

*Watson, E. A. Sarcosporidiosis. Its association with ‚loco-

disease‘ and Dourine, and the possibility of mistaking the spores

of Sarcocystis for certain so-called developmental forms of Trypa-

nosomes. Journ. comp. Path. Ther. Edinburgh, 22, 1909, p. 1—10

pls. I und 11.

Weber, A. Recherches sur la Sarcosporidie du Gecko (Sarco-

cystis platydactyli Bertram). Arch. anat. microsc. Paris, 11, p.

167—178, pl. VI. — Vergl. Bericht pro 1909.

Wechselmann, W. Über die Behandlung der Syphilis mit

Dioxydiamido-arsenobenzol. Berliner Klin. Wochenschr. No. 27,

p. 1—10. — Verf. hat überraschende Heilerfolge mit Dioxydia-

mido-arsenobenzol erzielt. Über die Technik der Injektionen wird

einiges mitgeteilt.

Wegener, G. Die Ectoparasiten der Fische Ostpreußens.

Königsberg Schr. physik. Ges., 50, 1909, p. 195—286, pl. VI u. VII;

Diss. Königsberg (R. Leupoldt), p. 1—97, 2 pls.

Wellmann, Cr. und Wherry, Wm. B. Some internal parasites

of the California ground squirrel (Otospermophilus beecheyi). Para-

sitol. Cambridge, 3, p. 417—422. — Verf. beschreiben folgende

Publikationen und Referate. 305

neue Arten: Leucocytozoon citellicola aus „squirrels“; Trypanozoon

otospermophili aus „California ground squirrel“.

Wellmer, L. Beitrag zur Kenntnis der Sporozoenfauna Ost-

preußens. Zool. Anz. Leipzig, 35, p. 530—534. — Verf. berichtet

über die Sporozoenfauna Ostpreußens und zählt die gefundenen

Gregarinen, Coccidien, Microsporidia und Haplosporidien auf.

Neu sind: Gregarina polyaulia im Darm von Harpalus aeneus,

Gr. (?) erecta aus Broscus cephalotes L., Actinocephalus permagnus

aus Procrustes coriaceus L., A. parvus in Larven von Ceratophyllus

fringillae, A. echinatus in Pterostichus niger, Cometoides sp. in Larven

von Carabus.

Welsh, D. A., and Barling, J. E. Haemogregarina petauri:

a Haemogregarine 0: a Marsupial flying squirrel. Journ. Path.

Cambridge 14, pp. 536— "41, pl. XXXV, Fig. 1.

*Welsh, D. A. and Dalyell, E. J. Haemogregarina peramelis:

a free Haemogregarine of an Australian bandicoot. Journ. Path.

Cambridge, 14, p. 547—549, pl. XXXV, Fig. 3 u. 4.

*Welsh, D. A., Dalyell, E. J. and Burfitt, M. B. Haemo-

gregarina dasyuri: &a Haemogregarine of the Australian native

cat. Journ. Path. Cambridge, 14, p. 542—546, pl. XXXV, Fig. 2.

Wendelstadt, H. und Fellmer, F. Einwirkung von Kaltblüter-

passagen auf Nagana- und Lewisi-Trypanosomen. Zeitschr.

Immunitätsforsch. exper. Therap. Orig., 5, p. 337”—348. — Referat

im Bericht pro 1911.

Wenyon, €. M. (1). Some observations on a Flagellate of

the genus C’ercomonas. Q. J. Microse. Sci. London, 55, p. 241—260,

19 text-figg. — Verf. beschreibt bei Cercomonas sp. Bewegung,

die Kernstruktur des einfachen Caryosomkernes, den Geißelansatz

mit Rhizoplast, die Kernteilung und Zellteilung, sowie Eneystierung.

Kernteilungsfig. 14—16 der Längsstrecken der Tochterplatten die

Verhältnisse von Monas gelatinosa n. sp. und Ochromonas. Nägler

1912.)

— (2). A new Flagellate (Macrostoma mesnili n. sp.) from

the human intestine with some remarks on the supposed cysts of

Trichomonas. Parasitol. Cambridge, 3, p. 210—216, pl. XV. — |

Verf. beschreibt neu Macrostoma mesnili aus dem menschlichen

Darm; die als Cysten von Trichomonas beschriebenen Formen

sollen degenerative oder anormale Entwicklungsformen sein.

— (3). Some remarks on the genus Leucocytozoon. Para-

sitol. Cambridge, 3, p. 63— 72. — Verf. berichtet über die Charak-

tere des Genus Zeucocytozoon, über Nomenklatur- und systematische

Fragen. Vergl. auch hierzu Porter, A.

Werbitzki, F. W. Über blepharoplastlose Trypanosomen.

Centralbl. Bakt. Orig., 53, Abt. I, p. 303—315, 2 pls. u. 2 Textfigg.

— Verf. hat Trypanosomen (Nagana-Stamm Ferox) in infizierten

Tieren mittelst einiger Farbstoffe, von denen die Substanzen mit

orthochinoider Konstitution an die erste Stelle gestellt werden

Archiv an a 20

306 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

müssen, behandelt und gefunden, daß die Trypanosomen ihren

Blepharoplasten einbüßen. Nach systematischer Behandlung,

mehrerer Trypanosomengenerationen läßt sich schließlich ein

Stamm erhalten, der vollkommen blepharoplastlos ist. Behandelt

wurde neben vielen Substanzen mit negativem Resultat mit

solchen aus der Diphenylmethan- und Diphenylamin-Gruppe mit

positivem Erfolg. Die verschiedenen Zellorgane besitzen verschie-

dene streng spezifische Chemoceptoren, und verschiedene chemische

Agentien haben verschiedene Angriffspunkte in der Zelle. Die cyto-

logischen Befunde ergeben folgendes. Die Geißel endet frei an

ihrer gewöhnlichen Stelle inmitten des Plasmas, oder sie hat an

ihrem Ende einen Knopf, der vielleicht als das erhalten gebliebene

Centriol des Blepharoplasten anzusehen ist. Die einzelnen Stadien

des Verschwindens des Bl. wurden nicht beobachtet. Bei Tei-

lungsformen trägt die eine Geißel an ihrem Ende noch den Blepharo-

plast, während die andere bereits frei endet. Die Annahme einer

Zerstörung des Blepharoplasten hält Verf. für die natürlichste.

Trotz des Fehlens des Blepharoplasten gelingt es nicht, irgend

welche auffällige Veränderungen in der Beweglichkeit der ble-

pharoplastlosen Stämme im Vergleich zu derjenigen der normalen

Stämme wahrzunehmen. Das Pyronin wird nicht an die der Be-

wegung dienenden Zellbestandteile gebunden. Die Vermehrungs-

funktion bleibt vollkommen erhalten. Die Eigenschaft des Stammes

ist ein andauernder hereditärer Erwerb der Zelle, der selbst nach

zahlreichen Passagen durch den normalen Tierorganismus er-

halten bleibt. Weiter wird die Entstehung einer blepharoplast-

haltigen Trypanosomenrasse aus dem blepharoplastlosen Pyronin-

stamm nach der 16. Passage beschrieben mit arsacetinempfindlichen

Blepharoplasten. Allerdings ergab ein Experiment auch, daß selbst

nach 50 Passagen mit verschiedenen Variationen die Eigenschaft

des Verlustes des Blepharoplasten erhalten geblieben ist.

Werner, H. Das Ehrlich-Hata Mittel 606 bei Malaria. Deutsche

Mediz. Wochenschr. No. 39, p. 1—5. — Verf. faßt seine Ergebnisse

folgendermaßen zusammen: „606 ist ein sehr wirksames Antimala-

ricum. Es wirkt in stärkerem Maße gegen Tertiana als gegen

Tropica. Eine einmalige Dosis von 0,6 (kombiniert intravenös

und subkutan) genügt in unseren Fällen, die Tertianaparasiten

zum Schwinden aus dem peripherischen Blute zu bringen und das

Fieber zu beseitigen. Diese Wirkung wurde in durchschnittlich

24 Stunden erzielt. Ob diese Wirkung von langer Dauer ist,

kann jetzt noch nicht übersehen werden, jedenfalls haben wir bei

mehrwöchiger Beobachtung noch keine Rezidive gesehen. Bei

Tropica genügte in etwa der Hälfte der Fälle die Dose von 0,6,

die Parasiten aus dem peripherischen Blute zeitweilig zu vertreiben

doch treten gewöhnlich schon nach wenigen Tagen die Parasiten

und mit ihnen das Fieber wieder auf. Die Anwendung von 606

empfiehlt sich bei Malaria in solchen Fällen, in denen das Chinin

versagt (Chininresistenz der Malaria) und bei Chininintoleranz.‘

Publikationen und Referate. 307

Werth, — vide Appel.

*West, G. S. Some new African species of VoWwox. London

Journ. Queck. Microsce. Cl. Ser. 2, 11, p. 99—104, pl. III.

Wherry, W. B. vide Wellman, €.

Whitmore, E. R. vide Dudley, F. W.

Wolff, M. (1). Über eine neue Krankheit der Raupe von

Bupalus piniarius L. Bromberg Mitt. Inst. Landw., 3, p. 69—92

1 pl. — Verf. beschreibt als neue Arten Chlamydozoon sphingi-

darum und prowazeki aus der Nonne, dem Schwammspinner und

Kiefernspanner. Weitere Einzelheiten über Struktur und Ent-

wicklungsgeschichte sollen folgen.

— (2). Der Einfluß der Bewässerung auf die Fauna der

Ackerkrume mit besonderer Berücksichtigung der Bodenprotozoen.

Bromberg, Mitteil. Inst. Landw., 1, 1909, p. 332—401. — Verf.

berichtet u. a. über die Protozoenfauna des Bodens und gibt ein

systematisches Verzeichnis der nachgewiesenen Spezies. Die

Biologie der einzelnen Arten hinsichtlich der Nahrungsaufnahme

wird kurz behandelt. Der humose sandige Lehmboden beherbergt

die artenreichere Protozoenfauna, im Sandboden ist die Fauna

artenärmer. Bei Bewässerung tritt stets eine Vermehrung der

Fauna ein.

Woodeock, H. M. (1). Protozoa. Zool. Rec. London, 46,

(1909), No. II, p. 1—14.

— (2). Studies on Avian Haemoprotozoa. I. On certain

parasites of the chaffinch (Fringilla coelebs) and the redpoll (Zinota

rufescens). Quart. Journ. Mier. Sci. London, 55, p. 641—740,

pls. XXVII—XXXI — Verf. gibt nach einleitenden Bemerkungen

über Arbeitsmethoden, Kulturverfahren, Impfversuchen, In-

jektionsversuchen mit Mücken, die wenig Erfolg hatten, einen all-

gemeinen Überblick über die Beziehung der Parasiten zum Wirt.

Dann folgt die Beschreibung der neuen Art: Trypanosoma fingril-

larum nach Befunden aus Vögeln und Kulturformen, ferner hin-

sichtlich der Kernphänomene und Kernteilung. Weiter werden

beschrieben ein Halteridium fringillae Labbe und Leucocytozoon

fringillarum n. sp. — Bezüglich des Kernbaues stimmen die An-

gaben des Verf. mit denen von Rosenbusch überein, dessen Arbeit

dem Verf. bisher nicht vorgelegen zu haben scheint. Die Kern-

teilungen scheinen in allen Fällen eine primitive Mitose mit Caryo-

somdurchschnürung darzustellen. Das Caryosom scheint dabei oft

bis auf ein Centriol mit Centrodesmose reduziert zu sein. Die

Abbildungen stehen denen von Rosenbusch an Deutlichkeit nach.

Die offensichtliche Doppelkernigkeit bringt den Verf. zu einer

Anerkennung der Binucleaten (Hartmann) mit Ausschluß

der Haemogregarinen. Besonders ist noch in den Einzelheiten

der Übergang der normalen Blutformen von Tryp. fringillarum

zu den Kulturformen in mehreren Typen geschildert, ähnlich wie

bei Tryp. lewisi und bei Tryp. rotatorium nach Doflein 1910. —

Verf. meint, daß vorläufig alle in Insekten lebenden Trypanosomen-

20*

308 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

ähnlichen Formen zum Entwicklungskreis eines Trypanosomas

eines Wirbeltieres gerechnet werden sollten, ehe nicht eine ein-

gehende Untersuchung das Gegenteil bewiesen hat. Verf. ver-

wechselt Herpetomonas und Leptomonas, auch hat er bei seinen

Vergleichen zu oft nur die Arbeiten englischer Autoren herange-

zogen, deren Angaben oft unkontrollierbar sind und zum mindesten

großer Zurückhaltung in ihren Schlüssen bedürfen. Immerhin

wendet sich Verf. mit Recht gegen Patton und Strickland, Robert-

son und sucht die Sexualität bei Trypanosomen wahrscheinlich zu

machen, wenngleich er nur bei Leucocytozoon und Halteridium

Andeutungen dafür zu erbringen vermag, keine Kopulationsstadien,

die eventuell nur in einem Zwischenwirt auftreten.

Woodeock, H. M. vide Minchin, E. A.

Woodruff, L. L. On the power of Reproduction without

Conjugation in Paramaecium. Proc. Soc. exper. Biol. Med. N. Y.

7, p. 144. — Verf. konstatiert, daß Paramaecium keine notwendigen

cyklischen Veränderungen zur allgemeinen Vitalität vornimmt.

Woodruff, L. L. and Morris, $S. F. The Biologieal Cycle of

the Hay Infusion. (Amer. Soc. Zool.) Science, N. 8., 31, p. 467

— 468. — Verf. berichten über den biologischen Cyklus der Heuin-

fusion. Die Verteilung wird kurz festgestellt. Der sogenannte

Cyklus besteht in Veränderungen des Mediums und nicht des

Protoplasmas. Konjugationsepidemien der Infusorien können

bei schneller Änderung des Mediums eintreten.

Woodruff, L. L. und Bunzel, H. H. The relative toxieity of

various salts and acidstowards Paramaecium. Amer. Journ. Physiol.,

25, 1909, p. 190—194.

Yakimoff, V. L. (1). (Zur Frage über die Piroplasmose der

Hunde. Erste Mitteilung. Die Piroplasmose der Hunde in Ruß-

land. Heilversuche.) Jurjev Zschr. wiss. u. prakt. Verein. med.,

4, 2, p. 309—336, 1 pl. — Russisch.

— (2). (Zur Lehre von den Blutparasiten der Meeres-

fische.) (Vorläufige Mitteilung.) Arch. veterin. nauk. St. Peters--

burg, 40, p. 1656—1664. — Russisch.

Yakimoff, V. L., Stolinikoff, V. J. und Kohl-Yakimoff, N.

(Zur Kenntnis von Achromaticus vesperuginis Dionisi.). Vorl. Mitt.

Rev. veterin. Moskva, 12, p. 297—298. — Russisch.

Yakimoff, V. L., Nina Kohl-Yakimoff und Korssak, D. W..

Hämatoparasitologische Notizen. Centralbl. Bakt. Abt. 1, 55,

Orig., p. 370—373, 1 pl. — Die Verf. fanden in der Feldmaus im

Gouvernement Ssaratow ein Trypanosoma sp., „das durch sein.

stäbchenförmiges Centrosoma (Blepharoplast) am geißellosen Ende

und einen hellen, dasselbe umgebenden Hof gekennzeichnet war“.

Ferner wird eine neue Form Trypanosoma korssaki aus der Feld-

maus im ostasiatischen Ufergebiete beschrieben, äußert schlanke _

Gestalt. Das Vorkommen von Tryp. lewisi kei grauen Ratten

im Gouvernement Ssaratow und Kasan gehört nicht zu den Selten-

heiten. Auch bei Feldmäusen wurden sehr vereinzelt Piroplasmen.

Publikationen und Referate. 309

gefunden, ferner beim Renntier, beim chinesischen Yak und

beim Bären.

Yakimoff, V. L. und Nina Kohl-Yakimoff. Contribution &

la chimiotherapie de la ‚Tick-fever‘‘ avec ‚606°‘ et la couleur de

benzidine. Ann. Inst. Pasteur, 24, p. 826—831. — Verf. erzielten

gleiche Resultate wie bei Dourine, behandelt mit Trypanrot

oder Atoxyl.

Yamanouchi, T. Action de l’Atoxyl sur les Trypanosomes

dans l’organisme. Paris, C. R. Soc. Biol., 68, p. 120—121. — Verf.

kommt bei Nagana-Trypanosomen zu dem Resultat, daß freie

Organe keine Wirkung auf Atoxyl haben und keine trypanociden

Körper produzieren; letztere werden von den roten Blutkörperchen

hervorgebracht. Der aktive Körper entsteht in vivo nach der

Injektion von Atoxyl im zirkulierenden Blut und verbindet sich

sofort mit den Trypanosomen und den anderen Albuminoiden des

Blutes.

Yorke, W. On the pathogenicity of a Trypanosome (Tr,

rhodesiense Stephens and Fantham) from a case of sleeping sickness

contracted in Rhodesia. Ann. trop. Med. Liverpool, 4, p. 351—368.

Zade, M. Beitrag zur Kenntnis der Trachomkörperchen und

ihres Vorkommens. Arch. Ophthalm. (v. Graefe), 77, p. 185—196.

Zschokke, F. Die Tiefenfauna hochalpiner Wasserbecken.

Basel Verh. Natf. Ges., 21, p. 145—152. — Verf. berichtet über die

Vertreter und die Biologie der Tiefenfauna hochalpiner Wasser-

becken und zählt u. a. die gefundenen Protisten mit auf. Cha-

rakteristisch sind viele Testaceen.

Zuelzer, M. (1). Uber Spirochaeta plicatilis und Spirulina.

Zool. Anz., 35, p. 795—797, 1 Fig. — Verf. berichtet in vorläufiger

Mitteilung über Cytologie und Vermehrung der Spirochaeta pli-

catılis. Das beste Charakteristikum des Genus Spirochaeta nach dem

Typus plicaticis bietet der Achsenfaden. Die ausführliche Arbeit

siehe 1911 im Arch. f. Protistenk.

— (2). Der Einfluß des Meerwassers auf die pulsierende

Vakuole. Arch. f. Entw.-Mechan. Leipzig, 29, p. 632—641, 1 pl. —

Verf. berichtet über den Einfluß von Meerwasser bis zu einem

Salzgehalt von 3% auf Kulturen der Amoeba verrucosa. Es traten

ein Schrumpfung, Chromatinarmut und Verschwinden der pulsie-

renden Vakuole. Durch Rückversetzung in Süßwasser trat wieder

Rückbildung ein. Vergleiche die Arbeit von 1909.

Zweig, L. Färbung der Spirochaeta pallida in vivo nach E.

Meirowsky. Med. Klinik Jahrg., 6, p. 823. — Verf. betont die

Vortrefflichkeit der Färbung der Spirochaeta pallida in vivo nach

Meirowsky.

Zwick und Fischer. Untersuchungen über die Beschälseuche.

I. Mitteilung. Arb. Kais. Gesundheitsamt Berlin, 36, p. 1—103,

pl. 1. — Verf. sind bei den Untersuchungen über die Beschälseuche

zu folgenden Resultaten gekommen. Diese Krankheit wird durch

Trypanosomen verursacht, die in ihren wesentlichen Merkmalen

310 Protozoa mit Ausschluß ‚der Foraminifera für 1910.

mit Tr. equiperdum übereinstimmen. Sie sind, wie bei der Dourine,

auf kleine Versuchstiere übertragbar, ferner auf Katzen, Hunde und

Pferde. Das Krankheitsbild stimmt mit der experimentellen

Dourine überein. Selbst bei Schafen ist künstliche Infektion

möglich, dagegen nicht bei Ziege und Rind. Beschälseuche und

Dourine sind ihrem Wesen nach identisch. Bei beschälseuche-

kranken trächtigen Tieren können die Trypanosomen vererbt

werden. Die Verbreitung der Krankheit geschieht durch den Be-

schälakt, ein Zwischenwirt kommt unter natürlichen Verhält-

nissen wohl nicht in Frage. Zur Diagnose wird empfohlen, Unter-

suchung des Scheiden- und Harnröhrenschleims, sowie des flüssigen

Inhalts der lokalen Hautanschwellungen, Bouillonkultur, sub-

kutane oder intraperitoneale Überimpfung an weiße Mäuse,

Meerschweinchen, Kaninchen und Hunde. Agglomeration und

Komplementbindung sind diagnostisch wenig verwertbar. Das

Serum eines kranken Pferdes und von 2 experimentell infizierten

Schafen übte bei weißen Mäusen eine, allerdings nicht ganz zu-

verlässige, Schutzwirkung gegen eine sonst tötliche Infektion

mit den Trypanosomen der Beschälseuche und Dourine, dagegen

nicht gegen eine solche mit Nagana-Trypanosomen aus. Einmalige

Behandlung mit Arsenophenylglyein (1 ccm einer Lösung 1: 150—

1: 300) kann weiße Mäuse dauernd heilen. Auch bei Kaninchen und

Hunden wurden Heilerfolge erzielt, bei Pferden bleiben weitere

Versuche abzuwarten.

Übersicht nach dem Stoff.

A. Allgemeines und Vermischtes.

Bestimmungstabelle: Auerbach 3, Boldt 2, Lemmermann, Mathis und

Leger 8. — Bibliothek: Guiart. — Dunkelfeldbeleuchtung: Prowazek 2,

Reicher, Spillmann. — Einleitung: Auerbach 3, Chatton 4, Fischer, Heinis,

Pringsheim, Prowazek 6, Schurig. — Expeditionen: Borgert 3, Broch 2,

Daday 1, Hofsten und Bock, Laackmann, Mast, H., Merkle, Murray, Osten-

feld 2, Paulsen, Philippi. — Experimente, Übertragungsmodus: Anschütz,

Appel und Werth, Baldrey, Balfour 2, Basile 2, Battaglia, Beck, Behn 3,

Bevan und Mac Gregor, Biot, Blaizot, Bordier und Horand, Bouet und

Roubaud, Bouffard, Bowmann, Breinl und Hindle, Broden und Rodhain,

Bruce, Br. Hamerton, Bateman u. Mackie, Bumann, Conor u. Nicolle,

Conseil u. Tribaudeau, di Cristina u. Cannata, Darling 1, 4, Deaderick,

Doane, Doflein, Dschunkowski u. Luhs, Dudley u. Whitmore, Ehrlich,

Erdmann 2, 4, Estabrook, Evans, Fantham, Faure-Frömiet 5, Fritzsche,

Franga u. Pinto, Frei, Ganslmayer, Goldschmidt, Gonder, G. u. Roden-

waldt, Günther, Heckenroth, Hindle, Holmes, Ishikawa, Jaffe; Jemma,

di Cristina u. Cannata; Jennings, Jowett, Junius, Kerandel, Khainsky 2,

Kleine, Knuth usw., Lafont, Laveran, Laveran u. Pettit, Lebedeff, Leese,

Leishman, Levaditi u. Me Jntosh, Liebetanz, Lipska, Low, Marchand,

Martin u. Darre, Mast 2, Matheny, Mayer, Meißner u. Jmmisch, Mesnil u.

Kerandel, Mesnil u. Leboeuf, Mettam, Minchin u. Thomson, Montgomery,

Übersicht nach dem Stoff. 311

Morgenroth u. Halberstädter, Morse, Nägler 1, Negri, Neiva, Nichols, Nicolle

u. Manceaux, Nuttalf 2, 3, Ogata, Patton, Peter, Petschenko, Popoff, Pro-

wazek, Reichenow, Rhumbler, Rodet, Rubinstein u. Bader, Roubaud,

Roudsky, Sangiorgi, Sergent u. Foley, Smith, G. E., Smith, G. U.,

Sowerby, Staniewiez, Strickland u. Swellengrebel, Strong, Strong u.

Teague, Swellengrebel u. Strickland, Tedeschi, Terry, Thiroux u. Teppaz,

Thomsen u. Cushny, Tyzzer, Truffi, Wasielewski u. Hirschfeld, Wechsel-

mann, Wendelstadt u. Fellmer, Werbitzki, Werner, Wolff, Woodeock 2,

Yakimoff u. Kohl- Yakimoff, Yamanouchi, Zuelzer 2, Zweig u. Fischer.

Färbungen: Erdmann 1 Faure-Fremiet 12, Gerber Giemsa, Herzog, Kalb,

Kasanzeff, Kellermann, Khainsky 2, Lindner, Meirowsky, Schmidt,

Swellengrebel 2, Zweig. — Geschichte: Auerbach 3, Battaglia, Baum-

gartner, Boldt 2, Borgert 2, Broch 1, Buschkiel, Cöpede, Chagas 1,

Chatton 3, Erdmann 3, Faure-Fremiet, Franca, Günther, Hartmann 4,

Jollos 2, Junius, Lebedeff, Negri 2, Ratz, St., Reichenow. — Hand-

bücher: Braun u. Lühe, Castellani u. Chalmers 2, Lemmermann. — Jahres-

berichte? Baumgarten u. Dibbelt, Gross 1, Lucas, Nägler 3, Woodeock. —

Kinematographie® Comandon, Levaditi u. Mutermilch, Reicher. — Kul-

turen: Aragäo de Beaurepaire, Behn 2, 3, Blaizot, Borowsky; Bruce, Ha-

merton, Bateman u. Mackie 3; Brumpt 1, Buschkiel, Castellani u. Chalmers,

Crawley, di Cristina u. Cannata, Dangeard 1, Deseler, Doflein, Dudukaloff,

Erdmann 4, Georgewitch, Jollos 2, Karwacki u. Szokalski 1, Kasanzeff,

Knuth u. sw., Laveran u. Pettit 12, Martini 2, Marzinowski, Mühlens 1,

Nägler 2, Nicolle u. Manceaux, Pulvirenti, Schüler, Siegel, Walker,

Wasielewski u. Hirschfeld, Woodceock 2. — Lehrbücher: Brumpt 2,

Bütschli, Calkins, Kisskalt u. Hartmann, Kruse. — Literaturübersicht:

Auerbach 3; siehe ferner unter Jahresberichte. — Methoden: Emmerling,

Fischer, Frei, Giemsa, Günther, Hartmann, Heinis, Jollos 2, Kaas, Khainsky,

Lenartowiez u. Potrzobowski, Liebetanz, Lipska, Meirowsky, Merkle 2,

Morgenroth u. Halberstädter, Mühlens 3, Reichenow, Schmidt, Woodeock 2.

— Microphotographie® Quidor. — Monographien: Auerbach 3, Cash u.

Hopkinson, Cepede, Daday 2, Dangeard 2, Faure-Fremiet 6, Jennings 5,

Mast, Merkle 2, Meunier, Pascher 2. — Nomenklatur: Broch 1, Bruce,

Hamerton, Bateman u. Mackie 1, Mercier, Patton 3, Schellack u. Reichenow,

Wenyon 3. — Paläontologisches: Prinicipi, Rovereto, Scholz. — Populäre

Darstellungen: France, Greif, Roth, Schwalbe, Ullmann. — Praktieum:

Kisskalt u. Hartmann, Schurig. — Prioritätsansprüche: Gonder 4. —

Publikationen: (nach Sprachen). Meist deutsche, englische und französische.

Italienische: Basile, Buscalioni u. Comes, Casagrandi, Comes, Gabbi,

G. u. Lacuva, Guarneri, Jeilio, de Marchi, Martoglio, Marzocchi, Negri,

Pierantoni, Pulvirenti, Tedeschi 2, Tomaselli. — Russische: Balachonzeff,

Belitzer, Galicoff, Grüner, Marzinowski, Mavrodiadi, Miropolski, Obol-

dujeff, Poletajeff, Reinhard, Singareva, Skorikoff, Stolinikoff, Vislouch,

Yakimoff usw. — Niederländische: Swellengrebel. — Ungarische: Entz,

Ratz, J. — Spanische u. Portugiesische? Aragäo de Beaurepaire, Carini

2, 3, 4, Chagas, Pittaluga. — Skandinavische: Christiansen. — Japanische:

Akiyama. — Sammelreferatee Baumgartner, Chatton 4, Dunkerly 2,

Hartmann 3, Laveran 4, Minchin 5, Mühlens 2, Seitz 1, Tobey, Ward. —

312 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Sammlungen: Paulsen. — Statistik? Ross u. Thomson. — Synonymik:

Alexeieff 2, Apstein 1; Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie 6; Chatton 6,

Cole u. Hadley u. a. m. — Synopsis: Auerbach 2, Baumgartner, Boldt 2,

Dogiel 2, Dreyer, Franga. — System. Fragen: Auerbach, Awerinzew 2,

Boldt, Borgert 3, Broch 1, Caullery 2, Cöpede, Chatton, Dogiel, Duke,

Franga, Gonder 2, Griffin, Gross 2, Hartmann, H. u. Chagas, H. u. Jollos,

Huxley 1, Janicki, Leger u. Dubosq, Leger u. Hesse, Lemmermann 1,

Mast, Mectalf, Minchin 2, Mrazek, Nägler 2, Nuttall u. Strickland, Reiche-

now, Senn, Wenyon 3. — Taschenbücher: Prowazek 6. — Technik: Auer-

bach 3, Battaglia, Bordier u. Horand, Fischer, Gambera, Hartmann,

Jentzsch, Kisskalt u. Hartmann, Köhler, Meunier u. Vaney, Minchin 3,

Negri 2, Schmidt, Swellengrebel 2. — Theorien: Alexeieff 1, Awerinzew 2,

Buschkiel, Chatton 4, Dangeard 2, Dogiel 2, Donath, Ehrlich, Erdmann,

Faure-Fremiet, Gross 2, Haase, Hartmann usw. Hickson, Moroff, Nägler 4,

Pringsheim, Prowazek, Reichenow, Rhumbler, Schaeffer, Schellack u.

Reichenow, Schuberg, Stempell 2, Stiasny, Stimson. — Tuscheverfahren:

—, Ultra-Mikroskop: Kaufmann, Siedentopf. — Vitalfärbungen: Khainsky 1,

Policard, Prowazek. — Vorträge: Dschunkowski u. Luhs, Ehrlich, Flem-

ming, Hoffmann, Jmmisch, Jennings 4, Kaufmann, Lampert, Mettam. —

Wandtafeln: Dönitz u. Hartmann, Laubenheimer. — Zool. Garten: Plimmer.

B. Cytologie und Morphologie.

Hauptgruppen (nach dem revid. System von Hartmann).

I. Cl. Sarcodina. 1. Subel. Rhizopoda: Awerinzew, Baumann, Brodsky,

Brown, Cash u. Hopkinson, Chatton 3, 4, Cole u. Hadley, Daday 1, Dangard

2, Edmondson, Erdmann 4, Fantham 3, Hartmann 1, H. u. Chagas 1, Heinis,

Menetrier, Mercier, Metcalf, Meunier, Minchin 2, Murray, Musgrave, Nägler 1,

Penard, Prowazek 1, 4, Rogers, Schepotieff, Smith, Th., Stole, Swellen-

grebel 3, 4, Wasielewski u. Hirschfeld, Zschokke, Zuelzer 2. — 2. Subel.

Heliozoa: Borowsky, Hopkinson, Murray. — 3. Subel. Radiolaria: Borgert 3,

Broch 2, Mast, H., Meunier, Moroff, Ostenfeld 2, Principi, Stiasny. —

4. Subel. Mycetozoa: Appel u. Werth, Growe, Hibbert-Ware u. Crossland,

Hilton, Leger 1, Maire u. Tison, Marchand, Minakata, Miropolski, Torrend.

II. Cl. Cnidosporidia. 1. Ordn. Mierosporidia? Auerbach, Leger u.

Hesse, Marzocchi, Mräzek, Pace, Schuberg, Stempell 2, Wellmer. — 2. Ordn.

Sarcosporidia:? Darling 1, 4, Erdmann 1, 2, 3, Fiebiger, Mason, Negre,

Negri 2, Poletajeff, Ratz, St., Teichmann, Watson, Weber. — 3. Ordn.

Myxosporidia? Auerbach, Awerinzew 4, Bosanquet, Drew, Leger u. Hesse,

Parisi 1, Prowazek 5, Schröder. — 4. Ordn. Aectinomyxidia: Auerbach. —

Anhang. Haplosporidia: Laveran u. Pettit 3 (?), Sun, Wellmer.

III. Cl. Mastigophora. 1. Subl. Flagellata: a) Sämtl. Ordnungen

exclusive Binucleata? Alexeieff 2, Arägao de Beaurepaire, Daday 2, Dan-

geard 1,2, Dunkerly 1, Edmondson, Fantham 3, Gerschler, Gonder 3, Haase,

Hartmann u. Chagas 2, Kellermann, Kunstler, Lafont, Lauterborn, Lemmer-

mann, Liebetanz, Mackinonn 1, Marson, Meunier, Ostenfeld 1, 3, Parisi 2,

Pascher, Prowazek 4, Ratz, J., Schüler, Senn, Vislouch. — b) Binucleata:

Alexeieff 1, 2, Anschütz, Baldrey, Basile, Battaglia, Beck, Behn, Belitzer,

Übersicht nach dem Stoff. 313

Bettencourt u. Borges, Bordier u. Horand, Bouet u. Roubaud, Bouffard,

Breinl u. Hindle, Broden u. Rodhain, Bruce; Br., Hamerton, Bateman u.

Mackie; Brumpt 1, Bumann, Calvocoressi, Carini 1, 4, Castellani u.

Chalmers, Chagas 2, Chagas u. Prowazek, Chatton 6, Christiansen, Cleland

u. Johnston, Comandon, Levaditi u. Mutermilch, Conor, Crawley,

di Cristina u. Cannata, Darling 3, Deseler, Dobell 2, Dodd, Doflein,

Dsehunkowski u. Luhs, Dudukaloff, Elmhirst u. Martin, Evans, Fantham 3,

4, 5, 6, Feletti, Ferguson u. Richards, Foran, Franca 2, 4, Frei, Gabbi,

Gaiger, Georgewitch, Gilruth, Sweet u. Dodd, Goldschmidt, Gonder,

G. u. Rodenwaldt, Grüner, Haji, Hartmann 2, H. u. Chagas 2, H. u. Jollos,

Heckenroth, Hesse, Hindle, Jmmisch, Jemma; Jemma, di Cristina u.

Cannata; Jollos1, Jowett, Kleine, Knuth; Knuth, Rauchbaar u. Morgenstern;

Laveran, Laveran u. Pettit 4, 6, 8, 12, Lebedeff, Leboeuf, Leboeuf u. Ringen-

bach, Levaditi usw., Low, Mackinnon 2, Martin, Martin u. Ringenbach, Mar-

tini1, Marzinowski, Martoglio usw.; Masson, Mathis u. Leger, Mayer, Meißner

u. Jmmisch, Mello, Mesnil, Mesnil u. Brimont, Mettam, Minchin, Minchin u.

Thomson, Minchin u. Woodcock, Montgomery 1, Mühlens 3, Müller, Nägler 2,

Neeb, Neiva, Nicolle u. Manceaux, Nuttall, Nuttall u. Fantham, Nuttall u.

Striekland, Oboldujeff, Ollwig u. Manteufel, Patton, Peter, Pittaluga,

Polieard, Porter, Porter u. Fantham, Prowazek 5, Pulvirenti, Rosenbusch,

Roudsky, Row, Sangiorgi, Schilling, Schmitt, Schönebeck, Seitz 2, Shi-

bayama, Sieber, Singareva, Sowerby, Stannus, Stephens u. Fantham,

Stockman, Stolinicoff, Striekland u. Swellengrebel, Swellengrebel, Sw. u.

Striekland, Terry, Theiler, Thiroux u. Teppaz, Thomson u. Balfour, Tobey,

Tomaselli, Uffard, Visenti, Walter, Wellmann u. Wherry, Wendelstadt u.

Felimer, Wenyon 3, Werbitzki, Woodceock 2, Yakimoff, Y. u. Kohl, Y.

u. Korssak, Yamanouchi, Yorke, Zwick u. Fischer. — Anhang: Spirochaetae:

Anschütz 1, Balfour 2, Blaizot, Cantacuzene, Comandon, Fantham 3,

Gaiger, Gerber, Gilruth 4, Gross 2, Hallopeau, Kalb, Karwacki u. Szo-

kalskı, Leishmann, Lenartowiez u. Potrzobowski, Lucet, Mackinnon 1,

MeJntosh, Meirowsky, Mühlens 1, Nuttall1, Ponselle, Porter 1, Prowazek 5,

Selenew 1, Sergent u. Foley, Sezary, Sezary u. Paillard, Smith, G. E.,

Spielmann, Tedeschi, Thiroux u. Dufougere, Uhlenhut u. Mulzer, Zuelzer 1

Zweig. — 2. Subel. Dinoflagellata. 1. Ordnung. Peridinea: Apstein, Bor-

gert, Broch 1, 2, Caullery 2, Chatton 1, 2, Dogiel 2, Entz, Jollos 2, Kofoid,

Krause, Lauterborn, Lemmermann 2, Liebetanz, Merkle, Meunier, Paulsen,

Senn. — 2. Ordn. Cystoflagellata? Emmerling, Faure-Fremiet 1.

IV. Cl. Telosporidia. 1. Ordn. Gregarinida:? Akiyama, Beauchamp,

Boldt, Budington, Dogiel 1, 2, Duke, Fantham 3, Galicoff, Huxley 1,

Mavrodiadi, Pfeffer, Prowazek 5, Robinson, Swarzewsky, Wellmer. —

2. Ordn. Coceidia: Balfour 1, Chagas 1, Fantham 1, 2, Gaiger, Hadley,

Laveran u. Pettit 5, Löger u. Dubosq, Montgomery 2, Prowazek 5, Schellack

u- Reichenow, Tyzzer, Wellmer. — Anhang: Haemogregarinida: Carini 2,

3, Cleland u. Johnston, Franga, Gilruth 1, Gilruth, Sweet u. Dodd; Hart-

mann u. Chagas 3, Johnston u. Cleland 1, Koidzumi, Laveran u. Pettit 1

2, 7, 9, 10, 11, Leboeuf u. Ringenbach, Minchin u. Woodeock, Nuttall, Patton

2, Prowazek 5, Reichenow, Robertson, Seitz 2, Thiroux, Welsh u. Barling,

W. u. Dalyell.

314 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

V. Cl. Triehonymphida: Buscalioni u. Comes, Comes, Hartmann 4,

Janicki.

VI. €. Infusoria. 1. Subel. Ciliata: (incl. Opalinidae): Andre, Bau-

mann, Beauchamp u. Collin, Brewer 1, Buschkiel, Caullery 1, Cöpede,

Chatton 5, Daday 2, Dubosq u. Collin, Edmondson, Estabrook, Faur6-

Fremiet, Fritzsche, Gerschler, Griffin, Jennings, Kaas, Kasanzeff, Khainsky

1, 3, Kolacev, Laackmann, Lauterborn, Liebetanz, Lipska, Marsson, Mar-

tini 2, Mast, S. O., Matheny, Merkle, Meunier, Morse, Murray, Nierenstein,

Ostenfeld 2, Petschenko, Pierantoni, Powers u. Mitschell, Prowazek 1, 4,

Rissler, Petschenko, Pierantoni, Powers u. Mitchell, Prowazek 1, 4, Rissler

u. Gomez, Roth, Schneider, Selenew 2, Smith, St. Siepi, Stevens, Stevens,

N. M., Straßburger, Ullmann, Virieux, Woodruff, W. u. Bunzel. —

2. Subel. Suctoria: Chatton u. Collin, Collin, Daday 2, Edmondson, Filipjev,

Meunier.

VII. Cl. Chlamydozoa: Addario, Awerinzew 3, Casagrandi, Flem-

ming, Ganslmeyer, Guarneri, Hartmann 3, Herzog, Junius, Lindner, Negri 1,

Prowazek 3, Sachs-Mücke, Segre, Stimson, Wolff 1, Zade.

Diverse (andere Protozoen, die zurzeit im System nicht sicher unter-

gebracht werden können): Borrel, Carini 5, Chatton 5, Dubosq u. Collin,

Dudley u. Whitmore, Gilruth 2, 3, Gonder 1, Hoefer, Leger u. Dubosgq,

Meunier, Ogata.

Pseudoprotozoen: Addario, Pace, Schuberg u. Schubotz.

Allgemeines über: Protoplasma: Borgert, Borowsky, Cepede, Chagas 1,

Chatton, Dangard, Doflein, Fantham, Faure-Fremiet, Fiebiger, Filipjev,

Gonder, Griffin, Gross 2, Haase, Hartmann, H. u. Chagas 1, 2, Huxley,

Jshikawa, Janicki, Jennings u. Hargitt, Jollos, Khainsky, Krause, Laack-

mann, Lebedeff, Mast, Mercier, Metcalf, Nägler, Pfeffer, Prowazek, Ratz, St.,

Reichenow, Stole. — Kern: Alexeieff 1, Aragäo de Beaurepaire, Borgert,

Borowsky, Brodsky, Budington, Buschkiel, Caullery 2, Cöpede, Chagas 2,

Chatton, Dangeard, Doflein, Dogieli, Erdmann, Fantham, Faure-Fremiet,

Fiebiger, Filipjev, Gonder, Griffin, Haase, Hartmann, H.u. Chagas, Hindle,

Huxley, Janicki, Jennings u. Hargitt, Jollos, Kasanzeff, Khainsky, Laack-

mann, Lebedeff, Maire u. Tison, Martin, Marzocchi, Mast, Mereier, Minchin

u. Woodeock, Moroff, Mräzek, Nägler, Pfeffer, Powers u. Mitchell, Pro-

wazek, Reichenow, Robertson, Robinson, Schellack u. Reichenow, Schepo-

tieff, Schilling, Schröder, Schuberg, Stevens, Stiasny, Sun, Swellengrebel

Wasielewski u. Hirschfeld, Wenyon, Werbitzki, Woodeock. — Organellen:

Aragäo de Beaurepaire, Beauchamp u. Collin, Brumpt 1, Bütschli, di

Cristina u. Cannata, Dangeard, Doflein, Dogiel 2, Erdmann, Faure-Fremiet,

Filipjev, Griffin, Haase, Hartmann, Huxley, Jollos, Kellermann, Khainsky,

Kolacev, Kunstler, Lebedeff, Martin, Nägler 2, Ratz, St., Rosensbuch,

Schuberg, Senn, Wenyon 1, Werbitzki. — Skelett? Broch, Dunkerly 1,

Khainsky 2, Kofoid, Mast, Stiasny.

Speecielles über:

Agglutination: Doflein. Axialfilament: Hindle 1, Swellen-

Augenfleck: Schüler. grebel 5.

Axenfaden, bei Spirochäten: Zuel- | Axostyl: Hartmann u. Chagas 2,

zer 1. Swellengrebel 5.

Übersicht nach dem Stoff.

Bacterioidkörper: Carini 6.

Blastophor: Chatton 5.

Blepharoplast:? Alexeieff 1, Fan-

tham 5, Franga 4, Georgewitch,

Gonder 4, Hartmann 4, H. u.

Chagas 2, Jollos 1, Lebedeff,

Mesnil u. Brimont, Nägler 2,

Schilling, Seitz 2, Swellengrebel

. 1, 5, Werbitzki.

Centriol? Aragäo de Beaurepaire,

Brodsky, Chagas 1, Chatton 3, 4,

Duke, Erdmann 4, Hartmann,

H. u. Chagas, Janicki, Jollos,

Schepotieff, Swellengrebel 3,

Wasielewski u. Hirschfeld, Wer-

bitzki, Woodeock.

Centrosome: Chatton 4, Faure-

Fremiet 11, Hartmann 4, Mer-

cier, Swellengrebel 5.

Chromatophoren: Haase.

Chromidial - Körper (bei Sarcom):

Borrel.

Chromidien: Dangeard 2, Faure-

Fr&ömiet 11, Gonder 2, Hart-

mann 4, Khainsky 2, Lebedeff,

Mereier, Moroff, Prowazek,

Schepotieff, Swellengrebel.

Chromosomen: Borgert 2, Brodsky,

Budington, Chatton 3, Dangeard

2, Hartmann 4, H. u. Chagas 1,

Stevens, N. M.

Collare, bei Lophomonaden: Ja-

nicki.

Cyklische Umsetzungen: Hartmann

1, H. u. Chagas 2, Mercier,

Woodruff.

Cytomierosomen: ‚Metcalf.

Cytomorphe: Prowazek.

Direkte Kernteilung (bei Ceratium):

Borgert 2.

Doppelkernigkeit: Hartmann u.

Chagas 2, H. u. Jollos, Wood-

cock.

Eneystierung! Aragäo de Beaure-

paire, Brodsky, Buschkiel, Caul-

lery 2, Dangeard 1, Fantham 2,

Filipjev, Hartmann u. Chagas 2,

Janicki, Jollos 2, Mae Kinnon 2,

315

Mercier, Patton 1, Rosenbusch,

Schepotieff, Schüler, Swarzewsky

Wenyon 1.

Epitheliale Wucherungen: Chatton 1,

Fiebiger, Schuberg.

Extramembranöses Plasma: Krause.

Fadenapparat, bei Sarcosporidia:

Erdmann 1.

Farben der Plasmodien: Minakata.

Fettkügelehen: Nierenstein, Tyzzer.

Flimmerapparat: Kolacew.

Gallerthüllen: Hartmann u. Chagas

2, Krause.

Gelbe Zellen (bei Radiolarien): Sti-

asny.

Geißelapparat: Hartmann u. Cha-

gas 2.

Granulation (bei Trypanosomen):

Bordier u. Horand.

Haftapparat, bei Infusorien: Faure-

Fremiet 4, bei Coceidien: Tyzzer.

bei Gregarinen: Huxley 1.

Haptogenmembran: Prowazek.

Hypertrophie: Schuberg.

Initialkörper: siehe Chlamydozoa.

Involutionsformen: Selenew 1, Se-

Zary.

Kinochondren: Awerinzew 1.

Kernansammlungen: Schröder.

Kernfragmentation: Aragäo de Beau-

repaire, Haase.

Kernknospung, innere: Robinson.

Kernvergrößerung: siehe unter

Wachstum.

Kernverschmelzung (bei Heliozoen):

Borowsky.

Kernteilung: Borgert, Borowsky,

Brodsky, Chagas, Chatton 3, 4,

Dangeard 2, Erdmann 4, Faure-

Fremiet 5, Filipjev, Griffin,

Haase, Hartmann 4, H. u. Cha-

gas, Khainsky 2, Jollos, Mercier,

Nägler, Prowazek, Reichenow,

Schepotieff, Schröder, Stevens,

Sun, Swellengrebel, Wasielewski

u. Hirschfeld, Wenyon,Woodeock.

Kopforgan, bei Triehonymphiden:

Hartmann 4.

316

Kristalle: Pfeffer.

Metachromatische Körper: Erdmann

1, Schuberg.

Mitochondrien: Faure-Fremiet.

Mononucleäre Leucocyten: Patella.

Multiple Mitosen: Chagas 1 Hart-

mann 2, Janicki, Swellengrebel

3, Wasielewski u. Hirschfeld.

Nebenkörperehen (bei Ceratium):

Borgert 2.

Palmella-Stadien: Pascher 1.

Peristom: Gonder 3, Griffin.

Pigment: Brumpt 1, Moroff.

Plasmakugeln, sog.: Gonder 2.

Plasmodien: Chatton 1, 5.

Plastiden: Borgert 2.

Polkapsel! Schuberg.

Polyenergide Kerne:

Janicki, Moroff.

Polymorphismus: Doflein, Hindle 2,

Hartmann 4,

Lebedeff, Selenew 1, Sezary,

Woodeock.

Primär- u. Sekundärkerne: Hart-

mann 4, Swarzewsky.

Promitose, Mesomitose u. Metami-

tose: Chatton 4, Haase, Mercier,

Nägler.

Randkörper, bei Lohamoeben: Wa-

sielewski u. Hirschfeld.

Reduktionsteilung!: Aragäo de

Beaurepaire, Buschkiel, Chagas

1, Gonder 4, Hartmann 4, Schrö-

der, Stevens.

Reservestoffe: Doflein, Erdmann 1,

Fantham 2, Filipjev.

Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Ring- u. Sternformen: Selenew 1

Sezary.

Riesenformen: Behn 3. Wasielewski

u. Hirschfeld.

Rhizoplast: Hartmann u. Chagas 2,

Wenyon 1.

Rosettenbildung:? Anschütz 2, Dof-

lein, Georgewitch.

Saugnapf: bei Acineten: Filipjev.

Schwimmformen: Wasielewski u.

Hirschfeld.

Sekundärkerne: Hartmann 4, Swar-

zewsky.

Sporoeysten:? Schröder.

Sporulation (bei Tryponasomen):

Battaglia, Carini, Walker.

Stachelkranz: Beauchamp u. Collin.

Sterkome: Awerinzew 1.

Strahlenformen, bei Piroplasmen:

Deseler.

Strukturdifferenzen, fundamentale:

Prowazek.

Symmetrie: Filipjev.

Tentakel!: Faure-Fremiet 1.

Triehocysten: Khainsky 1.

Trimorphismus, bei Acineten: Chat-

ton u. Collin.

Vakuolen: Erdmann 4, Faure-Fre-

miet 12, Khainsky, Metcalt,

Zuelzer 2.

Variable Formen:

riation.

Vegetative Kerne bei Microsporidien:

Mräzek, Schuberg, Stempell.

Vielkernigkeit: Erdmann 4, Mräzek.

siehe unter Va-

C. Physiologie.

Allgemeines: DBorgert 2, Chatton 4, Doflein, Ehrlich, Erdmann 1,

Faure6-Fremiet 6, 11, Fischer, Frei, Jennings, Khainsky, Krause, Kruse,

Lemmermann 1, Liebetanz, Lipska, Moroff, Policard, Popoff, Ponselle,

Powers u. Mitchell, Prowazek, Reichenow, Rhumbler, Roubaud, Stole,

Tedeschi, Teichmann, Wasielewski u. Hirschfeld, Wendelstadt 2, Woodruff,

Zuelzer 2. — Kernplasmarelation! Borowsky, Erdmann 4, Stole. — An-

passung: Babak, Dangeard 1, Dogiel 1, Eceles, Neiva, Roudsky, Schaeffer.

— Ernährung: Aragäo de Beaurepaire, Borgert 2, Dogiel 1, Haase, Janicki,

Khainsky 2, Lemmermann 1, Nierenstein, Ponselle, Rhumbler, Schaeffer-

Schüler, Staniewiez, Stole, Wolff 2. — Exeretion: Anonymus, Buscalioni u.

Comes, Metcalf. — Bewegung: Aragäo de Beaurepaire, Gonder 2, Hart-

Übersicht nach dem Stoff. 317

mann 4, H. u. Chagas 2, Lemmermann 1, Mayer, Metcalf, Morse, Reichenow,

Stole, Wager. — Reize: Anschütz 1, Biot, Bordier u. Horand, Estabrook,

Fantham 1, Günther, Jshikawa, Jennings, Khainsky, Lemmermann 1,

Mast, Matheny, Mayer, Popoff, Schaeffer, Schüler, Stole, Tedeschi, Wood-

ruffu. Burzel, Zuelzer. — Degeneration: Aragäo de Beaurepaire, Borowsky,

di Cristina u. Cannat a, Erdmann 4, Haase, Hindle 1, Jemma, di Cristina u.

Cannata, Lipska, Mayer 2, Nägler 1, Nuttall 2, Sangiorgi, Schüler, Segre,

Selenew 2, Swellengrebel u. Strickland, Wenyon 2. — Regeneration: Faure-

Frömiet 5, Fritzsche. — Sinnesfunktionen: Borgert 2. — Serologisches:

Beck, Ehrlich, Fischer, Frei, Jaffe, Mesnil u. Leboef, Seitz 1, Teichmann,

Vincent, Zwick u. Fischer. — Phagoeytäre Reaktion des Organismus:

Chatton 5, Comandon, Levaditi u. Mutermilch, Selenew. — Immunität:

Beck, Blaizot, Bumann, Gonder 2, Heckenroth, Levaditi u. MeJntosh,

Mühlens 1, Petschenko, Prowazek 3, Seitz 1, Sergent u. Sergent, Süpfle,

Tedeschi, Teichmann, Terry, Theiler 4, Truffi. — Virulenz? Bumann,

Mühlens 1, Roubaud 1, Sangiorgi, Segre, Terry. — Autopsie® Lucet. —

Physik. Bedingungen des Mediums: Dangeard 1, Frei, Jennigs, Tedeschi,

Woodruff u. Morris. — Haemolyse: Frei, Jaffe. — Therapie: Anschütz 1, 2,

Battaglia, Beck, Bouffard, Bowman, Broden u. Rodhain, Bruce, Bumann,

Conor u. Nicolle, Conseil u. Tribaudeau, Deaderick, Dunbar, Ehrlich,

Evans, Goldschmidt, G. u. Rodenwaldt, Heckenroth, Hindle, Holmes,

Jowett, Karwackiu. Szokalski, Kerandel, Kuenen, Laveran, Leese, Martin u.

Darre, Meißner u. Jmmisch, Mesnil u. Kerandel, Mesnil u. Leboef, Morgen-

roth u. Halberstädter, Mühlens 3, Neiva, Nuttall, Nuttall u. Hadween,

Ogata, Patton 2, Rogers, Schönebeck, Seitz 1, Strong, Strong u. Teague,

Theiler 4, Thiroux u. Teppaz, Thomson u. Cushny, Ullmann, Wechselmann,

Werner, Yakıimoff u. Kohl- Yakıimoff, Yamanouchi, Zwiek u. Fischer.

Fermente: Erdmann 1, Günther, Morse. — Narkose: Jshikawa. — Periodizi-

tät der Teilung: Mathis u. Leger 1, Prowazek. — Kolloid-Chemisches:

Prowazek, Rhumbler. — Abnormitäten: Mast, S. O., Mercier, Swellengrebel

5. — Chemische Zusammensetzung: Ehrlich, Emmerling, Faure-Fremiet 6,

Morgenroth u. Halberstädter. — Depression: Borowsky, Erdmann 4, Jen-

nings, Lebedeff, Popoff. — Pigmentbildung: Brumpt 1, Moroff. — Hered.

Erwerb: Erdmann 4, Werbitzki. — Speeifität, bei Trachom: Addario. —

Speeifität, bei Haemoproteus: Mathis u. Leger 8. — Tropfige Entmischungen

Anschütz 1, Prowazek. — Tygmotropismus: Aragäo de Beaurepaire. —

Oberflächenentwicklung: Babak, Hartmann u. Chagas 2. — Komplement-

Ablenkung: Beck, Bowmann 2. — Tierpassagen: Bevan u. MacGregor,

Roudsky, Terry, Wendelstadt u. Fellmer, Werbitzki. — Wiederbelebungs-

versuche: Biot. — Wachstum: Broch 2, Jennings, Moroff, Prowazek. —

Mechanische Übertragung: Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie 5, Swellen-

grebel u. Strickland. — Teratogene Wirkung: Cepede. — Kerndualismus:

Chatton 4, Haase, Hartmann u. Chagus 2. — Chemo- u. Tigmotaxis: Doflein.

— Zerschneidungsexperimente: Faur6e-Fremiet 5. — Splenektomie: Gonder

u. Rodenwaldt. — Röntgenotaxis? Günther. — Cyklische Umsetzungen:

Hartmann, H. u. Chagas 2. — Drehung der Kernteilungsaxe: Hartmann u.

Chagas 2. — Sensibilität des Virus: Heckenroth. — Sonderung des Ecto- und

Entoplasmas? Jshikawa. — Erstickung: Jshikawa. — Rejuvenation:

318 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Jennings. — Verschwinden des pulsierenden Vakuole: Zuelzer. — Melanin-

Produktion: Johnston u. Cleland 2. — Immobilisierung der Infusorien:

Haas. — Pulsation der kontraktilen Vakuole: Khainsky 1. — Proteolyse:

Khainsky 1. — Schalenbildung: Khainsky 2. — Metachromasie: Khainsky

2, 3. — Hungern: Khainsky 3. — Gesättigtsein: Schaeffer. — Metamorphose

des Maecronucleus: Khainsky 2, 3. — Attachement bei Trypanosomen: .

Levaditi, Mutermilch 2. — Ersehöpfungsexperimente: Lipska. — Vakuboli-

sation: Lipska. — Eindringen der Tryp.: Martin u. Ringenbach. — Helio-

tropismus: Mast, S. 6, 2. — Teilungsrate® Matheny, Morse. — Nieren-

infarkte: Mayer 2. — Nucleolenbildung: Moroff. — Schüttelexperimente:

Morse. — Chininresistenz? Neiva, Prowazek, Werner. — Fettverdauung:

Nierenstein. — Giftwirkung: Prowazek. — Cavulationsprozeß: Prowazek.

— Strukturspannung: Prowazek, Rhumbler. — Blepharoplastlose Stämme

bei Trypanosomen: Werbitzki. — Ausbild. von Schwimmformen: Wasie-

lewski u. Hirschfeld. — Receptivität:? Rodet, Rubinstein u. Bader. — Tei-

lungsgeschwindigkeit:? Schüler. — Labile Infektion: Seitz 1. — Gift der

Sarcosporidien: Teichmann. — Ansammlung u. eyklische Bewegung: Wager.

— Allgemeine Vitalität: Woodruff.

D. Fortpflanzung und Entwicklungsgeschichte.

Allgemeines: Auerbach 3, Calvocoressi, Cepede, Chatton 3, 4, Dan-

geard 2, Doflein, Greif, Hartmann, H. u. Jollos, Hickson, Jennigs, Khainsky

2, Kisskalt u. Hartmann, Lemmermann, Mräzek, Nägler 4, Prowazek 2,

Reichenow, Swellengrebel, Woodruff.

Hauptgruppen:

I. Cl. Sareodina: 1. Subel. Rhizopoda? Awerinzew 1, Brodsky,

Chatton 3, 4, Coleu. Hadley, Dangeard 2, Erdmann 4, Fantham 3, Hart-

mann u. Chagas 1, Khainsky 2, Mercier, Metcalf, Minchin 1, Schepotieff,

Sun, Swellengrebel 3, Wasielewski u. Hirschfeld. — 2. Subel. Heliozoa;

Borowsky. — 3. Subel. Radiolaria? Moroff, Stiasny. — 4. Subel. Myce-

tozoa: Hilton 1, Maire u. Tison, Miropolski.

II. Cl. Cnidosporidia: 1. Ordn. Mierosporidia: Auerbach 3, Mar-

zochi, Mräzek, Schuberg. — 2. Ordn. Myxosporidia: Auerbach 3, Bosanquet,

Schröder. — 3. Ordn. Sarcosporidia: Darling, Erdmann 2, 3, Fiebiger,

Negre, Negri, Watson. — 4. Ordn. Actinomyxidia? Auerbach 3. — Anhang:

Haplosporidia? Sun.

III. €l. Mastigophora: 1. Subel. Flagellata: a) Sämtl. Ordn. excl.

Binucleata: Alexeieff 2, Aragäo de Beaurepaire, Dangeard 1, 2, Dunkerly,

Haase, Hartmann u. Chagas 2, Lemmermann, Mackinnon 1, Schüler,

Wenyon 1, 2. — b) Binueleata: Alexeieff 1, 2, Anschütz 2, Baldrey, Basile 2,

Battaglia, Beck, Behn, Bouet u. Roubaud, Bouffard, Breinl u. Hindle,

Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie, Brumpt 1, Carini, Castellani u.

Chalmers, di Cristina u. Cannata, Deaderick, Dobell 2, Doflein, Dschun-

kowski u. Luhs, Elmhirst u. Martin, Fantham 3, 4, 5, Franca u. Pinto,

Georgewitch, Gonder, G. u. Rodenwaldt, Hartmann 2 usw., H. u. Chagas 2,

H. u. Jollos, Jollos, 1, Kleine, Knuth usw., Lafont u. Mesnil, Lebedeff,

Low, Mackinnon 2, Martin, Mathis u. Leger, Mayer, Minchin u. Thomson,

Montgomery 1, Nägler 2, Neeb, Nicolle u. Manceaux, Nuttall u. Strickland,

Übersicht nach dem Stoff. 319

Patton 1, Porter 1, Rosenbusch, Roubaud, Sangiorgi, Schilling, Shibayama,

Stephens u. Fantham, Strickland u. Swellengrebel, Swellengrebel 5, Theiler,

Tobey, Uffard, Visenti, Walker, Woodeock. — Anhang: Spirochaeta:

Balfour 2, Gross 2, Hallopeau, Karwacki u. Szokalski, Leishmann, Zuelzer.

— 2. Subel. Dinoflagellata: Apstein 2, Borgert 2, Caullery 2, Jollos 2, Lemmer-

mann 1, Senn.

IV. Cl. Telosporidia: 1. Ordn. Coceidia: Chagas 1, Cole u. Hadley,

Fantham 1, 2, Leger u. Dubosg, Schellack u. Reichenow, Tyzzer. — 2. Ordn.

Gregarinida: Duke, Galicoff, Huxley 1, Mavrodiadi, Pfeffer, Robinson,

Swarzewsky. — Anhang: Haemogregarinida: Franca, Hartmann u. Chagas

3, Koidzumi, Laveran u. Mesnil 9, Reichenow, Robertson.

V. Cl. Infusoria: 1. Subel. Ciliata? Buschkiel, C&pede, Faure-Fremiet 5,

10, Griffin, Jennings, Kasanzeff, Pierantoni, Powers u. Mitchell, Prowazek 4,

Selenew 2, Stevens N. M., Woodruff u. Morris. 2. Subel. Sucetoria: Chatton

u. Collin, Collin, Filipjev.

VI. €l. Trichonymphida: Comes 2, Hartmann 4, Janicki.

VII. Cl. Chlamydozoa: Hartmann 3, Stempell.

Diverse Protisten, die zurzeit nicht sicher im System untergebracht

werden können: Chatton 5, Dubosq u. Collin, Laveran 3, Ogata.

Spezielle Fragen: Querteilung: Caullery 2, Cepede, Gross 2, Senn,

Stevens. — Längsteilung: Aragäo de Beaurepaire, Dangeard, Hartmann 4,

H. u. Chagas 2, Karwacki u. Szokalski. — Schizogonie:? Anschütz 2, Bor-

gert 2, Carini 5, Chagas 1, Chatton 5, Dobell 2, Fantham 3, 4, Franga u.

Pinto, Gonder 2, G. u. Rodenwaldt, Hartmann 2, H. u. Chagas 3, Koid-

zumi, Laveran u. Mesnil 9, Leger u. Dubosq, Maire u. Tison, Reichenow,

Robertson, Schellack u. Reichenow, Selenew 2, Shibayama, Swarzewsky,

Tyzzer. — Sporogonie: Bosanquet, Chagas 1, Duke, Gonder 2, Hartmann u.

Chagas 3, Marzochi, Mräzek, Negri, Pfeffer, Reichenow, Robertson, Robinson,

Schepotieff, Sun, Swarzewsky. — Parthenogenese: Anschütz 2, Deaderick,

Neeb.— Entwicklung in Zwischenwirten:? Anschütz 2, Baldrey 3, Balfour 2,

Basile 2, Beck, Bouet u. Roubaud, Bouffard, Breinl u. Hindle, Bruce,

Hamerton, Bateman u. Mackie, Chatton 3, 6, Dschunkowski u. Luhs 1,

Fantham 3, Franga u. Pinto, Gonder 2 usw., Hartman u. Jollos, Kleine,

Knuth, Lafont, Laveran u. Mesnil 8, 11, Leishmann, Low, Minchin u. Thom-

son, Montgomery, Nuttall u. Strickland, Ogata, Patton 1, Reichenow,

Robertson, Roubaud 2, Sangiorgi, Smith, G. E., Smith, G. U., Stephens u.

Fantham, Strickland u. Swellengrebel, Uffard, Woodceock. — Knospung:

Apstein 2, Borgert 2, Cepede, Chatton u. Collin, Hartmann 4, Metecalf,

Stiasny. — Embryonenbildung: Filipjev. — Plasmogamie: Huxley. —

Kernteilung: siehe unter Cytologie. — Heteropole Kernteilung: Haase,

Hartmann u. Chagas 2. — Autogamie: Buschkiel, Calkins, Schilling. —

Copulation: Aragäo de Beaurepaire, Chagas 1, Dubosq u. Collin, Duke,

Fantham 2, Gonder 2, Haase, Hartmann 4, H. u. Jollos, Huxley 1, Lebedeff,

Mercier, Metcalf, Reichenow, Robertson, Robinson, Schellack u. Reichenow,

Schepotieff, Walker, Woodeock. — Schwärmerbildung: Jollos 2, Metcalf,

Moroff, Schepotieff. — Entwieklungseyklus: Anschütz 2, Buschkiel, Chagas

1, Fantham 2, Gonder 2 usw., Hartmann 4, Koidzumi, Leger u. Dubosg,

320 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Mereier, Minchin u. Thomson, Reichenow, Schellack u. Reichenow, Schepo-

tieff, Stempell, Swarzewsky, Uffard, Woodeock. — Generationswechsel:

Awerinzew 1. — Konjugation: Calkins, Collin, Jennings, Kasanzeff,

Khainsky 2, Powers u. Mitchell, Stevens, N. M., Woodruff u. Morris. —

Multiple Fortpflanzung! Auerbach 3, Chagas 1, Erdmann 4, Gonder 2,

Janicki, Swellengrebel 3. — Chromosomenentwicklung: Sun. — Befruch-

tungstheorie®e Dangeard 2. — Gemmulation: Metcalf. — Kettenbildung:

Borgert 2, Cepede. — Heterogamie: di Cristina u. Cannata. — Prä- u. Post-

flagellatenstadien: Battaglia, Behn 2, Porter 1. — Fortpflanzungseysten:

Alexeieff 2, Chatton 5. — Typen der Kernteilung: Chatton 4. — Fakultative

Apogamie: Erdmann 4. — Chromidiogamie: Khainsky 2. — Polygamie:

Khainsky 2. — Neosporidie® Mräzek. — Kreuzformen: Nuttall u. Strick-

land. — Pansporoplast-Bildung: Schröder. — Sporulation bei Trypano-

plasma: Walker.

E. Biologie.

Allgemeines: Aragäo de Beaurepaire, Babak, Balachonzeff, Baumann,

Baumgartner, Borgert 2, Borowsky, Brumpt 1, Cepede, Chatton 4, Chatton

u. Collin, Dangeard 2, Doflein, Ehrlich, Erdmann, Estabrook, Faur&-Fr&miet

6, 10, 11, Filipjev, Frei, Gerber, Gondler, Haase, Hadley, Hartmann,

H.u. Chagas, Heinis, Jmmisch, Janicki, Jennings, Kaas, Kasanzeff, Khainsky,

Kleine, Knuth, Krause, Kruse, Lafont, Lebedeff, Lemmermann, Levaditi

usw., Liebetanz, Lipska, Marchand, de Marchi, Martin u. Ringenbach,

Martini 2, MeJntosh, Mercier, Mesnil u. Leboeuf, Metcalf, Minchin u. Thom-

son, Moroff, Mräzek, Mühlens 1, Nägler, Nicolle u. Manceaux, Pascher,

Penard, Petschenko, Popoff, Pringsheim, Prowazek, Reichenow, Schaeffer,

Schmitt, Schodduyn, Schuberg, Schurig, Schwalbe, Selenew, Wolff 2,

Woodruff u. Morris, Zschokke. — Polyenergide Kerne: Chagas 1, Hartmann

4, Janicki, Moroff. — Kerndualismus: Faure-Fremiet 11, Hartmann u,

Chagas 2, Swellengrebel 3, Woodeock. — Plankton: Balachonzeff, Broch,

Faur6-Fremiet 2, 3, Herdmann, Scott u. Dakin, von Hofsten u. Bock,

Honigmann, Krause, Lauterborn, Lemmermann 2, Marson, Merkle, Meu-

nier, Meunier u. Vaney, Murray, Östenfeld, Paulsen, Reinhard, Schurig,

Wager. — Formenkreis: Jollos 1, Mast, H. — Reservoire, für Trypano-

somiden: Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie. — Tiefsee: siehe zum Teil

unter Plankton. — Psychologie: Donath. — Thermophile Formen: Cantacu-

zene. — Mutationen: Pringsheim. — Natürliche Auslese: Mast, S. O. 1,

Pringsheim, Roudsky. — Bewässerung des Bodens: Wolff 2. — Selbstreini-

gung der Gewässer: Lauterborn. — Wasseruntersuchung: Skorikoff. —

Variation: Brown 2, Faure-Frömiet 9, Jennings 3, Lemmermann, Mathis u.

Leger 4, Ostenfeld 2, Powers u. Mitchell, Pringsheim. — Lebensdauer: Biot,

Fantham 1, Georgewitch, Karwacki u. Szokalski, Lipska, Matheny, Morse,

Reichenow. — Koloniebildung: Lemmermann, Pascher. — Biologische

Profile: Lauterborn, Marsson. — Leitformen des Planktons verschiedener

Flüsse: Lemmermann 2. — Anomalien: Vergl. auch Degeneration u.

Depression: Swellengrebel u. Strickland. — Biometrie: Hindle 2. — Ver-

erbung: Erdmann 4, Fantham 5, Jennings 3, Pringsheim, Smith, G. E.,

Süpfle. — Rassen: Jennings, Neiva. — Artbildung: Jennings, Pringsheim.

Übersicht nach dem Stoff. 321

— Saisondimorphismus: Baumann, Broch, Lemmermann. — Schwebe-

apparat! Beauchamp u. Collin. — Phylogenie: Awerinzew 2, Carini 1, Chat-

ton 4, Dogiel 2, Hartmann 1, 2, H. u. Chagas 2, H. u. Jollos, Jollos, Leger

u. Dubosgq, Leger u. Hesse, Nägler 2, Reichenow, Sun, Swellengrebel 3. —

Übergangsformen: Doflein, Hartmann 4, H. u. Chagas 2, H. u. Jollos,

Lebedeff, Woodceock. — Symbiose u. Kommensalismus: Andre, Buscalioni

u. Comes, Chatton u. Collin, Comandon, Filipjev, Lemmermann, Mercier.

— Pseudoparasitismus?: Pace. — Parasitäre Kernhypertrophie: Schuberg.—

Fakultativer Parasitismus: Krause, Nägler 1. — Parasitäre Kastration:

Cepede.

Parasitismus:

Allgemeines: Andre, Auerbach 3, Awerinzew 3, Baumgartner, Boldt 2,

Braun u. Lühe, Brumpt 2, Buschkiel, Calkins, Caullery 2, Cepede, Chatton

1, 2, 3, 5, Dreyer, Fischer, Gaiger, Gonder 1, Guiart, Henry, Jeilio, Lafont,

Lampert, Laveran u. Mesnil 3, Lemmermann, Liebetanz, Mercier, Minchin 1,

Mräzek, Nägler 1, Negre u. Bridre, Ogata, Pace, Parisi, Petschenko, Reiche-

now, Roth, Schepotieff, Schuberg, Surbeck, Ward, Wegener, Woodcock.

Nach den Tierklassen der Wirte geordnet:

PROTOZOA: In Amöben: fakultativ parasitische Micrococcen. Nägler.

— In Entamoeba blattae: Nucleophaga, Bakterien usw. Mereier. — In Colpoda

eucullus: Protozoon sp. G@onder. — In COyttarocyclis ehrenbergii: Peridinee.

Dubosg u. Collin. In Trichodina labrorum: Amöben. Chatten.

PFLANZEN: In Melonen, Sellerie u. Kohl: Plasmodiophora brassicae.

Marchand. In Euphorbia thymifolia u. hypericifolia: Leptomonas Davids.

Lafont.

COELENTERATA: In Sagartia parasitica: Eurychilum actiniae.

Andre. — In Eleutheria dichotoma: Kofoidella eleutheriae. Cepede.

ECHINODERMATA: In Antedon sp.: Conchophthirius antedonis.

Andre. /

PLATYHELMINTHES: In Planaria spp. u. Sorocoelis spp.: Lan-

kesteria. Swarzewsky. — In Dendrocoelum lacteum: Trypanoplasma

dendrocoeli. Fantham u. Porter, Porter.

CHAETOPODA: In Allurus tetraedrus: Schultzellina mucronata.

Cepede. — In Aelosoma hemprichii: Anoplophrya maupasi. Cepede. — In

Oligochaeten (ausführl. Liste): monocystide Gregarinen. Hesse. — In Lum-

bricus terrestris u. rubellus: Hoplitophrya hamata. Cepede. In Lumbricus

spp.: Maupasella nova. Cepede. — In Lumbricus castaneus u. rubellus:

Monocystis arcuata. Boldt. — In Tubifex sp.: Intoshellina maupasi. (e-

pede. — In Lumbricus u. Potamothrixz: Mwyxocystis sp. Mräzek. In

Octolasium complanatum: Monocystis herculea, Rhabdocystis claviformis u,

Monocystis piriformis. Boldt. — In Nicomache lumbricalis: Piterospora

ramificata. Dogiel. In Thelepus circinnatus: Chlamydocystis captiva.

Dogiel. — In Travisia forbesi: Urospora travisiae u. ovalis. Dogiel. — In

Spirorbis pusillus: Anoplophrya spirorbis. Sterzinger.

HIRUDINEA: In COlepsine sexoculuta u. Hemiclepsis marginata: Meta-

mera schubergi. Duke. — In Hirudo medicinalis u. Aulastomum gulo: Trypano-

Archiv für Naturgeschichte 91

TILLIVLU2,

322 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

plasma vaginalis. Hesse. — In Placobdella catenigera: Haemogregarina

stepanowi. Beichenow. — In Ozobranchus shipleyi: Haemogr. nicoriae.

Robertson.

CRUSTAZEA: In Acartia clausi: Paradinium poucheti. Chatten. — In

Calanus helgolandicus: Ellobiopsis chattoni. Caullery. — In Olausia elongata,

Acartia clausi u. Paracalanus parvus: Perezella plagica u. Uronema rabaudi.

Cepede. — In Paracalanus parvus: Syndinium turbo. Chatton. — In Anas-

pides tasmaniae: Ganymedes anaspidis. Huxley. — Auf Anilocra: Ortho-

cona anilocrae. Andre. Auf Eupagurus bernhardus: Cothurnia paguri.

Andr&. — In Eriphia spinifrons: Porospora legeri. Beauchamp. — In

Grapsus haematocheira: Thelohania grapsi. Prowazek.

MYRIOPODA: In Lithobius forficatus: Barrouxia alpina. Schellack u.

Reichenow.

INSECTA: In Insekten und Myriapoden: Gregarinen. Wellmer. — In

Harpalus aeneus, ruficornis: Gregarina polyaulia. — In Broscus cephalotes:

Gr. (?) erecta. — In Procrustes coriaceus: Actinocephalus permagnus. — In

Ceratophyllus fringillae und gallinae: Act. parvus. — In Pierostichus niger

u. Omascus vulgaris: Act. echinatus. Wellmer. — In Staphylinus caesareus,

Oychrus rostratus, Hydrophilus aterrimus, Helophorus aquaticus, Systino-

cercus caraboides, Nepa cinerea u. Oribata geniculata: unbest. Gregarinen.

Wellmer. — In Bupalus piniarius: Chlamydozoon prowazeki. Wolff. —

In Ceratophyllus fasciatus: Trypanosoma lewisi. Minchin u. Thomson. —

In Ceratophyllus faseiatus: Malphigiella refringens. Minchin. In Cera-

tophyllus laverani: Tryp. blanchardi. Laveran u. Pettit. — In Dysdercus

ruficollis: Adelea hartmanni. Chagas. — In Ephemera vulgata: Nosema

schneideri, Stempellia mutabilis u. Thelomyzxa glugeiformis. Leger u. Hesse. —

In Haematopota fluvialis: Tryp. franki (?). Knuth u. Rauchbaar. — In

Homalomyia sp., Neuroctena anilis u. Scatophaga lutaria: Leptomonas u.

Herpetomonas. Mackinnon. — In Stubenfliegen: Leptomonas sarcophagae.

Prowazek. — In Luecilia serenissima: Rhynchomonas luciliae. Patton. —

In Musca nebulo: Herpetomonas muscae-domesticae. Patton. — In Limno-

philus rhombicus, flavicornis, Stenophylax, Sericostoma: Trichomastix

trichopterae. Mackinnon. — In Periplaneta orientalis, Gryllotalpa vulgaris

u. Ectobia lapponica: Trichomastix orthopterorum. Parisi. In Melo-

phagus ovinus: Crithidia melophagia. Porter. In Calotermes militaris:

Gymnonympha zeylanica u. Nycetotherus termitis. Dobell. In Captotermes

hartmanni: Trichonympha hertwigi. Hartmann. In Termes lucifugus:

Lophophora vacuolata. Comes.

ARACHNIDA: In Leiognathus arcuatus: Trypanosoma vespertilionis.

Gonder. \

MOLLUSCA: In Littorina obtusata: Isselina intermedia. Cepede.

HEMICHORDATA: In Piychodera minuta: Protoentospora ptycho-

derae. Sun.

PISCES: In Cottus scorpius: Haemogr. cotti scorpü. — In Zeugopterus

punctatus: FH. zeugopteri. — In Labrus maculatus: H. labri. — In Callio-

nymus Lyra: H. binucleata. — In Gadus pollachius: H. gadipollachii. Henry.

— Auf Fischen: Ektoparasiten. Wegener. — In Molva vulgaris: Leptho-

theca informis. — In Brosmius brosme: L. longipes. Auerbach. — In Alosa-

Übersicht nach dem Stoff. 23

finta: Sphaerospora caudata. Parisi. — In Auchenoglanis biscutatus: Tryp.

‚simondi. — In Synodontis notatus: Tryp. synodontis. Leboeuf u. Ringenbach.

— In Box boops: Trichomonas legeri. — In Box salpa: Trichomonas Pro-

wazeki, Trichomastix sp., Tetramitus Mesnili. Alexeielf. — In Barbus:

Pleistophora longifilis. Schuberg. — Auf Carassius vulgaris: Cvyclochaeta

domerguei. Schneider. — In Clarias macrocephalus: Trypanoplasma cla-

riae. Mathis u. Leger. — In Conger niger: Trypanoplasma congeri. Elm-

hirst u. Martin. In Coregonus exiguus bondella: FPleistophora ovicola.

Auerbach. — In Cottus bubalus, scorpius, Scomber scomber: Haemohormidium

cotti u. Haemotractidium scombri. Henry. — In Gadus luscus: Glugea ship-

leyi. Drew. — In Gobius capito: Haemogr. Yakimoff. — In Hippoglossoides

limandoides: Pleistophora hippoglossoidees. Bosanquet. In Heterodontus

japonieus: Haemogr. heterodonti. Mugil: Myzxobolus exiguus. — In Acan-

thogobius: Henneguya. Prowazek. — In Motella trieirrata, mustela: Uro-

phagus intestinalis, T'richomastix motellae u. T’rimitus motelsae. Alexeieff.

In Salmo iridens: Rhinosporidium u. Neurosporidium. Laveran u. Pettüt. —

In Scardinius eryihrophthalmus: Myzidium macrocapsulare. — In Abramis

brama u. Leuciscus rutilus: Pleistophora elegans. Auerbach. Auf Sym-

phodus tinca u. melops: Trichodina labrorum u. Amoeba mucicola. Chatten.

— In Syngnathus acus: Tryp. Yakimoff. In Trigla lineata: Haemogr.

rovignensis, Tryp. Minehin u. Woodeock. In Zygopterus punctatus:

Tryp. zygopteri. Henry.

AMPHIBIA: In Amblystoma mezicanum: Trichomonas sp. Parisi. —

In Hyla aurea: Haemogr. (Lankesterella) hylae. Cleland u. Johnston. — In

Rana palustris: Trypanoplasma ranae. Walker. — In Rana esculenta,

Bufo cinereus u. Bombinator pachypus: Amoeba currens. Metealf. — In

Rana tigrina: Tryp. sp. u. Haemogr. sp., Balantidium ovale u. hyalinum.

Dobell. In Rhacophorus maculatus: Opalina virgula. — In R. m. und

Bufo melanostictus: Nyethotherus papillatus. Dobell.

REPTILIA: In Dendrophis punetulatus: FHaemogr. dendrophidis. — In

Varanus varius: Haemogr. varanicola. — In Lygosoma (Hinulia) quoyi

Haemogr. hinuliae. Johnston u. Cleland. — In Agama colonorum: Coccidium

agamae. Laveran u. Pettit. — In Agama colonorum: Haemogr. agamae.

Laveran u. Pettit. — In Clemmys japonicus: Haemogr. sp. Koidzumi. — In

Crocodilus niloticus: Haemogr. pettiti. Thiroux. In Or. porosus: Hae-

mogr. sp. Dobell. — In Damonia subtrijuga: Haemogr. pellegrini. Laveran

u. Pettit. — In Dipsadomorphus forstenii u. ceylonensis: Haemogr. Dobell. —

In Emyda japonica: Haemogr. emydae. — In Clemmys japonica: Haemogr.

clemmydis. Prowazek. — In Hemidactylus leschenaultii u. Mabuia carinata:

Trichomonas u. Trichomastix spp. Dobell. — In Lacerta muralis: Haemogr.

nobrer, marceani, bicapsulata u. nana. Franga. — In Zamenis hippocrepis:

Haemogr. manceauxi, luisieri. — In Coronella giromdica: H. coronellae.

Franca. In Phylodrias schoiti: Haemogr. phylodriasi. Carini. In

Psammodromus algirus: Haemog. lusitanica. Franca. — In Python spilotes:

Flaemogr. megalocystis. Gilruth, Sweet u. Dodd. In Schlangen unbest.:

Haemogr. lutzi. Hartmann u. Chagas. In Tertudo graeca: Entamoeba

testudinis. Hartmann. — In Tropidonotus stolatus: Trypanosoma tropi-

‚donoti. Dobell. — In Dryophis myeterizans: Trichomonas u. Trichomastix

21*

321 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

spp. Dobell. — In Trionyx gangeticus: Myzidium mackiei. Bosanquet. — In

Varanus varius: Haemogr. sp. Gilruth.

AVES: In Turtur humilis, Palaeornis cyanocephalus, Ardeola flavicollis,

usw.: Halteridium spp. Mathis u. Leger, — In Biziura lobata: Proteosoma

biziurae. Gilruth, Sweet u. Dodd. — In Elanus coeruleus: Lamblia san-

guinis. Gonder. — In Fringilla coelebs u. Linota rufescens: Tryp. fringil-

larum u. Leucocytozoon fringillarum. Woodeock. — In Ixus hainanus:

Tryp. Brimonti u. Leucocytozoon Brimonti. Mathis u. Leger. — In Falco

nisus u. Monedula monedula: Leucocytozoon sp. Singareva. In Tauben:

Trichomonas columbae. Ratz. — In Turtur humilis: Leucocytozoon marchouzi.

— In Querquedula crecca: Leuc. simondi. Mathis u. L£ger.

MAMMALIA: In Dasyurus viverrinus: Haemogr. dasyuri. Welsh. — In

Perameles nasuta: H. peramelis. Welsh usw. In Petaurus sciureus: Haemogr.

petauri. Welsh u. Barling. — In Tamandua tridactyla: Tryp. legeri. Mesnil

u. Brimont. — In Mus agrarius: Tryp. korssaki, Piroplasma sp. Yakimoff

u. Kohl- Yaikmoff. — In Mäusen: COryptosporidium muris. Tyzzer. In

Microtus incertus: Smiüthia microti. Franca. — In Eliomys quercinus:

Trypanosoma eliomis. Franca. In Cephalophus grimmi: Theileria sp.

Betteneourt u. Borges. — In Spermophilus eversmanni: Trypanosoma Sp.

Grüner. In Otospermophilus beecheyi: Tryp. otospermophili, Haemogr.

eitellicolla. Wellmann u. Wherry. — In Yak: Piroplasma sp. Yakimoff u.

Kohl - Yakimoff. — In Ziegen: Piroplasma hirci. — In Hasen: Piropl.

leporis. Dschunkowski u. Luhs. — In Schafen: T’rypanosoma sp. Woodeock.

— In Schafen: Gastrocystis gilruthi. Chatten, Gilruth. — In Rindern u.

Wiederkäuern: Sphaeromonas, Oicomonas, Cercomonas, Piromonas. Liebe-

tanz. — In Rindern: Trypanosoma sp. Stoeckmann, Schmitt, Cristiansen. —

In Rindern: Amoeba bovis u. Mastigamoeba bovis. Liebetanz. — In Rin-

dern u. Ziegen: Tryp.caprae. Kleine. — In Kamelen: Sarcocystis sp. Mason.

— In Pferden: Piroplasma caballi. Nuttall u. Striekland. — In Pferden:

Tryp. hippicum. Darling. — In Pferden: Tryp. venezuelense. Mesnil. —

In Canis adustus: Piroplasma rossi u. Haemogr. canis-adusti. Nuttall. —

In Canis aureus: Haemogr. (Hepatozoon) rotundata. Patton. — In Hunden:

Toxorlasma canis. Mello. — In Hunden und Canis aureus: Piroplasma

gibsoni. Patton. — In Herpestes mungo u. Cervus axis: Piroplasma SPP.

Patton. — In Talpa: Toxoplasma talpae. Prowazek. In Menschen:

Prowazekia weinbergi. Mathis u. Leger. — In Menschen: Macrostoma

mesnili. Wenyon. — In Menschen: Bodo (Prowazekia) asiaticus. Castellani

u. Chalmers. — In Menschen: Uronema caudatum Martini. — In Menschen

Protozoon unbest. Hoefer. — Weiteres siehe unter Krankheiten.

Krankheiten.

Allgemeines. Baumgarten u. Dibbelt, Braun u. Lühe. Brumpt 2,

Calkins, Castelleni u. Chalmers 2, Doane, Dönitz u. Hartmann, Dreyer,

Dschunkowski u. Luhs, Fischer, Gaiger, Gilruth, Sweet u. Dodd,

Guiart, Hartmann 3, Henry, Kruse, Laveran 4, Masson, Minchin 1, Müh-

lens 2, Patella, Plimmer, Prowazek 4, Rodet usw., Seitz 1, Surbeck, Tanake,

Ward, Wegener. — Amakebe: Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie 1. —

Ampoebendysenterie®? Hartmann 1, Kuenen, Musgrave, Rogers, Tanaka, —

Übersicht nach dem Stoff. 325

Anaplasmosis: Theiler, Sieber. — Anaemia splenica infantilis: di Cristina

u. Cannata, Gabbi, Jemma 2; Jemma, di Cristina u. Cannata. — Anaemia:

Hoefer. — Balantidienenteritis: Brewer 1, Martini 2, Rissler u. Gomez,

Straßburger. — Baleri? — Beschälseuche: Jmmisch, Meißner u. Jmmisch,

Zwick u Fischer. — Biliary fever! Jowett, Nuttall u. Strickland. — Blak-

head: Cole u. Hadley. — Coceidiosis: Balfour 1, Cole u. Hadley, Fantham 1,

2, Hadley, Laveran u. Pettit 5, Montgomery 2, Tyzzer. — Darmkrankheiten:

Brewer 2, Castellani u. Chalmers 1, Martini 1, Rissler u. Gomez, —

Dengue: —. — Dourine: Jmmisch, Meißner u. Jmmisch. Mesnil, Watson,

Zwick u. Fischer. — „Egyptian fever“: Dreyer. — Erytheme bei Trypano-

somiasis: Darr6 u. Gery. — Epitheliome: Drew. — Fischkrankheiten:

Alexeieff 2, Auerbach, Buschkiel, Drew, Lampert, Laveran u. Pettit 3,

Minchin u. Woodeoock, Roth, Schneider, Schuberg, Ullmann, Wegener. —

Flagellatendysenterie: Castellani u. Chalmers 1, Mathis u. Leger 6, Rissler

u. Gomez. — Flagellose (bei Pflanzen): Lafont. — Gall-sickness (Gal-

ziekte): Sieber, Theiler. — Gambiafieber: —. — Gastroenteritis: Lucet. —

Granuloma: Fer;suson u. Richards. — Geflügelpocken: Schuberg u. Schu-

botz. — Gelbsucht: Marzocchi. — Gelbes Fieber! —. — Gilruth-Cysten-

Erkrankung: Chatton 5, Gilruth. — Haemoglobinurie: —. — Histoplasmosis:

Darling 2. — Kala-Azar: Basile 2, Conor u. Nicolle, Feletti, Gabbi, Visenti.

— Keratitis: Uhlenhut u. Mulzer. — Kindermalaria (Warabeyami): Tanaka.

— Kohlhernie: Appel u. Werth, Marchand. — Krebsgeschwülste: Awe-

rinzew 3. — Küstenfieber der Rinder: Mayer 2. — Leberabscesse: Rogers.

— Leishmaniosis (beim Hunde): Basile, Jemma, Laveran u. Pettit, Masson,

Pulvirenti, Tomaselli, Visenti. — Lymphangite epizootique: Negre u.

Bridre. — Magenkrankheiten: Liebetanz. — Malaria: Atkinson, Billet,

Bowman 1, Calvocoressi, Chagas u. Prowazek, Deaderick, Dreyer, Dunbar,

Gonder u. Rodenwaldt, Kerr, Low 2, Mühlens 3, Neeb, Neiva, Ross u.

Thomson 2, Sergent u. Sergent, Shibayama, Tanaka, Vincent, Werner. —

Milzkrankheit!? di Cristina u. Cannata. — Myxosporidiosen:? Auerbach,

Bosanquet. — Nagana: Battaglia, Heckenroth, Mesnil, Rodet, Wendelstadt

u. Fellmer, Yamanouchi. — Nutalliosis: Nuttall u. Strickland. — Nephritis:

Bowman 1, — Orientbeule: Ferguson u. Richards, Gabbi u. Lacava, Mar-

zinowski, Nicolle u. Mancesux, Row, Thomson u. Balfour. — Ostküsten-

fieber: Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie 1, Gonder, Mayer 2, Nuttal

u. Fantham, Theiler. — Pebrine: Stempell 1. — Raupenkrankheit: Wolff 1.

— Piroplasmosen: Baldrey 2, Belitzer; Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie

1; Bumann, Carini 4, Deseler, Dodd, Dreyer, Dschunkowski u. Luhs 1,

Franca 2, Frei, Goldschmidt, Gonder 8, Jowett 1, Mettam, Nuttall, Nuttall

u. Hadween, Nuttall u. Strickland, Oboldujeff, Patton 2, Sieber, Stannus,

Stolinikoff, Yakimoff 1. — Pneumonie: Allain u. Trautmann. — Pseudo-

küstenfieber: Ollwig u. Manteufel. — Psorospermose: Horta u. Paredes. —

Redwater: Theiler 4. — Ruhr? —. — Salpingitis: Menetrier. — Sarcom:

Borell. Sarcosporidiosen: Darling 1, 4, Erdmann 1—3, Fiebiger, Mason,

Negre, Negri 2, Poletajeff, Ratz, St., Teichmann, Watson. — Schlafkrank-

heit: Allain u. Trautmann, Bagshawe, Beck, Bevan u. MacGregor, Bruce;

Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie 2, 4, 5; Hindle, Hoffmann, Kerandel,

Kleine, Low 1, Martin u. Ringenbach, Martin u. Darre, Mesnil u. Kerandel,

326 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910,

Meyer, Minchin 5, Pittaluga, Ross u. Thomson, Stephens u. Fantham,

Yorke. — Schwarzwasserfieber: Foran, Mayer. — Souma: Bouffard. —

Spirochaetose der Hühner: Balfour 2, Blaizot, Dreyer, Fantham. — Spiro-

chaetosen (andere): Gerber, Gilruth 4, Lucet, MeJntosh, Thiroux u. Du-

fougere. — Sumpffieber: Conseil u. Nicolle, Deaderick, Sergent u. Sergent.

— $Surra: Baldrey 1, Evans, Haji, Holmes, Leese, Mesnil, Sowerby, Strong

u. Teague, Terry, Thiroux u. Teppaz. — Syphilis; Bo:man 2, Conseil u.

Tribaudeau, Gerber, Hallopeau, Lenartowiez u. Potrzobowski, Mühlens 1,

Selenew, Sezary, Sezary u. Paillard, Siegel, Truffi, Uhlenhut u. Mulzer,

Wechselmann, Zweig. — Taumelkrankheit bei Salmoniden: Laveran u.

Pettit 3. — Texasfieber: Sieber, Theiler. — Tollwut: Dudley u. Whitmore,

Ganslmayer, Negri 1, Pace, Segre, Stimson. — Toxoplasmose: Mello. —

Trachom: Addario, Flemming, Herzog, Junius, Lindner, Sachs-Mücke,

Zade. — Trypanosomiosen: Behn, Bouet u. Roubaud, Bouffard, Breinl u.

Hindle, Broden u. Rodhain; Bruce, Hamerton, Bateman u. Mackie; Chris-

tiansen, Crawley, Darling 3, Darre u. Gery, Dreyer, Dudukaloff, Ehrlich,

Gonder 4, Grüner, Hartmann 2, Jaffe, Jowett 2, Kleine, Knuth, Knuth u.

Rauchbaar, Laveran, Lebedefi, Leboeuf u. Ringenbach, Levaditi usw.,

Mathis u. Leger 4, Mesnil, Mesnil u. Brimont, Mesnil u. Kerandel, Minchin

u. Thomson, Montgomery 1, Morgenroth u. Halberstädter, Nuttall 2,

Peter, Rodet, Rubinstein u. Bader, Roubaud, Roudsky, Sangiorgi, Schmitt,

Schönebeck, Sowerby, Stockmann, Swellengrebel u. Strickland, Thomson

u. Cushny, Uffard, Wendelstedt u. Fellmer, Werbitzki, Yakimoff, Kohl-

Yakimoff u. Korssack. — Tsutsugamushi-(Kedani)-Krankheit: Ogata. —

Tumoren: Awerinzew 3. — Vaceine: Guarneri, Prowazek 3, Süpfle. —

Variola: Casagrandi. — Zahnerkrankungen: Baumgartner. — Yaws: Bow-

mann 2, Montague, Nichols, Strong. — Zeckenfieber u. Reeurrens: Dreyer,

Karwacki u. Szokalski, Leishmann, Sergent u. Foley, Smith, G. E., Smith,

G. U., Tedeschi 1, Yakimoff u. Kohl- Yakimoff.

Faunistik.

Allgemeines: Auerbach 3, Borgert 3, Brehm u. Ruttner, C&pede,

Daday, Gerschler, Heinis, Honigmann, Icilio, Lasckmann 2, Lemmermann 2,

Mast, H., Merkle, Meyer, Schurig, Tanaka, Wellmer, Wolff 2, Zschokke.

Kosmopolitismus: Broch 1, Daday, Edmondson, Prowazek 4.

Europa:

Deutschland: Weichsel! Apstein; Rheintalwässer: Auerbach 1;

Ostpreußen: Boldt 2; Hockenheimer Moortümpel: Borowsky; Leipzig:

Hoefer; Ostpreußen: Jmmisch; Oberwesterwald&: Knuth, Rauchbaar u.

Morgenstern; Rhein: Lauterborn, Marsson; Mark Brandenburg: Lemmer-

mann 1; Schliersee: Lemmermann 2; Ostpreußen: Meißner u. Jmmisch;

Würzburg: Metcalf; Nordwest-Deutschland: Mühlens 3; Ostpreußen:

Wegener, Wellmer. Oesterreich-Ungarn: Istrien: Boldt 1; Dalmatien,

Bosnien u. Herzogowina: Brehm u. Ruttner; Entz. Großbritannien:

Sheffield-Distriet! Brown 1; Westmoreland u. Cumberland: Brown 2;

Cash u. Hopkinson; Midland Plateau: Growe; Hadley. Scearborough-

Faunistik.

Distriet: Hibbert-Ware u. Crossland; County Wicklow: Hopkinson; Brad-

ford: Meixner. — Frankreich: Thermalwasser von Dax: Cantacuzene;

Chatton; Conearneau: Dangeard 1; Baie de la Hougne: Faur6-Fremiet 1;

Colme: Schodduyn. — Italien: Rovigno: Broch 1; Catania: Feletti; Gabbi

u. Lacava; Süditalien: Gonder 4; Palermo: Jemma; Lago Maggiore:

de Marchiü; Turin: Mello; Rovigno: Minchin u. Woodceock; Golf von Ne-

apel: Pierantoni; Lago di Fusaro: Schepotieff; Kalabrien u, Sizilien: Vi-

senti. — Griechenland: —. Rußland: Ladoga-See: Balachonzeff; GouY.

Rjazan: Belitzer; Petersburg: Filipjev; Ladoga-See: Skorikoff; Akmo-

linsk: Stolinikoff; Visloüch; Yakimoff usw. Niederlande: Amsterdam:

Swellengrebel 3. — Sehweiz: Stockhornseen: Baumann; Basel: Heinis;

Penard; Genf! Roux; Alpine Wasserbecken: Zschokke. — Norwegen u.

Schweden: Lemmermann 2. — Portugal: Franga; Horta u. Paredes.

Dänemark: Christiansen.

Asien:

Indien: Baldrey; Transkaukasien: Dschunkowski u. Luhs; Indien:

Gaiger; Gebiet der Jakuten: Grüner; Japan: Koidzumi; Tsingtau: Martini 1,

Tonkin; Mathis u. Leger; Japan: Minakata; West-Sibirien:? Oboldujeff;

Japan: Ogata; Madras: Patton; Japan: Prowazek 5; Baikalsee: Swar-

zewski; Japan: Tanaka.

Australien:

Cleland u. Johnston; Colledge; Queensland: Dodd; Gilruth; Haji;

Johnston u. Cleland; Welsh u. Dalyell.

Afrika:

Sudan: Balfour 1; Uganda: Bruce; Hamerton, Bateman u. Mackic;

Mekka: Calvocoressi; Arabien: Conseil u. Tribaudeau; Sudan u. Norduganda:

Daday 1, Deutsch-Ost-Afrika: Daday 2; Ärypten: Dreyer, Ferguson u.

Richards; Südafrika? Gonder; Portugiesisch Ost-Afrika: Jowett 2; Kongo-

gebiet! Kerandel; Tanganyika: Kleine; Kongo: Leboeuf u. Ringenbach;

Ägypten: Mason; Ostafrika: Mayer; Ostrogbo u. Süd-Nigeria: Mayor;

Togo u. Senegal! Mesnil; Süd-Afrika: Montgomery 1; Ost-Afrika? Mont-

_ gomery 2; Nuttall u. Strickland; Deutsch-Ost-Afrika? Ollwig u. Manteufel;

Guinea: Pittaluga; Deutsch-Ostafrlka: Schönebeck; Algier! Sergent u.

Sergent, Sergent u. Foley; Nyassaland: Stannus. — Süd-Afrika: Theiler;

West-Rhodesia: Yorke.

Amerika:

Brasilien: Aragäo de Beaurepaire; Colorado: Cockerell; Crawley;

Panama: Darling; Brasilien: Hartmenn, H. u. Chagas; Paraguay: Lemmer-

mann 2; Venezuela: Mesnil; Brasilien: Neiva; Uruguay: Peter; Brasilien:

Prowazek 4.

Inseln:

Philippinen: Bowman 1, Brewer 2, Dudley; Spitzbergen- Gebiet:

Broch 2; Ceylon: Castellani u. Chalmers, Dobell 1; Olongapo: Dunbar;

Tahiti! Edmondson; Isle of Man: Herdmann, Scott u. Dakin; Tasmanien:

Huxley; Philippinen: Rissler u. Gomez; Ceylon: Robertson; Mauritius:

Terry.

323 Protosos mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Meere:

Südäquatorialstrom: DBorgert 3; Eisfjord: Broch 2; Trondheim

Fjord: Dogiel 2; Eisfjord; von Hofsten u. Bock; Südpolar-Expedition:

Laackmann; Indik u. Atlantik: Mast, H.; Ostsee: Merkle; Barent u,

Kara-Meer: Meunier; Antarktis, Murray; Mittelmeer: Ostenfeld 1; Grön-

land: Ostenfeld 2, Paulsen; Antarktis, Philippi; Schwarzes Meer, Bosporus

u. Marmarameer: Reinhard.

Systematik.

(Revidiertes System nach M. Hartmann.)

Allgemeines: siehe unter system. | Limax-Amöben,. Prowazek (D.

Fragen. Malphigiella n.g. refringens n. sp.

Mnchini (2).

1. Klasse: Sareodina Nuclearia delicatula. Dangeard (2).

I. Unterklasse: Rhizopoda. Pelomyza vorax n. sp. Dangeard (2).

Rhizopoda. Brown (1, 2), Cash u.

Amoebae. Chatton (4); Swellen- Hopkinson, Hopkinson.

grebel (3, 4); Wasielewsky u.

Hirschfeld. N i

2 klasse: Heli g

Amoeba sp. Metcalf. — sp. Nägler Under e OEOR

(1). bovis n.sp. Liebetanz. — Actinosphaerium eichhorni. Bo-

Chattoni n.sp. Dangeard (2). — rowsky.

currens n.sp. Metcalf. — diploi- | CWiophrys marina n.sp. Caul-

dea Hartm. u. Nägler. Erdmann lery (1).

(9. — flava Gr. Schepotieit. — | Heliozoa. Hopkinson.

Gleichenüi Duj. Dangeard (2). — R %

guttula var. a u. ß. Dangeard (2). 3. Unterklasse: Radiolaria.

— hyalina Dangeard. Brodsky, | Acanihochiasma krohni Haeckel.

Hartmann u. Chagas (1).— limax Broch (2).

var. a—e. Dangeard (2). — melea- | Acanthosphaera spinosa, dodecastyla,

gridis. Cole u. Hadley; Smith, | pachyconcha, heliacantha n. spp.

Th. — mucicola Ch. Chatton (3). Mast.

— paradoxa n.sp. Dangeard (2). | Acanthospongus n.g. minutus n. BP.

— proteus. Mast, S. 0. (2); Met- | Mast.

ealf; Stole. — punctata n.sp. |, Actinomma regulare, heptacanthum,

Dangeard (2). — Salteti n.sp. intermedium, aequale n. spp. Mast.

Swellengrebel (3). — terricola usw. | Actinosphaerinae n. subfam. Mast.

Rhumbler. — terricola, alba. , jAmphisphaera 2 n.spp. Prineipi.

Heinis. viridis Leidy. Dan- | TAmphistylus 2 n.spp. Prineipi.

geard (2). Arachnosphaera irregularis n. SP.

Arcella vulgaris Ehrbg. u. mitrata Mast.

Penard. Khainsky (2). Arachnosphaerinae n. subfam. Mast.

Enntamoeba blattae Bütschli. Mereier. Arachnospongus n.g. varians n. Sp.

— lagopodis n.sp., Fantham (3). Mast.

— testudinis n. sp. Hartmann (1). | Asitrosphaera dentata, granulata n.

Labyrinthula Zopfii n.sp. Dan- spp. Mast.

geard (2). Astrosphaeridae. Mast.

Systematik.

Astrospongus n. g. simplex, ramosus,

intermedius n. spp. Mast.

Botryopyle stenostoma n. Sp.

nier.

Cadium. DBorgert (3).

tCenosphaera 2 n.spp. Prineipi.

tCarposphaera 2 n.spp. Prineipi.

Caryomma heterocyclum n. sp. Mast.

TCenellipsis 2 n.spp. Prineipi.

Centrocubus macracanthus n. sp. Mast.

Cladococcus doryphorus, indicus n.

spp. Mast.

Collozoum inerme Haeckel.

(2), Stiasny.

Collosphaera. Stiasny.

1Cornutanna n.sp. Prineipi.

jCyrtocalpis 2 n. spp. Prineipi.

TCyrtocapsa 3 n. spp. Prineipi.

1Dictyospyris n.sp. Prineipi.

Diplosphaera gracilis n.sp. Mast.

Diplospongus n.g. dendrophorus,

arachne n.spp. Mast.

jDorcadospyris n. sp. Prineipi.

7Doryconthidium 2 n. spp. Prineipi.

tDorydruppa 2 n.spp. Prineipi.

?Dorylonchidium 2 n. spp. Prineipi.

+Dorysphaera n. sp. Prineipi.

TDruppocarpus n. sp. Prineipi.

Echinomma enneacanthum n. Sp.

Mast.

Elatomma variabile,

Meu-

Broch

arborescens nD.

spp. Mast.

jEucystidium 3 n. spp. Prineipi.

7Eusyringium n. sp. Prineipi.

Dxcentroconcha n.g. minor, maior

n.spp. Mast.

jAaliomma n.sp. Prineipi.

Haliomma solare, eruciatum, simplez,

capense, minutum n.spp. Mast.

Heliosoma irregulare, centroplegma,

aculeatum, tenue n. spp. Mast.

Heliosphaera octacantha n. sp. Mast.

Heteracaniha n.g. dentata, elegans,

racemosa, tenuis, lynchnosphaera,

fragilis, varians, indica n. spp.

Mast.

Heterosoma n. g. heptacanthum, poly-

canthum ramosum n. spp. Mast.

329

Heterosphaera n.g. tenuis, dodeca-

styla, cromyommoides, intermedia

n.spp. Mast.

Heterosphaerinae n. subfam. Mast.

Heterospongusn.g.variansn. sp. Mast.

THezxastilus n.sp. Prineipi.

tTLithapium n.sp. Prineipi.

tLithatractus n. spp. Prineipi.

tLithomitra n. sp. Prineipi.

TLynchocanium n.sp. Prineipi.

Lychnosphaera tenuis n.sp. Mast.

Monosphaerinae n. subfam. Mast.

TOmmatodiscus 2 n.spp. Prineipi.

TPorodiscus 5 n. spp. Prineipi.

Porospathis holostoma. Borgert (3).

Protocystis harstoni Borgert. Broch

(2). — tridens Borgert. Broch (2).

1Prunulum n.sp. Principi.

Rhizoplegma coelodendroides n. SP.

Mast.

Rhizospongus n. g. arachnoideus, fra-

gilis, dendrophorus n. spp. Mast.

TSethocyrtis 3 n. spp. Prineipi.

1Siphonosphaera 2 n. var. Prineipi.

Spongioconcha n.g. inversa N. SP.

Mast.

Spongopila varians, gracilis, poly-

acantha, helioides n.spp. Mast.

1Staurosphaera n. sp. Prineipi.

Spongosphaerinae n. subfam. Mast.

TSpongotrochus n. sp. Prineipi.

TStaurolonche n. sp. Prineipi.

1Stichocorys 3 n. spp. Prineipi.

Sticholonche ventricosa n.sp. Meunier.

TStylocapsa n.g. 3 n. spp. Principi.

TStylodictya n. sp. Prineipi.

tStylosphaera n.sp. Prineipi.

TSyringium n.g. Prineipi.

Thalassicolla. Moroff.

TThecosphaera 2 n. spp. Prineipi.

TTheocorys 3 n. spp. Prineipi.

TTristylospyris n.sp. Prineipi.

1Xyphosphaera 2 n. var. Prineipi.

4. Unterklasse: Mycetozoa.

Peltomyces hyalinus. Leger (1).

Mycetozoa. Growe; Hibbert-Ware u.

Crossland; Hilton.

330

Plasmodiophora brassicae Woronin.

Appel u. Werth; Marchand.

Punctularia tuberculosa Pat. (Cerio-

myces venulosus Berk. u. E.).

Torrend.

Tetramyza parasitica Goebel. Maire

et Tison. Triglochinis Molliard.

Maire et Tison.

IE. Klasse: Cnidosporidia.

1.u. 2. Ordnung: Microsporidia u.

Myxosporidia.

Cnidosporidie. Auerbach (3).

Glugea. Stempell. shiplei n. Sp.

Drew.

Leptotheca informis n.sp. Auer-

bach (2). — longipes n. sp. Auer-

bach (2).

Miecrosporidium polyedricum. Mar-

zoechi.

Myzxidium. Auerbach (2). — mackiei

n. sp. Bosanquet. Macrocapsu-

lare n.sp. Auerbach (1).

Myzxobolus permagnus n.Sp.

gener.

Myzxocystis. Mrazek.

Nosema. Schuberg. lophii. Pace.

— schneideri n. sp. Le£ger u. Hesse.

Plistophora elegans n. sp. Auerbach

We-

(D). — hippoglossoideos N. SP.

Bosanquet. — longifilis n.SP.

Schuberg. ovicola n. sp. Auer-

bach (2).

Sphaeromyza. Auerbach (2). —

sabrazesi Lav. u. Mesnil. Schröder.

Sphaerospora caudata n.sp. Pa-

risi (1).

Stempellia n.g. mutabilis n.sp. Le£-

ger u. Hesse.

Telomyxa n.g. glugeiformis n.sPp.

Leger u. Hesse.

Telomyzxoidea n. fam. Leger u. Hesse.

Thelohania grapsi n.sp. Prowa-

zek (4).

3. Ordnung: Actinomyxidia.

Vacat.

Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

4. Ordnung: Sarcosporidia:

Sarcocystis. Fiebiger, Gaiger, Mason,

Ratz, St. sp. Darling (4). —

muris. Darling (1), Erdmann

(1, 2, 3), Negri (2). — platydacıyli

Weber. — tenella. Teichmann,

Watson.

Anhang: Haplosporidia.

Protoentospora n.g. ptychoderae n.

sp. Sun.

Incertae sedis.

Gastrocystis. Gilruth. — n.g. @el-

ruthi n. sp. Chatton (5).

Lymphocystis johnstonei.

zew (4).

Toxocystis n. g. homari n.sp. Löger

u. Dubosg.

Awerin-

II. Klasse: Mastigophora.

1. Unterklasse: Flagellata.

1. Ordnung: Rhizomastigina.

Mastigamoeba bovis n. sp. Liebetanz.

2. Ordnung: Protomonadina.

Bodo caudatus Stein. Dangeard (2).

— ovatus Stein. Dangeard. —

edax Klebs. Dangeard (2). —

saltans, edaxz. Alexeieff (1). —

asiaticus 1. SP. Castellani u.

Chalmers.

Cercomonas longicauda Duj. Dan-

geard (2), Wenyon (1). — parva

n. sp. Hartmann u. Chagas (2).

rhizoidea. Liebetanz.

Choanoflagellata. Dunkerly (2).

Cod nocladium wumbellatum Stein.

Dangeard (2).

Codonosiga botrytis. Dangeard (2).

Lamblia sanguinis n. sp. Gonder (5).

Macrosioma mesnili n.SsP. We-

nyon (2).

Monas. Prowazek (2). — vulgarıs

u. guttula. Dangeard (2).

Oikomonas communis, minima n. SPP.

Liebetanz.

Systematik. 331

Piromonas n.g. communis n.sp. | Binucleata. Hartmann u. Jollos.

Liebetanz. Crithidia melophagia Flu. Porter (1),

Polyoecca dumosa n.Sp. Dun- Georgewiteh. — muscae domesticae.

kerly (2). Rosenbusch.

Polytoma. Prowazek (1). Haematozoa. (leland u. Johnston.

Polytomella n. g. agilis n. sp. Aragäo

de Beaurepaire.

Protomonadina. Hartmann u. Cha-

gas (2).

Rhynchomonas luciliae n. 8.n. sp.( ?).

Patton (3). — luciliae Patton,

Chatton (6).

Salpingoeca minor n.sp. Dangeard

(2). — vaginicola. Dunkerly (1).

Scytomonas pusilla Stein. Dan-

geard (2).

Sphaeromonas n. g. communis, mazi-

ma u. minima n.sp. Liebetanz.

Spongomonas uvella Stein u. splen-

dida Stein. Hartm. u. Cha-

gas (2).

Tetramitus Mesnili syn. Macrostoma

Mesnili Weny. Alexeieff (2).

Trepomonas sp. Alexeieff (2).

agilis Duj. Dangeard (2).

Trichomastix motellae n.sp. Alexe-

ieff (2). — trichopterae n.SP.

Mackinnon (1). — mabuiae n. sp.

Dobell.

Trichomonas. Batz, Wenyon (2). —

Prowazeki. Alexeieff (2).

Trichomonas (Tetratrichomonas) Pro-

wazeki Alex. Parisi (2). ortho-

pterorum n.s8p. Parisi (2). — sp.

Parisi (2).

Trichomonas (7) Legeri n. sp. Alexe-

ieil (2).

Trimitus motellae n. g.n. sp. Alexe-

ieif (2).

Urophagus intestinalis. Alexeieff (2).

3. Ordnung: Binucleata.

Achromaticus vesperuginis Dionisi.

Yakimoff u, Stolinikoff.

Anaplasma marginale n.g.

Theiler (2, 3), Sieber.

Babesia mutans, Gonder, Ollwig und

Manteufel.

n. Sp.

Haemocystidium simondi Cast. u.

Will, Dobell (2).

Haemoproteus. Mathis u. Leger (8).

— orizivorae. Anschütz (1, 2). —

Mansoni Samb. Fantham (3).

Halieridium. Mayer (1). — fringüllae

Labbe. Woodeock (2).

Herpetomonas. Mackinnon (2). —

muscae-domesticae. Patton (1).

Histoplasma capsalatum. Darling (2).

Leishmania. Basile (1, 2), Dschun-

kowski u. Luhs, Pulvirenti, Thom-

sen u. Balfour, Tomaselli, Visenti.

— donovani. Laveran u. Pettit

(4, 12).

Leishmania infantum. di Cristina u.

Cannata, Jemma (1, 2); Jemma,

di Cristina u. Cannata. tropica.

Ferguson u. Richards, Marzi-

nowski, Nicoll u. Manceaux, Row.

Leptomonas Davidi. Lafont. —

sarcophagae n.sp. Prowazek (4).

Leucocytozoon. Porter (2), Singareva,

Wenyon (3). canis. Gaiger.

citellicola n. SP. Wellman u,

Wherry. — fringillarum n. Sp.

Woodcock (2). — lovati Seligm. u.

Samb. Fantham (3, 4, 6). —

sabrazesöi n.sp. Mathis u. Le&ger

(1, D). — Marchouzi n.5p. —

Simondi n.sp. Mathis u. Leger

(2). — Brimonti n.sp. Mathis u.

Leger (3).

Nuttallia herpestidis n. g. n. Sp.

Franga (2). — equi = Piropl.

equi. Nuttall u. Strickland.

Piroplasmidae. Franga (2).

Piroplasma. Deseler, Foran, Frei,

Gonder (8). — bigeminum. Theiler

(4). — bigeminum u. multans.

Bruce, Hamerton usw. (1). —

caballi n. sp. Nuttall u. Strickland.

— canis. Bumann, Goldschmidt,

332 Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Nuttall (2); Nuttall u. Hadwen. —

equi, bigeminum usw. Gaiger. —

gibsoni n.sp. Patton (2). —

mutans. Theiler (1). — parvum u.

mutans. Mayer (2). — rossi n. Sp.

Nuttall (1).

Plasmodium. Werner, H. — kochi.

Anschütz (1), Gonder u. Roden-

waldt. malariae. Calvocoressi

— pitheci. Shibayama. — relictum.

Sergent u. Sergent.

Protosoma. Anschütz (1), Seitz (2).

— biziurae n.sp. Gilruth, Sweet

u. Dodd.

Prowazekia n.g. cruzi n.sp. Hart-

mann u. Chagas (2), Alexeieff (1).

— asiatica n.sp. Castellani u.

Chalmers. — cruzi. Martini (1).

— parva n.sp. Nägler (2). —

weinbergi n.sp. Mathis u. Le-

ger (5).

Smithia microti n.g. n.sp. Franga

(2).

Schizotrypanum cruzi Chagas. Hart-

mann (2), Müller.

Theileria dama n. sp. Betteneourt u.

Borges. — parva. Gonder, Nuttall

u. Fantham.

Toxoplasma canis. Mello. — talpae

“n.sp. Prowazek (4).

Trypanoplasma. Alexeiefi (1). —

clariae n. sp. Mathis u. Leger (5).

— conger n.8sp. Elmhirst u.

Martin, Martin. — dendrocoeli

n.sp. Fantham (5), Porter u.

Fantham. — helicis. Jollos (1).

intestinalis Leger. Alexeieff (2).

— ranae n.SPp. Walker. —

vaginalis n.sp. Hesse.

Trypanosoma. Alexeieff (1), Chri-

stiansen, Dudukaloff, Ehrlich,

Grüner, Roubaud, Sangiorgi. —

sp. Yakimoff usw. — americanum

n.sp. Crawley. — Blanchardi

Brumpt. Laveran u. Pettit (8). —

Brimonti n.sp. Mathis u. Löger

0). brucei. Battaglia, Bruce,

Hamerton usw. (6), Mesnil u.

Leboeuf, Nuttall (2) ; Rodet, Rubin-

stein u. Bader; Werbitzki. —

brucei u. lewisi. Wendelstadt u.

Fellmer. — caprae n.sp. Kleine.

— Cazalbowi. Bouffard, Uffard,

— Cazalboui, dimorphon, pecaudi.

Bouet u. Roubaud (1, 2). — Clariae

Montel. Mathis u. Leger (4). —

congolense Broden. Laveran (1). —

congolense (s. Cazalboui). Broden

u. Rodhain. — elyomis n.Sp.

Franga (4). — equiperdum. Zwick

u. Fischer. evansi. Evans, So-

werby, Thiroux u. Teppaz. —

evansi, theileri. Gaiger. — franki.

Behn (1, 2), Knuth; Kn., Rauch-

baar u. Morgenstern. — fringilla-

rum n. sp. Woodeock (2). — gam-

biense. Beck, Bruce, Hamerton

usw. (4, 5); Hindle, Low, Martin

u. Ringenbach, Mesnil u. Kerandel,

Pittaluga. — gambiense u. eguinum.

Swellengrebel (5). gambiense,

dimorphon, vivax, nanum. Bruce,

Hamerton (2). grayi. Kleine.

— Grosi u. microti. Laveran u.

Pettit (6). — hippicum n.SPp.

Darling (3). — korssaki n. Sp.

Yakimoff usw. — legeri n. Sp.

Mesnil u. Brimont. — lewisi. Bal-

drey (3); Bordier u. Horand;

Breinl u. Hindle, Minchin u. Thom-

son, Roudsky, Schilling, Strick-

land u. Swellengrebel (1, 2). —

paddae. Anschütz (2). — pecorum.

Bruce, Hamerton usw. (3). —

rajae. Minchin u. Woodeock. —

rajae, scylüi. Brumpt (1). rho-

desiense. Siephens u. Fantham,

York. — rotatorium. Doflein,

Lebedeff. — Simondi n.sp. —

synodentis A, B, C n.spp. LBe-

boeuf u. Ringenbach. theileri.

Behn (3), Schmitt, Schönebeck. —

togolense n. Sp. Mesnil. vene-

zuelense n. sp. Mesnil u. Brimont.

— vespertilionis. Gonder (4).

vivax Zieman. Bruce, Hamerton

Systematik.

usw. (7). vivaz u. cazalboui.

Laveran (2).

Trypanozoon othospermophilis n. SP.

Wellmann u. Wherry.

Anhang: Spirochaeta.

Spirochaetae. Comandon, Gilruth (4).

Spirochaeta sp. Mackinnon (1).

berbera n. sp. Sergent u. Foley.

bovis-caffris n. SP. Nuttall (1)

Daxensis n. sp. Cantacuzene. —

duitoni. Leishmanz, Smith, 6. E.,

Tedeschi (1, 2). — gallinarum.

Anschütz (1), Balfour (2), Blaizot,

Ponselle, Tedeschi (1). — inaequa-

ls, undulata, denticola, tenuis,

recta, dentium u. pallida. Gerber.

— lagopodis n.Ssp. Fantham

(3, 6). melophagi n. sp. Porter

(1). minei N. SP., mactrae n. Sp.

Prowazek (4). novyi. Smith,

G. U. — Obermeieri. Karwacki u.

Szokalski, Smith, 6. U. — pallida.

Hallopeau, Mühlens (1), Selenew

(1), Sezary u. Paillard, Truffi,

Uhlenhut u. Mulzer, Wechsel-

mann, Zweig. pallida u. refrin-

gens. Lenartowiez u. Potrzo-

bowski, Meirowsky. — pitheci n.

ep. Thiroux u. Dufougere. —

plicatilis. Zuelzer (1).

Spironemacea. Gross (2).

Cristispira n.g. Gross (2). —

pectinis u. interrogantis n. SPP.

Gross (2).

4. Ordnung: Euglenoidea.

Oryptoglena americana Devis.Schüler.

Euglena. Morse. — baltica n. Sp.

Schüler. — sanguinea. Haase. —

viridis, deses. Wager.

Euglenopsis vorax Klebs.

geard (2).

Peranema trichophorum Ehrbg. Dan-

geard (2), Hartmann u. Chagas (2).

Trachelomonas incerta n. var. punc-

tata. Lemmermann (2). — ovalis

n.sp. Daday (2).

Dan-

333

5. Ordnung: Chromomonadia.

Anthophysa vegetans Stein. Dan-

geard (2).

Chilomonas paramaecium Ehrbg.

Dangeard (2), Günther, Hartmann

u. Chagas (2), Kunstler, Prows-

zek (3).

Chromulina 4 n. spp. Pascher (2). —

fenestrata. Pascher (1). Hoke-

ana n.sp. Pascher (1).

Chrysaspis n.g. pro Chromulina

fenestraia. Pascher (2).

Cryptomonas erosa. Marsson. —

ovata Ehrb. Dangeard (2). sp.

Dangeard (2). — truncata Fres.

Hartmann u. Chagas (2).

Dinobryon n.sp. Pascher (2). —

Belgicae n.sp. Meunier. in-

flatum n.sp. Lemmermann (2).

— pellucidum Levander. Broch (2).

Hydrurus. Lauterborn (2).

Lecythina n. g. stercorea n. sp. Dan-

geard (2).

Lecythodytes paradoxus Dang. Dan-

geard (2).

Ochromonas sociata n.sp. Pascher

(1). — botrys. Pascher (1). —

— 2 n.spp. Pascher (2).

Palatinella cyrtophora Lauterb. Vis-

louch.

Phacocystis poucheti Langerh. Broch

(2).

Pyramidochrysis modesta.

(1).

Sphaleromantis n. g. pro Chromulina

ochracea. Pascher (2).

Synura reticulata Lemm. Vislouch.

Pascher

6. Ordnung: Phytomonadina.

Chlamydomonus. Wager. — sp.

Pascher (1).

Haematococcus lacustris var. rotun-

data. Gerschler.

Naegeliella flagillifera Correns. Lau-

terborn (2).

Stephanoptera Fabreae n.g. n.SPp.

Dangeard (1).

Volvox Wager. — 2 n.spp. West.

334

2. Unterklasse: Dinoflagellata.

1. Ordnung: Peridinea.

Amphidinium lacustre Stein. Liebe-

tanz.

Amylax n.g. lata, nivicola, perpu-

silla n. spp. Meunier.

Apodinium( ?) Chaetoceratis n. Sp.

Paulsen.

Catenata. Dogiel (2).

Ceratium hirundinella.. Baumann,

Krause. — iniermedium Jörgensen,

longipes Gren, furca. Borgert (2).

— tripos, fusus. Borgert (1, 2). —

iripos, fusus u. furca. Jolios (2).

— dtripos var. subsalsa. Ap-

stein (2).

Ceratocorys magna n. sp. Kofoid.

Chaetoceras gracile Schütt. Apstein

(1). Vistulae n. sp. Apstein (2).

Dinophysis cuneiformis, vertex, semen

n.spp. Meunier.

Diplopsalopsis n. g. sphaerica n. Sp.

Meunier.

Ellobiopsis n. 2.

Caullery (2).

Folliculus n. g. flagellifer n. sp. Meu-

nier.

Glenodinium inflatum n. sp. Meunier.

Gonyaulax spiculata Entz. Lauter-

born (2).

Gymnodinium jucorum.

— pulvisculus Pouchet. Dogiel

(2). — zachariasi n.sp. Entz.

Haplozoon delicatulum, ariciae, ma-

Chattoni n. SP.

Jollos (2).

erostylum, obscuram n. spp. Do-

giel (2).

Nephrodinium n. g. nivale, karianum

n. spp. Meunier.

Ozytoxum Belgicae n. sp. Meunier.

Ozxyrrhis marina Duj. Senn.

Paradinium n.g. poucheti n.5p.

Chatton (2).

Peridiniales. Lemmermann (1).

Peridinium divergens. Merkle (1).

— dubium, spizbergense, monacan-

thus n. spp. Broch (2). — tabulatum

Clap. u. Lachm. Liebetanz.

trochoideum Stein. Lemmermann

Protozoa mit Ausschluß der Foraminifers für 1910.

(2). — varicans n. sp. Paulsen. —

Westii Lemm., Wille: Huitf. Lem-

mermann (2). — adriaticum n. Sp.

Broch (1). conicum, oceanicum

forma arupinensis, crassipes forma

iypica, quarnerense, crassipes forma

autumnalis. Broch (1). — saltans,

ovatoides, complanatum, gracile,

turgidum, anceps, gravidum, rhom-

bus, sphaericum, elongatum, ro-

bustum, granisparsum, verrucosum,

bulla, hyalinum n.spp. Meunier.

Protoceratium splendens n. sp. Meu-

nier.

Spirodinium lacryma, fusus n. spp.

Meunier.

Syndinium n.g. turbo n. Sp.

ton (1). -

Chat-

2. Ordnung: Cystoflagellata.

Halosphaera. Ostenfeld (3).

Noctiluca miliaris. Emmerling,

Faure&-Fr emiet (1).

Thorosphaera n.2.

Ostenfeld (1).

elegans nD.SP.

IV. Klasse: Telosporidia.

1. Ordnung: Coceidia.

Adelea. Schellack u. Reichenow. —

hartmanni n.sp. Chagas (1).

Barrouxia alpina Leger. Schellack

u. Reichenow.

Coccidium. Gaiger. — agamae n. Sp.

Laveran u. Pettit (5).

Oryptosporidium n.g. muris n. Sp.

Tyzzer.

Eimeria avium. Fantham (1, 2, 6).

— stiedae. Montgomery (2).

Selenococcidium. Leger u. Dubosq.

Anhang: Haemogregarinida.

Haemogregarina sp. Carini (2). —

sp. Koidzumi. agamae. Lav.

u. Pettit (2). — bicapsulata u.

lacertae. Laveran u. Pettit (10). —

canis. Leboeuf u. Ringenbach.

canis-edusti n. sp. Nuttall (1). —

clemmydis n.sp. Prowazek (4).

Systematik.

— coronellae n. sp. Franca (5). —

dendrophidis n.sp. Johnston u.

Cleland (1). — heterodonti n. Sp.

emydae n.sp. Prowazek (4). —

lusitanica n.sp. Franca (1). —

Zutzi n.sp. Hartmann u. Chagas

8). mauritanica Sergent. La-

veran u. Pettit (11). megalo-

eystis n.sp. Gilruth, Sweet u.

Dodd. — muris. Carini (3). —

nicoriae Cast. u. Will. Robertson.

— nobrei, marceani, nana n. Spp.

Franga (3). — pallida Fr. Franca

(D). — Pellegrini n.sp. Laveran

u. Pettit (2). — petauri, peramelis,

dasyuri n.spp. Welsh usw. —

Peititi n.sp. Thiroux. — platy-

dactyli Billet. Laveran u. Pettit

(9). — psammodromi Soulie.

Franga (1). — Rovignensis n. Sp.

Minchin u. Woodeock. — sebat.

Laveran u. Pettit (1). serpenti-

num Lutz. Hartmann u. Chagas

(3). stepanowi. Reichenow. —

varanicola n.5p., hinuliae n.sp.

_ Johnston u. Cleland (1). — zamenis

Lav. emend. Mancesux = H.

manceaus® n.sp. Franca (5).

Lankesterella ranarum. Seitz (2).

Leucocyiogregarina muris Balfour.

Franga u. Pinto. — rotundata n. Sp.

Patton (2).

2. Ordnung: Gregarinida.

Actinocephalus permagnus N. SP.

Wellmer. — parvus n.sp. Well-

mer. echinatus n. sp. Wellmer.

Callynihrochlamys phronimae Fren-

zel. Dogiel (1).

Chlamydocystis captiva n. SP.

giel (1).

Clepsidrina polymerpha u. cuneata.

Pieffer.

Cometoides SP.

Dactylophoridae.

Ganymedes n.8.

Huxley (1).

Gregarina, polycystide. Akiyama. —

Do-

Wellmer.

Duke.

anaspidis n. SP.

335

sp. Budington. — polyaukia n. sp.

Wellmer. —(?) erecta n. sp. Well-

mer.

Kalpidorhynchus arenicolae.

binson.

Lankesteria sp.

Metamera n. &.

Duke.

Ro-

Swarzewsky.

schubergi n. Sp.

Monocystis piriformis n.sp. Boldt

(1). — sp. Fantham (3). her-

eulea Bosanquet. Boldt (1). —

arcuata n. sp. Boldt (2).

Nematocystis n.g. für Monocystis

magna. Hesse. — lumbricoides,

vermicularis, anguillula n. SPP.

Hesse.

Plaurocystis n.g. cuenoti n. Sp.

Hesse.

Porospora legeri n. sp. Beauchamp.

Pterospora ramificata n.sp. Do-

giel (1).

Rhabdocystis elaviformis n.g. n.8Pp.

Boldt (1).

Rhynchocystis n.g. für Monocystis

pilosa Cuenot u. porrecta Schmidt.

Hesse.

Steinia ovalis F.S. Mavrodiadi.

Stomatophora diadema n.sp. Hesse.

Urospora travisiae n. sp. Dogiel (1).

— ovalis n.8sp. Dogiel (1).

Zygocystis pilosa, legeri n. spp.

Hesse.

Ferner ev. hierher zu rechnen:

Siedleckia nematoides Caull. u. Mesn.

Dogiel (2).

V. Klasse: Infusoria.

1. Unterklasse: Ciliata.

Amphorella fistula, tubularis, coch-

leata, minutissima, annulata n.

spp. Meunier.

Anoplophrya branchiarum Stein.

Collin. — Maupasi n. sp. Cepede.

Balantidium coli. Brewer (1), Rissler

u. Gomez, Straßburger. — ovale,

hyalinum n. spp. Dobell.

Boveria subceylindrica var. concharum

Stevens, N. M.

336

Cepedellidae n. fam. Cepede.

Cephalotrichium n.g. tonsuratum n.

sp. Meunier.

Chilodon cucullus. Günther. —

cyprini Moroff, hexastichus Kier-

nik. Roth.

Climacostomum gigas n. sp. Meunier.

Collinia n. g. für Anoplophrya bran-

n. nom. Cepede.

Colpidium. Günther, Prowazek

(1, 2), Marsson.

Colpoda cucullus. Gonder (1).

Codonella morchella Cleve. Laack-

mann (2).

Conchophthirius antedonis n. SP.

Andre.

Condylostoma circumpedatum n. SP.

Meunier. — patens OÖ. F.M. Andr&

Conocylis n. g. helix, constricta, stri-

ata n. spp. Meunier.

Cothurnia maritima. Merkle (1).

paguri n.sp. Andre.

Cozxliella. Laackmann (2).

Oryptochilum echini Maupas. Andr®.

— (Cwenoti Florentin. Andre.

Cyclidium. Prowazek (2). — glau-

coma Ehrb. Gerschler.

Cycelochaeta domergnei Wall. Schnei-

der.

Cyclotrichium n.g. cyclokaryon n.

sp. Meunier.

Cymatocyclis n. g. vanhöffeni. Laack-

mann (2). — flava, cristallina,

drygalskii usw. n.spp. Laack-

mann (2).

Cyttarocylis cuspidata, hemifusus,

spiralis n. spp. Meunier. — denti-

culata. Merkle (2). — Ehrenbergii

Cl. u. L. Dubosg u. Collin.

Didinium Gargantua n. sp. Meunier.

— nasutum. Mast, 8. 0. (1).

Dietyocysta templum var. indica

n. var. Laackmann.

Dinophrys appendiculatus. Pier-

antoni.

Dinophysis acuta u. acuminata.

Merkle (1).

Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Epistylis. Filipjew.

Euplotes caudata, truncata N. Bpp.

Meunier. charon O.F.M. An-

dr6&. — worcesteri n.sp. Griffin.

Eurychilum n.g. actiniae n. Sp.

Andre.

Folliculina melitta n.sp. Laack-

mann (1).

Glaucoma. Prowazek (1).

Gymnozoum n.g. viviparum n.8P.

Meunier.

Haplophragmium. Faur 6-Fr &miet(9).

Hastatella radians Boulanger. Beau-

champ u. Collin.

Herpetophryidae n. fam. Cepede.

Hoplitophrya hamata n. sp. Cepede.

Ichthyophthirius multifiliis Fouquet.

Buschkiel, Ullmann.

Infusoria, allgemeines.

miet.

Infusorium sp. Selenew (2).

Intoshellina n.g. Maupasi n.8p.

Faur6-Fr&

Cepede.

Isselina intermedia n.g. n. sp. C£-

pede.

Kotoidella n.g. eleutheriae n. BP.

Cepede.

Lachmanella n. g. für Opalina recurva

Clep. u. Lachm. Cepede.

Ladidae n. fam. Cepede.

Lacrymaria marina n.sp. Meunier.

Leprotintinnus. Laackmann (2).

Loxodes rostrum. Kasanzeif.

Loxophyllum meleagridis. Fritzsche.

Maupasella n. g. nova n. sp. Cepede.

Mesnilnella n. g. nova n. sp. Cepede.

Mycterothrix (Trichorhynchus) tua-

motuensis Balbieni. Faure-Fr#-

miet (10).

Nyctotherus papillatus, termitis mM.

spp. Dobell.

Opalina ranarum. Kolacev. — vir-

gula n.sp. Dobell.

Opercularia articulata Ehrb. Siepi,

Virieux. — notonectae. Faur&-

Fremiet (8).

Orthochona n.g. amilocrae N. BP.

Andre.

Systematik. 337

Orchitophrya n. fam. stellarum. (Ce-

pede.

Paramaecium. Estabrook, Jennings,

J. u. Hargitt, Matheny, Morse,

Smith, St., Woodruff, Woodruff

u. Bunzel. — caudatum. Khainsky

.(1, 3), Lipska, Nierenstein, (Mülle-

riana paramaeci). Petschenko. —

multimicronucleata n. sp. Powers

u. Mitchell.

Perezella n. g. pellagica n. Sp.

pede.

Pleurotricha grandis Stein. Gersch-

ler.

Proboscidium n.g. armatum n. Sp.

Meunier.

Prorodon karianus n. sp. Meunier.

— teres Ehrbg. Prowazek (3).

Protophryidae n. fam. Cepede.

Ptychocyclis urnula. Merkle (2). —

n.spp. Meunier.

Rhabdonella amor var. indica n. var.

Laackmann.

Rhabdostyla sertulariarum S. Kent

var. amphiurae n. var. Andre.

Schultzellina n.g. mucronata n. Sp.

Cepede.

Stappersia n.g. fusus n. sp. Meunier.

Steinella n. g. für Opalina uncinata

Schulze. C£pede.

Stentor coeruleus Ehrbg. Schaeffer.

‚Strombidium longipes n. sp. Meunier.

Stylonychia. Morse.

Tachyblaston Martin. Filipjev.

Tintinnopsis maior, macrotus tubu-

losoides, ceylindrica, lata, angusta,

Jusus, rapa, ventricosoides, nivalis,

oliva, patula, acuta, urnula, un-

della n.spp. Meunier. — parva

n.sp. — sacculus Brandt var.

magna n. var. Merkle (2).

Tintinnus acuminatoides n. Sp.

Laackmann (2). — var. secata n.

var. Laackmann (2). — costatus

n. sp. Laackmann (2). acumi-

natus Clap. u. Lachm. altiplicatus

n. var. Merkle (2).

Trachelina. Andre.

Archiv für Naturgeschichte

OH 1 VI 2%

Cb-

Trichodina labrorum n.sp. Chat-

ton (3).

Trinema enchelys Ehrbg. Prowa-

zek (3).

Undella monocollaria n. Sp., tricol-

laria, hemisphaerica, filigera n.

spp. Laackmann (2).

Uronema caudatum n.sp. Martini

(2). — Rabaudi n. sp. Cöpdde.

Uronychia transfuga, magna n. sp.

Pierantoni. paupera n. sp. Da-

day (2).

Urostyla grandis. Faur&-Fr&miet (5).

Vorticellina. Andre,

Zonotrichium n.g. discoides n. Sp.

Meunier.

Zoothamnium sp. Andre.

latum. Stevens.

genicu-

2. Unterklasse: Suctoria.

Acineta symbiotica n. sp. Daday (2).

— calyx n.sp. Daday (2). in-

clusa n. sp. Meunier.

Acinetopsis Robin. Filipjev.

Podophrya macropus n.sp. Meu-

nier.

Rhabdophrya trimorpha n.8. n. Sp.

Chatton u. Collin.,

Solenophrya polypoides n. Sp.

day (2).

Tocophrya quadripartita Cl. u. L.

Filipjev.

Da-

VI. Klasse: Triehonymphida.

Dinenympha gracilis Leidy. Co-

mes (2).

Lophomonas blattarım Stein. —

striata Bütschli. Janicki.

Lophophora n.g. vacuolata n. Sp.

Comes.

Trichonympha hertwigi n. sp. Hart-

mann (4).

Vo. Klasse: Chlamydozoa.

Chlamydozoa. Addario, Awerinzew

(3), Flemming, Hartmann (3),

Junius, Wolif.

338

Cytoryctes. Guarneri. — variolae.

Casagrandi.

Neurocyctes hydrophobiae. Negri,

Segre.

Incertae sedis.

Amphicephalosperma n.g. bullans

n. sp. Meunier.

Chitonosperma n. g. umbilicatum,

coronatum n.8pp. Meunier.

Corbiculan.g. socialis n. sp. Meunier.

Diaster n.g. Meunier.

Fusopsis n. g. elongata, spiralis, um-

bracula, flagrifera, pauperata, poly-

edra n.spp. Meunier.

Glyphosperma n. g. flagilliferum,

aerrosum, n. spp. Meunier.

Protozoa mit Ausschluß der Foraminifera für 1910.

Polyasterias n.g. Meunier.

Priopsis n. g. Meunier.

Pterosperma laciniatum, octogonum,

hexagonum, trigonum n. Spp. Meu-

nier.

Radiosperma n. g. corbiferum n. Sp.

Meunier.

Saturnus hemisphaericum, lenticulare,

polyedro-sphaericum n. spp. Meu-

nier.

Setosperma n.g. equatorale n. Sp.

Meunier.

Sphaeropsis n. g. heterosetosa, brewi-

setosa, longisetosa, nimbata, nivalis,

elliptica, echinata, spumosa n. SPP-

Meunier.

Foraminifera für 1910 und 1911.

Von

Dr. H. Laackmann.

A. Rezente Foraminiferen.

Verzeichnis der Publikationen mit Referaten.

*Awerinzew, 8. Zur Foraminiferenfauna des sibirischen Eis-

meeres. Mem. Acad. sc. Petershourg, (8), vol. 29, Livre 3, 27 pp.

Tafeln.

Chapman, Frederick (1). Victorian Foraminifera — Recent

and Fossil. Vict. Nat. Melbourne, vol. 26, 1910, p. 190—195, Taf.

VII. — Verf. gibt eine kurze Übersicht der rezenten Foraminiferen

von Viktoria.

— (2). The megalospheric form of Ammodiscus incertus.

Nature, London, vol. 85, 1910, p. 139. — Verf. bringt das sonder-

bare Vorkommen der megalosphärischen Form von A. tenuis bei

Neu-Seeland in Erinnerung, wo die mikrosphärische Form gänzlich

fehlte.

— (3). On the Foraminifera and Ostracoda from Soundings

{chiefly Deep-water) collected round Funafuti by H.M.S. ‚Pen-

guin“. Journ. Linn. Soc. London, vol. 30, 1910, p. 338—444, Taf.

54—57. — Verf. berichtet über 231 Arten und Varietäten von

Foraminiferen aus der Umgegend von Funafuti. Als neu werden

beschrieben Lagena juddiana und 2 Varietäten von Biloculin«

lucernula und Cassidulina bradi. Aus 507 Faden Tiefe werden

rosafarbene Schalen von Polytrema miniaceum beschrieben.

Cushman, Joseph Augustine (1). New arenaceous Foraminifer«a

from the Philippines. Proceed. U. S. Nat. Mus., vol. 38, 1911,

p- 437—442. — Verf. beschreibt Ammodiscoides turbinatus n. g.

n.spec. aus dem Golf von Mexiko aus 1181 Faden Tiefe. Die

neue Gattung ist auf dem Jugendstadium konisch, während

Ammodiscus planospiral ist.

— (2). A Monograph of the Foraminifera of the North

Pacifie Ocean. Part I. Astrorhizidae and Lituolidae. Smith. Inst.

U. S. Nat. Mus., Bull. 71, 1910 p 1—134, 203 Figg — Verf. be-

absichtigte die Foraminiferen des Pazifischen Ozeans nach dem

Material des National-Museums der Vereinigten Staaten zu be-

schreiben und abzubilden und beginnt mit den primitivsten

Familien Astrorhizidae und Lituolidae. Nach einer allgemeinen

Übersicht über Struktur, Biologie, über Sammeln und Kon-

22*

340 Foraminifera für 1910 und 1911.

servieren geht Verf. zur Systematik über. Von den Astrorhizidae

werden die Gattungen Astrorhiza, Rhabdammina, Marsipella,

Bathysiphon, Rhizammına, Psammosphaera, Sorosphaera, Sacca-

mina, FProteonina, Pilulina, Pelosina, Technitella, T'holosina,

Webbinella, Ammosphaeroides, Verrucina, Crithionina, Thur-

ammina, Hwyperammina, Saccorhiza, Polypammina, Ammola-

gena, Jaculella, Sagenina, Ammodiscus, Gordiammina und Turri-

tellella mit insgesamt 57 Arten beschrieben. Davon sind neu:

Proteonina ovata, Pilulina ovata, Ammosphaerioides n.g. distoma

n. sp., Orithionina rotundata, Hyperammina maxima, Ammodiscus

exsertus. Von Lituolidae werden 16 Gattungen (Aschemonella, Reo-

phax, Hormosina, Haplostiche, Trochamminoides, Haplophragmoides,

Oribrostomoides, Cyclammina, Lituotuba, Ammobaculites, Placo-

psilina, Trochammina, @Globotextularia, Ammochilostoma, Ammo-

sphaeroidina und Neusina) mit 54 Arten aufgezählt. Davon

sind neu: Reophax excentricus, catenulatus, Trochamminoides n. g.

Haplophragmoides n. g. Üribrostomoides n. g. bradyi n. sp.

Cyclammina bradyi, Ammobaculites n. g. americanus n. sp. Ammo-

sphaerordina n.g

Debes, E. Zur Technik der Foraminiferen-Präparation.

Sitzungsber. nat. Ges. Leipzig, Jahrg. 37, 1911, p. 3—34, 3 Taf.,

4 Figg. — Verf. berichtet eingehend über das Isolieren von Fora-

miniferen und unterscheidet dabei die Behandlung von frischem

Material und fossilem Material. Im II. Kapitel wird die Her-

stellung von Dauerpräparaten für durchfallendes Licht geschildert. |

Doflein, F. Lehrbuch der Protozoenkunde. Eine Darstellung

der Naturgeschichte der Protozoen mit besonderer Berück-

sichtigung der parasitischen und pathogenen Formen. 3. stark

vermehrte Auflage. Jena (G. Fischer) 1911. — Fortpflanzung der

Foraminiferen p. 615.

Faur6-Fremiet, E. (1). Revision de la famille des Textulariae.

Bull. Inst. oc&anogr. Monaco, No. 192, 1911, 4 pp. — Verf. teilt die

Familie je nach der Substanz der Schale auf.

— (2). La constitution du test chez les Foraminiferes are-

naces. Bull. Inst. oc&anogr. Monaco, No. 216, 1911, 7 pp. — Die

sandschaligen Foraminiferen unterscheiden sich von den kalk-

schaligen am wesentlichsten durch den viel größeren Eisengehalt

in der Grundsubstanz der Schale.

*_ (3). Revision des Foraminiferes. I. Le genre Haplophrag-

mium. Bull. Soc. Zool. Paris, Tome 35, 1910, p. 199—206. —

Haplophragmium canariense, nanum und globigeriniformis sind

Varietäten von Haplophragmium latidorsatum.

— (4). Variations d’une espece du genre Haplophragmium.

suchungen des Verf. ist Haplophragmium latidorsatum sehr variabel.

Die beiden Arten Haplophragmium canariense und globigerin:-

jormis müssen als Varietäten von ZH. latidorsatum angesehen

werden.

Verzeichnis der Publikationen mit Referaten. 341

— (5). Le röle des mitochondries dans l’elimination du fer

chez les Rhizopodes arenaces. C. R. Soc. Biol. Paris, Tome 70.

1911, p. 119—120. — Verf. färbt Schnitte von sandschaligen

Foraminiferen mit Ferricyankalium und schließt aus der deut-

lichen Blaufärbung der Mitochondrien, daß diese Elemente es

sind, die das Eisen, welches zum Aufbau der Schale erforderlich

ist, binden.

*— (6). Revision des Foraminiferes arenaces. Bull. Mus.

Hist. nat. Paris, Tomv 15, 1910, p. 410-412.

*— (7). Etudes des Foraminiferes de la Mission frangaise

antarctique. 1. Foraminiferes de l’ile de Deception. Bull. Mus.

Hist. nat. Paris, Tome 16, 1911, p. 76—9.

*Geisendörfer, W. Beobachtungen an Foraminiferen. Klein-

welt, 1. Jahrg., 1910, p. 4—7, 10 Figg.

*Herdman, W. A., Scott, Andrew und Dakin, W.J. An

intensiv study of the marine plankton arround the South end of

the Isle of Man. Part III. Proc. Trans. Biol. Soc. Liverpool,

vol. 24, 1910, p. 255—359, 2 Taf.

Heron-Allen, Edward und Arthur Earland (1). On the Recent

an Fossil Foraminifera of the Shoresands of Selsey Bill Sussex. —

VI. A Contribution towards, the Aetology of Massilina secans

(d’Orbigny spec.). Journ. Roy. mier. Soc. London, 1910, p. 693

—695. — Verff. untersuchen eine große Zahl von Massilina

secans und kommen zu dem Schluß, daß die früher beschriebenen

Varietäten (var. denticulata, tenuistriata, obliquistriata) nur ab-

norme Formen sind, hervorgerufen durch Hunger und sonstige

unnatürliche Lebensbedingungen.

— (2). On the Recent and Fossil Foraminifera of the Shor':

sands of Selsey Bill, Sussex. VII. Supplement (Addenta and

Corrigenda). Journ. Roy. mier. Soc. London, 1911, p. 298—343,

5 Taf. VIII. Tabular List of Species and Localities. p. 436—448.

— Als neue Arten und Varietäten werden mit kurzer Diagnose

beschrieben: Spiroculina tergquemiana, Bulimina selseyensis, terque-

miana, Discorbina inaequilateralis, Discorbina patelliformis var.

corrugala n. var., Discorbina rosacea var. selseyensis n. var., Linde-

rina brugesii, Pulvinulina haliotidea und Nonionina quadriloculata.

*— (3). Notes on British Foraminifera. 1. The collection of

living specimens. 2. Massilina secans d’Orb. sp. 3. Polystomella

crispa. Knowledge, London, vol. 33, 1910, p. 285—286; 304—306:

376—379. — Variationen und monströse Formen von Massilina.

Hickson, Sydney J. The Percy Sladen Trust Expedition to

the Indian Ocean in 1905. On Polytrema and some allied Genera.

A Study of some Sedentary Foraminifera based mainly on a Col-

lection made by Prof. Stanley Gardiner in the Indian Ocean.

Trans. Linn. Soc. London, (2), Zoolog., vol. 14, 1911, p. 443—462,

Taf. 30—32, 1 Fig. — Die Gattung Polytrema wird in 3 Genera

aufgelöst, die sich untereinander durch die Stellung der Poren

unterscheiden. Polytrema s. str. hat Pfeilerporen, bei Holotrema

342 Foraminifera für 1910 und 1911.

stehen die Poren auf besonderen Feldern, bei Sporadotrema sind

sie auf der ganzen Oberfläche zerstreut.

Huxley, J.S. Note on Shepheardella taeniformis Siddall.

Zoolog. Anz., Bd. 36, 1910, p. 124—125, 2 Figg. — Verf. ergänzt

die Beschreibung Siddals über Shepheardella taeniformis. Die Art

ist in 3 Exemplaren bei Neapel gefunden worden. Das Exemplar,

das auf Olavellina saß, war milchig weiß, anstatt gelbbraun ge-

färbt. In der Gefangenschaft wurde es nach einiger Zeit gelber.

In Größe übertreffen die Schalen die, welche Siddal beschreibt.

Weiter werden ergänzende Angaben über die Fortpflanzung

gemacht.

Kollmann, Max. Un cas de polyembryonie chez la sacceuline.

Arch. Zool. Exper., (5), T.5, 1910, Notes et Rev., p. XXXVI

— XL, 1 Fig. — Verf. findet auf den Abdominalsegmenten von

Portumus variegatus 2 Individuen von Sacculina betencouri, die auf

einer gemeinsamen Membran befestigt sind. Verf. schließt daraus,

daß die für gewöhnlich solitär lebenden Sacculina bisweilen Er-

scheinungen von Polyembryonie zeigen können.

*Lister, J. J. The Foraminifera. Proc. R. Inst. Great-Britain,

vol. 18, 1909, p. 489—497.

Lücke, F. Saccamına sphaerica M. Sars. Dissert. Kiel 1910.

49 pp. — Mit Rhumbler ist Verf. der Ansicht, Psammosphaera

fusca F. E. Schulze mit Saccamina sphaerica zu vereinigen. Die

vorhandenen Abbildungen von Psammosphaera fusca lassen sich

mit den jugendlichen Saccamina in Einklang bringen. Verf. geht

dann auf die Zusammensetzung des Gehäuses und der Kittsub-

stanz ein. Durchscheinende Quarzitkörnchen werden gewöhnlich

zum Aufbau gewählt. Der Einblick in das Innere wird durch die

die Steinchen zusammenhaltende Kittsubstanz beeinträchtigt.

Verf. prüft das Verhalten der Kittsubstanz gegen chemische

Beagentien. Keratin wurde nicht nachgewiesen. Im II. Teile

behandelt Verf. eingehend den Bau des Weichkörpers. Die An-

gaben Rhumblers über die Fortpflanzung werden ergänzt.

Pearcey, F. @G. On the Genus Botellina (Carpenter) with a

Description of a New Species. Mar. Invest. S. Africa, Cape Towne,

vol. 5, 1908, p. 185—194, Figg. Taf. 20. — Verf. findet, bei 2.

pinnata n.spec. eine große, unregelmäßige Primordialkammer,

auf der sich die verästelte Schale erhebt. Vielleicht kommt sie

allen Spezies zu. Die Schale zerfällt in regelmäßige Kammern,

die durch röhrenförmige Öffnungen verbunden sind und alle,

gleich der Primordialkammer, Pseudopodialöffnungen tragen. Sie

besteht aus Partikeln von Quarz, Zircon und Glauconit, ver-

kittet durch ein kieseliges oder eisenhaltiges Cement. (Neapler

Bericht.)

Rhumbler, L. Die Foraminiferen (Thalamophoren) der

Plankton-Expedition. Zugleich ein Entwurf eines natürlichen

Systems der Foraminiferen auf Grund selectionistischer und

mechanisch-physiologischer Faktoren. 1. Teil: Die allgemeinen

Verzeichnis der Publikationen mit Referaten. 343

Organisationsverhältnisse der Foraminiferen. Ergebn. d. Plankton-

Expedition, Bd. 3, Abt. L. c, 331 pp., 10 Figg., 39 Taf., Karte. —

Verf. sucht in dem ausführlichen Werke eingangs ein natürliches

System der Foraminiferen auf selektionistischer Grundlage auf-

zustellen. Die Festigkeitssteigerung der Schale in der Phylogenie

der Foraminiferen wird dabei als wichtiges Prinzip zugrunde gelegt.

Eine Familie der Perforata und Imperforata kann selbst unter

den weitgehendsten Zugeständnissen von Ausnahmen nicht auf-

recht erhalten werden; eine Scheidung von Perforata und Im-

perforata würde eng zusammengehörige Formen auseinanderreißen.

Verf. erörtert weiter die Verwertung des biogenetischen Grund-

satzes bei der Aufstellung eines natürlichen Systems. Die biformen

Arten verhalten sich gerade umgekehrt, als man nach dem Gesetz

erwarten sollte (Phylogenetisch abfallende Schalenontogenie der

Foraminiferen). Nach einem Überblick über den phylogenetischen

Entwicklungsgang der Foraminiferen auf Grund ihres Schalen-

baues, geht Verf. zur Gestaltungsmechanik der Schale über (Ver-

suche mit Quecksilbertröpfehen).. In dem Kapitel: Die ver-

schiedenen Schalentypen werden 5 Typen (nodosaroider, Spiral-,

Kreisform-, mehrseitiger und Haufentypus) behandelt. Weiter

wird der Schalenaufbau, die Wandstruktur mit lokalen Ver-

schiedenheiten, das Mengenverhältnis von Fremdkörpern und

Kittmasse, Aufspeicherung von Baumaterial der sandschaligen

Foraminiferen zusammenfassend erörtert, sowie die Bestand-

teile, Polarisationserscheinungen, Farbe und Struktur der kalk-

schaligen. Die weiteren Kapitel behandeln die Schalenöffnung,

das Oberflächenrelief der Schalen, Sekundäre Resorptionen von

Schalenwandteilen, die Größenprogression der Kammern und

die mathematische Konstruierbarkeit der Kammer- und Schalen-

form, die Embryonalkammer und den Schalendimorphismus, den

Einfluß der Außenwelt auf die Schalen, die Anpassungen und

Parasiten. Als neue Kommensalen im Plasmakörper wird Zoo-

rhabdella truncatulinae beschrieben. Je nach dem Verhalten und

der Ausgestaltung der Amphiesubstanz im ruhenden prävalenten

Kern werden verschiedene Haupttypen unterschieden (Suspen-

soider, emulsoider, alveolider Typus). Zum Schluß werden die

verschiedenen Vermehrungsweisen zusammengestellt.

Schaudinn, F. Notizen über die Fauna der Adria bei Rovigno.

Herausgegeben von der Zoologischen Station Rovigno in Istrien.

II. Verzeichnis von Foraminiferen aus Rovigno. Zoolog. Anz.,

Bd. 37, 1911, p. 254—256. — Verf. zählt 153 Arten auf, die aus

Grundproben gesammelt sind, welche im Laufe der letzten 6 Jahre

sefischt wurden. Darunter befinden sich verschiedene, noch nicht

beschriebene, neue Arten.

*Sidebottom, Henry (1). Report on the Recent Foraminifera

from the Bay of Palermo, Sicily 14—20 fms. (Off the Harbour).

Mem. Lit Phil. Soc. Manchester, vol. 54, 1910, No. XVI, p. 1—36,

3 Taf.

344 Foraminifera für 1910 und 1911.

— (2). Two New Species of Cassidulina. Journ. Quekett

Mier. Club, (2), vol. 11, 1910, p. 105—108, Taf. 4. — Verf. be-

schreibt Cassidulina elegans und Ü. decorata n.sp. aus dem SW.-

Pazifischen Ozean.

Stiasny, Gustav. Planktonische Foraminiferen aus der Adria.

Sitzungsber. Acad. Wiss. Wien, Bd. 120, Abt.1, 1911, p. 749

— 755. — Verf. untersucht die Ausbeute an Foraminiferen der

„Rudolf Virchow‘“-Fahrten. Es wurden nur 4 pelagische Arten

gefunden. Am häufigsten wurde Orbulina universa in den Plankton-

fängen gefunden. Neu für die Adria sind Hastegerina pelagica,

Globigerina triloba und Orbulina universa.

Wiesner, Hans (1). Notizen über die Fauna der Adria bei

Rovigno. VI. Foraminiferen von dem Sandgrunde der Bucht

S. Pelagio bei Rovigno in 3m Tiefe. Zoolog. Anz., Bd. 37, 1911,

p. 478—480. — Verf. gibt eine Aufzählung der Foraminiferen aus

Grundproben, die der Bucht vor dem Nordhafen von Rovigno

entnommen sind. Nur wenige der genannten Arten treten häufig

auf. Bulimina pulchra war zur Zeit der Entnahme in voller Ver-

mehrungtätigkeit begriffen. — Von Spiroloculina planulata wird

die neue Varietät krumbachi beschrieben.

— (2). Notizen über die Fauna der Adria bei Rovigno.

Herausgegeben von der Zoologischen Station Rovigno in Istrien.

VIII. Schalentragende Foraminiferen von der Westküste Istriens.

Zoolog. Anzeiger, Bd. 38, 1911, p. 505—510. — Die Abhandlung

enthält eine Aufzählung von 182, in Grundproben gefundenen

Arten mit Angabe der Häufigkeit des Auftretens. Hormosina

semiglobosa wird neu beschrieben. Von Discorbina wrighti wird

die neue Varietät spinifera beschrieben, von Discorbina impera-

toria die neue var. nuda.

Winter, F.W. Neuere Untersuchungen über Biologie und

Fortpflanzung der Foraminiferen, ein Bild aus der Kleinlebewelt.

41. Ber. Senckenberg. nat. Ges. Frankfurt a. M., 1910, p. 222

—224 [Allgemeines].

*Wright, Joseph. Foraminifera. Rep. Proc. Belfort N. H.

Phil. Soc., 1907/08, 1909, p. 14—16.

Übersicht nach dem Stoff.

Anatomie und Histologie: Cushman, Faure-Fremiet, Lücke, Pearcey,

Rhumbler. — Technik und Methoden: Cushman, Debes, Faure-Fremiet,

Lücke. — Ontogenie: Chapman (2), Doflein, Huxley, Kollmann, Lücke,

Rhumbler, Winter. — Physiologie und Biologie: Heron-Allen u. Earland,

Rhumbler, Winter.

Faunistik.

Awerinzew (sibir. Eismeer).

Faunistik. 345

Atlantischer Ozean.

Herdmann, Skott u. Dakin (Insel Man). Heron-Allen u. Earland

{1 u. 2) (Nördl. Atlantik). Huxley (Mittelmeer, Neapel). Schaudinn (Mittel-

meer, Rovigno). Sidebottom (1) (Mittelmeer, Palermo). Stiasny (Mittel-

meer, Adria). Wiesner (Mittelmeer, Adria).

Pazifischer Ozean.

Chapman (1) (Australien), Chapman (2) (Funafuti).. Cushman (1)

(Philippinen), Cushman (2) (Nördl. Pazifik). Sidebottom (2).

Indischer Ozean.

Hickson.

Systematik.

Cushman (1 u. 2), Faur6-Fremiet (1, 3, 4, 6), Heron-Allen u. Earland

(1, 2, 3), Lücke, Pearcey, Schaudinn, Sidebottom (2), Wiesner (1 u. 2).

Neue Genera, Species und Varietäten.

Neue Genera: Cushman (1): Ammodiscoides. Cushman (2): Ammo-

sphaerioides, Trochamminioides, Haplophragmoides, Cribrostomoides, Ammo-

baculites, Ammosphaeroidina. Hickson: Holotrema, Sporadotrema (für

Polytrema).

Neue Species: Chapman (3): Lagena juddiana. Cushman (1): Ammo-

discoides turbinatus. Cushman (2): Proteonina ovata, Pilulina ovata, Ammo-

sphaerioides distoma, Crithionina rotundata, Hyperammina maxima, Ammo-

discus exsertus, Rheophax excentricus, Rh. catenulatus, Cribrostomoides bradyt,

Cyclammina bradyi, Ammobaculites americanus. Heron-Allen u. Earland:

Spiroculina terquemiana, Bulimina selseyensis, B. terquemiana, Discorbina

inaequilateralis, Linderina brugesü, Pulvinulina haliotidea, Nonionina

quadriloculata. Sidebottom (2): Cassidulina elegans, Cassidulina decorata.

Wiesner (2): Hormosina semiglobosa.

Neue Varietäten: Chapman (3): Biloculina lucernula n. var. ?, Cassı-

dulina bradii n. var. ? Heron-Allen u. Earland: Discorbina patelliformis var.

corrugata, Discorbina rosacea var. selseyensis. Wiesner (1): Spiroculina

planulata var. krumbachi. Wiesner (2): Descorbina wrighti var. spinifera,

Discorbina imperiatoria var. nuda. j

B. Fossile Foraminiferen.

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werden beschrieben und abgebildet: Biloculina angusta, Bulimina

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